CN102108420A - 一种检测登革1型病毒的荧光定量pcr试剂盒 - Google Patents

一种检测登革1型病毒的荧光定量pcr试剂盒 Download PDF

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Abstract

本发明属于生物化学领域,提供一种检测登革1型病毒的荧光定量PCR试剂盒,该试剂盒含有特异性扩增登革1型病毒NS2A区域的引物:5’-GATGAGATCCAGATGGAGTAGAAAG-3’(SEQ NO.1),5’-TCAGTTGTCCCATTATAAGAAGGAG-3’(SEQ NO.2);和荧光探针:5’FAM-ACAGCCAGTGTTCCAGTCATCAGCA-Eclipse3’(SEQ NO.3)。该试剂盒对登革1型病毒具有良好的敏感性和特异性,重复性很好,完全适用于登革1型病毒的临床检测。

Description

一种检测登革1型病毒的荧光定量PCR试剂盒
技术领域
本发明涉及生物化学领域,具体涉及包含核酸、酶或微生物的测定或检验方法的检测试剂。
背景技术
登革病毒属黄病毒属,为单股正链RNA病毒,可导致登革热(DF)、登革出血热(DHF)和登革休克综合征(DSS)。登革病毒病每年约有5-10千万人感染,已成为全球公共卫生关注的焦点之一。本病感染潜伏期为2~15天,平均5~6天,通常3~5天,发病前尽管体内有病毒存在,而前驱症状却不明显。登革热表现为突然起病,畏寒、迅速发热等症状。登革出血热有典型登革热表现,2~4病日内可见散在出血点。病情进展中有鼻腔、牙龈、消化道、泌尿道或子宫等任何一个以上器官的较大量出血,常见肝肿大,脑出血的病例也有发现。异常严重出血的病例可导致死亡。登革休克综合征具有DHF表现的少数病人,在发热过程中或热退后,病情突然加重,出现皮肤湿冷、脉数弱、烦燥或昏迷,血压下降出现休克或脉压低于2.67Kpa(20mm汞柱以下)等危象,甚至血压和脉搏测不出,病情凶险,病死率高。
登革热的诊断目前主要采取病毒分离定型以及血清中特异性IgM、IgG抗体测定的方法。但由于患者早期抗体阳性率低,往往要7-10d后IgM抗体才能达到一个较高的水平,因此在早期诊断中受到一定的限制。近年来发展起来的荧光定量RT-PCR技术可实现早期诊断,而且与常规PCR相比,荧光定量PCR方法更灵敏,且不需要电泳分析,同时因加入特异的荧光标记探针可对PCR扩增产物进行实时检测,因而更省时、特异,减少了交叉污染,并能精确地对多个样本进行定量分析。
在以往的研究中有在登革1型病毒3’非编码区(3’NC)、NS5区、衣壳蛋白(C)区域设计引物探针。目前一般认为3’NC和NS5区设计的引物探针敏感性较差;C区保守性较差,设计出来的引物探针容易受到其它三型登革病毒的干扰;E区变异性很大,会出现假阴性或者敏感性较差。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种登革1型病毒的荧光定量PCR检测试剂盒,该试剂盒对登革1型病毒具有特异性和敏感性好的优点。
本发明解决上述问题的技术方案具体是:一种检测登革1型病毒的荧光定量PCR试剂盒,该试剂盒由定量阳性模板、一对特异性扩增登革1型病毒NS2A区域的引物、荧光探针、荧光定量聚合酶Premix Ex TaqTM和参比染料ROX Reference Dye II组成,其特征在于:
(1)所述的引物是特异性扩增登革1型病毒NS2A区域的引物,其中,
上游引物序列为:5’-GATGAGATCCAGATGGAGTAGAAAG-3’(SEQ NO.1),
下游引物序列为:5’-TCAGTTGTCCCATTATAAGAAGGAG-3’(SEQ NO.2);
(2)所述的荧光探针序列为:
5’FAM-ACAGCCAGTGTTCCAGTCATCAGCA-Eclipse3’(SEQ NO.3),
其中FAM为标记在探针5’端的荧光基团,Eclipse为标记在探针3’端的荧光淬灭基团;
(3)所述的定量阳性模板为含有下列DNA片段的pMD18-T重组质粒:
GATGAGATCCAGATGGAGTAGAAAGATGCTGATGACTGGAACACTGGCTGTTTTCCTCCTTCTTATAATGGGACAACTGA(SEQ NO.4)。
本发明所述的特异性扩增登革1型病毒NS2A区域的引物可以由本领域常用的方法合成。
本发明所述的荧光探针可以由本领域常用的方法合成。
本发明所述的荧光定量聚合酶Premix Ex TaqTM由Takara公司提供、参比染料ROXReference Dye II由Takara公司提供。
本发明所述的定量阳性模板的构建方法是将DNA片段SEQ NO.4插入到质粒载体中构建重组质粒得到。
上述方法中,所述的质粒载体是T克隆载体,如pMD19-T载体;所述的将DNA片段SEQ NO.4插入到质粒载体的方法为本领域的常规方法,具体的步骤和工艺参数视所选的质粒载体而定。
登革病毒非结构蛋白NS2A可能参与多聚蛋白的水解过程,本发明人通过Clustal W2对不同株的登革病毒基因进行比对,发现四型登革病毒在NS2A基因处的差别较大,而且与其它黄热病毒之间也存在很大差别,同时登革1型病毒型内的NS2A基因则比较保守,本发明试剂盒正是通过检测这段序列来判断病人是否被登革1型病毒感染,扩增的引物序列为SEQ NO.1和SEQ NO.2,其位置如图1示。
