具体实施方式
以下结合具体实施例,对本发明进行详细说明。
实施例1液泡膜质子焦磷酸酶(TAVP)的获得
一、用3′-RACE法获得液泡膜质子焦磷酸酶(TAVP)3′未端序列
根据已报道的大麦、玉米、水稻的液泡膜质子焦磷酸酶基因(VP)保守区设计引物:TAVP3RACE-S:5′GCYGAYCTTGTYGGCAARGTT3′(兼并引物,其中,R和Y是兼并碱基符号;R表示G或A;Y表示T或C)和TAVP3RACE-A:5′GCAGTGGTAACAACGCAGAGT3′。
所用小麦抗逆品系为洛旱2号(来自河北省农业科学院抗旱经济作物所)。幼苗培养到两叶一心时期,20%PEG6000处理1h取全植株,采用TRIZOL(赛百盛公司)法提取小麦总RNA。取1μg总RNA,采用MMLV(promega公司)制备cDNA,整个操作均按照试剂盒推荐的条件进行,反转录引物RACERT:AAGCAGTGGTAACAACGCAGAGTAC(T)30。以获得的小麦的cDNA为模板,使用引物TAVP3RACE-S和TAVP3RACE-A进行PCR扩增。
PCR反应条件为:98℃ 30sec预变性,98℃ 10sec变性,50℃ 30sec复性,72℃1min20sec延伸,15个循环。98℃ 10sec变性,55℃ 30sec复性,72℃ 1min20sec延伸,20个循环。72℃ 10min延伸。PCR反应体系为:去离子无菌水11.2μL,5×Reaction Buffer4μL,10mM dNTPs1.5μL,5U/ul Tag酶0.3μL,cDNA1μL,Sense PrimerlμL,AntisensePrimerlμL,总体系20μL。
结果扩增得到约1800bp的片段,将该产物进行测序,结果表明扩增得到小麦含有VP保守区域的3′端序列(SEQ ID No.1)。
SEQ ID No.1序列为:
GAAAGGAACATTCCTGAAGATGACCCAAGGAACCCAGCTGTGATTGCTGACAATGTCGGTGACAATGTTGGTGATATTGCTGGAATGGGATCAGATCTCTTTGGTTCATACGCAGAATCTTCCTGTGCTGCTCTTGTTGTTGCTTCTATCTCATCTTTTGGAATCAACCATGATTTCACTGCGATGTGCTACCCACTGCTCGTGAGCTCTGTCGGCATCATTGTTTGCTTGCTCACCACGCTCTTTGCAACTGATTTCTTCGAGATCAAGGCTGCAAGCGAAATTGAACCTGCTCTGAAGAAGCAGCTCATCATCTCCACTGCTTTAATGACCATCGGTGTTGCGGTAATCAGCTGGTTGGCTCTTCCAGCTAAGTTCACCATCTTCAACTTCGGTGCTCAGAAGGACGTGTCCAACTGGGGCCTGTTCTTCTGCGTGGCAGTTGGTCTGTGGGCTGGTCTGATTATTGGGTTTGTGACCGAGTACTACACTAGCAATGCCTACAGCCCTGTGCAAGATGTTGCCGATTCCTGCAGAACTGGTGCTGCCACCAACGTCATCTTCGGTCTTGCCCTGGGTTACAAGTCCGTCATCATCCCAATTTTCGCTATTGCTGTCAGCATCTACGTCAGCTTCTCTATTGCTGCGATGTACGGCATTGCAATGGCTGCTCTTGGCATGCTTAGCACAATGGCAACTGGTCTTGCGATCGATGCTTATGGTCCCATTAGTGACAATGCTGGTGGAATTGCTGAGATGGCTGGCATGAGCCACAGAATCCGTGAGAGGACTGATGCTCTTGATGCTGCTGGCAACACAACCGCTGCTATTGGAAAGGGTTTCGCCATTGGATCAGCTGCTCTTGTGTCCCTGGCACTTTTCGGTGCTTTTGTCAGCAGAGCCGGCGTGAAGGTCGTCGATGTCCTATCTCCCAAGGTGTTCATTGGCCTGATTGTTGGAGCCATGCTTCCGTACTGGTTCTCTGCCATGACCATGAAGAGTGTTGGAAGTGCTGCTCTCAAGATGGTTGAGGAGGTCCGCAGGCAGTTCAACACCATCCCCGGACTGATGGAGGGAACTGCCAAGCCCGACTATGCCACCTGTGTCAAGATCTCCACTGATGCTTCCATCAAGGAGATGATCCCTCCGGGTGCTTTGGTCATGCTCACCCCCCTCATTGTCGGAACCCTCTTCGGCGTGGAAACCCTGTCTGGTGTTCTGGCTGGTGCCCTTGTTTCTGGAGTGCAGATCGCCATCTCTGCTTCCAACACCGGCGGTGCATGGGACAACGCAAAGAAGTACATTGAGGCTGGCAACAGCGAGCACGCGAGGTCCCTTGGCCCCAAGGGTTCAGACTGCCACAAGGCGGCCGTGATCGGCGACACCATCGGAGACCCCCTCAAGGACACCTCAGGCCCGTCGCTCAACATCCTCATCAAGCTCATGGCCGTCGAGTCCCTCGTGTTTGCGCCCTTCTTTGCCACGTACGGAGGCGTGCTGTTCAGGTACATCTAG
方框中是3′-RACE法获得的VP基因的保守区。
二、用5′-RACE法获得液泡膜质子焦磷酸酶基因5′未端序列
5′-RACE包含了有3个连续的酶反应步骤,即反转录、去磷酸化处理、去帽子反应。上述扩增操作均按照试剂盒推荐的条件进行。去磷酸化主要是利用碱性磷酸酶(如牛小肠碱性磷酸酶,CIP)处理,防止载体自身环化。CIP可以水解掉DNA5末端的磷酸。去帽子反应主要是应用TAP可以去掉mRNA的5帽子结构,使用T4RNA Ligase将5RACEAdaptor连接到mRNA的5′端后。
5′-RACE接头连接反转录反应的步骤如下所述:以cDNA为模板,使用上游外侧特异性引物GSP1:TAVP-5-OUT(5′GCTTCTTCAGAGCAGGTTCA3′)和5′RACE外侧引物(5′CATGGCTACATGCTGACAGCCTA3′)进行第一轮PCR,第一轮PCR产物较弱。将第一轮PCR产物进行50倍稀释,再使用上游内侧引物GSP2:TAVP-5-IN(5′GCAAAGAGCGTGGTGAGCAA3′)和5′RACE内侧引物(5′CGCGGATCCACAGCCTACTGATGATCAGTCGATG3′)进行第二轮PCR反应。扩增得出PCR片段大小为1053bP。
第一轮PCR的反应条件为98℃ 30S预变性,98℃ 10see变性,55℃ 30sec复性,72℃ 1min延伸,35个循环。72℃ 10min延伸。
第二轮PCR的反应条件为98℃ 30S预变性,98℃ 10see变性,60℃ 30sec复性,72℃ 1min延伸,35个循环。72℃ 10min延伸。
上述扩增其余操作均按照试剂盒推荐的条件进行。
PCR产物直接测序,测序结果如下。此结果用于后面的序列拼接分析。
