CN102229932B - 可识别hcv e1e2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 - Google Patents
可识别hcv e1e2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102229932B CN102229932B CN 201110148431 CN201110148431A CN102229932B CN 102229932 B CN102229932 B CN 102229932B CN 201110148431 CN201110148431 CN 201110148431 CN 201110148431 A CN201110148431 A CN 201110148431A CN 102229932 B CN102229932 B CN 102229932B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- nucleic acid
- aptamer
- screening
- hcv
- acid aptamer
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种可识别HCV E1E2蛋白的核酸适体,其为SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:5中任一序列所示的DNA片段,其衍生物为包括核苷酸取代后的RNA核酸适体、骨架改造后的衍生物、改造为肽核酸后的衍生物以及连接上放射性分子后的衍生物。该核酸适体的筛选方法包括:先制备带组氨酸标签的丙型肝炎病毒E1E2蛋白,再制备带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白;然后对蛋白进行固定,并设计随机核酸文库;最后进行核酸适体的筛选,筛选过程具体又包括DNA文库预处理、反筛、正筛及反复筛选等步骤,最后获得竞争能力强、序列长度得到优化的核酸适体。本发明的核酸适体及其衍生物可用于制备丙型肝炎病毒E1E2蛋白的检测试剂盒或诊断试剂,还可用于制备抑制丙型肝炎病毒感染肝细胞的试剂。
Description
技术领域
本发明属于遗传工程技术领域,尤其涉及一种核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用。
背景技术
丙型肝炎病毒(HCV)感染是一种危害严重的全球性健康问题,全世界已有2亿感染者。据估计,每年新增感染者数为300~400万。我国约有4000万至5000万人感染HCV,仅次于乙型肝炎携带者数量。
目前,治疗丙型病毒肝炎的标准方法是采用干扰素或者干扰素联合利巴韦林治疗。在治疗感染基因型2型和3型HCV的患者中有75%~90%的HCV根除率,然而,仍有约50%的1型和4型HCV感染的病人不敏感。虽然加入利巴韦林能够增强持久的抗病毒应答水平,但也能带来严重的副作用(如溶血性贫血),这些副作用常常导致20%的患者中断治疗。由于HCV基因组有极大的序列差异性,加之组合疗法的副作用大和治疗价格昂贵,急需开发新方法来有效治疗不同HCV基因型感染的肝病患者。
核酸适体(Aptamer)是通过指数富集配体系统进化技术(SELEX)从人工合成的DNA/RNA文库中筛选得到的能高亲和性、高特异性结合生物靶标的单链寡核酸分子(ssDNA或ssRNA)。核酸适体的靶标包括多肽、蛋白质、细胞甚至组织等。核酸适体的分子识别功能与抗体类似,识别能力与抗体分子相当甚至更强,但自身又具有许多显著优点,如分子量小、易保存、无免疫原性、容易合成标记、穿透组织能力强、化学稳定性好等,在抗病毒治疗领域具有重要的应用前景。
作为一种严重危害人类健康的病毒,HCV编码约3100个氨基酸残基组成的多聚蛋白,该蛋白在机体和病毒蛋白酶作用下可分解为核心蛋白(core)、E1、E2结构蛋白及p7、NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A、NS5B非结构蛋白,其中高度糖基化的E1E2蛋白在病毒进入细胞的过程中起了重要作用,因此,以E1E2作为特定靶点筛选与其特异结合的核酸适体,然后以这些特异识别靶标的核酸适体作为靶向药物阻碍HCV对细胞的感染,将为丙型病毒性肝炎的有效治疗开辟新的途径。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有技术的不足,提供一种能与细胞外的丙型肝炎病毒特异高效结合、能阻断E1E2蛋白与细胞识别受体相互作用、且具有显著的抗HCV感染能力的核酸适体及其衍生物,并相应提供易于制备、成本低廉的该核酸适体的筛选方法和应用。
为解决上述技术问题,本发明提出的技术方案为一种可识别HCV E1E2蛋白的核酸适体(aptamer),其为SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:6中任一序列所示的DNA片段。
