CN102191034A - 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用 - Google Patents

一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN102191034A
CN102191034A CN2010101176879A CN201010117687A CN102191034A CN 102191034 A CN102191034 A CN 102191034A CN 2010101176879 A CN2010101176879 A CN 2010101176879A CN 201010117687 A CN201010117687 A CN 201010117687A CN 102191034 A CN102191034 A CN 102191034A
Authority
CN
China
Prior art keywords
ethyl
aqueous solution
amino butyl
cyclic hydrazide
acid cyclic
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN2010101176879A
Other languages
English (en)
Inventor
崔华
田大勇
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
University of Science and Technology of China USTC
Original Assignee
University of Science and Technology of China USTC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by University of Science and Technology of China USTC filed Critical University of Science and Technology of China USTC
Priority to CN2010101176879A priority Critical patent/CN102191034A/zh
Priority to US13/582,434 priority patent/US9410950B2/en
Priority to PCT/CN2010/075064 priority patent/WO2011106963A1/zh
Priority to CN2011800015815A priority patent/CN102362182B/zh
Priority to PCT/CN2011/070843 priority patent/WO2011107003A1/zh
Publication of CN102191034A publication Critical patent/CN102191034A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
    • G01N33/54346—Nanoparticles
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/551—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being inorganic
    • G01N33/553—Metal or metal coated
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
    • G01N33/582—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with fluorescent label
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
    • G01N21/76—Chemiluminescence; Bioluminescence

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Catalysts (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金及其制备方法和应用。该功能化纳米金，由金纳米粒子和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺连接而成，所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺连接在所述金纳米粒子的表面。本发明用N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺直接还原氯金酸制备纳米金，在合成过程中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺同时作为还原剂和稳定剂。该方法具有简单、快速、无需特殊条件等优点，是一种温宽为15-35℃合成纳米金的新技术。由该方法合成得到的纳米金的粒径和形貌，可以由氯金酸与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的比例进行调控，并且所得的纳米金具有优良的化学发光特性。本发明还公开了一种生物分析探针，它是由N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金与生物分子结合形成的，可作为免疫分析、核酸分析、分子成像、传感器等的分析探针，在生物医学、食品安全、环境监测等领域具有广阔的应用前景。

