CN102675379A - 一种从红花中提取精制羟基红花黄色素a的方法 - Google Patents

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CN102675379A CN2011100609552A CN201110060955A CN102675379A CN 102675379 A CN102675379 A CN 102675379A CN 2011100609552 A CN2011100609552 A CN 2011100609552A CN 201110060955 A CN201110060955 A CN 201110060955A CN 102675379 A CN102675379 A CN 102675379A
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Abstract

本发明公开了一种从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法。羟基红花黄色素A是具有单查尔酮苷类结构的化合物,富含于中药材红花(CARTHAMI FLOS)之中,本发明从中药红花中经过提取、离子交换树脂纯化、中极性大孔吸附树脂纯化、非极性大孔吸附树脂纯化,冷冻干燥五个步骤,得到含量为80%以上的羟基红花黄色素A,转移率20%以上。

Description

一种从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法
技术领域
本发明涉及一种从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法。 
背景技术
羟基红花黄色素A(hydroxysafflor yellow A)是具有单查尔酮苷类结构的化合物,是红花药理功效的最有效水溶性部位,可抑制血小板激活因子诱发的血小板聚集与释放,可竞争性地抑制血小板激活因子与血小板受体的结合,是红花黄色素的活血化瘀有效成分。它是一种好的医药原料,也可用于制作保健和化装品,还是很好的食品染料。抗血小板和抗心肌缺血作用。抗凝血酶诱导的血小板聚集活性,抗炎活性,细胞保护活性,抗肿瘤活性。
CN1475272A公开了一种羟基红花黄色素A的提取精制方法,存在如下缺点:1.工艺为“提取—分离—醇沉—纯化—再纯化(1-3次)”,整个工艺需要5-7个步骤,工艺步骤多、周期长、繁琐,工业生产中不易进行实际操作。2.通过实验可知红花中羟基红花黄色素A在弱极性和中极性大孔吸附树脂中吸附性差,水就可以洗脱下来,在强极性大孔吸附树脂中吸附性极强,水和95%乙醇均无法洗脱,本专利在分离、纯化、再纯化工艺中,用去离子水即洗脱除去杂质又洗脱羟基红花黄色素A,没有监控工艺的方法,仅以收集橙黄色色带流份来作为控制工艺的指标,红花中大部分成分均为橙黄色,所以用颜色来判断洗脱终点的方法,误差大,分离、纯化、再纯化工艺可控性差,工业生产中不易操作。3. 本专利在纯化、再纯化工艺中用到聚酰胺或硅胶或葡聚糖凝胶,这三种填料价格较高,尤其是葡聚糖凝胶价格昂贵,再生困难,需用到甲醇、乙醇等有机试剂及酸、碱等试剂,再生次数及使用寿命不如大孔吸附树脂,这三种填料颗粒细小,装柱后柱体紧密,对设备、样品、操作人员要求较高,尤其是样品必须过滤好,最好过0.45um膜,否则极易堵塞层析柱,在纯沉工艺中使用了高浓度(60-90%)的乙醇或甲醇或丙酮,这些有机试剂均对环境及人身健康有极大的危害,导致工业生产成本高、难度大。
CN101195647A A也公开了一种羟基红花黄色素A的提取精制方法,存在如下缺点:1.工艺为“提取—分离—纯化—再纯化(3次)”,整个工艺需要6个步骤,工艺步骤多、周期长、繁琐,工业生产中不易进行实际操作。2.在分离、纯化、再纯化工艺中,用去离子水即洗脱除去杂质又洗脱羟基红花黄色素A,虽然分离工艺中用Molisch及茚三酮反应判断除杂终点,但生产中不易控制,杂质除去不完全,羟基红花黄色素A易损失,纯化、再纯化工艺仅以收集橙黄色色带流份来作为控制工艺的指标,红花中大部分成分均为橙黄色,用颜色来判断洗脱终点的方法,误差大,所以整个分离纯化在纯化工艺没有有效监控工艺的方法,导致工艺可控性差,工业生产中不易操作。3.本专利在纯化、再纯化工艺中用葡聚糖凝胶G-25,此填料价格昂贵,再生次数及使用寿命有限,物理性能差,颗粒细小,装柱后柱体紧密,对设备、样品、操作人员要求较高,尤其对待纯化样品,必须过滤0.45um膜,否则极易堵塞层析柱,照成葡聚糖凝胶G-25损失,导致工业生产成本高、难度大,不易实际应用于工业生产。
CN101168539A也公开了一种羟基红花黄色素A的提取方法,这种方法较为简单,缺点如下:本专利只是用于注射用丹红的生产,所以只是对红花中羟基红花黄色素A进行了初步分离,产品注射用丹红中丹参酚酸B和羟基红花黄色素A二者含量合计在60%以上,其中丹参提取物中丹参酚酸B的含量在80%以上,二者混合的比例是丹参和红花药材重量比是3:1,由此可见本专利只是对红花中羟基红花黄色素A进行了初步分离,其纯度低,不到20%。虽然红花提取液调酸后增强了对大孔吸附树脂的吸附性能,然后用酸水进行洗脱,羟基红花黄色素A并没有被酸水洗脱下来,可以和多糖等杂质充分分离,工艺简单,便于工业生产,但其纯度低,不能用于高纯度羟基红花黄色素A的制备。
CN101215307A公开的羟基红花黄色素A的提取方法,存在缺点如下:1.在分离工艺中没有解决水洗脱除杂时,羟基红花黄色素A和多糖等杂质一起洗脱下来的问题,工艺可空性差,不易于工业实际生产。2.整个工艺虽然简洁,但精致工艺采用反相填料,对设备、样品及人员要求较高,尤其是设备要求,至少应能加压洗脱,并且能很好的控制流速,常规层析柱无法达到要求,样品应过滤0.45um膜,以免堵塞层析柱,不易于工业实际生产。3.反相填料价格较贵在再生次数及使用寿命有限均不如大孔吸附树脂,洗脱液均采用10-70%乙醇,对环境及人身安全存在隐患。
发明内容
本发明提供一种从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,该方法包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮,减压浓缩,得提取液A;
b、第一次纯化:提取液A以弱碱性离子交换树脂纯化,减压浓缩洗脱液,得浓缩液B;
c、第二次纯化:浓缩液B以中极性大孔吸附树脂纯化,减压浓缩洗脱液,得浓缩液C;
d、第三次纯化:浓缩液C以非极性大孔吸附树脂纯化,减压浓缩洗脱液,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法优选为包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮2-3次,每次加所投中药材重量的15-30倍水,除第一次室温浸泡20-60分钟后 ,微沸10-40分钟,其余均微沸10-40分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂按照质量比-生药:树脂为1:2-6的比例装柱,上样,饱和0.5-2小时,10-20倍柱体积的去离子水洗至中性,5-10倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为6-10倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用15-30倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为5-8倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂按质量比-生药:树脂为1:6-10的比例装柱,上样,饱和20-50分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5-3倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为5-8倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5-1倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,将合并后洗脱液60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法中所使用的弱碱性离子交换树脂优选为D900树脂、D301R树脂或者D380树脂,中极性大孔吸附树脂优选为XAD-7HP树脂、HPD450树脂或者HPD400树脂,非极性大孔吸附树脂优选为D3520树脂、HPD100树脂或者HPD300树脂。