AT507240A2

AT507240A2 - Verwendung von macroliden bei der schädlingsbekämpfung

Info

Publication number: AT507240A2
Application number: AT0193609A
Authority: AT
Original assignee: Syngenta Participations Ag
Priority date: 1997-12-23
Filing date: 2009-12-07
Publication date: 2010-03-15
Also published as: AT507240A3

Description

PI/5-30326/A/30327 USW

Verwendung von Macroliden bei der Schädlingsbekämpfung

Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen mit Macrolidverbindungen, insbesondere (A) ein neues Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen in und auf transgenen Nutzpflanzenkulturen mit einer Macrolidverbindung; (B) ein Verfahren zum Schutz von pflanzlichem Vermehrungsgut und später zuwachsenden Pflanzenteilen vor Schädlingsbefall mit einer solchen Macrolidverbindung; und (C) ein Verfahren zur Bekämpfung von«Holzschädlingen sowie von Mollusken, mit einer Macrolidverbindung.

In der Literatur werden gewisse Verfahren zur Schädlingsbekämpfung vorgeschlagen. Diese Verfahren vermögen auf dem Gebiet der Schädlingsbekämpfung jedoch nicht vollkommen zu befriedigen, weshalb das Bedürfnis besteht, weitere Schädlingsbekämpfungsmittel, insbesondere gegen Insekten und Vertreter der Ordnung Acarina, beziehungsweise zum Schutz von Pflanzen, besonders von Kulturpflanzen, zur Verfügung zu stellen. Diese Aufgabe wird erfindungsgemäss durch die Bereitstellung des vorliegenden Verfahrens gelöst. (A) Ein erster Aspekt der vorliegenden Erfindung betrifft daher ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen in Kulturen von transgenen Nutzpflanzen, wie beispielsweise in Kulturen von Mais, Getreide, Soja, Tomaten, Baumwolle, Kartoffeln, Reis und Senf, dadurch gekennzeichnet, dass ein pestizides Mittel, welches eine Macrolidverbindung, besonders Aba-mectin, in freier Form oder in agrochemisch verwendbarer Salzform, sowie mindestens einen Hilfsstoff enthält, auf die Schädlinge oder ihren Lebensraum, besonders auf die Kulturpflanze selbst, appliziert wird; die Verwendung des entsprechenden Mittels und damit behandeltes Vermehrungsgut transgener Pflanzen.

Es hat sich nun überraschenderweise gezeigt, dass die Verwendung einer Macrolidverbindung zur Bekämpfung von Schädlingen auf transgenen Nutzpflanzen, die ein oder mehrere Gene enthalten, welche einen pestiziden, insbesondere insektiziden, acariziden, nematiziden oder fungiziden Wirkstoff exprimieren oder welche gegen Herbizide tolerant sind, eine synergistische Wirkung zeigt. Es ist in hohem Maße überraschend, daß die Verwendung einer Macrolidverbindung in Kombination mit einer transgenen Pflanze die prinzipiell zu erwartende additive Wirkung auf die zu bekämpfenden Schädlinge übersteigt und so die Wirkungsgrenzen der Macrolidverbindung und des von der transgenen Pflanze exprimierten Wirkprinzips insbesondere in zweierlei Hinsicht erweitert:

Insbesondere wurde überraschenderweise gefunden, dass die pestizide Aktivität einer Macrolidverbindung in Kombination mit der von der transgenen Nutzpflanze exprimierten Wirkung, verglichen mit den pestiziden Aktivitäten der Macrolidverbindung allein und der transgenen Nutzpflanze allein, nicht nur additiv ist - wie es im wesentlichen erwartet werden kann - sondern dass ein synergistischer Effekt vorliegt. Der Begriff “synergistisch" ist in diesem Zusammenhang jedoch keineswegs nur auf die pestizide Aktivität beschränkt, sondern der Ausdruck bezieht sich ebenfalls , auf andere vorteilhafte Eigenschaften des erfindungs-gemässen Verfahrens gegenüber der Macrolidverbindung allein und der transgenen Nutz; pflanze allein. Als Beispiele solcher vorteilhafter Eigenschaften seien erwähnt: Eine Verbreiterung des pestiziden Wirkungsspektrums auf weitere Schädlinge, beispielsweise auf resistente Stämme; eine Reduktion der Aulwandmenge der Macrolidverbindung oder eine ausreichende Bekämpfung der Schädlinge mit Hilfe der erfindungsgemässen Mittel sogar bei einer Aufwandmenge, bei der die Macrolidverbindung allein und die transgene Nutzpflanze allein vollständig unwirksam sind; erhöhte Kulturpflanzensicherheit, verbesserte Ertragsqualität, wie höherer Nährstoff- oder Ölgehalt, bessere Faserqualität, längere Lebensdauer, verminderter Anteil an toxischen Stoffen, wie Mykotoxine, verminderter Anteil an Rückständen oder ungünstigen Bestandteilen beliebiger Art oder bessere Verdaulichkeit; bessere Toleranz gegen ungünstige Temperaturen, Zug oder Salzgehalt im Wasser, erhöhte Assimi-lierungsraten, wie Nährstoffaufnahme, Wasseraufnahme und Photosynthese; günstige Kultureigenschaften, wie geänderte Blattflächen, vermindertes vegetatives Wachstum, erhöhter Ertrag, günstige Saatform/Saatdicken- oder Keimeigenschaften, geänderte Besiedelung durch Saprophyten oder Eplphyten, Verminderung des Altems, verbesserte Phytoalexinpro-duktion, verbessert im beschleunigten Reifen, Zunahme an Blütenansatz, verminderter Samenkapselfall- und Verstreuen, bessere Anziehung von Nützlingen und Räubern, erhöhte Bestäubung, verminderte Anziehung von Vögeln; oder andere dem Fachmann geläufige Vorteile. -3- • · • ···♦ ♦··· ·»·«

Die gemäß Teil (A), (B) und (C) der Erfindung verwendeten Macrolidverbindungen sind dem Fachmann bekannt. Es handelt sich dabei um die Stoffklassen, welche als Milbemycine und Avermectine, beispielsweise aus US-P-4 310 519, US-P-5 077 298, DE-OS-27 17 040 oder US-P-4 427 663 bekannt sind. Diese Macrolide werden ebenfalls in der erfindungsgemäßen Bedeutung der Derivate von diesen Substanzen verstanden, d.h. beispielsweise Mil-bemycinoxim, Moxidectin, Ivermectin, Abamectin, Emamectin und Doramectin, und auch Spinosyne der Formel

worin R1t R2, R3, R4, Rg und Rg unabhängig voneinander Wasserstoff oder eine gegebenenfalls substituierte Alkyl-, Alkenyl-, Alkinyl-, Cycloalkyl-, Aryl- oder Heterocyclyi-Gruppe darstellen und die Teilstrukturen A und B unabhängig voneinander bedeuten, dass die beiden Kohlenstoffatome, an welche jede dieser Teilstrukturen gebunden ist, durch eine Einfachbindung, durch eine Doppelbindung oder durch eine Einfachbindung und eine Epoxy-Brücke verbunden sind, in freier Form oder gegebenenfalls in agrochemisch verwendbarer Salzform.

Innerhalb des Rahmens der Erfindung (A) ist Abamectin bevorzugt. Abamectin ist eine Mischung von Avermectin B1a und Avermectin B1b und ist z.B. in The Pesticide Manual, 10. Ausg. (1994), The British Crop Protection Council, London, Seite 3; beschrieben.

Innerhalb des Rahmens der Erfindung (A) ist auch Emamectin bevorzugt, wobei Emamectin 4’’-Desoxy-4”-epi-N-methylaminoavermectin B1b/B1a ist und aus US-P-4 874 749 bekannt ist und als MK-244 in Journal of Organic Chemistry, Bd. 59 (1994), Seiten 7704-7708, beschrieben wird. Agrochemisch besonders brauchbare Salze von Emamectin sind in US-P-5 288 710 beschrieben.

Innerhalb des Rahmens der Erfindung (A) Ist auch die Gruppe von Verbindungen, bestehend aus den Spinosynen und deren Derivaten; die Gruppe von Verbindungen, bestehend aus den natürlich vorkommenden Spinosynen; oder die Gruppe von Verbindungen, bestehend aus den Derivaten der natürlich vorkommenden Spinosyne; bevorzugt. Vorzugsweise kann der Wirkstoff im Rahmen des Gegenstands der Erfindung (A), Spinosyn A; Spinosyn D; oder ein aus Spinosyn A und Spinosyn D zusammengesetztes Gemisch umfassen; besonders bevorzugt ist Spinosad. Spinosad ist aus dem 'The Pesticide Manual”, 11. Ausg. (1997), The British Crop Protection Council, London, Großbritannien, Seiten 1272-1273, bekannt.

Bei den agrochemisch verträglichen Salzen der Macrolidverbindungen handelt es sich beispielsweise um Säureadditionssalze anorganischer und organischer Säuren, insbesondere von Chlorwasserstoffsäure, Bromwasserstoffsäure, Schwefelsäure, Salpetersäure, Perchlorsäure, Phosphorsäure, Ameisensäure, Essigsäure, Trifluoressigsäure, Oxalsäure, Malon-säure, Toluolsulfonsäure oder Benzoesäure. Bevorzugt ist im Rahmen der vorliegenden Erfindung ein an sich bekanntes Mittel, welches als Wirkstoff eine Macrolidverbindung, besonders Abamectin oder Spinosad in freier Form und Emamectin als das Benzoatsalz enthält.

Bei den gemäss der Erfindung (A) verwendeten transgenen Pflanzen handelt es sich uni Pflanzen bzw. deren Vermehrungsgut, welche unter Einsatz von rekombinanten DNA-Techniken so transformiert sind, dass sie selektiv wirkende Toxine zu synthetisieren vermögen, wie sie beispielsweise aus toxinproduzierenden Tieren, besonders des Stammes Ar-thropoda, bekannt sind; aus Stämmen von Bacillus thuringiensis gewonnen werden können; oder aus anderen Pflanzen bekannt sind, wie etwa Lectine, oder in der Alternative in der Lage sind, eine herbizide oder fungizide Resistenz zu exprimieren. Beispiele solcher Toxine bzw. transgener Pflanzen, welche solche Toxine zu synthetisieren vermögen, sind beispielsweise aus EP-A-0 374 753, WO 93/07278, WO 95/34656, EP-A-0 427 529 sowie EP-A-451 878 bekannt und sind durch diesen Hinweis Bestandteil der vorliegenden Anmeldung.

Die Verfahren zur Herstellung solcher transgener Pflanzen sind dem Fachmann weitgehend bekannt und beispielsweise in den vorstehend genannten Publikationen beschrieben.

Zu den Toxinen, welche von solchen transgenen Pflanzen exprimiert werden können, gehören z.B. Toxine, wie Proteine, welche insektizide Eigenschaften haben und von transgenen Pflanzen exprimiert werden, beispielsweise Proteine aus Bacillus cereus oder Bacillus pop-liae; oder Bacillus thuringiensis-Endotoxine (B.t.), wie etwa CrylA(a), CrylA(b), CrylA(c), CryllA, CryllA, CrylllA, CrylllB2 oder CytA, VIP1, VIP2, VIP3; oder insektizide Proteine von Bakterien kolonisierender Nematoden, wie Photorhabdus spp. oder Xenorhabdus spp., wie

Photorhabdus luminescens, Xenorhabdus nematophilus etc.; Proteinaseinhibitoren, wie Trypsininhibitoren, Serin-Proteaseinhibitoren, Patatin, Cystatin, Papaininhibitoren; Ribosomen inaktivierende Proteine (RIP), wie Ricin, Mais RIP, Abrin, Luffin, Saporin oder Bryodin; Pflanzen Lectine, wie Erbsen-Lectine, Gersten-Lectine oder Schneeglöckchen-Lectine; oder Agglutinine; von Tieren produzierte Toxine, wie Skorpion-Toxine, Spinnengifte, Wespengifte und andere insektenspezifische Neurotoxine; Steroid-Metabolismus-Enzyme, wie 3-Hydroxysteroidoxidase, Ecdysteroid-UDP-glycosyl-Transferase, Cholesterinoxidasen, Ecdysoninhibitoren, HMG-COA-Reduktase, lonenkanalblocker, wie Natrium und Calcium, Juvenilhormonesterase, Diuretische-Hormon-Rezeptoren, Stilbensynthase, Bibenzylsyntha-se, Chitinasen und Glucanasen.

Beispielsweise sind folgende transgene Pflanzen, welche ein oder mehrere Gene enthalten, die für eine insektizide Resistenz codieren und ein oder mehrere Toxine exprimieren, bekannt: KnockOut® (Mais), YieldGard® (Mais); NuCOTN 33B® (Baumwolle), Bollgard® (Baumwolle), NewLeaf® (Kartoffeln), NatureGard® und Protecta®.

Die nachstehende Tabelle umfaßt weitere Beispiele von Zielen und Prinzipien und Kulturphänotypen von transgenen Kuturpflanzen, die Toleranz gegen Schädlinge, hauptsächlich gegen Insekten, Milben, Nematoden, Viren, Bakterien und Krankheiten zeigen oder gegen spezielle Herbizide oder Herbizidklassen tolerant sind.

Tabelle A1: Kultur: Mais

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Acetolactatsynthase (ALS)

AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-dohexandione

Isoxazole, wie isoxaflutol oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen -6-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Glutaminsynthetase Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Adenylsuccinat-Synthase Anthranilat-Synthase

Nitrilase 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosatoxidoreduktase Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX)

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 Dimboabiosynthese (Bx1 Gen) CMIII (Maispeptid -small basic maize seed peptide)

Com- SAFP (Zeamatin)

Hm1-Gen Chitinasen Glucanasen Hüllenproteine

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus und Xenorhabdus-Toxine

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Glufosinat, Bialaphos Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Glyphosat oder Sulfosat Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridinderivative, Phenopylat, Oxadiazole usw.

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe

Helminthosporium turcicum, Rhopalosi-phum maydis, Diplodia maydis, Ostrinia nubilalis, Lepidoptera sp. Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium, Altemaria, Sclerotina

Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium, Altemaria, Sclerotina, Rhizoctonia, Chae-tomium, Phycomyces Cochliobulus Pflanzenpathogene Pflanzenpathogene

Viren, wie Maiszwergmosaikvirus, Maiszwergbleichvirus

Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen 3-Hydroxysteroidoxidase

Peroxidase

Aminopeptidasseinhibitoren, z.B. Leucin-aminopeptidaseinhibitor (LAPI)

Limonensynthase Lectine

Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, Virgiferin, CPTI Ribosom-inaktivierendes Protein perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Westlicher Maiswurzelbohrer Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Rüsselkäfer, Westlicher Maiswurzelbohrer Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Ne- -8-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen matoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Mais 5C9-Polypeptid Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer Tabelle A2: Kultur Weizen Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe Imidazollnone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- (HPPD) achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase Phosphinothricin

» · · · + · • · · · · • · · · · -9-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen O-Methyltransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsucdnat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese Adenylsuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese Nitrilase und Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat- Glyphosat oder Sulfosat Synthase (EPSPS) Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl- Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 pyrazole, Pyridinderivate, Phenopyiat, Oxadiazole usw. Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl- Antifungizides Polypeptid AlyAFP hamstoffe Pflanzenpathogene, z.B. Septoria und Glucoseoxidase Fusarioum Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium, Pyrrolnitrlnsynthesegene Septoria Pflanzenpathogene z.B. Fusarium, Sep- toria Serin/Threoninkinasen Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium, Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hy- Septoria und andere Krankheiten Pflanzenpathogene z.B. Fusarium, Sep- persensitive response eliciting polypepti- toria und andere Krankheiten de) Systemic acquires resistance (SAR)- Virale, bakterielle, füngale, nematodale Gene Pathogene Chitinase Pfianzenpathogene Glucanase Pflanzenpathogene

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Töxine Viren, wie BYDV und MSMV Viren, wie BYDV und MSMV Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, 3-Hydroxysteroidoxidase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Peroxidase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor Lectine Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, Virgiferin, CPTI Ribosom-inaktivierendes Protein Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, z.B. Ostrinia nubilalis, Heliothis zea, Heerwürmer, z.B. Spodoptera frugi-perda, Westlicher Maiswurzelbohrer, Se-samia sp., Erdraupe, Asiatischer Maisbohrer, Rüsselkäfer

Tabelle A3: Kultur Gerste

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide ·· • ♦ • ♦ • ·

• · ·#· ···· ·· ·· «· • · · · · • » ··· • · ♦ · • · · · ···· ···· «· -11 -

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase

Glutaminsynthetase

Adenylsuccinat-Lyase (ADSL)

Adenylsuccinat-Synthase

Anthranilat-Synthase

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 Antifungales Polypeptid AlyAFP Glucoseoxidase Pyrrolnitrin-Synthese-Gene Serin/Threonin-Kinasen Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hy-

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione

Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen

Glufosinat, Bialaphos

Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese

Inhibitoren der Adenylsuccinatsynthese

Inhibitoren der Synthese und Catabolis- mus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Glyphosat oder Sulfosat Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivative, Phenopylat, Oxadiazole usw.

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe

Pflanzenpathogene, z.B. Septoria und Fusarium

Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium, Septoria

Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium, Septoria und andere Krankheiten Pflanzenpathogene, z.B. Fusarium,

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen persensitive response eliciting polypepti-de) Systemic acquires resistance (SAR)-Gene Septoria und andere Krankheiten Virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene Chitinasen Pflanzenpathogene Glucanasen Pflanzenpathogene Doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine Viren, wie BYDV und MSMV Viren, wie BYDV und MSMV Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, 3- Hydroxysteroidoxidase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Peroxidase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor Lectine Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, Virgiferin, CPTI Ribosom-inaktivierendes Protein Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, Coleoptera, Diptera, Nematoden, Blattläuse

Tabelle A4: Kultur: Reis

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kuiturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria- -13- ··· • < * · « « < • ···· ···· Μ«· φφ

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase

Glutaminsynthetase

Adenylsuccinat-Lyase (ADSL)

Adenylsuccinat-Synthase

Anthranilat-Synthase

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1

Antifungales Polypeptid AlyAFP Glucoseoxidase Pyrrolnitrinsynthesegene Serln/Threonin-Kinasen Phenylalaninammoniaklyase (PAL)

Kulturphänotyp / Toleranz gegen zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione

Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen

Glufosinat, Bialaphos

Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese

Inhibitoren der Adenylsucdnat-Synthese

Inhibitoren der Tryptophan-Synthese und

Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Glyphosat oder Sulfosat Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw.

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe Pflanzenpathogene Pflanzenpathogene Pflanzenpathogene Pflanzenpathogene Pflanzenpathogene, z.B. Bakterielle Blattfäule (bacterial leaf blight) und Rice Blast (Pilzpathogen), induzierbare

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hypersensitive response eliciting polypepti-de)

Systemic acquires resistance (SAR)-

Gene

Chitinasen

Glucanasen doppelsträngige Ribonuciease Hüllproteine

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine 3- Hydroxysteroidoxidase

Peroxidase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Pflanzenpathogene, z.B. Bakterielle Blattfäule (bacterial leaf blight) und Rice Blast (Pilzpathogen)

Pflanzenpathogene virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene

Pflanzenpathogene Viren, wie BYDV und MSMV Viren, wie BYDV und MSMV Lepidoptera, z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper)

Lepidoptera, z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper)

Lepidoptera z.B. Stengelbohrerkäfer

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Aminopeptidaseinhibitoren z.B. Leucin-aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Proteaseinhibitoren,

Ribosom-inaktivierendes Protein HMG-CoA-Reduktase • · • · • · • · -15- ·· Μ ·· ·· * · · · · · · • · · ··· • · · · · • · · · « ···♦ ···· ···· «·

Kulturphänotyp / Toleranz gegen (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper) Lepidoptera z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper) Lepidoptera z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper) Lepidoptera z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper) Lepidoptera z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper) Lepidoptera z.B. Stengelbohrerkäfer (stemborer), Coleoptera, z.B. Reiswasserkäfer (rice water weevil), Diptera, Reiszikaden, z.B. Braune Reiszikade (brown rice hopper)

Tabelle A5: Kultur: Soja

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactat-Synthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimldyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- (HPPD) achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase Phosphinothricin O-Methyltransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese Adenylsuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenyisuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus Nitrilase 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosat oder Suifosat Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Suifosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw. Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl- Selektion hamstoffe Antifungales Polypeptid AlyAFP bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) ·· • · • · ·· -17- ·· ·· ·· ·· • · · · · · · • ♦ · ··· • ···· ···· ··«· Φ·

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen . Oxalatoxidase bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) Glucoseoxidase bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) Pyrrolnitrinsynthesegene bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) Serin/Threonin-Kinasen bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) Phenylalaninammoniaklyase (PAL) bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) Phytoalexine Pflanzenpathogene, z.B. Bakterielle Blattfäule (bacterial leaf blight) und Rice Blast (Pilzpathogen) B-1,3-Glucanaseantisense Pfianzenpathogene, z.B. Bakterielle Blattfäule (bacterial leaf blight) und Rice Blast (Pilzpathogen) Rezeptorkinase bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot) Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hypersensitive response eliciting polypepti-de) Pflanzenpathogene Systemic acquires resistance (SAR)- virale, bakterielle, fungale, nematodale Gene Pathogene Chitinasen bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem ·· • ♦ ·· ·· » · · · * • · ·· • ···· ···· Mtt -18-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine 3-Hydroxysteroidoxidase Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Protease-Inhibitoren, z.B. Virgiferin Ribosom-inaktivierendes Protein HMG-CoA-Reduktase Bamase

Zysten bildende Nematoden-

Schlüpfstimulus

Antifeeding-Prinzipien

Kulturphänotyp / Toleranz gegen rot) bakterielle und fungale Pathogene, wie Fusarium, Sclerotinia, Kleekrebs (stem rot)

Viren, wie BPMV und SbMV Viren, wie BYDV und MSMV Lepidoptera, Coleoptera, Blattläuse

Lepidoptera, Coleoptera, Blattläuse Lepidoptera, Coleoptera, Blattläuse Lepidoptera, Coleoptera, Blattläuse

Lepidoptera, Coleoptera, Blattläuse

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden

Zysten bildende Nematoden

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden

Tabelle A6: Kultur: Kartoffel

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Acetolactatsynthase (ALS)

AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase

Glutaminsynthetase

Adenylsuccinat-Lyase (ADSL)

Adenylsuccinat-Synthase

Anthranilat-Synthase

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione

Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen

Glufosinat, Bialaphos

Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese

Inhibitoren der Adenylsucdnat-Synthese

Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe

Stoßstellenfäule (blackspot bruise) bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora ·· • · • · • · • · ·· • ·· ·· · · • · • · • · ··· ···· ·· ·· • · · · • · • · ♦ · ···· ···· ··· • · • · ·· -20-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Ribonudease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxaiatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-

Gene

Chitinasen

Bamase

Krankheitsresistenzreaktionsgen (Disea-

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia Bakterien, wie Corynebacterium sepedo-nicum, Erwinia carotovora bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia bakterielle und fungale Pathogene, wie

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen se resistance response gene 49)

Trans-Aldolaseantisense Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDa oder 60 kDa-Protein Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b Pseudoubiquitin Replicase

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine 3-Hydroxysteroidoxidase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Stilbensynthase

Lectine

Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin

Ribosom-inaktivierendes Protein HMG-CoA-Reduktase Zysten bildende Nematoden-

Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia Stoßstellenfäule (blackspots) bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia Viren, wie PLRV, PVY und TRV Viren, wie PLRV, PVY und TRV Viren, wie PLRV, PVY und TRV Viren, wie PLRV, PVY und TRV

Viren, wie PLRV, PVY und TRV Viren, wie PLRV, PVY und TRV Coleoptera, z.B. Kartoffelkäfer, Blattläuse

Coleoptera, z.B. Kartoffelkäfer, Blattläuse

Zysten bildende Nematoden

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Schlüpfstimulus Bamase Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden Antifeeding-Prinzipien Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden

Tabelle A7: Kultur Tomaten

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox-achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase Glutaminsynthetase . Adenylsucdnat-Lyase (ADSL) Adenylsuccinat-Synthase Anthranilat-Synthase Phosphinothricin Veränderte Ligninmengen Glufosinat, Bialaphos Inhibitoren der IMP und AMP-Synthese Inhibitoren der Adenylsucdnat-Synthese Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus Nitrilase 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosat oder Sulfosat -23-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw. Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Xenobiotia und Herbizide, wie Sulfonyl- Selektion hamstoffe Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Stoßstellenfäule (blackspot bruise) Metallothionein bakterielle und fungale Pathogene, wie Phytophtora Ribonudease Phytophtora, Verticillium, Rhizoctonia Antifungales Polypeptid AlyAFP bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. Oxalatoxidase bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollen- naßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. Glucoseoxidase bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollen- naßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek- -24- Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL)

Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knoilen-naßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. Braunfleckenkrankheit Altemaria solani -25- Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Alpha Hordothionin Systemin

Palygalacturonaseinhibitoren

Prf-Regulatorgen 12 Fusarium-Resistenzort Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense

Bakterien bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. Fusarium bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie -26- Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Rezeptorkinase

Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hypersensitive response elidting polypepti-de)

Systemic acquires resistance (SAR)- Gene Chitinasen

Bamase

Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), -27- -27-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDaoder 60 kDa-Protein

Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins)

Pseudoubiquitin

Replicase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw. bakterielle und fungale Pathogene, wie Bakterienbrand (bacterial speck), Schneeschimmel (Fusarium), Knollennaßfäule und Schwarzbeinigkeit (soft rot), Apfelmehltau (powdery mildew), Wurzelhalsfäule (crown rot), Braunflek-kenkrankheit (leaf mould) usw.

Viren, wie PLRV, PVY und ToMoV Viren, wie PLRV, PVY und ToMoV Viren, wie PLRV, PVY und ToMoV

Viren, wie PLRV, PVY und ToMoV TRV

Viren, wie PLRV, PVY und ToMoV Viren, wie PLRV, PVY und ToMoV Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse

Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse -28-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse Ribosom-inaktivierendes Protein Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse Stilbensynthase Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, z.B. Heliothis, Weiße Fliege (Mottenläuse), Blattläuse Zysten bildende Nematoden- Schlüpfstimulus Bamase Zysten bildende Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden Antifeeding-Prinzipien Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden

Tabelle A8: Kultur: Paprika

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox-achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase Phosphinothricin Veränderte Ligninmengen

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Nitrilase 5-Enolpyruvyi-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosatoxidoreduktase Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX)

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxalatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene, Fäule, Braunfleckenkrankheit usw. bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Polygalacturonaseinhibitoren Prf-Regulatorgen 12 Fusariumresistenzort Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-

Gene

Chitinasen

Bamase

Glucanasen doppeisträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDaoder 60 kDa-Protein Kemeinschlußproteine (Nudear indusion proteins) z.B. a oder b oder Nudeo-protein

Pseudoubiquitin

Replicase

Badllus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Ba-dlius cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine 3-Hydroxysteroidoxidase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leudn-aminopeptidaseinhibitor bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene Fusarium bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene

bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene Viren, wie CMV, TEV Viren, wie CMV, TEV Viren, wie CMV, TEV Viren, wie CMV, TEV

Viren, wie CMV, TEV Viren, wie CMV, TEV Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse

Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse

Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse -31 - >

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Lectine Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin Ribosom-inaktivierendes Protein Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse Stilbensynthase Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, Weiße Fliege (Mottenläu-se), Blattläuse Zysten bildende Nematoden- Schlüpfstimulus Bamase Zysten bildende Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden Antifeeding-Prinzipien Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden

Tabelle A9: Kultur: Pampelmusen

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-dohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Isoxazole, wie Isoxafltitol oder Isox-achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion • ··· • · · • · · -32-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Phosphinothricinacetyltransferase Phosphinothricin O-Methyltransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese Adenyisuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus Nitrilase 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosat oder Sulfosat Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw. Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl- Selektion hamstoffe Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxi- bakterielle und fungale Pathogene, wie daseantisense Botrytis und Apfelmehltau Metallothionein bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau Ribonuclease bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau Antifungales Polypeptid AlyAFP bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau Oxalatoxidase bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau Glucoseoxidase bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehitau Pyrrolinitrinsynthesegene bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfel mehltau -33- -33-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Polygalacturonase-Inhibitoren

Prf-Regulatorgen

Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-

Gene

Chitinase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfeimehltau -34-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Bamase Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau bakterielle und fungale Pathogene, wie Botrytis und Apfelmehltau Viren Hüllproteine Viren 17kDaoder 60 kDa-Protein Viren Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b oder Nucleo-protein Viren Pseudoubiquitin Viren Replicase Viren Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine Lepidoptera, Blattläuse 3- Hydroxysteroidoxidase Peroxidase Aminopeptidaseinhibitoren z.B. Leucin-aminopeptidaseinhibitor Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse Lectine Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse Ribosom-inaktivierendes Protein Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase Zysten bildende Nematoden-Schlüpfstimulus Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse, Krankheiten Lepidoptera, Blattläuse Zysten bildende Nematoden Bamase CBI Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden oder allgemeine Erkrankung Wurzelgallen-Nematoden -35-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Antifeeding-Prinzipien Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden oder an der Wurzel Zysten bildende Nematoden

Tabelle A10: Kultur Raps

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy- clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- (HPPD) achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase Phosphinothricin O-Methyltransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP und AMP-Synthese Adenylsuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus Nitrilase 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosat oder Sulfosat Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl- pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw.

