WO2024071397A1 - Ｉｌ１３ｒａ２に標的化した単純ヘルペスウイルス及び抗ｉｌ１３ｒａ２抗体またはその抗原結合断片 - Google Patents

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宏昭 内田
秀晃 田原
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国立大学法人 東京大学
宏昭 内田
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Definitions

  • the present invention relates to a herpes simplex virus that can target and specifically lyse tumor cells expressing IL13RA2 by presenting an anti-IL13RA2 antibody on the viral surface.
  • the present invention also relates to an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof that can specifically recognize the target tumor cells.
  • Interleukin 13 receptor subunit alpha 2 (IL13RA2) has been reported to be expressed in various solid tumors, including malignant gliomas and malignant melanomas, and blood tumors such as cutaneous T-cell lymphomas, while its expression in normal cells is limited, making it a promising target molecule for cancer treatment (Non-Patent Documents 1-3). Since the dissociation constant of IL13RA2 and its ligand interleukin 13 (IL-13) is very low at less than 100 fM (Non-Patent Document 4), attempts have been made to use IL-13 as a drug delivery module (cancer targeting module) to develop a cancer treatment targeting IL13RA2.
  • cancer targeting module drug delivery module
  • Non-Patent Document 5 a treatment for malignant glioma has been developed using a recombinant protein (IL13-PE) in which IL-13 is bound to Pseudomonas aeruginosa exotoxin (PE) (Non-Patent Document 5).
  • IL13RA1 interleukin 13 receptor subunit alpha 1
  • IL13RA1 which functions as a physiological receptor for IL-13
  • IL13RA1 interleukin 13 receptor subunit alpha 1
  • IL13RA1 which functions as a physiological receptor for IL-13
  • Non-Patent Document 7 It has also been reported that when IL13RA1 forms a complex with interleukin 4 receptor (IL4R), its binding affinity with IL-13 is about five times higher (Non-Patent Document 7). Therefore, concerns have been raised about side effects due to damage to normal cells expressing IL13RA1 in a therapy that aims to specifically kill cancer cells using IL-13 in a cancer targeting module (Non-Patent Document 8). Therefore, there has been a continuing demand for an alternative treatment scheme that specifically recognizes only cancer cells.
  • IL4R interleukin 4 receptor
  • Oncolytic virus therapy is a cancer treatment method using a virus that selectively grows in cancer cells.
  • HSV herpes simplex virus
  • RR-oHSV receptor-targeted oncolytic HSV
  • Non-Patent Documents 9-10 have reported receptor-targeted oncolytic HSV (RR-oHSV), which enables infection via a target molecule that is selectively expressed in cancer cells, rather than the original HSV receptor, by genetically modifying HSV.
  • this method modifies glycoprotein D (gD), which is essential for HSV to enter cells, to disable binding to the original gD receptors herpesvirus entry mediator (HVEM), 3-OS-HS, and nectin-1, and then fuses a cancer targeting module to gD to modify HSV so that it can selectively enter cancer cells.
  • HVEM herpesvirus entry mediator
  • IL-13 IL13RA2-targeted RR-oHSV by using IL-13 as a cancer targeting module
  • Non-Patent Document 11 Non-Patent Document 11
  • the infectivity of this IL-13-inserted RR-oHSV to IL13RA1-expressing cells and its antitumor effect in vivo have not been examined, and further studies are thought to be necessary to determine whether it can be developed clinically.
  • RR-oHSV that invades and spreads only in cells expressing the target molecule by deleting the 2nd to 24th amino acids of gD to disable binding to HVEM and 3-OS-HS, and by mutating the 38th amino acid from tyrosine to cysteine to disable binding to nectin-1, and then inserting a single-chain antibody (scFv) as a cancer targeting module into the 2nd to 24th deleted region (Patent Document 1, Non-Patent Document 12).
  • scFv single-chain antibody
  • RR-oHSV can be modified to target various target molecules by replacing the single-chain antibody inserted into the modified gD, and thus far, RR-oHSVs have been successfully developed against epidermal growth factor receptor (EGFR), carcinoembryonic antigen (CEA), epithelial cell adhesion molecule (EpCAM), and epiregulin (EREG) (Non-Patent Documents 12-14).
  • EGFR epidermal growth factor receptor
  • CEA carcinoembryonic antigen
  • EpCAM epithelial cell adhesion molecule
  • EREG epiregulin
  • the present invention aims to provide a herpes simplex virus that can specifically lyse tumor cells and is highly safe.
  • the present invention aims to provide a new antibody or an antigen-binding fragment thereof that can specifically recognize tumor cells.
  • a targeting module e.g., an antibody or an antigen-binding fragment thereof
  • a target antigen that satisfies the conditions that, when incorporated into a receptor-targeted oncolytic HSV (RR-oHSV), it specifically recognizes the tumor-associated antigen and causes the tumor-associated antigen to function as a viral receptor, thereby completing the molecular mechanism required for invasion into target cells.
  • RR-oHSV receptor-targeted oncolytic HSV
  • Non-Patent Document 14 reported that not all scFvs that recognize target antigens can cause invasion of RR-oHSV into target cells (Non-Patent Document 14).
  • the inventors therefore attempted to obtain an antibody and antigen-binding fragment capable of specifically recognizing IL13RA2, and obtained an anti-IL13RA2 antibody and its antigen-binding fragment.
  • the inventors found that the obtained anti-IL13RA2 antibody and its antigen-binding fragment were capable of specifically binding to IL13RA2. Furthermore, surprisingly, they found that the anti-IL13RA2 antibody was efficiently internalized into tumor cells.
  • the inventors further conducted intensive research and produced a herpes simplex virus engineered to display the antigen-binding fragment of the aforementioned anti-IL13RA2 antibody on its surface. As a result, they found that this virus was able to infect and lyse IL13RA2-positive cells with higher efficiency and with higher IL13RA2 selectivity than a herpes simplex virus engineered to display its original ligand, IL-13, on its surface.
  • the present invention can include the following aspects:
  • HCDR1, HCDR2, HCDR3 and light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) of the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof are (i) HCDR1: RHGIH (SEQ ID NO: 1) (ii) HCDR2: VIWAGGSTNYNSALMS (SEQ ID NO: 2) (iii) HCDR3: DHFDSFDY (SEQ ID NO: 3) (iv) LCDR1: TASSSVSSSSYLH (SEQ ID NO: 4) (v) LCDR2: STSNLAS (SEQ ID NO: 5) and (vi) LCDR3: HQYHRSPLT (SEQ ID NO: 6) 2.
  • the herpes simplex virus according to claim 1 having an amino acid sequence as set forth above, or having one to several amino acid mutations in said amino acid sequence.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof A sequence showing 80% or more sequence identity to the amino acid sequence of the VL region set forth in SEQ ID NO: 8; A sequence showing 80% or more sequence identity to the amino acid sequence of the VH region set forth in SEQ ID NO: 10; 3.
  • the herpes simplex virus according to item 1 or 2 comprising: [4] The herpes simplex virus according to any one of items 1 to 3, wherein the antigen-binding fragment is a Fab, a Fab', an F(ab')2, an Fv, an scFv, a dsFv, a bis-scFv, a diabody, a triabody, or a tetrabody. [5] The herpes simplex virus according to any one of items 1 to 4, wherein the antigen-binding fragment is an scFv.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof is a chimeric or humanized anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof.
  • the herpes simplex virus according to Aspect 8 wherein the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof is incorporated into the deleted amino acid portion of the envelope protein gD from the 2nd to the 24th amino acids of SEQ ID NO: 12, the deleted amino acid portion between the 24th and 25th amino acids or the 6th to the 38th amino acids of SEQ ID NO: 12, or the deleted amino acid portion from the 61st to the 218th amino acids of SEQ ID NO: 12.
  • the herpes simplex virus according to Aspect 12 wherein the amino acid mutation that weakens infectivity to a cell expressing Nectin-1 is one or more selected from the group consisting of a deletion of all of the amino acids from positions 6 to 38 of SEQ ID NO: 12, a deletion of all of the amino acids from positions 61 to 218 of SEQ ID NO: 12, a mutation at positions 3 and/or 38 of SEQ ID NO: 12, and a mutation at positions 222 and 223 of SEQ ID NO: 12.
  • the amino acid mutation that promotes entry into target cells and/or the amino acid mutation that promotes multinucleated giant cell formation are any of the mutations described in (a), (b), (c) and/or (d) below.
  • the herpes simplex virus according to item 18 characterized in that the amino acid mutation at position 62 of SEQ ID NO: 16 is substituted with glycine, the amino acid mutation at position 63 is substituted with valine, and the amino acid mutation at position 64 is substituted with serine.
  • a pharmaceutical composition comprising the herpes simplex virus according to any one of items 1 to 21.
  • the tumor is melanoma, osteosarcoma, leukemia, lymphoma, prostate cancer, lung cancer (including malignant mesothelioma), glioma, head and neck cancer, renal cancer, Kaposi's sarcoma, colorectal cancer, pancreatic cancer, adrenal cancer, breast cancer, or ovarian cancer.
  • the heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and the light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) are (i) HCDR1: RHGIH (SEQ ID NO: 1) (ii) HCDR2: VIWAGGSTNYNSALMS (SEQ ID NO: 2) (iii) HCDR3: DHFDSFDY (SEQ ID NO: 3) (iv) LCDR1: TASSSVSSSSYLH (SEQ ID NO: 4) (v) LCDR2: STSNLAS (SEQ ID NO: 5) and (vi) LCDR3: HQYHRSPLT (SEQ ID NO: 6) or an antigen-binding fragment thereof, which has an amino acid sequence as set forth above or has one to several amino acid mutations in said amino acid sequence.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof A sequence showing 80% or more sequence identity to the amino acid sequence of the VL region set forth in SEQ ID NO: 8; A sequence showing 80% or more sequence identity to the amino acid sequence of the VH region set forth in SEQ ID NO: 10; 29.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to item 28, comprising: [30] The anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to Aspect 28 or 29, wherein the antigen-binding fragment is a Fab, a Fab', an F(ab')2, an Fv, a scFv, a dsFv, a bis-scFv, a diabody, a triabody, or a tetrabody.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to any one of items 28 to 30, wherein the antigen-binding fragment comprises a sequence that shows 90% or more sequence identity to the sequence of SEQ ID NO: 7 (sequence of scFv).
  • a pharmaceutical composition comprising the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to any one of items 28 to 32.
  • the pharmaceutical composition according to Item 39 wherein the tumor is melanoma, osteosarcoma, leukemia, lymphoma, prostate cancer, lung cancer (including malignant mesothelioma), glioma, head and neck cancer, renal cancer, Kaposi's sarcoma, colorectal cancer, pancreatic cancer, adrenal cancer, breast cancer, or ovarian cancer.
  • IL13RA2-positive cancer cells can be selectively and efficiently dissolved/dead. Therefore, the present invention can provide a new therapeutic method that has few side effects, is safe for the living body, and requires a small dosage.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of the genome of IL-13-inserted HSV and the structure of targeted gD mutants.
  • the genome of IL-13-inserted HSV and the structure of IL-13-inserted gD mutants are shown.
  • UL unique long segment
  • US unique short segment
  • CMVp human cytomegalovirus major immediate early (HCMV-IE) promoter
  • EGFP expression cassette of EGFP inserted between UL3 and UL4
  • NT intracellular entry-promoting mutation in gB (D285N/A549T)
  • gD-IL13 IL-13-inserted gD
  • black square terminal and internal inverted repeats
  • SP signal peptide
  • TM transmembrane domain
  • CT cytosolic tail
  • N amino terminus
  • C carboxy terminus.
  • Figure 2 shows the target specificity of IL-13-inserted HSV at the stage of intracellular entry.
  • the intracellular entry of IL-13-inserted HSV into J1.1-2 cell sublines forced to express gD receptor or IL13RA2 was examined.
  • the cells shown at the bottom of the panel were infected with the virus shown on the left side of the panel, and the EGFP fluorescent signal was observed 8 hours later. Bars: 300 ⁇ m.
  • Figure 3 shows the specificity of intracellular entry of IL-13-inserted HSV using CHO-K1 cells and its sublines.
  • the intracellular entry of IL-13-inserted HSV into CHO-K1 cell sublines forcedly expressing gD receptor or IL13RA2 was examined.
  • Figure 4 shows the target specificity of IL-13-inserted RR-oHSV and anti-IL13RA2 single chain antibody-inserted RR-oHSV at the stage of intracellular entry.
  • the intracellular entry of IL-13 or anti-IL13RA2 single chain antibody-inserted RR-oHSV into J1.1-2 cell sublines forced to express gD receptor, IL13RA2, or IL13RA1 and IL4R was examined.
  • the cells shown in the lower panel were infected with the viruses shown on the left side of the panel, and the EGFP fluorescent signal was observed 8 hours later.
  • Figure 5 shows the specificity of intracellular entry of IL-13-inserted HSV and anti-IL13RA2 single-chain antibody-inserted HSV into CHO-K1 cells and its sublines. Intracellular entry of IL-13 or anti-IL13RA2 single-chain antibody-inserted HSV into CHO-K1 cell sublines forced to express gD receptor, IL13RA2, and IL13RA1 and IL4R. The cells shown in the upper part of the panel were infected with the virus shown on the left side of the panel at an MOI of 1, and the EGFP fluorescent signal was observed 8 hours later. Bars: 300 ⁇ m.
  • Figure 6 shows the infectivity of IL-13-inserted HSV and anti-IL13RA2 single-chain antibody-inserted HSV to human umbilical vein endothelial cells.
  • HUVEC or Vero-IL13RA2 were infected with the viruses shown on the left side of the panel at the MOI shown in the upper part of the panel, and the fluorescent signal was observed 12 hours later.
  • Vero-IL13RA2 was infected with the same virus solution as that used to infect HUVEC at an MOI of 0.1. Bars: 300 ⁇ m.
  • Figure 7 shows the expression of IL13RA2 in U87 and H1299 cells. Flow analysis was performed after staining with mouse anti-IL13RA2 antibody SHM38 and Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-mouse IgG antibody. Grey histogram shows isotype-matched negative control antibody.
  • Figure 8 shows the target specificity of anti-IL13RA2 single-chain antibody-inserted RR-oHSV in intracellular invasion and cell-to-cell spread.
  • the gray histogram indicates the isotype-matched negative control antibody.
  • FIG. 9 shows the effect of BhKt mutation on the cell-to-cell transmission and cytotoxicity of anti-IL13RA2 single-chain antibody-inserted RR-oHSV against IL13RA2-positive human cancer cell lines.
  • (a) Plaque size in IL13RA2-positive cancer cell lines. IL13RA2-positive cancer cells (top of the graph) were cultured in monolayers with the viruses shown in the bottom of the graph, and the plaque area was calculated from the EGFP fluorescent signal after three days of culture in methylcellulose-containing medium. The average plaque area (gray line) ⁇ standard deviation (black line) is shown (n 15). Two-tailed Mann-Whitney U test was used for statistical analysis.
  • U87-IL13RA2+ was subcutaneously implanted into SCID Beige mice, and when the tumor volume reached approximately 290 mm 3 , PBS or 10 2 pfu of each virus was administered intratumorally.
  • (A) Changes in the average tumor volume (mm 3 ) of mice administered with PBS, KGN-sc13R2-BhKt, or KG ⁇ N-sc13R2-BhKt are shown.
  • the changes in tumor volume (mm 3 ) in each mouse administered with (B) PBS, (C) KGN-sc13R2-BhKt, or (D) KG ⁇ N-sc13R2-BhKt are shown.
  • an amino acid mutation when described, unless otherwise specified, it means the substitution or deletion of the amino acid, or the insertion of one or several amino acids (for example, about 1 to 10, preferably 1 to 5, and more preferably about 1 to 3) between the amino acid and the adjacent amino acid.
  • the description "mutation of R21" means the deletion of the 21st amino acid in the amino acid sequence, the substitution with another amino acid, or the insertion of one or several amino acids between the 21st amino acid and the adjacent amino acid.
  • the amino acid numbers described in this specification may vary by about 1 to 10 depending on the HSV strain. Therefore, in any HSV strain, for example, when the amino acid number varies by ⁇ n (where n is an integer between 1 and 10), R21 should be read as R(21 ⁇ n).
  • IL13RA2- targeted herpes simplex virus refers to a herpes simplex virus that has been engineered to specifically bind to and infect IL13RA2-positive cancer cells.
  • the gene of the IL13RA2-targeted herpes simplex virus has been genetically engineered.
  • Herpes simplex viruses that may be applied to the present invention are oncolytic viruses.
  • oncolytic virus refers to a modified virus that is capable of preferentially infecting and killing cancer cells.
  • the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 of the present invention presents an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof that binds to IL13RA2 on the surface of the herpes simplex virus.
  • the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof can be incorporated into a glycoprotein or the like, which is an envelope protein exposed on the surface of the virus, to promote targeting of the desired cells.
  • Methods for incorporating the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof include a method using a crosslinker such as glutaraldehyde, a method using a tag (epitopes such as biotin, glutathione, Myc, 6x histidine, etc.) and its ligand, a method using a multispecific antibody (e.g., a bispecific antibody) that recognizes the viral envelope protein and the anti-IL13RA2 antibody or its antigen-binding fragment as two antigens, and a method of expressing the envelope protein as a fusion protein of the anti-IL13RA2 antibody or its antigen-binding fragment, but the method of expressing the envelope protein as a fusion protein with the envelope protein is preferred.
  • a recombinant virus is produced in which the anti-IL13RA2 antibody or its antigen-binding fragment is displayed on the outside of the viral envelope.
  • IL-13 includes a cytokine secreted primarily by T helper 2 cells.
  • IL-13 along with IL-4, which shares a receptor (IL-13R ⁇ 1/IL-4R ⁇ ), plays an important role in inducing humoral immunity through antibody production.
  • IL-13 is a monomeric protein of a 13 kDa polypeptide, and the structure of IL-13 is further described, for example, in Moy, Diblasio et al. 2001 J Mol Biol 310 219-30.
  • IL13RA2 is known as a high affinity receptor for IL-13, and functions as a decoy for IL-13 while inhibiting STAT6-mediated signal transduction of IL-4. It has also been reported recently that IL13RA2 is involved in many signal transduction pathways (WNT/ ⁇ -Catenin, MAPK/ERK, AKT/PKB, Src/FAK, PIP3K, etc.), and is believed to play a protective role against inflammatory diseases such as dermatitis (Sivaprasad et al., J Immunol. 2010; 185(11):6802).
  • a precursor of human IL13RA2 which is one embodiment of IL13RA2 may be a polypeptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 17 (NCBI Accession No.: NP_000631.1).
  • the precursor of human IL13RA2 shown in SEQ ID NO:17 contains a signal peptide (1st to 26th), and the mature human IL13RA2 corresponds to the 27th to 380th amino acid sequences shown in SEQ ID NO:17.
  • the heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and the light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) are (i) HCDR1: (SEQ ID NO: 1: RHGIH) (ii) HCDR2: (SEQ ID NO: 2: VIWAGGSTNYNSALMS) (iii) HCDR3: (SEQ ID NO: 3: DHFDSFDY) (iv) LCDR1: (SEQ ID NO: 4: TASSSVSSSSYLH) (v) LCDR2: (SEQ ID NO:5: STSNLAS) and (vi) LCDR3: (SEQ ID NO:6: HQYHRSPLT) or has one to several amino acid mutations in these amino
  • CDR refers to a region of the variable region of an immunoglobulin molecule that forms an antigen-binding site, also called a hypervariable region, and refers to a portion in which the amino acid sequence varies greatly from one immunoglobulin molecule to another.
  • CDR1, CDR2, and CDR3 There are three CDRs (CDR1, CDR2, and CDR3) in each of the heavy chain (HCDR) and the light chain (LCDR).
  • CDR1, CDR2, and CDR3 three CDRs in each of the heavy chain (HCDR) and the light chain (LCDR).
  • the CDRs of an immunoglobulin molecule are determined according to the Kabat numbering system (Kabat et al., 1987, Sequences of Proteins of Immunological Interest, US Department of Health and Human Services, NIH, USA).
  • the heavy chain CDRs are (i) HCDR1: (SEQ ID NO: 1: RHGIH) (ii) HCDR2: (SEQ ID NO: 2: VIWAGGSTNYNSALMS) (iii) HCDR3: (SEQ ID NO: 3: DHFDSFDY) or has one to several (1, 2 or 3) amino acid mutations in these amino acid sequences.
  • the light chain CDRs are (i) LCDR1: (SEQ ID NO: 4: TASSSVSSSSYLH) (ii) LCDR2: (SEQ ID NO:5: STSNLAS) and (iii) LCDR3: (SEQ ID NO:6: HQYHRSPLT) or has one to several (1, 2 or 3) amino acid mutations in these amino acid sequences.
  • one embodiment of the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof presented by a herpes simplex virus targeted to IL13RA2 according to the present invention may be an anti- IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof comprising a sequence showing 80% or more (e.g., 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more, or 100%) sequence identity to the amino acid sequence of the VL region set forth in SEQ ID NO:8 and a sequence showing 80% or more (e.g., 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more, or 100%) sequence identity to the amino acid sequence of the VH region set forth in SEQ ID NO:10.
  • an amino acid mutation in a CDR refers to a "substitution” in which another amino acid is substituted, a “deletion” in which the amino acid is removed, or an “insertion” in which another amino acid is added, with “conservative amino acid substitutions” being particularly preferred.
  • Conservative amino acid substitutions are made on the basis of similarity in polarity, charge, solubility, hydrophobicity, hydrophilicity, and/or amphipathic properties of the residues involved.
  • nonpolar (hydrophobic) amino acids include alanine (Ala, A), leucine (Leu, L), isoleucine (Ile, I), valine (Val, V), proline (Pro, P), phenylalanine (Phe, F), tryptophan (Trp, W), and methionine (Met, M); polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), serine (Ser, S), threonine (Thr, T), cysteine (Cys, C), tyrosine (Tyr, Y), asparagine (Asn, N), and glutamine (Gln, Q); positively charged (basic) amino acids include arginine (Arg, R), lysine (Lys, K), and histidine (His, H); negatively charged (acidic) amino acids include aspartic acid (Asp, D) and glutamic acid (Glu, E).
  • polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), se
  • substitutions are preferably in the range of one, two, or three amino acids. Mutations may be introduced by making systematic or random amino acid substitutions in a polypeptide molecule using recombinant DNA techniques and assaying the resulting recombinant mutants for activity.
  • the anti-IL13RA2 antibody presented by the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 of the present invention may include a mouse constant region (IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG3, IgM, IgD, IgE, IgA).
  • the antibody may be a chimeric, humanized, or human antibody having a human constant region (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgM, IgD, IgE, IgA1, IgA2).
  • the antibody may be a bispecific, trispecific, or multispecific antibody to increase affinity or avidity.
  • the antigen-binding fragment that can be applied in the present invention may be an antigen-binding fragment of any of the antibodies described herein.
  • Antigen-binding fragments include, but are not limited to, Fab, Fab', F(ab')2, Fv, scFv, dsFv, bis-scFv, diabody, triabody, or tetrabody, etc., as long as they are antigen-binding fragments derived from anti-IL13RA2 antibodies.
  • Diabodies (dimers), triabodies (trimers) or tetrabodies (tetramers) are well known in the art. See, for example, Kortt et al., Biomol. Eng.
  • the antigen-binding fragment that can be applied in the present invention is preferably an scFv.
  • An scFv consists of an antibody heavy chain V region ( VH region) linked to an antibody light chain variable (V) region ( VL region) via a synthetic peptide (linker), and can be produced using routine recombinant DNA technology (see, for example, Janeway et al., Immunobiology, 2nd ed., Garland Publishing, New York, (1996)).
  • linker for example, a (Gly 4 Ser) 3 flexible linker can be used, but is not limited thereto.
  • the order in which the VL region and the VH region are linked by the linker is not particularly limited.
  • disulfide-stabilized variable region fragments (dsFv) can be prepared by recombinant DNA technology (see, for example, Reiter et al., Protein Engineering, 7, 697-704 (1994)).
  • an antigen-binding fragment that can be applied in the present invention may be an antigen-binding fragment comprising a sequence that shows 90% or more, 91% or more, 92% or more, 93% or more, 94% or more, 95% or more, 96% or more, 97% or more, 98% or more, 99% or more, or 100% sequence identity to the sequence set forth in SEQ ID NO: 7.
  • the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 7 is specifically a sequence comprising the following amino acid sequence:
  • the antigen-binding fragment having the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO:7 includes a VL region (SEQ ID NO:8) containing the above-mentioned LCDR1 to LCDR3 (SEQ ID NO:4 to 6), a VH region (SEQ ID NO:10) containing the above-mentioned HCDR1 to HCDR3 (SEQ ID NO:1 to 3), and linker sequences 1 and 2 (SEQ ID NO:9 and 11).
  • the antigen-binding fragment presented by the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 of the present invention has heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) of: (i) HCDR1: (SEQ ID NO: 1: RHGIH) (ii) HCDR2: (SEQ ID NO: 2: VIWAGGSTNYNSALMS) (iii) HCDR3: (SEQ ID NO: 3: DHFDSFDY) (iv) LCDR1: (SEQ ID NO: 4: TASSSVSSSSYLH) (v) LCDR2: (SEQ ID NO:5: STSNLAS) and (vi) LCDR3: (SEQ ID NO:6: HQYHRSPLT) or having one to several amino acid mutations in this amino acid sequence, and having 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more
  • Sequence identity is defined as the percentage of amino acid residues in a candidate sequence that are identical to those of a particular reference polypeptide sequence after aligning the sequences, introducing gaps, if necessary, to obtain maximum sequence identity, and excluding any conservative substitutions from being considered part of the sequence identity. Alignment for purposes of measuring sequence identity can be accomplished by a variety of methods within the skill of the art, such as using publicly available computer software such as BLAST, BLAST-2, ALIGN, or Megalign (DNASTAR) software. Those skilled in the art can determine appropriate parameters for aligning sequences, including any algorithms necessary to achieve maximum alignment over the full length of the sequences being compared. However, for purposes herein, sequence identity values are obtained by using the sequence comparison computer program BLAST in pairwise alignments.
  • the percent sequence identity of a given amino acid sequence A to a given amino acid sequence B is calculated as follows: 100 times the fraction X/Y, where X is the number of amino acid residues scored as identical by a program alignment of A and B in the sequence alignment program BLAST, and Y is the total number of amino acid residues in B. It will be understood that if the length of amino acid sequence A is different from the length of amino acid sequence B, the sequence identity of A to B will differ from the % sequence identity of B to A. Unless otherwise specified, all % amino acid sequence identity values herein are obtained using the BLAST computer program as set forth in the immediately preceding paragraph.
  • Amino acid mutations in the antigen-binding fragment of SEQ ID NO:7 of the present invention include “substitution” where an amino acid is replaced with another amino acid, “deletion” where the amino acid is removed, and “insertion” where another amino acid is added.
  • substitution where an amino acid is replaced with another amino acid
  • insertion where another amino acid is added.
  • substitution is “conservative amino acid substitution.” Conservative amino acid substitutions are made based on similarity in polarity, charge, solubility, hydrophobicity, hydrophilicity, and/or amphipathic properties of the residues involved.
  • nonpolar (hydrophobic) amino acids include alanine (Ala, A), leucine (Leu, L), isoleucine (Ile, I), valine (Val, V), proline (Pro, P), phenylalanine (Phe, F), tryptophan (Trp, W), and methionine (Met, M); polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), serine (Ser, S), threonine (Thr, T), cysteine (Cys, C), tyrosine (Tyr, Y), asparagine (Asn, N), and glutamine (Gln, Q); positively charged (basic) amino acids include arginine (Arg, R), lysine (Lys, K), and histidine (His, H); negatively charged (acidic) amino acids include aspartic acid (Asp, D) and glutamic acid (Glu, E).
  • polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), se
  • substitutions are preferably in the range of 1-25, 1-20, 1-15, 1-10, or 1-5 amino acids. Mutations may be introduced by making systematic or random amino acid substitutions in a polypeptide molecule using recombinant DNA techniques and assaying the resulting recombinant mutants for activity.
  • Herpes simplex viruses that may be used in the present invention include herpes simplex virus type 1 (HSV-1) (sometimes referred to as "HHV-1") and herpes simplex virus type 2 (HSV-2) (sometimes referred to as "HHV-2").
  • HSV-1 and HSV-2 used in embodiments of the present invention include all strains classified into these (for example, KOS strain, F strain, 17 strain, VR3 strain, HF strain, HF10 strain, SC16 strain, etc. classified as HSV-1, and 186 strain, G strain, 333 strain, etc. classified as HSV-2) and all those derived from these substrains. That is, for example, taking HSV-1 as an example, GenBank no.
  • JQ673480.1 https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/JQ673480.1 (SEQ ID NO: 29)
  • other strains classified as HSV-1 and HSV-1 belonging to these substrains may also be used.
  • HSV has envelope glycoproteins (gB, gC, gD, gH, gL, gK, etc.) that cause membrane fusion between the host cell membrane and the viral envelope, and are important for viral intracellular entry and cell-to-cell spread.
  • gB and gC bind to heparan sulfate expressed on the cell membrane surface, allowing HSV to adhere to the cell membrane.
  • gD binds to herpesvirus entry mediator (HVEM), nectin-1, or 3-O-sulfated heparan sulfate (3-OS-HS) (Montgomery et al., Cell 1996; Geraghty et al., Science 1998; Shukla et al., Cell 1999), causing a conformational change in gD (Carfi et al., Cell 1999).
  • HVEM herpesvirus entry mediator
  • nectin-1 binds to gD
  • 3-OS-HS 3-O-sulfated heparan sulfate
  • the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 of the present invention has an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof incorporated into an envelope protein and targets IL13RA2 expressed on the cell surface.
  • the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof is incorporated into the envelope protein gD (e.g., SEQ ID NO: 12), envelope protein gB (e.g., SEQ ID NO: 13, or see, e.g., PLoS Pathog 2017; 13(4): e1006352, etc.), envelope protein gC (see, e.g., Cancer Gene Ther 2010; 17(9): 655-663, etc.), or envelope protein gH (see, e.g., PLoS Pathog 2015; 11(5): e1004907, etc.), more preferably, the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof is incorporated into the envelope protein gD.
  • the amino acid sequences e.g.
  • the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 of the present invention may have an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof incorporated into the deleted portion of the envelope protein gD from amino acid 2 to amino acid 24 of SEQ ID NO:12, the deleted portion of amino acids between amino acids 24 and 25, or from amino acids 6 to 38 of SEQ ID NO:12, or the deleted portion of amino acids 61 to 218 of SEQ ID NO:12.
  • the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 according to the present invention may have an envelope protein gD with an amino acid mutation that weakens infectivity to cells expressing Nectin-1, HVEM, and/or 3-OS-HS, for example, a mutation described in WO2020/090871.
  • a "gD mutation” refers to a nucleotide or amino acid mutation in the gD gene or gD protein that has any of the following combinations of a mutation in gD, an envelope glycoprotein responsible for entry of the HSV virus into cells, that causes the gD to lose (or reduce) its ability to bind to HVEM, a mutation that causes the gD to lose (or reduce) its ability to bind to nectin-1, a mutation that causes the gD to lose (or reduce) its ability to bind to 3-OS-HS, and a mutation that confers the gD to a tumor antigen (e.g., an insertion mutation of DNA that codes for an scFv against a tumor antigen).
  • These mutations weaken the infectivity of the gD to cells expressing nectin-1, HVEM, and/or 3-OS-HS, compared to HSV viruses that do not have these mutations.
  • amino acid sequence of the gD protein of the KOS strain shown in SEQ ID NO:12 (not including the signal peptide consisting of 25 amino acid residues from the N-terminus) is shown.
  • gD mutation In this specification, a specific example of "gD mutation" will be described below using the KOS strain as an example, but the present invention is similarly applicable to other strains.
  • the gD protein of the KOS strain is encoded in the forward direction (rightward) at nucleotide positions 138279. . 139463 in the KOS strain genome sequence registered as GenBank no. JQ673480.1.
  • mutations that cause loss of binding ability to Nectin-1 i.e., amino acid mutations that weaken infectivity to cells expressing Nectin-1
  • amino acid positions of the gD protein in the amino acid numbers of SEQ ID NO:12 include ⁇ 6-38 (deletion of amino acids at positions 6 to 38) (Menotti et al., J Virol. 82:10153-10161 2008), ⁇ 61-218 (deletion of amino acids at positions 61 to 218) (Menotti et al., Proc Natl Acad Sci USA. 106:9039-9044 2009), R222N/F223I (Uchida et al., J Virol.
  • R222N/F223I “Uchida et al., J Virol. 106:9039-9044 2009)
  • R222N/F223I “Uchida et al., J Virol. 106:9039-9044 2009
  • mutations include R222 and F223 mutations (mutations at amino acid positions 222 and 223) such as Y38C, A3C, or ⁇ A3/Y38C (Connolly et al., J Virol. 79:1282-1295 2005, Uchida et al., J Virol.
  • A3 and/or Y38 mutations mutations at amino acid positions 3 and/or 38, e.g., a deletion or substitution with cysteine at amino acid position 3, or a substitution with cysteine at amino acid position 38).
  • the positions of the amino acid mutations that abolish the ability to bind to HVEM, i.e., that weaken the infectivity of HVEM-expressing cells, as shown by the amino acid numbers in SEQ ID NO:12, are ⁇ 7-32 (deletion of amino acids at positions 7 to 32) (Yoon et al., J. Virol. 77:9221-9231 2003), ⁇ 2-24 (deletion of amino acids at positions 2 to 24) (Shibata et al., Gene Ther. 23:479-488 2016), ⁇ 7-11 (deletion of amino acids at positions 7 to 11) (Uchida et al., J. Virol.
  • mutations include deletion of all or part of the amino acids at amino acid positions 2 to 38 (e.g., ⁇ 61-218 (deletion of amino acids at positions 61 to 218) (Menotti et al., Proc Natl Acad Sci USA. 106:9039-9044 2009), and mutations at Q27, T29, and D30 (mutations at amino acid positions 27, 29, and 30) such as Q27A, Q27P, Q27R, T29A, and D30A (Spear et al., Virology 344:17-24 2006).
  • the scope of the present invention also includes sequences that show 70% or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more, or 100% sequence identity to the amino acid sequence of the gD protein of the KOS strain shown in SEQ ID NO:12, and sequences thereof that include the mutations specified above.
  • the herpes simplex virus of the present invention has an envelope protein gB, an envelope protein gK, a UL20 protein, and/or a UL24 protein that has an amino acid mutation that promotes entry into target cells and/or an amino acid mutation that promotes multinucleated giant cell formation.
  • the amino acid mutations that promote the formation of multinucleated giant cells are mutations introduced into the gB gene (or gB protein), gK gene (or gK protein), UL20 gene (or UL20 protein: envelope protein UL20) and/or UL24 gene (or UL24 protein: nuclear protein UL24) of HSV, and these mutations promote the membrane fusion activity of HSV. Furthermore, the amino acid mutations that promote entry into target cells are mutations introduced into the gB gene (or gB protein) of HSV, and these mutations promote the efficiency of entry of HSV into target cells.
  • SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16 show the amino acid sequences of the gB protein of the KOS strain, the gK protein of the KOS strain, the UL20 protein of the KOS strain and the UL24 protein of the KOS strain, respectively.
  • the gB protein of the KOS strain is encoded in the reverse direction (leftward) at nucleotide number 53022. . 55736 of the genome sequence registered as GenBank no. JQ673480.1, the gK protein is encoded in the forward direction (rightward) at nucleotide number 112101. . 113117, the UL20 protein is encoded in the reverse direction (leftward) at nucleotide number 40763. .
  • the UL24 protein is encoded in the forward direction (rightward) at nucleotide number 47678. . 48487.
  • Amino acid mutations that promote invasion into target cells and/or amino acid mutations that promote the formation of multinucleated giant cells have been disclosed in many publicly known documents, and a person skilled in the art can select an appropriate mutation as appropriate.
  • Amino acid mutations that promote the entry of major gB proteins into target cells include mutations at D285, such as D285N, and mutations at A549, such as A549T.
  • major amino acid mutations in gB protein that promote multinucleated giant cell formation include R796 mutations such as R796C, R800 mutations such as R800W, T813 mutations such as T813I, L817 mutations such as L817H and L817P, S854 mutations such as S854F, A855 mutations such as A855V, R858 mutations such as R858C and R858H, insertions between E816 and L817 (VN (2 amino acid insertion) and VNVN (4 amino acid insertion)), nonsense mutations at S869, and nonsense mutations at T877.
  • R796 mutations such as R796C
  • R800 mutations such as R800W
  • T813 mutations such as T813I
  • L817 mutations such as L817H and L817P
  • S854 mutations such as S854F
  • A855 mutations such as A855V
  • R858 mutations such as R8
  • Amino acid mutations in major gK proteins that promote multinucleated giant cell formation include P33 mutations such as P33S, A40 mutations such as A40V and A40T, L86 mutations such as L86P, D99 mutations such as D99N, A111 mutations such as A111V, T121 mutations such as T121I, C243 mutations such as C243Y, L304 mutations such as L304P, and R310 mutations such as R310L.
  • the main amino acid mutations in UL20 protein that promote multinucleated giant cell formation include a single Y49A mutation, mutations of Y49, S50 and R51 such as Y49A/S50A/R51A, a single R209A mutation, mutations of R209, T212 and R213 such as R209A/T212A/R213A, deletion of the C-terminus after N217, and deletion of the entire UL20 protein.
  • the main amino acid mutations in UL24 protein that promote multinucleated giant cell formation include mutations of T62, R63, and V64, such as T62G/R63V/V64S, as shown by the amino acid numbers in SEQ ID NO:16, as the amino acid positions of the UL24 protein.
  • the herpes simplex virus of the present invention may, in addition to carrying the syn mutation described above, carry in an expressible state a foreign gene that promotes membrane fusion of HSV (hereinafter also referred to as a "membrane fusion-promoting foreign gene").
