BR112013007511B1

BR112013007511B1 - Armadilha para captura de inseto prenhe autocida, armadilha autocida passiva e processo de monitoramento de vetores em uma área ambiental

Info

Publication number: BR112013007511B1
Application number: BR112013007511-2A
Authority: BR
Inventors: Roberto Barrera; Andrew J. Mackay; Manuel Amador
Original assignee: The Government Of The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, Centers For Disease Control And Prevention
Priority date: 2011-02-16
Filing date: 2012-02-16
Publication date: 2021-12-07
Also published as: US10219505B2; WO2012112785A3; US20160128313A1; WO2012112785A2; BR112013007511A2; US20170367312A2; AU2012217569A1; MX345017B; AU2012217569B2; US9237741B2; US20140223802A1; MX364909B; AU2012217569C1; MX2013003508A

Abstract

armadilha para captura de inseto prenhe autocida, armadilha autocida passiva, processo de monitoramento de vetores em uma área ambiental, armadilha para vetor e processo para regular os níveis de vetores em um espaço ambiental. são providos dispositivos melhorados para a captura, detecção ou quantificação de vetores de insetos, tal como, inseto. fêmea prenhe. os dispositivos incluem coloração superficial, desenho, e dimensão que melhorar sua capacidade em atrair e/ou capturar vetores de inseto alvo. as armadilhas são utilizadas no processo para detectar ou controlar os vetores de inseto em meios internos ou externos.

Description

Campo da invenção

[0001] A invenção refere-se ao controle de insetos vetores de doenças. Mais especificamente, a aplicação se refere ao controle de mosquitos que servem como o vetor primário para a transmissão de vírus da dengue, Chikungunya e outros vírus-arbo.

Antecedentes da invenção

[0002] O controle de vetor é atualmente o único método disponível para redução da transmissão do vírus da dengue. As abordagens para diminuir a capacidade de uma população de mosquito para suportar a transmissão do vírus da dengue incluem: (i) reduzir sua densidade completa (ou seja, existem poucos mosquitos disponíveis para transmitir o vírus); e (ii) reduzir sua média de tempo de vida (ou seja, mosquitos menos prováveis de viver tempo suficiente para adquirir e transmitir o vírus).

[0003] Vários tipos de armadilhas autocidas para ovos (ou seja, fita adesiva para ovos e armadilhas letais para ovos) têm sido desenvolvidas como vigilância de vetores e como ferramentas de controle para os mosquitos Aedes (Stegomyia). Esses dispositivos matam ou capturam mosquitos fêmeas prenhes que entram na armadilha e previnem sua procriação a partir do desenvolvimento completo.

[0004] Para ser uma ferramenta de controle de vetor prática, uma armadilha para captura de ovos autocida (AGO) deve ser eficaz, não cara, e não deve requerer a manutenção frequente. As armadilhas que utilizam pesticidas podem contribuir o desenvolvimento de resistência ao inseticida, são menos probabilidade de ser aceitável para proprietários devido a potencial de saúde ou relacionados ao meio, e ao risco de tornarem-se sítios de desenvolvimento de larvas produtivas se o inseticida falhar em prevenir o desenvolvimento pré-imago (“preimaginal”) do vetor. Outra limitação potencial de AGOs que foram previamente relatadas inclui a pouca competição com os recipientes existentes, e uma taxa significante de falha devido à perda do atrativo aquoso.

[0005] Como tal, existe uma necessidade crítica em identificar ferramentas alternativas e estratégias para um controle de custo-efetivo eficaz e para a sobrevivência de vetores adultos.

Sumário da invenção

[0006] O resumo a seguir da invenção é provido para facilitar um entendimento de algumas das características únicas da presente invenção e não pretende ser uma descrição completa. Uma apreciação total dos vários aspectos da invenção pode ser adquirida através de todo o relatório descritivo, reivindicações, desenhos e resumo como um todo.

[0007] Uma armadilha de vetor é provida, a qual tem uma funcionalidade melhorada para detecção e quantificação de insetos vetores, opcionalmente insetos vetores fêmeas prenhes, em uma área ambiental. Uma armadilha para vetor inclui uma câmara de atração com um volume interior opcionalmente de 19 litros ou mais e uma tampa. Uma câmara de captura atravessa a tampa e forma uma entrada na armadilha em uma primeira extremidade e uma barreira em tela em uma extremidade inferior onde à câmara de captura está posicionada dentro de pelo menos uma parte da câmara de atração. Um substrato de coleta de ovos incluindo um hidrogel está associado com uma câmara de atração na extremidade inferior da câmara de captura. As armadilhas para vetor dessa configuração são, opcionalmente, superiores na coleta de vetores de fêmeas prenhes, para o controle do vetor, e nas quantificações de vetores em uma área ambiental, e são denominadas armadilhas autocidas para captura de ovos (oviposição).

[0008] Outras concretizações de uma armadilha para vetor incluem uma câmara de atração finalizando em uma entrada da armadilha. Nessas concretizações, uma câmara de atração serve como uma câmara de captura de modo que nenhuma câmara de captura separada seja utilizada. As referidas concretizações são, opcionalmente, utilizadas como uma armadilha para vetor adulto passivo, opcionalmente para o uso interno. A câmara de captura tem um substrato de captura revestindo pelo menos uma porção do volume interno da câmara de captura. Um substrato para coleta de ovo está alojado dentro da câmara de captura, revestindo opcionalmente a superfície de fundo da câmara de captura. Uma isca olfativa é incluída, opcionalmente, no alojamento dentro da câmara de captura.

[0009] Em cada uma das concretizações de uma armadilha para vetor, a cor de um ou mais elementos da armadilha é mais escura, opcionalmente preto. A entrada da armadilha tem, opcionalmente, uma dimensão linear de 10 cm ou mais, opcionalmente, 10 a 26 cm. Um atrativo na forma de uma infusão de feno ou outro atrativo é, opcionalmente, incluído em um ou mais locais dentro de uma armadilha.

[0010] Os processos de monitoramento, detecção, ou controle de um vetor em uma área ambiental são providos, assim uma armadilha para vetor da invenção é colocada dentro de uma área ambiental e é utilizada para capturar vetores para detectar sua presença e sua quantidade.

Breve descrição das figuras

[0011] A figura 1 ilustra uma representação de uma concretização de uma armadilha de vetor com a eficácia superior como uma armadilha para captura de ovo autocida;

[0012] A figura 2 ilustra uma outra concretização de uma armadilha de vetor tendo eficácia superior como uma armadilha passiva de adulto;

[0013] A figura 3 ilustra a função aperfeiçoada de um AGO em um meio controlado com uma entrada grande da armadilha (A); volume maior de atrativo em um reservatório de infusão (B); mais escuro de uma tampa da armadilha (C); e a presença de uma isca olfativa (D);

[0014] A figura 4 ilustra uma função melhorada de uma armadilha para captura de ovos da invenção em um ambiente natural ilustrando a chuva diária (17,5 dias antes da amostragem), média diária da temperatura do ar, média diária do déficit de saturação (A), e o número médio de ovos de Aedes coletados no recipiente de ovos melhorado e das fêmeas adultas de Aedes aegypti recolhidas na AGO-A e na armadilha autocida para oviposição (captura de ovos) (B);

[0015] A figura 5 ilustra a função melhorada de uma armadilha de captura de ovos da invenção em um ambiente natural ilustrando a chuva diária (17,5 dias antes da amostragem), média diária da temperatura de ar, média diária do déficit de saturação (A), e o número médio de ovos de Aedes colhidos no recipiente de captura de ovos melhorados e nas fêmeas adultas de Aedes aegypti recolhidos em uma armadilha para captura de ovos autocida melhorada com uma isca de infusão de feno fresco preparada (AGO-Bf) e uma armadilha para captura de ovos autocida melhorada com uma isca de infusão de feno que foi envelhecida durante 62 dias, então parcialmente substituída, antes do uso (AGO-Bp)(B) ;

[0016] A figura 6 ilustra uma função melhorada de uma armadilha de captura de ovo da invenção em um ambiente natural ilustrando a chuva diária (17,5 dias antes da amostragem), a média diária da temperatura do ar, a média diária do déficit de saturação (A), e o número médio de ovos de Aedes colhido em um recipiente de captura de ovos melhorado e fêmeas adultas de Aedes aegypti na armadilha de captura de ovos grávidos autocidas melhoradas com iscas de água (AGO-Bw) ou infusão de feno (AGO-Bh)(B);