上述技术方案的核酸适体中,六种不同序列的DNA片段依次如下:
核酸适体序列1(以下简称E1E2-1):5’-GGTATGTGGAATAATCTAGCACCTACC-3’;
核酸适体序列2(以下简称E1E2-2):5’-GCAGTGTGGAATAATCTAGCACCCTGC-3’;
核酸适体序列3(以下简称E1E2-3):5’-CAGGAGGAATAATCTAGCTCCTG-3’;
核酸适体序列4(以下简称E1E2-4):5’-CAGGTCGATTAATCTAGGACCTG-3’;
核酸适体序列5(以下简称E1E2-5):5’-CACGTCGATTAAGATTGGACGTG-3’;
核酸适体序列6(以下简称E1E2-6):5’-CACGTCTATTAAGATTGGGACGTG-3’。
作为一个总的技术构思,本发明还提供一种上述核酸适体的衍生物,该衍生物可以为以下a~d中的任意一种:
a)将所述核酸适体进行核苷酸取代后得到的RNA核酸适体;
b)将所述核酸适体骨架改造为硫代磷酸酯骨架后得到的核酸适体衍生物;
c)将所述核酸适体改造为肽核酸后得到的核酸适体衍生物;
d)将所述核酸适体连接上放射性分子(或者其他的肝癌治疗药物)后得到的核酸适体衍生物。
需要说明的是,上述各种衍生物应当具有本发明所述核酸适体相类似的功能,这对于本领域技术人员而言是显而易见的。
作为一个总的技术构思,本发明还提供一种上述的核酸适体的筛选方法,包括以下步骤:
(1)制备丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2:以pJFH1质粒作为PCR扩增的模板,用第一引物对E1E2基因进行PCR扩增,得到PCR扩增产物;用限制性酶EcoR1和HindIII双酶切所述的PCR扩增产物,获得酶切产物;用限制性酶EcoR1和HindIII双酶切原核表达载体pET32a,回收载体骨架;将所述酶切产物和载体骨架连接,得到连接产物;将该连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞,用含氨苄青霉素的LB平板筛选阳性克隆,提取得到重组质粒pET32a-E1E2,表达带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2;再经过大量表达及纯化过程,制得带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2;
(2)制备对照蛋白LacZ:用pET200/D/LacZ蛋白的编码基因与载体上的组氨酸标签的 编码基因融合,表达带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白;再经过大量表达及纯化过程,制得带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白;
(3)蛋白的固定:取Ni-NTA琼脂糖微珠,经预处理后分别分散于步骤(1)制得的带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2和步骤(2)制得的带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白中,经孵育、洗涤后分别得到固定有靶标蛋白的微珠和固定有对照蛋白的微珠;
(4)随机核酸文库的设计:设计两端包含20个核苷酸、中间包括40个核苷酸的随机核酸文库如下:5’-ACGCTCGGATGCCACTACAG(N40)CTCATGGACGTGCTGGTGAC-3’;其中,N40表示40个随机核苷酸;
(5)核酸适体的筛选:
A)DNA文库预处理:将步骤(4)设计的随机核酸文库溶于结合缓冲液中;
B)反筛:将步骤(3)制得的固定有对照蛋白的微珠与所述预处理后的随机核酸文库混合,孵育、洗涤后再进行超滤离心;
C)正筛:将上述超滤离心后的溶液与步骤(3)制得的固定有靶标蛋白的微珠混合,经过孵育、洗涤后转移微珠,再将转移后的微珠进行加热、冷却和离心,收集上清,以上清液中的DNA为模板并利用生物素标记的第二引物对进行PCR扩增,扩增后通过亲和素包被的葡聚糖珠分离生物素标记的PCR扩增产物,然后使双链DNA变性解链,收集生物素标记的DNA单链,脱盐后用于下一轮筛选;
D)反复筛选:重复上述步骤B~步骤C,在重复筛选过程中逐步增加筛选压力,经过多轮反复筛选后,以筛选产物为模板通过第三引物对进行PCR扩增,获得竞争能力强、序列长度得到优化的核酸适体。
上述的核酸适体的筛选方法中,所述步骤(1)中选用的第一引物对优选是指以下序列的引物对:
上游引物:5’-CGCGCGAATTCGCCCAGGTGAAGAATACCAGTAGCAGCTAC-3’和
下游引物:5’-CTGCAGAAGCTTTGCTTCGGCCTGGCCCAACA-3’。
