AT500910B1 - Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen - Google Patents

Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen Download PDF

Info

Publication number
AT500910B1
AT500910B1 AT1302004A AT1302004A AT500910B1 AT 500910 B1 AT500910 B1 AT 500910B1 AT 1302004 A AT1302004 A AT 1302004A AT 1302004 A AT1302004 A AT 1302004A AT 500910 B1 AT500910 B1 AT 500910B1
Authority
AT
Austria
Prior art keywords
formula
mmol
hydroxynitrile lyase
reaction
emulsion
Prior art date
Application number
AT1302004A
Other languages
English (en)
Other versions
AT500910A1 (de
Original Assignee
Dsm Fine Chem Austria Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Dsm Fine Chem Austria Gmbh filed Critical Dsm Fine Chem Austria Gmbh
Priority to AT1302004A priority Critical patent/AT500910B1/de
Priority to PCT/EP2005/000585 priority patent/WO2005073389A1/de
Publication of AT500910A1 publication Critical patent/AT500910A1/de
Application granted granted Critical
Publication of AT500910B1 publication Critical patent/AT500910B1/de

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/008Preparation of nitrogen-containing organic compounds containing a N-O bond, e.g. nitro (-NO2), nitroso (-NO)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/001Amines; Imines
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/02Oxygen as only ring hetero atoms
    • C12P17/04Oxygen as only ring hetero atoms containing a five-membered hetero ring, e.g. griseofulvin, vitamin C

