WO2024014443A1 - カプセル化膵島の保存用又は移植用液 - Google Patents

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WO2024014443A1
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transplantation
encapsulated
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優 早見
菜穂 飯塚
大和 沖田
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株式会社大塚製薬工場
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    • A61P3/10—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis for hyperglycaemia, e.g. antidiabetics

Definitions

  • Type I diabetes develops at a relatively young age and causes symptoms in which insulin-producing cells are severely affected by an autoimmune reaction
  • type II diabetes develops at middle age and is caused by an inability to properly utilize insulin. do.
  • 5% of diabetic patients have type I diabetes, and it is estimated that there are approximately 300,000 people.
  • these diabetic patients often control their blood sugar through insulin therapy, they are not exempt from developing complications such as nephropathy, retinopathy, and neuropathy.
  • Pancreatic islet transplantation is an alternative treatment for diabetes to insulin therapy.
  • Pancreatic islets also referred to as islets of Langerhans
  • pancreatic islets of Langerhans are a group of endocrine cells that are scattered in the form of islands within the pancreatic tissue and include ⁇ cells that secrete insulin.
  • Pancreatic islet transplantation is a transplantation therapy in which pancreatic islets are separated from the pancreas provided by a donor, a dispersion of the pancreatic islets is prepared, and the dispersion is percutaneously administered to a patient.
  • Pancreatic islet transplantation has the following advantages: (1) Since it can be administered percutaneously, there is no need for laparotomy or general anesthesia, and the burden on the patient during transplant surgery is small. (2) The dose of immunosuppressants after transplantation can be small compared to the case of bone marrow transplantation. (3) It can also be applied to the pancreas of organ donors who have died due to cardiac arrest or arteriosclerosis, and who are not eligible for pancreas transplantation. Furthermore, as a means to further reduce the dose of immunosuppressants after transplantation, encapsulated pancreatic islets, in which pancreatic islets are encapsulated in minute microcapsules, are known (Patent Documents 1 and 2).
  • pancreatic islets Many of the ⁇ -cells that make up pancreatic islets deactivate over time after isolation and purification of pancreatic islets, so prepared pancreatic islets should be properly stored and kept for a short period of time to preserve their vitality as much as possible. It is preferable to use it for transplantation. However, a certain amount of time (for example, about 10 to 18 hours) is required from the surgery to remove the pancreas from the donor to the preparation of pancreatic islets for transplantation. Furthermore, even if preparations for pancreatic islet transplantation are complete, the transplant operation may not be performed immediately due to reasons such as the patient's poor physical condition.
  • One challenge is to provide a means to perform encapsulated islet transplantation more efficiently.
  • Item 1 A solution for preserving or transplanting encapsulated pancreatic islets, which contains trehalose, a derivative thereof, or a salt thereof.
  • Section 2 The liquid according to item 1, which is an isotonic liquid.
  • Section 3 3.
  • the solution according to claim 2, wherein the isotonic solution is Lactated Ringer's solution.
  • Section 4 Item 4.
  • Section 5 Item 5.
  • Section 6 The liquid according to any one of Items 1 to 4, which is used to prevent tissue adhesion of encapsulated pancreatic islets.
  • Section 6 Item 6.
  • a method for preserving encapsulated pancreatic islets comprising the step of preserving encapsulated pancreatic islets in the liquid according to any one of Items 1 to 5.
  • Section 7 Item 6.
  • Section 8 A method for treating diabetes, comprising administering the liquid according to item 7 to a subject in need of pancreatic islet transplantation.
  • the preservation or transplantation solution for encapsulated pancreatic islets preferably contains trehalose, a derivative thereof, or a salt thereof (these may be collectively referred to as "trehaloses").
  • trehalose include ⁇ , ⁇ -trehalose, which is a disaccharide in which two ⁇ -glucoses are bound together in a 1,1-glycosidic bond, and ⁇ , ⁇ , which is a disaccharide in which an ⁇ -glucose and a ⁇ -glucose are bound in a 1,1-glycoside bond.
  • ⁇ , ⁇ -trehalose which is a disaccharide in which two ⁇ -glucoses are linked in a 1,1-glycosidic bond
  • ⁇ , ⁇ -trehalose is preferred.
  • These trehaloses can be produced by any known method such as chemical synthesis, microbial production, enzymatic production, etc., but commercially available products can also be used.
  • commercially available products such as ⁇ , ⁇ -trehalose (manufactured by Hayashibara Co., Ltd. or Fuji Film Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) can be mentioned.
  • trehalose derivatives include, but are not particularly limited to, glycosyl trehaloses in which one or more sugar units are bonded to the disaccharide trehalose.
  • Glycosyltrehaloses include glucosyltrehalose, maltosyltrehalose, maltotriosyltrehalose, and the like.
  • the salt of trehalose or its derivative is not particularly limited as long as it is pharmaceutically acceptable.
  • acid addition salts such as glycolate, methanesulfonate, butyrate, valerate, citrate, fumarate, maleate, malate, metal salts such as sodium salt, potassium salt, calcium salt, etc. , ammonium salts, alkylammonium salts, and the like.
  • These salts preferably have the same effect as trehalose when used as a solution.
  • These salts may form hydrates or solvates.
  • two or more types can be used in appropriate combination.
  • the preservation or transplantation solution may contain only one type of trehalose, or may contain a combination of two or more types of trehalose.
  • the concentration of trehalose in the preservation or transplant solution is not particularly limited, and for example, the lower limit is 0.1 (w/v)% or more, preferably 0.3 (w/v)% or more in terms of trehalose. , more preferably 0.6 (w/v)% or more, still more preferably 1.0 (w/v)% or more, and most preferably 2.0 (w/v)% or more.
  • the upper limit is, for example, 40 (w/v)% or less, preferably 20 (w/v)% or less, more preferably 15 (w/v)% or less, and even more preferably 10% (w/v)% in terms of trehalose. v)% or less, most preferably 6.0 (w/v)% or less.
  • the concentration of trehalose in the storage or transplant solution is in the range of 0.1 to 40 (w/v)%, preferably 0.3 to 20 (w/v)%, more preferably 0.3 to 20 (w/v)% in terms of trehalose. is 0.6 to 15 (w/v)%, more preferably 1.0 to 10% (w/v)%, most preferably 2.0 to 6.0 (w/v)%.
  • the preservation or transplantation solution may be any solution (eg, isotonic solution, hypotonic solution, hypertonic solution) that allows transplantation and preservation of encapsulated pancreatic islets, and is preferably an isotonic solution.
  • isotonic fluid means a fluid that has approximately the same osmotic pressure as that of body fluids or cell fluids, and specifically means a fluid that has an osmotic pressure within the range of 250 to 380 mOsm/L. do.
  • “Hypotonic fluid” means a fluid that has an osmotic pressure lower than the osmotic pressure of body fluids or cell fluids, and specifically means a fluid that has an osmotic pressure of less than 250 mOsm/L.
  • the hypotonic solution is preferably a hypotonic solution that does not cause cell rupture (specifically, a solution having an osmotic pressure within a range of 100 to less than 250 mOsm/L).
  • “Hypertonic solution” means a solution with an osmotic pressure higher than that of body fluids or cell fluids, specifically, an osmotic pressure of more than 380 mOsm/L (preferably more than 380 mOsm/L to 1000 mOsm/L). (within range).
  • Isotonic fluids are particularly restricted if they have salt and sugar concentrations adjusted by sodium ions, potassium ions, and/or calcium ions so that the osmotic pressure is almost the same as that of body fluids and cell fluids. Not done.
  • physiological saline, saline with a buffering effect e.g., PBS, Tris Buffered Saline; TBS, HEPES buffered saline
  • Ringer's solution e.g., Ringer's lactate, Ringer's acetate, bicarbonate.
  • Ringer's solution 5% glucose aqueous solution, basal medium for animal cell culture (e.g.