上述的核酸适体的筛选方法中,所述步骤(5)中选用的第二引物对优选是指以下序列的引物对:
FITC-5’-ACGCTCGGATGCCACTACAG-3’和
Biotin-5’-GTCACCAGCACGTCCATGAG-3’。
上述的核酸适体的筛选方法中,所述步骤(5)中选用的第三引物对优选是指以下序列的引物对:
5’-ACGCTCGGATGCCACTACAG-3’和
5’-GTCACCAGCACGTCCATGAG-3’。
上述的核酸适体的筛选方法中,所述步骤(1)和步骤(2)的大量表达及纯化过程优选包括以下步骤:
先用相应的重组质粒转化大肠杆菌BL21感受态细胞,得到重组菌;然后将重组菌接种到LB培养基,37℃振荡培养过夜,再按一定体积比转接到含氨苄青霉素的LB培养基中,37℃振摇培养数小时,加入异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)继续培养诱导至少12h;离心收集菌体,在含溶菌酶的结合缓冲液中超声破碎,离心,收集裂解上清;将裂解上清上样于镍离子偶联的琼脂糖黏附柱,用洗涤缓冲液洗涤去除杂蛋白,用洗脱缓冲液洗脱目的蛋白,得到带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2或带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白。
作为一个总的技术构思,本发明还提供一种上述的核酸适体或者其衍生物在制备丙型肝炎病毒E1E2蛋白检测试剂盒或丙型肝炎病毒E1E2蛋白诊断试剂中的应用。
作为一个总的技术构思,本发明还提供一种上述的核酸适体或者其衍生物在制备抑制丙型肝炎病毒感染肝细胞的试剂中的应用。
与现有技术相比,本发明的优点在于:本发明旨在通过原核表达技术表达丙型肝炎病毒(HCV)E1E2蛋白,并利用SELEX技术筛选出特异性结合E1E2蛋白的核酸适体,经实验和研究表明,利用本发明的核酸适体与细胞外的丙型肝炎病毒特异、高效结合可封闭E1E2糖蛋白的活性位点,进而阻断E1E2蛋白与细胞识别受体的相互作用,导致丙型肝炎病毒无法穿过细胞膜进入细胞。本发明提供的上述核酸适体是包括有多种不同序列组成的单链DNA,上述各种序列的核酸适体与丙型肝炎病毒E1E2蛋白均具有较好的亲和能力,具有低成本、高效、特异抑制HCV感染等功能;通过修饰或改造该核酸适体还可得到用于HCV诊断和临床治疗的各种衍生物,以解决目前HCV治疗方法存在的成本高、副作用大且对部分患者无治疗效果等问题。总的来说,本发明的核酸适体易制备、成本低、易保存、具有显著的抗病毒感染能力,具有广阔的应用前景。
附图说明
图1为本发明实施例中带组氨酸标签的丙型肝炎病毒E1E2蛋白的western-blot表征图。
图2为本发明实施例中带组氨酸标签的LacZ蛋白的western-blot表征图。
图3为本发明实施例中E1E2核酸适体抗HCV病毒感染的Realtime PCR检测结果。
图4为本发明实施例中E1E2核酸适体抗HCV病毒感染的FFU检测结果。
图5为本发明实施例中E1E2核酸适体抗HCV病毒感染的荧光成像检测结果。
具体实施方式
以下结合说明书附图和具体实施例对本发明作进一步描述,以便于更好地理解本发明, 但并不因此而限定本发明。如无特别说明,下述实施例中所用的原材料均购自常规生化试剂公司,实施例中的各定量实验均设置三次重复实验,结果取平均值。
实施例:可识别HCV E1E2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用。
1.相关蛋白的制备。
11带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2(即靶标蛋白)的制备。
1.1.1HCV包膜蛋白E1E2的编码基因的扩增
以pJFH1质粒作为PCR扩增的模板,用以下引物1和引物2组成的第一引物对E1E2基因进行PCR扩增(PCR试剂购自Roche公司、100微升PCR管购自Eppendorf公司):
引物1(上游引物):
5’-CGCGCGAATTCGCCCAGGTGAAGAATACCAGTAGCAGCTAC-3’;
引物2(下游引物):
5’-CTGCAGAAGCTTTGCTTCGGCCTGGCCCAACA-3’;
上、下游引物的5’端分别引入EcoR1酶切位点和HindIII酶切位点;
PCR扩增条件为:95℃,2min;95℃,30s,66℃,30s,72℃,2min,35个循环;72℃,7min;PCR扩增完成后得到PCR扩增产物。
11.2原核表达载体的构建
11.2.1用限制性酶EcoR1和HindIII双酶切步骤11.1得到的PCR扩增产物,进而获得酶切产物;
11.2.2用限制性酶EcoR1和HindIII双酶切原核表达载体pET32a vector(Invitrogen公司),回收载体骨架;
11.2.3将步骤11.2.1得到的酶切产物和步骤11.2.2得到的载体骨架连接,得到连接产物;