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein

Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxalatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Polygalacturonase-Inhibitoren

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Prf-Regulatorgen

Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-

Gene

Chitinasen

Barnase

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDaoder 60 kDa-Protein Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b Pseudoubiquitin Replicase

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxine

Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia bakterielle und fungale Pathogene, wie Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia, Nematoden bakterielle und fungale Pathogene, wie

Cylindrosporium, Phoma, Sclerotinia

Viren

Lepidoptera, Blattläuse -38-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen 3-Hydroxysteroidoxidase Peroxidase Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse Aminopeptidase-Inhibitoren z.B. Leucinaminopeptidaseinhibitor Lectine Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTI Ribosom-inaktivierendes Protein Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, Blattläuse, Krankheiten Lepidoptera, Blattläuse Zysten bildende Nematoden- Schlüpfstimulus Bamase Zysten bildende Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden CBI Wurzelgallen-Nematoden Antifeeding-Prinzipien induziert am Nahrungsaufnahmeort der Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden

Tabelle A11: Kultur: Kohlgemüse (Weißkohl, Rosenkohl, Brokkoli usw.)

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox-achlortol, Trione, wie Mesotrion oder • · · · · · ··· ··· · · ··· ···· · ··· ·· ··· ···· ···· ···· ·· -39-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Phosphinothricinacetyltransferase Sulcotrion Phosphinothricin O-Methyitransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP und AMP-Synthese Adenylsuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese Nitrilase und Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat- Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat Synthase (EPSPS) Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl- Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw. Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl- Selektion hamstoffe Polyphenoloxidase oder Polyphe- bakterielle und fühgale Pathogene noloxidaseantisense Metallothionein bakterielle und fungale Pathogene Ribonuclease bakterielle und fungale Pathogene Antifungales Polypeptid AlyAFP bakterielle und fungale Pathogene Oxalatoxidase bakterielle und fungale Pathogene. Glucoseoxidase bakterielle und fungale Pathogene Pyrroiinitrinsynthesegene bakterielle und fungale Pathogene SerinyThreonin-Kinasen bakterielle und fungale Pathogene Cecropin B bakterielle und fungale Pathogene Phenylalaninammoniaklyase (PAL) bakterielle und fungale Pathogene Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 bakterielle und fungale Pathogene Osmotin bakterielle und fungale Pathogene • · · · · · ··· • fl · · · · · ···· · ♦ · · ·· ··· ♦··· ···· ♦··· ·· -40-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Alpha Hordothionin bakterielle und fungale Pathogene Systemin bakterielle und fungale Pathogene Polygalacturonase-Inhibitoren bakterielle und fungale Pathogene Prf-Regulatorgen bakterielle und fungale Pathogene Phytoalexine bakterielle und fungale Pathogene B-1,3-Glucanaseantisense bakterielle und fungale Pathogene Rezeptorkinase bakterielle und fungale Pathogene Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hy- bakterielle und fungale Pathogene persensitive response eliciting polypepti- de) Systemic acquires resistance (SAR)- virale, bakterielle, fungale, nematodale Gene Pathogene Chitinasen bakterielle und fungale Pathogene Bamase bakterielle und fungale Pathogene Glucanasen bakterielle und fungale Pathogene doppelsträngige Ribonuclease Viren Hüllproteine Viren 17kDaoder 60 kDa-Protein Viren Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion Viren proteins) z.B. a oder b oder Nukleo- protein Pseudoubiquitin Viren Replicase Viren Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Ba- Lepidoptera, Blattläuse cillus cereus-Toxine, Photorabdus, und Xenorhabdus-Toxine 3- Hydroxysteroidoxidase Lepidoptera, Blattläuse Peroxidase Lepidoptera, Blattläuse Aminopeptidase-Inhibitoren z.B. Leucin- Lepidoptera, Blattläuse aminopeptidaseinhibitor Lectine Lepidoptera, Blattläuse • · • • • • ··· • · • • • 9 • • · • • • • • ·· • 99 9999 9999 ···· 99 -41 -

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTI

Ribosom-inaktivierendes Protein

Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase

Zysten bildende Nematoden-

Schlüpfstimulus

Bamase

CBI

Antifeeding-Prinzipien induziert am Nahrungsaufnahmeort der Nematoden

Kulturphänotyp / Toleranz gegen Lepidoptera, Blattläuse

Lepidoptera, Blattläuse Lepidoptera, Blattläuse, Krankheiten Lepidoptera, Blattläuse Zysten bildende Nematoden

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden

Wurzelgallen-Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden

Tabelle A12: Kultur: Kernobst z.B. Äpfel, Birnen usw.

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Acetolactatsynthase (ALS)

AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase Glutaminsynthetase Adenylsuccinat-Lyase (ADSL)

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione

Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen

Glufosinat, Bialaphos

Inhibitoren der IMP und AMP-Synthese • · · · · · ··· • · t · · ··· • · · · ι «·· ·· ··· ···· ···· ···· ··

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Adenylsuccinat-Synthase

Anthranilat-Synthase

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein

Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxalatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B -42-

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Glyphosat oder Sulfosat Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazoie usw.

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe bakterielle und fungale Pathogene, wie . Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene* wie Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand -43-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Phenylalaninammoniaklyase (PAL) bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Osmotin bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Alpha Hördothionin bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Systemin bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Polygalacturonase-Inhibitoren bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Prf-Regulatorgen bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Phytoalexine bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand B-1,3-Glucanaseantisense bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Rezeptorkinase bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hypersensitive response eliciting polypepti-de) Systemic acquires resistance (SAR)-Gene bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene Lytisches Protein bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Lysozym bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand Chitinasen bakterielle und fungale Pathogene, wie Apfelschorf oder Feuerbrand # · · · · ···· • · · · · ·«· ♦ · · * · ··· ·· ··· ···· ···· ···· ·· -44-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Bamase

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDa oder 60 kDa-Protein Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b oder Nukleo-protein

Pseudoubiquitin

Replicase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin-

Aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTI

Ribosom-inaktivierendes Protein Stilbensynthase Η M G-CoA-Red u ktase Zysten bildende Nematoden-Schlüpfstimulus Bamase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle und fungale Pathogene, wie

Apfelschorf oder Feuerbrand bakterielle und fungale Pathogene, wie

Apfelschorf oder Feuerbrand

Viren

Lepidoptera, Blattläuse, Milben

Lepidoptera, Blattläuse, Milben Lepidoptera, Blattläuse, Milben Lepidoptera, Blattläuse, Milben

Lepidoptera, Blattläuse, Milben Lepidoptera, Blattläuse, Milben

Lepidoptera, Blattläuse, Milben Lepidoptera, Blattläuse, Erkrankungen, Milben

Lepidoptera, Blattläuse, Milben Zysten bildende Nematoden

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes)

• · · · · · ··· • · · ♦ · · « · * · · · · 9 · · ·· ··· ···· ···· ···· ·· -45-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen CBI Antifeeding-Prinzipien induziert am Nah-rungsaufnahmeort der Nematoden Wurzelgallen-Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden

Tabelle A13: Kultur Melonen

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCbA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- (HPPD) achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase Phosphinothricin O-Methyltransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese Adenylsuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus Nitrilase 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosat oder Sulfosat Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, -46-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein

Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxalatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Kulturphänotyp / Toleranz gegen Oxadiazoie usw.

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtöra ·· ·· ·« • · ♦ • # · • · · m ··· ···· ·♦·· ····

-47-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Polygalacturonase-Inhibitoren

Prf-Regulatorgen

Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-Gene

Lytisches Protein

Lysozym

Chitinasen

Bamase

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDaoder 60 küa-Protein

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora virale, bakterielle, fungale, nemätodale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora bakterielle oder fungale Pathogene, wie Phytophtora

Viren, wie CMV, PRSV, WMV2, SMV, ZYMV

Viren, wie CMV, PRSV, WMV2, SMV, ZYMV -48- -48-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Kerneinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b oder Nukleo-protein

Pseudoubiquitin

Replicase

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabdus-Toxlne 3-Hydroxysteroidoxidase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Proteaseinhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTI, Virgiferin Ribosom-inaktivierendes Protein

Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase

Zysten bildende Nematoden-

Schlüpfstimulus

Bamase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Viren, wie CMV, PRSV, WMV2, SMV, ZYMV

Lepidoptera, Blattläuse, Milben

Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Weiße Fliege (Mottenläuse),

Zysten bildende Nematoden (cyst ne-matodes)

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes) -49-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(len) Kulturphänotyp / Toleranz gegen CBI Antifeeding-Prinzipien induziert am Nah-rungsaufnahmeort der Nematoden Wurzelgallen- Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden

Tabelle A14: Kultur: Bananen

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Acetolactatsynthase (ALS)

AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase Glutaminsynthetase Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Adenylsuccinat-Synthase Anthranilat-Synthase .

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione

Isoxazole, wie Isoxaflutoi oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen

Glufosinat, Bialaphos

Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese

Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese

Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitriIe, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Glyphosat oder Sulfosat Diphenylether, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, V * · · · · t t · · · 9 ♦ · ··· ···» ···· 9991 -50-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Oxadiazole usw. Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl- Selektion hamstoffe Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxi- bakterielle oder fungale Pathogene daseantisense Metallothionein bakterielle oder fungale Pathogene Ribonuclease bakterielle oder fungale Pathogene Antifungales Polypeptid AlyAFP bakterielle oder fungale Pathogene Oxalatoxidase bakterielle oder fungale Pathogene Glucoseoxidase bakterielle oder fungale Pathogene Pyrrolinitrinsynthesegene bakterielle oder fungale Pathogene Serin/Threonin-Kinasen bakterielle oder fungale Pathogene Cecropin B bakterielle oder fungale Pathogene Phenylalaninammoniaklyase (PAL) bakterielle oder fungale Pathogene Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 bakterielle oder fungale Pathogene Osmotin bakterielle oder fungale Pathogene Alpha Hordothionin bakterielle oder fungale Pathogene Systemin bakterielle oder fungale Pathogene Polygalacturonase-Inhibitoren bakterielle oder fungale Pathogene Prf-Regulatorgen bakterielle oder fungale Pathogene Phytoalexine bakterielle oder fungale Pathogene B-1,3-Glucanaseantisense bakterielle oder fungale Pathogene Rezeptorkinase bakterielle oder fungale Pathogene Hypersensibilisierendes Polypeptid (Hy- bakterielle oder fungale Pathogene persensitive response eliciting polypepti-de) Systemic acquires resistance (SAR)- virale, bakterielle, fungale, nematodale Gene Pathogene Lytisches Protein bakterielle oder fungale Pathogene Lysozym bakterielle oder fungale Pathogene Chitinasen bakterielle oder fungale Pathogene -51 - -51 -

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Bamase

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDa oder 60 kDa-Protein

Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b oder Nukleo-protein

Pseudoubiquitin

Replicase

Bacillus thuringiensis-Toxine, VIP 3, Bacillus cereus-Toxine, Photorabdus- und Xenorhabd us-Toxine 3-Hydroxysteroidoxidase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Stilbensynthase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene Viren, wie „Banana bunchy top virus“ (BBTV)

Viren, wie „Banana bunchy top virus“ (BBTV)

Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden

Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nema- » 9 • · · · · 9 9 9 9 9 9 9 9 -52- Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen HMG-CoA-Reduktase toden Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden Zysten bildende Nematoden- Schlüpfstimulus Bamase Zysten bildende Nematoden (cyst ne-matodes) Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes) CBI Wurzelgallen- Nematoden Antifeeding-Prinzipien induziert am Nahrungsaufnahmeort der Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes)

Tabelle A15: Kultur: Baumwolle

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox-achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase Glutaminsynthetase Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Adenylsuccinat-Synthase Anthranilat-Synthase Phosphinothricin Veränderte Ligninmengen Glufosinat, Bialaphos Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Inhibitoren von Tryptophan-Synthese * · • · 9 9999 • f · · · · -53-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxalatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Polygalacturonase-Inhibitoren

Prf-Regulatorgen

Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Kulturphänotyp / Toleranz gegen und Catabolismus 3t5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl Glyphosat oder Sulfosat

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene bakterielle oder füngale Pathogene -54- -54-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Systemic acquires resistance (SAR)-Gene

Lytisches Protein

Lysozym

Chitinasen

Bamase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Protease-Inhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTl, Virgiferin Ribosom-inaktivierendes Protein

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle oder fungale Pathogene virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene Viren, wie „Wound tumor virus“ (WTV) Viren, wie „Wound tumor virus“ (WTV) Viren, wie „Wound tumor virus“ (WTV) Viren, wie „Wound tumor virus“ (WTV)

Viren, wie „Wound tumor virus“ (WTV) Viren, wie „Wound tumor virus“ (WTV) Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse),

Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nema- • · · · » · ··· • * » m ψ ··· v · ^ · ♦ · · * ·· ·#· *··· ·##· «.··# ·· -55- Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Stilbensynthase toden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), HMG-CoA-Reduktase Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Zysten bildende Nematoden- Schlüpfstimulus Bamase Zysten bildende Nematoden (cyst ne-matodes) Nematoden, z.B. Wurzelgallen- Nematoden und Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes) CBI Wurzelgallen-Nematoden Antifeeding-Prinzipien induziert am Nahrungsaufnahmeort der Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen- Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes)

Tabelle A16: Kultur: Zuckerrohr

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-dohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD) Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox-achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase Glutaminsynthetase Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Phosphinothridn Veränderte Ligninmengen Glufosinat, Bialaphos Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese • · · · ··♦ ·· • # · · * · • · · · · « ··· ···♦ ···· ···· ·· -56-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Adenylsucdnat-Synthase

Anthranilat-Synthase

Nitrilase 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimate Synthase (EPSPS) Glyphosatoxidoreduktase Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX)

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP

Oxalatoxidase

Glucoseoxidase

Pyrrolinitrinsynthesegene

Serin/Threonin-Kinasen

Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Polygalacturonase-Inhibitoren

Prf-Regulatorgen

Phytoalexine

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonylharnstoffe bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene -57- -57-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) B-1,3-Glucanaseantisense Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-Gene

Lytisches Protein Lysozym

Chitinasen

Bamase

Glucanasen doppeisträngige Ribonuciease Hüllproteine 17kDaoder 60 kDa-Protein Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b oder Nukleo-protein

Pseudoubiquitin

Replicase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leucin-

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle oder fungaie Pathogene bakterielle oder fungaie Pathogene bakterielle oder fungaie Pathogene virale, bakterielle, fungaie, nematodale Pathogene bakterielle oder fungaie Pathogene bakterielle oder fungaie Pathogene, z.B. Clavibacter

bakterielle oder fungaie Pathogene bakterielle oder fungaie Pathogene bakterielle oder fungaie Pathogene Viren, wie SCMV, SrMV Viren, wie SCMV, SrMV Viren, wie SCMV, SrMV Viren, wie SCMV, SrMV

Viren, wie SCMV, SrMV Viren, wie SCMV, SrMV Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nema- • · · ··· • · · · • · · · • ···· ···· ·· -58-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Proteaseinhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTI, Virgiferin

Ribosom-inaktivierendes Protein

Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase

Zysten bildende Nematoden-

Schlüpfstimulus

Bamase

CBI

Antifeeding-Prinzipien induziert am Nahrungsaufnahmeort der Nematoden

Kulturphänotyp / Toleranz gegen toden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, z.B. Mexikanischer Reiskäfer Zysten bildende Nematoden (cyst ne-matodes)

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes) Wurzelgallen-Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes)

Tabelle A17: Kultur: Sonnenblumen

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen Acetolactatsynthase (ALS) Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrimidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide AcetylCoA-Carboxylase (ACCase) Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- (HPPD) achlortol, Trione, wie Mesotrion oder Sulcotrion Phosphinothricinacetyltransferase Phosphinothricin O-Methyltransferase Veränderte Ligninmengen Glutaminsynthetase Glufosinat, Bialaphos Adenylsuccinat-Lyase (ADSL) Inhibitoren der IMP und AMP-Synthese Adenylsuccinat-Synthase Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese Anthranilat-Synthase Inhibitoren von Tryptophan-Synthese und Catabolismus Nitrilase 3,5-Dihalogen-4-hydroxybenzonitrile, wie Bromoxynil und loxinyl 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase (EPSPS) Glyphosat oder Sulfosat Glyphosatoxidoreduktase Glyphosat oder Sulfosat Protoporphyrinogenoxidase (PROTOX) Diphenyläther, cyclische Imide, Phenyl-pyrazole, Pyridin-Derivate, Phenopylat, Oxadiazole usw. Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl- Selektion hamstoffe Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense bakterielle oder fungale Pathogene Metallothionein bakterielle oder fungale Pathogene • · ···· u · · · · • · · · · -60-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toieranz gegen Ribonuclease bakterielle oder fungale Pathogene Antifungales Polypeptid AlyAFP bakterielle oder fungale Pathogene Oxalatoxidase bakterielle oder fungale Pathogene, z.B. Sclerotinia Glucoseoxidase bakterielle oder fungale Pathogene Pyrrolinitrinsynthesegene bakterielle oder fungale Pathogene Serin/Threonin-Kinasen bakterielle oder fungale Pathogene Cecropin B bakterielle oder fungale Pathogene Phenylalaninammoniaklyase (PAL) bakterielle oder fungale Pathogene Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 bakterielle oder fungale Pathogene Osmotin bakterielle oder fungale Pathogene Alpha Hordothionin bakterielle oder fungale Pathogene Systemin bakterielle oder fungale Pathogene Polygalacturonase-Inhibitoren bakterielle oder fungale Pathogene Prf-Regulatorgen bakterielle oder fungale Pathogene Phytoalexine bakterielle oder fungale Pathogene B-1,3-Glucanaseantisense bakterielle oder fungale Pathogene Rezeptorkinase bakterielle oder fungale Pathogene Hypersensibiiisierendes Polypeptid (Hypersensitive response eliciting polypepti-de) bakterielle oder fungale Pathogene Systemic acquires resistance (SAR)- virale, bakterielle, fungale, nematodale Gene Pathogene Lytisches Protein bakterielle oder fungale Pathogene Lysozym bakterielle oder fungale Pathogene Chitinasen bakterielle oder fungale Pathogene Bamase bakterielle oder fungale Pathogene Glucanasen bakterielle oder fungale Pathogene doppelsträngige Ribonuclease Viren, wie CMV, TMV Hüllproteine Viren, wie CMV, TMV 17kDaoder 60 kDa-Protein Viren, wie CMV, TMV

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Pseudoubiquitin

Replicase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren z.B. Leucin- aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase

Zysten bildende Nematoden-

Schlüpfstimulus

Bamase

CBI

Antifeeding-Prinzipien induziert am Nah-

Kulturphänotyp / Toleranz gegen Viren, wie CMV, TMV

Viren, wie CMV, TMV Viren, wie CMV, TMV Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Wejße Fliege (Mottenläuse), Käfer

Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Kater Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer Zysten bildende Nematoden (cyst ne-matodes)

Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden und Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes) Wurzelgallen-Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen- # • · · ··♦ • · · · · ··· -62-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen rungsaufnahmeort der Nematoden Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes)

Tabelle A18: Kultur: Zuckerrübe, Rote Beete

Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Acetolactatsynthase (ALS)

AcetylCoA-Carboxylase (ACCase)

Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase (HPPD)

Phosphinothricinacetyltransferase O-Methyltransferase

Glutaminsynthetase

Adenylsuccinat-Lyase (ADSL)

Adenylsucdnat-Synthase

Anthranilat-Synthase

Cytochrom P450 z.B. P450 SU1 oder

Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Tria-zolopyrlmidine, Pyrimidyloxybenzoate, Phtalide

Aryloxyphenoxyalkancarbonsäuren, Cy-clohexandione

Isoxazole, wie Isoxaflutol oder Isox- achlortol, Trione, wie Mesotrion oder

Sulcotrion

Phosphinothricin

Veränderte Ligninmengen

Glufosinat, Bialaphos

Inhibitoren der IMP- und AMP-Synthese

Inhibitoren der Adenylsuccinat-Synthese

Xenobiotica und Herbizide, wie Sulfonyl-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Selektion

Polyphenoloxidase oder Polyphenoloxidaseantisense Metallothionein Ribonuclease

Antifungales Polypeptid AlyAFP Oxalatoxidase

Glucoseoxidase Pyrrolinitrinsynthesegene Serin/Threonin-Kinasen Cecropin B

Phenylalaninammoniaklyase (PAL) Cf-Gen, z.B. Cf 9 Cf5 Cf4 Cf2 Osmotin

Alpha Hordothionin Systemin

Polygalacturonase-Inhibitoren

Prf-Regulatorgen

Phytoalexine B-1,3-Glucanaseantisense AX + WIN-Proteine

Rezeptorkinase

Systemic acquires resistance (SAR)-Gene

Lytisches Protein Lysozym

Kulturphänotyp / Toleranz gegen hamstoffe bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene, z.B. Sclerotinia bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene, wie Cercospora beticola bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene virale, bakterielle, fungale, nematodale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene -64- -64-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien)

Chitinasen

Bamase

Glucanasen doppelsträngige Ribonuclease Hüllproteine 17kDaoder 60 kDa-Protein Kemeinschlußproteine (Nuclear inclusion proteins) z.B. a oder b oder Nucleopro-tein

Pseudoubiquitin

Replicase

Peroxidase

Aminopeptidaseinhibitoren, z.B. Leudn-aminopeptidaseinhibitor

Lectine

Proteaseinhibitoren, z.B. Cystatin, Pata-tin, CPTI, Virgiferin

Ribosom-inaktivierendes Protein

Kulturphänotyp / Toleranz gegen bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene bakterielle oder fungale Pathogene

Viren, wie BNYW

Viren, wie BNYW Viren, wie BNYW

Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliegei Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Kä-

Wirkziel oder exprimierte(s) Prinzip(ien) Kulturphänotyp / Toleranz gegen

Stilbensynthase HMG-CoA-Reduktase

Zysten bildende Nematoden-

Schlüpfstimulus

Bamase

Rüben-Zysten bildende Nematodenresistenzort CBI

Antifeeding-Prinzipien induziert am Nahrungsaufnahmeort der Nematoden fer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Lepidoptera, Blattläuse, Milben, Nematoden, Weiße Fliege (Mottenläuse), Käfer, kleine Kohlfliege Zysten bildende Nematoden (cyst ne-matodes)

Zysten bildende Nematoden (cyst nematodes) v Wurzelgallen-Nematoden Nematoden, z.B. Wurzelgallen-Nematoden, an der Wurzel Zysten bildende Nematoden

Die vorstehend erwähnten tierischen Schädlinge, die durch das erfindungsgemässe Verfahren (A) bekämpft werden können, schließen beispielsweise Insekten, Vertreter der Ordnung Acarina und Vertreter der Klasse Nematoda ein; insbesondere aus der Ordnung Lepidoptera Adens spp., Adoxophyes spp., insbesondere Adoxophyes re-ticulana; Aegeria spp., Agrotis spp., insbesondere Agrotis spinifera; Alabama argillaceae, Amylois spp., Anticarsia gemmatalis, Archips spp., Argyrotaenia spp., Autographa spp., Busseola fusca, Cadra cautella, Carposina nipponensis, Chilo spp., Choristoneura spp., Cly-sia ambiguella, Cnaphalocrods spp., Cnephasia spp., Cochylis spp., Coleophora spp., Cro-ddolomia binotalis, Cryptophlebia leucotreta, Cydia spp., insbesondere Cydia pomonella; Diatraea spp., Diparopsis castanea, Earias spp., Ephestia spp., insbesondere E. Khüniella; Eucosma spp., Eupoedlia ambiguella, Euproctis spp., Euxoa spp., Gräpholita spp., Hedya nubiferana, Heliothis spp., insbesondere H. virescens und H. zea; Hellula undalis, Hyphan- tria cunea, Keiferia lycopersicella, Leucoptera scitella, Lithocollethis spp., Lobesiaspp., Ly-mantria spp., Lyonetia spp., Malacosoma spp., Mamestra brassicae, Manduca sexta, Oper-ophtera spp., Ostrinia nubilalis, Pammene spp., Pandemis spp., Panolis flammea, Pectino-phora spp., Phthorimaea operculella, Pieris rapae, Pieris spp., Pluteila xylostella, Prays spp., Scirpophaga spp., Sesamia spp., Sparganothis spp., Spodopteralittoralis, Synanthedon spp., Thaumetopoea spp., Tortrix spp., Trichoplusia ni und Yponomeuta spp.; aus der Ordnung Coleoptera, beispielsweise Agriotes spp., Anthonomus spp., Atomaria linearis, Chaetocnema tibialis, Cosmopolites spp., Curculio spp., Dermestes spp., Diabrotica spp., Epilachna spp., Eremnus spp., Leptinotarsa decemlineata, Lissorhoptrus spp., Melo-lontha spp., Oryzaephilus spp., Otiorhynchus spp., Phlyctinus spp., Popiilia spp., Psylliodes spp., Rhizopertha spp., Scarabeidae, Sitophilus spp., Sitotroga spp., Tenebrio spp., Triboli-um spp. und Trogoderma spp.; aus der Ordnung Orthoptera, beispielsweise Biatta spp., Blattella spp., Gryllotalpa spp., Leucophaea maderae, Locusta spp., Periplaneta spp. und Schistocerca spp.; aus der Ordnung Isoptera, beispielsweise Reticulitermes spp.; aus der Ordnung Psocoptera, beispielsweise Liposcelis spp.; aus der Ordnung Anoplura, beispielsweise Haematopinus spp., Linognathus spp., Pediculus spp., Pemphigus spp. und Phylloxera spp.; aus der Ordnung Mallophaga, beispielsweise Damalinea spp. und Trichodectes spp.; aus der Ordnung Thysanoptera, beispielsweise Frankliniella spp., Hercinothrips spp., Tae-niothrips spp., Thrips palmi, Thrips tabaci und Scirtothrips aurantii; aus der Ordnung Heteroptera, beispielsweise Cimex spp., Distantiella theobroma, Dysder-cus spp., Euchistus spp. Eurygaster spp. Leptocorisa spp., Nezara spp., Piesma spp., Rhodnius spp., Sahlbergella singularis, Scotinophara spp. und Triatoma spp.; aus der Ordnung Homoptera, beispielsweise Aleurothrixus floccosus, Aleyrodes brassicae, Aonidiella aurantii, Aphididae, Aphiscraccivora, A. fabae, A. gosypii; Aspidiotus spp., Bemisia tabaci, Ceroplaster spp., Chrysomphalus aonidium, Chrysomphalus dictyospermi, Coccus hesperidum, Empoasca spp., Eriosoma lanigerum, Erythroneura spp., Gascardia spp., Lao-delphax spp., Lecanium comi, Lepidosaphes spp., Macrosiphus spp., Myzus spp., insbeson- -67- -67-

dere M. persicae; Nephotettix spp., insbesondere N. cincticeps; Nilaparvata spp., insbesondere N. lugens; Paratoria spp., Pemphigus spp., Planococcus spp., Pseudaulacaspis spp., Pseudococcus spp., insbesondere P. Fragilis, P. citriculus und P. comstocki; Psylla spp., insbesondere P. pyri; Pulvinaria aethiopica, Quadraspidiotus spp., Rhopalosiphum spp., Saissetia spp., Scaphoideus spp., Schizaphis spp., Sitobion spp., Trialeurodes vapora-riorum, Trioza erytreae und Unaspis citri; aus der Ordnung Hymenoptera, beispielsweise Acromyrmex, Atta spp., Cephus spp., Diprion spp., Diprionidae, Gilpinia polytoma, Hoplocampa spp., Lasius spp., Monomorium pharaonis, Neodiprion spp., Solenopsis spp. und Vespa spp.; aus der Ordnung Diptera, beispielsweise Aedes spp., Antherigona soccata, Bibio hortulanus, Calliphora erythrocephala, Ceratitis spp., Chrysomyia spp., Culex spp., Cuterebra spp., Dacus spp., Drosophila melanogaster, Fannia spp., Gastrophilus spp., Glossina spp., Hypo-derma spp., Hyppobosca spp., Liriomyza spp., Lucilia spp., Melanagromyza spp., Musca spp., Oestrus spp., Orseolia spp., Oscinella frit, Pegomyia hyoscyami, Phorbia spp., Rha-goletis pomonella, Sciara spp., Stomoxys spp., Tabanus spp., Tannia spp. und Tipula spp.; aus der Ordnung Siphonaptera, beispielsweise Ceratophyllus spp. und Xenopsylla cheopis; aus der Ordnung Thysanura, beispielsweise Lepisma saccharina und aus der Ordnung Acarina, beispielsweise Acarus siro, Aceria sheldoni; Aculus spp., insbesondere A. schlechtendali; Amblyomma spp., Argas spp., Boophilus spp., Brevlpalpus spp., insbesondere B. califomicus und B. phoenicis; Bryobia praetiosa, Calipitrimerus spp., Cho-rioptes spp., Dermanyssus gallinae, Eotetranychus spp., insbesondere E. carpini und E. ori-entalis; Eriophyes spp., insbesondere E. vitis; Hyalomma spp., Ixodes spp., Olygonychus pratensis, Omithodoros spp., Panonychus spp., insbesondere P. ulmi und P. citri; Phyllo-coptruta spp., insbesondere P. oleivora; Polyphagotarsonemus spp., insbesondere P. latus; Psoroptes spp., Rhipicephaius spp., Rhizoglyphus spp., Sarcoptes spp., Tarsonemus spp. und Tetranychus spp., besonders T. urticae, T. cinnabarinus und T. Kanzawai;

Vertreter der Klasse Nematoda; (1) Nematoden, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus Wurzelgallen-Nematoden, Zysten bildende Nematoden sowie Stock- und Blattälchen; (2) Nematoden, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus Anguina spp.; Aphelenchoides spp.; Ditylenchus spp.; Globodera spp., beispielsweise Globodera rostochiensis; Heterodera spp., beispielsweise Heterodera avenae, Heterodera glydnes, Heterodera schachtii oder Heterodera trifolii; Longidorus spp.; Meloidogyne spp., beispielsweise Meloidogyne incognita oder Meloidogyne javanica; Pratylenchus, beispielsweise Pratylenchus neglectans oder Pratylenchus penetrans; Radopholus spp., beispielsweise Radopholus similis; Trichodorus spp.; Tylenchulus, beispielsweise Tylenchulus semipenetrans; und Xiphinema spp.; oder (3) Nematoden, ausgewählt aus der Gruppe, bestehend aus Heterodera spp., beispielsweise Heterodera glycines; und Meloidogyne spp., beispielsweise Meloidogyne incognita.