Description

一种N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用
技术领域
本发明涉及一种N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金及其制备、性质和应用。属于材料科学和生化学中的领域。
背景技术
金纳米材料具有独特的、与尺寸相关的光学、热学、电学、磁学以及化学等方面的性质，如表面等离子体共振吸收(SPR)、拉曼散射(RS)、催化活性和生物相容性，这些特性使得金纳米材料在催化、生物传感器、生物医学等方面具有重要的应用。大量研究表明，金纳米材料的性质受其形貌、尺寸和表面组成的强烈影响，因此金纳米材料的合成方法和性质研究对纳米材料的基础理论研究及其实际应用都具有重要意义。
金纳米材料的功能化主要包括两个方面的方向和内容：其一是获得形貌和大小可控的金纳米材料，以调节器SPR吸收性质和催化活性；其二是对已有的金纳米材料进行表面修饰，使得金纳米材料具有其表面配体的丰富性质，如荧光性质、氧化还原性、生物活性和电化学活性。
在各种形貌的金纳米颗粒的制备研究中，起步最早的是对球形金纳米粒子的制备研究。现已能成功制备尺寸在几纳米至数百纳米范围内各种尺寸、分散性好的球形金颗粒。虽然金纳米颗粒的SPR吸收会随着颗粒尺寸的变化有所迁移，但是迁移范围不大。相比而言，改变纳米颗粒的形貌是调节其SPR特性更有效的手段，以棒状或线状金纳米为典型代表的各向异性金纳米材料如纳米片、纳米花等独特可调的SPR吸收性能是近年来该领域的研究热点。
在金纳米材料的表面修饰上，常见的金纳米粒子表面往往为无机离子和有机分子层所保护，这些保护分子在稳定纳米金粒子的同时还能保持其自身的光学、电化学或氧化还原活性，因此将各种具有光学、电化学活性的有机分子或生物分子修饰到纳米材料表面或掺杂到纳米材料内部也是相应功能化纳米材料的另一种有效方式。由于金属纳米材料内部结构较为致密，因此对于金属纳米材料多采用表面化学修饰的方法进行功能化。如利用金和硫之间的强相互作用，以硫醇分子作为金纳米粒子表面的配体以稳定纳米金粒子，是近十年来制备稳定的金纳米最有效的方法(Brust，M.；Wallker，M.；Bethell，D.J.Chem.Soc.Chem.Commun.，1994，801)。
纳米粒子特殊的光学性质包含着有关纳米粒子能级结构和表面状态等的丰富信息，一直以来都是纳米科学研究的重点之一。目前对于纳米材料光学性质的研究主要包括表面等离子体共振吸收、表面增强拉曼散射和光致发光等光学行为。
化学发光是伴随化学反应的一种光发射现象，与以上光学现象不同，化学发光不需要外界光源激发，具有灵敏度高、线性范围宽、背景噪声小、仪器简单、价格便宜等优点。而近几年，金属纳米材料在化学发光中的应用也已成为一个重要的研究课题。尽管半导体量子点的化学发光、金属纳米材料直接和间接参与的化学发光已经逐渐受到研究者的关注，但目前的研究主要集中于未修饰的纳米材料直接参与、或在其他条件诱导下参与化学发光，改性或功能化金纳米材料在化学发光理论及分析应用中的研究工作则鲜见报道。2005年，Roux等人(Roux，S.；Garcia，B.；Bridot，J.L.；Salom，Marquette，C.Langmuir.2005，21，2526)用二氢硫辛酸作为保护试剂，硼氢化钠(NaBH4)还原氯金酸(氯金酸.3H2O)合成了二氢硫辛酸保护的纳米金。利用1-乙基-3-(3-二甲基氨丙基)-碳化二亚胺(EDC)和N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)活化纳米金表面的二氢硫辛酸的羧基，然后通过鲁米诺的-NH2和二氢硫辛酸的-COOH进行缩合反应将鲁米诺嫁接到纳米金的表面。这个过程需要多步反应、沉淀洗涤、减压蒸馏、过滤、分散等多个步骤才能完成，非常麻烦、耗时。研究结果表明通过二氢硫辛酸键合到纳米金表面的鲁米诺仍具有较好电致化学发光活性。2007年，本课题组直接利用鲁米诺还原氯金酸一步合成得到了鲁米诺直接键合的纳米金(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)，表征的结果显示鲁米诺以弱的Au-N键直接连接到纳米金的表面。通过半胱氨酸桥联分子的静电相互作用，将该鲁米诺直接键合的纳米金组装到金电极的表面，发现该修饰电极在碱性溶液中具有电致化学发光活性且强度随H2O2浓度的增加而增强，就此发展了一个H2O2电致化学发光传感器。
N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺是一种鲁米诺的异构体异鲁米诺的衍生物，化学式为C14H20N4O2。常温下是一种白色粉末，是一种比较稳定的人工合成的有机化合物，其化学发光特性优于鲁米诺。因为其分子中的脂肪胺基团容易与被标记物相连接，且保持高的发光效率，所以适合直接作为生物分析的探针。因此，直接利用N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺代替鲁米诺还原氯金酸合成的纳米金有可能获得比鲁米诺直接键合的纳米金化学发光效率更高的发光功能化的纳米金。可是，实验发现在鲁米诺还原氯金酸合成鲁米诺直接键合的纳米金的条件下(即将100mL 0.01％(w/w)的HAuCl4水溶液加热至沸，在冷凝回流并充分搅拌的条件下，加入1.5-2.0mL含有0.01mol/L鲁米诺和0.01mol/L氢氧化钠的溶液，保持沸腾并继续搅拌回流反应30min，然后除去加热源继续搅拌15min以上得到纳米金溶液。)，用N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺代替鲁米诺不能得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺功能化的纳米金溶胶。因此，探索N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺功能化的纳米金的合成方法、化学发光特性及其在生物分析的应用具有重要的意义。
发明内容
本发明的目的是提供N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和在生物分析中的应用，其内容包括以下几个方面：
第一是提供一种功能化纳米金。该功能化纳米金由金纳米粒子和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺连接而成，所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺通过共价键Au-N连接在所述金纳米粒子的表面。
所述功能化纳米金具有化学发光特性。所述功能化纳米金与氧化剂反应产生化学发光。所述氧化剂包括但不限于H2O2、O2、ClO-、I2、IO4 -、MnO4 -。
第二是提供一种上述功能化纳米金的制备方法，包括如下步骤：
(1)将氯金酸水溶液A与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液在搅拌状态下混合得到混合液；所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2-4倍；.
(2)在搅拌状态下，再将氯金酸水溶液B加入步骤(1)得到的混合液中，继续搅拌至形成金溶胶，得到的金溶胶即为功能化纳米金；所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1-3倍。
所述氯金酸水溶液A的摩尔浓度可为1-10mmol/L、1-6mmol/L、6-10mmol/L、6-8mmol/L或8-10mmol/L；
所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液的摩尔浓度可为0.5-8.0mmol/L、0.5-4.0mmol/L、0.5-6.0mmol/L、4.0-6.0mmol/L、4.0-8.0mmol/L或6.0-8.0mmol/L；
所述氯金酸水溶液B的摩尔浓度可为1-10mmol/L、1-6mmol/L或6-10mmol/L。
所述氯金酸水溶液A、N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液和所述氯金酸水溶液B的配比为下述h1-h10中的任一种：
h1、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的4倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1倍；
h2、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的3倍；
h3、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.8倍；
h4、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.3倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.4倍；
h5、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.1倍；
h6、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.4倍；
h7、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍；
h8、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的3倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2倍；
h9、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的27/11倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的18/11倍；
h10、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.25倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.5倍.
所述方法还包括将所述金溶胶通过离心进行纯化的步骤。
所述功能化纳米金可在如下条件下离心：将初始合成的纳米金溶胶在17120*g下离心45分钟，然后将沉淀用蒸馏水或二次水或超纯水溶解。
所述功能化纳米金的制备方法中，其反应温度可以为15-35℃，如15-25℃、15-30℃、25-35℃或25-30℃。
上述步骤(1)的反应时间可为2小时以上，上述步骤(2)的反应时间可为1.5小时以上；N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺同时作为合成过程中的还原剂和稳定剂。
配制所述氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液所用的水的电阻率大于等于1.0MΩ*cm；所述水选自下述三种水中的至少一种：二次蒸馏水、纯净水和超纯水。
上述方法制备的功能化纳米金，其形貌可呈单分散球状、球状纳米金组装的链状或球状纳米金组装的网状，并且粒径大小也可控。其粒径大小为10-30纳米。其形貌呈球状纳米金组装的链状时，链长为400-500纳米。
第三是提供一种生物分析探针，是由上述的功能化纳米金标记生物分子形成的复合物。
所述生物分子为抗体或核酸分子。
所述的生物分析探针为免疫分析探针或核酸分析探针。
所述免疫分析探针制备的方法为下述A或B的方法：
A、将所述抗体分子端基修饰生物素，然后与连接有链霉亲和素的功能化纳米金相连接；
B、将所述抗体分子直接与所述的功能化纳米金相连接。
所述核酸分析探针制备的方法下述a或b的方法：
a、将所述核酸分子端基修饰生物素，然后与连接有链霉亲和素的功能化纳米金相连接；
b、将所述核酸分子端基修饰巯基，然后与所述的功能化的纳米金相连接。
所述的核酸分析探针中所述核酸分子为DNA、RNA或适配体。
与现有技术相比，本发明具有如下的优点：
1.提供了一种新的纳米金的合成方法，该法具有简单、快速、无需特殊条件等优点。
2.首次采用N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺还原氯金酸合成纳米金，在合成过程中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺同时作为还原剂和稳定剂，无需在加入其他反应试剂。此合成方法不同于文献报道(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)的鲁米诺还原氯金酸的合成方法。
3.本发明所合成的纳米金的形貌和粒径，可由N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺和氯金酸的用量来进行调控：可以通过调节步骤(1)中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的量得到不同形貌的纳米金；可调节步骤(2)中氯金酸的量得到不同粒径的纳米金。
4.由该方法所得到的纳米金为发光功能化的纳米金，其表面键合有发光试剂N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺，该发光功能化的纳米金具有优良的化学发光特性。其发光效率优于文献报道的(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)鲁米诺发光功能化的纳米金。
5.将功能化的纳米金作为发光标记物标记生物分子，可构建生物分析探针。制备该生物分析探针的方法简单、快捷、操作简便、结合效果好，克服了现有的以发光试剂和酶为标记物的标记技术操作麻烦、费时、分析成本高等重要缺陷。
附图说明
下面结合附图对本发明作进一步说明。
图1：不同浓度的氯金酸和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金：
A：1.0mmol/L氯金酸+0.5mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+1.0mmol/L氯金酸，得到呈单分散球状的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
B：6mmol/L氯金酸+4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mmol/L氯金酸，得到呈球状纳米金组装的链状的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
C：8mmol/L氯金酸+5mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+10mmol/L氯金酸，得到呈球状纳米金组装的网状的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
D：10mmol/L氯金酸+8mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mmol/L氯金酸，得到呈球状纳米金组装的网状的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
图2：不同氯金酸的用量制备的不同粒径的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的电镜照片，其中：
A：9mL 6mmol/L氯金酸+5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金，其粒径为18nm；
