WO2023054671A1 - アデノ随伴ウイルスの製造方法、細胞および発現ベクター - Google Patents

アデノ随伴ウイルスの製造方法、細胞および発現ベクター Download PDF

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WO2023054671A1
WO2023054671A1 PCT/JP2022/036684 JP2022036684W WO2023054671A1 WO 2023054671 A1 WO2023054671 A1 WO 2023054671A1 JP 2022036684 W JP2022036684 W JP 2022036684W WO 2023054671 A1 WO2023054671 A1 WO 2023054671A1
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gene
e4orf6
sequence
cell
promoter
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PCT/JP2022/036684
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勇介 森
彩也子 梅谷
太一 村口
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富士フイルム株式会社
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    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
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    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
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    • C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
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    • C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing an adeno-associated virus. Furthermore, the present invention relates to cells and expression vectors for use in the method for producing the adeno-associated virus described above.
  • Adeno-associated virus (also called AAV) is a linear, single-stranded DNA virus belonging to the Parvoviridae family.
  • the wild-type AAV genome contains regulatory genes for replication (Rep genes) and capsid structural genes (Cap genes), flanked by inverted terminal repeats (ITRs) for viral replication and packaging.
  • AAV vectors are capable of transducing genes into either proliferating or non-proliferating cells, and are particularly capable of long-term expression in non-dividing cells. AAV is also considered non-pathogenic and is poorly immunogenic. Based on the above, AAV vectors are being clinically applied as vectors for gene therapy.
  • AAV is a non-enveloped virus that grows in the presence of helper viruses such as adenovirus and herpes virus.
  • helper viruses such as adenovirus and herpes virus.
  • adenovirus was co-infected with host cells to effect AAV replication.
  • a gene responsible for adenovirus helper action has been clarified, and a plasmid carrying this gene is also used.
  • a plasmid containing the Rep and Cap genes, an adenoviral helper plasmid, and a plasmid containing the transgene can be co-transfected into HEK293 cells and packaged into recombinant AAV (rAAV).
  • Patent Document 1 discloses (a) a nucleotide sequence encoding an AAV REP protein, (b) a nucleotide sequence encoding an AAV capsid structural protein, and (c) a first AAV inverted terminal repeat (ITR).
  • ITR AAV inverted terminal repeat
  • nucleic acid molecule has been described that includes a nucleotide sequence that includes the VA-RNA region of adenovirus.
  • US Pat. No. 6,200,000 includes an adenoviral (Ad) gene comprising at least four distinct recombination target sites (RTS), E1A, E1B, or a combination thereof, and a promoter operably linked to the Ad gene.
  • Ad adenoviral gene comprising at least four distinct recombination target sites (RTS), E1A, E1B, or a combination thereof, and a promoter operably linked to the Ad gene.
  • RTS recombination target sites
  • E1A recombination target sites
  • E1B recombination target sites
  • rAAV adeno-associated virus
  • US Pat. No. 5,300,000 discloses a two-plasmid system comprising a helper plasmid and a vector plasmid, wherein the helper plasmid contains at least one Rep gene encoding at least one functional Rep protein and encodes a functional set of Cap proteins.
  • the helper plasmid contains at least one Rep gene encoding at least one functional Rep protein and encodes a functional set of Cap proteins.
  • a two-plasmid system has been described that does not contain the Cap gene for
  • US Pat. No. 6,200,401 describes (i) an accessory construct comprising a helper plasmid comprising adenoviral E2, E4ORF6, and VA-RNA genes, (ii) a transconduct comprising AAVRep and AAVCap operably linked to one or more regulatory sequences.
  • Transfection comprising an AAV vector comprising an AAV helper construct comprising a plasmid and (iii) a plasmid (pCis) comprising AAV inverted terminal repeats flanking a heterologous gene of interest operably linked to one or more regulatory sequences.
  • An in vitro method for producing recombinant AAV virions in mammalian host cells has been described that involves incubating the cells in culture medium.
  • JP 2020-188763 A Japanese Patent Publication No. 2020-507331 International publication WO2020/208379 U.S. Patent Publication No. US2016/0222356
  • An object of the present invention is to provide a method for producing an adeno-associated virus that can improve the production amount of the adeno-associated virus.
  • a further object of the present invention is to provide a cell and an expression vector for use in the method for producing the adeno-associated virus described above.
  • a method for producing an adeno-associated virus comprising expressing the E4ORF6 gene with an exogenous promoter, wherein E4ORF6 is expressed using an expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, an E4ORF6 gene and a polyA signal sequence.
  • ⁇ 2> The method for producing an adeno-associated virus according to ⁇ 1>, wherein the decrease in E4ORF6 expression is a decrease in E4ORF6 mRNA expression and/or a decrease in E4ORF6 protein expression.
  • the amount of E4ORF6 expression is reduced to 1/2 or less compared to the case where E4ORF6 is expressed using an expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, an E4ORF6 gene, and a polyA sequence.
  • ⁇ 1> or the method for producing an adeno-associated virus according to ⁇ 2>.
  • ⁇ 4> The method for producing an adeno-associated virus according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 3>, wherein the expression of E4ORF6 is reduced by any one or more of (a) to (e) below.
  • the exogenous promoter is a promoter with weaker transcriptional activity than the cytomegalovirus-derived promoter;
  • the Kozak sequence of the E4ORF6 gene is a modified Kozak sequence or does not use the Kozak sequence;
  • the enhancer sequence is a modified enhancer sequence or does not use an enhancer sequence;
  • the poly A signal sequence is a modified poly A signal sequence or does not use a poly A signal sequence;
  • a method for producing an adeno-associated virus comprising introducing an E4 region containing at least the E4ORF6 gene into a cell, comprising a Rep gene, a Cap gene, an E2A gene, a VA-RNA gene, and a desired therapeutic or preventive gene.
  • a method for producing an adeno-associated virus wherein the amount of the E4ORF6 gene introduced into the cell is 1/2 or less of the amount of any one or more of the genes introduced into the cell.
  • the amount of the E4 region introduced into the cell is the amount of any one or more of the Rep gene, the Cap gene, the E2A gene, the VA-RNA gene, and the desired therapeutic or preventive gene introduced into the cell.
  • the method for producing an adeno-associated virus according to ⁇ 6> wherein the adeno-associated virus is 1/10 or less of the above.
  • ⁇ 8> The method for producing an adeno-associated virus according to ⁇ 6> or ⁇ 7>, wherein the E4 region, the E2A gene and the VA-RNA gene are introduced into the cell by different plasmid vectors.
  • ⁇ 9> The method for producing an adeno-associated virus according to any one of ⁇ 6> to ⁇ 8>, wherein the E4 region consists only of the E4ORF6 gene.
  • ⁇ 9A> The method for producing an adeno-associated virus according to any one of ⁇ 6> to ⁇ 9>, wherein the E4 region is present downstream of a promoter capable of regulating expression.
  • ⁇ 9B> The method for producing an adeno-associated virus according to any one of ⁇ 6> to ⁇ 9> and ⁇ 9A>, wherein the E4 region consists only of the E4ORF gene and does not contain a poly A signal sequence.
  • the exogenous promoter is a promoter with weaker transcriptional activity than the cytomegalovirus-derived promoter;
  • the Kozak sequence of the E4ORF6 gene is a modified Kozak sequence or has no Kozak sequence;
  • the enhancer sequence is a modified enhancer sequence or has no enhancer sequence;
  • the poly A signal sequence is a modified poly A signal sequence or has no poly A signal sequence;
  • ⁇ 13> The cell according to any one of ⁇ 10> to ⁇ 12>, further comprising an E2A gene and a VA-RNA gene.
  • ⁇ 14> The cell according to any one of ⁇ 10> to ⁇ 13>, further comprising a Rep gene.
  • ⁇ 15> The cell according to any one of ⁇ 10> to ⁇ 14>, further comprising a Cap gene and/or a desired therapeutic or preventive gene.
  • the exogenous promoter is a promoter with weaker transcriptional activity than the cytomegalovirus-derived promoter;
  • the Kozak sequence of the E4ORF6 gene is a modified Kozak sequence or has no Kozak sequence;
  • the enhancer sequence is a modified enhancer sequence or has no enhancer sequence;
  • the poly A signal sequence is a modified poly A signal sequence or has no poly A signal sequence; (e) using the IRES sequence to express the E4ORF6 gene:
  • the production amount of adeno-associated virus can be improved.
  • FIG. 1 shows the measurement results of the E4ORF6 expression level.
  • FIG. 2 shows the results of AAV genome titer measurements.
  • FIG. 3 shows the results of cytotoxicity measurements.
  • FIG. 4 shows the measurement results of the E4ORF6 expression level.
  • FIG. 5 shows the results of AAV genome titer measurements.
  • Figure 6 shows the construction of the plasmid.
  • FIG. 7 shows the measurement results of the E4ORF6 expression level.
  • FIG. 8 shows the results of AAV genome titer measurements.
  • FIG. 9 shows the results of measuring the number of proliferated cells.
  • FIG. 10 shows the results of AAV genome titer measurements.
  • a promoter refers to a DNA regulatory region/sequence capable of binding RNA polymerase and involved in the initiation of transcription of a downstream coding or non-coding sequence.
  • a vector is a DNA or RNA molecule that is used to artificially transfer a foreign gene to another cell.
  • a vector for expressing a gene is called an expression vector.
  • Vectors include episomal (eg, plasmid) vectors and non-episomal vectors. Vectors can be introduced into host cells by methods such as transfection, transduction, cell fusion and lipofection.
  • “Mounting” means that another nucleic acid sequence is incorporated into a chromosome or nucleic acid sequence.
  • a gene means a nucleotide that encodes a polypeptide, and includes nucleic acid molecules such as cDNA and genomic DNA.
  • the Kozak sequence means the sequence preceding the initiation codon (ATG) of E4ORF6 and is GCCACC.
  • an IRES sequence means an internal ribosome entry site. There is no limitation as long as the sequence has the function of recognizing by ribosomes and initiating translation without the cap structure on the 5' side of mRNA.
  • a sequence having 90% or more identity with the sequence disclosed in seq16 is preferred. More preferred is a sequence having 95% or more identity with the sequence disclosed in seq16, and most preferred is a sequence identical to seq16.
  • a first aspect of the method for producing an adeno-associated virus of the present invention is a method for producing an adeno-associated virus comprising expressing an E4ORF6 gene by an exogenous promoter, comprising an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, and an E4ORF6 gene.
  • a second aspect of the method for producing an adeno-associated virus of the present invention is a method for producing an adeno-associated virus, comprising introducing an E4 region containing at least the E4ORF6 gene into a cell, comprising a Rep gene, a Cap gene, and an E2A gene. , the amount of the E4ORF6 gene introduced into the cell is 1/2 or less compared to the amount of any one or more of the VA-RNA gene and the desired therapeutic or preventive gene introduced into the cell, A method for producing an adeno-associated virus.
  • a high amount of adeno-associated virus can be produced by reducing the expression level of E4ORF6, which is a gene necessary for adeno-associated virus production.
  • E4ORF6 which is a gene necessary for adeno-associated virus production.
  • the introduction ratio of the plasmid is reduced, so the cost can be reduced.
  • the E4ORF6 gene is expressed by an exogenous promoter.
  • a foreign promoter means a promoter that is not contained in the wild type, and in the case of the E4 gene, it means a promoter that is not contained in the E4 region of the wild type adeno.
  • a cytomegalovirus-derived promoter CMV promoter
  • a promoter with weaker transcriptional activity than the CMV promoter may be used. Promoters with weaker transcription activity than the CMV promoter will be described later.
  • E4ORF6 When E4ORF6 is expressed using an expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, an E4ORF6 gene, and a polyA signal sequence, a person skilled in the art would know that E4ORF6 is strongly expressed. It is understandable to mean In one aspect, it means the case where E4ORF6 is expressed in seq4. That is, the expression of E4ORF6 is reduced compared to the case where E4ORF6 is expressed using the "expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, an E4ORF6 gene and a polyA signal sequence" in the present invention.
  • E4ORF6 preferably means that the expression of E4ORF6 is reduced compared to the case where E4ORF6 is expressed using seq4 (plasmid having the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 4) in the Examples described later. .
  • a method of expressing the E4ORF6 gene without the 5'Cap structure rather than a method of expressing the E4ORF6 gene via the 5'Cap structure is preferred.
  • E4ORF6 is expressed using an expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, an E4ORF6 gene, and a polyA signal sequence.