  • DMEM fetal calf serum
  • EMEM fetal calf serum
  • RPMI-1640 ⁇ -MEM
  • F-12, F-10 M-199
  • isotonic agent e.g. glucose, D - sorbitol, D-mannitol, lactose, sodium chloride
  • lactated Ringer's solution is preferred.
  • Isotonic solutions may be commercially available or self-prepared.
  • Otsuka raw food injection manufactured by Otsuka Pharmaceutical Factory Co., Ltd.
  • physiological saline solution Ringer's solution "Otsuka” (manufactured by Otsuka Pharmaceutical Factory Co., Ltd.) (Ringer's solution)
  • Lactech registered trademark
  • Injection manufactured by Otsuka Pharmaceutical Factory Co., Ltd.
  • Veen registered trademark
  • F infusion manufactured by Fuso Pharmaceutical Industries, Ltd.
  • Otsuka sugar solution 5% manufactured by Otsuka Pharmaceutical Factory
  • Bikanate registered trademark
  • the pH of the preservation or transplantation solution is not particularly limited as long as it is suitable for transplantation and preservation of encapsulated pancreatic islets, and may be within the range of 6.5 to 8.5, for example.
  • pH is 6.5-8.4; 6.5-8.3; 6.5-8.2; 6.5-8.1; 6.5-8.0; 6.5-7 .9; 6.5-7.8; 6.5-7.7; 6.5-7.6; 6.5-7.5; 6.5-7.4; 6.5-7.3 ;6.5-7.2;6.5-7.1;6.5-7.0;6.5-6.9;6.5-6.8;6.6-8.5;6 .7-8.5; 6.8-8.5; 6.9-8.5; 7.0-8.5; 7.1-8.5; 7.2-8.5; 7.3 ⁇ 8.5; 7.4 ⁇ 8.5; 7.5 ⁇ 8.5; 7.6 ⁇ 8.5; 7.7 ⁇ 8.5; 7.8 ⁇ 8.5; 7.9 ⁇ 8 .5; 8.0-8.5; 8.1-8.5; 8.2-8.5; 6.6-8.4; 6.6-8.3; 6.6-8.2 ;6.6-8.1;6.6-8.0
  • the storage or transplantation fluid preferably does not contain substances unsuitable for mammalian cell transplantation.
  • Substances unsuitable for mammalian cell transplantation include, for example, biologically derived components (e.g., serum or serum-derived components (e.g., albumin)), dimethyl sulfoxide (DMSO), glycerin, ethylene glycol, trimethylene glycol, Examples include dimethylacetamide, polyethylene glycol [PEG], polyvinylpyrrolidone, and the like.
  • pancreatic islet used for the encapsulated pancreatic islet that is transplanted (and preserved) using a preservation or transplantation solution is not particularly limited.
  • the pancreatic islets include insulin-producing ⁇ cells, glucagon-containing ⁇ cells, somatostatin-secreting delta cells, and pancreatic polypeptide-containing cells (PP cells).
  • PP cells pancreatic polypeptide-containing cells
  • the majority of pancreatic islets are insulin-producing ⁇ cells.
  • the origin of the pancreatic islets can be selected depending on the purpose, and is preferably human, pig, mouse, rat, monkey, or dog.
  • pancreatic islets are preferably of porcine origin, and are preferably pancreatic islets of young pigs (eg, 3 days to 4 weeks old or 7 days to 3 weeks old). Pancreatic islets can be obtained by any method known in the art.
  • the size of the pancreatic islet is preferably 50 ⁇ m or more and 400 ⁇ m or less, more preferably 50 ⁇ m or more and 350 ⁇ m or less.
  • the size of pancreatic islets can be measured using a micrometer on a microscope. It is preferable that pancreatic islets contain 10% or more of ⁇ cells. There is no particular upper limit to the percentage of ⁇ cells, but it is, for example, 80%.
  • the encapsulated pancreatic islet is preferably an encapsulated pancreatic islet as described in Patent Document 1 or 2.
  • the encapsulated pancreatic islet has a structure in which the core is covered with three layers of membranes, the core includes the pancreatic islet, and the first and third membranes from the inside of the triple membranes include alginic acid.
  • the second membrane from the inside preferably contains polyornithine.
  • the encapsulated islet may be covered by more than three membranes (eg, quadruple membranes, pentalayer membranes, hexalayer membranes, hexalayer membranes, or octalayer membranes).
  • the membrane containing alginic acid means that the membrane is mainly composed of alginic acid.
  • the membrane contains polyornithine it means that the membrane is mainly composed of polyornithine.
  • the encapsulated pancreatic islets preferably contain 1 to 5 pancreatic islets in one capsule.
  • the encapsulated pancreatic islets preferably have an average diameter of 400 ⁇ m or more, more preferably 420 ⁇ m or more. Although there is no particular upper limit to the average diameter, it can be set to, for example, 700 ⁇ m or less, 600 ⁇ m or less, or 500 ⁇ m or less. The average diameter can be measured by the measurement method adopted in the examples described later.
  • Encapsulated pancreatic islets can be created by the methods described in Patent Documents 1 and 2, etc.
  • the preservation solution or transplantation solution can be used as is for transplantation without transferring the preserved encapsulated pancreatic islets to another transplantation solution.
  • the preservation solution or transplantation solution can be a pancreatic islet preservation solution and transplantation solution.
  • the preservation or transplantation fluid has an excellent function of suppressing adhesion of the encapsulated pancreatic islets to tissues (eg, liver) after transplantation. Therefore, the preservation or transplantation solution can be used to prevent adhesion of encapsulated pancreatic islets to tissues.
  • the preservation period and preservation temperature when preserving encapsulated pancreatic islets using the preservation or transplantation solution of the present invention are as described in "2. Preservation method" below.
  • a method for preserving an encapsulated pancreatic islet includes the step of preserving the encapsulated islet in the above-mentioned preservation solution or transplant solution.
  • the storage period is arbitrary and not particularly limited.
  • the storage period can be from several hours to several days. Several hours are, for example, 0 hours, 2 hours, 4 hours, 6 hours, 8 hours, 10 hours, 12 hours, 14 hours, 16 hours, 18 hours, 20 hours, or 22 hours.
  • the several days are, for example, the 1st, 2nd, 3rd, 4th, 5th, 6th, 7th, 8th, 9th, 10th, 11th, or 12th.
  • the storage period is 0 hours to 12 days; 0 hours to 11 days; 0 hours to 10 days; 0 hours to 9 days; 0 hours to 8 days; 0 hours to 7 days; 0 hours to 6 days; 0 hours ⁇ 5 days; 0 hours to 4 days; 0 hours to 3 days; 0 hours to 2 days; 0 hours to 1 day; 2 hours to 12 days; 2 hours to 11 days; 2 hours to 10 days; 2 hours to 9 days; 2 hours to 8 days; 2 hours to 7 days; 2 hours to 6 days; 2 hours to 5 days; 2 hours to 4 days; 2 hours to 3 days; 2 hours to 2 days; 2 hours to 1 day; 4 hours to 12 days; 4 hours to 11 days; 4 hours to 10 days; 4 hours to 9 days; 4 hours to 8 days; 4 hours to 7 days; 4 hours to 6 days; 4 hours to 5 days; 4 hours ⁇ 4 days; 4 hours to 3 days; 4 hours to 2 days; 4 hours to 1 day; 6 hours to 12 days; 6 hours to 9 days; 4 hours to 8 days; 4 hours
  • the storage temperature is arbitrary and not particularly limited. In one embodiment, the storage temperature may be 0-40°C.
  • the storage temperature is 0-40°C; 0-38°C; 0-36°C; 0-34°C; 0-32°C; 0-30°C; 0-28°C; 0-26°C; 0-24°C 0-22°C; 0-20°C; 0-18°C; 0-16°C; 0-14°C; 0-12°C; 0-10°C; 0-8°C; 0-6°C; 0-4°C ; 0-2°C; 2-40°C; 2-38°C; 2-36°C; 2-34°C; 2-32°C; 2-30°C; 2-28°C; 2-26°C; 2-24°C 2-22°C; 2-20°C; 2-18°C; 2-16°C; 2-14°C; 2-12°C; 2-10°C; 2-8°C; 0-6°C; 0-4°C ; 0-2°C
  • the encapsulated pancreatic islets preserved in a storage solution or a transplant solution be used for transplantation as is (transferred to another solution).
