CN104066836A

CN104066836A - 人骨骼肌中的褐色脂肪细胞祖细胞

Info

Publication number: CN104066836A
Application number: CN201280055539.6A
Authority: CN
Inventors: 奥利弗·D·博斯; 米哈埃拉·克里桑; 让-保罗·贾科比诺
Original assignee: Medical Limited-Liability Co Releases Energy
Current assignee: Medical Limited-Liability Co Releases Energy; Energesis Pharmaceuticals Inc
Priority date: 2011-11-10
Filing date: 2012-11-09
Publication date: 2014-09-24
Also published as: US10301595B2; WO2013071050A1; US11299710B2; EP2776557A1; AU2012335548A1; US20220228119A1; IL232402A0; WO2013071063A1; CA2867922A1; JP2015502742A; US20200347353A1; HK1202309A1; US20150240206A1; EP2776557A4

Abstract

本发明涉及褐色脂肪组织(BAT)祖细胞和从骨骼肌分离BAT祖细胞的方法。还提供BAT祖细胞表面标志物以及用于诱导细胞分化成褐色脂肪细胞的培养基和试剂。在一些实施方案中，BAT祖细胞表达与内皮细胞相关的第一细胞表面标志物，第一细胞表面标志物在基于抗体的测定中使用第一抗体可检测到。另外，BAT祖细胞可大致上不含与内皮细胞相关的第二细胞表面标志物，所述第二细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第二抗体大致上不可检测到。BAT祖细胞还可大致上不含额外细胞表面标志物。

Description

人骨骼肌中的褐色脂肪细胞祖细胞

相关申请的交叉引用

本申请要求2011年11月10日提交的美国临时专利申请No.61/558,152的优先权和权益，所述专利申请全部以引用方式并入本文。

技术领域

本发明涉及褐色脂肪组织(BAT)祖细胞和从骨骼肌分离BAT祖细胞的方法。本发明还涉及BAT祖细胞表面标志物以及诱导细胞分化的培养基和试剂。本发明用于研究、预防和治疗各种代谢疾病如肥胖症、2型糖尿病、胰岛素抵抗和血脂异常。

背景

肥胖流行病与糖尿病、高血压、冠心病、癌症和其它病症的发病率增加紧密相关。白色脂肪组织的作用是存储脂质，并且它与肥胖症相关。褐色脂肪组织(“BAT”)的作用事实上相反。它专门从事脂质燃烧和以热量形式的能量耗散。事实上，褐色脂肪细胞含有许多线粒体(其中发生细胞燃烧)并且独特地表达BAT解偶联蛋白-1(“UCP1”)。UCP1充当氧化磷酸化的解偶联剂，导致能量以热量形式耗散。交感神经系统刺激线粒体发生以及UCP1表达和活性。啮齿动物中的BAT相关生热作用在暴露于低温后增加(例如，预防体温过低)或由于过度饱食、燃烧多余吸收脂肪和预防体重增加而增加。通过改变体重增加的易感性和消耗大量葡萄糖，BAT也改进胰岛素敏感性。因此，它在保持体温、能量平衡和葡萄糖代谢中发挥重要作用。

使用转基因动物的实验支持BAT的潜在抗肥胖症性质。举例来说，已经报告BAT的遗传切除可导致肥胖症，而BAT的数量和/或功能(和/或UCP1表达)的遗传增加据报告可促进瘦的和健康的表型。具体来说，与对照小鼠相比，具有较高数量BAT的小鼠获得较少体重并且更具有胰岛素敏感性。最近，异位BAT贮存物在小鼠肌肉中予以证实，已经提出这些贮存物可提供防止体重增加和代谢综合征的基于遗传的机制。

虽然UCP1据报告在控制啮齿动物体内的能量平衡中起作用并且表达UCP1的BAT存在于人类新生儿体内，但是一直认为在成人中没有生理相关的UCP1表达。事实上，表达UCP1的BAT被认为在生命早期消失，并且成人被认为没有BAT。

因此，需要仔细识别并且研究可在成人体内提供更多BAT和/或刺激UCP1表达的方法，以便研究、预防和治疗各种代谢疾病如肥胖症、2型糖尿病、胰岛素抵抗血脂异常和1型糖尿病。

概述

申请人已经首次识别各种组织中的能够分化成褐色脂肪细胞的细胞的存在。在一方面，申请人已经在骨骼肌中识别这类细胞的群体，申请人将其称作BAT祖细胞。本公开提供分选来自各种组织的细胞以识别并且分离BAT祖细胞的方法。在一些实施方案中，BAT祖细胞从人骨骼肌中分离。提供使BAT祖细胞在体外和体内分化成褐色脂肪细胞的方法。在一些实施方案中，在人受试者体内，可导致BAT祖细胞在体内分化成褐色脂肪细胞。本发明还涉及BAT祖细胞表面标志物(例如，CD31和CD34)和培养基以及诱导细胞分化的试剂(例如，PPARγ激动剂和BMP7)。

在一些实施方案中，本公开的BAT祖细胞可在培养物中扩增。在另一方面，分化的BAT祖细胞UCP1mRNA表达通过试剂如细胞渗透cAMP衍生物、过氧化物酶体增殖物活化受体(PPAR如PPARγ)激动剂等来增加。在一些实施方案中，已经分化成褐色脂肪细胞的BAT祖细胞可含有大量线粒体转录因子A(mtTFA)和PPARγ辅助活化剂-1α(PGC-1α)，其均涉及控制线粒体发生，以及线粒体标志物细胞色素氧化酶IV(COX IV)。分化的BAT祖细胞可展现以下特性中的一个或多个：高水平的UCP1表达、高水平的解偶联呼吸、高呼吸率、高代谢率。申请人提供分化的细胞，这些细胞经过配备可经由氧化磷酸化的解偶联来代谢葡萄糖、氧化脂肪酸，并且以热量形式来耗散能量。

本公开提供检测成人骨骼肌中的UCP1mRNA的方法，和增加其在体内表达的方法。虽然以前关于成人体内UCP1表达的研究集中于白色脂肪组织，但是申请人公开了具有UCP1表达的实质性潜力的褐色脂肪祖细胞在人骨骼肌中的存在和分离。在一些实施方案中，此BAT祖细胞库可用于调节能量耗散以及治疗肥胖症、糖尿病和代谢疾病。

在一些方面，本公开提供识别人骨骼肌中的BAT祖细胞的方法和从人骨骼肌样品中分离这些细胞的方法。还提供促进这些祖细胞在体外、体内或在这两者下分化成褐色脂肪细胞的条件和试剂(例如化合物、蛋白质、生物材料等)。提供使用这些条件和试剂来治疗代谢疾病如肥胖症、2型糖尿病、胰岛素抵抗、血脂异常等的方法。

本公开提供允许识别试剂(例如，化合物、蛋白质、生物材料等)的测定，这些试剂诱导UCP1基因的表达、促进BAT祖细胞在体外分化成褐色脂肪细胞、促进BAT祖细胞在体内分化成褐色脂肪细胞，或这些活性的组合。根据一些实施方案，用这种方式识别的试剂可用于治疗代谢疾病如肥胖症、2型糖尿病、胰岛素抵抗、血脂异常等。

在一方面，提供褐色脂肪组织(BAT)祖细胞。BAT祖细胞从人骨骼肌中分离并且能够分化成褐色脂肪细胞。BAT祖细胞表达与内皮细胞相关的第一细胞表面标志物，所述第一细胞表面标志物在基于抗体的测定中使用第一抗体可检测到。另外，BAT祖细胞大致上不含与内皮细胞相关的第二细胞表面标志物，所述第二细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第二抗体大致上不可检测到。在某些实施方案中，BAT祖细胞可大致上不含第三、第四和第五细胞表面标志物中的至少一个。举例来说，BAT祖细胞可大致上不含与造血细胞相关的第三细胞表面标志物，所述第三细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第三抗体大致上不可检测到。BAT祖细胞可大致上不含第三细胞表面标志物和/或与生肌细胞相关的第四细胞表面标志物，所述第四细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第四抗体大致上不可检测到。BAT祖细胞可大致上不含第三和/或第四细胞表面标志物，和/或与周细胞相关的第五细胞表面标志物，所述第五细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第五抗体大致上不可检测到。

在另一个方面，本发明表征从骨骼肌分离的细胞群体，包括如本文描述的至少一种BAT祖细胞。

在另一方面，提供识别BAT祖细胞的方法。所述方法包括：提供从骨骼肌分离的细胞群体；使细胞群体与分别对于第一和第二细胞表面标志物具有特异性的第一和第二抗体接触，其中第一和第二细胞表面标志物各自与内皮细胞相关；以及在基于抗体的测定中确定表达第一细胞表面标志物并且大致上不含第二细胞表面标志物的BAT祖细胞。在一些实施方案中，所述方法可进一步包括以下中的至少一个：使细胞群体与对于与造血细胞相关的第三细胞表面标志物具有特异性的第三抗体接触，所述第三细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第三抗体大致上不可检测到；使细胞群体与对于与生肌细胞相关的第四细胞表面标志物具有特异性的第四抗体接触，所述第四细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第四抗体大致上不可检测到；和/或使细胞群体与对于与周细胞相关的第五细胞表面标志物具有特异性的第五抗体接触，所述第五细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第五抗体大致上不可检测到。在某些实施方案中，所述方法可进一步包括通过选择表达第一细胞表面标志物并且不表达第二细胞表面标志物的细胞来分离细胞群体。在一些实施方案中，所述方法可包括选择表达第一细胞表面标志物并且不表达第二细胞表面标志物，以及第三、第四和第五细胞表面标志物中的至少一个细胞表面标志物的细胞来分离细胞群体。举例来说，所述选择可包括选择表达CD34并且不表达CD31、CD45、CD56或CD146的细胞。所述方法还可包括分离BAT祖细胞和/或在增殖培养基中培养BAT祖细胞，从而离体扩增BAT祖细胞。

在另一个方面，提供诱导BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞的方法。所述方法包括：提供本文描述的BAT祖细胞；使BAT祖细胞暴露于分化培养基；并且在分化培养基中培养BAT祖细胞以诱导BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞。

在另一个方面，本发明表征治疗患者的代谢疾病或病状的方法。所述方法包括：从个体或供体的骨骼肌获得BAT祖细胞；通过在培养基中培养来使BAT祖细胞繁殖；并且将培养细胞移植至个体。在某些实施方案中，所述方法可进一步包括经由在分化培养基中离体培养来诱导BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞。在各种实施方案中，代谢疾病是肥胖症、超重、葡萄糖耐量受损、胰岛素抵抗、2型糖尿病、血脂异常、高血压、心血管疾病、代谢综合征、帕-魏二氏综合征(Prader-Willi Syndrome)或1型糖尿病。

在另一个方面，提供识别诱导BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞的试剂的方法。所述方法包括：提供本文描述的BAT祖细胞；使BAT祖细胞与试剂接触；确定是否BAT祖细胞展现分化成褐色脂肪细胞的指标。在一些实施方案中，分化指标可为以下中的一个或多个的增加：UCP1蛋白质或mRNA的表达、FABP4(aP2)蛋白质或mRNA的表达、PPARγ2蛋白质或mRNA的表达、mtTFA蛋白质或mRNA的表达、PGC-1α蛋白质或mRNA的表达、解偶联呼吸、呼吸率、代谢率、葡萄糖利用率、脂肪酸氧化率和其组合。

在另一个方面，提供识别诱导UCP1的表达或活性水平的试剂的方法。所述方法包括：提供本文描述的BAT祖细胞；使BAT祖细胞与试剂接触；确定是否BAT祖细胞展现UCP1表达或活性的增加。

本发明还包括使用本文描述的任何一种方法所识别的试剂在制造药物中的用途，所述药物用于治疗代谢疾病，和/或用于治疗或预防患者的体温过低。

在一些实施方案中，第一细胞表面标志物可为CD34并且第一抗体可为抗-CD34抗体。在一个实施方案中，第二细胞表面标志物可为CD31并且第二抗体可为抗-CD31抗体。第三细胞表面标志物，例如，可为CD45并且第三抗体可为抗-CD45抗体。第四细胞表面标志物，例如，可为CD56并且第四抗体可为抗-CD56抗体。第五细胞表面标志物，例如，可为CD146并且第五抗体可为抗-CD146抗体。

在各种实施方案中，BAT祖细胞可在分化培养基中分化成褐色脂肪细胞。举例来说，分化培养基可为基本分化培养基(MDM)。分化培养基可进一步包括过氧化物酶体增殖物活化受体γ(PPARγ)激动剂和/或骨形态形成性蛋白质-7(BMP7)。在一些实施方案中，在添加分化培养基之前，BMP7可存在于允许增殖BAT祖细胞的增殖培养基中。