  • the expression of E4ORF6 is reduced, it is preferably 1/2 or less, more preferably 1/4 or less, more preferably 1/10 or less, more preferably 1/50 or less, more preferably 1/2 or less. /250 or less, more preferably 1/1250 or less.
  • a decrease in E4ORF6 expression is a decrease in E4ORF6 mRNA expression and/or a decrease in E4ORF6 protein expression.
  • the mRNA expression level of the E4ORF6 gene is 1/2 or less compared to when E4ORF6 is expressed using an expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, the E4ORF6 gene and a poly A signal sequence. preferably 1/4 or less, more preferably 1/10 or less, more preferably 1/50, more preferably 1/250 or less, 1/ It is more preferably 1250 or less.
  • the expression level of the protein expressed by the E4ORF6 gene is 1 compared to the case where E4ORF6 is expressed using an expression unit containing an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, the E4ORF6 gene and a polyA signal sequence.
  • /2 or less more preferably 1/4 or less, more preferably 1/10 or less, more preferably 1/50 or less, more preferably 1/250 or less It is preferably 1/1250 or less, and more preferably 1/1250 or less.
  • the means for reducing E4ORF6 expression is preferably any one or more of the following (a) to (e).
  • an expression vector containing E4ORF6 linked to an exogenous promoter which satisfies any one or more of the following (a) to (e).
  • the exogenous promoter is a promoter with weaker transcriptional activity than the cytomegalovirus-derived promoter;
  • the Kozak sequence of the E4ORF6 gene is a modified Kozak sequence or does not use the Kozak sequence;
  • the enhancer sequence is a modified enhancer sequence or does not use an enhancer sequence;
  • the poly A signal sequence is a modified poly A signal sequence or does not use a poly A signal sequence; (e) using the IRES sequence to express the E4ORF6 gene:
  • Promoters with weaker transcription activity than cytomegalovirus-derived promoters include EF1 ⁇ promoter, CAG promoter, SV40 promoter, PGK promoter, RSV promoter and the like.
  • Methods for modifying the Kozak sequence include methods for introducing mutations into the sequence and methods for reducing the activity by removing the sequence.
  • Methods of altering enhancer sequences include methods of introducing mutations into sequences and methods of reducing activity by removing sequences.
  • Methods of modifying the poly A signal sequence include methods of introducing mutations into the sequence and methods of reducing the activity by removing the sequence.
  • the amount of the E4 region introduced into the cell is any one of Rep gene, Cap gene, E2A gene, VA-RNA gene, and desired therapeutic or preventive gene. It is preferably 1/2 or less, more preferably 1/4 or less, more preferably 1/10 or less, more preferably 1/50 or less, more preferably 1/250 of the amount of the above gene introduced into the cell. 1/1250 or less, more preferably 1/1250 or less.
  • the E4 region, the E2A gene and the VA-RNA gene may be introduced into cells using the same plasmid vector, or may be introduced into cells using different plasmid vectors.
  • the E4 region may contain the E4ORF6 gene and genes other than the E4ORF6 gene, or may consist of the E4ORF6 gene alone.
  • the E4 region consists of the E4ORF6 gene only.
  • the E4 region consists only of the E4 ORF gene and does not contain the polyA signal sequence.
  • the E4 region is preferably present downstream of a promoter whose expression can be regulated.
  • a viral helper gene is introduced into cells.
  • the viral helper gene is preferably under the control of a promoter, and may be under the control of a promoter whose expression can be regulated.
  • a promoter whose expression can be regulated a promoter whose expression can be turned on and off depending on the presence or absence of stimulation can be used.
  • Stimuli include chemical stimuli (endogenous hormone stress response, lactose, tetracycline or its derivatives (eg, doxycycline), cumic acid, proteins (rapamycin, FKCsA, abscisic acid (ABA), etc.), tamoxifen/Cre-loxP ( Examples include, but are not limited to, a system using a Cre promoter modified so that activation can be induced by tamoxifen), a riboswitch), physical stimuli (blue light, heat), and the like.
  • the promoter whose expression can be regulated may be a promoter whose expression can be regulated by a drug.
  • the drug is preferably tetracycline or a derivative thereof (eg, doxycycline).
  • Expression-regulatable promoters include tetracycline-responsive promoters, RU486-inducible promoters, ecdysone-inducible promoters, rapamycin-inducible promoters, and metallothionein promoters.
  • Specific tetracycline-responsive promoters include the Tet on/off system (manufactured by TET systems).
  • the expression-regulatable promoter may be a Tet on/off system or a Tet-on system, which is a promoter whose expression can be regulated by tetracycline.
  • the promoter additionally contains at least one Tet operon.
  • the Tet operon tetracycline-regulated transcriptional activation
  • the intracellular Tet repressor protein blocks expression by binding to the Tet operator sequences introduced into the promoter. Therefore, no gene expression is seen when the Tet repressor is bound to the Tet operator sequence.
  • the Tet repressor is sequestered to allow promoter activity and gene expression is turned on.
  • the Tet operon system is widely available, such as the Tet operon used in the pcDNATM4/TO mammalian expression vector available from Invitroge.
  • the Tet operator sequence can be upstream or downstream of the promoter whose expression you want to regulate. In terms of reducing expression leakage when expression is turned off, the Tet operator sequence is preferably downstream of the expression-regulatable promoter.
  • promoters include, but are not limited to, cytomegalovirus-derived promoter (CMV promoter) (optionally including enhancer), SV40 early promoter, human elongation factor-1 ⁇ (EF-1 ⁇ ) promoter, human ubiquitin C promoter, Retroviral Rous sarcoma virus (RSV) LTR promoter, dihydrofolate reductase promoter, ⁇ -actin promoter, phosphoglycerate kinase (PGK) promoter and the like can be mentioned.
  • CMV promoter cytomegalovirus-derived promoter
  • EF-1 ⁇ human elongation factor-1 ⁇
  • PGK phosphoglycerate kinase
  • Viral helper genes are non-adeno-associated viral genes that enable replication and packaging of adeno-associated viruses.
  • virus helper genes genes derived from viruses other than adeno-associated viruses are used.
  • Specific examples of viral helper genes include viral helper genes derived from adenovirus or herpesvirus, preferably the viral helper gene is derived from adenovirus.
  • Adenovirus refers to a non-enveloped virus with an icosahedral nucleocapsid containing double-stranded DNA in the family Adenoviridae. More than 50 adenovirus subtypes have been isolated from humans, and many additional subtypes have been isolated from other mammals and birds. These subtypes belong to the family Adenoviridae and are divided into two genera, namely Mastadenovirus and Aviadenovirus. These adenoviruses are morphologically and structurally similar. However, in humans, adenoviruses exhibit different immunological properties, ie, are divided into serotypes. Two human serotypes of adenovirus, namely Ad2 and Ad5, have been intensively studied.
  • Adenovirus-derived viral helper genes are genes involved in the replication and packaging of adeno-associated viruses.
  • Adenovirus-derived viral helper genes include E1A, E1B, E2A, E4, and VA-RNA.
  • the regions of the adenoviral genome necessary for replication and packaging of the AAV genome into capsids to form viral virions in host cells possessing all or part of the E1 region are the E2A region, E4 region, and the VA-RNA region.
  • the E4 34 kDa protein encoded by the open reading frame 6 (E4ORF6) of the E4 region is required for AAV replication.
  • the viral helper genes are the E2 gene, the E4 gene (E4ORF6) and the VA-RNA gene.
  • the VA-RNA gene is preferably the VA-RNAI gene.
  • Adenovirus-derived viral helper genes (E1A, E1B, E2A, E4, VA-RNA, etc.) may be wild-type genes. Altered genes such as substitutions, deletions, insertions or additions of may be used.
  • the number of bases to be modified is preferably 1 to 20, more preferably 1 to 10, and still more preferably. is 1 to 3.
  • the base sequence of the modified viral helper gene preferably exhibits a sequence identity of 85% or more, more preferably 90% or more, and more preferably a sequence identity of 90% or more with the base sequence of the wild-type viral helper gene. exhibit greater than 95% sequence identity, and even more preferably greater than 98% sequence identity.
  • a vector containing the viral helper gene can be introduced into the cell.
  • a vector containing a viral helper gene for example, a plasmid, a virus-derived sequence, an artificially designed nucleic acid, etc. can be used, preferably a plasmid.
  • an adeno-associated virus gene is introduced into cells.
  • Adeno-associated virus refers to a small, replication-defective, non-enveloped virus containing single-stranded DNA in the family Parvoviridae and Dependoparvovirus genus.
  • AAV has more than 100 serotypes, and it is known that differences in serotypes result in different host ranges and viral characteristics.
  • Serotype 2 is one of the serotypes that has been extensively studied for a long time and is known to have a very wide host range.
  • Serotype 1 (AAV1), serotype 5 (AAV5) and serotype 6 (AAV6) are serotypes with higher tissue tropism.
  • AAV1 is said to have high efficiency of gene transfer to muscle, liver, respiratory tract, central nervous system and the like, AAV5 to central nervous system, liver, retina and the like, and AAV6 to heart, muscle, liver and the like.
  • the present invention is used with serotype 2 or serotype 5.
  • Serotype 5 is particularly preferred.
  • An adeno-associated virus gene refers to a gene composed of one or more nucleic acid sequences derived from one or more adeno-associated virus serotypes.
  • the adeno-associated virus genes are preferably genes involved in AAV replication and packaging, and genes encoding AAV constituent proteins.
  • Rep and Cap genes are preferably used as adeno-associated virus genes.
  • the Rep and Cap genes encode proteins involved in virion replication and packaging.
  • Rep genes are expressed in wild type from the P5 and p19 promoters.
  • the Cap region expresses VP1, VP2 and VP3.
  • a p40 promoter can be mentioned as a promoter that the Cap gene naturally retains.
  • the adeno-associated virus gene may be a wild-type gene.
  • a modified gene may be used.
  • the number of bases to be modified is preferably 1 to 20, or more.
  • the number is preferably 1 to 10, more preferably 1 to 3.
  • the nucleotide sequence of the modified adeno-associated virus gene preferably exhibits a sequence identity of 85% or more, more preferably 90% or more, with the nucleotide sequence of the wild-type adeno-associated virus gene, More preferably, it exhibits a sequence identity of 95% or greater, even more preferably 98% or greater.
  • a vector containing the Rep gene and the Cap gene can be introduced into the cell.
  • the arrangement of the Rep gene and the Cap gene in the vector is not particularly limited, and the Rep gene may be located upstream of the Cap gene or downstream of the Cap gene.
  • the Rep gene is Located upstream of the Cap gene.
  • Rep genes are viral replication proteins known to those skilled in the art that are collectively required for replication of the viral genome or, such as the human herpesvirus 6 (HHV-6) Rep gene (which mediates AAV-2 DNA replication). known to do) that encodes a functional homologue thereof.
  • the coding region of the Rep gene includes at least the genes encoding AAV REP78 and REP68 (“long form REP proteins”) and REP52 and REP40 (“short form REP proteins”) or functional homologues thereof.
  • the coding region of the Rep gene used in the present invention may be derived from any AAV serotype, but is preferably derived from AAV2. Those derived from AAV2 include REP78 and REP68 and REP52 and REP40, ITRs.
  • Cap gene means the region in the AAV genome that encodes the viral capsid protein known to those skilled in the art. Examples of these capsid proteins are the AAV capsid proteins VP1, VP2 and VP3.
  • the Cap gene used in the present invention may be derived from any AAV serotype, but is preferably derived from AAV2 or AAV5. AAV5 is particularly preferred.
  • a vector containing the Rep gene and Cap gene for example, a plasmid, a virus-derived nucleic acid sequence, an artificially designed nucleic acid, etc. can be used, preferably a plasmid.
  • therapeutic or preventive genes may be introduced into cells.
  • genes that are defective or missing in the genome of the target cell, or encode non-natural proteins that have the desired biological or therapeutic effect e.g., antiviral function.
  • a gene or the like can be used, but is not particularly limited.
  • Specific examples of therapeutic or prophylactic genes include inflammatory diseases, autoimmune diseases, chronic and infectious diseases (including disorders such as AIDS, cancer, neurological diseases, cardiovascular diseases, hypercholesteremia), anemia and blood Genes used for the treatment or prevention of various hematologic diseases such as communis, genetic deficiencies (eg, cystic fibrosis, Gaucher disease, adenosine deaminase (ADA) deficiency, emphysema, etc.).