本发明所述的试剂盒的使用方法为:
(1)Real-time PCR,反应体系如下:
表1本发明试剂盒Real-Time PCR反应体系
Figure BSA00000374668300031
反应程序:95℃30s
Figure BSA00000374668300032
(2)定量标准曲线制备:将定量阳性模板按10倍稀释法稀释成1010~104copies/ml 7个浓度梯度,按照上述反应体系和反应程序,反应结束后计算机自动绘制标准曲线Y=aX+b,R2,Eff,其中X表示起始模板拷贝数的对数,Y表示C(t)值。
(3)样品检测:首先采用MiniBEST Viral RNA Extraction kit ver.4.0病毒RNA提取试剂盒从病人血清中提RNA;然后选用Takara公司的PrimerScriptTM RT reagent kit扩增试剂盒将上述RNA反转录为cDNA,得到模板DNA;最后按照上述反应体系和反应程序进行扩增即可。
(4)结果判断:设置阴性对照和空白对照,取待测样本进行荧光定量PCR检测,C(t)值小于35.0为阳性,大于35.0时为阴性,其中阴性对照样本是未接种的乳鼠鼠脑或者健康人血清,其中当检测样本是鼠脑,阴性对照样本是未接种的乳鼠鼠脑;当检测样本是病人样本时,阴性对照样本是健康人血清。
本发明具有以下优点:
(1)本发明设计的引物探针具有很好的重复性。
(2)与其它三型登革病毒以及乙型脑炎病毒之间并无交叉反应,具有很好的特异性。能够避免假阴性的出现。
(3)敏感性可达1copy/μl,具有很好的敏感性。
附图说明
图1是本发明试剂盒扩增的DNA片段的在登革1型病毒基因组中的位置图,图中剖面线方框所示的部位是本发明试剂盒扩增的DNA片段。
图2是阳性质粒单酶切后琼脂糖凝胶电泳结果,质粒大小约2774bp。
图3是利用阳性质粒制作标准曲线时,不同稀释度的质粒荧光定量PCR扩增曲线,从左至右各条曲线代表1010、109、108、107、106、105、104个/ml拷贝数质粒扩增曲线。
图4是荧光定量PCR标准曲线结果,标准曲线回归方程Y=-3.410logX+45.10,相关系数R2=0.999,扩增效率Eff=96.5%。
图5是敏感性检测结果,不同质粒稀释的结果,从左至右各条曲线代表104、103、102、101个/μl质粒,最低可检测1copy/μl。
具体实施方式
下面将结合实施例来说明本发明具有的有益效果。
实施例1:本发明所述的试剂盒的制备
1.检测登革1型病毒的荧光定量PCR试剂盒的组成:
上游引物:5’-GATGAGATCCAGATGGAGTAGAAAG-3’,10μM
下游引物:5’-TCAGTTGTCCCATTATAAGAAGGAG-3’,10μM
荧光探针:5’FAM-ACAGCCAGTGTTCCAGTCATCAGCA-Eclipse3’,3μM
定量阳性模板:含有扩增片段的PMD18-T重组载体浓度是1010copies/ml。
Premix Ex TaqTM(2×):购自Takara公司。
Rox Reference Dye II:购自Takara公司。
2.阳性模板制备
(1)从登革1型病毒标准株提取RNA,并反转录,用序列为SEQ NO.1和SEQ NO.2的引物扩增出序列为SEQ NO.4的DNA片段,扩增程序为:93℃变性3min后进入下述循环,94℃30s、55℃30s、72℃60s,共30个循环;
(2)使用DNA胶回收试剂盒回收纯化扩增所得的DNA片段SEQ NO.4;
(3)将DNA片段SEQ NO.4插入到pMD18-T载体中,具体方法是:
a.DNA片段SEQ NO.4与T载体的连接和转化:
1)在微量离心管中加入:
PMD18-T Vector    1μl
目的DNA SEQ NO.4  5μl
dH2O              3μl;
2)加入9μl的Ligation Mix;
3)16℃反应过夜;
4)把感受态细胞DH5α从-80℃冰箱中取出,置于冰中。60μl移至灭菌处理的试管内;
5)加入目的DNA 10μl;
6)冰中放置30min;
7)42℃60S;
8)冰中放置2~3min;
9)加入37℃LB液体培养基1ml;
10)37℃振荡1h(120r/min);
11)取200μl培养基涂板于LB氨苄青霉素固体培养基中;
12)37℃过夜培养;
13)取3个菌落放入LB氨苄青霉素液体培养基3ml中摇菌扩增24h。
b.重组质粒提取:
1)取扩增菌液2ml离心12000rpm 1min;
2)弃上清,加入250μl溶液P1(已加入RNaseA)悬浮细胞;
3)加入250μl溶液P2,轻轻混均,上下颠倒4~6次;
4)加入350μl溶液P3,轻轻混均,上下颠倒直到白色絮状物形成;
5)离心12000rpm 10min;
6)小心把清澈的上清加入到干净的吸附柱中,离心12000rpm 1min;
7)去液,加500μl去蛋白液PD,离心12000rpm 1min;
8)弃液,加入600μl漂洗液PW,离心12000rpm 1min;