  • a storage solution to another transplant solution
  • transplanting encapsulated islets without transferring them from the preservation solution to another transplant solution we can avoid the effects of transfer on the encapsulated islets and improve the functionality of the encapsulated islets used for transplantation. It is possible to maintain the state.
  • the subject to whom encapsulated pancreatic islets are transplanted is arbitrary as long as the subject needs it.
  • the subject is a mammal, and specific examples include humans, dogs, cats, horses, cows, and pigs, with humans being preferred.
  • the subject in need of transplantation of encapsulated pancreatic islets is preferably a subject suffering from diabetes, and preferably a subject suffering from type 1 diabetes.
  • the transplantation site of the encapsulated pancreatic islet is not particularly limited, and may be subcutaneous, intramuscular, intraomental, intraperitoneal, etc., and it is preferable to transplant the encapsulated pancreatic islet intraperitoneally.
  • the number of pancreatic islet cells per administration is preferably about 5.0 ⁇ 10 6 to 1.2 ⁇ 10 8 cells/kg body weight, more preferably about 8.0 ⁇ 10 6 to 8.0 ⁇ 10 7 pieces/kg body weight, more preferably about 1.2 ⁇ 10 7 to 4.0 ⁇ 10 7 pieces/kg body weight.
  • the number of pancreatic islets per administration is preferably about 5,000 to 60,000 islets/kg body weight, more preferably about 8,000 to 40,000 islets/kg body weight, and even more preferably about 8,000 to 40,000 islets/kg body weight. Approximately 12,000 to 20,000 pieces/kg body weight.
  • pancreatic islets as a preservation solution or transplant solution.
  • Test liquid A liquid composition having the following table and properties was used as the test liquid.
  • Comparative storage solution Add 50 mL of inactivated Porcine Serum (Gibco) and 5 mL of Nicotinamide stock solution (1M Nicotinamide) to 500 mL of RPMI-1640 (Gibco) and mix to create a comparison storage solution. was prepared.
  • Pancreatic islets isolated from young pigs were suspended in a sodium alginate solution, and using a peristaltic pump, the alginate suspension was dropped into a 109 mM calcium chloride solution for encapsulation. After the capsules were collected and washed with physiological saline, 0.10% poly-L-ornithine (PLO) solution was added and mixed for 10 minutes on a mix rotor. After removing the supernatant and washing with physiological saline, 0.05% PLO solution was added and mixed for 6 minutes on a mix rotor.
  • PLO poly-L-ornithine
  • a 10-fold diluted sodium alginate solution was added and mixed for 6 minutes on a mixing rotor.
  • 1.15% sodium citrate solution was added and mixed for 2 minutes on a mix rotor.
  • the supernatant was further removed to obtain encapsulated pancreatic islets.
  • the obtained encapsulated pancreatic islets were suspended in a medium containing RPMI-1640 supplemented with pig serum, nicotinamide, and antibiotics, and dispensed into T175 flasks. From there, it was cultured for 26 days or 30 days in a CO 2 incubator at 37°C.
  • Test Animal A B6 mouse diabetes model induced by STZ administration was used as a test animal. Mice whose satiated blood glucose level was 300 mg/dL or higher on both days 2 and 3 (transplant day) after STZ administration, and whose general condition was visually observed and showed no abnormalities, were examined on the 3rd day after STZ administration. Stratified randomization was performed using the statistical analysis system EXSUS 10.0 (CAC Exicare Co., Ltd.) based on body weight and blood sugar level.
  • Test configuration The test was configured as shown in the table below.
  • STZ was administered to test animals at a dose of 200 mg/kg, and the encapsulated young porcine pancreatic islets cultured until Day 30 were stored in physiological saline without undergoing the step of preserving in the test solution or comparative preservation solution. It was suspended in liquid and 8,000 IEQ (Islet EQ equivalent: 1 IEQ is one pancreatic islet with a diameter of 150 ⁇ m) was implanted intraperitoneally. Encapsulated young porcine pancreatic islets were prepared using the following procedure. Based on the IEQ count results on the day of transplantation, the culture flasks were removed from the incubator immediately before transplantation, and each IEQ dose was dispensed into 50 mL tubes.
  • encapsulated young porcine pancreatic islets cultured until Day 26 were stored at 4°C for 96 hours in the comparative preservation solution described in "2.
  • Comparative preservation solution (Fukushima Galilei, FMS-702G), and then It was suspended in saline and 8,000 IEQ was implanted intraperitoneally.
  • Encapsulated young porcine pancreatic islets were prepared using the following procedure. Based on the IEQ count results on the first day of storage, the storage containers were removed from the refrigerator immediately before transplantation, and each IEQ dose was dispensed into 50 mL tubes. It was kept on ice until the washing operation.
  • HBSS HBSS
  • the storage solution in the tube was removed with a pipette, approximately 10 mL of HBSS (Gibco) at room temperature was added, and the tube was allowed to stand, and the supernatant was removed. After repeating these operations three times, about 10 mL of physiological saline at room temperature was added to suspend and allow to stand. The supernatant was removed to about 4 mL and immediately used for transplantation.
  • test solution Fukushima Galilei, FMS-702G
  • test solution Fukushima Galilei, FMS-702G
  • Encapsulated young porcine pancreatic islets were prepared using the following procedure. Based on the IEQ count results on the first day of storage, the storage containers were removed from the refrigerator immediately before transplantation, and each IEQ dose was dispensed into 50 mL tubes. It was kept on ice until the washing operation. Approximately 4 mL of the preservation solution in the tube was removed using a pipette, and the tube was immediately used for transplantation.
  • pancreatic islets were transplanted using the following procedure. Mice were anesthetized using an isoflurane vaporizer for induction and maintenance, and the abdomen was disinfected with 70% ethanol spray. A predetermined dose of the encapsulated islet solution was administered intraperitoneally through a 16G Surflow puncture. The skin at the puncture site was closed with surgical adhesive (Aron Alpha A "Sankyo", Daiichi Sankyo Co., Ltd.). After the surgery, the patient's body temperature decreased, so the patient was kept warm with a warmer until he woke up. The date of transplantation was defined as Day 0.
  • Oral glucose tolerance test The test was carried out after the day when the satiated blood glucose level was measured 4 weeks after transplantation.
  • a 10% sugar solution (Otsuka Pharmaceutical Factory) was orally administered using a sonde at 10 ⁇ L/g (glucose 1 g/kg) to mice that had fasted for approximately 16 hours from the previous day, and changes in blood sugar levels were evaluated. Blood glucose levels were measured before administration and at 0, 15, 30, 45, 60, 75, 90, 105, and 120 minutes after administration.
  • DTZ staining of recovered encapsulated pancreatic islets A DTZ solution was added to the recovered encapsulated islet suspension, and DTZ staining was observed using an inverted microscope (CKX41, Olympus) and images were taken.
  • a DTZ solution was prepared by adding 5 mL of DMSO (Sigma) and 45 mL of HBSS to 100 mg of Dithizone (Fujifilm Wako Pure Chemical Industries), thoroughly dissolving the solution, and then sterilizing it with a 0.22 ⁇ m filter.
  • porcine C-peptide The stored plasma was thawed at room temperature, and the porcine C-peptide concentration was measured using Mercodia Porcine C-peptide ELISA kit (Mercodia, product number: 10-1256-01).
  • SI stimulation index
  • Body Weight Body weight increased from the time of capsule implantation until the day of necropsy. There was no significant difference in average body weight between groups ( Figure 1).
