具体实施方式
引物、探针设计:
对GMO中选用的多种Pat基因序列(包括Pat基因的天然序列以及人工改建序列)进行比较,选择其中缺乏二级结构且保守的基因区设计多对引物。引物长度一般为20个碱基左右,GC含量为50%-60%,引物内无二级结构和重复性,引物间和引物内无互补序列,引物间的熔解温度(Tm值)相差小于5℃。探针的长度在25个碱基左右,Tm值比引物Tm值高5℃左右。根据上述原则设计出的引物、探针如下:
上游:PAT 1u,PAT 14,PAT 43,PAT 161,PAT 173,PAT 189,PAT 202,PAT 353,PAT 358,PAT 413,Patn33u
下游:PAT 173r,PAT 216,PAT 239,PAT 243,PAT 277,PAT 461,PAT 463,PAT 510,PAT512
探针:PAT65tdB,81-433FB,218FB
最优引物、探针序列如下:
引物:上游引物:PAT 1u:GTCGACATGTCTCCGGAGAG
下游引物:PAT 173r:GCAACCAACCAAGGGTATC
探针序列:PAT65tdB:Fam-TGGCCGCGGTtTGTGATATCGttaa-TAMRA
反应体系的建立及优化:
反应体系的建立和优化中所采用的靶区域模板以如下方法获得:用已确证的转入该基因的转基因油菜籽为材料,以Promega Purification kit提取基因组核酸,再分别用上述检测序列区域中的最长的扩增片段的引物进行PCR扩增。扩增产物用1×TE进行10倍梯度稀释,选取10-3、10-4、10-5、10-6、10-7共5个稀释度为系列阳性模板,并取其中Ct值23至27之间者作为以后反应体系优化时的模板。
引物、探针的筛选:
引物筛选实验中将上述上游引物和下游引物结合特异的探针,任意配对进行实验。荧光PCR仪采用PE7700荧光PCR仪。所采用的PCR反应体系如下表所示。
PCR反应体系
组分 终浓度
10×PCR反应液 1×
dNTP(含dUTP) 0.2mmol/L
Taq酶 2Unit
Mg2+浓度 2.5mmol/L
引物(上游) 0.2umol/L
引物(下游) 0.2umol/L
探针 0.1umol/L
模板DNA 2ul
补DEPC水至 40ul
PCR条件的选择:依据本公司以往的经验,PCR条件的选择如下:
在同样的模板量、同样的反应条件下,以Pat基因序列的特异荧光探针信号所获得的Ct值和Rn值为指标(这两者能反映扩增片断的量和质),比较不同引物对组合的扩增情况。选择Ct值和Rn值高者,做为待选的DNA/PCR检测的引物对。
从多次重复实验中选定下述最佳引物/探针组合为最佳组合:上游引物:PAT 1u;下游引物:PAT 173r;探针:PAT65tdB。
用选出的最佳上下游引物对进行PCR反应体系的优化。
引物和探针浓度的优化
实验中将引物浓度从0.1umol/L至0.8umol/L以0.1umol/L递增,探针浓度从0.025umol/L至0.2umol/L以0.025mol/L递增。对引物和探针不同浓度的配比进行了比较。最佳引物和探针终浓度结果如下::
待检序列 |
引物名称 |
最佳终浓度(μM) |
PAT基因 |
上游引物PAT 1u |
0.2 |
下游引物PAT 173r |
0.2 |
探针名称:PAT65tdB 最佳终浓度:0.1μM。
镁离子浓度的优化
实验中将镁离子浓度从1.0mmol/L至2.5mmol/L以0.5mmol/L递增。
从多次重复实验中选定2.5mmol/L MgCl2为试剂盒反应体系镁离子浓度。
Taq DNA聚合酶(Taq酶)用量的优化
Taq酶用量(以单位U计)的优化实验结果,选定2U Taq酶作为试剂盒中使用Taq酶量。
