CN101087809B - 杂合酶 - Google Patents
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Landscapes
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Abstract
本发明涉及多肽及其用途。
Description
技术领域
本发明特别是涉及含有糖结合模块(module)且具有内切淀粉酶活性的杂合酶。该酶可在包含淀粉改性(modification)和/或降解的方法,或生面团制备(dough making)方法中应用。
背景技术
细菌内切淀粉酶(bacterial endo-amylase)在许多方法中使用,例如,在将淀粉改性,和/或降解为更小聚合体或葡萄糖的单体的方法中用于液化淀粉。该降解产物可在工业上使用,例如,作为麦芽糖和/或果糖糖浆或者在发酵步骤中进一步加工成发酵产物,例如,乙醇。细菌内切淀粉酶在焙烤中用于给面包屑(bread crumb)提供额外的柔软性和产生更好的湿度。然而,该内切淀粉酶容易使用过量,这会导致焙烤产品发粘(gumminess)和弹性(elasticity)有不希望的损失。
对于在例如,淀粉加工和焙烤中的各种方法中使用的具有改良特性的内切淀粉酶存在需要。
发明内容
本发明人现在惊奇地发现通过给内切淀粉酶添加糖结合模块(CBM)可改进该内切淀粉酶的催化活性,从而导致与野生型酶相比提高焙烤效果。焙烤产品的味道或气味无明显改变。不受理论约束,认为该效果是由于CBM导致对生面团中生淀粉(raw starch)的活性提高,和/或CBM导致对焙烤面包中加热淀粉的活性降低。具有CBM的内切淀粉酶可用作焙烤酶,其与无CBM的酶相比过量使用的风险较低。该杂合体由具有内切淀粉酶活性的多肽和主要对淀粉具有亲和力的糖结合模块,例如CBM20组成,它相对于现有内切淀粉酶的优势在于可将选择的具有所需特性,例如pH谱,温度谱,氧化抗性,钙稳定性,底物亲和性或产物谱的催化结构域与具有更强或更弱结合亲和力,例如,对直链淀粉的特异性亲和力,对支链淀粉的特异性亲和力或对糖类特定结构的亲和力的糖结合模块组合。该杂合体可用作焙烤添加剂,例如,作为抗老化(anti-staling)酶。
本发明人还令人惊奇地发现通过给内切淀粉酶添加糖结合模块(CBM)可改变活性和特异性从而提高包含例如,生淀粉,例如未糊化的淀粉以及糊化淀粉降解的各种淀粉降解方法的功效。由于具有CBM的这些内切淀粉酶的优良水解活性,可进行总体淀粉转化过程而不必糊化淀粉,即具有CBM的这些内切淀粉酶在生淀粉加工中水解粒状淀粉且在传统淀粉加工中水解全部或部分糊化淀粉。
因此,本发明第一个方面提供了一种多肽,该多肽是一种杂合体,它包含:具有内切淀粉酶活性的第一氨基酸序列和包含糖结合模块的第二氨基酸序列。优选所述的第一氨基酸序列和/或所述的第二氨基酸序列来源于细菌。第二氨基酸序列优选与SEQ ID NO:2中氨基酸残基485至586所示的氨基酸序列有至少60%的同一性和/或第一氨基酸序列与SEQ ID NO:35所示的氨基酸序列有至少60%的同一性。
在第二方面,本发明提供了制备生面团或由生面团制成的可食产品的方法,该方法包括将第一方面的多肽加入生面团中。
在第三和第四方面,本发明提供了包含第一方面的多肽的组合物,和包含第一方面多肽的粒状或聚集粉末形式的生面团或面包的改良添加剂。
在第五方面,本发明提供了设计适合于焙烤的多肽的方法,所述的方法包括:提供具有内切淀粉酶活性的第一氨基酸序列,和含有糖结合模块的第二氨基酸序列;其中所述的第一氨基酸序列来源于细菌;提供包含糖结合模块的第二氨基酸序列;和构建包含所述第一氨基酸序列与所述第二氨基酸序列的多肽。
在第六方面,本发明提供了制备组合物,例如,面包改良添加剂的方法,它在包含如下步骤的方法中产生:a)提供具有内切淀粉酶活性的第一氨基酸序列;b)提供含有糖结合模块的第二氨基酸序列;c)和构建包含所述第一氨基酸序列和第二氨基酸序列的多肽;d)提供编码所述多肽的DNA序列;e)在合适的宿主细胞中表达所述的DNA序列并回收所述的多肽;f)将所述多肽添加到面粉或粒状或聚集粉末中。
在第七方面,本发明提供了制备生面团或由生面团制成的可食产品的方法,该方法包括:提供具有内切淀粉酶活性的第一氨基酸序列;提供含有糖结合模块的第二氨基酸序列;和构建包含所述第一氨基酸序列和第二氨基酸序列的多肽;提供编码所述多肽的DNA序列;在合适的宿主细胞中表达所述的DNA序列并回收所述的多肽;和将所述多肽添加到生面团中。
在第八方面,本发明提供了糖化淀粉的方法,其中该淀粉用根据第一方面的多肽处理。
在第九方面,本发明提供了一种方法,包括:将淀粉与包含第一氨基酸序列和第二氨基酸序列的多肽接触,所述第一氨基酸序列具有内切淀粉酶活性,所述第二氨基酸序列含有糖结合模块;其中所述的第一氨基酸序列和/或所述的第二氨基酸序列来源于细菌;将所述淀粉与所述多肽在一定温度下培养一段时间使得足以实现至少90%w/w的所述淀粉底物转化为可发酵糖;发酵以产生发酵产物,和任选回收发酵产物,其中所述的多肽可以是根据第一方面的多肽。
在第十方面,本发明提供了一种方法,包括:a)将淀粉底物与转化后表达多肽的酵母细胞接触,所述多肽包含第一氨基酸序列和第二氨基酸序列,所述第一氨基酸序列具有内切淀粉酶活性,所述第二氨基酸序列含有糖结合模块;b)将所述淀粉底物与所述酵母在一定温度下维持一段时间使得足以实现至少90%w/w的所述淀粉底物转化为可发酵糖;c)发酵以产生乙醇;任选回收乙醇;其中步骤a,b,和c分开或同时进行且其中所述的多肽可以是根据第一方面的多肽。
在第十一方面,本发明提供了通过发酵从含淀粉材料生产乙醇的方法,所述方法包括:a)用包含第一氨基酸序列和第二氨基酸序列的多肽液化所述含淀粉材料,所述第一氨基酸序列具有内切淀粉酶活性,所述第二氨基酸序列含有糖结合模块;其中所述第一氨基酸序列和/或第二氨基酸序列来源于细菌;b)糖化所获得的液化醪液(mash);c)在发酵生物体存在的条件下发酵步骤(b)获得的材料。
在又一方面,本发明提供了编码根据第一方面的多肽的DNA序列,含有所述DNA序列的DNA构建体,携带所述DNA构建体的重组表达载体,用所述DNA构建体或所述载体转化的宿主细胞,所述宿主细胞是细菌或真菌细胞,植物细胞,或酵母细胞。
发明详述
杂合酶
本发明的多肽可以是一种杂合酶,它包含具有内切淀粉酶活性的第一氨基酸序列和含有糖结合模块(CBM)的第二氨基酸序列。该杂合体可通过融合编码第一氨基酸序列的第一DNA序列和编码第二氨基酸序列的第二DNA序列产生,或者该杂合体可根据合适的CBM,接头和催化结构域的氨基酸序列的知识作为完全合成的基因产生。
术语“杂合酶”(也称为“融合蛋白”,“杂合体”,“杂合多肽”或“杂合蛋白”)在本文中用于表征包含含有至少一个具有内切淀粉酶活性的催化模块的第一氨基酸序列和含有至少一个糖结合模块的第二氨基酸序列的本发明的多肽,其中该第一和第二氨基酸序列来源于不同来源。术语“来源”应理解为,例如,但不限于,亲本酶,或其变体,例如,淀粉酶或葡糖淀粉酶,或包含合适催化模块和/或合适CBM和/或合适接头的其它催化活性。然而,该CBM也可以来源于没有催化活性的多肽。该第一和第二氨基酸序列可来源于相同细菌菌株,来源于相同种的菌株,来源于近亲种或远亲生物。优选该杂合体的第一和第二氨基酸序列来源于不同来源,例如,来源于相同菌株和/或菌种,或例如来源于不同种的菌株的不同的酶。
本说明书中提及的酶分类号(EC编号)遵照生化和分子生物学国际联合命 名委员会建议(http://www.chem.qmw.ac.uk/iubmb/enzyme/)。
本文提及的杂合酶包括与含有糖结合模块(CBM)的氨基酸序列连接(即,共价结合)的含有内切淀粉酶,即α-淀粉酶(EC 3.2.1.1)的氨基酸序列的种类。因此该杂合酶是能够以内切方式催化淀粉水解的酶。
含CBM的杂合酶,以及其制备和纯化的详细描述是本领域已知的[参见,例如,WO 90/00609,WO 94/24158和WO 95/16782,以及Greenwood等,Biotechnology and Bioengineering 44(1994),第1295-1305页]。它们可通过例如,将含有使用或不用接头连接到编码目标酶的DNA序列上的至少一个编码糖结合模块的DNA片段的DNA构建体转化进宿主细胞,和培养转化的宿主细胞以表达该融合基因来制备。该接头可以是一个键(即,包含0个残基),或含有大约2个到大约100个碳原子,特别是2个到40个碳原子的短连接基团。然而,该接头优选是0个氨基酸残基的序列(例如,只是一个键)或它是大约2个到大约100个氨基酸残基,更优选2个到40个氨基酸残基,例如2个到15个氨基酸残基。优选的是该接头对蛋白酶,例如,可在该杂合体的产生期间和/或该杂合体的工业应用期间存在的蛋白酶的水解不敏感或至少敏感性较低。所述类型的杂合酶中CBM可位于该杂合酶的C-末端,N-末端或内部。在一个实施方案中,该多肽可包含超过1个CBM,例如,两个CBM;一个位于C-末端,另一个位于N-末端或者两个CBM串联位于C-末端、N-末端或内部。然而,具有超过两个CBM的多肽同样包含在本发明的范围内。
多肽同一性
术语多肽“同一性”应理解为两个序列之间的同一性程度,表示第一个序列由第二个序列衍生。借助于本领域已知的计算机程序,例如在GCG程序包中提供的GAP(威斯康星程序包第8版的程序手册,1994年8月,GeneticsComputer Group,575 Science Drive,Madison,Wisconsin,USA 53711)(Needleman,S.B.和Wunsch,C.D.,(1970),Journal of Molecular Biology,48,443-453)可合适地测定该同一性。使用下列设置用于氨基酸序列比较:缺口(gap)产生罚分为3.0且缺口延长罚分为0.1。用于同一性测定的氨基酸序列的相关部分为成熟多肽,即无信号肽。
糖结合模块
糖结合模块(CBM),或通常称为糖结合结构域(CBD),是指优先与多糖或寡糖(糖类),通常,但不必仅仅是,与其不溶于水(包括结晶)的形式结合的多肽氨基酸序列。
来源于淀粉降解酶的CBM通常称为淀粉结合模块或SBM(CBM可存在于某些淀粉分解酶,例如某些葡糖淀粉酶中,或存在于诸如环糊精葡聚糖转移酶的酶中,或在内切淀粉酶中)。SBM通常称为SBD(淀粉结合结构域)。本发明优选的是CBM,其为淀粉结合模块。
CBM作为由两个或更多个多肽氨基酸序列区组成的大多肽或蛋白质的固有部分(integral part)被发现,特别是在水解的酶(水解酶)中,所述水解的酶一般包含含有底物水解活性位点的催化模块和结合所述糖类底物的糖结合模块(CBM)。该酶可包含超过一个催化模块和一个、两个或三个CBM,且任选还包含连接CBM与催化模块的一个或多个多肽氨基酸序列区,后一类型的区域通常称为“接头”。CBM也在藻类(algae),例如,在红藻Porphyra purpurea中以非水解多糖结合蛋白的形式存在。
在存在CBM的蛋白质/多肽(例如,酶,一般是水解酶)中,CBM可位于N或C末端或位于内部位置。
构成CBM本身的该部分多肽或蛋白质(例如,水解的酶)一般由超过大约30个且不到大约250个氨基酸残基组成。
“家族20的糖结合模块”或CBM-20模块在本发明上下文中定义为大约100个氨基酸的序列,其与Joergensen等(1997)在Biotechnol.Lett.19:1027-1031的图1中公开的多肽的糖结合模块(CBM)具有至少45%同一性。CBM包含该多肽的最后102个氨基酸,即从氨基酸582到氨基酸683的子序列。本说明书中使用的糖苷水解酶家族的编号遵循如下文献中的观点:Coutinho,P.M.&Henrissat,B.(1999)CAZy-Carbohydrate-Active Enzymes server at URL:http://afmb.cnrs-mrs.fr/~cazy/CAZY/index.html或另选Coutinho,P.M.&Henrissat,B.1999;The modular structure of cellulases and othercarbohydrate-active enzymes:an integrated database approach.在″Genetics,Biochemistry and Ecology of Cellulose Degradation″,K.Ohmiya,K.Hayashi,K.Sakka,Y.Kobayashi,S.Karita and T.Kimura编,Uni Publishers Co.,Tokyo,第15-23页,和Bourne,Y.& Henrissat,B.2001;Glycoside hydrolases andglycosyltransferases:families and functional modules,Current Opinion inStructural Biology 11:593-600。
含有适用于本发明上下文的CBM的酶的例子为内切淀粉酶(即EC3.2.1.1中的α-淀粉酶),产麦芽糖α-淀粉酶(EC 3.2.1.133),葡糖淀粉酶(EC3.2.1.3)或来自CGTases(EC 2.4.1.19)。
本发明优选糖结合模块家族20的CBM。适合于本发明的糖结合模块家族20的CBM可来源于蜡样芽孢杆菌(Bacillus cereus)的β-淀粉酶(SWISSPROTP36924),或来源于环状芽孢杆菌(Bacillus circulans)的CGTase(SWISSPROTP43379)。本发明还优选与任何上述CBM氨基酸序列具有至少60%,至少70%,至少80%或甚至至少90%同一性的任何CBM。其它合适的糖结合模块家族20的CBM可见于URL:http://afmb.cnrs-mrs.fr/~cazy/CAZY/index.html)。
