CN103124797A - 用于在相同反应容器内的细胞裂解和pcr的方法 - Google Patents

用于在相同反应容器内的细胞裂解和pcr的方法 Download PDF

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Abstract

本发明一般而言提供了用于扩增靶DNA的方法，其包括步骤（i）将包含至少一个或多个活细胞的具有第一体积的液体转移到容器内，（ii）向所述容器中加入具有第二体积的PCR反应缓冲液，其中所述第二体积是所述第一体积至少2x大，（iii）借助于在至少90℃温育至少1分钟，裂解所述容器内的所述至少一个或多个活细胞，和（iv）借助于聚合酶链反应而不执行中间纯化步骤来扩增所述靶。

Description

用于在相同反应容器内的细胞裂解和PCR的方法
发明领域
本发明涉及借助于PCR的DNA分析领域。更具体而言，本发明提供了新方法以便执行从仅少数细胞的材料开始的DNA分析，以及通过实时PCR对所述样品DNA执行的后续直接分析。
发明背景
在过去数十年中，PCR已成为用于DNA分析的“役用马（working horse）”，因为它允许指数扩增核酸。特别地，实时PCR（也称为qPCR）已成为有力工具，因为它允许同时分析扩增过程中的扩增的核酸，或不含中间空档，通过解链曲线分析直接在扩增反应后分析扩增的核酸。
此外，PCR的自动化已取得显著进展，因为qPCR系统目前是可获得的，其允许以微量滴定板形式平行执行96、384或1536个反应。系统也已变得更加用户友好。例如，微量滴定板是商购可得的，其中每个反应容器已包含冷冻干燥形式的执行PCR扩增或PCR扩增和检测所需的化合物，并且客户仅需要在实际反应自身之前加入包含待分析DNA的样品。替代系统由Advalytics（AG 480F）提供，其使得在载玻片上的PCR扩增和检测成为可能。
然而，进一步改善用于PCR分析的作业流程仍是挑战，特别是如果分析仅可以对源于仅小数目细胞的DNA执行。在常规实时PCR中，DNA或RNA首先在耗时步骤中从细胞分离，其可以导致材料的丢失。在收获后，将细胞裂解并且将DNA至少部分从裂解物中纯化，因为若非如此，PCR扩增可能至少被定量地抑制。
在这个背景中，本发明潜在的技术问题是提供改善和可自动化的高流通量方法，其允许进一步简化的DNA分析方案。
发明概述
本发明提供了用于扩增靶核酸的方法，其包括步骤
a）将包含一个或多个活细胞的具有第一体积的液体样品转移到容器内
b）向所述容器中加入具有第二体积的PCR反应缓冲液，其中所述第二体积是所述第一体积至少2x大
c）通过在至少90℃温育至少30秒，裂解所述容器内的所述一个或多个活细胞
d）通过用热稳定的DNA聚合酶的聚合酶链反应来扩增所述靶，而不执行中间纯化步骤
其特征在于步骤a）至d）在相同容器内执行。
优选地，步骤c）花费至少1分钟。
所述容器可以是例如微量滴定板的孔。所述微量滴定板的所述容器可以包含PCR扩增引物的干燥组合物。此外，所述干燥组合物可以包含至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物。此外，所述干燥的组合物可以另外包含热稳定的DNA聚合酶和dNTPs。
可替代地，所述容器是毛细管或反应管的条的管。
在本发明方法的一个实施方案中，包含至少一个或多个活细胞的所述液体样品已在步骤a）之前通过细胞分选方法获得。
优选地，步骤a）的所述活细胞的数目与在其中执行步骤d）的聚合酶链反应的液体体积相比较的比率不超过2细胞/µl。
如果靶DNA是单拷贝DNA，那么这也在本发明的范围内。
在另一个方面，本发明提供了包含下述的试剂盒
- 设计为适合热循环仪仪器的多个反应容器
- 包含能够执行PCR的热稳定的DNA聚合酶和dNTPs的PCR反应缓冲液。
所述多个反应容器可以以微量滴定板或反应容器的线性条的形式彼此物理连接。
所述反应容器包含至少一对PCR扩增引物，和任选的至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物的干燥组合物。
发明详述
一般来说，本发明提供了允许裂解液体环境中的细胞样品的方法，其随后直接用于通过应用聚合酶链反应的核分析，而无需任何中间纯化步骤或复杂的液体处理程序。更精确而言，本发明提供了用于扩增靶核酸的方法，其包括步骤
a）将包含一个或多个活细胞的具有第一体积的液体样品转移到容器内
b）向所述容器中加入具有第二体积的PCR反应缓冲液，其中所述第二体积是所述第一体积至少2x大
c）通过在至少90℃温育至少30秒，裂解所述容器内的所述一个或多个活细胞
d）通过用热稳定的DNA聚合酶的聚合酶链反应来扩增所述靶核酸，而不执行中间纯化步骤。
根据本发明的一个方面，可能所有步骤a）、b）、c）和d）都在相同反应容器内执行。
靶核酸可以是DNA，即基因组DNA的特定部分。在这种情况下，聚合酶链反应将用DNA依赖性DNA聚合酶例如Taq DNA聚合酶等执行。可以扩增DNA的特定部分，以便鉴定任何类型的基因组变化，例如单核苷酸多态性等。