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

2 AT 500 910 B1 ß-Hydroxynitroverbindungen sind wichtige Bausteine in der Synthese wertvoller biologisch aktiver Substanzen. Sie können durch die Henry-Reaktion durch Umsetzung eines Aldehyds oder Ketons mit einem Nitroalkan synthetisiert werden. Je nach Struktur der Ausgangsmaterialien werden dabei bis zu zwei Chiralitätszentren neu gebildet. Die so erhaltenen Produkte kön-5 nen Folgereaktionen unterworfen werden, beispielsweise durch Überführung in die entsprechenden Aminoalkohole oder ß-Hydroxycarbonylverbindungen.
Die Herstellung dieser ß-Hydroxynitroverbindungen erfolgt durch die Anlagerung des Nitroal-kans an die Carbonylgruppe des Aldehyds oder Ketons, wobei im Falle des Einsatzes von io Aldehyden oder unsymmetrischen Ketonen als Reaktionspartner Enantiomerengemische optisch aktiver Nitroalkohole entstehen.
Da in einem Isomerengemisch einer biologisch aktiven Substanz in der Regel nur ein Isomer das gewünschte Eigenschaftsprofil aufweist, ist die Entwicklung stereoselektiver Prozesse von 15 großer Bedeutung. Um dies zu erreichen, ist bekannt, die Anlagerung von Nitroalkanen an Carbonylverbindungen in Gegenwart eines chiralen Katalysators durchzuführen, wobei eine Anreicherung eines Stereoisomers in der Reaktionsmischung erzielt werden kann. Allerdings ist die Stereoselektivität dieser Prozesse in der Regel gering. 20 So ist etwa in der EP 0 947 498 A ein diastereoselektives und enantioselektives Verfahren zur Herstellung von optisch aktiven, nichtracemischen Nitroalkoholen durch Umsetzung von Aldehyden mit Nitroalkanen oder Nitroethanol in Gegenwart von Heterobimetallkatalysatoren beansprucht. 25 Die EP 0 960 876 A beschreibt ein Verfahren zur Herstellung von (1R, 2S)-1-Phenyl-2-nitroalkoholen durch Umsetzung von Benzaldehyd mit Nitroalkanen in Gegenwart von Aminen bei Temperaturen unter 0°C. Die erzielten Enantioselektivitäten sind allerdings nur gering. Ein ähnlicher Prozess wird in der US 5962737 A beschrieben, wobei die dabei gewonnenen Enantiomere der racemischen threo-Nitroalkohole nach Reduktion zu den entsprechenden Aminoal-30 koholen durch Einwirkung von Weinsäuresalzen getrennt werden.
Die US 4933505 A beschreibt ein Verfahren zur Durchführung einer diastereoselektiven Nitro-aldolreaktion in Anwesenheit von nichtchiralen Lewissäuren auf Titan-, Zirkon- oder Aluminiumbasis. Hierbei ist allerdings die Verwendung von Lithiumnitronatanionen anstelle von Nitroalka-35 nen und die Einhaltung tiefer Temperaturen erforderlich. Enantiomerenangereicherte Produkte können mit dieser Methode nicht erhalten werden.
Die enantioselektive Addition von Nitromethan an Aldehyde kann gemäß Angew. Chem. 2002, 114, 889 - 891 in Gegenwart von dinuklearen Zinkkatalysatoren mit chiralen, nichtracemischen 40 Liganden, gemäß J. Am. Chem. Soc. 2003, 125, 12692 - 12693 in Gegenwart von chiralen, nichtracemischen Bisoxazolinkupferkomplexen, oder gemäß Tetrahedron: Asymmetry 1994, 5, 1393 - 1402 in Gegenwart von chiralen, nichtracemischen Guanidinderivaten durchgeführt werden. 45 Die Erfindung stellt sich daher die Aufgabe, ein Verfahren bereitzustellen, das die Herstellung von enatiomerenreinen oder -angereicherten ß-Hydroxynitroverbindungen aus den korrespondierenden Carbonylverbindungen auf einfache Weise, in hohen Ausbeuten und mit hoher Diastereomeren- und Enantiomerenreinheit ermöglicht. so Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß gelöst durch ein Verfahren zur Herstellung von ß-Hydroxynitroverbindungen der Formel (I) 55 5 5 3 AT 500 910B1
in der und R2 unabhängig voneinander einen gegebenenfalls ein- oder mehrfach substituierten Ci-C2o-Alkyl- oder C6-C14-Arylrest, einen Heteroarylrest aus der Gruppe Pyrrolyl, Furyl, io Thienyl oder Pyridyl, sowie Kombinationen davon bedeuten, oder einer der Reste Wasserstoff bedeutet, und R3 und R4 unabhängig voneinander einen gegebenenfalls substituierten ^-Ο20-Alkylrest oder Wasserstoff bedeuten, wobei ein Aldehyd oder ein Keton der Formel (II) O (H)
20 in der Ri und R2 wie oben definiert sind, mit einem Nitroalkan der Formel (III) R3R4CHN02 (III) in der R3 und R4 wie oben definiert sind, zu den entsprechenden ß-Hydroxynitroverbindungen 25 der Formel (I) umgesetzt wird, welches dadurch gekennzeichnet ist, dass die Umsetzung in Gegenwart einer Hydroxynitrillyase durchgeführt wird.
Unerwarteterweise konnte die Aufgabe durch die Anlagerung von Nitroalkanen an das Carbo-nylkohlenstoffatom von Aldehyden und unsymmetrischen Ketonen in Gegenwart einer Hydro-30 xynitrillyase gelöst werden.