dNTPs浓度的优化
dNTPs浓度的优化实验中选定0.2mmol/L作为试剂盒dNTPs的终浓度。
综合以上反应体系优化实验结果,优化后的PCR反应体系见下表。
优化后的PCR反应体系
组分 |
终浓度 |
10×PCR反应缓冲液(pH=8.9) |
1× |
Mg2+浓度 |
2.5mmol/L |
dNTPs(含dUTP) |
0.2mmol/L |
Taq酶 |
2U |
引物(上游) |
0.2umol/L |
引物(下游) |
0.2umol/L |
探针 |
0.1umol/L |
模板 |
2ul |
补水至 |
40ul |
DNA提取方法的建立
推荐使用传统的植物DNA提取方法:CTAB法。也可根据样品特性选用方法。
18s-rRNA基因检测
18s-rRNA基因是存在于所有植物中的一种基因,所以本试剂盒选用它作为内标基因,用于监测DNA提取及荧光PCR整个过程,18s-rRNA体系的建立同上,引物、探针序列如下:
上游引物序列:18s-rRNA1403u:cctgagaaacggctaccat
下游引物序列:18s-rRNA1449r:cgtgtcaggattgggtaat
探针序列:18s-rRNA1423fb:FAM-TGCGCGCCTGCTGCCTTCCT-TAMRA
核酸提取试剂与方法有关,可使用传统的植物DNA提取方法,例如CTAB法,也可采用Promega公司的Wizard Magnetic DNA Purification System for Food试剂盒(CatFF3750,200 tests)。
Pat试剂盒组成
组成成份(48tests/盒) |
体积 |
CTAB法核酸提取试剂CTAB缓冲液CTAB沉淀缓冲液沉淀溶解液核酸扩增试剂PatPCR反应液(定性)18s-rRNA PCR反应液Taq酶(5U/ul)UNG(1U/ul)纯化水对照品Pat阳性对照品18s-rRNA阳性对照品 |
40ml×1管40ml×1管24ml×1管1ml×2管1ml×2管40ul×1管10ul×1管100ul×1管30ul×1管30ul×1管 |
试剂盒中各组分配方
PatpCR反应液:取合格25mmol/L MgCl
2、100mmol/L dATP、100mmol/L dUTP、100mmol/L dGTP、100mmol/L dCTP、50umol/L Pat上游引物、50umol/L Pat下游引物、50umol/L Pat探针、10×PCR缓冲液、1U/ul UNG和纯化水,按以下配方配制PCR反应液。
试剂成份 |
终浓度 |
10×buffer |
1× |
MgCl2 |
2.5mM |
dNTPs(u) |
200uM |
Taq酶(检测时另加) |
(2U) |
Pat上游引物 |
0.2uM |
Pat下游引物 |
0.2uM |
Pat探针 |
0.1uM |
模板(检测时另加) |
(5ul) |
水 |
|
终体积(ul) |
40ul |
CTAB法样本处理试剂配方:
CTAB缓冲液CTAB沉淀缓冲液沉淀溶解液 |
20g CTAB/L,1.4M NaCl,0.1M Tris/HCl,20mMEDTA(ph=8.0)5g CTAB/L,0.04M NaCl1.2M NaCl |
18s-rRNA PCR反应液:取合格25mmol/L MgCl2、100mmol/L dATP、100mmol/L dUTP、100mmol/L dGTP、100mmol/L dCTP、50umol/L18s-rRNA上游引物、50umol/L 18s-rRNA下游引物、50umol/L 18s-rRNA探针、10×PCR缓冲液、1U/ul UNG和纯化水,按以下配
