CN103740804A - 一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法 - Google Patents
一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103740804A CN103740804A CN201310514882.9A CN201310514882A CN103740804A CN 103740804 A CN103740804 A CN 103740804A CN 201310514882 A CN201310514882 A CN 201310514882A CN 103740804 A CN103740804 A CN 103740804A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- sheep
- gene
- gnrhr
- pcr
- fecundity
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/124—Animal traits, i.e. production traits, including athletic performance or the like
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明提供的一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法,即找出显著影响绵羊繁殖力的分子标记。选取GnRHR基因作为绵羊繁殖力的候选基因,利用PCR-SSCP技术,检测策勒黑羊、吐鲁番黑羊品种中GnRHR基因外显子2的遗传多态性,并分析研究其碱基突变对于绵羊繁殖性状的影响,最终发现GnRHR基因外显子2区的碱基突变G230C,可降低绵羊繁殖力,同时通过选择基因型为GG的绵羊个体,淘汰基因型为GC、CC的绵羊个体,可选育提高绵羊的繁殖力。
Description
技术领域
本发明涉及分子标记技术,利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法以及在选育提高绵羊繁殖力中的应用,具有重要的生产价值。
背景技术
新疆作为我国的五大牧区,2013年的绵山羊存栏量达4161.52万只,具有丰富的绵羊品种资源,尤其是策勒黑羊、吐鲁番黑羊的优良地方绵羊品种,得到有效利用,因此结合新疆现有种质资源,提高绵羊的良种化程度,加大新疆的羊肉产量,是满足人民群众日益增长的需求的一个有效手段和根本方法。
促性腺激素释放激素受体(Gonadotropin Releasing Hormone Receptor,GnRHR)是位于垂体促性腺细胞表面的一种高亲和性G蛋白耦联受体,可转导来自细胞外配位体、下丘脑因子下丘脑促性腺激素释放激素(gonadotropin releasing hormone,GnRH)的信号,调节垂体前叶合成与释放促黄体素和促卵泡素,从而促进性腺的生长、成熟和调控生物的繁殖力。因此,GnRHR基因在调节哺乳动物生殖发育和机能中起着关键作用,是繁殖性状的一个重要生理候选基因。国外研究证实,绵羊的GnRHR基因位于6号染色体上,由3个外显子和2个内含子组成。研究表明,GnRHR基因的多态性引起的氨基酸序列的改变会影响配体GnRH和受体GnRHR的结合力,进而影响动物的发育和生殖能力。
目前,国内外对于绵羊GnRHR基因外显子2的多态性研究较少。刘忠慧等对小尾寒羊和多塞特羊2个绵羊品种中GnRHR基因的外显子1和2进行了多态性检测,结果发现,GnRHR基因外显子2区域发生了突变G230C,该突变导致了甘氨酸改变为半胱氨酸。但该研究未对多态基因型和产羔数进行关联分析,无法判断GnRHR基因是否是影响小尾寒羊和多塞特羊繁殖力的主效基因。孙洁等对小尾寒羊和湖羊、南非肉用美利奴、考力代和中国美利奴绵羊中GnRHR基因的外显子1-3进行了多态性检测,结果表明,在小尾寒羊和湖羊中GnRHR基因外显子2存在2个突变(A50G和A101),均引起氨基酸改变,突变纯合型(DD)小尾寒羊平均产羔数比野生型(CC)多0.81只(P<0.01)。
PCR-SSCP是以PCR为基础,基于DNA构象差别而进行快速、灵敏、有效检测基因点突变,检测基因多态性的常用方法。其基本原理是经PCR扩增的DNA片段在变性剂或低离子浓度下,经高温处理使之解链并保持在单链状态下,DNA单链可折叠成一定空间构象,在不含变性剂的中性聚丙烯酰胺凝胶中电泳时,相同长度DNA单链因其碱基序列不同,甚至单个碱基不同,导致形成的构象不同,而且单链DNA构象的变化很可能引起了迁移率的改变,每条单链处于一定 的位置,靶DNA中若发生碱基缺失、插入或单个碱基置换时,就会出现泳动变位,通过显色或显影后在凝胶上就会显示出带型的差别,即多态性。