Aldehyde oder Ketone, die sich für das erfindungsgemäße Verfahren eignen, sind bekannt oder wie üblich herstellbar. 35 Unter C^C^-Alkyl sind gesättigte oder ein- oder mehrfach ungesättigte, lineare, verzweigte oder cyclische, primäre, sekundäre oder tertiäre Kohlenwasserstoffreste zu verstehen. Dies sind beispielsweise Ci-C20-Alkylreste wie etwa Methyl, Ethyl, Propyl, iso-Propyl, Propenyl, Butyl, iso-Butyl, t-Butyl, Butenyl, 1,3-Butadieny, Butinyl, Pentyl, Cyclopentyl, iso-Pentyl, neo-Pentyl, Pen-tenyl, Pentinyl, Hexyl, iso-Hexyl, Cyclohexyl, Cyclohexylmethyl, 3-Methylpentyl, 2,2-Dimethyl-40 butyl, 2,3-Dimethylbutyl, Octyl, Cyclooctyl, Decyl, Cyclodecyl, Dodecyl, Cyclododecyl, u.s.w.
Bei diesen Resten können aber auch ein oder mehrere C-Atome in der Kette durch ein Sauerstoffatom, ein Stickstoffatom, ein Schwefelatom, oder eine SO- oder S02-Gruppe ersetzt sein, sodass Ether, Amide, Amine, Imine, Thioether, Sulfoxide und Sulfonyle erhalten werden. 45
Die Alkylgruppe kann gegebenenfalls ein- oder mehrfach durch unter den Reaktionsbedingungen inerte Gruppen substituiert sein. Geeignete Substituenten sind beispielsweise gegebenenfalls substituierte Aryl- oder Heteroarylgruppen, wie Phenyl-, Phenoxy- oder Indolylgruppen, Halogen-, Cyano-, Hydroxy-, Hydroxy-Ci-C5-Alkyl-, Ci-C6-Alkoxy-, Aryloxy-, Ci-Ce-Alkylthio-, so Amino-, Alkylamino-, Arylamino-, Ether-, Thioether-, Carbonyl-, Alkoxycarbonyl-, Carboxyl-, Carbonsäureester-, Carbonsäureamid-, Sulfoxid-, Sulfon-, Sulfonsäure-, Sulfonsäureester-, Sulfinsäure-, Mercaptan-, Nitro- oder Azidogruppen.
Unter Aryl sind bevorzugt C6-Ci4-Arylgruppen zu verstehen, wie etwa Pheny, Biphenyl, 55 Naphthyl, Indenyl, Fluorenyl, u.s.w. Die Arylgruppe kann dabei gegebenenfalls ein- oder mehr- 4 AT500 910 B1 fach durch die bereits oben angeführten Substituenten substituiert sein.
Unter Heteroaryl sind Pyrrolyl, Furyl, Thienyl oder Pyridyl zu verstehen. Die Heteroarylgruppe kann dabei gegebenenfalls ein- oder mehrfach durch die bereits oben angeführten Substituen-5 ten substituiert sein. Für das erfindungsgemäße Verfahren eignen sich Hydroxynitrillyasen sowohl in nativer als auch in rekombinanter Form, die entweder als solche oder immobilisiert vorliegen können. Es ist nicht notwendig, dass diese Enzyme in reiner Form vorliegen, sondern sie können auch in Form von 10 ganzen Zellen oder Rohlysaten eingesetzt werden. Insbesondere eignen sich die Hydroxynitrillyasen (HNLs) aus Hevea brasiliensis, Manihot esculenta, Sorghum sp., Prunus amygdalus oder Prunus serotina. Bevorzugt werden Hydroxynitrillyasen aus Hevea brasiliensis und Prunus amygdalus verwendet. 15 Geeignete rekombinante HNLs werden beispielsweise aus gentechnisch modifizierten Mikroorganismen, wie etwa Pichia pastoris, E. Coli oder Saccharomyces cerevisiae erhalten. Bevorzugt werden rekombinante HNLs aus Pichia pastoris eingesetzt.
Die erfindungsgemäße Reaktion findet vorzugsweise im organischen, wässrigen oder Zweipha-20 sensystem oder in Emulsion statt.
Dabei wird im wässrigen System eine wässrige, eine Hydroxynitrillyase enthaltende Lösung oder Pufferlösung verwendet. Beispiele dafür sind Acetatpuffer, Boratpuffer, Phthalatpuffer, Citratpuffer, Phosphatpuffer u.s.w oder Gemische dieser Pufferlösungen. Der pH-Wert dieser 25 Lösung liegt dabei bei pH 2 bis 9.
Als organische Phase können mit Wasser nicht oder geringfügig mischbare aliphatische oder aromatische Kohlenwasserstoffe, die gegebenenfalls halogeniert sind, Alkohole, Ether oder Ester oder Gemische davon verwendet werden. Geeignet sind beispielsweise Benzol, Toluol, 30 Xylol, Diethylether, Diisopropylether, t-Butylmethylether, Dichlormethan, 1,2-Dichlorethan, 1,1,1-Trichlorethan, 1,1,2-Trichlorethan, 1,1,2,2-Tetrachlorethan, Nitromethan, Nitroethan, Essigsäureethylester, Essigsäureisopropylester oder Essigsäurebutylester. Als wassermischbare Lösungsmittel können Alkohole oder aprotisch dipolare Lösungsmittel wie Dimethylsulfoxid, Formamid oder Dimethylformamid verwendet werden. Auch die sogenannten ionischen Flüssigkei-35 ten sind als Lösungsmittel geeignet. Die Umsetzung kann jedoch auch in einem Zweiphasensystem oder in Emulsion erfolgen.
Die Reaktionsmischung wird bei Temperaturen von etwa -5 bis +50°C, bevorzugt bei 0 bis 20°C, insbesondere bei Raumtemperatur, gerührt oder geschüttelt. 40
Pro g Aldehyd oder Keton werden etwa 10 bis 300 g Verdünnungsmittel zugesetzt. Pro Mol eingesetzte Aldehyd- oder Ketogruppe werden mindestens ein Mol, bevorzugt 5 bis 15 Mole, Nitroalkan zugegeben. 45 Dabei wird das Nitroalkan auf das Carbonylkohlenstoffatom des eingesetzten Aldehyds oder Ketons übertragen und es entsteht eine enantiomerenreine oder -angereicherte, dem eingesetzten Aldehyd oder Keton entsprechende, optisch aktive ß-Hydroxynitroverbindung.