方配制PCR反应液。
试剂成份 |
终浓度 |
10×bufferMgCl2dNTPs(u)Taq(检测时另加)18s-rRNA上游引物18s-rRNA下游引物18s-rRNA探针模板(检测时另加)水终体积(ul) |
1×2.5mM200uM(2U)0.2uM0.2uM0.1uM(5ul)40ul |
其中,UNG是UNG酶(尿嘧啶-N-糖苷酶)Uracil-N-glycosylase
纯化水的制备
用自来水一次蒸馏,经过Millipore MILLI-Q PF PLUS纯水仪纯化,收取电阻率≥18.0MΩ.cm的水,贮于无菌瓶中。
阳性对照品的制备
取相应的阳性样品,CTAB法样本处理试剂提取DNA,将上述制备好的DNA,用比检测反应扩增片段更长的引物扩增(用dTTP而非dUTP),采用Promega公司的Wizard PCRPreps DNA Purification System试剂盒纯化上述PCR产物中的目的核酸片段,再用1.5%琼脂糖凝胶电泳的方法对纯化的扩增产物进行粗略定量,然后用Promega公司的PGEM-TEasy Vector System II试剂盒将目的片段与T载体相连接;再将连接产物转化入JM109感受态细胞,然后用X-Gal和IPTG琼脂平板筛选克隆目的菌落,PCR反应鉴定之。用LB液体培养基进行质粒的扩增。最后用Promega公司的Wizard Plus Minipreps DNAPurification System试剂盒进行质粒的提纯,仍以1.5%琼脂糖凝胶电泳的方法对提纯的质粒进行纯度检测,合格者为阳性对照品母液。用1X TE进行大量稀释。
稀释的质粒,用合格试剂盒进行检测,取Ct值在28~30者,留置大量,用做配试剂盒,也用做暂定的企业标准品。
自备设备及试剂
水浴锅,离心机;氯仿、异丙醇(-20℃预冷)、70%乙醇(-20℃预冷)
适用仪器PE Gene Amp7700荧光PCR检测仪或其次她合适的荧光PCR仪
保存与有效期测试
样本处理试剂置室温保存,其他试剂置-20℃保存,避免反复冻融。自检定合格之日起有效期为12个月。连续生产的三批试剂盒检定合格之日起在试剂盒要求的储存温度下保存,每个月按成品检定规程检测一次,一直到14个月时,各项指标均合格,因此确定试剂盒有效期为12个月。
使用方法
样本核酸提取
1.1CTAB法提取DNA
1.1.1称取100mg充分粉碎后的植物样品放入2ml离心管中,加800ul CTAB缓冲液,混匀后于65℃温育30分钟;
1.1.2 15500g离心10分钟,转移上层液至含400ul氯仿的管中,混匀30秒,再以15500g离心10分钟直至液相分层,吸取上层液至干净离心管中;
1.1.3加入2V CTAB沉淀缓冲液,室温下温育60分钟;
1.1.4混合液以15500g离心5分钟,弃上清;
1.1.5加入500ul沉淀溶解液溶解沉淀,并加入500ul氯仿,混匀30秒后以15500g离心10分钟;
1.1.6转移上清至另一新管中,加入0.6倍体积异丙醇,充分混匀后15500g离心10分钟,弃上清液;
1.1.7加入70%乙醇500ul于含有沉淀的小管中,小心混匀洗涤管壁后离心10分钟(15500g),弃上清;
1.1.8室温干燥,然后将DNA溶解在100ul无菌去离子水中(如果样本DNA当天不使用,请于-20℃保存)。
1.2Promega法提取DNA的步骤(备选)
原方法样本称取量为200mg。根据本公司的经验,此量极难混匀,故将样本称取量改为100mg,其后的试剂用量和操作步骤则完全按原方法进行。
2.试剂配制(PCR前准备区)
从试剂盒中取出各管试剂,室温融化,2000rpm离心5秒。