  • a foreign gene that promotes membrane fusion of HSV hereinafter also referred to as a "membrane fusion-promoting foreign gene”
  • the position on the HSV genome where the foreign gene is integrated is not particularly limited, and may be at any position on the HSV genome as long as it does not inhibit the functions that the HSV virus should have as an oncolytic virus.
  • the membrane fusion-promoting foreign gene is not particularly limited, but may be, for example, the fusogenic membrane glycoprotein (FMG) derived from gibbon ape leukemia virus (GALV).
  • FMG fusogenic membrane glycoprotein
  • GALV gibbon ape leukemia virus
  • the herpes simplex virus of the present invention may have a mutation (also referred to as a "restricted replication modification" in this specification) that weakens the proliferation in normal cells instead of or in addition to the above mutation.
  • the restricted replication modification may be, for example, a mutation that inactivates the expression of functional ICP34.5.
  • ICP34.5 (for example, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 30 (KOS strain)) is a neurotoxic factor possessed by herpes simplex viruses.
  • PLR protein kinase R
  • herpes simplex viruses and the like possess ICP34.5 protein, which is a viral gene product that acts to cancel the action of PKR. It is known that herpes simplex viruses that have a mutation that inactivates the expression of functional ICP34.5 are significantly inhibited in proliferation in normal cells, but proliferate well in cancer cells with almost no effect. Therefore, a herpes simplex virus having a mutation that inactivates the expression of functional ICP34.5 grows only in cancer cells and inhibits growth in normal cells, and is expected to be safer.
  • the herpes simplex virus of the present invention may be one having a mutation that inactivates the expression of functional ICP34.5, for example, one having any mutation (e.g., nonsense mutation), deletion or substitution that makes ICP34.5 nonfunctional, or one in which a part or all of the gene encoding ICP34.5 is deleted and the expression of functional ICP34.5 is inactivated, for example, WO 2020/090871, JP 2006-528484, Chou et al. 1990, Science 250: 1262-1266; and Maclean et al. 1991, J. Gen. Virol. 72:631-639, etc.
  • any mutation e.g., nonsense mutation
  • deletion or substitution that makes ICP34.5 nonfunctional
  • the expression of a functional ICP34.5 protein that shows 70% or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more, or 100% sequence identity to the amino acid sequence of the ICP34.5 protein of the KOS strain shown in SEQ ID NO:30 may be inactivated, and the amino acid sequence may have any mutation (e.g., nonsense mutation), deletion or substitution that makes the protein non-functional, or a part or all of the gene encoding the protein is deleted, thereby inactivating the expression of the functional ICP34.5.
  • any mutation e.g., nonsense mutation
  • functional ICP34.5 means an ICP34.5 protein that can exert the function of wild-type ICP34.5 (e.g., the function of neutralizing the action of PKR), and "expression of functional ICP34.5 is inactivated” means that the function of neutralizing the action of PKR is not exerted, or the function is weakened compared to that of wild-type ICP34.5.
  • the limited proliferation type modification applicable to the present invention may be a limited proliferation type modification introduced by various methods as listed in the paper by Peters et al. (Mol Ther Oncolytics. 2015; 2. pii: 15010.
  • one or more genes selected from ICP6/UL39, thymidine kinase/UL23, UL2/UNG, ICP47/Us12, Us11, Us3, ICP0, UL56, VP16/UL48, and UL24 may be modified (mutated, deleted, and/or substituted).
  • the HSV of the present invention may incorporate a reporter gene and any therapeutic gene (e.g., a gene that enhances the killing effect of cancer cells, a gene that suppresses tumor angiogenesis, a gene that promotes antitumor immune responses, etc.) in a state in which they can be expressed (for details, see Peters et al., Mol Ther Oncolytics. 2015; 2. pii: 15010. Epub 2015 Jul 22, etc.).
  • the position on the HSV genome where the gene is incorporated is not particularly limited, and may be any position on the HSV genome as long as it does not inhibit the functions that the HSV virus should have as an oncolytic virus.
  • Reporter genes include, but are not limited to, the LacZ gene (Mineta et al., Nat Med. 1:938-943, 1995), the Luc gene (Yamamoto et al., Gene Ther. 13:1731-1736, 2006), the GFP gene (Adusumilli et al., FASEB J. 20:726-728, 2006), and the NIS gene (Li et al., Cancer Gene Ther. 20:478-485, 2013).
  • Therapeutic genes are not particularly limited, but examples of genes encoding cytotoxic molecules include the CD gene (Nakamura et al., Cancer Res. 61:5447-5452 2001) and the TRAIL gene (Tamura et al., Mol Ther. 21:68-77 2013), and genes encoding immune activating molecules include the GM-CSF gene (Liu et al., Gene Ther. 10:292-303 2003) and the IL-12 gene (Roth et al., Ther Clin Dev. 25:16-27 2014), and genes encoding microenvironment control molecules include the angiostatin gene (Zhang et al., Mol Ther.
  • the present invention also includes nucleic acids (nucleic acid molecules) that encode the herpes simplex viruses described herein.
  • the herpes simplex virus of the present invention can be produced by standard methods known to those skilled in the art of HSV virology. However, to facilitate the manipulation of the HSV genome and the production of the vectors of the present invention, the present invention also provides vectors carrying the genomic nucleic acid of the recombinant virus of the present invention.
  • a preferred vector is a bacterial artificial chromosome ("BAC") carrying the genome of the recombinant virus of the present invention, which facilitates the manipulation of HSV in bacterial systems.
  • BAC bacterial artificial chromosome
  • KOS-37 BAC Even et al., 2006 Virus Res.
  • HSV-BAC construct can be used as an HSV-BAC construct, and various mutations can be introduced by homologous recombination (e.g., Red homologous recombination method: Tischer et al., 2006. Biotechniques. 40(2):191).
  • homologous recombination e.g., Red homologous recombination method: Tischer et al., 2006. Biotechniques. 40(2):191).
  • HSV-based vectors and methods for their construction are described, for example, in U.S. Patent Nos. 7,078,029, 6,261,552, 5,998,174, 5,879,934, 5,849,572, 5,849,571, 5,837,532, 5,804,413, and 5,658,724, and International Patent Applications Nos. WO 91/02788, WO 96/04394, WO 98/15637, and WO 99/06583, the entireties of which are incorporated herein by reference.
  • the sequence of HSV has been published (NCBI Accession No. NC_001806; see also McGoech et al., J. Gen.
  • the oncolytic recombinant virus of the present invention is a herpes simplex virus (HSV-1), and includes ⁇ 2-24, a gD gene having a Y38C mutation, a gB gene having a D285N/A549T mutation (NT mutation), a R858H mutation, and a gK gene having an A40T mutation, and further includes a nucleic acid sequence encoding an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof fused to the gD gene (e.g., the ⁇ 2-24 portion).
  • HSV-1 herpes simplex virus
  • the genome of the herpes simplex virus of the present invention may further include a reporter protein such as green fluorescent protein (GFP) or luciferase, or a non-viral gene (exogenous expression cassette) of a payload molecule.
  • a reporter protein such as green fluorescent protein (GFP) or luciferase, or a non-viral gene (exogenous expression cassette) of a payload molecule.
  • the reporter protein makes it easy to identify target cells infected with the recombinant virus of the present invention, and the reporter protein released from lysed tumor cells can be used as an indicator to monitor tumor lysis.
  • the present invention also includes a method for producing the herpes simplex virus described herein.
  • the herpes simplex virus of the present invention can be infected into producer cells, and the herpes simplex virus can be collected from the culture supernatant or the producer cells.
  • producer cells include, but are not limited to, RPMI7951, U87, CHO, 293, COS, BHK, HeLa, or Vero cells, or substrains of these cell lines expressing IL13RA2 (e.g., Vero-IL13RA2 cells), or substrains of these cell lines expressing gD (e.g., VD60 cells).
  • the herpes simplex virus can be purified by a method such as centrifugation.
  • the present invention also encompasses cells that produce the herpes simplex virus described herein.
  • the cells that produce the herpes simplex virus may be cells that have been introduced with a nucleic acid (nucleic acid molecule) encoding the herpes simplex virus described herein and that temporarily produce the herpes simplex virus, or may be cells that have a nucleic acid (nucleic acid molecule) encoding the herpes simplex virus described herein integrated into the genome of the cells and that continuously produce the herpes simplex virus described herein.
  • Examples of cells that produce the herpes simplex virus described herein include, but are not limited to, RPMI7951, U87, CHO, 293, COS, BHK, HeLa, or Vero cells, or substrains of these cell lines that express IL13RA2 (e.g., Vero-IL13RA2 cells), or substrains of these cell lines that express gD (e.g., VD60 cells).
  • the invention relates to viral stocks comprising the recombinant viruses described herein.
  • the viral stocks are homogenous stocks. Preparation and analysis of viral stocks is well known in the art. For example, viral stocks can be produced in roller bottles containing cells transduced with the viral vector of interest. The viral stocks can then be purified on a continuous Nycodenz gradient, aliquoted, and stored until needed. Viral stocks vary considerably in titer, depending largely on the viral genotype and the protocols and cell lines used to prepare them.
  • the titer of a virus stock contemplated herein is at least about 10 plaque forming units (pfu)/mL, e.g., at least about 10 pfu/mL, or even more preferably, at least about 10 pfu/mL.
  • the titer may be at least about 10 pfu/mL, or at least about 10 pfu/mL, with high titer stocks of at least about 10 pfu/mL or at least about 10 pfu/mL being most preferred.
  • compositions comprising a herpes simplex virus as described herein and a pharma- ceutically acceptable carrier.
  • pharmaceutical acceptable refers to molecular entities and compositions that do not cause allergic or similar adverse reactions when administered to a subject (e.g., a human).
  • pharmaceutical composition refers to a formulation of one or more herpes simplex viruses as described herein that can be administered or delivered to a subject and/or cell.
  • the formulation includes an active ingredient, a herpes simplex virus as described herein, and any physiologically acceptable carriers, diluents, and/or excipients.
  • a "pharmaceutical composition” is a composition of one or more agents that can be administered or delivered to a patient and/or subject and/or cell for the treatment of a particular disease or disorder.
  • the pharmaceutical composition can include a nucleic acid molecule encoding a herpes simplex virus as described herein in place of the herpes simplex virus of the present invention.
  • compositions disclosed herein may be formulated in a neutral or salt form.
  • “Pharmaceutically acceptable salts” include both acid addition and base addition salts.
  • Pharmaceutically acceptable salts include acid addition salts (formed with the free amino groups of a protein) including inorganic acids such as hydrochloric acid, hydrobromic acid, sulfuric acid, nitric acid, phosphoric acid, and the like, and organic acids such as, but not limited to, acetic acid, 2,2-dichloroacetic acid, adipic acid, alginic acid, ascorbic acid, aspartic acid, benzenesulfonic acid, benzoic acid, 4-acetamidobenzoic acid, camphoric acid, camphor-10-sulfonic acid, capric acid, caproic acid, caprylic acid, carbonic acid, cinnamic acid, citric acid, cyclamic acid, dodecylsulfuric acid, ethane-1,2-disulfonic acid, ethane
  • Salts formed with the free carboxyl groups can likewise be derived from inorganic bases such as, for example, sodium, potassium, lithium, ammonium, calcium, magnesium, iron, zinc, copper, manganese, aluminum salts, etc.
  • Salts derived from organic bases include, but are not limited to, salts of primary, secondary, and tertiary amines, substituted amines including naturally occurring substituted amines, cyclic amines, and basic ion exchange resins, such as ammonia, isopropylamine, trimethylamine, diethylamine, triethylamine, tripropylamine, diethanolamine, ethanolamine, deanol, 2-dimethylaminoethanol, 2-diethylaminoethanol, dicyclohexylamine, lysine, arginine, histidine, caffeine, procaine, hydrabamine, choline, betaine, benethamine, benzathine, ethylenediamine, glucosamine,
  • Particularly preferred organic bases are isopropylamine, diethylamine, ethanolamine, trimethylamine, dicyclohexylamine, choline and caffeine.
  • carrier includes any and all solvents, dispersion media, vehicles, coatings, diluents, antibacterial and antifungal agents, isotonic and absorption delaying agents, buffers, carrier solutions, suspensions, colloids, and the like.
  • carrier includes any and all solvents, dispersion media, vehicles, coatings, diluents, antibacterial and antifungal agents, isotonic and absorption delaying agents, buffers, carrier solutions, suspensions, colloids, and the like.
  • the use of such media and agents for pharmaceutical active substances is well known in the art. Except insofar as any conventional media or agent is incompatible with the active ingredient, its use in the therapeutic compositions is contemplated. Supplementary active ingredients can also be incorporated into the compositions.
  • pharmacologically acceptable carrier includes, but is not limited to, any physiologically compatible adjuvant, carrier, excipient, glidant, sweetener, diluent, preservative, dye/colorant, flavor enhancer, surfactant, wetting agent, dispersing agent, suspending agent, stabilizer, isotonic agent, solvent, surfactant, dispersion medium, coating, antibacterial and antifungal agent, isotonic and absorption delaying agent, etc., including pharmacokinetic and metabolic pathways, which have been approved by the U.S. Food and Drug Administration (FDA) as acceptable for human and/or veterinary use.
  • FDA U.S. Food and Drug Administration
  • Exemplary pharma- ceutically acceptable carriers include, but are not limited to, sugars such as lactose, glucose and sucrose, starches such as corn starch and potato starch, cellulose and its derivatives such as sodium carboxymethylcellulose, ethylcellulose and cellulose acetate, tragacanth, malt, gelatin, talc, cocoa butter, waxes, animal and vegetable fats, paraffin, silicones, bentonite, silicic acid, zinc oxide, oils such as peanut oil, cottonseed oil, safflower oil, sesame oil, olive oil, corn oil, and soybean oil, glycols such as propylene glycol, polyols such as glycerin, sorbitol, mannitol and polyethylene glycol, esters such as ethyl oleate and ethyl laurate, agar, buffers such as magnesium hydroxide and aluminum hydroxide, alginic acid, pyrogen-free water, isotonic s
  • wetting agents such as sodium lauryl sulfate and magnesium stearate, as well as colorants, release agents, coating agents, sweeteners, flavorings and fragrances, preservatives and antioxidants may also be included in the composition.
  • antioxidants examples include: (1) water-soluble antioxidants, such as ascorbic acid, cysteine hydrochloride, sodium bisulfate, sodium metabisulfite, sodium sulfite, etc.; (2) oil-soluble antioxidants, such as ascorbyl palmitate, butylated hydroxyanisole (BHA), butylated hydroxytoluene (BHT), lecithin, propyl gallate, alpha-tocopherol, etc.; and (3) metal chelating agents, such as citric acid, ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), sorbitol, tartaric acid, phosphoric acid, etc.
  • water-soluble antioxidants such as ascorbic acid, cysteine hydrochloride, sodium bisulfate, sodium metabisulfite, sodium sulfite, etc.
  • oil-soluble antioxidants such as ascorbyl palmitate, butylated hydroxyanisole (BHA), butylated hydroxytoluene (BHT), lecithin,
  • the pharmaceutical composition containing the carrier is suitable for parenteral administration, e.g., intravascular (intravenous or intraarterial), intrathoracic, intraperitoneal, intracerebral, other organ, intratumoral, subcutaneous or intramuscular administration.
  • parenteral administration e.g., intravascular (intravenous or intraarterial), intrathoracic, intraperitoneal, intracerebral, other organ, intratumoral, subcutaneous or intramuscular administration.
  • Pharmaceutically acceptable carriers include sterile aqueous solutions or dispersions and sterile powders for the extemporaneous preparation of sterile injectable solutions or dispersions.
  • the use of such media and agents for pharma- ceutical active substances is well known in the art. Except insofar as any conventional media or agent is incompatible with the recombinant virus or nucleic acid molecule, its use in the pharmaceutical composition of the present invention is contemplated.
  • compositions of the invention may comprise one or more of the polypeptides, polynucleotides, vectors containing them, cells infected with a recombinant virus of the invention, etc., described herein, formulated in a pharma- ceutically or physiologically acceptable solution for administration to a cell or subject (e.g., a human) alone or in combination with one or more other therapies.
  • a cell or subject e.g., a human
  • the compositions of the invention may be administered in combination with other agents, as well, such as, for example, antibodies, cytokines, growth factors, hormones, small molecules, or various pharma- ceutical active agents, if desired.
  • agents such as, for example, antibodies, cytokines, growth factors, hormones, small molecules, or various pharma- ceutical active agents, if desired.
  • the formulation of pharma- ceutically acceptable excipient and carrier solutions is well known to those of skill in the art, as is the development of appropriate dosing and treatment regimens for use with the particular compositions described herein in various treatment regimens.
  • the solutions are administered in a manner compatible with the dosage formulation and in a therapeutically effective amount to effect amelioration or treatment of the condition.
  • the formulations are easily administered in a variety of dosage forms, e.g., ingestible solutions, drug release capsules, and the like. Some variation in dosing may occur depending on the condition of the subject being treated. The person responsible for administration will, in any event, be able to determine the appropriate dose for the individual subject.
  • the formulations meet the standards of sterility, general safety, and purity as required by the standards of the Center for Biologics Evaluation and Research of the U.S. Food and Drug Administration (FDA).
  • compositions, recombinant viruses, and nucleic acid molecules disclosed herein parenterally (e.g., intravascularly (intravenously or intraarterially), intrathoracically, intraperitoneally, intracerebrally, other organs, intratumorally, subcutaneously, or intramuscularly), as described, for example, in U.S. Pat. Nos. 5,543,158, 5,641,515, and 5,399,363, each of which is expressly incorporated herein by reference in its entirety.
  • Solutions of the active compounds as free base or pharma-ceutically acceptable salts may be prepared in water suitably mixed with a surfactant, e.g., hydroxypropylcellulose.
  • Dispersions may also be prepared in glycerol, liquid polyethylene glycols, and mixtures thereof, and in oils. Under ordinary conditions of storage and use, these preparations contain a preservative to prevent the growth of microorganisms.
  • compositions suitable for injectable use include sterile aqueous solutions or dispersions and sterile powders for the extemporaneous preparation of sterile injectable solutions or dispersions (U.S. Pat. No. 5,466,468, expressly incorporated herein by reference in its entirety).
  • the form should be sterile and fluid to the extent that easy syringability exists. It should be stable under the conditions of manufacture and storage and should be preserved against the contaminating action of microorganisms, such as bacteria and fungi.
  • the carrier can be a solvent or dispersion medium containing, for example, water, ethanol, polyol (for example, glycerol, propylene glycol, and liquid polyethylene glycol, etc.), suitable mixtures thereof, and/or vegetable oils.
  • Proper fluidity can be maintained, for example, by the use of a coating, such as lecithin, by the maintenance of the required particle size in the case of dispersions, and by the use of surfactants.
  • Prevention of the action of microorganisms can be promoted by various antibacterial and antifungal agents, for example, parabens, chlorobutanol, phenol, sorbic acid, thimerosal, and the like.
  • an isotonic agent for example, sugar or sodium chloride.
  • Prolonged absorption of the injectable compositions can be brought about by the use in the compositions of agents that delay absorption, such as aluminum monostearate and gelatin.
  • agents that delay absorption such as aluminum monostearate and gelatin.
  • aqueous compositions containing proteins as active ingredients is well understood in the art.
  • injectables either as liquid solutions or suspensions; solid forms suitable for solution or suspension in liquid prior to injection can also be prepared.
  • the formulations may also be emulsified.
  • aqueous solutions for example, the solution should be suitably buffered if necessary and the liquid diluent should first be made isotonic with sufficient saline or glucose.
  • aqueous solutions are particularly suitable for parenteral administration (e.g., intravascular (intravenous or intraarterial), intrathoracic, intraperitoneal, intracerebral, other organ, intratumoral, subcutaneous, or intramuscular).
  • parenteral administration e.g., intravascular (intravenous or intraarterial), intrathoracic, intraperitoneal, intracerebral, other organ, intratumoral, subcutaneous, or intramuscular.
  • sterile aqueous media that may be employed will be known to those of skill in the art in light of this disclosure.
  • a dose may be dissolved in 1 ml of isotonic NaCl solution and added to 1000 ml of subcutaneous infusion fluid or injected at the proposed infusion site (see, e.g., Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th Edition. Baltimore, MD: Lippincott Williams & Wilkins, 2000).
  • Some variation in dosage will necessarily occur depending on the condition of the subject being treated.
  • the person responsible for administration will, in any event, determine the appropriate dose for the individual subject.
  • preparations should meet sterility, pyrogenicity, and general safety and purity standards as required by the standards of the Office of Biologics of the U.S. Food and Drug Administration (FDA).
  • Sterile injectable solutions can be prepared by incorporating the active compound in the required amount in the appropriate solvent with various other ingredients as enumerated above, as required, followed by filtered sterilization.
  • dispersions are prepared by incorporating the various sterilized active ingredients into a sterile vehicle which contains the basic dispersion medium and the required other ingredients from those enumerated above.
  • the preferred methods of preparation are vacuum drying and freeze-drying techniques, which yield a powder of the active ingredient, plus any additional desired ingredients, from a previously sterile-filtered solution thereof.
  • the compositions may be delivered by intranasal spray, inhalation, and/or other aerosol delivery vehicles.
  • Methods for delivering polynucleotide and peptide compositions directly to the lungs via nasal aerosol sprays are described, for example, in U.S. Pat. Nos. 5,756,353 and 5,804,212, each of which is expressly incorporated herein by reference in its entirety.
  • intranasal microparticle resins (Taken et al., 2003) are known to be effective in treating lung cancer. Delivery of drugs using lysophosphatidyl-glycerol compounds (U.S. Pat. No. 5,725,871, expressly incorporated herein by reference in its entirety) is also well known in the pharmaceutical art.
  • transmucosal drug delivery in the form of a polytetrafluoroethylene support matrix is described in U.S. Pat. No. 5,780,045, expressly incorporated herein by reference in its entirety.
  • the delivery may be achieved by using liposomes, nanocapsules, microparticles, microspheres, lipid particles, vesicles, optionally in admixture with a CPP polypeptide, to introduce the compositions of the invention into suitable host cells.
  • the compositions of the invention may be formulated for delivery encapsulated in either lipid particles, liposomes, vesicles, nanospheres, nanoparticles, etc. The formulation and use of such delivery vehicles may be achieved using known conventional techniques.
  • compositions of the invention may include one or more of the polypeptides, polynucleotides, and small molecules described herein, formulated in a pharma- ceutically or physiologically acceptable solution (e.g., medium) for administration to a cell or subject (e.g., a human), alone or in combination with one or more other therapies.
  • a pharma- ceutically or physiologically acceptable solution e.g., medium
  • the compositions of the invention may be administered in combination with other agents, such as, for example, cells, other proteins or polypeptides, or various pharma- ceutically active agents, as well as other agents, if desired.
  • the formulations or pharmaceutical compositions of the present invention comprise cells contacted with a combination of various polynucleotides contemplated herein or herpes simplex viruses described herein.
  • Exemplary formulations for ex vivo delivery of various polynucleotides, including viral vectors, to cells may include the use of various transfection agents known in the art, such as calcium phosphate, electroporation, heat shock, and various liposome formulations (i.e., lipid-mediated transfection).
  • transfection agents such as calcium phosphate, electroporation, heat shock, and various liposome formulations (i.e., lipid-mediated transfection).
  • liposomes are lipid bilayers that encapsulate a fraction of an aqueous fluid. DNA spontaneously binds to the outer surface of cationic liposomes (due to their charge), and these liposomes interact with cell membranes.
  • Certain embodiments of the invention may include other formulations, e.g., those well known in the pharmaceutical art, e.g., those described in Remington: The Science and Practice of Pharmacy, 20th Edition. Baltimore, MD: Lippincott Williams & Wilkins, 2000.
  • the present invention provides pharma- ceutical acceptable compositions comprising a therapeutically effective amount of one or more viral vectors or polynucleotides described herein, formulated with one or more pharma- ceutical acceptable carriers (additives) and/or diluents (e.g., pharma- ceutical acceptable cell culture media).
  • pharma- ceutical acceptable compositions comprising a therapeutically effective amount of one or more viral vectors or polynucleotides described herein, formulated with one or more pharma- ceutical acceptable carriers (additives) and/or diluents (e.g., pharma- ceutical acceptable cell culture media).
  • a "therapeutically effective amount” refers to the amount of a composition or recombinant virus described herein required to achieve a desired physiological and/or biological result.
  • a “therapeutically effective amount” of a virus, viral stock, or composition may vary depending on factors such as the disease state, age, sex, and weight of an individual, and the ability of stem and progenitor cells in the individual to induce a desired response.
  • a therapeutically effective amount is also one in which any toxic or deleterious effects of the virus or transduced therapeutic cells are outweighed by therapeutically beneficial effects.
  • the term “therapeutically effective amount” includes an amount effective to "treat" a subject (e.g., a patient).
  • a therapeutically effective amount may be quantified by the total number of plaque forming units (pfu) (e.g., at least about 10 1 to at least about 10 20 , specifically, about 10 4 to about 10 15 , and more specifically, about 10 6 to about 10 12 pfu) or by the number of viral genomes (e.g., at least about 10 1 to at least about 10 20 , specifically, about 10 4 to about 10 15 , and more specifically, about 10 6 to about 10 12 viral genomes).
  • pfu plaque forming units
  • viral genomes e.g., at least about 10 1 to at least about 10 20 , specifically, about 10 4 to about 10 15 , and more specifically, about 10 6 to about 10 12 viral genomes.
  • the therapeutically effective amount will vary based on the type of virus administered, the nature of the formulation, the route of administration, the nature and/or severity of the disease being treated, and/or the general condition and health of the subject.
  • Some aspects of the invention include a method of killing a cancerous cell, comprising exposing the cancerous cell to a herpes simplex virus or composition thereof described herein under conditions sufficient for the herpes simplex virus to infect and replicate in the cancerous cell, where replication of the herpes simplex virus in the cancerous cell results in cell death.
  • the cancerous cell killed by the method is in vivo. In certain embodiments, the cancerous cell killed by the method is in a tumor.
  • administering refers to the introduction of a herpes simplex virus, virus stock, or composition thereof targeted to IL13RA2, or a nucleic acid molecule or composition encoding the recombinant virus, into a subject, and in one embodiment refers to contacting a cell and/or tissue with a herpes simplex virus, virus stock, or composition thereof, or a nucleic acid molecule or composition encoding the virus, as described in the specification. Administration may be by injection, irrigation, inhalation, ingestion, electroosmosis, hemodialysis, iontophoresis, and other methods known in the art.
  • the route of administration will, of course, vary with the location and nature of the disease to be treated, and may be, for example, auricular, buccal, conjunctival, cutaneous, dental, intracervical, intrasinus, intratracheal, enteral, epidural, interstitial, intra-articular, intra-arterial, intraperitoneal, intraauricular, intrabiliary, intrabronchial, intracapsular, intracavity, intracerebral, intracisternal, intracorneal, intracranial, intracoronary, intracranial, intradermal, intradiscal, intraductal, intraduodenal, intradural, intrapericardial, intraepidermal, intraesophageal, intragastric, intragingival, intrahepatic, intraileal, intralesional, intralingual, intracavity, intralymphatic, intramammary, intramedullary, intrameningeal, intramuscular, intranasal, intranodal,
  • the terms “treating” and “treatment” refer to administering to a subject a therapeutically effective amount of a virus or composition thereof as described herein such that the subject improves the disease or condition or symptoms of the disease or condition.
  • the improvement is any amelioration or cure of the disease or condition or symptoms of the disease or condition.
  • the improvement may be a visible or measurable improvement or an improvement in the subject's general sense of well-being.
  • a “prophylactically effective amount” refers to an amount of a virus, virus stock, or composition effective to achieve a desired prophylactic result.
  • prevention can mean completely preventing symptoms of a disease, delaying the onset of symptoms of a disease, or reducing the severity of later manifestations of the disease.
  • a prophylactically effective amount is less than a therapeutically effective amount because a prophylactic dose is used in a subject prior to or at an early stage of a disease.
  • the pharmaceutical composition containing the herpes simplex virus targeted to IL13RA2 according to the present invention can be a therapeutic agent for tumors expressing IL13RA2.
  • tumors expressing IL13RA2 include melanoma, osteosarcoma, leukemia, lymphoma, prostate cancer, lung cancer (including malignant mesothelioma), glioma (e.g., glioblastoma, astrocytoma, medulloblastoma), head and neck cancer, renal cancer, Kaposi's sarcoma, colorectal cancer, pancreatic cancer, adrenal cancer, breast cancer, and ovarian cancer. Therefore, these types of cancer can be therapeutic targets of the present invention.
  • Antibody or Antigen-Binding Fragment thereof One embodiment of the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to the present invention is an antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically recognizes tumor cells expressing IL13RA2.
  • the heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and the light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) are (i) HCDR1: (SEQ ID NO: 1: RHGIH) (ii) HCDR2: (SEQ ID NO: 2: VIWAGGSTNYNSALMS) (iii) HCDR3: (SEQ ID NO: 3: DHFDSFDY) (iv) LCDR1: (SEQ ID NO: 4: TASSSVSSSSYLH) (v) LCDR2: (SEQ ID NO:5: STSNLAS) and (vi) LCDR3: (SEQ ID NO:6: HQYHRSPLT) or have one to several amino acid mutations in these amino acid sequences.
  • the heavy chain CDRs are (i) HCDR1: (SEQ ID NO: 1: RHGIH) (ii) HCDR2: (SEQ ID NO: 2: VIWAGGSTNYNSALMS) (iii) HCDR3: (SEQ ID NO: 3: DHFDSFDY) or has one to several (1, 2 or 3) amino acid mutations in these amino acid sequences.
  • the light chain CDRs are (i) LCDR1: (SEQ ID NO: 4: TASSSVSSSSYLH) (ii) LCDR2: (SEQ ID NO:5: STSNLAS) and (iii) LCDR3: (SEQ ID NO:6: HQYHRSPLT) or has one to several (1, 2 or 3) amino acid mutations in these amino acid sequences.
  • one embodiment of the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to the present invention may be an anti- IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof comprising a sequence that shows 80% or more (e.g., 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more, or 100%) sequence identity to the amino acid sequence of the VL region set forth in SEQ ID NO:8, and a sequence that shows 80% or more (e.g., 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or more, 99% or more, or 100%) sequence identity to the amino acid sequence of the VH region set forth in SEQ ID NO:10.
  • the anti-IL13RA2 antibodies of the present invention may include a murine constant region (IgG1, IgG2a, IgG2b, IgG3, IgM, IgD, IgE, IgA).
  • the antibodies may be chimeric, humanized, or human antibodies having a human constant region (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgM, IgD, IgE, IgA1, IgA2).
  • the antibodies may be bispecific, trispecific, or multispecific antibodies to enhance affinity or avidity.
  • the anti-IL13RA2 antibodies or antigen-binding fragments thereof of the present invention are humanized antibodies.
  • the term "humanized" when used in connection with antibodies is used to refer to antibodies having at least the CDR regions derived from a non-human source that are engineered to have a structure and immune function more similar to a true human antibody than the original source antibody.
  • humanizing can involve grafting CDRs from a non-human antibody, such as a mouse antibody, onto a human antibody. Humanizing can also involve selecting amino acid substitutions that make the non-human sequence more human-like, as known in the art.
  • the invention is an antigen-binding fragment of an anti-IL13RA2 antibody.
  • the antigen-binding fragment may be any of the antigen-binding fragments of the antibodies described herein.
  • Antigen-binding fragments include, but are not limited to, Fab, Fab', F(ab')2, Fv, scFv, dsFv, diabodies, triabodies, and bis-scFv, as long as they are antigen-binding fragments derived from an anti-IL13RA2 antibody.
  • Diabodies (dimers), triabodies (trimers), or tetrabodies (tetramers) are well known in the art. See, for example, Kortt et al., Biomol. Eng. 2001,18:95-108, (2001) and Todorovska et al., J. ImmunolMethods. 248:47-66, (2001).
  • An scFv consists of an antibody heavy chain variable (V) domain linked to an antibody light chain variable (V) domain via a synthetic peptide (linker), and can be produced using routine recombinant DNA technology (see, for example, Janeway et al., Immunobiology, 2nd ed., Garland Publishing, New York, (1996)).
  • linker for example, a flexible linker containing (Gly 4 Ser) 3 can be used.
  • the order in which the V L domain and the V H domain connected by the linker are linked is not particularly limited.
  • disulfide-stabilized variable fragments (dsFv) can be prepared by recombinant DNA technology (see, for example, Reiter et al., Protein Engineering, 7, 697-704 (1994)).
  • an antigen-binding fragment of an anti-IL13RA2 antibody according to the present invention may be an antigen-binding fragment comprising a sequence that exhibits 90% or more, 91% or more, 92% or more, 93% or more, 94% or more, 95% or more, 96% or more, 97% or more, 98% or more, 99% or more, or 100% sequence identity to the sequence set forth in SEQ ID NO: 7.
  • an antigen-binding fragment of an anti-IL13RA2 antibody may be an antigen-binding fragment comprising a heavy chain CDR (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and a light chain CDR (LCDR1, LCDR2, LCDR3) that are (i) HCDR1: (SEQ ID NO: 1: RHGIH) (ii) HCDR2: (SEQ ID NO: 2: VIWAGGSTNYNSALMS) (iii) HCDR3: (SEQ ID NO: 3: DHFDSFDY) (iv) LCDR1: (SEQ ID NO: 4: TASSSVSSSSYLH) (v) LCDR2: (SEQ ID NO:5: STSNLAS) and (vi) LCDR3: (SEQ ID NO:6: HQYHRSPLT) or having one to several amino acid mutations in this amino acid sequence, and having 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 98% or
  • the amino acid mutations include “substitution” in which another amino acid is substituted, “deletion” in which the amino acid is removed, and “insertion” in which another amino acid is added.
  • substitution is “conservative amino acid substitution.” Conservative amino acid substitutions are made based on similarity in polarity, charge, solubility, hydrophobicity, hydrophilicity, and/or amphipathic properties of the residues involved.
  • nonpolar (hydrophobic) amino acids include alanine (Ala, A), leucine (Leu, L), isoleucine (Ile, I), valine (Val, V), proline (Pro, P), phenylalanine (Phe, F), tryptophan (Trp, W), and methionine (Met, M); polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), serine (Ser, S), threonine (Thr, T), cysteine (Cys, C), tyrosine (Tyr, Y), asparagine (Asn, N), and glutamine (Gln, Q); positively charged (basic) amino acids include arginine (Arg, R), lysine (Lys, K), and histidine (His, H); negatively charged (acidic) amino acids include aspartic acid (Asp, D) and glutamic acid (Glu, E).
  • polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), se
  • substitutions may preferably be in the range of 1-25, 1-20, 1-15, 1-10, or 1-5 amino acids. Mutations may be introduced by making systematic or random amino acid substitutions in a polypeptide molecule using recombinant DNA techniques and assaying the resulting recombinant mutants for activity.
  • anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof of the present invention is an anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof that at least partially competes with an anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof comprising the amino acid sequences of heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) set forth in SEQ ID NOs: 1 to 6 in binding to human IL13RA2.
  • HCDR1, HCDR2, HCDR3 heavy chain CDRs
  • LCDR1, LCDR2, LCDR3 light chain CDRs
  • the term "competes" by a subject antibody or antigen-binding fragment thereof means that, for example, when the subject antibody or antigen-binding fragment thereof is reacted with an IL13RA2 protein, and then an anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof comprising the amino acid sequences of the heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) set forth in SEQ ID NOs: 1 to 6 is reacted, the subject antibody or antigen-binding fragment thereof reduces the binding of the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof comprising the amino acid sequences of the heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) set forth in SEQ ID NOs: 1 to 6 to the IL13RA2 protein.
  • a subject antibody or antigen-binding fragment thereof competes with an anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof that contains the amino acid sequences of the heavy chain CDRs (HCDR1, HCDR2, HCDR3) and light chain CDRs (LCDR1, LCDR2, LCDR3) set forth in SEQ ID NOs: 1 to 6 can be verified by a general method such as, for example, ELISA, RIA, FACS, or Biacore (trademark).
  • the anti-IL13RA2 antibodies and antigen-binding fragments thereof of the present invention can have any level of affinity or binding activity for IL13RA2.
  • the dissociation constant (KD) can be any of the exemplary dissociation constants described herein for the binding unit. Binding constants, including dissociation constants, can be determined by methods known in the art, including, for example, methods utilizing the principles of surface plasmon resonance, e.g., methods utilizing a BiacoreTM system.
  • the KD is between about 0.0001 nM and about 1000 nM. In some embodiments, the KD is about 0.0001 nM or more, about 0.001 nM or more, about 0.01 nM or more, about 0.1 nM or more, about 1 nM or more, or about 10 nM or more, or about 1000 nM or less, about 100 nM or less, about 10 nM or less, about 1 nM or less, about 0.1 nM or less, about 0.01 nM or less, or about 0.001 nM or less.
  • the antibody can be any type of immunoglobulin known in the art.
  • the antibody can be of any isotype, e.g., IgA, IgD, IgE, IgG, or IgM.
  • the antibody can be monoclonal or polyclonal.
  • the antibody can be a naturally occurring antibody, e.g., an antibody isolated and/or purified from a mammal, such as mouse, rabbit, goat, horse, chicken, hamster, camel, human, etc.
  • the antibody may be considered to be a mammalian antibody, e.g., a mouse antibody, a rabbit antibody, a goat antibody, a horse antibody, a chicken antibody, a hamster antibody, a human antibody, etc.
  • isolated means removed from its natural environment.
  • purified as used herein relates to the isolation of a molecule or compound in a form that is substantially free of contaminants normally associated with the molecule or compound in its native or natural environment, and means that the purity has been increased as a result of separation from other components of the original composition. It is recognized that “purity” is a relative term and should not necessarily be construed as absolute purity, absolute enrichment, or absolute selectivity.