本发明的额外方面包括分离的BAT祖细胞、其原代培养物、从其中产生的建立或永生细胞系、培养BAT祖细胞或细胞系、转染或转导或感染或转化细胞或细胞系，和可从这类BAT祖细胞或细胞系或转化株分化的任何细胞或培养物。本公开的这些和其它特征在本文中阐明。

附图简述

图1展示人胎儿肌肉中的间质血管细胞的免疫组织化学描述和FACS分析和分选。

图2展示从人胎儿肌肉中分选的细胞在成脂条件下的培养和CD34+细胞的RT-PCR和蛋白质印迹分析。图2A、2B、2C：相差；比例尺：50μm。

图3展示人胎儿肌肉CD34+细胞中的线粒体呼吸的解偶联和UCP1mRNA表达的控制。

图4展示成脂培养物中的成人肌肉和WAT细胞的表征。图4A、4C：相差；比例尺：50μm。

图5展示罗格列酮对于人骨骼肌中的UCP1mRNA表达的效果。

图6展示扩增之前的CD31-细胞群体(图6A：EMC309，继代2；图6B：EMC314，继代1)。

图7展示扩增之前的CD31+细胞群体(图7A：EMC309，继代4；图7B：EMC314，继代3)。

图8展示扩增之前的CD56+细胞群体(图8A：EMC309，继代1；图8B：EMC314，继代3)。

图9展示CD31-细胞群体分化成褐色脂肪细胞(图9A-9D：EMC309，第14天的继代4；图9E-9H：EMC314，第14天的继代3)。

图10展示CD31⁺细胞不分化成脂肪细胞(图10A-10D：EMC309，第14天的继代6；图10E-10H：EMC314，第14天的继代5)。

图11展示CD56⁺细胞不分化成脂肪细胞(图11A-11D：EMC309，第14天的继代6；图11E-11H：EMC314，第14天的继代5)。

图12展示与从成脂分化培养基(MDM)中生长的CD31-细胞回收的RNA相比，从CD31+和CD56+细胞中回收的RNA显著较少(反映较低数量的细胞)，不论存在或不存在罗格列酮或BMP7(+/-cmpd)。比较CD31-样品相比于CD31+和CD56+样品中的暗色条(MDM+/-cmpd)。

图13展示CD31-细胞分化成脂肪细胞并且表达UCP1。CD31-细胞暴露于罗格列酮或BMP7强劲地增加细胞的分化和UCP1的表达。

图14展示cAMP和β-AR激动剂与PPARγ激动剂具有对于UCP1mRNA表达的协同效果。RDM＝基本分化培养基+罗格列酮，iso＝(-)-异丙肾上腺素。

图15展示如与未分化的BAT祖细胞相比，分化褐色脂肪细胞具有显著增加水平的PPARγ2mRNA。RDM＝基本分化培养基+罗格列酮，iso＝(-)-异丙肾上腺素。

图16展示CD31-细胞的呼吸。与未分化细胞(EGM2，白色条)比较，分化成褐色脂肪细胞的CD31-细胞(灰色条)具有较高水平的线粒体解偶联，或质子泄漏(状态4呼吸)，以及最大(解偶联)呼吸(状态3u)。

图17展示通过荧光免疫组织化学对于CD31-细胞中的UCP1所进行的定量。

图18展示通过多重实时PCR，未分化(EGM2)和分化(罗格列酮或BMP7)CD31-细胞中的UCP1(图18A，黑色条)、FABP4(图18B，灰色条)和亲环蛋白A mRNA的定量。

详述

本公开提供识别和分离各种组织中的BAT祖细胞的方法，在一些实施方案中，所述方法包括识别人骨骼肌中的常见褐色脂肪细胞祖细胞并且从人骨骼肌样品中分离这类细胞。在一些实施方案中，细胞分选可通过细胞表面标志物如一个或多个群集分化/指定("CD")分子CD31、CD34、CD45、CD56和CD146的免疫组织化学分析来完成。CD31和CD34可用于识别内皮细胞。造血细胞和生肌祖细胞可分别基于其细胞表面上的CD45和CD56的识别来分选。CD146可用于识别周细胞。在一方面，CD34的表达将细胞识别为褐色脂肪细胞的祖细胞。在另一个方面，CD34+细胞亚群代表迄今为止已知的最纯人褐色脂肪细胞祖细胞。

流式细胞术、荧光激活细胞分选("FACS")和在本领域中已知的其它细胞分选技术可用于分选从各种组织获得的细胞并且将BAT祖细胞与其它细胞分离。在本领域中已知的其它技术之中，多色FACS可用于识别CD31-CD34+内皮细胞。另外，CD146+周细胞、CD45+造血细胞和/或CD56+生肌祖细胞中的一种或多种可分离并且移除。逆转录酶聚合酶链反应("RT-PCR")分析可用于证实CD34+和CD146+细胞群体中不存在造血细胞和生肌祖细胞。

申请人意外地发现祖细胞群体存在于骨骼肌中，并且在一些实施方案中，此群体发现于骨骼肌但是未发现于白色脂肪组织中，并且在一些实施方案中，仅发现于骨骼肌中(即，未发现于其它组织中)。骨骼肌可为人或任何动物的骨骼肌，并且祖细胞群体可分散于骨骼肌中或集中于不连续区域。在一些实施方案中，BAT祖细胞可发现于肌纤维之间。骨骼肌BAT祖细胞可为固定群体或可在骨骼肌或其它组织内以及不同组织之间和之中移动。进一步，BAT祖细胞可发现于胎儿、青少年和成人骨骼肌中。

本发明教导提供从各种组织中分离的BAT祖细胞。举例来说，提供从人骨骼肌中分离的BAT祖细胞。在一些实施方案中，BAT祖细胞发现于骨骼肌中但是未发现于白色脂肪组织，和/或仅发现于骨骼肌中。一些BAT祖细胞可表达UCP1、线粒体转录因子A(mtTFA)和/或PPARγ辅助活化剂-1α(PGC-1α)以及一种或多种相应mRNA。本公开提供检测成人骨骼肌中的BAT祖细胞和/或UCP1mRNA的方法。虽然以前关于成人体内UCP1表达的研究集中于白色脂肪组织，但是申请人公开了具有UCP1表达的高潜力的褐色脂肪祖细胞在人骨骼肌中的存在和分离。在一些实施方案中，骨骼肌中的BAT祖细胞库提供调节能量耗散的机制以治疗代谢疾病如肥胖症、糖尿病等。

存在于骨骼肌中的祖细胞群体的至少一部分能够分化成真正的褐色脂肪细胞，并且在一些实施方案中，存在于骨骼肌中的祖细胞群体的一部分能够在体外分化成真正的褐色脂肪细胞。本公开提供扩增BAT祖细胞培养物的方法和使BAT祖细胞分化成真正的BAT细胞的方法，包括在成脂培养基中使以前分选的细胞分化的方法。在一些实施方案中，分选的祖细胞分化成褐色脂肪细胞可使用维持白色脂肪细胞分化的条件或使用确定为促进祖细胞分化成褐色脂肪细胞的试剂来执行。

一些实施方案利用UCP1、FABP4(aP2)、PPARγ2、线粒体转录因子A(mtTFA)和/或PPARγ辅助活化剂-1α(PGC-1α)以及一种或多种相应mRNA的存在来识别开始至少部分地分化的BAT祖细胞。高代谢率或高水平解偶联呼吸、葡萄糖利用、脂肪酸氧化或前述特性彼此或与其它特性的组合可用于识别开始至少部分地分化的BAT祖细胞。出于本公开目的，开始至少部分地分化成褐色脂肪细胞的BAT祖细胞被称为“分化的褐色脂肪细胞”。

举例来说，确定为表达CD34标志物的细胞(即CD34+细胞)可分化成褐色脂肪细胞，通过在含有0.86μM胰岛素、10μg/ml转铁蛋白、0.2nM三碘甲腺原氨酸、1μM罗格列酮、100μM3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、1μM地塞米松和1％青霉素-链霉素的DMEM-汉氏F-12培养基中培养。其它试剂也可用于促进祖细胞分化成褐色脂肪细胞。在一些实施方案中，根据本公开教导来识别的试剂用于促进祖细胞分化成褐色脂肪细胞。在一些实施方案中，分化的褐色脂肪细胞展现高水平UCP1表达、高水平解偶联呼吸和/或高代谢率。

在另一个实例中，与CD34+细胞(即，包括CD34+CD31-细胞和CD34+CD31+细胞)相比，表达CD34标志物但是大致上不含CD31标志物的细胞(即，CD34+CD31-细胞)可代表更纯BAT祖细胞群体。在某些实施方案中，不含有PPARγ激动剂(例如，罗格列酮)的成脂分化培养基，称为基本分化培养基(MDM)，证明足以诱导至少一定比例脂肪细胞祖细胞的分化。MDM的组成为：DMEM/汉氏F-1250/50混合物(3.151g/l，17.5mM右旋葡萄糖，3.651g/l左旋谷酰胺)(Cellgro#10-090-CV)、5μg/ml(0.86μM)胰岛素、10μg/ml转铁蛋白、0.2nM3,3',5-三碘-L-甲状腺素、100μM3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、1μM地塞米松、1％青霉素-链霉素。

本公开提供增加BAT祖细胞、分化褐色脂肪细胞或两者中的UCP1mRNA表达的方法。举例来说，试剂如细胞渗透cAMP衍生物和过氧化物酶体增殖物活化受体-γ(PPARγ)激动剂可用于增加BAT祖细胞、分化褐色脂肪细胞或两者中的UCP1mRNA表达。增强的UCP1表达可通过在本领域中已知的方法来确定，包括通过定量RT-PCR来测量UCP1mRNA。用于UCP1mRNA的RT-PCR分析中的示例性引物以SEQ ID NO:1-4和11-12形式来提供。

与未暴露于成脂培养基的BAT祖细胞相比，暴露于成脂培养基的BAT祖细胞可含有较高水平UCP1mRNA。亲环蛋白mRNA水平可充当评估细胞中的UCP1mRNA丰度的归一化值(反映细胞数量或RNA总量)。在一些实施方案中，未暴露于成脂培养基的BAT祖细胞中的UCP1mRNA水平使用RT-PCR不可检测到，而分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平可检测到并且可相对于亲环蛋白mRNA水平来归一化。作为UCP1表达的比较测量，分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平可与培养小鼠褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平相比较。本公开提供培养小鼠褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平约25％的分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平，而在其它实施方案中，UCP1mRNA水平是培养小鼠褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平的约25±10％或约15％至约30％。本公开涵盖培养小鼠褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平约5％至约100％范围内的分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平。在一些实施方案中，UCP1mRNA水平可超过培养小鼠褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平的100％。

与相同种类或相同个体成人骨骼肌活检中的细胞相比，分化褐色脂肪细胞可含有显著较高水平的UCP1mRNA。另外，分化褐色脂肪细胞中的UCP1蛋白质的数量可与相同种类或相同个体胎儿BAT中的UCP1蛋白质的数量近似相等。本公开涵盖人分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平与体内人褐色脂肪细胞的UCP1mRNA水平近似相等。在一些实施方案中，人分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA水平可在体内人褐色脂肪细胞的UCP1mRNA水平的约1％直至比其大许多倍的范围内。

本公开提供增加BAT祖细胞、分化褐色脂肪细胞或两者中的UCP1mRNA水平的方法。在一些实施方案中，所述方法提供选择性增加BAT祖细胞、分化褐色脂肪细胞或两者中的UCP1mRNA水平。PPARγ激动剂可刺激骨骼肌和分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA产生。举例来说，在一些实施方案中，PPARγ激动剂罗格列酮选择性刺激骨骼肌或分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA产生。细胞渗透cAMP衍生物可刺激均骨骼肌和分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA产生。举例来说，在一些实施方案中，细胞渗透cAMP衍生物8-溴-cAMP选择性刺激骨骼肌或分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA产生，而在一些实施方案中，细胞渗透cAMP衍生物(4-氯苯基硫代)-cAMP选择性刺激骨骼肌或分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA产生。举例来说，在一些实施方案中，PPARγ激动剂罗格列酮和细胞渗透cAMP类似物二丁酰-cAMP或β-AR激动剂(-)-异丙肾上腺素的组合可另外选择性刺激骨骼肌或分化褐色脂肪细胞中的UCP1mRNA产生(图14)。