a)设Pat PCR所需要的管数为n(n=样本数×2+1管空白对照+1管Pat阳性对照品);
b)设18s-rRNA PCR所需要的管数为m(m=样本数×2+1管空白对照+1管18s-rRNA阳性对照品);
每个测试反应体系配制如下表:
Pat PCR反应体系 Pat PCR反应液34.6ul Taq酶0.4ul UNG 0.06ul
18s-rRNA反应体系 18s-rRNA PCR反应液34.6ul Taq酶0.4ul UNG 0.06ul
计算好各试剂的使用量,加入一适当体积试管中,充分混合均匀,向设定的n个PCR反应管中分别加入Pat PCR反应液各35ul;向设定的m个PCR反应管中分别加入18s-rRNA PCR反应液反应液各35ul,一同转移至样本处理区。
2.1加样(样本处理区)
若样本DNA保存在-20℃,先置室温解冻。
在各设定的PCR反应管中,分别加入上述样本DNA溶液、纯化水(空白对照)和相应阳性对照品各5ul,盖好PCR反应管盖,转移至检测区,置于定量PCR检测仪上并记录样本摆放顺序。
2.2.PCR扩增(检测区)
2.2.1循环条件设置
37℃:5min;95℃:3min;
95℃:15sec,60℃:1min 40个循环。反应体系设为40ul。
(不同的荧光PCR仪循环条件可能略有调整)
2.2.2仪器检测通道选择
所有PCR反应管荧光信号收集设为Fam荧光通道。
具体设置方法请参照仪器使用说明书。
3.质控标准
Pat空白对照的检测结果应为阴性;
Pat阳性对照品的Ct值≤32.0;
18s-rRNA空白对照的检测结果应为阴性;
18s-rRNA阳性对照品的Ct值≤30.0;
上述指标有一项不符合者,应重做PCR扩增。
4.结果判断
4.1.阈值设定原则以阈值线刚好超过正常阴性对照品扩增曲线的最高点,使阴性对照品成阴性结果为准。
4.2.待测样本18s-rRNA Ct值应该≤17.0,如果不在此范围,则需重新提取样本DNA,重做PCR扩增。
4.3.将同一样品两个平行管的Ct值取平均值,做为判断用的待测样品Ct值。
4.4.待测样本Pat测定Ct值等于40.0者,报Pat基因序列阴性(其他荧光PCR仪对阴性的表示也可能为0.0或空白无数值)。
4.5.待测样本Pat测定Ct值≤34.0,报Pat基因序列阳性。
4.6.如果34.0<待测样本Pat基因测定Ct值<40.0,需重新做PCR扩增。
如再次扩增结果Pat基因测定Ct值仍<40.0,报Pat基因序列阳性。
如再次扩增结果Pat基因测定Ct值等于40.0,则报Pat基因序列阴性。
试剂盒使用注意事项
有关实验室管理规范请严格按照行业行政主管部门颁布的有关基因扩增检验实验室的管理规范执行。
实施例1
选取转基因及非转基因的农产品如大豆、玉米、油菜、番茄、土豆,以Promega磁珠法提取基因组DNA,具体为:称重100mg植物材料,置于2ml离心管中;加入500ul LysisBuffer A和5ul RNase A,与材料混匀;加入250ul Lysis Buffer B,混匀,室温放置10分钟;加入750ul沉淀缓冲液,混匀后高速离心(13000×g)10分钟;吸取上清于干净的2ml离心管中,加入50ul磁粉液,混匀;混合液中加入0.8体积异丙醇,混匀,室温放置5分钟;将离心管置于磁架上1分钟,去澄清液;取出离心管,再加入250ul Lysis Buffer B,混匀后置于磁架上1分钟,去澄清液;用1ml 70%乙醇清洗磁粉,置于磁架上1分钟,去澄清液;步骤重复2次;取出离心管,于65℃干浴锅中干燥5分钟或室温下干燥15-30分钟:离心管中加入100ul去离子水,混匀后于65℃干浴锅中孵育5分钟,再移至磁架上1分钟,吸取澄清液于0.5ml干净离心管中,做为DNA模板备用。
