促使骨髓间充质干细胞在大鼠脑内分化成神经元的新方法
技术领域
本发明涉及一种通过病毒载体体外转导神经营养因子编码基因,促使脑内移植的骨髓间充质干细胞高效定向分化成神经元,同时旁分泌神经营养因子营养、支持周围神经细胞的方法。
背景技术
间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)起源于中胚层,是成纤维细胞、成骨细胞、脂肪细胞等多种基质细胞的前体细胞,具有较强的增殖能力和多分化潜能。MSCs可通过贴壁培养达到较高的纯度。MSCs在体外可被诱导分化为表达NeuN的神经元和表达GFAP的神经胶质细胞。将MSCs移植到脑组织中,可长期存活,并向神经细胞分化。但实验表明植入脑的MSCs大部分分化为神经胶质细胞,分化为神经元样细胞的比例较小。过多的神经胶质细胞不但对改善神经功能无益,还可导致胶质疤痕形成等副作用。因此,如何提高脑内移植的MSCs向神经元分化,特别是能够建立正确突触联系的神经元,是间充质干细胞治疗退化性神经系统疾病的关键。
脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)是神经营养因子(neurotrophin)家族成员之一,对神经细胞具有普遍的营养、支持作用,可促使神经干细胞增殖并向神经元分化。当将BDNF和骨髓细胞混合移植到大鼠大脑中动脉闭塞梗塞边缘区时,BDNF可以促进脑内移植的MSCs增殖并向神经元分化。但是BDNF蛋白质在脑的半寿期很短,所以将BDNF与MSCs混合移植,并不能让BDNF充分发挥其生物功能,因此必须寻找一种可以使BDNF长期作用于植入的MSCs的方法。
当代基因工程技术提供了各种载体,可将基因片段导入细胞中表达。其中逆转录病毒基因载体是较为广泛应用的一种。该载体可将外源基因整合到靶细胞的基因组中,因此可使目的基因在靶细胞中长期、稳定表达。已有实验表明逆转录病毒可将外源基因导入MSCs并稳定表达。
因此,利用逆转录病毒将BDNF基因导入MSCs,然后将携带重组BDNF基因的MSCs植入脑内,在BDNF的作用下,可使这种基因修饰后的MSCs的脑内存活率及神经元分化比率大大提高,同时大量旁分泌的BDNF,可以营养、支持脑出血后遗症、帕金森症、阿尔茨海默症等病变组织及其周围的神经细胞。因此本发明可为干细胞移植治疗脑血管疾病、老年痴呆、脑外伤后遗症、神经系统变性疾病等提供来源充足、取自自体的种子细胞,并使种子细胞更好地修复补充受损神经元,维持残存神经元。另外,利用MSCs在体内的归巢性,还可将载有目的基因的MSCs用于治疗遗传性神经病和神经系统其他疾病,同时为相关的药物开发和筛选提供一种新的模式。
发明内容
本发明的目的是提供一种通过携带人BDNF编码基因的逆转录病毒,将BDNF基因导入MSCs,经筛选获得携带重组BDNF基因的MSCs(BDNF-MSCs),将BDNF-MSCs植入脑,在自分泌的BDNF诱导下定向分化成神经元的方法。技术方案如下:
从人骨髓中分离得到hMSCs,再利用反复贴壁培养纯化。从人的神经母细胞瘤细胞中克隆人BDNF的cDNA片段,构建重组质粒pMSCV-hBDNF,建立逆转录病毒细胞株。制备病毒并纯化。以重组BDNF基因的逆转录病毒感染MSCs,通过耐药基因筛选,使BDNF在MSCs内稳定表达。本发明能够在通过高效转导使外源性基因在MSCs中稳定表达的同时,保持MSCs在体内、体外的多能性和其他生物特性。
本发明的另一个主要内容是通过特定的细胞密度和注射方式,使BNDF-MSCs在脑内分化为神经元细胞,同时通过旁分泌BDNF营养、支持周围神经细胞。通过DAPI核染色区分供体细胞和自体细胞,利用神经细胞特异表型蛋白可以证明BDNF-MSCs在脑内向神经元分化的比例为55%,而未经基因修饰的MSCs在脑内向神经元分化的比例为10%。
具体实施方式
实施例1、携带hBDNF编码基因的逆转录病毒的制备
离心收集2~3X106神经母细胞瘤(SK-N-SH)细胞,抽提总RNA,构建cDNA文库,以SK-N-SH cDNA为模板,PCR引物为:
5’-ATGACCATCCTTTTCCTTAC-3’,5’-CTATCTTCCCCTTTTAATGG-3’
克隆hBDNF的cDNA,并将其连接到T-载体上进行测序。得到的hBDNF的氨基酸序列如下:
MTILFLTMVI SYFGCMKAAP MKEANIRGQG GLAYPGVRTH GTLESVNGPK AGSRGLTSLA DTFEHVIEEL
LDEDQKVRPN EENNKDADLY TSRVMLSSQV PLEPPLLFLL EEYKNYLDAA NMSMRVRRHS DPARRGELSV
CDSISEWVTA ADKKTAVDMS GGTVTVLEKV PVSKGQLKQY FYETKCNPMG YTKEGCRGID KRHWNSQCRT
TQSYVRALTM DSKKRIGWRF IRIDTSCVCT
构建的pMSCV-hBDNF逆转录病毒质粒以pMSCV-neo为载体,含有完整的hBDNF氨基酸编码序列。
在对数期生长的PT67细胞中加入pMSCV-hBDNF质粒和脂质体进行转染,然后用500ug/ml G418筛选耐药细胞。待抗性克隆形成后用不含G418的培养液培养3天,将培养瓶置于-20℃过夜,化冻后将培养液4℃ 500gX5min离心,吸取上清,即得到含重组hBDNF基因的逆转录病毒原液。测定病毒原液滴度后,病毒原液4℃ 50,000gX90min离心,弃上清,溶于1/50体积的TNE中即为病毒存储液,病毒存储液按一次用量分装,可在-70℃长期保存。
实施例2、通过逆转录病毒感染转导BDNF编码基因
将P1代MSCs按1X104cells/cm2密度接种于培养皿中,然后按细胞与病毒颗粒比例1∶10感染8小时后,用无病毒培养液培养24小时,再用250ug/ml G418选择培养。待抗性克隆形成后,换用不含G418的培养液。ELISA法测定结果显示:BDNF-MSCs培养液中BDNF水平显著高于未经BDNF基因修饰的MSCs培养液中的BDNF水平。
实施例3、大鼠脑内移植的BDNF-MSCs定向诱导为神经元
用2.4cGy γ射线照射Wistar大鼠,对其进行免疫消减。24小时后利用大鼠脑立体定向仪,按照《大鼠脑立体定向图谱》的指示,在大鼠纹状体前部注射经DAPI核染色的BDNF-MSCs。坐标为:前囱前1.0mm,旁开2.5mm,硬膜下4.5mm。注入细胞悬浮液量为20ul(含5X106 BDNF-MSCs),注射速度为1ul/min,留针10min,缓慢退针1mm/min。细胞移植后1天、3天、6天、15天、30天,剪心处死大鼠,4%多聚甲醇/0.1M PBS固定液主动脉灌注固定脑组织,冰冻切片。用NeuN、GFAP、Nestin免疫组化抗体结合荧光二抗标记。结果:BDNF-MSCs(DAPI阳性细胞)在正常大鼠及PD模型大鼠脑纹状体内长期存活,其中55%的BDNF-MSCs分化成神经元样细胞(NeuN阳性细胞)。