Mit Hilfe des Verfahrens gemäss der Erfindung (A) kann man insbesondere an transgenen Pflanzen, vor allem an Nutz- und Zierpflanzen in der Landwirtschaft, im Gartenbau und im Forst, oder an Teilen, wie Früchten, Blüten, Laubwerk, Stengeln, Knollen oder Wurzeln, solcher Pflanzen auftretende Schädlinge des erwähnten Typus bekämpfen, d.h. eindämmen oder vernichten, wobei zum Teil auch später zuwachsende Pfjanzenteile noch gegen diese Schädlinge geschützt werden.

Das Verfahren gemäss der Erfindung (A) kann mit Vorteil zur Schädlingsbekämpfung in Reis, Getreide, wie Mais oder Sorghum; in Obst, z.B. Kern-, Stein- und Beerenobst, wie Äpfeln, Birnen, Pflaumen, Pfirsichen, Mandeln, Kirschen oder Beeren, z.B. Erdbeeren, Himbeeren und Brombeeren; in Hülsenfrüchten, wie Bohnen, Linsen, Erbsen oder Soja; in Ölfrüchten, wie Raps, Senf, Mohn, Oliven, Sonnenblumen, Kokos, Rizinus, Kakao oder Erdnüssen; in Gurkengewächsen, wie Kürbissen, Gurken oder Melonen; in Fasergewächsen, wie Baumwolle, Flachs, Hanf oder Jute; in Zitrusfrüchten, wie Orangen, Zitronen, Pampelmusen oder Mandarinen; in Gemüse, wie Spinat, Kopfsalat, Spargel, Kohlarten, Möhren, Zwiebeln, Tomaten, Kartoffeln, Rüben oder Paprika; in Lorbeergewächsen, wie Avocado, Cinnamonium oder Kampfer; oder in Tabak, Nüssen, Kaffee, Eierfrüchten, Zuckerrohr, Tee, Pfeffer, Weinreben, Hopfen, Bananengewächsen, Naturkautschukgewächsen oder Zierpflanzen, vor allem in Mais, Reis, Getreide, Soja, Tomaten, Baumwolle, Kartoffeln, Zuckerrüben, Reis und Senf, insbesondere in Baumwolle, Reis, Soja, Kartoffeln und Mais eingesetzt werden.

Es hat sich gezeigt dass das Verfahren gemäss der Erfindung (A) auf dem Gebiet der Schädlingsbekämpfung bereits bei niedrigen Anwendungskonzentrationen des pestiziden • · · · • · · * · ··· • · · · · ··· -69-

Mittels präventiv und/oder kurativ wertvoll ist und dass damit ein sehr günstiges biozides Spektrum erreicht wird. Bei günstiger Warmblüter-, Fisch- und Pflanzenverträglichkeit des eingesetzten Mittels kann das erfindungsgemässe Verfahren, je nach Art der transgenen Kulturpflanze, die vor Schädlingsbefall geschützt werden soll, gegen alle oder einzelne Entwicklungsstadien von normal sensiblen, aber auch von resistenten, tierischen Schädlingen, wie Insekten und Vertretern der Ordnung Acarina, eingesetzt werden. Der insektizide und/oder akarizide Effekt des erfindungsgemässen Verfahrens kann sich dabei direkt, d.h. in einer Abtötung der Schädlinge, welche unmittelbar oder erst nach einiger Zeit, beispielsweise bei einer Häutung, oder indirekt, z.B. in einer verminderten Eiablage und/oder Schlupfra-φ te, zeigen, wobei die gute Wirkung einer Abtötungsrate (Mortalität) von mindestens 40 bis 50% entspricht.

Bei den Schädlingsbekämpfungsmitteln, die an sich bekannt sind, handelt es sich je nach angestrebten Zielen und gegebenen Verhältnissen um emulgierbare Konzentrate, Suspensionskonzentrate, direkt versprüh- oder verdünnbare Lösungen, streichfähige Pasten, ver- i dünnte Emulsionen, Spritzpulver, lösliche Pulver, dispergierbare Pulver, benetzbare Pulver, Stäubemittel, Granulate oder Verkapselungen in polymeren Stoffen, welche eine Macrolid-verbindung enthalten.

Die Wirkstoffe werden in diesen Mitteln zusammen mit mindestens einem der in der Formulierungstechnik üblichen Hilfsstoffe, wie Streckmitteln, z.B. Lösungsmitteln oder festen Trägerstoffen, oder wie oberflächenaktiven Verbindungen (Tensiden), eingesetzt.

A w Als Formulierungshilfsstoffe dienen beispielsweise feste Trägerstoffe, Lösungsmittel, Stabili satoren, “slow release”-Hilfsstoffe, Farbstoffe und gegebenenfalls oberflächenaktive Stoffe (Tenside). Ais Träger- und Hilfsstoffe kommen hierbei alle bei Pflanzenschutzmitteln, insbesondere bei Schneckenbekämpfüngsmitteln, üblicherweise verwendeten Stoffe in Frage. Als Hilfsstoffe, wie Lösungsmittel, feste Trägerstoffe, oberflächenaktive Verbindungen, nichtionische Tenside, kationische Tenside, anionische Tenside und weitere Hilfsstoffe in den erfin-dungsgemäss eingesetzten Mitteln, kommen beispielsweise die gleichen in Frage, wie sie in EP-A-736 252 beschrieben sind.

Diese Mittel zur Bekämpfung von Schädlingen können beispielsweise als benetzbare Pulver, Stäube, Granulate, Lösungen, emulgierbare Konzentrate, Emulsionen, Suspensionskonzen- • · · · · • · · · · • · · · · ♦ ·· ···· ··#· ···· -70-trate oder Aerosole formuliert werden. Die Mittel sind beispielsweise von der gleichen Art wie sie in EP-A-736 252 beschrieben sind.

Die Wirkung der Mittel im Rahmen der Erfindung (A), welche eine Macrolidverbindung enthalten, lässt sich durch Zusatz von anderen insektiziden, akariziden und/oder fungiziden Wirkstoffen wesentlich verbreitern und an gegebene Umstände anpassen. Als Wirkstoff-Zusätze kommen dabei z.B. Vertreter der folgenden Wirkstoffklassen in Betracht: Organische Phosphorverbindungen, Nitrophenole und Derivate, Formamidine, Harnstoffe, Carba-mate, Pyrethroide, chlorierte Kohlenwasserstoffe; besonders bevorzugte Mischungspartner sind etwa Thiamethoxam, Pymethrozine, Fenoxycarb, Imidacloprid, Ti-435, Fipronil, Pyri-proxyfen, Emamectin, Diazinon oder Diafenthiuron.

Die Mittel gemäß der Erfindung (A) enthalten in der Regel 0,1 bis 99%, insbesondere 0,1 bis 95% einer Macrolidverbindung und 1 bis 99,9%, insbesondere 5 bis 99,9%, - mindestens -eines festen oder flüssigen Hilfestoffes, wobei in der Regel 0 bis 25%, insbesondere 0,1 bis 20%, der Mittel Tenside sein können (% bedeutet jeweils Gewichtsprozent). Während als Handelsware eher konzentrierte Mittel bevorzugt werden, verwendet der Endverbraucher in der Regel verdünnte Mittel, die wesentlich geringere Wirkstoffkonzentrationen aufweisen.

Die Mittel gemäß der Erfindung (A) können auch weitere feste oder flüssige Hilfsstoffe, wie Stabilisatoren, z.B. gegebenenfalls epoxidierte Pflanzenöle (z.B. epoxidiertes Kokosnussöl, Rapsöl oder Sojaöl), Entschäumer, z.B. Silikonöl, Konservierungsmittel, Viskositätsregulato-. ren, Bindemittel und/oder Haftmittel, sowie Düngemittel oder andere Wirkstoffe zur Erzielung spezieller Effekte, z.B. Bakterizide, Fungizide, Nematizide, Molluskizide oder Herbizide, enthalten.

Die Mittel gemäß der Erfindung (A) werden in bekannter Weise hergestellt, z.B. vor der Mischung mit dem/den Hilfsstoff(en) durch Vermahlen, Sieben und/oder Pressen des Wirkstoffes, z.B. auf eine bestimmte Komgrösse, sowie durch inniges Vermischen und/oder Vermahlen des Wirkstoffes mit dem (den) Hilfsstoff(en).

Das erfindungsgemässe Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen des erwähnten Typus wird je nach angestrebten Zielen und gegebenen Verhältnissen in einer dem Fachmann an sich bekannten Weise durchgeführt, das heisst durch Versprühen, Benetzen, Vernebeln, Bestäuben, Bestreichen, Beizen, Streuen oder Giessen des Mittels. Typische Anwendungskonzentrationen liegen dabei zwischen 0,1 und 1000 ppm, bevorzugt zwischen 0,1 und 500 ppm, Wirkstoff. Die Aufwandmenge kann innerhalb weiter Bereiche variieren und hängt von der Beschaffenheit des Bodens, der Art der Anwendung (Blattapplikation; Saatbeizung; Anwendung in der Saatfurche), der transgenen Kulturpflanze, dem zu bekämpfenden Schädling, den jeweils vorherrschenden klimatischen Verhältnissen und anderen durch Anwendungsart, Anwendungszeitpunkt und Zielkultur bestimmten Faktoren ab. Die Aufwandmengen pro Hektar betragen im allgemeinen 1 bis 2000 g Macrolidverbindung pro Hektar, insbesondere 10 bis 1000 g/ha, vorzugsweise 10 bis 500 g/ha, besonders bevorzugt 10 bis 200 g/ha.

Ein bevorzugtes Anwendungsverfahren im Rahmen der Erfindung (A) auf dem Gebiet des Pflanzenschutzes ist das Aufbringen auf das Blattwerk der Pflanzen (Blattapplikation), wobei sich Appiikationsfrequenz und Aufwandmenge auf den Befallsdruck des jeweiligen Schädlings ausrichten lassen. Der Wirkstoff kann aber auch durch das Wurzelwerk in die Pflanzen gelangen (systemische Wirkung), indem man den Standort der Pflanzen mit einem flüssigen Mittel tränkt oder den Wirkstoff in fester Form in den Standort der Pflanzen, z.B. in den Boden, einbringt, z.B. in Form von Granulat (Bodenapplikation). Bei Wasserreiskulturen kann man solche Granulate dem Überfluteten Reisfeld zudosieren.

Die Mittel gemäss der Erfindung (A) eignen sich auch für den Schutz von Vermehrungsgut transgener Pflanzen, z.B. Saatgut, wie Früchten, Knollen oder Körnern, oder Pflanzenstecklingen, vor tierischen Schädlingen, besonders Insekten und Vertretern der Ordnung Acarina. Das Vermehrungsgut kann dabei vor dem Ausbringen mit dem Mittel behandelt, Saatgut z.B. vor der Aussaat gebeizt, werden. Der Wirkstoff kann auch auf Samenkörner aufgebracht werden (Coating), indem man die Körner entweder in einem flüssigen Mittel tränkt oder sie mit einem festen Mittel beschichtet. Das Mittel kann auch beim Ausbringen des Vermeh-rungsguts auf den Ort der Einsaat, z.B. bei der Aussaat in die Saatfurche, appliziert werden. Diese Behandlungsverfahren für pflanzliches Vermehrungsgut und das so behandelte pflanzliche Vermehrungsgut sind weitere Gegenstände der Erfindung.

Beispiele von Formulierungen von Macrolidverbindungen, welche im erfindungsgemässen Verfahren eingesetzt werden können, also Lösungen, Granulate, Stäubemittel, Spritzpulver, Emulsions-Konzentrate, Umhüllungs-Granulate und Suspensions-Konzentrate, sind von der Art, wie sie etwa in EP-A-580 553, Beispiele F1 bis F10, aufgeführt sind.

Tabelle B

Die nachstehenden Abkürzungen werden in der Tabelle verwendet:

Wirkprinzip der transgenen Pflanze: AP

Photorhabdus luminescens: PL

Xenorhabdus nematophilus: XN

Proteinaseinhibitoren: Plnh.

Pflanzenlectine: Plec Agglutinine: Aggl.

3-Hydroxysteroidoxidase: HO Cholesterinoxidase: CO Chitinase: CH Glucanase: GL Stilbensynthase SS

Tabelle B: / AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.l CrylA(a) Adoxophyes spp. B.12 CrylA(a) Heliothis spp. B.2 CrylA(a) Agrotis spp. B.13 CrylA(a) Hellula undalis B.3 CrylA(a) Alabama argilla- B.14 CrylA(a) Keiferia lycoper- ceae sicella B.4 CrylA(a) Anticarsia gemma- B.15 CrylA(a) Leucoptera scitella talis B.16 CrylA(a) Lithocollethis spp. B.5 CrylA(a) Chilo spp. B.17 CrylA(a) Lobesia botrana B.6 CrylA(a) Clysia ambiguella B.18 CrylA(a) Ostrinia nubilalis B.7 CrylA(a) Crocidolomia bino- B.19 CrylA(a) Pandemis spp. talis B.20 CrylA(a) Pectinophora gos- B.8 CrylA(a) Cydia spp. syp. B.9 CrylA(a) Diparopsis casta- B.21 CrylA(a) Phyllocnistis citrella nea B.22 CrylA(a) Pieris spp. B.10 CrylA(a) Earias spp. B.23 CrylA(a) Plutella xylostella B.ll CrylA(a) Ephestia spp. B.24 CrylA(a) Scirpophaga spp. »·· ···· ♦♦··

-73- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.25 CrylA(a) Sesamia spp. B.54 CrylA(a) Phorbia spp. B.26 CrylA(a) Sparganothis spp. B.55 CrylA(a) Franklinielia spp. B.27 CrylA(a) Spodoptera spp. B.56 CrylA(a) Thrips spp. B.28 CrylA(a) Tortrix spp. B.57 CrylA(a) Scirtothrips aurantii B.29 CrylA(a) Trichoplusia ni B.58 CrylA(a) Aceria spp. B.30 CrylA(a) Agriotes spp. B.59 CrylA(a) Aculus spp. B.31 CrylA(a) Anthonomus gran- B.60 CrylA(a) Brevipalpus spp. dis B.61 CrylA(a) Panonychus spp. B.32 CrylA(a) Curcuiio spp. B.62 CrylA(a) Phyllocoptruta spp. B.33 CrylA(a) Diabrotica balteata B.63 CrylA(a) Tetranychus spp. B.34 CrylA(a) Leptinotarsa spp. B.64 CrylA(a) Heterodera spp. B.35 CrylA(a) Lissorhoptrus spp. B.65 CrylA(a) Meloidogyne spp. B.36 CrylA(a) Otiorhynchus spp. B.66 CrylA(b) Adoxophyes spp. B.37 CrylA(a) Aleurothrixus spp. B.67 CrylA(b) Agrotis spp. B.38 CrylA(a) Aieyrodes spp. B.68 CrylA(b) Alabama argilla- B.39 CrylA(a) Aonidiella spp. ceae B.40 CrylA(a) Aphididae spp. B.69 CrylA(b) Anticarsia gemma- B.41 CrylA(a) Aphis spp. talis B.42 CrylA(a) Bemisia tabaci B.70 CrylA(b) Chrilo spp. B.43 CrylA(a) Empoasca spp. B.71 CrylA(b) Clysia ambiguella B.44 CrylA(a) Mycus spp. B.72 CrylA(b) Crocidolomia bino- B.45 CiylA(a) Nephotettix spp. talis B.46 CrylA(a) Nilaparvata spp. B.73 CrylA(b) Cydla spp. B.47 CrylA(a) Pseudococcus spp. B.74 CrylA(b) Diparopsis casta- B.48 CrylA(a) Psylla spp. nea B.49 CrylA(a) Quadraspidiotus B.75 CrylA(b) Earias spp. spp. B.76 CrylA(b) Ephestla spp. B.30 CrylA(a) Schizaphis spp. B.77 CrylA(b) Heliothis spp. B.51 CrylA(a) Trialeurodes spp. B.78 CrylA(b) Hellula undalis B.52 CrylA(a) Lyriomyza spp. B.79 CrylA(b) Keiferia lycoper- B.53 CrylA(a) Oscinella spp. sicella -74- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.80 CrylA(b) Leucoptera scitella B.109 CrylA(b) Mycus spp. B.81 CrylA(b) Lithocollethis spp. B.110 CrylA(b) Nephotettix spp. B.82 CrylA(b) Lobesia botrana B.lll CrylA(b) Nilaparvata spp. B.83 CrylA(b) Ostrinia nubilalis B.112 CrylA(b) Pseudococcus spp. B.84 CrylA(b) Pandemis spp. B.113 CrylA(b) Psylla spp. B.8S CrylA(b) Pectinophora gos- B.114 CrylA(b) Quadraspidiotus syp. spp. B.86 CrylA(b) Phyllocnistis citrella B.115 CrylA(b) Schizaphis spp. B.87 CrylA(b) Pieris spp. B.116 CrylA(b) Trialeurodes spp. B.88 CrylA(b) Plutella xylostella B.117 CrylA(b) Lyriomyza spp. B.89 CrylA(b) Scirpophaga spp. B.118 CrylA(b) Oscinella spp. B.90 CrylA(b) Sesamia spp. B.119 CrylA(b) Phorbia spp. B.91 CrylA(b) Sparganothis spp. B.120 CrylA(b) Frankliniella spp. B.92 CrylA(b) Spodoptera spp. B.121 CiylA(b) Thrips spp. B.93 CrylA(b) Tortrix spp. B.122 CrylA(b) Scirtothrips aurantii B.94 CrylA(b) Trichoplusia ni B.123 CrylA(b) Aceria spp. B.95 CrylA(b) Agriotes spp. B.124 CrylA(b) Acuius spp. B.96 CrylA(b) Anthonomus gran- B.125 CrylA(b) Brevipalpus spp. dis B.126 CrylA(b) Panonychus spp. B.97 CrylA(b) Curculio spp. B.127 CrylA(b) Phyllocoptruta spp. B.98 CrylA(b) Diabrotica balteata B.128 CrylA(b) Tetranychus spp. B.99 CrylA(b) Leptinotarsa spp. B.129 CrylA(b) Heterodera spp. B.100 CrylA(b) Lissorhoptrus spp. B.130 CrylA(b) Meloidogyne spp. B.101 CrylA(b) Otiorhynchus spp. B.131 CrylA(c) Adoxophyes spp. B.102 CrylA(b) Aleurothrixus spp. B.132 CrylA(c) Agrotis spp. B.103 CrylA(b) Aleyrodes spp. B.133 CrylA(c) Alabama argilla- B.104 CrylA(b) Aonidiella spp. ceae B.105 CrylA(b) Aphididae spp. B.134 CrylA(c) Anticarsia gemma- B.106 CrylA(b) Aphis spp. talis B.107 CrylA(b) Bemisia tabaci B.135 CrylA(c) Chilo spp. B.108 CrylA(b) Empoasca spp. B.136 CrylA(c) Clysia ambigueiia

-75- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.137 CrylA(c) Crocidolomia bino- B.163 CrylA(c) Diabrotica balteata talis B.164 CrylA(c) Leptinotarsa spp. B.138 CrylA(c) Cydia spp. B.165 CrylA(c) Lissorhoptrus spp. B.139 CrylA(c) Diparopsis casta- B.166 CrylA(c) Otiorhynchus spp. nea B.167 CrylA(c) Aleurothrixus spp. B.140 CrylA(c) Earias spp. B.168 CrylA(c) Aleyrodes spp. B.141 CrylA(c) Ephestia spp. B.169 CrylA(c) Aonidiella spp. B.142 CrylA(c) Heliothis spp. B.170 CrylA(c) Aphididae spp. B.143 CrylA(c) Hellula undalis B.171 CrylA(c) Aphis spp. B.144 CrylA(c) Keiferia lycoper- B.172 CrylA(c) Bemisia tabaci sicella B.173 CrylA(c) Empoasca spp. B.145 CrylA(c) Leucoptera scitella B.174 CrylA(c) Mycus spp. B.146 CrylA(c) Lithocollethis spp. B.175 CrylA(c) Nephotettix spp. B.147 CrylA(c) Lobesia botrana B.176 CrylA(c) Nilaparvata spp. B.148 CrylA(c) Ostrinia nubilalis B.177 CrylA(c) Pseudococcus spp. B.149 CrylA(c) Pandemis spp. B.178 CrylA(c) Psylla spp. B.150 CrylA(c) Pectinophora gos- B.179 CrylA(c) Quadraspidiotus sypiella. spp. B.151 CrylA(c) Phyllocnistis citrella B.180 CrylA(c) Schizaphis spp. B.152 CrylA(c) Pieris spp. B.181 CrylA(c) Trialeurodes spp. B.153 CrylA(c) Plutella xylostella B.182 CrylA(c) Lyriomyza spp. B.154 CrylA(c) Scirpophaga spp. B.183 CrylA(c) Oscinella spp. B.155 CrylA(c) Sesamia spp. B.184 CrylA(c) Phorbia spp. B.156 CrylA(c) Sparganothis spp. B.185 CrylA(c) Frankliniella spp. B.157 CrylA(c) Spodoptera spp. B.186 CrylA(c) Thrips spp. B.158 CrylA(c) Tortrix spp. B.187 CrylA(c) Scirtothrips aurantii B.159 CrylA(c) Trichoplusia ni B.188 CrylA(c) Aceria spp. B.160 CrylA(c) Agriotes spp. B.189 CrylA(c) Aculus spp. B.161 CrylA(c) Anthonomus gran- B.190 CrylA(c) Brevipalpus spp. dis B.191 CrylA(c) Panonychus spp. B.162 CrylA(c) Curculio spp. B.192 CrylA(c) Phyllocoptruta spp.

AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.193 CrylA(c) Tetranychus spp. B.218 CryllA Plutella xylostella B.194 CrylA(c) Heterodera spp. B.219 CryllA Scirpophaga spp. B.195 CrylA(c) Meloidogyne spp. B.220 CryllA Sesamia spp. B.196 CryllA Adoxophyes spp. B.221 CryllA Sparganothis spp. B.197 CryllA Agrotis spp. B.222 CryllA Spodoptera spp. B.198 CryllA Alabama argilla- B.223 CryllA Tortrix spp. ceae B.224 CryllA Trichoplusia ni B.199 CryllA Anticarsia gemma- B.225 CryllA Agriotes spp. talis B.226 CryllA Anthonomus gran- B.200 CryllA Chile spp. dis B.201 CryllA Clysia ambiguella B.227 CryllA Curculio spp. B.202 CryllA Crocidolomia bino- B.228 CryllA Diabrotica balteata talis B.229 CryllA Leptinotarsa spp. B.203 CryllA Cydia spp. B.230 CryllA Lissorhoptrus spp. B.204 CryllA Diparopsis casta- B.231 CryllA Otiorhynchus spp. nea B.232 CryllA Aleurothrixus spp. B.205 CryllA Earias spp. B.233 CryllA Aleyrodes spp. B.206 CryllA Ephestia spp. B.234 CryllA Aonidiella spp. B.207 CryllA Heliothis spp. B.235 CryllA Aphididae spp. B.208 CryllA Hellula undalis B.236 CryllA Aphis spp. B.209 CryllA Keiferia lycoper- B.237 CryllA Bemisia tabaci sicella B.238 CryllA Empoasca spp. B.210 CryllA Leucoptera scitella B.239 CryllA Mycus spp. B.211 CryllA Lithocollethis spp. B.240 CryllA Nephotettix spp. B.212 CryllA Lobesia botrana B.241 CryllA Nilaparvata spp. B.213 CryllA Ostrinia nubilalis B.242 CryllA Pseudococcus spp. B.214 CryllA Pandemis spp. B.243 CryllA Psylla spp. B.215 CryllA Pectinophora gos- B.244 CryllA Quadraspidiotus syp. spp. B.216 CryllA Phyllocnistis citrella B.245 CryllA Schizaphis spp. B.217 CryllA Pieris spp. B.246 CryllA Trialeurodes spp. -77- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.247 CryllA Lyriomyza spp. B.274 CrylllA Keiferia lycoper- B.248 CryllA Oscinella spp. sicella B.249 CryllA Phorbia spp. B.275 CrylllA Leucoptera scitella B.250 CryllA Frankliniella spp. B.276 CrylllA Lithocollethis spp. B.251 CryllA Thrips spp. B.277 CrylllA Lobesia botrana B.252 CryllA Scirtothrips aurantii B.278 CrylllA Ostrinia nubilalis B.253 CryllA Aceria spp. B.279 CrylllA Pandemis spp. B.254 CryllA Aculus spp. B.280 CrylllA Pectinophora gos- B.255 CryllA Brevipalpus spp. syp. B.256 CryllA Panonychus spp. B.281 CrylllA Phyllocnistis dtrella B.257 CryllA Phyllocoptruta spp. B.282 CrylllA Pieris spp. B.258 CryllA Tetranychus spp. B.283 CrylllA Plutella xylosteila B.259 CryllA Heterodera spp. B.284 CrylllA Scirpophaga spp. B.260 CryllA Meloidogyne spp. B.285 CrylllA Sesamia spp. B.261 CrylllA Adoxophyes spp. B.286 CrylllA Sparganothis spp. B.262 CrylllA Agrotis spp. B.287 CrylllA Spodoptera spp. B.263 CrylllA Alabama argilla- B.288 CrylllA Tortrix spp. ceae B.289 CrylllA Trichoplusia ni B.264 CrylllA Anticarsia gemma- B.290 CrylllA Agriotes spp. talis B.291 CrylllA Anthonomus gran- B.265 CrylllA Chilo spp. dis B.266 CrylllA · Clysia ambiguella B.292 CrylllA Curculio spp. B.267 CrylllA Crocidolomia bino- B.293 CrylllA Diabrotica balteata talis B.294 CrylllA Leptinotarsa spp. B.268 CrylllA Cydia spp. B.295 CrylllA Lissorhoptrus spp. B.269 CrylllA Diparopsis casta- B.296 CrylllA Otiorhynchus spp. nea B.297 CrylllA Aleurothrixus spp. B.270 CrylllA Earias spp. B.298 CrylllA Aleyrodes spp. B.271 CrylllA Ephestja spp. B.299 CrylllA Aonidiella spp. B.272 CrylllA Heliothis spp. B.300 CrylllA Aphididae spp. B.273 CrylllA Hellula undalis B.301 CrylllA Aphls spp.