11.2.4将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞(鼎国公司),用含氨苄青霉素(Amp)的LB平板(LB培养基购自鼎国公司,下同)筛选阳性克隆,提取质粒依次进行酶切鉴定和测序鉴定;
测序结果表明,上述步骤11.2.1~11.2.4得到了重组质粒pET32a-E1E2;在EcoR1和BamH1酶切识别位点之间插入了E1E2目的序列,丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2目的基因与载体上的组氨酸标签的编码基因融合,表达带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2。
11.3带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2的原核表达鉴定
11.3.1将以上步骤11.2得到的重组质粒pET32a-E1E2转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞(Invitrogen公司),用含氨苄青霉素的LB平板筛选阳性克隆;
11.3.2挑取阳性克隆于LB液体培养基,37℃振摇过夜,加入IPTG(终浓度1mmol/L) 继续培养诱导10h;
11.3.3在13000rpm条件下离心1min,收集菌体进行SDS-PAGE电泳和Western blot。Western blot的一抗为anti-his(购自Sigma公司);Western blot的结果见图1,结果表明,菌体中含有带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2。
11.4带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2的大量表达、纯化及检测
11.4.1将重组质粒pET32a-E1E2转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞,得到重组菌;
11.4.2将步骤11.4.1得到的重组菌接种LB培养基,37℃振荡培养过夜,按1∶50的体积比转接到含50μg/ml氨苄青霉素的LB培养基中,37℃振摇培养约2h(使OD600为0.6~0.8),加入IPTG(终浓度1mmol/L)继续培养诱导12h;
11.4.3在3500rp条件下离心收集菌体,在含100μg/ml溶菌酶(鼎国公司)的start buffer(0.02M磷酸钠,0.5M NaCl,pH7.4)中超声破碎(频率120w,每个循环内超声3s停3s,400个循环,在冰浴上进行),4℃、10000rpm离心10min,收集裂解上清;
1.1.4.4将裂解上清上样于Ni-NTA偶联的琼脂糖黏附柱(购自GE公司),用washing buffer(0.02M磷酸钠,0.5M NaCl,0.05M咪唑,pH7.4)洗涤去除杂蛋白,用elution buffer(0.02M磷酸钠,0.5MNaCl,0.5M咪唑,pH7.4)洗脱目的蛋白,得到带组氨酸标签的丙型肝炎病毒包膜蛋白E1E2。
1.2带组氨酸标签的对照蛋白LacZ的制备
1.2.1将pET200/D/LacZ(质粒pET200/D/LacZ购自Invitrogen公司)蛋白的编码基因与载体上的组氨酸标签的编码基因融合,表达带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白。
1.2.2带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白的原核表达鉴定
1.2.2.1将重组质粒pET200/D/LacZ转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞,用含卡那霉素的LB平板筛选阳性克隆;
1.2.2.2挑取阳性克隆于LB液体培养基,37℃振摇过夜,加入IPTG(终浓度1mmol/L)继续培养诱导10h;
1.2.2.3在13000rpm条件下离心1min,收集菌体进行SDS-PAGE电泳和Western blot,Western blot的一抗为anti-his(购自Sigma公司),Western blot的结果见图2,结果表明,菌体中含有带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白。
1.2.3用重组质粒pET200/D/LacZ代替重组质粒pET32a-E1E2,其它操作与步骤11中的步骤11.4相同,得到带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白。
2.核酸适体的筛选和制备。
2.1蛋白的固定
2.1.1取镍离子琼脂糖微珠(QIAGEN公司)置于5ml离心管中,移走上清,PBS缓冲液(Hyclone公司)洗涤三次;