  • Pig-derived C-peptide In each individual, pig-derived C-peptide was observed in mouse plasma one month after transplantation. The average values for each group were 165.44 pmol/L in the non-preservation group, 178.72 pmol/L in the control group, and 174.75 pmol/L in the test group, and no difference was observed between the groups.
  • test solution is not only useful as a preservation solution for encapsulated islets, but also that using the test solution as a transplant solution can suppress adhesion of encapsulated islets to tissue after transplantation. It was done. Being able to use the same composition as the transplant solution and preservation solution makes it possible to omit the operation of transferring preserved encapsulated islets to the transplant solution before transplantation, which not only improves work efficiency but also improves efficiency during fluid exchange. Since the generation of contamination can also be suppressed, the handling of encapsulated islets is dramatically improved.

Abstract

カプセル化膵島の移植をより効率的に実行する手段を提供すること。トレハロース若しくはその誘導体又はこれらの塩を含む、カプセル化膵島の保存用又は移植用液。

Description

カプセル化膵島の保存用又は移植用液
　カプセル化膵島の保存用又は移植用液及びその使用に関する技術が開示される。
　糖尿病は、血糖をコントロールする膵臓の機能が障害されて起こる疾患であり、主にＩ型糖尿病と、ＩＩ型糖尿病の２つのタイプが存在する。Ｉ型糖尿病は、比較的若年で発症し、自己免疫反応によりインスリンを産生する細胞が強く侵される症状を起こすのに対し、ＩＩ型糖尿病は中高年で発症し、インスリンの利用が上手くできない事に起因する。わが国では糖尿病患者の５％はＩ型糖尿病であり、約３０万人いると推定されている。これらの糖尿病患者は、多くの場合、インスリン療法により血糖をコントロールしているが、腎症、網膜症及び神経障害などの合併症の発症を免れる訳ではない。また、インスリン療法でも血糖のコントロールができない症例も少なくない。
　インスリン療法に代わる糖尿病の治療手段として膵島移植がある。膵島（ランゲルハンス島ともいう）は、膵臓の組織内に島状に散在し、インスリンを分泌するβ細胞含む内分泌性細胞群である。膵島移植は、ドナーから提供された膵臓から膵島を分離し、当該膵島の分散液を調製した後、当該分散液を経皮的に患者に投与する移植療法である。
　膵島移植には、次のようなメリットがある。（１）経皮的に投与可能であるため、開腹手術や全身麻酔を必要とせず、移植手術時の患者への負担が小さい。（２）移植後の免疫抑制剤の投与量は、髄臓移植の場合と比較して、少量で済む。（３）心停止又は動脈硬化による死亡した臓器提供者など、膵臓移植では適用されない臓器提供者の膵臓でも適用できる。また、移植後の免疫抑制剤の投与量を更に低減する手段として、膵島を微小なマイクロカプセルに封入する、カプセル化膵島が知られている（特許文献１及び２）。
　膵島を構成するβ細胞の多くは、膵島の分離精製後から時間の経過と伴に失活するため、調製された膵島は、可能な限りその生命力を失わないよう、適切に保存し、短時間で移植に供することが望ましい。しかしながら、ドナーから膵臓を摘出する手術から、移植用の膵島の調製を行うまでには、一定の時間（例えば、約１０～１８時間）を要する。また、膵島移植の準備が整ったとしても、患者の体調が優れないなどの理由ですぐに移植手術ができないことがある。
WO2021/256451 WO2021/153365
　カプセル化膵島移植をより効率的に実行する手段を提供することが一つの課題である。
　上記課題を解決すべく鋭意研究を重ね、カプセル化膵島の保存と移植に共通した溶液を使用することが可能であることが見出された。斯かる知見に更なる検討を重ね、下記に代表される発明が提供される。
項１
トレハロース若しくはその誘導体又はこれらの塩を含む、カプセル化膵島の保存用又は移植用液。
項２
等張液である、項１に記載の液。
項３
等張液が乳酸リンゲル液である、請求項２に記載の液。
項４
トレハロース若しくはその誘導体又はこれらの塩の濃度が２．０～６．０（ｗ／ｖ）％である、項１～３のいずれかに記載の液。
項５
カプセル化膵島の組織癒着防止に用いられる、項１～４のいずれかに記載の液。
項６
項１～５のいずれかに記載の液中にカプセル化膵島を保存する工程を含む、カプセル化膵島の保存方法。
項７
更に、カプセル化膵島を含む、項１～５のいずれかに記載の液。
項８
項７に記載の液を膵島の移植が必要な対象に投与することを含む、糖尿病の治療方法。
　カプセル化膵島移植に際して、保存されたカプセル化膵島を保存用液とは異なる移植用液に移すことなく、移植を行うことが可能となる。これにより、カプセル化膵島移植をより効率的に行うこと（又は、カプセル化膵島移植に要する時間を短縮すること）が可能となる。また、移植後のカプセル化膵島が組織に癒着することを抑制する機能にも優れている。
保存なし群、対照群、及び試験群について測定した体重（平均値）の変化を示す。 保存なし群、対照群、及び試験群について測定した飽食時血糖値（平均値）の変化を示す。 保存なし群、対照群、及び試験群から回収したカプセル化膵島のDTZ染色写真を示す。 保存なし群、対照群、及び試験群から回収したカプセル化膵島について測定したインスリン分泌量及び糖応答性を示す。
１．保存用又は移植用液
　カプセル化膵島の保存用又は移植用液は、トレハロース若しくはその誘導体又はこれらの塩（これらを纏めて「トレハロース類」と称する場合がある）を含むことが好ましい。トレハロースとしては、２つのα-グルコースが１，１－グリコシド結合した二糖類であるα，α－トレハロース、α-グルコースとβ－グルコースとが１，１－グリコシド結合した二糖類であるα，β－トレハロース、２つのβ－グルコースが１，１－グリコシド結合した二糖類であるβ，β－トレハロースを挙げることができる。これらの中でもα，α－トレハロースが好ましい。これらトレハロースは、化学合成、微生物による生産、酵素による生産等のいずれの公知の方法によっても製造することができるが、市販品を用いることもできる。例えば、α，α－トレハロース（株式会社林原社製又は富士フィルム和光純薬社製）などの市販品を挙げることができる。
　トレハロースの誘導体としては、特に制限されないが、二糖類のトレハロースに１又は複数の糖単位が結合したグリコシルトレハロース類を挙げることができる。グリコシルトレハロース類には、グルコシルトレハロース、マルトシルトレハロース、マルトトリオシルトレハロースなどが含まれる。
　トレハロース又はその誘導体の塩は、薬学的に許容可能なものであれば、特に制限されない。例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、リン酸塩、硝酸塩、硫酸塩、酢酸塩、プロピオン酸塩、トルエンスルホン酸塩、コハク酸塩、シュウ酸塩、乳酸塩、酒石酸塩、グリコール酸塩、メタンスルホン酸塩、酪酸塩、吉草酸塩、クエン酸塩、フマル酸塩、マレイン酸塩、リンゴ酸塩等の酸付加塩、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩等の金属塩、アンモニウム塩、アルキルアンモニウム塩などを挙げることができる。これらの塩は使用時において溶液として用いられた際の作用が、トレハロースの場合と同効なものが好ましい。これらの塩類は、水和物又は溶媒和物を形成していてもよい。また２種以上を適宜組み合わせて用いることができる。保存用又は移植用液は、一種のトレハロース類だけを含んでもよく、二種以上のトレハロース類を組み合わせて含んでいてもよい。
　保存用又は移植用液中のトレハロース類の濃度は、特に制限されず、例えば、下限は、トレハロース換算で０．１（ｗ／ｖ）％以上、好ましくは０．３（ｗ／ｖ）％以上、より好ましくは０．６（ｗ／ｖ）％以上、さらに好ましくは１．０（ｗ／ｖ）％以上、最も好ましくは２．０（ｗ／ｖ）％以上である。また、上限は、例えば、トレハロース換算で４０（ｗ／ｖ）％以下、好ましくは２０（ｗ／ｖ）％以下、より好ましくは１５（ｗ／ｖ）％以下、さらに好ましくは１０％（ｗ／ｖ）％以下、最も好ましくは６．０（ｗ／ｖ）％以下である。これらの下限及び上限の値は、任意に組み合わせることができる。例えば、保存用又は移植用液中のトレハロース類の濃度は、トレハロース換算で０．１～４０（ｗ／ｖ）％の範囲内、好ましくは０．３～２０（ｗ／ｖ）％、より好ましくは０．６～１５（ｗ／ｖ）％、さらに好ましくは１．０～１０％（ｗ／ｖ）％、最も好ましくは２．０～６．０（ｗ／ｖ）％である。
　保存用又は移植用液は、カプセル化膵島の移植及び保存が可能な液（例えば、等張液、低張液、高張液）であればよく、等張液であることが好ましい。ここで「等張液」とは、体液や細胞液の浸透圧とほぼ同じ浸透圧を有する液を意味し、具体的には、２５０～３８０ｍＯｓｍ／Ｌの範囲内の浸透圧を有する液を意味する。「低張液」とは、体液や細胞液の浸透圧よりも低い浸透圧を有する液を意味し、具体的には、２５０ｍＯｓｍ／Ｌ未満の浸透圧を有する液を意味する。低張液としては、細胞が破裂しない程度の低張液（具体的には、１００～２５０ｍＯｓｍ／Ｌ未満の範囲内の浸透圧を有する液）が好ましい。「高張液」とは、体液や細胞液の浸透圧よりも高い浸透圧を有する液を意味し、具体的には、浸透圧が３８０ｍＯｓｍ／Ｌ超（好ましくは３８０ｍＯｓｍ／Ｌ超～１０００ｍＯｓｍ／Ｌの範囲内）の液を意味する。
　等張液は、体液や細胞液の浸透圧とほぼ同じになるようにナトリウムイオン、カリウムイオン、及び／又はカルシウムイオン等によって塩濃度や糖濃度等が調整された等張液であれば特に制限されない。具体的には生理食塩水、緩衝効果のある生理食塩水（例えば、ＰＢＳ、トリス緩衝生理食塩水［Tris Buffered Saline；ＴＢＳ］、ＨＥＰＥＳ緩衝生理食塩水）、リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、重炭酸リンゲル液、５％グルコース水溶液、動物細胞培養用基礎培地（例えば、ＤＭＥＭ、ＥＭＥＭ、ＲＰＭＩ－１６４０、α－ＭＥＭ、Ｆ－１２、Ｆ－１０、Ｍ－１９９）、等張剤（例えば、ブドウ糖、Ｄ－ソルビトール、Ｄ－マンニトール、ラクトース、塩化ナトリウム）で調製された液等を挙げることができる。これらの中でも乳酸リンゲル液が好ましい。等張液は、市販のものであっても、自ら調製したものであってもよい。市販のものとしては、大塚生食注（大塚製薬工場社製）（生理食塩液）、リンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）（リンゲル液）、ラクテック（登録商標）注（大塚製薬工場社製）（乳酸リンゲル液）、ヴィーン（登録商標）Ｆ輸液（扶桑薬品工業社製）（酢酸リンゲル液）、大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）（５％グルコース水溶液）、及びビカネイト（登録商標）輸液（大塚製薬工場社製）（重炭酸リンゲル液）等を挙げることができる。
　保存用又は移植用液のｐＨは、カプセル化膵島の移植及び保存に適している限り特に制限されず、例えば、６．５～８．５の範囲内であればよい。例えば、ｐＨは、６．５～８．４；６．５～８．３；６．５～８．２；６．５～８．１；６．５～８．０；６．５～７．９；６．５～７．８；６．５～７．７；６．５～７．６；６．５～７．５；６．５～７．４；６．５～７．３；６．５～７．２；６．５～７．１；６．５～７．０；６．５～６．９；６．５～６．８；６．６～８．５；６．７～８．５；６．８～８．５；６．９～８．５；７．０～８．５；７．１～８．５；７．２～８．５；７．３～８．５；７．４～８．５；７．５～８．５；７．６～８．５；７．７～８．５；７．８～８．５；７．９～８．５；８．０～８．５；８．１～８．５；８．２～８．５；６．６～８．４；６．６～８．３；６．６～８．２；６．６～８．１；６．６～８．０；６．６～７．９；６．６～７．８；６．６～７．７；６．６～７．６；６．６～７．５；６．６～７．４；６．６～７．３；６．６～７．２；６．６～７．１；６．６～７．０；６．６～６．９；６．７～８．４；６．７～８．３；６．７～８．２；６．７～８．１；６．７～８．０；６．７～７．９；６．７～７．８；６．７～７．７；６．７～７．６；６．７～７．５；６．７～７．４；６．７～７．３；６．７～７．２；６．７～７．１；６．７～７．０；６．８～８．４；６．８～８．３；６．８～８．２；６．８～８．１；６．８～８．０；６．８～７．９；６．８～７．８；６．８～７．７；６．８～７．６；６．８～７．５；６．８～７．４；６．８～７．３；６．８～７．２；６．８～７．１；６．９～８．４；６．９～８．３；６．９～８．２；６．９～８．１；６．９～８．０；６．９～７．９；６．９～７．８；６．９～７．７；６．９～７．６；６．９～７．５；６．９～７．４；６．９～７．３；６．９～７．２；７．０～８．４；７．０～８．３；７．０～８．２；７．０～８．１；７．０～８．０；７．０～７．９；７．０～７．８；７．０～７．７；７．０～７．６；７．０～７．５；７．０～７．４；７．０～７．３；７．１～８．４；７．１～８．３；７．１～８．２；７．１～８．１；７．１～８．０；７．１～７．９；７．１～７．８；７．１～７．７；７．１～７．６；７．１～７．５；７．１～７．４；７．２～８．４；７．２～８．３；７．２～８．２；７．２～８．１；７．２～８．０；７．２～７．９；７．２～７．８；７．２～７．７；７．２～７．６；７．２～７．５；７．３～８．４；７．３～８．３；７．３～８．２；７．３～８．１；７．３～８．０；７．３～７．９；７．３～７．８；７．３～７．７；７．３～７．６；７．４～８．４；７．４～８．３；７．４～８．２；７．４～８．１；７．４～８．０；７．４～７．９；７．４～７．８；７．４～７．７；７．５～８．４；７．５～８．３；７．５～８．２；７．５～８．１；７．５～８．０；７．５～７．９；７．５～７．８；７．６～８．４；７．６～８．３；７．６～８．２；７．６～８．１；７．６～８．０；７．６～７．９；７．７～８．４；７．７～８．３；７．７～８．２；７．７～８．１；７．７～８．０；７．８～８．４；７．８～８．３；７．８～８．２；７．８～８．１；７．９～８．４；７．９～８．３；７．９～８．２；８．０～８．４；８．０～８．３；８．１～８．３；等を挙げることができる。