如由实施例示范的，本发明提供了令人惊讶地可应用于从作为原始样品材料的仅一个单一活细胞开始执行PCR分析的方法。此外，可以重现地扩增且分析来自仅少数细胞或甚至一个单一细胞的单拷贝基因的靶DNA。
靶核酸还可以是用于监控各自RNA表达水平目的的RNA。因此，需要执行RT-PCR反应。在这种情况下，需要用热稳定的聚合酶扩增靶核酸，所述热稳定的聚合酶包含RNA模板依赖性聚合酶活性（逆转录酶活性）和DNA模板依赖性活性。关于这样的酶的显著例子是Tth DNA聚合酶（Roche Applied Science目录号：11 480 022 001），或C. therm聚合酶系统（Roche Applied Science目录号：12 016 346 001）。
步骤a）
根据步骤a）的一个或多个活细胞优选是人、动物或植物起源的真核细胞。细胞可以衍生自细胞系或活组织检查。
含有细胞的液体可以是所述细胞在其中存活至少一定时间段（其优选长于30分钟）的任何液体、血液缓冲液或培养基。这样的液体例如可以是已在其中成功地培养悬浮生活且生长的细胞的培养基。在贴壁细胞的情况下，液体可以是缓冲液，其中细胞已从固体载体脱离。优选地，然而，这样的缓冲液不含任何可能对后续聚合酶介导的PCR扩增反应具有抑制作用的蛋白酶。如果观察到，那么这样的作用可以通过在沉积到容器内之前对细胞实施另外的洗涤步骤得到避免。
液体转移到容器内可以通过首先制备细胞样品的合适的稀释系列且随后将仅一个细胞或几个细胞的等价物移液到所述容器内来手动实现。优选地，转移使用合适的自动化移液站或最优选地细胞分选仪来实现。这样的细胞分选机是本领域众所周知的并且从许多不同制造商商购可得。由于细胞分选仪的基础技术，偶尔发生细胞碎片的大颗粒被细胞分选仪误认为细胞。由于这种作用，在单细胞分析的情况下，一些样品可能在后续PCR反应过程中未给出结果。
优选地，转移至反应容器的细胞数目应是有限的，因为不含任何纯化步骤，以较高浓度的细胞碎片的存在可能抑制后续PCR扩增反应。有利地，转移至反应容器的细胞数目被调整从而使得如下公开的步骤d）以这样的方式执行：样品不超过2细胞当量/μl的比率。
还优选地，转移至反应容器的细胞数目不应太低，因为若非如此可以变得难以执行用于扩增单拷贝基因的PCR反应。因此，转移至反应容器的细胞数目被调整从而使得如下公开的步骤d）以这样的方式执行：样品包含至少1细胞当量/25μl的比率。
液体体积足够小，从而使得在步骤b）中PCR反应缓冲液的添加以及需要时后续PCR反应所需的进一步化合物的添加最终导致对于执行所述PCR仍是合理地小的最终体积。所述体积从不应超过100且决不超过200µl。有利地，所述体积不超过50µl。高度优选的是20 µl或更少的体积，且甚至10 µl。在自动沉积的情况下，含有一个或多个细胞的液体可以是极低的亚µl范围。特别地，如果使用细胞分选仪，那么含有仅一个细胞当量的体积是约小于100 nl。即使在后面一种情况下样品完全干燥，本发明人已证明新方法仍是有效的。在单细胞分析的特定实施方案中，最终体积优选不超过25µl。这仍允许有效的单拷贝基因扩增。
反应容器可以是可以在其中执行PCR反应的任何类型的反应容器。因此，唯一的基本限制是容器具有足够的耐热性，因为在PCR热循环方案过程中，它将变得反复暴露于90℃或以上的高温。
在一个实施方案中，反应容器是微量滴定板的孔，其适合于或设计为置于热循环仪仪器内。这允许以高度平行方式对许多样品执行本发明的方法。包含24、96、384和1536个孔的微量滴定板是本领域已知的，并且从许多不同供应商商购可得。本领域可获得的微量滴定板允许至少2 µl的反应体积。通过将其置于合适的加热器上，或可替代地直接置于设计为并入微量滴定板的PCR热循环仪内，可以对这样的微量滴定板实施至少90℃的高温。
在第二实施方案中，反应容器可以是单个反应管或其为反应管的条的部分反应管，其彼此连接，从而使得它们可以共同置于热循环仪仪器的加热器内。在进一步实施方案中，反应容器是特定的毛细管，其可以置于毛细管LightCycler仪器（Roche Applied Science目录号. 023 531 414 001）内。
步骤b）
在本发明的上下文中，在本发明的步骤b）时加入的“PCR反应缓冲液”的术语应理解为样品在其中以后可以被实施PCR反应的任何液体，而无需任何中间纯化步骤。加入的PCR反应缓冲液的所述第二体积应是第一体积的至少两倍（2x）大且优选5倍（5x）大。这允许在后续PCR反应过程中靶核酸的有效扩增。
在一个实施方案中，“PCR反应缓冲液”已含有对于执行PCR反应所需的所有化合物，其为热稳定的DNA聚合酶、脱氧核苷三磷酸（dNTPs）的混合物。“PCR反应缓冲液”还可以包含合适的pH缓冲化合物（例如Tris）、Mg2+盐、热启动组分等。
在进一步实施方案中，“PCR反应缓冲液”还可以包含至少一对合适的扩增引物。在特定实施方案中，“PCR反应缓冲液”可以另外已包含实时监控靶DNA扩增所需的化合物。特别地，这些化合物是荧光杂交探针或双链DNA结合染料。多种可能的检测形式的细节将在下文讨论。
可替代地，如果上述组分中的一些、任何或所有或任何其他另外化合物在裂解步骤c）后，但在执行根据步骤d）的实际扩增反应前加入，那么这也在本发明的范围内。因此，本发明还明确包含这样的实施方案，其中根据如本发明背景中使用的含义的“PCR反应缓冲液”仅仅是水。
