发明内容
本发明的目的在于提供一种适用于大段生物材料和种子细胞接种与共培养的灌注式生物反应器系统,该反应器系统在组织或器官体外构建过程中能尽量模拟体内微环境,使种子细胞均匀分布在生物支架材料上的同时保证生物材料内部种子细胞充分的物质交换以及保持种子细胞正常的生理功能,提高种子细胞/生物支架材料的收获效率,降低培养周期与培养成本。
本发明所述的一种灌注式生物反应器系统,包括:循环灌注系统、恒温系统、气体交换系统和在线监控系统;所述的循环灌注系统包括:通过管道依次连接培养舱、储液瓶、蠕动泵,形成一个灌注培养回路;接种室通过两端的三通管、连接到所述的灌注培养回路,通过调节这些三通管、和蠕动泵来切换接种模式和灌注培养模式;在接种模式下,接种室的两端分别与培养舱、蠕动泵连通,以致培养液流经培养舱后通过三通管进入接种室,然后通过三通管返回储液瓶;在灌注培养模式下,蠕动泵直接连通培养舱,将来自储液瓶的培养液送入培养舱,从培养舱流出的培养液返回储液瓶;所述的恒温系统包括:内部具有绕行的循环管道的恒温水浴装置,以及适用于电加热和制冷的控制部分,使得培养液流经水浴中的循环管道时被加热或冷却;所述恒温水浴装置设置在培养舱与储液瓶之间的回路上;所述的气体交换系统由气体过滤器、气体流量表、高压气瓶、减压阀以及连接管道组成,以致高压气瓶内的含5%CO2的压缩空气经减压阀减压后,经气体过滤器过滤后进入储液瓶中与培养液进行气体交换,交换后的气体经由另一气体过滤器过滤后排出;所述在线监控系统由监控探头、监控终端、监控软件、数据转换芯片和传质调节器组成;实时监控培养液的pH值、温度、溶解氧以及流速的监控探头设置在培养舱与恒温水浴装置之间的导管上,通过在线监控系统反应器内;在蠕动泵、恒温水浴装置,以及高压气瓶与储液瓶之间的气管上均设有监控探头;这些监控探头与监控终端通信连接,再通过监控软件、数据转换芯片和传质调节器对数据进行处理。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在蠕动泵最大功率支持的前提下,多个培养舱通过并联的方式接入所述的循环灌注系统。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,所述的培养舱包括:底座,向外装有进液管道接口;顶盖,向外装有出液管道接口;前盖,安置在所述顶盖上;培养舱外壳,设置在底座与前盖之间;支架套管,设置在所述培养舱外壳内,所述支架套管的一端通过底座密封圈连接底座,另一端通过顶盖密封圈连接顶盖;所述支架套管内设置有支架接套和套管密封圈,以致在所述支架套管内限定容纳生物材料的空间;以及固定杆,两端分别连接底座和前盖以致将培养舱外壳固定在底座与前盖之间。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,培养舱外壳、支架套管、支架接套、顶盖均为圆柱形,而所述底座密封圈、顶盖密封圈和套管密封圈均为O形密封圈。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,所述底座和前盖均带有矩形框架,分别开设有对应的孔,供固定杆插入并紧固,优选地,所述固定杆为四根,分别固定在底座和前盖的矩形框架的四个角上。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,固定杆的端部通过焊接固定到前盖和/或底座,或者由锁定螺母锁紧固定到前盖和/或底座。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,底座与进液管道接口的固定方式是螺纹固定。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,顶盖与出液管道接口的固定方式是螺纹固定。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,顶盖与前盖的固定方式是螺纹固定。