[0017] A figura 7 ilustra uma representação de duas configurações de uma armadilha para vetor passiva;

[0018] A figura 8 ilustra um número de vetores de insetos capturados através de vários formatos de armadilha de vetores passivos;

[0019] A figura 9 ilustra o desempenho de uma armadilha melhorada nas armadilhas para vetores incluindo um atrativo a base de hidrogel de poliacrilamida;

[0020] A figura 10 ilustra uma representação de duas concretizações de uma armadilha para vetor passiva;

[0021] A figura 11 ilustra o desempenho de duas configurações de armadilhas para vetor passivas da figura 10;

[0022] A figura 12 representa uma ilustração de três concretizações de uma armadilha para vetor passivo;

[0023] A figura 13 ilustra o desempenho de três configurações de armadilhas para vetor passivas da figura 12;

[0024] A figura 14 ilustra os efeitos de iscas de armadilhas com uma isca olfativa à base de pele humana (A), ou mel de flores silvestres (B) sobre o desempenho da armadilha para vetor;

[0025] A figura 14 ilustra os efeitos do deslocamento de uma armadilha vertical sobre o desempenho da armadilha para vetor; e

[0026] A figura 16 ilustra os efeitos dos antecedentes de competição no escuro sobre o desempenho da armadilha para vetor.

Descrição detalhada das concretizações da invenção

[0027] A descrição a seguir das concretizações particulares é meramente exemplificativa na natureza e não pretende de forma alguma limitar o escopo de proteção da invenção, sua aplicação, ou uso, que pode, é claro, variar. A invenção é descrita com relação às definições não limitativas e terminologia incluída aqui. Essas definições e terminologias não são designadas para funcionar como uma limitação do escopo ou da prática da invenção, mas são apresentadas para ilustrar e descrever os propósitos apenas. Embora o processo seja descrito como uma ordem de etapas individuais ou usando materiais específicos, é apreciado que as etapas descritas ou os materiais podem ser intercalados de modo que a descrição da invenção inclui partes múltiplas ou etapas arranjadas de muitas maneiras como será facilmente apreciado por um técnico no assunto.

[0028] A invenção tem utilidade como um sistema ou dispositivo para o controle ou amostragem de uma população de insetos. As armadilhas de vetor são providas para requerer muito menos manutenção frequente, são superiores na atração das fêmeas de insetos prenhes e na prevenção da progênie a partir dos insetos grávidos capturados a partir da maturação e da saída da armadilha em relação às armadilhas previamente utilizada. As armadilhas para vetores da invenção também são superiores na facilidade de uso e na perda de complexidade, cada uma conduzindo ao uso de um controle de vetor não oneroso.

[0029] As armadilhas de captura de ovos autocidas (ou seja, armadilhas letais para captura de ovos e armadilhas para captura de ovos com fita adesiva) são dispositivos nos quais, especificamente os mosquitos fêmeos adultas, já alimentados com sangue humano, pelo menos uma vez, veem como um local apropriado para deixar seus ovos. Os mosquitos adultos que entram na armadilha são mortos pelo contato tanto com uma superfície tratada com inseticida ou uma superfície revestida com adesivo. Através da eliminação de mosquitos fêmea adulta e sua progênie, as armadilhas para oviposição podem potencialmente reduzir ambos, a densidade o tempo de vida médio das fêmeas adultas em uma população de mosquitos. As armadilhas para vetores autocidas da presente invenção têm determinados atributos que os distinguem dos dispositivos da técnica anterior incluindo: (i) tamanho: opcionalmente a 45 cm de altura com uma capacidade de opcionalmente 10 ou mais litros de atrativo (opcionalmente água + vegetação em decomposição), que é substancialmente maior (~5-20x) do que outros modelos de armadilhas de vetores desenvolvidos para uso comercial ou acadêmico. Isto permite que a armadilha para captura de ovos autocida (AGO- armadilha) entre em competição mais vigorosamente com outros habitat aquático para atrair mosquitos (mais visível, maior odor) e o atrativo é muito menos propenso em secar entre as visitas de serviço; (ii) segurança: as armadilhas AGO não contêm inseticidas ou outros materiais potencialmente nocivos. Os adultos são capturados por um adesivo não tóxicos e ovos são colhidos em um hidrogel que imita os substratos naturais onde às fêmeas prenhes preferem depositar seus ovos; (iii) confiabilidade: as armadilhas para oviposição letais confiam em um inseticida para matar os mosquitos visitantes adultos e para prevenir o desenvolvimento de descendentes viáveis a partir de qualquer ovo deixado na armadilha. A eficácia desses inseticidas pode ser rapidamente perdida quando exposta à condições ambientais rigorosas que degradam o inseticida, ou quando a população de mosquito é capaz de desenvolver resistência ao inseticida, capacitando os mosquitos ao uso das armadilhas como um habitat para produção de novos mosquitos. As armadilhas AGO da invenção são designadas de modo que o risco do dispositivo servindo como uma fonte de novos mosquitos adultos é extremamente baixa. Os ovos são deixados em um polímero sintético (hidrogel) além de sobre ou próximo à superfície de um líquido (como em outros dispositivos de armadilha para vetores). Apesar e os ovos deixados sobre o hidrogel podem eclodir, a larva de mosquito resultante são incapazes de completar o desenvolvimento.

[0030] Uma concretização de uma armadilha para vetor da presente invenção em uma configuração como uma armadilha de oviposição autocida é ilustrada na figura 1. Uma armadilha para vetor 100 inclui uma câmara de atração 102 tendo um volume interno de pelo menos 10 litros e uma tampa 110. Uma tampa é removivelmente associada com um corpo da câmara de atração 102. Dentro da tampa 110, um furo é cortado para receber uma câmara de captura 104 que é colocada de modo que ela contate e atravesse a espessura da tampa 110 e se estenda dentro da região interna da câmara de atração 102. Um material vedante daqueles comumente conhecidos na técnica é, opcionalmente utilizado para vedar qualquer espaço entre a tampa 110 e a câmara de captura 104. Um dispositivo de retenção é, opcionalmente utilizado para reter a câmara de captura no lugar. Um dispositivo de retenção é qualquer dispositivo apropriado para manter a posição da câmara de captura durante a operação normal da armadilha para vetor. Um exemplo ilustrativo é uma braçadeira (“clamp”) circular ajustável. Uma câmara de captura 104 tem uma primeira extremidade que serve como uma entrada da armadilha 112, e uma extremidade inferior. A primeira extremidade é pelo menos parcialmente aberta de modo que um inseto ou partícula de tamanho desejado possa atravessar uma tela associada com a primeira extremidade proximal ou associada com a entrada da armadilha 112. Uma extremidade inferior inclui, opcionalmente, uma segunda tela que pode permitir que os ovos de insetos passassem através, mas tenham um tenho de tela muito menor para um mosquito adulto passar através dessa. Uma câmara de captura 104 tem uma superfície interna 114 que é opcionalmente revestida com um substrato de captura. Em algumas concretizações, um substrato de captura reveste uma lamina de captura opcionalmente formada de vinil ou outro material plástico, que é colocado dentro da câmara de captura. Assim, um substrato de captura é opcionalmente presente sobre uma superfície interna 114, uma lâmina de captura, ou combinações dos mesmos. Um substrato de captura é, opcionalmente, um adesivo. Um substrato de captura é opcionalmente livre de um inseticida. Exemplos ilustrativos de adesivo incluem adesivos não ajustáveis tais como adesivos de polibutileno, entre outros conhecidos do estado da técnica. Uma superfície interna 114 é opcionalmente e continuamente revestida com um substrato de captura ou é intermitentemente revestida, de modo que algumas áreas superficiais da superfície interna 114 sejam opcionalmente livres do adesivo. Em algumas concretizações, uma superfície interna 114 não é revestida com um substrato de captura, desse modo, o substrato de captura é de outro modo suspenso ou colocado em uma câmara de atração. Uma extremidade inferior de uma câmara de captura é opcionalmente e parcialmente ou completamente atravessada por uma tela 120. A tela 120 tem furos que são suficientemente pequenas de modo que os ovos possam passar através no reservatório de infusão 108 abaixo, e de modo que odores a partir do reservatório de infusão 108 possam passar através da tela, mas que os insetos maduros ou em maturação não sejam capazes de atravessar. Pelo menos uma porção da tela 120 é atravessada por ou de outro modo ocupada por um substrato de coleta de ovos 106 que é opcionalmente revestido por uma barreira de tela 114 ou atravessa a barreira de tela e é alojado em um recipiente. Um substrato de coleta de ovos 106 é opcionalmente formado de um material hidrogel. Qualquer um dos numerosos tipos de hidrogel conhecidos do estado da técnica é apropriado para uso em um substrato de coleta de ovos. Em uma concretização, um hidrogel é um copolímero poliacrilamida (PAM). Outros materiais de hidrogel apropriados são conhecidos por um técnico no assunto.