本发明选取GnRHR基因作为绵羊繁殖力的候选基因,利用分子生物学技术PCR-SSCP,检测策勒黑羊、吐鲁番黑羊品种中GnRHR基因外显子2的遗传多态性,分析研究其碱基突变对于绵羊繁殖性状的影响,进而用于绵羊繁殖力的早期选育,这对于提高农牧民经济收入、加快新疆肉羊业的发展具有重要意义和实践应用价值。
发明内容
本发明的目的在于:提供利用PCR-SSCP技术检测,找出可显著影响绵羊繁殖力的分子标记,同时提供一种高效用于选育提高策勒黑羊和吐鲁番黑羊繁殖力的方法。
本发明的目的是这样实现的:一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法,分步骤实施;
提取策勒黑羊和吐鲁番黑羊基因组DNA,设计合成引物一对:上游引物F为5'-CCTACAGTTATACATCTTTGGGA-3',下游引物R为5'-TGAGAAATACATACTGTGGGGAT-3',其扩增片段大小为241bp,最适退火温度为53.8℃;PCR扩增反应体系:总体积为20μl,其中PCR Mixture10μl,ddH2O8μl,上下游引物各0.5μl,DNA模板1μl;PCR扩增反应条件:94℃5min,30个循环的94℃30s、53.8℃30s、72℃1min,72℃5min,4℃保存;
采用PCR-SSCP技术,取3μl PCR产物与7μl变性剂混合,放入PCR仪98℃10min进行变性,-20℃冷却10min后点样,8%非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳25h,银染显色后凝胶成像,分析带型,用以检测GnRHR基因外显子2区的遗传多态性,发现碱基突变G→C,位于外显子2区的第230位碱基,导致氨基酸改变的Gly→Ala,并产生的3种基因型:GG、GC和CC。
所述方法,选择基因型为GG的绵羊个体,用于选育提高绵羊的繁殖力。
本发明原理与作用:采集刚宰杀的策勒黑羊和吐鲁番黑羊颈静脉血样,枸橼酸钠抗凝,提取基因组DNA,参照文献,合成可扩增GnRHR基因外显子2区的一对引物,进行PCR扩增,利用SSCP技术检测GnRHR基因外显子2区的遗传多态性,判断基因型,对发现的不同基因型进行DNA测序,确定突变的碱基及位置,并与繁殖性状(产羔数)进行关联分析,最终确定、找出影响策勒黑羊和吐鲁番黑羊繁殖力的DNA分子标记,此外,通过检测出的基因型,留用携带具有高繁殖力潜能的基因型绵羊个体,以此选育提高绵羊的繁殖力;该方法快捷精准,应用性极强,彰显技术进步。
附图说明
本发明结合实施例作进一步说明。
附图1为PCR扩增产物电泳图;
如图所示:M为DL2000DNA Marker,泳道1-10为PCR扩增产物。
附图2为8%聚丙烯酰胺凝胶电泳图;
如图所示:泳道8、9判定为GG基因型,泳道5、6判定为GC基因型,泳道1-4、7、10判定为CC基因型。
附图3为DNA测序结果对比图;
如图所示:在GnRHR基因外显子2区,发现了碱基突变G→C,致使野生纯合型GG变为突变纯合型CC。
具体实施方式
本发明结合附图作进一步说明。
实施例
1、基因组DNA提取:
采集刚宰杀的策勒黑羊和吐鲁番黑羊颈静脉血样5mL,枸橼酸钠抗凝,参照《分子克隆实验指南》,合成可扩增GnRHR基因外显子2;用酚氯仿抽提法提取血样基因组DNA,-20℃保存。
(1)解冻血样,转移1000L至2.0ml离心管,加入等体积PBS缓冲液,温和摇动混匀;12000r/min离心10min,弃去上清液,重复上述步骤至上清液透明、沉淀呈淡黄色。
(2)在离心管中加入DNA抽提液500l,摇动,使血细胞沉淀脱离离心管管壁,37℃水浴1h。
(3)加蛋白酶K至10l(20mg/mL)并混匀,55℃过夜至澄清,尚未澄清者,可补加10l蛋白酶K混匀继续消化直至澄清。
(4)将反应液冷却至室温,加Tris饱和酚500l,温和摇动混匀;12000r/min离心10min,将上清液转入另一1.5ml离心管中,重复一次。
(5)加三氯甲烷500l,充分混匀;12000r/mim离心10min,将上清液转入另一1.5ml离心管中。
(6)加三氯甲烷、异戊醇混合液(24:1)500l,充分混匀;12000r/min离心10min,将上清液转入另一1.5ml离心管中。