B：9mL 6mmol/L氯金酸+5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+7mL6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金，其粒径为22nm；
C：9mL 6mmol/L氯金酸+5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+8mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金，其粒径为25nm；
D：9mL 6mmol/L氯金酸+5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+9mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金，其粒径为30nm；
图3：不同N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的用量制备的不同形貌的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的电镜照片，其中：
A：9mL 6mmol/L氯金酸+4.5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金呈单分散球状；
B：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金呈球状纳米金组装的链状；
C：9mL 6mmol/L氯金酸+5.5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金呈球状纳米金组装的准网状；
D：9mL 6mmol/L氯金酸+6mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金呈球状纳米金组装的网状；
图4：不同温度下合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金：
A：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸在15℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
B：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/LN-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸在25℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
C：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸在30℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
D：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸在35℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
图5：二次蒸馏水、纯净水和超纯水对合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的影响：
A：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸+30.0mL的二次蒸馏水在25℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
B：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸+30.0mL的纯净水在25℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
C：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL 4mmol/L N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸+30.0mL的超纯水在25℃下制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金；
图6：制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金粒子的X射线电子能谱图与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样的X射线电子能谱图，其中：
A：为N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样中的C1s能谱；
B：为N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样中的N1s能谱；
C：为制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的C1s能谱；
D：为制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的N1s能谱；
E：为制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的Au4f能谱；
图7：制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金粒子的紫外-可见吸收光谱图，其中：
A：纯N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液的紫外-可见吸收光谱；
B：初始N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米的紫外-可见吸收光谱；
C：透析后的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米溶液的紫外-可见吸收光谱；
D：透析-离心-干燥后水分散-盐析-沉淀再溶解后的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米溶液紫外-可见吸收光谱；
E：透析-离心-干燥后水分散-盐析-上清液的紫外-可见吸收光谱；
图8：不同形貌N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金的化学发光曲线(实验条件：制备的发光功能化纳米金粒子离心后的沉淀用pH＝13的NaOH溶液进行分散放入检测池中，再注入浓度为0.1mol/L H2O2溶液)，其中：
A：9mL 6mmol/L氯金酸+4.5mL的4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸；
B：9mL 6mmol/L氯金酸+5.0mL的4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸；
C：9mL 6mmol/L氯金酸+5.5mL的4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸；
D：9mL 6mmol/L氯金酸+6.0mL的4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺+6mL 6mmol/L氯金酸；
图9：pH＝13条件N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺合成的发光功能化纳米金和文献(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)合成的鲁米诺直接键合的发光功能化纳米金的发光比较示意图，其中：
A：500μL经离心分离后的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺合成的发光功能化纳米金再注入400μL浓度为0.1mol/L H2O2溶液的化学发光信号；
B：500μL经离心分离后的鲁米诺合成的发光功能化纳米金再注入400μL浓度为0.1mol/L H2O2溶液的化学发光信号；
图10：基于N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金制备的免疫和核酸分析探针的发光特性
具体实施方式
下面对本发明得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金、该发光功能化的纳米金的制备方法以及基于该发光功能化的纳米金的生物分析探针的具体实施方式进行详细描述。
1.本发明的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金。
该功能化纳米金由金纳米粒子和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺连接而成，所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺通过共价键Au-N连接在所述金纳米粒子的表面。
所述功能化纳米金具有化学发光特性。所述功能化纳米金与氧化剂反应产生化学发光。
根据文献(U.Isacsson，G.Wettermark，Anal.Chim.Acta.1974.68.339.)，所述氧化剂包括但不限于H2O2、O2、ClO-、I2、IO4 -、MnO4 -，本发明以H2O2作为氧化剂为例。
所述功能化纳米金与H2O2反应产生化学发光；其反应条件为：将0.1mol/L H2O2溶液注入到经离心分离后的功能化纳米金溶胶中；其中，H2O2溶液为400μL，功能化纳米金溶胶为500μL。
2.本发明的功能化纳米金的制备方法，包括如下步骤：
(1)将氯金酸水溶液A与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液在搅拌状态下混合得到混合液；所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2-4倍；.
(2)在搅拌状态下，再将氯金酸水溶液B加入步骤(1)得到的混合液中，继续搅拌至形成金溶胶，得到的金溶胶即为功能化纳米金；所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1-3倍。
所述氯金酸水溶液A的摩尔浓度可为1-10mmol/L、1-6mmol/L、6-10mmol/L、6-8mmol/L或8-10mmol/L；
所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液的摩尔浓度可为0.5-8.0mmol/L、0.5-4.0mmol/L、0.5-6.0mmol/L、4.0-6.0mmol/L、4.0-8.0mmol/L或6.0-8.0mmol/L；
所述氯金酸水溶液B的摩尔浓度可为1-10mmol/L、1-6mmol/L或6-10mmol/L。
所述氯金酸水溶液A、N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液和所述氯金酸水溶液B的配比为下述h1-h10中的任一种：
h1、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的4倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1倍；
h2、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的3倍；
h3、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.8倍；
h4、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.3倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.4倍；
h5、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.1倍；
h6、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.4倍；
h7、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍；
h8、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的3倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2倍；
h9、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的27/11倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的18/11倍；
h10、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.25倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.5倍.
所述的功能化纳米金的制备方法，其特征在于，采用了如下具体步骤：
1)将9mL 6.0mmol/L氯金酸水溶液A与30mL水在搅拌状态下混合，然后加入4.5-6mL浓度为4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌；
2)在搅拌状态下，再将6-9mL 6.0mmol/L氯金酸水溶液B加入1)得到的溶液中，继续搅拌至形成金溶胶。
所述方法还包括将所述金溶胶通过离心进行纯化的步骤，具体如下：将初始合成的纳米金溶胶在17120*g下离心45分钟，然后将沉淀用二次蒸馏水或纯净水或超纯水溶解。
所述功能化纳米金的制备方法，其反应温度可以为15-35℃；上述步骤(1)或1)的反应时间为2小时以上，上述步骤(2)或2)的反应时间为1.5小时以上；N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺同时作为合成过程中的还原剂和稳定剂。
配制所述氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液所用的水的电阻率大于等于1.0MΩ*cm；所述水选自下述三种水中的至少一种：二次蒸馏水、纯净水和超纯水。
所述的功能化纳米金，其形貌可呈单分散球状、球状纳米金组装的链状或球状纳米金组装的网状，并且粒径大小也可控。其粒径大小为10-30纳米。其形貌呈球状纳米金组装的链状时，链长为400-500纳米。
增加氯金酸的量，所得到的发光功能化纳米金的粒径逐渐增加；增加N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的量可以分别得到单分散球状、球状纳米金组装的链状或球状纳米金组装的网状的发光功能化的纳米金。
所述的功能化纳米金，其特征在于，在发光试剂用量、氯金酸用量和发光实验条件等同的情况下要比文献(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)合成的鲁米诺直接键合的发光功能化纳米金发光效率高。
3.基于功能化纳米金的一种生物分析探针，是由上述的功能化纳米金标记生物分子形成的。
所述生物分子为抗体或核酸分子。
所述的生物分析探针为免疫分析探针或核酸分析探针。
所述免疫分析探针制备的方法为下述A或B的方法：
A、将所述抗体分子端基修饰生物素，然后与连接有链霉亲和素的功能化纳米金相连接；