线粒体转录因子A(“mtTFA”)和过氧化物酶体增殖物活化受体-γ辅助活化剂-1α(“PGC-1α”)涉及控制线粒体发生。分化褐色脂肪细胞可含有大量mtTFA、PGC-1α或两者。本公开提供如与未分化的BAT祖细胞相比，具有显著增加水平的mtTFA mRNA、PGC-1αmRNA或两者的分化褐色脂肪细胞。线粒体标志物细胞色素氧化酶IV(COXIV)涉及线粒体呼吸链。本公开提供如与未分化的BAT祖细胞相比具有显著增加水平的COX IV mRNA的分化褐色脂肪细胞。脂肪酸结合蛋白-4(“FABP4”或“aP2”)和过氧化物酶体增殖物活化受体-γ2(“PPARγ2”)基因只表达于脂肪细胞(褐色和白色)中。分化褐色脂肪细胞可含有大量FABP4、PPARγ2或两者。本公开提供如与未分化的BAT祖细胞相比具有显著增加水平的FABP4mRNA、PPARγ2mRNA或两者的分化褐色脂肪细胞。举例来说，图15展示在由RDM诱导的分化后，RDM+cAMP或RDM+iso、PPARγ2mRNA水平分别增加10.4倍、9.2倍和6.8倍。

根据一些实施方案的分化褐色脂肪细胞具有高水平的解偶联呼吸和/或高代谢率。当质子跨越线粒体内膜泄漏而非穿过三磷酸腺苷合成酶(“ATP合成酶”)酶以驱动三磷酸腺苷(“ATP”)的产生时，可发生解偶联呼吸。在跨越膜的质子电化学梯度中通过质子运动释放的能量以热量形式耗散，而不是在制造ATP的过程中耗散。解偶联呼吸可随着细胞呼吸的部分(例如，氧消耗)的变化来测量，其独立于通过ATP合成酶的ATP形成而发生。举例来说，在阻断ATP合成酶功能的寡霉素的存在下，氧化磷酸化的电子传递链中的氧消耗提供解偶联呼吸的度量。

本公开提供如与未分化的BAT祖细胞相比，具有显著增加水平的解偶联呼吸的分化褐色脂肪细胞。在一些实施方案中，本公开提供具有总呼吸的约50％的解偶联呼吸水平的分化褐色脂肪细胞。一些实施方案展现总呼吸的约20％至约50％范围内的水平的解偶联呼吸。使用成人白色脂肪细胞中的解偶联呼吸水平作为比较标准，一些实施方案展现比成人白色脂肪细胞大约1.5至约3.5倍范围内的解偶联呼吸。在一些实施方案中，解偶联呼吸水平比成人白色脂肪细胞大约2.5倍。本公开尤其提供分化褐色脂肪细胞，这些细胞经过配备可经由氧化磷酸化的解偶联来代谢葡萄糖、氧化脂肪酸，并且以热量形式来耗散能量。

本公开提供在体外和体内促进BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞的条件和试剂(例如，化合物、蛋白质、生物材料等)。在一些实施方案中，分化促进试剂为：PPARγ活化剂、调节剂或抑制剂(例如，罗格列酮)、PPARα活化剂或调节剂(例如，氯贝丁酯、GW9578)、PPARδ活化剂或调节剂(例如，GW501516或GW0742)、双重PPARα和PPARδ活化剂或调节剂、泛-PPAR(α、δ、γ)活化剂或调节剂(例如，GW4148)、PDE1抑制剂(例如，长春西汀或IBMX)、PDE3抑制剂(例如，氰胍佐旦或IBMX)、PDE4抑制剂(例如，咯利普兰或IBMX)、PDE7抑制剂(例如，BMS586353或BRL50481或IBMX)、前列腺素J2、9α,11β-前列腺素F2、9β,11α-前列腺素F2、由垂体腺苷酸环化酶活化多肽(ADCYAP1或PACAP)基因衍生的肽(PACAP前肽、PACAP相关肽、PACAP-38或PACAP-27)、二丁酰-cGMP、8-溴-cGMP、NRIP1(RIP140)抑制剂、PTEN抑制剂(例如，双过氧(联吡啶)氧代钒酸钾或双过氧(5-羟基吡啶-2-羧基)氧代钒酸二钾)、α1-肾上腺素能完全或部分激动剂(例如，苯福林或西拉唑啉)、α2-肾上腺素能拮抗剂(例如，育亨宾)、RXRα活化剂或调节剂(例如，LGD1069(Targretin)或9-顺式维A酸)、PGC-1α活化剂、PGC-1β抑制剂或活化剂、脂肪连接蛋白或脂肪连接蛋白受体AdipoR1和/或AdipoR2的活化剂、NOS抑制剂或活化剂(例如，1400W、2-乙基-2-异硫脲或NG-硝基-L-精氨酸甲酯(L-NAME)或腺苷)、Rho激酶-ROCK抑制剂(例如，法舒地尔、HA1077)、BDNF、单胺氧化酶(MAO)A抑制剂和/或MAO B抑制剂(例如，异卡波肼、吗氯贝胺、司立吉林)、SRC的活化剂、EGFR的抑制剂(例如，RG-14620、厄洛替尼或ZD1839-吉非替尼或Argos蛋白质)、FAAH的抑制剂(例如，URB597)、MAPK1(例如，PD98059)或2(例如，PD98059)或4或5或7或8(例如，PD98059)的抑制剂、CDK9的抑制剂(例如，1,5,6,7-四氢-2-(4-吡啶基)-4H-吡咯并[3,2-c]吡啶-4-酮盐酸盐)、TGR5激动剂(例如，齐墩果酸)、AMPK活化剂(例如，AICAR)、BMP-7、mTOR抑制剂(例如，雷帕霉素)、腺苷酸环化酶活化剂(例如，毛喉素)、福莫特罗、沙丁胺醇、安非他酮、REV-5901、24(S)-羟基胆固醇、1,25-二羟维生素D3、24,25-二羟维生素D3、前列腺素J2、15d-前列腺素J2、9α,11β-前列腺素F2、9β,11α-前列腺素F2、二十碳三烯酸(20:3n-9)、二十二碳六烯酸(22:6n-3)、二十二碳三烯酸(22:3n-3)、二十二碳五烯酸、溶血磷脂酸、米酵菌酸、3-溴-7-硝基吲唑、孕烯醇酮16a腈、地棘蛙素、COX-2抑制剂(例如，NS-398)，或任何前述试剂的组合。

在一些实施方案中，受试者包括人受试者用罗格列酮的治疗导致受试者骨骼肌中的UCP1mRNA产量增加。在一些实施方案中，受试者用罗格列酮治疗可诱导骨骼肌中的褐色脂肪细胞出现或分化、增强骨骼肌中的现有褐色脂肪细胞中的UCP1基因的表达，或两者。举例来说，在一些实施方案中，骨骼肌中的褐色脂肪细胞的出现或分化可在患有代谢疾病的受试者中诱导。褐色脂肪细胞可提供具有高线粒体和细胞呼吸和脂肪酸氧化率的葡萄糖接收器(glucose sink)，以热量形式耗散能量(解偶联氧化磷酸化)。受试者代谢率可增强，并且可诱导体重降低。诱导褐色脂肪细胞的出现或分化还可产生胰岛素敏感性、血糖稳态和心血管疾病风险因素的改善。褐色脂肪细胞可进一步分泌有助于增加胰岛素敏感性和改善血糖稳态或心血管健康的因子。

本公开还提供允许识别试剂(例如，化合物、蛋白质、生物材料等)的测定，这些试剂促进BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞和/或诱导UCP1基因在体外、体内或两者下的表达。这类试剂可通过筛选化合物、蛋白质、生物材料等来识别。举例来说，在一些实施方案中，分离的CD34+细胞可用于针对诱导UCP1基因表达和/或CD34+细胞分化成褐色脂肪细胞的能力来对试剂进行筛选。用这种方式识别的试剂可用于各种研究、诊断和治疗用途，包括例如治疗代谢疾病如肥胖症、2型糖尿病、胰岛素抵抗、血脂异常等。在一些实施方案中，通过根据本公开的测定来识别的试剂加以优化以改善其物理化学和/或药代动力学性质。

在体外和体内的BAT祖细胞中的UCP1、FABP4(aP2)、PPARγ2、mtTFA、PGC-1α和/或COX IV的表达可根据本公开提供的方法来增强。在一些实施方案中，暴露于成脂培养基可用于刺激BAT祖细胞中的UCP1、FABP4(aP2)、PPARγ2、mtTFA、PGC-1α和/或COX IV的表达增加。试剂如PPARγ活化剂、调节剂或抑制剂(例如，罗格列酮)、PPARα活化剂或调节剂(例如，氯贝丁酯、GW9578)、PPARδ活化剂或调节剂(例如，GW501516或GW0742)、双重PPARα和PPARδ活化剂或调节剂、泛-PPAR(α、δ、γ)活化剂或调节剂(例如，GW4148)、PDE1抑制剂(例如，长春西汀或IBMX)、PDE3抑制剂(例如，氰胍佐旦或IBMX)、PDE4抑制剂(例如，咯利普兰或IBMX)、PDE7抑制剂(例如，BMS586353或BRL50481或IBMX)、前列腺素J2、9α,11β-前列腺素F2、9β,11α-前列腺素F2、由垂体腺苷酸环化酶活化多肽(ADCYAP1或PACAP)基因衍生的肽(PACAP前肽、PACAP相关肽、PACAP-38或PACAP-27)、NRIP1(RIP140)抑制剂、PTEN抑制剂(例如，双过氧(联吡啶)氧代钒酸钾或双过氧(5-羟基吡啶-2-羧基)氧代钒酸二钾)、α1-肾上腺素能完全或部分激动剂(例如，苯福林或西拉唑啉)、α2-肾上腺素能拮抗剂(例如，育亨宾)、RXRα活化剂或调节剂(例如，LGD1069(Targretin)或9-顺式维A酸)、PGC-1α活化剂、PGC-1β抑制剂或活化剂、脂肪连接蛋白或脂肪连接蛋白受体AdipoR1和/或AdipoR2的活化剂、NOS抑制剂或活化剂(例如，1400W、2-乙基-2-异硫脲或NG-硝基-L-精氨酸甲酯(L-NAME)或腺苷)、Rho激酶-ROCK抑制剂(例如，法舒地尔、HA1077)、BDNF、单胺氧化酶(MAO)A抑制剂和/或MAO B抑制剂(例如，异卡波肼、吗氯贝胺、司立吉林)、SRC的活化剂、EGFR的抑制剂(例如，RG-14620、厄洛替尼或ZD1839-吉非替尼或Argos蛋白质)、FAAH的抑制剂(例如，URB597)、MAPK1(例如，PD98059)或2(例如，PD98059)或4或5或7或8(例如，PD98059)的抑制剂、CDK9的抑制剂(例如，1,5,6,7-四氢-2-(4-吡啶基)-4H-吡咯并[3,2-c]吡啶-4-酮盐酸盐)、TGR5激动剂(例如，齐墩果酸)、AMPK活化剂(例如，AICAR)、BMP-7、mTOR抑制剂(例如，雷帕霉素)、腺苷酸环化酶活化剂(例如，毛喉素)、福莫特罗、沙丁胺醇、安非他酮、REV-5901、24(S)-羟基胆固醇、1,25-二羟维生素D3、24,25-二羟维生素D3、前列腺素J2、15d-前列腺素J2、9α,11β-前列腺素F2、9β,11α-前列腺素F2、二十碳三烯酸(20:3n-9)、二十二碳六烯酸(22:6n-3)、二十二碳三烯酸(22:3n-3)、二十二碳五烯酸、溶血磷脂酸、米酵菌酸、3-溴-7-硝基吲唑、孕烯醇酮16a腈、地棘蛙素、COX-2抑制剂(例如，NS-398)或其组合也可用于刺激BAT祖细胞中的UCP1、FABP4(aP2)、PPARγ2、mtTFA、PGC-1α和/或COX IV表达增加。

实施例

本发明教导的方面可进一步鉴于以下实施例来了解，这些实施例不应被视为以任何方式限制本发明教导的范围。

实施例1：肌肉血管细胞的分选和分化。

在胎儿骨骼肌中，通过免疫组织化学发现CD34和CD146分别表达于内皮细胞和周细胞的表面，但是CD34也由分散于肌原纤维间空间中的细胞来表达。已经发现CD146+周细胞包围CD34+内皮细胞。在成人骨骼肌中观察到CD34+和CD146+细胞的类似分布。

来自七个独立胎儿肌肉(妊娠16-24周)的血管细胞使用多色荧光活化细胞分选(FACS)来分选。如同生肌祖细胞(CD56+)一样，首先将造血(CD45+)细胞选出。然后，分选内皮细胞(CD34+/CD146-)和周细胞(CD34-/CD146+)。其后将CD34+/CD146-/CD45-/CD56-指定为CD34+细胞，并且CD34-/CD146+/CD45-/CD56-指定为CD146+细胞。图1A展示CD34+/CD146-和CD34-/CD146+细胞纯化。分离的细胞用PE-抗-CD34、FITC-抗-CD146、PE-Cy7-抗-CD56和APC-Cy7-抗-CD45抗体染色并且在FACS Aria细胞分选仪上运作。在排除CD45+和CD56+细胞(左图)之后，将CD34+或CD146+门控内部的细胞分离。CD34+细胞达起始胎儿肌细胞群体的8+1％。