Vorzugsweise werden als Verbindung der Formel (II) ein gegebenenfalls substituierter Benzal-50 dehyd und als Nitroalkan der Formel (III) Nitromethan oder Nitroethan eingesetzt. Bevorzugte Benzaldehyde sind beispielsweise 2-, 3-, 4-Chlorbenzaldeyd, 2-, 3-, 4-Brombenzaldeyd, 2-, 3-, 4-Hydroxybenzaldeyd, 2-, 3-, 4-Methylbenzaldeyd, 2-, 3-, 4-Methoxybenzaldeyd, 2-, 3-, 4-Phenoxybenzaldeyd, 1,3-Dihydroisobenzofuran-5-carbaldeyhd. Als Nitroalkan sind auch 1-, 2-Nitropropan, Nitroethanol, Nitroessigsäure, Nitroaceton bevorzugt. 55 5 AT 500 910 B1
Ein weiterer Aspekt der Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Aminoalkoholen, welches dadurch gekennzeichnet, dass entsprechende ß-Hydroxynitroverbindungen der Formel (I) nach dem erfindungsgemäßen Verfahren hergestellt und anschließend reduziert werden. 5 Hierzu kann beispielsweise eine Hydrierung mit Pd/C, Raney Nickel, Pt02 bzw. NaBH4, LiAIH4, Säure (Essigsäure, HCl, H2S04) / Metall (Pt, Sn, Fe, In, Zn) durchgeführt werden.
Die Erfindung wird nachfolgend anhand von Beispielen näher erläutert. io Beispiel 1: 250 pl Benzaldehyd (2,46 mmol) wurden in 1 ml tert-Butylmethylether gelöst und mit 5 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (5000 lU/ml, aus Pichia pastoris, pH 6,5) versetzt. Nach Zugabe von 1,40 ml Nitromethan (25,85 mmol) wurde für 15 25 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Extraktion mit Ethylacetat, Trocknen über wasserfrei em Natriumsulfat, Abdestillieren des Lösungsmittels im Vakuum und säulenchromatographische Reinigung ergab optisch aktives (S)-2-Nitro-1-phenylethanol als einheitliche Substanz (118 mg farbloses öl, 45 % isolierte Ausbeute). 20 [a]D20 + 19,4° (c 1,16 C2H5OH) ee = 88 % (HPLC) 1H-NMR: δ (ppm) = 2.90 (br. s, 1H), 4.52 (dd, 7=13Hz, 7=3Hz, 1H), 4.61 (dd, 7=13Hz, 7=10Hz, 1H), 5.46 (dd, 7=10Hz, 7=3Hz, 1H), 7.36-7.84 (m, 5H) 13C-NMR: δ (ppm) = 71.25, 81.46, 126.19, 129.24, 129.29, 138.36 25 IR: 3545, 3034, 2921,1565, 1379 cm'1 CHN-Analyse: berechnet C 57.48% H 5.43% N 8.38%; gefunden C 57.53% H 5.57% N 8.26% Beispiel 2: 30 305 μΙ Benzaldehyd (3,00 mmol) wurden in 4,4 ml tert-Butylmethylether gelöst und mit 4 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 2 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) versetzt. Nach 10 Minuten wurden 1.62 ml Nitromethan (30,15 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 26 Stunden wurden 84 % (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enantiomerenü- 35 berschuss von 84 % erhalten.
Beispiel 3: 305 μΙ Benzaldehyd (3,00 mmol) wurden in 4,4 ml tert-Butylmethylether gelöst und mit 4 ml 40 einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 2 ml 100 mM Natriumcitratpuffer pH 4,8) vernetzt. Nach 10 Minuten wurden 1.62 ml Nitromethan (30,15 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 26 Stunden wurden 8 % (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enantiomerenü-berschuss von 84 % erhalten. 45
Beispiel 4:
Zu 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (5000 lU/ml, aus Pichia pastoris, pH 6,5) wurden 10 ml tert-Butylmethylether und anschließend so 102 μΙ Benzaldehyd (1,00 mmol) und 537 μΙ Nitromethan (9,99 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 19 Stunden wurde (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enantiomerenüberschuss von 96 % erhalten.
Beispiel 5: 55 6 AT 500 910 B1
Zu 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (5000 lll/ml, aus Pichia pastoris, pH 6,5) wurden 10 ml terf-Butylmethylether und anschließend 102 μΙ Benzaldehyd (1,00 mmol) und 537 μΙ Nitromethan (9,99 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei 30°C gerührt. Nach 72 Stunden wurde (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enanti-5 omerenüberschuss von 91 % erhalten.
Beispiel 6:
Zu 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis io (5000 lU/ml, aus Pichia pastoris, pH 6,5) wurden 10 ml Ethylacetat und anschließend 102 μΙ Benzaldehyd (1,00 mmol) und 537 μΙ Nitromethan (9,99 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 18 Stunden wurde (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enantiomerenüberschuss von 97 % erhalten. 15 Beispiel 7: 152 μΙ Benzaldehyd (1,50 mmol) wurden in 2,2 ml Methylpropylimidazoliumtetrafluoroborat vorgelegt. Anschließend wurde mit 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 1 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) 20 versetzt. Nach 10 Minuten wurden 800 μΙ Nitromethan (14,89 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 3 Stunden wurden 12 % (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enantiomerenüberschuss von 32 % erhalten.
