CN103103204A - 一种Bt cry54Ab1操纵子基因及其编码蛋白和应用 - Google Patents

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郑爱萍
李平
关鹏
余宗兰
朱军
邓其明
李双成
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Abstract

本发明提供了一种Bt cry54Ab1操纵子基因及其编码蛋白和应用,所述cry54Ab1操纵子基因的核苷酸序列如SEQ ID No.1所示,或为SEQ ID No.1所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或几个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。所述cry54Ab1操纵子基因编码的Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2可以用于制备Bt杀虫剂,cry54Ab1操纵子基因可以转化棉花、玉米、水稻、蔬菜等农作物,使其具备相应的抗虫活性,从而降低农药的使用量,减少环境污染,具有重要的经济价值和应用前景。

Description

一种Bt cry54Ab1操纵子基因及其编码蛋白和应用
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及一种Bt cry54Ab1操纵子基因及其编码蛋白和应用。 
背景技术
在人类生产过程中,虫害是造成农业生产损失及影响人类健康的重要因素。多年来,对农作物害虫及蚊虫普遍采用化学防治手段进行防治,但由于化学农药的长期、大量使用,造成了对环境的污染,农副产品中农药残留量增加,给人类的生存和健康带来了危害。此外,化学农药在杀灭害虫的同时,也杀伤了天敌及其它有益物,破坏了生态平衡。与化学防治相比,生物防治具有安全、有效、持久的特点。并且避免了化学防治带来的一系列问题。因此,生物防治技术成了人们研究的热点。在生物杀虫剂中,苏云金芽孢杆菌是目前世界上用途最广、产量最大的一类微生物杀虫剂。 
苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis,简称Bt)是一种革兰氏阳性细菌,它的分布极为广泛,在芽孢形成的同时可形成具有杀虫活性的由蛋白质组成的伴胞晶体,又名杀虫晶体蛋白(Insectididal crystal proteins,简称ICPs),ICPs是由cry基因编码的,对敏感昆虫有强烈毒性,而对高等动物和人无毒性。近几十年来,Bt已广泛应用于控制多种鳞翅目、双翅目、鞘翅目等害虫。此外,Bt还对膜翅目、同翅目、直翅目、食毛目等多种害虫及植物病原线虫、螨类、原生动物有控害作用。目前在农田害虫、森林害虫及卫生害虫的防治中Bt已成为化学合成农药的有力替代品,Bt还是转基因抗虫工程植物重要的基因来源。 
自1981年Schnepf从菌株HD-1中克隆了第一个能表达杀虫活性的基因以来,人们已经分离克隆了630多种编码杀虫晶体蛋白的基 因,根据编码的氨基酸序列同源性它们被分别确定为不同的群、亚群、类和亚类(Crickmore N,et al.Microbiol Mol Biol Rev,1998,62:807-813;http://www.biols.susx.ac.uk/Home/Neil_Crickmore/Bt/)。现在已经分离克隆了72个类群的杀虫蛋白。一般而言,Cry蛋白都是由单个操纵元编码的,如Cry1,Cry2,Cry3,Cry4和Cry9等毒蛋白,这些基因编码的杀虫晶体蛋白分子量为130-140kD;Cry54和Cry56等基因编码的杀虫晶体蛋白分子量为70-80kDa。随着对Bt杀虫基因研究的深入,一些具有两个操纵元编码的杀虫基因蛋白被予以发现,在这些cry基因当中,有一些类型cry基因与其序列后面的具有相同编码方向的orf2基因组成一个cry操纵子基因。这些cry操纵子基因由3部分组成,第一部分为一个cry基因编码60-80kDa Cry蛋白,第二部分为一个orf2基因编码50-60kDa Orf2蛋白,以及位于两者之间一个约为30-80bp非编码的间隔序列。在以前的研究中,有些研究者认为orf2具有稳定cry mRNA的作用,或者其编码的Orf2蛋白可能作为一个分子伴侣,有助于cry蛋白晶体的形成(Rosso ML,1997.Appl Environ Microbiol63:4449-4455);有些研究者则认为Orf2蛋白对于稳定晶体构型具有重要的作用(J.Eleazar Barboza-Corona,2012.Appl Environ Microbiol 78(6):2005-2012)。Orf2蛋白与Cry1、Cry4、Cry7、Cry8、Cry9等大分子量Cry蛋白的C端相类似,因此一些大分子的cry基因在进化过程中由于基因突变等因素造成完整的基因序列被分为两部分,形成由两个基因组成的cry基因操纵子(Thorne L,1986.J Bacteriology.166:801–811)。 