图1B展示对于CD34+/CD146-/CD45-/CD56-(CD34)、CD34-/CD146+/CD45-/CD56-(CD146)和总未分选的细胞的RT-PCR分析。肌动蛋白mRNA作为对照来测量。CD34+细胞显示未受可检测的CD45+造血或CD56+生肌细胞污染。

分选细胞在EGM2培养基中生长4-6天，并且在成脂培养基中生长8-12天，如在材料和方法中所描述。这些条件维持WAT原代培养物中的白色脂肪细胞分化。图2展示原代培养物(PC)中的CD34+(图2A)和CD146+(图2B、图2C)细胞和在培养物中扩增直至继代3(P3)的CD34+(图2D)细胞。实质上所有分选胎儿肌肉CD34+细胞分化成脂肪细胞样多腔细胞(图2A、2D)。显著地，在细胞培养物中，多腔结构由白色和褐色脂肪细胞共有。相比之下，胎儿肌肉CD146+细胞在如上所述条件下成长非常缓慢。其未达到细胞融合并且展示周细胞样外观，特征在于大尺寸、扩展开的形状和不规则边界(图2B和2C)。可检测到偶然的多腔细胞(图2C)在如上所述的条件下在培养物中扩增直至3继代(4周)的CD34+细胞的形态类似于在原代培养物中观察到的形态，但是成熟脂肪细胞的尺寸较小(图2D)。

在某些实施方案中，CD45+细胞和/或CD56+细胞可保持于CD34+/CD146-群体中；也就是说，在不首先选出CD45+细胞和CD56+细胞中的至少一个的情况下分选CD34+/CD146-细胞。已经观察到CD45+和CD56+群体可相对较小(例如，每个群体小于来自肌肉的总间质血管细胞的5％、小于4％、小于3％、小于2％或小于1％)。因此，可分离相对纯褐色脂肪细胞祖细胞群体而不需要选出CD45+和CD56+群体中的至少一个。此外，CD45+细胞是造血祖细胞并且在成脂培养基中不显著生长或分化。CD56+细胞是肌肉前体并且在成脂培养基中不显著生长或分化。因此，CD45+细胞和/或CD56+细胞的存在不显著影响CD34+细胞的增殖和/或分化。

实施例2：培养CD34+细胞中的UCP1表达。

胎儿肌肉CD34+细胞的显著脂肪细胞样分化是进一步表征的诱因。引人关注的是，定量RT-PCR显示这些细胞中的较高水平UCP1mRNA。图2E展示原代培养物(PC)或扩增直至继代3(P3)中的CD34+细胞中的UCP1(空列)和瘦蛋白(灰色列)mRNA表达的定量RT-PCR确定。相对于亲环蛋白A归一化的平均UCP1mRNA水平是1797±510任意单位(即，使用相应亲环蛋白A值来归一化的任意值±s.e.m.；n＝4-7)，对应于相对于测定中的25ng cDNA，周期阈值(Ct)为22。

出于比较，培养物中分化的小鼠褐色脂肪细胞中的相对于亲环蛋白A归一化的平均UCP1mRNA水平是7715±2649(n＝10)任意单位。因此，人CD34+细胞中的UCP1mRNA水平达小鼠褐色脂肪细胞培养物中的UCP1mRNA水平的几乎四分之一。人胎儿BAT不用作定量RT-PCR分析的阳性对照，因为由于终止妊娠之后过去的时间，RNA降解风险较高。将克隆扩增子并且测序，并且发现与人UCP1100％相同。在扩增直至继代3的胎儿肌肉CD34+细胞中，仍然观察到原代培养细胞中所检测的UCP1mRNA表达水平43％的高UCP1mRNA表达。在未分化胎儿肌肉CD34+细胞中或在原代培养物的CD146+细胞中，未检测到UCP1mRNA表达。在原代培养和扩增细胞中，瘦蛋白mRNA水平分别是9.9±5.5和71±52任意单位(图2E)。

实施例3：CD34+细胞的额外表型。

为了更好地表征培养物中扩增的胎儿肌肉CD34+细胞的基因表达模式，执行基因芯片分析。具有显著检测P值(p<0.01)的若干代表基因mRNA的表达水平展示于表1并且与人肌肉活检中的那些表达水平比较。选择以下蛋白质mRNA：UCP1作为参考基因，涉及控制生热作用和线粒体发生的线粒体转录因子A(mtTFA)和过氧化物酶体增殖物活化受体(PPARγ)和PPARγ辅助活化剂-1α(PGC-1α)、线粒体呼吸链琥珀酸脱氢酶(SDH)和细胞色素氧化酶IV(COX IV)、脂肪酸降解途径的酶、肉碱棕榈酰转移酶IB(CPTlB)、酰基-辅酶A脱氢酶长链(ACAD)和C-4至C-12直链(ACADM)，和骨骼肌标志物肌细胞生成素、生肌因子5(Myf5)和生肌分化1(MyoD1)。在BAT中高度表达并且可充当UCP1活性[16]抑制因子的Cidea选择为BAT标志物。这些基因的GenBank登记号展示于补充数据中。

表1

mRNA	登录号	CD34+细肥	人肌肉活检
				UCP1	NM_021833	94	n.s.
mTFA	NM_003201.1	413	205
				PPAPγ	NM_138712.2	3326	84
PGC-1α	NM_013261.2	137	619
				COXIV	NM_001861.2	13′082	13′407
SDH	NM_003000.1	2390	5187
				CPT1B	NM_004377.2	99	639
ACAD	NM_032169.3	1032	141
				ACADM	NM_000016.2	599	1640
肌细胞生成素	NM_002479.3	n.s.	267
				Myf5	NM_05593	n.s.	21
MyoD1	NM_002478	n.s.	12
				Cidea	NM_198289.1	337	n.s.

表1中的数据以平均Illumina信号来表示。检测P值<0.01。使用以下缩写：n.s，不显著；mtTFA，线粒体转录因子A；PPARγ，过氧化物酶体增殖物活化受体-γ；PGC-1α，PPARγ辅助活化剂-1α；COXIV，细胞色素氧化酶IV；SDH，琥珀酸脱氢酶；CPTlB，肉碱棕榈酰转移酶IB；ACAD，酰基-辅酶A脱氢酶长链；ACADM，C-4至C-12直链；Myf5，生肌因子5；MyoD1，生肌分化1。

UCP1显著表达于胎儿肌肉扩增CD34+细胞中但是不表达于成人肌肉活检中(p＝0.12)。胎儿肌肉的扩增CD34+细胞的选定基因的mRNA表达水平与成人肌肉活检的那些表达水平是可比较的，除了PGC-1α和CPTlB mRNA(在细胞中的表达小约5倍)和PPARγ和ACAD mRNA(在肌肉活检中的表达分别小40和7倍)以外。肌肉标志物肌细胞生成素，Myf5和MyoD1 mRNA显著表达于肌肉中，但是不表达于细胞中，而BAT标志物Cidea mRNA表达于细胞中，但是不表达于肌肉中。没有β3-肾上腺素受体mRNA可在基因芯片分析中检测到。然而，显著地，在原代培养物的胎儿肌肉CD34+细胞中，β3-肾上腺素受体mRNA通过定量RT-PCR来检测(任意值0.084±0.044，以亲环蛋白A作为参考；n＝4)。mtTFA、PGC-1α和COXIV的测量也通过定量RT-PCR来执行以使用不同技术来证实基因芯片数据。结果是确定的，显示使用亲环蛋白A作为参考，原代培养物中的胎儿肌肉CD34+细胞表达高水平mtTFA、PGC-1α和COX IVmRNA[分别达306±117、385±294，和23,400±10,300个任意单位(n＝3-4)]。

如使用与人UCP1(80％同一性)交叉反应的抗小鼠抗体的蛋白质印迹来评估，UCP1蛋白质在原代培养胎儿肌肉CD34+细胞中与在胎儿BAT中一样丰富。图2(F)展示组织或全细胞提取物中的UCP1和甘油醛磷酸脱氢酶(GAPDH)蛋白质的代表性蛋白质印迹分析。展示19周胎儿的肩胛间BAT(泳道1)、原代培养物中的CD34+细胞(泳道2)，和成人的骨骼肌(泳道3)。将25μg蛋白质负载于每个泳道中。

实施例4：氧化磷酸化的解偶联。

为了获得肌源性细胞中的UCP1的可能功能的洞察，将分离培养人胎儿肌肉CD34+细胞和成人白色脂肪细胞的线粒体呼吸加以比较。基础呼吸定义为抗霉素A敏感的氧消耗。解偶联呼吸(质子泄漏)定义为对于ATP合成酶阻滞剂寡霉素不敏感的基础呼吸的百分比。

图3A展示分离的胎儿肌肉CD34+细胞和在原代培养物中生长并且新鲜胰酶消化的成人白色脂肪细胞中的解偶联线粒体呼吸。结果是平均值±s.e.m；*p<0.05.n＝3。在人胎儿肌肉CD34+细胞和成人白色脂肪细胞中，解偶联与总呼吸的比率分别是47±12％和19±2％。

图16展示与分化之前的相同细胞相比，CD31-细胞在分化成褐色脂肪细胞后展示更高度解偶联呼吸和更大呼吸能力。

实施例5：培养的CD34+细胞中的UCP1表达的调节。

胎儿肌肉CD34+细胞中的UCP1mRNA表达可由药物疗法来调节。细胞渗透cAMP衍生物强烈刺激(7至8倍)原代培养和扩增细胞中的UCP1 mRNA表达。cAMP衍生物8-溴-cAMP，0.25mM或(4-氯苯基硫代)-cAMP，0.25mM(cAMP)对于原代培养物(PC)或扩增直至继代3(P3)的CD34+细胞中的UCP1mRNA表达的效果展示于图3B。所有细胞在EGM2培养基中生长4-6天，然后置于成脂培养基中8-12天，如在材料和方法中所描述。结果是使用相应亲环蛋白A值来归一化的任意值的平均值±s.e.m.。其以被视为100％的其相应未处理(对照)值的％来表示(*p<0.05，n＝3-6)。

PPARγ激动剂罗格列酮在原代培养物细胞中没有效果，但是强烈刺激(8倍)扩增细胞中的UCP1 mRNA表达。罗格列酮(Rosi)1μM对于CD34+细胞PC或P3中的UCP1mRNA表达的效果展示于图3C。结果如图3B中表示(**p<0.01，n＝4-7)。

实施例6：在人褐色脂肪细胞祖细胞的寿命中的肌肉特异性和持久性。

从人胎儿肌肉中得到表达UCP1的细胞提出了褐色脂肪细胞祖细胞限制于此组织和胎儿阶段的问题。为了解决这个问题，来自人胎儿胰腺、肺和肝脏的通过FACS纯化的CD34+细胞在与胎儿肌肉CD34+细胞相同成脂条件下培养。分选细胞成长缓慢并且仅其较小比例变为多腔。UCP1mRNA不表达于胰腺或肺细胞；然而，轻微表达在肝细胞中测量到，达在胎儿肌肉CD34+细胞中检测到的2％(未展示)。

在成脂条件下生长于原代培养物(PC)的从4个成人(50-78岁)人骨骼肌样品分选的CD34+细胞也分化成多腔细胞。这些细胞穿插有其它类型的细胞，其中一些含有较小脂滴(图4A)。UCP1mRNA水平(370±132个任意单位)是在原代培养胎儿肌肉CD34+细胞中检测到的21％。相比之下，瘦蛋白表达(75±69个任意单位)比胎儿细胞高7.6倍。图4B展示UCP1(空列)和瘦蛋白(灰色列)mRNA表达的定量RT-PCR确定。所有细胞在EGM2培养基中生长4-6天，然后置于成脂培养基中8-12天，如在材料和方法中所描述。结果是相对于相应亲环蛋白A值归一化的任意值的平均值±s.e.m.(n＝4-5)。从4个成人(45-55岁)人WAT样品中分选的CD34+细胞也在成脂条件下生长于原代培养物(PC)中。其变为部分地多腔(图4C)，但是不表达UCP1mRNA。

实施例7：检测人肌肉中的UCP1mRNA表达和罗格列酮在体内的效果。

成人骨骼肌的褐色脂肪细胞祖细胞可在体内分化和产生表达UCP1的细胞。成人骨骼肌中的UCP1mRNA的存在使用高灵敏度RT-PCR技术来跟踪，并且事实上，低水平的UCP1mRNA在10个瘦受试者的腹直肌中检测到(UCP1/亲环蛋白A比率：24±9)。将PCR扩增片段测序并且发现与人UCP1100％相同。成人肌肉中的UCP1mRNA水平比培养物中的胎儿肌肉CD34+细胞低75倍。

