WO2022235030A1 - 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포의 분화 방법 - Google Patents

면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포의 분화 방법 Download PDF

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dendritic cells
cells
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권병석
김민지
강상욱
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울산대학교 산학협력단
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Definitions

  • the present invention relates to a method for differentiation of mature dendritic cells enriched in immunomodulatory molecules (mreg DC).
  • Graft Versus Host Disease is a disease in which T lymphocytes, which are immune cells of others, introduced into the host through treatment such as bone marrow transplantation between allogeneic livers, peripheral blood hematopoietic stem cell transplantation, and blood transfusion for reasons of reduced immunity, etc.
  • T lymphocytes which are immune cells of others
  • lymphocytes recognize the patient's cells as non-self and attack the host.
  • graft-versus-host disease There are two main causes of graft-versus-host disease, namely weakening of the host's immunity and blood transfusion of the family.
  • Graft-versus-host disease is divided into acute and chronic. If it occurs before 100 days after the procedure, it is classified as acute, and if it occurs after 100 days, it is classified as chronic.
  • graft-versus-host disease is most often acute, and the T cells contained in the graft respond to specific antigens present in the host cells and cause various symptoms. , hepatitis, and gastroenteritis. As a skin lesion, a rash similar to measles occurs, but it is different from other skin diseases because it mainly occurs on the pinna, palms, and soles of the feet. Liver disease is accompanied by skin disease, causing jaundice and increasing liver levels. Gastrointestinal problems include nausea, vomiting, loss of appetite, abdominal pain and diarrhea. To date, there is no fundamental treatment method for graft-versus-host disease, and only treatments that can alleviate symptoms are available, and steroid therapy is being used as an effective treatment.
  • dendritic cells were first discovered in the skin by Langerhans in 1868, and their function became known as immune helper cells by Cohn and Steinmann in 1973. And in the 1990s, it was discovered that they play an important role in immune induction and immune regulation as their function was revealed as potent professional antigen presenting cells (APCs). Although dendritic cells in the human body account for only about 0.3% of the total circulating leukocytes, they consist of a heterogeneous population with a phenotype distinct from macrophages. Dendritic cells are differentiated from B cells or macrophages, which have relatively weak antigen-presenting ability, in that they are strong antigen-presenting cells.
  • Dendritic cells have the ability to induce a primary immune response that can stimulate naive T cells that have never been in contact with an antigen, and are the only immune cells with the ability to induce immune memory. .
  • Dendritic cells are antigen-presenting cells (APCs) that can play a powerful immune response activation function, and not only MHC molecules (I/II) on the cell surface, but also co-stimulatory molecules such as CD- 80 and CD-86 and adhesion molecules such as ICAM-1 are expressed at high concentrations, and various cytokines (cytokine, IFN-alpha, IL-12, IL-18, etc.) are secreted.
  • APCs antigen-presenting cells
  • I/II MHC molecules
  • co-stimulatory molecules such as CD- 80 and CD-86 and adhesion molecules such as ICAM-1 are expressed at high concentrations, and various cytokines (cytokine, IFN-alpha, IL-12, IL-18, etc.) are secreted.
  • Dendritic cells express a lot of antigen presenting molecules (MHC molecules and costimulatory molecules) on the cell surface and secrete various cytokines such as IFN-alpha and IL-12. It is known that it can induce differentiation and activation of Th1 cells.
  • MHC molecules and costimulatory molecules antigen presenting molecules
  • cytokines such as IFN-alpha and IL-12. It is known that it can induce differentiation and activation of Th1 cells.
  • dendritic cells are the most powerful antigen presenting cells, and although they exist in a very small number in vivo, they are very good at regulating T-cell immunity. In clinical studies, it is being studied as a therapeutic agent for cancer or infectious diseases. When dendritic cells isolated from tissue or blood are stimulated with antigens in vitro and then re-injected in vivo in the form of mature dendritic cells, it has been confirmed to exhibit immunogenicity, thereby inducing immunity to specific antigens of cancer or pathogens. It has great application value as a cell vaccine for
  • immunomodulatory molecules mimetics
  • the present invention provides a method for differentiation of mature dendritic cells (mreg DC) enriched in immune regulatory molecules, comprising the step of treating the dendritic cells with an anti-CD137 antibody and CpG.
  • the present invention provides a method for in vivo differentiation of mature dendritic cells (mreg DC) rich in immune regulatory molecules, comprising administering an anti-CD137 antibody to a subject.