Beispiel 8: 25
Zu 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (4200 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 0,5 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) und 1,5 ml tert-Butylmethylether wurden 151 mg p-Nitrobenzaldehyd (1,00 mmol) und 537 μΙ Nitromethan (9,99 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde 15 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. An-30 schließend wurden die Phasen durch Zentrifugieren getrennt. Die organische Phase wurde über wasserfreiem Natriumsulfat getrocknet. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum abdestilliert, säulenchromatographische Reinigung ergab optisch aktives 2-Nitro-1-(4-nitrophenyl)ethanol als einheitliche Substanz (67 mg gelber Feststoff, 32 % isolierte Ausbeute).
35 ee = 26 % (HPLC) mp 71°C 1H-NMR: δ (ppm) = 3.46 (br. s, 1H), 4.58 (dd, J=14Hz, J=4Hz, 1H), 4.61 (dd, J=14Hz, J=8Hz, 1H), 5.61 (dd, J=8Hz, J=4Hz, 1H), 7.63 (d, J=9Hz, 2H), 8.25 (d, J=9Hz, 2H) 13C-NMR: δ (ppm) = 70.22, 80.91,124.39, 127.21, 145.43, 148.34 40
Beispiel 9:
Zu 6,9 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 3,5 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) und 7,6 ml Toluol 45 wurden 0,67 ml 3-Phenylpropanal (5,12 mmol) und nach 5 Minuten 2,75 ml Nitromethan (51,20 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde 48 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach Zugabe von Celite-545™ und Filtration über Celite-545™ und wasserfreiem Na2S04 wurde das verbleibende Lösungsmittel im Vakuum abdestilliert. Säulenchromatographische Reinigung ergab optisch aktives 4-Phenyl-1-nitro-2-butanol als einheitliche Substanz (189 mg weißer so Feststoff, 19 % isolierte Ausbeute).
ee = 73 % (HPLC) mp 96- 100°C 1H-NMR: δ (ppm) = 1.75 - 1.93 (m, 2H), 2.60 - 2.70 (br. s, 1H), 2.71 - 2.90 <m, 2H), 4.28-4.34 55 (m, 1H), 4.39-4.42 (m,2H), 7.19-7.34 (m, 5H) 7 AT 500 910 B1 13C-NMR: δ (ppm) = 31.56, 35.33, 67.98, 80.79, 126.59, 128.67, 128.91, 140.84 Beispiel 10: 5 Zu 6,9 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 3,5 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) und 7,6 ml Toluol wurden 0,42 ml 2-Furaldehyd (5,00 mmol) und nach 5 Minuten 2,69 ml Nitromethan (50,00 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde 48 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach Zugabe von Celite-545™ und Filtration über Celite-545™ und wasserfreiem Na2S04 wurde das io verbleibende Lösungsmittel im Vakuum abdestilliert. Säulenchromatographische Reinigung ergab optisch aktives 1-(Furan-2-yl)-2-nitroethanol als einheitliche Substanz (164 mg gelbes Öl, 20 % isolierte Ausbeute). ee = 42 % (HPLC) 15 1H-NMR: δ (ppm) = 2.96 (br s, 1H), 4.65 (dd, J=14Hz, J=3Hz, 1H), 4.76 (dd, J=14Hz, J=9Hz, 1H), 5.45 (dd, J=9Hz, J=3Hz, 1H), 3.35 - 6.38 (m, 2H), 7.40 (d, J=2Hz, 1H) 13C-NMR: δ (ppm) = 65.08, 78.61, 108.47, 110.92, 143.45, 150.90
Beispiel 11: 20
Zu 8,4 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 4,2 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) und 9,2 ml Toluol wurden 0,75 ml Hexanal (6,20 mmol) und nach 5 Minuten 3,33 ml Nitromethan (62,00 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde 45 Stunden bei Raumtemperatur gerührt. Nach Zugabe von 25 Celite-545™ und Filtration über Celite-545™ und wasserfreiem Na2S04 wurde das verbleibende Lösungsmittel im Vakuum abdestilliert. Säulenchromatographische Reinigung ergab optisch aktives 1-Nitro-2-heptanol als einheitliche Substanz (190 mg farbloses Öl, 19 % isolierte Ausbeute). 30 ee = 90 % (HPLC) 1H-NMR: δ (ppm) = 0.89 (t, J=6Hz, 3H), 1.22 -1.38 (m, 5H), 1.40 -1.56 (m, 3H), 2.65 (br s, 1H), 4.28 - 4.33 (m, 1H), 4.37 (dd, J=13, J=9, 1H), 4.43 (dd, J=13, J=3, 1H), 13C-NMR: δ (ppm) = 14.17, 22.70, 25.08, 31.69, 33.93, 68.95, 80.92 35 Beispiel 12: 7,4 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris) wurden mit 3,7 ml Phoshatpuffer (50 mM, pH 7,0) und 7,1 ml te/f-Butylmethylether bis zur Bildung einer Emulsion gerührt. Anschließend wurden 0,56 ml 40 Benzaldehyd (2,52 mmol) und nach 5 Minuten 4,1 ml Nitroethan (55,19 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur für 48 Stunden gerührt. Durch Zugabe von Celite™ und Filtration über Celite™ und Na2SÖ4 wurden Enzym und Wasser entfernt. Abdestillieren des Lösungsmittels im Vakuum und säulenchromatographische Reinigung ergab optisch aktives 2-Nitro-1-phenylpropanol als Diastereomerengemisch (655 mg farbloses Öl, 67 % isolierte 45 Ausbeute). erythro / threo = 9/1 eeerythro 95 % (HPLC) eethrB0 53% (HPLC) 50 1H-NMR: δ (ppm) = erythro: 1.50 (d, J-7 Hz, 3H); 2.65-2.70 (br. s, 1H); 4.70 (dq, J=7Hz, J=3Hz, 1H); 5.40 (d, J=3Hz, 1H); 7.35-7.45 (m, 5H); threo: 1.32 (d, J=7 Hz, 3H); 2.60-2.65 (br. s, 1H); 4.78 (dq, J=9Hz, J=7Hz, 1H); 5.02 (d, J=9Hz, 1H); 7.35-7.45 (m, 5H); 13C-NMR: δ (ppm) = erythro: 12.3, 74.1, 87.7, 126.2, 128.8, 129.0, 138.7; threo: 14.4, 76.5, 55 88.7, 127.2, 129.3, 129.5, 138.5 8 AT 500 910 B1