由于PPARγ激动剂罗格列酮是培养物中的肌肉CD34+细胞中的UCP1mRNA表达的强诱导剂，因此研究此化合物在人体内的效果。使用来自患有2型糖尿病的7个肥胖患者的股外侧肌活检，这些患者用罗格列酮治疗以控制其代谢综合征。用罗格列酮(2x4毫克/天)治疗之前和治疗8周之后获得活检。用罗格列酮治疗导致患者胰岛素抵抗和糖尿病显著改善。在此研究中，伴随着胰岛素敏感性改善，罗格列酮增加UCP1肌肉中的表达水平约1.6倍。图5展示UCP1mRNA表达的定量RT-PCR确定。结果是使用相应亲环蛋白A值来归一化的任意值的平均值±s.e.m.(n＝7，*p<0.05，相比于对照)。由于所使用的RT-PCR条件不同，因此此图的任意值不提供与图2-4的那些值的直接比较。

在图5中，显示患者组(n＝7)的骨骼肌活检中的UCP1mRNA水平，“对照”对应于治疗之前的水平，并且“Rosi”对应于用罗格列酮治疗(8周)之后的水平。作为纵向研究，确定每个个体中罗格列酮对于UCP1水平的效果(比较“对照”-之前和“Rosi”-之后条件的个别值)。以25ng cDNA(通过RNA的反转录来产生)开始，实时PCR期间的检测阈值(Ct)对于UCP1是约22并且对于亲环蛋白是约18。罗格列酮的效果(治疗结束时的UCP1水平相比于治疗之前)如下：

患者1：50％增加(至150％，对照＝437，Rosi＝652个任意单位)

患者2：没有变化(至100％，对照＝444，Rosi＝453个任意单位)

患者3：80％增加(至180％，对照＝378，Rosi＝677个任意单位)

患者4：180％增加(至280％，对照＝260，Rosi＝730个任意单位)

患者5：8％增加(至108％，对照＝553，Rosi＝600个任意单位)

患者6：310％增加(至410％，对照＝135，Rosi＝556个任意单位)

患者7：10％增加(至110％，对照＝128，Rosi＝142个任意单位)

在7个患者中有4个观察到1.5倍与4.1倍之间变化的罗格列酮的强烈效果。此结果暗示罗格列酮诱导褐色脂肪细胞的出现和/或增强患者的骨骼肌中的现有褐色脂肪细胞中的UCP1基因的表达。PPARγ激动剂的此效果可在此试剂作为胰岛素敏化剂的治疗效果中发挥关键作用。

实施例8：筛选人UCP1启动子/增强子区域的潜在调节剂。

识别并且分离的CD34+细胞可用作识别诱导这些细胞分化成褐色脂肪细胞或调节UCP1表达的试剂(化合物、蛋白质、生物材料等)的工具。举例来说，基于RT-PCR的方法可用于测量可受某些试剂影响的UCP1mRNA水平。或者，使用标记的UCP1蛋白质作为标志物，免疫组织化学(例如，荧光)可用于检测UCP1蛋白质水平的变化以筛选调节UCP1表达的试剂。

为此目的并且举例来说，人UCP1基因的转录开始部位上游(在5’中)的较大DNA区域(6kb)(含有启动子/增强子区域)已经克隆至报道基因/MAR GFP(绿色荧光蛋白质)或荧光素酶。此构建物用于转染CD34+细胞，并且细胞在多孔板中生长并且筛选增加细胞的荧光(GFP)或发光(荧光素酶)的试剂，这些荧光或发光反映基因表达的诱导(因此反映UCP1表达增加)。这允许识别以下试剂，这些试剂可通过增强UCP1基因的转录和/或通过增强UCP1转录物的翻译，和/或通过稳定UCP1转录物或蛋白质来增强CD34+细胞分化成褐色脂肪细胞和/或UCP1的表达。

举例来说，PPARγ调节剂或活化剂如罗格列酮可用于促进CD34+祖细胞分化成褐色脂肪细胞(图3C和5)。另一个实例是使用cAMP衍生物如8-溴-cAMP和/或(4-氯苯基硫代)-cAMP(图3B)或蛋白激酶A(PKA)活化剂或磷酸二酯酶抑制剂。另一个实例是使用三碘甲腺原氨酸(T3)、其它甲状腺激素、甲状腺激素受体TRa和/或TRβ的激动剂或调节剂。另一个实例是使用β-肾上腺素能激动剂如异丙肾上腺素(泛-激动剂)或特异性β1-、β2-、β3-激动剂或调节剂，单独或与PPARγ调节剂或活化剂如罗格列酮组合。另一个实例是使用由基因芯片研究揭示的候选受体的调节剂或这些受体下游的信号转导途径中的靶标基因。

实施例9：基因芯片研究。

执行基因芯片研究以识别在CD34+祖细胞分化成褐色脂肪细胞和/或诱导UCP1的表达中起作用的分子途径。CD34+细胞从人骨骼肌活检中分离，并且用于两个研究：(1)cAMP研究：CD34+细胞如材料和方法所描述来分化(对照)并且添加媒介物(对照1样品)或cAMP(cAMP样品)；和(2)罗格列酮研究：CD34+细胞如材料中所描述来分化，除了罗格列酮从成脂培养基中省略以外(对照2样品)。在此项研究中，罗格列酮只添加至第二样品(罗格列酮样品)。如以上讨论，这些化合物已被证明促进CD34+细胞分化成褐色脂肪细胞和UCP1的表达(参见图3B和3C)。

总RNA从这些样品中纯化，并且转录概况使用Illumina HumanWG-6BeadChip(Expression Analysis,Inc.,Durham,NC)来评估。结果使用Ingenuity Pathway Analysis7.0(试验版本)来分析。这些结果用于确定哪些分子途径涉及CD34+细胞分化成褐色脂肪细胞，并且更重要的是，哪些分子靶标可用于开发促进褐色脂肪细胞出现和UCP1的表达的试剂。

本研究显示以下作用/试剂促进褐色脂肪细胞发育：PPARγ活化剂、调节剂或抑制剂(例如，罗格列酮)、PPARα活化剂或调节剂(例如，氯贝丁酯、GW9578)、PPARδ活化剂或调节剂(例如，GW501516或GW0742)、双重PPARα和PPARδ活化剂或调节剂、泛-PPAR(α、δ、γ)活化剂或调节剂(例如，GW4148)、PDE1抑制剂(例如，长春西汀或IBMX)、PDE3抑制剂(例如，氰胍佐旦或IBMX)、PDE4抑制剂(例如，咯利普兰或IBMX)、PDE7抑制剂(例如，BMS586353或BRL50481或IBMX)、前列腺素J2、9α,11β-前列腺素F2、9β,11α-前列腺素F2、由垂体腺苷酸环化酶活化多肽(ADCYAP1或PACAP)基因衍生的肽(PACAP前肽、PACAP相关肽、PACAP-38或PACAP-27)、NRIP1(RIP140)抑制剂、PTEN抑制剂(例如，双过氧(联吡啶)氧代钒酸钾或双过氧(5-羟基吡啶-2-羧基)氧代钒酸二钾)、α1-肾上腺素能完全或部分激动剂(例如，苯福林或西拉唑啉)、α2-肾上腺素能拮抗剂(例如，育亨宾)、RXRα活化剂或调节剂(例如，LGD1069(Targretin)或9-顺式维A酸)、PGC-1α活化剂、PGC-1β抑制剂或活化剂、脂肪连接蛋白或脂肪连接蛋白受体AdipoR1和/或AdipoR2的活化剂、NOS抑制剂或活化剂(例如，1400W、2-乙基-2-异硫脲或NG-硝基-L-精氨酸甲酯(L-NAME)或腺苷)、Rho激酶-ROCK抑制剂(例如，法舒地尔、HA1077)、BDNF、单胺氧化酶(MAO)A抑制剂和/或MAO B抑制剂(例如，异卡波肼、吗氯贝胺、司立吉林)、SRC的活化剂、EGFR的抑制剂(例如，RG-14620、厄洛替尼或ZD1839-吉非替尼或Argos蛋白质)、FAAH的抑制剂(例如，URB597)、MAPK1(例如，PD98059)或2(例如，PD98059)或4或5或7或8(例如，PD98059)的抑制剂、CDK9的抑制剂(例如，1,5,6,7-四氢-2-(4-吡啶基)-4H-吡咯并[3,2-c]吡啶-4-酮盐酸盐)、TGR5激动剂(例如，齐墩果酸)、AMPK活化剂(例如，AICAR)、BMP-7、mTOR抑制剂(例如，雷帕霉素)、腺苷酸环化酶活化剂(例如，毛喉素)、福莫特罗、沙丁胺醇、安非他酮、REV-5901、24(S)-羟基胆固醇、1,25-二羟维生素D3、24,25-二羟维生素D3、前列腺素J2、15d-前列腺素J2、9α,11β-前列腺素F2、9β,11α-前列腺素F2、二十碳三烯酸(20:3n-9)、二十二碳六烯酸(22:6n-3)、二十二碳三烯酸(22:3n-3)、二十二碳五烯酸、溶血磷脂酸、米酵菌酸、3-溴-7-硝基吲唑、孕烯醇酮16a腈、地棘蛙素、COX-2抑制剂(例如，NS-398)，或任何前述试剂的组合。

实施例10：使用CD31作为额外标志物来分选肌肉血管细胞

为了进一步纯化CD34+细胞以搜寻最纯净的生理褐色脂肪细胞祖细胞，间质血管细胞从人胎儿骨骼肌(妊娠18-19周)的两个独立样品中纯化。遵循如上所述CD45、CD56、CD34和CD146分选，使用抗-CD31抗体来执行FACS分选的额外步骤。细胞基于成熟内皮细胞表面标志物CD31(CD31+)的存在或标志物(CD31-)的不存在来分选。假设CD31-亚群可为人褐色脂肪细胞的更纯祖细胞。CD31-细胞组分达从骨骼肌获得的CD34+细胞群体的约80％。出于简单目的，CD34+/CD45-/CD56-/CD146-/CD31-被称为“CD31-”细胞[EMC309(CD31-)和EMC314(CD31-)]。CD34+/CD45-/CD56-/CD146-/CD31+被称为“CD31+”细胞[EMC309(CD31+)和EMC314(CD31+)]。另外，也分选并且培养表达细胞表面抗原CD56(CD56+)的生肌祖细胞：CD34+/CD45-/CD56+(来自EMC314)和CD45-/CD56+(来自EMC309)被称为“CD56+”细胞[EMC309(CD56+)和EMC314(CD56+)]。

分选细胞(CD31-、CD31+和CD56+细胞群体)在与如上所述相同条件下生长，即在增殖培养基(EGM2)中2-4天并且在成脂分化培养基中10-16天。扩增之前在EGM2培养基中培养的分离细胞的显微照片展示于图6-8。

CD31-、CD31+和CD56+细胞群体分化成脂肪细胞的能力首先在不存在罗格列酮的情况下在成脂分化培养基中试验。不含有PPARγ激动剂(例如，罗格列酮)的成脂分化培养基，称为基本分化培养基(MDM)，证明足以诱导至少一定比例脂肪细胞祖细胞的分化。MDM的组成为：DMEM/汉氏F-1250/50混合物(3.151g/l，17.5mM右旋葡萄糖，3.651g/l左旋谷酰胺)(Cellgro#10-090-CV)、5μg/ml(0.86μM)胰岛素、10μg/ml转铁蛋白、0.2nM3,3',5-三碘-L-甲状腺素、100μM3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、1μM地塞米松、1％青霉素-链霉素。

可观部分(近似20％)的CD31-细胞在暴露于基本分化培养基时分化成脂肪细胞样多腔细胞(图9B对于EMC309，图9F对于EMC314)，并且实际上所有CD31-细胞在暴露于含有褐色脂肪细胞促进化合物如PPARγ活化剂罗格列酮或BMP7[26-28]的MDM时分化成脂肪细胞样多腔细胞(图9C-D、9G-H)。

还发现从分化开始(第0天)或，替代地，诱导分化之前2或3天开始只2-3天(从第-3或-2天到第0天)添加PPARγ激动剂(例如，1微摩尔的罗格列酮)强烈促进CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞。类似地，诱导分化之前(从第-3或-2天到第0天)添加骨形态形成性蛋白质-7(6nM的BMP7)强烈促进CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞。

相比之下，CD31+细胞(图10)和CD56+(图11)细胞在MDM中未良好生长，并且在存在或不存在罗格列酮或BMP7的情况下，在如上所述条件下未分化成脂肪细胞样多腔细胞。