  • the purity is at least about 50%, at least about 60%, at least about 70%, at least about 80%, or at least about 90% (e.g., at least about 91%, at least about 92%, at least about 93%, at least about 94%, at least about 95%, at least about 96%, at least about 97%, at least about 98%, at least about 99%, or nearly 100%.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to the present invention is internalized into tumor cells expressing IL13RA2.
  • Internalization into tumor cells expressing IL13RA2 can be examined by contacting an anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof, directly or indirectly labeled with a fluorescent label or the like, with tumor cells expressing IL13RA2 and observing the antibody under a (phase contrast) microscope or the like.
  • internalization into tumor cells expressing IL13RA2 can be evaluated by using DT3C, a protein that combines the catalytic domain of diphtheria toxin (DT) and three antibody-binding domains of protein G.
  • DT3C a protein that combines the catalytic domain of diphtheria toxin (DT) and three antibody-binding domains of protein G.
  • DT3C binds stably to the Fc portion of an antibody specifically and stably, and when taken up into cells, it induces cell death by inhibiting protein synthesis.
  • this system it is possible to simultaneously observe the internalization of the antibody and the cell killing effect of the immunotoxin, and it is possible to screen for antibodies that have the effect of being internalized (Yamaguchi, M., Hamada, H., et al., Biochemical and Biophysical Research Communications 454 (2014) 600-603).
  • the amount of the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to the present invention that is internalized into cells that express IL13RA2 is at least 5 times, at least 10 times, or at least 50 times greater than the amount that is internalized into the same cells that do not express IL13RA2.
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to the present invention not only specifically recognizes tumor cells expressing IL13RA2, but also has the property of being internalized by tumor cells expressing IL13RA2, and therefore the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof is suitable for use in a drug delivery system (DDS) for delivering drugs, for example, anticancer drugs, into tumor cells.
  • DDS drug delivery system
  • the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to the present invention can be used in an antibody-drug conjugate (ADC).
  • ADC antibody-drug conjugate
  • the present invention relates to an antibody-drug conjugate (ADC) comprising an anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof.
  • Suitable methods for making antibodies are known in the art. For example, standard hybridoma methods are described, for example, in Harlow and Lane (eds.), Antibodies: A Laboratory Manual, CSH Press, (1988), and C.A. Janeway et al. (eds.), Immunobiology, 5th ed., Garland Publishing, New York, NY (2001).
  • Monoclonal antibodies for use in the present invention may be prepared using any technique which provides for the production of antibody molecules by continuous cell lines in culture. These include those originally described by Koehle et al. Hybridoma methods include, but are not limited to, the hybridoma method described by Kosbor et al., Immunol. Today, 4:72, 1983; Cote et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 80:2026-2030, 1983), the human B cell hybridoma method (Cole et al., Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R Liss Inc, New York, N.Y., pp77-96, (1985)).
  • polyclonal antibodies can be prepared by immunizing an animal with a desired immunogen (e.g., a recombinant human IL13RA2 polypeptide (e.g., a polypeptide having the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 17 or a portion thereof (e.g., excluding the signal peptide); a membrane fraction of a cell expressing human IL13RA2 (e.g., A375 cell)) and collecting antisera from the immunized animal.
  • a desired immunogen e.g., a recombinant human IL13RA2 polypeptide (e.g., a polypeptide having the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 17 or a portion thereof (e.g., excluding the signal peptide); a membrane fraction of a cell expressing human IL13RA2 (e.g., A375 cell)
  • a desired immunogen e.g., a recombinant human IL13RA2 polypeptide
  • the animal used for the production of anti-IL13RA2 antisera is a non-human animal, including rabbit, mouse, rat, hamster, goat, sheep, camel, pig or horse. Due to the relatively large blood volume of rabbits, in some exemplary embodiments, rabbits are the preferred choice for the generation of polyclonal antibodies.
  • 50 ⁇ g of IL13RA2 antigen is emulsified in Freund's complete adjuvant for immunization of a rabbit.
  • polyclonal antisera may be readily obtained by bleeding the animal and preparing serum samples from the whole blood.
  • a mouse is immunized with a desired immunogen against which an antibody should be raised (e.g., a recombinant human IL13RA2 polypeptide (e.g., a polypeptide having the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 17 or a portion thereof (e.g., excluding the signal peptide)); a membrane fraction of a cell expressing human IL13RA2 (e.g., A375 cell), etc.) (e.g., Freund's complete adjuvant may be used).
  • a desired immunogen against which an antibody should be raised e.g., a recombinant human IL13RA2 polypeptide (e.g., a polypeptide having the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 17 or a portion thereof (e.g., excluding the signal peptide)); a membrane fraction of a cell expressing human IL13RA2 (e.g., A375 cell), etc.) (e.g., Freund's complete
  • Cells (1 ⁇ 10 8 cells) derived from the spleen of the immunized mouse are combined with myeloma cells (e.g., NS-1 cells, P3U1 cells, etc.) and fused with PEG.
  • myeloma cells e.g., NS-1 cells, P3U1 cells, etc.
  • Hybridomas producing the desired monoclonal antibodies in the culture supernatant are screened by ELISA or the like.
  • the isotype of the monoclonal antibodies produced by the hybridomas can be determined using the IsoStrip system (Boehringer Mannheim, Indianapolis, Ind.).
  • P3-X63/Ag8 As myeloma cells, for mouse splenocytes, P3-X63/Ag8, P3-X63-Ag8.653, NS1/1.Ag41, Sp210-Ag14, FO, NSO/U, MPC-11, MPC11-X45-GTG1.7, and S194/15XX0Bul may be used; for rats, R210.RCY3, Y3-Ag1.2.3, IR983F, and 4B210 may be used; and U-266, GM1500-GRG2, LICR-LON-HMy2, and UC729-6 are all useful in conjunction with cell fusion.
  • adjuvants may be used to enhance the immune response.
  • adjuvants include, but are not limited to, Freund's adjuvant, minerals such as aluminum hydroxide, and surfactants such as lysolecithin, Pluronic® polyols, polyanions, peptides, oil emulsions, keyhole limpet hemocyanin, and dinitrophenol.
  • BCG Bacilli Calmette-Guerin
  • Corynebacterium parvum may be useful human adjuvants.
  • Antibodies may also be produced by inducing in vivo production in lymphocyte populations or by screening libraries or panels of highly specific recombinant immunoglobulins as disclosed by Orlandi et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. 86:3833-3837; 1989) and Winter and Milstein (Nature, 349:293-299, 1991).
  • phage display can be used to generate the antibodies of the present disclosure.
  • standard molecular biology and recombinant DNA techniques see, e.g., Sambrook et al. (eds.), Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3rd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York (2001)
  • V antigen-binding variable domains of antibodies.
  • Phages encoding variable regions with the desired specificity are selected for specific binding to the desired antigen, and complete or partial antibodies comprising the selected variable domains are reconstituted.
  • the nucleic acid sequence encoding the reconstituted antibody is introduced into a suitable cell line, such as a myeloma cell used to generate hybridomas, so that the cells secrete antibodies with the characteristics of monoclonal antibodies (see, e.g., Janeway et al., supra, Huse et al., supra, and U.S. Pat. No. 6,265,150).
  • a suitable cell line such as a myeloma cell used to generate hybridomas.
  • Related methods are also described in U.S. Patent Nos. 5,403,484; 5,571,698; 5,837,500 and 5,702,892. It is contemplated that the techniques described in U.S. Patent Nos.
  • Antibodies can be produced by transgenic mice transgenic for specific heavy and light chain immunoglobulin genes. Such methods are known in the art and described, for example, in U.S. Pat. Nos. 5,545,806, 5,569,825, and Janeway et al., supra.
  • Humanized antibodies can also be produced using the antibody resurfacing method described in U.S. Pat. No. 5,639,641 and Pedersen et al., J. Mol. Biol., 235:959-973 (1994).
  • a humanized antibody has one or more amino acid residues introduced into the CDR regions and/or framework regions from a source that is non-human. Humanization can be performed, for example, by substituting at least a portion of a rodent complementarity determining region (CDR) for the corresponding region of a human antibody using the methods described in Jones et al. (Nature, 321:522-525, 1986), Riechmann et al. (Nature, 332:323-327, 1988) and Verhoeyen et al. (Science, 239:1534-1536, 1988). Numerous techniques for preparing engineered antibodies are described, for example, in Owens and Young, J. Immunol. Meth. , 168:149-165 (1994). Further changes can then be introduced into the antibody framework to modulate affinity or immunogenicity.
  • CDR rodent complementarity determining region
  • the framework regions (FR) of the mouse antibody are humanized by substituting suitable human framework regions selected from a large database of human antibody variable sequences, including over 1200 human VH sequences and over 1000 VL sequences.
  • the database of antibody sequences used for comparison is downloaded from Andrew C. R. Martin's KabatMan webpage (http://www.rubic.rdg.ac.uk/abs/).
  • the Kabat method of identifying CDRs provides a means to delineate the approximate CDR and framework regions of a human antibody and to compare the mouse antibody sequences for similarity to determine the CDRs and FRs.
  • the most matched human VH and VL sequences are selected based on high overall framework agreement, similar CDR lengths, and minimal mismatches of canonical and VH/VL contact residues.
  • the human framework regions most similar to the mouse sequences are inserted between the mouse CDRs.
  • the murine framework regions may be modified by making amino acid substitutions in whole or in part of the native framework regions that more closely resemble those of human antibodies.
  • Nonpolar (hydrophobic) amino acids include alanine (Ala, A), leucine (Leu, L), isoleucine (Ile, I), valine (Val, V), proline (Pro, P), phenylalanine (Phe, F), tryptophan (Trp, W), and methionine (Met, M);
  • polar neutral amino acids include glycine (Gly, G), serine (Ser, S), threonine (Thr, T), cysteine (Cys, C), tyrosine (Tyr, Y), asparagine (Asn, N), and glutamine (Gln, Q); positively charged (basic) amino acids include arginine (Arg, R), lysine (Lys, K), and histidine
  • substitutions are preferably in the range of 1-25, 1-20, 1-15, 1-10, or 1-5. Mutations may be introduced by systematically making amino acid substitutions in a polypeptide molecule using recombinant DNA techniques and assaying the resulting recombinant mutants for activity. Nucleic acid changes can be made at sites where the nucleic acid differs from different species (variable positions) or in regions that are highly conserved (constant regions).
  • the anti-IL13RA2 antibodies and antigen-binding fragments thereof of the present invention have high affinity for IL13RA2.
  • the antibodies and antigen-binding fragments thereof recognize antigens expressed on the cell surface of cells expressing IL13RA2, demonstrating suitability for targeting IL13RA2-expressing tumor cells in vivo. Because they specifically recognize tumor cells expressing IL13RA2, side effects due to damage to normal cells can be reduced.
  • the anti-IL13RA2 antibodies and antigen-binding fragments thereof are also expected to be effective and cost-effective in diagnostic imaging, delivery of antibody-radionuclide conjugates, bioassays for detection of IL13RA2 in various types of tumors overexpressing IL13RA2, and as carriers for therapeutic agents.
  • the anti-IL13RA2 antibody and antigen-binding fragment thereof of the present invention in addition to having the above-mentioned affinity for IL13RA2, have the property of being internalized in tumor cells expressing IL13RA2, and therefore can reliably deliver therapeutic agents to target tumor cells. Therefore, the anti-IL13RA2 antibody and antigen-binding fragment thereof of the present invention, for example in the form of an ADC, can be effectively used as a drug delivery system (DDS). Since the therapeutic agent can be reliably delivered to the target tumor cells, it is expected that the therapeutic effect can be enhanced.
  • DDS drug delivery system
  • the present invention is a cell that produces an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof.
  • the cell is a hybridoma cell that has been internationally deposited on July 4, 2022 at the National Institute of Technology and Evaluation, Biotechnology Center, Patent Microorganisms Depositary (NPMD) (Address: Room 122, 2-5-8 Kazusa Kamatari, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) under the accession number NITE BP-03673.
  • NPMD Patent Microorganisms Depositary
  • the present invention is a cell that produces an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof, comprising a nucleic acid encoding an anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof, or a nucleic acid encoding the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof.
  • the present invention relates to a method for producing the aforementioned anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof.
  • the aforementioned cells are used in the production method.
  • the present invention relates to a pharmaceutical composition
  • a pharmaceutical composition comprising the aforementioned anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof.
  • the pharmaceutical composition comprises an antibody-drug conjugate (ADC) comprising the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof. That is, the anti-IL13RA2 antibody or an antigen-binding fragment thereof is contained in the pharmaceutical composition in the form of an antibody-drug conjugate (ADC).
  • ADC antibody-drug conjugate
  • ADCs antibody-drug conjugates
  • drugs that can exert a desired therapeutic effect e.g., anticancer drugs (e.g., low molecular weight compounds, proteins, etc.)
  • compounds containing radioisotopes, liposomes, etc. and may be bound to substances that can be used as ADCs.
  • the pharmaceutical composition is for treating a tumor expressing IL13RA2.
  • the tumor is selected from the group consisting of melanoma, osteosarcoma, leukemia, lymphoma, prostate cancer, lung cancer (including malignant mesothelioma), glioma, head and neck cancer, renal cancer, Kaposi's sarcoma, colorectal cancer, pancreatic cancer, adrenal cancer, breast cancer, and ovarian cancer.
  • the pharmaceutical composition containing the anti-IL13RA2 antibody or antigen-binding fragment thereof according to this embodiment may be applied with ingredients, formulations, administration forms, etc. known in the art for pharmaceutical compositions containing antibodies, and the matters described herein for pharmaceutical compositions containing herpes simplex virus may also be applied.
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle's medium
  • FBS Thermo Fisher Scientific, MA, USA
  • the monkey kidney cell line Vero (ATCC CCL-81) and the gD-complemented Vero cell subline VD60 (Ligas et al., J. Virol. 1988 May;62(5):1486-94.) were cultured in DMEM supplemented with 5% FBS.
  • a subline (Vero-IL13RA2) in which human IL13RA2 was introduced into Vero was established by infecting Vero cells with a retroviral vector expressing human IL13RA2, which was prepared by transfecting PLAT-A cells with pMXc-puro-hIL13RA2, and then conducting drug selection using a medium containing 5% FBS-supplemented DMEM and 4 ⁇ g/mL puromycin (Thermo Fisher Scientific).
  • pMXc-puro-hIL13RA2 was prepared by inserting the ORF of human IL13RA2 into the multicloning site of pMXc-puro (provided by Toshio Kitamura, University of Tokyo).
  • Human malignant glioma cell line U87 (ATCC HTB-14) and its subline, and human malignant melanoma cell line RPMI7951 (ATCC HTB-66) were cultured in Eagle's minimum essential medium (E-MEM; FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation, Osaka, Japan) supplemented with 10% FBS.
  • E-MEM Eagle's minimum essential medium
  • U87 (+) and U87 (-) cells were established by separating the U87 cells into populations that bound and those that did not bind the anti-IL13RA2 antibody SHM38 (BioLegend, CA, USA) using a cell sorter FACSAria (BD Biosciences, NJ, USA).
  • Mouse myeloma cell line P3U1 (ATCC CRL-1597) and human non-small cell lung cancer cell line H1299 (ATCC CRL-5803) were cultured in Roswell Park Memorial Institute 1640 medium (RPMI1640, Thermo Fisher Scientific) supplemented with 10% FBS.
  • H1299 (+) and H1299 (-) cells were established from H1299 cells using the same method as U87 (+) and U87 (-) cells.
  • Human umbilical vein endothelial cells (HUVEC) (PromoCell, Heidelberg, Germany) were cultured in Endothelial Cell Growth Medium 2 (PromoCell) or KBM VEC-1 (KOHJIN BIO, Saitama, Japan).
  • J-13R2 cells were established by selecting J1.1-2 cells transfected with pcDNA3.1-puro-hIL13RA2 using a medium containing 10% FBS-supplemented DMEM and 16 ⁇ g/mL puromycin, and then isolating the IL13RA2 high expression population using FACSAria.
  • pcDNA3.1-puro-hIL13RA2 was prepared by inserting the ORF of human IL13RA2 into the multicloning site of pcDNA3.1-puro, which was prepared by replacing the G418 resistance gene of pcDNA3.1 (Thermo Fisher Scientific) with a puromycin resistance gene.
  • CHO-13R2 cells were established by selecting CHO-K1 cells transfected with pCAcc-puro-hIL13RA2 using 10% FBS-supplemented F-12K medium (Thermo Fisher Scientific) supplemented with 4 ⁇ g/mL puromycin, and then isolating the IL13RA2 high expression population using FACSAria.
  • J-13R1/4R cells and CHO-13R1/4R cells were established by culturing J1.1-2 cells and CHO-K1 cells cotransfected with pCAcc-puro-hIL13RA1 and pCAcc-puro-hIL4R in the same manner as J-13R2 and CHO-13R2, selecting drugs, and then isolating the IL13RA1 and IL4R high expression population using FACSAria.
  • pCAcc-puro-hIL13RA2, pCAcc-puro-hIL13RA1, and pCAcc-puro-hIL4R were constructed by inserting the ORFs of human IL13RA2, human IL13RA1, and human IL4R into the multicloning site of pCAcc-puro, which was constructed by inserting an expression cassette of a puromycin resistance gene into pCAcc (Yoshida et al., Biochem Biophys Res Commun. 230, 426-430 (1997)).
  • A375 cells were harvested using 2 mM EDTA, washed with PBS (-), and then a cell suspension of 5 x 107 cells/mL was prepared using a hypotonic solution (20 mM Tris-HCl, 50 mM NaCl, 2 mM EDTA). The cells were disrupted on ice using a Dounce homogenizer, then centrifuged at 4°C, 1,000 xg for 10 minutes to collect the supernatant. The collected supernatant was centrifuged at 4°C, 80,000 xg for 1 hour, the supernatant was removed, and RPMI1640 was added and resuspended to prepare a cell membrane fraction solution.
  • the cell membrane fraction solution prepared from 1 x 107 cells was subcutaneously administered to female BALB/c mice (Tokyo Laboratory Animals, Tokyo, Japan) together with 12 ⁇ g of AbISCO-100 (Funakoshi, Tokyo, Japan) a total of six times. Three days after the final administration, the mice were euthanized and the spleens were removed. The spleen cells and P3U1 cells were mixed and fused using polyethylene glycol (PEG1500, Roche, Basel, Switzerland).
  • the hybridomas were cultured for 6 days using RPMI1640 medium supplemented with 10% Super Low IgG-FBS (Thermo Fisher Scientific), 1 ⁇ HAT Media Supplement Hybri-Max (Sigma, MO, USA), 5% Briclone (NICB, Dublin, Ireland) and 128 ⁇ M 2-mercaptoethanol (Nacalai Tesque, Kyoto, Japan), and then the medium was replaced.
  • the culture supernatant was collected two days after the medium change, and the culture supernatant and 4 ⁇ g/mL antibody-bound diphtheria toxin (DT3C) (Yamaguchi, et al., Biochem Biophys Res Commun.
  • hybridoma cells producing the 4E6 antibody are deposited internationally at the National Institute of Technology and Evaluation, Japan Patent Microorganism Depositary (NPMD) (Address: 2-5-8 Kazusa Kamatari, Kisarazu City, Chiba Prefecture, Japan) on July 4, 2022 under the accession number: NITE BP-03673.
  • NPMD Japan Patent Microorganism Depositary
  • RNA extracted from the 4E6 antibody-producing hybridoma using RNeasy Mini Kit (QIAGEN, CA, USA) as a template the light and heavy chains of the antibody gene were amplified by RT-PCR using SuperScript III One-step RT-PCR System with Platinum Taq High Fidelity DNA polymerase (Thermo Fisher Scientific).
  • Primers 5'-GGAAGATCTGAYATTGTGMTSACMCARWCTMCA-3' (SEQ ID NO: 18) and 5'-CCGAATTCGGATACAGTTGGTGCAGCATC-3' (SEQ ID NO: 19) were used to amplify the light chain, and 5'-GGAAGATCTSARGTNMAGCTGSAGSAGTC-3' (SEQ ID NO: 20), 5'-GGAAGATCTSARGTNMAGCTGSAGSAGTCWGG-3' (SEQ ID NO: 21), and 5'-CCGAATTCATAGACAGATGGGGGTGTCGTTTTGGC-3' (SEQ ID NO: 22) were used to amplify the heavy chain (Wang et al., J Immunol Methods 233 2000. 167-177).
  • telomere sequence a spacer sequence containing (Gly 4 Ser) 3 to construct scFv.
  • Y represents T or C
  • M represents A or C
  • S represents G or C
  • R represents G or A
  • W represents A or T
  • N represents A, G, C, or T.
  • HSV-BAC recombination All HSV-BAC constructs used in this study were derived from KOS-37 BAC (provided by David Leib, Dartmouth Medical School) (Gierasch et al., J Virol Methods. 2006 Aug;135(2):197-206). All recombination procedures were based on the Red homologous recombination system (Tischer et al., Biotechniques. 2006 Feb;40(2):191-7.).
  • pKGN-sc13R2, pKGN-IL13 and pKGN-IL13zr were prepared by modifying gD of pKGN in the same manner as previously reported, using transfer constructs prepared by PCR using pgD:224/Y38C-sc13R2kan, pgD:224/Y38C-IL13kan and pgD:dSP-32/V34S-IL13kan as templates (Shibata, et al., Gene Ther. 2016 23(6):479-88).
  • pgD:224/Y38C-sc13R2kan, pgD:224/Y38C-IL13kan and pgD:dSP-32/V34S-IL13kan were prepared by inserting an I-SceI recognition sequence, a kanamycin resistance gene and a 50 bp homologous sequence for removing the kanamycin resistance gene into the AflII site of pgD:224/Y38C-sc13R2, pgD:224/Y38C-IL13 and pgD:dSP-32/V34S-IL13 in the same manner as previously reported (Shibata, et al., Gene Ther. 2016 23(6):479-88).
  • pgD:224/Y38C-sc13R2 was prepared by inserting an scFv sequence constructed from a 4E6 antibody-producing hybridoma into the deletion region of the 2nd to 24th amino acids of gD of pgD:224/Y38C (Uchida, et al., Mol Ther. 2013 Mar;21(3):561-9.) in the same manner as previously reported (Shibata, et al., Gene Ther. 2016 23(6):479-88).
  • pgD:224/Y38C-IL13 was prepared by inserting a BamHI fragment of DNA amplified with primers 5'-AAGAATTCGCTAGCGGTGGTGGTGGATCCGGCCCTGTGCCTCCCTCTA-3' (SEQ ID NO:23) and 5'-CCGGGATCCTGAACCTCCACCACCGTTGAACTGTCCCTCGCGAAAAAG-3' (SEQ ID NO:24) using pGEM-T Easy-hIL13 encoding the ORF of human IL13 as a template, into the deleted region from the 2nd to 24th amino acids of gD of pgD:224/Y38C.
  • pgD:dSP-32/V34S-IL13 was synthesized by cloning the sequence from the AflII site to the BspEI site including the N-terminus of gD in pgD:224/Y38C using the IL13 ORF as a template, and primers 5'-CCCTTAAGGTCTCTTTTGTGTGGTGCGTTCCGGTATGGCGCTTTTGTTGACCACGGTCATTGCTCTCACTTGCCTTGGCGGCTTTGCCTCCCCAGGCCCTGTGCCTCCCTCTAC-3' (SEQ ID NO: 25) and 5'-TTGGATCCGGTACCGTTGAACTGTCCCTCGCGAAAAAGTT-3' (SEQ ID NO:26) and the ORF of wild-type gD as templates, and inserting a fragment from the BamHI site to the BspEI site of DNA amplified with primers 5'-ATCGGATCCCGGCGGCGCGTGTACCACATCCAGG-3' (SEQ ID NO:27) and
  • pKGN-sc13R2-BhKt was prepared by modifying the anti-EGFR single-chain antibody-inserted gD of pKGNE-BhKt to 4E6-derived single-chain antibody-inserted gD in the same manner as in modifying pKGN to pKGN-sc13R2.
  • KGN which has a double mutation in gB that promotes cell entry (gB:D285N/A549T), was used as previously reported (Shibata, et al., Gene Ther. 2016 23(6):479-88).
  • KGN, KGN-IL13, and KGN-IL13zr used in Figures 2 and 3 were prepared by infecting VD60 cells with KGN or by cotransfecting pKGN-IL13 or pKGN-IL13zr with the Cre recombinase expression plasmid pxCANCre (provided by Izumu Saito, The University of Tokyo).
  • Vero cells were infected with these viruses complemented with wild-type gD, and the remaining extracellular virus was inactivated by acidic treatment with glycine buffer at pH 3.0. The virus was then purified in a manner similar to that previously reported to prepare purified viruses from which wild-type gD derived from VD60 had been removed (Uchida, et al., J Virol. 2009 Apr;83(7):2951-61). Viral genome titers (gc/mL) were measured by qPCR for the gD gene as previously reported (Miyagawa et al., Proc Natl Acad Sci U S A. 2015 Mar 31;112(13):E1632-41.).
  • KGN-IL13, KGN-sc13R2, and KGN-sc13R2-BhKt used in the examples other than those in Figures 2 and 3 were prepared by cotransfecting pKGN-IL13, pKGN-sc13R2, or pKGN-sc13R2-BhKt with pxCANCre into Vero-IL13RA2 cells. These viruses were monocloned by limiting dilution twice using Vero-IL13RA2. The removal of the BAC sequence from the monocloned clones was confirmed by the method previously reported (Miyagawa et al., Proc Natl Acad Sci U S A. 2015 Mar 31; 112 (13): E1632-41.).
  • Flow cytometry analysis was performed using LSRFortessa (BD Biosciences). 4E6 antibody, mouse anti-IL13RA2 monoclonal antibody SHM38 (BioLegend), mouse anti-IL13RA1 monoclonal antibody GM-1E7 (Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX), mouse anti-IL4R monoclonal antibody G077F6 (BioLegend), and isotype-matched control antibodies MG1-45 and MOPC-173 (BioLegend) were used as primary antibodies. Alexa Fluor 488-labeled goat anti-mouse IgG (H+L) polyclonal antibody (Thermo Fisher Scientific) was used as secondary antibody.
  • mice Animal experiments All animal experiments were approved by the Animal Experiment Committee of the University of Tokyo or Tokyo University of Pharmacy and Life Sciences, and were performed in compliance with the implementation regulations and implementation manuals of each institution. 6-8 week-old female severe combined immunodeficient mice SCID-Beige (CB17.Cg-Prkdc scid Lyst bg-J /CrlCrlj; Charles River Japan, Kanagawa, Japan) were subcutaneously transplanted into the left flank of the mice at 1 x 107 cells/100 ⁇ L.
  • SCID-Beige CB17.Cg-Prkdc scid Lyst bg-J /CrlCrlj; Charles River Japan, Kanagawa, Japan
  • mice When the average tumor volume reached approximately 290 mm 3 (U87 (+)) or approximately 150 mm 3 (H1299 (+)), the mice were grouped so that the average tumor volume was similar, and PBS or a virus solution suspended in PBS was administered intratumorally in a volume of 30 ⁇ L or intravenously in a volume of 200 ⁇ L.
  • the tumor volume was calculated using the formula (long diameter ⁇ short diameter 2 )/2 (Tomayko et al., Cancer Chemother Pharmacol. 1989; 24 (3): 148-54.). Mice with tumor volumes exceeding 10% of body weight were considered to have died from the tumor and were euthanized.
  • KGN-IL13 entered cells via IL13RA2, but hardly entered cells via HVEM or nectin-1.
  • J1.1-2 cells a cell line lacking expression of the gD receptor, and sublines of J1.1-2 in which gD receptor or IL13RA2 was forcibly expressed (J-HVEM cells, J-nectin-1 cells, and J-13R2 cells) were infected with two IL-13-inserted HSVs (KGN-IL13 and KGN-IL13zr) and their parent strain, a non-targeted HSV (KGN) with a similar EGFP expression cassette and a mutation that enhances intracellular entry (gB:NT mutation). The presence or absence of intracellular entry of the virus was evaluated using the EGFP fluorescent signal 8 hours after the start of infection (Figure 2).
  • KGN invaded the two types of cells expressing the gD receptor, but did not invade J1.1-2 or J-13R2 cells.
  • KGN-IL13zr was detected to enter J-13R2 cells only at 300 gc/cell, although only slightly. However, while it was not detected to enter J-HVEM cells, it was detected to enter J-nectin-1 cells more than J-13R2 cells.
  • Our observation is not consistent with the report by Zhou and Roizman, who reported that R5141, which has the same gD construct as the IL-13-inserted gD of KGN-IL13zr, hardly entered J-nectin-1 cells but entered J-13R2 cells.
  • KGN-IL13 In contrast to KGN-IL13zr, KGN-IL13 penetrated J-13R2 cells more efficiently than KGN-IL13zr. Moreover, it was found that KGN-IL13 not only did not penetrate J-HVEM cells, but also that its penetration was hardly detectable in J-nectin-1 cells even at 300 gc/cell. Similar results were observed when using CHO-K1 cells and their sublines, which are another cell line lacking expression of gD receptors ( Figure 3). These results suggest that KGN-IL13 is more suitable for targeting IL13RA2 than KGN-IL13zr.
  • KGN-IL13 also invaded IL13RA1-expressing cells, but KGN-sc13R2 specifically invaded only IL13RA2-expressing cells.
  • IL-13 also binds to IL13RA1, although with lower affinity than IL13RA2. It has also been reported that when IL13RA1 forms a complex with IL4R (IL13RA1/IL4R), it binds with higher affinity than IL13RA1 alone. Therefore, we investigated whether IL13RA1/IL4R functions as a receptor for KGN-IL13. As a control virus, we created KGN-sc13R2 by inserting an anti-IL13RA2 single-chain antibody (sc13R2), which we independently produced using the method described below, into the same targeting gD platform as KGN-IL13.
  • sc13R2 anti-IL13RA2 single-chain antibody
  • a hybridoma cell library was prepared by fusing spleen cells extracted from mice immunized with a cell membrane fraction of the malignant melanoma cell line A375, which is known to express IL13RA2, with the mouse myeloma cell line P3U1.
  • DT3C antibody-conjugated modified diphtheria toxin
  • a protein extract was prepared from A375 cells, and immunoprecipitation was performed using the antibody (4E6 antibody) produced by this clone. Mass spectrometry analysis of the precipitate revealed the presence of peptide fragments thought to be derived from IL13RA2. Based on these results, the binding of the 4E6 antibody to CHO-K1 cells and a subline (CHO-13R2) in which IL13RA2 was forcibly expressed in CHO-K1 cells was confirmed by flow analysis, and the 4E6 antibody did not bind to CHO-K1 cells, but did bind to CHO-13R2 cells. From these results, it was determined that the antigen of the 4E6 antibody is IL13RA2.
  • KGN-sc13R2 was constructed by cloning the antibody gene from a hybridoma producing the 4E6 antibody and incorporating a gD mutant in which the scFv sequence derived from that sequence was inserted into the targeting gD platform.
  • J-HVEM and J-nectin-1 cells used in Figure 2 an entry assay was performed using a substrain (J-13R1/4R) in which IL13RA1/IL4R was forcibly expressed in J1.1-2, and the specificity of intracellular entry of KGN-sc13R2 was compared with that of KGN-IL13 ( Figure 4). Both KGN-IL13 and KGN-sc13R2 entered J-13R2 cells, but of these two viruses, only KGN-IL13 was observed to enter J-13R1/4R cells. Furthermore, at an MOI of 10, KGN-IL13 entered J-nectin-1 cells only slightly, whereas KGN-sc13R2 did not enter at all.
  • KGN-IL13 uses not only IL13RA2 but also IL13RA1/IL4R as receptors for intracellular entry, while KGN-sc13R2 uses only IL13RA2 as a receptor for intracellular entry.
  • KGN-IL13 killed vascular endothelial cells, but KGN-sc13R2 did not show cytotoxicity.
  • Vascular endothelial cells are one of the normal cells with which the virus is thought to come into contact immediately after intravenous administration of oHSV. Therefore, we compared the infectivity of KGN-IL13 and KGN-sc13R2 to vascular endothelial cells.
  • IL-13 receptor and IL4R human umbilical vein endothelial cells (HUVEC) was examined by flow analysis. As a result, anti-IL13RA1 antibody and anti-IL4R antibody bound to HUVEC, but anti-IL13RA2 antibody did not bind to HUVEC ( Figure 6(a)). This result suggests that IL13RA1 and IL4R are expressed in HUVEC, but IL13RA2 is not expressed.
  • KGN-IL13 penetrates HUVEC and shows cytotoxicity.
  • KGN penetrated HUVEC with the highest efficiency among the three viruses used in the study and showed remarkable cytotoxicity ( Figure 6(b) and Figure 6(c)).
  • KGN-IL13 penetrated HUVEC and showed cytotoxicity under conditions where the virus was added at a relatively high MOI.
  • KGN-sc13R2 did not penetrate HUVEC or show cytotoxicity even under conditions where the virus was added at the maximum MOI in each experiment.
  • KGN-sc13R2 penetrated into Vero-IL13RA2 cells used as a positive control with the same efficiency as KGN-IL13 and showed the same or higher cytotoxicity.
  • KGN-sc13R2 invaded and spread only to cells expressing IL13RA2
  • the 4E6 antibody bound to U87 (+), H1299 (+) and RPMI7951 cells, but did not bind to U87 (-), H1299 (-) and A2058 cells.
  • RRsyn-oHSV virus in which mutations that induce the formation of multinucleated giant cells in infected cells (synchronous mutations) were incorporated into two different glycoproteins, gB and gK, of RR-oHSV (Okubo et al., J Virol. 2016 Nov 28; 90(24):11096-11105.).
  • synchronous mutations gB: R858H/gK: A40T, BhKt
  • KGN-sc13R2-BhKt by introducing BhKt into KGN-sc13R2 and compare its target specificity and infection efficiency with those of KGN-sc13R2.
  • the plaque area in IL13RA2-positive cancer cell lines was compared.
  • the plaque area in all IL13RA2-positive cancer cell lines was significantly larger in KGN-sc13R2-BhKt than in KGN-sc13R2 (approximately 7 times in U87 (+) cells, approximately 50 times in H1299 (+) cells, and approximately 9 times in RPMI7951 cells), suggesting that KGN-sc13R2-BhKt can spread more efficiently than KGN-sc13R2 (FIG. 9(a)).
  • KGN-sc13R2-BhKt showed lower ED50 values than KGN-sc13R2 in all cell lines (approximately 1/4 in U87 (+) cells, approximately 1/200 in H1299 (+) cells, and approximately 1/10 in RPMI7951 cells), suggesting that KGN-sc13R2-BhKt has a higher cytotoxicity than KGN-sc13R2 ( Figure 9(b)).
  • KGN-sc13R2-BhKt is believed to be the virus that can achieve the highest level of both safety and efficacy among the IL13RA2-targeted RR-oHSVs examined in this study.
  • KGN-sc13R2-BhKt exerted a strong antitumor effect against IL13RA2-positive tumors in vivo.
  • KGN-sc13R2-BhKt has high targeting specificity for IL13RA2 and could be a potential cancer treatment that exerts a strong antitumor effect.
  • the anti-IL13RA2 single-chain antibody-inserted gD mutant achieved intracellular entry only via IL13RA2, without achieving intracellular entry via IL13RA1/IL4R.
  • the BhKt mutation enhanced the plaque-forming and cytotoxic abilities of KGN-sc13R2 without losing infection specificity. It was revealed that KGN-sc13R2-BhKt exerts an antitumor effect when administered intratumorally to tumor-bearing mouse models of multiple IL13RA2-positive human cancer cell lines, and also exerts a strong antitumor effect when administered intravenously.
  • KGN-IL13 entered cells expressing IL13RA1, revealing that IL13RA1 functions as an HSV receptor when IL-13 is used as a cancer targeting module inserted into gD.
  • IL-13 functions as an HSV receptor when IL-13 is used as a cancer targeting module inserted into gD.
  • Several research groups have suggested that the binding ability of IL-13 to IL13RA1 may be reduced by introducing amino acid mutations such as E13K or E13Y into IL-13 (Debinski, et al., Nat Biotechnol. 1998 May;16(5):449-53.; Kahlon, et al., Cancer Res. 2004 Dec 15;64(24):9160-6.).
  • RR-oHSV is created in which IL-13 with these mutations is incorporated into gD as a cancer targeting module, it may be possible to avoid infection of normal cells expressing IL13RA1.
  • the virus may acquire a mutation that restores its ability to bind to IL13RA1 during proliferation, resulting in the spread of infection to normal cells expressing IL13RA1. From this perspective, it is believed that anti-IL13RA2 single-chain antibodies are more suitable than IL-13 as a cancer targeting module for developing RR-oHSV that specifically targets IL13RA2.
  • KGN-sc13R2-BhKt exerted an antitumor effect on immunodeficient cancer-bearing mice by a single administration of a very small amount of virus, 10 2 pfu, without any obvious toxicity. Therefore, it was suggested that KGN-sc13R2-BhKt could be a highly effective and safe cancer treatment drug not only by intratumoral administration but also by intravenous administration. This characteristic is considered to be particularly beneficial in treating cancer patients with distant metastasis.
  • Example 2 A virus (KG ⁇ N-sc13R2-BhKt) in which the ICP34.5 gene of KGN-sc13R2-BhKt prepared in Example 1 was deleted was further prepared.
  • a method for preparing a virus in which the ICP34.5 gene of the parent virus KGN-sc13R2-BhKt is deleted can be carried out with reference to the method described in International Publication No. 2020/090871. Specifically, since there are two copies of the ICP34.5 gene on the herpesvirus genome, the deletion operation of the two copies was performed in two stages, one copy at a time, using the method described in detail in Suzuki et al. (Mol Ther Oncolytics. 2021; 22: 265-276.).