B、将所述抗体分子直接与所述的功能化纳米金相连接。
所述免疫分析探针的制备方法A，包括如下步骤：
A)将本发明所得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺直接还原氯金酸的纳米金溶胶中加入链霉亲和素，使其终浓度为25μg/mL。混合均匀后在室温下培育30分钟，再把5％(w/w)的牛血清白蛋白加到溶液中不断搅拌5分钟，使其最终浓度为1％。最后在17120*g下离心20分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，然后将沉淀用含有1％(w/w)的牛血清白蛋白的0.1mol/LpH＝7.4磷酸盐缓冲液溶解，得到连接链霉亲和素的功能化纳米金；
B)在步骤A)中所得的连接链霉亲和素的功能化的纳米金中加入端基经生物素修饰的抗体溶液，在37℃下孵育30分钟，在17120*g下离心30分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，将所得沉淀分散于250μL含有1％(w/w)的牛血清白蛋白的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液溶解。即得到功能化纳米金免疫分析探针。
所述免疫分析探针的制备方法B，包括如下步骤：
将0.5mL的1.0mg/mL抗体分子加到用0.1mol/L的氢氧化钠将pH调至8.0的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺直接还原氯金酸所得到的金胶溶液中去，在室温培育30分钟后，再把5％(w/w)的牛血清白蛋白加到溶液中不断搅拌5分钟，使其最终浓度为1％(w/w)。最后在17120*g下离心30分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，然后将沉淀用含有1％(w/w)的牛血清白蛋白的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液溶解，即得到功能化的纳米金免疫分析探针。
所述核酸分析探针制备的方法为下述a或b的方法：
a、将所述核酸分子端基修饰生物素，然后与连接有链霉亲和素的功能化纳米金相连接；
b、将所述核酸分子端基修饰巯基，然后与所述的功能化的纳米金相连接。
所述核酸分析探针的制备方法a，包括如下步骤：
q1)将本发明所得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺直接还原氯金酸的纳米金溶胶中加入链霉亲和素，使其终浓度为25μg/mL。混合均匀后在室温下培育30分钟，再把5％(w/w)的牛血清白蛋白加到溶液中不断搅拌5分钟，使其最终浓度为1％。最后在17120*g下离心20分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，然后将沉淀用含有0.3mol/L的氯化钠的0.05mol/L pH＝8.0Tris-HCl缓冲液分散，得到连接链霉亲和素的功能化的纳米金；
q2)在步骤q1)中所得的连接链霉亲和素的功能化的纳米金中加入端基经生物素修饰的核酸溶液，在37℃下孵育1小时，在17120*g下离心10分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，将所得沉淀分散于250μL含有0.3mol/L的氯化钠的0.05mol/L pH＝8.0Tris-HCl缓冲液。即得到功能化的纳米金核酸分析探针。
所述核酸分析探针的制备方法b，包括如下步骤：
将功能化的纳米金中加入端基经巯基修饰的核酸溶液，再慢慢加入含有1mol/L氯化钠的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液继续反应40小时。然后在室温下孵育24小时，在17120*g下离心20分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，将所得沉淀分散于0.3mol/L的氯化钠的0.05mol/LpH＝8.0Tris-HCl缓冲液。即得到功能化的纳米金核酸分析探针。
所述的核酸分析探针中所述核酸分子为DNA、RNA或适配体。
下面以实施例1至实施例9进一步说明本发明专利的内容。
实施例1：合成N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金中氯金酸和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺浓度的影响
将10mL 1.0mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 0.5mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入2.5mL 1.0mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金的形貌呈单分散球型，如附图1A所示。单分散球的粒径大小以16纳米为主。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金的形貌呈球状纳米金组装的链状，如附图1B所示。单分散球的粒径大小以18纳米为主。
将10mL 8mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入8mL 5mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入12mL 10mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金的形貌呈球状纳米金组装的网状，如附图1C所示。单分散球的粒径大小以10纳米为主。
将15mL10mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入8mL 8mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入15mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金的形貌呈球状纳米金组装的网状，如附图1D所示。单分散球的粒径大小以9纳米为主。
该实施例中的氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均由超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)配制。
实施例2：N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的合成方法中氯金酸的用量对粒径的影响
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径大小以18纳米为主，如附图2A所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入7mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径大小以22纳米为主，如附图2B所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入8mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径大小以25纳米为主，如附图2C所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径大小以30纳米为主，如附图2D所示。
该实施例中的氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均由超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)配制。
实施例3：N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的合成方法中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的量对形貌的影响
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入4.5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的形貌呈单分散球型，粒径大小以11纳米为主，如附图3A所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的形貌呈球状纳米金组装的链状，球状纳米金粒径以18纳米为主，其链长为400-500纳米，如附图3B所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5.5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的形貌为由球状纳米金组装的准网状，金纳米球粒径以11纳米为主，如附图3C所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入6mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的形貌为由球状纳米金组装的网状，金纳米球粒径以12纳米为主，如附图3D所示。
该实施例中的氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均由超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)配制。
实施例4：温度对N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金合成的影响
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在15℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以13纳米为主，如附图4A所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以18纳米为主，如附图4B所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在30℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以8纳米为主，如附图4C所示。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在35℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以10纳米为主，如附图4D所示。
该实施例中的氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均由超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)配制。
实施例5：二次蒸馏水、纯净水和超纯水对N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金合成的影响
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL二次蒸馏水(电阻率为1.0MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以8纳米为主，如附图5A所示。氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均用二次蒸馏水(电阻率为1.0MΩ*cm)配制。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL纯净水(电阻率为6.1MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以20纳米为主，如附图5B所示。氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均用纯净水(电阻率为6.1MΩ*cm)配制。
将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶，避光保存在4℃下。将所述金溶胶通过离心纯化进行电镜表征。纯化条件为：将1ml所述金溶胶在17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解，得到纯化的功能化纳米金。纯化后的功能化纳米金经电镜分析结果表明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的粒径以18纳米为主，如附图5C所示。氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均由超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)配制。
实施例6：N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺直接还原氯金酸得到的发光功能化纳米金的表征
附图6-7是下述实验条件下得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的表征结果。将实施例1中得到的图1b的金溶胶通过经透析、盐析、两次离心-洗涤并干燥纯化进行征。纯化条件为：渗析过程是将合成的所述金溶胶在常温下渗析2天，每8小时换一次超纯水渗析液，通过渗析操作可以充分去除游离的的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺及其氧化产物；盐析过程是将NaCl加入所述金溶胶中使NaCl的最终浓度为0.5mol/L，形成的沉淀物；二次离心-洗涤的过程是将所述金溶胶在盐析的作用后经17120*g下离心45分钟后，再用超纯水将沉淀物溶解；干燥过程是将所述纳米金溶胶经渗析、盐析和离心-洗涤作用后放入烘箱作用12个小时，温度为40℃。
附图6是N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样品(N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样在TCI东京化成工业株式会社购买，CAS号为66612-29-1)和实施例1中得到的图1b的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金溶胶经透析、盐析、两次离心-洗涤并干燥后的金纳米粒子的Au4f、C1s和N1s的X射线光电子能谱。附图6E显示Au4f双峰(Au4f7/2和Au4f5/2)的自旋-轨道裂分为3.7ev，与文献(Ganesan，P.G.；Singh，A.P.；Ramanath，G.Appl.Phys.Lett，2004，85，579.)报道的零价金纳米粒子相一致。如附图6A所示，N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样品中的C1s能谱包括三个分别位于284.9、286.0和287.3ev的组分。284.9ev的组分来自于N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子中芳香环上的碳原子。286.0ev的组分则与芳香环上和脂肪链上的碳原子相关。287.3ev的组分是由酰胺基团中的碳原子(-CO-NH-)所致。附图6C则显示了N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺还原的金纳米粒子的C1s能谱。与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样的C1s能谱相比，发现了一个位于288.1ev的新组分，其他组分的位置基本与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺各组分的位置相同。因此，C1s能谱数据表明在金纳米粒子表面有N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的各种碳组分，而288.1ev的新组分对应于N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的氧化产物中的羧基碳组分。这一结果表明N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺存在于纳米粒子表面上。