CGCGGATCCACAGCCTACTGATGATCAGTCGATGATGGCGATCCTCGGGGAGCTCGGCACCGAGATCCTCATCCCCGTCTGCGGGGTCGTCGGCATCGTCTTCGCCATCGCGCAGTGGTTCATCGTCTCCAAGGTCAAGGTCACCCCCGGCGCCGCCGCCGCCGGCGGCTCCAAGAACGGCTACGGCGACTACCTCATCGAGGAGGAGGAGGGCCTCAACGACCACAACGTCGTCGTCAAGTGCGCCGAGATCCAGACCGCCATCTCAGAAGGAGCAACATCATTCCTTTTCACCATGTACCAGTATGTTGGTATGTTCATGGTCGTCTTTGCTGCGGTTATCTTCGTCTTCCTTGGGTCAATTGAGGGATTCAGCACAAAGGGCCAGCCCTGCACCTACAGCACGGGCACCTGCAAGCCAGCTCTCTACACCGCCCTCTTCAGCACTGCATCTTTCTTGCTTGGAGCCATCACATCTTTGGTGTCTGGTTTCCTTGGGATGAAGATCGCCACATACGCCAATGCTAGGACGACCCTGGAGGCAAGGAAGGGTGTTGGGAAGGCATTTATCACTGCTTTCCGCTCTGGTGCAGTCATGGGCTTCTTGTTGTCATCAAGTGGGCTTGTGGTTCTTTACATCACCATCAACGTGTTCAAGATGTACTACGGTGATGACTGGGAAGGTCTTTTTGAGTCCATCACTGGTTATGGTCTTGGTGGGTCTTCCATGGCTCTATTCGGAAGAGTTGGTGGAGGTATCTACACCAAGGCTGCTGACGTGGGTGCTGATCTTGTTGGCAAAGTTGAAAGGAACATTCCTGAAGATGACCCAAGGAACCCAGCTGTGATTGCTGACAATGTCGGTGACAATGTTGGTGATATTGCTGGAATGGGATCAGATCTCTTTGGTTCATACGCAGAATCTTCCTGTGCTGCTCTTGTTGTTGCTTCTATCTCATCTTTTGGAATCAACCATGATTTCACTGCGATGTGCTACCCACTGCTCGTGAGCTCTGTCGGCATCATTGTTTGCTTGCTCACCACGCTCTTTGC
三、全长液泡膜质子焦磷酸酶基因(VP)的cDNA序列获得
通过分析所述步骤一和步骤二的PCR获得的3′和5′端TAVP序列,利用DNAMANversion5.2.2软件,拼连TAVP基因的全长cDNA,进行生物信息学分析,确定该基因的读码框。合成相应引物扩增出全长cDNA。引物序列如下所述:TAVPQC-S:5′CGGGATCCATGGCGATCCTCGGGGAG3′;TAVPQC-A:5′CCCAAGCTTCTAGATGTACCTGAACAGCACGC3′。
以小麦cDNA为模板,利用高保真SuperStar High-Fidelity酶(GenStar公司),以VPQC-S和VPQC-A为引物,PCR扩增液泡膜质子焦磷酸酶基因的全长cDNA。
扩增反应条件为预变性98℃ 30S;98℃ 10S,68℃ 30S,72℃ 1min40S,35个循环,最后72℃ 10min。
PCR扩增得到的产物大小为2286bp(SEQ ID No.2)。将PCR产物克隆到T-EASY载体(购自promega公司)进行测序。测序结果用primer5软件翻译成氨基酸序列。将该氨基酸序列在NCBI生物数据库进行同源性搜索,结果表明该序列与与大麦中VP基因的氨基酸序列同源性分别达86%(AB032839.1)和98%(D13472.2);与水稻中VP基因的氨基酸序列同源性分别达达85%(D45384.1)、92%(D45384.1)、89%(AB126350.1)和87%(AB126351.1);与小麦已知VP基因的氨基酸序列同源性分别达85%(EU255237.1)和98%(AY296911.1)。因此,我们初步推断克隆获得小麦VP基因编码一新的未曾报道过的液泡膜质子焦磷酸酶。将SEQ ID No.2翻译成氨基酸序列进行分析,结果表明,自翻译成的该氨基酸序列的氨基端第248位至258位为液泡膜质子焦磷酸酶的保守区。因此,该蛋白可能具有水解焦磷酸的活性。