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,更优选为包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的23倍水,除第一次室温浸泡30分钟后 ,微沸20分钟,其余均微沸20分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:4的比例装柱,上样,饱和1小时,15倍柱体积的去离子水洗至中性,6倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为8倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用20倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为6倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:7.5的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为6倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.7倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,第一次纯化的层析柱的径高比优选为1:6,上样流速优选为2倍柱体积每小时,第二次纯化的层析柱的径高比优选为1:7,上样流速优选为1倍柱体积每小时,第三次纯化的层析柱的径高比优选为1:8,上样流速优选为0.7倍柱体积每小时。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法还优选为包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮2次,每次加所投中药材重量的15倍水,第一次室温浸泡20分钟后 ,微沸10分钟,第二次微沸10分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和2小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,10倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为10倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用30倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为8倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和20分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为5倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法还优选为包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的30倍水,除第一次室温浸泡60分钟后 ,微沸40分钟,其余两次均微沸40分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:2的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和0.5小时,10倍柱体积的去离子水洗至中性,5倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为6倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用15倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为5倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:10的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和50分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为3倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为8倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法中的原料中药材红花的中药材拉丁学名为CARTHAMI FLOS,又称为草红花、刺红花、杜红花、金红花等,为菊科植物红花(拉丁学名:Carthamus tinctorius L.)的干燥花。
采用本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法连续生产五批羟基红花黄色素A,转移率均在20%以上,纯度均超过80%,详细结果见表1
表1 连续五批生产羟基红花黄色素A的纯度和转移率结果
批号 含量% 转移率%
100304 91.408 20.97
100317 85.686 32.52
100401 81.486 36.74
100409 86.063 30.98
100610 81.296 33.61
本发明精制方法,易于工业化生产的工艺,生产出纯度80%以上,转移率20%以上的羟基红花黄色素A。
1.工艺简单、便于操作、对人员、设备要求低,容易实现工业化生产:本专利工艺为“提取—一次纯化—二次纯化—三次纯化-冷冻干燥”,整个工艺为5个步骤,所用填料为离子交换树脂和大孔吸附树脂,无需加压常压下即可完成,普通层析柱均能达到要求,纯化工艺简洁、纯化周期短。
2.纯化工艺稳定可控:
2.1.一次纯化工艺中使用弱碱性离子交换树脂,采用两种溶剂分别洗脱除杂法,首先用水洗脱除杂,他解决了水洗脱除杂质时,羟基红花黄色素A和多糖等杂质被一起洗脱下来的问题,本专利在一次纯化工艺中,可以用水进行充分洗脱除杂,羟基红花黄色素A不被洗脱下来,其次用10%乙酸洗脱除杂,将离子强度弱的杂质除去,本工艺在两步除杂过程中对羟基红花黄色素A几乎是没有影响,保证了一次纯化工艺稳定性,同时操作简便,大大提高了羟基红花黄色素A纯度,也便于后期的纯化工艺。
2.2.本工艺在二、三次纯化工艺中,用高效液相监控每一份洗脱液中羟基红花黄色素A纯度,可以根据不同品种对羟基红花黄色素A纯度的需要,将达到要求的洗脱液合并浓缩,减少了羟基红花黄色素A损失,避免了工业生产中由于某一步的失误而导致最终产品不合格的风险,大大提高了产品合格率及稳定性,使工艺在任何情况下(改变设备,人员变更)都稳定可控,从而也降低了生产成本。
3.成本低、易于工业生产:
3.1.纯化工艺中使用一种弱碱性离子交换树脂、两种大孔吸附树脂,这三种填料与聚酰胺、硅胶、葡聚糖凝胶比价格低廉,再生容易,再生次数要远远高于聚酰胺、硅胶、葡聚糖凝胶,生产成本大大降低。
3.2三种填料纯化工艺简便,对纯化设备没有特殊要求,一般层析柱均可达到要求,三种填料颗粒较粗,装柱后柱体与聚酰胺、硅胶、葡聚糖凝胶柱相比不是很致密,样品只需过澄清板即可,洗脱流速快,纯化周期短,便于工业生产。
3.3.提取纯化过程中很少使用有机溶剂,大量使用去离子水,工艺成本低,对环境污染小,对人身健康及安全影响小。
综上,本发明方法提得的羟基红花黄色素A转移率高,且纯度高,并且冻干产物为粉状,可以直接作为原料药使用,即使制成其它制剂也有成型简单,稳定性高的优点。本发明方法整个过程中不时用有机溶剂,层析步骤少,降低了生产成本和生产中的安全隐患。 