对于N1s能谱实验结果分析与上述讨论也较为一致。如附图6B所示，N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺纯样品包含的399.5ev和400.8ev的组分，而N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化金纳米粒子的N1s能谱也包含了399.2ev和400.3ev两个类似的组分，均分别对应氨基氮原子(-NH2)和酰胺氮原子(-CO-NH-)。考虑到N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺及其氧化产物中均含有氨基氮原子而酰胺氮原子则为N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺所独有，这个结果进一步支持N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺存在金纳米表面。有报道指出对于脂肪胺保护的金纳米粒子而言(Kumar，A.；Mandal，S.；Selvakannan，PR.Langmuir，2003，19，6277.)，除了Au-N弱共价作用之外，还可能存在质子化氨基与带负电的金纳米粒子之间的静电吸引力。在本工作中则未观察到位于402.3eV处的质子化氨基氮原子(-NH3 +)组分(Seitz O，ChehimiMM，Cabet-Deliry E，et al.，Colloids and Surfaces A：Physicochemical and Engineering Aspects，2003，218，225.)，从而排除了N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺以质子化氨基与带负电的金纳米粒子通过静电相互作用连接的可能性。因此，Au-N弱共价相互作用是连接N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺在金纳米粒子表面的唯一作用力。
进一步，用紫外-可见吸收光谱表征了实施例1中得到的图1b的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金。为了避免溶胶中游离反应物和产物对表面鉴定的干扰，首先利用多次透析的方法将小分子溶质与金纳米粒子相分离，并检测透析前后的紫外-可见吸收光谱如附图7所示。渗析条件为：渗析过程是将金溶胶在常温下渗析2天，每8小时换一次超纯水渗析液。与纯的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液(附图7A所示)和刚合成好的金溶胶(附图7B所示)比较，透析后的金溶胶(附图7C所示)在291nm和319nm处的吸收峰显著减弱。该处的吸收峰为N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的特征吸收，这表明溶胶中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺含量在透析后显著降低。更为重要的是，溶胶的最大吸收波长(530nm)保持不变。这表明透析过程不会改变金纳米粒子的分散状态和粒径大小。这些结果表明通过透析离心等方法可以有效的将N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺从溶胶中分离除去，并且保持金纳米粒子的分散性和稳定性。
随后对透析过的金溶胶中加入足量电解质盐使得金纳米粒子团聚并最终沉淀下来。离心后的沉淀物用0.1mol/LNa2CO3重新溶解，并进行紫外-可见吸收光谱表征(附图7D所示)，同样得到了N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的特征峰。与此同时，还在离心后的上清液(附图7E所示)中再次观察到了N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的紫外吸收特征峰。这些结果表明，金纳米粒子表面的保护剂在盐析过程中部分解离下来并在离心之后存在于上清液中，所以能够在上清夜中再次观察到N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的吸收峰。因此，这些结果也表明N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺存在于金纳米粒子表面。
实施例7：N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的发光特性
将实施例3中合成的图3a、图3b、图3c和图3d的1mL不同形貌的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金溶胶17120*g下离心45分钟后的沉淀用300μL pH＝13的NaOH溶液进行分散放入检测池中，再注入100μL浓度为0.1mol/L H2O2溶液，测定其化学发光动力学曲线如附图8所示。实验结果表明发光强度随着发光功能化纳米金粒子形貌呈单分散球型、球状纳米金组装链、球状纳米金组装的准网状和球状纳米金组装的网状(附图8A-D)不断增加，表明本发明合成的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金具有良好的化学发光特性。
附图9是本发明的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化金纳米粒子在发光试剂用量、氯金酸用量和发光实验条件等同的情况下与文献(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)合成的鲁米诺直接键合的发光功能化纳米金发光效率的比较。其实验条件为：将500μL用0.1mol/L的氢氧化钠分散离心分离后的本发明的实施例1中得到的图1b的金溶胶和鲁米诺直接键合的发光功能化纳米粒子放入检测池中(其中本发明的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化金纳米粒子和鲁米诺直接键合的发光功能化纳米粒子中纳米粒子含量都为0.3mmol/L)注入400μL浓度为0.1mol/L H2O2溶液检测化学发光。实验结果发现本发明的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化金纳米粒子(附图9A)在发光试剂用量、氯金酸用量和发光实验条件等同的情况下比文献(Cui，H.；Wang，W.；Duan，C.F.；Dong，Y.P.；Guo，J.Z.Chem.Eur.J.2007，13，6975)合成的鲁米诺直接键合的发光功能化纳米金(附图9B)发光效率高，表明本发明的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金具有很高的发光效率。
实施例8：基于N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金免疫分析探针的制备
所述免疫分析探针的制备可采用下述方案一或方案二：
方案一，包括如下步骤：
A)将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶。
B)将步骤A)中所得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金溶胶中加入链霉亲和素，使其终浓度为25μg/mL。混合均匀后在室温下培育30分钟，再向其中加入5％(w/w)的牛血清白蛋白溶液，不断搅拌5分钟，使牛血清白蛋白最终浓度为1％。最后在17120*g下离心20分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，然后将沉淀用500μL含有1％(w/w)的牛血清白蛋白的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液溶解，得到连接链霉亲和素的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金；
C)在步骤B)中所得的连接链霉亲和素的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金中加入端基经生物素修饰的抗体(生物素修饰的羊抗人IgG)溶液，在37℃下孵育30分钟，在17120*g下离心30分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，将所得沉淀分散于250μL含有1％(w/w)的牛血清白蛋白的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液溶解。即得到N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金免疫分析探针。
方案二，包括如下步骤：
a)将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶。
b)将0.5mL 1.0mg/mL抗体(羊抗人IgG)加到用0.1mol/L的氢氧化钠将步骤a)中所得的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的金胶溶液的pH调至8.0，在室温培育30分钟后，再向其中加入5％(w/w)的牛血清白蛋白溶液，不断搅拌5分钟，使牛血清白蛋白最终浓度为1％(w/w)。最后在17120*g下离心30分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，然后将沉淀用250μL含有1％(w/w)的牛血清白蛋白的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液溶解，即得到N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金免疫分析探针。
实施例9：基于N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的核酸分析探针的制备
所述核酸分析探针的制备可采用下述方案一或方案二：
方案一，包括如下步骤：
(A)将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶。
(B)将步骤(A)中所得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶中加入链霉亲和素，使其终浓度为25μg/mL。混合均匀后在室温下培育30分钟，再向其中加入5％(w/w)的牛血清白蛋白溶液，不断搅拌5分钟，使牛血清白蛋白最终浓度为1％(w/w)最后在17120*g下离心20分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，然后将沉淀用500μL含有0.3mol/L的氯化钠的0.05mol/L pH＝8.0Tris-HCl缓冲液分散，得到连接链霉亲和素的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金；
(C)在步骤(B)中所得的连接链霉亲和素的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金中加入端基经生物素修饰的DNA溶液(碱基序列为GGGTTTATGAAAAACACTTT-biotin)，在37℃下孵育1小时，在17120*g下离心10分钟，以除去未反应试剂和纳米金表面弱结合的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺分子，将所得沉淀分散于250μL含有0.3mol/L的氯化钠的0.05mol/LpH＝8.0Tris-HCl缓冲液。即得到N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金DNA分析探针。
方案二，包括如下步骤：
(a)将9mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液A)和30mL超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)在25℃下搅拌，加入5mL 4mmol/L的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液后持续搅拌2小时后，再加入6mL 6mmol/L氯金酸水溶液(氯金酸水溶液B)继续搅拌1.5小时后，得到稳定的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金溶胶。
(b)根据文献(Demers，L.，M.；Mrikin，C.，A.Anal.Chem.2000，72，5535-5541)将步骤(a)中所得到的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金中加入端基经巯基修饰的DNA溶液(碱基序列为GAT CAG ATT CGC-(CH2)6-SH)，在室温下反应24小时，再慢慢加入含有1mol/L氯化钠的0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液继续反应40小时。最后在17120*g下离心20分钟，将所得沉淀分散于500μL 0.3mol/L的氯化钠的0.05mol/L pH＝8.0Tris-HCl缓冲液。即得到N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金DNA分析探针。
该实施例中的氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液均由超纯水(电阻率为18.2MΩ*cm)配制。
实施例10：基于N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金的免疫和核酸分析探针的发光特性
将1mL由实施例8方案一制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金溶胶标记的免疫分析探针和实施例9方案一制备的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化纳米金溶胶标记的核酸分析探针经离心分离后的沉淀分别用0.1mol/L pH＝7.4磷酸盐缓冲液和含有0.3mol/L氯化钠的0.05mol/L pH＝8.0Tris-HCl缓冲液进行分散放入检测池中，再注入含有1mmol/L过氧化氢的0.02mol/L pH＝9.95的碳酸盐底液，测定其化学发光动力学曲线如附图10所示。表明用本发明的N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金制备的免疫分析探针和核酸分析探针具有良好的化学发光特性。