分子伴侣是细胞中一大类蛋白质,是一类在序列上没有相关性但有共同功能的蛋白质,它们在细胞内帮助其他含多肽的结构完成正确的组装,但不构成这些蛋白质结构执行功能时的组份。 
一般而言,Cry1,Cry2和Cry9等毒蛋白对鳞翅目害虫有效;其中研究的最多的是Cry1和Cry9类蛋白,它们编码的杀虫晶体蛋白分子 量为130-140kDa,许多基因目前已被广泛应用于植物的鳞翅目害虫的防治。苏云金芽胞杆菌以色列亚种(B.thuringiensis subsp.israelensis,简称Bti)产生的毒素蛋白对蚊虫具有很好杀虫活性,被广泛运用于蚊虫的防治。同时,Cyt蛋白具有溶细胞性,对某些Cry蛋白具有增效作用及延缓昆虫的抗性。以Bt杀虫晶体蛋白为基础的杀虫剂的使用已有50多年的历史,最初一直没有检测到昆虫对Bt的抗性,但是,上世纪80年中期开始,抗性问题不断在实验室及田间试验中得到证实(McGaughey,1985.Science.229:193-195),原因主要是持续使用单品种及亚致剂量的Bt以及Bt转基因抗虫植物的应用造成昆虫种群长期受到杀虫剂的选择压力。1985年,McGaughey报道仓库谷物害虫印度谷螟(Plodia interpunctella)在Dipel(Bt subsp.kurstaik HD-1的商品制剂)的选择压力下,繁殖15代后,抗性增加97倍;在高剂量选择压力下,抗性可增加250倍。1990年,在夏威夷首次证实大田中的小菜蛾对Bt杀虫剂产生了明显的抗性(Tabashnik B.E.,et al.1994.Proc.Natl.Acad.Sci.USA.91:4120-4124),上世纪90年代以来,在我国应用Bt杀虫剂时间较长的深圳、广州、上海等地,发现Bt杀虫剂对小菜蛾防治效果明显下降,意味着抗性已经形成(冯夏.1996.昆虫学报,39(3):238-244;Hofte H.,1988.Appl.Environ.Microbiol.54:2010-2017)。目前发现在实验室及田间至少有十几种昆虫对Bt及其杀虫晶体蛋白产生了抗性,用选择压力数学模型预测到,在Bt转基因抗虫植物选择压力的条件下,昆虫将会产生抗性(Schnepf,E.,et al.1998.Mol.Biol.Rev.65(3):775-806)。另外,有研究证明Bti在大田的使用中尚未发现抗性问题,但是蚊虫对其抗性问题不断在实验室中得到证实,这种情况也可能会在大田中出现(Georghiou G P,1997.Applied and Environmental Microbiology,63:1095-1101.)。 
为避免抗性昆虫所造成的损失,许多针对于这个问题的方法被提出来,例如加大使用剂量和多基因协同使用,但是能从根本上解决这 一问题的还是寻找新的、高毒力、宽杀虫谱的Bt基因资源,这对我国的生物防治有着十分重要的意义。 
发明内容
本发明的目的是提供一种Bt cry54Ab1操纵子基因及其编码蛋白和应用。 
本发明的目的是提供一种Bt cry54Ab1操纵子基因,所述cry54Ab1操纵子基因包括一个cry54Ab1基因、一个orf2基因以及它们之间的非编码间隔区,所述cry54Ab1操纵子基因具有(1)或(2)所示的核苷酸序列: 
(1)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列; 
(2)SEQ ID No.1所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或几个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。 
应理解,考虑到密码子的简并性以及不同物种密码子的偏爱性,本领域技术人员可以根据需要使用适合特定物种表达的密码子。 
本发明通过对苏云金芽孢杆菌新菌株MC28(保藏号为CGMCC No.2719)基因组和质粒测序进行研究,发现该菌株存在一个新的cry操纵子基因,设计其全长基因引物,克隆得到cry54Ab1操纵子基因的完整基因序列,其核苷酸序列如SEQ ID No.1所示,全长为3823bp,包括一个2232bp的cry54Ab1基因和一个1524bp的orf2基因以及它们之间67bp的非编码间隔区。分析表明,cry54Ab1操纵子基因GC含量为32.28%。 