　一実施形態において、保存用又は移植用液は、哺乳動物細胞移植に適さない物質を含まないことが好ましい。哺乳動物細胞移植に適さない物質としては、例えば、生体由来の成分（例えば、血清又は血清由来成分（例えば、アルブミン））、ジメチルスルホキシド［Dimethyl sulfoxide；ＤＭＳＯ］、グリセリン、エチレングリコール、トリメチレングリコール、ジメチルアセトアミド、ポリエチレングリコール［ＰＥＧ］、ポリビニルピロリドン等を挙げることができる。
　保存用又は移植用液を用いて移植（及び保存）するカプセル化膵島に用いられる膵島の種類は特に制限されない。膵島は、インスリン産生β細胞、グルカゴン含有α細胞、ソマトスタチン分泌デルタ細胞、及び膵臓ポリペプチド含有細胞（ＰＰ細胞）を含むことが好ましい。膵島は、その大部分がインスリン産生β細胞であることが好ましい。膵島の由来は、目的に応じて選択し得、ヒト、ブタ、マウス、ラット、サル、又はイヌであることが好ましい。一実施形態において、膵島は、ブタ由来であることが好ましく、幼若ブタ（例えば、生後３日～４週間又は生後７日～３週間）の膵島であることが好ましい。膵島は、当該技術分野において知られている方法を任意に採用することにより得ることができる。
　膵島のサイズは、５０μｍ以上４００μｍ以下が好ましく、５０μｍ以上３５０μｍ以下がより好ましい。膵島のサイズは、顕微鏡のマイクロメーターを用いて測定することができる。膵島は、β細胞を１０％以上含んでいることが特性として好ましい。β細胞の割合の上限は特にないが、例えば、８０％である。
　一実施形態において、カプセル化膵島は、特許文献１又は２に記載されるようなカプセル化膵島であることが好ましい。一実施形態において、カプセル化膵島は、コアが３重の膜で覆われた構造を有し、前記コアは膵島を含み、前記３重膜の内側から１番目、３番目の膜はアルギン酸を含み、内側から２番目の膜はポリオルニチンを含むことが好ましい。一実施形態において、カプセル化膵島は、３重よりも多い膜（例えば、４重膜、５重膜、６重膜、７重膜、又は８重膜）で覆われていてもよい。
　膜がアルギン酸を含むとは、膜が主としてアルギン酸で構成されていることを意味する。膜がポリオルニチンを含むとは、膜が主としてポリオルニチンで構成されていることを意味する。カプセル化膵島は、１カプセル中に１～５の膵島を含有することが好ましい。
　カプセル化膵島は、線維化を抑制する観点から平均直径が４００μｍ以上であることが好ましく、より好ましくは４２０μｍ以上である。平均直径の上限は特にないが、例えば、７００μｍ以下、６００μｍ以下、又は５００μｍ以下に設定することができる。平均直径は、後述する実施例で採用した測定方法で測定することができる。
　カプセル化膵島は、特許文献１及び２等に記載された方法で作成することができる。
　上述の保存用又は移植用液は、保存されたカプセル化膵島を別の移植用液に移し替えることなく、そのまま移植に用いることができる。よって、一実施形態において、保存溶液又は移植用液は、膵島の保存用液兼移植用液であり得る。また、保存用又は移植液は、移植後のカプセル化膵島が組織（例えば、肝臓）に癒着することを抑制する機能に優れている。よって、保存用又は移植用液をカプセル化膵島の組織への癒着防止用途で用いることができる。
　本発明の保存用又は移植用液を用いてカプセル化膵島を保存する際の保存期間、保存温度は、後述の「２．保存方法」に記載のとおりである。
２．保存方法
　上述の保存液又は移植液中にカプセル化膵島を保存する工程を含む、カプセル化膵島の保存方法が提供される。
　保存期間は任意であり特に制限されない。一実施形態において、保存期間は、数時間～数日であり得る。数時間とは、例えば、０時間、２時間、４時間、６時間、８時間、１０時間、１２時間、１４時間、１６時間、１８時間、２０時間、又は２２時間である。数日とは、例えば、１日、２日、３日、４日、５日、６日、７日、８日、９日、１０日、１１日又は１２日である。例えば、保存期間は、０時間～１２日；０時間～１１日；０時間～１０日；０時間～９日；０時間～８日；０時間～７日；０時間～６日；０時間～５日；０時間～４日；０時間～３日；０時間～２日；０時間～１日；２時間～１２日；２時間～１１日；２時間～１０日；２時間～９日；２時間～８日；２時間～７日；２時間～６日；２時間～５日；２時間～４日；２時間～３日；２時間～２日；２時間～１日；４時間～１２日；４時間～１１日；４時間～１０日；４時間～９日；４時間～８日；４時間～７日；４時間～６日；４時間～５日；４時間～４日；４時間～３日；４時間～２日；４時間～１日；６時間～１２日；６時間～１１日；６時間～１０日；６時間～９日；６時間～８日；６時間～７日；６時間～６日；６時間～５日；６時間～４日；６時間～３日；６時間～２日；６時間～１日；８時間～１２日；８時間～１１日；８時間～１０日；８時間～９日；８時間～８日；８時間～７日；８時間～６日；８時間～５日；８時間～４日；８時間～３日；８時間～２日；８時間～１日；１０時間～１２日；１０時間～１１日；１０時間～１０日；１０時間～９日；１０時間～８日；１０時間～７日；１０時間～６日；１０時間～５日；１０時間～４日；１０時間～３日；１０時間～２日；１０時間～１日；１２時間～１２日；１２時間～１１日；１２時間～１０日；１２時間～９日；１２時間～８日；１２時間～７日；１２時間～６日；１２時間～５日；１２時間～４日；１２時間～３日；１２時間～２日；１２時間～１日；１４時間～１２日；１４時間～１１日；１４時間～１０日；１４時間～９日；１４時間～８日；１４時間～７日；１４時間～６日；１４時間～５日；１４時間～４日；１４時間～３日；１４時間～２日；１４時間～１日；１６時間～１２日；１６時間～１１日；１６時間～１０日；１６時間～９日；１６時間～８日；１６時間～７日；１６時間～６日；１６時間～５日；１６時間～４日；１６時間～３日；１６時間～２日；１６時間～１日；１８時間～１２日；１８時間～１１日；１８時間～１０日；１８時間～９日；１８時間～８日；１８時間～７日；１８時間～６日；１８時間～５日；１８時間～４日；１８時間～３日；１８時間～２日；１８時間～１日；２０時間～１２日；２０時間～１１日；２０時間～１０日；２０時間～９日；２０時間～８日；２０時間～７日；２０時間～６日；２０時間～５日；２０時間～４日；２０時間～３日；２０時間～２日；２０時間～１日；２２時間～１２日；２２時間～１１日；２２時間～１０日；２２時間～９日；２２時間～８日；２２時間～７日；２２時間～６日；２２時間～５日；２２時間～４日；２２時間～３日；２２時間～２日；２２時間～１日；等を挙げることができる。
　保存温度は任意であり特に制限されない。一実施形態において、保存温度は、０～４０℃であり得る。