所有细胞群体(CD31-、CD31+和CD56+)在全部12-20天研究中在增殖培养基(EGM2)中良好生长(图9A和9E对于CD31-、图10A和10E对于CD31+、图11A和11E对于CD56+)但是在存在或不存在罗格列酮或BMP7的情况下，只有CD31-细胞在MDM中生长而不分离。在MDM中生长的CD31-与CD31+或CD56+细胞之间的第14-16天的细胞密度差异展示于图9-11的显微照片中(比较图9B、9F与图10B、10F或图11B、11F；图9C、9G与图10C、10G或图11C、11G；图9D、9H与图10D、10H或图11D、11H)以及第16天在培养细胞中测量的亲环蛋白mRNA的量(反映细胞数量)(图12A和图12B)。

在某些实施方案中，CD45+细胞和/或CD56+细胞可保持于CD31-/CD34+/CD146-群体中；也就是说，在不首先选出CD45+细胞和CD56+细胞中的至少一个的情况下分选CD31-/CD34+/CD146-细胞。如以上讨论，CD45+和CD56+群体可相对较小(例如，每个群体小于来自肌肉的总间质血管细胞的5％、小于4％、小于3％、小于2％或小于1％)，并且在成脂培养基中不显著生长或分化。因此，可分离相对纯褐色脂肪细胞祖细胞群体而不需要选出CD45+和CD56+群体中的至少一个。此外，CD45+细胞和/或CD56+细胞的存在不显著影响CD34+细胞的增殖和/或分化。

实施例11：培养CD31-、CD31+和CD56+细胞中的UCP1表达

定量RT-PCR显示分化CD31-细胞中的高水平UCP1mRNA(以亲环蛋白A mRNA来归一化)。如与EGM2控制条件相比，UCP1表达水平在MDM中增加10-21倍，以罗格列酮增加507-553倍，并且以BMP7增加78-127倍(图13)。

分化(脂肪细胞)细胞的比例以及UCP1的表达通过添加以下来高度地增加：(a)在第0天开始将1微摩尔罗格列酮(PPARγ激动剂)添加至MDM(MDM+rosi)(图13)，或(b)诱导分化之前两或三天，即从第-2天或第-3天至第0天将6nM BMP7(骨形态形成性蛋白质-7)只添加至增殖培养基(EGM2)(图13)。

图13展示CD13-细胞暴露于罗格列酮或BMP7强劲地增加细胞的分化和UCP1的表达。分化第16天测量人胎儿肌源性CD31-细胞中的UCP1mRNA表达。

所有细胞在增殖培养基(EGM2)中生长3天，然后(第0天)置于成脂分化培养基(基本分化培养基，MDM)中16天。“EGM2”细胞自始自终保持于EGM2培养基中。从第0天添加罗格列酮(1微摩尔)并且保持于培养基中直到研究结束为止。BMP7(6nM)在第0天之前2天添加并且在第0天移除。分化培养基(MDM相比于EGM2)、罗格列酮(MDM+rosi相比于MDM)和BPM7(MDM+BMP7相比于MDM)的效果以人肌源性褐色脂肪细胞祖细胞(CD31-)中的UCP1mRNA表达的倍数变化(如与EGM2细胞相比)来展示。

结果是使用相应亲环蛋白A值来归一化的任意值的平均值±s.e.m.。其以相比于被视为1的其相应非诱导(EGM2)值(n＝3)的倍数变化来表示。

相比之下，在CD31+和CD56+细胞群体中，UCP1mRNA在除了少许样品以外的所有样品中不可检测到，其中它在丰度上比分化CD31-细胞低至少1,000-倍(10个周期)。

实施例12：通过TaqMan实时PCR来定量UCP1mRNA

本文提供检测CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞的强大方法，这种方法是通过同时量化对应于以下物质的mRNA种类来进行的：褐色脂肪细胞标志物UCP1(图18A)、脂肪细胞标志物FABP4(图18B)，和用作内部对照的“管家”基因亲环蛋白A。

本发明的此方法允许分析很多样品以识别增强CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞的试剂。当分化成褐色脂肪细胞时，对于给定水平的亲环蛋白A来说，CD31-细胞表达高得多水平的UCP1和FABP4mRNA。相对于亲环蛋白A mRNA水平来归一化的UCP1和FABP4mRNA水平给出CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞的水平的指示，与样品中的细胞总数无关。

因此，通过多重TaqMan实时PCR来定量UCP1、FABP4和亲环蛋白A mRNA可用于量化CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞。

实施例13：通过荧光免疫组织化学(IHC)来定量UCP1蛋白质

本文提供检测CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞的另一个强大方法，即通过荧光免疫组织化学(IHC)来量化UCP1蛋白质。

使用此方法，UCP1染色可使用自动高容量成像来评估。GEHealthcare的InCell1000高容量成像器将自动显微镜术与高容量图像分析软件(InCell Developer Toolbox)结合。参考化合物罗格列酮用于促进CD31-细胞分化和增加UCP1的表达。使用识别UCP1的原代抗体，Abcam ab23841，和次级抗体，Alexafluor488山羊抗-兔抗体，我们可量化每个细胞的相对UCP1水平。使用此方法，我们发现罗格列酮增加UCP1蛋白质水平7倍(使用罗格列酮，每个细胞核的UCP1强度是105,542，比较之下，没有罗格列酮时的UCP1强度是14,815)(图17A、17B)。还发现非特异性抗体本底信号极低，并且每个细胞的平均UCP1信号的标准偏差极小，指示测定适合于高容量筛选。

参看图17，在从第0天未伴以(图17A)或伴以(图17B)罗格列酮(1μM)添加至成脂培养基(MDM)的情况下，如方法中所描述来执行培养和分化CD31-细胞成褐色脂肪细胞。细胞分化15天，然后用4％多聚甲醛PBS pH7.4固定，并且与UCP1抗体(Abcam ab23841)一起孵育。Alexafluor488山羊抗-兔抗体用于量化相对UCP1水平(绿色)。细胞核用DAPI(蓝色)来染色。使用GE显影剂工具箱软件对于在InCell1000自动高容量成像器上收集的图像测量UCP1信号强度。数值数据以表格格式来输出并且还收集关于算法如何处理原始图像的截图。

因此，可以可购得UCP1抗体来使用UCP1的荧光IHC检测以量化UCP1蛋白质和CD31-细胞分化成褐色脂肪细胞。

材料和方法

除非另外指示，否则分析或分子生物学等级的所有有机和无机化学品购自Sigma Chemical Co.(St Louis,MI)和Gibco BRL(New York,NY)。罗格列酮购自Cayman Chemical(#71742)并且重组人BMP7(rhBMP7)来自R&D Systems(100μg/ml，6.3μM，#354-BP-010)。

人组织

依照设施内伦理委员会(Institutional Review Board)协议，在自发、自愿或治疗性终止妊娠之后，人胎儿组织从Magee Women Hospital,University of Pittsburgh和Erasmus Medical Center,Rotterdam,TheNetherlands匿名获得。发育年龄(妊娠16至24或18至19周)通过测量脚长来估计。在一切情况下，从患者获得使用胎儿组织的知情同意。来源于经历胃旁路术后一年执行的成形外科的45-55岁患者的成人捐弃腹部皮下WAT由Dr.Peter Rubin(Division of Plastic Surgery,University of Pittsburgh)友情提供。用于细胞分选的成人骨骼肌组织从50-78岁供体死后获得。用于第一组RT-PCR研究的成人骨骼肌在10个瘦的男性和女性受试者的腹腔镜绑扎、腹股沟疝或子宫切除手术期间从腹直肌获得。所有受试者同意在其手术期间捐赠肌肉样品并且协议由Deakin大学的医学伦理审查委员会核准。平均年龄是45±3年，并且平均身体质量指数是22.2±0.8。用于第二组RT-PCR研究的成人骨骼肌在用罗格列酮(2x4毫克/天)治疗之前和治疗8周之后从7个肥胖2型糖尿病男性和女性患者的股外侧肌获得。平均年龄是63±4岁并且平均身体质量指数是29.9±3.8。患者的完整临床概况在以前公布[18]中描述。所有受试者同意捐赠肌肉样品，并且协议由Maastricht大学的医学伦理审查委员会核准。

用于CD31-细胞纯化的成人组织

来自尸体解剖(25-80岁个体)的人骨骼肌组织样品从全国疾病研究交流中心(NDRI,Philadelphia,PA)获得并且由NDRI的可行性研究审查委员会(协议#BOO1)核准。

小鼠

动物根据Centre Médical Universitaire(Genève)设施内准则来处理。其个别地豢养并且在24℃的温度控制房间中保持于12h光暗循环。其允许自由取用水和标准实验室饲料。将4至6周龄雄性129Sv/ev小鼠的肩胛间BAT切除并且其前驱细胞分离和培养，如前所述[19]。

免疫组织化学

新鲜的胎儿和成人组织通过浸没于在液氮中冷却的异戊烷中来逐渐地冷冻。5-至7-μm切片在恒冷箱(Microm HM505E)上切割、用50％丙酮和50％甲醇固定、在室温(RT)下干燥5分钟，然后在磷酸盐缓冲盐水中洗涤3次历时5分钟。非特异性结合部位在RT下用5％山羊血清阻断1小时。切片在4℃下与CD34小鼠抗人抗体(Serotech，1:50)一起孵育过夜，然后，在冲洗之后，在RT下与次级山羊抗小鼠生物素化抗体(DAKO，1:1000)一起孵育1小时并且在RT下与抗生蛋白链菌素-Cy3(西格玛，1:1000)一起孵育30分钟或在RT下与偶联CD146-Alexa488小鼠抗人抗体(Chemicon，1:200)一起孵育2小时。细胞核在RT下用4',6-二氨基-2-苯基吲哚盐酸盐(Molecular Probes，1:2000)染色5分钟。同种型匹配阴性对照对于每个免疫染色来执行。

UCP1蛋白质通过荧光免疫组织化学(IHC)来定量

培养和分化CD31-细胞成褐色脂肪细胞使用没有(基本分化培养基，MDM)或含有1μM罗格列酮(参考分化培养基，RDM)的成脂分化培养基来执行。分化15天之后，细胞用4％多聚甲醛PBS pH7.4固定，并且与UCP1抗体(Abcam ab23841)和Alexafluor488山羊抗-兔抗体一起孵育以根据标准协议来量化相对UCP1水平(绿色)。在固定细胞之前，细胞核用5μM DAPI(蓝色)标记10分钟。每个治疗条件在对应于每个数据点总共近似360-480个细胞的96孔板中重复三次来评估。InCell1000Developer Toolbox软件用于开发自动细胞检测脚本以使用细胞核和细胞质检测算法来测量UCP1信号强度。作为读数，使用细胞内的UCP1信号的总强度，其相对于细胞数量来归一化。

流式细胞术

胎儿骨骼肌、胰腺、肺和肝以及成人肌肉和WAT的血管细胞通过流式细胞术来分析。新鲜的胎儿或成人肌肉以及胎儿胰腺、肺和肝组织用解剖刀切割成小片段置于含有20％胎儿牛血清(FBS)、1％青霉素-链霉素(PS)和胶原酶IA-S、II-S和IV-S(Sigma，1mg/mL)的杜尔贝科氏改良伊格尔氏培养基高葡萄糖(DMEM)中，然后伴以恒定搅拌在37℃下孵育75分钟(胎儿组织)或90分钟(成人组织)。最终细胞解离在载玻片之间获得。细胞用磷酸盐缓冲盐水洗涤并且在350g下离心5分钟。其重新悬浮于DMEM，20％FBS中，在100μm下过滤，用锥虫蓝染色并且在排除死亡细胞之后计数。WAT间质血管部分根据Champigny等人[20]通过胶原酶消化来制备。

细胞(对于分析为10⁵并且对于分选为约30x10⁶)在4℃下与以下直接偶联小鼠抗人抗体之一一起孵育15分钟：CD45-APC Cy7(SantaCruz Biotechnologies,1:200)、CD45PerCP Cy5.5(eBioscience#45-0459-73,1:10)、CD56-PE Cy7(BD Pharmigen1:100)、CD56APC(BD Pharmigen#555518,1:50)、CD34-PE(DAKO,1:100或BDPharmigen#555822,1:20)、CD146未偶联、BD Pharmigen:PE小鼠抗人CD146(BD Pharmigen#550315,1:50)、CD146-FITC(Serotec,1:100)和抗人CD31(PECAM-1)FITC(eBioscience#11-0319-42,1:10)，每一个处于1ml DMEM，20％FBS，1％青霉素-链霉素(PS)中。洗涤和离心之后，针对细胞生存力/死亡细胞排除，将细胞与7-氨基-放线菌素D(7-AAD,BD Pharmigen,1:100)或1μg/ml的染料Hoechst33528(Molecular Probes-Invitrogen#H3569)一起孵育，在70μm下过滤并且运作于FACS Aria流式细胞仪(Becton Dickinson)上。作为阴性对照，在相同条件下将细胞等分部分与偶联至APC Cy7(BD Pharmigen,1:100)、PE Cy7(BD Pharmigen,1:100)、PE(Chemicon,1:100)和FITC(US Biological,1:100)的同种型匹配小鼠IgG一起孵育。