步骤c）
根据本发明，细胞的裂解在PCR反应缓冲液内发生，而无需任何先前添加的本领域常规使用的特定裂解步骤试剂。相反，一个或多个活细胞的裂解通过将样品在至少90℃温育至少60秒的时期发生。通常，30秒的高温温育时期对于中等数目的细胞（不超过64个细胞）的完全裂解是足够的，使得单拷贝基因的后续扩增和检测成为可能。然而，如果所述时期延长到高达30但优选不超过15分钟的时期且最优选不超过3分钟，那么这也在本发明的范围内。在大部分条件下，如果所述时期是至少1分钟，那么就获得极佳结果。
用于细胞裂解的温度不应超过100℃且优选是95℃或更低，因为在更高温度，反应缓冲液中含有的后续PCR反应所需的组分被破坏的风险增加。例如，即使热稳定的DNA聚合酶例如Taq DNA聚合酶在超过100℃也基本上变得变性或降解。
步骤d）
如由实施例证明的， PCR反应可以使用裂解物直接执行，而无需中间纯化步骤。然而，取决于实施方案，如果所述PCR反应所需的另外化合物在裂解后加入样品中，那么这也在本发明的范围内。
因为本发明可应用于分析源于仅极少数或甚至单个细胞的核酸，所以如果考虑在分析的细胞数目和在其中发生根据步骤d）的实际PCR反应的体积之间的比率，那么对于根据本发明的实验设计是有利的。一方面，如果将分析这样的少量起始材料，那么PCR反应应以最小体积执行，以便达到最佳灵敏度。因此，已经证明步骤a）的所述细胞数目与在其中执行步骤d）的聚合酶链反应的液体体积相比较的比率是至少1细胞/20µl PCR反应体积是有利的。
另一方面，因为不存在中间纯化步骤，所以裂解的样品将含有细胞碎片，其可能干扰PCR反应的效率。在这个背景中，已证明步骤a）的所述活细胞或细胞等价物的数目与在其中执行步骤d）的聚合酶链反应的液体体积相比较的比率是不超过2细胞/µl是有利的。甚至更有利的是在1细胞/25µl和2细胞/µl之间的比率。如已经实验测定的，在这个范围内的比率使得对源于仅1个单一细胞以及高得多的细胞数目的DNA的单拷贝分析成为可能。
PCR反应可以是常规PCR反应，其中所述组包含靶DNA、dNTPs、DNA聚合酶（其优选DNA依赖性DNA聚合酶）、合适的pH缓冲系统例如Tris和一些其他辅助化合物例如Mg2+盐等。
在特定实施方案中，聚合酶也可以是热稳定的DNA聚合酶，其也能够执行1步RT PCR以便使用本创造性的方法用于监控基因表达。
扩增DNA的分析随后通常借助于凝胶电泳来实现。然而，在一个实施方案中，PCR反应可以是实时PCR反应，其中扩增的进展使用例如下述检测形式中的任何连续监控：
- TaqMan水解探针形式：
单链杂交探针用两种组分标记。当第一种组分用合适波长的光激发时，根据荧光共振能量转移的原理，将吸收的能量转移至第二种组分，所谓的猝灭剂。在PCR反应的退火步骤过程中，杂交探针与靶DNA结合，并且在后续延伸期过程中通过Taq聚合酶的5’-3’外切核酸酶活性降解。因此，激发的荧光组分和猝灭剂在空间上彼此分开，并且因此可以测量第一种组分的荧光发射。TaqMan探针测定详细公开于US 5,210,015、US 5,538,848和US 5,487,972中。TaqMan杂交探针和化合物混合物公开于US 5,804,375中。
在特定实施方案中，Taqman杂交探针是如可从roche Applied Sciences获得的来自Universal Probe Library的UPL探针（目录2010/2011，第577页）。
- 分子信标：
这些杂交探针也用第一种组分和猝灭剂标记，标记优选位于探针的两个末端处。由于探针的二级结构，两种组分在溶液中空间接近。在与靶核酸杂交后，两种组分彼此分开，从而使得在用合适波长的光激发后，可以测量第一种组分的荧光发射（US 5,118,801）。
- FRET杂交探针：
FRET杂交探针测试形式对所有种类的同质杂交（homogenous hybridization）测定尤其有用（Matthews，J.A.和Kricka，L.J.，Analytical Biochemistry 169（1988）1-25）。它的特征在于两种单链杂交探针，其同时使用且与扩增的靶核酸的相同链的邻近位点互补。两种探针都用不同荧光组分标记。当用合适波长的光激发时，根据荧光共振能量转移的原理，第一种组分将吸收的能量转移至第二种组分，从而使得当两种杂交探针都与待检测的靶分子的邻近位置结合时，可以测量第二种组分的荧光发射。作为监控FRET受体组分的荧光中的增加的替代，还可以监控FRET供体组分的荧光减少作为杂交事件的定量测量。
特别地，FRET杂交探针形式可以用于实时PCR中，以便检测扩增的靶DNA。在本领域已知的实时PCR的所有检测形式中，FRET-杂交探针形式已证明是高度灵敏、确切和可靠的（WO 97/46707；WO 97/46712；WO 97/46714）。作为使用两种FRET杂交探针的替代，还可以使用荧光标记的引物和仅一种标记的寡核苷酸探针（Bernard，P.S.，等人，Analytical Biochemistry 255（1998）101-107）。在这点上，可以任意选择，无论引物是用FRET供体还是用FRET受体化合物标记。