  • some antisense oligonucleotides e.g., short oligos complementary to sequences around the translation start site (AUG codon) of mRNA, which are useful in antisense therapy against cancer and against viral diseases
  • nucleotide e.g., short oligos complementary to sequences around the translation start site (AUG codon) of mRNA, which are useful in antisense therapy against cancer and against viral diseases
  • the therapeutic or preventive gene may be linked to a promoter for expressing the therapeutic or preventive gene.
  • Promoters for expressing therapeutic or preventive genes are not particularly limited, but cytomegalovirus-derived promoter (optionally including enhancer), SV40 early promoter, human elongation factor-1 ⁇ (EF-1 ⁇ ) promoter, human ubiquitin C promoters, retroviral Rous sarcoma virus LTR promoter, dihydrofolate reductase promoter, ⁇ -actin promoter, phosphoglycerate kinase (PGK) promoter, and the like.
  • the therapeutic or prophylactic gene and the promoter for expressing the gene are preferably flanked by ITR sequences.
  • Preferred aspects of the combination of vectors in the present invention include the following aspects. (1) Using a vector containing the Rep gene and the Cap gene, a vector containing the E2A gene and the VA-RNA gene, a vector containing the E4 gene, and a vector containing the desired therapeutic or preventive gene, a vector having the E4 gene Mode for reducing introduction ratio: (2) Using a vector containing the Rep gene and the Cap gene, a vector containing the E2A gene and the VA-RNA gene, a vector containing the E4ORF6 gene, and a vector containing the desired therapeutic or preventive gene, a vector having the E4ORF6 gene Mode for reducing introduction ratio: (3) vector containing Rep gene and Cap gene, vector containing E2A gene and VA-RNA gene, vector containing E4ORF6 gene with reduced expression level of E4ORF6 gene, and vector containing desired therapeutic or preventive gene Embodiments using (4) Using a vector containing the Rep gene and the Cap gene, a vector containing the E2A gene
  • Aspect using a vector containing Rep gene, Cap gene, E2A gene, VA-RNA gene and desired gene for treatment or prevention, and a vector containing E4ORF6 gene with reduced expression level of E4ORF6 gene (9) Aspect using a vector containing a Rep gene, a Cap gene, an E2A gene, an E4ORF6 gene and a VA-RNA gene, with a reduced expression level of the E4ORF6 gene, and a vector containing a desired therapeutic or preventive gene; (10) An embodiment using a vector containing the Rep gene, the Cap gene, the E2A gene, the E4ORF6 gene, the VA-RNA gene and a desired gene for treatment or prevention, and in which the expression level of the E4ORF6 gene is reduced.
  • an adeno-associated virus is produced by culturing cells containing a virus helper gene, an adeno-associated virus gene, and, if necessary, a desired therapeutic or preventive gene. can do.
  • the adeno-associated virus can be produced by any of the TT (Triple Transfection) method, the packaging cell method, or the producer cell method.
  • the TT method is particularly preferred when E4ORF6 is used instead of the E4 gene.
  • the TT method involves simultaneously transfecting HEK293 cells with a plasmid containing the Rep and Cap genes, an adenoviral helper plasmid, and a plasmid containing a transgene (e.g., a desired therapeutic or preventive gene) to generate recombinant AAV. (rAAV).
  • a transgene e.g., a desired therapeutic or preventive gene
  • the packaging cell method is a method of producing AAV by introducing the remaining genes by transfection into cells that have already integrated some of the genes in the TT method into the chromosome.
  • the Producer cell method is a method of producing AAV without transfection manipulation using cells in which all genes in the TT method have been integrated into the chromosome.
  • Particularly preferred embodiments of the present invention include the following embodiments.
  • a plasmid carrying Rep gene and Cap gene a plasmid carrying E2A gene, VA-RNA gene and E4ORF6, and a plasmid carrying GOI gene.
  • a method for producing an AAV gene, wherein the promoter to be expressed is the CAG promoter.
  • the cell culture in the method for producing an adeno-associated virus according to the present invention can be carried out under normal conditions for cell culture.
  • the medium and culture conditions to be used can be appropriately selected by those skilled in the art.
  • Media include Expi29 Expression Medium (Thermo Fisher Scientific, A1435101), Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) containing 10% (vol/vol) fetal bovine serum (FBS), serum-free UltraCULTURETM medium (Lonza), etc. can be used, but is not particularly limited.
  • the culture temperature is generally 25°C to 45°C, preferably 30°C to 42°C, more preferably 35°C to 40°C, and an example is 37°C.
  • the CO 2 concentration is generally 3-10% CO 2 , preferably 5-10% CO 2 , an example being 8% CO 2 .
  • Cells can be cultured in any volume of medium, for example, cells can be cultured in 1 mL to 2000 L of medium, preferably 1 L to 2000 L, more preferably 50 L to 2000 L, 500 L to 2000 L. Especially preferred. Cultivation may be performed with shaking and agitation.
  • the stirring speed for shaking and stirring is generally 50 to 200 rpm, preferably 80 to 150 rpm.
  • the agitation culture may be rotation agitation culture using a propeller or the like in a reactor.
  • the stirring speed for rotary stirring is generally 50 to 200 rpm, preferably 80 to 150 rpm.
  • stirring may be performed by wave-shaped shaking stirring or vertical movement of a stirring blade, but there is no particular limitation.
  • the culture time in each step is not particularly limited, but is generally 6 hours to 14 days, preferably 12 hours to 7 days, more preferably 24 hours to 144 hours, still more preferably 24 hours. ⁇ 96 hours.
  • the titer of adeno-associated virus produced can be measured by conventional methods known to those skilled in the art. For example, the cell culture solution after culturing is collected, the cells are disrupted by freezing and thawing, and then the supernatant is collected by centrifugation. gDNA (genomic DNA) and residual plasmids can be digested by adding MgCl 2 and benzonase to the recovered supernatant and performing a reaction.
  • the adeno-associated virus-containing sample obtained above can be used as a ddPCR (Droplet Digital PCR) sample, and the AAV titer can be measured by performing ddPCR.
  • ddPCR Droplet Digital PCR
  • a first aspect of the cell of the present invention is a cell having at least the E4ORF6 gene expressed by an exogenous promoter, the expression unit comprising an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, an E4ORF6 gene and a polyA signal sequence.
  • the expression unit comprising an enhancer, a cytomegalovirus-derived promoter, a Kozak sequence, an E4ORF6 gene and a polyA signal sequence.
  • the E4ORF6 gene expressed by an exogenous promoter is preferably introduced into the cells by an expression vector that satisfies any one or more of the following (a) to (e).
  • the exogenous promoter is a promoter with weaker transcriptional activity than the cytomegalovirus-derived promoter;
  • the Kozak sequence of the E4ORF6 gene is a modified Kozak sequence or has no Kozak sequence;
  • the enhancer sequence is a modified enhancer sequence or has no enhancer sequence;
  • the poly A signal sequence is a modified poly A signal sequence or has no poly A signal sequence; (e) using the IRES sequence to express the E4ORF6 gene:
  • a second aspect of the cell of the present invention is a cell having at least the E4ORF6 gene expressed by an exogenous promoter, which is selected from Rep gene, Cap gene, E2A gene, VA-RNA gene, and desired therapeutic or preventive gene.
  • an exogenous promoter which is selected from Rep gene, Cap gene, E2A gene, VA-RNA gene, and desired therapeutic or preventive gene.
  • the cells of the invention may further have the E2A gene and the VA-RNA gene.
  • Cells of the present invention may further have a Rep gene.
  • the cells of the present invention may further have a Cap gene and/or a desired therapeutic or prophylactic gene.
  • the cells are preferably eukaryotic cells, such as mammalian cells or insect cells.
  • Cells are more preferably mammalian cells.
  • mammalian cells include, but are not limited to, human cells, mouse cells, rat cells, monkey cells, hamster cells, and the like.
  • Preferably human cells can be used.
  • examples of cells include mouse myeloma (NSO) cell line, Chinese hamster ovary (CHO) cell line, HT1080, H9, HepG2, MCF7, MDBK Jurkat, NIH3T3, PC12, BHK (baby hamster kidney cells), VERO, SP2.
  • NSO mouse myeloma
  • CHO Chinese hamster ovary
  • the cells are HEK293 cells, CHO cells, more preferably HEK293 cells.
  • the cells of the present invention have at least the E4ORF6 gene expressed by an exogenous promoter.
  • it has a vector containing the above E4ORF6 gene on its chromosome. Having in the chromosome means that the vector is fully or partly integrated into the chromosome.
  • the vector containing the E4ORF6 gene should be introduced so that it can be expressed, but it is more preferable to have permanent expression.
  • Permanent expression means that the vector containing the E4ORF6 gene is also replicated when the cell divides, and the cell after division also carries the vector. Permanent expression can be achieved by integrating the vector into the chromosome of the cell or by using a vector that has the ability to replicate in the cytoplasm.
  • a vector containing the E4ORF6 gene can be introduced into cells by methods such as transfection, transduction, and lipofection.
  • Transfection involves crossing the membrane of a eukaryotic cell by chemical means (eg calcium phosphate mediated precipitation), mechanical means (eg electroporation) or physical means (eg bioballistic delivery). to introduce nucleic acids into cells.
  • Transduction refers to the introduction of nucleic acids into cells across the membrane of eukaryotic cells via viral vectors.
  • Lipofection refers to the formation of a complex between a vector and a positively charged lipid or the like through electrical interaction, and introduction of a nucleic acid into a cell through endocytosis or membrane fusion.
  • AAVpro registered trademark
  • AAV5 Helper Free System
  • SEQ ID NOs: 1 to 7 The sequences of Seq14-Seq16 are shown in SEQ ID NOs: 14-16 in the Sequence Listing.
  • Plasmid seq4 (CMV-E4ORF6): A plasmid in which the CMV-E4ORF6 gene sequence was synthesized and inserted into the EcoRV site of the pUC57 vector (GENEWIZ) seq5 (E4): A plasmid (GENEWIZ) in which the E4 region sequence was synthesized and inserted into the EcoRV site of the pUC57 vector seq6 (CAG-E4ORF6): Plasmid seq7 (CMV-E4ORF6 ⁇ Enhancer ⁇ PolyA) in which the E4ORF6 gene sequence was inserted downstream of the CAG promoter: Plasmid seq14 (TET-RFP-IRES-E4ORF6) in which the Enhancer sequence and PolyA signal sequence were removed from Seq4: E4ORF6 gene Plasmid seq15 (TET-RFP-IRES-E4ORF6 ⁇ PolyA) connected via IRES further downstream of the RFP (red fluorescent protein) gene under the expression-
  • ⁇ Real-time PCR> HEK cells cultured under conditions of 37° C. and 8% CO 2 for 72 hours after transfection were harvested by centrifugation at 300 ⁇ g. mRNA was purified using RNeasy Plus Mini Kit (Qiagen) and cDNA was generated by reverse transcription using High Capacity RNA to cDNA Kit. ⁇ cDNA ⁇ TaqMan Gene Expression Master Mix(Applied Biosystems) ⁇ E4ORF6 ⁇ (seq8 ⁇ seq9) ⁇ (seq10) ⁇ E4ORF6 ⁇ GAPDH(Thermo Fisher Scientific, Hs02786624_g1) ⁇ TaqMan Gene Expression Assay ⁇ Quantitative evaluation was made according to the normalization used. Seq8-Seq10 are shown in SEQ ID NOS:8-10 in the Sequence Listing.
  • ⁇ AAV titration> The HEK cell culture medium cultured under conditions of 37°C and 8% CO 2 for 72 hours after gene introduction was recovered, and the cells were disrupted by freezing and thawing at -80°C. After that, the supernatant was collected by centrifugation at 13,800 ⁇ g, 2 mmol/L MgCl 2 and 25 U/mL Benzonase were added to the final concentration, and the reaction was carried out at 37° C. for 2 hours to extract gDNA (genomic DNA) and residual plasmid. digested. After the reaction, the sample was incubated at 95° C. for 15 minutes, 70° C. for 3 minutes, 40° C. for 3 minutes, and 20° C.
  • ddPCR Droplet Digital PCR
  • the ddPCR sample was diluted 50-fold with a mixed solution of 0.05% Pluronic F-68 and 10 ⁇ g/mL calf thymus DNA in TE buffer (pH 8.0).
  • droplets were formed from the preparation in a droplet forming instrument (QX200 Droplet Generator, BIORAD) followed by 95°C for 10 min, 94°C for 30 sec and 55°C for 40 cycles, 98°C for 10 min. were incubated in order. Measurements were performed with a droplet reader (QX200 Droplet Reader, BIO RAD) and AAV genome titers (vg/mL) were calculated.