  • mireg DC mature dendritic cells
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating inflammatory diseases comprising mature dendritic cells (mreg DC) rich in immune regulatory molecules differentiated according to the differentiation method as an active ingredient.
  • mareg DC mature dendritic cells
  • CD11b+ dendritic cells collected from splenocytes were treated with an anti-CD137 antibody to differentiate CD11c hi MHC II hi CD11b + in vitro and in vivo mature dendritic cells (mreg DCs) rich in immune regulatory molecules.
  • mreg DCs CD11c hi MHC II hi CD11b + in vitro and in vivo mature dendritic cells
  • type 2 mreg DCs expressing both PDL1 and PDL2 are differentiated from cDC2
  • FACS Fluorescence-Activated Cell Sorting
  • mreg DC mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules
  • Figure 3 shows the number of splenocytes (A), liver to confirm the therapeutic efficacy of mreg DC (mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules) in a chronic graft-versus-host disease (GVHD) model. Or, it is the result of analyzing the disease of the colon (B) and the change of autoantibody (C).
  • A splenocytes
  • mreg DC mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules
  • the present invention provides a method for differentiation into mature dendritic cells (mreg DCs) rich in immune regulatory molecules, comprising the step of treating the dendritic cells with an anti-CD137 antibody and CpG.
  • the dendritic cells are CD8-/CD11b+ dendritic cells
  • the mreg DCs are 7AAD - CD11c hi MHC II hi CD11b + mreg DC type 2 cells
  • the mreg DCs are cells in which PDL1 and PDL2 are simultaneously expressed.
  • the mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules is a regulatory dendritic cell that co-expresses immune regulatory genes (Cd274, Pdcd1lg2 and Cd200) and mature genes (Cd40, Ccr7 and Il12b). (Regulatory dendritic cells).
  • mregDC suppresses immunity by inducing the production of regulatory CD4+ T cells.
  • mregDC differentiation involves Axl and IL-4, and neutralizing IL-4 can reduce tumor growth.
  • the present invention provides a method for in vivo differentiation of mature dendritic cells (mreg DC) rich in immune regulatory molecules, comprising administering an anti-CD137 antibody to a subject.
  • mireg DC mature dendritic cells
  • the subject means a mammal other than a human, for example, may be a mouse.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating inflammatory diseases comprising mature dendritic cells (mreg DC) rich in immune regulatory molecules differentiated according to the differentiation method as an active ingredient.
  • mareg DC mature dendritic cells
  • the inflammatory disease is any one selected from the group consisting of graft-versus-host disease, organ transplant rejection, autoimmune disease, asthma, atopy and chronic inflammatory disease.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be prepared in unit dosage form or multi-dose by formulating using a pharmaceutically acceptable carrier according to a method that can be easily carried out by a person of ordinary skill in the art to which the present invention pertains. It can be prepared by introducing into a container.
  • the pharmaceutically acceptable carriers are those commonly used in formulation, and include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, starch, gum acacia, calcium phosphate, alginate, gelatin, calcium silicate, microcrystalline cellulose, polyvinylpyrrolidone, cellulose, water, syrup, methyl cellulose, methyl hydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate and mineral oil, and the like.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may further include a lubricant, a wetting agent, a sweetening agent, a flavoring agent, an emulsifying agent, a suspending agent, a preservative, and the like, in addition to the above components.
  • the content of the additive included in the pharmaceutical composition is not particularly limited and may be appropriately adjusted within the content range used for conventional formulation.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may further include a pharmaceutically acceptable carrier and diluent for formulation.
  • the pharmaceutically acceptable carriers and diluents include starch, sugar, and excipients such as mannitol, fillers and extenders such as calcium phosphate, cellulose derivatives such as carboxymethylcellulose, hydroxypropylcellulose, gelatin, alginate, and polyvinyl blood binders such as rolidone, lubricants such as talc, calcium stearate, hydrogenated castor oil and polyethylene glycol, disintegrants such as povidone, crospovidone, and surfactants such as polysorbates, cetyl alcohol, and glycerol. does not
  • the pharmaceutically acceptable carrier and diluent may be biologically and physiologically compatible with the subject. Examples of diluents include, but are not limited to, saline, aqueous buffers, solvents and/or dispersion media.
  • the dosage of the pharmaceutical composition of the present invention depends on the patient's condition and weight, age, sex, health condition, dietary constitution specificity, the nature of the preparation, the degree of disease, the administration time of the composition, administration method, administration period or interval, and excretion rate. , and the range may vary depending on the drug form, and may be appropriately selected by those skilled in the art. For example, it may be in the range of about 0.1 to 10,000 mg/kg, but is not limited now, and may be administered in divided doses from once to several times a day.