2.1.2将步骤2.1.1得到的微珠分别和步骤11制得的带组氨酸标签的丙型肝炎病毒NS5A蛋白(即靶标蛋白)或步骤1.2制得的带组氨酸标签的pET200/D/LacZ蛋白(即对照蛋白)混合均匀,室温孵育1h,PBS缓冲液离心洗涤三次,得到固定有靶标蛋白的微珠和固定有对照蛋白的微珠;
2.1.3将步骤2.1.2得到的微珠重新分散于1ml PBS缓冲液中,置于4℃备用。
2.2随机核酸文库的设计
设计两端包含20个核苷酸、中间包括40个核苷酸的随机核酸文库如下:
5’-ACGCTCGGATGCCACTACAG(N40)CTCATGGACGTGCTGGTGAC-3’;
N40代表40个随机核苷酸。
2.3核酸适体的筛选
2.3.1DNA文库预处理:将随机核酸文库溶于结合缓冲液中;
2.3.2反筛:将随机核酸文库与步骤2.1.2制得的固定有对照蛋白的微珠混合,37℃孵育1~2小时;经结合缓冲液洗涤后,将微珠通过超滤离心;
2.3.3正筛:将反筛过程中超滤离心的溶液加入步骤2.1.2制得的固定有靶标蛋白的微珠中,37℃孵育1~2小时;将微珠通过超滤离心洗涤后,用灭菌水将微珠转移到离心管中;将微珠经95℃加热10min、冰上冷却10min、高速离心后,收集上清液并以其中的DNA为模板,用含FITC或生物素标记的第二对引物(FITC-5’-ACGCTCGGATGCCACTACAG-3’和Biotin-5’-GTCACCAGCACGTCCATGAG-3’)进行PCR扩增;扩增后通过亲和素包被的葡聚糖珠分离生物素标记的PCR产物,然后利用0.2M的氢氧化钠使双链DNA变性解链,收集FITC标记的DNA单链,这些DNA单链脱盐后用于下一轮筛选;
2.3.4反复筛选:为了获得高亲和性和特异性结合靶标蛋白的核酸适体,在筛选的过程中逐步改变反筛和正筛的蛋白量、筛选时间、筛选溶液中tRNA含量以及正筛洗涤次数,以增加筛选压力;经过八轮的反复筛选后,以筛选产物为模板并通过第三对引物(5’-ACGCTCGGATGCCACTACAG-3’和5’-GTCACCAGCACGTCCATGAG-3’)进行PCR扩增,将PCR产物进行测序;这样得到的核酸适体较长,经结构分析后,设计并合成一系列经截短的核酸序列,与荧光染料修饰的全长核酸适体进行竞争反应,挑选竞争能力最强的结合序列用于进一步的应用,优化后的序列长度可减少至原序列的二分之一。
经过上述的筛选、优化,最终得到截短的核酸适体(E1E2)序列如下:
E1E2-1:5’-GGTATGTGGAATAATCTAGCACCTACC-3’;
E1E2-2:5’-GCAGTGTGGAATAATCTAGCACCCTGC-3’;
E1E2-3:5’-CAGGAGGAATAATCTAGCTCCTG-3’;
E1E2-4:5’-CAGGTCGATTAATCTAGGACCTG-3’;
E1E2-5:5’-CACGTCGATTAAGATTGGACGTG-3’;
E1E2-6:5’-CACGTCTATTAAGATTGGGACGTG-3’。
3.核酸适体E1E2(E1E2aptamers)试剂对HCV感染Huh7.5细胞的抑制作用。
3.1细胞培养
Huh7.5细胞培养在四个6孔细胞培养板(20万/孔)中,其中两个6孔细胞培养板含玻璃片,生长24h后待处理。
3.2HCV病毒与核酸适体孵育
将上述筛选得到的各不同序列的核酸适体E1E2送于公司(TaKaRa)合成,然后将合成的核酸适体粉末溶于灭菌水,得到六种不同的核酸适体E1E2试剂,最后将100nM浓度的核酸适体文库(Library,对照)或各核酸适体E1E2试剂分别加入到1mL病毒上清(HCVcc)中,在室温摇床上(100rpm)孵育1h。
3.3细胞处理及E1E2aptamers抑制HCV感染的定量分析
经各核酸适体E1E2试剂处理后的HCV病毒感染Huh7.5细胞,24h后换新鲜培养基,继续培养48h。其中两个六孔细胞培养板(不含玻璃片)用TRIZOL法提取细胞总RNA,然后将总RNA逆转录成cDNA,以cDNA为模板进行实时荧光定量PCR,对各样品进行相对定量,数据处理和汇总后的结果如图3所示。结果表明,对比核酸适体文库(Library),各不同序列的核酸适体E1E2(E1E2-1~E1E2-6)都具有阻断HCV感染的生物学效果,其中E1E2-1aptamer、E1E2-2aptamer、E1E2-5aptamer和E1E2-6aptamer的抑制效果最为明显,都具有统计学上的显著性差异(T-Test检测)。以上实验结果为三次以上重复实验所得。
