CN103160521A - arylomycins A生物合成基因簇 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了由Streptomyces parvus CGMCC No.4027菌株产生的具有抗菌活性的抗生素--arylomycins A的生物合成基因簇。整个基因簇共包含8个基因:3个NRPS基因(aryA、aryB、aryD);1个后修饰基因(aryC);3个前体合成基因(aryF、aryG、aryH)以及1个MbtH基因(aryE)。通过对上述生物合成基因的遗传操作可阻断arylomycin A2和arylomycinA4的合成。本发明所提供的基因也可以用来寻找和发现可用于医药、工业或农业的化合物或基因、蛋白。
Description
技术领域
本发明属于微生物基因工程领域,具体地说,是关于抗生素arylomycins A的生物合成基因簇。
背景技术
随着致病菌耐药性问题的日益严峻,临床上对新抗生素的需求也显得更为迫切。为了应对这一局面,人们一方面对已有抗生素进行改造,另一方面也加快了新型抗生素筛选的步伐。Alexandra 等在2002年从Streptomyces sp.Tü6075分离得到了两组脂肽类化合物arylomycins,包括arylomycins A和arylomycins B(Schimana,Gebhardt et al.2002)。它们都属于六肽化合物,含有相同肽链(D-Me-Ser-D-Ala-Gly-L-Me-Hpg-L-Ala-L-Tyr),不同的是,arylomycins B中的Tyr含有-NO2取代基。最近,我们从Streptomyces parvus CGMCC No.4027的发酵液中分离到了arylomycin A2和arylomycin A4,结构如图1所示。
2004年,Mark Paetzel等获得了arylomycin A2与Escherichia coli I型信号肽酶结合复合物 分辨率的晶体结构,研究发现arylomycin A2的C端可与信号肽酶催化活性中心的Ser和Lys残基侧链形成氢键,同时arylomycin A2形成β-折叠结构模拟信号肽酶底物的结合(Paetzel,Goodall et al.2004)。I型信号肽酶(SPase I,EC 3.4.21.89)是一种广泛存在于真细菌细胞膜中的丝氨酸蛋白酶,负责将前蛋白N-端的信号肽切除,对细菌的生存和生长至关重要。SPase I被抑制后,会造成分泌蛋白在细胞膜上的大量积累并最终导致细菌死亡(Dalbey and Wickner 1985)。一直以来,病原菌蛋白酶抑制剂被认为药物发展的一个方向,但是对人体的毒害性降低了这些抑制剂最终成药的可能性。区别于经典的Ser/His/Asp催化机制,SPase I利用独特的Ser/Lys催化二元体机制,这就意味着SPase I抑制剂有着更高的特异性,对真核细胞有着更低的毒性。同时,由于催化活性中心位于细胞膜外侧,I型信号肽酶被认为是一种很有潜力的抗生素筛选靶标。虽然已经得到了arylomycin A2与Escherichia coli SPase I结合复合物的晶体结构,但在最初生物活性研究中,arylomycins只对Streptococcuspneumonia、Staphylococcus epidermidis及土壤微 生物Rhodococcus opacus、Brevibacillus brevis有抗菌活性,而对大多的病原菌如Staphylococcus aureus、Escherichia coli和Pseudomonas aeruginosa没有活性,这大大限制了其成为药物的可能性。但2010年有研究发现,Staphylococcus aureus、Escherichia coli和Pseudomonas aeruginosa之所以对arylomycins表现出耐药性,是由于这些病原菌的SPase I催化活性中心的Ser突变为Pro从而导致两者的亲和力降低。通过对自然界中厚壁菌门、放线菌们、变形菌门、拟杆菌门及疣微菌门衣原体属中SPase I相应位置Pro突变的分布研究表明,很多自然界中的细菌不存在Pro突变而对arylomycins表现为敏感,如革兰氏阳性边病原菌Streptococcus pneumoniae、Streptococcus pyogenes、S.haemolyticus 及革兰氏阴性病原菌Chlamydia trachomatis等(Smith,Roberts et al.2010)。因此arylomycins作为广谱性抗生素有着广阔的应用前景。
除了加工与生存及生长相关蛋白,I型信号肽酶与其它生命活动如细菌耐药性、细菌毒素的分泌等,也有着密切关系。例如,一些病原菌由于能分泌β-内酰胺酶而对β-内酰胺类抗生素产生耐药性,而研究表明arylomycins类似物lipoglycopeptides能抑制S.aureus β-内酰胺酶的分泌(Kulanthaivel,Kreuzman et al.2004)。因此除了直接作为抗生素使用,arylomycins还能够调节细菌毒性或者使得病原菌变得对其它抗生素敏感,这将大大扩大arylomycins应用范围(Roberts,Smith et al.2007)。