具体实施方式
下述实施例用于举例说明本发明从红花中提取精制羟基红花黄色素A方法,但其不能对本发明的范围构成任何限制。
实施例1:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的23倍水,除第一次室温浸泡30分钟后 ,微沸20分钟,其余均微沸20分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:4的比例装柱,上样,饱和1小时,15倍柱体积的去离子水洗至中性,6倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为8倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用20倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为6倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:7.5的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为6倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.7倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
结果:得羟基红花黄色素A69.5g,含量为91.41%,总转移率为20.97%。 
实施例2:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮2次,每次加所投中药材重量的15倍水,第一次室温浸泡20分钟后 ,微沸10分钟,第二次微沸10分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和2小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,10倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为10倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用30倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为8倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和20分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为5倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
结果:得羟基红花黄色素A68.23g,含量为92.53%,总转移率为20.89%。  
实施例3:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的30倍水,除第一次室温浸泡60分钟后 ,微沸40分钟,其余两次均微沸40分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:2的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和0.5小时,10倍柱体积的去离子水洗至中性,5倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为6倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用15倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为5倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:10的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和50分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为3倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为8倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
结果:得羟基红花黄色素A105.1g,含量为81.49%,总转移率为36.74%。 
实施例4:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的23倍水,除第一次室温浸泡30分钟后 ,微沸20分钟,其余均微沸20分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D301R按照质量比-生药:树脂为1:4的比例装柱,上样,饱和1小时,15倍柱体积的去离子水洗至中性,6倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为8倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用20倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为6倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂HPD450按质量比-生药:树脂为1:7.5的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为6倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂HPD100按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.7倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
结果:得羟基红花黄色素A86.90g,含量为86.06%,总转移率为30.98%。 
实施例5:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮2次,每次加所投中药材重量的15倍水,第一次室温浸泡20分钟后 ,微沸10分钟,第二次微沸10分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D301R按照质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和2小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,10倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为10倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用30倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为8倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂HPD400按质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和20分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为5倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂HPD100按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
结果:得羟基红花黄色素A93.3g,含量为85.69%,总转移率为32.52%。  