例えば、保存温度は、０～４０℃；０～３８℃；０～３６℃；０～３４℃；０～３２℃；０～３０℃；０～２８℃；０～２６℃；０～２４℃；０～２２℃；０～２０℃；０～１８℃；０～１６℃；０～１４℃；０～１２℃；０～１０℃；０～８℃；０～６℃；０～４℃；０～２℃；２～４０℃；２～３８℃；２～３６℃；２～３４℃；２～３２℃；２～３０℃；２～２８℃；２～２６℃；２～２４℃；２～２２℃；２～２０℃；２～１８℃；２～１６℃；２～１４℃；２～１２℃；２～１０℃；２～８℃；２～６℃；２～４℃；４～４０℃；４～３８℃；４～３６℃；４～３４℃；４～３２℃；４～３０℃；４～２８℃；４～２６℃；４～２４℃；４～２２℃；４～２０℃；４～１８℃；４～１６℃；４～１４℃；４～１２℃；４～１０℃；４～８℃；４～６℃；６～４０℃；６～３８℃；６～３６℃；６～３４℃；６～３２℃；６～３０℃；６～２８℃；６～２６℃；６～２４℃；６～２２℃；６～２０℃；６～１８℃；６～１６℃；６～１４℃；６～１２℃；６～１０℃；６～８℃；８～４０℃；８～３８℃；８～３６℃；８～３４℃；８～３２℃；８～３０℃；８～２８℃；８～２６℃；８～２４℃；８～２２℃；８～２０℃；８～１８℃；８～１６℃；８～１４℃；８～１２℃；８～１０℃；１０～４０℃；１０～３８℃；１０～３６℃；１０～３４℃；１０～３２℃；１０～３０℃；１０～２８℃；１０～２６℃；１０～２４℃；１０～２２℃；１０～２０℃；１０～１８℃；１０～１６℃；１０～１４℃；１０～１２℃；１２～４０℃；１２～３８℃；１２～３６℃；１２～３４℃；１２～３２℃；１２～３０℃；１２～２８℃；１２～２６℃；１２～２４℃；１２～２２℃；１２～２０℃；１２～１８℃；１２～１６℃；１２～１４℃；１４～４０℃；１４～３８℃；１４～３６℃；１４～３４℃；１４～３２℃；１４～３０℃；１４～２８℃；１４～２６℃；１４～２４℃；１４～２２℃；１４～２０℃；１４～１８℃；１４～１６℃；１６～４０℃；１６～３８℃；１６～３６℃；１６～３４℃；１６～３２℃；１６～３０℃；１６～２８℃；１６～２６℃；１６～２４℃；１６～２２℃；１６～２０℃；１６～１８℃；１８～４０℃；１８～３８℃；１８～３６℃；１８～３４℃；１８～３２℃；１８～３０℃；１８～２８℃；１８～２６℃；１８～２４℃；１８～２２℃；１８～２０℃；２０～４０℃；２０～３８℃；２０～３６℃；２０～３４℃；２０～３２℃；２０～３０℃；２０～２８℃；２０～２６℃；２０～２４℃；２０～２２℃；２２～４０℃；２２～３８℃；２２～３６℃；２２～３４℃；２２～３２℃；２２～３０℃；２２～２８℃；２２～２６℃；２２～２４℃；２４～４０℃；２４～３８℃；２４～３６℃；２４～３４℃；２４～３２℃；２４～３０℃；２４～２８℃；２４～２６℃；２６～４０℃；２６～３８℃；２６～３６℃；２６～３４℃；２６～３２℃；２６～３０℃；２６～２８℃；２８～４０℃；２８～３８℃；２８～３６℃；２８～３４℃；２８～３２℃；２８～３０℃；３０～４０℃；３０～３８℃；３０～３６℃；３０～３４℃；３０～３２℃；３２～４０℃；３２～３８℃；３２～３６℃；３２～３４℃；３４～４０℃；３４～３８℃；３４～３６℃；３６～４０℃；３６～３８℃；３８～４０℃；等を挙げることができる。
　一実施形態において、保存液又は移植液に保存されたカプセル化膵島は、そのまま（別の液に移し替えることなる）移植に供されることが好ましい。保存液から別の移植液に移し替える作業を省略することにより、効率的にカプセル化膵島の移植を行うこと、又は移植に要する時間を短縮できる。また、保存液から別の移植液に移し替えることなくカプセル化膵島の移植を行うことにより、移し替えによるカプセル化膵島への影響を回避し、移植に供されるカプセル化膵島の機能をより高い状態で保持することが可能になる。
　カプセル化膵島を移植する対象は、それを必要とする対象である限り任意である。例えば、対象は、哺乳動物であり、具体的には、ヒト、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、およびブタ等を挙げることができ、好ましくはヒトである。また、カプセル化膵島の移植を必要とする対象は、糖尿病を患う対象であることが好ましく、１型糖尿病を患う対象であることが好ましい。
　カプセル化膵島の移植部位は特に限定されず、皮下、筋肉内、大網内、腹腔内などを挙げることができ、腹腔内に移植することが好ましい。１回の投与当たりの膵島細胞数は対象の体重１ｋｇ当たりで、好ましくは約５．０×１０６～１．２×１０８個／ｋｇ体重であり、より好ましくは、約８．０×１０６～８．０×１０７個／ｋｇ体重であり、さらに好ましくは約１．２×１０７～４．０×１０７個／ｋｇ体重である。また、１回の投与当たりの膵島数は、対象の体重１ｋｇ当たりで、好ましくは約５０００～６００００個／ｋｇ体重であり、より好ましくは、約８０００～ ４００００個／ｋｇ体重であり、さらに好ましくは約１２０００～ ２００００個／ｋｇ体重である。
　以下、実施例により本発明についてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに制限されるものではない。
　カプセル化膵島の保存液又は移植液としての利用可能性について以下の試験で評価した。
１．試験液
　試験液として下記表と性状を有する液体組成物を用いた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
２．比較対象保存液
　500 mLのRPMI-1640（Gibco製）に50 mLの非働化済みのPorcine Serum（Gibco製）、5 mLのNicotinamideストック溶液（1M Nicotinamide）を添加し混合して比較対象の保存液を調製した。
３．カプセル化膵島
　幼若ブタから分離した膵島をアルギン酸ナトリウム溶液に懸濁し、ペリスタポンプを用いて、アルギン酸懸濁溶液を109 mM塩化カルシウム溶液に滴下させカプセル化させた。カプセルを回収し生理食塩液で洗浄後0.10% ポリL-オルニチン（PLO）溶液を添加し、ミックスローター上で10分間混和した。上清を除去し、生理食塩液で洗浄後、0.05% PLO溶液を添加し、ミックスローター上で6分間混和した。上清を除去し、生理食塩液で洗浄後、１０倍希釈したアルギン酸ナトリウム溶液を添加し、ミックスローター上で6分間混和した。上清を除去し、生理食塩液で洗浄後、1.15% クエン酸ナトリウム溶液を添加し、ミックスローター上で2分間混和した。上清を除去し、生理食塩液で洗浄後、さらに上清を除去し、カプセル化膵島を得た。得られたカプセル化膵島をＲＰＭＩ-１６４０にブタ血清、ニコチンアミド、及び抗生物質を添加した培地に懸濁し、T175フラスコに分注した。そこから、37℃のCO2インキュベーターで26日間、又は30日間培養した。
４．被験動物
　ＳＴＺ投与によるＢ６マウス糖尿病モデルを被験動物として使用した。STZ投与後2日目と3日目（移植日）の両日で飽食時血糖値が300 mg/dL以上であり、目視による一般状態の観察で異常の見られないマウスを対象として、3日目の体重及び血糖値にて統計解析システムEXSUS 10.0（株式会社CACエクシケア）を用いて層別無作為化割付を実施した。
５．試験構成
　試験は下記表に示すように構成した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　保存なし群では、STZを200 mg/kg用量で被験動物に投与し、Day30まで培養したカプセル化幼若ブタ膵島を、試験液又は比較対象保存液中で保存する工程を経ることなく、生理食塩液で懸濁し、腹腔内に8,000IEQ（Islet EQquivalent:1IEQは直径150μmの膵島が1つ）移植した。カプセル化幼若ブタ膵島は次の手順で調製した。移植当日のIEQカウント結果を元に、移植直前に培養フラスコを恒温器から取り出し、各IEQ用量を50 mLチューブに分注した。洗浄操作までは室温静置とした。チューブ内の培地をピペットで除去し、室温条件のHBSS（Gibco）を約10 mL添加し静置後、上清を除去した。これらの操作を3回繰り返した後、約10 mLの室温条件の生理食塩液を加え懸濁し静置後、上清を約4 mLまで除去し、速やかに移植に供した。
　対照群では、Day26まで培養したカプセル化幼若ブタ膵島を、前記「２．比較対象保存液」に記載の比較対象保存液中で96時間4℃保存（フクシマガリレイ、FMS-702G）後、生理食塩液で懸濁し、腹腔内に8,000IEQ移植した。カプセル化幼若ブタ膵島は次の手順で調製した。保存開始日のIEQカウント結果を元に、移植直前に保存容器を冷蔵庫から取り出し、各IEQ用量を50 mLチューブに分注した。洗浄操作までは氷冷静置とした。チューブ内の保存液をピペットで除去し、室温条件のHBSS（Gibco）を約10 mL添加し静置後、上清を除去した。これらの操作を3回繰り返した後、約10 mLの室温条件の生理食塩液を加え懸濁し静置後、上清を約4 mLまで除去し、速やかに移植に供した。