其中,所述苏云金芽孢杆菌新菌株MC28分离自四川省沐川原始森林地区土壤中,该菌株已于2008年10月21日在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院,中国科学院微生物研究所,邮编100101)保藏,分类命名为苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis),保藏号为CGMCC No.2719,已在申请号为200910078897.9的发明专利申请中 公开。通过对MC28的毒力测试表明,MC28对鳞翅目害虫、双翅目害虫等均具有极高的毒力。 
其中,所述cry54Ab1操纵子基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,cry54Ab1基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。orf2基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。 
所述cry54Ab1操纵子基因包括编码蛋白Cry54Ab1和Orf2的核苷酸序列。其中,cry54Ab1基因编码743个氨基酸组成的Cry54Ab1蛋白;orf2基因编码507个氨基酸组成的Orf2蛋白。在softberry网站采用bacterial sigma 7.0 promoter程序对该操纵子中的cry基因进行预测表明,在基因编码区上游含有RNA聚合酶活化位点的序列,将其命名为cry54Ab1。 
本发明的目的是提供所述cry54Ab1操纵子基因编码的蛋白。 
本发明的目的是提供一种Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2,其包括蛋白Cry54Ab1和蛋白Orf2,蛋白Cry54Ab1的氨基酸序列如SEQ ID No.4所示,蛋白Orf2的氨基酸序列如SEQ ID No.5所示,蛋白Orf2为蛋白Cry54Ab1的分子伴侣。 
Cry54Ab1和Orf2蛋白的氨基酸组成如表1和表2所示。 
表1 Cry54Ab1蛋白的氨基酸组成 
氨基酸 百分比% 氨基酸 百分比%
Ala(A): 5.38 Met(M): 1.35
Cys(C): 0.94 Asn(N): 10.36
Asp(D): 4.85 Pro(P): 4.71
Glu(E): 3.90 Gln(Q): 4.31
Phe(F): 4.04 Arg(R): 3.90
Gly(G): 5.25 Ser(S): 8.08
His(H): 0.67 Thr(T): 6.59
Ile(I): 8.21 Val(V): 4.31
Lys(K): 5.38 Trp(W): 1.75
Leu(L): 9.83 Tyr(Y): 6.19
表2 Orf2蛋白的氨基酸组成 
氨基酸 百分比% 氨基酸 百分比%
[0024] 
Ala(A): 3.94 Met(M): 4.73
Cys(C): 0.99 Asn(N): 7.50
Asp(D): 6.51 Pro(P): 2.96
Glu(E): 6.71 Gln(Q): 6.31
Phe(F): 2.76 Arg(R): 2.76
Gly(G): 6.31 Ser(S): 7.10
His(H): 3.55 Thr(T): 6.90
Ile(I): 5.92 Val(V): 4.73
Lys(K): 6.11 Trp(W): 1.18
Leu(L): 7.10 Tyr(Y): 5.92
应当理解,本领域技术人员可根据本发明公开的蛋白Cry54Ab1(如SEQ ID No.4所示)和Orf2的氨基酸序列(如SEQ ID No.5所示),在不影响其活性的前提下,取代、缺失或增加一个或几个氨基酸,得到所述蛋白的突变序列。例如在Cry54Ab1的非活性区段,将第707位的Leu替换为Gly,将第645位的Gly替换为Ala,将第740位的Leu缺失,将第732位增加一个Ala或增加Lys,不影响其活性。因此,本发明的Bt蛋白Cry54Ab1(如SEQ ID No.4所示)和Orf2蛋白(如SEQ ID No.5所示)还包括所示氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或几个氨基酸而形成的具有同等功能的氨基酸序列,从而得到具有与Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2同等活性或功能的由Cry54Ab1+Orf2衍生得到的蛋白质。 
本发明的基因和蛋白质可以从Bt菌株MC28中克隆或分离得到,或者通过DNA或肽合成的方法得到。 
本发明的另一目的是提供含有所述基因的重组表达载体。 
以Bt菌株MC28的DNA为模板,以CO-F(如SEQ ID No.6所示)和C-R(如SEQ ID No.7所示)为引物进行扩增,得到cry54Ab1基因,其中,引物CO-F和C-R的序列如下: 
引物CO-F:5’-GCCGGATCCGATGTACAGGTGGGTTCTTGTTAAAC-3’; 
引物C-R:5’-CGCGTCGACTCAATTAATAAATAGATTATTCAC-3’。 