Beispiel 13: 152 μΙ Benzaldehyd (1,50 mmol) wurden in 1,9 ml iert-Butylmethylether gelöst und mit 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (4200 lU/ml, aus 5 Pichia pastoris, pH 9,0) versetzt. Anschließend wurden 1,1 ml Nitroethan (15,39 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 19 Stunden wurden 67 % 2-Nitro-1-phenylpropanol als Diastereomerengemisch erhalten. ®6eryf/iro 97 % 10 eethmo 45 %
Beispiel 14: 152 μΙ Benzaldehyd (1,50 mmol) wurden in 1,9 ml Dichlormethan gelöst und mit 2 ml einer 15 Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 1 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) versetzt. Nach 10 Minuten wurden 1,1 ml Nitroethan (15,39 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 20 Stunden wurden 22 % 2-Nitro-1-phenylpropanol als Diastereomerengemisch erhalten. 20 OOgrythro 94 % eethmo 55 %
Beispiel 15: 25 152 μΙ Benzaldehyd (1,50 mmol) wurden in 1,9 ml Toluol gelöst und mit 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 1 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) versetzt. Nach 10 Minuten wurden 1,1 ml Nitroethan (15,39 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 20 Stunden wurde 2-Nitro-1-phenylpropanol als Diastereomerengemisch erhalten. 30 eegrythro 94 % eethmo 55 %
Beispiel 16: 35 152 μΙ Benzaldehyd (1,50 mmol) wurden in 1,9 ml Ethylacetat gelöst und mit 2 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 1 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) versetzt. Nach 10 Minuten wurden 1,1 ml Nitroethan (15,39 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 20 Stun-40 den wurden 40 % 2-Nitro-1-phenylpropanol als Diastereomerengemisch erhalten. eegrythro 96 % eethmo 50 % 45 Beispiel 17:
Zu 1,35 ml einer Lösung von rekombinanter (S)-Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis (3000 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 0,68 ml 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) wurden 1,57 ml tert-Butylmethylether und anschließend 51 μΙ Benzaldehyd (0,50 mmol) und 451 μΙ 2-Nitropropan so (5,00 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 48 Stunden wurde 2-Methyl-2-nitro-1-phenylpropanol mit einem Enantiomerenüberschuss von 83 % erhalten.
Beispiel 18: 55 9 AT 500 910 B1
Zu 100 μΙ einer Lösung von (S)-Hydroxynitrillyase aus Manihot esculenta (6696 lU/ml + 900 μΙ 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) und 1 ml tert-Butylmethylether wurden 51 μΙ Hexanal (0,50 mmol) und nach 5 Minuten 274 μΙ Nitromethan (5,00 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 24 Stunden wurde (S)-2-Nitro-1-phenylethanol mit 5 einem Enantiomerenüberschuss von 27 % erhalten.
Beispiel 19:
Zu 100 μΙ einer Lösung von (S)-Hydroxynitrillyase aus Manihot esculenta (6696 lU/ml + 900 μΙ io 50 mM Phosphatpuffer pH 7,0) und 1 mL fert-Butylmethylether wurden 51 pL Benzaldehyd (0,50 mmol) und nach 5 Minuten 372 pL Nitroethan (5,00 mmol) zugegeben. Die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 24 Stunden wurde 2-Nitro-1-phenylpropanol als Diastereomerengemisch erhalten. 15 &&erythro 89 % 6®(/ιγ90 4 %
Beispiel 20: 20 100 μΙ Benzaldehyd <0,98 mmol) wurden in 2 ml fert-Butylmethylether gelöst und mit 1 ml einer Lösung von rekombinanter (ft)-Hydroxynitrillyase aus Prunus amygdalus (5150 lU/ml, aus Pichia pastoris, + 1 ml 50 mM K2HP04- / Citrat-Puffer pH 3,4) versetzt. Nach 5 Minuten wurden 530 μΙ Nitromethan <9,86 mmol) zugegeben und die Emulsion wurde bei Raumtemperatur gerührt. Nach 7 Tagen wurde (R)-2-Nitro-1-phenylethanol mit einem Enantiomerenüberschuss von 25 10% erhalten.
Beispiel 21:
Herstellung von 2-Amino-1-phenylethanol 30 0,78 g 2-Nitro-1-phenylethanol (4,96 mmol) wurden in 10 ml Methanol vorgelegt und mit Pd / C 10% (3,4 mol% Pd) versetzt. Das Reaktionsgefäß wurde 3-mal evakuiert und mit Wasserstoff gespült. Anschließend wurde die Reaktion unter Wasserstoffatmosphäre bei Raumtemperatur gerührt. Nach 3 Stunden wurde belüftet und über Celite™ filtriert. Abdestillieren des Lösungs-35 mittels im Vakuum und säulenchromatographische Reinigung ergab 2-Amino-1-phenylethanol als einheitliche Substanz (577 mg farbloses Öl, 92 % isolierte Ausbeute). 55