SEQ ID No.2的序列为:
ATGGCGATCCTCGGGGAGCTCGGCACCGAGATCCTCATCCCCGTCTGCGGGGTCGTCGGCATCGTCTTCGCCATCGCGCAGTGGTTCATCGTCTCCAAGGTCAAGGTCACCCCCGGCGCCGCCGCCGCCGGCGGCTCCAAGAACGGCTACGGCGACTACCTCATCGAGGAGGAGGAGGGCCTCAACGACCACAACGTCGTCGTCAAGTGCGCCGAGATCCAGACCGCCATCTCAGAAGGAGCAACATCATTCCTTTTCACCATGTACCAGTATGTTGGTATGTTCATGGTCGTCTTTGCTGCGGTTATCTTCGTCTTCCTTGGGTCAATTGAGGGATTCAGCACAAAGGGCCAGCCCTGCACCTACAGCACGGGCACCTGCAAGCCAGCTCTCTACACCGCCCTCTTCAGCACTGCATCTTTCTTGCTTGGAGCCATCACATCTTTGGTGTCTGGTTTCCTTGGGATGAAGATCGCCACATACGCCAATGCTAGGACGACCCTGGAGGCAAGGAAGGGTGTTGGGAAGGCATTTATCACTGCTTTCCGCTCTGGTGCAGTCATGGGCTTCTTGTTGTCATCAAGTGGGCTTGTGGTTCTTTACATCACCATCAACGTGTTCAAGATGTACTACGGTGATGACTGGGAAGGTCTTTTTGAGTCCATCACTGGTTATGGTCTTGGTGGGTCTTCCATGGCTCTATTCGGAAGAGTTGGTGGAGGTATCTACACCAAGGCTGCTGACGTGGGTGCTGATCTTGTTGGCAAAGTTGAAAGGAACATTCCTGAAGATGACCCAAGGAACCCAGCTGTGATTGCTGACAATGTCGGTGACAATGTTGGTGATATTGCTGGAATGGGATCAGATCTCTTTGGTTCATACGCAGAATCTTCCTGTGCTGCTCTTGTTGTTGCTTCTATCTCATCTTTTGGAATCAACCATGATTTCACTGCGATGTGCTACCCACTGCTCGTGAGCTCTGTCGGCATCATTGTTTGCTTGCTCACCACGCTCTTTGCAACTGATTTCTTCGAGATCAAGGCTGCAAGCGAAATTGAACCTGCTCTGAAGAAGCAGCTCATCATCTCCACTGCTTTAATGACCATCGGTGTTGCGGTAATCAGCTGGTTGGCTCTTCCAGCTAAGTTCACCATCTTCAACTTCGGTGCTCAGAAGGACGTGTCCAACTGGGGCCTGTTCTTCTGCGTGGCAGTTGGTCTGTGGGCTGGTCTGATTATTGGGTTTGTGACCGAGTACTACACTAGCAATGCCTACAGCCCTGTGCAAGATGTTGCCGATTCCTGCAGAACTGGTGCTGCCACCAACGTCATCTTCGGTCTTGCCCTGGGTTACAAGTCCGTCATCATCCCAATTTTCGCTATTGCTGTCAGCATCTACGTCAGCTTCTCTATTGCTGCGATGTACGGCATTGCAATGGCTGCTCTTGGCATGCTTAGCACAATGGCAACTGGTCTTGCGATCGATGCTTATGGTCCCATTAGTGACAATGCTGGTGGAATTGCTGAGATGGCTGGCATGAGCCACAGAATCCGTGAGAGGACTGATGCTCTTGATGCTGCTGGCAACACAACCGCTGCTATTGGAAAGGGTTTCGCCATTGGATCAGCTGCTCTTGTGTCCCTGGCACTTTTCGGTGCTTTTGTCAGCAGAGCCGGCGTGAAGGTCGTCGATGTCCTATCTCCCAAGGTGTTCATTGGCCTGATTGTTGGAGCCATGCTTCCGTACTGGTTCTCTGCCATGACCATGAAGAGTGTTGGAAGTGCTGCTCTCAAGATGGTTGAGGAGGTCCGCAGGCAGTTCAACACCATCCCCGGACTGATGGAGGGAACTGCCAAGCCCGACTATGCCACCTGTGTCAAGATCTCCACTGATGCTTCCATCAAGGAGATGATCCCTCCGGGTGCTTTGGTCATGCTCACCCCCCTCATTGTCGGAACCCTCTTCGGCGTGGAAACCCTGTCTGGTGTTCTGGCTGGTGCCCTTGTTTCTGGAGTGCAGATCGCCATCTCTGCTTCCAACACCGGCGGTGCATGGGACAACGCAAAGAAGTACATTGAGGCTGGCAACAGCGAGCACGCGAGGTCCCTTGGCCCCAAGGGTTCAGACTGCCACAAGGCGGCCGTGATCGGCGACACCATCGGAGACCCCCTCAAGGACACCTCAGGCCCGTCGCTCAACATCCTCATCAAGCTCATGGCCGTCGAGTCCCTCGTGTTTGCGCCCTTCTTTGCCACGTACGGAGGCGTGCTGTTCAGGTACATCTAG
由SEQ ID No.2翻译成的氨基酸序列为:
MAILGELGTEILIPVCGVVGIVFAIAQWFIVSKVKVTPGAAAAGGSKNGYGDYLIEEEEGLNDHNVVVKCAEIQTAISEGATSFLFTMYQYVGMFMVVFAAVIFVFLGSIEGFSTKGQPCTYSTGTCKPALYTALFSTASFLLGAITSLVSGFLGMKIATYANARTTLEARKGVGKAFITAFRSGAVMGFLLSSSGLVVLYITINVFKMYYGDDWEGLFESITGYGLGGSSMALFGRVGGGIYTKAADVGADLVGKVERNIPEDDPRNPAVIADNVGDNVGDIAGMGSDLFGSYAESSCAALVVASISSFGINHDFTAMCYPLLVSSVGIIVCLLTTLFATDFFEIKAASEIEPALKKQLIISTALMTIGVAVISWLALPAKFTIFNFGAQKDVSNWGLFFCVAVGLWAGLIIGFVTEYYTSNAYSPVQDVADSCRTGAATNVIFGLALGYKSVIIPIFAIAVSIYVSFSIAAMYGIAMAALGMLSTMATGLAIDAYGPISDNAGGIAEMAGMSHRIRERTDALDAAGNTTAAIGKGFAIGSAALVSLALFGAFVSRAGVKVVDVLSPKVFIGLIVGAMLPYWFSAMTMKSVGSAALKMVEEVRRQFNTIPGLMEGTAKPDYATCVKISTDASIKEMIPPGALVMLTPLIVGTLFGVETLSGVLAGALVSGVQIAISASNTGGAWDNAKKYIEAGNSEHARSLGPKGSDCHKAAVIGDTIGDPLKDTSGPSLNILIKLMAVESLVFAPFFATYGGVLFRYI-
该氨基酸序列全长761个氨基酸,下划线部位为焦磷酸酶的保守区。