以Bt菌株MC28的DNA为模板,以O-F(如SEQ ID No.8所示)和CO-R(如SEQ ID No.9所示)为引物进行扩增,得到orf2基因,其中,引物O-F和CO-R的序列如下: 
引物O-F:5’-GCCGGATCCGATGTTTACAAGTGGGGCGAAAAAC-3’; 
引物CO-R:5’-CGCGTCGACCTAACTATAATTGCTATCATAGC-3’。 
下划线部分GGATCC为酶切位点BamH I,GTC GAC为酶切位点SalI。 
以Bt菌株MC28的DNA为模板,以上述CO-F和CO-R为引物进行扩增,得到所述Cry54Ab1操纵子基因。 
将cry54Ab1基因、orf2基因和cry54Ab1操纵子基因分别插入到芽胞杆菌-大肠杆菌穿梭表达载体pSTK上,构建得到重组表达载体pSTK-cry54Ab1、pSTK-orf2和pSTK-cry54Ab1-orf2。 
本发明的另一目的是提供含有所述重组表达载体的宿主细胞。 
所述宿主细胞为大肠杆菌或真菌。 
优选地,所述宿主细胞为植物宿主细胞,如棉花、玉米、水稻、蔬菜等农作物。 
本发明还提供了含有Bt蛋白Cry54Ab1的杀虫剂。 
通过发酵含有cry54Ab1基因的表达载体的宿主细胞,得到含有Bt蛋白Cry54Ab1的发酵液,将其制备成杀虫剂,用于农作物害虫的防治。本领域技术人员还可以将上述cry54Ab1基因转化细菌或真菌,通过大规模发酵生产Bt蛋白Cry54Ab1。 
本发明还提供了含有Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2的杀虫剂。 
通过发酵含有cry54Ab1操纵子基因的表达载体的宿主细胞,得到含有Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2的发酵液,将其制备成杀虫剂,用于农作物害虫的防治。本领域技术人员还可以将上述cry54Ab1操纵子基因转化细菌或真菌,通过大规模发酵生产Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2。 
本发明的另一目的是提供上述基因及蛋白的应用。 
本发明还提供了cry54Ab1基因或Bt蛋白Cry54Ab1在制备杀虫剂中的应用。 
本发明还提供了cry54Ab1操纵子基因或Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2在制备杀虫剂中的应用。 
本发明还提供了cry54Ab1基因或Bt蛋白Cry54Ab1在培育转基因植物中的应用。 
本发明还提供了cry54Ab1操纵子基因或Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2在培育转基因植物中的应用。 
本发明还提供了cry54Ab1基因或Bt蛋白Cry54Ab1在提高转基因植物抗虫性中的应用。 
所述应用为将cry54Ab1基因与表达载体连接,得到能够表达Bt蛋白Cry54Ab1的重组表达载体,再通过转基因方法将所述重组表达载体导入植物,得到含有cry54Ab1基因的转化体,表达Bt蛋白Cry54Ab1,提高植物抗虫性。 
将cry54Ab1基因与表达载体可操作地连接,得到能够表达Bt蛋白Cry54Ab1的重组表达载体,进而通过诸如农杆菌介导法、基因枪法、花粉管通道法等转基因方法,将所述重组表达载体导入宿主,得到含有cry54Ab1基因的转化体,例如农作物或者果树等植物,表达Bt蛋白Cry54Ab1,使其具备并提供其抗虫活性。 
本领域技术人员还可以根据本发明公开的cry54Ab1基因,将其转化棉花、玉米、水稻、蔬菜等农作物,使其具备相应的抗虫活性。例如:利用密码子的简并性,将cry54Ab1基因设计具有水稻编号的密码子的基因序列,再将合成的cry54Ab1基因与载体pCAMBIA1300连接,通过农杆菌介导转入到水稻基因组中,从而得到具有抗虫活性的转基因水稻品种。 
本发明还提供了cry54Ab1操纵子基因或Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2 在提高转基因植物抗虫性中的应用。 
所述应用为将cry54Ab1操纵子基因与表达载体连接,得到能够表达Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2的重组表达载体,再通过转基因方法将所述重组表达载体导入植物,得到含有cry54Ab1操纵子基因的转化体,表达Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2,提高植物抗虫性。 