- 双链DNA结合染料形式
如果在使用双链核酸结合部分检测扩增产物的情况下，实时PCR在根据本发明的添加剂的存在下执行时，那么这也在本发明的范围内。例如，各自扩增产物也可以根据本发明通过荧光DNA结合染料进行检测，其在与双链核酸相互作用后用合适波长的光激发后发出相应荧光信号。染料SybrGreenI和SybrGold（Molecular Probes）频繁用于本领域中。另一种特别有用的染料是LightCycler 480 Resolight染料（Roche Applied Science目录号：04 909 640 001）。
- 解链曲线分析
由于用SybrGreen形式的实时扩增子检测不能区分特异性产物和扩增人为产物例如引物/二聚体的事实，所以通常执行后续解链曲线分析。在PCR反应完成后，将样品的温度恒定地（constitutively）增加，并且只要SybrGreen与样品中存在的双链DNA结合，就检测到荧光。在双链DNA解离后，信号立即降低。这种降低用合适的荧光与温度时间比较的曲线图进行监控，从而使得可以测定一次导数值，在其下观察到最大限度的荧光降低。因为引物/二聚体双链DNAs通常很短，所以与双链特异性扩增产物的解离相比较，解离成单链DNA在更低温度下发生。
此外，分子信标和FRET杂交探针也用于解链曲线分析。在PCR反应完成后，将样品的温度恒定地增加，并且只要杂交探针与靶DNA结合，就检测到荧光。在解链温度，杂交探针从其靶中释放，并且荧光信号立即降至本底水平。这种降低用合适的荧光与温度时间比较的曲线图进行监控，从而使得可以测定一次导数值，在其下观察到最大限度的荧光降低。
热启动PCR
PCR反应设置可以含有一些化合物，其提供热启动效应，即在环境温度抑制偶尔导致非特异性扩增产物例如引物二聚体形式的非特异性引物退火和后续延伸。在温度增加后，由于热启动化合物从任何结合配偶体中释放，这种抑制变得被消除，结果是热稳定的DNA聚合酶变得热活化且可以发生特异性聚合酶催化的引物延伸。这样的化合物的许多例子是本领域已知的。具体例子在US 5,338,671中给出，其公开了Taq聚合酶抗体作为热启动化合物。这样的热启动化合物的更多近期例子公开于EP 1 989 324 A和EP 2 163 556中。
所述热启动化合物可以在裂解后连同聚合酶和任何其他PCR化合物一起在步骤d）之前加入样品中。然而，优选地，所述热启动化合物已包括在“PCR反应缓冲液”内，其在步骤b）过程中加入。因此，热稳定的DNA聚合酶的热活化可以已通过在步骤c）过程中在至少90℃温育来达到。
在特定实施方案中，DNA聚合酶由于化学修饰导致可逆地灭活。更精确而言，将不耐热的封闭基团引入Taq DNA聚合酶内，其致使酶在室温失活（US 5,773,258）。这些封闭基团在PCR前步骤过程中在高温去除，从而使酶变得活化。这样的不耐热的修饰例如可以通过将柠康酸酐或乌头酸酐（Aconitric Anhydride）与酶的赖氨酸残基偶联来获得（US 5,677,152）。携带这样的修饰的酶同时作为Amplitaq Gold（Moretti，T.，等人，Biotechniques 25（1998）716-22）或FastStart DNA聚合酶（Roche Applied Sciences目录号：12 032 902 001）是商购可得的。添加作为“PCR反应缓冲液”的部分的FastStart DNA聚合酶和在裂解步骤c）过程中的后续活化已证明是本发明的特别有效的实施方案。
包含PCR试剂的干燥组合物的微量滴定板
如上公开的，可以使用微量滴定板，以便执行根据本发明的方法。如果是这种情况，那么微量滴定板的每个容器或反应孔可以已在其表面上包含试剂的干燥组合物，所述试剂是后续PCR所需的。主混合物的干燥组合物通过在步骤b）中添加“PCR反应缓冲液”得到重溶（resolved）。在这种情况下，“PCR反应缓冲液”不包括其为干燥组合物的部分的任何试剂。
在本发明的背景中，短语“干燥组合物”用于强调溶剂，优选含水溶剂的量减少低于5重量%。
例如，这样的干燥组合物可以包含一对扩增引物或仅由一对扩增引物组成。微量滴定板的每个孔可以包含相同的扩增引物对，从而使得多重样品的平行分析成为可能，或基本上每个孔可以包含不同的扩增引物对，从而使得一个或仅少数不同样品的多参数分析成为可能。当然，板的布局也可以根据该两个概念的混合以及用于一式两份、一式三份或一式四份分析进行设计。用于产生核酸例如PCR扩增引物的干燥组合物的方法是本领域众所周知的，并且包括但不限于冷冻干燥、冻干（lyophyllization）或真空干燥的方法。WO 2008/36544描述了所谓的填充剂材料的使用，以便提供干燥的组合物，所述填充剂材料是例如碳水化合物例如FICOLL™、蔗糖、葡萄糖、海藻糖、松三糖、DEXTRAN™或甘露醇，蛋白质例如BSA、明胶或胶原，和聚合物例如PEG或聚乙烯吡咯烷酮（PVP）。已公开了冷冻干燥（US 5,593,824）或真空干燥（US 5,565,318）用于干燥碳水化合物聚合物基质中的生物学材料。