Claims (23)

1.一种功能化纳米金，由金纳米粒子和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺连接而成，所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺连接在所述金纳米粒子的表面。
2.根据权利要求1所述的功能化纳米金，其特征在于：所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺通过共价键Au-N连接在所述金纳米粒子的表面。
3.根据权利要求1或2所述的功能化纳米金，其特征在于：所述功能化纳米金具有化学发光特性。
4.根据权利要求1或2或3所述的功能化纳米金，其特征在于：所述功能化纳米金与氧化剂反应产生化学发光。
5.根据权利要求4所述的功能化纳米金，其特征在于：所述氧化剂为H2O2、O2、ClO-、I2、IO4 -或MnO4 -。
6.根据权利要求1-5中任一所述的功能化纳米金，其特征在于：所述功能化纳米金按照下述权利要求7-13中任一所述的方法制备。
7.权利要求1至6中任一所述的功能化纳米金的制备方法，包括如下步骤：
(1)将氯金酸水溶液A与N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液在搅拌状态下混合得到混合液；所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2-4倍；
(2)在搅拌状态下，再将氯金酸水溶液B加入步骤(1)得到的混合液中，继续搅拌至形成金溶胶，得到的金溶胶即为功能化纳米金；所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1-3倍。
8.根据权利要求7所述的方法，其特征在于：所述氯金酸水溶液A的摩尔浓度为1-10mmol/L、1-6mmol/L、6-10mmol/L、6-8mmol/L或8-10mmol/L；
所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液的摩尔浓度为0.5-8.0mmol/L、0.5-4.0mmol/L、0.5-5.0mmol/L、4.0-8.0mmol/L、5.0-8.0mmol/L或4.0-5.0mmol/L；
所述氯金酸水溶液B的摩尔浓度为1-10mmol/L、1-6mmol/L或6-10mmol/L。
9.根据权利要求7或8所述的方法，其特征在于：所述氯金酸水溶液A、N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液和所述氯金酸水溶液B的配比为下述h1-h10中的任一种：
h1、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的4倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1倍；
h2、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的3倍；
h3、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.8倍； 
h4、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.3倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.4倍；
h5、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.1倍；
h6、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.4倍；
h7、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.7倍；
h8、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的3倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2倍；
h9、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的27/11倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的18/11倍；
h10、所述氯金酸水溶液A中氯金酸的物质的量是所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的2.25倍，所述氯金酸水溶液B中氯金酸的物质的量是步骤(1)中所述N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液中N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺的物质的量的1.5倍。
10.根据权利要求7或8或9所述的方法，其特征在于：所述方法还包括将所述金溶胶通过离心进行纯化的步骤。
11.根据权利要求10所述的功能化纳米金，其特征在于：离心的条件为：将所述金溶胶在17120*g下离心45分钟。
12.根据权利要求7-11中任一所述的方法，其特征在于，步骤(1)和步骤(2)的反应温度均为15-35℃、15-25℃、15-30℃、25-35℃或25-30℃。
13.根据权利要求7-12中任一所述的方法，其特征在于，步骤(1)的反应时间为2小时以上，步骤(2)的反应时间1.5小时以上。
14.根据权利要求7-13中任一所述的方法，其特征在于，配制所述氯金酸水溶液A、氯金酸水溶液B和N-(4-氨基丁基)-N-乙基异鲁米诺水溶液所使用的水的电阻率大于等于1.0MΩ*cm；所述水选自下述三种水中的至少一种：二次蒸馏水、纯净水和超纯水。
15.权利要求7至14中任一所述方法制备的功能化纳米金。 
16.权利要求1至6和15中任一所述的功能化纳米金，其特征在于，所述功能化纳米金的形貌呈单分散球状、球状纳米金组装的链状或球状纳米金组装的网状。
17.根据权利要求16所述的功能化纳米金，其特征在于，所述功能化纳米金的形貌呈单分散球状，单分散球的粒径大小为10-30纳米；或，组装成链状或网状的球状纳米金的粒径大小为10-30纳米。
18.根据权利要求16所述的功能化纳米金，其特征在于，所述功能化纳米金的形貌呈球状纳米金组装的链状，链长为400-500纳米。
19.一种生物分析探针，是由功能化纳米金标记生物分子形成的复合物；所述功能化纳米金为权利要求1至6中任一所述功能化纳米金或权利要求15所述功能化纳米金。
20.根据权利要求19中所述的生物分析探针，其特征在于，所述生物分子为抗体或核酸分子。
21.根据权利要求20所述的生物分析探针，其特征在于，所述生物分子为抗体的生物分析探针的制备方法为下述A或B的方法：
A.将所述抗体分子的端基修饰生物素，然后与连接有链霉亲和素的所述功能化纳米金相连接；
B.将所述抗体分子直接与所述功能化纳米金相连接。
22.根据权利要求20所述的生物分析探针，其特征在于，所述生物分子为核酸的分析探针的制备方法为下述a或b的方法：
a、将所述核酸分子端基修饰生物素，然后与连接有链霉亲和素的所述功能化纳米金相连接；
b、将所述核酸分子端基修饰巯基，然后与所述功能化的纳米金相连接。
23.根据权利要求20或22中所述的生物分析探针，其特征在于，所述核酸分子为DNA、RNA或适配体。 
CN2010101176879A 2010-03-03 2010-03-03 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用 Pending CN102191034A (zh)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2010101176879A CN102191034A (zh) 2010-03-03 2010-03-03 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用
US13/582,434 US9410950B2 (en) 2010-03-03 2010-07-08 Luminescent gold nanomaterial functionalized by N-(4-aminobutyl)-N-ethylisoluminol, preparation and application thereof
PCT/CN2010/075064 WO2011106963A1 (zh) 2010-03-03 2010-07-08 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用
CN2011800015815A CN102362182B (zh) 2010-03-03 2011-01-31 N-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺功能化纳米金及其制备方法和应用
PCT/CN2011/070843 WO2011107003A1 (zh) 2010-03-03 2011-01-31 N-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺功能化纳米金及其制备方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2010101176879A CN102191034A (zh) 2010-03-03 2010-03-03 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN102191034A true CN102191034A (zh) 2011-09-21