迄今为止,还没有arylomycins生物合成基因簇相关研究的报道。
发明内容
本发明的目的是提供由Streptomyces parvus CGMCC No.4027菌株产生的具有抗菌活性的抗生素--arylomycins A的生物合成基因簇。
根据本发明,抗生素arylomycins A的生物合成基因簇包含8个基因:
aryA编码非核糖体肽合成酶NRPS;
aryB编码非核糖体肽合成酶NRPS;
aryC编码P450酶;
aryD编码非核糖体肽合成酶NRPS;
aryE编码MbtH家族蛋白;
aryF编码羟基扁桃酸合酶Hmas;
aryG编码羟基扁桃酸氧化酶Hmo;
aryH编码羟基苯甘氨酸氨基转移酶HpgT。
根据本发明,所述基因aryA位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第3739-5493个碱基处,长度为1755个碱基对,编码584个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryB位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第5481-15938个碱基处,长度为10458个碱基对,编码3485个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryC位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第16567-17736个碱基处,长度为1170个碱基对,编码389个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryD位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第17795-30688个碱基处,长度为12894个碱基对,编码4297个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryE位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第30714-30935个碱基处,长度为222个碱基对,编码73个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryF位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第30983-32047个碱基处,长度为1065个碱基对,编码354个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryG位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第32044-33159个碱基处,长度为1116个碱基对,编码371个氨基酸。
根据本发明,所述基因aryH位于SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列的第33152-34501个碱基处,长度为1350个碱基对,编码449个氨基酸。
根据本发明,所述基因簇的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
本发明所提供的包含arylomycins A生物合成相关的所有基因和蛋白信息可以帮助人们理解arylomycins类天然产物的生物合成机制,为进一步遗传改造提供了材料和知识。本发明所提供的基因也可以用来寻找和发现可用于医药、工业或农业的化合物或基因、蛋白。
附图说明
图1为arylomycin A2及arylomycin A4的化学结构示意图。
图2为本发明的arylomycins A生物合成基因簇结构示意图。
图3为原始菌株及各突变株发酵液HPLC分析结果图。其中,I为原始菌株,II为orf-1敲除突变株,III为orf1敲除突变株,IV为orf2敲除突变株,V为aryA敲除突变株,VI为aryB敲除突变株,VII为aryC敲除突变株,VIII为aryD敲除突变株。
图4为arylomycins A中非天然氨基酸HPG的生物合成途径示意图。
图5为原始菌株、突变株及HPG补料后各菌株发酵液HPLC分析结果图。其中, I为原始菌株,II为aryF敲除突变株,III为aryG敲除突变株,IV为aryH敲除突变株,V为aryF敲除突变株HPG补料,VI为aryG敲除突变株HPG补料,VII为aryH敲除突变株HPG补料。
图6为arylomycin A2和arylomycin A4的生物合成过程示意图。
具体实施方式
以下通过具体实施例对本发明作进一步说明。应理解,以下实施例仅用于说明本发明,而不用于限定本发明的范围。