(7)加0.1倍体积的NaAc缓冲液及2倍体积的冰冷的无水乙醇(-20℃),温和转动离心管直至白色的絮状沉淀析出,-20℃保存30min~60min。
(8)12000r/min离心10min,弃去上清液,用70%冰冷乙醇漂洗DNA沉淀2次。
(9)12000r/min离心10min,弃去上清液,室温下使乙醇挥发干净。
(10)干燥后的DNA溶于80~100l的超纯水中,4℃保存直至DNA完全溶解,0.8%琼脂糖凝胶电泳检测其质量,-20℃保存。
2、PCR扩增:
1)引物设计及合成:根据绵羊GnRHR基因外显子2的DNA序列(GenBank登录号:L43841.1),参考文献《促性腺激素释放激素受体(GnRHR)基因多态性及其与济宁青山羊高繁殖力关系》的引物设计,送上海生物工程技术有限责任公司合成,引物序列如下:
上游引物F:5'-CCTACAGTTATACATCTTTGGGA-3';
下游引物R:5'-TGAGAAATACATACTGTGGGGAT-3';
2)PCR扩增反应体系:总体积为20μl,其中PCR Mixture10μl,ddH2O8μl,上下游引物各0.5μl,DNA模板1μl;
3)PCR扩增反应条件:94℃5min,30个循环的94℃30s、53.8℃30s、72℃1min,72℃5min,4℃保存;
4)PCR扩增产物检测:用1.5%的琼脂糖凝胶电泳检测,EB染色15min,凝胶成像仪成像,结果从图1中得出,条带清晰,无杂带,片段大小符合目的片段大小241bp。
其中主要试剂的配制:
20mg/ml蛋白酶K:100mg蛋白酶K溶于5ml超纯水,-20℃保存。
PBS缓冲液:NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO41.44g,KH2PO40.24g,加超纯水定容至1000ml,调pH至7.4,高压灭菌。
0.5mol/l EDTA:EDTA186.1g溶于800ml的超纯水中,用NaOH调pH至8.0,定容至1000ml,高压灭菌,4℃保存。
1mol/l Tris·HCl:Tris碱121.14g溶于800ml超纯水中,HCl调节pH至8.0,定容至1000ml,高压灭菌,4℃保存。
5mol/l NaCl:NaCl292.2g溶于1000ml超纯水中。
10%SDS:10g SDS溶于90ml的超纯水中,68℃水浴溶解,用HCl调pH至7.2,定容至100ml。
DNA抽提液:取0.5mol/l EDTA40ml,1mol/l Tris·HCl10ml,5mol/lNaCl4ml,10%SDS10ml,定容至100ml,高压灭菌,4℃保存。
70%乙醇:无水乙醇70ml,加超纯水定容至100ml。
10×TBE:Tris108g,硼酸55g,EDTA·2H2O7.44g,加超纯水定容至 1000ml。
1×TBE:10×TBE10ml,加超纯水定容至100ml。
0.8%琼脂糖凝胶配方:0.4g琼脂粉溶于50ml1×TBE,放于微波炉内加热1.5min充分溶解,备用。
2.5%琼脂糖凝胶配方:2.5g琼脂粉溶于100ml1×TBE,放于微波炉内加热3min充分溶解,备用。
其中实验选用的Taq DNA聚合酶、蛋白酶K、dNTPs、10×PCR Buffer、溴化乙锭(EB)由新疆宝信提供;6×Loading Buffer、Marker I由庄盟生物提供;NaCl、KCl、Na2HPO4、KH2PO4、SDS、Tris·HCl、NaCl、Tris饱和酚、EDTA、三氯甲烷、无水乙醇、硼酸、二甲苯氰FF、过硫酸铵、溴酚蓝、琼脂糖、超纯水、离心管、枪头由博迈德生物提供。
3、SSCP检测:
取3μl PCR产物,与7μl变性剂混合,放入PCR仪中进行变性(98℃10min),取出后立即置于冰上,放入-20℃冰箱,10min后取出点样,进行8%的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测,电压180V,电流50mA,根据PCR扩增产物的大小,电泳25h。
经银染显色后,凝胶成像仪成像,结果从图2中得出,GnRHR基因外显子2具有多态性,存在三种基因型:GG、GC和CC。
4、DNA测序:
将三种不同基因型的PCR产物送上海生工测序,根据测序结果分析突变碱基及位点,测序结果如图3。从图中可以看出,在GnRHR基因外显子2区(共275bp)发现了碱基突变G→C。进一步分析发现,该突变位点位于外显子2区的第230位碱基,并导致了氨基酸的改变Gly→Ala。
5、数据统计分析:
利用软件SPSS17.0,分析比较不同基因型间,总体平均产羔数的差异,结果如下表。