将cry54Ab1操纵子基因与表达载体可操作地连接,得到能够表达Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2的重组表达载体,进而通过诸如农杆菌介导法、基因枪法、花粉管通道法等转基因方法,将所述重组表达载体导入宿主,得到含有cry54Ab1操纵子基因的转化体,例如农作物或者果树等植物,表达Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2,使其具备并提供其抗虫活性。 
本领域技术人员还可以根据本发明公开的cry54Ab1操纵子基因,将其转化棉花、玉米、水稻、蔬菜等农作物,使其具备相应的抗虫活性。例如:利用密码子的简并性,将cry54Ab1操纵子基因设计具有水稻编号的密码子的基因序列,再将合成的cry54Ab1操纵子基因与载体pCAMBIA1300连接,通过农杆菌介导转入到水稻基因组中,从而得到具有抗虫活性的转基因水稻品种。 
本发明的cry54Ab1操纵子基因及其编码蛋白Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2具有如下优点: 
本发明提供的cry54Ab1操纵子基因是一种新的基因,其编码蛋白Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2是一种新的Bt蛋白,具有较好的杀虫活性,将其用于制备转基因植物,能够特异性杀灭害虫,并降低农药的使用量,降低成本,减少环境污染。目前还没有害虫或昆虫对该蛋白产生抗性的报道,因此,本发明的Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2具有重要的经济价值和应用前景,适合大规模应用于提高植物的抗虫性中。 
其中,所述苏云金芽孢杆菌新菌株MC28分离自四川省沐川原始森林地区土壤中,该菌株已于2008年10月21日在中国微生物菌种 保藏管理委员会普通微生物中心(简称CGMCC,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院,中国科学院微生物研究所,邮编100101)保藏,分类命名为苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis),保藏号为CGMCC No.2719。通过对MC28的毒力测试表明,MC28对鳞翅目害虫、双翅目害虫等均具有极高的毒力。 
附图说明
图1为cry54Ab1操纵子基因不同部分扩增电泳图;其中,M为DNA marker;1为orf2基因;2为cry54Ab1基因;3为完整的cry54Ab1操纵子基因。 
图2为重组质粒pSTK-orf2酶切鉴定电泳图;其中,M为DNA marker;1为pSTK-orf2的BamH I和Sal I的双酶切产物;2为插入的orf2基因;3为未经酶切处理的重组质粒pSTK-orf2。 
图3为重组质粒pSTK-cry54Ab1酶切鉴定电泳图;其中,M为DNA marker;1为插入的cry54Ab1基因;2为pSTK-cry54Ab1的BamH I和Sal I的双酶切产物;3为未经酶切处理的重组质粒pSTK-cry54Ab1。 
图4为重组质粒pSTK-cry54Ab1-orf2酶切鉴定电泳图;其中,M为DNA marker;1为cry54Ab1操纵子基因;2为pSTK-cry54Ab1-orf2的BamH I和Sal I的双酶切产物;3为未经酶切处理的重组质粒pSTK-cry54Ab1-orf2。 
图5为HD73△(cry54Ab1+orf2)、HD73△(cry54Ab1)和HD73△(orf2)转化子的表达蛋白SDS-PAGE检测图;其中,M为蛋白marker;1为HD73△(cry54Ab1+orf2)的表达蛋白;2为HD73△(cry54Ab1)的表达蛋白;3为HD73△(orf2)的表达蛋白;4为转化pSTK质粒的苏云金芽孢杆菌无晶体突变株HD73-的表达蛋白,作为阴性对照;箭头分别表示cry54Ab1和orf2表达蛋白。 
图6为HD73△(cry54Ab1+orf2)、HD73△(cry54Ab1)和 HD73△(orf2)转化子的显微观察图; 
其中,图A为光学显微镜观察图;a为转化子HD73△(cry54Ab1+orf2);b为转化子HD73△(cry54Ab1);c为转化子HD73△(orf2); 
图B为扫描电镜观察图;图B中a、b、c与图A中a、b、c表示相同。 
具体实施方式
以下实施例进一步说明本发明的内容,但不应理解为对本发明的限制。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换,均属于本发明的范围。 
基因组DNA纯化试剂盒购自赛百盛公司; 
E.coli Trans110购自北京全式金生物技术有限公司; 
光学显微镜BX51购自日本奥林巴斯公司(Olympus); 
扫描电镜S-4800购自日本日立公司(Hitachi); 
若未特别指明,本发明实施例中所用的生化试剂均为市售试剂,如未具体说明,本发明实施例中所用的技术手段均为本领域技术人员所熟知的常规手段。 