Family

ID=44541631

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2010101176879A Pending CN102191034A (zh) 2010-03-03 2010-03-03 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用
CN2011800015815A Active CN102362182B (zh) 2010-03-03 2011-01-31 N-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺功能化纳米金及其制备方法和应用

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2011800015815A Active CN102362182B (zh) 2010-03-03 2011-01-31 N-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺功能化纳米金及其制备方法和应用

Country Status (3)

Country Link
US (1) US9410950B2 (zh)
CN (2) CN102191034A (zh)
WO (2) WO2011106963A1 (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102590192A (zh) * 2012-02-17 2012-07-18 中国科学院合肥物质科学研究院 一种化学发光增强型检测农药残留的方法
CN104374764A (zh) * 2013-08-15 2015-02-25 中国科学技术大学 一种分析探针、其制备方法和用途
CN104371705A (zh) * 2013-08-15 2015-02-25 中国科学技术大学 一种双功能化纳米材料、其制备方法和用途
CN110967491A (zh) * 2019-12-16 2020-04-07 西南大学 一种电化学免疫传感器和制备方法以及电化学免疫分析方法和试剂盒
CN112526120A (zh) * 2020-11-19 2021-03-19 山东省农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 一种基于spr技术检测沙丁胺醇的方法
CN113416534A (zh) * 2021-06-25 2021-09-21 中国科学技术大学 一种用于抗原检测的新型复合材料和试剂盒
CN114002163A (zh) * 2021-10-13 2022-02-01 华中科技大学 一种具备紫外光多模耦合金纳米线薄膜及制备方法和应用

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11041215B2 (en) * 2007-08-24 2021-06-22 Longhorn Vaccines And Diagnostics, Llc PCR ready compositions and methods for detecting and identifying nucleic acid sequences
CN104335041B (zh) * 2012-03-30 2016-08-24 印度马德拉斯理工学院 汞离子的可视化检测
CN102944549B (zh) * 2012-11-23 2015-04-15 清华大学 一种电致化学发光细菌传感方法及多功能探针
CN103323607B (zh) * 2013-06-25 2015-02-25 青岛科技大学 一种双组份植物激素的同时测定方法
CN103641065B (zh) * 2013-11-29 2016-07-06 中国科学院合肥物质科学研究院 基于明列子表面网络结构的sers基底及其制备方法和用途
CN104155445B (zh) * 2014-07-14 2015-07-08 济南大学 无标记电化学发光肿瘤标志物免疫传感器的制备和应用
CN104493160A (zh) * 2015-01-09 2015-04-08 江苏大学 一种金纳米棒生物复合物及其制备方法和应用
CN105866105A (zh) * 2016-04-06 2016-08-17 扬州大学 一种检测多种鸡细胞因子化学发光成像免疫传感器的制备及分析方法
CN105689735B (zh) * 2016-04-20 2017-10-17 中国科学院新疆理化技术研究所 一种荧光和尺寸可调的金纳米簇的制备方法及应用
CN106001598B (zh) * 2016-05-11 2018-06-26 北京化工大学 一种水滑石层间合成片状金纳米粒子的方法
CN111562255A (zh) * 2020-05-27 2020-08-21 济南大学 一种基于还原氧化石墨烯猝灭鲁米诺@金纳米粒子的化学发光传感器的制备方法
CN111751310B (zh) * 2020-06-30 2023-02-17 华北科技学院 一种糖聚肽金纳米粒子及制备方法和应用
CN113125422B (zh) * 2021-04-16 2023-07-25 合肥工业大学 化学发光水凝胶微珠的制备方法、制得的水凝胶微珠及其应用
CN113522364B (zh) * 2021-07-19 2022-05-06 中国地质大学（北京） 化学发光增强剂及制备和在过氧化氢高碘酸盐体系的应用
CN113686942B (zh) * 2021-08-20 2024-03-19 山东得和明兴生物科技有限公司 一种基于电致化学发光检测胶质芽孢杆菌的方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070275383A1 (en) * 2003-11-28 2007-11-29 Francis Vocanson Novel Hybrid Probes with Heightened Luminescence