实施例2本发明的液泡膜质子焦磷酸酶及其编码基因的功能验证
一、液泡膜质子焦磷酸酶基因(TAVP)的表达载体构建
用PCR扩增pCambial380的35S启动子,所用的引物为5′-CCGAATTCCCCAACATGGTGGAGC-3′和5′-CG GGATCC GCGAAAGCTCGAGAGAG-3′,扩增出的35S启动子长度为0.8kb。将该片段用EcoR I和BamH I酶切后插入到pCambial380载体(购自Cambia)的EcoR I和BamH I酶切位点之间得到重组载体,将重组载体命名为pCambial380-35S。
将TAVP用BamH I和Hind III双酶切后,回收TAVP片段,将其以正向方式插入载体pCambial380-35S的BamH I和Hind III酶切位点之间,得到重组载体,将该重组载体进行酶切和测序鉴定,将鉴定表明正确的含有TAVP的重组表达载体命名为pCambial380-35S-TAVP。用Hind III和Bgl II切割已经构建的GFP-T载体(GFP扩增自常规载体pEGPF-N2,带Hind III和Bgl II酶切位点扩增后连接T载体得到),将切下的GFP连接到pCambial380-35S-TAVP上,最终构建成pCambial380-35S-TAVP-GFP载体。载体的T-DNA结构图谱如图1所示。
pCambial380-35S-TAVP-GFP的T-DNA结构图谱如图1所示,该载体中含有的植物表达载体抗性选择标记为抗潮霉素基因(Hygromycin)抗性,TAVP基因由35S启动子驱动。图1中,RB(right border)和LB(left border)分别代表T-DNA区的右边界和左边界;Hyg(R)是编码潮霉素磷酸转移酶的基因,能使受体细胞获得对潮霉素抗性;CaMV35s是来源于花椰菜花叶病毒(cauliflower mosaic virus,CaMV)的启动子,在双子叶植物中具有很强的活性;Nos来源于根癌农杆菌终止子;TAVP为实施例1所述获得的小麦液泡膜质子焦磷酸酶基因的cDNA。
二、液泡膜质子焦磷酸酶的编码基因(VP)的转基因拟南芥植株获得
VP基因及其编码蛋白在单子叶植物(水稻、大麦、玉米)抗逆中具有良好的应用前景。本例以转化受体拟南芥作为示例,通过农杆菌介导的转化方法,将带有pCambial380-35S-TAVP-GFP载体的农杆菌导入拟南芥中,经过筛选,获得转pCambial380-35S-TAVP-GFP植株,通过鉴定该转pCambial380-35S-TAVP-GFP植株的抗逆性能即可确定本发明的液泡膜质子焦磷酸酶及其编码基因的提高植物抗逆性的功能。转pCambial380-35S-TAVP-GFP植株具体获得过程如下:
1、含有pCambial380-35S-TAVP-GFP的农杆菌的获得
将pCambial380-35S-TAVP-GFP转化农杆菌菌株GV3101,将得到的重组菌进行PCR(以质粒为模板)及酶切鉴定,将鉴定正确的含有pCambial380-35S-TAVP-GFPP的重组工程菌命名为GV-pCambial380-35S-TAVP-GFP。
2、拟南芥的培养
将Columbia型拟南芥的种子放入EP管中春化3-5天。用75%的乙醇消毒1min,3%的NaClO消毒5min,最后无菌水洗涤种子3-5次后铺种。播种后的拟南芥放入光照培养箱中培养,温度day/night21℃/18℃,光周期为16h光照/8h黑暗,相对湿度70%。
2-4片真叶时移栽(播种10-12天)。移栽前先对营养土进行湿热灭菌。移栽后,用塑料罩来保湿。拟南芥小苗长出6片叶子后就可以移去塑料罩。
3、农杆菌转化
移栽后的拟南芥大约2周后开始进入花期,待主薹抽薹至10-15cm时可作为农杆菌转化的材料。活化农杆菌,扩培至菌液密度为OD600值1.0左右,5000g离心20min收集菌体。用转化介质悬浮菌体至密度OD600为0.8左右。