本发明所用的菌种为Streptomycesparvus,于2010年07月20日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC),保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏号CGMCC No.4027。
本发明中所涉及的分子生物学操作参照Practical Streptomyces Genetics(Norwich:John Innes Foundation,2000)和《分子克隆:实验室手册》(New York:Cold Spring Harbor Laboratory,2001)等进行。
实施例1、arylomycins生物合成基因簇的克隆
1.1、Streptomyces parvus CGMCC No.4027总DNA提取
将新鲜S.parvus CGMCC No.4027斜面孢子接种到3ml TSB培养基中,28℃,220rpm振荡培养30h。取2ml至2ml离心管中,12000rpm离心10min,用无菌水洗涤一次,菌丝体重悬于250μl SET,并加入溶菌酶至终浓度4mg/ml,37℃水浴40~60min。加入50μl 10%SDS和2.5μl 10mg/ml蛋白酶K,于55℃水浴2h,期间不断震荡。然后加入200μl 5mol/LNaCl和500μl氯仿,混匀,室温放置30min,12000rpm离心15min。取上清,加入1ml异丙醇,12000rpm离心5min,沉淀用70%乙醇洗涤一次并抽干,加入100μl TE缓冲溶液于-20℃保存。
1.2、arylomycins生物合成基因簇的克隆
微生物代谢具有多样性,随着越来越多次级代谢产物生物合成基因簇的获得,发现不同的微生物的基因组中也会含有相同化合物的合成基因簇。如A21978C产生菌Streptomyces roseosporus NRRL 15998虽然没有报道其能够产生核苷肽类抗生素,但在其基因组中发现了类似负责Pacidamycin生物合成的基因簇(Zhang,Ostash et al.2010)。
已知Streptomycesparvus CGMCC No.4027也能够产生A21978C系列物质,另外还发现其可以产生arylomycins类代谢产物。在对已经公开的A21978C产生菌Streptomyces roseosporus NRRL15998的基因组进行分析的过程中,发现基因 SSGG_05586-SSGG_05590编码非核糖体肽合成酶(NRPS),其中模块组成、异构化(E)结构域及甲基化(M)结构域与arylomycins结构中肽链组成对应,因此其可能与arylomycins基因簇类似。根据SSGG_05586-SSGG_05590上下游序列,利用Vector NTI软件设计引物,以1.1中制备的S.parvus CGMCC No.4027染色体为模板逐段PCR。
PCR反应体系(50μl)包括PrimerSTAR HS DNA聚合酶(2.5U/μl)0.5μl、2×GC缓冲液25μl、dNTP(浓度各为2.5mM)4μl、引物(20mM)各0.5μl、Streptomyces parvus CGMCC No.4027总DNA 1μl、dH2O 18.5μl。反应条件为:94℃预变性3min;94℃变性1min,58~68℃复性30s,72℃延伸2.5min,共30个循环;最后72℃延伸10min。
低熔点胶回收预期大小DNA片段,与pMD18-T simple Vector连接,转化E.coli DH5α,涂布于含有100μg/ml氨苄青霉素的LB平板上,37℃培养。挑取单菌落过夜培养,抽提质粒,根据大小将可能含有预期大小DNA片段的质粒测序。
引物序列及PCR产物大小如表1所示。最终将所得16个片段拼接起来,所得序列总长为39503bp,GC含量为71.9%。核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
表1、引物序列及PCR产物大小
实施例2、arylomycins生物合成基因簇功能分析
通过生物信息学分析,所得序列共包含17个开放阅读框,如图2所示。包含3个功能未知基因(orf-1、orf-2、orf-3),3个NRPS基因(aryA、aryB、aryD),1个后修饰基因(aryC),3个前体合成基因(aryF、aryG、aryH),1个MbtH基因(aryE),2个ABC转运相关基因(orf1、orf2),3个与细菌外被膜形成相关基因(orf3、orf4、orf5),详细分析结果如表2所示。
表2、arylomycins生物合成基因簇生物信息学分析
实施例3、arylomycins A生物合成基因簇边界确定
3.1、S.parvus CGMCC No.4027遗传转移系统的建立