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003083478A1 (fr) * 2002-04-03 2003-10-09 Japan Science And Technology Agency Face de capteur pour biopuce porteuse de nanoparticules de polyethylene glycolate
US7537934B2 (en) * 2005-12-30 2009-05-26 Intel Corporation Chemiluminescence sensor array
CN101900723B (zh) * 2009-05-27 2013-05-08 中国科学技术大学 鲁米诺直接键合的纳米金在免疫分析中的应用
US9244012B2 (en) * 2011-09-26 2016-01-26 University Of Maryland, Baltimore County Enhanced luminescence from nanopolished surfaces and plate wells
US20150031571A1 (en) * 2012-02-07 2015-01-29 University Of Kansas Chemiluminescent nanoparticles and uses thereof

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070275383A1 (en) * 2003-11-28 2007-11-29 Francis Vocanson Novel Hybrid Probes with Heightened Luminescence

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DAYONG TIAN等: "Sandwich-type electrochemiluminescence immunosensor based on N-(aminobutyl)-N-ethylisoluminol labeling and gold nanoparticle amplification", 《TALANTA》 *
HUA CUI等: "Synthesis, Characterization, and Electrochemiluminescence of Luminol-Reduced Gold Nanoparticles and Their Application in a Hydrogen Peroxide Sensor", 《CHEM. EUR. J. 》 *

Cited By (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102590192A (zh) * 2012-02-17 2012-07-18 中国科学院合肥物质科学研究院 一种化学发光增强型检测农药残留的方法
CN104374764A (zh) * 2013-08-15 2015-02-25 中国科学技术大学 一种分析探针、其制备方法和用途
CN104371705A (zh) * 2013-08-15 2015-02-25 中国科学技术大学 一种双功能化纳米材料、其制备方法和用途
CN104371705B (zh) * 2013-08-15 2016-12-28 中国科学技术大学 一种双功能化纳米材料、其制备方法和用途
CN104374764B (zh) * 2013-08-15 2017-05-03 中国科学技术大学 一种分析探针、其制备方法和用途
CN110967491A (zh) * 2019-12-16 2020-04-07 西南大学 一种电化学免疫传感器和制备方法以及电化学免疫分析方法和试剂盒
CN112526120A (zh) * 2020-11-19 2021-03-19 山东省农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 一种基于spr技术检测沙丁胺醇的方法
CN112526120B (zh) * 2020-11-19 2024-05-14 山东省农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 一种基于spr技术检测沙丁胺醇的方法
CN113416534A (zh) * 2021-06-25 2021-09-21 中国科学技术大学 一种用于抗原检测的新型复合材料和试剂盒
CN113416534B (zh) * 2021-06-25 2023-03-10 中国科学技术大学 一种用于抗原检测的复合材料和试剂盒
CN114002163A (zh) * 2021-10-13 2022-02-01 华中科技大学 一种具备紫外光多模耦合金纳米线薄膜及制备方法和应用

Also Published As

Publication number Publication date
WO2011107003A1 (zh) 2011-09-09
US20120329998A1 (en) 2012-12-27
WO2011106963A1 (zh) 2011-09-09
CN102362182A (zh) 2012-02-22
CN102362182B (zh) 2013-12-18
US9410950B2 (en) 2016-08-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102191034A (zh) 一种n-(4-氨基丁基)-n-乙基异鲁米诺发光功能化的纳米金及其制备方法和应用
Valenti et al. Electrogenerated chemiluminescence from metal complexes-based nanoparticles for highly sensitive sensors applications
Bain et al. Core-size dependent fluorescent gold nanoclusters and ultrasensitive detection of Pb2+ ion
Panthi et al. Synthesis of metal nanoclusters and their application in Hg2+ ions detection: a review
Fan et al. Silver nanoclusters encapsulated into metal–organic frameworks with enhanced fluorescence and specific ion accumulation toward the microdot array-based fluorimetric analysis of copper in blood
Dong et al. Sensing applications of luminescent carbon based dots
Liu et al. TiO2–BiVO4 heterostructure to enhance photoelectrochemical efficiency for sensitive aptasensing
Wang et al. Methods, principles and applications of optical detection of metal ios
Zou et al. Graphitic carbon nitride-based nanocomposites electrochemiluminescence systems and their applications in biosensors
Shi et al. Fluorescent carbon dots for bioimaging and biosensing applications
Li et al. Nanomaterial-amplified chemiluminescence systems and their applications in bioassays
Cui et al. Synthesis, optical properties and applications of ultra-small luminescent gold nanoclusters
Wu et al. RuSi@ Ru (bpy) 32+/Au@ Ag2S nanoparticles electrochemiluminescence resonance energy transfer system for sensitive DNA detection
Rampazzo et al. Nanoparticles in metal complexes-based electrogenerated chemiluminescence for highly sensitive applications
Ma et al. Recent advances and applications in QDs-based sensors
Li et al. Engineering the self-assembly induced emission of copper nanoclusters as 3D nanomaterials with mesoporous sphere structures by the crosslinking of Ce3+
Wang et al. Valence-state-engineered electrochemiluminescence from Au nanoclusters
Liu et al. Combined transition-metal/enzyme dual catalytic system for highly intensive glow-type chemiluminescence-functionalized CaCO3 microspheres
Du et al. Multifunctional photoelectrochemical biosensor based on ZnIn2S4/ZnS QDs@ Au–Ag-reversed photocurrent of Cu-metal–organic framework coupled with CRISPR/Cas-12a-shearing for assay of dual targets
Song et al. Peptide-based biosensor with a luminescent copper-based metal–organic framework as an electrochemiluminescence emitter for trypsin assay
CN102749317A (zh) 一种基于碳纳米管的表面增强拉曼散射探针及其制备方法
Sun et al. Organosiloxane and polyhedral oligomeric silsesquioxanes compounds as chemiluminescent molecular probes for direct monitoring hydroxyl radicals
CN102721680A (zh) 一种高灵敏检测t-DNA的SERS液相芯片方法
CN103611946B (zh) 甲硫氨酸保护的金纳米团簇荧光材料的制备方法
Zhang et al. Multifunctional fluorescent copper nanoclusters for Ag+ sensing, anticounterfeiting, and blue/white light-emitting diodes

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20110921