-78- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.302 CrylllA Bemisia tabaci B.330 CrylllB2 Chilo spp. B.303 CrylllA Empoasca spp. B.331 CrylllB2 Clysia ambiguella B.304 CrylllA Mycus spp. B.332 CrylllB2 Crocidolomia bino- B.305 CrylllA Nephotettix spp. talis B.306 CrylllA Nilaparvata spp. B.333 CrylllB2 Cydia spp. B.307 CrylllA Pseudococcus spp. B.334 CrylllB2 Diparopsis casta- B.308 CrylllA Psylla spp. nea B.309 CrylllA Quadraspidlotus B.335 CrylllB2 Earias spp. spp. B.336 CrylllB2 Ephestia spp. B.310 CrylllA Schizaphis spp. B.337 CrylllB2 Heliothis spp. B.311 CrylllA Trialeurodes spp. B.338 CrylllB2 Hellula undalis B.312 CrylllA Lyriomyza spp. B.339 CrylllB2 Keiferia lycoper- B.313 CrylllA Oscinella spp. sicella B.314 CrylllA Phorbia spp. B.340 CrylllB2 Leucoptera scitella B.315 CrylllA Frankliniella spp. B.341 CrylllB2 Lithocollethis spp. B.316 CrylllA Thrips spp. B.342 CrylllB2 Lobesia botrana B.317 CrylllA Scirtothrips aurantii B.343 CrylllB2 Ostrinia nubiialis B.318 CrylllA Aceria spp. B.344 CrylllB2 Pandemis spp. B.319 CrylllA Aculus spp. B.345 CrylllB2 Pectlnophora gos- B.320 CrylllA Brevipalpus spp. syp. B.321 CrylllA Panonychus spp. B.346 CrylllB2 Phyllocnistis citrella B.322 CrylllA Phyllocoptruta spp. B.347 CrylllB2 Pieris spp. B.323 CrylllA Tetranychus spp. B.348 CrylllB2 Plutella xylostella B.324 CrylllA Heterodera spp. B.349 CrylllB2 Scirpophaga spp. B.325 CrylllA Meloidogyne spp. B.350 CrylllB2 Sesamia spp. B.326 CrylllB2 Adoxophyes spp. B.351 CrylllB2 Sparganothis spp. B.327 CrylllB2 Agrotis spp. B.352 CrylllB2 Spodoptera spp. B.328 CrylllB2 Alabama argilla- B.353 CrylllB2 Tortrix spp. ceae B.354 CrylllB2 Trichoplusia ni B.329 CrylllB2 Anticarsia gemma- B.355 CrylllB2 Agriotes spp. falls B.356 CrylllB2 Anthonomus gran-

-79- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von dis B.386 CrylllB2 Panonychus spp. B.357 CrylllB2 Curculio spp. B.387 CrylllB2 Phyllocoptruta spp. B.358 CrylllB2 Diabrotica balteata B.388 CrylllB2 Tetranychus spp. B.359 CrylllB2 Leptinotarsa spp. B.389 Cryll IB2 Heterodera spp. B.360 CrylllB2 Lissorhoptrus spp. B.390 CrylllB2 Meloidogyne spp. B.361 CrylllB2 Otiorhynchus spp. B.391 CytA Adoxophyes spp. B.362 CrylllB2 Aleurothrixus spp. B.392 CytA Agrotis spp. B.363 CrylllB2 Aleyrodes spp. B.393 CytA Alabama argilla- B.364 CrylllB2 Aonidiella spp. ceae B.365 CrylllB2 Aphididae spp. B.394 CytA Anticarsia gemma- B.366 CrylllB2 Aphis spp. talis B.367 CrylllB2 Bemisia tabaci B.395 CytA Chilo spp. B.368 CrylllB2 Empoasca spp. B.396 CytA Clysia ambiguella B.369 Cryll IB2 Mycus spp. B.397 CytA Crocidolomia bino- B.370 CrylllB2 Nephotettix spp. talis B.371 Cryll IB2 Nilaparvata spp. B.398 CytA Cydia spp. B.372 Cryll IB2 Pseudococcus spp. B.399 CytA Diparopsis casta- B.373 Cryll IB2 Psylla spp. nea B.374 CrylllB2 Quadraspidiotus B.400 CytA Earias spp. spp. B.401 CytA Ephestia spp. B.375 Cryll IB2 Schizaphis spp. B.402 CytA Heliothis spp. B.376 Cryll IB2 Trialeurodes spp. B.403 CytA Hellula undalis B.377 Cryll IB2 Lyriomyza spp. B.404 CytA Keiferia lycoper- B.378 Cryll IB2 Oscinella spp. sicella B.379 CrylllB2 Phorbia spp. B.405 CytA Leucoptera scitella B.380 Cryll IB2 Frankliniella spp. B.406 CytA Lithocollethis spp. B.381 CrylllB2 Thrips spp. B.407 CytA Lobesia botrana B.382 Cryll IB2 Sclrtothrips aurantii B.408 CytA Ostrinia nubilalis B.383 CrylllB2 Aceria spp. B.409 CytA Pandemis spp. B.384 Cryll IB2 Aculus spp. B.410 CytA Pectinophora gos- B.385 CrylllB2 Brevipalpus spp. syp.

• · · · · · ··· • · · · · ··· • · « · · · · · ·· ··· ···« ··♦· ·»·« «t

-80- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.411 CytA Phyllocnistis citrella B.440 CytA Schizaphis spp. B.412 CytA Pieris spp. B.441 CytA Trialeurodes spp. B.413 CytA Plutella xylostella B.442 CytA Lyriomyza spp. B.414 CytA Scirpophaga spp. B.443 CytA Oscinella spp. B.415 CytA Sesamia spp. B.444 CytA Phorbia spp. B.416 CytA Sparganothis spp. B.445 CytA Frankliniella spp. B.417 CytA Spodoptera spp. B.446 CytA Thrips spp. B.418 CytA Tortrix spp. B.447 CytA Scirtothrips aurantii B.419 CytA Trichoplusia ni B.448 CytA Aceria spp. B.420 CytA Agriotes spp. B.449 CytA Aculus spp. B.421 CytA Anthonomus gran- B.450 CytA Brevipalpus spp. dis B.451 CytA Panonychus spp. B.422 CytA Curculio spp. B.452 CytA Phyllocoptruta spp. B.423 CytA Diabrotica balteata B.453 CytA Tetranychus spp. B.424 CytA Leptinotarsa spp. B.454 CytA Heterodera spp. B.425 CytA Lissorhoptrus spp. B.455 CytA Meloidogyne spp. B.426 CytA Otiorhynchus spp. B.456 VIP3 Adoxophyes spp. B.427 CytA Aleurothrixus spp. B.457 VIP3 Agrotis spp. B.428 CytA Aleyrodes spp. B.4S8 VIP3 Alabama argilla- B.429 CytA Aonidiella spp. ceae B.430 CytA Aphididae spp. B.459 VIP3 Anticarsia gemma- B.431 CytA Aphis spp. talis B.432 CytA Bemisia tabaci B.460 VIP3 Chilo spp. B.433 CytA Empoasca spp. B.461 VIP3 Clysia ambiguella B.434 CytA Mycus spp. B.462 VIP3 Crocidolomia bino- B.435 CytA Nephotettix spp. talis B.436 CytA Nilaparvata spp. B.463 VIP3 Cydia spp. B.437 CytA Pseudococcus spp. B.464 VIP3 Oiparopsis casta- B.438 CytA Psylla spp. nea B.439 CytA Quadraspidiotus B.465 VIP3 Earias spp. spp. B.466 VIP3 Ephestia spp. -81 -

AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.467 VIP3 Heliothis spp. B.495 VIP3 Aphididae spp. B.468 VIP3 Hellula undalis B.496 VIP3 Aphis spp. B.469 VIP3 Keiferia lycoper- B.497 VIP3 Bemisia tabaci sicella B.498 VIP3 Empoasca spp. B.470 VIP3 Leucoptera scitella B.499 VIP3 Mycus spp. B.471 VIP3 Lithocollethis spp. B.500 VIP3 Nephotettix spp. B.472 VIP3 Lobesia botrana B.501 VIP3 Nilaparvata spp. B.473 VIP3 Ostrinia nubilalis B.502 VIP3 Pseudococcus spp. B.474 VIP3 Pandemis spp. B.503 VIP3 Psylla spp. B.475 VIP3 Pectinophora gos- B.504 VIP3 Quadraspidiotus syp. spp. B.476 VIP3 Phyllocnistis citrella B.505 VIP3 Schizaphis spp. B.477 VIP3 Pieris spp. B.506 VIP3 Trialeurodes spp. B.478 VIP3 Plutella xylostella B.507 VIP3 Lyriomyza spp. B.479 VIP3 Scirpophaga spp. B.508 VIP3 Oscinella spp. B.480 VIP3 Sesamia spp. B.509 VIP3 Phorbia spp. B.481 VIP3 Sparganothis spp. B 510 VIP3 Frankliniella spp. B.482 VIP3 Spodoptera spp. B.511 VIP3 Thrips spp. B.483 VIP3 Tortrix spp. B.512 VIP3 Scirtothrips aurantii B.484 VIP3 Trichoplusia ni B.513 VIP3 Aceria spp. B.485 VIP3 Agriotes spp. B.514 VIP3 Aculus spp. B.486 VIP3 Anthonomus gran- B.515 VIP3 Brevipalpus spp. dis B.516 VIP3 Panonychus spp. B.487 VIP3 Curculio spp. B.517 VIP3 Phyllocoptruta spp. B.488 VIP3 Diabrotica baiteata B.518 VIP3 Tetranychus spp. B.489 VIP3 Leptinotarsa spp. B.519 VIP3 Heterodera spp. B.490 VIP3 Lissorhoptrus spp. B.520 VIP3 Meloidogyne spp. B.491 VIP3 Otiorhynchus spp. B.521 GL Adoxophyes spp. B.492 VIP3 Aleurothrixus spp. B.522 GL Agrotis spp. B.493 VIP3 Aieyrodes spp. B.523 GL Alabama argilla- B.494 VIP3 Aonidiella spp. ceae -82- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.524 GL Anticarsia gemma- B.550 GL Agriotes spp. talis B.551 GL Anthonomus gran- B.525 GL Chilo spp. dis B.526 GL Clysia ambigueila B.552 GL Curculio spp. B.527 GL Crocidolomia bino- B.553 GL Diabrotica balteata talis B.554 GL Leptinotarsa spp. B.528 GL Cydia spp. B.555 GL Lissorhoptrus spp. B.529 GL Diparopsis casta- B.556 GL Otiorhynchus spp. nea B.557 GL Aieurothrixus spp. B.530 GL Earias spp. B.558 GL Aleyrodes spp. B.531 GL Ephestia spp. B.559 GL Aonidiella spp. B.532 GL Heliothis spp. B.560 GL Aphididae spp. B.533 GL Hellula undalis B.561 GL Aphis spp. B.534 GL Keiferia lycoper- B.562 GC Bemisia tabaci sicella B.563 GL Empoasca spp. B.535 GL Leucoptera scitella B.564 GL Mycus spp. B.536 GL Lithocollethis spp. B.565 GL Nephotettix spp. B.537 GL Lobesia botrana B.566 GL Nilaparvata spp. B.538 GL Ostrinia nubilalis B.567 GL Pseudococcus spp. B.539 GL Pandemis spp. B.568 GL Psylla spp. B.540 GL Pectinophora gos- B.569 GL Quadraspidiotus syp. spp. B.541 GL Phyllocnistis citrella B.570 GL Schizaphis spp. B.542 GL Pieris spp. B.571 GL Trialeurodes spp. B.543 GL Plutella xylostella B.572 GL Lyriomyza spp. B.544 GL Scirpophaga spp. B.573 GL Osdnella spp. B.545 GL Sesamia spp. B.574 GL Phorbia spp. B.546 GL Sparganothis spp. B.575 GL Frankliniella spp. B.547 GL Spodoptera spp. B.576 GL Thrips spp. B.548 GL Tortrix spp. B.577 GL Scirtothrips aurantii B.549 GL Trichoplusia ni B.578 GL Aceria spp.

AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.579 GL Aculus spp. B.605 PL Pectinophora gos- B.580 GL Brevipalpus spp. syp. B.581 GL Panonychus spp. B.606 PL Phyllocnistis citrella B.582 GL Phyllocoptruta spp. B.607 PL Pieris spp. B.583 GL Tetranychus spp. B.608 PL Plutella xylostella B.584 GL Heterodera spp. B.609 PL Scirpophaga spp. B.585 GL Meioidogyne spp. B.610 PL Sesamia spp. B.586 PL Adoxophyes spp. B.611 PL Sparganothis spp. B.587 PL Agrotis spp. B.612 PL Spodoptera spp. B.588 PL Alabama argilla- B.613 PL Tortrix spp. ceae B.614 PL Trichoplusia ni B.589 PL Anticarsia gemma- B.615 PL Agriotes spp. talis B.616 PL Anthonomus gran- B.590 PL Chilo spp. N dis B.591 PL Clysia ambiguella B.617 PL Curculio spp. B.592 PL Crocidolomia bino- B.618 PL Diabrotica balteata talis B.619 PL Leptinotarsa spp. B.593 PL Cydia spp. B.620 PL Lissorhoptrus spp. B.594 PL Diparopsls casta- B.621 PL Otiorhynchus spp. nea B.622 PL Aleurothrixus spp. B.595 PL Earias spp. B.623 PL Aleyrodes spp. B.596 PL Ephestia spp. B.624 PL Aonidiella spp. B.597 PL Heliothis spp. B.625 PL Aphididae spp. B.598 PL Hellula undalis B.626 PL Aphis spp. B.599 PL Keiferia lycoper- B.627 PL Bemisia tabaci sicella B.628 PL Empoasca spp. B.600 PL Leucoptera scitella B.629 PL Mycus spp. B.601 PL Lithocollethis spp. B.630 PL Nephotettix spp. B.602 PL Lobesla botrana B.631 PL Nilaparvata spp. B.603 PL Ostrinia nubilalis B.632 PL Pseudococcus spp. B.604 PL Pandemis spp. B.633 PL Psyila spp. ·· ·· ·· t· • · · · · · · • · ♦ ··· ♦ · · · · • · · · · -84- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.634 . PL Quadraspidiotus B.660 XN Earias spp. spp. B.661 XN Ephestia spp. B.635 PL Schizaphis spp. B.662 XN Heliothis spp. B.636 PL Trialeurodes spp. B.663 XN Hellula undalis B.637 PL Lyriomyza spp. B.664 XN Keiferia lycoper- B.638 PL Oscinella spp. sicella B.639 PL Phorbiaspp. B.665 XN Leucoptera scitella B.640 PL Frankliniella spp. B.666 XN Lithocollethis spp. B.641 PL Thrips spp. B.667 XN Lobesia botrana B.642 PL Scirtothrips aurantii B.668 XN Ostrinia nubilalis B.643 PL Aceria spp. B.669 XN Pandemis spp. B.644 PL Aculus spp. B.670 XN Pectinophora gos- B.645 PL Brevipalpus spp. syp. B.646 PL Panonychus spp. B.671 XNx Phyllocnistis citrella B.647 PL Phyllocoptruta spp. B.672 XN Pieris spp. B.648 PL Tetranychus spp. B.673 XN Plutella xylostella B.649 PL Heterodera spp. B.674 XN Scirpophaga spp. B.650 PL Meloidogyne spp. B.675 XN Sesamia spp. B.651 XN Adoxophyes spp. B.676 XN Sparganothis spp. B.652 XN Agrotis spp. B.677 XN Spodoptera spp. B.653 XN Alabama argilia- B.678 XN Tortrix spp. ceae B.679 XN Trichoplusia ni B.654 XN Anticarsia gemma- B.680 XN Agriotes spp. talis B.681 XN Anthonomus gran- B.655 XN Chilo spp. dis B.656 XN Clysia ambiguella B.682 XN Curculio spp. B.657 XN Crocidolomia bino- B.683 XN Diabrotica balteata talis B.684 XN Leptinotarsa spp. B.658 XN Cydia spp. B.685 XN Lissorhoptrus spp. B.659 XN Diparopsis casta- B.686 XN Otiorhynchus spp. nea B.687 XN Aleurothrixus spp. AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.688 XN Aleyrodes spp. B.718 Plnh. Alabama argilla- B.689 XN Aonidiella spp. ceae B.690 XN Aphididae spp. B.719 Plnh. Anticarsia gemma- B.691 XN Aphis spp. talis B.692 XN Bemisia tabaci B.720 Plnh. Chilo spp. B.693 XN Empoasca spp. B.721 Plnh. Clysia ambiguella B.694 XN Mycus spp. B.722 Plnh. Crocidolomia bino- B.695 XN Nephotettix spp. talis B.696 XN Nilaparvata spp. B.723 Plnh. Cydia spp. B.697 XN Pseudococcus spp. B.724 Plnh. Diparopsis casta- B.698 XN Psylla spp. nea B.699 XN Quadraspidiotus B.725 Plnh. Earias spp. spp. B.726 Plnh. Ephestia spp. B.700 XN Schizaphis spp. B.727 Plnh. Heliothis spp. B.701 XN Trialeurodes spp. B.728 Plnh. Hellula undalis B.702 XN Lyriomyza spp. B.729 Plnh. Keiferia lycoper- B.703 XN Oscinella spp. sicella B.704 XN Phorbia spp. B.730 Plnh. Leucoptera scitella B.705 XN Frankliniella spp. B.731 Plnh. Lithocollethis spp. B.706 XN Thrips spp. B.732 Plnh. Lobesia botrana B.707 XN Scirtothrips aurantii B.733 Plnh. Ostrinia nubilalis B.708 XN Aceria spp. B.734 Plnh. Pandemis spp. B.709 XN Aculus spp. B.735 Plnh. Pectinophora gos- B.710 XN Brevipalpus spp. syp. B.711 XN Panonychus spp. B.736 Plnh. Phyllocnistis citrella B.712 XN Phyllocoptruta spp. B.737 Plnh. Pieris spp. B.713 XN Tetranychus spp. B.738 Plnh. Plutella xylostella B.714 XN Heterodera spp. B.739 Plnh. Scirpophaga spp. B.715 XN Meloidogyne spp. B.740 Plnh. Sesamia spp. B.716 Plnh. Adoxophyes spp. B.741 Plnh. Sparganothis spp. B.717 Plnh. Agrotis spp. B.742 Plnh. Spodoptera spp. ·· ·· »« ·· • · · · · · · • · ···· -86- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.743 Plnh. Tortrix spp. B.772 Plnh. Scirtothrips aurantii B.744 Plnh. Trichoplusia ni B.773 Plnh. Aceria spp. B.745 Plnh. Agriotes spp. B.774 Plnh. Aculus spp. B.746 Plnh. Anthonomus gran- B.775 Plnh. Brevipalpus spp. dis B.776 Plnh. Panonychus spp. B.747 Plnh. Curculio spp. B.777 Plnh. Phyllocoptruta spp. B.748 Plnh. Diabrotica balteata B.778 Plnh. Tetranychus spp. B.749 Plnh. Leptinotarsa spp. B.779 Plnh. Heterodera spp. B.750 Plnh. Lissorhoptrus spp. B.780 Plnh. Meloidogyne spp. B.751 Plnh. Otiorhynchus spp. B.781 Plec Adoxophyes spp. B.752 Plnh. Aleurothrixus spp. B.782 Plec Agrotis spp. B.753 Plnh. Aleyrodes spp. B.783 Plec Alabama argilla- B.754 Plnh. Aonidiella spp. ceae B.755 Plnh. Aphididae spp. B.784 Plec Anticarsia gemma- B.756 Plnh. Aphis spp. talis B.757 Plnh. Bemisia tabaci B.785 Plec Chilo spp. B.758 Plnh. Empoasca spp. B.786 Plec Clysia ambiguella B.759 Plnh. Mycus spp. B.787 Plec Crocidolomia bino- B.760 Plnh. Nephotettix spp. talis B.761 Plnh. Nilaparvata spp. B.788 Plec Cydia spp. B.762 Plnh. Pseudococcus spp. B.789 Plec Diparopsis casta- B.763 Plnh. Psylla spp. nea B.764 Plnh. Quadraspidiotus B.790 Plec Earias spp. spp. B.791 Plec Ephestia spp. B.765 Plnh. Schizaphis spp. B.792 Plec Heliothis spp. B.766 Plnh. Trialeurodes spp. B.793 Plec Hellula undalis B.767 Plnh. Lyriomyza spp. B.794 Plec Keiferia lycoper- B.768 Plnh. Oscinella spp. sicella B.769 Plnh. Phorbia spp. B.795 Plec Leucoptera scitella B.770 Plnh. Frankliniella spp. B.796 Plec Lithocollethis spp. B.771 Plnh. Thrips spp. B.797 Plec Lobesia botrana ·· • · • · ·· ·· ·· • · · · · • · ·· • ·· • · -87- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.798 Plec Ostrinia nubilalis B.827 Plec Pseudococcus spp. B.799 Plec Pandemis spp. B.828 Plec Psylla spp. B.800 Plec Pectinophora gos- B.829 Plec Quadraspidiotus syp. spp. B.801 Plec Phyllocnistis citrella B.830 Plec Schizaphis spp. B.802 Plec Pieris spp. B.831 Plec Trialeurodes spp. B.803 Plec Plutella xylostella B.832 Plec Lyriomyza spp. B.804 Plec Scirpophaga spp. B.833 Plec Oscinella spp. B.805 Plec Sesamia spp. B.834 Plec Phorbia spp. B.806 Plec Sparganothis spp. B.835 Plec Frankliniella spp. B.807 Plec Spodoptera spp. B.836 Plec Thrips spp. B.808 Plec Tortrix spp. B.837 Plec Scirtothrips aurantii B.809 Plec Trichoplusia ni B.838 Plec Aceria spp. B.810 Plec Agriotes spp. B.839 Plec Aculus spp. B.811 Plec Anthonomus gran- B.840 Plec Brevipalpus spp. dis B.841 Plec Panonychus spp. B.812 Plec Curculio spp. B.842 Plec Phyllocoptruta spp. B.813 Plec Diabrotlca balteata B.843 Plec Tetranychus spp. B.814 Plec Leptinotarsa spp. B.844 Plec Heterodera spp. B.815 Plec Lissorhoptrus spp. B.845 Plec Meloidogyne spp. B.816 Plec Otiorhynchus spp. B.846 Aggl. Adoxophyes spp. B.817 Plec Aleurothrixus spp. B.847 Aggl. Agrotis spp. B.818 Plec AJeyrodes spp. B.848 Aggl. Alabama argilla- B.819 Plec Aonidiella spp. ceae B.820 Plec Aphididae spp. B.849 Aggl. Anticarsia gemma- B.821 Plec Aphis spp. talis B.822 Plec Bemisia tabaci B.850 Aggl. Chilo spp. B.823 Plec Empoasca spp. B.851 Aggl. Clysia ambiguella B.824 Plec Mycus spp. B.852 Aggl. Crocidolomia bino- B.825 Plec Nephotettix spp. talis B.826 Plec Nilaparvata spp. B.853 Aggl. Cydia spp. ·· M ·· • • · · • · • • · • ·· • · • • • · · · -88- AP Bekämpfung von AP B.854 Aggl. Diparopsis casta- B.881 Aggl. nea B.882 Aggl. B.855 Aggl. Earias spp. B.883 Aggl. B.856 Aggl. Ephestia spp. B.884 Aggl. B.857 Aggl. Heliothis spp. B.88S Aggl. B.858 Aggl. Hellula undalis B.886 Aggl. B.859 Aggl. Keiferia lycoper- B.887 Aggl. sicella B.888 Aggl. BJ£60l Aggl. Leucoptera scitella B.889 Aggl. B.861 Aggl. Lithocollethis spp. B.890 Aggl. B.862 Aggl. Lobesia botrana B.891 Aggl. B.863 Aggl. Ostrinia nubilalis B.892 Aggl. B.864 Aggl. Pandemis spp. B.893 Aggl. ΒΊ865 Aggl. Pectinophora gos- B.894 Aggl. syp. B.866 Aggl. Phyllocnistis citrella B.895 Aggl. B.867 Aggl. Pieris spp. B.896 Aggl. B.868 Aggl. Plutella xylostella B.897 Aggl. B.869 Aggl. Scirpophaga spp. B.898 Aggl. B.870 Aggl. Sesamia spp. B.899 Aggl. B.871 Aggl. Sparganothis spp. B.900 Aggl. B.872 Aggl. Spodoptera spp. B.901 Aggl. B.873 Aggl. Tortrixspp. B.902 Aggl. B.874 Aggl. Trichoplusia ni B.903 Aggl. B.875 Aggl. Agriotes spp. B.904 Aggl. B.876 Aggl. Anthonomus gran- B.905 Aggl. dis B.906 Aggl. B.877 Aggl. Curculio spp. B.907 Aggl. B.878 Aggl. Diabrotica balteata B.908 Aggl. B.879 Aggl. Leptinotarsa spp. B.909 Aggl. B.880 Aggl. Lissorhoptrus spp. B.910 Aggl.

Bekämpfung von

Otiortiynchus spp. Aleurothrixus spp. Äieyrodes spp. Aonidiella spp. Aphididae spp. Aphis spp.

Bemisia tabaci Empoasca spp. Mycus spp. Nephotettix spp. Nilaparvata spp. Pseudococcus spp. Psylla spp. Quadraspidiotus spp.

Schizaphis spp. Trialeurodes spp. Lyriomyza spp. Osdnella spp. Phorbia spp. Frankliniella spp. Thrips spp. Scirtothrips aurantii Aceria spp.