将含有待接合转移质粒的E.coli ET1256737℃过夜培养,取200μl菌液至装有20ml LB培养基的250ml三角瓶中,37℃培养3~4h至OD600达到0.5左右。然后将菌液转移至50ml离心管中4000rpm离心5min收集菌体,并用等体积的新鲜LB洗涤两次,然后重悬于2ml LB中,作为大肠杆菌供体细胞。取-70℃保存的S.parvus CGMCC No.4027孢子悬液一管8000rpm离心2min,去上清,用1ml的2×YT培养基洗涤两次,重悬于500μl 2×YT培养基中,50℃水浴10min。待冷却后加入500μl大肠杆菌供体细胞,混匀,涂布于含有10mM MgCl2的MS平板上,28℃培养16~20h。在平板表面覆盖1ml无菌水(含0.5mg/ml萘啶酮酸和1mg/ml安普霉素),用涂布棒涂匀并吹干,28℃培养3~4天。挑取接合子进行筛选验证。
3.2、基因orf-1缺失突变株的构建
设计引物orf-1_u-F(5’-aagcttgacacgttgcccggcaagag-3’)、orf-1_u-R(5’-ctgcagaccccgtcggcaacttcgtc-3’),和引物orf-1_d-F(5’-ctgcagcgaagctcaaggaatccgac-3’)、orf-1_d-R(5’-gaattcagctgacgcagacgctgac-3’)分别PCR扩增orf-1的上、下游片段orf-1_u、orf-1_d。PCR产物回收后分别与pMD18-T载体连接,转化E.coli DH5α提取质粒并测序验证。然后pMD18-T-orf-1_u质粒经HindIII和Pst I酶切,回收orf-1_u片段;pMD18-T-orf-1_d质粒用Pst I和EcoR I酶切,回收orf-1_d片段;orf-1_u、orf-1_d与经过HindIII和EcoR I酶切的pKC1139连接得到重组质粒pKC1139-orf-1_u-orf-1_d。重组质粒转化E.coli ET12567后按3.1中所述接合转移方法导入S.parvus CGMCC No.4027。
挑取接合子至含50μg/ml安普霉素的MS平板37℃培养2~3天。然后挑取单菌落接种于液体TSB培养基,28℃培养三代。菌液适当稀释后涂布于MS平板,挑选对安普霉素敏感的单菌落,利用引物orf-1-F(5’-ccttccgcgagatcttcgatcttc-3’)、orf-1-R(5’-gattccttgagcttcgccgcag-3’)进行PCR验证。
3.3、基因orf1和orf2缺失突变株构建
基因orf1和orf2缺失突变株的构建方法与3.2中orf-1缺失突变株的构建方法相同,只是所用引物不同,具体情况如表3所示。
表3、基因orf1和orf2缺失突变株构建和验证引物
3.4、S.parvus CGMCC No.4027及相关突变株液体发酵及HPLC分析
3.4.1、液体发酵
将S.parvus CGMCC No.4027及相关突变株的新鲜斜面孢子(高氏一号斜面培养基)接种于种子培养基(葡萄糖1%,糊精4%,黄豆饼粉2%,磷酸二氢钾0.02%,氯化钠0.25%,pH 7.3~7.5),28℃,220rpm振荡培养44h。然后以8%接种量转入液体发酵培养基(黄豆饼粉2.2%,糊精3.6%,葡萄糖0.8%,磷酸二氢钾0.02%,pH 7.3~7.5),28℃,220rpm振荡培养5天。
3.4.2、发酵液处理
取800μl 3.4.1中获得的发酵液,然后加入等体积的无水甲醇,混匀,4℃放置30min,12000rpm离心15min。取上清进行HPLC分析。
3.4.3、HPLC分析
对3.4.2中获得的发酵液进行HPLC分析,具体条件如下:
流动相:A相:乙腈-缓冲液(10∶90)
B相:乙腈-缓冲液(45∶55)
缓冲液:0.5%(NH4)H2PO4
分析用柱:Hypersil C18,4.6×250mm,5μm
柱温:30℃
检测波长:223nm
流速:1.5mL/min
梯度条件如表所示:
时间(min) | 0 | 15 | 17 |
A% | 25 | 0 | 0 |
B% | 75 | 100 | 100 |
3.5、arylomycins A生物合成基因簇边界确定
根据基因编码的蛋白功能分析,arylomycins A生物合成基因簇左侧边界研究集中在aryA基因上游,orf-1、orf-2、orf-3编码3个未知功能蛋白,和原始菌株相比(图3I),对orf-1基因的敲除不影响arylomycins合成(图3II),表明其与arylomycins生物合成无关。arylomycins的生物合成基因簇右侧边界研究集中在aryH下游,orf1、orf2分别编码ABC转运ATP结合蛋白、ABC转运透性酶,orf1、orf2敲除后,影响到其它化合物的合成,其中orf1突变株很多化合物不能合成(图3III),而orf2突变株很多化合物的产量降低(图3IV),同时突变株的色素产量提高,产孢能力减弱。因此orf1、orf2两个基因并非仅仅与arylomycins相关,排除在基因簇之外。orf3、orf4、orf5三个基因分别编码分泌蛋白、聚γ谷氨酸合成蛋白PgsC、荚膜合成蛋白CapB,它们与细菌外被膜的形成有关,而与arylomycins合成无关。因此,最终将arylomycins A生物合成基因簇确定为aryA-aryH,共8个开放阅读框。
实施例4、arylomycins A生物合成基因簇中功能基因的鉴定