表
注:Mean±SD表示平均值±标准差;同行数据,肩标为不同小写字母时,表示差异显著(P<0.05)。
从上表的数据得知,在策勒黑羊群体中,CC基因型母羊平均产羔数比GG型母羊少0.51只,两者之间差异显著(P<0.05);在吐鲁番黑羊群体中,CC基因型母羊平均产羔数比GG型母羊少1.50只,两者之间差异显著(P<0.05),在两个新疆绵羊品种中,平均产羔数均表现为突变纯合型CC显著低于野生纯合型GG(P<0.05)。
6、结论及应用
由此得出,GnRHR基因外显子2区的碱基突变G230C,可降低绵羊繁殖力,原因是:GnRHR基因的多态性引起的氨基酸序列的改变(Gly→Ala),影响了配体GnRH和受体GnRHR的结合力,进而影响了两个绵羊品种的繁殖性能。
结果表明,GnRHR基因可作为影响新疆绵羊繁殖力的一个分子标记,在今后策勒黑羊和吐鲁番黑羊的分子选育中,可通过实施例中的方法检测出待测绵羊基因组DNA中GnRHR基因第2外显子的基因型,通过选择基因型为GG的绵羊个体,淘汰基因型为GC、CC的绵羊个体,选育提高绵羊的繁殖力。
本实验选用的TG16-W微量高速离心机产自长沙湘仪离心机仪器有限公司;DYCZ-24F型电泳槽产自北京市六一仪器厂;DYY-6C型电泳仪产自北京市六一仪器厂;POL2002电子天平产自梅特勒-托勒多仪器厂(上海)有限公司;AL204-IC电子天平产自梅特勒-托勒多仪器厂(上海)有限公司;JY04S凝胶成像仪产自北京君意东方电泳设备有限公司;GZX-9076MBE数显鼓风干燥箱产自上海博迅实业有限公司医疗设备厂;恒温箱恒温水浴振荡器产自北京桑翌实验仪器研究所;WD-9405B型水平摇床:产自北京市六一仪器厂。
Claims (2)
1.一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法,其特征在于:分步骤实施;
提取策勒黑羊和吐鲁番黑羊基因组DNA,设计合成引物一对:上游引物F为5'-CCTACAGTTATACATCTTTGGGA-3',下游引物R为5'-TGAGAAATACATACTGTGGGGAT-3';扩增片段大小为241 bp,最适退火温度为53.8℃;
PCR扩增反应体系:总体积为20μl, PCR Mixture 10μl,ddH2O 8μl,上下游引物各0.5μl,DNA模板 1μl;
PCR扩增反应条件:94℃ 5 min,30个循环的94℃ 30 s、53.8℃ 30 s、72℃ 1 min,72℃ 5 min,4℃ 保存;
采用PCR-SSCP技术,取3 μl PCR产物与7 μl变性剂混合,放入PCR仪98℃ 10 min进行变性,-20℃冷却10 min后点样,8%非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳25 h,银染显色后凝胶成像,分析带型,用以检测GnRHR基因外显子2区的遗传多态性,发现碱基突变G→C,位于外显子2区的第230位碱基,导致氨基酸改变的Gly→Ala,并产生的3种基因型为:GG、GC和CC。
2.依据权利1所述方法,其特征在于:选择基因型为GG的绵羊个体,用于选育提高绵羊的繁殖力。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310514882.9A CN103740804A (zh) | 2013-10-25 | 2013-10-25 | 一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310514882.9A CN103740804A (zh) | 2013-10-25 | 2013-10-25 | 一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103740804A true CN103740804A (zh) | 2014-04-23 |
Family
ID=50497869
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310514882.9A Pending CN103740804A (zh) | 2013-10-25 | 2013-10-25 | 一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103740804A (zh) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105462967A (zh) * | 2015-11-27 | 2016-04-06 | 新疆农垦科学院 | 绵羊季节性繁殖性状相关的分子标记、引物对、试剂盒及鉴别方法 |