[0031] A câmara de atração 102 forma um reservatório de infusão 108 que se aloja no material de atração. Um reservatório de infusão 108 é opcionalmente dimensionado de modo que reteria 3 litros ou mais do material de atração, opcionalmente de 3 a 15 litros, opcionalmente 5-10 litros, opcionalmente 93 litros. O volume do material de atração é um aspecto superior da invenção. Sentiu-se uma necessidade intensa por um AGO que não requeira manutenção frequente. Os inventores descobriram que o aumento do volume de material de atração provê o tempo de vida maior da eficácia da armadilha em relação a outros tipos de armadilhas e tamanhos. Um material de atração é, opcionalmente, um material aquoso que inclui matéria em decomposição 118 como um componente. O material em decomposição é, opcionalmente, material de planta. Em algumas concretizações, o material em decomposição é feno. Um material de atração é, opcionalmente, infundido com material de planta que já está em um estado de decomposição ou começa a decompor após ser colocado em um meio aquoso. As paredes de uma câmara de atração 104 incluem, opcionalmente, um ou mais, opcionalmente, uma pluralidade de passagens de drenagem 116 que atravessa a parede da câmara de atração 104. As passagens de drenagem 116 servem para permitir que o material de atração drene a partir da câmara de atração 104 se o volume aumentar além de um limite desejado, tal como por entrada de água de chuva na câmara de atração 104. Uma passagem de drenagem 116 é de qualquer dimensão apropriada para efetivamente permitir o fluido para passar através dela. Ilustrativamente, uma passagem de drenagem tem um diâmetro de 0,1 a 3 milímetros ou qualquer valor ou faixa entre eles, opcionalmente 1-2 milímetros, opcionalmente 1,2 milímetros.

[0032] O meio doméstico é um local importante para o alvo de Ae. Aegypti adulto em diferentes estados fisiológicos, ambos, para o propósito de controle e sobrevivência. As ferramentas previamente disponíveis para amostragem de vetores adultos em casa são onerosos, laboriosos ou são inadequados para prover por longos períodos, e coleta contínua. A figura 2 ilustra uma segunda concretização de uma armadilha para vetor com eficácia particular par auso em uma área ambiental fechada tal como dentro de um prédio, uma casa, ou uma sala dentro desses. Assim, a referida concretização é, opcionalmente utilizados no processo dentro de uma área ambiental fechada. A concretização ilustrada na figura 2 é opcionalmente denominada uma armadilha para adulto passivo. Uma câmara de captura 202 é utilizada para definir as dimensões externas de uma armadilha. As dimensões de uma câmara de captura são opcionalmente similares ou idênticas àquelas listadas na concretização da figura 1. Uma câmara de captura 202 é opcionalmente cilíndrica ou de outra forma. A câmara de captura 202 da figura 2 ilustrativamente tem uma altura de 15 a 50 cm de comprimento ou qualquer valor ou faixa entre as mesmas, opcionalmente 20 a 40 cm, opcionalmente, 25-30 cm, opcionalmente, 28 cm de comprimento. A câmara de captura ilustrativamente tem uma profundidade de 5-15 cm ou qualquer valor ou faixa dentre esses, opcionalmente 7 a 12 cm, opcionalmente 10 - 12 cm. Uma câmara de captura opcionalmente tem uma largura de 10 a 40 cm ou qualquer valor ou faixa entre esses, opcionalmente, 15-30 cm, opcionalmente, 20-30 cm. A concretização representada na figura 2 tem uma altura de 27,9 cm, uma profundidade de 11,4 cm, e uma largura de 25,4 cm. É apreciado que qualquer dimensão apropriada, de modo que uma câmara de captura tem dimensões para reter um volume de aproximadamente 8 litros ou maior, opcionalmente 15 litros ou maior, opcionalmente 19 litros ou maior, é opcionalmente utilizado. Um substrato de captura 212 é opcionalmente revestido na superfície interna da câmara de captura 202, e é opcionalmente formado a partir de ou inclui um adesivo. A câmara de captura 202 aloja um substrato de coleta de ovos 210. O substrato de coleta de ovos 210 está localizado opcionalmente em uma porção do fundo de uma câmara de captura 202. O substrato para coleta de ovos é opcionalmente um hidrogel como de outro modo indicado aqui. Uma entrada da armadilha 204 é ilustrativamente localizada em uma superfície de topo de uma câmara de captura. A entrada da armadilha 204 é opcionalmente atravessada por uma tela de dimensão apropriada para permitir que os insetos ou partículas de tamanho desejado atravessem a tela e previna que insetos indesejados ou materiais entrem na armadilha. Uma isca olfativa 205 que inclui um atrativo está localizada dentro da câmara de captura 202. A isca olfativa 206 é opcionalmente suspensa a partir da tela ou outra superfície superior de uma câmara de captura 202, ligada a um substrato de captura 212 que é revestido sobre a superfície interna de uma câmara de captura, ou é associada com o substrato de coleta de ovos 210. A isca olfativa opcionalmente inclui um atrativo. Uma câmara de captura 202 opcionalmente inclui uma articulação 208 para permitir o acesso à câmara de atração.

[0033] Uma entrada da armadilha 112 é ilustrada na figura 1 como uma entrada circular. É apreciado que outras formas são similarmente operáveis de modo que um quadrado ou outros polígonos, ou forma oval ou outros formatos tipos oblongo, ou combinações dos mesmos. A figura 2 ilustra uma concretização opcional onde uma entrada de armadilha 204 é retangular. Os inventores descobriram que o tamanho da entrada da armadilha afeta significativa e surpreendentemente a capacidade da armadilha para capturar insetos fêmeas. Uma entrada de armadilha 112, 204 é opcionalmente circular e tem um diâmetro de 9 cm par ao tamanho das dimensões externas de uma câmara de atração 102, 202. A área de uma entrada de armadilha é opcionalmente de 63 cm2 para a área definida por uma câmara de atração 102, 202. Opcionalmente, a área de uma entrada da armadilha é de 63 a 314 cm2, opcionalmente de 113 cm2 a 201 cm2, opcionalmente 113cm2, opcionalmente 201 cm2. Em algumas concretizações, uma dimensão de seção transversal linear de uma entrada da armadilha é de 12 a 16 cm, opcionalmente 15,8 cm, opcionalmente 12,0 cm.

[0034] Outras armadilhas para vetores usam comumente até mesmo superfícies com mais de uma cor ou que tenham uma cor relativamente clara. Os inventores descobriram que AGOs com cores relativamente escuras, tais como, marrom escuro, cinza escuro, verde escuro, vermelho escuro, ou preto são armadilhas mais efetivas do que as AGO com um contraste preto e branco (provido pelo uso de uma tampa branca). Em algumas concretizações, uma câmara de captura, tampa, câmara de ataque, ou combinações dos mesmos são opcionalmente de cores relativamente escuras, tais como marrons escuros, cinzas escuros, verde escuro, vermelho escuro ou preto. Em algumas concretizações, uma tampa é preta. Opcionalmente, uma câmara de captura é preta. Opcionalmente, uma câmara de atração é preta. Em algumas concretizações, uma tampa é preta. Opcionalmente, uma câmara de captura é preta. Opcionalmente, uma câmara de atração é preta.