一旦鉴定了编码底物结合(糖结合)区的核苷酸序列,不论是cDNA还是染色体DNA,可用各种方式进行操作以将其与编码目标酶的DNA序列融合。然后使用或不用接头将编码糖结合氨基酸序列的DNA片段与编码目标酶的DNA连接。然后可用各种方式操作所得到的连接的DNA以实现表达。
来自细菌的CBMs通常适用于本发明上下文,然而,优选的是芽孢杆菌来源的CBMs,例如来自黄热芽孢杆菌(Bacillus flavothermus)(Syn.Anoxybacillus contaminans)的CBM20,优选来自淀粉酶AMY1048(本文的SEQ ID NO:2),AMY1039,或AMY1079(在PCT/US2004/023031[NZ10474]中分别以SEQ ID NO1,2和3公开),在WO 2002068589中公开的芽孢杆菌属淀粉酶,来自Diversa,芽孢杆菌属的菌种TS23(韩国)(Lin,L.-L.提交(1995年3月1日)给EMBL/GenBank/DDBJ数据库。Long-Liu Lin,食品工业研究所,培养物保藏和研究中心,331食品路,新竹,台湾300,中国)。
在一个具体实施方案中,CBM序列具有SEQ ID NO:2中氨基酸残基485到586所示的氨基酸序列或CBM序列具有的氨基酸序列与上述氨基酸序列有至少60%,至少70%,至少80%或甚至至少90%同一性。
在另一优选的实施方案中,该CBM序列具有的氨基酸序列与SEQ ID NO:2中氨基酸残基485到586所示的氨基酸序列在不超过10个位置,不超过9个位置,不超过8个位置,不超过7个位置,不超过6个位置,不超过5个位置,不超过4个位置,不超过3个位置,不超过2个位置,或甚至不超过1个位置不同。
内切淀粉酶序列
在本发明上下文中采用的适合于作为CBM/淀粉酶杂合体类型基础的内切淀粉酶包括细菌来源且具有内切淀粉酶活性的那些内切淀粉酶。淀粉酶的内切活性可按照本申请“材料和方法”部分的测定法来测定。优选的是来源于芽孢杆菌属菌种,特别是来自地衣芽孢杆菌(B.licheniformis)、解淀粉芽孢杆菌(B.amyloliquefaciens)、嗜热脂肪芽孢杆菌(B.stearothermophilus)或黄热芽孢杆菌(B.flavothermus)的内切淀粉酶。内切淀粉酶优选是与本文SEQ ID NO:35所示的来源于地衣芽孢杆菌的淀粉酶(BLA,WO2002/010355中的SEQ ID NO:8)具有至少60%,至少70%,至少80%或甚至至少90%同一性的内切淀粉酶。它包括但不限于本文SEQ ID NO:41所示的来自地衣芽孢杆菌变体LE429的淀粉酶(WO2002/010355),本文SEQ ID NO:36所示的来自嗜热脂肪芽孢杆菌的淀粉酶(BSG,WO2002/010355中的SEQ ID NO:6),本文SEQ ID NO:37所示的来自解淀粉芽孢杆菌(B.amyloliquefacience)的淀粉酶(BAN,WO2002/010355中的SEQ ID NO:10),本文SEQ ID NO:38所示的来自B.halodurance SP722的淀粉酶(WO2002/010355中的SEQ ID NO:4),本文SEQID NO:39所示的来自SP690的淀粉酶(WO9526397),本文SEQ ID:40所示的来自AA560的淀粉酶(WO2002/010355中的SEQ ID NO:12),来自碱性芽孢杆菌属菌株,例如SP707的淀粉酶(Tsukamoto等,Biochemical and BiophysicalResearch Communications,151(1988),第25-31页),淀粉酶KSM-AP1378(WO9700324/KAO),淀粉酶KSM-K36和KSM-K38(EP 1,022,334-A/KAO),淀粉酶SP7-7(WO0210356/Henkel),和淀粉酶AAI-6(WO0060058),AMRK385(PCT/DK01/00133),上述酶的片段、变体或截短形式。内切淀粉酶序列也可来自于嗜糖假单胞菌(Pseudomonas saccharophilia),例如来自WO2004111217中以SEQ ID NO:1公开的淀粉酶。优选内切淀粉酶序列包含本文SEQ ID NO:42所示的氨基酸残基1至417。
优选该内切淀粉酶是野生型酶或内切淀粉酶是含有氨基酸修饰的变体内切淀粉酶,所述修饰导致活性提高和/或在低pH,和/或在高pH下蛋白质稳定性提高,对钙耗尽稳定性提高,和/或在高温下稳定性提高。在上下文(connection)中还包括这些内切淀粉酶的化学或遗传修饰的突变体。
SEQ ID NO:35所示的地衣芽孢杆菌内切淀粉酶BLA是由483个氨基酸的催化片段组成的野生型淀粉酶。该催化结构域可分成含有催化中心的中央核心结构域和位于催化结构域C-末端的C结构域。在Seq.ID 8/NN10062中,催化核心结构域由前396个氨基酸组成且C结构域限定为从397到483的氨基酸。
SEQ ID NO:41所示的地衣芽孢杆菌内切淀粉酶变体LE429由481个氨基酸的催化片段组成。该催化结构域可分成含有催化中心的中央核心结构域和位于催化结构域C-末端的C结构域。在SEQ ID NO:41中,催化核心结构域由前394个氨基酸组成且C结构域限定为从395到481的氨基酸。
SEQ ID NO:37所示的解淀粉芽孢杆菌内切淀粉酶BAN是由483个氨基酸的催化片段组成的野生型淀粉酶。该催化结构域可分成含有催化中心的中央核心结构域和位于催化结构域C-末端的C结构域。在SEQ ID NO:37中,催化核心结构域由前396个氨基酸组成且C结构域限定为从397到483的氨基酸。
SEQ ID NO:36所示的嗜热脂肪芽孢杆菌内切淀粉酶BSG是由483个氨基酸的催化片段和另外一个C-末端延伸组成的野生型淀粉酶。该催化结构域可进一步分成含有催化中心的中央核心结构域和位于催化结构域C-末端的C结构域。在SEQ ID NO:36中,催化核心结构域由前396个氨基酸组成,C结构域限定为从397到483的氨基酸且C-末端延伸限定为氨基酸484至515。
SEQ ID NO:38所示的B.halodurance内切淀粉酶SP722是由485个氨基酸的催化片段组成的野生型淀粉酶。该核心结构域可进一步分成含有催化中心的中央AB-结构域和位于催化结构域C-末端的C结构域。在SEQ ID NO:38中,催化核心结构域由前398个氨基酸组成且C结构域限定为从399到485的氨基酸。
本文SEQ ID NO:40所示的碱性芽孢杆菌属内切淀粉酶AA560是由485个氨基酸的催化片段组成的野生型淀粉酶。该核心结构域可进一步分成含有催化中心的中央AB-结构域和位于催化结构域C-末端的C结构域。催化核心结构域由前398个氨基酸组成且C结构域限定为从399到485的氨基酸。催化核心结构域由核苷酸1-1194编码且C结构域由核苷酸1189-1455编码。
在第一方面的一个具体实施方案中,内切淀粉酶序列具有SEQ ID NO:35,SEQ ID NO:36,SEQ ID NO:37,SEQ ID NO:38,SEQ ID NO:39,SEQ IDNO:40,SEQ ID NO:41,SEQ ID NO:42所示的氨基酸序列,或内切淀粉酶序列具有的氨基酸序列与任何上述氨基酸序列有至少60%,65%,70%,75%,80%,85%,90%,95%,97%或甚至至少99%同一性。
在第一方面的另一优选实施方案中,该内切淀粉酶序列具有的氨基酸序列与SEQ ID NO:35,SEQ ID NO:36,SEQ ID NO:37,SEQ ID NO:38,SEQ IDNO:39,SEQ ID NO:40,SEQ ID NO:41,SEQ ID NO:42所示的氨基酸序列中的任何氨基酸序列在不超过10个位置,不超过9个位置,不超过8个位置,不超过7个位置,不超过6个位置,不超过5个位置,不超过4个位置,不超过3个位置,不超过2个位置,或甚至不超过1个位置不同。
在第一方面的一个优选实施方案中,该内切淀粉酶序列具有SEQ ID:40(AA560)所示的氨基酸序列,且包含一个或多个下列改变:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K和R458K。
在第一方面的另一特别优选的实施方案中,该内切淀粉酶序列具有SEQID:40所示的氨基酸序列,且包含一个或多个,例如全部的下列改变:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K,N33S,D36N,K37L,E391I,Q394R,K395D,T452Y和N484P。
在第一方面的另一特别优选的实施方案中,该内切淀粉酶序列具有SEQID:40所示的氨基酸序列,且包含一个或多个,例如全部的下列改变:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K和N484P。
在第一方面的另一非常优选的实施方案中,该内切淀粉酶序列具有SEQID:37所示的氨基酸序列,且包含一个或多个,例如全部的下列改变:S31A,D32N,I33L,E178*,G179*,N190F,K389I,K392R,E393D,V508A。
优选的杂合体
在一个具体实施方案中,本发明的杂合体具有SEQ ID NO:4,SEQ IDNO:6,SEQ ID NO:8,SEQ ID NO:10,SEQ ID NO:12,SEQ ID NO:14所示的氨基酸序列或者本发明的杂合体具有与任何上述氨基酸序列有至少60%,至少70%,至少80%或甚至至少90%同一性的氨基酸序列。
在另一优选实施方案中,本发明的杂合体具有的氨基酸序列与SEQ IDNO:4,SEQ ID NO:6,SEQ ID NO:8,SEQ ID NO:10,SEQ ID NO:12,SEQ IDNO:14所示的氨基酸序列在不超过10个位置,不超过9个位置,不超过8个位置,不超过7个位置,不超过6个位置,不超过5个位置,不超过4个位置,不超过3个位置,不超过2个位置,或甚至不超过1个位置不同。
在一个优选的实施方案中,本发明的多肽包含a)SEQ ID NO:40所示的催化结构域或同源催化结构域,和b)SEQ ID NO:2中残基485至585所示的CBM,其中导入了一个或多个,或优选全部的下列取代:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K,N33S,D36N,K37L,E391I,Q394R,K395D,T452Y和N484P,使用SEQ ID NO:40中的编号。
在另一优选的实施方案中,本发明的多肽包含SEQ ID NO:40所示的催化结构域或同源催化结构域,和b)SEQ ID NO:2中残基485至585所示的CBM,其中导入了一个或多个,或优选全部的下列取代:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K和N484P,使用SEQ ID NO:40中的编号。
在另一优选的实施方案中,本发明的多肽包含SEQ ID NO:37所示的催化结构域且包含一个或多个,例如全部的下列变化:S31A,D32N,I33L,E178*,G179*,N190F,K389I,K392R,E393D,V508A和具有SEQ ID NO:2中氨基酸残基485至586所示的氨基酸序列的CBM。
杂合体的稳定化
如果CBM和催化结构域蛋白不能形成足够紧密的蛋白-蛋白相互作用则本发明的杂合体对蛋白水解攻击可能是不稳定的。然而,通过在任一蛋白质的表面导入取代以产生稳定杂合体可提高该杂合体的稳定性。
本发明人鉴定了在细菌内切淀粉酶,例如与来自地衣芽孢杆菌的淀粉酶(SEQ ID NO:8)具有至少60%同一性的该多肽表面上的下列氨基酸残基当包含在本发明的杂合体中时与CBM紧密接触,即距离小于这些残基是用于突变以制备稳定杂合体的合适目标:12,29,30,32,33,34,35,36,37,38,368,371,372,381,383,384,386,387,388,389,390,391,392,394,395,396,422,423,448,449,450,451,452,453,454,455,456,458,459,460,461,483,484,485,使用SEQID NO:40的编号。优选本发明的杂合体的催化结构域在对应于这些残基的位置包含一个或多个取代。
在一个优选的实施方案中,本发明的杂合体包含a)SE ID NO:40所示的催化结构域或同源性催化结构域,和b)SEQ ID NO:2中残基485至585所示的CBM,其中导入了一个或多个,或优选全部的下列取代:N33S,K35S/A,D36A/N/S,K37L,E391I,Q394R,K395D,N484A/P,使用SEQ ID NO:40的编号。
在相对于该杂合体催化结构域突出的CBM的表面上,发现下列残基与催化结构域紧密接触,即距离在以内,这些残基是用于突变以制备稳定杂合体的合适目标:485,486,487,488,507,512,513,514,515,516,517,518,519,520,521,522,523,524,526,538,539,540,541,553,554,555,556,557,558,559,使用SEQ ID NO:2的编号。
表达载体