  • QX200 Droplet Generator BIORAD
  • AAV genome titers vg/mL
  • ⁇ Cytotoxicity evaluation> The toxicity of the gene-introduced cells was evaluated by trypan blue staining 72 hours after the gene introduction, and the percentage of damaged cells (%) was calculated from the count of staining-positive cells.
  • E4ORF6 expression level and E4ORF6 gene introduction ratio is 1:1 is taken as the reference (1).
  • E4ORF6 gene introduction ratio 0.02:1.90 E4ORF6 transfection ratio 0.004:1.88 E4 gene: 0.924 E4 non-introduction: 0.179
  • FIG. 7 A diagram of the E4ORF6 plasmid with altered expression control sequence is shown in FIG. 7. Genes were introduced into HEK293 cells in the following combinations, and the E4ORF6 expression level was quantitatively evaluated 72 hours later. The results are shown in FIG. 7, and the results of AAV titer measurement by ddPCR are shown in FIG.
  • E4ORF6 expression level The case of CMV-E4ORF6 is used as reference (1).
  • TET-RFP-IRES-E4ORF6 and TET-RFP-IRES-E4ORF6 ⁇ PolyA were introduced into HEK cells, and stable expression cells in which the plasmids were integrated were produced by treatment with G418 drug.
  • Rep, Cap, E2, and VA-RNA genes were introduced into stably expressing cells, and the results of measuring the AAV production titer are shown in FIG.

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Abstract

本発明は、アデノ随伴ウイルスの産生量を向上させることができる、アデノ随伴ウイルスの製造方法を提供すること、並びに上記したアデノ随伴ウイルスの製造方法において使用するための細胞および発現ベクターを提供することを課題とする。本発明によれば、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を外来プロモーターによって発現させることを含むアデノ随伴ウイルスの製造方法であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、アデノ随伴ウイルスの製造方法が提供される。

Description

アデノ随伴ウイルスの製造方法、細胞および発現ベクター
　本発明は、アデノ随伴ウイルスの製造方法に関する。さらに本発明は、上記したアデノ随伴ウイルスの製造方法において使用するための細胞および発現ベクターに関する。
　アデノ随伴ウイルス（ａｄｅｎｏ－ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｖｉｒｕｓ：ＡＡＶともいう）は、パルボウイルス科に属する直鎖一本鎖ＤＮＡウイルスである。野生型ＡＡＶゲノムは、複製の調節遺伝子（Ｒｅｐ遺伝子）とカプシドの構造遺伝子（Ｃａｐ遺伝子）を含み、ウイルスの複製とパッケージングのために逆方向末端反復配列（ＩＴＲ）が隣接している。ＡＡＶベクターは増殖又は非増殖のいずれの細胞にも遺伝子導入が可能であり、特に非分裂細胞においては長期間の発現が可能である。また、ＡＡＶは、非病原性であると考えられており、免疫原性が低い。上記のことから、ＡＡＶベクターは、遺伝子治療用ベクターとして臨床応用が進んでいる。
　ＡＡＶは、アデノウイルスやヘルペスウイルスなどのヘルパーウイルスの存在下で増殖する非エンベロープウイルスである。遺伝子治療もしくは核酸導入に用いるＡＡＶを作製する際には、古典的にはアデノウイルスを宿主細胞に共感染させて、ＡＡＶ複製が行なわれていた。また、アデノウイルスのヘルパー作用を担う遺伝子が明らかにされ、この遺伝子を搭載したプラスミドも使用されている。例えば、Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むプラスミド、アデノウイルスヘルパープラスミド、および導入遺伝子を含むプラスミドを同時にＨＥＫ２９３細胞にトランスフェクションすることで組換え型ＡＡＶ（ｒＡＡＶ）へとパッケージングすることができる。
　特許文献１には、（ａ）ＡＡＶのＲＥＰタンパク質をコードする塩基配列、（ｂ）ＡＡＶのカプシドの構造タンパク質をコードする塩基配列、（ｃ）第一のＡＡＶの逆方向末端反復（ＩＴＲ）を含む塩基配列、（ｄ）第二のＡＡＶの逆方向末端反復（ＩＴＲ）を含む塩基配列、（ｅ）第一のＩＴＲと第二のＩＴＲとの間に位置する、外来のタンパク質をコードする塩基配列を挿入するための塩基配列又は／及び外来のタンパク質をコードする塩基配列、（ｆ）アデノウイルスのＥ２Ａ領域を含む塩基配列、（ｇ）アデノウイルスのＥ４領域を含む塩基配列，及び（ｈ）アデノウイルスのＶＡ－ＲＮＡ領域を含む塩基配列を含む核酸分子が記載されている。
　特許文献２には、少なくとも４つの別個の組換え標的部位（ＲＴＳ）と、Ｅ１Ａ、Ｅ１Ｂ又はそれらの組み合わせを含むアデノウイルス（Ａｄ）遺伝子と、Ａｄ遺伝子に作動可能に連結されるプロモーターとを含み、ＲＴＳ、Ａｄ遺伝子及びプロモーターが染色体に組み込まれている哺乳動物細胞、組換えアデノ随伴ウイルス（ｒＡＡＶ）プロデューサー宿主細胞を生成するために上記細胞を使用する方法、並びにＡＡＶプロデューサー宿主細胞を使用してｒＡＡＶを生産、パッケージング及び精製する方法が記載されている。
　特許文献３には、ヘルパープラスミドおよびベクタープラスミドを含む２プラスミド系であって、ヘルパープラスミドは、少なくとも１つの機能的Ｒｅｐタンパク質をコードする少なくとも１つのＲｅｐ遺伝子を含み、Ｃａｐタンパク質の機能的セットをコードするＣａｐ遺伝子を含まない、２プラスミド系が記載されている。
　特許文献４には、（ｉ）アデノウイルスＥ２、Ｅ４ＯＲＦ６、およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含むヘルパープラスミドを含むアクセサリー構築物、（ｉｉ）１以上の調節配列に作動可能に連結されたＡＡＶＲｅｐおよびＡＡＶＣａｐを含むトランスプラスミドを含むＡＡＶヘルパー構築物、及び（ｉｉｉ）１以上の調節配列に作動可能に連結された目的の異種遺伝子に隣接するＡＡＶ逆方向末端反復配列を含むプラスミド（ｐＣｉｓ）を含むＡＡＶベクターを含むトランスフェクション培地中で細胞をインキュベートすることを含む、哺乳動物宿主細胞において組換えＡＡＶビリオンを産生するインビトロ法が記載されている。
特開２０２０－１８８７６３号公報 特表２０２０－５０７３３１号公報 国際公開ＷＯ２０２０／２０８３７９号公報 米国特許公開ＵＳ２０１６／０２２２３５６号公報
　上記した先行技術においては、ヘルパープラスミド中にＥ４遺伝子領域がコードされているが、Ｅ４遺伝子の発現量の最適化は検討されていない。本発明は、アデノ随伴ウイルスの産生量を向上させることができる、アデノ随伴ウイルスの製造方法を提供することを課題とする。本発明はさらに、上記したアデノ随伴ウイルスの製造方法において使用するための細胞および発現ベクターを提供することを課題とする。
　本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、アデノ随伴ウイルスの産生に必要な遺伝子であるＥ４ＯＲＦ６の発現量を低下させることによって、またはＥ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量を低下させることによって、アデノ随伴ウイルスの産生量を向上できることを見出した。本発明は、上記知見に基づいて完成したものである。
　本発明によれば、以下の発明が提供される。
＜１＞　Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を外来プロモーターによって発現させることを含むアデノ随伴ウイルスの製造方法であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、アデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜２＞　Ｅ４ＯＲＦ６の発現の低下が、Ｅ４ＯＲＦ６のｍＲＮＡ発現の低下及び／又はＥ４ＯＲＦ６のタンパク質発現の低下である、＜１＞に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜３＞　エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡ配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現の量が１／２以下に低下している、＜１＞又は＜２＞に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜４＞　以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上によりＥ４ＯＲＦ６の発現が低下している、＜１＞から＜３＞の何れか一に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
（ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
（ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を使用しない；
（ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を使用しない；
（ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を使用しない；
（ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
＜５＞　Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量が１／２以下である、＜１＞から＜４＞の何れか一に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜６＞　少なくともＥ４ＯＲＦ６遺伝子を含むＥ４領域を細胞に導入することを含む、アデノ随伴ウイルスの製造方法であって、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量が１／２以下である、アデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜７＞　Ｅ４領域の細胞への導入量が、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量の１／１０以下である、＜６＞に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜８＞　Ｅ４領域と、Ｅ２Ａ遺伝子及びＶＡ－ＲＮＡ遺伝子とが、異なるプラスミドベクターにより細胞に導入される、＜６＞又は＜７＞に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜９＞　Ｅ４領域がＥ４ＯＲＦ６遺伝子のみからなる、＜６＞から＜８＞の何れか一に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜９Ａ＞　Ｅ４領域が発現調節可能なプロモーターの下流に存在する、＜６＞から＜９＞の何れか一に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。 
＜９Ｂ＞　Ｅ４領域がＥ４ＯＲＦ遺伝子のみからなり、ポリＡシグナル配列を含まない、＜６＞から＜９＞及び＜９Ａ＞の何れか一に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
＜１０＞　外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有する細胞であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、細胞。
＜１１＞　外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子が、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上を満たす発現ベクターにより細胞に導入されている、＜１０＞に記載の細胞。
（ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
（ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を有さない；
（ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を有さない；
（ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を有さない；
（ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
＜１２＞　外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有する細胞であって、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量よりも、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量の方が少ない、細胞。
＜１３＞　さらに、Ｅ２Ａ遺伝子及びＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を有する、＜１０＞～＜１２＞の何れか一に記載の細胞。
＜１４＞　さらに、Ｒｅｐ遺伝子を有する、＜１０＞～＜１３＞の何れか一に記載の細胞。
＜１５＞　さらにＣａｐ遺伝子、及び/又は所望の治療又は予防用遺伝子を有する、＜１０＞～＜１４＞の何れか一に記載の細胞。
＜１６＞　外来プロモーターに連結されたＥ４ＯＲＦ６を含む発現ベクターであって、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上を満たす発現ベクター。
（ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
（ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を有さない；
（ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を有さない；
（ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を有さない；
（ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法、細胞および発現ベクターによれば、アデノ随伴ウイルスの産生量を向上させることができる。
図１は、Ｅ４ＯＲＦ６発現量の測定結果を示す。 図２は、ＡＡＶゲノム力価の測定結果を示す。 図３は、細胞障害性の測定結果を示す。 図４は、Ｅ４ＯＲＦ６発現量の測定結果を示す。 図５は、ＡＡＶゲノム力価の測定結果を示す。 図６は、プラスミドの構成を示す。 図７は、Ｅ４ＯＲＦ６発現量の測定結果を示す。 図８は、ＡＡＶゲノム力価の測定結果を示す。 図９は、増殖した細胞数の測定結果を示す。 図１０は、ＡＡＶゲノム力価の測定結果を示す。