arylomycins A生物合成基因簇包含aryA-aryH共8个基因,其中3个NRPS基因(aryA、aryB、aryD)分别编码非核糖体肽合酶NRPS,负责arylomycins中非核糖体合成六肽(D-Me-Ser-D-Ala-Gly-L-Me-Hpg-L-Ala-L-Tyr)的合成;3个前体合成基因(aryF、aryG、aryH)分别编码羟基扁桃酸合酶Hmas、羟基扁桃酸氧化酶Hmo、羟基苯甘氨酸氨基转移酶HpgT,负责非天然氨基酸对羟基苯甘氨酸(HPG)的合成;1个后修饰基因(aryC)编码P450酶,负责甲基HPG与Tyr酪氨酸之间联芳键的合成。
另外,基因簇中还有1个编码MbtH家族蛋白基因(aryE),MbtH家族蛋白通常与NRPS连锁,具有反式互补特性,其中一个MbtH敲除后会被基因组其它位置编码的 相应蛋白互补。Felnagle E.A等研究表明MbtH蛋白可能影响氨基酸的活化,是NRPS的构成部分(Felnagle,Barkei et al.2010)。为了确定除了aryE以外的aryA-aryD和aryF-aryG确实负责arylomycins A的生物合成,按照3.2中所述的方法构建基因aryA、aryB、aryC、aryD、aryF、aryG、aryH缺失突变株,引物如表4所示。
表4、基因aryA-aryD和aryF-aryH缺失突变株构建和验证引物
按照3.4中所述的方法检测野生菌株和各缺失突变株的发酵产物,发现当aryA(图3V)、aryB(图3VI)、aryC(图3VII)、aryD(图3VIII)、aryF(图5II)、aryG(图5III)、aryH(图5IV)基因阻断后影响到菌株arylomycin A2和arylomycin A4的产生,进一步证明得到的基因簇为arylomycins A生物合成基因簇。
实施例5、Arylomycins A中非天然氨基酸HPG的生物合成
在arylomycins A生物合成基因簇中,aryF、aryG、aryH分别编码羟基扁桃酸合酶(Hmas)、羟基扁桃酸氧化酶(Hmo)、羟基苯甘氨酸氨基转移酶(HpgT)。arylomycin中HPG的生物合成途径如图4所示。4-羟基丙酮酸在Hmas的作用下氧化脱羧产生4-羟基扁桃酸,4-羟基扁桃酸被Hmo氧化生成4羟基苯乙醛酸,然后通过HpgT转氨作用生成对羟基苯甘氨酸。
aryF、aryG、aryH基因敲除后,菌株不能产生arylomycin A2和arylomycin A4。当在发酵液中外源添加HPG时,aryF(图5V)、aryG(图5VI)、aryH(图5VII)基因突变菌株恢复产生arylomycin A2和arylomycin A4,进一步证明了aryF、aryG、aryH编码蛋白AryF、AryG、AryH负责非天然氨基酸HPG的生物合成。
实施例6、arylomycins A骨架合成及后修饰反应
在arylomycins A生物合成基因簇中有三个基因(ayrA、aryB、aryD)负责编码arylomycins骨架组装相关的非核糖体肽合成酶NRPS(AryA、AryB、AryD),NRPS由多模块组成,模块的特异性结构域具有特定的活性。AryA含有1个结构域(C);AryB含有两个模块M1(C-A-M-T-E)和M2(C-A-T-E),共9个结构域;AryD含有4个模块M3*(A-T)、M4(C-A-M-T)、M5(C-A-T)和M6(C-A-T-Te),共13个结构域;其中AryA编码的C结构域与M3*(A-T)相互作用够成一个完整的模块M3(C-A-T)。模块M1-M6中的A结构域分别负责Ser、Ala、Gly、Hpg、Ala、Tyr的腺苷酰化激活和装载,模块M1和M4中的M结构域负责Ser和Hpg的N-甲基化修饰,模块M1和M2中的E结构域分别负责Ser、Ala的异构化。M1为起始模块,其中的C结构域将活化的脂肪酸链与第一个氨基酸D-Me-Ser通过酰胺键连接。然后,延伸模块通过各自的C结构域与上游的酰基发生缩合组装成arylomycin A骨架,最终通过模块M6中的Te结构域将其从NRPS上分离下来。游离线性脂肽中的HPG和Tyr进一步在AryD的催化作用下形成联芳键产生完整的arylomycins化合物。整个过程如图6所示。
Claims (10)
1.抗生素arylomycins A的生物合成基因簇,其特征在于,所述基因簇包含8个基因:
aryA编码非核糖体肽合成酶NRPS;
aryB编码非核糖体肽合成酶NRPS;
aryC编码P450酶;
aryD编码非核糖体肽合成酶NRPS;
aryE编码MbtH家族蛋白;
aryF编码羟基扁桃酸合酶Hmas;
aryG编码羟基扁桃酸氧化酶Hmo;
aryH编码羟基苯甘氨酸氨基转移酶HpgT。
2.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryA位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第3739-5493个碱基处,长度为1755个碱基对,编码584个氨基酸。