本发明还涉及重组表达载体,它可包含编码杂合酶的DNA序列,启动子,信号肽序列,和转录及翻译终止信号。上述各种DNA和调控序列可连接在一起以产生重组表达载体,它可包含一个或多个方便的限制性位点以允许在这些位点插入或取代编码该多肽的DNA序列。作为选择,通过将该DNA序列或含有该序列的DNA构建体插入合适的用于表达的载体中可表达本发明的DNA序列。在构建表达载体时,将编码序列放在该载体中使得该编码序列与合适的调控序列可操作地连接用于表达,和可能的分泌。
该重组表达载体可以是任何载体(例如,质粒或病毒),可按常规对其进行重组DNA操作且可导致该DNA序列的表达。载体的选择一般依赖于该载体与导入该载体的宿主细胞的相容性。该载体可以是线型或封闭的环状质粒。该载体可以是自主复制载体,即作为染色体外实体存在的载体,其复制不依赖于染色体复制,例如,质粒,染色体外元件,微型染色体,粘粒或人工染色体。该载体可含有保证自我复制的任何工具(means)。作为选择,该载体可以是当导入宿主细胞时整合进基因组并与其所整合的染色体一起复制的载体。该载体系统可以是单个载体或质粒或者是两个或多个载体或质粒,它们共同含有导入宿主细胞基因组的总DNA,或转座子。
宿主细胞
本发明的宿主细胞可含有DNA构建体或表达载体,该DNA构建体或表达载体包含编码第一方面多肽,例如,杂合酶的DNA序列,该宿主细胞在杂合酶,野生型酶或遗传修饰的野生型酶的重组生产中用作宿主细胞具有优势。该细胞可用表达载体转化。作为选择,该细胞可用编码杂合酶或遗传修饰的野生型酶的本发明的DNA构建体通过将该DNA构建体(以一个或多个拷贝)整合进宿主染色体来方便地进行转化。该DNA构建体整合进宿主染色体可按照常规方法,例如通过同源或异源重组进行。
该宿主细胞可以是任何合适的原核或真核细胞,例如,细菌细胞,丝状真菌细胞,酵母细胞,植物细胞或哺乳动物细胞。
分离和克隆编码亲本内切淀粉酶的DNA序列
用于分离或克隆编码第一方面多肽,例如,杂合酶的DNA序列的技术是本领域已知的且包括从基因组DNA分离,从cDNA制备,或其组合。从该基因组DNA克隆本发明的DNA序列可通过例如,使用熟知的聚合酶链式反应(PCR)或抗体筛选表达文库以检测具有共有结构特征的克隆DNA片段来实现。参见,例如,Innis等,1990,PCR:A Guide to Methods and Application,Academic Press,New York。也可使用其它DNA扩增方法,例如连接酶链式反应(LCR),连接活化转录(LAT)和基于DNA序列的扩增(NASBA)。
编码亲本内切淀粉酶的DNA序列可使用本领域熟知的各种方法从产生所述内切淀粉酶的任何细胞或微生物中分离。首先,使用来自生产所研究的内切淀粉酶的生物体的染色体DNA或信使RNA构建基因组DNA和/或cDNA文库。然后,如果该内切淀粉酶的氨基酸序列是已知的,那么可合成标记的寡核苷酸探针并用于从所述生物体制备的基因组文库鉴定编码内切淀粉酶的克隆。作为选择,含有与另一已知内切淀粉酶基因同源的序列的标记寡核苷酸探针可用作探针使用从极低到极高严紧性的杂交和洗涤条件来鉴定编码内切淀粉酶的克隆。
鉴定编码内切淀粉酶的克隆的另一方法包括将基因组DNA的片段插入表达载体,例如质粒中,用所得的基因组DNA文库转化内切淀粉酶阴性细菌,然后将转化的细菌平皿接种(plate on)到含有内切淀粉酶底物(即,麦芽糖)的琼脂上,从而得以鉴定表达内切淀粉酶的克隆。
作为选择,编码该酶的DNA序列可通过确定的标准方法通过合成来制备,例如,S.L.Beaucage和M.H.Caruthers,(1981),Tetrahedron Letters 22,第1859-1869页所述的亚磷酰胺(phosphoroamidite)法,或Matthes等,(1984),EMBO J.3,第801-805页所述的方法。在亚磷酰胺方法中,寡核苷酸在例如,自动DNA合成仪中合成,纯化,退火,连接并克隆进合适的载体中。
最后,该DNA序列可以是混合的基因组和合成来源,混合的合成和cDNA来源或混合的基因组和cDNA来源,按照标准技术通过连接合成的,基因组或cDNA来源的片段(如果合适,该片段对应于完整DNA序列的各个部分)来制备。该DNA序列也可通过使用特异性引物通过聚合酶链式反应(PCR)制备,例如按US 4,683,202或R.K.Saiki等,(1988),Science 239,1988,第487-491页所述。
分离的DNA序列
本发明特别是涉及分离的DNA序列,它含有编码第一方面的多肽,例如,杂合酶的DNA序列。
本文使用的术语“分离的DNA序列”是指这样的DNA序列,它基本上不含其它DNA序列,例如,通过琼脂糖电泳测定有至少大约20%的纯度,优选至少大约40%的纯度,更优选至少大约60%的纯度,甚至更优选至少大约80%的纯度,且最优选至少大约90%的纯度。
例如,分离的DNA序列可通过在遗传工程中使用的标准克隆方法获得以便将该DNA序列从其天然位置重新置于其将被复制的不同位点。该克隆方法可包括切下并分离含有编码目的多肽的DNA序列的所需DNA片段,将该片段插入载体分子中,并将重组载体并入宿主细胞,在该宿主细胞中复制该DNA序列的多个拷贝或克隆。可用各种方法操作分离的DNA序列以提供目标多肽的表达。依赖于表达载体可能需要或必须在插入载体前对该DNA序列进行操作。使用重组DNA方法修饰DNA序列的技术是本领域熟知的。
DNA构建体
本发明特别是涉及含有编码第一方面的多肽的DNA序列的DNA构建体。“DNA构建体”本文定义为一种单链或双链的DNA分子,它从天然存在的基因分离或者被修饰成含有以天然不存在的方式组合和连接(juxtapose)的DNA片段。当该DNA构建体含有表达本发明的编码序列所需的全部调控序列时术语DNA构建体与术语表达盒同义。
定点诱变
一旦分离了适用于第一方面的多肽的编码亲本内切淀粉酶的DNA序列,并鉴定了用于突变的理想位点,可使用合成寡核苷酸导入突变。这些寡核苷酸含有所需突变位点侧翼的核苷酸序列。在一个具体方法中,可在携带内切淀粉酶基因的载体中产生编码内切淀粉酶序列的DNA的单链缺口。然后将携带所需突变的合成核苷酸与单链DNA的同源部分退火。然后用DNA聚合酶I(Klenow片段)填满剩下的缺口并使用T4连接酶连接该构建体。该方法的具体例子在Morinaga等,(1984),Biotechnology 2,第646-639页中描述。US 4,760,025公开了通过对盒(cassette)进行轻微改变来导入编码多个突变的寡核苷酸。然而,用Morinaga的方法可在任何时间导入甚至更多种类的突变,因为可导入各种长度的多个寡核苷酸。
将突变导入编码内切淀粉酶的DNA序列中的另一方法在Nelson和Long,(1989),Analytical Biochemistry 180,第147-151页中描述。它包含3步产生的PCR片段,该PCR片段含有使用化学合成的DNA链作为PCR反应中的一个引物导入的所需突变。通过用限制性核酸内切酶裂解可从该PCR产生的片段中分离携带该突变的DNA片段并将其再插入表达质粒中。
定域随机诱变(localized random mutagenesis)
可将随机诱变有利地定位于一部分所述亲本内切淀粉酶。例如,当鉴定了该酶的某些区域对于该酶的给定特性特别重要,且期望修饰以产生具有改进特性的变体时具有优势。当阐明了亲本酶的三级结构并与该酶的功能相关联时一般可鉴定该区域。
通过使用上述PCR产生的诱变技术或本领域已知的任何其它合适的技术可方便地进行定域或区域特异性随机诱变。作为选择,通过例如,插入合适的载体可分离编码待修饰的部分DNA序列的DNA序列,且随后通过使用上述任何诱变方法可对所述的部分进行诱变。
在植物中表达该酶
编码目的酶,例如本发明的杂合酶的DNA序列可在如下所述的转基因植物中转化并表达。
转基因植物可以是双子叶或单子叶植物,简称双子叶或单子叶。单子叶植物的例子为禾草,例如草地早熟禾(meadow grass)(蓝草(blue grass),蓝草(Poa)),饲草,如羊茅属(Festuca)、黑麦草属(Lollium),温带草(temperate grass),如剪股颖属(Agrostis)和谷类,例如小麦、燕麦,黑麦,大麦、水稻、高粱及玉米(苞谷)。
双子叶植物的例子是烟草,豆类,例如羽扇豆,马铃薯,甜菜,豌豆,菜豆和黄豆,十字花科植物(十字花科(family Brassicaceae)),例如花椰菜,油菜和紧密相关的模型植物拟南芥(Arabidopsis thaliana)。
植物部分的例子有茎,愈伤组织,叶,根,果实,种子,和块茎以及含有这些部分的单一组织,例如表皮,叶肉,薄壁组织,维管组织,分生组织。在本上下文中,特定的植物细胞区室,例如叶绿体,质外体,线粒体,液泡,过氧化物酶体和细胞质也认为是植物部分。另外,无论何种组织来源的任何植物细胞都认为是植物部分。同样,经分离便于本发明使用的诸如特异性组织和细胞的植物部分也认为是植物部分,例如,胚(embryo),胚乳,糊粉和种皮。
该植物,植物部分和植物细胞的后代也包括在本发明范围内。
表达目的酶的转基因植物或植物细胞可按本领域已知的方法构建。简单的说通过将一个或多个编码目的酶的表达构建体并入植物宿主基因组并将所得的修饰的植物或植物细胞繁殖成转基因植物或植物细胞来构建该植物或植物细胞。
方便地,该表达构建体是一种DNA构建体,它包含编码目的酶的基因,该基因与在选定植物或植物部分中表达该基因所需的合适调控序列可操作地相连。另外,该表达构建体可包含用于鉴定其中整合了该表达载体的宿主细胞的可选择标记和将该构建体导入所述植物必需的DNA序列(后者依赖于所用的DNA导入方法)。
调控序列,例如启动子和终止子序列和任选的信号或转运序列的选择根据例如,需要该酶何时,何地和如何表达来确定。例如,编码本发明酶的基因的表达可以是组成型或诱导型的,或者可以是发育特异性,阶段特异性或组织特异性的,且该基因产物可靶向特定细胞区室,组织或植物部分,例如种子或叶。调控序列由例如,Tague等,Plant,Phys.,86,506,1988描述。
对于组成型表达,可使用35S-CaMV,玉米遍在蛋白1和水稻肌动蛋白1启动子(Franck等,1980.Cell 21:285-294,Christensen AH,Sharrock RA和Quail 1992.Maize polyubiquitin genes:structure,thermal perturbation ofexpression and transcript splicing,and promoter activity following transfer toprotoplasts by electroporation.Plant Mo.Biol.18,675-689;Zhang W,McElroyD.和Wu R 1991,Analysis of rice ACT1 5’region activity in transgenic riceplants.Plant Cell 3,1155-1165)。器官特异性启动子可以是,例如,来自贮存库(sink)组织诸如种子,马铃薯块茎,和果实的启动子(Edwards & Coruzzi,1990.Annu.Rev.Genet.24:275-303),或来自代谢库组织诸如分生组织的启动子(Ito等,1994.Plant Mol.Biol.24:863-878),种子特异性启动子,诸如来自水稻的谷蛋白,醇溶蛋白,球蛋白或白蛋白启动子(Wu等,Plant and CellPhysiology Vol.39,No.8第885-889页(1998)),Conrad U.等,Journal of PlantPhysiology Vol.152,No.6,第708-711页(1998)所述的来自蚕豆(Vicia faba)的豆球蛋白(legumin)B4和未知种子蛋白基因的蚕豆启动子,来自籽油主体蛋白(seed oil body protein)的启动子(Chen等,Plant and cell physiology vol.39,No.9第935-941页(1998),来自Brassica napus的贮存蛋白napA启动子,或本领域已知的任何其它种子特异性启动子,例如,WO 91/14772中所述。另外,该启动子可以是叶特异性启动子,例如来自水稻或西红柿的rbcs启动子(Kyozuka等,Plant Physiology Vol.102,No.3第991-1000页(1993),小球藻病毒腺嘌呤甲基转移酶基因启动子(Mitra,A.和Higgins,DW,PlantMolecular Biology Vol.26,No.1第85-93页(1994),或来自水稻的aldP基因启动子(Kagaya等,Molecular and General Genetics Vol.248,No.6第668-674页(1995),或伤口诱导型启动子,例如马铃薯pin2启动子(Xu等,PlantMolecular Biology Vol.22,No.4第573-588页(1993)。同样,该启动子可通过诸如温度,干旱或盐度改变的非生物处理诱导,或者通过可活化启动子的外源使用的物质,例如,乙醇,雌激素,植物激素,如乙烯、脱落酸和赤霉素,和重金属诱导。
可使用启动子增强元件在植物中获得更高的酶表达。例如,该启动子增强元件可以是位于启动子和编码该酶的核苷酸序列之间的内含子。例如,如前引证的Xu等公开了使用水稻肌动蛋白1基因的第一个内含子增强表达。
选择标记基因和该表达构建体的任何其它部分可从本领域可获得的那些序列中选择。
可将该DNA构建体按照本领域已知的常规技术并入植物基因组中,包括土壤杆菌(Agrobacterium)介导转化,病毒介导的转化,显微注射,粒子轰击,生物射弹转化,和电穿孔(Gasser等,Science,244,1293;Potrykus,Bio/Techn.8,535,1990;Shimamoto等,Nature,338,274,1989)。