  • CD11b+ splenic dendritic cells were isolated. Splenocytes were collected from C57BL/6 wild-type mice using Collagenase IV/DNase I, and CD8+ dendritic cells were removed by negative selection using an LD column, a depletion column to which CD8 microbeads were bound. CD11b+ splenic dendritic cells were isolated from the extract by positive selection using CD11c microbeads and an LS column.
  • L-glutamin (6mM), NEAA (0.2mM), 2-mecaptoethanol (25mM), and FLT3L (FMS-like tyrosine kinase 3 ligand) (10ng/ml) containing DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's medium) medium CD11b+ splenic dendritic cells were suspended and cultured. After treatment with anti-CD137 antibody at 10 ⁇ g/ml on 48 plates, the antibody was attached to the bottom of the pate overnight at 4°C. After 12 hours, the antibody solution was removed. The cultured cells were dispensed at 2 X 10 6 cells/ml in No treatment wells or wells to which anti-CD137 antibody was attached, respectively. At the same time, CpG was added to the anti-CD137 antibody-treated wells, and then cultured for 24 or 48 hours in an animal cell incubator at 37° C. under 5% CO 2 condition to differentiate into mreg DC2.
  • DMEM Dulbecco's Modified
  • RNA sequencing was performed using 1 ⁇ g of total RNA extracted from No treatment and anti-CD137 antibody treatment groups.
  • mreg DC2 was identified as a cell in which both PDL1 and PDL2 were expressed simultaneously in the CD11c hi MHC II hi CD11b + cDC2 in living cells (7AAD ⁇ ). As shown in FIG. 1, when splenic DC2 is cultured for 2 days under the conditions of stimulation with anti-CD137 antibody and CpG, cells with markers of mregDC are generated.
  • mreg DCs were induced and differentiated in a chronic graft-versus-host disease (GVHD) model (DBA to BDF1).
  • DBA2 mice were intravenously injected into BDF1 mice at 8 x 10 7 cells/mice.
  • PBS control
  • 200 ⁇ g of anti-CD137 antibody was intraperitoneally injected into 5 mice in each group.
  • splenocytes were recovered from each mouse using Collagenase IV/DNase I, reacted with 2.4G2 (10 ⁇ g/ml) antibody at 4° C.
  • mreg DC2 differentiated in Examples 1 and 2 showed therapeutic efficacy in the chronic graft-versus-host disease (GVHD) model (BM12 to C57BL/6).
  • GVHD chronic graft-versus-host disease
  • Splenocytes of physically extracted BM12 mice were intravenously injected into wild-type C57BL/6 or CD137 ⁇ /- mice at 8 ⁇ 10 7 cells/mice.
  • the mreg DC2 injected group showed an increase in the number of spleen cells, a decrease in the degree of disease (inflammation) in the liver, and a decrease in autoantibodies in the serum compared to the control group, so that the mreg DC2 cells were grafted onto the graft. It was confirmed that there was an effect of suppressing the symptoms of the major host disease.

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Abstract

본 발명은 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)의 분화 방법에 관한 것으로, in vitro 및 in vivo에서 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 분화시키기 위해 비장세포에서 수집된 CD11b+ 수지상세포에 항 CD137 항체를 처리하여 CD11chi MHC IIhi CD11b+ 인 cDC2에서 PDL1과 PDL2가 동시에 발현되는 제2형 mreg DC가 분화되는 것을 확인함으로써, 항 CD137 항체를 이용하여 mreg DC를 분화시키는 방법 및 상기 방법을 이용하여 분화된 mreg DC를 제공한다.

Description

면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포의 분화 방법
본 발명은 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules, mreg DC)의 분화 방법에 관한 것이다.
이식편대숙주 질환 (Graft Versus Host Disease)은 동종 간의 골수 이식이나 말초혈액 조혈모세포 이식, 면역력 저하 등의 이유로 진행한 수혈 등의 치료행위를 통하여 숙주 내로 유입된 타인의 면역세포인 T 림프구가 숙주가 면역 기능이 저하된 경우에는 숙주의 면역체계에 의하여 사멸되지 않고 숙주의 체내에서 분화하여 림프구가 환자의 세포를 비자기(non-self)로 인식하여 숙주를 공격하는 병으로, 증상의 정도에 따라 심한 경우 사망에 이르기도 하는 질환이다. 이식편대 숙주 질환의 원인은 크게 2가지로 나뉘는데, 숙주의 면역력 약화와 가족의 혈액 수혈이다. 이식편대숙주질환은 급성과 만성으로 구분하며, 시술 후 100일 이전에 발생하면 급성, 100일 이후에 발생하면 만성으로 분류된다.