[0035] Um substrato de coleta de ovos ou isca olfativa é opcionalmente permeado, entrelaçada com, ou tem dispersado dentro de ou uma porção dele, um atrativo. Um atrativo é opcionalmente qualquer composição com propriedades conhecidas ou desconhecidas de atração de um inseto, opcionalmente e especificamente fêmeas de insetos prenhes. Os exemplos ilustrativos de um atrativo incluem aqueles que produzem resposta para acasalar, agregar, ou procurar, opcionalmente aqueles determinados feromonas, e constituintes de planta ou animais hospedeiros que são atrativos pelos insetos buscando por alimentos ou sítios para oviposição. Os exemplos ilustrativos incluem materiais botânicos (por exemplo, substâncias, extratos, etc.) seria mais inclusivo. Um atrativo inclui opcionalmente extratos de frutas ou purês. Exemplos específicos incluem mel, néctar, e qualquer atrativo listado em Jacobson, M., “Natural Insect Attractants and Repellents - New Tools in Pest Control in Advances in Chemistry”, volume 53, 1966, American Chemical Society. Outros atrativos são similarmente apropriados. Em algumas concretizações, um atrativo é uma fonte de material de planta que está em um estado de decomposição ou é capaz de decompor quando colocado em uma câmara de captura. Um atrativo é opcionalmente feno, ilustrativamente na forma de uma infusão de feno representada ilustrativamente como 118, da figura 1, mas não limitado a. É apreciado que mais que um atrativo é incluído em uma armadilha para vetor tal como uma combinação de atrativos. Opcionalmente, uma câmara de captura aloja um volume de material de infusão que inclui um atrativo de material de planta em decomposição, bem como um segundo atrativo alojado dentro de uma câmara de atração ou suspenso dentro da câmara de atração, assim, o segundo atrativo é um feromonas ou um constituinte volátil da fonte de planta ou animal.

[0036] Um substrato de captura opcionalmente reveste a superfície interna toda de uma câmara de atração, uma câmara de captura ou ambas, ou reveste porções dos mesmos. Um substrato de captura é, opcionalmente, um adesivo. Um substrato de captura é, opcionalmente, livre de um inseticida. Exemplos ilustrativos de adesivos incluem adesivos não ajustados tais como adesivos de polibutileno, entre outros conhecidos na técnica.

[0037] Também provido são processos de monitoramento ou detecção da presença ou ausência de um ou mais vetores de insetos em uma área ambiental. Como utilizado aqui um vetor é um organismo capaz de alojar, carregar, ou transmissão de uma doença causada por um parasita. Ilustrativamente, um exemplo de um vetor é um vetor de inseto. Um processo opcionalmente inclui a quantificação do número relativo dos vetores de insetos em uma área ambienta. Um processo inclui a colocação de uma armadilha para vetor, opcionalmente, como descrito aqui, em uma área ambiental e a detecção da presença ou ausência de um vetor de inseto na área ambiental. A detecção é conseguida através da manutenção da armadilha do vetor na área ambiental para um tempo de captura, e determinação se um vetor de inseto é capturado pela armadilha para vetor através da observação da presença ou ausência de um vetor para inseto no substrato de captura ou substrato de captura de ovos. A presença de um vetor para insetos na armadilha indica a presença do vetor na área ambiental. A ausência de um vetor para inseto na armadilha indica a ausência provável de um vetor para inseto na área ambiental.

[0038] Uma área ambiental é uma área definida que pode ou não pode alojar ou incluir um inseto vetor. Ilustrativamente, uma área ambienta é exposta fora do meio, ou dentro de um alojamento ou outra construção. Opcionalmente, um AGO ou similar ao desenho daquela ilustrada na figura 1, é utilizada em uma área ambiental externa. Opcionalmente, uma armadilha para vetor ou similar ao do desenho daquela ilustrado na figura 2 é utilizada em uma área ambiental interna. É apreciado que uma pluralidade de armadilhas para vetores da invenção são opcionalmente utilizadas em uma área ambiental única. Opcionalmente, uma área ambiental é um acre, uma construção, ou uma sala de uma construção. Em algumas concretizações, uma pluralidade de armadilhas para vetor é colocada em uma densidade dentro de uma área ambiental. Uma densidade é, opcionalmente, maior que dois por acre, opcionalmente, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, ou 10 por acre. Uma densidade é opcionalmente 1-2 por sala. Uma densidade é opcionalmente 1 a 5 por andar de uma construção, ou qualquer valor ou faixa entre essas. Uma densidade é opcionalmente 1, 2, ou 3 por 500 pés quadrados de um andar único.

[0039] Uma vantagem das armadilhas para vetor da invenção é que eles não requererem frequência de serviço para manter a eficácia. Um processo usando uma armadilha para vetor da invenção inclui opcionalmente um serviço de armadilha para vetor não mais do que uma vez a cada 20 dias, opcionalmente, não mais que uma vez por 1, 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 10, 11, ou 12 semanas.

[0040] Um tempo de captura é opcionalmente, 1, 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9, 10, 11, 12, ou mais semanas. Em algumas concretizações, um tempo de captura é, opcionalmente, 62 dias.

[0041] Um processo inclui, opcionalmente, a quantificação do número relativo dos vetores alvos em uma área ambiental opcionalmente inclui a determinação do número de vetores capturados após um tempo de captura. O número maior de vetores capturados estima um número maior de vetores na área ambiental.

[0042] Como utilizado aqui, um vetor é um inseto, opcionalmente, um inseto fêmea, opcionalmente um inseto fêmea prenhe. Exemplos ilustrativos dos vetores incluem mosquitos fêmeas de Ae. Aegypti, Ae. Albopictus, e Cules quinquefasciatus.

[0043] Os processos são também providos para redução ou eliminação da presença de um vetor em uma área ambiental. Um processo inclui a colocação de um ou mais armadilhas para vetores, opcionalmente como descrita aqui, em uma área ambiental, e detecção da presença ou ausência de um inseto vetor na área ambienta após um tempo de captura. A detecção é conseguida através da manutenção da armadilha para vetor na área ambiental por um tempo de captura, e determinação se um inseto vetor é capturado pela armadilha para vetor por observação da presença ou ausência de um inseto vetor sobre o substrato de captura ou substrato de captura de ovos. A presença de um inseto vetor na armadilha indica a presença do vetor na área ambiental. A ausência de um inseto vetor na armadilha indica a ausência provável de um inseto vetor na área ambiental. Como uma armadilha para vetor da invenção não depende do inseticida para prevenir a eclosão dos ovos e a eliminação dos insetos apanhados e sua progênie, as armadilhas para vetores serve também para diminuir o número de ou eliminar a presença de insetos em uma área ambiental. A ausência de um vetor apanhado em uma armadilha para vetor após um tempo de captura indica a eliminação de um vetor a partir da área ambiental.

[0044] Vários aspectos da presente invenção são ilustrados através dos exemplos não limitativos a seguir. Os exemplos são para o propósito ilustrativo e não são uma limitação em qualquer prática da presente invenção. Será entendido que variações e modificações podem ser feitas sem fugir do espírito e do escopo de proteção da invenção.

[0045] Exemplo 1: Desenho das armadilhas autocidas de oviposição para utilizar na coleta de vetores fêmeas prenhes.

[0046] Uma armadilha para vetor controle útil como uma armadilha para ovos autocidas (AGO) de desenho preliminar (AGO-A) é arranjada incluindo sete componentes básicos: (i) um balde preto de polietileno servindo como uma câmara de atração (19 litros de volume), (ii) uma tampa de balde branca, (iii) um copo plástico preto com um fundo removível (8,8 cm de diâmetro na abertura superior, 11 cm de altura) que serve como uma entrada de armadilha, (iv) uma câmara de captura cilíndrica imediatamente abaixo da entrada da armadilha formada por um cilindro de estireno branco (16 cm de diâmetro); a superfície interna revestida com 155 g/m2 de um adesivo de polibutileno não ajustável (32UVR, Atlantic Paste & Glue Co., Inc., Brooklin, NY); (v) um substrato de oviposição autocida (substrato para captura de ovos) (hidrogel copolímero de poliacrilamida; “PAM”) na base da câmara de captura, (iv) um reservatório (3,8 litros de um tanque de polietileno preto) para a infusão de atrativo imediatamente abaixo da câmara de captura; e (vii) uma tela de barreira prevenindo que os mosquitos adultos movendo-se entre a câmara de captura e o reservatório de infusão formado na câmara de atração. Os furos de drenagem no topo do tanque e no fundo do balde permitindo que o excesso de infusão drene a partir da armadilha (capacidade de infusão máxima 2,51).