目前,根癌土壤杆菌(Agrobacterium tumefaciens)介导的基因转移是产生转基因双子叶植物的可选方法(综述参见Hooykas & Schilperoort,1992.PlantMol.Biol.19:15-38),且也可用于转化单子叶植物,尽管其它转化方法通常也可用于这些植物。目前,可补充土壤杆菌方法的用于产生转基因单子叶植物的可选方法是(用转化DNA包裹的显微金或钨颗粒)粒子轰击胚愈伤组织或发育中的胚胎(Christou,1992.Plant J.2:275-281;Shimamoto,1994.Curr.Opin.Biotechnol.5:158-162;Vasil等,1992.Bio/Technology 10:667-674)。转化单子叶植物的另一方法是基于如Omirulleh S,等,Plant Molecular biology Vol.21,No.3第415-428页(1993)所述的原生质体转化。
转化后,选择并入了表达构建体的转化体并按照本领域熟知的方法再生成完整植物。通常通过使用例如,用两个分开的T-DNA构建体的共转化或以特异性重组酶位点特异性切除选择基因来设计转化方法用于在再生期间或在后代中选择性排除选择基因。
基于生面团的产品
本发明的杂合酶可用于制备基于生面团的可食产品,例如,面包,玉米饼(tortillas),蛋糕,薄煎饼,饼干,糕点,馅饼皮(pie crust),更优选焙烤产品,例如,面包产品。
用于制备基于生面团的产品的生面团一般包括例如,来自谷物的面粉,例如小麦粉,玉米粉,黑麦粉,燕麦粉,或高粱粉。生面团一般通过添加合适的酵母培养物,例如酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)(面包酵母)的培养物或化学发酵剂使其发酵(leaven)。
可食的基于生面团的产品可优选从生面团制备的任何类型的焙烤产品,可具有软或脆的特性,可以是白色,浅色或深色类型。优选可食的基于生面团的产品包括面包(特别是白色,小麦,粗面粉(whole-meal),low-carb,褐色,多种谷物,深色和黑麦的面包),一般是块(loave),包或卷的形式,且更优选面饼(pan bread),汉堡包,法式棍子面包(French baguette-type bread),皮塔饼(pita bread),玉米饼,蛋糕,薄煎饼,饼干,糕点,馅饼,脆面包,馒头(steambread),比萨饼等。
可食的基于生面团的产品可通过加热生面团,例如,通过焙烤或气蒸来制备。其例子有气蒸或焙烤的面包(特别是白色、粗面粉或黑麦的面包),一般是块或卷的形式。可食的基于生面团的产品也可通过油炸制备(例如,在热脂肪或油中深度油炸)。这类可食产品的例子是油炸圈饼(doughnut)。
本发明第一方面的杂合酶优选对过量使用(overdosing)具有高耐受性。向生面团添加本发明的多肽,例如,第一方面的多肽2倍,3倍,优选4倍,更优选5倍,最优选6倍的所述多肽的有效剂量导致ELR和/或ELRN低于15%,低于10%,低于7%,低于6%,低于5%,低于4%或甚至低于3%。
在另一方面,本发明的多肽在说明书提供的测试条件下具有至少20%,例如至少25%或30%,优选至少35%,更优选至少40%且最优选至少50%的残余活性。
本发明的多肽还可具有改进的外切与内切活性比率,该比率在说明书中定义为IEF1或IEF2。该多肽的IEF1或IEF2可大于1,例如1.1或1.5,优选2或2.5或3,更优选3.5或4,最优选5或7或10。
在其它实施方案中,本发明提供了具有特别有利于焙烤目的的特性的多肽,即在本说明书提供的测试条件下在70℃下残余活性为至少25%,外切与内切活性比率(IEF)提高,其中IEF大于1,且最终粘结性(cohesiveness)降低少于5%(在本说明书提供的测试条件下)而硬度改变至少85个单位(在本说明书提供的测试条件下)和/或游离水流动性改变至少1100个单位(在本说明书提供的测试条件下)。
为了焙烤,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少5%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异(dHardness)为至少85个单位,例如90个单位或100个单位,优选150个单位或200个单位,更优选250个单位或300个单位,最优选400个单位或600个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少4%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少85个单位,例如90个单位或100个单位,优选150个单位或200个单位,更优选250个单位或300个单位,最优选400个单位或600个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少2%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少85个单位,例如90个单位或100个单位,优选150个单位或200个单位,更优选250个单位或300个单位,最优选400个单位或600个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少1%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少85个单位,例如90个单位或100个单位,优选150个单位或200个单位,更优选250个单位或300个单位,最优选400个单位或600个单位。
当本发明的多肽与300MANU Novamyl/kg面粉一起加入时,可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少5%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少15个单位,例如20个单位或30个单位,优选40个单位或50个单位,更优选60个单位或70个单位,最优选85个单位或100个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少4%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少15个单位,例如20个单位或30个单位,优选40个单位或50个单位,更优选60个单位或70个单位,最优选85个单位或100个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少2%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少15个单位,例如20个单位或30个单位,优选40个单位或50个单位,更优选60个单位或70个单位,最优选85个单位或100个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少1%,而在本说明书提供的测试条件下测量时硬度差异为至少15个单位,例如20个单位或30个单位,优选40个单位或50个单位,更优选60个单位或70个单位,最优选85个单位或100个单位。
为了焙烤,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少5%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异(dMobility)为至少300个单位,例如400个单位或500个单位,优选600个单位或700个单位,更优选800个单位或900个单位,最优选1000个单位或1200个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少4%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少300个单位,例如400个单位或500个单位,优选600个单位或700个单位,更优选800个单位或900个单位,最优选1000个单位或1200个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少2%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少300个单位,例如400个单位或500个单位,优选600个单位或700个单位,更优选800个单位或900个单位,最优选1000个单位或1200个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少1%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少300个单位,例如400个单位或500个单位,优选600个单位或700个单位,更优选800个单位或900个单位,最优选1000个单位或1200个单位。
当本发明的多肽与300MANU Novamyl/kg面粉一起加入时,导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少5%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少1000个单位,例如1100个单位或1200个单位,优选1400个单位或1500个单位,更优选1800个单位或2000个单位,最优选2200个单位或2500个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少4%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少1000个单位,例如1100个单位或1200个单位,优选1400个单位或1500个单位,更优选1800个单位或2000个单位,最优选2200个单位或2500个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少2%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少1000个单位,例如1100个单位或1200个单位,优选1400个单位或1500个单位,更优选1800个单位或2000个单位,最优选2200个单位或2500个单位。在另一实施方案中,本发明的多肽可导致在本说明书提供的测试条件下测量时粘结性降低至少1%,而在本说明书提供的测试条件下测量时流动性差异为至少1000个单位,例如1100个单位或1200个单位,优选1400个单位或1500个单位,更优选1800个单位或2000个单位,最优选2200个单位或2500个单位。
粘结性降低,硬度差异和流动性差异的上述值与面包,特别是对于通过发面团方法(sponge and dough method)制备的面包特别相关。粘结性降低,硬度差异和流动性差异之间的类似相关性在实施例7中公开。
任选的附加酶
本发明的杂合酶任选可与一种或多种附加酶和/或抗老化剂一起使用。
抗老化剂包括但不限于乳化剂,水状胶体和酶抗老化剂。本文使用的抗老化剂是指化学,生物学或酶试剂,它可延迟基于生面团的产品的老化,即,可降低基于生面团的产品在贮存期间柔软度劣化的速度。基于生面团的产品的柔软度(和抗老化剂的抗老化效果)可由熟练检验的面包师凭经验评估或者如本领域已知的使用质地分析器(例如,TAXT2)测量。
化学抗老化剂的例子包括极性脂质,例如,脂肪酸及其单甘油酯,例如,在美国专利号4,160,848中所述。
在优选的实施方案中,抗老化剂是抗老化酶,它优选在烹饪(例如,焙烤)前加入生面团中。抗老化酶的例子包括,但不限于,内切淀粉酶,例如本发明的杂合体,外切内切淀粉酶(exo-endo-amylases),例如美国专利号6,667,065和US2004/0043109中所述的外切淀粉酶,支链淀粉酶,糖基转移酶,淀粉糖苷酶,分支酶(1,4-α-葡聚糖分支酶),4-α-葡聚糖转移酶(糊精转移酶),β-淀粉酶,产麦芽糖α-淀粉酶,脂肪酶,磷脂酶,半乳糖脂肪酶,酰基转移酶,果胶酸裂合酶,木聚糖酶,木糖葡聚糖内转糖基酶,蛋白酶,例如在WO2003/084331中所述,肽酶及其组合。
淀粉酶可来自真菌,细菌或植物,它可以是内切淀粉酶,例如,来自芽孢杆菌属,特别是地衣芽孢杆菌或解淀粉芽孢杆菌,β-淀粉酶,例如,来自植物(例如,大豆)或来自微生物来源(例如,芽孢杆菌属),例如在WO9950399A2中公开的非产麦芽糖Bacillus clausiiα-淀粉酶,WO 2004111217中SEQ IDNO:1的嗜糖假单胞菌淀粉酶,或葡糖淀粉酶,或真菌内切淀粉酶,例如,来自黑曲霉或米曲霉。
更优选地,附加酶是抗老化酶且优选该抗老化酶是产麦芽糖淀粉酶(EC3.2.1.133)。产麦芽糖淀粉酶以延迟该产品老化有效的量,例如,至少500MANU/kg面粉,更优选以至少500到1500MANU/kg面粉的量,加入到生面团中。产麦芽糖淀粉酶可从任何合适的来源获得,例如来自细菌,例如芽孢杆菌属,优选嗜热脂肪芽孢杆菌,例如来自菌株NCIB 11837或其通过氨基酸修饰制备的变体(EP 494233B1,美国专利号6,162,628)。产麦芽糖淀粉酶可优选以20到2000MANU/kg面粉,优选500到1000MANU/kg面粉,更优选至少750MANU/kg面粉,至少1000MANU/kg面粉的剂量加入。优选的产麦芽糖淀粉酶是(可从Novozymes A/S获得)。