实施例6:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的30倍水,除第一次室温浸泡60分钟后 ,微沸40分钟,其余两次均微沸40分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D380按照质量比-生药:树脂为1:2的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和0.5小时,10倍柱体积的去离子水洗至中性,5倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为6倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用15倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为5倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂HPD400按质量比-生药:树脂为1:10的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和50分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为3倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为8倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂HPD300按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
结果:得羟基红花黄色素A96.2g,含量为81.3%,总转移率为33.61%。

Claims (7)

1.一种从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,该方法包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮,减压浓缩,得提取液A;
b、第一次纯化:提取液A以弱碱性离子交换树脂纯化,减压浓缩洗脱液,得浓缩液B;
c、第二次纯化:浓缩液B以中极性大孔吸附树脂纯化,减压浓缩洗脱液,得浓缩液C;
d、第三次纯化:浓缩液C以非极性大孔吸附树脂纯化,减压浓缩洗脱液,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
2.根据权利要求1所述的从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,该方法包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮2-3次,每次加所投中药材重量的15-30倍水,除第一次室温浸泡20-60分钟后 ,微沸10-40分钟,其余均微沸10-40分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂按照质量比-生药:树脂为1:2-6的比例装柱,上样,饱和0.5-2小时,10-20倍柱体积的去离子水洗至中性,5-10倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为6-10倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用15-30倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为5-8倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂按质量比-生药:树脂为1:6-10的比例装柱,上样,饱和20-50分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5-3倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为5-8倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5-1倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,将合并后洗脱液60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
3.根据权利要求1-2任一项所述的从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,所述弱碱性离子交换树脂为D900树脂,中极性大孔吸附树脂为XAD-7HP树脂,非极性大孔吸附树脂为D3520树脂。
4.根据权利要求3所述的从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,该方法包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的23倍水,除第一次室温浸泡30分钟后 ,微沸20分钟,其余均微沸20分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:4的比例装柱,上样,饱和1小时,15倍柱体积的去离子水洗至中性,6倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为8倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用20倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为6倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:7.5的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为6倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,上样,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.7倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
5.根据权利要求4所述的从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,第一次纯化的层析柱的径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,第二次纯化的层析柱的径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,第三次纯化的层析柱的径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时。
6.根据权利要求3所述的从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,该方法包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮2次,每次加所投中药材重量的15倍水,第一次室温浸泡20分钟后 ,微沸10分钟,第二次微沸10分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和2小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,10倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为10倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用30倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为8倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:6的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和20分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为5倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为1倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