此外，这样的干燥组合物可以任选包含至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物，以便使得实时PCR监控成为可能。此外，所述干燥的组合物可以另外包含热稳定的DNA聚合酶和/或dNTPs。
生产包含蛋白质或酶的干燥组合物的几种方法也在本领域中得到公开。冻干或冷冻干燥是针对蛋白质贮存的充分建立的技术，其公开于许多最新水平的文件中（例如Passot，S.，等人，Pharmaceutical Development and Technology 12（2007）543-553；Carpenter，J.F.，等人，Pharmaceutical Research 14（1997）969-975；Schwegman，J.J.，等人，Pharmaceutical Development and Technology 10（2005）151-173）。特别地，US 7,407,747公开了Taq聚合酶可以在由缓冲溶液、核苷酸、BSA和海藻糖组成的混合物中干燥。此外，US 2010/0159529公开了将适体添加至液体溶液增强Taq聚合酶的稳定性，其中所述稳定作用不仅对于干燥而且对于贮存干燥的混合物是足够好的。
如技术人员应当理解的，公开的方法包含许多变化。例如，如果干燥组合物仅包含扩增引物，那么包含热稳定的DNA聚合酶、dNTPs和扩增所需的所有其他PCR化合物的PCR主混合物可以在步骤b过程中作为“PCR反应缓冲液”加入。任选地，“PCR反应缓冲液”或PCR主混合物可以另外包含用于实时监控扩增的工具，例如荧光标记的杂交探针，或可替代地，荧光双链DNA结合染料。
在另一个例子中，干燥组合物可以包含PCR扩增所需的所有化合物，即至少一对扩增引物、热稳定的DNA聚合酶、dNTPs和任选的至少一种荧光标记的杂交探针或荧光双链DNA结合染料。随后，步骤b）的“PCR反应缓冲液”可以仅仅是水，或需要时可以包含另外的辅助化合物例如pH缓冲系统（例如Tris盐）、Mg2+盐等。
根据本发明的试剂盒
本发明还提供了用于执行实时PCR分析的新型试剂盒。试剂盒包含试剂组分和一次性使用的组分，其一起可以用于且特别适合于上文公开的任何方法中。
因此，这样的试剂盒包含设计为适合热循环仪仪器的多个反应容器，和包含热稳定的DNA聚合酶的PCR反应缓冲液。因此，这样的试剂盒首次为科学家提供了含有基因表达分析所需的所有试剂和一次性用品的完整集合的有用工具。
优选地，反应容器以微量滴定板的形式彼此物理连接。微量滴定板可以优选是96-、384-或1536-孔微量滴定板。可替代地，所述反应容器以反应容器的线性条的形式彼此物理连接。
在一个实施方案中，所述试剂盒进一步包含至少一对扩增引物，和任选的至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物。这些试剂贮存于分开的容器内且可以在实验开始前加入PCR反应缓冲液中。
在可替代实施方案中，在所述试剂盒内的所述反应容器包含至少一对PCR扩增引物和任选的至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物的干燥组合物。
实施例
实施例1
用于扩增来自分选的小鼠杂交瘤细胞的GAPDH基因和RPLI13A基因的qPCR
限定数目的小鼠杂交瘤细胞使用细胞分选器（Beckton Dickinson，FACS Aria I）沉积到96孔微量滴定板的分开的孔内，方式是以液体束总是定向到孔的中心内。然而，由于细胞分选器的基础技术，不能排除小百分比的分选颗粒不是完整的全细胞而是细胞碎片。因此，在下文中，分选材料的数量将称为细胞当量。
如公开的分选的细胞根据下述吸液方案分配到设计用于LC480实时PCR仪器（Roche Applied Science目录号：05 015 278 001）的96孔微量滴定板（Roche Applied Science目录号：04 729 692 001）内：
第1-4列1细胞当量/孔
第5-6列中2细胞当量/孔
第7-8列中4细胞当量/孔
第9列中8细胞当量/孔
第10列中16细胞当量/孔
第11列中32细胞当量/孔
第12列中64细胞当量/孔
向每个孔中加入含有下述的主混合物：
0.4 µM正向引物agcttgtcatcaacgggaag（SEQ ID NO：1）
0.4 µM反向引物tttgatgttagtggggtctcg（SEQ ID NO：2）
0.2 µM UPL探针（RocheApplied Science目录号：04 685 075 001，No. 9）
1x LC480探针主液（Roche Applied Science目录号：04 902 343 001）
正向和反向引物设计为扩增小鼠GAPDH基因，其已知以高拷贝数存在于小鼠基因组中。
在分开的板上，加入相同主混合物，但引物和探针设计为扩增基因RPLI13A，其仅以12拷贝存在于小鼠基因组中。引物和探针如下：
0.4 µM正向引物catgaggtcgggtggaagta（SEQ ID NO：3）
0.4 µM反向引物gcctgtttccgtaacctcaa（SEQ ID NO：4）
0.2 µM UPL探针（RocheApplied Science目录号：04 686 993 001，No.25）