9)重复步骤8);
10)再离心空管12000rpm 2min;
11)把空管放入干净的1.5ml离心管中,加入TE 50-100μl,离心12000rpm 1min。
3、鉴定:将所得重组质粒用限制性内切酶Xba I进行单酶切,用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定。所得产物大小为2774bp。结果见附图1。
实施例2:体外检测实验
1、模板cDNA的制备:
a.试剂:RNA提取试剂盒以及RT-PCR试剂盒,购自Takara公司。
b.标准病毒株制备:
登革1型病毒标准株:DEN-1夏威夷株由本实验室保存;
阴性对照菌株:登革病毒2-4型毒株标准株(DEN-2-NGC株、DEN-3-H87株和DEN-4-H241株)由本实验室保存,乙型脑炎减毒活疫苗由成都生物制品研究所生产。
c.RNA提取:标准株为乳鼠鼠脑保种,按照Takara组织提取试剂盒提取病毒RNA,乙型脑炎直接按照液体提取试剂盒提取。
d.反转录为cDNA:采用Takara RT-PCR试剂盒将RNA反转录为cDNA,-80℃保存。
2、荧光定量PCR反应:
1)反应体系如发明内容中的表1所示。
2)方法:每批反应设一个空白对照和阴性对照,取待测样本进行荧光定量PCR反应,其中空白对照样为双蒸水,阴性对照样是未接种的乳鼠鼠脑。反应程序为:
95℃30s
Figure BSA00000374668300061
仪器:Mx3005P荧光定量PCR仪,Stratagene公司。
3、标准曲线制备
将定量阳性模板线性化后10倍倍比稀释,依次从1010稀释到104copies/ml。各取2μl进行荧光定量PCR,制作标准曲线。结果见附图说明图2和图3。荧光定量PCR标准曲线相关系数R2=0.999,扩增效率Eff=96.5%,回归方程Y=-3.410logX+45.10。从图可以看出,用阳性质粒所作的标准曲线的C(t)值与初始浓度有较好的线性关系。
4、特异性验证
用建立的荧光定量RT-PCR方法对登革1-4型病毒以及乙型脑炎减毒活疫苗提取的RNA进行检测,登革1型病毒检测结果C(t)值为15.28,而其它三型病毒以及乙型脑炎病毒并无C(t)值,表明建立的荧光定量RT-PCR方法不会受乙型脑炎病毒干扰。
5、重复性和再现性
线性化后的阳性质粒10倍倍比稀释6个浓度,从1.01×1010稀释到1.01×105copies/ml,分不同的时间重复三次,每次做三个重复孔,并计算均值(Mean)、标准差(SD)以及相对标准差(RSD),并列出理论值和检测值(见表2)。以上数据充分表明建立的方法具有很好的重复性和再现性。
表2各个浓度的C(t)值的均值以及变异系数
Figure BSA00000374668300071
aRSD(relative standard deviation)是指标准差除以平均值,以百分数表示。SDr,重复性标准差;SDR,再现性标准差。
4.敏感性检测
阳性质粒从1.01×105copies/μl 10倍倍比稀释,荧光定量PCR检测,敏感性可达1Copy/μl。见图4。
实施例3:临床标本检测
1、实验方法:
1)临床标本收集:
常规临床标本收集应该是取病人静脉血约2ml、3000rpm离心30min,分别取300μl、400~600μl血清分装在无菌1.5mlEP管中,编号登记,标本可立即用于测试,4℃可保存6个小时,长期保存可保存在-20℃,但避免反复冻融。
2)临床标本检测:
(a)对广州市第八人民医院提供的166份登革1型病毒感染者cDNA标本进行荧光定量PCR检测,并且用常规PCR进行验证。
常规PCR反应体系如表3所示:
表3本实例中常规PCR反应体系
Figure BSA00000374668300081
反应方法:每批反应设一个空白对照和阴性对照,取待测样本进行荧光定量PCR反应,其中空白对照样为双蒸水,阴性对照样是健康人血清。反应程序为:
Figure BSA00000374668300082
(b)本发明所述的试剂盒验证
临床标本检测:广州市第八人民医院提供的病人标本为cDNA,故省去标本收集、提RNA以及逆转录步骤。
荧光定量PCR反应体系如发明内容中的表1所示。
反应程序为:
95℃30s
Figure BSA00000374668300083
仪器:Mx3005P荧光定量PCR仪,Stratagene公司。
C(t)值小于35.0为阳性,大于35.0时为阴性。
2、实验结果:
采用实例1所述的试剂盒对166份标本检测检测到126份为阳性,阳性率为75.9%,常规PCR检测到36份为阳性,阳性率只有21.7%(见表4)。以上数据表明设计的引物探针能够很好的检测登革1型病毒,适用于临床的快速检测。
表4临床标本不同检测方法的比较
Figure BSA00000374668300091
a阳性标本数/检测样本数
上述实验结果表明,本发明试剂盒,在保证检测特异性的情况下,大大提高了敏感性,可见,本发明试剂盒应用于登革1型病毒感染的诊断具有快速且更准确的优点。
Figure ISA00000374668500011
Figure ISA00000374668500012
Figure ISA00000374668500021