用该试剂盒做荧光PCR检测,具体为:40ul反应体系中,加入植物基因组DNA 5ul,进行荧光PCR检测,具体反应条件同前。经检测,上述转入Pat基因转基因作物均呈阳性扩增,其检测灵敏度均可达到0.1%;而非转基因的农产品如普通玉米、白玉米等均无扩增信号,提示该引物对具有良好的灵敏度和特异性(具体见图一)。
试剂盒灵敏度为:0.1%GMO,将0.1%的标准品做5倍稀释后,仍可检测到目标片段。
试剂盒精密性测试
公司中3位技术熟练的操作人员在3个不同时间,各做3次精密性检测实验(总计9次),每次平行处理10份精密性参比品。对每10次所得的Ct值用Microsoft Excel分析软件进行统计学处理,得出平均值和10个Ct值的CV值,实验结果显示,Ct值的CV值在5.0%以下,表明该试剂盒有良好的精密性。
试剂盒特异性测试
该试剂盒对阴性大豆、玉米、油菜、马铃薯标本均无非特异性扩增,表明该试剂盒具有良好的特异性。
对于所有植物DNA均应该扩增。按本试剂盒的方法提取DNA,其Ct值在9至25之间。
发明效果:经过反复筛选,得到最佳组合为:上游引物:PAT1u;下游引物PAT173r;探针PAT65tdB。
以0.1%转基因油菜籽提取的DNA做模板,得到的Ct值在29.0-33.0之间,这是目前不同荧光测定仪器的可靠检测下限;而0.1%的检测灵敏度已经达到了目前国际同类产品的检测标准。
该试剂盒中的引物探针还可以用作杂交探针检测含有Pat基因转基因作物。
PCR-ELISA的方法学原理简介
该实验要设计一对PCR引物和一条探针,它们均与模板DNA链互补,且探针的结合部位在引物结合部位之间。将PCR的一条引物5’端标记上荧光素(Fluorescein),进行PCR扩增,得到的扩增产物带有荧光素标记。同时将探针的5’端标记上生物素(Biotin),酶联板上包被有亲和素(Avidin),通过生物素与亲和素的亲和作用,将探针包被在酶联板上。检测时,将扩增产物变性成单链,在酶联板上与探针进行特异的结合,洗板,再加入辣根过氧化物酶偶联的荧光素抗体,通过显色剂显色,在酶标板上读取OD值,根据OD值判断样品的阴阳性。
实施例2
将上述探针PAT65tdB的5’端标记生物素,3’端不做标记;将引物PAT173r的5’端标记上荧光素。预先将探针包被在有亲和素的酶联板上。
按常规方法(CTAB法或磁珠法)提取样本中的DNA。由10×PCR缓冲液、dNTPs、Mg2+、Taq酶、上下游引物、H2O,以及DNA模板组成PCR反应体系,进行扩增。
扩增结束后,将扩增产物变性成单链,加到包被了探针的酶联板上,如果有特异性扩增,扩增产物中的一条链与探针杂交,洗板,加入酶联荧光素抗体,洗板,加入显色剂,显色10分钟,停止显色,在酶标仪上读取OD值,根据OD值判断样本的阴阳性。下表
样本 |
0.0%玉米 |
0.1%玉米 |
Cry9c玉米 |
GMO油菜 |
美国大豆 |
阿根廷大豆 |
0.1%Fluka大豆标 |
OD值 |
0.128 |
0.122 |
0.168 |
>3.000 |
0.174 |
0.123 |
0.138 |
结果判断 |
- |
- |
- |
+ |
- |
- |
- |
样本 |
空白对照 |
Mon810大豆 |
0%大豆 |
马铃薯 |
番茄 |
棉花 |
OD值 |
0.158 |
0.149 |
0.136 |
0.175 |
0.114 |
0.522 |
结果判断 |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
实验结果表明:只要含有PAT基因序列的转基因作物经该系统检测结果均为阳性,而不含有PAT基因序列的作物经该系统检测均为阴性。