剩下的两个六孔细胞培养板(含玻璃片)用丙酮固定,然后将6孔板中的盖玻片夹出来做免疫荧光(免疫荧光用到的材料包括载玻片和盖玻片(SPI Supplies公司)、免疫组化笔(ZLI-9305,PAP Pen)、1×PBS(Hyclone公司)、羊血清(Invitrogen公司)、抗HCVNS5A抗体(自制)、二抗goat anti-mouse IgG(FITC)(Invitrogen公司)、DAPI(Invitrogen公司)等),然后在荧光显微镜下观察和统计FFU(focus forming unit,FFU),FFU的数量能表征有感染活力的病毒数量。各样品的免疫荧光照片如图5所示,从图5中可以很明显地看出,加核酸适体文库(Library)处理的对照组阳性细胞(被HCV感染的Huh7.5细胞)很多,即病毒感染面积很大,而加E1E2-1aptamer、E1E2-2aptamer、E1E2-5aptamer和E1E2-6aptamer处理的实验组阳性细胞(被HCV感染的Huh7.5细胞)相比对照组急剧减少了,即病毒感染 面积显著性减小。具体的FFU个数统计如图4所示,从图4中可以看出,对比Library处理组,经E1E2-1aptamer、E1E2-2aptamer、E1E2-5aptamer和E1E2-6aptamer处理的HCV病毒上清感染Huh7.5细胞的FFU数都减少了,其中E1E2-2aptamer、E1E2-5aptamer和E1E2-6aptamer处理组FFU数减少得最为明显。
综合以上实验数据和结果表明:以E1E2蛋白为靶分子的E1E2-1~E1E2-6aptamer具有非常强的阻断HCV感染肝癌Huh7.5细胞的生物学效果,相应的该核酸适体试剂能够有效阻断HCV病毒在细胞内的繁殖和扩增,这为开发制备用于治疗丙型病毒肝炎及肝癌药物奠定了良好的基础,在HCV感染细胞机制研究和抗HCV新方法的建立等领域具有重要的科学实用价值,具有广阔的医学应用及市场前景。
利用上述的可识别HCVE1E2蛋白的核酸适体分别制备以下四种衍生物:
a)将本实施例的各核酸适体进行核苷酸取代后得到的RNA核酸适体;
b)将本实施例的各核酸适体骨架改造为硫代磷酸酯骨架后得到的核酸适体衍生物;
c)将本实施例的各核酸适体改造为肽核酸后得到的核酸适体衍生物;
d)将本实施例的各核酸适体连接上放射性分子后得到的核酸适体衍生物。
很明显,通过常规实验可以发现,上述核酸适体的衍生物具有与上述核酸适体相类似的功能和效果。
Claims (3)
1.一种识别HCV E1E2蛋白的核酸适体,其为SEQ ID NO:1序列所示的DNA片段。
2.一种如权利要求1所述的核酸适体在制备丙型肝炎病毒E1E2蛋白检测试剂盒或丙型肝炎病毒E1E2蛋白诊断试剂中的应用。
3.一种如权利要求1所述的核酸适体在制备用于抑制丙型肝炎病毒感染肝细胞的试剂中的应用。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201110148431 CN102229932B (zh) | 2011-06-03 | 2011-06-03 | 可识别hcv e1e2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201110148431 CN102229932B (zh) | 2011-06-03 | 2011-06-03 | 可识别hcv e1e2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102229932A CN102229932A (zh) | 2011-11-02 |
CN102229932B true CN102229932B (zh) | 2013-02-27 |
Family
ID=44842537
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 201110148431 Expired - Fee Related CN102229932B (zh) | 2011-06-03 | 2011-06-03 | 可识别hcv e1e2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102229932B (zh) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102703454B (zh) * | 2012-06-27 | 2014-02-26 | 湖南大学 | 可用于检测肌红蛋白的核酸适体、筛选用微流控芯片及其筛选方法和应用 |
CN102965378B (zh) * | 2012-11-14 | 2014-10-15 | 广西安仁欣生物科技有限公司 | 一种糖化血红蛋白的核酸适体及其制备方法 |
CN104109675B (zh) * | 2012-11-14 | 2016-07-06 | 广西安仁欣生物科技有限公司 | 一种糖化血红蛋白的核酸适体及其制备方法 |
CN104109674B (zh) * | 2012-11-14 | 2016-07-06 | 广西安仁欣生物科技有限公司 | 一种糖化血红蛋白的核酸适体及其制备方法 |