　試験群では、Day26まで培養したカプセル化幼若ブタ膵島を、前記「１．試験液」に記載の試験液中で96時間4℃保存（フクシマガリレイ、FMS-702G）後、そのまま腹腔内に8,000IEQ移植した。カプセル化幼若ブタ膵島は次の手順で調製した。保存開始日のIEQカウント結果を元に、移植直前に保存容器を冷蔵庫から取り出し、各IEQ用量を50 mLチューブに分注した。洗浄操作までは氷冷静置とした。チューブ内の保存液をピペットで約4 mLまで除去し、速やかに移植に供した。
　いずれの群においても、カプセル化膵島の移植は次の手順でおこなった。マウスをイソフルラン気化麻酔器で導入・維持麻酔し、腹部を70%エタノールスプレーで消毒した。腹腔内に所定の用量のカプセル化膵島溶液を16Gサーフロー穿刺にて投与した。穿刺部の皮膚は外科用接着剤（アロンアルファA「三共」、第一三共株式会社）で閉じた。なお、術後は体温が低下しているため覚醒まで加温器で加温した。移植日をDay 0とした。
６．観察、測定、検査
６－１．一般状態の観察
　毎日、生死の確認を含め一般状態の観察を行った。
６－２．体重測定
　STZ投与日、移植日、以降週2回及び経口糖負荷試験（OGTT）実施日に体重測定を行った。
６－３．血糖値測定
　STZ投与日（投与直前）、投与2日目、移植日と以降は週2回マウスを保定器で保定し、27G注射針による尾静脈穿刺採血（数μL）にて血糖値を測定した。測定にはニプロスタットストリップ（NIPRO）を用いた。血糖値の測定は午前中に実施した。
６－４．経口糖負荷試験（OGTT）
　移植4週間目の飽食時血糖値測定日より後に実施した。前日から約16時間絶食したマウスに、10%糖液（大塚製薬工場）を10 μL/g（グルコース1 g/kg）の条件でゾンデにて経口投与し、血糖値の推移を評価した。血糖値測定時点は、投与前、投与後0、15、30、45、60、75、90、105、120分とした。
６－５．剖検
　OGTT終了後にイソフルラン麻酔下で開腹し、肉眼所見で異常がみられた場合記録した。26G針付きシリンジを用いて後大静脈から採血を行った。血液はマイクロティナ採血管（BD、EDTA-2K）に入れ、軽く転倒混和した後氷冷下で保存した。4℃、3000×gで10分間遠心分離し血漿を分取し、別のマイクロチューブに入れてブタC-peptide測定用試料として-30℃以下で保存した。
６－６．回収カプセル化膵島のDTZ染色
　回収したカプセル化膵島懸濁液にDTZ溶液を加え、DTZ染色されているか倒立顕微鏡（CKX41、オリンパス）で観察、画像撮影した。DTZ溶液は、Dithizone（富士フイルム和光純薬）100 mgにDMSO（Sigma）5 mL、HBSS 45 mLを添加し、十分溶解した後に0.22 μmフィルターで滅菌して調製した。得られた画像の視野内のスフェロイドについて、ディチゾンで染色された部分があるものとないものを各々カウントし、純度を次の計算式で算出した：「純度（％）＝（ディチゾンで染色が認められた部分があるスフェロイド数）／（全体のスフェロイド数）×１００」。
６－７．ブタ由来C-peptideの測定
　保存した血漿を室温で融解し、Mercodia Porcine C-peptide ELISAキット(Mercodia, 製品番号：10-1256-01)を用いてブタC-peptide濃度を測定した。
６－８．SGSアッセイ
　回収したカプセルについてSGSアッセイを実施した。500 mg/Lのグルコース（低グルコース）または5000 mg/Lのグルコース（高グルコース）を含むRPMI1640中で1時間静置させたときのインスリン分泌量をMercodia Porcine Insulin ELISAを用いて求めた。測定はキット添付文書に従い、単位計算には1 mg=115 Uを用いた。SGSアッセイに従い、低グルコースと高グルコースのインスリン分泌量の比であるSI（stimulation index）を求めた。
６－９．統計学的処理
　得られたデータは平均値及び標準偏差を求め必要に応じてグラフ化した。統計解析は、EXSUS 10.0を用いてStudentのt検定を行った。p<0.05以下を有意差あり、p<0.1以下を有意傾向と判定した。
７．結果
７－１．一般状態
　カプセル化膵島移植後、動物番号15（保存なし群）、動物番号38（試験群）は行動抑制がみられたため、安楽死処置を実施した。これら以外の個体は、いずれも糖尿病による行動抑制及び移植時より20%以上の体重減少を満たすものはみられず、安楽死処置を実施したものはいなかった。
７－２．体重
　体重は、カプセル移植後から剖検日まで増加がみられた。平均体重は群間で大きな差は認められなかった（図１）。
７－３．飽食時血糖値
　飽食時血糖値は、いずれの群もカプセル移植後から降下が認められた。移植13日後では、対照群は一旦血糖値が上昇したが再び降下傾向となり、最終的に群間で大きな差はみられなかった（図２）。
７－４．OGTT
　一部に糖応答性が良くない個体はみられたが、いずれの群においても大きな差はなく糖応答性が示された。
７－５．剖検
　移植1ヵ月後の剖検において、保存なし群で1/7例（14.3%）、対照群で2/8例（25.0%）、肝臓へのカプセルの癒着あるいは腹腔内でのカプセル塊が認められた。試験群では、肝臓へのカプセルの癒着あるいは腹腔内でのカプセル塊は認められなかった。
７－６．回収カプセル化膵島のDTZ染色（膵島純度）
　移植1ヵ月後に回収したカプセル化膵島は、いずれの群もDTZ陽性細胞が確認された（図３）。陽性率は保存なし群96.9%、対照群91.5%、試験群95.1%であり、群間差は認められなかった。
７－７．ブタ由来C-peptide
　いずれの個体も、移植1ヵ月後においてマウス血漿中ブタ由来C-peptideが認められた。各群の平均値は保存なし群165.44 pmol/L、対照群178.72 pmol/L、試験群174.75 pmol/Lであり、群間差は認められなかった。
７－８．回収カプセル化膵島のインスリン分泌量及び糖応答性（SGSアッセイ）
　いずれの個体でも移植1ヵ月後に回収したカプセル化膵島は、糖応答性を示した（図４）。なお、図４中の「L1」及び「L2」は低グルコース（500mg/L）に静置したときのインスリン分泌量を、「H」は高グルコース（5000mg/L）に静置したときのインスリン分泌量を示し、「SI1」は「H/L1」のstimulation indexを、「SI2」は「H/L2」のstimulation indexを示す。また、図４中の「11-18」は保存なし群を、「21-28」は対象群を、「31-37」は試験群を、それぞれ示す。
　以上の結果から、試験液が、カプセル化膵島の保存液として有用であるだけではなく、試験液を移植液として使用することで、移植後のカプセル化膵島の組織への癒着を抑制できることが示された。移植液と保存液として同じ組成のものを使用できることは、保存されたカプセル化膵島を移植前に移植液に移し替える操作を省略することを可能にし、作業効率を高めるだけでなく、液交換時のコンタミの発生も抑制できるため、カプセル化膵島の取り扱い性を飛躍的に向上させる。

Claims (6)

  1. トレハロース若しくはその誘導体又はこれらの塩を含む、カプセル化膵島の保存用又は移植用液。
  2. 等張液である、請求項１に記載の液。
  3. 等張液が乳酸リンゲル液である、請求項１又は２に記載の液。
  4. トレハロース若しくはその誘導体又はこれらの塩の濃度が２．０～６．０（ｗ／ｖ）％である、請求項１～３のいずれかに記載の液。
  5. カプセル化膵島の組織癒着防止に用いられる、請求項１～４のいずれかに記載の液。
  6. 請求項１～５のいずれかに記載の液中にカプセル化膵島を保存する工程を含む、カプセル化膵島の保存方法。
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