이식편대숙주질환은 급성으로 오는 경우가 대부분이며 이식편에 포함된 T세포가 숙주세포에 존재하는 특이 항원에 대하여 반응을 나타내고 여러 가지 증상을 일으키는데, 발생되는 증상으로는 감염, 사이토메갈로바이러스로 인한 폐렴, 간염, 위장관염이 있다. 피부병변으로 홍역과 비슷한 피부의 발진이 생기는데 주로 귓바퀴, 손바닥, 발바닥에 발생하므로 다른 피부질환과 차이가 있다. 피부질환과 함께 간질환이 동반되어 황달이 발생하고 간수치가 증가한다. 위장관에 문제가 있는 경우 구역, 구토, 식욕부진, 복통 및 설사증상이 있다. 현재까지 이식편대숙주질환의 근본적인 치료방법은 없으며 증상을 완화시킬 수 있는 치료만 가능하고, 스테로이드요법이 효과적인 치료로 사용되고 있다.
한편 수지상세포는 1868년 랑겔한스(Langerhans)에 의해 피부에서 처음 발견되었으며 1973년 칸(Cohn)과 스테인만(Steinmann)에 의해 면역보조 세포로 기능이 알려지게 되었다. 그리고 1990년대에는 강력한 항원제시세포(professional antigen presenting cells; APC)로 기능이 밝혀지면서 면역유도 및 면역조절에서의 중요한 역할을 담당한다는 것을 알게 되었다. 인체 내의 수지상세포는 전체 순환 백혈구의 단지 약 0.3%를 차지할 뿐이지만 대식세포와는 구별되는 표현형을 지닌 이질적인 집단으로 구성되어 있다. 수지상세포는 비교적 약한 항원제시능력을 지닌 B세포나 대식세포와는 달리 강력한 항원제시세포라는 점에서 차별화된다. 수지상세포는 항원과 접한 적이 없는 원시 T세포(naive T cell)를 자극시킬 수 있는 일차면역반응(primary immune response) 유도 능력을 지니며, 또한 면역기억을 유도할 수 있는 특성을 갖는 유일한 면역세포이다. 수지상세포가 강력한 면역반응 활성화 기능을 할 수 있는 것은 항원제시세포(APC, Antigen Presenting Cell)로서 세포 표면에 MHC 분자(I/II)뿐만 아니라, 보조자극분자(co-stimulatory molecules) 예컨대, CD-80 및 CD-86와 부착 분자(adhesion molecule) 예컨대, ICAM-1들을 고농도로 발현하고 있으며, 여러 가지의 사이토카인(cytokine, IFN-alpha, IL-12, IL-18 등)을 분비하기 때문인 것으로 알려져 있다. 수지상세포는 세포 표면에 항원제시분자들(MHC 분자와 보조자극 분자들)을 많이 발현하고 있고, IFN-알파, IL-12 등 여러 가지 사이토카인을 분비하기 때문에 항원 특이 세포살해 T 세포의 생성, Th1 세포의 분화 및 활성화를 유도할 수 있다고 알려져 있다.
이와 같이, 수지상세포(dendritic cell)는 가장 강력한 항원 전달 세포(Antigen presenting cells)로서, 생체 내 극히 적은 수로 존재하지만 T세포 면역을 조절하는 기능이 매우 뛰어나기 때문에 특이 항원에 대한 면역을 유도하기 위한 임상 연구에서 암 또는 감염 질환의 치료제로서 연구되고 있다. 조직 또는 혈액으로부터 분리된 수지상세포를 in vitro에서 항원으로 자극시킨 후 성숙한 수지상세포 형태로 in vivo에 다시 주입하는 경우, 면역원성을 나타내는 것으로 확인되어, 암 또는 병원균의 특이 항원에 대한 면역을 유도하기 위한 세포 백신으로서 그 응용 가치가 매우 크다.
본 발명의 목적은 항-CD137 항체를 이용하여 강력한 면역 억제능을 나타내는 mregDC(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules)를 분화시키는 방법 및 이를 포함하는 염증질환의 치료제를 제공하는 것이다.
