CN102166210A - 1-脱氧野尻霉素衍生物作为α-葡萄糖苷酶抑制剂的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明属于化学药物领域,具体涉及一种1-脱氧野尻霉素衍生物作为α-葡萄糖苷酶抑制剂的应用。本发明发现含苄基或对溴苯基的1-脱氧野尻霉素衍生物具有α-葡萄糖苷酶抑制活性。该类1-脱氧野尻霉素衍生物作为高效的α-葡萄糖苷酶抑制剂,用于治疗糖尿病,肥胖症,病毒感染等疾病,具有广阔的应用前景。
Description
技术领域
本发明属于化学药物领域,具体涉及一种1-脱氧野尻霉素衍生物作为α-葡萄糖苷酶抑制剂的应用。
背景技术
1-脱氧野尻霉素(1-deoxynojirimycin, DNJ)化学名为(2R, 3R, 4R, 5S)-2-(羟甲基-3,4,5一三羟基)吡啶,是一种不能在人体代谢的氮杂糖。由于DNJ的结构类似于葡萄糖,相当于吡喃糖环上的氧被氮取代,使DNJ在酶催化的糖代谢过程中与糖基中间体形成竞争,可以完全占据酶的活化口袋[1],从而表现出很强的α-葡萄糖苷酶抑制活性,在糖尿病的治疗方面显现了高效的药理活性[2]。α-葡萄糖苷酶抑制剂通过抑制小肠α-葡萄糖苷酶,减缓碳水化合物的水解和葡萄糖的吸收,从而避免餐后血糖和血浆胰岛素的过度增高,由于其副作用小,仅限于肠道不良反应,已成为治疗I型和II型糖尿病的一线药物,临床常见品种有阿卡波糖(Acarbose,拜糖平),米格列醇(Miglitol)和桑枝颗粒剂[3]。
DNJ是目前糖尿病治疗市场上唯一国际公认的零伤害生物制剂,但至今DNJ仍未作为治疗糖尿病的药物上市[4]。一方面是由于天然产物中DNJ含量甚低且纯化困难,而人工合成难度又较大,成本高,目前DNJ商品大多为DNJ粗提物;另一方面是DNJ在体外实验中是糖苷酶有效的抑制剂,但体内单独作用,至少要经过质膜和内质网两个膜障碍,才能到达抑制位点,导致抑制剂在酶水平和细胞水平有所差异。因此人们为了增加DNJ的体内活性,在DNJ结构中引入疏水性基团以增加其亲脂性[5],合成了大量的DNJ衍生物,其中N-羟乙基-1-脱氧野尻霉素已被成功开发为治疗糖尿病的新药--米格列醇,由于其高效低毒,因而使糖尿病在治疗方面有了一个质的飞跃[6]。因此近年来设计合成新型DNJ衍生物受到世界各国药物化学家的高度重视。DNJ及其衍生物作为高效的α-葡萄糖苷酶抑制剂,可用于治疗糖尿病,肥胖症,病毒感染等疾病[7]。
本发明发现一类新型DNJ衍生物是高效的α-葡萄糖苷酶抑制剂,在糖尿病治疗方面有较好的应用前景。
参考文献:
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发明内容
本发明的目的在于提供一种1-脱氧野尻霉素衍生物作为α-葡萄糖苷酶抑制剂的应用。所述1-脱氧野尻霉素衍生物结构通式如下:
其中:R为苄基或对溴苯基等芳基,具体结构为:
本发明中,所述1-脱氧野尻霉素衍生物的合成路线如下:
具体合成步骤如下:
1)制备化合物1
1
向圆底烧瓶中加入1-脱氧野尻霉素、苯基环氧化合物和有机溶剂,室温反应12-24h,TLC显示反应完成后,真空旋转蒸去甲醇,硅胶柱分,即得所需产品;其中,1-脱氧野尻霉素与苯基环氧化合物的摩尔比为1:1-1:1.1,有机溶剂采用无水甲醇或甲醇/水。
2)制备化合物2
2
向圆底烧瓶中加入1-脱氧野尻霉素、对溴苯基环氧化合物和有机溶剂,室温反应12-24h,TLC显示反应完成后,真空旋转蒸去甲醇,硅胶柱分,即得所需产品;其中,1-脱氧野尻霉素与对溴苯基环氧化合物的摩尔比为1:1-1:1.1,有机溶剂采用无水甲醇或甲醇/水。
本发明合成的新型芳香性1-脱氧野尻霉素衍生物,具有a-葡萄糖苷酶抑制活性,同时也可以作为进一步修饰的药物中间体,具有开发成新的治疗糖尿病药物的潜在应用价值。该合成路线具有操作简便、反应条件温和、节省溶剂、减少污染等优点,便于工业化生产。