[0047] Uma segunda armadilha para este do desenho da armadilha para captura de ovos autocidas (AGO-B; figura 1) é construída similar ao AGO-A, exceto para as mudanças a seguir. A cor da tampa é alterada de branco para preto. Para formar a câmara de captura, o tanque de polietileno preto de 3,8 litros é invertido e elevado de modo que atravesse (“transects”) a tampa do balde. Um furo com 12,8 cm de diâmetro é cortado no ápice da câmara de captura para criar a entrada da armadilha. A cor da superfície revestida de adesivo de revestimento na câmara de captura é alterada de branco para preto. A infusão de atrativo é adicionada diretamente ao balde (câmara de captura) em um volume de 9,3 litros. A entrada da armadilha é coberta por 34" de polipropileno preto, orientação líquida (Industrial Netting, Minneapolis, MN) para excluir a entrada de organismos e resíduos grandes.

[0048] Uma terceira armadilha para ovos autocida (AGO-C) é idêntica à AGO-B com exceção de que o diâmetro da abertura da armadilha na câmara de captura é aumentado para 15,8 cm.

[0049] Exemplo 2: Analise do sucesso operacional dos desenhos das armadilhas.

[0050] A AGO do exemplo 1 são utilizadas com iscas com uma diluição de 1:1 de uma infusão de feno fermentado anaerobicamente (AF) preparada em uma recipiente fechado em uma concentração de feno de 3,8 gramas por litro de água. Para cada experimento, 61 gramas de Cynodum nlemfuensis Vanderyst (Bogdan) foram adicionados aos 16 litros de água de torneira sem cloro em um recipiente plástico vedado (19 litros de capacidade). A infusão são envelhecidas por 7 dias em um local sombreado fora das condições ambiente ao ar livre, então peneirado com uma tela de 1,2 mm antes do uso, e diluído com água de torneira sem cloro 1:1. A infusão diluída adicionada ao reservatório da infusão para «80 por cento da capacidade máxima (AGO-A = 2 L; AGO-B/C = 8 L). O substrato para captura de ovos autocidas (PAM) é preparada por hidratação de cristais em gel de uma variedade de planta ao ar livre (DNB Designs, Inc., Colorado Springs, CO) com uma infusão não diluída Af (1g/100 ml de infusão) para um mínimo de 3 horas antes de cada experimento. Todos os experimentos foram realizados em uma gaiola apresentada com um diâmetro de 10 m com armadilhas colocadas em 2-8 locais fixados dentro da gaiola com uma distância mínima inter- gaiolas de 2,6 a 4,8 metros. 120-150 fêmeas prenhes de Aedes aegypti são liberadas a partir do centro da gaiola e as armadilhas são colhidas após um tempo de captura de 16-18 horas.

[0051] Em um primeiro teste, os efeitos do diâmetro de entrada da armadilha e da cor da superfície de captura sobre o desempenho da armadilha são examinados. Os números de fêmeas prenhes de Aedes aegypti capturadas na AGO-A (8,8 cm de diâmetro de entrada + superfície de captura branca) são comparadas com as capturas em três desenhos de AGO-A modificadas; (i) 8,8 cm de entrada + superfície de captura preta (AGO-Am); (ii) 12,8 cm de entrada + superfície de captura branca; (iii) 12,8 cm de entrada + superfície de captura preta (AGO-B), (iv) 15,8 cm de entrada + superfície de captura preta (AGO-C). Em cada um dos 6 experimentos, duas armadilhas representando cada tratamento são aleatoriamente designadas em oito locais fixados no campo da gaiola.

[0052] O segundo experimento analisa os efeitos combinados da alteração da forma da entrada da armadilha, da posição da superfície de captura da câmara de captura, e do tamanho do reservatório de infusão (volume e área de superfície da infusão), quanto ao desempenho da armadilha por comparação da taxa de captura entre a AGO-B (mas com uma tampa do balde branca e sem uma tela de exclusão de 34“) e o desenho da AGO- A (iv) a partir do experimento anterior. Para cada um dos três experimentos, quatro armadilhas de cada tipo foram aleatoriamente distribuídas entre os oito locais fixos no campo das gaiolas.

[0053] No terceiro experimento, a influência do contraste de cor entre a entrada da armadilha e a tampa do balde quanto ao desempenho de AGO-B foi examinado. Duas AGO-Bs com uma tampa branca, e duas AGO-Bs com uma tampa preta foram aleatoriamente colocadas em oito locais fixos, e uma tela de exclusão de 34“ foi utilizada para cobrir a entrada da armadilha de quatro armadilhas selecionadas aleatoriamente.

[0054] No geral, números maiores de fêmeas são capturados na AGO-B com a superfície de captura preta e abertura de armadilha grande (Figura 3A). Melhoras similares são observadas usando as armadilhas AGO-C. As interações entre o diâmetro da armadilha e a cor da superfície (F=5,0, P=0,033) tem uma influencia significativa sobre o número de adultos capturados. Na armadilha com a abertura menor, nenhuma diferença na eficácia foi observada entre as armadilhas com uma superfície branca e armadilhas com uma superfície preta.

[0055] Quando o desenho da AGO-A foi comparado com o da AGO-B na análise competitiva no campo da gaiola, o desenho da armadilha foi observado influenciar significativamente a eficiência da captura (F=21,0, P<0,001) (Figura 3B). As melhoras similares são observadas usando as armadilhas AGO- C. Média (95% CI) números de fêmeas capturadas por armadilha na análise comparativa no campo da gaiola são 13,1 (10,9; 15,3) e 20,0 (17,8; 22,2) no desenho da AGO-A e da AGO-B, respectivamente.

[0056] A cor da tampa tem uma influência significativa sobre as armadilhas de captura na AGO-B (F=11,3; P=0,002) (Figura 3C). A média (5% CI) do número de fêmeas capturadas nas armadilhas com uma tampa preta é 37,4 (34,0; 40,9), comparado com 29,5 (26,0; 32,9) nas armadilhas com uma tampa branca.

[0057] No campo da gaiola, a adição de -H” da tela de exclusão da entrada da armadilha tem um efeito significativamente positivo sobre a captura de fêmeas de Ae. aegypti na AGO-B (F=6,1, P=0,034). Média (95% de CI) do número de fêmeas capturadas nas armadilhas com e sem uma tela de exclusão são 20,2 (17,7; 22,8) e 16,2 (13,7; 18,8) respectivamente.

[0058] Exemplo 3: Atratividade de uma isca de infusão de feno produzida in situ.

[0059] Dois experimentos iniciais foram realizados sob condições seminaturais para verificar que o uso de um “padrão” de infusão AF de feno aumenta, significativamente, a atração de ambos os modelos de AGO do Exemplo 1. No primeiro teste, as AGOs são atraídas tanto com água de torneira quanto com uma diluição 1:1 da infusão AF. Em cada um dos cinco experimentos, quatro AGO-As representando cada um dos grupos de tratamento foram aleatoriamente designadas em um dos oito locais fixos no campo das gaiolas. Esse experimento foi repetido em uma campo de gaiolas menor (7,0x2,7x3,7 m) usando a armadilha AGO-B. Oito repetições dos experimentos foram realizadas no segundo experimento.

[0060] Em ambos os desenhos das armadilhas (AGO-A, AGO-B), uma diluição 1:1 da infusão de isca AF resulta em um número significativamente maior de fêmeas capturadas sob condições seminaturais (Tabela 1) (Figura 3D).

[0061] Após a verificação do aumento de captura com a infusão “padrão” de isca AF de fêmeas prenhes de Ae. Aegypti em ambos os desenhos de armadilha, três ajustes dos experimentos foram realizados na Gaiola A para analisar a atratividade de uma infusão de feno fermentado in situ através da adição de um pacote de 30 gramas de feno seco ao reservatório de infusão preenchido com «80 por cento da capacidade máxima com água de torneira sem cloro (8 litros). Os pacotes de feno são preparados pela dobra do feno seco em uma forma compacta e empacotamento desses com uma amarra em cabo plástico.

[0062] No primeiro experimento, a atratividade relativa da infusão produzida in situ usando um pacote de feno em ambas as armadilhas AGO-A e AGO-B é comparada com uma diluição 1:1 padrão da infusão AF. Após envelhecimento por 7 dias, cada infusão foi removida a partir de seus respectivos receptáculos, filtrada e 1,5 litros foi transferido para um recipiente plástico de 3,8 litros que foi colocado dentro de uma armadilha AGO-B (sem água adicional ou infusão sendo adicionada ao reservatório de infusão). Para cada experimento (n=6), um AGO-B representando cada um dos tipos de infusão é aleatoriamente designado para um dos três locais fixos no campo das gaiolas.