본 발명은 수지상 세포에 항 CD137 항체 및 CpG를 처리하는 단계를 포함하는 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)의 분화 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 대상체에 항 CD137 항체를 투여하는 단계를 포함하는 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 in vivo에서 분화 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 분화 방법에 따라 분화된 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 유효성분으로 포함하는 염증질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
본 발명에 따르면, in vitro 및 in vivo에서 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 분화시키기 위해 비장세포에서 수집된 CD11b+ 수지상세포에 항 CD137 항체를 처리하여 CD11chi MHC IIhi CD11b+ 인 cDC2에서 PDL1과 PDL2가 동시에 발현되는 제2형 mreg DC가 분화되는 것을 확인함으로써, 항 CD137 항체를 이용하여 mreg DC를 분화시키는 방법 및 상기 방법을 이용하여 분화된 mreg DC를 제공할 수 있다.
도 1은 in vitro에서 mreg DC(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules, 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포)를 분화한 것을 확인하기 위해, FACS(Fluorescence-Activated Cell Sorting) 분석(A), mreg DC 관련 유전자 발현(B) 및 RNA seq으로 항 CD137에 의해 조절되는 유전자(C)를 분석한 결과이다.
도 2는 in vivo에서 mreg DC(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules, 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포)를 분화한 것을 확인하기 위해, FACS(Fluorescence-Activated Cell Sorting) 분석한 결과이다.
도 3은 만성 이식편대숙주병(GVHD) 모델에서 mreg DC(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules, 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포)의 치료 효능을 확인하기 위해, 비장세포의 수(A), 간 또는 대장의 병증(B) 및 자가항체의 변화(C)를 분석한 결과이다.
본 명세서에서 사용되는 용어는 본 발명에서의 기능을 고려하면서 가능한 현재 널리 사용되는 일반적인 용어들을 선택하였으나, 이는 당 분야에 종사하는 기술자의 의도 또는 판례, 새로운 기술의 출현 등에 따라 달라질 수 있다. 또한, 특정한 경우는 출원인이 임의로 선정한 용어도 있으며, 이 경우 해당되는 발명의 설명 부분에서 상세히 그 의미를 기재할 것이다. 따라서 본 발명에서 사용되는 용어는 단순한 용어의 명칭이 아닌, 그 용어가 가지는 의미와 본 발명의 전반에 걸친 내용을 토대로 정의되어야 한다.
다르게 정의되지 않는 한, 기술적이거나 과학적인 용어를 포함해서 여기서 사용되는 모든 용어들은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자에 의해 일반적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 가지고 있다. 일반적으로 사용되는 사전에 정의되어 있는 것과 같은 용어들은 관련 기술의 문맥상 가지는 의미와 일치하는 의미를 가지는 것으로 해석되어야 하며, 본 출원에서 명백하게 정의하지 않는 한, 이상적이거나 과도하게 형식적인 의미로 해석되지 않는다.
수치 범위는 상기 범위에 정의된 수치를 포함한다. 본 명세서에 걸쳐 주어진 모든 최대의 수치 제한은 낮은 수치 제한이 명확히 쓰여 있는 것처럼 모든 더 낮은 수치 제한을 포함한다. 본 명세서에 걸쳐 주어진 모든 최소의 수치 제한은 더 높은 수치 제한이 명확히 쓰여 있는 것처럼 모든 더 높은 수치 제한을 포함한다. 본 명세서에 걸쳐 주어진 모든 수치 제한은 더 좁은 수치 제한이 명확히 쓰여 있는 것처럼, 더 넓은 수치 범위 내의 더 좋은 모든 수치 범위를 포함할 것이다.
이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.
본 발명은 수지상 세포에 항 CD137 항체 및 CpG를 처리하는 단계를 포함하는 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)로의 분화 방법을 제공한다.
상기 수지상 세포는 CD8-/CD11b+ 수지상 세포이고, 상기 mreg DC는 7AAD- CD11chi MHC IIhi CD11b+ 인 mreg DC 제2형 세포이며, 상기 mreg DC는 PDL1 및 PDL2가 동시에 발현되는 세포이다.
상기 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules, mreg DC)는 면역 조절 유전자(Cd274, Pdcd1lg2 및 Cd200) 및 성숙 유전자(Cd40, Ccr7 및 Il12b)를 공동으로 발현하는 조절 수지상 세포(Regulatory dendritic cell)이다. mregDC는 조절 CD4+ T 세포의 생성을 유도하여 면역을 억제한다. mregDC 분화는 Axl과 IL-4가 관여하며 IL-4를 중화시키면 종양의 성장을 감소시킬 수 있다.
또한, 본 발명은 대상체에 항 CD137 항체를 투여하는 단계를 포함하는 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 in vivo에서 분화 방법을 제공한다.
상기 대상체는 인간을 제외한 포유류를 의미하며, 예컨대 마우스일 수 있다.