实施例1 cry54Ab1操纵子基因、cry54Ab1基因和orf2基因的克隆 
本发明从四川省沐川原始森林地区土壤中分离得到的苏云金芽孢杆菌新菌株MC28,该菌株已于2008年10月21日在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(地址:北京市朝阳区北辰西路1号院,中国科学院微生物研究所,邮编100101)保藏,分类命名为苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis),保藏号为CGMCC No.2719。 
本实施例通过如下方法克隆得到cry54Ab1操纵子基因的全长序列及cry54Ab1基因和orf2基因。 
采用基因组DNA纯化试剂盒提取菌株MC28的总DNA作为扩增cry54Ab1操纵子基因及cry54Ab1基因和orf2基因的模板,设计引 物序列如下: 
以Bt菌株MC28的DNA为模板,以CO-F(如SEQ ID No.6所示)和C-R(如SEQ ID No.7所示)为引物进行扩增,得到cry54Ab1基因,其中,引物CO-F和C-R的序列如下: 
引物CO-F:5’-GCCGGATCCGATGTACAGGTGGGTTCTTGTTAAAC-3’; 
引物C-R:5’-CGCGTCGACTCAATTAATAAATAGATTATTCAC-3’。 
以Bt菌株MC28的DNA为模板,以O-F(如SEQ ID No.8所示)和CO-R(如SEQ ID No.9所示)为引物进行扩增,得到orf2基因,其中,引物O-F和CO-R的序列如下: 
引物O-F:5’-GCCGGATCCGATGTTTACAAGTGGGGCGAAAAAC-3’; 
引物CO-R:5’-CGCGTCGACCTAACTATAATTGCTATCATAGC-3’。 
以Bt菌株MC28的DNA为模板,以上述CO-F和CO-R为引物进行扩增,得到所述cry54Ab1操纵子基因。 
下划线部分GGATCC为酶切位点BamH I,GTC GAC为酶切位点SalI。其中,各引物的序列如表3所示。 
表3 cry54Ab1操纵子基因不同部分扩增引物 
表3中下划线部分GGATCC为酶切位点BamH I,GTC GAC为酶切位点SalI。 
上述各基因的扩增反应如下: 
25μl PCR反应体系: 
Figure BDA00002769943600122
Figure BDA00002769943600131
热循环反应:94℃预变性5min;94℃变性50s,54℃退火50s,72℃延伸3.5min,30个循环;72℃延伸10min;扩增反应产物在0.7%琼脂糖凝胶上电泳,置凝胶成像系统中观察PCR扩增结果。结果如图1所示,通过扩增得到了约为3.8kb的序列,将该序列进行测序,其核苷酸序列如SEQ ID No.1所示,与cry54Ab1操纵子基因序列一致;通过扩增得到了约为2.2kb的序列,将该序列进行测序,其核苷酸序列如SEQ ID No.2所示,与cry54Ab1基因序列一致;通过扩增得到了约为1.5kb的序列,将该序列进行测序,其核苷酸序列如SEQ ID No.3所示,与orf2基因序列一致。 
实施例2 Cry54Ab1蛋白及Orf2蛋白的获得 
实施例1扩增的产物orf2基因、cry54Ab1基因和cry54Ab1操纵子基因均用BamH I和Sal I进行双酶切,酶切产物与同样进行双酶切后的穿梭载体pSTK连接,转化E.coli DH5α感受态细胞,提取其质粒酶切电泳验证插入片断大小符合预期目的片段(如图2、3、4所示),分别得到重组质粒pSTK-orf2、pSTK-cry54Ab1和pSTK-cry54Ab1-orf2。将三种重组质粒分别转入E.coli Trans110中使重组质粒DNA去甲基化。然后提取质粒,将去甲基化后的三种重组质粒分别通过电转化转入苏云金芽胞杆菌无晶体突变株HD73-中表达。电转化的参数设置均为2.2kV、1000Ω和25μF。含三种重组质粒的重组菌株分别命名为HD73△(orf2)、HD73△(cry54Ab1)及HD73△(cry54Ab1+orf2)。同时将pSTK质粒转化苏云金芽孢杆菌无晶 体突变株HD73-作为阴性对照,将阳性转化子于1/2LB培养基中,在200r/min、28℃下培养72h,离心培养液收集菌体,弃上清,用无菌水水洗菌体3次,加入30mL 10mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)超声波破碎,提取表达蛋白,用SDS-PAGE对表达蛋白进行检测。 
如图5所示,SDS-PAGE分析表明:转化子HD73△(cry54Ab1+orf2)表达两种不同分子量大小的蛋白,一个约为80kDa的Cry54Ab1蛋白和一个约60kDa的Orf2蛋白;转化子HD73△(cry54Ab1)中只表达约80kDa的Cry54Ab1蛋白;而转化子HD73△(orf2)仅表达60kDa的Orf2蛋白。这些表达蛋白的分子量与预测的蛋白分子量相符。 