Aculus spp. Brevipalpus spp. Panonychus spp. Phyllocoptruta spp. Tetranychus spp. Heterodera spp. Meloidogyne spp. ·· • · • · • · • · • ·· ·· ·· ·· ·· · ·· ·· ·· • · · · ··· • · · · · · • · · · · · -89- AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.911 CO Adoxophyes spp. B.936 CO Sparganothis spp. B.912 CO Agrotis spp. B.937 CO Spodoptera spp. B.913 CO Alabama argilla- B.938 CO Tortrix spp. ceae B.939 CO Trichoplusia ni B.914 CO Anticarsia gemma- B.940 CO Agriotes spp. talis B.941 CO Anthonomus gran- B.915 CO Chilo spp. dis B.916 CO Clysia ambiguella B.942 CO Curculio spp. B.917 CO Crocidolomia bino- B.943 CO Diabrotica balteata talis B.944 CO Leptinotarsa spp. B.918 CO Cydia spp. B.945 CO Lissorhoptrus spp. B.919 CO Diparopsis casta- B.946 CO Otiorhynchus spp. nea B.947 CO Aleurothrixus spp. B.920 CO Earias spp. B.948 CO Aleyrodes spp. B.921 CO Ephestia spp. B.949 CO Aonidiella spp. B.922 CO Heliothis spp. B.950 CO Aphididae spp. B.923 CO Hellula undalis B.951 CO Aphis spp. B.924 CO Keiferia lycoper- B.952 CO Bemisia tabaci sicella B.953 CO Empoasca spp. B.925 CO Leucoptera scitella B.954 CO Mycus spp. B.926 CO Lithocollethis spp. B.955 CO Nephotettix spp. B.927 CO Lobesia botrana B.956 CO Nilaparvata spp. B.928 CO Ostrinia nubilalis B.957 CO Pseudococcus spp. B.929 CO Pandemis spp. B.958 CO Psylla spp. B.930 CO Pectinophora gos- B.959 CO Quadraspidiotus syp. spp. B.931 CO Phyllocnistis citrella B.960 CO Schizaphis spp. B.932 CO Pieris spp. B.961 CO Trialeurodes spp. B.933 CO Plutella xylostella B.962 CO Lyriomyza spp. B.934 CO Scirpophaga spp. B.963 CO Oscinella spp. B.935 CO Sesamia spp. B.964 CO Phorbia spp. AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.965 CO Frankliniella spp. B.991 CH Lithocollethis spp. B.966 CO Thrips spp. B.992 CH Lobesia botrana B.967 CO Scirtothrips aurantii B.993 CH Ostrinia nubilalis B.968 CO Aceria spp. B.994 CH Pandemis spp. B.969 CO Aculus spp. B.995 CH Pectinophora gos- B.970 CO Brevipalpus spp. syp. B.971 CO Panonychus spp. B.996 CH Phyllocnistis citrella B.972 CO Phyllocoptruta spp. B.997 CH Pieris spp. B.973 CO Tetranychus spp. B.998 CH Plutella xylostella B.974 CO Heterodera spp. B.999 CH Scirpophaga spp. B.975 CO Meloidogyne spp. B.1000 CH Sesamia spp. B.976 CH Adoxophyes spp. B.1001 CH Sparganothis spp. B.977 CH Agrotis spp. B.1002 CH Spodoptera spp. B.978 CH Alabama argilla- B.1003 CH Tortrix spp. ceae B.1004. CH Trichoplusia ni B.979 CH Anticarsia gemma- B.1005 CH Agriotes spp. talis B.1006 CH Anthonomus gran- B.980 . CH Chilo spp. dis B.981 CH Clysia ambiguella B.1007 CH Curculio spp. B.982 CH Crocidolomia bino- B.1008 CH Diabrotica balteata talis B.1009 CH Leptinotarsa spp. B.983 CH Cydia spp. B.1010 CH Lissorhoptais spp. B.984 CH Diparopsis casta- B.1011 CH Otiorhynchus spp. nea B.1012 CH Aleurothrixus spp. B.985 CH Earias spp. B.1013 CH Aleyrodes spp. B.986 CH Ephestia spp. B.1014 CH Aonidieila spp. B.987 CH Heliothis spp. B.1015 CH Aphididae spp. B.988 CH Hellula undalis B.1016 CH Aphis spp. B.989 CH Keiferia lycoper- B.1017 CH Bemisia tabaci sicella B.1018 CH Empoasca spp. B.990 CH Leucoptera scitella B.1019 CH Mycus spp. AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.1020 CH Nephotettix spp. talis B.1021 CH Nilaparvata spp. B.1048 SS Cydia spp. B.1022 CH Pseudococcus spp. B.1049 SS Diparopsis casta- B.1023 CH Psylla spp. nea B.1024 CH Quadraspidiotus B.1050 SS Earias spp. spp. B.1051 SS Ephestia spp. B.1025 CH Schizaphis spp. B.1052 SS Heliothis spp. B.1026 CH Trialeurodes spp. B.1053 SS Hellula undalis B.1027 CH Lyriomyza spp. B.1054 SS Keiferia lycoper- B.1028 CH Oscinella spp. sicella B.1029 CH Phorbia spp. B.1055 SS Leucoptera scitella B.1030 CH Frankliniella spp. B.1056 SS Lithocollethis spp. B.1031 CH Thrips spp. B.1057 SS Lobesia botrana B.1032 CH Scirtothrips aurantii B.1058 SS Ostrinia nubilalis B.1033 CH Aceria spp. B.1059 SS Pandemis spp. B.1034 CH Aculus spp. B.1060 SS Pectinophora gos- B.1035 CH Brevipalpus spp. syp. B.1036 CH Panonychus spp. B.1061 SS Phyllocnistis citrella B.1037 CH Phyllocoptruta spp. B.1062 SS Pieris spp. B.1038 CH Tetranychus spp. B.1063 SS Plutella xylostella B.1039 CH Heterodera spp. B.1064 SS Scirpophaga spp. B.1040 CH Meloidogyne spp. B.1065 SS Sesamia spp. B.1041 SS Adoxophyes spp. B.1066 SS . Sparganothis spp. B.1042 SS Agrotis spp. B.1067 SS Spodoptera spp. B.1043 SS Alabama argilla- B.1068 SS Tortrix spp. ceae B.1069 SS Trichoplusia ni B.1044 SS Anticarsia gemma- B.1070 SS Agriotes spp. talis B.1071 SS Anthonomus gran- B.1045 SS Chilo spp. dis B.1046 SS Clysia ambiguella B.1072 SS Curculio spp. B.1047 SS Crocidolomia bino- B.1073 SS Diabrotica balteata AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.1074 SS Leptinotarsa spp. B.1104 SS Heterodera spp. B.1075 SS Lissorhoptrus spp. B.1105 SS Meloidogyne spp. B.1076 SS Otiorhynchus spp. B.1106 HO Adoxophyes spp. B.1077 SS Aleurothrixus spp. B.1107 HO Agrotis spp. B.1078 SS Aleyrodes spp. B.1108 HO Alabama argilla- B.1079 SS Aonidiella spp. ceae B.1080 SS Aphididae spp. B.1109 HO Anticarsia gemma- B.1081 SS Aphis spp. talis B.1082 SS Bemisia tabaci B.1110 HO Chilo spp. B.1083 SS Empoasca spp. B.llll HO Clysia ambiguella B.1084 SS Mycus spp. B.1112 HO Crocidolomia bino- B.1085 SS Nephotettix spp. talis B.1086 SS Nilaparvata spp. B.1113 HO Cydia spp. B.1087 SS Pseudococcus spp. B.1114 HO Diparopsis casta- B.1088 SS Psylla spp. nea B.1089 SS Quadraspidiotus B.1115 HO Earias spp. spp. B.1116 HO Ephestia spp. B.1090 SS Schizaphis spp. B.1117 HO Heliothis spp. B.1091 SS Trialeurodes spp. B.1118 HO Hellula undalis B.1092 SS Lyriomyza spp. B.1119 HO Keiferia lycoper- B.1093 SS Oscinella spp. sicella B.1094 SS Phorbia spp. B.1120 HO Leucoptera scitella B.1095 SS Frankliniella spp. B.1121 HO Lithocollethis spp. B.1096 SS Thrips spp. B.1122 HO Lobesia botrana B.1097 SS Scirtothrips aurantii B.1123 HO Ostrinia nubilalis B.1098 SS Aceria spp. B.1124 HO Pandemis spp. B.1099 SS Aculus spp. B.1125 HO Pectlnophora gos- B.1100 SS Brevipalpus spp. sypiella B.1101 SS Panonychus spp. B.1126 HO Phyllocnistis citrella B.1102 SS Phyllocoptaita spp. B.1127 HO Pleris spp. B.1103 SS Tetranychus spp. B.1128 HO Plutella xylostella -93- ·♦ ·♦ ·· ·· • ♦ · · · · t • · ···· • · · · « • · · · 4 ···· ···· ···· ·· AP Bekämpfung von AP Bekämpfung von B.1129 HO Scirpophaga spp. B.1150 HO Nephotettix spp. B.1130 HO Sesamia spp. B.1151 HO Nilaparvata spp. B.1131 HO Sparganothis spp. B.1152 HO Pseudococcus spp. B.1132 HO Spodoptera spp. B.1153 HO Psylla spp. B.1133 HO Tortrix spp. B.1154 HO Quadraspidiotus B.1134 HO Trichoplusia ni spp. B.1135 HO Agriotes spp. B.1155 HO Schizaphis spp. B.1136 HO Anthonomus gran- B.1156 HO Trialeurodes spp. dis B.1157 HO Lyriomyza spp. B.1137 HO Curculio spp. B.1158 HO Oscinella spp. B.1138 HO Diabrotica balteata B.1159 HO Phorbia spp. B.1139 HO Leptinotarsa spp. B.1160 HO Frankliniella spp. B.1140 HO Lissorhoptrus spp. B.1161 HO Thrips spp. B.1141 HO Otiorhynchus spp. B.1162 HO Scirtothrips aurantii B.1142 HO Aleurothrixus spp. B.1163 HO Aceria spp. B.1143 HO Aleyrodes spp. B.1164 HO Aculus spp. B.1144 HO Aonidiella spp. B.1165 HO Brevipalpus spp. B.1145 HO Aphididae spp. B.1166 HO Panonychus spp. B.1146 HO Aphis spp. B.1167 HO Phyllocoptruta spp. B.1147 HO Bemisia tabaci B.1168 HO Tetranychus spp. B.1148 HO Empoasca spp. B.1169 HO Heterodera spp. B.1149 HO Mycus spp. B.1170 HO Meloidogyne spp.

Bioioaische Beispiele

Tabelle 1: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Baumwolle, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 2: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgenen Reis, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 3: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Kartoffeln, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 4: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Kohlarten, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 5: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, Umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Tomaten, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 6: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Kürbisse, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 7: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Soja, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und" der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen. .

Tabelle 8; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgenen Mais, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 9: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgenen Weizen, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen. • · • · ·· • · • * ·· ·· • · ♦ · • · ··· • · ♦ • ···· ·♦ 95

Tabelle 10: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Bananen, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 11: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Zitrusbäume, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 12: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Abamectin an transgene Kemobstbäume, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 13: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Baumwolle, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 14: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgenen Reis, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 15: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Kartoffeln, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 16: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Tomaten, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 17: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Kürbisse, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 18: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Soja, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 19: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgenen Mais, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 20: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgenen Weizen, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen. "

Tabelle 21: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Bananen, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 22: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Orangenbäume, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 23: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgenes Kernobst, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 24: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Emamectin-Benzoat an transgene Kürbisse, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen. -97- -97-

···· ···· ·· ·« • · · • ··· • · · • · · ···· ··

Tabelle 25: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Baumwolle, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 26: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgenen Reis, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 27; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Kartoffeln, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 28: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Kohlarten, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 29: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Tomaten, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 30; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Kürbisse, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 31: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Soja, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 32: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgenen Mais, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 33: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgenen Weizen, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 34: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Bananen, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 35: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Zitrusbäume, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle 36: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, umfassend die Verabreichung von Spinosad an transgene Kemobstbäume, worin die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und der zu bekämpfende Schädling einer Zeile von Tabelle B entsprechen.

Tabelle C:

Abkürzungen:

Acetyl-COA-Carboxylase: ACCase Acetolactat-Synthase: ALS Hydroxyphenylpyruvatdioxygenase: HPPD Inhibierung von Protein-Synthese: IPS Hormon-Nachahmung: HO Glutamin-Synthetase: GS Protoporphyrinogenoxidase: PROTOX 5-Enolpyruvyl-3-phosphoshikimat-Synthase: EPSPS

Prinzip tolerant gegen Kultur C.l ALS Sulfonylharnstoffe usw.*** Baumwolle C.2 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Reis C.3 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Kohlarten C.4 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Kartoffeln C.5 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Tomaten C.6 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Kürbisse C.7 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Soja C.8 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Mais C.9 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Weizen C.10 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Kernobst C.ll ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Steinobst C.12 ALS Sulfonylharnstoffe usw. *** Zitrus C.13 ACCase +++ Baumwolle C.14 ACCase +++ Reis C.15 ACCase +++ Kohlarten C.16 ACCase +++ Kartoffeln C.17 ACCase +++ Tomaten C.18 ACCase +++ Kürbisse C.19 ACCase +++ Soja C.20 ACCase +++ Mais C.21 ACCase +++ Weizen C.22 ACCase +++ Kernobst C.23 ACCase +++ Steinobst C.24 ACCase +++ Zitrus C.25 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Suicotrion, Mesotrion Baumwolle C.26 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Suicotrion, Mesotrion Reis C.27 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Suicotrion, Mesotrion Kohlarten C.28 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Suicotrion, Mesotrion Kartoffeln C.29 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Suicotrion, Mesotrion Tomaten C.30 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Suicotrion, Mesotrion Kürbisse ·· ·· ·· • · · · • · • · · • · f ··· ···· ···

·· · • · ·· • · · • · · • · · ·· ··· -100-

Prinzip tolerant gegen Kultur C.31 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Sulcotrion, Mesotrion Soja C.32 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Sulcotrion, Mesotrion Mais C.33 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Sulcotrion, Mesotrion Weizen C.34 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Sulcotrion, Mesotrion Kernobst C.35 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Sulcotrion, Mesotrion Steinobst C.36 HPPD Isoxaflutol, Isoxachlotol, Sulcotrion, Mesotrion Zitrus C.37 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Baumwolle C.38 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Reis C.39 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Kohlarten C.40 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Kartoffeln C.41 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Tomaten C.42 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Kürbisse C.43 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Soja C.44 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Mais C.45 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Weizen C.46 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Kernobst C.47 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Steinobst C.48 Nitrilase Bromoxynil, loxynil Zitrus C.49 IPS Chloractanilide &&& Baumwolle C.50 IPS Chloractanilide &&& Reis C.51 IPS Chloractanilide &&&s Kohlarten C.52 IPS Chloractanilide &&& Kartoffeln C.53 IPS Chloractanilide &&& Tomaten C.54 IPS Chloractanilide &&& Kürbisse C.55 IPS Chloractanilide &&& Soja C.56 IPS Chloractanilide &&& Mais C.57 IPS Chloractanilide &&& Weizen C.58 IPS Chloractanilide &&& Kernobst C.59 IPS Chloractanilide &&& Steinobst C.60 IPS Chloractanilide &&& Zitrus ·· ·· • · · • ··· »·· ···· ···« ··« -101 -

Prinzip tolerant gegen Kultur C.61 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Baumwolle C.62 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Reis C.63 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Kohlarten C.64 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Kartoffeln C.65 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Tomaten C.66 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Kürbisse C.67 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Soja C.68 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Mais C.69 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Weizen C.70 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Kernobst C.71 HOM 2,4-D, Mecoprop-P Steinobst C.72 . HOM 2,4-D, Mecoprop-P Zitrus C.73 PROTOX Protox-Inhibitoren III Baumwolle C.74 PROTOX Protox-Inhibitoren III Reis C.75 PROTOX Protox-Inhibitoren III Kohlarten C.76 PROTOX Protox-Inhibitoren III Kartoffeln C.77 PROTOX Protox-Inhibitoren III Tomaten C.78 PROTOX Protox-Inhibitoren III Kürbisse C.79 PROTOX Protox-Inhibitoren III Soja C.80 PROTOX Protox-Inhibitoren III Mais C.81 PROTOX Protox-Inhibitoren III Weizen C.82 PROTOX Protox-Inhibitoren III Kernobst C.83 PROTOX Protox-Inhibitoren III Steinobst C.84 PROTOX Protox-Inhibitoren III Zitrus C.85 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Baumwolle C.86 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Reis C.87 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Kohlarten C.88 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Kartoffeln C.89 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Tomaten C.90 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Kürbisse ·· • ♦ • · • · • · ·· ·· • · • ··· • · • · • ·· • ·· ·· ·· ·· · · · · · • · · • · · · • · · · ··· ···· ···· ··· - 102 -

Prinzip tolerant gegen Kultur C.91 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Soja C.92 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Mais C.93 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Weizen C.94 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Kernobst C.95 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Steinobst C.96 EPSPS Glyphosat und /oder Sulphosat Zitrus C.97 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Baumwolle C.98 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Reis C.99 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Kohlarten C.100 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Kartoffeln C.101 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Tomaten C.102 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Kürbisse C.103 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Soja C.104 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Mais C.105 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Weizen C.106 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Kernobst C.107 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Steinobst C.108 GS Gluphosinat und /oder Bialaphos Zitrus *** Eingeschlossen sind Sulfonylharnstoffe, Imidazolinone, Triazolopyrimidine, Dimethoxypy-rimidine und N-Acylsulfonamide:

Sulfonylharnstoffe, wie Chlorsulfuron, Chlorimuron, Ethamethsulfuron, Metsulfuron, Primi-sulfuron, Prosulfuron, Triasulfuron, Cinosulfuron, Trifusulfuron, Oxasulfuron, Bensulfuron, Tribenuron, ACC 322140, Fluzasulfuron, Ethoxysulfuron, Fluzasdulfuron, Nicosulfuron, Rim-sulfuron, Thifensulfuron, Pyrazosulfuron, Clopyrasulfuron, NC 330, Azimsulfuron, Imazosul-furon, Sulfosulfuron, Amidosulfuron, Flupyrsulfuron, CGA 362622

Imidazolinone, wie Imazamethabenz, Imazaquin, Imazamethypyr, Imazethapyr, Imazapyr und Imazamox;

Triazolopyrimidine, wie DE 511, Flumetsulam und Chloransulam;

·· ·· ·· ·· • · · · · · · • · ···· • · · · · • · · · · ···· ···· ···· ·· -103-

Dimethoxypyrimidine, wie Pyrithiobac, Pyriminobac, Bispyribac und Pyribenzoxim. +++ Tolerant gegen Diclofop-methyl, Fluazifop-P-butyl, Haloxyfop-P-methyl, Haloxyf-op-P-ethyl, Quizalafop-P-ethyl, Clodinafop-propargyl, Fenoxaprop-ethyl, Tepraloxydim, Al-loxydim, Sethoxydim, Cycloxydim, Cloproxydim, Tralkoxydim, Butoxydim, Caloxydim, Clefox-ydim, Clethodim. &&& Chloracetanilide, wie Alachlor Acetochlor, Dimethenamid /// Protox-Inhibitoren: Zum Beispiel Diphenylether, wie Adfluorfen, Aclonifen, Bifenox, Chlornitrofen, Ethoxyfen, Fluoroglycofen, Fomesafen, Lactofen, Oxyfluorfen; Imide, wie Azafeni-din, Carfentrazon-ethyl, Cinidon-ethyl, Flumiclorac-pentyl, Flumioxazin, Fluthiacet-methyl, Oxadiargyl, Oxadiazon, Pentoxazone, Sulfentrazone, Imide und andere, wie Flumipropyn, Flupropacil, Nipyraclofen und Thidiazimin; und weiterhin Fluazoiat und Pyraflufen-ethyl

Biologische Beispiele

Tabelle 39: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Adoxophyes, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 40: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Agrotis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 41: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Alabama argillaceae, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 42: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Anticarsia gemmatalis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 43: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Chile, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 44: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Clysia ambiguella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 45: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Cnephalocrocis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 46: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Crocidolomia binotalis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 47: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Cydia, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 48: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Diparopsis castanea, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 49: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Earias, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 50: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Ephestia, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombi- nation des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 51: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Heliothis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 52: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Hellula undalis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 53: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Keiferia lycopersicella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 54: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Leucoptera scitella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 55: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lithocollethis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 56: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Lobesia botrana, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 57: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Ostrinia nubilaiis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen. • · · · ··· ··

• · · · · · • · · # · I ··· ···· ···# ··#· ·· -106-

Tabelle 58: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pandemis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 59: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Pectinophora gossypiella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 60: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Phyllocnistis citrella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 61: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pieris, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 62: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Plutella xylostella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 63: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Scirpophaga, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 64: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sesamia, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 65: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sparganothis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die

Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 66: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Spodoptera, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 67: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Tortrix, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 68: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Trichoplusia ni, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 69: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Agriotes, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 70: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Anthonomus grandis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen

Tabelle 71: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Curculio, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 72: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Diabrotica balteata, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen. • · · · · · · • · · · · · • · · · · · ··· ···· ···· Μ·« ·· -108-

Tabelle 73: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Leptinotarsa, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 74: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lissorhoptrus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 75: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Otiorhynchus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 76: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aleurothrixus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 77: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aleyrodes, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 78: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aonidiella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 79: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Familie Aphididae, umfassend . die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 80: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aphis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombinati- on des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 81: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Bemisia tabaci, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 82: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Empoasca, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 83: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Mycus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 84: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Nephotettix, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 85: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Nilaparvata, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 86: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pseudococcus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 87: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Psylla, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 88: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Quadraspidiotus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 89: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Schizaphis, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 90: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Trialeurodes, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 91: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lyriomyza, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 92: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Oscinella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 93: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Phorbia, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 94: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Frankliniella, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabeile 95: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Thrips, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombi- nation des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 96: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Sdrtothrips aurantii, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 97: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aceria, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 98: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aculus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 99: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Brevipalpus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 100: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Panonychus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 101: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Phyllocoptruta, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 102: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Tetranychus, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 103: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Heterodera, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 104; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Meloidogyne, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 105: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Mamestra brassica, umfassend die Applikation von Abamectin an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 106: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Adoxophyes, umfassend die Applikation von Emamectin-Benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 107: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Agrotis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 108: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Alabama argillaceae, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 109: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Anticarsia gemmatalis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 110: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Chilo, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 111: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Clysia ambiguella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 112: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Cnephalocrocis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 113:Ein Verfahren zur Bekämpfung von Croddolomia binotalis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 114: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Cydia, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 115: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Oiparopsis castanea, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 116: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Earias, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 117: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Ephestia, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, -114- wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 118: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Heliothis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 119: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Hellula undalis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 120: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Keiferia lycopersicella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 121: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Leucoptera scitella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 122: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lithocollethis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 123: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Lobesia botrana, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 124: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Ostrinia nubilalis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 125: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pandemis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 126: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Pectinophora gossypiella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 127: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Phyllocnistis citrella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 128: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pieris, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 129: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Plutella xylostella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 130: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sdrpophaga, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 131: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sesamia, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 132: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sparganothis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 133: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Spodoptera, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 134: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Tortrix, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 135: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Trichoplusia ni, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 136: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Agrlotes, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 137: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Anthonomus grandis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 138: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Curculio, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 139: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Diabrptica balteata, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen. 0 · • · • * ·· • ·· ·· ·· ·* *· · ·· · 0 0 0 * · ·- · ··· * · 0 0 0 0 • · · 0 0 0 ··· ···· ···· 0000 00 -117-

Tabelle 140: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Leptinotarsa, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 141; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lissorhoptrus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 142: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Otiorhynchus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 143; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aleurothrixus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 144: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aleyrodes, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 145: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aonidiella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 146; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Familie Aphididae, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 147: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aphis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 148: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Bemisia tabaci, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 149: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Empoasca, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 150: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Mycus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 151: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Nephotettix, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 152: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Nilaparvata, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 153: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pseudococcus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizid resistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 154: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Psyila, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 155: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Quadraspidiotus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 156: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Schizaphis, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 157: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Trialeurodes, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 158: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lyriomyza, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 159: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Osdnella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 160: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Phorbia, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 161: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Frankliniella, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 162: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Thrips, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 163: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Scirtothrips aurantii, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 164: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aceria, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 165: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aculus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 166: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Brevipalpus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 167: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Panonychus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 168: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Phyllocoptruta, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 169: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Tetranychus, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 170: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Heterodera, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 171: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Meloidogyne, umfassend die Applikation von Emamectin-benzoat an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 172: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Adoxophyes, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 173: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Agrotis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 174: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Alabama argillaceae, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 175: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Anticarsia gemmatalis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 176: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Chilo, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombi- • · • • · ♦ • · • . ·· ΦΦΦ • · · ··· « * * * • · · · ··· ···· ··+· ·· φ -122-nation des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 177: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Clysia ambiguella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 178: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Crocidoiomia binotalis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 179: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Cydia, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 180: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Diparopsis castanea, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 181: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Earias, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wind, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 182: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Ephestia, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 183: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Heliothis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 184: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Hellula undalis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 185: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Keiferia lycopersicella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 186: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Leucoptera scitella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 187: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lithocollethis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 188: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Lobesia botrana, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 189: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Ostrinia nubilalis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 190: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pandemis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 191: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Pectinophora gossypiella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 192: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Phyllocnistis citrella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 193: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pieris, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 194: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Plutella xylostella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente· transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 195: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Scirpophaga, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 196: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sesamia, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 197: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Sparganothis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 198: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Spodoptera, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen. -125-

Tabelle 199: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Tortrix, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 200: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Trichoplusia ni, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 201: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Agriotes, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 202: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Anthonomus grandis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zelle von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 203: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Curculio, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 204: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Diabrotica balteata, umfassend die Applikation von Spinosad an. eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 205: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Leptinotarsa, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 206: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lissorhoptrus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die

Tabelle 207: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Otiorhynchus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 208: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aleurothrixus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 209: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aleyrodes, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 210: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aonidiella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 211: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Familie Aphididae, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 212: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aphis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 213: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Bemisia tabaci, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 214: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Empoasca, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 215: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Mycus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 216: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Nephotettix, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 217: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Nilaparvata, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 218: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Pseudococeus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 219: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Psylla, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 220: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Quadraspidiotus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 221; Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Schizaphis, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die -128-

Tabelle 222: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Trialeurodes, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 223: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Lyriomyza, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 224: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Oscinella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 225: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Phorbia, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 226: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Frankliniella, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 227: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Thrips, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 228: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Sdrtothrips aurantii, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 229: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aceria, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 230: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Aculus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 231: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Brevipalpus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 232: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Panonychus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 233: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Phyllocoptruta, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 234: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Tetranychus, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 235: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Heterodera, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Tabelle 236: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Vertretern der Gattung Meloidogyne, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die ·· ·· ·· ·· • · · • · • • · • ··· • · • • · • · · · · • · · · ♦ -130-

Tabelle 237: Ein Verfahren zur Bekämpfung von Mamestra brassica, umfassend die Applikation von Spinosad an eine herbizidresistente transgene Kultur, wobei die Kombination des Wirkprinzips, das durch die transgene Pflanze exprimiert wird, und die gegen den Schädling zu schützende Kultur einer Zeile von Tabelle C entsprechen.

Beispiel Bl: Wirkung gegen adulte Anthonomus qrandis. Spodoptera littoralis oder Heliothis Φ virescsns

Junge transgene Baumwollpflanzen, welche das δ-Endotoxin CrylllA exprimieren, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm Ema-mectinbenzoat enthält, besprüht. Nach dem Antrocknen des Spritzbelages werden die Baumwollpflanzen mit 10 adulten Anthonomus grandis, 10 Spodoptera littoralis-Larven oder 10 Heliothis virescens-Larven besiedelt und in einen Plastikbehälter gegeben. 3 bis 10 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Käfer und des Frass-schadens auf den transgenen Baumwollpflanzen mit derjenigen von nichttransgenen Baumwollpflanzen, welche mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt wurden, das Emamectinbenzoat und übliches CrylllA-Toxin in einer Konzentration von je 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm enthält, wird die prozentuale Reduktion der Population oder die prozentuale Re-0 duktion des Frassschadens (% Wirkung) bestimmt.