[0063] As condições de fermentação da isca de infusão tiveram uma influencia significativa sobre a atração para a AGO-B (tabela 2, Experimento 1); um número maior de fêmeas foram capturadas nas armadilhas com a infusão de isca envelhecida em um recipiente fechado (anaeróbico), quando comparado com as armadilhas onde a infusão foi envelhecida in situ (Tabela 1) (figura 3D). Tabela 1

[0064] O segundo teste de uma infusão in situ avaliou a influência da concentração de feno sobre o atrativo na AGO- B. As armadilhas são atraídas com 8 litros de água de torneira e também 3,8 g ou 8,3 g de feno por litro e então envelhecido sob condições naturais em um local com sombra. As análises foram realizadas em 7 e 28 dias, com três repetições do experimento realizado em cada ponto do tempo. Em cada experimento, quatro AGO-Bs com uma baixa concentração de feno, e quatro AGO-Bs com uma alta concentração de feno foram aleatoriamente designadas em um dos oito locais fixados no campo das gaiolas. Os números de fêmeas prenhes liberadas por experimento foi reduzido a 120 no primeiro ponto do tempo (7 dias). Tabela 2

11X concentração da infusão = 3,8 gramas de feno por 1 de água de torneira sem cloro; 2,2x concentração da infusão = 8,3 gramas de feno por 1 de água de torneira sem cloro.

[0065] A concentração de feno utilizada para preparar a infusão in situ não influencia significativamente o número de fêmeas capturadas na AGO-B (Tabela 2, experimento 2).

[0066] Em ambos, no laboratório e no campo de testes, as fêmeas prenhes irão frequentemente expelir seus ovos quando eles são apanhados sobre a superfície adesiva da AGO-A e AGO-B em um processo conhecido como morte por tensão da oviposição. Apesar de alguns desses ovos aderirem ao adesivo, outros podem falhar dentro do reservatório de infusão abaixo e incubados. Ademais, os ovos podem ser lavados do substrato de captura de ovos dentro do reservatório de infusão por precipitação. Embora a tela de barreira entre a câmara de captura e o reservatório de infusão previna que qualquer adulto produzido no reservatório escape, ainda existe a preocupação dos odores liberados pelas larvas específicas (“con”) na infusão pode mudar a atração relativa da armadilha. Para investigar isso, a isca AGO-Bs com uma infusão in situ (30g do feno embalado) são envelhecidos sob condições de campo por 7 dias em um local sombreado. Cinco dias antes do teste, 0, 50 ou 500 primeiras larvas de Ae. aegypti são adicionadas ao reservatório de infusão de cada armadilha. Para cada experimento (n=9), uma única AGO-B representando cada densidade de larvas é aleatoriamente designada em um dos três locais fixado.

[0067] A presença de larvas conspecíficas na infusão de feno não influencia significativamente a atração para o AGO- B no campo das gaiolas (Tabela 2, Experimento 3). Exemplo 4: Análise de campo

[0068] Três experimentos em campo consecutivos de avaliação do desempenho do AGO-B do Exemplo 1, e um AGO-B modificado (denominado AGO-C) com uma abertura na armadilha de 15,8 cm com uma tampa preta, câmara de atração preta e câmara preta de captura foram realizadas em 2001 na área metropolitana de San Juan, Puerto Rico. O sítio de estudo é uma vizinhança residencial (“El Comandante”) «1,5 km2 de tamanho abrangendo duas áreas adjacentes do censo; extensão de urbanização El Comandante e urbanização de El Comandante. A terceira propriedade residencial selecionada para o deslocamento da armadilha é uniformemente distribuída com uma distância mínima média de 145 metros entre as propriedades. Em cada propriedade selecionada, um par de armadilhas (1 armadilha por tratamento) foi colocado nas posições fixadas que proveem algumas proteção a partir da luz do sol direta (ou seja, próximo à casa ou vegetação), e são pelo menos 5 m de distância, em lados opostos da propriedade quando possível. Cada quinta feira e segunda- feira, os mosquitos adultos foram removidos a partir das superfícies adesivas e enumerados por espécies e seis, e as posições de dois tratamentos são girados dentro de cada propriedade. Para facilitar a consistência de 3 dias de intervalos de amostra, a entrada da armadilha é vedada com tela de janela a partir da quinta-feira à sexta feira para prevenir a entrada dos mosquitos. Uma medida adicional da atividade de oviposição de Ae. aegypti na área de estudo é provida por um par de “recipientes de ovos melhorado” (“enhanced ovicup pair” (Reiter et al., “J. Am. Mosq. Control Assoc.”, 1991; 7:52-55) colocada em uma cada adjacente de cada uma das propriedades melhoradas. Os recipientes de ovos são substituídos no inicio de cada 3 dias do período de amostragem. Os dados meteorológicos são colhidos no aeroporto internacional de “Luis-Munpz”, aproximadamente 4 km do sítio de estúdio (MCDC 2011).

[0069] No primeiro campo de experimento, os números de mosquitos adultos capturados no modelo de armadilha inicial (AGO-A) e nos dispositivos melhorados (AGO-B; AGO-C) são comparados durante um período de amostragem contínua de 15 de fevereiro a 18 de abril. As armadilhas, construídas como descrito previamente, são preenchidos com isca com um pacote de 30 gramas de feno (infusão in situ) e distribuído entre as 30 propriedades selecionadas. Uma propriedade é mais tarde excluída a partir do experimento após renovações da casa prevenindo o acesso às armadilhas. No final do 62° dia de estudo, o volume de infusão remanescente em cada armadilha é medido. Utilizou-se as superfícies de captura a partir de doze armadilhas aleatoriamente selecionadas, AGO- Bs e AGO-Cs foram trazidas de volta ao laboratório para testar se sua capacidade de captura de fêmeas prenhes diminuiu.

[0070] No primeiro experimento de campo, o número médio (+ SE) das fêmeas adultas Ae. aegypti capturada por armadilha por dia são 1,16 + 0,05 no dispositivo melhorado (AGO-B), e 0, 36 + 0, 02 na AGO-A do Exemplo 1. Os números maiores de fêmeas Ae. aegypti são capturadas nas armadilhas AGO-C. Na média, a AGO-B coleta um número 3,7 vezes maior de fêmeas Ae. aegypti do que o desenho da armadilha AGO-A (Figura 4). A proporção de amostras da armadilha positiva para os adultos Ae. aegypti é maior na AGO-B (0,88), comparado com o AGO-A (0,55) ou a proporção das amostras ovijar com os ovos (0,63). Na conclusão do experimento, o volume da infusão ainda permanece nas armadilhas AGO-B varia de 5,5 a 9,0 litros (média = 74% do volume original). A precipitação cumulativa e a média diária da temperatura do ar registrada no aeroporto internacional Luis-Munoz (~4 km a partir do sítio de estudo) são 89,9 mm e 25,7°C, respectivamente (NCDC 2011). Com base no diâmetro de entrada (12,8 cm), é estimado que as armadilhas expostas diretamente à precipitação tivessem recebido cerca de 1,1 litros de água durante o período de estudo. Nenhuma das armadilhas foi perdida ou danificada durante o período de 62 dias.

[0071] O segundo campo de experimento (18 de abril a 12 de maio) foi iniciado imediatamente após o primeiro experimento. O propósito foi analisar se a restauração de atração para AGO-B ou AGO-C após o uso estendido requerer uma substituição completa da isca de infusão in situ, ou se seria suficiente substituir o pacote de feno e a água perdida via evaporação, mas retém o fluido remanescente no reservatório de infusão (substituição parcial). As armadilhas frescas (designadas AGO-Bf e AGO-Cf) foram preparadas como descrito acima para representar uma “substituição de isca completa”. A condição de “substituição de isca parcial” foi gerada por substituição da superfície de captura de adultos, substrato de captura de ovos, e pacotes de feno nos dispositivos: AGO-B e AGO-C utilizado no primeiro experimento (agora designado como AGO-Bp e AGO-Cp). A água de torneira foi adicionada a cada uma das armadilhas AGO-Bp e AGO-Cp para trazer o volume até 9,3 litros.

[0072] No segundo campo de experimento (Figura 5), números similares de fêmeas de Ae. aegypti são preparadas nas armadilhas frescas (AGO-Bf) e em armadilhas com uma substituição parcial da infusão do feno (AGO-Bp). As armadilhas AGO-C coletam números similares de fêmeas de Ae. aegypti com substituição total (AGO-Cf) ou parcial (AGO-Cp) da infusão de feno. Esses resultados indicam que o desenho completo da armadilha provê excelente tempo de duração, baixa manutenção da funcionalidade.