实施例3 cry54Ab1、orf2及完整cry54Ab1操纵子基因在HD73-中表达的显微观察 
实施例2中,将各阳性转化子于1/2LB培养基中,在200r/min、28℃下培养,待90%以上的芽孢形成后收集菌体,制片于光学显微镜下观察各转化子是否会产生晶体蛋白,若产生晶体蛋白则采用扫描电镜观察晶体形态。 
通过光学显微镜和扫描电镜观察,完整的cry54Ab1操纵子基因在HD73-中表达并形成球形伴孢晶体,而cry54Ab1基因或orf2基因单独在HD73-中表达时,不能形成伴孢晶体(如图6所示)。 
实施例4 Cry54Ab1及Orf2蛋白杀虫活性测定 
将实施例2获得的HD73△(cry54Ab1)、HD73△(orf2)及HD73△(cry54Ab1+orf2)转化子培养后的芽孢和晶体混合物分别对库蚊进行杀虫活性测定。首先将混合物配制成0.1,4,8,16,32,64mg/mL等6个不同的浓度梯度,然后每个浓度梯度的处理投入20头库蚊幼虫,每个处理重复3次,转化pSTK质粒的苏云金芽孢杆菌无晶体突变株HD73-作为阴性对照,清水为空白对照;12h后统计结果,LC50用SPSS10.0软件分析。 
由表4可以看出:HD73△(cry54Ab1+orf2)转化子对库蚊幼虫具 有很好的杀虫活性,其LC50为13.8μg/mL;HD73△(cry54Ab1)对库蚊也有一定的杀虫活性,其LC50为146.3μg/mL。HD73△(orf2)和阴性对照均对库蚊无杀虫活性。 
表4 三种不同转化子表达蛋白对库蚊的杀虫活性 
Figure BDA00002769943600151
表4中,N表示无杀虫活性。 
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。 
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Claims (10)

1.一种Bt cry54Ab1操纵子基因,其特征在于,所述cry54Ab1操纵子基因包括一个cry54Ab1基因、一个orf2基因以及它们之间的非编码间隔区,所述cry54Ab1操纵子基因具有(1)或(2)所示的核苷酸序列:
(1)SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列;
(2)SEQ ID No.1所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或几个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。
2.权利要求1所述操纵子基因编码的蛋白。
3.根据权利要求2所述的蛋白,其特征在于,所述蛋白为一种Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2,其包括蛋白Cry54Ab1和蛋白Orf2,蛋白Cry54Ab1的氨基酸序列如SEQ ID No.4所示,蛋白Orf2的氨基酸序列如SEQ ID No.5所示,蛋白Orf2为蛋白Cry54Ab1的分子伴侣。
4.含有权利要求1所述cry54Ab1操纵子基因的重组表达载体。
5.根据权利要求4所述的重组表达载体,其特征在于,所述重组表达载体为pSTK-cry54Ab1-orf2。
6.根据权利要求5所述的重组表达载体,其特征在于,构建所述重组表达载体过程中扩增cry54Ab1操纵子基因所用引物为:
引物CO-F:5’-GCCGGATCCGATGTACAGGTGGGTTCTTGTTAAAC-3’;
引物CO-R:5’-CGCGTCGACCTAACTATAATTGCTATCATAGC-3’。
7.含有权利要求4-6任一项所述重组表达载体的宿主细胞。
8.含有权利要求2或3所述蛋白的杀虫剂。
9.权利要求1所述的cry54Ab1操纵子基因或权利要求3所述的Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2在提高转基因植物抗虫性中的应用。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于,所述应用为将cry54Ab1操纵子基因与表达载体连接,得到能够表达Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2的重组表达载体,再通过转基因方法将所述重组表达载体导入植物,得到含有Cry54Ab1操纵子基因的转化体,表达Bt蛋白Cry54Ab1+Orf2,提高植物抗虫性。
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