In diesem Test wird bei der transgenen Pflanze eine ausgezeichnete Bekämpfung der getesteten Insekten gefunden, während sie bei der nichttransgenen Pflanze ungenügend ist.

Beispiel B2: Wirkung gegen adulte Anthonomus orandis. Spodoptera littoralis oder Heliothis virescens

Junge transgene Baumwollpflanzen, welche das δ-Endotoxin CrylllA exprimieren, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm Aba-mectin enthält, besprüht Nach dem Antrocknen des Spritzbelages werden die Baumwollpflanzen mit 10 adulten Anthonomus grandis, 10 Spodoptera littoralis-Larven oder 10 Heliothis virescens-Larven besiedelt und in einen Plastikbehälter gegeben. 3 bis 10 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Käfer und des Frassscha- • Φ • · • · • ♦ • · ·· • ·· «· ·· ·· • · • · • · • • • • • • • • • • • • ··· ··»· ···· ···· *· ··· # ·· -131 - dens auf den transgenen Baumwollpflanzen mit deijenigen von nichttransgenen Baumwoll-pflanzen, welche mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt wurden, das Abamec-tin und übliches CrylliA-Toxin in einer Konzentration von je 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm enthält, wird die prozentuale Reduktion der Population oder die prozentuale Reduktion des Frassschadens (% Wirkung) bestimmt.

In diesem Test wird bei der transgenen Pflanze eine ausgezeichnete Bekämpfung der getesteten Insekten gefunden, während sie bei der nichttransgenen Pflanze ungenügend ist. #

Beispiel B3: Wirkung gegen adulte Anthonomus grandis. Spodoptera littoralis oderHeliothis virescens

Junge transgene Baumwollpflanzen, welche das δ-Endotoxin CrylllA exprimieren, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm Spi-nosad enthält, besprüht. Nach dem Antrocknen des Spritzbelages werden die Baumwollpflanzen mit 10 adulten Anthonomus grandis, 10 Spodoptera littoralis-Larven oder 10 He-liothis virescens-Larven besiedelt und in einen Plastikbehälter gegeben. 3 bis 10 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Käfer und des Frassschadens auf den transgenen Baumwollpflanzen mit derjenigen von nichttransgenen Baumwollpflanzen, welche mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt wurden, das Spinosad und übliches CrylllA-Toxin in einer Konzentration von je 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm enthält, Φ wird die prozentuale Reduktion der Population oder die prozentuale Reduktion des Frassschadens (% Wirkung) bestimmt.

Beispiel B4: Wirkung gegen adulte Anthonomus arandis. Spodoptera littoralis oder Heliothis virescens

Junge transgene Baumwollpflanzen, welche das δ-Endotoxin Cryla(c) exprimieren, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm Spinosad enthält, besprüht. Nach dem Antrocknen des Spritzbelages werden die Baumwollpflanzen mit 10 adulten Anthonomus grandis, 10 Spodoptera littoralis-Larven oder 10 He- liothis virescens-Larven besiedelt und in einen Plastikbehälter gegeben. 3 bis 10 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Käfer und des Frass-schadens auf den transgenen Baumwollpflanzen mit derjenigen von nichttransgenen Baum-wollpflanzen, welche mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt wurden, das Spi-nosad und übliches CrylllA-Toxin in einer Konzentration von je 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm enthält, wird die prozentuale Reduktion der Population oder die prozentuale Reduktion des Frassschadens (% Wirkung) bestimmt.

In diesem Test wird bei der transgenen Pflanze eine ausgezeichnete Bekämpfung der getesteten Insekten gefunden, während sie bei der nichttransgenen Pflanze ungenügend ist

Beispiel B5: Wirkung gegen adulte Anthonomus arandis. Spodoptera littoralis oder Heliothis virescens

Junge transgene Baumwollpflanzen, welche das δ-Endotoxin Cryla(c) exprimieren, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm Aba-mectin enthält, besprüht. Nach dem Antrocknen des Spritzbelages werden die Baumwollpflanzen mit 10 adulten Anthonomus grandis, 10 Spodoptera littoralis-Larven oder 10 Heliothis virescens-Larven besiedelt und in einen Plastikbehälter gegeben. 3 bis 10 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Käfer und des Frassschadens auf den transgenen Baumwollpflanzen mit derjenigen von nichttransgenen Baumwollpflanzen, welche mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt wurden, das Abamec-tin und übliches CrylllA-Toxin in einer Konzentration von je 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm enthält, wird die prozentuale Reduktion der Population oder die prozentuale Reduktion des Frassschadens (% Wirkung) bestimmt.

Beispiel B6; Wirkung gegen adulte Anthonomus grandis. Spodoptera littoralis· oder Heliothis virescens

Junge transgene Baumwollpflanzen, welche das δ-Endotoxin Cryla(c) exprimieren, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm Erna- • · · · ♦ ♦ ··· {· · · · · · · • · · · · · · ·· ··· ···· ·♦·· ···· ·· -133-mectinbenzoat enthält, besprüht. Nach dem Antrocknen des Spritzbelages werden die Baumwollpflanzen mit 10 adulten Anthonomus grandis, 10 Spodoptera littoralis-Larven oder 10 Heliothis virescens-Larven besiedelt und in einen Plastikbehälter gegeben. 3 bis 10 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Käfer und des Frass-schadens auf den transgenen Baumwollpflanzen mit derjenigen von nichttransgenen Baumwollpflanzen, welche mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt wurden, das Emamectinbenzoat und übliches CrylllA-Toxin in einer Konzentration von je 100, 50, 10, 5 bzw. 1 ppm enthält, wird die prozentuale Reduktion der Population oder die prozentuale Reduktion des Frassschadens (% Wirkung) bestimmt.

Beispiel B7: Wirkung gegen Ostrinia nubilaiis. Spodoptera spp. oder Heliothisspp.

Eine mit Mais der Sorte KnockOut® bepflanzte Parzelle (a), und eine benachbarte gleich grosse Parzelle (b), welche mit üblichem Mais bepflanzt ist, und die beide einen natürlichen Befall von Ostrinia nubilaiis, Spodoptera spp. oder Heliothis haben, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 200,100, 50, 10, 5, 1 ppm Spinosad enthält, besprüht. Parzelle (b) wird unmittelbar danach mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt, welches 200, 100, 50, 10, 5, 1 ppm des von KnockOut® exprimierten Endotoxins enthält. 6 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Schädlinge auf den Pflanzen der Parzelle (a) zu derjenigen auf den Pflanzen der Parzelle (b) wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Verbesserte Bekämpfung von Ostrinia nubilaiis, Spodoptera spp. oder Heliothis wird auf den Pflanzen von Parzelle (a) beobachtet, während Parzelle (b) einen Bekämpfungsgrad nicht oberhalb 80% zeigt.

Beispiel B8: Wirkung gegen Ostrinia nubilaiis. Spodoptera spp. oder Heliothis spp.

Eine mit Mais der Sorte KnockOut® bepflanzte Parzelle (a), und eine benachbarte gleich grosse Parzelle (b), welche mit üblichem Mais bepflanzt ist, und die beide einen natürlichen Befall von Ostrinia nubilaiis, Spodoptera spp. oder Heliothis haben, werden mit einem wäss- ·· · · · ···· t · « · ♦ · · · ···· · · ♦ · ·· ··· ···· »··♦ ·♦·· ·· -134-rigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 200,100, 50,10, 5, 1 ppm Abamectin enthält, besprüht. Parzelle (b) wird unmittelbar danach mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt, welches 200, 100, 50, 10, 5, 1 ppm des von KnockOut® exprimierten Endotoxins enthält. 6 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Schädlinge auf den Pflanzen der Parzelle (a) zu derjenigen auf den Pflanzen der Parzelle (b) wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Verbesserte Bekämpfung von Ostrinia nubilalis, Spodoptera spp. oder Heliothis wird auf den Pflanzen von Parzelle (a) beobachtet, während Parzelle (b) einen Bekämpfungsgrad nicht oberhalb 80% zeigt.

Beispiel B9: Wirkung gegen Ostrinia nubilalis. Spodootera sdp. oder Heliothis spp,

Eine mit Mais der Sorte KnockOut® bepflanzte Parzelle (a), und eine benachbarte gleich grosse Parzelle (b), welche mit üblichem Mais bepflanzt ist, und die beide einen natürlichen Befall von Ostrinia nubilalis, Spodoptera spp. oder Heliothis haben, werden mit einem wässrigen Emulsionsspritzbrühengemisch, das 200, 100, 50, 10, 5, 1 ppm Emamectinbenzoat enthält, besprüht. Parzelle (b) wird unmittelbar danach mit einem Emulsionsspritzbrühengemisch behandelt, welches 200,100, 50, 10, 5, 1 ppm des von KnockOut® exprimierten Endotoxins enthält. 6 Tage später erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl toter Schädlinge auf den Pflanzen der Parzelle (a) zu derjenigen auf den Pflanzen der Parzelle (b) wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Die Erfindung betrifft weiterhin (B) ein Verfahren zum Schutz von pflanzlichem Vermehrungsgut und später zuwachsenden Pflanzenteilen vor Schädlingsbefall, dadurch gekennzeichnet, dass ein Schädlingsbekämpfungsmittel, welches als pestizid aktive Verbindung mindestens eine Macrolidverbindung, besonders Abamectin, Emamectin oder Spinosad, in freier Form oder in

• · · · • · · · ······· ·· -135- agrochemisch verwendbarer Salzform, als Wirkstoff und mindestens einen Hilfsstoff enthält, in naher räumlicher Nachbarschaft zu oder räumlich zusammen mit der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat eingesetzt wird; die entsprechende Verwendung dieser Verbindungen, entsprechende Schädlingsbekämpfungsmittel, deren Wirkstoff aus diesen Verbindungen ausgewählt ist, ein Verfahren zur Herstellung und die Verwendung dieser Mittel und vor Schädlingsbefall entsprechend geschütztes pflanzliches Vermehrungsgut.

Die erfindungsgemäss verwendeten Macrolide sind dem Fachmann bekannt. Es handelt sich dabei um die Stoffklassen, welche in Teil (A) der Erfindung erwähnt werden. Bevorzugt sind Abamectin und Emamectin.

Agrochemisch verwendbare Salze der Macrolide sind erfindungsgemäss z.B. die Gleichen wie unter Erfindung Teil (A).

Im Fall von Avermectin ist im Rahmen der Erfindung Teil (B) die freie Form bevorzugt. Besonders bevorzugt ist im Rahmen der vorliegenden Erfindung Teil (B) ein Verfahren, bei welchem Emamectin in freier Form oder als agrochemisch verträgliches Salz; besonders als Salz; insbesondere als Benzoat, substituiertes Benzoat, Benzolsulfonat, Citrat, Phosphat, Tartrat oder Maleat; bevorzugt als Benzoat oder Benzolsulfonat, besonders bevorzugt als Benzoat, eingesetzt wird.

Im Rahmen des Gegenstands der Erfindung (B) können insbesondere Vertreter der Klassen Insecta, Arachnida und Nematoda bekämpft werden.

Es handelt sich dabei vor allem um Insekten der Ordnung Lepidoptera, beispielsweise Acleris spp., Adoxophyes spp., Aegeria spp., Agrotis spp., Alabama argillaceae, Amylois spp., Anticarsia gemmatalis, Archips spp., Argyrotaenia spp., Astylus atromaculatus, Auto-grapha spp., Busseola fusca, Cadra cautella, Carposina nipponensis, Chilo spp., Choristo-neura spp., Clysia ambiguella, Cnaphalocrods spp., Cnephasia spp., Cochylis spp., Coleo-phora spp., Croddolomia binotalis, Cryptophlebia leucotreta, Cydia spp., Diatraea spp., Di-paropsis castanea, Earias spp., Ephestia spp., Eucosma spp., Eupoecilia ambiguella, Eu-proctis spp., Euxoa spp., Grapholita spp., Hedya nubiferana, Heliothis spp., Hellula undalis, Heteronychus arator, Hyphantria cunea, Keiferia lycopersicella, Leucoptera scitella, Litho-collethis spp., Lobesia botrana, Lymantria spp., Lyonetia spp., Malacosoma spp., Mamestra ·· * · · ♦ · · · • t « · · ··· ···· · · · · ·· ··· ·«·· ···· ···♦ ·· -136-brassicae, Manduca sexta, Operophtera spp., Ostrinia nubilalis, Pammene spp., Pandemis spp., Panolis flammea, Pectinophora gossypiella, Phthorimaea operculella, Pieris rapae, Pie-ris spp., Plutella xylostella, Prays spp., Scirpophaga spp., Sesamia spp., Sparganothis spp., Spodoptera spp., Synanthedon spp., Thaumetopoea spp., Tortrix spp., Trichoplusia ni und Yponomeuta spp.; der Ordnung Coleoptera, beispielsweise

Agriotes spp., Anthonomus spp., Atomaria linearis, Chaetocnema tibiaiis, Cosmopolites spp., Curculio spp., Dermestes spp., Diabrotica spp., Epilachna spp., Eremnus spp., Leptinotarsa decemlineata, Lissorhoptrus spp., Melolontha spp., Orycaephilus spp., Otiorhynchus spp., Phlyctinus spp., Popillia spp., Psylliodes Spp., Rhizopertha spp., Scarabeidae, Sitophilus spp., Sitotroga spp., Tenebrio spp., Tribolium spp. und Trogoderma spp.; der Ordnung Orthoptera, beispielsweise

Blatta spp., Blattella spp., Gryllotalpa spp., Leucophaea maderae, Locusta spp., Periplaneta spp. und Schistocerca spp.; der Ordnung Psocoptera, beispielsweise Liposcelis spp.; der Ordnung Anoplura, beispielsweise

Haematopinus spp., Linognathus spp., Pediculus spp., Pemphigus spp. und Phylloxera spp.; der Ordnung Mallophaga, beispielsweise Damalinea spp. und Trichodectes spp.; der Ordnung Thysanoptera, beispielsweise Frankliniella spp., Hercinothrips spp., Taenio-thrips spp., Thrips palmi, Thrips tabaci und Sdrtothrips aurantii; der Ordnung Heteroptera, beispielsweise Cimex spp., Distantiella theobroma, Dysdercus spp., Euchistus spp. Eurygaster spp. Leptocorisa spp., Nezara spp., Piesma spp., Rhodnius spp., Sahlbergella singularis, Scotinophara spp. und Triatoma spp.; der Ordnung Homoptera, beispielsweise Aleurothrixus floccosus, Aleyrodes brassicae, Aoni-diella spp., Aphididae, Aphis spp., Aspidiotus spp., Bemisia tabaci, Ceroplaster spp., Chry-somphalus aonidium, Chrysomphalus dictyospermi, Coccus hesperidum, Empoasca spp., Eriosoma larigerum, Erythroneura spp., Gascardia spp., Laodelphax spp., Lecanium comi, Lepidosaphes spp., Macrosiphus spp., Myzus spp., Nephotettix spp., Nilaparvata spp., Pa-ratoria spp., Pemphigus spp., Planococcus spp., Pseudaulacaspis spp., Pseudococcus spp., Psylla spp., Pulvinaria aethiopica, Quadraspidiotus spp., Rhopa{osiphum spp., Saissetia spp., Scaphoideus spp., Schizaphis spp., Sitobion spp., Trialeurodes vaporariorum, Trioza erytreae und Unaspis citri; • · • · · · · · · * ·· ··« ·♦·· ···· ···· ·· 137-der Ordnung Hymenoptera, beispielsweise Acromyrmex, Atta spp., Cephus spp., Diprion spp., Diprionidae, Gilpinia poiytoma, Hoplocampa spp., Lasius spp., Monomorium pharaonis, Neodiprion spp., Solenopsis spp. und Vespa spp.; der Ordnung Diptera, beispielsweise Aedes spp., Antherigona soccata, Bibio hortulanus, Calliphora erythrocephala, Ceratitis spp., Chrysomyia spp., Culex spp., Cuterebra spp., Dacus spp., Drosophila melanogaster, Fannia spp., Gastrophilus spp., Glossina spp., Hypo-derma spp., Hyppobosca spp., Liriomyza spp., Lucilia spp., Melanagromyza spp., Musca spp., Oestrus spp., Orseolia spp., Oscinella frit, Pegomyia hyoscyami, Phorbia spp., Rha-goletis pomonella, Sciara spp., Stomoxys spp., Tabanus spp., Tannia spp. und Tipula spp.; der Ordnung Siphonaptera, beispielsweise Ceratophyllus spp. und Xenopsylla cheopis; oder der Ordnung Thysanura, beispielsweise Lepisma saccharina.

Aus der Klasse Arachnida handelt es sich bevorzugt um Verteter der Ordnung Acarina, beispielsweise Ο

Acarus siro, Aceria sheldoni, Aculus schlechtendali, Amblyomma spp., Argas spp., Boophi-lus spp., Brevipalpus spp., Bryobia praetiosa, Calipitrimerus spp., Chorioptes spp., Der-manyssus gallinae, Eotetranychus carpini, Eriophyes spp., Hyalomma spp., Ixodes spp., Olygonychus pratensis, Omithodoros spp., Panonychus spp., Phyllocoptruta oleivora, Poly-phagotarsonemus latus, Psoroptes spp., Rhipicephalus spp., Rhizoglyphus spp., Sarcoptes spp., Tarsonemus spp. und Tetranychus spp..

Besonders bevorzugt ist die Bekämpfung von Insekten der Ordnungen Coleoptera und Lepi-doptera; bei der Ordnung Colepotera insbesondere die Gattungen und Arten Agriotes spp., Antho-nomus spp., Atomaria linearis, Chaetocnema tibialis, Diabrotica spp. und Leptinotarsa de-cemlineata; bei der Ordnung Lepidoptera die Gattungen und Arten Adoxophyes spp., Agrotis spp., Alabama argillaceae, Anticarsia gemmatalis, Chilo spp., Cydia spp., Ephestia spp., Heliothis spp., Keiferia lycopersicella, Mamestra brassicae, Pecünophora gossyplella, Plutella xylo-stella, Sesamia spp., Spodoptera spp., Tortrix spp.,.und Trichoplusia.

Ein weiterer bevorzugter Gegenstand gemäss der Erfindung Teil (B) ist die Bekämpfung von Vertretern der Klasse Nematoda, wie Wurzelgallennematoden sowie Stock- und Blattälchen; m cf

···· ·« -138- besonders von Heterodera spp., beispielsweise Heterodera schachtii, Heterodora avenae und Heterodora trifolii; Globodera spp., beispielsweise Globodera rostochiensis; Meloidogy-ne spp., beispielsweise Meloidogyne incoginita und Meloidogyne javanica; Radopholus spp., beispielsweise Radopholus similis; Pratylenchus, beispielsweise Pratylenchus neglectans und Pratylenchus penetrans; Tylenchulus, beispielsweise Tylenchulus semipenetrans; Lon-gidorus, Trichodorus, Xiphinema, Ditylenchus, Aphelenchoides und Anguina, besonders von Meloidogyne, beispielsweise Meloidogyne incognita, und Heterodera, beispielsweise Heterodera glycines.

Die gemäss der Erfindung Teil (B) verwendeten Macrolide sind auf den Gebieten der Insektenbekämpfung bei günstiger Warmblüter-, Fisch-, Nützlings- und Pflanzenverträglichkeit bereits bei niedrigen Anwendungskonzentrationen präventiv und/oder kurativ wertvolle Wirkstoffe. Die erfindungsgemäss verwendeten Wirkstoffe sind gegen alle oder einzelne Entwicklungsstadien von normal sensiblen, aber auch von resistenten, Schädlingen wirksam. Die Wirkung der erfindungsgemäss verwendeten Wirkstoffe kann sich dabei direkt, d. h. in einer Abtötung der Schädlinge, welche unmittelbar oder erst nach einiger Zeit, beispielsweise bei einer Häutung, eintritt, oder indirekt, z.B. in einer verminderten Eiablage und/oder Schlupfrate, zeigen, wobei die gute Wirkung einer Abtötungsrate (Mortalität) von mindestens 50 bis 60% entspricht.

Mit den gemäss der Erfindung Teil (B) verwendeten Wirkstoffen kann man an pflanzlichem Vemnehrungsgut, vor allem an Vermehrungsgut von Nutz- und Zierpflanzen in der Landwirtschaft, im Gartenbau und im Forst, auftretende Schädlinge bekämpfen, d.h. eindämmen oder vernichten, wobei auch später zuwachsende Pflanzenteile noch gegen diese Schädlinge geschützt werden, der Schutz also z.B. anhält, bis sich widerstandsfähige erwachsene Pflanzen entwickelt haben, und wobei das Vermehrungsgut bzw. die sich daraus entwik-kelnden Pflanzen sowohl vor Schädlingen, welche die oberirdischen Pflanzenteile befallen, als auch vor im Boden lebenden Schädlingen geschützt werden.

Als pflanzliches Vermehrungsgut, also z.B. Keimlinge, Rhizome, Setzlinge, Stecklinge oder insbesondere Saatgut (Samen), wie Früchte, Knollen, Körner oder Zwiebeln, kommt gemäss der Erfindung Teil (B) insbesondere Vermehrungsgut von Getreide, wie Weizen, Gerste, Roggen, Hafer, Reis, Mais oder Sorghum; Rüben, wie Zucker- oder Futterrüben; Obst, z.B. Kem-, Stein- und Beerenobst, wie Äpfeln, Birnen, Pflaumen, Pfirsichen, Mandeln, Kirschen oder Beeren, z.B. Erdbeeren, Himbeeren und Brombeeren; Hülsenfrüchten, wie Bohnen, Linsen, Erbsen oder Soja; Ölfrüchten, wie Raps, Senf, Mohn, Oliven, Sonnenblumen, Kokos, Rizinus, Kakao oder Erdnüssen; Gurkengewächsen, wie Kürbissen, Gurken oder Melonen; Fasergewächsen, wie Baumwolle, Flachs, Hanf oder Jute; Zitrusfrüchten, wie Orangen, Zitronen, Pampelmusen oder Mandarinen; Gemüse, wie Spinat, Kopfsalat, Spargel, Kohlarten, Möhren, Zwiebeln, Tomaten, Kartoffeln oder Paprika; Lorbeergewächsen, wie Avocado, Cinnamonium oder Kampfer, oder Tabak, Nüssen, Kaffee, Eierfrüchten, Zuckerrohr, Tee, Pfeffer, Weinreben, Hopfen, Bananengewächsen, Naturkautschukgewächsen oder Zierpflanzen; besonders von Getreide, Reis, Baumwolle, Mais, Soja, Raps, Gemüse, Kartoffeln, Sonnenblumen, Zuckerrübe und Sorghum in Betracht.

Beim genetisch modifizierten Vermehrungsgut handelt es sich vorzugsweise um Vermehrungsgut, besonders Saatgut, welches ein oder mehrere Gene enthält, welche(s) eine pesti-zide Resistenz, insbesondere eine insektizide, oder akarizide Resistenz, exprimieren, die Pflanze gegen Herbizide resistent machen, zu einer erhöhten Resistenz gegen Pflanzenkrankheiten führen oder sonstige agronomisch vorteilhafte Eigenschaften in die Pflanze einführen. Insbesondere handelt es sich um solche Pflanzen bzw. ihr Vermehrungsgut, welche ein Gen enthalten, welches aus einem Bacillus thuringiensis abgeleitet ist und für ein insektizid aktives Protein kodieren oder ein Gen enthalten. Besonders handelt es sich um genetisch modifiziertes pflanzliches Vermehrungsgut von Kartoffeln, Alfalfa, Getreide, wie Weizen, Gerste, Roggen, Hafer, Reis, Mais oder Sorghum; Hülsenfrüchten, wie Bohnen, Linsen, Erbsen oder Soja; Rüben, wie Zucker- oder Futterrüben; Ölfrüchten, wie Raps, Senf, Mohn, Oliven, Sonnenblumen, Kokos, Rizinus, Kakao oder Erdnüssen; Gurkengewächsen, wie Kürbissen, Gurken oder Melonen; Fasergewächsen, wie Baumwolle, Flachs, Hanf oder Jute; Zitrusfrüchten, wie Orangen, Zitronen, Pampelmusen oder Mandarinen; sowie Gemüse, wie Spinat, Kopfsalat, Spargel, Kohlarten, Möhren, Zwiebeln oder Tomaten.

Bei dem genannten genetisch modifizierten pflanzlichen Vermehrungsgut handelt es sich beispielsweise um die dem Fachmann bekannten handelsüblichen Produkte Maximizer® (KnockOut®), Yieldgard®, Roundup Ready Sojabohnen®, TC Blend® oder NuCOTN 33B®. • · · · · · ··· • ·ν · t ··· ···· · · · · ·· *·· ···· ···· ···· ·· -140-

Weitere Anwendungsgebiete der gemäss der Erfindung Teil (B) verwendeten Wirkstoffe sind beispielsweise der Schutz von Vorräten oder Lagern oder im Hygienesektor; insbesondere der Schutz von Haus- oder Nutztieren vor Schädlingen.

Die Erfindung gemäss Gegenstand (B) betrifft daher auch entsprechende Schädlingsbekämpfungsmittel zur Anwendung, wie, je nach angestrebten Zielen und gegebenen Verhältnissen zu wählende, emulgierbare Konzentrate, Suspensionskonzentrate, direkt versprüh-oder verdünnbare Lösungen, streichfähige Pasten, verdünnte Emulsionen, Spritzpulver, lösliche Pulver, dispergierbare Pulver, benetzbare Pulver, Stäubemittel, Granulate oder Verkapselungen in polymeren Stoffen, welche - mindestens - einen der erfindungsgemäss verwendeten Wirkstoffe enthalten und die Verwendung dieser Insektenbekämpfungsmittel zur Anwendung in einem Verfahren. Bevorzugt ist ein Mittel, welches nur eine Macrolidverbin-dung enthält, besonders Emamectin oder ein Salz davon.

Der Wirkstoff wird in diesen Mitteln in reiner Form, z.B. als fester Wirkstoff in einer speziellen Komgrösse, oder vorzugsweise zusammen mit - mindestens - einem der in der Formulierungstechnik üblichen Hilfsstoffe, wie Streckmitteln, z.B. Lösungsmitteln oder festen Trägerstoffen, oder wie oberflächenaktiven Verbindungen (Tensiden), eingesetzt.

Als Hilfsstoffe, wie Lösungsmittel, feste Trägerstoffe, oberflächenaktive Verbindungen, nichtionische Tenside, kationische Tenside und anionische Tenside in den erfindungsgemäss eingesetzten Mitteln, kommen beispielsweise die gleichen in Frage, wie sie in EP-A-736 252 beschrieben sind.

Flüssige Formulierungen zur Behandlung von pflanzlichem Vermehrungsgut, besonders von Saatgut, enthalten beispielsweise

Oberflächenaktive Substanzen (1-15 Gewichts%), wie ethoxylierte Tristyrolphenole und ihre Salze, Alkylpolyglykolether-Ethoxylate, Polyoxypropylen-Polyoxyethylen-Copolymere, Lignosulfonsäurenatriumsalz, Polynaphthalinsulfonsäuresalze und Alkylbenzolsulfonsäure-triethanolaminsalz;

Frostschutzmittel (5 -15%), wie etwa DL-Propanediol-(1,2) oder Propan-1,2,3-triol; Färbemittel (1.-10 %), wie Pigmente oder wasserlösliche Farbstoffe;

Antischaummittel (0,05 -1 %), wie Polydimethylsiloxan;

Beschichtungsmittel (1-10 %), wie Polyethylenglykol, Polyvinylacetat, Polyvinylpyrrolidon, Polyacrylat; -141 - #··· ···· ····

Konservierungsmittel (0,1-1 %), wie 1,2-Benzisothiazol-3-on;

Verdicker (0,1 -1%), wie Heteropolysaccharid; sowie Lösungsmittel, wie Wasser.