3.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryB位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第5481-15938个碱基处,长度为10458个碱基对,编码3485个氨基酸。
4.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryC位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第16567-17736个碱基处,长度为1170个碱基对,编码389个氨基酸。
5.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryD位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第17795-30688个碱基处,长度为12894个碱基对,编码4297个氨基酸。
6.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryE位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第30714-30935个碱基处,长度为222个碱基对,编码73个氨基酸。
7.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryF位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第30983-32047个碱基处,长度为1065个碱基对,编码354个氨基酸。
8.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryG位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第32044-33159个碱基处,长度为1116个碱基对,编码371个氨基酸。
9.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因aryH位于SEQ IDNO:1所示的核苷酸序列的第33152-34501个碱基处,长度为1350个碱基对,编码449个氨基酸。
10.如权利要求1所述的基因簇,其特征在于,所述基因簇的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
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US20030211567A1 (en) * | 2001-07-24 | 2003-11-13 | Ecopia Biosciences, Inc. | Compositions, methods and systems for discovery of lipopeptides |
CN102115757A (zh) * | 2010-12-14 | 2011-07-06 | 中国科学院南海海洋研究所 | 台勾霉素的生物合成基因簇及其应用 |
CN102181390A (zh) * | 2011-03-21 | 2011-09-14 | 北京市农林科学院 | 一株小链霉菌及其应用 |
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2011
- 2011-12-15 CN CN2011104222017A patent/CN103160521A/zh active Pending
Patent Citations (3)
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Non-Patent Citations (1)
Title |
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WEI-TING LIU ET AL.: "Imaging mass spectrometry and genome mining via short sequence tagging identified the anti-infective agent arylomycin in Streptomyces roseosporus", 《JOURNAL OF THE AMERICAN CHEMICAL SOCIETY》, 16 November 2011 (2011-11-16) * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN111575251A (zh) * | 2020-05-29 | 2020-08-25 | 上海交通大学 | 一种用于达托霉素生物合成的dptC1突变体的构建 |
CN111575251B (zh) * | 2020-05-29 | 2022-03-11 | 上海交通大学 | 一种用于达托霉素生物合成的dptC1突变体的构建 |
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