根据本发明所述的灌注式生物反应器系统的进一步特征,在所述的培养舱中,顶盖还通过固定螺纹圈紧固所述前盖。
根据本发明所述的灌注式生物培养装置的进一步特征,所述底座与支架套管相连接的截面大于顶盖与支架套管相连接的截面。
本发明所述的灌注式生物反应器系统,具有以下的特点和优点:
(1)能将细胞高效且均一地接种于三维多孔支架中,并在可控的力学和物化环境里进行长期培养,将细胞接种和长期培养功能整合于一个系统中进行,使得三维生物材料能够在本灌注式生物反应器系统中产生有效的、均匀的细胞种植效果。
(2)确保流体垂直流经整个支架内部,使力学刺激分布均一,最大限度减少流体流经支架外周的非灌注流动路径,能够有效促进氧气和营养物质向生物材料内部输送,排除代谢废产物,提高传质效率,保持材料内部细胞的活性和功能的发挥,避免“空巢化”现象。保证流体可重复、可控制且连续地流经整个培养体系。
(3)能够有效促进生物材料中附着的种子细胞的生长与增殖,分泌更多的细胞外基质,促进骨组织再生。
(4)能够有效促进成骨性细胞沿着三维生物材料的孔隙生长,产生具有一定几何形状的骨组织。
(5)培养液流动能够对细胞产生一定的剪切应力刺激,调节成骨性细胞功能的发挥。
(6)各个系统部件可进行模块式组合,操作简便,不仅可以增加工程化组织培养的数量,而且根据实验目的在不同时间点灵活方便地收获种子细胞/生物支架材料结构体。
(7)灌注培养舱的进液和出液口不等大,通过配套的套管支架能满足大段生物材料与种子细胞的接种与共培养,无需对生物材料进行预处理,可最大限度减少非灌注路径,成本低廉,适应于多种种子细胞与生物材料的共培养。
(8)整个系统便于灭菌,并在整个培养过程中保持无菌状态。
具体实施方式
实施例一:本发明所述的灌注式生物反应系统的构建
本发明所述的灌注式生物反应器主要包括循环灌注系统、恒温系统、气体交换系统和在线监控系统,适用于不同种类的种子细胞(例如,人、鼠、兔、羊、猴等的各种来源的干细胞)与具备一定生物力学强度的生物支架材料的共培养。
整个反应器系统在医用硅胶管90的连通下形成一个整体,经由一个双向蠕动泵20提供动力,新鲜培养液不断从储液瓶30中泵出,经过恒温水浴装置40,加热至37℃,流经监控探头55,通过在线监控系统50实时监控反应器内培养液的PH值、温度、溶解氧以及流体速率。随后,新鲜培养液进入培养舱60,垂直流经种子细胞与生物材料的复合体,带入营养物质与氧气,带出细胞的代谢废产物后回到储液瓶30。气体交换装置35与储液瓶30相连接,通过在线监控系统50的控制,随时调控储液瓶内的溶解氧与PH值。在不超过双向蠕动泵20的最大功率的前提下,可通过培养舱60左右两侧的医用四通管80、81增加培养舱60的数量,提高种子细胞/生物支架材料复合体的获取数量。(参见图1)
循环灌注系统包括:培养舱60、蠕动泵20、接种室65、储液瓶30以及一系列医用硅胶管90和医用三通管70、四通管80组成。本发明在整个培养过程中,可将细胞与生物材料接种以及细胞与生物材料的共培养整合起来,提高了效率的同时可以降低操作所引起的细胞污染。通过开关接种室65上端71和下端70的医用三通管,可以随时切换接种回路与培养回路。
在接种回路模式下,培养液流经培养舱60后通过医用三通管71进入接种室65,然后通过医用三通管70,培养液返回储液瓶30,形成一个完整的回路。