Feste Formulierungen zur Behandlung von pflanzlichem Vermehrungsgut, besonders von Saatgut, enthalten beispielsweise:

Oberflächenaktive Substanzen (1-10 %), wie Alkylpolyglkolether-Ethoxylat, Polyoxypropy-len-Polyoxyethylen-Copolymere, Ligninsulfonsäurenatriumsalz, Polynaphthalinsulfonsäuresalze; Färbemittel (1-10 %), wie Pigmente oder wasserlösliche Farbstoffe;

Antischaummittel (0,05 -1 %), wie Polydimethylsiloxan;

Beschichtungsmittel (1-10 %), wie Polyethylenglykol oder Cellulose; sowie Trägermaterial (zu 100% Gew./Gew.), wie Silicapulver, Talkumpulver, Tone usw..

Die Mittel enthalten in der Regel 0,1 bis 99%, insbesondere 0,1 bis 95%, Wirkstoff und 1 bis 99,9%, insbesondere 5 bis 99,9%, - mindestens - eines festen oder flüssigen Hilfsstoffes, wobei in der Regel 0 bis 25%, insbesondere 0,1 bis 20%, der Mittel Tenside sein können (% bedeutet jeweils Gewichtsprozent). Während als Handelsware eher konzentrierte Mittel bevorzugt werden, verwendet der Endverbraucher in der Regel verdünnte Mittel, die wesentlich geringere Wirkstoffkonzentrationen aufweisen.

Bevorzugte Mittel, wie emulgierbare Konzentrate, Stäubemittel, Suspensionskonzentrate, benetzbare Pulver und Granulate haben beispielsweise die gleichen Zusammensetzungen, wie sie in EP-A-736 252 erwähnt sind.

Die Mittel gemäss der Erfindung Teil (B) können auch weitere feste oder flüssige Hilfsstoffe, wie Stabilisatoren, z.B. gegebenenfalls epoxidierte Pflanzenöle (z.B. epoxidiertes Kokosnussöl, Rapsöl oder Sojaöl), Entschäumer, z.B. Silikonöl, Konservierungsmittel, Viskositätsregulatoren, Bindemittel und/oder Haftmittel, sowie Düngemittel oder andere Wirkstoffe zur Erzielung spezieller Effekte, z.B. Bakterizide, Nematizide, Molluskizide oder selektive Herbizide, enthalten.

Die Wirkung der Mittel gemäss der Erfindung Teil (B) lässt sich durch Zusatz von anderen, z.B. insektizid, akarizid und/oder fungizid wirksamen, Wirkstoffen wesentlich verbreitern und an gegebene Umstände anpassen.

Als insektizide und akarizide Wirkstoff-Zusätze kommen dabei z.B. Vertreter der folgenden Wirkstoffklassen in Betracht: organische Phosphorverbindungen, Nitrophenole und Derivate, Formamidine, Triazinderivate, Nitroenaminderivate, Nitro- und Cyanoguanidinderivate, Harnstoffe, Benzoylhamstoffe, Carbamate, Pyrethroide, chlorierte Kohlenwasserstoffe und Bacillus thuringiensis-Präparate. Besonders bevorzugte Mischungspartner sind etwa NI-25, TI-304, TI-435, MTI-446, Fipronil, Lufenuron, Pyriproxyfen, Thiacloprid, Fluxofenime; Imi-dacloprid, Thiamethoxam, Fenoxycarb, Diafenthiuron, Pymethrozine, Diazinon, Disulfoton; Profenofos, Furathiocarb, Cyromazin, Cypermethrin, Tau-FluvaJinate, Tefluthrin oder Bacillus thuringiensis-Präparate, ganz besonders NI-25, TI-304, TI-435, MTI-446, Fipronil, Thiacloprid, Imidacloprid, Thiamethoxam, und Tefluthrin.

Als fungizid aktive Wirkstoff-Zusätze kommen z.B. folgende Verbindungen in Betracht: Azoxystrobin; Bitertanol; Carboxin; Cu20; Cymoxanil; Cyproconazole; Cyprodinil; Dichlo-fluamid; Difenoconazole; Diniconazole; Epoxiconazole; Fenpiclonil; Fludioxonil; Fluquicona-zole; Flusilazole; Flutriafol; Furalaxyl; Guazatin; Hexaconazole; Hymexazol; Imazalil; Imiben-conazole; Ipconazole; Kresoxim-methyl; Mancozeb; Metalaxyl; R-Metalaxyl; Metconazole; Oxadixyl, Pefurazoate; Penconazole; Pencycuron; Prochloraz; Propiconazole; Pyroquilone; SSF-109; Spiroxamin; Tebuconazole; Teflutrin; Thiabendazole; Tolifluamide; Triazoxide; Triadimefon; Triadimenol; Triflumizole; Triticonazole und Uniconazole.

Die gemäss der Erfindung Teil (B) anzuwendenden Mittel werden in bekannter Weise hergestellt, bei Abwesenheit von Hilfsstoffen z.B. durch Vermahlen und/oder Sieben, z.B. auf eine bestimmte Komgrösse, oder Verpressen eines festen Wirkstoffe, und bei Anwesenheit von mindestens einem Hilfestoff z.B. durch inniges Vermischen und/oder Vermahlen des Wirkstoffe mit dem (den) Hilfestoff(en). Diese Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemässen Mittel und die Verwendung von Macroliden zür Herstellung dieser Mittel bilden ebenfalls Gegenstände der Erfindung.

Die erfindungsgemässen Anwendungsverfahren zum Schutz von pflanzlichem Vermehrungsgut, welches erfindungsgemäss jedes pflanzliche Material ist, aus dem sich nach Aus-pflanzen oder Ausbringen auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat vollständige Pflanzen entwickeln können, z.B. Keimlinge, Rhizome, Setzlinge, Stecklinge oder insbesondere Saatgut (Samen), wie Früchte, Knollen, Körner oder Zwiebeln, vor Schädlingsbefall, sind z.B. dadurch gekennzeichnet, dass entsprechende Mittel in der Weise appliziert werden, dass ihre • · • · • · ·· • · · ··· • · · · « • · · · « ··«· ···· ···· ·· -143-

Applikation in naher räumlicher Nachbarschaft zu oder räumlich zusammen mit der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat erfolgt. Die Applikation dieser Mittel in naher räumlicher Nachbarschaft zu der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat erfolgt dabei erfindungsgemäss, vorzugsweise vor der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts, durch Bodenapplikation der Mittel direkt auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts, z.B., vorzugsweise vor der Aussaat, in die Saatfurche, oder auf eine eng begrenzte Fläche um den Ort der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts herum. Die Applikation der entsprechenden Mittel, die räumlich zusammen mit der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat erfolgt, ist so zu verstehen, dass mit diesen Mitteln vorbehandeltes Vermehrungsgut auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat ausgepflanzt oder ausgebracht wird, wobei, je nach angestrebten Zielen und gegebenen Verhältnissen, die Vorbehandlung des Vermehrungsguts z.B. dadurch erfolgen kann, dass das Vermehrungsgut mit den Mitteln besprüht, benebelt, bestäubt, bestrichen, bestreut oder begossen wird, oder, im Falle von Saatgut insbesondere auch dadurch, dass das Saatgut gebeizt wird. Bei der erfindungsgemäss bevorzugten Saatgutbeizung, d.h. bei der Trocken-, Feucht-, Nass- oder Schlammbeizung, wird dem Saatgut vor der Aussaat in einer Beizvorrichtung ein geeignetes Schädlingsbekämpfungsmittel zugesetzt und das Mittel, z.B. durch Rühren des Inhalts der Beizvorrichtung und/oder Rotation und/oder Schütteln der gesamten Beizvonichtung, gleichmässig über das Saatgut verteilt. Besondere Ausführungsformen dieser Beizung umfassen z.B. Tränken des Saatguts in einem flüssigen Mittel, Beschichten des Saatguts mit einem festen Mittel (Saatgutbeschichtung; Sead Coating) oder Erreichen von Eindringen des Wirkstoffs in das Saatgut durch Zusatz des Mittels zu dem zum Vorquellen des Saatguts verwendeten Wasser (Saatgutquellung; Seed Soaking). Bei der erfindungsgemässen Saatgutbeizung liegen die typischen Aufwandmengen für die verwendeten Mittel z.B. zwischen 0,1 und 100 g Wirkstoff pro 100 kg Saatgut, insbesondere zwischen T und 60 g/100 kg Saatgut, bevorzugt zwischen 4 und 40g /100 kg Saatgut.

Die Saatgutbeizung gemäss der Erfindung Teil (B) zeichnet sich insbesondere dadurch aus, dass, wegen der geringen Toxizität des verwendeten Wirkstoffs, bei Vögeln eine gute Toleranz gegenüber dem gebeizten Saatgut beobachtet wird, z.B. bei den Vögeln, welche in der freien Natur als Saatguträuber dazu neigen, Saatgut von frisch besäten Feldern aufnehmen, -144- wie Ammern, Amseln, Drosseln, Enten, Fasanen, Finken, Gänsen, Hänflingen, Hühnern, Krähen, Lerchen, Meisen, Möven, Raben, Rebhühnern, Ringeltauben, Stieglitzen, Tauben oder Zeisigen. Die erfindungsgemässe Saatgutbeizung umfasst auch die Beizung von Saatgutvorräten.

Das erfindungsgemäss vorbehandelte, handelsfähige, pflanzliche Vermehrungsgut bildet einen weiteren Gegenstand der Erfindung Teil (B).

Formulierungsbeispiele der Macrolidverbindungen, die in dem Verfahren gemäss der Erfindung Teil (B) angewendet werden können, das heißt Lösungen, Granulate, Stäube, Spritzpulver, Emulsionskonzentrate, Umhüllungsgranulate und Suspensionskonzentrate, sind von der Art, die beispielsweise in EP-A-580 553, Beispiele F1 bis F10, beschrieben wurde.

Beispiel F1: Allgemeines Vorgehen für eine Nassbeizunq

Die benötigte Menge flüssige Formulierung wird in einen Erlenmeyerkolben gegeben. Der Kolben wird geschüttelt, um die Flüssigkeit auf dem gesamten Gefässboden zu verteilen. Unmittelbar danach wird die benötigte Menge des Saatgutes in den Kolben gegeben. Der Kolben wird von Hand ungefähr eine Minute stark geschüttelt, so dass das gesamte Saatgut mit Flüssigkeit bedeckt ist. Der Inhalt des Kolbens wird auf ein Trocknungsblech geschüttet und in einem Ofen getrocknet.

Beispiel F2: Allgemeines Vorgehen für eine Trockenbeizung

Man füllt je gleich viele Samenkörner in verschiedene Weithalsflaschen und gibt in jede Flasche soviel Spritzpulver, dass die gewünschte Menge an Wirkstoff pro Samenkorn (beispielsweise 0,03, 0,1 bzw. 0,3 mg pro Kom) erreicht wird. Man legt die Flaschen auf einen Flaschenrolier und lässt die Raschen drei Minuten bei 80 Umdrehungen / Minute drehen. Dann werden die Samenkörner, welche an den Flaschenwänden kleben, durch Schütteln von Hand entfernt und die Flaschen während drei Minuten in der umgekehrten Richtung rotiert. -145-

Bioloqische Beispiele (% = Gewichtsprozent, sofern nichts anderes angegeben)

Beispiel B4; Beizwirkuna gegen Larven des ersten Stadiums von Spodoptera littoralis auf Maisblättem

Maissamen, welche gemäss Vorschrift F13 gebeizt wurden, werden ausgesät. 12, 19, 26, 33, 40 und 47 Tage nach Aussaat werden 5 bis 8 cm lange Stücke der obersten Blätter der Pflanzen in Glasbecher gelegt und mit einer vorbestimmten Menge einer Suspension frisch geschlüpfter L1-Larven von Spodoptera littoralis infestiert. Die Becher werden mit einem Deckel geschlossen und bei 25°C, 60% relativer Luftfeuchtigkeit und einem Tageslichtzyklus von 16 Stunden gehalten. Die Auswertung erfolgt drei bis fünf Tage nach Infestation. Aus dem Vergleich der Anzahl überlebender Larven auf den aus den gebeizten Samen gezogenen und auf aus nicht gebeizten Samen gezogenen Pflanzen wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Beispiel B5; Beizwirkuna gegen adulte Diabrotica balteata auf Zuckerrübenblättem Zückerrübensamen, welche gemäss Vorschrift F13 gebeizt wurden, werden ausgesät. 33, 40, 47, 54 und 61 Tage nach Aussaat werden die Blätter von je drei bis 5 Pflanzen in einen Glasbecher gelegt und mit einer vorbestimmten Anzahl junger adulten Diabrotica balteata infestiert. Die Becher werden mit einem Deckel geschlossen und bei 25°C, 60% relativer Luftfeuchtigkeit und 16 Stunden Tageslicht gehalten. Die Auswertung erfolgt drei bis fünf Tage nach Infestation. Aus dem Vergleich der Anzahl überlebender adulter Diabrotica auf den aus den gebeizten Samen gezogenen und auf aus nicht gebeizten Samen gezogenen Pflanzen wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Beispiel _BS; Beizwirkuna aeaen Larven des dritten Stadiums von Diabrotica balteata an Maiswurzeln

Maissamen, welche gemäss der Vorschrift F1 gebeizt wurden, werden ausgesät. 14, 21 und 28 Tage nach Aussaat werden auf den Boden jedes Pflanzentopfes je fünf Larven des dritten Stadiums von Diabrotica balteata gegeben. Die Evaluation erfolgt 6 Tage nach Infestation. Registriert wird die Zahl überlebender Stadien (Larven und Puppen) im Stamm der Pflanzen, auf der Erdoberfläche und im Boden. Aus dem Vergleich der Anzahl überlebender • · · · · · ··· • · » « · · · · ···· · · · · ·· ··· ···· ···· ···· ·· -146-

Larven und Puppen auf den aus den gebeizten Samen gezogenen und auf aus nicht gebeizten Samen gezogenen Pflanzen sowie deren Umgebung wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Beispiel B7: Beizwirkunq gegen Aphisfabae

In eine Glasflasche oder einen Kunststoffbehälter füllt man 100 g Bohnensamen und soviel einer Formulierung des Wirkstoffs, dass ein Verhältnis von 0,1, 1 oder 10 g Wirkstoff pro kg Samen erreicht wird. Durch Rotation und/oder Schütteln des Behältnisses wird der Wirkstoff gleichmässig auf der Oberfläche der Samen verteilt. Die so gebeizten Samen werden in Blumentöpfen (3 Samen pro Topf) ausgesät. Die Jungpflanzen werden in einem Gewächshaus bei 25 bis 30° bis zum 2-Blatt-Stadium kultiviert und dann mit Aphis fabae besiedelt. 6 Tage nach der Besiedlung erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl überlebender Individuen auf den aus den gebeizten Samen gezogenen und auf aus nicht gebeizten Samen gezogenen Pflanzen wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Abamectin, Emamectin und Spinosad zeigen gute Wirkung in diesem Test.

Beispiel B8: Beizwirkunq gegen Mvzus oersicae

In eine Glasflasche oder einen Kunststoffbehälter füllt man 100 g Zuckerrübensamen und soviel einer, aus einem Spritzpulver und wenig Wasser hergestellten, Pasten-Formulierung des Wirkstoffs, dass ein Verhältnis von 0,1, 1 oder 10 g Wirkstoff pro kg Samen erreicht wird. Das verschlossene Beizgefäss wird solange auf einer Rollbank bewegt, bis sich die Paste gleichmässig auf der Oberfläche der Samen verteilt hat. Die so gebeizten (beschichteten) Samen werden getrocknet und in Plastiktöpfen in Löss-Erde ausgesät. Die Keimlinge werden in einem Gewächshaus bei 24 bis 26°C, einer relativen Luftfeuchtigkeit von 50 bis 60% und einer Beleuchtungsdauer von täglich 14 Stunden kultiviert 4 Wochen nach der Keimung werden die 10 cm hohen Pflanzen mit einer Mischpopulation von Myzus persicae besiedelt 2 und 7 Tage nach der Besiedlung erfolgt die Auswertung. Aus dem Vergleich der Anzahl überlebender Individuen auf den aus den gebeizten Samen gezogenen und auf aus • · · ··· « · · · · • · · · · -147-nicht gebeizten Sannen gezogenen Pflanzen wird die prozentuale Reduktion der Population (% Wirkung) bestimmt.

Abamectin, Emamectin und Spinosad zeigen gute Wirkung in diesem Test.

Die Erfindung betrifft weiterhin (C) ein Verfahren zur Bekämpfung von Holzschädlingen sowie von Mollusken, dadurch gekennzeichnet, dass man eine pestizid aktive Menge eines Schädlingsbekämpfungsmittels, welches als pe-stizid aktive Verbindung mindestens ein Macrolid, bevorzugt Abamectin, Emamectin oder Spinosad, in freier Form oder in agrochemisch verwendbarer Salzform, als Wirkstoff und mindestens einen Hilfsstoff enthält, auf die Schädlinge oder ihren Lebensraum appliziert; die entsprechende Verwendung dieser Verbindungen, entsprechende Schädlingsbekämpfungsmittel, deren Wirkstoff aus diesen Verbindungen ausgewählt ist, ein Verfahren zur Herstellung und die Verwendung dieser Mittel und vor Schädlingsbefall entsprechend geschütztes pflanzliches Vermehrungsgut.

Die erfindungsgemäß verwendeten Macrolide, einschließlich ihrer Salze, sind die gleichen, wie die unter Aspekt (A) der Erfindung verwendeten. Sofern es sich um Abamectin (A) handelt, ist erfindungsgemäss die freie Form bevorzugt. Besonders bevorzugt ist im Rahmen der vorliegenden Erfindung ein Mittel, welches Emamectin in freier Form oder als agrochemisch verträgliches Salz als einzige pestizid aktive Komponente; besonders als Salz; insbesondere als Benzoat, substituiertes Benzoat, Benzolsulfonat, Citrat, Phosphat, Tartrat oder Maleat; bevorzugt als Benzoat oder Benzolsulfonat, besonders bevorzugt als Benzoat enthält.

In der Literatur werden viele verschiedene Wirkstoffklassen als arthropodazid wirkende Wirkstoffe in zur Bekämpfung von Gastropoden und Termiten aufgeführt. Überraschenderweise wurde nun gefunden, dass auch die unter dem Sammelbegriff Macrolide bekannten Verbindungen eine bedeutende molluskizide und termitizide Aktivität aufweisen, speziell gegen Gastropoden, wie Nacktschnecken und Gehäuseschnecken, sowie gegen Holzschädlinge, insbesondere Vertreter der Ordnung Isoptera.

Zu den Mollusken zählen z.B.

Ampullariidae; Arion (A. ater, A. circumscriptus, A. hortensis, A. rufus); Bradybaenidae (Bra-dybaena fruticum); Cepaea (C. hortensis, C. Nemoralis); Cochlodina; Deroceras (D. ag-restis, D. empiricorum, D. laeve, D. reticulatum); Discus (D. rotundatus); Euomphalia; Galba (G. trunculata); Helicella (H. itala, H. obvia); Helicidae (Helicigona arbustorum); Helicodiscus; Helix (H. aperta); Umax (L. cinereoniger, L. flavus, L. marginatus, L. maximus, L. tenellus); Lymnaea; Milax (M. gagates, M. marginatus, M. sowerbyi); Opeas; Pomacea (P. canaticu-lata); Vallonia und Zanitoides.

Zu den Termiten zählen insbesondere die Familien Hodotermitidae, Kalotermitidae, Rhino-termitidae und Termitidae. Unter den weiteren Schädlingen, welche Holzschäden anrichten, indem sie sich von Holz ernähren, darauf leben oder sich auf Holz vermehren, versteht man etwa holzbohrende Insekten wie Vertreter der Familie Lyctidae, der Familie Apidae, beispielsweise Xylocopa virginica, und der Familie Anobiidae, wie Anobium punctatum.

Schnecken stellen als Schädlinge in Gartenbau und Landwirtschaft ein stark zunehmendes Problem dar. Sie können durch Frass schwerwiegende Pflanzenschäden verursachen und auch unerwünschte Verunreinigungen durch Schneckenschleim und Kot herbeiführen. Neuere Veränderungen in der Haltung von Pflanzenkulturen haben zu einer Erhöhung der Zahl der Varietäten von Pflanzenarten geführt, welche schneckenempfindlich sind, und der im Naturschutz-Gedanken begründete Zwang, auf das Abbrennen der Stoppelfelder zu verzichten und stattdessen das Stroh unterzupflügen, lässt erwarten, dass die bestehenden Probleme mit Mollusken, besonders Nacktschnecken, verschlimmert werden.

Termiten können insbesondere in geographischen Breiten zwischen 42° N und 42 S° bedeutende Schäden an Gebäuden anrichten. Man unterscheidet grundsätzlich zwei Arten von Termiten:

Im Untergrund lebende Termiten, die am weitesten verbreitet sind, benötigen warme Luft und eine feuchte Umgebung. Um immer über die notwendige Feuchtigkeit zu verfügen, müssen diese Termiten über eine direkte Verbindung zur feuchten Erde verfügen. Schäden von unterirdisch aktiven Termiten sind fast immer mit Schäden an Holz verbunden.

Termiten, welche ihren Lebensraum auf trockenem Holz haben, stellen - obschon weniger häufig - ein grosses Problem dar, weil sie keinen Kontakt mit dem feuchten Boden benötigen. Sie dringen unter Dachschindeln, durch Ritzen und Luftlöcher in Gebäude ein. Andere werden auch über bereits befallene Möbelstücke in Haushalte eingeschleppt. Vorbehandlung -149- des Holzes wird als die effizienteste Methode zur Bekämpfung solcher Termiten angesehen. Die Schäden, welche von Termiten, die auf trockenem Holz leben, werden langsamer angerichtet, als von in feuchter Umgebung lebenden Termiten. Daher werden Schäden von Termiten der ersten Art vor allem in alten Gebäuden festgestellt.

Schäden von unterirdisch, in feuchter Umgebung lebenden Termiten können durch die Anwendung von insektizid aktiven Substanzen auf die Termiten oder ihren Lebensraum verhindert werden. Solche Verbindungen werden vor allem auf konventionelle Art durch Einbringen in den Boden um die Gebäude herum eingesetzt.

Zur Zeit kommerziell erhältliche Schneckenbekämpfungsmittel umfassen Metaldehyd und Carbamate, wie z.B. Methiocarb. Carbamate sind als Molluskizide sehr wirkungsvoll, haben aber den grossen Nachteil hoher Toxizität gegenüber Säugetieren, wie z.B. Katzen, Hunden und Igeln, und anderen Organismen, wie z.B. Regenwürmem, welche nicht geschädigt werden sollen. Die Metaldehyd-Molluskizide weisen zwar eine geringere Toxizität auf, wirken jedoch gegen Mollusken nicht tödlich, sondern haben eine narkotisierende oder entwässernde Wirkung, wodurch sie die Schädlinge immobilisieren. Es besteht daher ein Bedarf nach einem nützlichen Molluskizid, welches höchst wirksam gegen z.B. Nacktschnecken und Gehäuseschnecken ist, jedoch gegenüber Nützlingen, wie z.B. Regenwürmem, und Säugetieren nicht oder sehr gering toxisch wirkt. Dieses Ziel wird mit den Macroliden der vorliegenden Erfindung erreicht.

Auch die zur Zeit verfügbaren Mittel zur Bekämpfung von Termiten vermögen nicht allen Ansprüchen zu genügen, da im allgemeinen vergleichsweise grosse Zonen um bauliche Konstruktionen, bzw. diese Bauten selbst mit grossen Mengen von Insektizid behandelt werden müssen. Dies kann insbesondere bei persistenten Pestiziden, vor allem in Häusern, zu Foi-geproblemen führen. Es besteht daher auch in diesem Fälle ein weiteres Bedürfnis nach verbesserten Lösungen, insbesondere durch Anwendung von Wirkstoffen, die in besonders geringen Mengen eingesetzt werden können und welche wenig flüchtig sind.

Die Erfindung Teil (C) betrifft daher auch Schädlingsbekämpfungsmittel, wie, je nach angestrebten Zielen und gegebenen Verhältnissen zu wählende, emulgierbare Konzentrate, Suspensionskonzentrate, direkt versprüh- oder verdünnbare Lösungen, streichfähige Pasten, verdünnte Emulsionen, Spritzpulver, lösliche Pulver, dispergierbare Pulver, benetzbare Pul- £ • · · · · · ·♦· • · · * · ··· ···· · ··· ·· -··· ···· ···· ···· ·· -150 - ver, Stäubemittel, Granulate, Pellets oder Verkapselungen in polymeren Stoffen, welche -mindestens - einen der erfindungsgemässen Wirkstoffe enthalten.

Der Wirkstoff wird in diesen Mitteln in reiner Form, ein fester Wirkstoff z.B. in einer speziellen Komgrösse, oder vorzugsweise zusammen mit - mindestens - einem der in der Formulie-rungstechnik üblichen Hilfs- oder Trägerstoffen eingesetzt.

Als Formulierungshilfsstoffe dienen beispielsweise feste Trägerstoffe, Lösungsmittel, Stabilisatoren, “slow release’-Hilfsstoffe, Farbstoffe und gegebenenfalls oberflächenaktive Stoffe (Tenside). Als Träger- und Hilfsstoffe kommen hierbei alle bei Pflanzenschutzmitteln, insbesondere bei Schneckenbekämpfungsmitteln, üblicherweise verwendeten Stoffe in Frage. Als Hilfsstoffe, wie Lösungsmittel, feste Trägerstoffe, oberflächenaktive Verbindungen, nichtionische Tenside, kationische Tenside, anionische Tenside und weitere Hilfestoffe in den erfin-dungsgemäss eingesetzten Mitteln, kommen beispielsweise die gleichen in Frage, wie sie in EP-A-736 252 beschrieben sind.

Andere geeignete Stoffe, die als Trägerstoffe für Molluskizide verwendet werden können, sind Phagostimulantien (Frassstoffe), also die üblicherweise in Schneckenköderformulierungen enthaltenen Lockstoffe und/oder Futterstoffe (also für Schnecken physiologisch verwertbare Substanzen). Auch Mischungen von Frassstoffen mit geeigneten anderen organischen und/oder anorganischen Trägerstoffen sind verwendbar.

Geeignete Frassstoffe für Molluskizide sind vorzugsweise: Gemahlenes Getreide, wie z.B. Weizenmehl, Gerstenmehl, Roggenmehl, sowie Reisstärke, Sojaschrot, Fischmehl, Melasse, Rapsschrot u. a.. Es kann entweder nur ein Frassstoff oder auch ein Gemisch von Frassstoffen eingesetzt werden.

Eine oder mehrere der folgenden Substanzen kann als Schneckenköder-Zusatz verwendet werden, um den Köder für die Mollusken schmackhafter zu machen: a) ein Vitamin B, insbesondere B1, B2, Nicotinsäure oder Nicotinamid; b) Vitamin E; c) tierisches oder pflanzliches Proteinmaterial, z.B. Albumine und ihre hydrolytischen Abbauprodukte, insbesondere jene aus enzymatischer Hydrolyse von z.B. Pepsin, wie Metaproteine, Proteosen, Peptone, Polypeptide, Peptide, Diketopiperazine und Aminosäuren; ·· • · · ··· • · · · · • · ♦ · · ··· ···· ···· ···· ·· 151 d) eine oder mehrere Aminosäuren oder deren Salze oder Amide, welche auch synthetische Produkte sein können; e) eine Nukleinsäure oder ein hydrolytisches Abbauprodukt davon, wie ein Nukleotid, ein Nukleosid, Adenin, Guanin, Cytosin, Uracil oder Thymin; f) Harnstoff, Carbaminsäure; g) ein Ammoniumsalz, z.B. Ammoniumacetat; h) ein Aminozucker, z.B. Glucosamin oder Galactosamin;

i) Natrium-, Kalium-, Calcium- oder Magnesium-Verbindungen oder Spuren von Mangan-, Kupfer-, Eisen-, Kobalt-, Zink-, Aluminium-, Bor- oder Molybdän-Verbindungen, insbesondere Chelate davon, wie Versene®; j) Phosphorsäure oder Glyceryl- oder Zuckerphosphate; k) Wasser.