Claims (6)

  1. 5 1 0 AT 500 910 B1 Patentansprüche: 1. Verfahren zur Herstellung von ß-Hydroxynitroverbindungen der Formel (I) 10 r2 OH Ri Ra .r3 no2 (I) 15 in der R! und R2 unabhängig voneinander einen gegebenenfalls ein- oder mehrfach substituierten Ci-C2o-Alkyl-, oder C6-C14-Arylrest, einen Heteroarylrest aus der Gruppe Pyrrolyl, Furyl, Thienyl oder Pyridyl, sowie Kombinationen davon bedeuten, oder einer der Reste Wasserstoff bedeutet, und R3 und R4 unabhängig voneinander einen gegebenenfalls substituierten Ci-C20-Alkylrest oder Wasserstoff bedeuten, wobei ein Aldehyd oder ein Keton der Formel (II) 20
    (II) in der Ri und R2 wie oben definiert sind, mit einem Nitroalkan der Formel (III) 25 R3R4CHN02 (III) in der R3 und R4 wie oben definiert sind, zu den entsprechenden ß-Hydroxynitroverbindungen der Formel (I) umgesetzt wird, dadurch gekennzeichnet, dass die Umsetzung in Gegenwart einer Hydroxynitrillyase durchgeführt wird. 30
  2. 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die Hydroxynitrillyase aus Hevea brasiliensis, Prunus amygdalus oder Manihot esculenta stammt, und/oder eine re-kombinante Hydroxynitrillyase aus Pichia pastoris ist.
  3. 3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Umsetzung bei einer Temperatur von 0°C bis 20°C, vorzugsweise bei Raumtemperatur, durchgeführt wird.
  4. 4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass die Umsetzung in einem organischen Lösungsmittel, einem wässrigen Puffer, einem Zweiphasensys-40 tem oder in Emulsion durchgeführt wird.
  5. 5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass als Verbindung der Formel (II) ein gegebenenfalls substituierter Benzaldehyd und als Nitroalkan der Formel (III) Nitromethan oder Nitroethan eingesetzt werden. 45
  6. 6. Verfahren zur Herstellung von Aminoalkoholen, dadurch gekennzeichnet, dass entsprechende ß-Hydroxynitroverbindungen der Formel (I) gemäß dem Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5 hergestellt und anschließend mittels Hydrierung in Gegenwart von Pd/C, Raney Nickel, Pt02, NaBH4, LiAIH4 oder Säure/Metall zu den korrespondierenden Aminoal- 50 koholen reduziert werden. Keine Zeichnung
AT1302004A 2004-01-30 2004-01-30 Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen AT500910B1 (de)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT1302004A AT500910B1 (de) 2004-01-30 2004-01-30 Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen
PCT/EP2005/000585 WO2005073389A1 (de) 2004-01-30 2005-01-21 VERFAHREN ZUR HERSTELLUNG VON β-HYDROXYNITROVERBINDUNGEN AUS ALDEHYDEN UND NITROALKANEN UNTER VERWENDUNG EINER HYDROXYNITRILLYASE