在培养回路模式下,关闭接种室65上下两端的医用三通管71、70,将接种室65切出整个回路。培养液流出培养舱60后,通过与接种室65并联的医用硅胶管90返回储液瓶30,形成一个完整的回路。
培养舱60主要由进液管道接口1、底座2、底座O型圈3、培养舱外壳4、支架套管5、套管O型圈6、支架接套7、前盖8、顶盖9、顶盖密封圈10、固定螺纹圈11、出液管道接口12、四个固定杆13、四个锁定螺母14组成。O型圈3、6和密封圈10采用氯丁二烯橡胶,培养舱外壳4、支架套管5采用硅酸盐玻璃,其余部件均采用医用级别的不锈钢。整个培养舱采用高温高压消毒。
四个固定杆13的一侧可与前盖8通过焊接固定在一起,另一侧穿过底座2上的四个孔,通过锁定螺母14固定。四个固定杆包绕着培养舱外壳4,培养舱外壳4内部为培养腔,放置着支架套管5。生物材料15置于支架套管5内部,支架接套7在其上方,防止灌注过程中生物材料15的移动。顶盖9采用螺纹设计,通过前盖8的螺纹孔,可旋入培养腔内,顶住支架套管5,前盖8上方的固定螺纹圈11在培养舱外部锁住顶盖9。进液管道接口1与底座2相连,出液管道接口12与顶盖9相连。两个管道接口的底部均采用螺纹设计,可随时从培养舱上进行拆卸,方便针对不同管径的医用硅胶管90进行更换。
在系统运作时,整个培养舱以底座2在下,顶盖9在上的方式呈立位放置。培养液从进液管道接口1流入,从下往上垂直流经支架套管5内部的生物材料15从顶盖9的出液管道接口12流出。
支架套管5内部的生物材料15两侧进出液口不等大(例如,进液口直径7mm,出液口直径5mm),与配备不同的支架套管5和支架接套7是本发明的两个特色所在。培养液在进出液口不等大的生物材料两侧产生一定的压强,可确保培养液均一地流经具有三维立体结构的多孔生物材料内部,形成有效灌注。如图2所示,支架接套可防止支架套管内部生物材料在灌注过程中由于流体的运动才产生移动,可最大限度地减少非灌注路径,提高灌注的效率。
恒温系统包括:可调节式恒温水浴以及在其中绕行的循环管道组成。恒温水浴适用电加热和制冷系统,水浴中水温的波动范围在37±0.1℃。培养液流经水浴中的循环管道时被加热或冷却,从而达到恒温的目的。
气体交换系统包括:气体过滤器、气体流量表、高压气瓶、减压阀以及连接管道组成。含5%CO2的的压缩空气经减压阀减压、气体过滤器过滤后进入储液瓶中与培养液进行气体交换,交换后的气体经由另一气体过滤器过滤后排出。
在线监控系统包括:监控探头、监控终端、监控软件、数据转换芯片和传质调节器。通过监控探头可以实时监测系统内部的温度、培养液流动速率、液体压力、PH值以及溶解氧浓度。例如,利用LABVIEW平台可编写相应的监控与数据记录程序,经数据转换芯片处理针对相应情况,监控终端采取相应措施通过传质调节器控制蠕动泵、气体交换系统与恒温系统,确保整个反应器系统内环境的稳定。
细胞与生物材料接种培养的操作步骤为:
1、在超净工作台内连接好系统的各个部件,储液瓶30内注入培养液,启动蠕动泵20,抽取培养液充满整个反应器以排空管道内的气体,监测密闭性。
2、排空管道内的培养液,在培养舱60内放入所需的生物材料15,启动蠕动泵20,预湿材料30分钟后排空系统内培养液,关闭蠕动泵20。打开接种室65两端的三通管70、71,开放接种回路,使得接种室65与培养舱60形成串联结构。
3、启动蠕动泵20,以逆时针方向抽取少量培养液,注意观察培养液浸润了培养舱60,部分进入接种室65,暂停蠕动泵提起储液瓶内泵液的硅胶管,将种子细胞混悬液用注射器注入接种室。医用硅胶管90,接种室65内部淡色区域为培养液。(如图3A所示)