[0073] No terceiro campo de experimento (6 de junho a 21 de julho), a contribuição relativa da infusão in situ para o desempenho da armadilha durante o uso prolongado (> 6 semanas) é examinado através da comparação da captura de adultos nas armadilhas com iscas feitas com o pacote de feno (AGO-Bh, AGO-Ch) e as armadilhas sem um pacote de feno (apenas água; AGO-Bw e AGO-Cw). As amostras são colhidas a partir de armadilhas acopladas em todas as 30 propriedades selecionadas nesse experimento. As armadilhas com iscas de infusão (AGO-Bh e AGO-Ch) capturaram consistentemente números maiores de fêmeas Ae. aegypti do que as armadilhas contendo apenas a água (Figura 6). Exemplo 5: Eficácia de longa duração para superfície de captura de adultos.

[0074] Para testar se a eficácia do adesivo foi diminuída após quase 9 semanas da exposição ás condições de campo, uma análise competitiva de 2 vias é realizada sob as condições de laboratório (~26°C, 70% de RH, 12:12 L:D) em uma sala de 3,8 x 2,7 x 2,0. Em cada um dos quatro experimentos, 6 de cada armadilhas do tipo (AGO- B ou AGO-C) foram utilizadas; 3 com uma superfície adesiva fresca, e 3 com superfícies de 62 dias de idade usadas no primeiro campo de teste. As armadilhas são aleatoriamente designadas em 6 locais fixos formando uma grade de 2 x 3 m. Cento e vinte fêmeas prenhes de Ae. aegypti são liberadas a partir do centro da sala 3 horas antes do início da fase de escoto (“scotophase”) e o número capturado em cada armadilha foi determinado 20 horas mais tarde. Os ovos depositados sobre o substrato de coleta de ovos são também colhidos e contados. Os números de adultos e ovos colhidos em cada armadilha foram comparados como descrito no Exemplo 2 para os testes no campo de gaiolas. Uma transformação de raiz quadrada dos dados de ovos foi utilizada para aproximar de uma distribuição normal.

[0075] A eficiência de captura das superfícies revestidas de adesivo não declina sob as condições do campo após dois meses de uso contínuo (Tabela 3). A idade da superfície adesiva não afeta significativamente o número de fêmeas adultas capturadas ou o número de ovos colhidos no substrato de captura de ovos por fêmea capturada. Tabela 3

Exemplo 6: Eficácia de vários desenhos de armadilhas para vetores adultos passivos.

[0076] As armadilhas foram construídas usando preto, plástico corrugado com as superfícies internas revestidas com 32UVR adesivos não ajustados (Atlantic Paste & Glue Co., Inc., Brooklin, NY). As armadilhas são geralmente construídas em uma configuração de caixa retangular com dimensões de: altura 27 cm; largura 22 cm; profundidade 11 cm. As armadilhas podem incluir um painel de tela central que inclui opcionalmente um material atrativo. Várias configurações de abertura e configurações internas foram testadas. Em cada um dos experimentos abaixo, as armadilhas são analisadas em uma sala de triagem de 3,8m x 2,7m x 2,9m («26° C, 70% de umidade relativa) . As armadilhas foram suspensas 1 metro acima do piso. Duas armadilhas são testadas por triagem com um total de seis experimentos em vários locais de tratamento. Os tipos de armadilha são girados na sala de teste para cada ajuste do experimento. Cada corrida experimental inicia com a liberação simultânea de fêmeas prenhes com 10-14 dias de idade, e machos não alimentados com 3-7 dias de idade e fêmeas (40-50 por grupo) em 15:00 horas; colhidos a 9:00 horas no dia seguinte por um tempo de coleta total de 18 horas.

[0077] Em um primeiro ajuste do experimento, as armadilhas foram construídas substancialmente como representadas na figura 7 tanto com entradas nas faces laterais (A) quanto nas faces superior e inferior (B) (entradas mostradas na luz cinza, superfícies sólidas mostradas em cinza escuro). Um painel central foi provido no adesivo revestido, plástico corrugado preto ou tela (representado como linhas pontilhadas). Cada uma das armadilhas inclui um disco circular de papel de filtro saturado com água em ambos os lados do painel central como um atrativo. Ou o atrativo estava ausente.

[0078] Como ilustrado na figura 8, uma proporção significativamente maior de fêmeas não alimentadas (t = 3,165; p = 0,034) e proporções menores de macho (t = 3,078; p=0,037) foram capturados na entrada lateral das armadilhas em relação às armadilhas com entrada superior/inferior. No geral, as fêmeas prenhes foram capturadas em números similares em ambas às configurações de armadilhas. Ademais, muito poucos vetores são capturados na porção inferior da entrada das armadilhas superior/inferior.

[0079] Um segundo ajuste dos experimentos é realizado comparando as armadilhas de entrada lateral sem uma fonte de vapor de água com armadilhas de entradas laterais com o papel de filtro saturado de água substituído por um hidrogel de poliacrilamida (PAM) saturado com água de torneira. O hidrogel tem uma taxa de liberação de «300 ml H2O/hora. Como é ilustrada na figura 9, uma proporção significativamente maior de fêmeas prenhes são capturadas nas iscas das armadilhas com PAM (t=7,573, p<0,001), quando comparado com as armadilhas que perderam a fonte de vapor d’água.

[0080] Em um terceiro ajuste do experimento, desenhos de entradas de armadilhas adicionais são arranjados como na figura 10, tanto com uma configuração de entrada lado/lado e um painel vertical, quanto uma configuração de entrada em Y, a qual tem uma entrada superior e duas entradas laterais com painéis plásticos centrais em uma configuração em Y. Cada uma das armadilhas inclui um atrativo PAM saturado com água de torneira como um material de atração. As armadilhas são testadas como acima. Como é observada na figura 11, a armadilha com a configuração tipo Y capturou uma proporção significativamente maior de fêmeas prenhes (t = 3,573; p= 0,023), embora uma diferença significativamente marginal de fêmeas vazias (p=0,061) e machos (p=0,060) foram capturados na configuração do tipo Y. Exemplo 7: Eficácia da entrada superior na configuração de armadilha para adulto passivo.

[0081] As armadilhas adicionais dos mesmos materiais e com mesmas dimensões que as armadilhas do Exemplo 6 são construídas tanto com uma configuração do tipo Y, quanto em um arranjo de armadilhas com uma entrada superior apenas com configuração de abertura em funil ou como uma configuração aberta. O material PAM utilizado como um atrativo no fundo da armadilha. As configurações de armadilhas estão representadas na figura 12. Os painéis internos, revestidos com adesivo, plástico pretos, são presentados no tipo Y e as configurações do tipo funil como linhas pontilhadas.

[0082] As várias configurações de armadilha foram testadas quanto á capacidade para capturar mosquitos vetores em uma tenda com domo deodésico de 10 m de diâmetro usando 3 armadilhas por experimento com armadilhas colocadas ao nível do solo com uma distância mínima inter-armadilhas de 4,8 metros e 6 triagens por experimento. Cem mosquitos por grupo são liberados a partir do centro da tenda 2,5 horas antes do entardecer. Os insetos apanhados são colhidos 2,5 horas após o entardecer do dia seguinte, contados, e divididos em fêmeas não alimentadas, fêmeas prenhes ou machos. A taxa de evaporação do material PAM também foi medida em peso da armadilha antes e após o tempo de captura. Como é ilustrado na figura 13, uma proporção significativamente menor de fêmeas prenhes é capturada na armadilha com uma configuração do tipo Y (F=11,577, p=0,001) em relação às configurações em funil ou do tipo aberta. Exemplo 8: Adição do atrativo olfativo.