LightCycler探针主液包含热稳定的FastStart DNA聚合酶，其是化学修饰的热启动酶。借助于通过在高温温育去除所述修饰诱导活化。
qPCR根据以下热循环方案在LC480实时PCR仪器中执行：
预温育: 1x 95oC 10’
变性 45x 95oC 10’’
退火 45x 60oC 30’’
延伸 45x 72oC 1’’
冷却变温速率 2.2oC/s
加热变温速率 4.4oC/s
扩增信号的检测和cp值的计算（低cp值指示高水平的扩增）根据制造商的手册的说明书执行。
下表公开了对于分析的不同细胞数目获得的平均cp值：
如由该表可见的，即使仅1个细胞用作起始材料，也可以检测到源于高拷贝数小鼠GAPDH基因以及仅以12拷贝存在于小鼠基因组中的RPLI13A基因的信号。
此外，可以观察到cp值与细胞数目/孔反相关。因此，可以明显概括得出PCR反应缓冲液的添加和在95℃后续温育10’明显足够以定量方式裂解细胞。
实施例2
用于扩增来自分选的小鼠杂交瘤细胞的Kcnj2基因的qPCR
该实验基本上按照对于实施例1所公开的执行，改变是使用了设计为扩增单拷贝小鼠基因Kcnj2的引物和探针。引物和探针如下：
正向引物ctgtcttgccttcgtgctct（SEQ ID NO：5）
反向引物agcagggctatcaaccaaaa（SEQ ID NO：6）
UPL探针（RocheApplied Science目录号：04 688 996 001，No.76）
该表公开了对经分析的不同细胞数目获得的平均cp值：
Figure 2011800481839100002DEST_PATH_IMAGE004
如由该表可见的，即使仅一个细胞用作起始材料，也可以获得源于单拷贝数小鼠基因Kcnj2的扩增信号。换言之，本发明提供了用于扩增来自单细胞样品的单拷贝基因的技术方案。
此外，可以观察到如果样品源于更高细胞数目例如64个细胞，那么cp值增加。这可以通过下述事实加以解释：由于在95℃在PCR反应缓冲液内的裂解，在给定反应体积内的细胞碎片的浓度增加且因此可以抑制PCR反应的扩增效率。可以得出结论本发明尤其可应用于对源于较低细胞数目的样品进行的PCR。
此外，下表公开了得自个别单细胞样品的cp值：
如由该表可以推断的，在16次平行反应中的约4次中未获得扩增信号。考虑到实施例2的结果，其证明并非每一个单一分选事件都导致单细胞实际分离且递送到反应容器内，这个结果是可解释的。换言之，在一些情况下未观察到扩增信号的事实是由于个别孔不含细胞的事实，而不是由于裂解和扩增程序自身具有一定失败率的事实。
实施例3
使用含有干燥的试剂的微量滴定板，用于扩增来自分选的小鼠杂交瘤细胞的Kcnj2基因的qPCR
该实验基本上按照实施例2所公开的执行，具有下述改变：
将10 µl含有所需引物和探针的溶液填充到微量滴定板的每个孔内。将微量滴定板在25℃和200 mBar下温育12小时，并且随后在25℃和50 mBar下温育4小时，从而使得引物和探针在微量滴定板的每个反应孔的表面上干燥。
随后，如下执行细胞沉积：
第1-6列1细胞当量/孔
第7列中2细胞当量/孔
第8列中4细胞当量/孔
第9列中8细胞当量/孔
第10列中16细胞当量/孔
第11列中32细胞当量/孔
第12列中64细胞当量/孔
在添加20µl主混合物后，执行实时PCR分析。该表公开了对经分析的不同细胞数目获得的平均cp值：
Figure DEST_PATH_IMAGE008
重要的是还要指出对于用于单细胞分析的48个孔中，仅10个扩增反应是阴性的。这些反应未包括到平均cp值的计算内。
实施例4
使用含有干燥的试剂的微量滴定板，用于扩增来自单个小鼠杂交瘤细胞的Kcnj2基因的qPCR
为了分析实际上多少细胞当量的百分比对应于活细胞而非细胞碎片，将3 x 30分选的当量各自沉积到显微镜载玻片上且分别计数。28、28和29个细胞可以通过经由显微镜的目视检查鉴定。这对应于94%活细胞与6 %细胞碎片每细胞当量（分选事件）。
在下文中，实验基本上如对于实施例3公开的在两块微量滴定板上执行，具有如下改变：在两块微量滴定板上，每个反应孔仅含有单细胞当量。结果如下：
Figure DEST_PATH_IMAGE010
结果显示可以根据如由本发明提供的PCR方法执行单细胞分析。此外，如果还预期单细胞分析，那么将引物和探针在微量滴定板的表面上干燥。
实施例5
用于检测ActB、B2M和1表达的1步RT-PCR
如实施例1中公开的将细胞分选且沉积到微量滴定板上，得到小于2 µl的样品体积。
向每个孔中，加入1x LC480 RNA主水解探针（Roche Applied Science目录号 04 991 885 001，含有T.th聚合酶和热启动适体）。
主混合物另外含有下述引物和探针：
第1-2行：ActB的1步RT-PCR
0.4 µM正向引物AAGGCCAACCGTGAAAAGAT（SEQ ID NO：7）
0.4 µM反向引物GTGGTACGACCAGAGGCATAC（SEQ ID NO：8）
0.2 µM UPL探针（RocheApplied Science目录号：56 ）
第3-4行：B2M的1步RT-PCR