4、调节蠕动泵20,以顺时针方向运作,注意避免系统内的培养液流回储液瓶30。培养液流经培养舱60后,再次反转蠕动泵20运作方向。如此反复进行抽吸,保证每次培养液都经过培养舱60与接种室65,对培养舱内的生物材料15进行反复灌注15分钟。医用硅胶管90内深色区域为种子细胞的混悬液。(如图3B所示)
5、将管道内的种子细胞混悬液抽吸至培养舱60内,暂停蠕动泵20运作3-4小时,等待种子细胞贴壁。
6、调节接种室两端的三通管70和71,将接种室65切出反应器的灌注回路,注意管道进出液口与储液瓶内培养液液面的关系,以逆时针方向启动蠕动泵,调节灌流速率,开启监控系统50,进行灌注培养。
收获种子细胞/生物材料复合体的操作步骤为:
1、将反应器系统部件移入超净工作台。
2、关闭监控系统50。
3、排空反应器系统内的培养液,关闭蠕动泵20。
4、断开培养舱60与其他部件的连接。
5、打开培养舱顶盖9,取出装有生物材料15的支架套管5,将生物材料与支架套管进行分离,将生物材料移入无菌器皿内。
6、在超净工作台内拆卸系统各部件,进行清洗消毒,以备再次使用。
实施例二:培养舱的设计与装配
培养舱是本发明所述的灌注式生物反应器的关键装置,详述如下:
如图4所示,所述培养装置包括:底座2,向外装有进液管道接口1;顶盖9,向外装有出液管道接口12;前盖8,安置在所述顶盖9上;培养舱外壳4,设置在底座2与前盖8之间;支架套管5,设置在所述培养舱外壳4内,所述支架套管5的一端通过底座密封圈3连接底座2,另一端通过顶盖密封圈10连接顶盖9;所述支架套管5内设置有支架接套7和套管密封圈6,以致在所述支架套管5内限定容纳生物材料的空间15;以及固定杆13,两端分别连接底座2和前盖8以致将培养舱外壳4固定在底座2与前盖8之间。
作为一个特例,如图2所示,培养舱外壳4、支架套管5、支架接套7、顶盖9可以为圆柱形,底座密封圈3、顶盖密封圈10和套管密封圈6因而采用O形密封圈,即截面为圆形的橡胶密封圈。O形圈断面结构极其简单,且有自密封作用,密封性能可靠,安装、更换都非常容易,对于底座、顶盖和套管等部件起到良好的密封、减震作用。
如图5所示,底座2和前盖8均带有矩形框架,分别开设对应的孔,供固定杆13插入并紧固。
可选地,固定杆13的端部可以通过焊接固定到前盖8和/或底座2,也可以由锁定螺母14锁紧固定到前盖8和/或底座2。如图1所示的一个实施例中,固定杆13的一端通过焊接固定到前盖8,另一端由锁定螺母14锁紧固定到底座2。
如图5所示的一个实施例中,所述固定杆13为四根,分别固定在底座2和前盖8的矩形框架的四个角上。
如图4至图7所示,底座2与进液管道接口1的固定方式可以是螺纹固定;顶盖9与出液管道接口12的固定方式可以是螺纹固定;顶盖9与前盖8的固定方式也可以是螺纹固定。
如图4至图7所示,所述顶盖9还通过固定螺纹圈11紧固所述前盖8。
所述的密封圈可采用氯丁二烯橡胶等合适的材料制备,培养舱外壳4、支架套管5可采用硅酸盐玻璃等合适的材料制备,其余部件均采用医用级别的不锈钢等合适的材料制备。所有部件都可经受高温高压消毒。
根据图5至图7的教导,可以方便地将各部分组装成为完整的灌注式生物培养装置。
当把该生物培养装置放入灌注式生物反应器系统中运作时,整个培养装置以底座2在下,顶盖9在上的方式呈立位放置。培养液从进液管道接口1流入,受泵压作用从下往上垂直流经支架套管5内部的生物材料空间15,然后从顶盖9的出液管道接口12流出。
优选地,所述底座2与支架套管5相连接的截面大于顶盖9与支架套管5相连接的截面,使得在内部的生物材料的两侧产生一个压强差,提高灌注的效率。