　以下、本開示の実施形態の一例について説明する。但し、本開示は、以下の実施形態に何ら限定されるものではなく、本開示の目的の範囲内において、適宜、変更を加えて実施することができる。本明細書において「～」を用いて示された数値範囲は、「～」の前後に記載される数値をそれぞれ最小値及び最大値として含む範囲を意味する。
＜用語の説明＞
　プロモーターとは、ＲＮＡポリメラーゼを結合させることができ、下流のコード配列又は非コード配列の転写開始に関与するＤＮＡ制御領域／配列を意味する。
　ベクターとは、外来遺伝子を別の細胞に人為的に運ぶために利用されるＤＮＡまたはＲＮＡ分子である。遺伝子を発現するためのベクターを発現ベクターという。導入したい外来遺伝子を含むベクターが細胞内に導入されると、細胞内において外来遺伝子の複製及び／又は発現が行われる。ベクターとしては、エピソーム性（例えばプラスミド）ベクター、及び非エピソーム性ベクターが挙げられる。ベクターは、トランスフェクション、トランスダクション、細胞融合及びリポフェクションなどの方法により、宿主細胞に導入することができる。
　搭載とは、染色体や核酸配列に他の核酸配列が組み込まれることを意味する。
　遺伝子は、ポリペプチドをコードするヌクレオチドを意味し、例えば、ｃＤＮＡやゲノムＤＮＡといった核酸分子が挙げられる。
　本発明において、Ｋｏｚａｋ配列とは、Ｅ４ＯＲＦ６の開始コドン（ＡＴＧ）の前の配列を意味し、ＧＣＣＡＣＣである。
　本発明において、ＩＲＥＳ配列とは、ｉｎｔｅｒｎａｌ　ｒｉｂｏｓｏｍｅ　ｅｎｔｒｙ　ｓｉｔｅ　のことである。ｍＲＮＡ　の５’側のｃａｐ構造なしにリボソームに認識されて翻訳を開始する機能をもつ配列であれば、限定されない。好ましくはｓｅｑ１６に開示されている配列と９０％以上の同一性を持つ配列である。より好ましくは、ｓｅｑ１６に開示されている配列と９５％以上の同一性を持つ配列であり、最も好ましくは、ｓｅｑ１６と同一の配列である。
＜アデノ随伴ウイルスの製造方法＞
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法の第一の態様は、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を外来プロモーターによって発現させることを含むアデノ随伴ウイルスの製造方法であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、アデノ随伴ウイルスの製造方法である。
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法の第二の態様は、少なくともＥ４ＯＲＦ６遺伝子を含むＥ４領域を細胞に導入することを含む、アデノ随伴ウイルスの製造方法であって、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量が１／２以下である、アデノ随伴ウイルスの製造方法である。
　上記の通り、本発明においては、アデノ随伴ウイルス産生に必要な遺伝子であるＥ４ＯＲＦ６の発現量を低下させることにより、アデノ随伴ウイルスを高い量で生産することができる。また、本発明においては、Ｅ４ＯＲＦ６による細胞障害を低下させ、遺伝子導入後の細胞生存率を高めることが可能である。さらに本発明の第二の態様においては、プラスミドの導入比率が低下するので、コストを低下することができる。
　本発明においては、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を外来プロモーターによって発現させる。
　外来プロモーターとは、野生型が含まないプロモーターのことを意味し、Ｅ４遺伝子の場合は、野生型アデノのＥ４領域に含まれないプロモーターを意味する。Ｅ４ＯＲＦ６遺伝を発現するための外来プロモーターとしては、サイトメガロウイルス由来プロモーター（ＣＭＶプロモーター）を使用してもよいし、またはＣＭＶプロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターを使用してもよい。ＣＭＶプロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターについては後記する。
　エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合とは、当業者であれば、強くＥ４ＯＲＦ６を発現させたことを意味することは理解できる。一態様においては、ｓｅｑ４でＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合を意味する。即ち、本発明における「エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している」とは、好ましくは、後記する実施例のｓｅｑ４（配列番号４の塩基配列を有するプラスミド）を用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下していることを意味する。また、本発明においては、５’Ｃａｐ構造を介してＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる方法よりも、５’Ｃａｐ構造を介さずにＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる方法（例えば、ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる方法）が好ましい。
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法の第一の態様においては、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現は低下していればよいが、好ましくは１／２以下、より好ましくは１／４以下、より好ましくは１／１０以下、より好ましくは１／５０以下、より好ましくは１／２５０以下、より好ましくは１／１２５０以下に低下している。
　Ｅ４ＯＲＦ６の発現の低下は、Ｅ４ＯＲＦ６のｍＲＮＡ発現の低下及び／又はＥ４ＯＲＦ６のタンパク質発現の低下である。
　Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のｍＲＮＡ発現量としては、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、１／２以下であることが好ましく、１／４以下であることがより好ましく、１／１０以下であることがより好ましく、１／５０であることがより好ましく、１／２５０以下であることがより好ましく、１／１２５０以下であることがより好ましい。
　Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子により発現されるタンパク質の発現量としては、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、１／２以下であることが好ましく、１／４以下であることがより好ましく、１／１０以下であることがより好ましく、１／５０であることがより好ましく、１／２５０以下であることがより好ましく、１／１２５０以下であることがより好ましい。
　Ｅ４ＯＲＦ６の発現を低下させる手段は、好ましくは、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上である。本発明によれば、外来プロモーターに連結されたＥ４ＯＲＦ６を含む発現ベクターであって、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上を満たす発現ベクターが提供される。
（ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
（ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を使用しない；
（ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を使用しない；
（ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を使用しない；
（ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
　サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターとしては、ＥＦ１αプロモーター、ＣＡＧプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＲＳＶプロモーターなどが挙げられる。
　Ｋｏｚａｋ配列の改変方法としては、配列に変異を導入する方法、配列の除去による活性を低下させる方法が挙げられる。
　エンハンサー配列の改変方法としては、配列に変異を導入する方法、配列の除去による活性を低下させる方法が挙げられる。
　ポリＡシグナル配列の改変方法としては、配列に変異を導入する方法、配列の除去による活性を低下させる方法が挙げられる。
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法においては、Ｅ４領域の細胞への導入量が、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量の、好ましくは１／２以下であり、より好ましくは１／４以下、より好ましくは１／１０以下、より好ましくは１／５０以下、より好ましくは１／２５０以下、より好ましくは１／１２５０以下である。
　本発明においては、Ｅ４領域と、Ｅ２Ａ遺伝子及びＶＡ－ＲＮＡ遺伝子とは、同一のプラスミドベクターにより細胞に導入してもよいし、異なるプラスミドベクターにより細胞に導入してもよい。
　本発明においては、Ｅ４領域は、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子と、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子以外の遺伝子とを含むもの、またはＥ４ＯＲＦ６遺伝子のみからなるもののいずれでもよい。好ましくは、Ｅ４領域はＥ４ＯＲＦ６遺伝子のみからなるものである。好ましくは、Ｅ４領域がＥ４ＯＲＦ遺伝子のみからなり、ポリＡシグナル配列を含まない。また、Ｅ４領域は発現調節可能なプロモーターの下流に存在することが好ましい。
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法においては、ウイルスヘルパー遺伝子を細胞に導入する。
　ウイルスヘルパー遺伝子は、プロモーターの制御下にあることが好ましく、発現調節可能なプロモーターの制御下にあってもよい。
　発現調節可能なプロモーターとしては、刺激の有無により発現のオンとオフを調節できるプロモーターを使用することができる。刺激としては、化学的刺激(内在性ホルモン・ストレス応答、ラクトース、テトラサイクリン又はその誘導体（例えば、ドキシサイクリン）、クミン酸、タンパク質（ラパマイシン、ＦＫＣｓＡ、アブシシン酸（ＡＢＡ）など）、タモキシフェン／Ｃｒｅ－ｌｏｘＰ（タモキシフェンにより活性化を誘導できるように改変したＣｒｅプロモーターを使用する系）、リボスイッチ)、物理的刺激(青色光、熱)などを挙げることができるが、特に限定されない。
　発現調節可能なプロモーターは、薬剤により発現調節可能なプロモーターでもよい。薬剤としては、好ましくはテトラサイクリン又はその誘導体（例えば、ドキシサイクリン）である。
　発現調節可能なプロモーターとしては、テトラサイクリン応答性プロモーター、ＲＵ４８６誘導性プロモーター、エクジソン誘導性プロモーター、ラパマイシン誘導性プロモーター、及びメタロチオネインプロモーターなどが挙げられる。具体的なテトラサイクリン応答性プロモーターには、Ｔｅｔオン／オフシステム（ＴＥＴ ｓｙｓｔｅｍｓ社製）が挙げられる。
　発現調節可能なプロモーターは、テトラサイクリンにより発現調節可能なプロモーターであるＴｅｔオン／オフシステムでもよく、Ｔｅｔオンシステムでもよい。
　Ｔｅｔオンシステムにおいては、プロモーターは、少なくとも一つのＴｅｔオペロンを付加的に含む。Ｔｅｔオペロン（テトラサイクリン制御転写活性化）を使用することにより、抗生物質であるテトラサイクリン又はその誘導体のうちの一つ（例えば、ドキシサイクリン）の存在下において転写のオン又はオフを可逆的に切り替えることができる。細胞内に存在するＴｅｔリプレッサータンパク質は、プロモーターへと導入されるＴｅｔ　ｏｐｅｒａｔｏｒ配列に結合することによって発現を遮断する。したがって、ＴｅｔリプレッサーがＴｅｔ　ｏｐｅｒａｔｏｒ配列と結合している場合には、遺伝子発現は見られない。テトラサイクリン又はドキシサイクリンを添加すると、Ｔｅｔリプレッサーは隔離されてプロモーター活性を可能とし、遺伝子発現がオンにされる。Ｔｅｔオペロン系は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅから入手可能なｐｃＤＮＡ（商標）４／ＴＯ哺乳動物発現ベクターにおいて使用されるＴｅｔオペロンなど、広く入手可能である。
　Ｔｅｔオンシステムにおいて、Ｔｅｔ　ｏｐｅｒａｔｏｒ配列は、発現を調節したいプロモーターの上流にあっても下流にあってもよい。発現をオフにしたときの発現漏れを減らすという点において、Ｔｅｔ　ｏｐｅｒａｔｏｒ配列は、発現調節可能なプロモーターの下流にあることが好ましい。
　プロモーターの具体例としては、特に限定されないが、サイトメガロウイルス由来プロモーター（ＣＭＶプロモーター）（所望によりエンハンサーを含む）、ＳＶ４０初期プロモーター、ヒト伸長因子－１α（ＥＦ－１α）プロモーター、ヒトユビキチンＣプロモーター、レトロウイルスのラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）ＬＴＲプロモーター、ジヒドロ葉酸還元酵素プロモーター、β－アクチンプロモーター、及びホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーターなどを挙げることができる。
　ウイルスヘルパー遺伝子とは、アデノ随伴ウイルスの複製及びパッケージングを可能にするための非アデノ随伴ウイルス遺伝子である。ウイルスヘルパー遺伝子としては、アデノ随伴ウイルス以外の他種ウイルスに由来する遺伝子が使用される。ウイルスヘルパー遺伝子の具体例としては、アデノウイルス又はヘルペスウイルスに由来するウイルスヘルパー遺伝子を挙げることができ、好ましくは、ウイルスヘルパー遺伝子は、アデノウイルス由来である。
　アデノウイルスとは、アデノウイルス科のファミリーの、二本鎖ＤＮＡを含む二十面体ヌクレオカプシドを有する非エンベロープ型ウイルスを指す。５０超のアデノウイルスのサブタイプがヒトから単離され、多くの更なるサブタイプが他の哺乳動物及び鳥類から単離されている。これらのサブタイプは、アデノウイルス科のファミリーに属し、２つの属（すなわちマストアデノウイルス属及びアビアデノウイルス属）に分類されている。これらのアデノウイルスは、形態学的及び構造的に類似している。しかしながら、ヒトにおいて、アデノウイルスは、異なる免疫学的特性を示し、すなわち血清型に分類される。アデノウイルスの２つのヒト血清型（すなわちＡｄ２及びＡｄ５）が重点的に研究されている。
　アデノウイルス由来のウイルスヘルパー遺伝子は、アデノ随伴ウイルスの複製及びパッケージングに関与する遺伝子である。
　アデノウイルス由来のウイルスヘルパー遺伝子としては、Ｅ１Ａ、Ｅ１Ｂ、Ｅ２Ａ、Ｅ４、及びＶＡ－ＲＮＡなどを挙げることができる。Ｅ１領域の全部又はその一部を有する宿主細胞において、ＡＡＶのゲノムが複製されてカプシドにパッケージングされて、ウイルスビリオンを形成するために必要なアデノウイルスゲノムの領域は、Ｅ２Ａ領域、Ｅ４領域、及びＶＡ－ＲＮＡ領域である。Ｅ４領域による機能について、Ｅ４領域のオープンリーディングフレーム６（Ｅ４ＯＲＦ６）によりコードされるＥ４　３４ｋＤａ蛋白質がＡＡＶの複製に必要とされる。好ましくは、ウイルスヘルパー遺伝子は、Ｅ２遺伝子、Ｅ４遺伝子（Ｅ４ＯＲＦ６）、およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子である。ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子は、好ましくは、ＶＡ－ＲＮＡＩ遺伝子である。
　アデノウイルス由来のウイルスヘルパー遺伝子（Ｅ１Ａ、Ｅ１Ｂ、Ｅ２Ａ、Ｅ４、及びＶＡ－ＲＮＡなど）は、野生型の遺伝子でもよいが、本来有する機能を発揮するものである限り，野生型の遺伝子に、塩基の置換、欠失、挿入または付加等の改変がなされた遺伝子を使用してもよい。