去掉拟南芥主薹和侧薹上的角果、花蕾后将拟南芥整个植株完全浸泡在转化介质中,5min后取出植株侧卧在干净的托盘中,用黑色塑料袋覆盖避光恢复培养。24h后弃去塑料袋,将拟南芥扶正,正常培养。2-3周之后,少浇水,加速其衰老,收获种子。
4、转pCambial380-35S-TAVP植株的鉴定与纯合体的获得
潮霉素(hygromycin)为链霉菌产生的氨基糖苷类抗生素,抗潮霉素基因表达产物是一个蛋白激酶,通过磷酸化潮霉素B使其丧失活性,由于在真核和原核生物中潮霉素筛选假阳性率低,重复性好,现在通过潮霉素B对转基因生物进行筛选已经在实验室被广泛选用。本实施例所构建的表达载体pCambial380-35S-TAVP-GFP的选择标记为抗潮霉素基因,不仅有利于选择培养时进行筛选,而且可以赋予转基因植株抗潮霉素B特性。因此转pCambial380-35S-TAVP-GFP植株能表现出对潮霉素B的抗性。本实施例用潮霉素对转pCambial380-35S-TAVP-GFP植株进行鉴定,获得阳性植株。具体方法如下所述:
农杆菌转化后当代植株(T0代)所收获的种子即为T1代。将其铺于含有25-30μg/mL潮霉素抗性的MS平板中,置于光照周期为8h黑暗、16h光照的光照培养箱中(20-22℃)培养。由于农杆菌所转的植物表达载体中具有潮霉素的抗性,因而只有基因转化成功的幼苗才会在含有潮霉素抗性的平板中生长。未转入基因的幼苗在含有潮霉素的MS平板上表现为种子萌发长出两片子叶后不能再继续长出真叶,主根很短且无侧根,子叶一般不展开并随即渐渐枯黄、变白直至死亡。而真正的转入基因幼苗在含有潮霉素抗性的MS平板中生长完全正常。待阳性的转基因幼苗生长10d左右后将其移栽入营养土中继续培养,单株收获种子(此为T2代)。继续将收获的种子分别铺于含有潮霉素的MS平板中,此时的T2代植株发生潮霉素抗性的性状分离,我们选取抗性与不抗的性状分离比为3:1的植株进行移栽,共需要选择至少10株左右满足此比例的株系,每个平板(株系)移栽20棵幼苗,待成熟后分别单株收获其种子(T3代)。将单株收获的种子每个株系挑10株种子继续铺于含有潮霉素抗性的MS培养基中,无性状分离的即为纯合体(T3代植株),此编号的种子及其后代即可用于后续生理实验。
5、转pCambial380-35S-TAVP-GFP拟南芥植株基因表达的鉴定
1)挑选6个纯合体株系和野生型拟南芥,正常培养。以叶片为材料采用TRIZOL法各自提取总RNA,取2μg总RNA,采用MMLV(promega)制备cDNA,整个操作均按照试剂盒推荐的条件进行。以获得的野生型拟南芥和转pCambial380-35S-TAVP-GFPT3代纯合体植株的cDNA为模板,进行半定量PCR扩增。
2)根据已报道的拟南芥actin序列设计内参引物,正向引物(ACTIN-S:5′AGGCACCTCTTAACCCTAAAGC3′),反向引物(ACTIN-A:5′GGACAACGGAATCTCTCAGC3′),PCR反应程序为:94℃预变性5min;94℃变性30s;55℃退火30s;72℃延伸30s;30个循环;72℃延伸5min。
3)将PCR反应产物进行凝胶电泳检测,电泳得到430bp的片段即为拟南芥actin的片段。调节cDNA模板浓度,使野生型拟南芥和转pCambial380-35S-TAVP-GFPT3代植株扩增片段亮度一致。
4)根据步骤3)确定的野生型拟南芥和转pCambial380-35S-TAVP-GFPT3代植株cDNA模板浓度,进行TAVP基因的PCR扩增。