实施例三:种子细胞(SD大鼠骨髓间充质干细胞)的分离、培养及鉴定。
断颈处死2周龄的SD大鼠,置75%酒精浸泡15min,在超净工作台中无菌取出大鼠股骨与胫骨,去除骨骼附着的软组织,采用无菌生理盐水冲洗髓腔1-2次,直接收集于离心管中。以1000r/min离心10min,弃上清,采用SD大鼠BMSCs标准培养液(赛业公司,美国)重悬计数,种植于25cm2培养瓶中,置于37℃、5%CO2恒温培养箱中培养。24小时后换液,以后每2-3天换液1次。达到80%-90%融合时(原代培养3-5天),采用0.25%胰酶消化传代,分组培养。选取生长良好的第3代细胞采用流式细胞仪及倒置相差显微镜进行形态学观察进行鉴定。
如图8所示:在倒置相差显微镜下观察可见第3代SD大鼠BMSCs呈长梭形,轮廓清晰。
取1×106/ml浓度第3代SD大鼠BMSCs1ml进行流式细胞仪细胞表面鉴定,结果如图9所示:CD34、CD45反应阴性,CD29、CD44反应阳性。可证实此细胞为SD大鼠BMSCs。
实施例四:种子细胞的接种与共培养。
取生长良好的第3-5代大鼠BMSCs细胞,将种子细胞用0.25%胰蛋白酶消化后计数,制成2×107/ml的单细胞悬液约50ml。
采用的生物材料为直径10mm高10mm大小的胶原-生物活性玻璃复合体。
按细胞接种的方法不同,培养的方法不同分为2组。
(1)反应器培养组(n=6):采用灌注式生物反应器进行接种,接种完毕后,启动蠕动泵,3ml/min流量,培养16小时、3天、7天、14天。
(2)传统方法培养组(n=6):将生物支架材料浸入含单细胞悬液的注射器内,抽真空后维持1min,使细胞进入载体内部。将生物支架材料放入T25培养瓶,浸没于100ml含10%胎牛血清、100U/ml青霉素、100ug/ml链霉素、α-MEM培养液,置于培养箱内培养16小时、3天、7天、14天。
培养期间,观察培养基颜色变化,当颜色变橘黄色时完全更换培养液。
实施例五:生物支架材料的扫描电镜(SEM)观察。
在各时间点培养终止后,收集生物支架材料,用PBS冲洗3遍,放入2.5%戊二醛溶液固定2小时。待自然干燥后,喷金,采用SEM观察。
如图10所示,采用灌注式生物反应器进行细胞接种的培养组与传统方法培养组,接种细胞16小时后,在材料上均有细胞贴附。但是相较于传统方法培养组,反应器组中在支架材料内部可贴附更多的种子细胞,且分布更为均匀。而传统方法培养组,种子细胞大多聚集在材料的表面和浅层,而在材料内部,仅有少量的种子细胞。培养3天后,两组支架材料中的种子细胞均进行了大量增殖,但反应器组的细胞分布、密度优于传统方法培养组。7天与14天后,反应器组支架材料的内部贴附细胞密度较3天时增大,而传统方法培养组的材料内部细胞增殖不明显。
实施例六:阿尔玛蓝细胞增殖实验(AlamarBlue KIT)
细胞经生物反应器复合于支架材料,取材料正中2mm厚的薄片,转移至48孔板中,以300μl培养液置于培养箱中培养,达各时间点后加入30μlAlamarBlue母液,继续置于37℃、5%CO2恒温培养箱中3小时,吸取上清液100μl于96孔板中,作为实验组(生物反应器复合法)4例,对照组(常规复合方法)4例,同时设立空白对照(无细胞复合的材料)4例和调零组样本(无细胞无支架材料)4例,共同于530nm-600nm下测荧光值。除第一次外,每次吸取上清液后均以PBS漂洗材料,再加入新鲜培养液培养。
如图11所示,各时间点反应器培养组细胞的数量均高于传统培养组,两组在10天后,细胞数量进入了平台期,但反应器培养组的水平远高于传统培养组。