　野生型のウイルスヘルパー遺伝子に、塩基の置換、欠失、挿入または付加等の改変を行う場合、改変される塩基の個数は，好ましくは１～２０個，より好ましくは１～１０個，更に好ましくは１～３個である。改変を加えたウイルスヘルパー遺伝子の塩基配列は，野生型のウイルスヘルパー遺伝子の塩基配列と，好ましくは８５％以上の配列同一性を示し，より好ましくは９０％以上の配列同一性を示し，更に好ましくは，９５％以上の配列同一性を示し，更により好ましくは９８％以上の配列同一性を示す。
　ウイルスヘルパー遺伝子を細胞に導入する場合、ウイルスヘルパー遺伝子を含むベクターを細胞に導入することができる。
　ウイルスヘルパー遺伝子を含むベクターとしては、例えば、プラスミド、ウイルス由来の配列、人工的に設計した核酸などを使用することができ、好ましくは、プラスミドである。
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法においては、アデノ随伴ウイルス遺伝子を細胞に導入する。
　アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）は、パルボウイルス科及びディペンドパルボウイルス属のファミリーの、一本鎖ＤＮＡを含む、小型の、複製能の不完全な、非エンベロープ型ウイルスを指す。ＡＡＶには１００を超える血清型が存在しており、血清型の違いによって宿主域やウイルスの持つ特徴が異なることが知られている。血清型２（ＡＡＶ２）は古くから広く研究されてきた血清型の一つであり、宿主域が非常に広いことが知られている。血清型１（ＡＡＶ１）、血清型５（ＡＡＶ５）、血清型６（ＡＡＶ６）は、より高い組織指向性を持った血清型である。ＡＡＶ１は筋肉、肝臓、気道、中枢神経系等、ＡＡＶ５は中枢神経系、肝臓、網膜等、ＡＡＶ６は心臓、筋肉、肝臓等への遺伝子導入効率が高いと言われている。本発明は血清型２または血清型５で用いることが好ましい。特に好ましくは血清型５である。
　アデノ随伴ウイルス遺伝子とは、一つ又は複数のアデノ随伴ウイルスの血清型に由来する一つ又は複数の核酸配列から構成される遺伝子を指す。アデノ随伴ウイルス遺伝子は、好ましくは、ＡＡＶの複製及びパッケージングに関与する遺伝子、及びＡＡＶ構成タンパク質をコードする遺伝子である。
　好ましくは、アデノ随伴ウイルス遺伝子としては、Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を使用する。Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子は、ビリオンの複製とパッケージングに関与するタンパク質をコードしている。Ｒｅｐ遺伝子は野生型では、Ｐ５プロモーターおよびｐ１９プロモーターから発現される。Ｃａｐ領域は、ＶＰ１、ＶＰ２、およびＶＰ３を発現させる。Ｃａｐ遺伝子が天然に保持するプロモーターとしてはｐ４０プロモーターを挙げることができる。
　アデノ随伴ウイルス遺伝子（Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子など）は、野生型の遺伝子でもよいが、本来有する機能を発揮するものである限り、野生型の遺伝子に、塩基の置換、欠失、挿入または付加等の改変がなされた遺伝子を使用してもよい。
　野生型のアデノ随伴ウイルス遺伝子（Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子など）に、塩基の置換、欠失、挿入または付加等の改変を行う場合、改変される塩基の個数は、好ましくは１～２０個、より好ましくは１～１０個、更に好ましくは１～３個である。改変を加えたアデノ随伴ウイルス遺伝子の塩基配列は、野生型のアデノ随伴ウイルス遺伝子の塩基配列と、好ましくは８５％以上の配列同一性を示し、より好ましくは９０％以上の配列同一性を示し、更に好ましくは、９５％以上の配列同一性を示し、更により好ましくは９８％以上の配列同一性を示す。
　Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を細胞に導入する場合、Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むベクターを細胞に導入することができる。ベクターにおけるＲｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子の配置は特に限定されず、Ｒｅｐ遺伝子は、Ｃａｐ遺伝子の上流に位置してもよいし、Ｃａｐ遺伝子の下流に位置してもよいが、好ましくは、Ｒｅｐ遺伝子は、Ｃａｐ遺伝子の上流に位置する。
　Ｒｅｐ遺伝子は、当業者に公知の、ウイルスゲノムの複製に集合的に必要とされるウイルスの複製タンパク質、又は、例えばヒトヘルペスウイルス６（ＨＨＶ－６）Ｒｅｐ遺伝子など（ＡＡＶ－２ ＤＮＡ複製を媒介することが公知）の、その機能的ホモログをコードするＡＡＶゲノムの領域を意味する。したがって、Ｒｅｐ遺伝子のコード領域は少なくとも、ＡＡＶのＲＥＰ７８及びＲＥＰ６８（「長い形態のＲＥＰタンパク質」）並びにＲＥＰ５２及びＲＥＰ４０（「短い形態のＲＥＰタンパク質」）をコードする遺伝子又はその機能的ホモログを含む。本発明で用いられるＲｅｐ遺伝子のコード領域は、いかなるＡＡＶ血清型に由来するものでもよいが、ＡＡＶ２に由来するものが好ましい。ＡＡＶ２に由来するものとしては、ＲＥＰ７８及びＲＥＰ６８並びにＲＥＰ５２及びＲＥＰ４０、ＩＴＲが挙げられる。
　Ｃａｐ遺伝子は、当業者に公知のウイルスのカプシドタンパク質をコードするＡＡＶゲノム中の領域を意味する。これらのカプシドタンパク質の例は、ＡＡＶカプシドタンパク質ＶＰ１、ＶＰ２及びＶＰ３である。本発明において使用するＣａｐ遺伝子は、いかなるＡＡＶ血清型に由来するものでもよいが、ＡＡＶ２もしくはＡＡＶ５に由来するものが好ましい。特に好ましくはＡＡＶ５である。
　Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むベクターとしては、例えば、プラスミド、ウイルス由来の核酸配列、人工的に設計した核酸などを使用することができ、好ましくは、プラスミドである。
　本発明のアデノ随伴ウイルスの製造方法においては、治療又は予防用遺伝子を細胞に導入してもよい。
　治療又は予防用遺伝子としては、標的細胞のゲノムにおいては不完全であるか又は失われている遺伝子、または、所望の生物学的又は治療的効果（例えば抗ウイルス機能）を有する非天然タンパク質をコードする遺伝子などを使用することができるが、特に限定されない。治療又は予防用遺伝子の具体例としては、炎症性疾患、自己免疫、慢性及び伝染性疾患（ＡＩＤＳ、癌、神経系疾患、心血管疾患、過剰コレスタ血症などの障害を含む）、貧血及び血友病などの各種の血液疾患、遺伝子欠損（例えば嚢胞性線維形成、ゴーシェ疾患、アデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）欠損、気腫など）の治療又は予防のために使用される遺伝子が挙げられる。
　治療又は予防用遺伝子としては、がんに対する、及びウイルス疾患に対するアンチセンス療法において有用であるいくつかのアンチセンスオリゴヌクレオチド（例えばｍＲＮＡの翻訳開始部位（ＡＵＧコドン）周辺の配列に対する相補的短鎖オリゴヌクレオチド）でもよい。
　治療又は予防用遺伝子は、治療又は予防用遺伝子を発現させるためのプロモーターに連結されていてもよい。治療又は予防用遺伝子を発現させるためのプロモーターは特に限定されないが、サイトメガロウイルス由来のプロモーター（所望によりエンハンサーを含む）、ＳＶ４０初期プロモーター、ヒト伸長因子－１α（ＥＦ－１α）プロモーター、ヒトユビキチンＣプロモーター、レトロウイルスのラウス肉腫ウイルスＬＴＲプロモーター、ジヒドロ葉酸還元酵素プロモーター、β－アクチンプロモーター、及びホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーターなどを挙げることができる。治療又は予防用遺伝子および遺伝子を発現させるためのプロモーターはＩＴＲ配列に挟まれていることが好ましい。
　本発明におけるベクターの組み合わせの好ましい態様としては、以下の態様を挙げることができる。
（１）Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むベクター、Ｅ２Ａ遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含むベクター、Ｅ４遺伝子を含むベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用し、Ｅ４遺伝子を有するベクターの導入比率を小さくする態様：
（２）Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むベクター、Ｅ２Ａ遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含むベクター、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を含むベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用し、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を有するベクターの導入比率を小さくする態様：
（３）Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むベクター、Ｅ２Ａ遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含むベクター、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を含み、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の発現量を低下させたベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用する態様；
（４）Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むベクター、Ｅ２Ａ遺伝子、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含み、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の発現量を低下させたベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用する態様；
（５）Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含むベクター、Ｅ４遺伝子を含むベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用し、Ｅ４遺伝子を有するベクターの導入比率を小さくする態様：
（６）Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含むベクター、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を含み、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の発現量を低下させたベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用する態様；
（７）Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子および所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクター、並びにＥ４遺伝子を含むベクターを使用し、Ｅ４遺伝子を有するベクターの導入比率を小さくする態様：
（８）Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子および所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクター、並びにＥ４ＯＲＦ６遺伝子を含み、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の発現量を低下させたベクターを使用する態様：
（９）Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子およびＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を含み、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の発現量を低下させたベクター、並びに所望の治療又は予防用遺伝子を含むベクターを使用する態様；
（１０）Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子および所望の治療又は予防用遺伝子を含み、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の発現量を低下させたベクターを使用する態様。
　本発明によるアデノ随伴ウイルスの製造方法においては、ウイルスヘルパー遺伝子と、アデノ随伴ウイルス遺伝子と、必要な場合には、所望の治療又は予防用遺伝子を含む細胞を培養することによって、アデノ随伴ウイルスを製造することができる。
　アデノ随伴ウイルスの製造方法としては、ＴＴ（Ｔｒｉｐｌｅ　Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）法、パッケージングセル法、またはＰｒｏｄｕｃｅｒ　ｃｅｌｌ法のいずれでもよい。Ｅ４遺伝子の代わりにＥ４ＯＲＦ６を用いる場合には、特にＴＴ法が好ましい。
　ＴＴ法とは、Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を含むプラスミド、アデノウイルスヘルパープラスミド、および導入遺伝子（例えば、所望の治療又は予防用遺伝子）を含むプラスミドを同時にＨＥＫ２９３細胞にトランスフェクションすることで組換え型ＡＡＶ（ｒＡＡＶ）へとパッケージングする方法である。
　パッケージングセル法とは、ＴＴ法における一部遺伝子をあらかじめ染色体に組み込んだ細胞に対して、残りの遺伝子をトランスフェクションにより導入することで、ＡＡＶを産生する方法である。
　Ｐｒｏｄｕｃｅｒ　ｃｅｌｌ法とは、ＴＴ法における全遺伝子を染色体に組み込んだ細胞を用いて、トランスフェクション操作なしでＡＡＶを産生する方法である。
　本発明における特に好ましい態様としては、以下の態様を挙げることができる。
　Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を搭載したプラスミドと、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子およびＥ４ＯＲＦ６を搭載したプラスミドと、ＧＯＩ遺伝子を搭載したプラスミドとを遺伝子導入する工程を含み、上記Ｅ４ＯＲＦ６を搭載したプラスミドはＥ４ＯＲＦ６を発現させるためのｅｎｈａｎｃｅｒ及びＰｏｌｙＡシグナル配列を有さないことを含む、ＡＡＶ遺伝子の製造方法。
　Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を搭載したプラスミドと、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子およびＥ４ＯＲＦ６を搭載したプラスミドと、ＧＯＩ遺伝子を搭載したプラスミドとを遺伝子導入する工程を含み、上記Ｅ４ＯＲＦ６を搭載したプラスミドのＥ４ＯＲＦ６を発現させるプロモーターがＣＡＧプロモーターである、ＡＡＶ遺伝子の製造方法。
　本発明によるアデノ随伴ウイルスの製造方法における細胞の培養は、細胞の培養のための通常の条件において行うことができる。使用する培地、及び培養条件は、当業者であれば適宜選択することができる。培地としては、Ｅｘｐｉ２９　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉｕｍ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ａ１４３５１０１）、１０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を含有するダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、無血清ＵｌｔｒａＣＵＬＴＵＲＥ（商標）培地（Ｌｏｎｚａ）などを使用することができるが、特に限定されない。
　培養温度は、一般的には２５℃～４５℃であり、好ましくは３０℃～４２℃であり、より好ましくは３５℃～４０℃であり、一例としては３７℃である。
　ＣＯ２濃度は、一般的には３～１０％ＣＯ２であり、好ましくは５～１０％ＣＯ２であり、一例としては８％ＣＯ２である。