7.根据权利要求3所述的从红花中提取精制羟基红花黄色素A的方法,该方法包括如下步骤:
a、提取:称取红花中药材,加水煎煮3次,每次加所投中药材重量的30倍水,除第一次室温浸泡60分钟后 ,微沸40分钟,其余两次均微沸40分钟,过滤,合并提取液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.25g/ml,得提取液A;
b、第一次纯化:将提取液A和弱碱性离子交换树脂D900按照质量比-生药:树脂为1:2的比例装柱,层析住径高比为1:6,上样流速为2倍柱体积每小时,饱和0.5小时,10倍柱体积的去离子水洗至中性,5倍柱体积浓度为10%醋酸冲洗,流速为6倍柱体积每小时,20倍柱体积的去离子水洗至中性,然后用15倍柱体积浓度为4%的醋酸铵洗脱,流速为5倍柱体积每小时,收集4%醋酸铵洗脱液,60℃以下减压浓缩至生药浓度为0.1g/ml,得浓缩液B;
c、第二次纯化:将浓缩液与中极性大孔吸附树脂XAD-7HP按质量比-生药:树脂为1:10的比例装柱,层析柱径高比为1:7,上样流速为1倍柱体积每小时,饱和50分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为3倍柱体积每小时,前1.6倍柱体积洗脱液不要,然后每0.2倍柱体积洗脱液一份,共接7份,接着改变洗脱流速为8倍柱体积每小时,每1倍柱体积洗脱液一份,共接6份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩至羟基红花黄色素A浓度为3.45mg/ml,得浓缩液C;
d、第三次纯化:将浓缩液C和非极性大孔吸附树脂D3520按质量体积比-羟基红花黄色素A:树脂为0.444mg:1ml的比例装柱,层析柱径高比为1:8,上样流速为0.7倍柱体积每小时,饱和30分钟,去离子水洗脱,洗脱流速为0.5倍柱体积每小时,前0.8倍柱体积洗脱液不要,然后每0.17倍柱体积洗脱液一份,共接7份,然后每1倍柱体积洗脱液一份,共接4份,分别测定每份羟基红花黄色素A的含量,合并洗脱液,60℃以下减压浓缩,得浓缩液D;
e、冷冻干燥:将浓缩液D,过滤,冷冻干燥,即得羟基红花黄色素A。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014121424A1 (zh) 2013-02-07 2014-08-14 浙江永宁药业股份有限公司 羟基红花黄色素a钠及其生产方法和制药用途
WO2014121666A1 (zh) 2013-02-07 2014-08-14 浙江永宁药业股份有限公司 新的羟基红花黄色素药用盐
CN104721152A (zh) * 2015-01-20 2015-06-24 哈尔滨医科大学 一种羟基红花黄色素a冻干粉针剂的制备方法及其产品
CN108084132A (zh) * 2017-12-21 2018-05-29 华远医药研究院有限公司 高纯度羟基红花黄素a的提取方法
CN108553556A (zh) * 2018-04-16 2018-09-21 湖州耕香生物科技有限公司 一种从西红花中制备西红花总苷的方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1475272A (zh) * 2002-08-17 2004-02-18 李盛学 羟基红花黄色素a及其制备方法和应用
WO2005094858A1 (ja) * 2004-03-31 2005-10-13 Kureha Corporation 抗糖尿病用組成物
CN101168539A (zh) * 2007-12-04 2008-04-30 哈药集团中药二厂 丹酚酸b和羟基红花黄色素a的提取方法及注射用丹红的制备方法
CN101195647A (zh) * 2006-12-06 2008-06-11 杨炜 羟基红花黄色素a及其制备方法和应用
CN101215307A (zh) * 2008-01-08 2008-07-09 山西大学 一种羟基红花黄色素a的制备方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1475272A (zh) * 2002-08-17 2004-02-18 李盛学 羟基红花黄色素a及其制备方法和应用
WO2005094858A1 (ja) * 2004-03-31 2005-10-13 Kureha Corporation 抗糖尿病用組成物
CN101195647A (zh) * 2006-12-06 2008-06-11 杨炜 羟基红花黄色素a及其制备方法和应用
CN101168539A (zh) * 2007-12-04 2008-04-30 哈药集团中药二厂 丹酚酸b和羟基红花黄色素a的提取方法及注射用丹红的制备方法
CN101215307A (zh) * 2008-01-08 2008-07-09 山西大学 一种羟基红花黄色素a的制备方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JUN-XIA WANG,等: "Study of vacuum microwave-assisted extraction of polyphenolic compounds and pigment from Chinese herbs", 《JOURNAL OF CHROMATOGRAPHY A》, vol. 11981199, 23 May 2008 (2008-05-23), pages 45 - 53 *
张亮,等: "大孔吸附树脂纯化羟基红花黄色素A的研究", 《安徽农业科学》, vol. 38, no. 17, 10 June 2010 (2010-06-10), pages 8984 - 8985 *
杨辉,等: "羟基红花黄色素A的提取及含量测定", 《新疆医科大学学报》, vol. 31, no. 10, 31 October 2008 (2008-10-31), pages 1358 - 1360 *
罗晶,等: "红花中羟基红花黄色素A的提取工艺及其热稳定性研究", 《江西中医学院学报》, vol. 21, no. 5, 31 October 2009 (2009-10-31), pages 39 - 42 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2014121424A1 (zh) 2013-02-07 2014-08-14 浙江永宁药业股份有限公司 羟基红花黄色素a钠及其生产方法和制药用途
WO2014121666A1 (zh) 2013-02-07 2014-08-14 浙江永宁药业股份有限公司 新的羟基红花黄色素药用盐
US9243019B2 (en) 2013-02-07 2016-01-26 Zhejiang Yongning Pharmaceutical Co Ltd Hydroxysafflor yellow A sodium and preparation as well as application thereof
CN104721152A (zh) * 2015-01-20 2015-06-24 哈尔滨医科大学 一种羟基红花黄色素a冻干粉针剂的制备方法及其产品
CN108084132A (zh) * 2017-12-21 2018-05-29 华远医药研究院有限公司 高纯度羟基红花黄素a的提取方法
CN108553556A (zh) * 2018-04-16 2018-09-21 湖州耕香生物科技有限公司 一种从西红花中制备西红花总苷的方法

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