细胞培养

细胞以10,000/cm²接种于0.2％明胶涂布板(24孔,BD Falcon#353047)，在37℃下在内皮细胞生长培养基-2(EGM2)(BulletKit生长培养基，Lonza#CC-3162)中培养直到汇合为止(2-4天)并且直到分化为止(再过10-16天)。在EGM2培养基中2或3天之后，通过将培养基用成脂培养基替换来诱导细胞分化，所述成脂培养基是Rodriguez等人[21]描述的成脂培养基的改进，并且可或可不含有分化诱导剂(例如，PPARγ激动剂)。如上所述的MDM含有：DMEM/汉氏F-1250/50混合物(3.151g/l，17.5mM右旋葡萄糖，3.651g/l左旋谷酰胺)(Cellgro#10-090-CV)、5μg/ml(0.86μM)胰岛素、10μg/ml转铁蛋白、0.2nM3,3',5-三碘-L-甲状腺素、100μM3-异丁基-1-甲基黄嘌呤、1μM地塞米松和1％青霉素-链霉素。如果罗格列酮用作分化诱导剂，它可以1μM或足以诱导BAT祖细胞分化成脂肪细胞的任何其它浓度来提供。

对于细胞扩增研究，只在EGM2培养基中生长的汇合细胞通过在37℃下用胰蛋白酶-EDTA处理3-5分钟来分离，然后1:3或1:4划分并且如上所述来培养。用于测氧法研究中的原代培养物中的人白色脂肪细胞如前所述[22]来获得。

RT-PCR

总细胞RNA使用试剂盒RNAII(Clontech,Palo Alto,CA)、Extract-all溶液(Eurobio,Courtaboeuf,France)或PureLink RNA分离试剂盒(Invitrogen#12183-016)来制备并且通过Biophotometry(Biophotometer,Eppendorf)来量化。寡脱氧胸苷预敏化第一链cDNA使用Superscript^TMII RNA酶H反转录试剂盒(Invitrogen,Carlsbad,CA)和寡脱氧胸苷引物或高容量cDNA反转录试剂盒(Applied Biosystems,Foster City,CA)和随机引物来合成。

定量实时PCR使用ABI快速热循环仪系统和SYBR Green PCR预混液(Applied Biosystems,Foster City,CA)或ABI7300实时PCR仪器、TaqMan基因表达预混液(Applied Biosystems#4369016)以及用于人解偶联蛋白质-1(GenBank NM_021833)(Applied Biosystems测定ID Hs01084772_m1，TaqMan基因表达测定部件号4351372)和人肽基脯氨酰基异构酶A“亲环蛋白A”(GenBank NM_021130)(AppliedBiosystems测定ID Hs99999904_m1，基因表达测定部件号4448485)的TaqMan基因表达预配制测定来执行。亲环蛋白A用作对照以考虑到由于反转录效率所引起的任何变化。选择内含子两侧的上游和下游寡核苷酸引物以防止污染基因组DNA的扩增。

用于人细胞和小鼠褐色脂肪细胞中的实时定量PCR的引物如下：

hUCP1

正义引物：5'-CCTCACCGCAGGGAAAGAA-3'(SEQ ID NO:1)

反义引物：5'-CTAACGACTGGAGGAGTGGCA-3'(SEQ ID NO:2)

扩增子位置：429-504

登录号：NM_021833

mUCP1

正义引物：5'-CGATGTCCATGTACACCAAGGA-3’(SEQ IDNO:3)

反义引物：5'-TTGTGGCTTCTnTCTGCGA-3'(SEQ ID NO:4)

扩增子位置：996-1063

登录号：NM_009463.2

hleptin

正义引物：5'-CCAAAACCCTCATCAAGACAATT-3'(SEQ IDNO:5)

反义引物：5'-AAGTCACCGGTTTGGACTTCA-3’(SEQ ID NO:6)

扩增子位置：143-238

登录号：BC069323

hcyclophilin A

正义引物：5'-CATCTGCACTGCCAAGACTGA-3'(SEQ ID NO:7)

反义引物：5'-GCAAAGTGAAAGAAGGCATGAA-3'(SEQ IDNO:8)

扩增子位置：466-537

登录号：NM_203431

mcyclophilin A

正义引物：S'-CAAATGCTGGACCAAACACAA-3'(SEQ IDNO:9)

反义引物：5'-CCATCCAGCCATTCAGTCTTG-3'(SEQ ID NO:10)

扩增子位置：343-412

登录号：NM_008907

用于人骨骼肌中的实时定量PCR的引物如下：

hUCP1

正义引物：S'-TCCGGCTCCAGGTCCAA-3'(SEQ ID NO:11)

反义引物：5'-TGATTGTTCCCAGGACACCTTT-3'(SEQ ID NO:12)

扩增子位置：240-311

登录号：NM_021833

hcyclophilin A

正义引物：5'-CATCTGCACTGCCAAGACTGA-3'(SEQ ID NO:7)

反义引物：5'-GCAAAGTGAAAGAAGGCATGAA-3'(SEQ IDNO:8)

扩增子位置：466-537

登录号：NM_203431

用于分析PCR的序列和引物如下：

CD31

登录号：NM_000442

CD34

正义引物：5'-CATCACTGGCTATTTCCTGATG-3'(SEQ ID NO:13)

反义引物：5'-AGCCGAATGTGTAAAGGACAG-3'(SEQ ID NO:14)

扩增子位置：1172-1591

登录号：M81104

CD56

正义引物：5'-GTATTTGCCTATCCCAGTGCC-3'(SEQ ID NO:15)

反义引物：5'-CATACTTCTTCACCCACTGCTC-3'(SEQ ID NO:16)

扩增子位置：542-873

登录号：BC014205

CD45

正义引物：5'-CATGTACTGCTCCTGATAAGAC-3’(SEQ ID NO:17)

反义引物：5’-GCCTACACTTGACATGCATAC-3’(SEQ ID NO:18)

扩增子位置：940-1579

登录号：Y00638

CD146

正义引物：5'-AAGGCAACCTCAGCCATGTCG-3’(SEQ ID NO:19)

反义引物：5'-CTCGACTCCACAGTCTGGGAC-3’(SEQ IDNO:20)

扩增子位置：168-603

登录号：M28882

β-肌动蛋白

正义引物：5'-CCTCGCCTTTGCCGATCC-3'(SEQ ID NO:21)

反义引物：5'-GGAATCCTTCTGACCCATGC-3'(SEQ ID NO:22)

扩增子位置：25-229

登录号：NM_001101。

任意单位通过将靶标mRNA水平相对于亲环蛋白mRNA水平(基于Cts)来归一化而确定，其中为了便于参考，亲环蛋白水平首先除以100,000。举例来说，0.01797的靶标mRNA与亲环蛋白mRNA的比率表示为1797。

或者，定量实时PCR使用Applied Biosystems7300实时PCR仪器(使用SDS软件v1.4.0.25)、TaqMan基因表达预混液(AppliedBiosystems#4369016)和用于人解偶联蛋白质-1“UCP1”(GenBankNM_021833)[FAM MGB探针](Applied Biosystems测定IDHs00222453_m1，TaqMan基因表达测定部件号4351370)和人肽基脯氨酰基异构酶A“亲环蛋白A”(GenBank NM_021130)[VIC MGB探针](Applied Biosystems测定ID Hs99999904_m1，TaqMan基因表达测定部件号4448485)的TaqMan基因表达预配制测定来执行。开发定制TaqMan基因表达试剂以使用多重方式(以UCP1和亲环蛋白A)来同时测量人脂肪酸结合蛋白4“FABP4”(GenBank NM_001442)：TaqManMGB探针[NED]:CAG GAA AGT CAA GAG CAC CA(AppliedBiosystems#4316034；SEQ ID NO:30)；有义引物：TCA TAC TGGGCC AGG AAT TT(Applied Biosystems#4304971；SEQ ID NO:31)和反义引物：TGC ACA TGT ACC AGG ACA CC(Applied Biosystems#4304971；SEQ ID NO:32)。

亲环蛋白A用作对照以考虑到由于反转录效率所引起的任何变化。任意单位通过将靶标mRNA水平相对于亲环蛋白mRNA水平(基于Cts)来归一化而确定。

验证人UCP1扩增子

PCR扩增片段经由TOPO-TA克隆系统(Invitrogen,Carlsbad,CA)来克隆至pCR2.1-TOPO载体中并且颜色选择集落的纯化使用QiaprepSpin Miniprep(Qiagen,Hilden,Germany)来执行。序列以pCR2.1-TOPO载体上的寡核苷酸M13Reverse使用AppliedBiosystem Big Dye测序试剂盒在ABI3700自动定序器(AppliedBiosystems,Foster City,CA)上来确定。

蛋白质印迹

培养的细胞用橡胶淀帚收集于200μl RIPA缓冲液(150mMNaCl、1％Nonidet P-40、0.5％脱氧胆酸钠、0.1％SDS、1:200蛋白酶抑制剂混合物(Sigma Chemical Co,St Louis,MI)和50mM Tris/HClpH8.0)中。人BAT和骨骼肌在上述RIPA缓冲液中均化。蛋白质含量根据Lowry技术[23]来确定。蛋白质印迹如前所述[24]来执行。UCP1蛋白质使用由Dr.B.Cannon(Stockholm,Sweden)慷慨提供的1/500稀释的兔抗小鼠UCP1多克隆原代抗体来检测。此抗体已相对于小鼠UCP1的C-末端十肽来产生，所述小鼠UCP1与人UCP1共有80％同一性并且分别与人UCP2和UCP3具有0和10％同一性。甘油醛磷酸脱氢酶(GAPDH)蛋白质使用1/5000稀释的小鼠抗小鼠GAPDH单克隆原代抗体(Chemicon International,Inc,Temecula,CA)来检测。使用1/5000稀释的山羊抗兔或抗小鼠过氧化物酶-标记次级抗体(Sigma-Aldrich,St.Louis,MO或Bio-Rad,Hercules,CA)。使用Plus2预染色的标准梯度(Invitrogen,Carlsbad,CA)。蛋白质信号通过化学发光使用标准ECL试剂盒来检测并且在Hyperfilm ECL薄膜上显现。

高分辨率O₂消耗测量

氧消耗使用配备有珀尔帖(Peltier)恒温器、克拉克(Clark)型电极和集成电磁搅拌器(Oxygraph,Oroboros,Innsbruck,Austria)的2-注射室呼吸计来测量。测量在37℃下伴以连续搅拌在2ml DMEMF12、10％新出生小牛血清中执行。在这些条件下，血清提供维持UCP1解偶联活性所需要的脂肪酸。在每次O2消耗测量之前，腔室中的培养基用空气平衡30分钟，并且新鲜胰酶消化细胞转移至呼吸计玻璃腔室中。观察稳态呼吸通量之后，ATP合成酶用寡霉素(0.25-0.5mg/l)抑制并且细胞用解偶联剂羰基氰化物3-氯基-苯腙滴定直至1-2μM范围内的最佳浓度。呼吸链被抗霉素A(1μg/ml)抑制。氧消耗使用DataGraph软件(Oroboros软件)来计算。

CD31-细胞呼吸测量

分化之前和分化成褐色脂肪细胞之后的CD31-细胞的呼吸率使用Seahorse Bioscience XF24细胞外通量分析器(Seahorse Bioscience,Billerica,MA)来测量。来自成人的CD31-细胞首先在Seahorse板中在EGM2(即，未分化的祖细胞)或MDM和罗格列酮(1μM)+BMP7(6nM)中培养3天(完全分化褐色脂肪细胞)。随后，在寡霉素(5μM)(所谓“状态4”呼吸或质子泄漏)存在下以及在FCCP(滴定：0.5μM、1μM和5μM)(所谓“状态3u”呼吸或最大解偶联)存在下获得基线的呼吸测量。

基因芯片分析

在培养物中扩增直至3继代(4周)的胎儿肌肉CD34+细胞和人肌肉活检的总RNA如上所述来制备。质量保证测量、cRNA靶标的制备和使用Illumina Human WG-6BeadChip的基因芯片分析由Expression Analysis,Inc.(Durham,NC)执行。BeadStudio非参数方法用于计算检测P值。

统计分析

数据以平均值±s.e.m.来表示。显著性使用未配对Student t检验来评估。配对Student t检验用于确定罗格列酮对于人骨骼肌UCP1mRNA水平的效果。显著性设定为p<0.05。