CN106701930A (zh) * | 2016-12-14 | 2017-05-24 | 兰州大学 | 利用pcr‑sscp检测绵羊fth‑1基因插入缺失多态性的方法及其应用 |
CN109266760A (zh) * | 2018-11-20 | 2019-01-25 | 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 | 一种基于inha基因检测高山美利奴羊繁殖力的方法 |
CN111568598A (zh) * | 2020-05-07 | 2020-08-25 | 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 | 一种智能绵羊繁殖能力检测的系统及方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101338340A (zh) * | 2008-08-29 | 2009-01-07 | 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 | 一种检测山羊繁殖力的方法 |
-
2013
- 2013-10-25 CN CN201310514882.9A patent/CN103740804A/zh active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101338340A (zh) * | 2008-08-29 | 2009-01-07 | 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 | 一种检测山羊繁殖力的方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
刘忠慧 等: "绵羊GnRHR基因部分序列PCR-SSCP分析", 《安徽农业大学学报》, vol. 33, no. 3, 31 December 2006 (2006-12-31), pages 318 - 321 * |
孙洁: "绵羊高繁殖力候选基因GnRHR的SNPs及其与繁殖力关联的研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库》, no. 9, 15 September 2009 (2009-09-15) * |
黄杨河 等: "促性腺激素释放激素受体(GnRHR)基因多态性及其与山羊产羔数的相关性分析", 《畜牧兽医学报》, vol. 43, no. 1, 31 December 2012 (2012-12-31), pages 22 - 28 * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105462967A (zh) * | 2015-11-27 | 2016-04-06 | 新疆农垦科学院 | 绵羊季节性繁殖性状相关的分子标记、引物对、试剂盒及鉴别方法 |
CN105462967B (zh) * | 2015-11-27 | 2018-06-29 | 新疆农垦科学院 | 绵羊季节性繁殖性状相关的分子标记、引物对、试剂盒及鉴别方法 |
CN106701930A (zh) * | 2016-12-14 | 2017-05-24 | 兰州大学 | 利用pcr‑sscp检测绵羊fth‑1基因插入缺失多态性的方法及其应用 |
CN106701930B (zh) * | 2016-12-14 | 2020-06-09 | 兰州大学 | 利用pcr-sscp检测绵羊fth-1基因插入缺失多态性的方法及其应用 |
CN109266760A (zh) * | 2018-11-20 | 2019-01-25 | 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 | 一种基于inha基因检测高山美利奴羊繁殖力的方法 |
CN109266760B (zh) * | 2018-11-20 | 2020-04-21 | 中国农业科学院兰州畜牧与兽药研究所 | 一种基于inha基因检测高山美利奴羊繁殖力的方法 |