在另一优选的实施方案中,抗老化酶是木聚糖酶。木聚糖酶可从任何合适的来源获得,例如来自芽孢杆菌属,例如,WO 2003/010923,WO2001/066711或WO 2000/039289所述的枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis),和曲霉属,特别是棘孢曲霉(A.aculeatus)、黑曲霉、泡盛曲霉(A.awamori)或塔宾曲霉(A.tubigensis)或WO96/32472中所述的木霉属(Trichoderma)和嗜热霉属(Thermomyces),例如,T.reesei,或来自腐质霉属(Humicola)的菌株,例如,H.insolens。任选地,附加酶可与上述抗老化酶一起使用,所述抗老化酶例如,脂解酶,特别是磷脂酶,半乳糖脂肪酶和/或三酰甘油脂肪酶活性,例如在WO9953769,WO0032758,WO0200852或WO2002066622中所述,或例如,转谷氨酰胺酶,纤维素分解酶,例如,纤维素酶,酰基转移酶,蛋白质二硫键异构酶(protein disulfide isomerase),果胶酶,果胶酸裂合酶,氧化还原酶。所述酶可以是任何来源,包括哺乳动物,植物,且优选微生物(细菌,酵母或真菌)来源且可通过本领域常规使用的技术获得。
其它酶也可以是脂肪分解酶,特别是磷脂酶,半乳糖脂肪酶和/或三酰甘油脂肪酶活性,例如在WO9953769,WO0032758,WO0200852或WO2002066622中所述。
另外,其它酶可以是第二种淀粉酶,环糊精葡聚糖转移酶,蛋白酶或肽酶,特别是外肽酶,转谷氨酰胺酶,脂肪酶,磷脂酶,纤维素酶,半纤维素酶,糖基转移酶,分支酶(1,4-α-葡聚糖分支酶)或氧化还原酶。其它酶可以是哺乳动物,植物或微生物(细菌,酵母或真菌)来源。
第二淀粉酶可来自真菌,细菌或植物。它可以是产麦芽糖淀粉酶(EC3.2.1.133),例如,来自嗜热脂肪芽孢杆菌,内切淀粉酶,例如,来自芽孢杆菌属,特别是地衣芽孢杆菌或解淀粉芽孢杆菌,β-淀粉酶,例如,来自植物(例如,大豆)或来自微生物来源(例如,芽孢杆菌属),葡糖淀粉酶,例如,来自黑曲霉,或真菌内切淀粉酶,例如,来自米曲霉或来自嗜糖假单胞菌(Pseudomonas saccharophilia),例如在WO9950399A2中公开的非产麦芽糖α-淀粉酶。
半纤维素酶可以是戊聚糖酶(pentosanase),例如,木聚糖酶,它可以是微生物来源,例如来自细菌或真菌,例如曲霉属的菌株,特别是棘孢曲霉、黑曲霉、泡盛曲霉或塔宾曲霉,来自木霉属的菌株,例如,T.reesei,或来自腐质霉属的菌株,例如,H.insolens。
蛋白酶可来自芽孢杆菌属,例如,解淀粉芽孢杆菌。
氧化还原酶可以是葡萄糖氧化酶,糖氧化酶,己糖氧化酶,脂肪氧化酶,过氧化物酶,或漆酶。
生面团和/或面包改良添加剂
本发明的杂合酶可作为生面团和/或面包改良添加剂以粒状或聚集粉末的形式提供。生面团和/或面包改良添加剂优选具有窄的颗粒大小分布,具有超过95%(重量)的颗粒在从25到500μm的范围内。
在一个优选的实施方案中,组合物,例如,面包改良添加剂在包含如下步骤的方法中产生:a)提供具有内切淀粉酶活性的第一氨基酸序列;b)提供含有糖结合模块的第二氨基酸序列;c)和构建包含所述第一氨基酸序列和第二氨基酸序列的多肽;d)提供编码所述多肽的DNA序列;e)在合适的宿主细胞中表达所述的DNA序列并回收所述的多肽;f)将所述多肽添加到面粉或粒状或聚集粉末中。
粒状和聚集粉末可用常规方法制备,例如,通过将淀粉酶,即该杂合酶喷雾到流化床制粒机中的载体上。该载体可由具有合适颗粒大小的颗粒核组成。该载体可以是可溶或不溶性的,例如,盐(例如NaCl或硫酸钠),糖(例如蔗糖或乳糖),糖醇(例如山梨糖醇),淀粉,水稻(rice),玉米渣,或大豆。
淀粉加工
本发明的多肽,即具有CBM的内切淀粉酶,具有有价值的特性,使得可用于各种工业应用。具体地说,第一方面的酶适用于作为洗涤,洗碗和硬表面清洁去污剂组合物中的成分。许多变体在从淀粉生产增甜剂(sweetener)和乙醇中特别有用,和/或用于纺织品脱浆。可使用本发明的内切淀粉酶生产乙醇的一个例子在美国专利号5,231,017中公开,通过引用将其并入本文。
另外,可使用本发明的内切淀粉酶的一个方法在丹麦专利申请PA 200301568(通过引用将其并入本文)中公开。所述方法包括在低于所述粒状淀粉的起始糊化温度的温度下将淀粉水解成可溶淀粉水解物。另一合适的方法在WO2004081193(通过引用将其并入本文)中公开。
包括淀粉液化和/或糖化方法的常规淀粉转化方法的条件在例如,US3,912,590和欧洲专利公开号252,730和63,909中描述。
优选的用途是在发酵方法中使用,其中在具有CBM的内切淀粉酶存在下液化和/或糖化淀粉底物以产生葡萄糖和/或麦芽糖,例如,用作增甜剂或适合于通过发酵生物,优选酵母转化成发酵产物。这些发酵方法包括用于生产燃料乙醇或饮料乙醇(饮料醇)的方法,生产饮料的方法,生产有机化合物,例如柠檬酸,衣康酸,乳酸,葡萄糖酸,酮;氨基酸,例如谷氨酸(谷氨酸单钠),和难以通过合成生产的更复杂的化合物,例如抗生素,例如青霉素、四环素;酶;维生素,例如核黄素,B12,β-胡萝卜素;激素的方法。
从淀粉生产增甜剂:
将淀粉转化成果糖糖浆的“传统”方法一般由三个连续的酶学过程组成,即,液化过程,接着是糖化过程和异构化过程。在液化过程期间,由内切淀粉酶,优选由具有CBM的内切淀粉酶,例如本发明的多肽在5.5到6.2之间的pH值和95-160℃的温度下处理大约2小时的时间将淀粉降解为糊精。为了保证在这些条件下的最佳酶稳定性,加入1mM的钙(40ppm的游离钙离子)。
液化过程后,通过加入葡糖淀粉酶(例如,AMGTM)和脱支酶,例如异淀粉酶或支链淀粉酶(例如,PromozymeTM)将糊精转化成葡萄糖。在该步骤之前,将pH值降低到低于4.5,维持高温(95℃以上),且将液化内切淀粉酶活性变性。将温度降低到60℃,并加入葡糖淀粉酶和脱支酶。糖化过程进行24-72小时。
糖化过程后,将pH值增加到6-8的范围内,优选pH 7.5,且通过离子交换去掉钙。然后使用例如,固定化葡萄糖异构酶(例如SweetzymeTM)将葡萄糖浆转化成高果糖浆。
在本发明的淀粉加工的一个实施方案中,使用第一方面的多肽将磨细的糊化全谷物原材料分解(水解)成大部分DE高于4的麦芽糖糊精(糊精)。在本发明的一个实施方案中,原材料是磨细的(全)谷物。
在本发明的一个实施方案中,按三步加热浆料法(three-step hot slurryprocess)进行酶液化。浆料加热到60-95℃之间,优选80-85℃,加入酶开始液化(变稀(thinning)),加入至少第一方面的多肽。然后浆料在95-140℃之间,优选105-125℃的温度下喷射蒸煮(jet cook)至浆料完全糊化。然后浆料冷却到60-95℃并加入优选包含第一方面的多肽的更多酶以结束水解(第二次液化)。液化过程在pH 4.5-6.5,特别是在pH 5到6之间进行。磨细并液化的全谷物称为醪液。以本领域的技术人员熟知的有效量加入第一方面的多肽。
在一个方面,该方法包括:a)将淀粉底物与具有CBM的内切淀粉酶,例如,第一方面的多肽接触;b)在一定的温度下将所述的淀粉底物与所述的多肽和真菌α-淀粉酶和/或葡糖淀粉酶温育一段时间,以便足以实现至少90%,或至少92%,至少94%,至少95%,至少96%,至少97%,至少98%,至少99%,至少99.5%w/w的所述淀粉底物液化并糖化成可发酵糖;c)发酵以产生发酵产物,d)任选回收发酵产物。
在另一方面,该方法包括液化和/或水解浆料或糊化或粒状淀粉的浆料,特别是在低于所述粒状淀粉起始糊化温度的温度下将粒状淀粉液化和/或水解成可溶性淀粉水解物。除了与本发明的多肽,例如第一方面的多肽接触外,该淀粉可与选自由真菌α-淀粉酶(EC 3.2.1.1),β-淀粉酶(E.C.3.2.1.2),和葡糖淀粉酶(E.C.3.2.1.3)组成的组中的酶接触。在一个实施方案中,还可加入脱支酶,例如异淀粉酶(E.C.3.2.1.68)或支链淀粉酶(E.C.3.2.1.41)。
在一个实施方案中,该方法在低于起始糊化温度的温度下实施。优选的是,实施该方法的温度为至少30℃,至少31℃,至少32℃,至少33℃,至少34℃,至少35℃,至少36℃,至少37℃,至少38℃,至少39℃,至少40℃,至少41℃,至少42℃,至少43℃,至少44℃,至少45℃,至少46℃,至少47℃,至少48℃,至少49℃,至少50℃,至少51℃,至少52℃,至少53℃,至少54℃,至少55℃,至少56℃,至少57℃,至少58℃,至少59℃,或优选至少60℃。实施该方法的pH可在3.0到7.0的范围内,优选从3.5到6.0,或更优选从4.0-5.0。在一个优选的实施方案中,该方法包括例如,在大约32℃,例如从30到35℃的温度下例如,用酵母发酵以生产乙醇。发酵期间,乙醇含量达到至少7%,至少8%,至少9%,至少10%,例如至少11%,至少12%,至少13%,至少14%,至少15%,例如至少16%的乙醇(w/w)。
在任一上述方面中使用的淀粉浆料可具有20-55%的干固形(dry solid)粒状淀粉,优选25-40%的干固形粒状淀粉,更优选30-35%的干固形粒状淀粉。与具有CBM的内切淀粉酶,例如,第一方面的多肽接触后,至少85%,至少86%,至少87%,至少88%,至少89%,至少90%,至少91%,至少92%,至少93%,至少94%,至少95%,至少96%,至少97%,至少98%,或优选至少99%的干固形粒状淀粉转变成可溶性淀粉水解物。
在另一优选的实施方案中,具有CBM的内切淀粉酶,例如,第一方面的多肽用于糊化淀粉的液化、糖化过程中,例如,不限于通过喷射蒸煮的糊化。该方法可包括发酵产生发酵产物,例如,乙醇。通过发酵从含淀粉材料生产乙醇的方法包括:(i)用具有CBM的内切淀粉酶,例如,第一方面的多肽液化所述含淀粉的材料;(ii)糖化获得的液化醪液;(iii)在发酵生物体存在下发酵步骤(ii)获得的材料。任选该方法还包含回收乙醇。糖化和发酵可作为同步糖化和发酵过程(SSF过程)进行。发酵期间,乙醇含量达到至少7%,至少8%,至少9%,至少10%,例如至少11%,至少12%,至少13%,至少14%,至少15%,例如至少16%的乙醇。
在上述方面的方法中处理的淀粉可具体从块茎,根,茎,豆类,谷类或全谷粒获得。更具体地说,该粒状淀粉可从玉米,玉米芯(cob),小麦,大麦,黑麦,买罗高粱(milo),西米,木薯,木薯淀粉,高粱,水稻,豌豆,菜豆,香蕉或马铃薯获得。特别包含蜡质和非蜡质型的玉米和大麦。
本发明的组合物
本发明还涉及含有第一方面多肽的组合物。该组合物还可包含选自由真菌α-淀粉酶(EC 3.2.1.1),β-淀粉酶(E.C.3.2.1.2),葡糖淀粉酶(E.C.3.2.1.3)和支链淀粉酶(E.C.3.2.1.41)组成的组中的酶。葡糖淀粉酶优选来自曲霉属菌种的菌株,例如黑曲霉,或来自踝节菌属(Talaromyces)菌种的菌株且特别是来自Talaromyces leycettanus,例如美国专利号Re.32,153公开的葡糖淀粉酶,Talaromyces duponti和/或Talaromyces thermopiles,例如美国专利号4,587,215公开的葡糖淀粉酶且更优选来自Talaromyces emersonii。最优选地该葡糖淀粉酶来自Talaromyces emersonii菌株CBS 793.97和/或具有如WO 99/28448中SEQ ID NO:7公开的序列。还优选具有与上述氨基酸序列有至少50%,至少60%,至少70%,至少80%,至少90%或甚至至少95%同源性的氨基酸序列的葡糖淀粉酶。商品Talaromyces葡糖淀粉酶制品由Novozymes A/S以Spirizyme Fuel提供。
对于包含第一方面的多肽和葡糖淀粉酶的组合物还优选的是来自栓菌属(Trametes)的菌株,优选Trametes cingulata的具有葡糖淀粉酶活性的多肽。还优选的多肽具有葡糖淀粉酶活性且与美国专利申请60/650,612中SEQ ID NO:5的成熟多肽氨基酸1至575的氨基酸具有至少50%,至少60%,至少70%,至少80%,至少90%或甚至至少95%的同源性。
对于包含第一方面的多肽和葡糖淀粉酶的组合物还优选的是来自Pachykytospora属的菌株,优选Pachykytospora papyracea的具有葡糖淀粉酶活性的多肽。还优选的多肽具有葡糖淀粉酶活性且与美国专利申请60/650,612中SEQ ID NO:2的成熟多肽氨基酸1至556的氨基酸具有至少50%,至少60%,至少70%,至少80%,至少90%或甚至至少95%的同源性。
上述组合物可在,例如生产增甜剂,或诸如乙醇的发酵方法中用于液化和/或糖化糊化的或粒状的淀粉,以及部分糊化的淀粉。部分糊化的淀粉是糊化到某种程度的淀粉,即其中部分淀粉不可逆地膨胀并糊化而部分淀粉仍然以颗粒状态存在。
上述组合物也可包含以0.01到10AFAU/g DS,优选0.1到5AFAU/g DS,更优选0.5到3AFAU/AGU,且最优选0.3到2AFAU/g DS的量存在的酸性真菌α-淀粉酶。该组合物可在任何上述淀粉加工中应用。
生产发酵产物
从糊化淀粉:本发明该方面涉及从含淀粉材料生产发酵产物,特别是乙醇的方法,该方法包括液化步骤和分开或同时进行的糖化和发酵步骤。发酵产物,例如特别是乙醇可任选在发酵后通过例如,蒸馏来回收。合适的含淀粉起始材料在下文“含淀粉的材料”部分列出。涉及的酶在下面“酶”部分列出。发酵优选在酵母,优选酵母属(Saccharomyces)的菌株存在下进行。合适的发酵生物在下面“发酵生物”部分列出。