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Abstract

本発明は、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片がウイルス表面に提示される、ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスを提供する。また、腫瘍細胞を特異的に認識し得る、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を提供する。

Description

ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルス及び抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片
　本発明は、ウイルス表面に抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体を提示することにより、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞を標的とし、特異的に溶解することができる単純ヘルペスウイルスに関する。また、本発明は、標的である前記腫瘍細胞を特異的に認識することのできる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片に関する。
　がんに対する新たな治療法として、がん細胞のみを効率良く殺傷する治療法の開発が望まれている。Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ　１３　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｓｕｂｕｎｉｔ　ａｌｐｈａ　２（ＩＬ１３ＲＡ２）は悪性神経膠腫や悪性黒色腫をはじめとした様々な固形腫瘍、皮膚Ｔ細胞リンパ腫などの血液腫瘍に発現することが報告されている一方、正常細胞における発現は限定的であることから、がん治療の標的分子として有望視されている（非特許文献１～３）。ＩＬ１３ＲＡ２とそのリガンドであるｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ　１３（ＩＬ－１３）の解離定数は１００ ｆＭ未満と非常に低いため（非特許文献４）、ＩＬ１３ＲＡ２を標的としたがん治療法を開発するための薬物送達モジュール（がん標的化モジュール）としてＩＬ－１３を利用することが試みられてきた。例えば、ＩＬ－１３に緑膿菌外毒素（ＰＥ）を結合させた組換えタンパク質（ＩＬ１３－ＰＥ）を用いた悪性神経膠腫の治療法の開発が挙げられる（非特許文献５）。しかしながら、ＩＬ１３ＲＡ２とは異なり、ＩＬ－１３の受容体として生理的機能を担うｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ　１３　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｓｕｂｕｎｉｔ　ａｌｐｈａ　１（ＩＬ１３ＲＡ１）は血管内皮細胞を含め様々な正常細胞に発現しており（非特許文献６）、その解離定数は１．６９ ｎＭとＩＬ１３ＲＡ２より高いもののＩＬ－１３との結合性を有する（非特許文献４）。また、ＩＬ１３ＲＡ１がｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ　４　ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＩＬ４Ｒ）と複合体を形成するとＩＬ－１３との結合能が５倍程度高くなることも報告されている（非特許文献７）。したがって、がん標的化モジュールにＩＬ－１３を用いてがん細胞を特異的に殺傷することを図る治療法に対しては、ＩＬ１３ＲＡ１を発現する正常細胞が傷害されることによる副作用の懸念が指摘されてきた（非特許文献８）。したがって、がん細胞のみを特異的に認識する代替の治療スキームに対する需要が、引き続き存在していた。
　腫瘍溶解性ウイルス療法は、がん細胞選択的に増殖するウイルスを用いたがん治療法である。中でも、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）は最も古くから腫瘍溶解性ウイルスへの応用が試みられてきた。本発明者らの研究グループを含め、複数の研究グループが、ＨＳＶの遺伝子改変により、本来のＨＳＶ受容体ではなくがん細胞選択的に発現する標的分子を介した感染を可能とした受容体標的化腫瘍溶解性ＨＳＶ（ＲＲ－ｏＨＳＶ）を報告した（非特許文献９～１０）。すなわち、ＨＳＶの細胞内侵入に必須な糖タンパク質Ｄ（ｇＤ）を改変することにより本来のｇＤ受容体であるｈｅｒｐｅｓｖｉｒｕｓ　ｅｎｔｒｙ　ｍｅｄｉａｔｏｒ（ＨＶＥＭ）、３－ＯＳ－ＨＳおよびｎｅｃｔｉｎ－１との結合を不能とした上でがん標的化モジュールをｇＤと融合させることにより、ＨＳＶをがん細胞選択的に侵入できるよう改変する手法である。この手法を用いて、ＺｈｏｕらはＩＬ－１３をがん標的化モジュールとして用いることによりＩＬ１３ＲＡ２標的化ＲＲ－ｏＨＳＶを開発した（非特許文献１１）。しかしながら、このＩＬ－１３挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶのＩＬ１３ＲＡ１発現細胞に対する感染性やｉｎ　ｖｉｖｏにおける抗腫瘍効果の検討はなされておらず、臨床開発の可否を判断するためにはさらなる検討が必要と思われる。
　以前、本発明者らは、ｇＤの２番目から２４番目のアミノ酸の欠失によりＨＶＥＭ及び３－ＯＳ－ＨＳとの、３８番目のアミノ酸をチロシンからシステインに変異させることによりｎｅｃｔｉｎ－１との結合を不能とした上で、２番目から２４番目の欠失領域に単鎖抗体（ｓｃＦｖ）をがん標的化モジュールとして挿入することにより、標的分子を発現する細胞にのみ侵入・伝播するＲＲ－ｏＨＳＶを開発した（特許文献１、非特許文献１２）。このＲＲ－ｏＨＳＶは改変ｇＤに挿入する単鎖抗体を置換することにより様々な標的分子に対する標的化改変が可能であり、これまでにｅｐｉｄｅｒｍａｌ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＥＧＦＲ）、ｃａｒｃｉｎｏｅｍｂｒｙｏｎｉｃ　ａｎｔｉｇｅｎ（ＣＥＡ）、ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｅｌｌ　ａｄｈｅｓｉｏｎ　ｍｏｌｅｃｕｌｅ（ＥｐＣＡＭ）、ｅｐｉｒｅｇｕｌｉｎ（ＥＲＥＧ）に対するＲＲ－ｏＨＳＶの開発に成功している（非特許文献１２～１４）。
国際公開第２０２０／０９０８７１号公報
Ｌｉｕ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｍｏｌ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｔｈｅｒ．　２００３　Ａｕｇ；２（８）：７８３－７ Ｂｅａｒｄ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｌｉｎ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．２０１３　Ｓｅｐ　１５；１９（１８）：４９４１－５０． Ｇｅｓｋｉｎ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｌｏｏｄ　２０１５　Ａｐｒ　３０；１２５（１８）：２７９８－８０５． Ｌｕｐａｒｄｕｓ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ．２０１０　Ｍａｒ　１０；１８（３）：３３２－４２． Ｋｕｎｗａｒ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｏｎｃｏｌ　２００７　Ｍａｒ　１；２５（７）：８３７－４４． Ａｋａｉｗａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｙｔｏｋｉｎｅ　２００１　Ｊａｎ　２１；１３（２）：７５－８４． Ａｎｄｒｅｗｓ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｂｉｏｌ　Ｃｈｅｍ　２００２　Ｎｏｖ　２９；２７７（４８）：４６０７３－８． Ｂａｌｙａｓｎｉｋｏｖａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｂｉｏｌ　Ｃｈｅｍ　２０１２　Ａｕｇ　３１；２８７（３６）：３０２１５－２７． Ｕｃｈｉｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｕｒｒ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｄｒｕｇ　Ｔａｒｇｅｔｓ　２０１８；１８（２）：１６２－１７０． Ｍｅｎｏｔｔｉ　ａｎｄ　Ａｖｉｔａｂｉｌｅ，　Ｉｎｔ　Ｊ　Ｍｏｌ　Ｓｃｉ　２０２０　Ｎｏｖ　５；２１（２１）：８３１０． Ｚｈｏｕ　ａｎｄ　Ｒｏｉｚｍａｎ，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ　２００６　Ａｐｒ　４；１０３（１４）：５５０８－１３． Ｕｃｈｉｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ．　２０１３　Ｍａｒ；２１（３）：５６１－９． Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８． Ｉｋｅｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ　２０２１　Ａｐｒ　１２；９５（９）：ｅ０１７６６－２０．
　本発明は、腫瘍細胞を特異的に溶解することができ、且つ、安全性の高い単純ヘルペスウイルスを提供することを目的とする。また、本発明は、腫瘍細胞を特異的に認識し得る、新たな抗体またはその抗原結合断片を提供することを目的とする。
　受容体標的化腫瘍溶解性ＨＳＶ（ＲＲ－ｏＨＳＶ）に組み込まれた時に、腫瘍関連抗原を特異的に認識し、且つ、当該腫瘍関連抗原をウイルス受容体として機能させることにより標的細胞への侵入に必要な分子メカニズムを完遂に導く、という条件を満たす、ターゲット抗原に対する標的化モジュール（例えば抗体またはその抗原結合断片）を取得する必要がある。しかしながら、例えば１つのターゲット抗原を認識するｓｃＦｖが複数存在する際に、どのｓｃＦｖが組み込まれた場合にＲＲ－ｏＨＳＶの侵入の成立に必要なシグナル伝達カスケード、すなわちｇＤの活性化に続き他のエンベロープ糖タンパク質、ｇＨ／ｇＬヘテロ二量体及びｇＢの段階的な活性化を引き起こし、結果として標的細胞への侵入を成立させ得るかを予測することは極めて困難である。実際、発明者らの以前の研究では、ターゲット抗原を認識するｓｃＦｖの全てがＲＲ－ｏＨＳＶの標的細胞への侵入を成立させ得るわけではないことを報告している（非特許文献１４)。
　そこで本発明者らは、ＩＬ１３ＲＡ２に特異的に認識することができる抗体および抗原結合断片の取得を試み、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体およびその抗原結合断片を取得した。本発明者らは、取得した抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体およびその抗原結合断片が、ＩＬ１３ＲＡ２に特異的に結合することができることを見出した。また、驚くべきことに、当該抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体は、効率よく腫瘍細胞に内在化されることも見出した。
　本発明者らは、さらに鋭意研究を行い、先述の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体の抗原結合断片を、表面に提示するよう組み換えた単純ヘルペスウイルスを作製した結果、本来のリガンドであるＩＬ－１３を表面に提示するよう組み換えた単純ヘルペスウイルスよりも、ＩＬ１３ＲＡ２陽性細胞に、より高いＩＬ１３ＲＡ２選択性を示しながらより高い効率で感染し、溶解しうることを見出した。
　即ち、本発明は、以下の態様を含み得る。
　［１］　抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片がウイルス表面に提示される、ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルス。
　［２］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：ＲＨＧＩＨ（配列番号１）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ（配列番号２）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ（配列番号３）
（ｉｖ）ＬＣＤＲ１：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ（配列番号４）
（ｖ）ＬＣＤＲ２：ＳＴＳＮＬＡＳ（配列番号５）及び
（ｖｉ）ＬＣＤＲ３：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ（配列番号６）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有する、項目１に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［３］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、
　配列番号８に記載のＶＬ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
　配列番号１０に記載のＶＨ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
を含む、項目１又は２に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［４］　前記抗原結合断片が、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ビス－ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディまたはテトラボディである、項目１～３のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［５］　前記抗原結合断片がｓｃＦｖである、項目１～４のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［６］　前記抗原結合断片が配列番号７（ｓｃＦｖの配列）の配列に対して９０％以上の配列同一性を示す配列を含む、項目１～５のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［７］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、キメラ化又はヒト化した抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片である、項目１～６のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［８］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質に組み込まれている、項目１～７のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［９］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤ、エンベロープタンパク質ｇＢ、エンベロープタンパク質ｇＣ又はエンベロープタンパク質ｇＨに組み込まれている、項目８に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１０］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤに組み込まれている、項目８に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１１］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤにおける配列番号１２の２番目から２４番目までのアミノ酸の欠失部分、配列番号１２の２４番目と２５番目の間、６番目から３８番目までのアミノ酸の欠失部分又は６１番目から２１８番目までのアミノ酸の欠失部分に組み込まれていることを特徴とする、項目８に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１２］　エンベロープタンパク質ｇＤが、Ｎｅｃｔｉｎ－１、ＨＶＥＭ及び／または３－ＯＳ－ＨＳを発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異を有する、項目１～１１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１３］　前記Ｎｅｃｔｉｎ－１を発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異が、配列番号１２の６番目から３８番目までのアミノ酸の全部の欠失、配列番号１２の６１番目から２１８番目までのアミノ酸の全部の欠失、配列番号１２の３番目および／または３８番目のアミノ酸の変異及び配列番号１２の２２２番目および２２３番目のアミノ酸の変異からなる群から１又は複数選択される、項目１２に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１４］　前記配列番号１２の３番目のアミノ酸変異が欠失またはシステインへの置換、３８番目のアミノ酸変異がシステインへの置換、２２２番目のアミノ酸変異がアスパラギンへの置換および２２３番目のアミノ酸変異がイソロイシンへの置換であることを特徴とする項目１３に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１５］　前記エンベロープタンパク質ｇＤのアミノ酸変異のうち、ＨＶＥＭ及び／または３－ＯＳ－ＨＳを発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異が、配列番号１２の２番目から３８番目までのアミノ酸の全部もしくは一部の欠失、配列番号１２の６１番目から２１８番目までのアミノ酸の全部の欠失、配列番号１２の２７番目のアミノ酸変異、配列番号１２の２９番目のアミノ酸変異、および／または、配列番号１２の３０番目のアミノ酸変異であることを特徴とする項目１２～１４のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１６］　前記配列番号１２の２番目から３８番目までのアミノ酸の一部の欠失が、２番目から２４番目までのアミノ酸の欠失、７番目から１１番目までのアミノ酸の欠失、７番目から３２番目までのアミノ酸の欠失もしくは６番目から３８番目までのアミノ酸の欠失のいずれか、２７番目のアミノ酸変異がアラニン、プロリンもしくはアルギニンへの置換、２９番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換および３０番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換であることを特徴とする項目１５に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１７］　前記単純ヘルペスウイルスのエンベロープタンパク質ｇＢ、エンベロープタンパク質ｇＫ、ＵＬ２０タンパク質及び／又はＵＬ２４タンパク質が、標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異を有する、項目１～１６のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［１８］　前記標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異が、下記（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および／または（ｄ）に記載の変異であることを特徴とする項目１６に記載の単純ヘルペスウイルス。
（ａ）配列番号１３の２８５番目のアミノ酸変異、５４９番目のアミノ酸変異、７９６番目のアミノ酸変異、８００番目のアミノ酸変異、８１３番目のアミノ酸変異、８１７番目のアミノ酸変異、８５４番目のアミノ酸変異、８５５番目のアミノ酸変異、８５８番目のアミノ酸変異、８１６番目と８１７番目の間へのアミノ酸の挿入、８６９番目のアミノ酸のナンセンス変異および／または８７７番目のアミノ酸のナンセンス変異、
（ｂ）配列番号１４の３３番目のアミノ酸変異、４０番目のアミノ酸変異、８６番目のアミノ酸変異、９９番目のアミノ酸変異、１１１番目のアミノ酸変異、１２１番目のアミノ酸変異、２４３番目のアミノ酸変異、３０４番目のアミノ酸変異および／または３１０番目のアミノ酸変異、
（ｃ）配列番号１５の４９番目のアミノ酸変異、４９、５０および５１番目のアミノ酸変異、２０９番目のアミノ酸変異、２０９、２１２および２１３番目のアミノ酸変異、２１７番目のアミノ酸のナンセンス変異、ならびに／または、配列番号１５で表されるアミノ酸配列全ての欠失、
（ｄ）配列番号１６の６２、６３および６４番目のアミノ酸変異
　［１９］　前記配列番号１３の２８５番目のアミノ酸変異がアスパラギンへの置換、前記配列番号１３の５４９番目のアミノ酸変異がスレオニンへの置換、前記配列番号１３の７９６番目のアミノ酸変異がシステインへの置換、配列番号１３の８００番目のアミノ酸変異がトリプトファンへの置換、配列番号１３の８１３番目のアミノ酸変異がイソロイシンへの置換、配列番号１３の８１７番目のアミノ酸変異がヒスチジンもしくはプロリンへの置換、配列番号１３の８５４番目のアミノ酸変異がフェニルアラニンへの置換、配列番号１３の８５５番目のアミノ酸変異がバリンへの置換、配列番号１３の８５８番目のアミノ酸変異がシステインもしくはヒスチジンへの置換、
　配列番号１４の３３番目のアミノ酸変異がセリンへの置換、配列番号１４の４０番目のアミノ酸変異がバリンもしくはスレオニンへの置換、配列番号１４の８６番目のアミノ酸変異がプロリンへの置換、配列番号１４の９９番目のアミノ酸変異がアスパラギンへの置換、配列番号１４の１１１番目のアミノ酸変異がバリンへの置換、配列番号１４の１２１番目のアミノ酸変異がイソロイシンへの置換、配列番号１４の２４３番目のアミノ酸変異がチロシンへの置換、配列番号１４の３０４番目のアミノ酸変異がプロリンへの置換、配列番号１４の３１０番目のアミノ酸変異がロイシンへの置換、
　配列番号１５の４９番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の５０番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の５１番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の２０９番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の２１２番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の２１３番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、
　配列番号１６の６２番目のアミノ酸変異がグリシンへの置換、６３番目のアミノ酸変異がバリンへの置換、６４番目のアミノ酸変異がセリンへの置換
であることを特徴とする項目１８に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［２０］　制限増殖型改変を有する、項目１～１９のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［２１］　前記制限増殖型改変が、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化する変異である、項目２０に記載の単純ヘルペスウイルス。
　［２２］　項目１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスをコードする核酸。
　［２３］　項目１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスを産生する細胞。
　［２４］　項目１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスを製造する方法。
　［２５］　項目１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスを含む医薬組成物。
　［２６］　ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍の治療薬である、項目２５に記載の医薬組成物。
　［２７］　前記腫瘍がメラノーマ、骨肉腫、白血病、リンパ腫、前立腺癌、肺癌（悪性中皮腫を含む）、グリオーマ、頭頸部癌、腎癌、カポジ肉腫、大腸癌、膵癌、副腎癌、乳癌又は卵巣癌である、項目２６に記載の医薬組成物。
　［２８］　重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：ＲＨＧＩＨ（配列番号１）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ（配列番号２）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ（配列番号３）
（ｉｖ）ＬＣＤＲ１：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ（配列番号４）
（ｖ）ＬＣＤＲ２：ＳＴＳＮＬＡＳ（配列番号５）及び
（ｖｉ）ＬＣＤＲ３：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ（配列番号６）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有する、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
　［２９］　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、
　配列番号８に記載のＶＬ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
　配列番号１０に記載のＶＨ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
を含む、項目２８に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
　［３０］　前記抗原結合断片が、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ビス－ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディまたはテトラボディである、項目２８又は２９に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
　［３１］　前記抗原結合断片が配列番号７（ｓｃＦｖの配列）の配列に対して９０％以上の配列同一性を示す配列を含む、項目２８～３０のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
　［３２］　キメラ化又はヒト化した、項目２８～３１のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
　［３３］　項目２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片をコードする核酸。
　［３４］　項目３３に記載の核酸を含む、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を産生する細胞。
　［３５］　項目２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を産生する細胞。
　［３６］　受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０３６７３にて寄託されている、細胞。
　［３７］　項目３４～３６のいずれか１項に記載の細胞を用いて、項目２７～３１のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を製造する方法。
　［３８］　項目２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を含む医薬組成物。
　［３９］　ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍の治療用の、項目３８に記載の医薬組成物。
　［４０］　前記腫瘍がメラノーマ、骨肉腫、白血病、リンパ腫、前立腺癌、肺癌（悪性中皮腫を含む）、グリオーマ、頭頸部癌、腎癌、カポジ肉腫、大腸癌、膵癌、副腎癌、乳癌又は卵巣癌である、項目３９に記載の医薬組成物。
　［４１］前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、抗体薬物複合体の形態で前記医薬組成物に含まれる、項目３８～４０のいずれか１項に記載の医薬組成物。
　本発明によれば、ＩＬ１３ＲＡ２陽性の癌細胞を選択的に、かつ効率よく溶解／死滅させることができる。従って、本発明は、副作用が少なく、生体に対して安全であり、また投与量が少なくてすむ、新たな治療手段を提供することができる。
図１は、ＩＬ－１３挿入型ＨＳＶのゲノムおよび標的化ｇＤ変異体の構造の模式図。ＩＬ－１３挿入型ＨＳＶのゲノムおよびＩＬ－１３挿入型ｇＤ変異体の構造を示す。ＵＬ：ｕｎｉｑｕｅ　ｌｏｎｇ　ｓｅｇｍｅｎｔ；　ＵＳ：ｕｎｉｑｕｅ　ｓｈｏｒｔ　ｓｅｇｍｅｎｔ；　ＣＭＶｐ：ｈｕｍａｎ　ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ　ｍａｊｏｒ　ｉｍｍｅｄｉａｔｅ　ｅａｒｌｙ　（ＨＣＭＶ－ＩＥ）　ｐｒｏｍｏｔｅｒ；　ＥＧＦＰ：ＵＬ３およびＵＬ４の間に挿入されたＥＧＦＰの発現カセット；　ＮＴ：ｇＢ内の細胞内侵入促進変異（Ｄ２８５Ｎ／Ａ５４９Ｔ）；　ｇＤ－ＩＬ１３：ＩＬ－１３挿入型ｇＤ；　黒四角：ｔｅｒｍｉｎａｌ　ａｎｄ　ｉｎｔｅｒｎａｌ　ｉｎｖｅｒｔｅｄ　ｒｅｐｅａｔｓ；　ＳＰ：シグナルペプチド；　ＴＭ：膜貫通領域；　ＣＴ：サイトゾル側末端；　Ｎ：アミノ末端；　Ｃ：カルボキシ末端。 図２は、ＩＬ－１３挿入型ＨＳＶの細胞内侵入段階における標的特異性を示す。ｇＤ受容体あるいはＩＬ１３ＲＡ２を強制発現させたＪ１．１－２細胞亜株に対するＩＬ－１３挿入型ＨＳＶの細胞内侵入を調べた。パネル下部に示す細胞に対してパネル左側に示すウイルスを感染させてから８時間後におけるＥＧＦＰの蛍光シグナルを観察した。Ｂａｒｓ：３００　μｍ。 図３は、ＣＨＯ－Ｋ１細胞およびその亜株を用いたＩＬ－１３挿入型ＨＳＶの細胞内侵入の特異性を示す。ｇＤ受容体あるいはＩＬ１３ＲＡ２の強制発現ＣＨＯ－Ｋ１細胞亜株に対するＩＬ－１３挿入型ＨＳＶの細胞内侵入を調べた。パネル上部に示す細胞に対して３０　ｇｃ／ｃｅｌｌの条件でパネル左側に示すウイルスを感染させ、１０時間後にＥＧＦＰの蛍光シグナルを観察した。Ｂａｒｓ：３００　μｍ。 図４は、ＩＬ－１３挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶおよび抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶの細胞内侵入段階における標的特異性を示す。ｇＤ受容体、ＩＬ１３ＲＡ２、あるいはＩＬ１３ＲＡ１およびＩＬ４Ｒを強制発現させたＪ１．１－２細胞亜株に対するＩＬ－１３あるいは抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶの細胞内侵入を調べた。パネル下部に示す細胞に対してパネル左側に示すウイルスを感染させてから８時間後にＥＧＦＰの蛍光シグナルを観察した。Ｂａｒｓ：３００　μｍ。 図５は、ＣＨＯ－Ｋ１細胞およびその亜株に対するＩＬ－１３挿入型ＨＳＶおよび抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＨＳＶの細胞内侵入の特異性を示す。ｇＤ受容体、ＩＬ１３ＲＡ２、ならびにＩＬ１３ＲＡ１およびＩＬ４Ｒを強制発現させたＣＨＯ－Ｋ１細胞亜株に対するＩＬ－１３あるいは抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＨＳＶの細胞内侵入。パネル上部に示す細胞に対してＭＯＩ　１の条件でパネル左側に示すウイルスを感染させ、８時間後にＥＧＦＰの蛍光シグナルを観察した。Ｂａｒｓ：３００　μｍ。 図６は、ヒト臍帯静脈血管内皮細胞に対するＩＬ－１３挿入型ＨＳＶおよび抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＨＳＶの感染性を示す。（ａ）ＨＵＶＥＣにおけるＩＬ１３ＲＡ２、ＩＬ１３ＲＡ１ならびにＩＬ４Ｒの発現。図上部に示す分子に対するマウス由来抗体およびＡｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ　４８８標識抗マウスＩｇＧ抗体を用いてＨＵＶＥＣを染色し、フロー解析を施行した。灰色ヒストグラムはアイソタイプ一致陰性対照抗体。　（ｂ）ＨＵＶＥＣに対する細胞内侵入。パネル左側に示すウイルスをＨＵＶＥＣあるいはＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２にパネル上部に示すＭＯＩにて感染させ、１２時間後に蛍光シグナルを観察した。Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２に対してはＨＵＶＥＣに対してＭＯＩ　０．１にて感染させたものと同一のウイルス液を感染させた。Ｂａｒｓ：３００　μｍ。　（ｃ）ＨＵＶＥＣに対する細胞傷害性。グラフ上部に示す細胞に対してＫＧＮ、ＫＧＮ－ＩＬ１３、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２を感染させ、４日後にＭＴＴ　ａｓｓａｙを行った。非感染条件（ｃｏｎｔｒｏｌ）に対する相対的な細胞数を生細胞数（％）とした。エラーバーは標準偏差を示す（ｎ＝６）。 図７は、Ｕ８７細胞およびＨ１２９９細胞におけるＩＬ１３ＲＡ２の発現を示す。マウス抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体ＳＨＭ３８およびＡｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ　４８８標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体を用いて染色し、フロー解析を施行した。灰色ヒストグラムはアイソタイプ一致陰性対照抗体。 図８は、抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶの細胞内侵入および細胞間伝播における標的特異性を示す。（ａ）ヒトがん細胞株におけるＩＬ１３ＲＡ２の発現。４Ｅ６抗体およびＡｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ　４８８標識抗マウスＩｇＧ抗体を用いてパネル上部に示すヒトがん細胞株を染色し、フロー解析を施行した。灰色ヒストグラムはアイソタイプ一致陰性対照抗体。　（ｂ）ヒトがん細胞株に対する細胞内侵入。パネル上部に示すヒトがん細胞株に対して、パネル左側に示すウイルスをＭＯＩ　１にて感染させ、６時間後にＥＧＦＰの蛍光シグナルを観察した。Ｂａｒｓ：３００　μｍ。　（ｃ）ヒトがん細胞株に対する細胞間伝播。パネル左側に示すウイルスを感染させたＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２細胞を酸性処理することにより細胞外に残存するウイルスを不活化した上で、単層培養したパネル上部に示す細胞株に１００　ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌとなるように重層した。メチルセルロース含有培地で３６時間培養した後のＥＧＦＰの蛍光シグナルを示す。矢頭：単感染細胞；　Ｂａｒｓ：３００　μｍ。 図９は、ＢｈＫｔ変異が抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶのＩＬ１３ＲＡ２陽性ヒトがん細胞株に対する細胞間伝播能および細胞傷害能に及ぼす影響を示す。（ａ）ＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞株におけるプラークサイズ。グラフ下部に示すウイルスを単層培養したグラフ上部に示すＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞に感染させ、メチルセルロース含有培地にて３日間培養した際のＥＧＦＰの蛍光シグナルからプラーク面積を求めた。プラーク面積の平均値（灰色線）±標準偏差（黒線）を示す（ｎ＝１５）。統計解析には両側Ｍａｎｎ－Ｗｈｉｔｎｅｙ　Ｕ検定を用いた。＊，Ｐ＜０．０５。　（ｂ）ＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞株に対する細胞傷害能。グラフ上部に示す細胞にＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２（黒線）あるいはＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ（灰色線）を感染させ、４日後にＭＴＴ　ａｓｓａｙを行った。非感染条件（ｃｏｎｔｒｏｌ）に対する相対的な細胞数を生細胞数（％）とした。エラーバーは標準偏差を示す（ｎ＝６）。 図１０は、担がん免疫不全マウスに対するＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔの抗腫瘍効果を示す。（ａ）Ｕ８７　（＋）細胞の皮下腫瘍モデルに対する腫瘍内投与の抗腫瘍効果。腫瘍体積が約２９０　ｍｍ３に達した際にＰＢＳ（黒丸；　ｎ＝６）あるいは１０２　ｐｆｕのＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ（灰色丸；　ｎ＝６）を腫瘍内投与（矢印）し、その後の腫瘍体積をモニターした。　（ｂ）Ｈ１２９９　（＋）細胞の皮下腫瘍モデルに対する腫瘍内投与の抗腫瘍効果。腫瘍体積が約１５０　ｍｍ３に達した際にＰＢＳ　（黒丸；　ｎ＝６）、１０２（灰色丸；　ｎ＝６）あるいは１０４（三角；　ｎ＝６）　ｐｆｕのＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを腫瘍内投与（矢印）し、その後の腫瘍体積をモニターした。　（ｃ）Ｕ８７　（＋）細胞の皮下腫瘍モデルに対する静脈内投与の抗腫瘍効果。腫瘍体積が約２９０　ｍｍ３に達した際にＰＢＳ（黒丸；　ｎ＝６）あるいは１０６（灰色丸；　ｎ＝６）ｐｆｕのＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを静脈内投与（矢印）し、その後の腫瘍体積をモニターした。腫瘍体積の平均値および標準誤差を示す。統計解析には二元配置反復測定分散分析を用いた。 図１１は、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔのＩＣＰ３４．５を欠失させたウイルス（ＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ）のＵ８７－ＩＬ１３ＲＡ２＋の皮下腫瘍モデルに対する抗腫瘍効果を示す。Ｕ８７－ＩＬ１３ＲＡ２＋をＳＣＩＤ　Ｂｅｉｇｅマウスに皮下移植し、腫瘍体積が約２９０ｍｍ３に達した際にＰＢＳ又は１０２ｐｆｕの各ウイルスを腫瘍内投与した。矢印は投与日（移植から９日後）を示す。エラーバーは標準誤差を示す（ｎ＝６）。（Ａ）ＰＢＳ、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ又はＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを投与したマウスの平均腫瘍体積（ｍｍ３）の変化を示す。（Ｂ）ＰＢＳ、（Ｃ）ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ、または（Ｄ）ＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを投与した各マウスの腫瘍体積（ｍｍ３）の変化を示す。
　以下、本発明を具体的な実施の形態に即して詳細に説明する。但し、本発明は以下の実施の形態に束縛されるものではなく、本発明の趣旨を逸脱しない範囲において、任意の形態で実施することが可能である。
　なお、本開示で引用する特許公報、特許出願公開公報、非特許文献、及び配列等のアクセッション番号にかかる公開されているデータ情報等は、何れもその全体が援用により、あらゆる目的において本開示に組み込まれるものとする。
　本開示において、数値に対して適用された場合の「～」とは、規定された基準値以上で、かつ規定された基準値以下の範囲に入る値の範囲を指す。本開示において、「約」とは、後に続く数値の±１０％をいう。
　本明細書において、アミノ酸の変異について記載する場合、特に断らない限り、当該アミノ酸の置換、欠失および当該アミノ酸と隣接するアミノ酸間への１または数個（例えば、１～１０個、好ましくは１～５個、より好ましくは１～３個程度）のアミノ酸の挿入などを意味する。例えば、ある配列を参照して、「Ｒ２１の変異」と記載する場合には、そのアミノ酸配列中２１番目のアミノ酸の欠失、他のアミノ酸への置換または２１番目のアミノ酸と隣接するアミノ酸との間に１または数個のアミノ酸が挿入されることを意味する。なお、上記例示に関しては、ＨＳＶの株毎に、本明細書中に記載したアミノ酸番号が１～１０程度ずれる可能性がある。従って、任意のＨＳＶ株において、例えば、アミノ酸番号が±ｎ個（ただし、ｎは１以上１０以下の整数）ずれる場合には、Ｒ２１は、Ｒ（２１±ｎ）と読み替えるものとする。
ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルス
　本明細書において、用語「ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルス」は、ＩＬ１３ＲＡ２陽性のがん細胞に特異的に結合し感染するように操作されている単純ヘルペスウイルスを意味する。ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスの遺伝子は遺伝子工学的に改変されている。
　本発明に適用され得る単純ヘルペスウイルスは、腫瘍溶解性ウイルスである。本明細書で使用される、「腫瘍溶解性ウイルス」という用語は、がん細胞に優先的に感染して、該がん細胞を死滅させることができる、改変されたウイルスを指す。
　本発明のＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスは、単純ヘルペスウイルス表面上にＩＬ１３ＲＡ２に結合する、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を提示する。抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、所望の細胞の標的化を促進するため、ウイルス表面に露出したエンベロープタンパク質である糖タンパク質等に組み込まれ得る。抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を組み込む方法は公知であり、グルタルアルデヒド等のクロスリンカーを利用する方法、タグ（ビオチン、グルタチオン、Ｍｙｃ等のエピトープ、６ｘヒスチジン等）とそのリガンドを利用する方法、ウイルスのエンベロープタンパク質及び抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を２つの抗原として認識する多重特異的抗体（例えばバイスペシフィック抗体）を利用する方法、及びエンベロープタンパク質と抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体もしくはその抗原結合断片との融合タンパク質として発現する方法等があげられるが、エンベロープタンパク質との融合タンパク質として発現する方法が好ましい。抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片はウイルスのエンベロープの外側に提示されるように、組み換えウイルスを作製する。
　用語「ＩＬ－１３」は、本明細書で使用されるように、主にＴヘルパー２細胞により分泌されるサイトカインを含む。ＩＬ－１３は、受容体（ＩＬ－１３Ｒα１／ＩＬ－４Ｒα）を共有するＩＬ－４とともに、抗体産生による液性免疫の誘導に重要な働きをする。ＩＬ－１３は１３ｋＤａポリペプチドの単量体タンパク質であり、ＩＬ－１３の構造は、例えば、Ｍｏｙ，Ｄｉｂｌａｓｉｏ　ｅｔ　ａｌ．２００１年　Ｊ　Ｍｏｌ　Ｂｉｏｌ　３１０　２１９－３０頁にさらに記載されている。 
　「ＩＬ１３ＲＡ２」はＩＬ－１３の高親和性受容体として知られており、ＩＬ－１３のデコイとして機能するとともに、ＩＬ－４のＳＴＡＴ６を介するシグナル伝達を阻害したり、また最近では多くのシグナル伝達（ＷＮＴ／β－Ｃａｔｅｎｉｎ，　ＭＡＰＫ／ＥＲＫ，ＡＫＴ／ＰＫＢ，Ｓｒｃ／ＦＡＫ，ＰＩＰ３Ｋ等）に関与することが報告されており、皮膚炎等の炎症性疾患に対し保護的な役割を果たしていると考えられている（Ｓｉｖａｐｒａｓａｄら、Ｊ　Ｉｍｍｕｎｏｌ．　２０１０；　１８５（１１）：　６８０２）。例えば、ＩＬ１３ＲＡ２の一態様であるヒトＩＬ１３ＲＡ２の前駆体は、配列番号１７に示されるアミノ酸の配列（ＮＣＢＩアクセション番号：ＮＰ＿０００６３１．１）を有するポリペプチドであり得る。なお、配列番号１７に示されるヒトＩＬ１３ＲＡ２の前駆体は、シグナルペプチド（１～２６番目）を含むものであり、成熟型のヒトＩＬ１３ＲＡ２は、配列番号１７に示されるアミノ酸配列の２７番目～３８０番目に相当する。