또한, 본 발명은 상기 분화 방법에 따라 분화된 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 유효성분으로 포함하는 염증질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
상기 염증질환은 이식편대숙주병, 장기이식거부반응, 자가면역질환, 천식, 아토피 및 만성염증질환으로 구성된 군에서 선택된 어느 하나이다.
본 발명의 약학적 조성물은 당해 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 실시할 수 있는 방법에 따라, 약제학적으로 허용되는 담체를 이용하여 제제화함으로써 단위 용량 형태로 제조되거나 또는 다용량 용기 내에 내입시켜 제조될 수 있다.
상기 약제학적으로 허용되는 담체는 제제시에 통상적으로 이용되는 것으로서, 락토스, 덱스트로스, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 전분, 아카시아 고무, 인산 칼슘, 알기네이트, 젤라틴, 규산 칼슘, 미세결정성 셀룰로스, 폴리비닐피롤리돈, 셀룰로스, 물, 시럽, 메틸 셀룰로스, 메틸 히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 활석, 스테아르산 마그네슘 및 미네랄 오일 등을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 약학적 조성물은 상기 성분들 이외에 윤활제, 습윤제, 감미제, 향미제, 유화제, 현탁제, 보존제 등을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 약학적 조성물에 포함되는 첨가제의 함량은 특별히 한정되는 것은 아니며 통상의 제제화에 사용되는 함량 범위 내에서 적절하게 조절될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 제형화를 위해 추가로 있는 약학적으로 허용가능한 담체 및 희석제를 포함할 수 있다. 상기 약학적으로 허용가능한 담체 및 희석제는 전분, 당, 및 만니톨과 같은 부형제, 칼슘 포스페이트 등과 같은 충전제 및 증량제, 카르복시메틸셀룰로오스, 히드록시프로필셀룰로오스 등과 같은 셀룰로오스 유도체, 젤라틴, 알긴산염, 및 폴리비닐 피롤리돈 등과 같은 결합제, 활석, 스테아린산 칼슘, 수소화 피마자유 및 폴리에틸렌 글리콜과 같은 윤활제, 포비돈, 크로스포비돈과 같은 붕해제, 폴리소르베이트, 세틸알코올, 및 글리세롤 등과 같은 계면활성제를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 상기 약학적으로 허용가능한 담체 및 희석제는 대상체에게 생물학적 및 생리학적으로 친화적인 것일 수 있다. 희석제의 예로는 염수, 수용성 완충액, 용매 및/또는 분산제(dispersion media)를 들 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 약학적 조성물은 목적하는 방법에 따라 경구 투여하거나 비경구 투여(예를 들어, 정맥 내, 피하, 복강 내 또는 국소에 적용)할 수 있다. 경구 투여일 경우, 정제, 트로키제 (troches), 로젠지 (lozenge), 수용성 현탁액, 유성 현탁액, 조제 분말, 과립, 에멀젼, 하드 캡슐, 소프트 캡슐, 시럽 또는 엘릭시르제 등으로 제형화될 수 있다. 비경구 투여일 경우, 주사액, 좌제, 등으로 제형화 될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물의 투여량은 환자의 상태 및 체중, 연령, 성별, 건강상태, 식이 체질 특이성, 제제의 성질, 질병의 정도, 조성물의 투여시간, 투여방법, 투여기간 또는 간격, 배설율, 및 약물 형태에 따라 그 범위가 다양할 수 있으며, 이 분야 통상의 기술자에 의해 적절하게 선택될 수 있다. 예컨대, 약 0.1 내지 10,000 mg/kg의 범위일 수 있으나 이제 제한되지 않으며, 하루 일회 내지 수회에 나누어 투여될 수 있다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 실시예를 들어 상세하게 설명하기로 한다. 다만 하기의 실시예는 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 범위가 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 실시예는 당업계에서 평균적인 지식을 가진 자에게 본 발명을 보다 완전하게 설명하기 위해 제공되는 것이다.
실시예 1. In vitro에서 mreg DC2 분화
In vitro에서 mreg DC(mature dendritic cell enriched in immunomodulatory molecules, 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포)를 분화시키기 위해서 CD11b+ 비장수지상세포를 분리하였다. Collagenase IV/DNase I을 이용하여 C57BL/6 야생형 마우스로부터 비장세포를 수집하고, CD8 마이크로비드가 결합된 depletion colum인 LD 컬럼을 사용하여 negative selection으로 CD8+ 수지상세포를 제거하였다. 추출물을 CD11c 마이크로비드와 LS 컬럼을 이용하여 positive selection으로 CD11b+ 비장 수지상세포를 분리하였다.