优选的方法包括a)将含水淀粉浆料与包含具有α-淀粉酶活性的第一氨基酸序列和含糖结合模块的第二氨基酸序列的多肽接触,b)将所述的淀粉浆料与所述多肽温育,c)发酵产生发酵产物,和d)任选回收发酵产物。优选的是步骤b)在足以实现至少90%w/w的所述淀粉底物转化成可发酵糖的温度下进行一段时间。优选所述多肽的第一氨基酸序列和/或第二氨基酸序列来自细菌。优选所述多肽可为第一方面的杂合体。
含水浆料可含有10-40wt-%,优选25-35wt-%的含淀粉材料。浆料加热到超过糊化温度并加入细菌和/或酸性真菌α-淀粉酶以开始液化(变稀)。在一个实施方案中浆料在进行本发明步骤(a)的α-淀粉酶处理前可经喷射蒸煮以进一步糊化所述浆料。
更具体地说液化按三步加热浆料法进行。浆料加热到60-95℃之间,优选80-85℃,加入α-淀粉酶开始液化(变稀)。然后浆料在95-140℃之间,优选105-125℃的温度下喷射蒸煮1-15分钟,优选3-10分钟,特别是大约5分钟。浆料冷却到60-95℃并加入更多α-淀粉酶以结束水解(第二次液化)。液化过程通常在pH 4.5-6.5,特别是在pH 5到6之间进行。磨细并液化的全谷物称为醪液。
糖化步骤可使用本领域熟知的条件进行。例如,全部糖化过程可持续大约24到大约72小时,然而,通常在30-65℃之间,一般在大约60℃的温度下仅进行一般40-90分钟的预糖化,接着在发酵期间以同步糖化和发酵法(SSF)进行完全糖化。糖化一般在30-65℃,一般为大约60℃的温度下,在pH为4到5之间,一般在大约pH 4.5进行。
在乙醇生产中最广泛使用的方法是同步糖化和发酵(SSF)方法,其中没有糖化维持阶段,意味着可一起加入发酵生物,例如酵母,和酶。在进行SSF时,通常在刚刚发酵前在超过50℃的温度下导入预糖化步骤。
根据本发明,发酵步骤(c)包括,但不限于,用于生产如下物质的发酵方法:醇(例如,乙醇,甲醇,丁醇);有机酸(例如,柠檬酸,乙酸,衣康酸,乳酸,葡萄糖酸);酮(例如,丙酮);氨基酸(例如:谷氨酸);气体(例如,H2和CO2);抗生素(例如,青霉素和四环素);酶;维生素(例如,核黄素,B12,β-胡萝卜素);和激素。优选的发酵方法包括如本领域熟知的醇发酵方法。优选的发酵方法是如本领域熟知的厌氧发酵方法。
从未糊化淀粉:在该实施方案中,本发明涉及从含淀粉材料未经含淀粉材料的糊化而生产发酵产物的方法。在一个实施方案中,本发明的多肽,例如,第一方面的杂合酶,和任选葡糖淀粉酶可在糖化和发酵期间使用。根据本发明,所需的发酵产物,例如乙醇可不经液化含有该含淀粉材料的含水浆料来生产。在一个实施方案中,本发明的方法包括在第一方面的杂合酶和葡糖淀粉酶存在下在低于起始糊化温度下糖化磨细的含淀粉材料以产生可通过合适发酵生物发酵成所需发酵产物的糖。
优选的方法包括a)将含水粒状淀粉浆料与包含具有α-淀粉酶活性的第一氨基酸序列和含糖结合模块的第二氨基酸序列的多肽接触,b)将所述的淀粉浆料与所述多肽温育,c)发酵产生发酵产物,和d)任选回收发酵产物。优选的是步骤b)在足以实现至少90%w/w的所述淀粉底物转化成可发酵糖的温度下进行一段时间。优选所述多肽的第一氨基酸序列和/或第二氨基酸序列来自细菌。所述多肽优选可为第一方面的杂合体。
术语“起始糊化温度”是指淀粉开始糊化的最低温度。在水中加热的淀粉在50℃到75℃之间开始糊化;精确的糊化温度依赖于具体的淀粉,且本领域的技术人员可容易地测定。因此,起始糊化温度可随植物的种类,随植物种类的具体品种以及随生长条件而变化。在本发明上下文中,给定含淀粉材料的起始糊化温度是使用Gorinstein.S.和Lii.C.,Starch/Vol.44(12)第461-466页(1992)所述的方法淀粉颗粒的双折射率丧失5%时的温度。
在步骤(a)前,可制备诸如颗粒淀粉的含淀粉材料的浆料,它具有20-55wt.-%干固形物,优选25-40wt.-%干固形物,更优选30-35%干固形物的含淀粉材料。该浆料可包括水和/或工艺用水,例如釜馏物(stillage)(逆流(backset)),洗刷水(scrubber water),蒸发冷凝物或蒸馏物,蒸馏的侧流水,或其它发酵产物车间工艺用水(plant process water)。由于本发明的方法在低于糊化温度下进行,因此不会发生明显的粘度增加,如果需要可使用高水平的釜馏物。在一个实施方案中,含水浆料含有从大约1到大约70vol.-%釜馏物,优选15-60%vol.-%釜馏物,特别是从大约30到50vol.-%的釜馏物。
通过将含淀粉材料磨细到0.05至3.0mm,优选0.1-0.5mm的颗粒大小可制备磨细的含淀粉材料。经过本发明的方法后,至少85%,至少86%,至少87%,至少88%,至少89%,至少90%,至少91%,至少92%,至少93%,至少94%,至少95%,至少96%,至少97%,至少98%,或优选至少99%的含淀粉材料干固形物转变成可溶性淀粉水解物。
本发明的方法在低于起始糊化温度的温度下进行。优选进行步骤(a)的温度为在30-75℃之间,优选在45-60℃之间。
在一个优选的实施方案中,步骤(a)和步骤(b)以同时糖化和发酵方法进行。在该优选的实施方案中,该方法一般在28℃和36℃之间,例如在29℃和35℃之间,例如在30℃和34℃之间,例如大约32℃的温度下进行。根据本发明,可在发酵期间上调或下调该温度。
在一个实施方案中,进行同步糖化和发酵以便糖水平,例如葡萄糖水平维持在低水平,例如低于大约3wt.-%,优选低于大约2wt.-%,更优选低于大约1wt.-%,甚至更优选低于大约0.5%,或甚至更优选低于大约0.1wt.%。该低水平的糖可通过简单采用调节酶和发酵生物的量来实现。本领域的技术人员可容易地测定使用的酶和发酵生物的量。也可选择酶和发酵生物的使用量以维持发酵液中麦芽糖的低浓度。例如,麦芽糖水平可维持在低于大约0.5wt.-%或低于大约0.2wt.-%。
本发明的方法可在从3到7,优选3.5到6,更优选4到5之间范围内的pH下进行。
含淀粉材料
根据本发明可使用任何合适的含淀粉起始材料,包括粒状淀粉。该起始材料一般根据所需的发酵产物来选择。适用于本发明方法的含淀粉起始材料的例子包括块茎,根,茎,全谷粒,玉米,玉米芯,小麦,大麦,黑麦,买罗高粱,西米,木薯,木薯粉,高粱,水稻,豌豆,菜豆,或谷类,含糖原材料,例如糖蜜,果实材料,糖,甘蔗或甜菜,马铃薯,和含纤维素材料,例如木材或植物残余物。还包含蜡质和非蜡质型的玉米和大麦。
术语“粒状淀粉”是指生的未煮熟淀粉,即,以其在谷类,块茎或谷粒中存在的天然形式的淀粉。淀粉是在植物细胞内形成的不溶于水的微小颗粒。当放入冷水中时,该淀粉颗粒可吸收少量液体并膨胀。在达到50℃至75℃的温度时,膨胀是可逆的。然而,在更高温度时,开始称为“糊化”的不可逆膨胀。待加工的粒状淀粉可具有非常精制的淀粉品质,优选至少90%,至少95%,至少97%或至少99.5%的纯度或者它可以是更粗糙的(crude)含淀粉材料,包括磨细的全谷粒,它含有非淀粉成分诸如胚残留物和纤维。将原材料诸如全谷粒磨细以便打开该结构并允许进一步加工。根据本发明优选两种磨细方法:湿磨和干磨。在干磨中,磨细并使用全谷粒。湿磨导致胚芽(germ)和粗粉(淀粉颗粒和蛋白质)良好分离且通常用于将淀粉水解物用于生产糖浆的情况。干磨和湿磨都是淀粉加工领域熟知的且同样包含在本发明方法中。
磨细含淀粉材料以便暴露更多的表面积。在一个实施方案中,颗粒大小为0.05到3.0mm,优选0.1-0.5mm之间,或者使得至少30%,优选至少50%,更优选至少70%,甚至更优选至少90%的磨细含淀粉材料可通过具有0.05到3.0mm筛孔,优选0.1-0.5mm筛孔的筛子。
发酵产品
术语“发酵产品”是指使用发酵生物通过包括发酵步骤的方法生产的产品。根据本发明涉及的发酵产品包括醇(例如,乙醇,甲醇,丁醇);有机酸(例如,柠檬酸,乙酸,衣康酸,乳酸,葡萄糖酸);酮(例如,丙酮);氨基酸(例如:谷氨酸);气体(例如,H2和CO2);抗生素(例如,青霉素和四环素);酶;维生素(例如,核黄素,B12,β-胡萝卜素);和激素。在一个优选的实施方案中,发酵产品是乙醇,例如燃料乙醇;饮料乙醇,即饮料中度酒;或工业乙醇或用于消费的醇工业的产品(例如,啤酒和果酒(wine)),乳品工业(例如,发酵乳制品),皮革工业和烟草工业。优选的啤酒类型包括淡色啤酒(ale),烈性啤酒(stout),黑啤酒(porter),熟啤酒(lager),苦啤酒(bitter),麦芽酒,happoushu,高醇啤酒,低醇啤酒,低热量啤酒或轻淡啤酒(light beer)。优选使用的发酵方法包括如本领域熟知的醇发酵方法。优选的发酵方法是如本领域熟知的厌氧发酵方法。
发酵生物
“发酵生物”是指适合于在发酵方法中使用且能够产生所需发酵产物的任何生物,包括细菌和真菌生物。特别合适的发酵生物能够发酵,即将糖诸如葡萄糖或麦芽糖直接或间接转化成所需的发酵产物。发酵生物的例子包括真菌生物,例如酵母。优选的酵母包括酵母属(Saccharomyces)的菌株,特别是酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)。
在一个优选的实施方案中,该发酵生物,例如,酵母可用第一方面的多肽转化并在这样的方法中使用,该方法包括:a)将淀粉底物与转化后表达包含具有α-淀粉酶活性的第一氨基酸序列和含糖结合模块的第二氨基酸序列的多肽的发酵生物细胞接触;b)将所述淀粉底物与所述酵母在足以实现至少90%w/w的所述淀粉底物转化成可发酵糖的温度下维持一段时间;c)发酵产生发酵产物,例如,乙醇,d)任选回收该发酵产物,例如,乙醇。步骤a,b,和c可分开或同时进行。在一个优选的实施方案中,所述多肽的第一氨基酸序列和/或第二氨基酸序列来自细菌。
材料和方法
KNU淀粉分解活性:淀粉分解活性可使用马铃薯淀粉作为底物来测定。该方法基于用该酶裂解改性的马铃薯淀粉,并通过将该淀粉/酶溶液的样品与碘溶液混合来跟踪该反应。最初形成黑蓝色,但在淀粉裂解期间,蓝色变弱并逐渐变成红褐色,将它与有色玻璃标准进行比较。
1千Novo alfa淀粉酶单位(KNU)定义为在标准条件(即,在37℃+/-0.05;0.0003M Ca2+;和pH 5.6)下糊精化5.26g淀粉干物质Merck Amylum solubile的酶量。更详细地描述该分析方法的文件夹AF 9/6可根据向丹麦NovozymesA/S索取而获得,该文件夹通过引用包括在本文中。
内活性测定法:内切淀粉酶的内切活性可使用内活性测定法来测定。将1mL重悬的Phadebas底物(0.25片/mL 50mM乙酸钠,1mM CaCl2,调节到pH 5.7)与25微升酶在40℃搅拌温育15分钟。通过加入0.5mL 1M NaOH终止反应且将混合物在台式离心机中以14,000RPM离心。测量上清在620nm的吸光度。通过与具有公布活性的标准物(BAN 480L,480KNU/g)进行比较测定该活性。
产麦芽糖淀粉酶活性:1个MANU(产麦芽糖淀粉酶Novo单位)可定义为在每ml 0.1M柠檬酸盐缓冲液,pH 5.0中10mg麦芽三糖(Sigma M 8378)底物的浓度下在37℃下30分钟内每分钟释放1微摩尔麦芽糖所需的酶量(MANU单位还在美国专利号6,162,628中限定,其通过引用包括在本文中)。
DNA操作
除非另有说明,DNA操作和转化使用Sambrook等(1989),Molecularcloning:A laboratory manual,Cold Spring Harbor lab.Cold Spring Harbor,NY;Ausubel,F.M.et al.(编)″Current protocols in Molecular Biology″,John Wiley和Sons,1995;Harwood,C.R.和Cutting,S.M.(编)所述的分子生物学标准方法进行。
实施例1:构建内切淀粉酶和来自AMY1048的CBM之间的杂合体
淀粉酶AMY1048是由484个氨基酸的催化片段和另外一个101aa的CBM20片段构成的野生型芽孢杆菌属淀粉酶。编码AMY1048的DNA序列包括在SEQ ID NO:1中且包括成熟AMY1048序列作为SEQ ID NO:2。在SEQID NO:1中,CBM定义为氨基酸残基485至586,其对应于SEQ ID NO:2中的核苷酸1540-1845。包含CBM的淀粉酶可从构建体中表达,该构建体与对其它淀粉酶的描述相似,即插入到在组成型活性启动子控制下的载体中且侧翼为地衣芽孢杆菌内切淀粉酶的信号序列(SEQ ID NO:15)和终止子序列。
用另一内切淀粉酶的催化结构域取代AMY1048内切淀粉酶的催化片段,从而产生来自AMY1048的CBM与一个新内切淀粉酶的杂合体,它使用两个寡核苷酸通过PCR扩增编码新淀粉酶催化结构域的DNA片段来制备。有义寡核苷酸在其5’端与编码AMY1048成熟序列之前信号序列的DNA序列的最后20个核苷酸相同,且在其3’端与编码所需淀粉酶成熟部分的DNA序列的前20个核苷酸相同。反义寡核苷酸在其5’端与编码来自AMY1048的CBM的DNA序列的前20个核苷酸的反义DNA相同,且在其3’端与编码所需淀粉酶成熟部分的DNA序列的最后20个核苷酸的反义序列相同。
扩增的淀粉酶DNA和含有AMY1048淀粉酶的载体都用Sac II和Sca I消化并将该载体与PCR片段连接,之后转移进枯草芽孢杆菌菌株SHA273。在下面的引物序列中,下划线表示限制性酶的识别位点。
为了构建地衣芽孢杆菌内切淀粉酶(SEQ ID NO:35)与来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20的杂合体,本发明人使用下列寡核苷酸:
有义:5’-ctcattctgcagccgcggcagcaaatcttaatgggacgct-3’(P1s SEQ ID NO:19).