　本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスに提示される、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片、あるいは、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：（配列番号１：ＲＨＧＩＨ）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：（配列番号２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：（配列番号３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ）
（ｉｖ）ＬＣＤＲ１：（配列番号４：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ）
（ｖ）ＬＣＤＲ２：（配列番号５：ＳＴＳＮＬＡＳ）及び
（ｖｉ）ＬＣＤＲ３：（配列番号６：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有する。「ＣＤＲ」とは免疫グロブリン分子の可変領域のうち、抗原結合部位を形成する領域をいい、超可変領域とも呼ばれ、免疫グロブリン分子ごとに特にアミノ酸配列の変化が大きい部分をいう。ＣＤＲには重鎖（ＨＣＤＲ）、軽鎖（ＬＣＤＲ）それぞれに３つのＣＤＲ（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３）がある。本願では、免疫グロブリン分子のＣＤＲはカバット（Ｋａｂａｔ）の番号付けシステム（Ｋａｂａｔら，　１９８７，　Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ　ｏｆ　Ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｏｆ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，　ＵＳ　Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈ　ａｎｄ　Ｈｕｍａｎ　Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，　ＮＩＨ，　ＵＳＡ）に従って決定される。
　本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスに提示される、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：（配列番号１：ＲＨＧＩＨ）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：（配列番号２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：（配列番号３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個（１個、２個または３個）のアミノ酸変異を有する。
　本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスに提示される、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＬＣＤＲ１：（配列番号４：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ）
（ｉｉ）ＬＣＤＲ２：（配列番号５：ＳＴＳＮＬＡＳ）及び
（ｉｉｉ）ＬＣＤＲ３：（配列番号６：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個（１個、２個または３個）のアミノ酸変異を有する。
　また、本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスに提示される、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、配列番号８に記載のＶＬ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上（例えば、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％）の配列同一性を示す配列と、配列番号１０に記載のＶＨ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上（例えば、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％）の配列同一性を示す配列と、を含む抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片であり得る。
　本明細書において、ＣＤＲにかかるアミノ酸変異は、他のアミノ酸に置き換える「置換」、該アミノ酸を除く「欠失」、他のアミノ酸を追加する「挿入」を意味するが、とりわけ「保存的なアミノ酸置換」が好ましい。保存的なアミノ酸置換は、関与する残基の極性、電荷、溶解性、疎水性、親水性、及び／または両親媒性の性質における類似性に基づいて行われる。たとえば、非極性（疎水性）アミノ酸にはアラニン（Ａｌａ、Ａ）、ロイシン（Ｌｅｕ、Ｌ）、イソロイシン（Ｉｌｅ、Ｉ）、バリン（Ｖａｌ、Ｖ）、プロリン（Ｐｒｏ、Ｐ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ、Ｆ）、トリプトファン（Ｔｒｐ、Ｗ）、及びメチオニン（Ｍｅｔ、Ｍ）が挙げられ；極性中性アミノ酸にはグリシン（Ｇｌｙ、Ｇ）、セリン（Ｓｅｒ、Ｓ）、スレオニン（Ｔｈｒ、Ｔ）、システイン（Ｃｙｓ、Ｃ）、チロシン（Ｔｙｒ、Ｙ）、アスパラギン（Ａｓｎ、Ｎ）、及びグルタミン（Ｇｌｎ、Ｑ）が挙げられ；正に荷電した（塩基性）アミノ酸にはアルギニン（Ａｒｇ、Ｒ）、リジン（Ｌｙｓ、Ｋ）、及びヒスチジン（Ｈｉｓ、Ｈ）が挙げられ；負に荷電した（酸性）アミノ酸にはアスパラギン酸（Ａｓｐ、Ｄ）及びグルタミン酸（Ｇｌｕ、Ｅ）が挙げられる。「置換」、「挿入」または「欠失」は好ましくは１、２又は３個のアミノ酸の範囲内である。組換えＤＮＡ法を用いてポリペプチド分子にてアミノ酸の置換を体系的またはランダムに行い、活性について得られた組換え変異体をアッセイすることによって変異が導入されてもよい。
　例となる態様では、本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスに提示される、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体は、マウスの定常領域（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ３、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＡ）を含んでもよい。一部の態様では、該抗体はヒトの定常領域（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２）を有するキメラ化抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体であってもよい。また、マウス抗体、キメラ化抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体は、例えば重鎖だけウイルス表面に提示してもよい。さらに一部の態様では、該抗体はアフィニティーやアビディティーを高めるために、二重特異性、三重特異性、または多重特異性を有する抗体（バイスペシフィック抗体、トリスペシフィック抗体、マルチスペシフィック抗体）、であってもよい。
　一実施態様において、本発明において適用され得る抗原結合断片は、本明細書に記載されている抗体のいずれかの抗原結合断片であってもよい。抗原結合断片は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ビス－ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディ、又はテトラボディ等を含むが、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体に由来する抗原結合断片であればこれらに限定されない。ダイアボディ（二量体）、トリアボディ（三量体）またはテトラボディ（四量体）は当該技術で周知である。たとえば、Ｋｏｒｔｔら，Ｂｉｏｍｏｌ．Ｅｎｇ．２００１，１８：９５－１０８，（２００１）及びＴｏｄｏｒｏｖｓｋａら，Ｊ．ＩｍｍｕｎｏｌＭｅｔｈｏｄｓ．２４８：４７－６６，（２００１）を参照のこと。一実施態様において、本発明において適用され得る抗原結合断片は、好ましくはｓｃＦｖである。
　ｓｃＦｖは、合成ペプチド（リンカー）を介して抗体軽鎖の可変（Ｖ）領域（ＶＬ領域）に連結された抗体重鎖のＶ領域（ＶＨ領域）からなり、それは日常的な組換えＤＮＡ技術法（たとえば、Ｊａｎｅｗａｙら，Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ，第２版，ＧａｒｌａｎｄＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇ，ＮｅｗＹｏｒｋ，（１９９６）を参照のこと）を用いて生成することができる。リンカーとしては、例えば（Ｇｌｙ４Ｓｅｒ）３のフレキシブルリンカーが使用できるが、これに限定されない。また、ｓｃＦｖにおいて、リンカーによって接続されるＶＬ領域とＶＨ領域の連結される順番は特に限定されない。同様に、ジスルフィド安定化可変領域断片（ｄｓＦｖ）は組換えＤＮＡ技術（たとえば、Ｒｅｉｔｅｒら，ＰｒｏｔｅｉｎＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，７，６９７－７０４（１９９４））によって調製することができる。
　一実施態様において、本発明において適用され得る抗原結合断片は、配列番号７に記載の配列に対して、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す配列を含む、抗原結合断片であり得る。配列番号７に記載のアミノ酸配列は、具体的には以下のアミノ酸配列を含む配列である。
　上述のように配列番号７に記載のアミノ酸配列を有する抗原結合断片は、上述のＬＣＤＲ１～ＬＣＤＲ３（配列番号４～６）を含むＶＬ領域（配列番号８）と、上述のＨＣＤＲ１～ＨＣＤＲ３（配列番号１～３）を含むＶＨ領域（配列番号１０）と、リンカー配列１及び２（配列番号９及び１１）とを含んでいる。
　本開示の一部の態様では、本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスに提示される抗原結合断片は、重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：（配列番号１：ＲＨＧＩＨ）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：（配列番号２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：（配列番号３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ）
（ｉｖ）ＬＣＤＲ１：（配列番号４：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ）
（ｖ）ＬＣＤＲ２：（配列番号５：ＳＴＳＮＬＡＳ）及び
（ｖｉ）ＬＣＤＲ３：（配列番号６：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有し、かつ配列番号７に記載の配列に対して、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す配列を含む、抗原結合断片であってもよい。
　本発明にかかる「配列同一性」とは、配列を整列させ、最大の配列同一性を得るために必要ならば間隙を導入し、如何なる保存的置換も配列同一性の一部と考えないとした後の、特定の参照ポリペプチド配列のアミノ酸残基と同一である候補配列中のアミノ酸残基のパーセントとして定義される。配列同一性を測定する目的のためのアラインメントは、当業者の技量の範囲にある種々の方法、例えばＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ－２、ＡＬＩＧＮ、又はＭｅｇａｌｉｇｎ（ＤＮＡＳＴＡＲ）ソフトウエアのような公に入手可能なコンピュータソフトウエアを使用することにより達成可能である。当業者であれば、比較される配列の完全長に対して最大のアラインメントを達成するために必要な任意のアルゴリズムを含む、配列をアラインメントするための適切なパラメータを決定することができる。しかし、ここでの目的のためには、配列同一性値は、ペアワイズアラインメントにおいて、配列比較コンピュータプログラムＢＬＡＳＴを使用することによって得られる。
　アミノ酸配列比較にＢＬＡＳＴが用いられる状況では、与えられたアミノ酸配列Ａの、与えられたアミノ酸配列Ｂとの配列同一性（％）は次のように計算される：
　　分率Ｘ／Ｙの１００倍
ここで、Ｘは配列アラインメントプログラムＢＬＡＳＴのＡ及びＢのプログラムアラインメントによって同一であると一致したスコアのアミノ酸残基の数であり、ＹはＢの全アミノ酸残基数である。アミノ酸配列Ａの長さがアミノ酸配列Ｂの長さと異なる場合、ＡのＢに対する配列同一性は、ＢのＡに対する配列同一性（％）とは異なることは理解されるであろう。特に断らない限りは、ここでの全ての％アミノ酸配列同一性値は、直ぐ上のパラグラフに示したようにＢＬＡＳＴコンピュータプログラムを用いて得られる。
　本発明の配列番号７の抗原結合断片にかかるアミノ酸変異には、他のアミノ酸に置き換える「置換」、該アミノ酸を除く「欠失」、他のアミノ酸を追加する「挿入」がある。また、「置換」の一態様として「保存的なアミノ酸置換」がある。保存的なアミノ酸置換は、関与する残基の極性、電荷、溶解性、疎水性、親水性、及び／または両親媒性の性質における類似性に基づいて行われる。たとえば、非極性（疎水性）アミノ酸にはアラニン（Ａｌａ、Ａ）、ロイシン（Ｌｅｕ、Ｌ）、イソロイシン（Ｉｌｅ、Ｉ）、バリン（Ｖａｌ、Ｖ）、プロリン（Ｐｒｏ、Ｐ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ、Ｆ）、トリプトファン（Ｔｒｐ、Ｗ）、及びメチオニン（Ｍｅｔ、Ｍ）が挙げられ；極性中性アミノ酸にはグリシン（Ｇｌｙ、Ｇ）、セリン（Ｓｅｒ、Ｓ）、スレオニン（Ｔｈｒ、Ｔ）、システイン（Ｃｙｓ、Ｃ）、チロシン（Ｔｙｒ、Ｙ）、アスパラギン（Ａｓｎ、Ｎ）、及びグルタミン（Ｇｌｎ、Ｑ）が挙げられ；正に荷電した（塩基性）アミノ酸にはアルギニン（Ａｒｇ、Ｒ）、リジン（Ｌｙｓ、Ｋ）、及びヒスチジン（Ｈｉｓ、Ｈ）が挙げられ；負に荷電した（酸性）アミノ酸にはアスパラギン酸（Ａｓｐ、Ｄ）及びグルタミン酸（Ｇｌｕ、Ｅ）が挙げられる。「置換」、「挿入」または「欠失」は好ましくは１～２５個、１～２０個、１～１５個、１～１０個又は１～５個のアミノ酸の範囲内である。組換えＤＮＡ法を用いてポリペプチド分子にてアミノ酸の置換を体系的またはランダムに行い、活性について得られた組換え変異体をアッセイすることによって変異が導入されてもよい。
　本発明に用いられ得る単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶウイルス）は、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ－１）（「ＨＨＶ－１」ともいう場合もある）および単純ヘルペスウイルス２型（ＨＳＶ－２）（「ＨＨＶ－２」ともいう場合もある）が含まれる。本発明の実施形態で用いられるＨＳＶ－１およびＨＳＶ－２は、これらに分類されるあらゆる株（例えば、ＨＳＶ－１に分類されるＫＯＳ株、Ｆ株、１７株、ＶＲ３株、ＨＦ株、ＨＦ１０株およびＳＣ１６株など、ならびに、ＨＳＶ－２に分類される１８６株、Ｇ株および３３３株など）およびこれらの亜株に由来するものの全てを含む。すなわち、例えば、ＨＳＶ－１を例にして説明すると、ＧｅｎＢａｎｋ　ｎｏ．　ＪＱ６７３４８０．１（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｎｕｃｃｏｒｅ／ＪＱ６７３４８０．１）（配列番号２９）として全長ゲノム配列が開示されているＫＯＳ株以外にも、ＨＳＶ－１に分類されるその他の株およびこれらの亜株に属するＨＳＶ－１であってもよい。
　ＨＳＶは、エンベロープ糖タンパク質（ｇＢ、ｇＣ、ｇＤ、ｇＨ、ｇＬ、ｇＫなど）を有しており、宿主細胞の膜とウイルスのエンベロープの間で膜融合を引き起こし、ウイルスの細胞内侵入、細胞間伝播に重要である。まずｇＢとｇＣが細胞膜表面に発現するヘパラン硫酸と結合することによりＨＳＶが細胞膜に吸着する。次にｇＤがｈｅｒｐｅｓｖｉｒｕｓ　ｅｎｔｒｙ　ｍｅｄｉａｔｏｒ（ＨＶＥＭ）、ｎｅｃｔｉｎ－１あるいは３－Ｏ－ｓｕｌｆａｔｅｄ　ｈｅｐａｒａｎ　ｓｕｌｆａｔｅ（３－ＯＳ－ＨＳ）と結合する（Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｅｌｌ　１９９６；　Ｇｅｒａｇｈｔｙ　ｅｔ　ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ　１９９８；　Ｓｈｕｋｌａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｅｌｌ　１９９９）ことによりｇＤの構造変化が生じ（Ｃａｒｆｉ　ｅｔ　ａｌ．，Ｍｏｌ　Ｃｅｌｌ　２００１；Ｆｕｓｃｏ　ｅｔ　ａｌ．，Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　ＵＳＡ　２００５；　Ｋｒｕｍｍｅｎａｃｈｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，ＥＭＢＯ　Ｊ　２００５）、ｇＨ／ｇＬ複合体にシグナルが伝達される（Ａｔａｎａｓｉｕ　ｅｔ　ａｌ．，Ｊ　Ｖｉｒｏｌ　２０１０；Ａｔａｎａｓｉｕ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｍｂｉｏ２０１３；Ｇｉａｎｎｉ　ｅｔ　ａｌ．，Ｊ　Ｂｉｏｌ　Ｃｈｅｍ　２００９）。そしてｇＨ／ｇＬ複合体がｇＢを活性化して膜融合が成立する（Ａｔａｎａｓｉｕ　ｅｔ　ａｌ．，Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ　２００７；Ａｔａｎａｓｉｕ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ　２０１０；Ｃｈｏｗｄａｒｙ　ｅｔ　ａｌ．，Ｎａｔ　Ｓｔｒｕｃｔ　Ｍｏｌ　Ｂｉｏｌ　２０１０）。
　一実施態様において、本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスは、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片がエンベロープタンパク質に組み込まれたものであり、細胞表面に発現したＩＬ１３ＲＡ２を標的化するものであり、好ましくは、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片がエンベロープタンパク質ｇＤ（例えば、配列番号１２）、エンベロープタンパク質ｇＢ（例えば、配列番号１３、又はＰＬｏＳ　Ｐａｔｈｏｇ　２０１７；　１３（４）：　ｅ１００６３５２等を参照）、エンベロープタンパク質ｇＣ（例えば、Ｃａｎｃｅｒ　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ　２０１０；　１７（９）：　６５５－６６３等を参照）又はエンベロープタンパク質ｇＨ（例えば、ＰＬｏＳ　Ｐａｔｈｏｇ　２０１５；　１１（５）：　ｅ１００４９０７等を参照）に組み込まれたものであり、より好ましくは、エンベロープタンパク質ｇＤに組み込まれたものである。なお、ここで例示したエンベロープタンパク質のアミノ酸配列は例示であり、これらに限定されない。
　一実施態様において、本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスは、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤにおける配列番号１２の２番目から２４番目までのアミノ酸の欠失部分、配列番号１２の２４番目と２５番目の間、６番目から３８番目までのアミノ酸の欠失部分又は６１番目から２１８番目までのアミノ酸の欠失部分に組み込まれ得る。
　一実施態様において、本発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスは、エンベロープタンパク質ｇＤが、Ｎｅｃｔｉｎ－１、ＨＶＥＭ及び／または３－ＯＳ－ＨＳを発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異を有するものであってもよく、例えば、国際公開第２０２０／０９０８７１号公報に記載の変異を有するものであってもよい。
　本発明の実施形態において、「ｇＤ変異」は、ＨＳＶウイルスの細胞内への侵入を担うエンベロープ糖タンパク質であるｇＤの、ＨＶＥＭとの結合能を喪失（または低下）させる変異、ｎｅｃｔｉｎ－１との結合能を喪失（または低下）させる変異、３－ＯＳ－ＨＳとの結合能を喪失（または低下）させる変異、および、腫瘍抗原との結合能を付与する変異（例えば、腫瘍抗原に対するｓｃＦｖなどをコードするＤＮＡの挿入変異など）のいずれか併せ持つ、ｇＤ遺伝子またはｇＤタンパク質における、ヌクレオチドまたはアミノ酸変異のことである。これらの変異により、Ｎｅｃｔｉｎ－１、ＨＶＥＭ及び／または３－ＯＳ－ＨＳを発現する細胞への感染性が、それらの変異を有さないＨＳＶウイルスと比較して弱められる。
　配列番号１２に示されるＫＯＳ株のｇＤタンパク質のアミノ酸配列（Ｎ末端からの２５アミノ酸残基からなるシグナルペプチドは含まない）を示す。
　本明細書において、以下にＫＯＳ株を例にして「ｇＤ変異」の具体例を説明するが、他の株についても同様に本発明に適用可能である。ＫＯＳ株のｇＤタンパク質は、ＧｅｎＢａｎｋ　ｎｏ．　ＪＱ６７３４８０．１として登録されているＫＯＳ株ゲノム配列のヌクレオチド番号１３８２７９．．１３９４６３の位置に順方向（右向き）にコードされている。
　ＨＶＥＭ、ｎｅｃｔｉｎ－１、３－ＯＳ－ＨＳとｇＤとの結合能が失われるようなｇＤ変異については、例えば、Ｙｏｏｎら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　７７：９２２１－９２３１　２００３、Ｓｐｅａｒら，　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ　３４４：１７－２４　２００６、Ｃｏｎｎｏｌｌｙら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　７９：１２８２－１２９５　２００５、Ｕｃｈｉｄａら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８３：２９５１－２９６１　２００９、Ｕｃｈｉｄａら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８４：１２２００－１２２０９　２０１０およびＳｈｉｂａｔａら，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２３：４７９－４８８　２０１６など多くの公知文献に開示されており、当業者であれば、適宜、適切な変異を選択することができる。
　特に限定はしないが、あえて例示するならば、Ｎｅｃｔｉｎ－１との結合能を喪失させる変異、すなわち、Ｎｅｃｔｉｎ－１を発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異の位置をｇＤタンパク質のアミノ酸位置として、配列番号１２のアミノ酸番号で示すと、Δ６－３８（アミノ酸位置６～３８のアミノ酸の欠失）（Ｍｅｎｏｔｔｉら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８２：１０１５３－１０１６１　２００８）、Δ６１－２１８（アミノ酸位置６１～２１８のアミノ酸の欠失）（Ｍｅｎｏｔｔｉら，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　ＵＳＡ．　１０６：９０３９－９０４４　２００９）、Ｒ２２２Ｎ／Ｆ２２３Ｉ（Ｕｃｈｉｄａら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８３：２９５１－２９６１　２００９）などＲ２２２およびＦ２２３の変異（アミノ酸位置２２２番目および２２３番目のアミノ酸の変異）、Ｙ３８Ｃ、Ａ３Ｃ又はΔＡ３／Ｙ３８Ｃ（Ｃｏｎｎｏｌｌｙら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　７９：１２８２－１２９５　２００５、Ｕｃｈｉｄａら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８３：２９５１－２９６１　２００９）などＡ３および／またはＹ３８の変異（アミノ酸位置３番目および／または３８番目のアミノ酸の変異、例えば、アミノ酸位置３番目のアミノ酸変異が欠失またはシステインへの置換、３８番目のアミノ酸変異がシステインへの置換）などを挙げることができる。
　ＨＶＥＭとの結合能を喪失させる変異、すなわちＨＶＥＭを発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異の位置をｇＤタンパク質のアミノ酸位置として、配列番号１２のアミノ酸番号で示すと、Δ７－３２（アミノ酸位置７～３２のアミノ酸の欠失）（Ｙｏｏｎら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　７７：９２２１－９２３１　２００３）、Δ２－２４（アミノ酸位置２～２４のアミノ酸の欠失）（Ｓｈｉｂａｔａら，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２３：４７９－４８８　２０１６）、Δ７－１１（アミノ酸位置７～１１のアミノ酸の欠失）（Ｕｃｈｉｄａら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８４：１２２００－１２２０９　２０１０）およびΔ６－３８（Ｍｅｎｏｔｔｉら，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　８２：１０１５３－１０１６１　２００８）などアミノ酸位置２～３８に存在するアミノ酸の全部またはその一部の欠失、Δ６１－２１８（アミノ酸位置６１～２１８のアミノ酸の欠失）（Ｍｅｎｏｔｔｉら，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　ＵＳＡ．　１０６：９０３９－９０４４　２００９）、ならびに、Ｑ２７Ａ、Ｑ２７Ｐ、Ｑ２７Ｒ、Ｔ２９Ａ、Ｄ３０Ａ（以上、Ｓｐｅａｒら，　Ｖｉｒｏｌｏｇｙ　３４４：１７－２４　２００６）などＱ２７、Ｔ２９およびＤ３０の変異（アミノ酸位置２７番目のアミノ酸変異、２９番目のアミノ酸変異、および、３０番目のアミノ酸変異）などを挙げることができる。
　なお、ＨＶＥＭとの結合を阻害する変異の多くは、３－ＯＳ－ＨＳを介した細胞への侵入も阻害することが示されている（ＹｏｏｎおよびＳｐｅａｒ，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　ＵＳＡ．　１０１：１７２５２－１７２５７　２００４）。
　配列番号１２に示されるＫＯＳ株のｇＤタンパク質のアミノ酸配列に対して、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す配列、及び、それらについての上記で特定される変異を含む配列も、本願発明の範囲に含まれ得る。
　一実施態様において、本発明にかかる単純ヘルペスウイルスは、そのエンベロープタンパク質ｇＢ、エンベロープタンパク質ｇＫ、ＵＬ２０タンパク質及び／又はＵＬ２４タンパク質が、標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異を有する。
　多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異はＨＳＶのｇＢ遺伝子（またはｇＢタンパク質）、ｇＫ遺伝子（またはｇＫタンパク質）、ＵＬ２０遺伝子（またはＵＬ２０タンパク質：ｅｎｖｅｌｏｐｅ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ＵＬ２０）および／またはＵＬ２４遺伝子（またはＵＬ２４タンパク質：ｎｕｃｌｅａｒ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ＵＬ２４）上に導入される変異であり、この変異によりＨＳＶによる膜融合活性が促進される。また、標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異とは、ＨＳＶのｇＢ遺伝子（またはｇＢタンパク質）上に導入される変異であり、この変異により、ＨＳＶの標的細胞への侵入効率が促進される。配列番号１３、配列番号１４、配列番号１５および配列番号１６に、各々、ＫＯＳ株のｇＢタンパク質のアミノ酸配列、ＫＯＳ株のｇＫタンパク質のアミノ酸配列、ＫＯＳ株のＵＬ２０タンパク質のアミノ酸配列およびＫＯＳ株のＵＬ２４タンパク質のアミノ酸配列を示す。
　本明細書において、以下にＫＯＳ株を例にして、標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異の具体例を説明するが他の株についても同様に本発明に適用可能である。ＫＯＳ株のｇＢタンパク質は、ＧｅｎＢａｎｋ　ｎｏ．　ＪＱ６７３４８０．１として登録されているゲノム配列のヌクレオチド番号５３０２２．．５５７３６の位置に逆方向（左向き）に、ｇＫタンパク質はヌクレオチド番号１１２１０１．．１１３１１７の位置に順方向（右向き）に、ＵＬ２０タンパク質はヌクレオチド番号４０７６３．．４１４３１の位置に逆方向（左向き）に、ＵＬ２４タンパク質はヌクレオチド番号４７６７８．．４８４８７の位置に順方向（右向き）にコードされている。標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異について多くの公知文献に開示されており、当業者であれば、適宜、適切な変異を選択することができる。
　主なｇＢタンパク質の標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異をｇＢタンパク質のアミノ酸位置として配列番号１３のアミノ酸番号で示すと、Ｄ２８５ＮなどＤ２８５の変異、Ａ５４９ＴなどＡ５４９の変異などを挙げることができる。また、主なｇＢタンパク質の多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異をｇＢタンパク質のアミノ酸位置として、配列番号１３のアミノ酸番号で示すと、Ｒ７９６ＣなどＲ７９６の変異、Ｒ８００ＷなどＲ８００の変異、Ｔ８１３ＩなどＴ８１３の変異、Ｌ８１７ＨおよびＬ８１７ＰなどＬ８１７の変異、Ｓ８５４ＦなどＳ８５４の変異、Ａ８５５ＶなどＡ８５５の変異、Ｒ８５８ＣおよびＲ８５８ＨなどＲ８５８の変異、Ｅ８１６とＬ８１７の間への挿入（ＶＮ（２アミノ酸挿入）およびＶＮＶＮ（４アミノ酸挿入））、Ｓ８６９のナンセンス変異、Ｔ８７７のナンセンス変異などを挙げることができる。
　主なｇＫタンパク質の多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異をｇＫタンパク質のアミノ酸位置として、配列番号１４のアミノ酸番号で示すと、Ｐ３３ＳなどＰ３３の変異、Ａ４０ＶおよびＡ４０ＴなどＡ４０の変異、Ｌ８６ＰなどＬ８６の変異、Ｄ９９ＮなどＤ９９の変異、Ａ１１１ＶなどＡ１１１の変異、Ｔ１２１ＩなどＴ１２１の変異、Ｃ２４３ＹなどＣ２４３の変異、Ｌ３０４ＰなどＬ３０４の変異、Ｒ３１０ＬなどＲ３１０の変異などを挙げることができる。
　主なＵＬ２０タンパク質の多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異をＵＬ２０タンパク質のアミノ酸位置として、配列番号１５のアミノ酸番号で示すと、Ｙ４９Ａ単独変異、Ｙ４９Ａ／Ｓ５０Ａ／Ｒ５１ＡなどＹ４９、Ｓ５０およびＲ５１の変異、Ｒ２０９Ａ単独変異、Ｒ２０９Ａ／Ｔ２１２Ａ／Ｒ２１３ＡなどＲ２０９、Ｔ２１２およびＲ２１３の変異、Ｎ２１７以降のＣ末端の欠失、ＵＬ２０タンパク質全長の欠失などを挙げることができる。
　主なＵＬ２４タンパク質の多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異をＵＬ２４タンパク質のアミノ酸位置として、配列番号１６のアミノ酸番号で示すと、Ｔ６２Ｇ／Ｒ６３Ｖ／Ｖ６４ＳなどＴ６２、Ｒ６３およびＶ６４の変異などを挙げることができる。
　主な標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異を表１にまとめた。
　配列番号１４に示されるＫＯＳ株のｇＫタンパク質、配列番号１３に示されるＫＯＳ株のｇＢタンパク質、配列番号１５に示されるＫＯＳ株のＵＬ２０タンパク質、又は配列番号１６に示されるＫＯＳ株のＵＬ２４タンパク質のアミノ酸配列に対して、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す配列、及び、それらについての上記で特定される変異を含む配列も、本願発明の範囲に含まれ得る。
　本発明にかかる単純ヘルペスウイルスは、前述のｓｙｎ変異を保持する以外にも、ＨＳＶの膜融合を促進する外来遺伝子（以下「膜融合促進外来遺伝子」とも記載する）を発現可能な状態で保持してもよい。当該外来遺伝子が組み込まれるＨＳＶゲノム上の位置は特に限定されず、ＨＳＶウイルスが腫瘍溶解性ウイルスとして備えるべき機能を阻害することがなければ、ＨＳＶゲノム上のいかなる位置であってもよい。
　上記膜融合促進外来遺伝子として、特に限定はしないが、例えば、テナガザル白血病ウイルス（ＧＡＬＶ：ｇｉｂｂｏｎ　ａｐｅ　ｌｅｕｋｅｍｉａ　ｖｉｒｕｓ）由来の融合性糖タンパク質（ＦＭＧ：ｆｕｓｏｇｅｎｉｃ　ｍｅｍｂｒａｎｅ　ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ）を挙げることができる。ＧＡＬＶのＦＭＧ遺伝子を発現可能な状態でゲノム上に保持するＨＳＶの作製は、当業者であれば容易に行うことが可能で、例えば、Ｓｉｍｐｓｏｎら，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．　６６：４８３５－４８４２　２００６およびＮａｋａｍｏｒｉら，　Ｃｌｉｎ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．　９：２７２７－２７３３　２００３などを参照して実施することができる。
　本発明にかかる単純ヘルペスウイルスは、上記の変異に代えて、または上記の変異に加えて、正常細胞における増殖を減弱化させる変異（本明細書中において、「制限増殖型改変」ともいう。）を有するものであってもよい。制限増殖型改変としては、例えば、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化する変異であってもよい。ＩＣＰ３４．５（例えば、配列番号３０のアミノ酸配列（ＫＯＳ株））は、単純ヘルペスウイルスが有する神経毒性因子である。癌細胞では、プロテインキナーゼ　Ｒ（ＰＫＲ）の活性化に関わるシグナル伝達系に異常があり、正常細胞に比べてウイルスに対する許容度が高く、また外からのインターフェロンに対して抵抗性となることがある。一方で、単純ヘルペスウイルスなどではＰＫＲの作用を解除するように働くウイルス遺伝子産物であるＩＣＰ３４．５タンパク質を保有している。機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化した変異を有する単純ヘルペスウイルスは正常細胞では著しく増殖が抑制されるが、癌細胞においてはほとんど影響を受けることなく良く増殖することが知られている。したがって、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化した変異を有する単純ヘルペスウイルスは、癌細胞のみにおいて増殖し、正常細胞では増殖が抑制させることから、より安全性が高まることが期待できる。一実施態様において、本発明にかかる単純ヘルペスウイルスは、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化する変異を有するものであればよく、例えば、ＩＣＰ３４．５を非機能性にする任意の変異（例えば、ナンセンス変異）、欠失もしくは置換を有するものや、ＩＣＰ３４．５をコードする遺伝子の一部または全部が欠失しており、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化しているものであってもよく、例えば、国際公開第２０２０／０９０８７１号公報、特表２００６－５２８４８４号明細書、Ｃｈｏｕ　ｅｔ　ａｌ．　１９９０，　Ｓｃｉｅｎｃｅ　２５０：　１２６２－１２６６；及びＭａｃｌｅａｎ　ｅｔ　ａｌ．　１９９１，　Ｊ．　Ｇｅｎ．　Ｖｉｒｏｌ．　７２：　６３１－６３９等に記載のＩＣＰ３４．５の変異を有するものであってもよい。限定される訳ではないが、例えば、配列番号３０に示されるＫＯＳ株のＩＣＰ３４．５タンパク質のアミノ酸配列に対して、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す機能性ＩＣＰ３４．５タンパク質の発現が不活性化されたものであってもよく、これらのアミノ酸配列に、非機能性となる任意の変異（例えば、ナンセンス変異）、欠失もしくは置換を有するものや、これらをコードする遺伝子の一部または全部が欠失しており、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化されているものであってもよい。なお、本明細書において「機能性ＩＣＰ３４．５」とは、野生型のＩＣＰ３４．５が有する機能（例えば、ＰＫＲの作用を解除する機能）を発揮し得るＩＣＰ３４．５タンパク質を意味するものであり、「機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化している」とは、ＰＫＲの作用を解除する機能を発揮しない、またはその機能が野生型のＩＣＰ３４．５と比較して減弱したものである。また、上記のＩＣＰ３４．５の他、本願発明において適用可能な制限増殖型改変としては、Ｐｅｔｅｒｓらの論文（Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ　Ｏｎｃｏｌｙｔｉｃｓ．　２０１５；２．　ｐｉｉ：　１５０１０．　Ｅｐｕｂ　２０１５　Ｊｕｌ　２２）及びその論文においてさらに引用されている論文に列挙されているような様々な方法で導入された制限増殖型改変であっても良く、例えば、ＩＣＰ６／ＵＬ３９、Ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ　ｋｉｎａｓｅ／ＵＬ２３、ＵＬ２／ＵＮＧ、ＩＣＰ４７／Ｕｓ１２及びＵｓ１１、Ｕｓ３、ＩＣＰ０、ＵＬ５６、ＶＰ１６／ＵＬ４８、並びにＵＬ２４から選択される１又は複数の遺伝子が改変（変異、欠失、および／又は置換）されたものであってもよい。
　さらに、本発明のＨＳＶは、レポーター遺伝子および任意の治療遺伝子（例えば、がん細胞の殺傷効果を高める遺伝子、腫瘍の血管新生を抑制する遺伝子および抗腫瘍免疫反応を促進する遺伝子など）などが発現可能な状態で、そのゲノム上に組み込まれていてもよい（詳細については、Ｐｅｔｅｒｓら，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ　Ｏｎｃｏｌｙｔｉｃｓ．　２０１５；２．　ｐｉｉ：　１５０１０．　Ｅｐｕｂ　２０１５　Ｊｕｌ　２２などを参照のこと）。当該遺伝子が組み込まれるＨＳＶゲノム上の位置は特に限定されず、ＨＳＶウイルスが腫瘍溶解性ウイルスとして備えるべき機能を阻害することがなければ、ＨＳＶゲノム上のいかなる位置であってもよい。
　レポーター遺伝子として、特に限定はしないが、例えば、ＬａｃＺ遺伝子（Ｍｉｎｅｔａら，　Ｎａｔ　Ｍｅｄ．　１：９３８－９４３　１９９５）、Ｌｕｃ遺伝子（Ｙａｍａｍｏｔｏら，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　１３：１７３１－１７３６　２００６）、ＧＦＰ遺伝子（Ａｄｕｓｕｍｉｌｌｉら，　ＦＡＳＥＢ　Ｊ．　２０：７２６－７２８　２００６）およびＮＩＳ遺伝子（Ｌｉら，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０：４７８－４８５　２０１３）などを挙げることができる。
　また、治療遺伝子については、特に限定はしないが、例えば、細胞傷害分子をコードする遺伝子としてＣＤ遺伝子（Ｎａｋａｍｕｒａら，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．　６１：５４４７－５４５２　２００１）およびＴＲＡＩＬ遺伝子（Ｔａｍｕｒａら，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ．　２１：６８－７７　２０１３）など、免疫活性化分子をコードする遺伝子としてＧＭ－ＣＳＦ遺伝子（Ｌｉｕら，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　１０：２９２－３０３　２００３）およびＩＬ－１２遺伝子（Ｒｏｔｈら，　Ｔｈｅｒ　Ｃｌｉｎ　Ｄｅｖ．　２５：１６－２７　２０１４）など、微小環境制御分子をコードする遺伝子としてＡｎｇｉｏｓｔａｔｉｎ遺伝子（Ｚｈａｎｇら，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ．　２０：３７－４５　２０１２）、ＰＦ４遺伝子（Ｌｉｕら，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ．　１４：７８９－７９７　２００６）およびＣｈｏｎｄｒｏｉｔｉｎａｓｅ－ＡＢＣ遺伝子（Ｄｍｉｔｒｉｅｖａら，　Ｃｌｉｎ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．　１７：１３６２－１３７２　２０１１）などを挙げることができる。
　本発明はまた、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスをコードする核酸（核酸分子）も包含する。
　本発明にかかる単純ヘルペスウイルスは、ＨＳＶウイルス学の分野の当業者に知られている標準的な方法により製造され得る。しかしながら、ＨＳＶゲノムの操作及び本発明のベクターの製造を容易にするために、本発明は、本発明の組み換えウイルスのゲノム核酸を有するベクターも提供する。好ましいベクターは、細菌のシステムにおいてＨＳＶの操作を容易にする、本発明の組み換えウイルスのゲノムを有する細菌人工染色体（「ＢＡＣ」）である。ＨＳＶ－ＢＡＣコンストラクトとしては例えば、ＫＯＳ－３７　ＢＡＣ（Ｅｖｅｎ　ｅｔ　ａｌ．，２００６　Ｖｉｒｕｓ　Ｒｅｓ．１１９（２）：１９５）を使用することができ、相同組み換え（例えば、Ｒｅｄ相同組み換え法：Ｔｉｓｃｈｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，　２００６．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ．４０（２）：１９１）により各種変異を導入することができる。
　ＨＳＶ系ベクター及びそれらの構築方法は、例えば、参照によりそれらの全体が本明細書に組み込まれる米国特許第７，０７８，０２９号、第６，２６１，５５２号、第５，９９８，１７４号、第５，８７９，９３４号、第５，８４９，５７２号、第５，８４９，５７１号、第５，８３７，５３２号、第５，８０４，４１３号、及び第５，６５８，７２４号、ならびに国際特許出願第ＷＯ９１／０２７８８号、第ＷＯ９６／０４３９４号、第ＷＯ９８／１５６３７号、及び第ＷＯ９９／０６５８３号に記載されている。ＨＳＶの配列は公開されており（ＮＣＢＩアクセッション番号ＮＣ＿００１８０６、ＭｃＧｏｅｃｈｅｔａｌ．，Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ，６９（ＰＴ７），１５３１（１９８８）も参照のこと）、これが本発明の組み換えウイルスのベクターの設計を容易にし得る。場合によっては、本発明の腫瘍溶解性組み換えウイルスは、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ－１）であり、△２－２４、Ｙ３８Ｃ変異を有するｇＤ遺伝子、Ｄ２８５Ｎ／Ａ５４９Ｔ変異（ＮＴ変異）、Ｒ８５８Ｈ変異を有するｇＢ遺伝子、Ａ４０Ｔ変異を有するｇＫ遺伝子を含み、さらにｇＤ遺伝子（例えば、△２－２４部分）に抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片をコードする核酸配列が融合されている。
　本発明にかかる単純ヘルペスウイルスのゲノムは、更に、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ルシフェラーゼ等のレポータータンパク質やペイロード分子の非ウイルス遺伝子（外因性発現カセット）を含み得る。レポーター蛋白質は、本発明の組み換えウイルスに感染した標的細胞の確認を容易とし、また、溶解した腫瘍細胞から放出されたレポーター蛋白質を指標に腫瘍の溶解をモニターすることができる。
　本発明はまた、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスを製造する方法も包含する。本発明にかかる単純ヘルペスウイルスを産生細胞に感染し、その培養上清や産生細胞から単純ヘルペスウイルスを回収することができる。産生細胞としては、ＲＰＭＩ７９５１、Ｕ８７、ＣＨＯ、２９３、ＣＯＳ、ＢＨＫ、ＨｅＬａ、又はＶｅｒｏ細胞、あるいはこれらの細胞株にＩＬ１３ＲＡ２を発現させた亜株（例えば、Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２細胞）、あるいはこれらの細胞株にｇＤを発現させた亜株（例えば、ＶＤ６０細胞）があげられるが、これに限定されない。単純ヘルペスウイルスは遠心分離等の方法で精製することができる。