0.4 µM正向引物TACGCCTGCAGAGTTAAGCA（SEQ ID NO：9）
0.4 µM反向引物GGTTCAAATGAATCTTCAGAGCA（SEQ ID NO：10）
0.2 µM UPL探针（RocheApplied Science目录号：117）
第5-6行：18s RNA的1步RT-PCR
0.4 µM正向引物GCCGCTAGAGGTGAAATTCTT（SEQ ID NO：11）
0.4 µM反向引物CGTCTTCGAACCTCCGACT（SEQ ID NO：12）
0.2 µM UPL探针（Roche Applied Science目录号：93）
在第一块板上，根据下述热循环方案在LC480实时PCR仪器上执行1步RT-PCR：
预温育: 1x 95oC 30’’
变性 45x 95oC 10’’
退火 45x 60oC 30’’
延伸 45x 72oC 1’’
冷却变温速率 2.2oC/s
加热变温速率 4.4oC/s
在第二块板上，根据包括在61℃的进一步预温育步骤的热循环方案，在LC480实时PCR仪器上执行1步RT-PCR：
预温育: 1x 61oC 3’
预温育: 1x 95oC 30’’
变性 45x 95oC 10’’
退火 45x 60oC 30’’
延伸 45x 72oC 1’’
冷却变温速率 2.2oC/s
加热变温速率 4.4oC/s
扩增信号的检测和cp值的计算（低cp值指示高水平的扩增）根据制造商的手册的说明书执行。
为了证明测量的cp值实际上反映对mRNA表达而不是DNA的检测，随后通过凝胶电泳证实扩增子的正确大小。下表公开了对经分析的不同细胞数目获得的平均cp值：
Figure DEST_PATH_IMAGE012
如由该表可见的，测试的基因的表达可以在源于仅一个细胞用作起始材料的材料中检测到。可以观察到cp值与细胞数目/孔反相关。逆转录步骤在热循环方案的起始变温、退火和延伸步骤过程中发生。
如由该表可以进一步推断的，令人惊讶的是，表达的检测在95℃实际裂解前的在61℃3分钟的预温育步骤的情况下甚至更灵敏。这种正面效果可能是由于小于2 µl的小样品体积导致少数分选细胞的立即干燥和破坏，从而使得细胞RNA变得可用于逆转录反应。
实施例6
对18s靶的DNA PCR和1步RT-PCR之间的比较
根据下述移液方案，如实施例1中公开的将细胞分选且置于微量滴定板上：
对于3块等同的板编号1-3，加入1x LC480 RNA主水解探针（Roche Applied Science目录号 04 991 885 001，含有T.th聚合酶和热启动适体），以便用1步RT PCR反应扩增RNA。引物以这样的方式设计，从而使得在这个反应过程中，RNA及其相应基因组DNA片段是可扩增的。对于第四块板编号4，使用包含热稳定的DNA依赖性DNA聚合酶而不含任何逆转录酶活性的实时现成DNA探针主液（Roche Applied Science目录号：05 502 381 001）。
此外，4个设置含有适合于扩增18s RNA和DNA的下述引物和探针
0.4 µM正向引物GCCGCTAGAGGTGAAATTCTT（SEQ ID NO：11）
0.4 µM反向引物CGTCTTCGAACCTCCGACT（SEQ ID NO：12）
0.2 µM UPL探针（Roche Applied Science目录号：93）
对于第1块板，根据下述热循环方案，在LC480实时PCR仪器中执行具有在61℃的预温育步骤的1步RT PCR：
预变性: 1x 95°C 1’
预温育: 1x 61oC 3’
预温育: 1x 95oC 30’’
变性 45x 95oC 10’’
退火 45x 60oC 30’’
延伸 45x 72oC 1’’
冷却变温速率 2.2oC/s
加热变温速率 4.4oC/s
对于第2和3块板，执行不含在61℃的任何预温育的RT-PCR：
预温育: 1x 95oC 30’’（第2块板）或2’（第3块板）
变性 45x 95oC 10’’
退火 45x 60oC 30’’
延伸 45x 72oC 1’’
冷却变温速率 2.2oC/s
加热变温速率 4.4oC/s
将用于第3块板的相同方案用于第4块板，以便执行不含任何逆转录活性的PCR。
扩增信号的检测和cp值的计算（低cp值指示高水平的扩增）根据制造商的手册的说明书执行。
为了证明测量的cp值实际上反映对mRNA表达而不是DNA的检测，随后通过凝胶电泳证实扩增子的正确大小。下表公开了对经分析的不同细胞数目获得的平均cp值。
Figure DEST_PATH_IMAGE014
如由该表可见的，与来自相应PCR反应的结果相比较，来自RT-PCR的结果提供更低cp值。这指示靶核酸的更高起始浓度，其根据所选择的条件由RT-PCR设置内的各自RNA及其相应基因序列的扩增导致。
当比较具有在61℃3分钟和没有在61℃预温育的RT-PCR结果时，显而易见的是预温育不是必需的，但导致RNA检测的灵敏度增加。如实施例5中公开的，后面一种观察到的效应可能是由于小于2 µl的小样品体积导致少数分选细胞的立即干燥和破坏，从而使得细胞RNA变得可用于逆转录反应。
序列表
<110> Roche Diagnostics GmbH