L-glutamin(6mM), NEAA(0.2mM), 2-mecaptoethanol(25mM), 및 FLT3L(FMS-like tyrosine kinase 3 ligand) (10ng/ml)이 포함된 DMEM(Dulbecco's Modified Eagle's medium) 배지에 분리된 CD11b+ 비장 수지상세포를 현탁하고 배양하였다. 항 CD137 항체를 10㎍/ml로 48 plate에 처리 후, 4℃에서 밤새 항체를 pate 바닥에 부착시켰다. 12 시간 후 항체 용액을 제거하였다. 배양된 세포를 No treatment well 또는 항 CD137 항체 부착시킨 well에 각각 2 X 106 cells/ml로 분주하였다. 동시에 항 CD137 항체 처리된 well에 CpG를 추가한 후, 37℃ 5% CO2 조건의 동물세포 배양기에서 24 시간 또는 48 시간 동안 배양하여 mreg DC2로 분화 배양하였다.
배양된 세포의 mreg DC2 유전형을 확인하기 위해, 24 시간 배양된 각각의 수지상세포를 회수하고 세포를 Trizol solution을 사용하여 제조사의 지침에 따라 total RNA를 추출하였다. 추출한 total RNA 1㎍를 cDNA 합성 kit (Promega)를 사용하여 제조사의 지침에 따라 cDNA를 합성하였다. 합성된 cDNA는 real time PCR을 이용하여 조절 유전자(CCR7, Fasn, IL-10, PD-L2, SOC S1, SOC S3, CD80, CD86, OX40L, RALHD 및 2ICOSL)의 발현을 확인하였다. 사용한 프라이머는 하기 표 1과 같다. 추가로 RNA sequencing은 No treatment 와 항-CD137 항체 처리 그룹에서 추출한 total RNA 1㎍을 사용하여 수행하였다.
유전자 염기서열 (5' -> 3') 서열번호
CCR7 F AAA GCA CAG CCT TCC TGT GT 1
R GAC CTC ATC TTG GCA GAA GC 2
Fasn F CTA CAG CAT CGA CGC CAG TC 3
R TTC CAC ACC AGG CAC AGG TA 4
IL-10 F AGG GTT ACT TGG GTT GCC AA 5
R CAC AGG GGA GAA ATC GAT GA 6
PD-L2 F GTA CCG TTG CCT GGT CAT CT 7
R GCC AGG ACA CTT CTG CTA GG 8
SOC S1 F AGT CGC CAA CGG AAC TGC TTC TT 9
R ACG TAG TGC TCC AGC TCG AAA 10
SOC S3 F GGG TGG CAA AGA AAA GGA G 11
R GTT GAG CGT CAA GAC CCA GT 12
CD80 F GCT GCT GAT TCG TCT TTC ACA A 13
R CGG CAA GGC AGC AAT ACC T 14
CD86 F ACT TAC GGA AGC ACC CAC GAT 15
R CCA CGG AAA CAG CAT CTG AGA 16
OX40L F TGC AGA GAT GGA AGG GGA AG 17
R AGA GAG TTG CAG GCA GAC AT 18
RALHD F GAC TTG TAG CAG CTG TCT TCA CT 19
R TCA CCC ATT TCT CTC CCA TTT CC 20
2ICOSL F GTG CTG CGT AGA GAA TGT GG 21
R GCT GTA CAG TCT TGG GTC CT 22
또한, 배양된 세포의 mreg DC2 표현형을 확인하기 위해, 48 시간 배양된 세포를 2.4G2 (10㎍/ml) 항체로 4℃ 조건에서 10분 동안 Fc blocking 하였다. 이후 세포를 CD11c-PE-cy7, MHC II-APCcy7, CD11b-FITC, PDL-2-PE, 및 PDL-1 APC 항체로 4℃ 조건에서 15분 동안 염색하였다. FACS(Fluorescence-Activated Cell Sorting) loading 5분전에 7AAD (5μl/106 cell; biolegend)를 처리하여 FACS 분석시 죽은 세포와 살아있는 세포를 구분하는데 이용하였다. mreg DC2는 살아있는 세포(7AAD-)에서 CD11chi MHC IIhi CD11b+ 인 cDC2에서 PDL1과 PDL2가 동시에 발현하는 세포로 특정하였다. 도 1에 나타난 바와 같이, 비장의 DC2를 항 CD137 항체와 CpG로 자극하는 조건에서 2일 동안 배양하면 mregDC의 표식인자를 가진 세포가 생성된다.