CN111568598A (zh) * | 2020-05-07 | 2020-08-25 | 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 | 一种智能绵羊繁殖能力检测的系统及方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US10280460B2 (en) | DNA probe sequence for genetic sex identification of Litopenaeus vannamei and acquisition method | |
Sun et al. | Screening and characterization of sex-linked DNA markers and marker-assisted selection in the Nile tilapia (Oreochromis niloticus) | |
Lin et al. | Identification of a male-specific DNA marker in the large yellow croaker (Larimichthys crocea) | |
CN107022604B (zh) | 猪ntf3启动子区snp作为公猪繁殖性状分子标记与应用 | |
Li et al. | AFLP-based genetic linkage map of marine shrimp Penaeus (Fenneropenaeus) chinensis | |
CN101768642B (zh) | 一种猪产仔数性状的分子标记方法 | |
Zhou et al. | Identification of sex‐specific markers and heterogametic XX/XY sex determination system by 2b‐RAD sequencing in redtail catfish (Mystus wyckioides) | |
CN103740804A (zh) | 一种利用GnRHR基因检测绵羊繁殖力的方法 | |
CN111225977B (zh) | 小龙虾的性连锁基因组标记及其用途 | |
CN106939348A (zh) | 一种用于达氏鲟家系鉴定的微卫星标记引物及其鉴定方法 | |
JP2021061826A (ja) | 帆立貝雌特異的分子マーカーの組み合わせ及びその応用 | |
CN105002267A (zh) | 一种日本对虾分子标记方法及应用 | |
CN104878099A (zh) | 山羊atbf1基因单核苷酸多态性的检测方法及其应用 | |
Zhu et al. | First identification of two co-existing genome-wide significant sex quantitative trait loci (QTL) in red tilapia using integrative QTL mapping | |
CN113817779A (zh) | 规模化获得xx/xy性别决定的伪雄鱼亲本的育种方法及其应用 | |
CN115141889A (zh) | 与中国南方荷斯坦奶牛产奶性状相关的snp标记及其应用 | |
Abdel-Rahman et al. | Polymorphism in BPM-15 gene and its association with litter size in Anglo-Nubian goat | |
CN113774122A (zh) | 鉴别黄河鲤遗传性别的分子标记、引物、试剂盒及应用 | |
CN108611405A (zh) | 一种翘嘴鲌亲子鉴定微卫星荧光多重pcr的方法 | |
CN104673916A (zh) | 一种家猪印记基因Rasgrf1的鉴定方法 | |
CN102321750A (zh) | 一种用分子标记快速筛选边鸡体重增长程度的方法 | |
CN104651523A (zh) | Inha基因的单链核苷酸序列作为动物超数排卵分子标记的应用及检测方法 | |
CN112210608A (zh) | 一种培育黑猪新品种的毛色性状快速精准固定方法及应用 | |
CN108220456B (zh) | 一种鉴定香港牡蛎、熊本牡蛎及其杂交子一代的est-ssr引物和鉴定方法 | |
CN105671189A (zh) | 一种基于黄牛Angptl8基因单核苷酸多态性的分子育种方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20140423 |