　本発明はまた、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスを産生する細胞も包含する。単純ヘルペスウイルスを産生する細胞は、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスをコードする核酸（核酸分子）が導入され、一時的に単純ヘルペスウイルスを産生する細胞であってもよく、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスをコードする核酸（核酸分子）が細胞のゲノムに組み込まれ、継続的に本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスを産生する細胞であってもよい。本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスを産生する細胞としては、ＲＰＭＩ７９５１、Ｕ８７、ＣＨＯ、２９３、ＣＯＳ、ＢＨＫ、ＨｅＬａ、又はＶｅｒｏ細胞、あるいはこれらの細胞株にＩＬ１３ＲＡ２を発現させた亜株（例えば、Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２細胞）、あるいはこれらの細胞株にｇＤを発現させた亜株（例えば、ＶＤ６０細胞）があげられるが、これに限定されない。
　本発明のある特定の態様は、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスを含むストック及び組成物に関する。いくつかの態様では、本発明は、本明細書に記載の組み換えウイルスを含むウイルスストックに関する。いくつかの実施形態では、ウイルスストックは、同種ストックである。ウイルスストックの調製及び分析は当技術分野では周知である。例えば、ウイルスストックは、当該ウイルスベクターを形質導入された細胞を含むローラーボトルで製造することができる。該ウイルスストックを次いで連続したニコデンツの勾配で精製し、アリコートに分け、必要になるまで保存することができる。ウイルスストックは、力価がかなり異なり、それらを調製するのに使用されるウイルス遺伝子型及びそのプロトコルならびに細胞株に大きく依存する。
　特定の実施形態では、本明細書で企図されるウイルスストック（例えば、単純ヘルペスウイルスのウイルスストック）の力価は、少なくとも約１０５プラーク形成単位（ｐｆｕ）／ｍＬ、例えば、少なくとも約１０６ｐｆｕ／ｍＬまたはさらにいっそう好ましくは、少なくとも約１０７ｐｆｕ／ｍＬである。ある特定の実施形態では、該力価は、少なくとも約１０８ｐｆｕ／ｍＬ、または少なくとも約１０９ｐｆｕ／ｍＬであり得るとともに、少なくとも約１０１０ｐｆｕ／ｍＬまたは少なくとも約１０１１ｐｆｕ／ｍＬの高力価のストックが最も好ましい。
医薬組成物
　本発明はさらに、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルス及び医薬的に許容される担体を含む医薬組成物を企図する。「医薬的に許容される」という表現は、対象（例えば、ヒト）に投与された際にアレルギーまたは同様の有害反応を引き起こさない分子実体及び組成物を指す。本明細書で使用される、「医薬組成物」という用語は、対象及び／または細胞に投与もしくは送達することが可能な本明細書に記載の１つ以上の単純ヘルペスウイルスの製剤を指す。通常、製剤には、有効成分である本明細書に記載の単純ヘルペスウイルス、及び任意の生理学的に許容される担体、希釈剤、及び／または賦形剤が含まれる。「医薬組成物」は、特定の疾患または障害の治療に対して、患者及び／または対象及び／または細胞に投与もしくは送達することが可能な１つ以上の薬剤の組成物である。医薬組成物として、本発明にかかる単純ヘルペスウイルスに替えて、明細書に記載の単純ヘルペスウイルスをコードする核酸分子を含むことができる。
　本明細書に開示する組成物は、中性または塩形態で製剤化され得る。「医薬的に許容される塩」には、酸付加塩及び塩基付加塩の両方が含まれる。医薬的に許容される塩には、酸付加塩（タンパク質の遊離アミノ基で形成される）が含まれ、これは、無機酸、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸等、及び有機酸、例えば、これらに限定されないが、酢酸、２，２－ジクロロ酢酸、アジピン酸、アルギン酸、アスコルビン酸、アスパラギン酸、ベンゼンスルホン酸、安息香酸、４－アセトアミド安息香酸、ショウノウ酸、カンファー－１０－スルホン酸、カプリン酸、カプロン酸、カプリル酸、炭酸、ケイ皮酸
、クエン酸、シクラミン酸、ドデシル硫酸、エタン－１，２－ジスルホン酸、エタンスルホン酸、２－ヒドロキシエタンスルホン酸、ギ酸、フマル酸、ガラクタル酸、ゲンチシン酸、グルコヘプトン酸、グルコン酸、グルクロン酸、グルタミン酸、グルタル酸、２－オキソグルタル酸、グリセロリン酸、グリコール酸、馬尿酸、イソ酪酸、乳酸、ラクトビオン酸、ラウリン酸、マレイン酸、リンゴ酸、マロン酸、マンデル酸、メタンスルホン酸、ムチン酸、ナフタレン－１，５－ジスルホン酸、ナフタレン－２－スルホン酸、１－ヒドロキシ－２－ナフトエ酸、ニコチン酸、オレイン酸、オロト酸、シュウ酸、パルミチン酸、パモ酸、プロピオン酸、ピログルタミン酸、ピルビン酸、サリチル酸、４－アミノサリチル酸、セバシン酸、ステアリン酸、コハク酸、酒石酸、チオシアン酸、ｐ－トルエンスルホン酸、トリフルオロ酢酸、ウンデシレン酸等で形成される。遊離カルボキシル基で形成される塩も同様に、無機塩基から誘導することができ、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム、アンモニウム、カルシウム、マグネシウム、鉄、亜鉛、銅、マンガン、アルミニウム塩等である。有機塩基から誘導される塩には、これらに限定されないが、一級、二級、及び三級アミン、天然に存在する置換アミンを含めた置換アミン、環状アミン、及び塩基性イオン交換樹脂、例えば、アンモニア、イソプロピルアミン、トリメチルアミン、ジエチルアミン、トリエチルアミン、トリプロピルアミン、ジエタノールアミン、エタノールアミン、デアノール、２－ジメチルアミノエタノール、２－ジエチルアミノエタノール、ジシクロヘキシルアミン、リジン、アルギニン、ヒスチジン、カフェイン、プロカイン、ヒドラバミン、コリン、ベタイン、ベネタミン、ベンザチン、エチレンジアミン、グルコサミン、メチルグルカミン、テオブロミン、トリエタノールアミン、トロメタミン、プリン、ピペラジン、ピペリジン、Ｎ－エチルピペリジン、ポリアミン樹脂等の塩が挙げられる。特に好ましい有機塩基は、イソプロピルアミン、ジエチルアミン、エタノールアミン、トリメチルアミン、ジシクロヘキシルアミン、コリン及びカフェインである。製剤化後、溶液は、投与製剤に適合する方法で、治療有効量で投与される。該製剤は、注射液、薬物放出カプセル等の様々な剤形で容易に投与される。
　本明細書で使用される、「担体」には、ありとあらゆる溶媒、分散媒、媒体、コーティング、希釈剤、抗細菌及び抗真菌剤、等張及び吸収遅延剤、緩衝剤、担体溶液、懸濁液、コロイド等が含まれる。かかる媒体及び薬剤の医薬活性物質への使用は、当技術分野で周知である。任意の従来の媒体または薬剤が該活性成分と適合しない場合を除き、治療的組成物におけるその使用が企図される。補助的活性成分もまた該組成物に組み込まれ得る。
　本明細書で使用される、「医薬的に許容される担体」としては、米国食品医薬品局（ＦＤＡ）によってヒト及び／または家畜での使用に許容されるものとして承認された医薬的に許容される細胞培養培地及び／または乳化剤を含めた生理学的に適合する任意のアジュバント、担体、賦形剤、流動促進剤、甘味剤、希釈剤、保存料、染料／着色剤、風味増強剤、界面活性剤、湿潤剤、分散剤、懸濁剤、安定剤、等張剤、溶媒、界面活性剤、分散媒、コーティング、抗細菌及び抗真菌剤、等張及び吸収遅延剤等が挙げられるがこれらに限定されない。例示的な医薬的に許容される担体としては、糖、例えば、ラクトース、グルコース及びスクロース、デンプン、例えば、コーンスターチ及びジャガイモデンプン、セルロース、及びその誘導体、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、エチルセルロース及び酢酸セルロース、トラガカント、麦芽、ゼラチン、タルク、ココアバター、ワックス、動物性及び植物性脂肪、パラフィン、シリコーン、ベントナイト、ケイ酸、酸化亜鉛、油、例えば、落花生油、綿実油、ベニバナ油、ゴマ油、オリーブ油、コーン油、及び大豆油、グリコール、例えば、プロピレングリコール、ポリオール、例えば、グリセリン、ソルビトール、マンニトール及びポリエチレングリコール、エステル、例えば、オレイン酸エチル及びラウリン酸エチル、寒天、緩衝剤、例えば、水酸化マグネシウム及び水酸化アルミニウム、アルギン酸、発熱物質を含まない水、等張食塩水、リンゲル液、エチルアルコール、リン酸緩衝液、ならびに医薬製剤で使用される任意の他の適合性物質が挙げられるがこれらに限定されない。任意の従来の媒体及び／または薬剤が本開示の薬剤と適合しない場合を除き、治療的組成物におけるその使用が企図される。補助的活性成分もまた該組成物に組み込まれ得る。
　湿潤剤、乳化剤及び潤滑剤、例えば、ラウリル硫酸ナトリウム及びステアリン酸マグネシウム、ならびに着色剤、離型剤、コーティング剤、甘味料、香味剤及び香料、保存料及び酸化防止剤もまた該組成物中に含まれ得る。
　医薬的に許容される酸化防止剤の例としては：（１）水溶性酸化防止剤、例えば、アスコルビン酸、システイン塩酸塩、重硫酸ナトリウム、メタ重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム等、（２）油溶性酸化防止剤、例えば、パルミチン酸アスコルビル、ブチル化ヒドロキシアニソール（ＢＨＡ）、ブチル化ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）、レシチン、没食子酸プロピル、アルファ－トコフェロール等、（３）金属キレート剤、例えば、クエン酸、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ソルビトール、酒石酸、リン酸等が挙げられる。
　１つの実施形態では、担体を含む医薬組成物は、非経口投与、例えば、血管内（静脈内または動脈内）、胸腔内、腹腔内、脳内、その他の臓器内、腫瘍内、皮下または筋肉内投与に適している。医薬的に許容される担体には、滅菌注射用溶液または分散液の即時調製用の滅菌水溶液または分散液及び滅菌粉末が含まれる。医薬的に活性な物質のためのかかる媒体及び薬剤の使用は、当技術分野で周知である。任意の従来の媒体または薬剤が組み換えウイルスまたは該核酸分子と適合しない場合を除き、本発明の医薬組成物におけるその使用が企図される。
　本発明の組成物は、本明細書に記載の１つ以上のポリペプチド、ポリヌクレオチド、それらを含むベクター、本発明にかかる組み換えウイルスの感染細胞等を、単独で、または１つ以上の他の治療法と組み合わせて細胞または対象（例えば、ヒトなど）へ投与するための医薬的に許容されるまたは生理学的に許容される溶液中に製剤化されて含み得る。必要に応じて、本発明の組成物は、他の薬剤とも同様に、例えば、抗体、サイトカイン、成長因子、ホルモン、小分子または様々な医薬活性薬剤等と組み合わせて投与され得ることも理解されよう。実質的には、当該追加の薬剤が、意図した治療を送達する当該組成物の能力に悪影響を与えない限り、該組成物に同様に含まれ得る他の成分に制限はない。
　本発明の医薬組成物において、医薬的に許容される賦形剤及び担体溶液の製剤は、本明細書に記載の特定の組成物を様々な治療計画で使用するために適切な投与及び治療計画の発展と同様、当業者には周知である。製剤化後、溶液は、該投与製剤に適合する方法でかつ当該症状の改善または治療をもたらす治療効果のある量で投与される。該製剤は、様々な剤形、例えば、摂取可能な溶液、薬物放出カプセル等で容易に投与される。治療中の当該対象の状態に応じて、投与にいくらかの変動が生じ得る。投与の責任者は、いずれにしても、個々の対象に適切な用量を決定することができる。さらに、ヒトへの投与の場合、製剤は米国食品医薬品局（ＦＤＡ）の生物学的製剤評価研究センターの基準で要求される無菌性、一般的な安全性及び純度の基準を満たす。
　ある特定の状況では、例えば、米国特許第５，５４３，１５８号、米国特許第５，６４１，５１５号及び米国特許第５，３９９，３６３号（各々が、参照によりその全体が本明細書に明確に組み込まれる）に記載のように、本明細書に開示する医薬組成物、組み換えウイルス、及び核酸分子は、非経口（例えば、血管内（静脈内または動脈内）、胸腔内、腹腔内、脳内、その他の臓器内、腫瘍内、皮下または筋肉内）で送達することが望ましい。遊離塩基または医薬的に許容される塩としての該活性化合物の溶液は、界面活性剤、例えば、ヒドロキシプロピルセルロースと適切に混合された水で調製され得る。分散液は同様に、グリセロール、液体ポリエチレングリコール、及びそれらの混合物中、ならびに油中で調製してもよい。通常の保存及び使用条件下では、これらの調製物は、微生物の増殖を防ぐために保存料を含む。
　注射用途に適した医薬形態には、滅菌注射用溶液または分散液の即時調製用の滅菌水溶液または分散液及び滅菌粉末が含まれる（米国特許第５，４６６，４６８号、参照によりその全体が本明細書に明示的に組み込まれる）。すべての場合において、該形態は無菌であるべきであり、容易な注射針通過性が存在する程度に流動性であるべきである。それは、製造及び保存条件下で安定であるべきであり、かつ、微生物、例えば、細菌及び真菌の汚染作用から保護されるべきである。該担体は、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、及び液体ポリエチレングリコール等）、それらの適切な混合物、及び／または植物油を含む溶媒または分散媒であり得る。適切な流動性は、例えば、コーティング、例えば、レシチンの使用によって、分散液の場合には必要な粒径の維持によって、及び界面活性剤の使用によって維持され得る。微生物の作用の防止は、様々な抗細菌及び抗真菌剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、チメロサール等によって促進され得る。多くの場合、等張剤、例えば、糖または塩化ナトリウムを含むことが好ましい。該注射可能な組成物の持続的吸収は、吸収を遅らせる薬剤、例えば、モノステアリン酸アルミニウム及びゼラチンの該組成物での使用によりもたらされ得る。活性成分としてタンパク質を含む水性組成物の調製は、当技術分野でよく理解されている。典型的には、かかる組成物は、液体溶液または懸濁液のいずれかとして注射剤として調製され、注射前の液体の溶液または懸濁液に適した固体形態もまた調製することができる。該製剤は乳化されてもよい。
　水溶液での非経口投与の場合、例えば、必要に応じて該溶液を適切に緩衝化するべきであり、最初に十分な生理食塩水またはグルコースで当該液体希釈剤を等張にするべきである。これら特定の水溶液は、非経口投与（例えば、血管内（静脈内または動脈内）、胸腔内、腹腔内、脳内、その他の臓器内、腫瘍内、皮下または筋肉内投与）に特に適する。これに関連して、採用され得る滅菌水性媒体は、本開示に照らして当業者には分かるであろう。例えば、１回の投与量は、１ｍｌの等張ＮａＣｌ溶液に溶解され、１０００ｍｌの皮下注入液に添加されるか、予定注入部位に注入され得る（例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：ＴｈｅＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＰｒａｃｔｉｃｅｏｆＰｈａｒｍａｃｙ，２０ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ．Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，ＭＤ：ＬｉｐｐｉｎｃｏｔｔＷｉｌｌｉａｍｓ＆Ｗｉｌｋｉｎｓ，２０００参照）。投与量のいくらかの変動は、治療中の対象の状態に応じて必然的に生じる。投与の責任者は、いずれにしても、個々の対象に適切な用量を決定する。さらに、ヒトへの投与の場合、製剤は米国食品医薬品局（ＦＤＡ）の生物学的製剤事務局の基準で要求される無菌性、発熱性、ならびに一般的な安全性及び純度の基準を満たすべきである。
　滅菌注射用溶液は、必要量の該活性化合物を、必要に応じて上に列挙した様々な他の成分とともに適切な溶媒に組み込み、続いて濾過滅菌することで調製することができる。一般に、分散液は、様々な滅菌活性成分を、基本的な分散媒及び上に列挙したものから必要な他の成分を含む滅菌媒体に組み込むことによって調製される。滅菌注射用溶液の調製用の滅菌粉末の場合、好ましい調製方法は、真空乾燥及び凍結乾燥技術であり、これにより、該活性成分の粉末に加えて、任意のさらなる所望の成分が、予め滅菌濾過されたその溶液から得られる。
　ある特定の実施形態では、該組成物は、鼻腔内スプレー、吸入、及び／または他のエアロゾル送達媒体によって送達され得る。鼻腔用エアロゾルスプレーを介して肺にポリヌクレオチド及びペプチド組成物を直接送達するための方法は、例えば、米国特許第５，７５６，３５３号及び米国特許第５，８０４，２１２号（各々が、参照によりその全体が本明細書に明確に組み込まれる）に記載されている。同様に、鼻腔内微粒子樹脂（Ｔａｋｅｎ
ａｇａｅｔａｌ．，１９９８）及びリゾホスファチジル－グリセロール化合物（米国特許第５，７２５，８７１号、参照によりその全体が本明細書に明確に組み込まれる）を使用した薬物の送達も、製薬分野では周知である。同様に、ポリテトラフルオロエチレン支持マトリックスの形態での経粘膜薬物送達は、米国特許第５，７８０，０４５号（参照によりその全体が本明細書に明確に組み込まれる）に記載されている。
　ある特定の実施形態では、該送達は、本発明の組成物を適切な宿主細胞に導入するために、リポソーム、ナノカプセル、微粒子、ミクロスフェア、脂質粒子、小胞を、任意にＣＰＰポリペプチドと混合して使用すること等により行われ得る。特に、本発明の組成物は、送達用に脂質粒子、リポソーム、小胞、ナノスフェア、ナノ粒子等のいずれかにカプセル化して製剤化され得る。かかる送達媒体の製剤化及び使用は、既知の従来の技術を使用して行うことができる。本発明の製剤及び組成物は、本明細書に記載の１つ以上のポリペプチド、ポリヌクレオチド、及び小分子を、単独で、または１つ以上の他の治療法と組み合わせて細胞または対象（例えば、ヒトなど）へ投与するための医薬的に許容されるまたは生理学的に許容される溶液（例えば、培地）中に製剤化されて含み得る。必要に応じて、本発明の組成物は、他の薬剤とも同様に、例えば、細胞、他のタンパク質もしくはポリペプチドまたは様々な医薬活性薬剤等と組み合わせて投与され得ることも理解されよう。
　特定の実施形態では、本発明の製剤または医薬組成物は、本明細書で企図される様々なポリヌクレオチドまたは明細書に記載の単純ヘルペスウイルスの組み合わせと接触させた細胞を含む。
　ウイルスベクターを含むさまざまなポリヌクレオチドを細胞に送達するためのエキソビボ送達用の例示的な製剤は、当技術分野で既知の様々なトランスフェクション剤、例えば、リン酸カルシウム、エレクトロポレーション、熱ショック及び様々なリポソーム製剤（すなわち、脂質媒介トランスフェクション）の使用も含み得る。リポソームは、水性流体の画分を封入する脂質二重層である。ＤＮＡは、カチオン性リポソームの外表面に自発的に結合し（その電荷により）、これらのリポソームは、細胞膜と相互作用する。
　本発明の特定の実施形態は、他の製剤、例えば、製薬分野で周知のもの、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：ＴｈｅＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＰｒａｃｔｉｃｅｏｆＰｈａｒｍａｃｙ，２０ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ．Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，ＭＤ：ＬｉｐｐｉｎｃｏｔｔＷｉｌｌｉａｍｓ＆Ｗｉｌｋｉｎｓ，２０００に記載の他の製剤を含んでもよい。
　ある特定の態様では、本発明は、１つ以上の医薬的に許容される担体（添加剤）及び／または希釈剤（例えば、医薬的に許容される細胞培養培地）とともに製剤化される、本明細書に記載の１つ以上のウイルスベクターまたはポリヌクレオチドの治療有効量を含む医薬的に許容される組成物を提供する。本明細書で使用される、「治療有効量」とは、所望の生理学的及び／または生物学的結果を達成するために必要な本明細書に記載の組成物または組み換えウイルスの量を指す。ウイルス、ウイルスストック、または組成物の「治療有効量」は、個体の病状、年齢、性別、及び体重、ならびに該個体において幹細胞及び前駆細胞が所望の応答を誘発する能力等の要因に応じて変化し得る。治療有効量はまた、該ウイルスまたは形質導入された治療用細胞の、どんな毒作用または有害作用よりも治療的に有益な効果が上回るものでもある。「治療有効量」という用語には、対象（例えば、患者）を「治療する」のに有効な量が含まれる。治療有効量は、プラーク形成単位（ｐｆｕ）（例えば、少なくとも約１０１～少なくとも約１０２０、具体的には、約１０４～約１０１５、より具体的には、約１０６～約１０１２ｐｆｕ）の合計数、またはウイルスゲノム数（例えば、少なくとも約１０１～少なくとも約１０２０、具体的には、約１０４～約１０１５、より具体的には、約１０６～約１０１２個のウイルスゲノム）によって定量化され得る。当業者には、投与されるウイルスの種類、当該製剤の性質、投与経路、治療される疾患の性質及び／または重症度、及び／または当該対象の全身状態及び健全性に基づいて該治療有効量が変化することが理解されよう。
　本発明のいくつかの態様は、がん性細胞の殺傷方法を包含し、これは、本明細書に記載の単純ヘルペスウイルスまたはその組成物に、当該がん性細胞を、当該がん性細胞内で該単純ヘルペスウイルスが感染及び複製するのに十分な条件下曝露することを含み、該がん性細胞内での該単純ヘルペスウイルスの複製が細胞死をもたらす。いくつかの実施形態では、本方法で殺傷されるがん性細胞はインビボである。ある特定の実施形態では、本方法で殺傷されるがん性細胞は腫瘍内にある。
　「投与」とは、本明細書では、ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルス、ウイルスストック、もしくはその組成物、または該組み換えウイルスをコードする核酸分子もしくは組成物を対象に導入することであり、一態様としては、明細書に記載の単純ヘルペスウイルス、ウイルスストック、もしくはその組成物、または該ウイルスをコードする核酸分子もしくは組成物と細胞及び／または組織を接触させることを指す。投与は、注入、潅注、吸入、飲食、電気浸透、血液透析、イオン導入、及び当技術分野で既知の他の方法によって行われ得る。投与経路は、当然ながら、治療される疾患の位置及び性質によって異なり、例えば、耳介、頬側、結膜、皮膚、歯、頸管内、洞内、気管内、経腸、硬膜外、間質、関節内、動脈内、腹腔内、耳介内、胆管内、気管支内、嚢内、空洞内、脳内、槽内、角膜内、頭蓋内、歯冠内、冠動脈内、頭蓋内、皮内、椎間板内、管内、十二指腸内、硬膜内、心外膜内、表皮内、食道内、胃内、歯肉内、肝内、回腸内、病巣内、舌内（ｉｎｔｒａｌｉｎｇｕａｌ）、腔内、リンパ内、乳腺内、骨髄内、髄膜内、筋肉内、鼻腔内、結節内、眼内、網内、卵巣内、心膜内、胸膜腔内、前立腺内、肺内、ルーメン内、脊髄内、滑膜内、腱内、精巣内、包膜内、胸腔内、腫瘍内、鼓室内、子宮内、血管内、脳室内、膀胱内、前庭内、静脈内、硝子体内、喉頭部、鼻、鼻腔、胃、経口、眼、口腔咽頭、非経口、経皮（ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ）、関節周囲、硬膜外、神経周囲、歯周、呼吸器、管系組織後、直腸、脊髄、くも膜下、結膜下、皮下（ｓｕｂｃｕｔａｎｅｏｕｓ）、皮下（ｓｕｂｄｅｒｍａｌ）、歯肉下、舌下、粘膜下、網膜下、局所、経皮（ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ）、経心内膜、経粘膜、経胎盤、経気管、経鼓膜、尿管、尿道、及び／または膣かん流、洗浄、直接注射、ならびに経口投与を含み得る。
　本明細書で使用される、「治療すること」及び「治療」という用語は、対象が疾患もしくは状態、または疾患もしくは状態の症状を改善するように、本明細書に記載のウイルスまたはその組成物の治療有効量を対象に投与することを指す。該改善は、該疾患もしくは状態、または該疾患もしくは状態の症状の任意の改善または治癒である。該改善は、目に見えるまたは測定可能な改善であるか、または当該対象の全身的な健全性の感覚の改善の場合もある。従って、当業者には、治療は病状を改善する場合があるが、疾患の完治ではない場合もあることが理解される。「予防有効量」とは、所望の予防的結果を達成するのに有効なウイルス、ウイルスストック、または組成物の量を指す。本明細書で使用される、「予防」は、疾患の症状の完全な防止、疾患の症状の発現の遅延、または後に発現する病徴の重症度の緩和を意味することができる。通常、必ずしもではないが、予防用量は疾患の初期段階の前、または初期段階に対象に使用されるため、予防有効量は治療有効量より少ない。
　本願発明にかかるＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルスを含む医薬組成物は、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍の治療薬となり得る。ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍は、例えば、メラノーマ、骨肉腫、白血病、リンパ腫、前立腺癌、肺癌（悪性中皮腫を含む）、グリオーマ（例えば、グリオブラストーマ、アストロサイトーマ、髄芽細胞腫（メデュロブラストーマ））、頭頸部癌、腎癌、カポジ肉腫、大腸癌、膵癌、副腎癌、乳癌又は卵巣癌が挙げられる。従って、これらの癌種は、本願発明の治療標的となり得る。
抗体またはその抗原結合断片
　本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞を特異的に認識する抗体またはその抗原結合断片である。
　本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：（配列番号１：ＲＨＧＩＨ）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：（配列番号２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：（配列番号３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ）
（ｉｖ）ＬＣＤＲ１：（配列番号４：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ）
（ｖ）ＬＣＤＲ２：（配列番号５：ＳＴＳＮＬＡＳ）及び
（ｖｉ）ＬＣＤＲ３：（配列番号６：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有する。
　また、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：（配列番号１：ＲＨＧＩＨ）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：（配列番号２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：（配列番号３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個（１個、２個または３個）のアミノ酸変異を有する。
　また、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＬＣＤＲ１：（配列番号４：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ）
（ｉｉ）ＬＣＤＲ２：（配列番号５：ＳＴＳＮＬＡＳ）及び
（ｉｉｉ）ＬＣＤＲ３：（配列番号６：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個（１個、２個または３個）のアミノ酸変異を有する。
　また、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、配列番号８に記載のＶＬ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上（例えば、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％）の配列同一性を示す配列と、配列番号１０に記載のＶＨ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上（例えば、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％）の配列同一性を示す配列と、を含む抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片であり得る。
　例となる態様では、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体は、マウスの定常領域（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ３、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＡ）を含んでもよい。一部の態様では、該抗体はヒトの定常領域（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２）を有するキメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体であってもよい。さらに一部の態様では、該抗体はアフィニティーやアビディティーを高めるために、二重特異性、三重特異性、または多重特異性を有する抗体（バイスペシフィック抗体、トリスペシフィック抗体、マルチスペシフィック抗体）、であってもよい。
　一部の態様では、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片はヒト化抗体である。用語「ヒト化」は抗体と関連して使用される場合、元々の供給源の抗体よりも真のヒト抗体に類似する構造及び免疫機能を有するように操作される非ヒト供給源に由来する少なくともＣＤＲ領域を有する抗体を指すのに使用される。たとえば、ヒト化することには、マウス抗体のような非ヒト抗体に由来するＣＤＲをヒト抗体に移植することが関与し得る。ヒト化することにはまた、当該技術で知られるように、非ヒト配列をヒト配列らしくするアミノ酸置換を選択することも関与し得る。
　本開示の一部の態様では、本発明は抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体の抗原結合断片である。抗原結合断片は本明細書に記載されている抗体のいずれかの抗原結合断片であってもよい。抗原結合断片は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ダイアボディ、トリアボディ、及びビス－ｓｃＦｖ等を含むが、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体に由来する抗原結合断片であればこれらに限定されない。ダイアボディ（二量体）、トリアボディ（三量体）またはテトラボディ（四量体）は当該技術で周知である。たとえば、Ｋｏｒｔｔら，Ｂｉｏｍｏｌ．Ｅｎｇ．２００１，１８：９５－１０８，（２００１）及びＴｏｄｏｒｏｖｓｋａら，Ｊ．ＩｍｍｕｎｏｌＭｅｔｈｏｄｓ．２４８：４７－６６，（２００１）を参照のこと。
　ｓｃＦｖは、合成ペプチド（リンカー）を介して抗体軽鎖の可変（Ｖ）ドメインに連結された抗体重鎖のＶドメインからなり、それは日常的な組換えＤＮＡ技術法（たとえば、Ｊａｎｅｗａｙら，Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ，第２版，ＧａｒｌａｎｄＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇ，ＮｅｗＹｏｒｋ，（１９９６）を参照のこと）を用いて生成することができる。リンカーとしては、例えば（Ｇｌｙ４Ｓｅｒ）３を含むフレキシブルリンカーが使用できる。また、ｓｃＦｖにおいて、リンカーによって接続されるＶＬ領域とＶＨ領域の連結される順番は特に限定されない。同様に、ジスルフィド安定化可変領域断片（ｄｓＦｖ）は組換えＤＮＡ技術（たとえば、Ｒｅｉｔｅｒら，ＰｒｏｔｅｉｎＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，７，６９７－７０４（１９９４））によって調製することができる。
　本開示の一部の態様では、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体の抗原結合断片は、例えば、配列番号７に記載の配列に対して、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す配列を含む、抗原結合断片であり得る。また、本開示の一部の態様では、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体の抗原結合断片は、重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
（ｉ）ＨＣＤＲ１：（配列番号１：ＲＨＧＩＨ）
（ｉｉ）ＨＣＤＲ２：（配列番号２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ）
（ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：（配列番号３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ）
（ｉｖ）ＬＣＤＲ１：（配列番号４：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ）
（ｖ）ＬＣＤＲ２：（配列番号５：ＳＴＳＮＬＡＳ）及び
（ｖｉ）ＬＣＤＲ３：（配列番号６：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ）
のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有し、かつ配列番号７に記載の配列に対して、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％の配列同一性を示す配列を含む、抗原結合断片であってもよい。
　本発明の一態様である配列番号７に示されるアミノ酸配列を有する抗原結合断片において、そのアミノ酸変異には、他のアミノ酸に置き換える「置換」、該アミノ酸を除く「欠失」、他のアミノ酸を追加する「挿入」がある。また、「置換」の一態様として「保存的なアミノ酸置換」がある。保存的なアミノ酸置換は、関与する残基の極性、電荷、溶解性、疎水性、親水性、及び／または両親媒性の性質における類似性に基づいて行われる。たとえば、非極性（疎水性）アミノ酸にはアラニン（Ａｌａ、Ａ）、ロイシン（Ｌｅｕ、Ｌ）、イソロイシン（Ｉｌｅ、Ｉ）、バリン（Ｖａｌ、Ｖ）、プロリン（Ｐｒｏ、Ｐ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ、Ｆ）、トリプトファン（Ｔｒｐ、Ｗ）、及びメチオニン（Ｍｅｔ、Ｍ）が挙げられ；極性中性アミノ酸にはグリシン（Ｇｌｙ、Ｇ）、セリン（Ｓｅｒ、Ｓ）、スレオニン（Ｔｈｒ、Ｔ）、システイン（Ｃｙｓ、Ｃ）、チロシン（Ｔｙｒ、Ｙ）、アスパラギン（Ａｓｎ、Ｎ）、及びグルタミン（Ｇｌｎ、Ｑ）が挙げられ；正に荷電した（塩基性）アミノ酸にはアルギニン（Ａｒｇ、Ｒ）、リジン（Ｌｙｓ、Ｋ）、及びヒスチジン（Ｈｉｓ、Ｈ）が挙げられ；負に荷電した（酸性）アミノ酸にはアスパラギン酸（Ａｓｐ、Ｄ）及びグルタミン酸（Ｇｌｕ、Ｅ）が挙げられる。「置換」、「挿入」または「欠失」は好ましくは１～２５個、１～２０個、１～１５個、１～１０個又は１～５個のアミノ酸の範囲内であり得る。組換えＤＮＡ法を用いてポリペプチド分子にてアミノ酸の置換を体系的またはランダムに行い、活性について得られた組換え変異体をアッセイすることによって変異が導入されてもよい。
　本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の一態様は、前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、ヒトＩＬ１３ＲＡ２との結合において、配列番号１～６に記載される重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）のアミノ酸配列を含む抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体または抗原結合断片と少なくとも部分的に競合する、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片である。ここで、対象の抗体またはその抗原結合断片が「競合する」とは、例えば、ＩＬ１３ＲＡ２タンパク質に対象の抗体またはその抗原結合断片を反応させ、その後に配列番号１～６に記載される重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）のアミノ酸配列を含む抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体または抗原結合断片を反応させた場合に、対象の抗体またはその抗原結合断片が、配列番号１～６に記載される重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）のアミノ酸配列を含む抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体または抗原結合断片のＩＬ１３ＲＡ２タンパク質への結合を減少させることを意味する。対象の抗体またはその抗原結合断片が、配列番号１～６に記載される重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）のアミノ酸配列を含む抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体または抗原結合断片と競合するか否かは、例えばＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、ＦＡＣＳ法、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）法などの一般的な方法により検証することができる。
　本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体及びその抗原結合断片はＩＬ１３ＲＡ２に対して任意のレベルの親和性または結合活性を有することができる。解離定数（ＫＤ）は結合単位に関して本明細書に記載されているそれら例となる解離定数のいずれかであってもよい。解離定数を含む結合定数は、たとえば、表面プラスモン共鳴の原理を利用する方法、たとえば、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）システムを利用する方法を含む当該技術で既知の方法によって決定される。
　例となる態様では、ＫＤは約０．０００１ｎＭ～約１０００ｎＭの間である。一部の実施形態では、ＫＤは約０．０００１ｎＭ以上、約０．００１ｎＭ以上、約０．０１ｎＭ以上、約０．１ｎＭ以上、約１ｎＭ以上、もしくは約１０ｎＭ以上であり、または約１０００ｎＭ以下、約１００ｎＭ以下、約１０ｎＭ以下、約１ｎＭ以下、約０．１ｎＭ以下、約０．０１ｎＭ以下、もしくは約０．００１ｎＭ以下である。
　例となる態様では、抗体は当該技術で既知である免疫グロブリンの任意の型であることができる。たとえば、抗体は、任意のアイソタイプ、たとえば、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、またはＩｇＭのものであることができる。抗体はモノクローナルまたはポリクローナルであることができる。抗体は、天然に存在する抗体、たとえば、マウス、ウサギ、ヤギ、ウマ、ニワトリ、ハムスター、ラクダ、ヒト等のような哺乳類から単離され及び／または精製される抗体であることができる。この点で、抗体は、哺乳類抗体、たとえば、マウス抗体、ウサギ抗体、ヤギ抗体、ウマ抗体、ニワトリ抗体、ハムスター抗体、ヒト抗体等であると見なされてもよい。用語「単離される」は本明細書で使用されるとき、天然環境から取り外されていることを意味する。用語「精製される」は本明細書で使用されるとき、ネイティブの環境または天然の環境における分子または化合物に通常関連する混入物を実質的に含まない形態での分子または化合物の単離に関係し、元々の組成物の他の成分からの分離の結果純度が上昇していることを意味する。「純度」は相対的な用語であり、絶対純度、絶対濃縮または絶対選択として必ずしも解釈されるべきではないことが認識される。一部の態様では、純度は、少なくとも約５０％であり、少なくとも約６０％、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、または少なくとも約９０％（たとえば、少なくとも約９１％、少なくとも約９２％、少なくとも約９３％、少なくとも約９４％、少なくとも約９５％、少なくとも約９６％、少なくとも約９７％、少なくとも約９８％、少なくとも約９９％であり、またはほぼ１００％である。
　好ましい態様において、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞に内在化される。ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞に内在化されることは、蛍光等で直接的または間接的に標識した抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞に接触させ、（位相差）顕微鏡観察等により調べることができる。また、別の方法としては、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞に内在化されることは、ジフテリア毒素（ＤＴ）の触媒領域とプロテインＧの抗体結合領域を３個兼ね備えたタンパク質であるＤＴ３Ｃを用いることにより、評価することもできる。ＤＴ３Ｃは抗体のＦｃ部分に特異的に結合し安定で、細胞内へ取り込まれると蛋白質合成阻害により細胞死を誘導する。この系を用いることで抗体の内在化とイムノトキシンによる殺細胞効果を同時に観察することができ、内在化し得る効果を有する抗体をスクリーニングすることが可能である（Ｙａｍａｇｕｃｈｉ，　Ｍ．，　Ｈａｍａｄａ，　Ｈ．，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　ＢｉｏｐｈｙｓｉｃａｌＲｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ　４５４　（２０１４）　６００－６０３）。本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する細胞への内在化する量が、ＩＬ１３ＲＡ２を発現しない同細胞に内在化する量に対して、少なくとも５倍以上、少なくとも１０倍以上、または少なくとも５０倍以上である。
　上記のように、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞を特異的に認識するだけでなく、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍細胞に内在化される性質を有するため、当該抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、薬剤、例えば、抗がん剤を腫瘍細胞内に送達するための薬物送達システム（Ｄｒｕｇ　Ｄｅｌｉｖｅｒｙ　Ｓｙｓｔｅｍ；ＤＤＳ）への利用に適している。具体的には、本発明にかかる抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、抗体薬物複合体（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｒｕｇ　ｃｏｎｊｕｇａｔｅ；ＡＤＣ）に利用することができる。よって、一実施態様において、本発明は、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を含む抗体薬物複合体（ＡＤＣ）に関する。
　抗体を作製する好適な方法は当該技術で既知である。たとえば、標準のハイブリドーマ法は、たとえば、Ｈａｒｌｏｗ及びＬａｎｅ（編），Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＣＳＨＰｒｅｓｓ，（１９８８），ならびにＣＡ．Ｊａｎｅｗａｙら．（編），Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ，第５版，ＧａｒｌａｎｄＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇ，ＮｅｗＹｏｒｋ，ＮＹ（２００１）にて記載されている。
　本発明で使用するためのモノクローナル抗体は、培養にて連続細胞株による抗体分子の産生を提供する任意の技法を用いて調製されてもよい。それらには、最初にＫｏｅｈｌｅ
ｒ及びＭｉｌｓｔｅｉｎ（Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５－４９７，１９７５）によって記載されたハイブリドーマ法、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ法（Ｋｏｓｂｏｒら，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ，４：７２，１９８３；Ｃｏｔｅら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８０：２０２６－２０３０，１９８３）及びＥＢＶ－ハイブリドーマ法（Ｃｏｌｅら，ＭｏｎｏｃｌｏｎａｌＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓａｎｄＣａｎｃｅｒＴｈｅｒａｐｙ，ＡｌａｎＲＬｉｓｓＩｎｃ，ＮｅｗＹｏｒｋ，Ｎ．Ｙ．，ｐｐ７７－９６，（１９８５）が挙げられるが、これらに限定されない。