反义:5’-atttgggaagtagtacttattctttgaacataaattgaaa-3’(P1as SEQ ID NO:20).
所得的编码成熟多肽的DNA序列和成熟多肽的氨基酸序列分别作为SEQ ID NO:3和SEQ ID NO:4包括在本文中。
为了构建地衣芽孢杆菌内切淀粉酶LE429变体(SEQ ID NO:41)与来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20的杂合体,使用了下列寡核苷酸:
有义:5’-ctcattctgcagccgcggcagtaaatggcacgctgatgca-3’(P2s SEQ ID NO:21).
反义:5’-atttgggaagtagtacttatttttggaacataaattgaaa-3’(P2as SEQ ID NO:22).
所得的编码该成熟多肽的DNA序列和成熟多肽的氨基酸序列分别作为SEQ ID NO:5和SEQ ID NO:6包括在本文中。
为了构建嗜热脂肪芽孢杆菌内切淀粉酶(SEQ ID NO:36)与来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20的杂合体,使用了下列寡核苷酸:
有义:5’-ctcattctgcagccgcggcagcaccgtttaacggctttaa-3’(P3s SEQ ID NO:23).
反义:5’-atttgggaagtagtacttattttaggaacccaaaccgaaa-3’(P3as SEQ ID NO:24)。
所得的编码该成熟多肽的DNA序列和成熟多肽的氨基酸序列分别作为SEQ ID NO:7和SEQ ID NO:8包括在本文中。
为了构建碱性芽孢杆菌属菌种SP722内切淀粉酶变体(SEQ ID NO:38)与来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20的杂合体,使用了下列寡核苷酸:
有义:5’ctcattctgcagccgcggcacatcataatgggacaaatgg-3’(P4s SEQ ID NO:25).
反义:5’-atttgggaagtagtacttatccatttgtcccattatgatg-3’(P4as SEQ ID NO:26).
所得的编码该成熟多肽的DNA序列和成熟多肽的氨基酸序列分别作为SEQ ID NO:9和SEQ ID NO:10包括在本文中。
为了构建碱性芽孢杆菌属菌种AA560内切淀粉酶变体(SEQ ID NO:40)与来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20的杂合体,使用了下列寡核苷酸:
有义:5’-ctcattctgcagccgcggcacaccataatggtacgaacgg-3’(P5s SEQ ID NO:27)
反义:5’-atttgggaagtagtacttattttgtttacccaaatagaaa-3’(P5as SEQ ID NO:28)
所得的编码该成熟多肽的DNA序列和成熟多肽的氨基酸序列分别作为SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:12包括在本文中。
为了构建解淀粉芽孢杆菌内切淀粉酶变体(SEQ ID NO:37)与来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20的杂合体,使用了下列寡核苷酸:
有义:5’-ctcattctgcagccgcggcagtaaatggcacgctgatgca-3’(P6s SEQ ID NO:29)
反义:5’-atttgggaagtagtacttatttttggaacataaatggaga-3’(P6as SEQ ID NO:30)
所得的编码该成熟多肽的DNA序列和成熟多肽的氨基酸序列分别作为SEQ ID NO:13和SEQ ID NO:14包括在本文中。
上述杂合酶可通过在摇瓶中将枯草芽孢杆菌培养72小时进行表达并分泌到上清中。通过SDS-PAGE证实上清中存在杂合酶。
实施例2
构建具有糖结合域的杂合淀粉酶
黄热芽孢杆菌内切淀粉酶AMY1048的催化片段可进一步分成含有催化中心的中央AB-结构域和位于催化结构域C-末端但在CBM之前的C结构域。在SEQ ID NO:2中,催化核心结构域由前397个氨基酸残基组成,C结构域定义为氨基酸残基398至484且CBM定义为氨基酸残基485至586。在SEQID NO:1中,信号序列由核苷酸1至87编码,催化核心结构域由核苷酸88-1278编码,C结构域由核苷酸1279-1539编码,且CBM由核苷酸1540-1845编码。
包含CBM的淀粉酶可从与WO0060060A2实施例4所述相似的载体构建物表达,即将该淀粉酶基因插入在淀粉酶启动子控制下的载体中,其侧翼是信号序列和地衣芽孢杆菌内切淀粉酶的终止子序列。
作为对质粒上含有该基因的替代选择,可将包含编码抗生素标记的DNA序列,启动子,信号序列,成熟蛋白和终止子的盒用与枯草芽孢杆菌DNA非必需部分高度相似的侧翼上游和下游基因组DNA通过同源体内交换整合入枯草芽孢杆菌基因组。有用的DNA区域可以是果胶酸盐裂合酶或内切淀粉酶基因座。在本实施例中,将AMY1048和杂合体以相对于原始枯草芽孢杆菌淀粉酶相反的方向插入淀粉酶基因座中。
用嗜热脂肪芽孢杆菌(BSG)内切淀粉酶的催化核心结构域取代AMY1048内切淀粉酶的催化核心结构域,从而产生来自AMY1048的C-结构域和CBM与来自新内切淀粉酶的催化核心结构域的杂合体。
编码嗜热脂肪芽孢杆菌淀粉酶催化核心的DNA片段(SEQ ID NO:36)使用两个寡核苷酸通过PCR来扩增。有义寡核苷酸在其5’端与编码AMY1048成熟序列(SEQ ID NO:1)之前的信号序列的DNA序列(SEQ ID NO:15)的最后20个核苷酸相同,且在其3’端与编码所需淀粉酶成熟部分的DNA序列的前20个核苷酸相同。反义寡核苷酸在其5’端与编码来自AMY1048的C-结构域的DNA序列的前20个核苷酸的反义DNA相同,且在其3’端与编码BSG淀粉酶催化核心的DNA序列的最后20个核苷酸的反义序列相同。
为了构建嗜热脂肪芽孢杆菌内切淀粉酶核心结构域和来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的C-结构域和CBM20的杂合体,本发明人使用了下列寡核苷酸:
有义:5’-ctcattctgcagccgcggcagcaccgtttaacggctttaa-3’(P7s SEQ ID NO:31).
反义:5’-atatagtcgtgctgtgttccgtaagcataatccctgcgcg-3’(P7as SEQ ID NO:32).
为了有利于基因组整合,使用AMY1048基因组构建物作模板,反义引物的反向引物和基因组特异性引物:5’-ctgcatcagggctgcggcatcc-3;(P8 SEQ IDNO:33)通过PCR制备从信号序列上游到淀粉酶基因组序列的5kB片段。
使用AMY1048基因组构建物作模板,有义引物的反向引物和基因组特异性引物:5’-ctgcatcagggctgcggcatcc-3’;(P9 SEQ ID NO:34)通过PCR制备从该基因终止子到基因组枯草芽孢杆菌淀粉酶上游的另一片段。
利用40bp的重叠,通过PCR组装该3个PCR片段,所得的产物使用基因组特异性引物在另一PCR中扩增,之后转移入枯草芽孢杆菌菌株SHA273(在WO92/11357和WO95/10603中描述)。
所得的编码成熟多肽的DNA序列和成熟多肽分别作为SEQ ID NO:17和SEQ ID NO:18包括在本文中。
杂合酶可通过在摇瓶中用PS1培养基在37℃将枯草芽孢杆菌培养72小时进行表达并分泌到上清中。通过SDS-PAGE证实上清中存在杂合酶。
实施例3:测定外切-内切活性改进系数(EIF)
EIF是相对于亲本酶的外切/内切活性比率提高的量度,即EIF=(变体的外切/内切)/(亲本酶的外切/内切)。如果EIF>1则酶与其亲本酶相比外切/内切活性比率提高。EIF可基于下列方法之一。
EIF1内切活性测定:Phadebas淀粉酶测试(Pharmacia Diagnostics)按照厂商建议进行且由提供的公式计算内切活性单位,其中该活性的自然对数等于N,其中N=A+[B+C*ln(Abs)]的平方根。Abs是620nm下的吸光度,A=-13.3235,B=243.3293,且C=26.73797。
外切活性测定:将50微升50mM柠檬酸钠,5mM CaCl2,pH 6.5与25微升酶在相同缓冲液中混合并根据厂商建议溶解25微升Betamyl底物(Betamyl方法,Megazyme)。将该测定混合物在40℃温育30分钟并通过加入150微升4%(w/w)Trizma碱(三羟甲基氨基甲烷)终止反应。该活性直接表示为在420nm使用微滴度平板阅读器测量的吸光度。
EIF2内切活性测定:1mL重悬的Phadebas底物(Pharmacia Diagnostics)(0.25片/mL 50mM乙酸钠,1mM CaCl2,调节到pH 5.7)与25微升酶在40℃下搅拌温育15分钟。通过加入0.25mL 1M NaOH终止反应且将混合物在台式离心机中以14,000RPM离心。在620nm测量上清的吸光度。通过与具有公布活性的标准物(BAN 480L,480KNU/g)进行比较测定该活性。
外切活性测定:将900微升3.3%溶解的蜡质(waxy)玉米淀粉(将3.3%淀粉在50mM乙酸钠,1mM CaCl2,pH 5.7中煮沸5分钟并冷却到40℃)与100微升酶在40℃搅拌温育。经过合适反应时间后,通过加入450微升4℃96%的乙醇沉淀剩余的淀粉。通过以3000G离心20分钟立即去掉沉淀。通过将200微升上清与50微升2%色氨酸和900微升64%硫酸混合测定上清中的总糖。混合物在95℃下加热15分钟,冷却到室温后在630nm测量吸光度。通过与在相同测定法中葡萄糖标准品的吸光度比较来测定活性。1单位定义为每分钟以起始速率释放1mg寡聚体产物(用乙醇未沉淀的产物)的酶量。
实施例4:用具有CBM的内切淀粉酶液化和糖化
本实施例说明了使用含有CBM的细菌内切淀粉酶(SEQ ID NO:4)或不含CBM的相同细菌内切淀粉酶(SEQ ID NO:35)与葡糖淀粉酶和酸性真菌淀粉酶一起将粒状小麦淀粉转化成葡萄糖。含有33%干固形物(DS)粒状淀粉的浆料通过将247.5g小麦淀粉在搅拌下加入502.5ml水中来制备。用HCl将pH调到4.5。将粒状淀粉浆料以每瓶75g分配到100ml锥形瓶(Erlenmeyer flask)中。将锥形瓶在60℃水浴中以磁力搅拌温育。在零小时将表1给出的酶活性配入瓶中。在24,48和73及94小时后取样。使用的酶水平是内切淀粉酶+/-CBM 100KNU/kg DS,葡糖淀粉酶200AGU/kg DS,酸性真菌α-淀粉酶50AFAU/g DS。
总干固形淀粉使用如下方法来测定。通过加入过量内切淀粉酶(300KNU/Kg干固形物)并将样品在95℃油浴中放置45分钟来完全水解淀粉。随后将样品冷却到60℃并加入过量葡糖淀粉酶(600AGU/kg DS),接着在60℃温育2小时。
在通过0.22微米过滤器过滤后通过对样品的折光率测量来测定淀粉水解物中的可溶性干固形物。通过HPLC来测定糖图谱(sugar profile)。葡萄糖的量计算为DX。结果在表2和3中显示。
表2.在100KNU/kg DS内切淀粉酶剂量时可溶性干固形物占总干物质的百分数
表3.在100KNU/kg DS内切淀粉酶剂量时可溶性水解物的DX
实施例5:有效剂量
所述淀粉酶的“有效剂量”定义为与未用酶的面包(对照)的牢固性(firmness)相比导致牢固性下降超过10%,例如,10到20%之间的剂量。在室温下惰性气氛中贮存14天后测量牢固性下降。
对过量使用的耐受性通过使用弹性损失比率=ELR来测量。焙烤后第1天或更晚,例如第5天,第10天或按下面实施例在贮存14天后测量ELR且限定如下:
ELR%=(弹性 对照第14天 -弹性 淀粉酶第14天 x100)/弹性 对照第14天
与450MANU/kg面粉的组合时,测量对过量使用的耐受性:
ELRN%=(弹性 Novamyl第14天 -弹性 Novamvl+淀粉酶第14天 x100)/弹性Novamyl第14天
如果淀粉酶过量使用,则ELR和/或ELRN将>5%。
焙烤方法
按照发面团(sponge & dough)方法焙烤面包。
发面,成份占面粉基础的百分数
大豆油 2.5
SSL 0.38
酵母 5
小麦面粉 60
水 62
生面团,成份占面粉基础的百分数
抗坏血酸 对每种面粉进行优化
ADA 20ppm
盐 2
糖浆(sirup) 7(干物质)
水 对每种面粉进行优化
小麦面粉 40
丙酸钙+酶 0.25
发面(sponge)成份酵母,水,面粉,SSL和油以90rpm 1分钟,150rpm 4分钟进行混合。发面在27℃和86%RH发酵3小时。
将发面加入生面团成份中并以90rpm 1分钟,150rpm 14分钟混合入生面团混合。将生面团按大小分成每块340g并静置10分钟。