F. Hoffmann-La Roche AG
<120> 用于在相同反应容器内的细胞裂解和PCR的方法
<130> 27058
<150> EP 10186417.1
<151> 2010-10-04
<160> 12
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 正向引物
<400> 1
agcttgtcat caacgggaag 20
<210> 2
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 反向引物
<400> 2
tttgatgtta gtggggtctc g 21
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 正向引物
<400> 3
catgaggtcg ggtggaagta 20
<210> 4
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 反向引物
<400> 4
gcctgtttcc gtaacctcaa 20
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 正向引物
<400> 5
ctgtcttgcc ttcgtgctct 20
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 反向引物
<400> 6
agcagggcta tcaaccaaaa 20
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 正向引物
<400> 7
aaggccaacc gtgaaaagat 20
<210> 8
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 反向引物
<400> 8
gtggtacgac cagaggcata c 21
<210> 9
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 正向引物
<400> 9
tacgcctgca gagttaagca 20
<210> 10
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 反向引物
<400> 10
ggttcaaatg aatcttcaga gca 23
<210> 11
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 正向引物
<400> 11
gccgctagag gtgaaattct t 21
<210> 12
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<223> 反向引物
<400> 12
cgtcttcgaa cctccgact 19

Claims (13)

1.用于扩增靶核酸的方法，其包括步骤
a）将包含一个或多个活细胞的具有第一体积的液体样品转移到容器内，
b）向所述容器中加入具有第二体积的PCR反应缓冲液，其中所述第二体积是所述第一体积至少2x大，
c）将所述容器在至少90℃温育至少30秒，
d）通过用热稳定的DNA聚合酶的聚合酶链反应扩增所述靶，而不执行中间纯化步骤，
其特征在于步骤a）至d）在同一容器内执行。
2.根据权利要求1的方法，其特征在于所述容器是微量滴定板的孔。
3.根据权利要求2的方法，其特征在于所述微量滴定板的所述容器包含PCR扩增引物的干燥组合物，所述组合物任选包含或者至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物。
4.根据权利要求3的方法，其特征在于所述干燥的组合物另外包含热稳定的DNA聚合酶和dNTPs。
5.根据权利要求1的方法，其特征在于所述容器是毛细管或反应管的条的管。
6.根据权利要求1-5的方法，其特征在于在步骤a）之前包含至少一个或多个活细胞的所述液体样品已通过细胞分选方法获得。
7.根据权利要求1-6的方法，其中步骤a）的所述活细胞的数目与在其中执行步骤d）的聚合酶链反应的液体体积相比较的比值不超过2细胞/µl。
8.根据权利要求7的方法，其中所述比值是至少1细胞/25µl。
9.根据权利要求1-8的方法，其中所述靶DNA是单拷贝DNA。
10.一种试剂盒，其包含
- 设计为适合热循环仪仪器的多个反应容器，
- 包含能够执行PCR的热稳定的DNA聚合酶和dNTPs的PCR反应缓冲液。
11.根据权利要求10的试剂盒，其中所述反应容器包含至少一对PCR扩增引物和任选的或者至少一种标记的杂交探针或双链DNA结合荧光化合物的干燥组合物。
12.根据权利要求10-11的试剂盒，其中所述多个反应容器以微量滴定板或反应容器的线性条的形式彼此物理连接。
13.根据权利要求10-12的试剂盒，其中所述热稳定的聚合酶通过在90℃温育至少1分钟进行热活化。
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