Claims (1)

1.一种检测登革1型病毒的荧光定量PCR试剂盒,该试剂盒由定量阳性模板、一对特异性扩增登革1型病毒NS2A区域的引物、荧光探针、荧光定量聚合酶Premix Ex TaqTM和参比染料ROX Reference Dye II组成,其特征在于:
(1)所述的引物是特异性扩增登革1型病毒NS2A区域的引物,其中,
上游引物序列为:5’-GATGAGATCCAGATGGAGTAGAAAG-3’,
下游引物序列为:5’-TCAGTTGTCCCATTATAAGAAGGAG-3’;
(2)所述的荧光探针序列为:
5’FAM-ACAGCCAGTGTTCCAGTCATCAGCA-Eclipse3’,
其中FAM为标记在探针5’端的荧光基团,Eclipse为标记在探针3’端的荧光淬灭基团;
(3)所述的定量阳性模板为序列为SEQ NO.4的DNA片段的pMD19-T重组质粒,GATGAGATCCAGATGGAGTAGAAAGATGCTGATGACTGGAACACTGGCTGTTTTCCTCCTTCTTATAATGGGACAACTGA。
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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102286636A (zh) * 2011-07-20 2011-12-21 深圳市检验检疫科学研究院 检测登革病毒及分型的方法及专用芯片和试剂盒
CN108342475A (zh) * 2018-05-02 2018-07-31 北京泱深生物信息技术有限公司 登革热和登革出血热早期诊断的血液标志物
CN108588280A (zh) * 2018-05-02 2018-09-28 北京泱深生物信息技术有限公司 诊断登革热和登革出血热的arrdc1基因及其应用
CN108588281A (zh) * 2018-05-02 2018-09-28 北京泱深生物信息技术有限公司 区分登革热和登革出血热的分子标志物

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
《中国人兽共患病杂志》 20041231 王立军 登革病毒的检测技术研究进展 , *
《微生物学通报》 20091231 贡树基 登革病毒2型全长cDNA感染性转录体的构建和鉴定 , *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102286636A (zh) * 2011-07-20 2011-12-21 深圳市检验检疫科学研究院 检测登革病毒及分型的方法及专用芯片和试剂盒
CN102286636B (zh) * 2011-07-20 2013-10-23 深圳市检验检疫科学研究院 检测登革病毒及分型的方法及专用芯片和试剂盒
CN108342475A (zh) * 2018-05-02 2018-07-31 北京泱深生物信息技术有限公司 登革热和登革出血热早期诊断的血液标志物
CN108588280A (zh) * 2018-05-02 2018-09-28 北京泱深生物信息技术有限公司 诊断登革热和登革出血热的arrdc1基因及其应用
CN108588281A (zh) * 2018-05-02 2018-09-28 北京泱深生物信息技术有限公司 区分登革热和登革出血热的分子标志物

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