　細胞は、任意の体積の培地において培養することができ、例えば、１ｍＬから２０００Ｌの培地において細胞を培養することができ、好ましくは１Ｌ～２０００Ｌであり、５０Ｌ～２０００Ｌがより好ましく、５００Ｌ～２０００Ｌが特に好ましい。
　培養は振盪攪拌しながら行ってもよい。振盪攪拌する場合の攪拌速度は、一般的には５０ｒｐｍ～２００ｒｐｍであり、好ましくは８０～１５０ｒｐｍである。
　攪拌培養は、リアクター内のプロペラ等による回転攪拌培養であっても良い。回転攪拌する場合の攪拌速度は、一般的には５０ｒｐｍ～２００ｒｐｍであり、好ましくは８０～１５０ｒｐｍである。また、波型振盪撹拌や、撹拌翼の上下動によって撹拌してもよいが、特に限定されない。
　各工程における培養時間は、特に限定されないが、一般的には６時間～１４日間であり、好ましくは１２時間～７日間であり、より好ましくは２４時間～１４４時間であり、さらに好ましくは２４時間～９６時間である。
　製造されたアデノ随伴ウイルスの力価は、当業者に公知の通常の方法により測定することができる。例えば、培養後の細胞培養液を回収し、凍結融解にて細胞を破砕した後、遠心分離によって上清を回収する。回収した上清にＭｇＣｌ２及びＢｅｎｚｏｎａｓｅを添加して反応を行うことにより、ｇＤＮＡ（ゲノムＤＮＡ）や残存プラスミドを消化することができる。上記により得られたアデノ随伴ウイルスを含むサンプルを、ｄｄＰＣＲ（Ｄｒｏｐｌｅｔ　Ｄｉｇｉｔａｌ　ＰＣＲ）サンプルとして使用し、ｄｄＰＣＲを行うことによりＡＡＶの力価を測定することが可能である。
＜細胞＞
　本発明の細胞の第一の態様は、外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有する細胞であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、細胞である。
　本発明の細胞において、好ましくは、外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子は、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上を満たす発現ベクターにより細胞に導入されている。
（ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
（ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を有さない；
（ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を有さない；
（ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を有さない；
（ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
　本発明の細胞の第二の態様は、外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有する細胞であって、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量よりも、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量の方が少ない、細胞である。
　本発明の細胞は、さらに、Ｅ２Ａ遺伝子及びＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を有していてもよい。
　本発明の細胞は、さらに、Ｒｅｐ遺伝子を有していてもよい。
　本発明の細胞は、さらに、Ｃａｐ遺伝子、及び/又は所望の治療又は予防用遺伝子を有していてもよい。
　本発明の細胞における各構成要素の詳細は、本明細書中において上記した通りである。
　細胞は、好ましくは真核細胞であり、例えば、哺乳動物細胞または昆虫細胞である。細胞は、より好ましくは哺乳動物細胞である。哺乳動物細胞としては、例えば、ヒト細胞、マウス細胞、ラット細胞、サル細胞、ハムスター細胞などを挙げることができるが、特に限定されない。好ましくはヒト細胞を使用することができる。細胞の例としては、マウス骨髄腫（ＮＳＯ）細胞系、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞系、ＨＴ１０８０、Ｈ９、ＨｅｐＧ２、ＭＣＦ７、ＭＤＢＫ Ｊｕｒｋａｔ、ＮＩＨ３Ｔ３、ＰＣ１２、ＢＨＫ（乳児ハムスター腎臓細胞）、ＶＥＲＯ、ＳＰ２／０、ＹＢ２／０、Ｙ０、Ｃ１２７、Ｌ細胞、ＣＯＳ（例えばＣＯＳ１及びＣＯＳ７）、ＱＣ１－３、ＨＥＫ２９３（ヒト胎児由来腎臓細胞）、ＶＥＲＯ、ＰＥＲ．Ｃ６、ＨｅＬａ、ＥＢｌ、ＥＢ２、ＥＢ３、腫瘍溶解性又はハイブリドーマ細胞系が挙げられる。好ましくは、細胞はＨＥＫ２９３細胞、ＣＨＯ細胞であって、より好ましくは、ＨＥＫ２９３細胞である。
　本発明の細胞は、外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有している。好ましくは、上記のＥ４ＯＲＦ６遺伝子を含むベクターを染色体に有している。染色体中に有するとは、ベクターの全長もしくは一部が染色体に組み込まれていることを意味する。ベクターが染色体に組み込まれていることにより、アデノ随伴ウイルスの産生に必要な遺伝子は細胞内に恒常的に維持されることになり、アデノ随伴ウイルスを任意のタイミングで産生することが可能となる。
　Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を含むベクターは、発現されるように導入されていればよいが、永続的な発現となることがより好ましい。永続的な発現とは、細胞が分裂した場合に、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を含むベクターも複製され、分裂後の細胞もベクターを有することになることをいう。永続的な発現は、ベクターが細胞の染色体の中に組み込まれることや細胞質内で複製する能力をもつベクターを用いることによって行うことができる。
　Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を含むベクターは、トランスフェクション、トランスダクション、リポフェクションなどの方法により、細胞に導入することができる。
　トランスフェクションとは、化学的手段（例えば、リン酸カルシウム仲介沈殿）、機械的手段（例えば、エレクトロポレーション）または物理的手段（例えば、生体弾（ｂｉｏｂａｌｌｉｓｔｉｃ）による送達）によって真核細胞の膜を横断して核酸を細胞に導入することをいう。
　トランスダクションとは、ウイルス由来のベクターを介して、真核細胞の膜を横断して、核酸を細胞に導入することをいう。
　リポフェクションとは、電気的な相互作用によりベクターと陽性荷電脂質などとの複合体を形成させ、エンドサイトーシスや膜融合により、核酸を細胞に導入することをいう。
　以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
［材料及び方法］
＜細胞培養＞
　浮遊化ＨＥＫ２９３細胞（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，　Ｒ７９００７）を１２ｍＬのＥｘｐｉ２９　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍｅｄｉｕｍ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ａ１４３５１０１）で１×１０７ｃｅｌｌｓ／ｍＬとなるように懸濁し、１２５ｍＬ振とうフラスコで２４時間培養した。培養液は１２０ｒｐｍで一定に攪拌しながら、３７℃、８％ＣＯ２条件下でインキュベートを行った。
＜プラスミド＞
　ＡＡＶｐｒｏ（登録商標）Ｈｅｌｐｅｒ　Ｆｒｅｅ　Ｓｙｓｔｅｍ　（ＡＡＶ５）（タカラバイオ，６６５０）を使用した（Ｓｅｑ１、Ｓｅｑ２）。使用したプラスミド（Ｓｅｑ１～Ｓｅｑ７）の全体配列を、配列表の配列番号１～７に示す。Ｓｅｑ１４～Ｓｅｑ１６の配列を、配列表の配列番号１４～１６に示す。
ｓｅｑ１（ＧＯＩ）：ＧＯＩ搭載プラスミド
ｓｅｑ２（ＲＣ）：Ｒｅｐ遺伝子およびＣａｐ遺伝子を搭載したプラスミド
ｓｅｑ３（ΔＥ４）：ｐＨｅｌｐｅｒ（Ｔａｋａｒａｂｉｏ）を元にＥ４遺伝子コード領域を除去し、セルフライゲーションにより、再環状化したプラスミド
ｓｅｑ４（ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６）：ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子配列を合成し、ｐＵＣ５７ベクターのＥｃｏＲＶサイトに挿入したプラスミド（ＧＥＮＥＷＩＺ）
ｓｅｑ５（Ｅ４）：Ｅ４領域配列を合成し、ｐＵＣ５７ベクターのＥｃｏＲＶサイトに挿入したプラスミド（ＧＥＮＥＷＩＺ）
ｓｅｑ６（ＣＡＧ－Ｅ４ＯＲＦ６）：ＣＡＧプロモーター下流にＥ４ＯＲＦ６遺伝子配列を挿入したプラスミド
ｓｅｑ７（ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６ΔＥｎｈａｎｃｅｒΔＰｏｌｙＡ）：Ｓｅｑ４からＥｎｈａｎｃｅｒ配列およびＰｏｌｙＡシグナル配列を除去したプラスミド
ｓｅｑ１４（ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６）：Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子をＴｅｔ　ｏｐｅｒａｔｏｒ配列を組み込んだ発現調節可能なプロモーターの下にあるＲＦＰ(赤色蛍光タンパク質)遺伝子のさらに下流にIRESを介してつないだプラスミド
ｓｅｑ１５（ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６ΔＰｏｌｙＡ）：ｓｅｑ８からｐｏｌｙＡ を除去したプラスミド
Ｓｅｑ１６：ＩＲＥＳ配列
＜Ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ　ＰＣＲ＞
　遺伝子導入後７２時間、３７℃、８％ＣＯ２条件下で培養を行ったＨＥＫ細胞を３００ｘｇの遠心により回収した。ＲＮｅａｓｙ　Ｐｌｕｓ　Ｍｉｎｉ　Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてｍＲＮＡを精製し、Ｈｉｇｈ　Ｃａｐａｃｉｔｙ　ＲＮＡ　ｔｏ　ｃＤＮＡ　Ｋｉｔを用いた逆転写によりｃＤＮＡを作製した。作製したｃＤＮＡはＴａｑＭａｎ　Ｇｅｎｅ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ｍａｓｔｅｒ　Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて、Ｅ４ＯＲＦ６に対するプライマー（ｓｅｑ８、ｓｅｑ９）およびプローブ（ｓｅｑ１０）でＥ４ＯＲＦ６を検出し、ＧＡＰＤＨ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，　Ｈｓ０２７８６６２４＿ｇ１）に対するＴａｑＭａｎ　Ｇｅｎｅ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　Ａｓｓａｙを用いた規格化によって定量評価した。Ｓｅｑ８～Ｓｅｑ１０を、配列表の配列番号８～１０に示す。
＜ＡＡＶ力価測定＞
　遺伝子導入後７２時間、３７℃、８％ＣＯ２条件下で培養を行ったＨＥＫ細胞培養液を回収し、－８０℃での凍結融解にて細胞を破砕した。その後、１３，８００×ｇの遠心分離によって上清を回収し、終濃度２ｍｍｏｌ／Ｌ　ＭｇＣｌ２、２５Ｕ／ｍＬ　Ｂｅｎｚｏｎａｓｅを添加し、３７℃で２時間反応を行い、ｇＤＮＡ（ゲノムＤＮＡ）や残存プラスミドを消化した。反応後のサンプルは、９５℃で１５分、７０℃で３分、４０℃で３分、２０℃で３分の順にインキュベーションし、Ｂｅｎｚｏｎａｓｅを失活させ、これをｄｄＰＣＲ（Ｄｒｏｐｌｅｔ　Ｄｉｇｉｔａｌ　ＰＣＲ）サンプルとした。ｄｄＰＣＲサンプルはＴＥ　ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ８．０）に対して０．０５％Ｐｌｕｒｏｎｉｃ　Ｆ－６８　および１０μｇ／ｍＬウシ胸腺ＤＮＡを混合した溶液で５０倍に希釈した。氷上でチューブにｄｄＰＣＲｔｍ　Ｓｕｐｅｒｍｉｘ　ｆｏｒ　Ｐｒｏｂｅｓ（ｎｏ　ｄＵＴＰ）（ＢＩＯＲＡＤ社）　１０μＬ、希釈済みのｄｄＰＣＲサンプル２μＬ、プライマー（ｓｅｑ１１、ｓｅｑ１２、最終濃度９００ｎｍｏｌ／Ｌ）およびプローブ（ｓｅｑ１３、最終濃度２５０ｎｍｏｌ／Ｌ）、ヌクレアーゼフリーｗａｔｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，１０９７７０１５）を混合して、総液量２２μＬに調整し、ｄｄＰＣＲを行った。ｓｅｑ１１、ｓｅｑ１２及びｓｅｑ１３の配列を、配列表の配列番号１１～１３に示す。
　ｄｄＰＣＲにおいては、ドロップレット形成機器（QX200 Droplet Generator、ＢＩＯＲＡＤ）にて調製液からドロップレット形成し、続いて９５℃で１０分、９４℃で３０秒および５５℃を４０サイクル、９８℃で１０分の順でインキュベーションした。ドロップレットリーダー（QX200 Droplet Reader、ＢＩＯ ＲＡＤ）により測定を行い、ＡＡＶゲノム力価（ｖｇ／ｍＬ）を算出した。
＜細胞障害性評価＞
　遺伝子導入細胞の障害性は、遺伝子導入から７２時間後ｔｒｙｐａｎ　ｂｌｕｅ染色を行い、染色陽性細胞のカウントから障害細胞率（％）を算出した。
［結果］
　Ｅ４ＯＲＦ６を搭載したプラスミドの導入量を変えた時のＡＡＶ産生量の変化を評価した。ＨＥＫ２９３細胞に以下の組合せで遺伝子を導入し、７２時間後のＥ４ＯＲＦ６発現量を定量評価した結果を図１に示し、ｄｄＰＣＲによりＡＡＶの力価を測定した結果を図２に示し、Ｔｒｙｐａｎｂｌｅ染色による細胞の障害率を図３に示す。
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比１
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ４＝１：１：１：１
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．０２
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ４　＝１：１：１：０．０２
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．００４
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ４＝１：１：１：０．００４
Ｅ４遺伝子
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ５＝１：１：１：１
Ｅ４非導入
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ５＝１：１：１：０
Ｅ４ＯＲＦ６発現量
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比１：１の場合を基準（１）とする。
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．０２：０．０１２４
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．００４：０．０００３５３
Ｅ４遺伝子：０．０７２２
ウイルス量（ｖｇ／ｍＬ）
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比１：１の場合を基準（１）とする。
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．０２：１．９０
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．００４：１．８８
Ｅ４遺伝子：０．９２４
Ｅ４非導入：０．１７９
細胞障害性（％）
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比１：４９．０
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．０２：２９．９
Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子導入比０．００４：２４．９
Ｅ４遺伝子：４４．６
Ｅ４非導入：２０．６
　図１の結果から、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子をコードしたプラスミドの導入比率を低下させることで、Ｅ４ＯＲＦ６の発現量が低下することがわかった。