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT1302004A AT500910B1 (de) 2004-01-30 2004-01-30 Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
AT500910A1 AT500910A1 (de) 2006-04-15
AT500910B1 true AT500910B1 (de) 2006-11-15

Family

ID=34812541

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
AT1302004A AT500910B1 (de) 2004-01-30 2004-01-30 Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen

Country Status (2)

Country Link
AT (1) AT500910B1 (de)
WO (1) WO2005073389A1 (de)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106748818B (zh) * 2016-12-29 2019-03-26 常州市阳光药业有限公司 重酒石酸间羟胺的合成方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0947498A1 (de) * 1996-12-02 1999-10-06 Chisso Corporation Optisch aktive nitroalkohol-derivate, optisch aktive aminoalkohl-derivate und verfahren zu ihrer herstellung
EP0969096A1 (de) * 1998-07-03 2000-01-05 Kyowa Hakko Kogyo Kabushiki Kaisha Verfahren zur Herstellung von Metaboliten die via Phosphoribosyl-Pyrophospat biologisch synthetisiert werden

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AT407397B (de) * 1998-07-02 2001-02-26 Dsm Fine Chem Austria Gmbh (s)-hydroxynitrillyasen mit verbesserter substratakzeptanz und deren verwendung
AT410792B (de) * 2001-12-28 2003-07-25 Dsm Fine Chem Austria Gmbh Verfahren zur herstellung von geschützten, enantiomeren-angereicherten cyanhydrinen durch in-situ-derivatisierung

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0947498A1 (de) * 1996-12-02 1999-10-06 Chisso Corporation Optisch aktive nitroalkohol-derivate, optisch aktive aminoalkohl-derivate und verfahren zu ihrer herstellung
EP0969096A1 (de) * 1998-07-03 2000-01-05 Kyowa Hakko Kogyo Kabushiki Kaisha Verfahren zur Herstellung von Metaboliten die via Phosphoribosyl-Pyrophospat biologisch synthetisiert werden

Also Published As

Publication number Publication date
WO2005073389A1 (de) 2005-08-11
AT500910A1 (de) 2006-04-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE60015799T2 (de) Verfahren für die herstellung von tolterodine und deren analoga sowie im verfahren hergestellte zwischenprodukte
WO1995008636A1 (de) Racematspaltung primärer und sekundärer amine durch enzym-katalysierte acylierung
WO2021074078A1 (de) Verfahren zur herstellung von 2-cyanoethyl (4s)-4-(4-cyano-2-methoxy-phenyl)-5-ethoxy-2,8-dimethyl-1,4-dihydro-1,6-naphthyridine-3-carboxylat durch racemat-spaltung mittels diastereomerer weinsäureester
DE69009237T2 (de) Verfahren zur Herstellung von optisch aktiven Estern der 6-t-Butoxy-3,5-dihydroxyhexansäure.
EP1801093B1 (de) Verfahren zur Herstellung von enantiomerenangereicherten 2-Alkoxy-3-Phenyl-Propion-Säuren
EP1405917B1 (de) Verfahren zur Herstellung von 3-Heteroaryl-3-hydroxy-propansäurederivaten durch enantioselektive mikrobielle Reduktion
AT396252B (de) Enzymatisches verfahren zur enantioselektiven herstellung optisch aktiver cyanhydrine
AT500910B1 (de) Verfahren zur herstellung von beta-hydroxynitroverbindungen
EP1148042B1 (de) Verfahren zur Herstellung von optisch und chemisch hochreinen (R)- oder (S)-Hydroxycarbonsäuren
EP0865500B1 (de) Verfahren zur herstellung von optisch aktiven aminen
EP0951561A1 (de) Enzymatische verfahren zur herstellung von (s)-cyanhydrinen
EP1252327A1 (de) Verfahren zur enzymatischen racematspaltung von aminomethyl-aryl-cyclohexanol-derivaten
DE69409001T2 (de) Chirale nitrile, ihre herstellung und ihre verwendung in der herstellung von verapamil und dessen analogen
DE60010090T2 (de) Verfahren zur cis-selektiven katalytischen hydrierung von cyclohexylidenaminen
DE3788510T2 (de) Verfahren zur Herstellung einer optisch aktiven Cyanverbindung.
EP0910660B1 (de) Verfahren zur herstellung von optisch aktiven aminen
WO2014001075A1 (de) Verfahren zur racemisierung von optisch aktiven arylalkyl -aminen
RU2529996C2 (ru) Способ энантиоселективного синтеза (s)-прегабалина
EP1765766B1 (de) Verfahren zur herstellung von enantiomeren 3-hydroxy-3- phenyl-propylaminen
EP1969133B1 (de) Verfahren zur herstellung von optisch aktivem (1s)-3-chlor-1-(2-thienyl)-propan-1-ol
EP1323830A2 (de) Verfahren zur Herstellung von heterocyclischen (R)-und (S)-Cyanhydrinen
EP0923534A1 (de) Verfahren zur herstellung von racemischen phenethylaminen
EP1223168A1 (de) Verfahren zur Herstellung von enantiomerenangereicherten Amino- und Hydroxyfuranonen
EP0759426A2 (de) Verfahren zur Herstellung von optisch aktiven 1-Aryl-alkylaminen
DE19637336A1 (de) Verfahren zur Herstellung von optisch aktiven Aminen

Legal Events

Date Code Title Description
ELJ Ceased due to non-payment of the annual fee