将生面团部分压片并装模,接着在42℃和86%RH发酵55分钟。将生面团在225℃下焙烤15分钟。将焙烤的面包冷却并贮存直到进行分析。
将面包与CBM-杂合酶并与对应的无CBM的酶一起焙烤。加入或不加450MANU/kg面粉的来测定有效剂量。面包的牢固性(firmness)和弹性按照AACC方法74-09通过TA.XT2质地分析器测量。
测定CBM-杂合酶的有效剂量,用3倍和5倍该有效剂量及添加或不添加450MANU/kg面粉的来焙烤一组新面包。
贮存14天后测量ELR,发现对于5倍该有效剂量的含CBM的淀粉酶其ELR以及ELRN低于5%,而对于3倍该有效剂量的不含CBM的对应的酶超过5%。
实施例6:选择的变体的ELR测定
实施例6按实施例5所述进行,只是使用500MANU/kg面粉的剂量。
使用含有碱性芽孢杆菌菌种AA560内切淀粉酶(SEQ ID NO:40)和来自黄热芽孢杆菌淀粉酶的CBM20(SEQ ID NO:2中残基485至586)的杂合体的两个变体:变体BE1在淀粉酶序列中含有下列改变:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K,N33S,D36N,K37L,E391I,Q394R,K395D,T452Y和N484P,且变体BE2在淀粉酶序列中含有下列改变:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K和N484P。
实施例7:面糊饼(Batter cake)
用杂合体BE1,BE2,SEQ ID NO:40所示的芽孢杆菌属淀粉酶(CD供体同源物)和芽孢杆菌属淀粉酶SEQ ID NO:2(CBM供体)制备面糊饼生面团
从由小麦面粉,糖,发酵粉(baking powder),乳化剂(脂肪酸的甘油单酯和甘油二酯)组成的来自Puratos的商品面糊饼混合物“Tegral Allegro”制备生面团。将饼混合物,酶(4mg/kg面粉)和水放入碗中并用带有AR 5A-Vari-搅拌器的抹刀(spatula)以第三速度敲打直到获得平滑均质的混合物(大约2分钟)。用300g生面团填满模具并在180℃焙烤45分钟。烤好的面糊饼在室温下冷却30分钟并在氮气中包装,之后在室温下贮存直到分析。
游离水的流动性使用低磁场(low field)NMR按P.L.Chen,Z.Long,R.Ruan和T.P.Labuza,Nuclear Magnetic Resonance Studies of water Mobility inbread during Storage.Lebensmittel Wissenschaft und Technologie 30,178-183(1997)所述测定。
硬度(Hardness)和粘结性(cohesiveness)按照Food Texture and viscosity,第2版,Malcolm Bourne,Food Science and Technology,International Series,Academic Press,第182-186页所述的方法测量。
所有数据在14天后测量。获得了下列结果:
处理 | 硬度单位 | 粘结性单位 | 流动性单位 |
对照 | 1485 | 34 | 4148 |
BE1 9.5KNU/kg面粉 | 1482 | 35 | 4655 |
Amyl19.5KNU/kg面粉 | 1702 | 35 | 4811 |
BE3 9.5KNU/kg面粉 | 1217 | 34 | 4797 |
BAN(SEQ ID NO:37) | 1456 | 32 | 4423 |
9.5 KNU/kg面粉 |
根据上述数据计算下列参数(I)-(III):
(I):粘结性降低%=(粘结性对照-粘结性淀粉酶)x100%/粘结性对照
(II):硬度差异=硬度对照-硬度淀粉酶
(III):流动性差异=流动性淀粉酶-流动性对照
处理 | 粘结性降低% | 硬度差异单位 | 流动性差异单位 |
对照 | |||
BE1 9.5 KNU/kg面粉 | -3 | 3 | 507 |
Amyl19.5 KNU/kg面粉 | -3 | -217 | 663 |
BE39.5KNU/kg面粉 | 0 | 268 | 649 |
BAN(SEQ ID NO:37)9.5 KNU/kg面粉 | 5.8 | 20 | 275 |
Amyl1与具有下列取代的SEQ ID NO:40的淀粉酶相同:R118K,D183*,G184*,N195F,R320K,R458K,N33S,D36N,K37L,E391I,Q394R,K395D,T452Y和N484P,使用SEQ ID NO:40的编号。
实施例8:发面团(sponge and dough)
按照发面团方法焙烤面包。将面包在室温下贮存14天直到分析。按照Food Texture and viscosity,第2版,Malcolm Bourne,Food Science andTechnology,International Series,Academic Press,第182-186页所述的方法测量硬度和粘结性,而游离水的流动性使用低磁场NMR按P.L.Chen,Z.Long,R.Ruan和T.P.Labuza,Nuclear Magnetic Resonance Studies of water Mobility inbread during Storage.Lebensmittel Wissenschaft und Technologie 30,178-183(1997)所述测定。使用三个淀粉酶:变体BE1和BE3和芽孢杆菌属淀粉酶SEQID NO:2(CBM供体)。变体BE3具有如SEQ.ID:37所示的氨基酸序列的催化结构域且包含一个或多个,例如全部的下列改变:S31A,D32N,133L,E178*,G179*,N190F,K389I,K392R,E393D,V508A和具有如SEQ ID NO:2中氨基酸残基485至586所示氨基酸序列的CBM。
所有数据在14天后测量。获得了如下结果:
处理 | 硬度单位 | 粘结性单位 | 流动性单位 |
对照 | 400 | 38 | 6435 |
Novamyl 300MANU/kg面粉 | 272 | 48 | 6234 |
BE3 0.05mg/kg面粉+Novamyl 300MANU/kg面粉 | 256 | 48 | 7365 |
BAN(SEQ ID NO:37)0.05mg/kg面粉+Novamyl 300MANU/kg面粉 | 207 | 45 | 7354 |
BE3 0.15mg/kg面粉 | 223 | 48 | 6886 |
BE1 0.5mg/kg面粉 | 311 | 41 | 7152 |
根据上述数据计算下列参数(I)-(VI):
对于无Novamyl的处理
(I):粘结性降低%=(粘结性对照-粘结性淀粉酶)x100%/粘结性对照
(II):硬度差异=硬度对照-硬度淀粉酶
(III):流动性差异=流动性淀粉酶-流动性对照
对于有Novamyl的处理
(IV):粘结性降低%=(粘结性Novamyl-粘结性淀粉酶+Novamyl)x100%/粘结性Novamyl
(V):硬度差异=硬度Novamyl-硬度淀粉酶+Novamyl
(VI):流动性差异=流动性淀粉酶+Novamyl-流动性Novamyl
处理 | 粘结性下降% | 硬度差异单位 | 流动性差异单位 |
对照 | |||
Novamyl 300MANU/kg面粉 | |||
BE30.05mg/kg面粉+Novamyl300MANU/kg面粉 | 0 | 16 | 1131 |
BAN(SEQ ID NO:37)0.05mg/kg面粉+Novamyl 300MANU/kg面粉 | 6.3 | 65 | 1120 |
BE3 0.15mg/kg面粉 | -26 | 177 | 451 |
BE1 0.5mg/kg面粉 | -7.9 | 89 | 717 |
实施例9:测定热稳定性
在50mM NaOAc,1mM CaCl2缓冲液,pH 5.7中在60,65或70℃30分钟测定热稳定性。将样品冷却下来,除了在50℃下进行测定外使用如材料和方法部分所述的Phadebas方法测量残余活性。残余活性(R.A.)可按照如下等式计算:R.A..(%)=[Abs(热处理)-Abs(空白)]/[Abs(60℃热处理)-Abs(空白)]*100%。
获得了如下结果:
Fungamyl,一种熟知的来自米曲霉的真菌焙烤淀粉酶和本发明的杂合酶的残余活性。
酶 | 60℃ | 65℃ | 70℃ |
Fungamyl | 100 | 4 | 2 |
BE1 | 100 | 78 | 67 |
BE3 | 100 | 80 | 27 |
Claims (25)
1.一种具有内切淀粉酶活性的多肽,该多肽是一种杂合体,它由SEQ IDNO:4所示的氨基酸序列组成、或由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多10个位点上不同的氨基酸序列组成。
2.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多9个位点上不同的氨基酸序列组成。
3.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多8个位点上不同的氨基酸序列组成。
4.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多7个位点上不同的氨基酸序列组成。
5.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多6个位点上不同的氨基酸序列组成。
6.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多5个位点上不同的氨基酸序列组成。
7.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多4个位点上不同的氨基酸序列组成。
8.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多3个位点上不同的氨基酸序列组成。
9.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多2个位点上不同的氨基酸序列组成。
10.权利要求1的多肽,其由与SEQ ID NO:4所示的氨基酸序列在至多1个位点上不同的氨基酸序列组成。
11.一种组合物,它包含根据权利要求1的多肽。
12.根据权利要求11的组合物,它包含面粉。
13.根据权利要求11或12的组合物,它是生面团。
14.一种粒状或聚集粉末形式的生面团或面包的改良添加剂,它包含根据权利要求1的多肽。
15.根据权利要求14的生面团或面包的改良添加剂,其中超过95%(重量)具有25到500微米之间的颗粒大小。
16.糖化淀粉的方法,其中该淀粉用根据权利要求1的多肽处理。
17.根据权利要求16的方法,包括将淀粉转化成含有葡萄糖和/或麦芽糖的糖浆。
18.根据权利要求17的方法,其中该淀粉是糊化或粒状淀粉。
19.根据权利要求17的方法,其中将该糖化淀粉与发酵生物接触以产生发酵产物。
20.根据权利要求19的方法,其中该发酵生物是酵母且该发酵产物是乙醇。
21.通过发酵从含淀粉材料生产乙醇的方法,所述方法包括:
a)用权利要求1的多肽液化所述含淀粉材料;
b)糖化所获得的液化醪液;
c)在发酵生物存在的条件下发酵步骤(b)获得的材料。
22.编码根据权利要求1的多肽的DNA序列。
23.携带DNA构建体的重组表达载体,所述DNA构建体包含根据权利要求22的DNA序列。
24.用根据权利要求23的重组表达载体转化的宿主细胞。
25.根据权利要求24的宿主细胞,它是一种微生物。
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CN1333821A (zh) * | 1998-11-16 | 2002-01-30 | 诺维信公司 | α-淀粉酶变体 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Jeffrey M.Greenwood et al.Purification and processing of cellulose-binding domain-alkaline phosphatase fusion proteins..Biotechnology and Bioengineering44.1994,441295-1305. * |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105264058B (zh) * | 2013-06-06 | 2022-03-29 | 诺维信公司 | α-淀粉酶变体以及对其进行编码的多核苷酸 |
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Publication number | Publication date |
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