실시예 2. In vivo에서 mreg DC2 분화
In vivo에서 mreg DC를 분화시키기 위해, 만성 이식편대숙주병(Graft-versus-host disease, GVHD) 모델(DBA to BDF1)에서 mreg DC를 유도 분화하였다. 물리적으로 추출한 DBA2 생쥐의 비장세포를 8 x 107 cells/mice로 BDF1 생쥐에 정맥 주사하였다. 이와 동시에 PBS(대조군) 또는 200㎍의 항 CD137 항체를 각 그룹 당 5 마리씩 복강에 주사하였다. 주사 5일 후, Collagenase IV/DNase I을 이용하여 각각의 마우스로부터 비장세포를 회수하고, 2.4G2 (10㎍/ml) 항체로 4℃에서 10분 동안 반응시킨 후, CD11c-PE-cy7, MHC II-APCcy7, CD11b-FITC, PDL-2-PE, 그리고 PDL-1 APC 항체로 4℃에서 15분 동안 염색하였다. FACS loading 5분전에 7AAD (5μl/106 cell; biolegend)를 처리하였다. mreg DC2는 살아있는 세포(7AAD-)에서 CD11chi MHC IIhi CD11b+ 인 cDC2에서 PDL1과 PDL2가 동시에 발현하는 세포로 FACS를 이용하여 분석하였다.
도 2에 나타난 바와 같이, 만성 이식편대숙주질환을 유도할 때 항-CD137 항체를 주사하면 시험관에서 생성된 것과 동일한 mregDC의 표현형을 가진 DC가 분화한다. 그 결과 항 CD137 항체를 주사 맞은 생쥐에서 만성 이식편대숙주병 발생이 억제된다.
실시예 3. mreg DC2에 의한 GVHD 억제
상기 실시예 1 및 2로 분화된 mreg DC2가 만성 이식편대숙주병(GVHD) 모델(BM12 to C57BL/6)에서 치료 효능을 나타내는지 확인하였다. 물리적으로 추출한 BM12 마우스의 비장세포를 8 x 107 cells/mice로 야생형 마우스 C57BL/6 또는 CD137-/- 마우스에 정맥 주사하였다. 5 시간 후, 야생형 마우스 C57BL/6의 CD11b+ 비장 수지상세포를 CpG + anti-CD137 mAb로 24 시간 동안 처리하고, 이 세포를 5 x 105 cells/mice 로 GVHD가 유도된 야생형 생쥐 또는 CD137-/- 생쥐에 각각 정맥 주사하였으며, 이들을 AT-WT 또는 AT-CD137-/- 라 명명하였다. GVHD 유도 후 14일 뒤, 각 그룹에서 비장, 간, 대장, 및 혈청을 회수하여 GVHD가 억제되었는지 확인하였다.
도 3에 나타난 바와 같이, mreg DC2 주사된 그룹이 대조군에 비해 비장 세포 수의 증가, 간에서 질병정도(염증)의 감소, 그리고 혈청에서 자가항체 감소 등이 나타나는 것을 확인함으로써, mreg DC2 세포가 이식편대숙주병의 증상을 억제시키는 효과가 있음을 확인하였다.
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 즉, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다.

Claims (7)

  1. 수지상 세포에 항 CD137 항체 및 CpG를 처리하는 단계를 포함하는 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)로의 분화 방법.
  2. 제1항에 있어서, 상기 수지상 세포는 CD8-/CD11b+ 수지상 세포인 것을 특징으로 하는 분화 방법.
  3. 제1항에 있어서, 상기 mreg DC는 7AAD- CD11chi MHC IIhi CD11b+ 인 mreg DC 제2형 세포인 것을 특징으로 하는 분화 방법.
  4. 제1항에 있어서, 상기 mreg DC는 PDL1 및 PDL2가 동시에 발현되는 세포인 것을 특징으로 하는 분화 방법.
  5. 대상체에 항 CD137 항체를 투여하는 단계를 포함하는 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 in vivo에서 분화 방법.
  6. 제1항 내지 제4항 중 어느 한 항의 분화 방법에 따라 분화된 면역 조절 분자가 풍부한 성숙 수지상 세포(mreg DC)를 유효성분으로 포함하는 염증질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  7. 제6항에 있어서, 상기 염증질환은 이식편대숙주병, 장기이식거부반응, 자가면역질환, 천식, 아토피 및 만성염증질환으로 구성된 군에서 선택된 어느 하나인 것을 특징으로 하는 약학적 조성물.
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