PL225448B1 (pl) | 2013-05-17 | 2017-04-28 | Univ Jagielloński | Aptamer DNA rozpoznający metkę histydynową oraz jego zastosowanie |
CN104745590A (zh) * | 2015-03-23 | 2015-07-01 | 莱萌科医疗技术有限公司 | 可检测癌症病人血清内enox2蛋白的核酸适配子及其应用 |
CN109321564A (zh) * | 2018-10-30 | 2019-02-12 | 廖世奇 | 一种融合蛋白核酸适配体筛选方法及试剂盒 |
CN110859840A (zh) * | 2019-11-29 | 2020-03-06 | 湖南大学 | 烟酸在制备慢性乙型肝炎治疗药物中的用途 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101538614A (zh) * | 2009-04-28 | 2009-09-23 | 谭蔚泓 | 一种筛选疾病标志物的方法 |
CN101942445B (zh) * | 2010-07-19 | 2012-05-30 | 谭蔚泓 | 核酸适体衍生物及其在制备药物载体中的应用 |
CN101538613B (zh) * | 2009-04-28 | 2012-06-20 | 谭蔚泓 | 与疾病相关的分子探针及其制备方法 |
CN101955939B (zh) * | 2009-04-28 | 2012-07-25 | 中国科学院化学研究所 | 用于不同亚型非小细胞肺癌分型的核酸适体及其筛选方法 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2867784B1 (fr) * | 2004-03-17 | 2006-06-09 | Commissariat Energie Atomique | Aptameres selectionnes a partir de cellules vivantes tumorales et leurs applications |
-
2011
- 2011-06-03 CN CN 201110148431 patent/CN102229932B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101538614A (zh) * | 2009-04-28 | 2009-09-23 | 谭蔚泓 | 一种筛选疾病标志物的方法 |
CN101538613B (zh) * | 2009-04-28 | 2012-06-20 | 谭蔚泓 | 与疾病相关的分子探针及其制备方法 |
CN101955939B (zh) * | 2009-04-28 | 2012-07-25 | 中国科学院化学研究所 | 用于不同亚型非小细胞肺癌分型的核酸适体及其筛选方法 |
CN101942445B (zh) * | 2010-07-19 | 2012-05-30 | 谭蔚泓 | 核酸适体衍生物及其在制备药物载体中的应用 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
Christopher R. Ireson ET AL.Discovery and development of anticancer aptamers.《Molecular Cancer Therapeutics》.2006,2957-2962. * |
Hui William Chen ET AL.Molecular Recognition of Small-Cell Lung Cancer Cells Using Aptamers.《ChemMedChem》.2008,991-1001. * |
张贝等.核酸适配子及其在肿瘤诊断与治疗中的应用.《国际肿瘤学杂志》.2006,756-759. * |
詹林盛等.随机单链DNA文库SELEX筛选寡核苷酸适配子方法的建立.《生物化学与生物物理进展》.2003,151-155. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102229932A (zh) | 2011-11-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102229932B (zh) | 可识别hcv e1e2蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 | |
Mannová et al. | Activation of the N-Ras–PI3K–Akt-mTOR pathway by hepatitis C virus: control of cell survival and viral replication | |