[0083] Dois experimentos são realizados no laboratório, como no Exemplo 6, para estudar a capacidade de um atrativo olfativo para melhorar a captura de vetores. As armadilhas com configuração do tipo Y, dos Exemplos 6 e 7 são providas com iscas tanto com uma isca SWEETSCENT (Biogents GmbH, Regensburg, Alemanha), que representa materiais encontrados na pele humana incluindo uma mistura de amônia, ácido láctico, e ácido graxo, ou uma simulação (“sham”) (papel de filtro seco) suspenso abaixo do centro da entrada da armadilha. O atrativo com cheiro de pele humana aumenta levemente a captura de fêmeas não alimentadas (t=5,134; p=0,004) em relação à água sozinha (figura 14A). Um segundo experimento é realizado usando a armadilha de configuração de abertura do Exemplo 7 provida com isca de um pavio de algodão saturada com uma diluição a 60% de mel de flores silvestres não pasteurizado (WFH) ou água de torneira (controle) suspenso abaixo da entrada da armadilha. O odor de mel (WFH) aumenta significativamente a coleta de fêmeas jovens (t=4,165, p=0,009) e machos (t=6,586, p=0,001), mas não demonstra efeito nos mosquitos mais velhos (figura 14B). Exemplo 9: Efeitos da colocação alta das armadilhas.

[0084] A armadilha de configuração aberta do Exemplo 7 provida apenas com isca PAM como um atrativo foi utilizada para estudar os efeitos da colocação da armadilha ao nível do solo ou suspensa a 1 metro acima do solo da área de teste. Os parâmetros experimentais do Exemplo 6 foram utilizados. Como é observada na figura 15, uma proporção significativamente maior de machos foi capturada nas armadilhas elevadas 1 metro acima do solo em relação às armadilhas posicionadas no piso (t=-3,596; p=0,016). A coleta de vetores fêmeas não foi significativamente afetada pela altura na colocação da armadilha. Exemplo 10: Efeito de um antecedente visualmente competitivo.

[0085] A armadilha de configuração aberta do Exemplo 7 provida apenas com isca PAM como um atrativo foi utilizada para estudar os efeitos dos antecedentes competitivos na sombra usando a metodologia de teste descrita no Exemplo 6. Uma armadilha foi colocada contra um painel de 27 cm de amplitude pro 74 cm de altura que tinha a mesma cor preta da câmara de captura da própria armadilha, e uma segunda armadilha foi posicionada sem um painel (controle). Como ilustrado na figura 16, a presença de um antecedente de sombra para competição reduz, significativamente a captura de fêmeas não alimentadas (t=4,538; p=,006) e machos (t=3,133; p=0,026).

[0086] Várias modificações da presente invenção, em adição àquelas mostradas e descritas aqui, serão aparente aos técnicos no assunto da descrição acima. As referidas modificações também são pretendidas como estando dentro do escopo de proteção das reivindicações anexas.

[0087] As patentes e publicações mencionadas no relatório descrito são indicativas dos níveis dos técnicos no assunto ao qual a invenção pertence. Essas patentes e publicações são incorporadas aqui por referência na mesma extensão que cada aplicação individual ou publicação foi especificamente e individualmente incorporada aqui por referência para a íntegra de seus ensinamentos.

[0088] A descrição acima mencionada é ilustrativa das concretizações particulares da invenção, mas não pretende ser uma limitação da prática da mesma. As reivindicações a seguir, incluindo todos os seus equivalentes, devem ser considerados como definidores do escopo de proteção da invenção.

Claims

1. Armadilha para captura de inseto prenhe autocida, caracterizada pelo fato de compreender: - uma câmara de atração (102, 202), dita câmara de atração (102, 202) tendo um volume interior, e uma tampa (110); - uma câmara de captura (104) tendo uma armadilha na entrada (112, 204) em uma primeira extremidade e uma barreira de tela (114) pelo menos parcialmente transversal a uma extremidade inferior da mesma, dita barreira de tela (114) compreendendo furos que são suficientemente pequenos, para que insetos maduros ou em maturação sejam incapazes de atravessar, dita câmara de captura (104) associada com a referida câmara de atração (102, 202) dentro da referida tampa (110) e posicionada dentro de uma porção do referido volume interior; e - um substrato de coleta de ovos (106, 210) alojado dentro do referido volume interior e associado com a referida câmara de captura (104) da referida extremidade inferior, dito substrato de coleta de ovos (106, 210) compreendendo um hidrogel.

2. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de a referida câmara de captura (104) ter uma superfície interna, dita superfície interna revestida com um substrato de captura (212).

3. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de a referida tampa (110) ser preta.

4. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de o referido volume interior ser maior que 15 litros.

5. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de a referida entrada da armadilha (112, 204) ter um diâmetro ou outra dimensão linear maior que 10 centímetros.

6. Armadilha, de acordo com a reivindicação 5, caracterizada pelo fato de a referida entrada de armadilha (112, 204) ter um diâmetro ou outra dimensão linear a partir de 12 a 26 centímetros.

7. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de a referida tampa (110), dita câmara de captura (104) e dita câmara de atração (102, 202) serem pretas.

8. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de o referido hidrogel compreender ainda um atrativo.

9. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de a citada câmara de atração (104) compreender ainda uma ou mais passagens de drenagens (116), dita passagem de drenagem (116) atravessar uma parede da referida câmara de atração (102, 202) em uma posição abaixo da referida câmara de captura (104).

10. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de a câmara de atração (102, 202) alojar um volume de atrativo.

11. Armadilha, de acordo com a reivindicação 10, caracterizada pelo fato de a referida câmara de atração (102, 202) alojar um volume de atrativo.

12. Armadilha, de acordo com a reivindicação 10, caracterizada pelo fato de o referido volume ser maior que 10 litros.

13. Armadilha, de acordo com a reivindicação 1, caracterizada pelo fato de o referido substrato de coleta de ovos (106, 210) compreender ainda um atrativo.

14. Armadilha autocida passiva, caracterizada pelo fato de compreender: uma câmara de captura (104), a câmara de captura (104) tendo (i) uma parede em torno de um volume interior, sendo que uma ou mais passagens de drenagem (116) atravessa a parede, a uma ou mais passagens de drenagem (116) permitindo que o fluido passe através da mesma, (ii) uma extremidade inferior, e (ii) uma extremidade superior com uma tampa (110); - uma câmara de captura (104) tendo uma armadilha na entrada (112, 204) em uma extremidade superior na mesma e uma barreira de tela (114) pelo menos parcialmente transversal a uma extremidade inferior na mesma, a armadilha de entrada (112, 204) compreendendo uma tela (120) atravessando a armadilha de entrada (112, 204) e pelo menos parcialmente aberta de modo que um inseto maduro inteiro possa passar através da tela (120) da armadilha de entrada (112, 204), a barreira de tela (114) compreendendo furos que são suficientemente pequenos para que insetos maduros ou em maturação sejam incapazes de atravessar, a câmara de captura (104) associada com a referida câmara de atração (102, 202) dentro da referida tampa (110) e posicionada dentro de uma porção do referido volume interior; sendo que ao longo do eixo geométrico transversal definido pela extremidade superior e a extremidade inferior da câmara de atração (102, 202), a extremidade inferior da câmara de captura (104) é posicionada mais próxima da extremidade superior da câmara de atração (102, 202) do que uma ou mais passagens de drenagem (116); e a câmara de captura compreender ainda um substrato de captura (212).

15. Armadilha passiva, de acordo com a reivindicação 14, caracterizada pelo fato de a câmara de captura (104) ser na forma de um paralelepípedo retangular.

16. Armadilha passiva, de acordo com a reivindicação 14, caracterizada pelo fato de compreender ainda uma isca olfativa (205, 206), dita isca olfativa (205, 206) estar próxima à referida entrada.

17. Armadilha passiva, de acordo com a reivindicação 14, caracterizada pelo fato de a isca olfativa (205, 206) ser revestida sobre uma superfície interna da câmara de captura (104).

18. Armadilha passiva, de acordo com a reivindicação 14, caracterizada pelo fato de a câmara de captura (104) ser preta.

19. Armadilha passiva, de acordo com a reivindicação 14, caracterizada pelo fato de a câmara de captura (104) compreender o substrato de captura (212) sobre uma superfície interna da câmara de captura (104), e sendo que o substrato de captura (212) é um adesivo.

20. Processo de monitoramento de vetores em uma área ambiental, caracterizado pelo fato de compreender: - colocar as armadilhas definidas em qualquer uma das reivindicações 1 ou 14, em uma área ambiental; e - detectar a presença ou a ausência de um vetor na referida área ambiental.

21. Processo, de acordo com a reivindicação 20, caracterizado pelo fato de a área ambiental ser uma área ambiental externa. 22. Processo, de acordo com a reivindicação 21, caracterizado pelo fato de as referidas armadilhas para captura de inseto prenhe autocida compreender uma pluralidade das referidas armadilhas para captura que são colocadas na referida área ambiental em uma densidade maior que uma por acre.