根据我们克隆测序得到的TAVP序列设计内参引物,正向引物(BDL-S:5′GAGCCACAGAATCCGTGAGA3′),反向引物(BDL-A:5′CACCAGCCAGAACACCAGA3′),PCR反应程序为:94℃预变性5min;94℃变性30s;55℃退火30s;72℃延伸30s;28个循环;72℃延伸5min。
将PCR反应产物进行凝胶电泳检测,电泳得到461bp的片段即为TAVP基因。电泳图结果如图2所示,图中1-6为转pCambial380-35S-TAVP-GFPT3代植株(分别为株系9、14、15、16、20、24),结果表明TAVP基因在拟南芥中得到了表达。
6、转pCambial380-35S-TAVP植株功能验证实验
1)萌发实验与绿苗率统计
将野生型和5所述经过表达鉴定的6个纯合体株系的种子,消毒后播种于含有不同胁迫物质(甘露醇300mM、NaCl 125mM、NaCl 150mM、NaCl 175mM)的MS培养基上,每皿不少于50粒种子,3个重复。4天后统计萌发率,6天后统计绿苗率。结果如下图3、图4、图5所示。
由图3、图4可以看出,野生型拟南芥在胁迫状况下其萌发率与绿苗率均低于转基因拟南芥,由图5可以看出,相同胁迫状况下,野生型的生长状态明显不如转基因株系。
2)幼苗脯氨酸含量测定
用培养基中添加甘露醇模拟干旱胁迫,添加NaCl模拟盐胁迫。在1×MS琼脂糖固体培养基上培养T3代转基因拟南芥植株Tp9、Tp14、Tp15和野生型拟南芥。7d后转移到含有300mM甘露醇和125mM NaCl、150mM NaCl、175mM NaCl的1×MS琼脂糖固体培养基上,同样条件下继续培养8d。以水杨酸结合法测定转基因拟南芥幼苗脯氨酸含量。结果如下图6所示。
由图6可以看出,无论在干旱胁迫还是在NaCl胁迫下,转基因拟南芥的脯氨酸含量均高于野生型。随着NaCl浓度的升高,野生型和转基因拟南芥的脯氨酸的含量均呈增高的趋势,而在相同胁迫条件下,转基因株系的脯氨酸含量高于野生型,说明转基因植株具有更强的抗逆能力。
3)成苗脯氨酸含量测定
分别将MS培养基上培养10d的转基因植株(Tp9、Tp14、Tp15、Tp16、Tp20和Tp24)以及野生型幼苗移植到装有定量营养土的营养钵中,每个株系3钵,每钵移植4株,在室温下缓苗7d,分组进行胁迫处理。对盐胁迫处理组用300mmol L-1NaCl水溶液浇灌营养土,温室中继续培养至第12天,测定脯氨酸含量;对干旱处理组的控水措施是停止浇水培养14d,然后测定脯氨酸含量。
由图7看出,NaCl胁迫12天后,野生型拟南芥生长状态明显差于转基因株系,个别植株出现死亡。而转基因株系相对生长快速,植株较野生型更壮。脯氨酸含量分析结果(图8)显示转基因株系含有更高的脯氨酸含量,其抗盐性优于野生型拟南芥。
由图9看出,干旱胁迫14天后,野生型拟南芥干枯,叶片发黄,有死亡植株出现。而转基因株系虽然出现叶片边缘发黄,但是均存活且生长状况较佳。脯氨酸含量分析结果(图10)显示转基因株系含有更高的脯氨酸含量,其抗旱性优于野生型拟南芥。
4)成苗电导率测定
分别将MS培养基上培养10d的转基因植株(Tp9、Tp14、Tp15、Tp16、Tp20和Tp24)以及野生型幼苗移植到装有定量营养土的营养钵中,每个株系3钵,每钵移植4株,在室温下缓苗7d,分组进行胁迫处理。对盐胁迫处理组用300mmol L-1NaCl水溶液浇灌营养土,温室中继续培养至第12天,测定电导率;对干旱处理组的控水措施是停止浇水培养14d,然后测定电导率。
由图11可知,胁迫条件下无论野生型还是转基因拟南芥的电导率均增大,说明其细胞膜遭受不同程度的破坏。而在相同胁迫条件下,野生型电导率高于转基因株系,其细胞膜破坏程度更高,说明转基因拟南芥具有优于野生型的抗逆性。
应当理解的是,对本领域普通技术人员来说,可以根据上述说明加以改进或变换,而所有这些改进和变换都应属于本发明所附权利要求的保护范围。