克隆人UCP1启动子/增强子区域

为了开发筛选策略，人UCP1启动子/增强子亚如下克隆。

含有人UCP1(解偶联蛋白质-1)启动子/增强子区域的人BAC(细菌人工染色体)克隆#RP11-5K16(AC108019)从CHORI(Children'sHospital Oakland Research Institute)BAC-PAC资源服务获得。所选择的启动子/增强子区域在人UCP1基因(登录号：NM_021833)的5’UTR(未翻译区域)的上游位置-25处开始。基于人UCP1基因起始密码子，完全克隆启动子/增强子序列位于位置-149和-6269之间。

引物组被设计用于扩增：

(i)完全靶标启动子/增强子区域(UCP15’UTR上游位置-25处开始的6120bp)：

左引物：

5'-TCGTAAGCTTAGAGGCGGCGGCTGCAGACGGAGCGCGGTGTT-3'(SEQ ID NO:23)

右引物：

5'-ACGAAGATCTCATTACCCCAAATAGCATCACA-3'(SEQ IDNO:24)

(ii)近端靶标启动子/增强子区域(UCP15’UTR-25核苷酸上游的3685bp)：

左引物：

5'-TCGTAAGCTTAGAGGCGGCGGCTGCAGACGGAGCGCGGTGTT-3'(SEQ ID NO:25)

右引物：

5'-ACGAACCGGTCAGAAGTGGTGAAGCCAGCCTGC-3'(SEQID NO:26)

(iii)远端靶标启动子/增强子区域(近端靶标启动子/增强子区域上游的2435bp)，如指示：

左引物：

5'-TCGTACCGGTACAGGCTCTGGGAAGTAGGAGAAAGT-3'(SEQ ID NO:27)

右引物：

5'-ACGAAGATCTCATTACCCCAAATAGCATCACA-3'(SEQ IDNO:28)

每个引物含有促进随后在哺乳动物表达载体中克隆的限制位点(参见以下)。

PCR反应中的启动子/增强子的克隆以500ng BAC#RP11-5K16作为模板，使用用于扩增的Takara Ex Taq DNA聚合酶试剂盒(Clontech)来执行。PCR程序步骤如下：初始化步骤：92℃历时2分钟；随后28个如下循环：[变性：92℃，30秒；退火：59℃，40秒；延伸：68℃，5分钟30秒]；以及最终延伸步骤：68℃，8分钟。

完整启动子/增强子、近端或远端启动子/增强子随后亚克隆于含有报道基因/MAR元件的载体pl_68_GFP的BglII/HindIII位点，替换SV40启动子盒[25]。或者，使用供亚克隆的相同BglII/NcoI位点，基于荧光素酶的pGL3Basic载体(Promega)也用作另一种报道基因类型。

克隆的人UCP1启动子序列通过由生物技术公司Fastens SA,Switzerland执行的最新型的测序来证实。人UCP1启动子序列的序列以SEQ ID NO:29来提供于序列表中，其中整个序列表全部以引用方式并入。

细胞形态图像

细胞图像使用手持式数码相机(Nikon Coolpix950)和用于细胞培养物观察的倒置显微镜(Nikon TMS)来获得；影像使用AdobePhotoshop Elements8的自动对比和自动调级功能来优化。

用于本说明书中的部分标题和副标题只用于组织目的并且不应解释为以任何方式限制所描述的主题。此外，虽然本发明教导结合各种实施方案来描述，但是不意图将本发明教导限于这类实施方案。相反，本发明教导包括如本领域技术人员认识到的各种替代、变化和等效物。

其它实施方案

本发明的各个方面可单独、组合或前面描述的实施方案中未具体讨论的各种布置来使用，因此在其应用上不限于前述说明书中阐明或在附图中示出的组成部分详情和布置。举例来说，在一个实施例中描述的方面可以任何方式与在其它实施方案中描述的方面组合。

在权利要求书中限定权利要求要素的序数词如“第一”、“第二”、“第三”等的使用本身不暗示一个权利要求要素优于另一个权利要求要素的任何优先次序、优先级或顺序或执行方法步骤的时间顺序，而仅仅用作将具有确定名称的一个权利要求要素与具有相同名称的另一个元素区分的标志(只针对序数词的使用)以便区分权利要求要素。

另外，本文使用的措辞和术语用于描述目的并且不应视为具有限制性。“包括(including)”“包括(comprising)”或“具有(having)”“含有(containing)”“涉及(involving)”和其在本文中的变化形式的使用意欲涵盖其后列出的项目和其等效物以及额外项目。

本发明尤其提供BAT祖细胞的新颖方法和组合物。虽然已经讨论本发明的具体实施方案，但是以上说明书是说明性的，并非限制性的。在本说明书综述后，本发明的许多变化变得为本领域技术人员显而易见。本发明完全范围应通过参考权利要求书与其等效物的完全范围，以及说明书与这类变化来确定。

通过引用来并入

本说明书中引用的所有公布、专利和专利申请出于所有目的全部以引用方式并入本文，其引用程度如同每个个别公布、专利或专利申请具体指示通过引用来并入一般。

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Claims

1.一种褐色脂肪组织(BAT)祖细胞，

其中所述BAT祖细胞从人骨骼肌中分离并且能够分化成褐色脂肪细胞，

其中所述BAT祖细胞表达与内皮细胞相关的第一细胞表面标志物，所述第一细胞表面标志物在基于抗体的测定中使用第一抗体可检测到；并且

其中所述BAT祖细胞大致上不含与内皮细胞相关的第二细胞表面标志物，所述第二细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第二抗体大致上不可检测到。

2.如权利要求1所述的BAT祖细胞，其进一步包括以下各项中的至少一个：

其中所述BAT祖细胞大致上不含与造血细胞相关的第三细胞表面标志物，所述第三细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第三抗体大致上不可检测到；

其中所述BAT祖细胞大致上不含与生肌细胞相关的第四细胞表面标志物，所述第四细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第四抗体大致上不可检测到；和/或

其中所述BAT祖细胞大致上不含与周细胞相关的第五细胞表面标志物，所述第五细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用第五抗体大致上不可检测到。

3.如权利要求1或2所述的BAT祖细胞，其中所述第一细胞表面标志物是CD34并且所述第一抗体是抗-CD34抗体。

4.如权利要求1至3中任一项所述的BAT祖细胞，其中所述第二细胞表面标志物是CD31并且所述第二抗体是抗-CD31抗体。

5.如权利要求2至4中任一项所述的BAT祖细胞，其中所述第三细胞表面标志物是CD45并且所述第三抗体是抗-CD45抗体。

6.如权利要求2至5中任一项所述的BAT祖细胞，其中所述第四细胞表面标志物是CD56并且所述第四抗体是抗-CD56抗体。

7.如权利要求2至6中任一项所述的BAT祖细胞，其中所述第五细胞表面标志物是CD146并且所述第五抗体是抗-CD146抗体。

8.如权利要求1至7中任一项所述的BAT祖细胞，其中所述BAT祖细胞在增殖培养基中增殖。

9.如权利要求8所述的BAT祖细胞，其中所述增殖培养基包括骨形态形成性蛋白质-7(BMP7)。

10.如权利要求1至9中任一项所述的BAT祖细胞，其中所述BAT祖细胞在分化培养基中分化成褐色脂肪细胞。

11.如权利要求10所述的BAT祖细胞，其中所述分化培养基是基本分化培养基(MDM)。

12.如权利要求10所述的BAT祖细胞，其中所述分化培养基包括过氧化物酶体增殖物活化受体γ(PPARγ)激动剂。

13.一种从骨骼肌中分离的细胞群体，其包括至少一种如权利要求1至12中任一项所述的BAT祖细胞。

14.一种用于识别BAT祖细胞的方法，其包括：

提供从骨骼肌分离的细胞群体；

使所述细胞群体与分别对于第一和第二细胞表面标志物具有特异性的第一和第二抗体接触，其中所述第一和第二细胞表面标志物各自与内皮细胞相关；并且

在基于抗体的测定中确定表达第一细胞表面标志物并且大致上不含第二细胞表面标志物的BAT祖细胞。

15.如权利要求14所述的方法，其中所述第一细胞表面标志物是CD34并且所述第一抗体是抗-CD34抗体。

16.如权利要求14或15所述的方法，其中所述第二细胞表面标志物是CD31并且所述第二抗体是抗-CD31抗体。

17.如权利要求14至16中任一项所述的方法，其进一步包括以下各项中的至少一个：

使所述细胞群体与对于与造血细胞相关的第三细胞表面标志物具有特异性的第三抗体接触，所述第三细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用所述第三抗体大致上不可检测到；

使所述细胞群体与对于与生肌细胞相关的第四细胞表面标志物具有特异性的第四抗体接触，所述第四细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用所述第四抗体大致上不可检测到；和/或

使所述细胞群体与对于与周细胞相关的第五细胞表面标志物具有特异性的第五抗体接触，所述第五细胞表面标志物在所述基于抗体的测定中使用所述第五抗体大致上不可检测到。

18.如权利要求17所述的方法，其中所述第三细胞表面标志物是CD45并且所述第三抗体是抗-CD45抗体。

19.如权利要求17或18所述的方法，其中所述第四细胞表面标志物是CD56并且所述第四抗体是抗-CD56抗体。

20.如权利要求17至19中任一项所述的方法，其中所述第五细胞表面标志物是CD146并且所述第五抗体是抗-CD146抗体。

21.如权利要求14至20中任一项所述的方法，其进一步包括通过选择表达所述第一细胞表面标志物并且不表达所述第二细胞表面标志物的细胞来分离所述细胞群体。

22.如权利要求14至21中任一项所述的方法，其进一步包括通过选择表达所述第一细胞表面标志物并且不表达第二细胞表面标志物，以及第三、第四和第五细胞表面标志物中的至少一个细胞表面标志物的细胞来分离所述细胞群体。

23.如权利要求22所述的方法，其中所述选择包括选择表达CD34并且不表达CD31、CD45、CD56或CD146的细胞。

24.如权利要求14至23中任一项所述的方法，其进一步包括分离所述BAT祖细胞。

25.如权利要求14至24中任一项所述的方法，其进一步包括在增殖培养基中培养所述BAT祖细胞，从而离体扩增BAT祖细胞。

26.一种用于诱导BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞的方法，其包括：

提供如权利要求1至13中任一项所述的BAT祖细胞；

使所述BAT祖细胞暴露于分化培养基；并且

在所述分化培养基中培养所述BAT祖细胞以诱导所述BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞。

27.如权利要求26所述的方法，其中所述分化培养基是基本分化培养基(MDM)。

28.如权利要求26或27所述的方法，其中所述分化培养基包括过氧化物酶体增殖物活化受体γ(PPARγ)激动剂。

29.如权利要求26至28中任一项所述的方法，其进一步包括使所述BAT祖细胞暴露于增殖培养基。

30.如权利要求29所述的方法，其中所述增殖培养基包括骨形态形成性蛋白质-7(BMP7)。

31.用于治疗个体的代谢疾病或病状的BAT祖细胞，

其中：

所述BAT祖细胞从所述个体或供体的骨骼肌中获得；

所述BAT祖细胞通过在培养基中培养来繁殖；并且

将所述培养的细胞移植至所述个体。

32.如权利要求31所述的BAT祖细胞，其中经由在分化培养基中离体培养来诱导所述BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞。

33.如权利要求31或32所述的BAT祖细胞，其中所述代谢疾病是肥胖症、超重、葡萄糖耐量受损、胰岛素抵抗、2型糖尿病、血脂异常、高血压、心血管疾病、代谢综合征、帕-魏二氏综合症或1型糖尿病。

34.一种用于识别诱导BAT祖细胞分化成褐色脂肪细胞的试剂的方法，其包括：

提供如权利要求1至13中任一项所述的BAT祖细胞；

使所述BAT祖细胞与试剂接触；

确定是否所述BAT祖细胞表现出分化成褐色脂肪细胞的指标。

35.如权利要求34所述的方法，其中所述分化指标可为以下各项中的一个或多个的增加：UCP1蛋白质或mRNA的表达、FABP4(aP2)蛋白质或mRNA的表达、PPARγ2蛋白质或mRNA的表达、mtTFA蛋白质或mRNA的表达、PGC-1α蛋白质或mRNA的表达、解偶联呼吸、呼吸率、代谢率、葡萄糖利用率、脂肪酸氧化率和其组合。

36.一种用于识别诱导UCP1的表达或活性水平的试剂的方法，其包括：

提供如权利要求1至13中任一项所述的BAT祖细胞；

使所述BAT祖细胞与试剂接触；

确定是否所述BAT祖细胞表现出UCP1表达或活性的增加。

37.一种使用如权利要求34至36中任一项所述的方法来识别的试剂，其用于制造治疗患者的代谢疾病的药物。

38.一种使用如权利要求34至36中任一项所述的方法来识别的试剂，其用于制造治疗或预防患者的体温过低的药物。