Stabilisatoren können alle bekannten Nahrungsmittel-Stabilisatoren sein, welche fungistatische, fungizide, bacteriostatische und/oder bacterizide Wirkung haben, wie Natriumbenzoat, Methy!-p-hydroxybenzoat, Cetyl-trimethylammoniumbromid, Zitronensäure, Weinsäure, Sorbinsäure, Phenole, Alkylphenole oder chlorierte Phenole.

Als "slow release”-Hilfsmittel können neben den als feste Trägerstoffe bezeichneten Substanzen auch Harze, wie Hamstoff-Formaldehyd-Harze, Sojamehl, Wachse, Steärate und öle, wie Rizinusöl, eingesetzt werden.

Als Hilfsstoffe für Molluskizide können gemäss Teil (C) der Erfindung beispielsweise Bindemittel, wie Methylcellosolve, Polyvinylpyrrolidon, Polyvinylalkohol, Polyacrylate, Poly-methacrylate, natürliche Wachse, chemisch veränderte Wachse und synthetische Wachse, Zucker, Stärke, Alginate, Agar agar, Ugninsulfonate und Gummi arabicum, Mittel, die die Austrocknung der Präparate verhindern, wie Pofyalkohole, z.B. Zucker oder Glycerin, Konservierungsstoffe, Farbstoffe, Schneckenlockstoffe, Warmblüter-Repellents und/oder sonstige Formulierungshilfsstoffe eingesetzt werden. Auch Kombinationen mit bekannten mollus-kiziden Wirkstoffen, z.B. Metaldehyd oder Mercaptodimethur, sind möglich.

Die Formulierungsschritte können durch Kneten, Granulieren (Granulate) und gegebenenfalls Pressen (Pillen, Tabletten, Pellets) ergänzt werden. • · · · · · · · · • · · · · ··· • · · t · ··· ·· ··· ···♦ ·«·# M«f ·· -152-

Die molluskiziden Mittel, welche bevorzugt neben dem Wirkstoff weitere Träger- und/oder Hilfsstoffe enthalten, liegen in ihrer anwendungsfertigen Form vorzugsweise als spritz- oder streubare Pulver, als Granulate (wobei der Wirkstoff mit dem Trägermaterial vermischt vorliegt), oder als Pellets vor. Besonders bevorzugte Formulierungen sind streufähige Pulver, Granulate oder Pellets.

Speziell geeignete Formulierungen zur Bekämpfung von Mollusken gemäss Teil (C) der Erfindung sind Granulate oder Pellets, welche in der Regel 0 bis 90%, vorzugsweise 0 bis 70%, Trägermaterial, 0,1 bis 10%, vorzugsweise 1 bis 5%, Wirkstoff, 10 bis 95%, vorzugsweise 25 bis 90%, Frassstoff, 0,5 bis 25%, vorzugsweise 5 bis 20%, Bindemittel und gegebenenfalls 0 bis 15% weitere Hilfsstoffe enthalten (% bedeutet jeweils Gewichtsprozent).

Die jeweils als Schneckenbekämpfungsmittel auszubringende Menge ist wegen der fehlenden oder geringen Warmblütertoxizität unkritisch und richtet sich nach den jeweiligen Gegebenheiten, wie Befallsgrad, Klimabedingungen und zu schützende Pflanzen. Die Aufwandmenge an erfindungsgemässen Ködertypen kann innerhalb eines grösseren Bereichs variiert werden. Im allgemeinen verwendet man zwischen 3 und 15 kg Schneckenköder pro Hektar, vorzugsweise zwischen 5 und 10 kg pro Hektar. Zweckmässigerweise werden die Schnek-kenbekämpfungsmittel möglichst gleichmässig zwischen den Kulturpflanzen durch Aufsprühen einer wässrigen Suspension oder durch Streuen der Pulver, Granulate oder Pellets auf dem Boden verteilt. Bei nicht dichtem Pflanzenbewuchs kann es auch zweckmässig sein, um die zu schützenden Pflanzen “Fangstreifen” anzulegen.

Wegen der hervorragenden Pflanzenverträglichkeit der erfindungsgemässen Schneckenbekämpfungsmittel gemäss Teil (C) der Erfindung ergeben sich von der Seite der zu schützenden Pflanzen keinerlei Einschränkungen. So können alle Zier- und Kulturpflanzen in Landwirtschaft, Forst und Gartenbau (auch in Gewächshäusern) in allen Wachstumsstadien vor Schäden durch Schnecken geschützt werden.

Die Formulierung und die Verwendung der erfindungsgemässen Schneckenköder und der Mittel zur Bekämpfung von Holzschädlingen geht aus folgenden Beispielen hervor.

Die gemäss Teil (C) der Erfindung anzuwendenden Mittel zur Bekämpfung von Gastropoden und Holzschädlingen werden in bekannter Weise hergestellt, bei Abwesenheit von Hilfsstoffen z.B. durch Mahlen und/oder Sieben, z.B. auf eine bestimmte Komgrösse, oder Pressen eines festen Wirkstoffs, und bei Anwesenheit von mindestens einem Hilfsstoff z.B. durch in- niges Vermischen und/oder Vermahlen des Wirkstoffs mit dem (den) Hilfsstoff(en). Diese Verfahren zur Herstellung der erfindungsgemässen Mittel und die Verwendung der Macroli-de zur Herstellung dieser Mittel bilden ebenfalls Gegenstände der Erfindung.

Die Mittel im Rahmen von Teil (C) der Erfindung enthalten in der Regel 0,1 bis 99%, insbesondere 0,1 bis 95%, Wirkstoff und 1 bis 99,9%, insbesondere 5 bis 99,9%, - mindestens -eines festen oder flüssigen Hilfsstoffes, wobei in der Regel 0 bis 25%, insbesondere 0,1 bis 20%, der Mittel Tenside sein können (% bedeutet jeweils Gewichtsprozent). Während als Handelsware eher konzentrierte Mittel bevorzugt werden, verwendet der Endverbraucher in der Regel verdünnte Mittel, die wesentlich geringere Wirkstoffkonzentrationen aulweisen.

Die Aktivität der erfindungsgemäßen Mittel kann durch Zugabe anderer, beispielsweise insektizider, akarizider und/oder fungizider Wirkstoffe und angepaßt an die vorherrschende Umgebung beträchtlich erweitert werden. Beispiele geeigneter zugegebener Wirkstoffe sind die gleichen wie unter Teil (B) der Erfindung erwähnt.

In einer besonders bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird die Macrolidverbindung verwendet, um die Termiten bzw. anderen hoizzerstörenden Schädlinge in der Erde zu bekämpfen, womit ein indirekter Schutz von Holzkonstruktionen erreicht wird. Es wird dabei eine für die Bekämpfung der Schädlinge ausreichende Menge des Macrolids auf den Boden appliziert, vorzugsweise in einer Aufwandmenge von 1 g bis 2000 g pro Hektar, besonders 2 bis 200 g, insbesondere 5 bis 100 g.

Arbeitstermiten müssen die mit dem pestizid behandelte Erde betreten, um zum Holz zu gelangen. Sie werden dabei unvermeidlich vom Pestizid aufnehmen und es in den Termitenstock zurücktragen und den Wirkstoff so im Termitenstock verbreiten.

Der oder die Wirkstoffe können auch in Form von Ködern ausgebracht werden, z.B. in Form von Tabletten, welche den Wirkstoff enthalten, wie sie etwa in U.S. Patent Nr. 5 096 710 beschrieben sind. Besonders bevorzugt wird das Macrolid auf Materialien ausgebracht, welche von den Termiten als Nahrungsmittel und Baustoffe für den Termitenstock verwendet werden. Beispiele solcher Materialien sind etwa Karton, Papier, Holzstaub, Cellulosepulver oder Baumwolle. Brauchbare Konzentrationen auf diesen Materialien sind 0,01 bis 10 000 ppm. Solche Köder sind insbesondere effizient, wenn auch noch Pheromone eingesetzt werden und Holz verwendet wird, welches schon von Pilzen befallen ist. Solche Anwendungsarten werden etwa in U.S. Patent Nr. 5 151 443 diskutiert.

Die Macrolide gemäss Teil (C) der Erfindung sind auf dem Gebiet der Bekämpfung von Mollusken und Holzschädlingen bei günstiger Warmblüter-, Fisch- und Pflanzenverträglich-keit bereits bei niedrigen Anwendungskonzentrationen präventiv und/oder kurativ wertvolle Wirkstoffe mit einem sehr günstigen bioziden Spektrum. Die erfindungsgemässen Wirkstoffe sind gegen alle oder einzelne Entwicklungsstadien von normal sensiblen, aber auch von resistenten, Mollusken und Holzschädlingen, besonders Termiten, wirksam. Die molluskizide Wirkung der erfindungsgemässen Wirkstoffe kann sich dabei direkt, d. h. in einer Abtötung der Schädlinge, welche unmittelbar oder erst nach einiger Zeit eintritt, oder indirekt, z.B. in einer verminderten Eiablage und/oder Schlupfrate, zeigen, wobei die gute Wirkung einer Abtötungsrate (Mortalität) von mindestens 50 bis 60% entspricht.

Mit den Wirkstoffen gemäss Teil (C) der Erfindung kann man Schäden von Mollusken insbesondere an Pflanzen, vor allem an Nutz- und Zierpflanzen in der Landwirtschaft, im Gartenbau und im Forst, oder an Teilen, wie Früchten, Blüten, Laubwerk, Stengeln, Knollen oder Wurzeln, solcher Pflanzen auftretende Schädlinge des erwähnten Typus bekämpfen, d. h. eindämmen oder vernichten, wobei zum Teil auch später zuwachsende Pflanzenteiie noch gegen diese Schädlinge geschützt werden.

Als Zielkulturen bei der Bekämpfung von Mollusken kommen insbesondere Getreide, wie Weizen, Gerste, Roggen, Hafer, Reis, Mais oder Sorghum; Rüben, wie Zucker- oder Futterrüben; Obst, z.B. Kem-, Stein- und Beerenobst, wie Äpfel, Birnen, Pflaumen, Pfirsiche, Mandeln, Kirschen oder Beeren, z.B. Erdbeeren, Himbeeren oder Brombeeren; Hülsenfrüchte, wie Bohnen, Linsen, Erbsen oder Soja; Ölfrüchte, wie Raps, Senf, Mohn, Oliven, Sonnenblumen, Kokos, Rizinus, Kakao oder Erdnüsse; Gurkengewächse, wie Kürbisse, Gurken oder Melonen; Fasergewächse, wie Baumwolle, Flachs, Hanf oder Jute; Zitrusfrüchte, wie Orangen, Zitronen, Pampelmusen oder Mandarinen; Gemüse, wie Spinat, Kopfsalat, Spargel, Kohlarten, Möhren, Zwiebeln, Tomaten, Kartoffeln oder Paprika; Lorbeergewächse, wie Avocado, Cinnamonium oder Kampfer; sowie Tabak, Nüsse, Kaffee, Eierfrüchte, Zuckerrohr, Tee, Pfeffer, Weinreben, Hopfen, Bananengewächse, Naturkautschukgewächse und Zierpflanzen, in Betracht.

Weitere Anwendungsgebiete der erfindungsgemässen Wirkstoffe sind der Schutz von Vorräten und Lagern und von Material vor Mollusken und Holzschädlingen.

Die Mittel gemäss Teil (C) der Erfindung eignen sich auch für den Schutz von pflanzlichem Vermehrungsgut, z.B. Saatgut, wie Früchten, Knollen oder Körnern, oder Pflanzenstecklingen, vor Gastropoden und Termiten, besonders Gastropoden. Das Vermehrungsgut kann dabei vor dem Ausbringen mit dem Mittel behandelt, Saatgut z.B. vor der Aussaat gebeizt, werden. Die erfindungsgemässen Wirkstoffe können auch auf Samenkörner aufgebracht werden (Coating), indem man die Körner entweder in einem flüssigen Mittel tränkt oder sie mit einem festen Mittel beschichtet. Das Mittel kann andererseits auch beim Ausbringen des Vermehrungsguts auf den Ort der Einsaat, z.B. bei der Aussaat in die Saatfurche, appliziert werden. Diese Behandlungsverfahren für pflanzliches Vermehrungsgut und das so behandelte pflanzliche Vermehrungsgut sind weitere Gegenstände der Erfindung.

Die folgenden Beispiele dienen der Erläuterung gemäss Teil (C) der Erfindung. Sie schränken die Erfindung nicht ein.

Formulierungsbeispiele

Beispiel F3: Herstellung eines Schneckenkorns

In einen Mischer werden nacheinander 40 kg Rapsschrot (Verhältnis entölter/nichtentölter Rapsschrot = 65:35), 2,6 kg einer fein gemahlenen Vormischung, welche 2,1 kg Macrolid und 500 g hochdisperser Kieselsäure enthält, 4,7 kg kalt vernetzende Maisstärke, 540 g Hamstoff-Formaldehyd-Harz, 100 g Isopropanol, 3 kg Zuckerrübenmelasse und 140 g blauer Farbstoff (1,4-Di(isobutylamino)-anthrachinon) gegeben und innig vermischt. Anschliessend wird über eine Matrizenpresse verpresst. Man lässt abkühlen, trocknen und siebt Feinteile über ein 0,5 mm-Sieb ab. Man erhält so eine gebraudisfertige Schneckenköder-Formulierung.

Man kann anstelle der vorgenannten Verpressung über eine Matrizenpresse auch eine andere übliche Verdichtungsmethode zur Herstellung der Schneckenköder-Formulierung anwenden. ♦ ·· ···· «fff« ···· -156-

Anwendunqsbeispiele

Beispiel A1: Test zur Ermittlung der Wirksamkeit von Schneckenkom gegen Deroceras reti-culatum

Die Prüfung der Wirksamkeit von Schneckenkom gegen kleine Schneckenarten, z.B. De-roceras-Arten, erfolgt in Kästen aus Polycarbonat mit einer Grundfläche von 17 cm x 22 cm. Der Boden des Kastens wird mit mehreren Lagen Zellstoffpapier ausgelegt, das ausreichend angefeuchtet wird. Auf die eine Hälfte der Versuchsfläche wird das Schneckenkom mit einer Aufwandmenge von 20 Partikeln gleichmässig ausgestreut; die andere Hälfte bleibt unbehandelt. Zur Vermeidung einer Zwangssituation erhalten die Schnecken zusätzlich unbehandeltes Beifutter, zwei Kartoffelhälften in diagonal gegenüberliegende Ecken des Kastens. Pro Kasten werden 10 adulte genetzte Ackerschnecken (Derocers reticulatum) auf die unbehandelte Fläche gesetzt. Jede Prüfung erfolgt mit drei Wiederholungen. Temperatur und Luftfeuchte werden während der gesamten Versuchsdauer annähernd konstant gehalten: 19° und 90 bis 95% relative Luftfeuchte. Täglich, an sieben aufeinanderfolgenden Tagen, wird der Zustand der Schnecken überprüft und bonitiert. Neben der Mortalitätsrate wird auch die Anzahl der Tiere mit Schadsymptomen bei der Beurteilung der Wirksamkeit berücksichtigt.

Die erfindungsgemässen Macrolide zeigen gute Wirkung in diesem Test.

Beispiel A2: Test zur Ermittlung der Wirksamkeit von Schneckenkom gegen Arion rufus

Die Wirksamkeit von Schneckenkömem gegen grössere Schneckenarten wird in drahtbespannten Versuchskästen aus Kunststoff geprüft. Jeder Kasten hat eine Grundfläche von 0,25 m2. Den Boden des Kastens bedeckt eine 2 bis 3 cm hohe Schicht Blumenerde. Diese wird vor Versuchsbeginn ausreichend angefeuchtet Auf die linke Häifte der Versuchsfläche wird das Schneckenkom mit einer Aufwandmenge von 3,1 g gleichmässig ausgestreut; die rechte Hälfte bleibt unbehandelt. Zur Vermeidung einer Zwangssituation erhalten die Schnecken zusätzlich unbehandeltes Beifutter zwei Kartoffelhälften in diagonal gegenüberliegende Ecken jedes Kastens. Pro Kasten werden 10 adulte rote Wegschnecken (Arion rufus) auf die unbehandelte Fläche gesetzt. Jede Prüfung erfolgt mit vier Wiederholungen. Temperatur und Luftfeuchte werden während der gesamten Versuchsdauer annähernd kon- • · · · · ··· ·· • · · · · · · • · · · · ♦ · ··· ···· ···· ···· ·· -157-stant gehalten: 19° und 90 bis 95% relative Luftfeuchte. Täglich, an sieben aufeinanderfolgenden Tagen, wird der Zustand der Schnecken überprüft und bonitiert. Neben der Mortalitätsrate wird auch die Anzahl der Tiere mit Schadsymptomen bei der Beurteilung der Wirksamkeit berücksichtigt.

Die erfindungsgemässen Macrolide zeigen gute Wirkung in diesem Test.

Beispiel A3: Test zur Ermittlung der systemischen Wirksamkeit gegen Deroceras reticulatum a) Salatpflanzen

Es wird eine Testlösung durch Lösen einer Probe eines Macrolids in 1 ml Aceton und Auffüllen mit Wasser auf 50 ml hergestellt. In diese Lösung werden die vorher mit frischem Wasser gereinigten Wurzeln junger, 6 cm hoher Salatpflanzen während mindestens zweier Tage eingetaucht. Für jeden Test werden nun einzelne Blätter von diesen Salatpflanzen geschnitten und auf ein Filterpapier in einer 9 cm-Petrischale gelegt. Auf jedes Filterpapier wird 1 ml Wasser pipettiert, um die Blätter während des Versuchs feucht zu halten. Anschliessend werden in jede Petrischale zwei mittelgrosse Schnecken gegeben und über eine Zeit von zwei Tagen die Menge an gefressenen Blättern und die Mortalität festgestellt.

Die erfindungsgemässen Macrolide zeigen gute Wirkung in diesem Test. b) Saatgut

In 5 versiegelte Kästen mit einer Grundfläche von 35 cm x 20 cm, welche Komposterde enthalten, werden je 10 Schnecken gegeben. In vier Kästen werden je 100 behandelte Winter-weizenkömer gleichmässig gestreut. Im fünften Kasten werden zur Prüfung der Repellentwirkung auf die eine Seite des Kastens 50 behandelte und auf die andere Seite 50 unbehandelte Winterweizenkömer verteilt.

Die erfindungsgemässen Macrolide zeigen gute Wirkung in diesem Test. • · • • · • ··· • · • • · • · ··· ···· ···· ···· ·· -158-

Beispiel A4; Wirkung gegen Termiten

Holzköder werden mit verschiedenen Mengen Macrolid behandelt und der Einfluss auf Schlupfrate und Oberleben von Termiten getestet. Lösungen mit Konzentrationen von 0 ppm, 0,1 ppm, 100 ppm and 1000 ppm der Testsubstanz in Aceton werden verwendet. Wasser wird in der KontrollStudie verwendet. Die Köder bestehen aus Pinienholz, welches für vier Monate in natürlicher Umgebung aufbewahrt wurde.

Die Termiten werden von in freier Umgebung befallenen Holzstücken gesammelt. Für die Holzköderstudie wird das Holz während 48 Stunden in einem Ofen bei 80°C gehalten. Dann wird das getrocknete Holz gewogen und die Stücke für 18 Stunden in Lösungen des Wirkstoffs der gewünschten Konzentration gelegt. Dann werden die Holzstücke aus den Lösungen genommen, an der Luft getrocknet und wieder gewogen. Um die Wirkung der Köder gegen Termiten zu ermitteln, werden die so behandelten Holzstücke in Petrischalen auf eine dünne Schicht unbehandelter Erde gelegt.

Die Termiten (50 Arbeiter und 2 Soldaten) werden in jede Petrischale gegeben. Die Schalen werden während 8 Wochen jede Woche dreimal inspiziert. Entwicklung der Insekten, Abnormalitäten bzw. Mortalitäten werden aufgezeichnet Nach 8 Wochen werden die Holzblök-ke mit Wasser gespült und im Ofen wieder während 48 Stunden bei 80°C getrocknet. Es wird anschliessend wiederum das Gewicht jedes Holzstückes ermittelt. Die Gewichtsdifferenz ergibt die Menge des von den Termiten konsumierten Holzes.

Die erfindungsgemässen Macrolide zeigen einen gute Wirkung in diesem Test.

Claims

Patentansprüche Verfahren zum Schulz von pflanzlichem Vermehrungagut und später zuwachsenden Pflanzenteilen vor Schädlingsbefall, dadurch gekennzeichnet, dass ein Schädlingsbekämpfungsmittel, welches mindestens eine Macrolidverbindung, in freier Form oder in agrochemisch verwendbarer Salzform, als Wirkstoff und mindestens einen Hilfsstoff enthält, in naher räumlicher Nachbarschaft zu oder räumlich zusammen mit der Auspflanzung oder Einsaat des Vermehrungsguts auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat eingesetzt wird. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass der Wirkstoff Abamectin in freier Form ist. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass als Wirkstoff Emamectin, in freier Form oder in Salzform, eingesetzt wird. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei dem Vermehrungsgut um Keimlinge, Rhizome, Setzlinge, Stecklinge oder Saatgut handelt. Verfahren nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei dem pflanzlichen Vermehrungsgut um Saatgut handelt. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei den Schädlingen um Vertreter der Ordnung Lepidoptera handelt. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet, dass der Einsatz des Mittels in der Weise erfolgt, dass mit dem Mittel vorbehandeltes Vermehrungsgut auf den Ort der Auspflanzung oder Einsaat ausgepflanzt oder eingesät wird. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, dass es sich bei der Vorbehandlung des Vermehrungsguts um eine Saatgutbeizung handelt.
9. Verfahren zum Schutz von Saatgut und später zuwachsenden Pflanzenteilen vor Befall durch Schädlinge, die aus der Klasse Insecta, der Klasse Arachnida und der Klasse Nematoda ausgewählt sind, welches Verfahren die Behandlung des Saatgutes vor der Auspflanzung oder Einsaat mit einem Schädlingsbekämpfungsmittel umfasst, das Emamectin, Abamectin oder Spinosad in freier Form oder in agrochemisch verwendbarer Salzform als Wirkstoff sowie mindestens einen Hilfsstoff enthält.
10. Verfahren zur Bekämpfung von Schädlingen, die aus der Klasse Insecta, der Klasse Arachnida und der Klasse Nematoda ausgewählt sind, welches Verfahren die Behandlung eines Saatgutes der Kulturpflanze vor der Auspflanzung oder Einsaat mit einem Schädlingsbekämpfungsmittel umfasst, das Emamectin, Abamectin oder Spinosad in freier Form oder in agrochemisch verwendbarer Salzform als Wirkstoff sowie mindestens einen Hilfsstoff enthält.
11. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 10, dadurch gekennzeichnet, dass der Wirkstoff Abamectin in freier Form ist.
12. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 11, dadurch gekennzeichnet, dass der Schädling der Klasse Nematoda angehört.
13. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 12, dadurch gekennzeichnet, dass das Schädlingsbekämpfungsmittel eine Suspensionskonzentrat-Formulierung oder ein benetzbares Pulver ist.
14. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 13, dadurch gekennzeichnet, dass das Saatgut aus Getreide, Reis, Baumwolle, Mais, Soja, Raps, Gemüse, Kartoffeln, Sonnenblumen, Zuckerrübe und Sorghum ausgewählt ist.
15. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 14, dadurch gekennzeichnet, dass das Saatgut ein genetisch modifiziertes Saatgut ist, das ein oder mehrere Gene enthält, welche(s) pestizide Resistenz exprimieren.
16. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 15, dadurch gekennzeichnet, dass das Schädlingsbekämpfungsmittel weiters eine Verbindung enthält, die aus Azoxystrobin; Bitertanol; Carboxin, Cu20; Cymoxanil; Cyproconazole; Cyprodinil; Dichlofluamid; ·· • · • · • · ·· ♦· ·· ·« » · ♦ · · · · • ♦ ···· ♦ ··· ···· ·· - 161 - Difenoconazol; Diniconazol; Epoxiconazol; Fenpiclonil; Fludioxonil; Fluquiconazol; Flusilazol; Flutriafol; Furalaxyl; Guazatin; Hexaconazol; Hymexazol; Imazalil; Imiben-conazol; Ipconazol; Kresoxim-methyl; Mancozeb; Metalaxyl; R-Metalaxyl; Metconazol; Oxadixyl; Pefurazoat; Penconazol; Pencycuron; Prochloraz; Propiconazol; Pyroquilon; SSF-109; Spiroxamin; Tebuconazol; Thiabendazol; Tolifluamide; Triazoxide; Triadi-mefon; Triadimenol; Triflumizol; Triticonazol und Uniconazol ausgewählt ist.
17. Verfahren nach einem der Ansprüche 9 bis 16, dadurch gekennzeichnet, dass das Schädlingsbekämpfungsmittel weiters eine aus NI-25, TI-304, TI-435, MTI-446, Fipro-nil, Thiacloprid, Imidacloprid, Thiamethoxam und Tefluthrin ausgewählte Verbindung enthält. o
18. Schädlingsbekämpfungsmittel, das aus Suspensionskonzentrat und benetzbarem Pulver ausgewählt ist und Emamectin, Abamectin oder Spinosad in freier Form oder in agrochemisch verwendbarer Salzform als Wirkstoff sowie mindestens einen Hilfsstoff enthält.
19. Mittel nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, dass der Wirkstoff Abamectin in freier Form ist.
20. Mittel nach Anspruch 18 oder 19, dadurch gekennzeichnet, dass das Schädlingsbekämpfungsmittel weiters eine aus Azoxystrobin; Bitertanol; Carboxin; Cu20; Cymoxanil; Cyproconazol; Cyprodinil; Dichlofluamid; Difenoconazol; Diniconazol; Epoxiconazol; q Fenpiclonil; Fludioxonil; Fluquiconazol; Flusilazol; Flutriafol; Furalaxyl; Guazatin; Hexa conazol; Hymexazol; Imazalil; Imibenconazol; Ipconazol; Kresoxim-methyl; Mancozeb; Metalaxyl; R-Metalaxyl; Metconazol; Oxadixyl; Pefurazoat; Penconazol; Pencycuron; Prochloraz; Propiconazol; Pyroquilon; SSF-109; Spiroxamin; Tebuconazol; Thiabendazol; Tolifluamide; Triazoxide; Triadimefon; Triadimenol; Triflumizol; Triticonazol und Uniconazol ausgewählte Verbindung enthält.
21. Mittel nach einem der Ansprüche 18 bis 20, dadurch gekennzeichnet, dass das Schädlingsbekämpfungsmittel weiters eine aus NI-25, TI-304, TI-435, MTI-446, Fipronil, Thiacloprid, Imidacloprid, Thiamethoxam, Spinosad und Tefluthrin ausgewählte Verbindung enthält.

- 162- 22. 23. 24. 25. Verwendung des Mittels nach einem der Ansprüche 18 bis 21 zur Saatgutbeizung. Verwendung des Mittels nach einem der Ansprüche 18 bis 21 zur Bekämpfung des Befalls von Saatgut und später zuwachsenden Pflanzenteilen durch einen Repräsentanten der Klasse Nematoda, wobei das Saatgut vor der Auspflanzung oder Einsaat mit dem Mittel behandelt wird. Saatgut, dadurch gekennzeichnet, dass es mit einem Schädlingsbekämpfungsmittel nach einem der Ansprüche 18 bis 21 behandelt ist. Saatgut nach Anspruch 24, dadurch gekennzeichnet, dass das Saatgut ein genetisch modifiziertes Saatgut ist.

Wien, am 7. Dezember 2009 O