　手短には、ポリクローナル抗体は所望の免疫原（例えば、組換えヒトＩＬ１３ＲＡ２ポリペプチド（例えば、配列番号１７に記載されるアミノ酸配列またはその一部（例えば、シグナルペプチドを除く）を有するポリペプチドなど）；ヒトＩＬ１３ＲＡ２を発現する細胞（例えばＡ３７５細胞）の膜画分など）で動物を免疫し、免疫した動物から抗血清を採取することによって調製され得る。広範な動物種を抗血清の産生に使用することができる。一部の態様では、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗血清の産生に使用される動物は、ウサギ、マウス、ラット、ハムスター、ヤギ、ヒツジ、ラクダ、ブタまたはウマを含む非ヒト動物である。ウサギの血液量が相対的に多いので、一部の例となる態様では、ポリクローナル抗体の作出についてウサギは好まれる選択である。選択されるＩＬ１３ＲＡ２のエピトープと免疫反応性であるポリクローナルの抗血清を生成するための例となる方法では、ウサギの免疫のために５０μｇのＩＬ１３ＲＡ２抗原をフロイント完全アジュバントにて乳化する。追加免疫のために、たとえば、２１日の間隔で、５０μｇのエピトープをフロイント不完全アジュバントにて乳化する。抗体生成の時間を見込んだ後、動物から採血し、全血から血清試料を調製することによって造作なくポリクローナル抗血清を得てもよい。
　手短には、例となる実施形態では、モノクローナル抗体を生成するには、それに対して抗体を生じさせるべき所望の免疫原（例えば、組換えヒトＩＬ１３ＲＡ２ポリペプチド（例えば、配列番号１７に記載されるアミノ酸配列またはその一部（例えば、シグナルペプチドを除く）を有するポリペプチドなど）；ヒトＩＬ１３ＲＡ２を発現する細胞（例えばＡ３７５細胞）の膜画分など）をマウスに免疫する（たとえば、フロイント完全アジュバントを使用してもよい）。免疫したマウスの脾臓を由来の細胞（１×１０８個）をミエローマ細胞（例えば、ＮＳ－１細胞、Ｐ３Ｕ１細胞など）と合わせ、ＰＥＧにより細胞融合する。培養上清中に所望のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマをＥＬＩＳＡ法等によりスクリーニングする。例えば、Ｉｓｏｓｔｒｉｐシステム（ＢｏｅｈｒｉｎｇｅｒＭａｎｎｈｅｉｍ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，Ｉｎｄ．）を用いて、ハイブリドーマによって産生されたモノクローナル抗体のアイソタイプを決定することができる。なお、ミエローマ細胞としては、マウス脾細胞については、Ｐ３－Ｘ６３／Ａｇ８、Ｐ３－Ｘ６３－Ａｇ８．６５３、ＮＳ１／１．Ａｇ４１、Ｓｐ２１０－Ａｇ１４、ＦＯ、ＮＳＯ／Ｕ、ＭＰＣ－１１、ＭＰＣ１１－Ｘ４５－ＧＴＧ１．７及びＳ１９４／１５ＸＸ０Ｂｕｌが使用されてもよく；ラットについてはＲ２１０．ＲＣＹ３、Ｙ３－Ａｇ１．２．３、ＩＲ９８３Ｆ及び４Ｂ２１０が使用されてもよく；ならびにＵ－２６６、ＧＭ１５００－ＧＲＧ２、ＬＩＣＲ－ＬＯＮ－ＨＭｙ２及びＵＣ７２９－６はすべて細胞融合と併せて有用である。
　宿主の種に応じて、種々のアジュバントを使用して免疫応答を高めてもよい。そのようなアジュバントには、フロイントアジュバント、水酸化アルミニウムのような鉱物、及びリソレシチン、プルロニック（登録商標）ポリオール、ポリアニオンのような表面活性物質、ペプチド、油性エマルジョン、スカシガイのヘモシアニン、及びジニトロフェノールが挙げられるが、これらに限定されない。ＢＣＧ（カルメット・ゲラン桿菌）及びコリネバクテリウムパルヴムは有用なヒトアジュバントである可能性がある。
　或いは、当該技術で既知である他の方法、たとえば、ＥＢＶ－ハイブリドーマ法（Ｈａｓｋａｒｄ及びＡｒｃｈｅｒ，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，７４（２），３６１－６７（１９８４），ならびにＲｏｄｅｒら．ＭｅｔｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ．，１２１，１４０－６７（１９８６））及びバクテリオファージベクター発現系（たとえば、Ｈｕｓｅら，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４６，１２７５－８１（１９８９）を参照のこと）が使用されてもよい。さらに、非ヒト動物にて抗体を産生させる方法は、たとえば、米国特許第５，５４５，８０６号、同第５，５６９，８２５号及び同第５，７１４，３５２号、ならびに米国特許出願公開番号２００２／０１９７２６６Ａｌに記載されている。
　抗体はまた、リンパ球集団にて生体内での産生を誘導することによって、またはＯｒｌａｎｄｉら．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８６：３８３３－３８３７；１９８９）、ならびにＷｉｎｔｅｒ及びＭｉｌｓｔｅｉｎ（Ｎａｔｕｒｅ，３４９：２９３－２９９，１９９１）にて開示されたような高度に特異的な組換え免疫グロブリンのライブラリーまたはパネルをスクリーニングすることによって作出されてもよい。
　さらに、ファージディスプレイを用いて本開示の抗体を生成することができる。この点で、標準の分子生物学及び組換えＤＮＡの技術（たとえば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら．（編），ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ，ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，第３版，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ（２００１）を参照のこと）を用いて抗体の抗原結合可変（Ｖ）ドメインをコードするファージライブラリを生成することができる。所望の抗原への特異的な結合のために所望の特異性を持つ可変領域をコードするファージを選択し、選択した可変ドメインを含む完全抗体または部分抗体を再構成する。再構成された抗体をコードする核酸配列を、ハイブリドーマ作出に使用される骨髄腫細胞のような好適な細胞株に導入するので、モノクローナル抗体の特徴を有する抗体が細胞によって分泌される（たとえば、Ｊａｎｅｗａｙら，上記，Ｈｕｓｅら，上記、及び米国特許第６，２６５，１５０号）。関連する方法は、米国特許第５，４０３，４８４号；同第５，５７１，６９８号；同第５，８３７，５００号及び同第５，７０２，８９２号にも記載されている。米国特許第５，７８０，２７９号；同第５，８２１，０４７号；同第５，８２４，５２０号；同第５，８５５，８８５号；同第５，８５８，６５７号；同第５，８７１，９０７号；同第５，９６９，１０８号；同第６，０５７，０９８号及び同第６，２２５，４４７号に記載されている技法も本開示に係る抗体を調製するのに有用であると熟考される。
　抗体は、特定の重鎖及び軽鎖免疫グロブリン遺伝子について遺伝子導入されているトランスジェニックマウスによって産生され得る。そのような方法は当該技術で既知であり、たとえば、米国特許第５，５４５，８０６号、同第５，５６９，８２５号及びＪａｎｅｗａｙら、上記に記載されている。
　ヒト化抗体を生成する方法は当該技術で周知であり、たとえば、Ｊａｎｅｗａｙら上記、米国特許第５，２２５，５３９号；同第５，５８５，０８９号；同第５，６９３，７６１号；欧州特許第０２３９４００Ｂｌ号；及び英国特許第２１８８６３８号にて詳細に記載されている。ヒト化抗体はまた、米国特許第５，６３９，６４１号及びＰｅｄｅｒｓｅｎら，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２３５：９５９－９７３（１９９４）に記載されている抗体再表面化法を用いて生成することもできる。
　「キメラ抗体」の作出のために開発された技法である、適当な抗原特異性と生物活性を持つ分子を得るためのマウス抗体遺伝子のヒト抗体遺伝子へのスプライシングを使用することができる（Ｍｏｒｒｉｓｏｎら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８１：６８５１－６８５５，１９８４；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒら，Ｎａｔｕｒｅ，３１２：６０４－６０８，１９８４；及びＴａｋｅｄａら，Ｎａｔｕｒｅ，３１４：４５２－４５４；１９８５）。或いは、単鎖抗体を作出するための記載された技法（米国特許第４，９４６，７７８号）を適合させてＩＬ１３ＲＡ２に特異的な単鎖抗体を作出することができる。
　「ヒト化抗体」を作製する方法は当該技術で周知である（米国特許第５，５８５，０８９号及び同第５，６９３，７６２号を参照のこと）。一般に、ヒト化抗体は非ヒトである供給源からＣＤＲ領域及び／またはそのフレームワーク領域に導入された１以上のアミノ酸残基を有する。ヒト化は、たとえば、Ｊｏｎｅｓら．（Ｎａｔｕｒｅ，３２１：５２２－５２５，１９８６）、Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら，（Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３－３２７，１９８８）及びＶｅｒｈｏｅｙｅｎら．（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３９：１５３４－１５３６，１９８８）に記載されている方法を用いて、ヒト抗体の対応する領域の代わりに齧歯類の相補性決定領域（ＣＤＲ）の少なくとも一部を使用することによって実施することができる。操作された抗体を調製する多数の技法は、たとえば、Ｏｗｅｎｓ及びＹｏｕｎｇ，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．，１６８：１４９－１６５（１９９４）に記載されている。次いでさらなる変化を抗体のフレームワークに導入して親和性または免疫原性を調節することができる。
　マウス抗体のフレームワーク領域（ＦＲ）は、１２００を超えるヒトＶＨ配列及び１０００を超えるＶＬ配列を含むヒト抗体可変配列の大きなデータベースから選択される適合するヒトフレームワーク領域を代わりに使うことによってヒト化される。比較に使用される抗体配列のデータベースはＡｎｄｒｅｗＣ．Ｒ．ＭａｒｔｉｎのＫａｂａｔＭａｎウ
ェブページ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｒｕｂｉｃ．ｒｄｇ．ａｃ．ｕｋ／ａｂｓ／）からダウンロードされる。ＣＤＲを特定するＫａｂａｔ法は、ヒト抗体のおよそのＣＤＲ及びフレームワークの領域を線引きし、類似性についてマウス抗体の配列を比較してＣＤＲ及びＦＲを決定する手段を提供する。高い全体的なフレームワークの一致、類似のＣＤＲの長さ、ならびに標準残基及びＶＨ／ＶＬ接触残基の最少の不一致に基づいて最も一致したヒトＶＨ及びＶＬの配列を選択する。マウスの配列に最も類似したヒトフレームワーク領域をマウスのＣＤＲ間に挿入する。或いは、ヒト抗体のフレームワーク領域にさらに密接に類似するネイティブのフレームワーク領域の全部または一部のアミノ酸置換を行うことによってマウスのフレームワーク領域を修飾してもよい。
　「保存的な」アミノ酸置換は、関与する残基の極性、電荷、溶解性、疎水性、親水性、及び／または両親媒性の性質における類似性に基づいて行われる。たとえば、非極性（疎水性）アミノ酸にはアラニン（Ａｌａ、Ａ）、ロイシン（Ｌｅｕ、Ｌ）、イソロイシン（Ｉｌｅ、Ｉ）、バリン（Ｖａｌ、Ｖ）、プロリン（Ｐｒｏ、Ｐ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ、Ｆ）、トリプトファン（Ｔｒｐ、Ｗ）、及びメチオニン（Ｍｅｔ、Ｍ）が挙げられ；極性中性アミノ酸にはグリシン（Ｇｌｙ、Ｇ）、セリン（Ｓｅｒ、Ｓ）、スレオニン（Ｔｈｒ、Ｔ）、システイン（Ｃｙｓ、Ｃ）、チロシン（Ｔｙｒ、Ｙ）、アスパラギン（Ａｓｎ、Ｎ）、及びグルタミン（Ｇｌｎ、Ｑ）が挙げられ；正に荷電した（塩基性）アミノ酸にはアルギニン（Ａｒｇ、Ｒ）、リジン（Ｌｙｓ、Ｋ）、及びヒスチジン（Ｈｉｓ、Ｈ）が挙げられ；負に荷電した（酸性）アミノ酸にはアスパラギン酸（Ａｓｐ、Ｄ）及びグルタミン酸（Ｇｌｕ、Ｅ）が挙げられる。「置換」、「挿入」または「欠失」は、好ましくは１～２５個、１～２０個、１～１５個、１～１０個又は１～５個の範囲内である。組換えＤＮＡ法を用いてポリペプチド分子にてアミノ酸の置換を体系的に行い、活性について得られた組換え変異体をアッセイすることによって変異が導入されてもよい。核酸の変更は、異なる種と核酸が異なる部位（可変位置）で、または高度に保存された領域（定常領域）で行うことができる。
　本発明の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体及びその抗原結合断片は、ＩＬ１３ＲＡ２に対して高親和性を持つ。抗体及びその抗原結合断片はＩＬ１３ＲＡ２を発現している細胞の細胞表面に発現されている抗原を認識し、生体内でＩＬ１３ＲＡ２を発現している腫瘍細胞を標的とするための好適性を立証する。ＩＬ１３ＲＡ２を発現している腫瘍細胞を特異的に認識するため、正常細胞が傷害されることによる副作用を低減することができる。抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体及びその抗原結合断片は、種々の型のＩＬ１３ＲＡ２を過剰発現している腫瘍における画像診断、抗体放射性核種コンジュゲートの送達、ＩＬ１３ＲＡ２の検出のためのバイオアッセイにおいて及び治療剤のためのキャリアとして有効で且つ費用効果が高いことも予想される。
　本発明の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体及びその抗原結合断片は、ＩＬ１３ＲＡ２に対する上記親和性に加え、ＩＬ１３ＲＡ２を発現している腫瘍細胞に内在化される性質を有するため、治療剤を標的の腫瘍細胞に確実に送達することができる。よって、本発明の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体及びその抗原結合断片は、例えばＡＤＣの形態にて、薬物送達システム（ＤＤＳ）として有効に利用することができる。治療剤を標的の腫瘍細胞に確実に送達することができるため、治療効果を高めることができると予想される。
　一実施態様において、本発明は、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を産生する細胞である。一態様において、当該細胞は、受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０３６７３として、日本国独立行政法人製品評価技術基盤機構　バイオテクノロジーセンター　特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）（住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８　１２２号室）に２０２２年７月４日付けで国際寄託されているハイブリドーマ細胞である。また、一実施態様において、本発明は抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片をコードする核酸、またはその核酸を含む、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を産生する細胞である。
　一実施態様において、本発明は、先述の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を製造する方法に関する。好ましくは、当該製造方法において、先述の細胞が使用される。
　一実施態様において、本発明は、先述の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を含む医薬組成物に関する。一態様において、当該医薬組成物は、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を含む抗体薬物複合体（ＡＤＣ）を含む。すなわち、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片は、抗体薬物複合体（ＡＤＣ）の形態で、医薬組成物に含まれている。抗体薬物複合体（ＡＤＣ）として、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片に結合することができるものとしては、特に限定されないが、所望の治療効果を発揮し得る薬物（例えば、抗癌剤（例えば、低分子化合物、タンパク質等））、放射性同位元素を含む化合物や、リポソームなどが挙げられ、ＡＤＣとして用いることができる物質を結合して用いてもよい。
　好ましくは、医薬組成物は、ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍の治療用の医薬組成物である。ここで、腫瘍は、メラノーマ、骨肉腫、白血病、リンパ腫、前立腺癌、肺癌（悪性中皮腫を含む）、グリオーマ、頭頸部癌、腎癌、カポジ肉腫、大腸癌、膵癌、副腎癌、乳癌および卵巣癌からなる群より選択される。
　本実施態様に係る、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を含む医薬組成物には、抗体を含有する医薬組成物に関して当該分野で既知の含有成分、製剤形態および投与形態等が適用されてもよく、また、単純ヘルペスウイルスを含む医薬組成物について本明細書で記載した事項が適用されてもよい。
　次に実施例によって本発明を更に詳細に説明する。なお、本発明はこれにより限定されるものではない。
＜実施例１＞
１．材料及び方法
１－１．細胞
　ヒト悪性黒色腫細胞株Ａ２０５８（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ－１１１４７）およびＡ３７５（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ－１６１９）、ならびにＰＬＡＴ－Ａ細胞（東京大学のＴｏｓｈｉｏ　Ｋｉｔａｍｕｒａより供与）は１０％　ＦＢＳ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ＭＡ、ＵＳＡ）添加ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ、Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて培養した。サル腎臓細胞株Ｖｅｒｏ（ＡＴＣＣ　ＣＣＬ－８１）およびｇＤ補完Ｖｅｒｏ細胞亜株ＶＤ６０（Ｌｉｇａｓ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　１９８８　Ｍａｙ；６２（５）：１４８６－９４．）（Ｏｒｅｇｏｎ　Ｈｅａｌｔｈ　ａｎｄ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙのＤａｖｉｄ　Ｊｏｈｎｓｏｎより供与）は５％　ＦＢＳ添加ＤＭＥＭを用いて培養した。ＶｅｒｏにヒトＩＬ１３ＲＡ２を導入した亜株（Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２）はＰＬＡＴ－Ａ細胞にｐＭＸｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ２をトランスフェクションすることにより調製したヒトＩＬ１３ＲＡ２を発現するレトロウイルスベクターをＶｅｒｏ細胞に感染させ、５％　ＦＢＳ添加ＤＭＥＭに４　μｇ／ｍＬ　ｐｕｒｏｍｙｃｉｎ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を加えた培地を用いて薬剤選抜することにより樹立した。ｐＭＸｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ２はｐＭＸｃ－ｐｕｒｏ（東京大学のＴｏｓｈｉｏ　Ｋｉｔａｍｕｒａより供与）のマルチクローニングサイトにヒトＩＬ１３ＲＡ２のＯＲＦを挿入することにより作製した。ヒト悪性神経膠腫細胞株Ｕ８７（ＡＴＣＣ　ＨＴＢ－１４）およびその亜株ならびにヒト悪性黒色腫細胞株ＲＰＭＩ７９５１（ＡＴＣＣ　ＨＴＢ－６６）は１０％　ＦＢＳ添加イーグル最小必須培地（Ｅ－ＭＥＭ；ＦＵＪＩＦＩＬＭ　Ｗａｋｏ　Ｐｕｒｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、大阪、日本）を用いて培養した。Ｕ８７　細胞のうち、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体ＳＨＭ３８（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ、ＣＡ、ＵＳＡ）が結合した集団および結合しなかった集団をセルソーターＦＡＣＳＡｒｉａ（ＢＤ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、ＮＪ、ＵＳＡ）を用いて分取することにより、Ｕ８７　（＋）細胞およびＵ８７　（－）細胞を樹立した。マウスミエローマ細胞株Ｐ３Ｕ１（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ－１５９７）およびヒト非小細胞肺がん細胞株Ｈ１２９９（ＡＴＣＣ　ＣＲＬ－５８０３）は１０％ＦＢＳ添加ロズウェルパーク記念研究所１６４０培地（ＲＰＭＩ１６４０、Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて培養した。Ｈ１２９９　（＋）細胞およびＨ１２９９　（－）細胞についてはＵ８７（＋）細胞およびＵ８７　（－）細胞と同様の方法を用いてＨ１２９９細胞より樹立した。ヒト臍帯静脈内皮細胞ＨＵＶＥＣ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ、Ｈｅｉｄｅｌｂｅｒｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）はＥｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ　Ｃｅｌｌ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｍｅｄｉｕｍ　２（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ）あるいはＫＢＭ　ＶＥＣ－１（ＫＯＨＪＩＮ　ＢＩＯ、埼玉、日本）を用いて培養した。ＣＨＯ－Ｋ１、ＣＨＯ－ＨＶＥＭ、ＣＨＯ－ｎｅｃｔｉｎ－１、Ｊ１．１－２、Ｊ－ＨＶＥＭおよびＪ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞は以前報告したものを使用した（Ｏｋｕｂｏ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　２０１６　Ｎｏｖ　２８；９０（２４）：１１０９６－１１１０５．）。Ｊ－１３Ｒ２細胞はｐｃＤＮＡ３．１－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ２をトランスフェクションしたＪ１．１－２細胞を１０％ＦＢＳ添加ＤＭＥＭに１６　μｇ／ｍＬ　ｐｕｒｏｍｙｃｉｎを加えた培地を用いて選抜し、ＦＡＣＳＡｒｉａを用いてＩＬ１３ＲＡ２の高発現集団を分取することにより樹立した。ｐｃＤＮＡ３．１－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ２はｐｃＤＮＡ３．１（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）のＧ４１８耐性遺伝子をｐｕｒｏｍｙｃｉｎ耐性遺伝子に置換することにより作製したｐｃＤＮＡ３．１－ｐｕｒｏのマルチクローニングサイトにヒトＩＬ１３ＲＡ２のＯＲＦを挿入することにより作製した。ＣＨＯ－１３Ｒ２細胞はｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ２をトランスフェクションしたＣＨＯ－Ｋ１細胞を１０％ＦＢＳ添加Ｆ－１２Ｋ培地（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に４　μｇ／ｍＬ　ｐｕｒｏｍｙｃｉｎを加えた培地を用いて選抜し、ＦＡＣＳＡｒｉａを用いてＩＬ１３ＲＡ２の高発現集団を分取することにより樹立した。Ｊ－１３Ｒ１／４Ｒ細胞およびＣＨＯ－１３Ｒ１／４Ｒ細胞はｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ１およびｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ４ＲをコトランスフェクションしたＪ１．１－２細胞およびＣＨＯ－Ｋ１細胞をＪ－１３Ｒ２およびＣＨＯ－１３Ｒ２と同様に培養することにより薬剤選抜し、ＦＡＣＳＡｒｉａを用いてＩＬ１３ＲＡ１およびＩＬ４Ｒを共に高発現する集団を分取することにより樹立した。ｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ２、ｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ１３ＲＡ１ならびにｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏ－ｈＩＬ４ＲはｐＣＡｃｃ（Ｙｏｓｈｉｄａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｂｉｏｐｈｙｓ　Ｒｅｓ　Ｃｏｍｍｕｎ．　２３０，　４２６-４３０　（１９９７））にｐｕｒｏｍｙｃｉｎ耐性遺伝子の発現カセットを挿入することにより作製したｐＣＡｃｃ－ｐｕｒｏのマルチクローニングサイトにヒトＩＬ１３ＲＡ２、ヒトＩＬ１３ＲＡ１、ヒトＩＬ４ＲのＯＲＦを挿入することにより作製した。
１－２．抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体産生ハイブリドーマの作製
　Ａ３７５細胞を２　ｍＭ　ＥＤＴＡを用いて回収し、ＰＢＳ　（－）で洗浄した後に、低張液（２０　ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、５０　ｍＭ　ＮａＣｌ、２　ｍＭ　ＥＤＴＡ）を用いて５×１０７　ｃｅｌｌｓ／ｍＬの細胞懸濁液を調製した。ダウンスホモジナイザーを用いて氷上で細胞を破砕した後に、４℃、１，０００×ｇ、１０分間遠心分離し、上清を回収した。回収した上清を４℃、８０，０００×ｇ、１時間遠心分離し、上清を除き、ＲＰＭＩ１６４０を加えて再懸濁することにより細胞膜画分溶液を調製した。１×１０７個の細胞から調製した細胞膜画分溶液を１２　μｇのＡｂＩＳＣＯ－１００（フナコシ、東京、日本）と共に雌のＢＡＬＢ／ｃマウス（東京実験動物、東京、日本）の皮下に合計６回投与した。最終投与から３日後にマウスを安楽死させ、脾臓を摘出した。脾臓細胞とＰ３Ｕ１細胞を混合し、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ１５００、Ｒｏｃｈｅ、Ｂａｓｅｌ、Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）を用いて細胞融合させた。作製されたハイブリドーマは１０％　Ｓｕｐｅｒ　Ｌｏｗ　ＩｇＧ－ＦＢＳ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、１×ＨＡＴ　Ｍｅｄｉａ　Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ　Ｈｙｂｒｉ－Ｍａｘ（Ｓｉｇｍａ、ＭＯ、ＵＳＡ）、５％　Ｂｒｉｃｌｏｎｅ（ＮＩＣＢ、Ｄｕｂｌｉｎ、Ｉｒｅｌａｎｄ）ならびに１２８　μＭ　２－ｍｅｒｃａｐｔｏｅｔｈａｎｏｌ（ナカライテスク、京都、日本）添加ＲＰＭＩ１６４０培地を用いて６日間培養した後に培地交換を行った。培地交換から２日後の培養上清を回収し、９６－ｗｅｌｌ　ｐｌａｔｅに培養上清および培養上清と等量の４　μｇ／ｍＬ抗体結合型ジフテリア毒素（ＤＴ３Ｃ）（Ｙａｍａｇｕｃｈｉ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｂｉｏｐｈｙｓ　Ｒｅｓ　Ｃｏｍｍｕｎ．　２０１４　Ｎｏｖ　２８；４５４（４）：６００－３．）を加えて室温で３０分間インキュベートした。培養上清－ＤＴ３Ｃ混合液と等量のＡ３７５細胞懸濁液を加え、３日間培養した後の形態を観察した。高い細胞傷害性が観察された培養上清が由来するウェルに存在する細胞について３回の限界希釈を行い、単クローン化した。このハイブリドーマ細胞から産生される抗体（４Ｅ６抗体）を精製し、ＩｓｏＳｔｒｉｐ（Ｒｏｃｈｅ）を用いてサブクラスがＩｇＧ１、κであることを確認した。なお、４Ｅ６抗体を産生するハイブリドーマ細胞は、日本国独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）（住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８　１２２号）に２０２２年７月４日付で、受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－０３６７３として国際寄託されている。
１－３．抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体の構築
　ＲＮｅａｓｙ　Ｍｉｎｉ　Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ、ＣＡ、ＵＳＡ）を用いて４Ｅ６抗体産生ハイブリドーマから抽出したＲＮＡをテンプレートとして用い、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ　ＩＩＩ　Ｏｎｅ－ｓｔｅｐ　ＲＴ－ＰＣＲ　Ｓｙｓｔｅｍ　ｗｉｔｈ　Ｐｌａｔｉｎｕｍ　Ｔａｑ　Ｈｉｇｈ　Ｆｉｄｅｌｉｔｙ　ＤＮＡ　ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いたＲＴ－ＰＣＲにより抗体遺伝子の軽鎖および重鎖を増幅した。軽鎖の増幅にはプライマー５’－　ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＧＡＹＡＴＴＧＴＧＭＴＳＡＣＭＣＡＲＷＣＴＭＣＡ－３’（配列番号１８）および５’－ＣＣＧＡＡＴＴＣＧＧＡＴＡＣＡＧＴＴＧＧＴＧＣＡＧＣＡＴＣ－３’（配列番号１９）を用い、重鎖の増幅には５’－ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＳＡＲＧＴＮＭＡＧＣＴＧＳＡＧＳＡＧＴＣ－３’（配列番号２０）、　５’－ＧＧＡＡＧＡＴＣＴＳＡＲＧＴＮＭＡＧＣＴＧＳＡＧＳＡＧＴＣＷＧＧ－３’（配列番号２１）　ならびに　５’－ＣＣＧＡＡＴＴＣＡＴＡＧＡＣＡＧＡＴＧＧＧＧＧＴＧＴＣＧＴＴＴＴＧＧＣ－３’（配列番号２２）　を用いた（Ｗａｎｇ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｉｍｍｕｎｏｌ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　２３３　２０００．　１６７-１７７）。ＲＴ－ＰＣＲにより得られたフラグメントをｐＴＡＣ－２ベクター（バイオダイナミクス研究所、東京、日本）にクローニングし、シーケンス解析にて軽鎖および重鎖の配列を決定した。決定した配列を（Ｇｌｙ４Ｓｅｒ）３を含むスペーサー配列（リンカー配列）で連結することによりｓｃＦｖを構築した。なお、上記のプライマーの配列において、ＹはＴ又はＣを表し、ＭはＡ又はＣを表し、ＳはＧ又はＣを表し、ＲはＧ又はＡを表し、ＷはＡ又はＴを表し、ＮはＡ、Ｇ、Ｃ又はＴを表す。
１－４．ＨＳＶ－ＢＡＣ組換え
　本研究で用いた全てのＨＳＶ－ＢＡＣコンストラクトはＫＯＳ－３７　ＢＡＣ（Ｄａｒｔｍｏｕｔｈ　Ｍｅｄｉｃａｌ　ＳｃｈｏｏｌのＤａｖｉｄ　Ｌｅｉｂより供与）に由来する（Ｇｉｅｒａｓｃｈ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ　Ｍｅｔｈｏｄｓ．　２００６　Ａｕｇ；１３５（２）：１９７－２０６）。全ての組換え操作はＲｅｄ相同組換えシステムに基づいて行った（Ｔｉｓｃｈｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ．　２００６　Ｆｅｂ；４０（２）：１９１－７．）。ｐＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２、ｐＫＧＮ－ＩＬ１３ならびにｐＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒはｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ｓｃ１３Ｒ２ｋａｎ、ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ＩＬ１３ｋａｎならびにｐｇＤ：ｄＳＰ－３２／Ｖ３４Ｓ－ＩＬ１３ｋａｎをテンプレートとして用いたＰＣＲにより調製したトランスファーコンストラクトを用いて、以前報告した方法と同様にｐＫＧＮのｇＤを改変することにより作製した（Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８）。ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ｓｃ１３Ｒ２ｋａｎ、ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ＩＬ１３ｋａｎならびにｐｇＤ：ｄＳＰ－３２／Ｖ３４Ｓ－ＩＬ１３ｋａｎは以前報告した方法と同じ方法でｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ｓｃ１３Ｒ２、ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ＩＬ１３ならびにｐｇＤ：ｄＳＰ－３２／Ｖ３４Ｓ－ＩＬ１３のＡｆｌＩＩサイトにＩ－ＳｃｅＩ認識配列、カナマイシン耐性遺伝子ならびにカナマイシン耐性遺伝子除去のための５０　ｂｐの相同配列を挿入することにより作製した（Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８）。ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ｓｃ１３Ｒ２は、ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ（Ｕｃｈｉｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ．　２０１３　Ｍａｒ；２１（３）：５６１－９．）のｇＤの２番目から２４番目のアミノ酸の欠失領域に、以前報告した方法と同様の方法で４Ｅ６抗体産生ハイブリドーマから構築したｓｃＦｖ配列を挿入することにより作製した（Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８）。ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８Ｃ－ＩＬ１３は、ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８ＣのｇＤの２番目から２４番目のアミノ酸の欠失領域に、ヒトＩＬ１３のＯＲＦをコードするｐＧＥＭ－Ｔ　Ｅａｓｙ－ｈＩＬ１３をテンプレートに、プライマー５’－ＡＡＧＡＡＴＴＣＧＣＴＡＧＣＧＧＴＧＧＴＧＧＴＧＧＡＴＣＣＧＧＣＣＣＴＧＴＧＣＣＴＣＣＣＴＣＴＡ－３’ （配列番号２３）および５’－ＣＣＧＧＧＡＴＣＣＴＧＡＡＣＣＴＣＣＡＣＣＡＣＣＧＴＴＧＡＡＣＴＧＴＣＣＣＴＣＧＣＧＡＡＡＡＡＧ－３’ （配列番号２４）を用いて増幅したＤＮＡのＢａｍＨＩフラグメントを挿入することにより作製した。ｐｇＤ：ｄＳＰ－３２／Ｖ３４Ｓ－ＩＬ１３は、ｐｇＤ：２２４／Ｙ３８ＣにおけるｇＤのＮ末端側を含むＡｆｌＩＩサイトからＢｓｐＥＩサイトまでの配列を、ＩＬ１３のＯＲＦをテンプレートに、プライマー５’－　ＣＣＣＴＴＡＡＧＧＴＣＴＣＴＴＴＴＧＴＧＴＧＧＴＧＣＧＴＴＣＣＧＧＴＡＴＧＧＣＧＣＴＴＴＴＧＴＴＧＡＣＣＡＣＧＧＴＣＡＴＴＧＣＴＣＴＣＡＣＴＴＧＣＣＴＴＧＧＣＧＧＣＴＴＴＧＣＣＴＣＣＣＣＡＧＧＣＣＣＴＧＴＧＣＣＴＣＣＣＴＣＴＡＣ－３’ （配列番号２５）および５’－ＴＴＧＧＡＴＣＣＧＧＴＡＣＣＧＴＴＧＡＡＣＴＧＴＣＣＣＴＣＧＣＧＡＡＡＡＡＧＴＴ－３’ （配列番号２６）を用いて増幅したＤＮＡのＡｆｌＩＩサイトからＢａｍＨＩサイトまでのフラグメントおよび野生型ｇＤのＯＲＦをテンプレートに、プライマー５’－ＡＴＣＧＧＡＴＣＣＣＧＧＣＧＣＧＴＧＴＡＣＣＡＣＡＴＣＣＡＧＧ－３’ （配列番号２７）および５’－　ＴＣＣＧＧＡＣＧＴＣＴＴＣＧＧＡＧＧＣＣＣＣ－３’ （配列番号２８）を用いて増幅したＤＮＡのＢａｍＨＩサイトからＢｓｐＥＩサイトまでのフラグメントを挿入することにより作製した。ｐＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはｐＫＧＮをｐＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２に改変した際と同様の方法でｐＫＧＮＥ－ＢｈＫｔの抗ＥＧＦＲ単鎖抗体挿入型ｇＤを４Ｅ６由来単鎖抗体挿入型ｇＤに改変することにより作製した。
１－５．ウイルス
　ＵＬ３遺伝子およびＵＬ４遺伝子の間にＥＧＦＰの発現カセットが挿入されており、ｇＢに細胞内侵入促進二重変異（ｇＢ：Ｄ２８５Ｎ／Ａ５４９Ｔ）を有するＫＧＮは以前報告したものを使用した（Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８）。図２および図３にて用いたＫＧＮ、ＫＧＮ－ＩＬ１３ならびにＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒは　ＶＤ６０細胞にＫＧＮを感染させるもしくはｐＫＧＮ－ＩＬ１３あるいはｐＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒをＣｒｅ組換え酵素発現プラスミドｐｘＣＡＮＣｒｅ（東京大学のＩｚｕｍｕ　Ｓａｉｔｏより供与）とコトランスフェクションすることにより調製した。野生型ｇＤが補完されたこれらのウイルスをＶｅｒｏ細胞に感染させ、細胞外に残存するウイルスをｐＨ　３．０のグリシンバッファーを用いた酸性処理により不活化した後に、以前報告した方法と同様の方法でウイルスを精製することによりＶＤ６０に由来する野生型ｇＤを除去した精製ウイルスを調製した（Ｕｃｈｉｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　２００９　Ａｐｒ；８３（７）：２９５１－６１）。ウイルスゲノムタイター（ｇｃ／ｍＬ）は以前報告したｇＤ遺伝子に対するｑＰＣＲにて測定した（Ｍｉｙａｇａｗａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ．　２０１５　Ｍａｒ　３１；１１２（１３）：Ｅ１６３２－４１．）。図２および図３以外にて用いたＫＧＮ－ＩＬ１３、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２ならびにＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔは　Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２細胞にｐＫＧＮ－ＩＬ１３、ｐＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２あるいはｐＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔをｐｘＣＡＮＣｒｅとコトランスフェクションすることにより調製した。これらのウイルスはＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２を用いて２回限界希釈することにより単クローン化した。単クローン化したクローンのＢＡＣ配列が除去されていることは以前報告した方法で確認した（Ｍｉｙａｇａｗａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ．　２０１５　Ｍａｒ　３１；１１２（１３）：Ｅ１６３２－４１．）。Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２を用いて単クローン化されたこれらのウイルスおよびＫＧＮをプロパゲートし、前述の方法でウイルスを精製することにより精製ウイルスを調製した。精製ウイルスのプラーク形成タイター（ｐｆｕ／ｍＬ）はＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２を用いて以前報告した方法にて測定した（Ｕｃｈｉｄａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　２０１３　Ｆｅｂ；８７（３）：１４３０－４２．）。
１－６．フローサイトメトリー解析
　フローサイトメトリー解析はＬＳＲＦｏｒｔｅｓｓａ（ＢＤ　Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて行った。４Ｅ６抗体、マウス抗ＩＬ１３ＲＡ２モノクローナル抗体ＳＨＭ３８（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）、マウス抗ＩＬ１３ＲＡ１モノクローナル抗体ＧＭ－１Ｅ７（Ｓａｎｔａ　Ｃｒｕｚ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、Ｄａｌｌａｓ、ＴＸ）、マウス抗ＩＬ４Ｒモノクローナル抗体Ｇ０７７Ｆ６（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）ならびにアイソタイプ一致対照抗体ＭＧ１－４５およびＭＯＰＣ－１７３（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ）を一次抗体として用いた。Ａｌｅｘａ　Ｆｌｕｏｒ　４８８標識ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）ポリクローナル抗体（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を二次抗体として用いた。
１－７．エントリーアッセイ（ｅｎｔｒｙ　ａｓｓａｙ）、インフェクシャスセンターアッセイ（ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ　ｃｅｎｔｅｒ　ａｓｓａｙ）、プラーク形成アッセイ（ｐｌａｑｕｅ　ｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ａｓｓａｙ）ならびに殺細胞アッセイ（ｃｅｌｌ　ｋｉｌｌｉｎｇ　ａｓｓａｙ）
　エントリーアッセイ（Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８．）、インフェクシャスセンターアッセイ（Ｕｃｈｉｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　２００９　Ａｐｒ；８３（７）：２９５１－６１）、プラーク形成アッセイ（Ｓｈｉｂａｔａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｇｅｎｅ　Ｔｈｅｒ．　２０１６　２３（６）：４７９－８８．）ならびに殺細胞アッセイ（Ｕｃｈｉｄａ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ．　２０１３　Ｍａｒ；２１（３）：５６１－９．）は以前報告した方法と同様の方法にて行った。
１－８．動物実験
　全ての動物実験は東京大学あるいは東京薬科大学の動物実験専門委員会に承認されており、それぞれの機関の実施規則および実施マニュアルを遵守して実施した。６～８週齢、雌の重度複合免疫不全マウスＳＣＩＤ－Ｂｅｉｇｅ（ＣＢ１７．Ｃｇ－ＰｒｋｄｃｓｃｉｄＬｙｓｔｂｇ－Ｊ／ＣｒｌＣｒｌｊ；日本チャールス・リバー、神奈川、日本）の左側腹部皮下にＨａｎｋｓ’　ｂａｌａｎｃｅｄ　ｓａｌｔ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に懸濁したＵ８７　（＋）あるいはＨ１２９９　（＋）細胞を１×１０７個／１００　μＬずつ移植した。腫瘍体積の平均値が約２９０　ｍｍ３（Ｕ８７　（＋））あるいは約１５０　ｍｍ３（Ｈ１２９９　（＋））に達した時点において腫瘍体積の平均値が近似するようにマウスをグルーピングし、ＰＢＳあるいはＰＢＳに懸濁したウイルス液を３０　μＬの体積で腫瘍内投与あるいは２００　μＬの体積で尾静脈内投与した。腫瘍体積は（長径×短径２）／２の計算式で求めた（Ｔｏｍａｙｋｏ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．　１９８９；２４（３）：１４８－５４．）。腫瘍体積が体重の１０％を超過したマウスは腫瘍死したとみなし、安楽死させた。
１－９．統計解析
　プラークフォーメーションアッセイの統計解析は両側Ｍａｎｎ－Ｗｈｉｔｎｅｙ　Ｕ検定にて行った。腫瘍体積の統計解析は二元配置反復測定分散分析にて行った。全ての統計解析において、Ｐ値が０．０５未満であった場合に有意差有りと判定した。
２．結果
２－１．ＩＬ－１３を標的化ｇＤプラットフォームに挿入したＨＳＶを作製した
　ＺｈｏｕおよびＲｏｉｚｍａｎはｇＤのシグナルペプチドおよびそれに続く１番目から３２番目までのアミノ酸をＩＬ－１３と置換し、３４番目のバリンをセリンに変異させることにより、ＩＬ１３ＲＡ２を介して感染可能なＲＲ－ｏＨＳＶ（Ｒ５１４１）を開発した（Ｚｈｏｕ　ａｎｄ　Ｒｏｉｚｍａｎ，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ　２００６　Ａｐｒ　４；１０３（１４）：５５０８－１３．）。ＩＬ－１３を挿入するｇＤコンストラクトの違いにより細胞内侵入の標的特異性の違いが生じるか否かを検討するために、当研究グループの内田らが報告した標的化ｇＤプラットフォーム、すなわち２番目から２４番目までのアミノ酸の欠失ならびに３８番目のチロシンのシステインへの変異を施したｇＤ変異体にＩＬ－１３を挿入したウイルス（ＫＧＮ－ＩＬ１３）を作製し、その比較対象としてＺｈｏｕおよびＲｏｉｚｍａｎが報告したＩＬ－１３挿入型ｇＤ変異体をもつウイルス（ＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒ）を作製した（図１）。