本发明中,1-脱氧野尻霉素衍生物1是非竞争性抑制剂,Ki = 156 μM,IC50 = 306 μM;1-脱氧野尻霉素衍生物2是竞争性抑制剂,Ki = 353 μM,IC50 = 3.9 mM。
本发明公开的两种1-脱氧野尻霉素衍生物作为高效的α-葡萄糖苷酶抑制剂,由于其具有芳香环的稳定性,因此不容易分解,它可以耐强酸和强碱,并能在多种氧化和还原条件下保持稳定,因此有广阔的应用前景,可用于治疗糖尿病,肥胖症,病毒感染等疾病。
具体实施方式
下面通过实施例进一步说明本发明,但不能限制本发明的内容。
实施例1:化合物1的制备
1
向圆底烧瓶中加入1-脱氧野尻霉素10 mg(0.06 mmol)、环氧化合物12 mg(0.07 mmol)、甲醇/H2O(50 μL/50 μL),室温反应12h。TLC检测显示反应基本完成后,真空旋转蒸发除去甲醇,之后在反应瓶中加入无水乙醇,共沸除去水。硅胶柱(EtOAc/CH3OH = 4:1)分离得白色固体9 mg,收率48.0%。
产物表征数据如下:1HNMR (500 MHz, D2O) : δ = 7.37 (s, 5H), 4.54 (t, 2H), 3.98 (m, 1H), 3.82 (m, 2H), 3.43-3.52 (m, 3H), 3.00 (m, 1H), 2.76 (m, 1H), 2.53 (m, 1H), 3.25(m, 3H), 2.33 (m, 2H) 。
实施例2:化合物1的制备
1
向圆底烧瓶中加入1-脱氧野尻霉素10 mg(0.06 mmol)、环氧化合物12 mg(0.07 mmol)、甲醇(70 μL),室温反应24h。TLC检测显示反应完成后,真空旋转蒸发除去甲醇。硅胶柱(EtOAc/CH3OH = 4:1)分离得白色固体17 mg,收率85.0%。
表征数据如下:1HNMR (500 MHz, D2O) : δ = 7.37 (s, 5H), 4.54 (t, 2H), 3.98 (m, 1H), 3.82 (m, 2H), 3.43-3.52 (m, 3H), 3.00 (m, 1H), 2.76 (m, 1H), 2.53 (m, 1H), 3.25(m, 3H), 2.33 (m, 2H) 。
实施例3:化合物2的制备
2
向圆底烧瓶中加入1-脱氧野尻霉素10 mg(0.06 mmol)、环氧化合物16 mg(0.07 mmol)、甲醇(70 μL),室温反应24h。TLC检测显示反应完成后,真空旋转蒸发除去甲醇,硅胶柱(EtOAc/CH3OH = 4:1)分离得白色固体19 mg,收率81.0%。
表征数据如下:1HNMR (500 MHz, D2O) : δ = 7.38 (t, 2H), 6.83 (t, 2H), 4.17 (m, 1H), 3.78-3.98 (m, 4H), 3.56 (m, 1H), 3.12 (m, 2H), 3.13 (m, 1H), 2.96 (d,J = 13.5 Hz 1H), 2.67 (m, 1H), 2.37 (m, 2H) 。
实施例4:α-葡萄糖苷酶抑制活性(对实施例1-实施例3所得产物检测对酶的抑制作用)
α-葡萄糖苷酶抑制活性检测采取如下方法:
15 μl对硝基苯酚-α-D-葡萄糖苷(pNPG) (5 mM)于37℃预热10分钟。6 μl α-葡萄糖苷酶 (5 U/ml),15 μl谷胱甘肽(1 mg/ml),15 μl α-葡萄糖苷酶抑制剂(5 mM)以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至135 μl于37℃预热10分钟。将预热后的底物溶液与含抑制剂的酶溶液混合,于37℃反应二十分钟,用等体积的碳酸钠溶液(1M)终止反应,取200 μl反应液使用酶标仪在405 nm测OD值。
是否是可逆抑制的判定方法:
取一定量的抑制剂与一定量的酶溶液混合在一起,保温一定时间,取混合溶液作不同程度的稀释,测定反应速度。用反应速度对测活系统中的酶浓度作图,根据曲线的特征可以判定是否是可逆抑制剂。
反应条件:实验分成含抑制剂与不含抑制剂两组,每组又根据抑制剂或酶浓度不同分别标注编号。第一组,取15 μl的待测α-葡萄糖苷酶抑制剂(浓度5 mM,2.5 mM,1.25 mM,625 μM,312.5 μM)与6 μl α-葡萄糖苷酶(5 U,2.5 U,1.25 U,0.625 U,0.3125 U)混合,加入15 μl谷胱甘肽(1 mg/ml)并以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至135 μl于37℃预热10分钟;第二组,取6 μl α-葡萄糖苷酶(5 U,2.5 U,1.25 U,0.625 U,0.3125 U),加入15 μl谷胱甘肽(1 mg/ml)并以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至135 μl于37℃预热10分钟。在上述两组十只管中,加入15 μl 于37℃预热的底物硝基苯酚-α-D-葡萄糖苷(pNPG) (5 mM),混合后37℃反应二十分钟,用等体积的碳酸钠溶液(1M)终止反应,取200 μl反应液使用酶标仪在405 nm测OD值。在加入化合物1,2后,与不加抑制剂相比,曲线斜率会随着抑制剂浓度的升高而降低。说明化合物1,2是α-葡萄糖苷酶的可逆抑制剂。
可逆抑制类型判断及Ki值测定:
实验以抑制剂浓度不同分为三组,每组又按照加入底物量不同分别标注五个编号。第一组不含抑制剂,含15μl谷胱甘肽(1 mg/ml)与6 μl α-葡萄糖苷酶,以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至120 μl于37℃预热10分钟;第二组含终浓度为200 μM的抑制剂,组成如下:15 μl谷胱甘肽(1 mg/ml),6 μl抑制剂(5 mM)与6 μl α-葡萄糖苷酶,以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至120 μl于37℃预热10分钟;第三组含终浓度为500 μM的抑制剂,组成如下:15 μl谷胱甘肽(1 mg/ml),15 μl抑制剂(5 mM)与6 μl α-葡萄糖苷酶以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至120 μl于37℃预热10分钟。每组按编号加入在37℃下预热十分钟的底物,使其初始终浓度分别为1 mM,500 μM,250 μM,125 μM,62.5 μM,于37℃反应二十分钟,用等体积的碳酸钠溶液(1M)终止反应,取200 μl反应液使用酶标仪在405 nm测OD值。以1/v~1/[S]作图,判定抑制剂类型,并获得抑制剂的Ki值。根据结果作图,可以看出化合物1为α-葡萄糖苷酶的非竞争抑制剂,Ki值为156 μM;而化合物2为竞争性抑制剂,Ki值为353 μM。按此方法测定阿卡波糖的Ki值为165 μM。
IC50测定:15 μl谷胱甘肽(1 mg/ml),6 μl α-葡萄糖苷酶和一定量的待测α-葡萄糖苷酶抑制剂混合,以磷酸缓冲液(pH 6.8)补至135 μl,抑制剂终浓度分别为50,100,200,400,500,800,1000 μM。混合液37℃保温10分钟,再向上述混合液内加入于37℃下预热十分钟的底物(5 mM)15 μl,反应在37℃下进行20分钟,用等体积的碳酸钠溶液(1M)终止反应,取200 μl反应液使用酶标仪在405 nm测OD值。所得结果利用IC50计算器计算。
IC50 = 306 μM IC50 = 3.9 mM
按此方法测定阿卡波糖的IC50=295μM。
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