Morita et al. | Clinical significance and potential of hepatic microRNA‐122 expression in hepatitis C | |
CN102121009B (zh) | 特异结合丙型肝炎病毒核心蛋白的核酸适体及其应用 | |
Sun et al. | Analysis of protein expression changes of the Vero E6 cells infected with classic PEDV strain CV777 by using quantitative proteomic technique | |
CN111849994A (zh) | SARS-CoV-2 S蛋白或RBD蛋白的核酸适配体及其应用 | |
Wang et al. | TIM-1 promotes hepatitis C virus cell attachment and infection | |
CN106801109B (zh) | 一种猪非典型瘟病毒rt-pcr检测特异性引物、试剂盒及检测方法 | |
CN104004763B (zh) | 一种亲和丙型病毒性肝炎核心蛋白的核酸适体及其应用 | |
Wilson et al. | miR‐122 promotion of the hepatitis C virus life cycle: Sound in the silence | |
CN103923887A (zh) | 含戊型肝炎病毒rna片段的假病毒颗粒及其制备方法 | |
CN116254270A (zh) | 抗严重急性呼吸系统综合征ii型冠状病毒sars-cov-2的中和抗体 | |
CN108715849A (zh) | 一种有效以Cas13a为基础的抗登革病毒的核酸靶点及其应用 | |
Li et al. | Inhibition of hepatitis B virus (HBV) gene expression and replication by HBx gene silencing in a hydrodynamic injection mouse model with a new clone of HBV genotype B | |
Eng et al. | Internal initiation stimulates production of p8 minicore, a member of a newly discovered family of hepatitis C virus core protein isoforms | |
Shi et al. | Genomic expression profiling of peripheral blood leukocytes of pigs infected with highly virulent classical swine fever virus strain Shimen | |
Yeşilbağ et al. | Presence of bovine hepacivirus in Turkish cattle | |
de Souza et al. | First report of equine pegivirus in South America, Brazil | |
Silva et al. | Endogenous hepatitis C virus homolog fragments in European rabbit and hare genomes replicate in cell culture | |
CN102864150B (zh) | 一种可识别hcv ns5a蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 | |
Thomssen et al. | Virolytic action of lipoprotein lipase on hepatitis C virus in human sera | |
CN102229933A (zh) | 可识别hcv ns5a蛋白的核酸适体、核酸适体的衍生物及其筛选方法和应用 | |
CN104212821B (zh) | Bcr‑abl融合蛋白突变体及其编码基因、表达载体及其构建方法和应用 | |
CN103952410B (zh) | 一种有效抑制大鼠FoxO3a基因表达的shRNA及其应用 | |
Yun et al. | Dynamic analysis of hepatitis C virus polymorphism in patients with orthotopic liver transplantation |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20130227 Termination date: 20200603 |