２－２．ＫＧＮ－ＩＬ１３は、ＩＬ１３ＲＡ２を介して細胞内侵入した一方、ＨＶＥＭあるいはｎｅｃｔｉｎ－１を介してはほとんど細胞内侵入しなかった
　ｇＤ受容体の発現が欠如した細胞株のひとつであるＪ１．１－２細胞ならびにＪ１．１－２にｇＤ受容体あるいはＩＬ１３ＲＡ２を強制発現させた亜株（Ｊ－ＨＶＥＭ細胞、Ｊ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞ならびにＪ－１３Ｒ２細胞）に２つのＩＬ－１３挿入型ＨＳＶ（ＫＧＮ－ＩＬ１３ならびにＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒ）およびそれらのウイルスの親株であり、同様のＥＧＦＰの発現カセットおよび細胞内侵入増強変異（ｇＢ：ＮＴ変異）を有する非標的化ＨＳＶ（ＫＧＮ）を感染させた。感染開始から８時間後におけるＥＧＦＰの蛍光シグナルを指標にウイルスの細胞内侵入の成立の有無を評価した（図２）。ＫＧＮはｇＤ受容体を発現する２種の細胞に侵入したが、Ｊ１．１－２およびＪ－１３Ｒ２細胞には侵入しなかった。ＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒは３００　ｇｃ／ｃｅｌｌの条件のみでＪ－１３Ｒ２細胞に対してごくわずかながらも細胞内侵入が検出された。しかしながら、Ｊ－ＨＶＥＭ細胞への細胞内侵入は検出されなかった一方でＪ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞に対してはＪ－１３Ｒ２細胞よりも多くの細胞内侵入が検出された。我々のこの観察は、ＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒのＩＬ－１３挿入型ｇＤと同一のｇＤコンストラクトを有するＲ５１４１がＪ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞にはほとんど侵入しなかった一方でＪ－１３Ｒ２細胞には侵入を認めたとのＺｈｏｕおよびＲｏｉｚｍａｎの報告と合致しない。この乖離は、ＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒとは異なりＲ５１４１においてはＨＳＶの細胞への吸着を担うｇＣのＮ末端領域がＩＬ－１３と置換されており、同じく吸着を担うｇＢのポリリシン（ｐＫ）領域を欠失している点に起因するものと推測される（Ｚｈｏｕ　ａｎｄ　Ｒｏｉｚｍａｎ，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ　２００６　Ａｐｒ　４；１０３（１４）：５５０８－１３．）。すなわち、Ｒ５１４１のＩＬ１３ＲＡ２選択性は主に吸着の段階で付与されたものである可能性がある。
　ＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒとは対照的に、ＫＧＮ－ＩＬ１３はＪ－１３Ｒ２細胞に対してＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒより効率良く侵入した。しかも、ＫＧＮ－ＩＬ１３はＪ－ＨＶＥＭ細胞に侵入しないだけでなく、Ｊ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞においても３００　ｇｃ／ｃｅｌｌの条件においてもほとんど侵入を検出できないことが判明した。同様の結果が、ｇＤ受容体の発現が欠如した別の細胞株であるＣＨＯ－Ｋ１細胞およびその亜株を用いた場合にも観察された（図３）。これらの結果から、ＫＧＮ－ＩＬ１３ｚｒよりもＫＧＮ－ＩＬ１３の方がＩＬ１３ＲＡ２の標的化に好適であることが示唆された。
２－３．ＫＧＮ－ＩＬ１３はＩＬ１３ＲＡ１発現細胞にも侵入したが、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２はＩＬ１３ＲＡ２発現細胞のみに特異的に細胞内侵入した
　ＩＬ－１３はＩＬ１３ＲＡ２よりも低い親和性ではあるがＩＬ１３ＲＡ１にも結合する。また、ＩＬ１３ＲＡ１　がＩＬ４Ｒ　と　複合体（ＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４Ｒ）を形成するとＩＬ１３ＲＡ１単独よりも高い親和性で結合することが報告されている。そこで、ＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４ＲがＫＧＮ－ＩＬ１３の受容体として機能するか否かを検討した。対照ウイルスとして、当研究グループが下記の方法で独自に作製した抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体（ｓｃ１３Ｒ２）をＫＧＮ－ＩＬ１３と同様の標的化ｇＤプラットフォームに挿入したＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２を作製した。
　まず、ＩＬ１３ＲＡ２を発現することが知られている悪性黒色腫細胞株Ａ３７５の細胞膜画分を用いて免疫したマウスから抽出した脾臓細胞をマウスミエローマ細胞株Ｐ３Ｕ１と融合することにより、ハイブリドーマ細胞ライブラリーを調製した。山口らが報告した抗体結合改変型ジフテリア毒素（ＤＴ３Ｃ）（Ｙａｍａｇｕｃｈｉ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｂｉｏｐｈｙｓ　Ｒｅｓ　Ｃｏｍｍｕｎ．　２０１４　Ｎｏｖ　２８；４５４（４）：６００－３．）を用いて、ハイブリドーマ細胞ライブラリーの中からＡ３７５細胞に対して高い細胞傷害性を示す抗体を産生するハイブリドーマ細胞を選別し、単クローン化した。Ａ３７５細胞からタンパク質抽出液を調製し、このクローンが産生する抗体（４Ｅ６抗体）を用いて免疫沈降を行い、沈降物の質量分析解析を行ったところ、ＩＬ１３ＲＡ２に由来すると考えられるペプチド断片が存在することが明らかとなった。この結果を踏まえ、ＣＨＯ－Ｋ１細胞およびＣＨＯ－Ｋ１にＩＬ１３ＲＡ２を強制発現させた亜株（ＣＨＯ－１３Ｒ２）への４Ｅ６抗体の結合性をフロー解析にて確認したところ、４Ｅ６抗体はＣＨＯ－Ｋ１細胞には結合せず、ＣＨＯ－１３Ｒ２細胞に結合した。この結果から、４Ｅ６抗体の抗原はＩＬ１３ＲＡ２であると判断した。４Ｅ６抗体を産生するハイブリドーマから抗体遺伝子をクローニングし、その配列に由来するｓｃＦｖの配列を標的化ｇＤプラットフォームに挿入したｇＤ変異体を組み込むことによりＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２を構築した。
　図２で用いたＪ－１３Ｒ２、Ｊ－ＨＶＥＭおよびＪ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞に加えて、Ｊ１．１－２にＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４Ｒを強制発現させた亜株（Ｊ－１３Ｒ１／４Ｒ）を用いたエントリーアッセイを施行し、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２の細胞内侵入の特異性をＫＧＮ－ＩＬ１３と比較した（図４）。ＫＧＮ－ＩＬ１３およびＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２はともにＪ－１３Ｒ２細胞に侵入したが、これら２ウイルスのうちＫＧＮ－ＩＬ１３のみは、Ｊ－１３Ｒ１／４Ｒ細胞に対しても侵入が認められた。また、ＭＯＩ　１０においてＫＧＮ－ＩＬ１３はごくわずかにＪ－ｎｅｃｔｉｎ－１細胞に侵入した一方で、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２は全く侵入しなかった。Ｊ－ＨＶＥＭ細胞に対しては、これら２ウイルスはともに侵入しなかった。同様の結果が、ＣＨＯ－Ｋ１細胞およびその亜株を用いたエントリーアッセイでも観察された（図５）。これらの結果から、ＫＧＮ－ＩＬ１３はＩＬ１３ＲＡ２だけでなくＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４Ｒをも細胞内侵入の受容体として利用する一方で、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２はＩＬ１３ＲＡ２のみを細胞内侵入の受容体として利用することが示唆された。
２－４．ＫＧＮ－ＩＬ１３は血管内皮細胞を殺傷したが、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２は細胞毒性を示さなかった
　血管内皮細胞はｏＨＳＶを静脈内投与した直後にウイルスが接触すると考えられる正常細胞のひとつである。そこで、血管内皮細胞に対するＫＧＮ－ＩＬ１３およびＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２の感染性を比較検討した。まず、ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）におけるＩＬ－１３受容体およびＩＬ４Ｒの発現をフロー解析にて検討した。その結果、抗ＩＬ１３ＲＡ１抗体および抗ＩＬ４Ｒ抗体はＨＵＶＥＣに結合したが、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体はＨＵＶＥＣに結合しなかった（図６（ａ））。この結果から、ＨＵＶＥＣにはＩＬ１３ＲＡ１およびＩＬ４Ｒが発現しており、ＩＬ１３ＲＡ２は発現していないことが示唆された。
　ＫＧＮ－ＩＬ１３がＨＵＶＥＣに対して侵入し、細胞傷害性を示すか否かを検討するためにエントリーアッセイおよびセルキリングアッセイを施行した。図６（ｂ）および図６（ｃ）で示す通り、検討に用いた３つのウイルスの中でＫＧＮが最も高い効率でＨＵＶＥＣに侵入し、顕著な細胞傷害性を示した（図６（ｂ）、図６（ｃ））。ＫＧＮ－ＩＬ１３は比較的高いＭＯＩでウイルスを加えた条件においてはＨＵＶＥＣに侵入し、細胞傷害性も示した。これらに対して、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２は、それぞれの実験における最大のＭＯＩでウイルスを加えた条件においてもＨＵＶＥＣに侵入せず、細胞傷害性も示さなかった。一方で、陽性対照細胞として用いたＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２細胞に対しては、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２はＫＧＮ－ＩＬ１３と同程度の効率で細胞内侵入し、同程度あるいはそれ以上の細胞傷害性を示した。これらの結果から、ＫＧＮ－ＩＬ１３を全身投与した場合は血管内皮細胞を殺傷し得る一方、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２についてはその可能性が低いことが示唆された。
　以上の結果に基づき、より標的特異性の高いＩＬ１３ＲＡ２標的化ＲＲ－ｏＨＳＶを開発するためのｇＤコンストラクトとしては、我々の標的化ｇＤプラットフォームに抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体を挿入したものが好適であると判断した。
２－５．ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２はＩＬ１３ＲＡ２を発現する細胞に対してのみ侵入および伝播した
　抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶのヒトがん細胞に対する感染性を評価するために、複数のヒトがん細胞株におけるＩＬ１３ＲＡ２の発現を市販の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体（ＳＨＭ３８抗体）を用いたフロー解析にて確認した。検討した細胞株のうち、悪性神経膠腫細胞株Ｕ８７と非小細胞性肺がん細胞株Ｈ１２９９の２種はＩＬ１３ＲＡ２を細胞表面に発現している集団とこれを発現していない集団から構成されていた（図７）。それぞれの細胞集団に対する抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶの感染性を個別に検討するために、これらの細胞株についてＩＬ１３ＲＡ２の高発現集団と非発現集団をＳＨＭ３８抗体を用いたセルソーティングによりそれぞれ分取し、高発現集団はＵ８７　（＋）あるいは　Ｈ１２９９　（＋）と呼称し、非発現集団はＵ８７　（－）あるいはＨ１２９９　（－）と呼称することとした。これらの細胞株ならびに悪性黒色腫細胞株ＲＰＭＩ７９５１およびＡ２０５８に対する４Ｅ６抗体の結合能をフロー解析にて検討した（図８（ａ））。その結果、４Ｅ６抗体はＵ８７　（＋）、Ｈ１２９９　（＋）ならびにＲＰＭＩ７９５１細胞には結合したが、Ｕ８７　（－）、Ｈ１２９９　（－）ならびにＡ２０５８細胞には結合しなかった。ＳＨＭ３８抗体によりソーティングしたＩＬ１３ＲＡ２陽性細胞集団のみに４Ｅ６抗体の結合が認められたことから、４Ｅ６抗体が高い抗原特異性を有することが示唆された。
　最近、我々は、感染細胞における多核巨細胞形成を誘導する変異（ｓｙｎｃｙｔｉａｌ変異）をＲＲ－ｏＨＳＶの異なる２種類の糖タンパク質ｇＢならびにｇＫに組み込んだウイルス（ＲＲｓｙｎ－ｏＨＳＶ）を開発した（Ｏｋｕｂｏ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　２０１６　Ｎｏｖ　２８；９０（２４）：１１０９６－１１１０５．）。これらのｓｙｎｃｙｔｉａｌ変異（ｇＢ：Ｒ８５８Ｈ／ｇＫ：Ａ４０Ｔ、ＢｈＫｔ）はＥＧＦＲ標的化ＲＲ－ｏＨＳＶの標的特異性を損なうことなくその細胞間伝播効率および細胞傷害性を増強したことから、ＲＲ－ｏＨＳＶの安全性を維持しつつその有効性を増強することが可能であると考えられる。そこで、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２にＢｈＫｔを導入したＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを作製し、その標的特異性および感染効率をＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２と比較検討することとした。
　まず、がん細胞に対する細胞内侵入の標的特異性を検討するために、ＩＬ１３ＲＡ２陽性あるいは陰性ヒトがん細胞株に対するエントリーアッセイを行った（図８（ｂ））。対照として用いたＫＧＮは全ての細胞に侵入した一方で、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２およびＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞株にのみ侵入した。次に、細胞間伝播の特異性を評価するために、インフェクシャスセンターアッセイを行った（図８（ｃ））。ＫＧＮは全ての細胞株においてプラークを形成した一方で、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２およびＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはＩＬ１３ＲＡ２陽性細胞でのみプラークを形成した。また、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔがこれらの細胞株において形成したプラークは多核巨細胞の形態を呈していた。これらの結果から、抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶはＢｈＫｔの有無に関わらず、細胞内侵入および細胞間伝播において高い標的特異性を有することが示唆された。
２－６．抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶのがん細胞における細胞間伝播能および殺細胞能はＢｈＫｔ導入により高まった
　抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ＲＲ－ｏＨＳＶの有効性をｉｎ　ｖｉｔｒｏにて検討するために、ＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞株におけるプラーク面積を比較した。その結果、いずれのＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞株におけるプラーク面積もＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２よりもＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔの方が有意に大きく（Ｕ８７　（＋）細胞においては約７倍、Ｈ１２９９　（＋）細胞においては約５０倍、ＲＰＭＩ７９５１細胞においては約９倍）、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔの方がＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２よりも効率良く伝播することが可能であることが示唆された（図９（ａ））。セルキリングアッセイにてＩＬ１３ＲＡ２陽性がん細胞株に対する細胞傷害能を検討したところ、全ての細胞株においてＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２よりも低いＥＤ５０値を示したことから（Ｕ８７　（＋）細胞においては約４分の１、Ｈ１２９９　（＋）細胞においては約２００分の１、ＲＰＭＩ７９５１細胞においては約１０分の１）、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２よりも高い細胞傷害能を有することが示唆された（図９（ｂ））。
　以上の検討結果から、ＢｈＫｔの導入によりＲＲ－ｏＨＳＶの標的特異性を損なうことなくＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２の細胞間伝播能および殺細胞能を増強可能であったことから、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔが本研究において検討したＩＬ１３ＲＡ２標的化ＲＲ－ｏＨＳＶの中で最も高い安全性と有効性を両立し得るウイルスであると考えられた。
２－７．ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはｉｎ　ｖｉｖｏにおいてＩＬ１３ＲＡ２陽性腫瘍に対して強力な抗腫瘍効果を発揮した
　ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔがｉｎ　ｖｉｖｏにおいて強力な抗腫瘍効果を発揮するか否かを検討するために、これまで腫瘍溶解性ＨＳＶの前臨床試験にて頻用されてきたＵ８７細胞に由来するＵ８７　（＋）細胞の皮下腫瘍モデルに対する抗腫瘍効果を評価した。Ｕ８７　（＋）細胞を重度免疫不全マウスＳＣＩＤ－Ｂｅｉｇｅに皮下移植してから９日後に１０２　ｐｆｕのＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを単回腫瘍内投与した（図１０（ａ））。ＰＢＳ投与群では全ての個体で腫瘍の増大が見られた一方で、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ投与群ではウイルス投与から１７日後までに全ての個体の腫瘍の完全退縮がみられた（ｐ＜０．０００１）。この結果から、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔは１０２　ｐｆｕというごく少量のウイルスの投与であってもきわめて強力な抗腫瘍効果を発揮することが明らかとなった。
　Ｕ８７　（＋）細胞とは異なる細胞株の皮下腫瘍モデルに対しても高い抗腫瘍効果が認められるか否かを検討するために、Ｈ１２９９　（＋）細胞をＳＣＩＤ－Ｂｅｉｇｅマウスに皮下移植してから９日後に１０２あるいは１０４　ｐｆｕのＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを単回腫瘍内投与した（図１０（ｂ））。このモデルでは腫瘍が完全に退縮した個体は１０４　ｐｆｕ投与群のうちの１匹のみであったが、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔの投与量に依存した抗腫瘍効果が認められ、１０２　ｐｆｕというごく少量のウイルスの投与でも有意な抗腫瘍効果が認められた（ｐ＜０．０００１）。これらの結果から、がん細胞の種類によってその程度は異なるものの、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはごく少量のウイルスの投与であっても、様々ながんに対して強力な抗腫瘍効果を発揮し得る可能性が示唆された。
　以上の観察は、腫瘍内のごく一部のがん細胞で成立したＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔの感染が腫瘍全体へと伝播し得ることを意味する。そのため、このウイルスは静脈内投与であっても強力な抗腫瘍効果を発揮し得る可能性が考えられたため、これを検討することとした（図１０（ｃ））。上述のＵ８７　（＋）細胞の皮下腫瘍モデルに対して１０６　ｐｆｕのＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを単回静脈内投与したところ、投与から１７日後までに全ての個体の腫瘍が完全に退縮するに至った（ｐ＜０．０００１）。この結果から、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔは静脈内投与でも強力な抗腫瘍効果を発揮し得ることが明らかとなった。
　以上の結果から、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔはＩＬ１３ＲＡ２に対する標的特異性が高く、かつ強力な抗腫瘍効果を発揮するがん治療薬となり得ることが示唆された。
３．考察
　本研究において、ＩＬ１３ＲＡ２を標的化するためにＩＬ－１３をがん標的化モジュールとしてｇＤに挿入する際に使用する標的化ｇＤプラットフォームを比較検討したところ、ＺｈｏｕおよびＲｏｉｚｍａｎにより先行開発されたｇＤコンストラクトよりも本研究グループの内田らが開発したｇＤコンストラクトの方が優れた細胞内侵入の標的特異性および標的分子を介した侵入効率を有する点でより好適であることが明らかとなった。しかしながら、ＩＬ－１３挿入型ｇＤ変異体はＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４Ｒを介した細胞内侵入も成立させてしまい、ＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４Ｒを発現する正常細胞に感染することが明らかとなった。一方で、抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体挿入型ｇＤ変異体はＩＬ１３ＲＡ１／ＩＬ４Ｒを介した細胞内侵入を成立させることなくＩＬ１３ＲＡ２を介した細胞内侵入のみを成立させた。さらに、ＢｈＫｔ変異は感染特異性を喪失させることなく、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２のプラーク形成能および細胞傷害能を増強した。ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔは複数のＩＬ１３ＲＡ２陽性ヒトがん細胞株の担がんマウスモデルに対する腫瘍内投与により抗腫瘍効果を発揮し、これを静脈内投与した場合にも強力な抗腫瘍効果を発揮することが明らかとなった。
　ＫＧＮ－ＩＬ１３がＩＬ１３ＲＡ１を発現する細胞に侵入したことから、ＩＬ－１３をｇＤに挿入するがん標的化モジュールとして用いた場合にはＩＬ１３ＲＡ１がＨＳＶの受容体として機能することが明らかとなった。複数の研究グループよりＩＬ－１３にＥ１３ＫあるいはＥ１３Ｙのようなアミノ酸変異を導入することによりＩＬ－１３とＩＬ１３ＲＡ１の結合能を低下させ得る可能性が示唆されている（Ｄｅｂｉｎｓｋｉ　，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｎａｔ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．　１９９８　Ｍａｙ；１６（５）：４４９－５３．；　Ｋａｈｌｏｎ，　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅｓ．　２００４　Ｄｅｃ　１５；６４（２４）：９１６０－６．）。したがって、これらの変異を導入したＩＬ－１３をがん標的化モジュールとしてｇＤに組み込んだＲＲ－ｏＨＳＶを作製すればＩＬ１３ＲＡ１を発現する正常細胞への感染を回避することが可能かもしれない。しかしながら、それを実際にがん治療に応用した場合には、ウイルスの増殖中にＩＬ１３ＲＡ１との結合能を取り戻す変異を獲得してしまい、その結果としてＩＬ１３ＲＡ１を発現する正常細胞に感染が波及してしまう可能性を考慮する必要がある。この点からも、ＩＬ－１３よりも抗ＩＬ１３ＲＡ２単鎖抗体の方がＩＬ１３ＲＡ２を特異的に標的化したＲＲ－ｏＨＳＶを開発するためのがん標的化モジュールとして好適であると考えられる。
　ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔは１０２　ｐｆｕという非常に少ないウイルス量の単回投与により免疫不全担がんマウスに対して抗腫瘍効果を発揮し、明らかな毒性も認められなかった。したがって、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔは腫瘍内投与だけでなく静脈内投与によってもきわめて高い有効性と安全性を有するがん治療薬となり得ることが示唆された。この特性は、遠隔転移を伴うがん患者の治療を行う際に特に有益であると考えられる。
＜実施例２＞
　実施例１で作製したＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔのＩＣＰ３４．５遺伝子を欠失させたウイルス（ＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ）をさらに作製した。親ウイルスであるＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔのＩＣＰ３４．５遺伝子を欠失させたウイルス作製する方法は、国際公開第２０２０／０９０８７１号公報に記載の方法を参考に実施可能である。具体的には、ＩＣＰ３４．５遺伝子は、ヘルペスウイルスゲノム上に２コピー存在するため、Ｓｕｚｕｋｉら（Ｍｏｌ　Ｔｈｅｒ　Ｏｎｃｏｌｙｔｉｃｓ．　２０２１；２２：２６５－２７６．）に詳細に記述されている方法を用いて、２コピーの欠失操作は１コピーずつ２段階で行った。作製したコンストラクトであるｐＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを用いて、実施例１（「１－５．ウイルス」を参照のこと。）に記載の方法と同様に、ｐｘＣＡＮＣｒｅとコトランスフェクションすることにより調製した。これらのウイルスはＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２を用いて２回限界希釈することにより単クローン化した。単クローン化したクローンのＢＡＣ配列が除去されていることは以前報告した方法で確認した（Ｍｉｙａｇａｗａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ　Ａｃａｄ　Ｓｃｉ　Ｕ　Ｓ　Ａ．　２０１５　Ｍａｒ　３１；１１２（１３）：Ｅ１６３２－４１．）。Ｖｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２を用いて単クローン化されたこれらのウイルスをプロパゲートし、前述の方法でウイルスを精製することにより精製ウイルスを調製した。精製ウイルスのプラーク形成タイター（ｐｆｕ／ｍＬ）はＶｅｒｏ－ＩＬ１３ＲＡ２を用いて以前報告した方法にて測定した（Ｕｃｈｉｄａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊ　Ｖｉｒｏｌ．　２０１３　Ｆｅｂ；８７（３）：１４３０－４２．）。
　親ウイルスであるＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ、作製したＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔを、Ｕ８７－ＩＬ１３ＲＡ２＋の皮下腫瘍モデルに対して、それぞれ単回腫瘍内投与（１０２　ｐｆｕ）したところ、いずれのウイルス投与群も顕著な抗腫瘍効果を示した（図１１）。しかも、ＫＧΔＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔ投与群のほとんどの個体で腫瘍の退縮が認められた。このことから、ＫＧＮ－ｓｃ１３Ｒ２－ＢｈＫｔにＩＣＰ３４．５の欠失、すなわち制限増殖型改変を加えても、卓越した抗腫瘍効果はほぼ損なわれないことが示唆された。
　　［受託番号］ＮＩＴＥ　ＢＰ－０３６７３
[規則26に基づく補充 06.11.2023]
Figure WO-DOC-RO134

Claims (41)

  1. 　抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片がウイルス表面に提示される、ＩＬ１３ＲＡ２に標的化した単純ヘルペスウイルス。
  2. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片の重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
    （ｉ）ＨＣＤＲ１：ＲＨＧＩＨ（配列番号１）
    （ｉｉ）ＨＣＤＲ２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ（配列番号２）
    （ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ（配列番号３）
    （ｉｖ）ＬＣＤＲ１：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ（配列番号４）
    （ｖ）ＬＣＤＲ２：ＳＴＳＮＬＡＳ（配列番号５）及び
    （ｖｉ）ＬＣＤＲ３：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ（配列番号６）
    のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有する、請求項１に記載の単純ヘルペスウイルス。
  3. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、
    　配列番号８に記載のＶＬ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
    　配列番号１０に記載のＶＨ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
    を含む、請求項１又は２に記載の単純ヘルペスウイルス。
  4. 　前記抗原結合断片が、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ビス－ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディまたはテトラボディである、請求項１～３のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  5. 　前記抗原結合断片がｓｃＦｖである、請求項１～４のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  6. 　前記抗原結合断片が配列番号７（ｓｃＦｖの配列）の配列に対して９０％以上の配列同一性を示す配列を含む、請求項１～５のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  7. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、キメラ化又はヒト化した抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片である、請求項１～６のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  8. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質に組み込まれている、請求項１～７のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  9. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤ、エンベロープタンパク質ｇＢ、エンベロープタンパク質ｇＣ又はエンベロープタンパク質ｇＨに組み込まれている、請求項８に記載の単純ヘルペスウイルス。
  10. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤに組み込まれている、請求項８に記載の単純ヘルペスウイルス。
  11. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、エンベロープタンパク質ｇＤにおける配列番号１２の２番目から２４番目までのアミノ酸の欠失部分、配列番号１２の２４番目と２５番目の間、６番目から３８番目までのアミノ酸の欠失部分又は６１番目から２１８番目までのアミノ酸の欠失部分に組み込まれていることを特徴とする、請求項８に記載の単純ヘルペスウイルス。
  12. 　エンベロープタンパク質ｇＤが、Ｎｅｃｔｉｎ－１、ＨＶＥＭ及び／または３－ＯＳ－ＨＳを発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異を有する、請求項１～１１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  13. 　前記Ｎｅｃｔｉｎ－１を発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異が、配列番号１２の６番目から３８番目までのアミノ酸の全部の欠失、配列番号１２の６１番目から２１８番目までのアミノ酸の全部の欠失、配列番号１２の３番目および／または３８番目のアミノ酸の変異並びに配列番号１２の２２２番目および２２３番目のアミノ酸の変異からなる群から１又は複数選択される、請求項１２に記載の単純ヘルペスウイルス。
  14. 　前記配列番号１２の３番目のアミノ酸変異が欠失またはシステインへの置換、３８番目のアミノ酸変異がシステインへの置換、２２２番目のアミノ酸変異がアスパラギンへの置換および２２３番目のアミノ酸変異がイソロイシンへの置換であることを特徴とする請求項１３に記載の単純ヘルペスウイルス。
  15. 　前記エンベロープタンパク質ｇＤのアミノ酸変異のうち、ＨＶＥＭ及び／または３－ＯＳ－ＨＳを発現する細胞への感染性を弱めるアミノ酸変異が、配列番号１２の２番目から３８番目までのアミノ酸の全部もしくは一部の欠失、配列番号１２の６１番目から２１８番目までのアミノ酸の全部の欠失、配列番号１２の２７番目のアミノ酸変異、配列番号１２の２９番目のアミノ酸変異、および／または、配列番号１２の３０番目のアミノ酸変異であることを特徴とする請求項１２～１４のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  16. 　前記配列番号１２の２番目から３８番目までのアミノ酸の一部の欠失が、２番目から２４番目までのアミノ酸の欠失、７番目から１１番目までのアミノ酸の欠失、７番目から３２番目までのアミノ酸の欠失もしくは６番目から３８番目までのアミノ酸の欠失のいずれか、２７番目のアミノ酸変異がアラニン、プロリンもしくはアルギニンへの置換、２９番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換および３０番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換であることを特徴とする請求項１５に記載の単純ヘルペスウイルス。
  17. 　前記単純ヘルペスウイルスのエンベロープタンパク質ｇＢ、エンベロープタンパク質ｇＫ、ＵＬ２０タンパク質及び／又はＵＬ２４タンパク質が、標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異を有する、請求項１～１６のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  18. 　前記標的細胞への侵入を促進するアミノ酸変異及び／または多核巨細胞形成を促進するアミノ酸変異が、下記（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および／または（ｄ）に記載の変異であることを特徴とする請求項１７に記載の単純ヘルペスウイルス。
    （ａ）配列番号１３の２８５番目のアミノ酸変異、５４９番目のアミノ酸変異、７９６番目のアミノ酸変異、８００番目のアミノ酸変異、８１３番目のアミノ酸変異、８１７番目のアミノ酸変異、８５４番目のアミノ酸変異、８５５番目のアミノ酸変異、８５８番目のアミノ酸変異、８１６番目と８１７番目の間へのアミノ酸の挿入、８６９番目のアミノ酸のナンセンス変異および／または８７７番目のアミノ酸のナンセンス変異、
    （ｂ）配列番号１４の３３番目のアミノ酸変異、４０番目のアミノ酸変異、８６番目のアミノ酸変異、９９番目のアミノ酸変異、１１１番目のアミノ酸変異、１２１番目のアミノ酸変異、２４３番目のアミノ酸変異、３０４番目のアミノ酸変異および／または３１０番目のアミノ酸変異、
    （ｃ）配列番号１５の４９番目のアミノ酸変異、４９、５０および５１番目のアミノ酸変異、２０９番目のアミノ酸変異、２０９、２１２および２１３番目のアミノ酸変異、２１７番目のアミノ酸のナンセンス変異、ならびに／または、配列番号１５で表されるアミノ酸配列全ての欠失、
    （ｄ）配列番号１６の６２、６３および６４番目のアミノ酸変異
  19. 　前記配列番号１３の２８５番目のアミノ酸変異がアスパラギンへの置換、前記配列番号１３の５４９番目のアミノ酸変異がスレオニンへの置換、前記配列番号１３の７９６番目のアミノ酸変異がシステインへの置換、配列番号１３の８００番目のアミノ酸変異がトリプトファンへの置換、配列番号１３の８１３番目のアミノ酸変異がイソロイシンへの置換、配列番号１３の８１７番目のアミノ酸変異がヒスチジンもしくはプロリンへの置換、配列番号１３の８５４番目のアミノ酸変異がフェニルアラニンへの置換、配列番号１３の８５５番目のアミノ酸変異がバリンへの置換、配列番号１３の８５８番目のアミノ酸変異がシステインもしくはヒスチジンへの置換、
    　配列番号１４の３３番目のアミノ酸変異がセリンへの置換、配列番号１４の４０番目のアミノ酸変異がバリンもしくはスレオニンへの置換、配列番号１４の８６番目のアミノ酸変異がプロリンへの置換、配列番号１４の９９番目のアミノ酸変異がアスパラギンへの置換、配列番号１４の１１１番目のアミノ酸変異がバリンへの置換、配列番号１４の１２１番目のアミノ酸変異がイソロイシンへの置換、配列番号１４の２４３番目のアミノ酸変異がチロシンへの置換、配列番号１４の３０４番目のアミノ酸変異がプロリンへの置換、配列番号１４の３１０番目のアミノ酸変異がロイシンへの置換、
    　配列番号１５の４９番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の５０番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の５１番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の２０９番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の２１２番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、配列番号１５の２１３番目のアミノ酸変異がアラニンへの置換、
    　配列番号１６の６２番目のアミノ酸変異がグリシンへの置換、６３番目のアミノ酸変異がバリンへの置換、６４番目のアミノ酸変異がセリンへの置換
    であることを特徴とする請求項１８に記載の単純ヘルペスウイルス。
  20. 　制限増殖型改変を有する、請求項１～１９のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルス。
  21. 　前記制限増殖型改変が、機能性ＩＣＰ３４．５の発現が不活性化する変異である、請求項２０に記載の単純ヘルペスウイルス。
  22. 　請求項１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスをコードする核酸。
  23. 　請求項１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスを産生する細胞。
  24. 　請求項１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスを製造する方法。
  25. 　請求項１～２１のいずれか１項に記載の単純ヘルペスウイルスを含む医薬組成物。
  26. 　ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍の治療薬である、請求項２５に記載の医薬組成物。
  27. 　前記腫瘍がメラノーマ、骨肉腫、白血病、リンパ腫、前立腺癌、肺癌（悪性中皮腫を含む）、グリオーマ、頭頸部癌、腎癌、カポジ肉腫、大腸癌、膵癌、副腎癌、乳癌又は卵巣癌である、請求項２６に記載の医薬組成物。
  28. 　重鎖ＣＤＲ（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、ＨＣＤＲ３）、及び軽鎖ＣＤＲ（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、ＬＣＤＲ３）が、
    （ｉ）ＨＣＤＲ１：ＲＨＧＩＨ（配列番号１）
    （ｉｉ）ＨＣＤＲ２：ＶＩＷＡＧＧＳＴＮＹＮＳＡＬＭＳ（配列番号２）
    （ｉｉｉ）ＨＣＤＲ３：ＤＨＦＤＳＦＤＹ（配列番号３）
    （ｉｖ）ＬＣＤＲ１：ＴＡＳＳＳＶＳＳＳＹＬＨ（配列番号４）
    （ｖ）ＬＣＤＲ２：ＳＴＳＮＬＡＳ（配列番号５）及び
    （ｖｉ）ＬＣＤＲ３：ＨＱＹＨＲＳＰＬＴ（配列番号６）
    のアミノ酸配列を有する、またはこれらのアミノ酸配列において１～数個のアミノ酸変異を有する、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
  29. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、
    　配列番号８に記載のＶＬ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
    　配列番号１０に記載のＶＨ領域のアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を示す配列と、
    を含む、請求項２８に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
  30. 　前記抗原結合断片が、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ、ビス－ｓｃＦｖ、ダイアボディ、トリアボディまたはテトラボディである、請求項２８又は２９に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
  31. 　前記抗原結合断片が配列番号７（ｓｃＦｖの配列）の配列に対して９０％以上の配列同一性を示す配列を含む、請求項２８～３０のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
  32. 　キメラ化又はヒト化した、請求項２８～３１のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片。
  33. 　請求項２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片をコードする核酸。
  34. 　請求項３３に記載の核酸を含む、抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を産生する細胞。
  35. 　請求項２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を産生する細胞。
  36. 　受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０３６７３にて寄託されている、細胞。
  37. 　請求項３３～３５のいずれか１項に記載の細胞を用いて、請求項２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を製造する方法。
  38. 　請求項２８～３２のいずれか１項に記載の抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片を含む医薬組成物。
  39. 　ＩＬ１３ＲＡ２を発現する腫瘍の治療用の、請求項３８に記載の医薬組成物。
  40. 　前記腫瘍がメラノーマ、骨肉腫、白血病、リンパ腫、前立腺癌、肺癌（悪性中皮腫を含む）、グリオーマ、頭頸部癌、腎癌、カポジ肉腫、大腸癌、膵癌、副腎癌、乳癌又は卵巣癌である、請求項３９に記載の医薬組成物。
  41. 　前記抗ＩＬ１３ＲＡ２抗体またはその抗原結合断片が、抗体薬物複合体の形態で前記医薬組成物に含まれる、請求項３８～４０のいずれか１項に記載の医薬組成物。
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