　図２の結果から、プラスミドの導入比率を下げることで、ＡＡＶ産生量が改善することがわかった。
　図３の結果から、プラスミドの導入比率を下げることによって、細胞障害性が低減することがわかった。
　Ｅ４ＯＲＦ６の発現プロモーターを変えた時のＡＡＶ産生量の変化を評価した。ＨＥＫ２９３細胞に以下の組合せで遺伝子を導入し、７２時間後Ｅ４ＯＲＦ６発現量を定量評価した結果を図４に示し、ｄｄＰＣＲによりＡＡＶの力価を測定した結果を図５に示す。
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ４＝１：１：１：１
ＣＡＧ―Ｅ４ＯＲＦ６：
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ６＝１：１：１：１
Ｅ４ＯＲＦ６発現量
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６の場合を基準（１）とする。
ＣＡＧ―Ｅ４ＯＲＦ６：０．２０３
ウイルス量（ｖｇ／ｍＬ）
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６の場合を基準（１）とする。
ＣＡＧ―Ｅ４ＯＲＦ６：１．７０
　図４の結果から、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子をコードしたプラスミドのプロモーターをＣＭＶからＣＡＧに変更することで、Ｅ４ＯＲＦ６の発現量が低下することがわかった。
　図５の結果から、プロモーターの変更によりＡＡＶ産生量が改善することがわかった。
　Ｅ４ＯＲＦ６の発現調整配列を変えた時のＡＡＶ産生量の変化を評価した。発現調整配列を変更したＥ４ＯＲＦ６プラスミド図を図６に示す。ＨＥＫ２９３細胞に以下の組合せで遺伝子を導入し、７２時間後Ｅ４ＯＲＦ６発現量を定量評価した結果を図７に示し、ｄｄＰＣＲによりＡＡＶの力価を測定した結果を図８に示す。
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ４＝１：１：１：１
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６ΔＥｎｈａｎｃｅｒΔＰｏｌｙＡ：
ｓｅｑ１：ｓｅｑ２：ｓｅｑ３：ｓｅｑ７＝１：１：１：１
Ｅ４ＯＲＦ６発現量
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６の場合を基準（１）とする。
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６ΔＥｎｈａｎｃｅｒΔＰｏｌｙＡ：０．１２１
ウイルス量（ｖｇ／ｍＬ）
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６の場合を基準（１）とする。
ＣＭＶ－Ｅ４ＯＲＦ６ΔＥｎｈａｎｃｅｒΔＰｏｌｙＡ：２．５７
　図７の結果から、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子をコードしたプラスミドのｅｎｈａｎｃｅｒおよびｐｏｌｙＡシグナル配列を除去することで、Ｅ４ＯＲＦ６の発現量が低下することがわかった。図８の結果から、配列変更によりＡＡＶ産生量が改善することがわかった。
　Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子をＴｅｔ　ｏｐｅｒａｔｏｒ配列を組み込んだ発現調節可能なプロモーターの下にあるＲＦＰ（赤色蛍光タンパク質）遺伝子のさらに下流にＩＲＥＳを介してつないだ設計（Ｓｅｑ１４：ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６）および、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子下流のｐｏｌｙＡシグナル配列を除去したプラスミド設計（Ｓｅｑ１５：ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６ΔＰｏｌｙＡ）のプラスミドを用いて、それぞれＨＥＫ細胞に導入しテトラサイクリン非存在下における増殖による細胞数増加を測定した。同様の条件で、Ｅ４領域（ｓｅｑ５）導入細胞における細胞数増加を測定し、比較した結果を図９に示す。
　図９の結果から、Ｓｅｑ１４、Ｓｅｑ１５導入細胞は、Ｅ４領域導入に比べて細胞数の増加が大きいことがわかった。
　ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６および、ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６ΔＰｏｌｙＡをＨＥＫ細胞に導入し、Ｇ４１８薬剤に処理によってプラスミドが組み込まれた安定発現細胞を作製した。安定発現細胞に対して、Ｒｅｐ、Ｃａｐ、Ｅ２、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を導入し、ＡＡＶ産生力価を測定した結果を図１０に示す。
　図１０の結果から、作製したＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６および、ＴＥＴ－ＲＦＰ―ＩＲＥＳ―Ｅ４ＯＲＦ６ΔＰｏｌｙＡの安定発現細胞を用いてＡＡＶが産生可能であることを確認した。また、ＰｏｌｙＡシグナル配列を除去することで力価が向上することがわかった。

Claims (16)

  1. Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子を外来プロモーターによって発現させることを含むアデノ随伴ウイルスの製造方法であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、アデノ随伴ウイルスの製造方法。
  2. Ｅ４ＯＲＦ６の発現の低下が、Ｅ４ＯＲＦ６のｍＲＮＡ発現の低下及び／又はＥ４ＯＲＦ６のタンパク質発現の低下である、請求項１に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
  3. エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡ配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現の量が１／２以下に低下している、請求項１又は２に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
  4. 以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上によりＥ４ＯＲＦ６の発現が低下している、請求項１から３の何れか一項に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
    （ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
    （ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を使用しない；
    （ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を使用しない；
    （ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を使用しない；
    （ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
  5. Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量が１／２以下である、請求項１から４の何れか一項に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
  6. 少なくともＥ４ＯＲＦ６遺伝子を含むＥ４領域を細胞に導入することを含む、アデノ随伴ウイルスの製造方法であって、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量が１／２以下である、アデノ随伴ウイルスの製造方法。
  7. Ｅ４領域の細胞への導入量が、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量の１／１０以下である、請求項６に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
  8. Ｅ４領域と、Ｅ２Ａ遺伝子及びＶＡ－ＲＮＡ遺伝子とが、異なるプラスミドベクターにより細胞に導入される、請求項６又は７に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
  9. Ｅ４領域がＥ４ＯＲＦ６遺伝子のみからなる、請求項６から８の何れか一項に記載のアデノ随伴ウイルスの製造方法。
  10. 外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有する細胞であって、エンハンサー、サイトメガロウイルス由来プロモーター、Ｋｏｚａｋ配列、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子及びポリＡシグナル配列を含む発現ユニットを用いてＥ４ＯＲＦ６を発現させた場合と比較して、Ｅ４ＯＲＦ６の発現が低下している、細胞。
  11. 外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子が、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上を満たす発現ベクターにより細胞に導入されている、請求項１０に記載の細胞。
    （ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
    （ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を有さない；
    （ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を有さない；
    （ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を有さない；
    （ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
  12. 外来プロモーターによって発現されるＥ４ＯＲＦ６遺伝子を少なくとも有する細胞であって、Ｒｅｐ遺伝子、Ｃａｐ遺伝子、Ｅ２Ａ遺伝子、ＶＡ－ＲＮＡ遺伝子、所望の治療又は予防用遺伝子のうちのいずれか一つ以上の遺伝子の細胞への導入量よりも、Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子の細胞への導入量の方が少ない、細胞。
  13. さらに、Ｅ２Ａ遺伝子及びＶＡ－ＲＮＡ遺伝子を有する、請求項１０～１２の何れか一項に記載の細胞。
  14. さらに、Ｒｅｐ遺伝子を有する、請求項１０～１３の何れか一項に記載の細胞。
  15. さらにＣａｐ遺伝子、及び/又は所望の治療又は予防用遺伝子を有する、請求項１０～１４の何れか一項に記載の細胞。
  16. 外来プロモーターに連結されたＥ４ＯＲＦ６を含む発現ベクターであって、以下の（ａ）～（ｅ）の何れか一以上を満たす発現ベクター。
    （ａ）外来プロモーターが、サイトメガロウイルス由来プロモーターよりも転写活性が弱いプロモーターである；
    （ｂ）Ｅ４ＯＲＦ６遺伝子のＫｏｚａｋ配列が、改変されたＫｏｚａｋ配列であるか、Ｋｏｚａｋ配列を有さない；
    （ｃ）エンハンサー配列が、改変されたエンハンサー配列であるか、エンハンサー配列を有さない；
    （ｄ）ポリＡシグナル配列が、改変されたポリＡシグナル配列であるか、ポリＡシグナル配列を有さない；
    （ｅ）ＩＲＥＳ配列を用いてＥ４ＯＲＦ６遺伝子を発現させる：
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Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008526188A (ja) * 2004-12-31 2008-07-24 ホルム，ペル・ゾンネ 動物細胞における多剤耐性を逆転させる方法
US20160222356A1 (en) 2013-08-30 2016-08-04 Amgen Inc. High Titer Recombinant AAV Vector Production in Adherent and Suspension Cells
JP2020507331A (ja) 2017-02-17 2020-03-12 ロンザ リミテッドＬｏｎｚａ Ｌｉｍｉｔｅｄ アデノ随伴ウイルスを生産するための哺乳動物細胞
WO2020208379A1 (en) 2019-04-12 2020-10-15 Freeline Therapeutics Limited Plasmid system
JP2020188763A (ja) 2019-05-20 2020-11-26 Ｊｃｒファーマ株式会社 組換えａａｖビリオンの製造に用いる核酸分子

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008526188A (ja) * 2004-12-31 2008-07-24 ホルム，ペル・ゾンネ 動物細胞における多剤耐性を逆転させる方法
US20160222356A1 (en) 2013-08-30 2016-08-04 Amgen Inc. High Titer Recombinant AAV Vector Production in Adherent and Suspension Cells
JP2020507331A (ja) 2017-02-17 2020-03-12 ロンザ リミテッドＬｏｎｚａ Ｌｉｍｉｔｅｄ アデノ随伴ウイルスを生産するための哺乳動物細胞
WO2020208379A1 (en) 2019-04-12 2020-10-15 Freeline Therapeutics Limited Plasmid system
JP2020188763A (ja) 2019-05-20 2020-11-26 Ｊｃｒファーマ株式会社 組換えａａｖビリオンの製造に用いる核酸分子

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ALLEN J. M. ET AL.: "Improved adeno-associated virus vector production with transfection of a single helper adenovirus gene, E4orf6.", MOLECULAR THERAPY, ELSEVIER INC., US, vol. 1, no. 1, 1 January 2000 (2000-01-01), US , pages 88 - 95, XP002212366, ISSN: 1525-0016, DOI: 10.1006/mthe.1999.0010 *
LIU ZHONG, LINDA M. CASHION, JESSE J. TWU: "A systematic comparison of relative promoter/enhancer activities in mammalian cell lines", ANALYTICAL BIOCHEMISTRY, vol. 246, no. 251, 1 March 1997 (1997-03-01), pages 150 - 152, XP093054039 *
NAYAK RAMNATH, PINTEL DAVID J.: "Positive and Negative Effects of Adenovirus Type 5 Helper Functions on Adeno-Associated Virus Type 5 (AAV5) Protein Accumulation Govern AAV5 Virus Production", JOURNAL OF VIROLOGY, THE AMERICAN SOCIETY FOR MICROBIOLOGY, US, vol. 81, no. 5, 1 March 2007 (2007-03-01), US , pages 2205 - 2212, XP093054030, ISSN: 0022-538X, DOI: 10.1128/JVI.02312-06 *

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