WO2022210307A1 - 検査方法 - Google Patents

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WO2022210307A1
WO2022210307A1 PCT/JP2022/014180 JP2022014180W WO2022210307A1 WO 2022210307 A1 WO2022210307 A1 WO 2022210307A1 JP 2022014180 W JP2022014180 W JP 2022014180W WO 2022210307 A1 WO2022210307 A1 WO 2022210307A1
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sample
protein
beads
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PCT/JP2022/014180
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裕樹 坂本
恭平 椛嶋
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Lion Corp
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Lion Corp
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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G—PHYSICS
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    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals

Definitions

  • the present invention relates to a testing method capable of testing whether or not a sample contains neutralizing antibodies.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2021-063362 filed in Japan on April 2, 2021 and Japanese Patent Application No. 2022-030768 filed in Japan on March 1, 2022. , the contents of which are hereby incorporated by reference.
  • the virus infects via binding between spike protein (S1) contained in the virus and a receptor protein (angiotensin-converting enzyme 2, sometimes referred to as ACE2) possessed by human or animal cells. Therefore, having defense against viral infection means that the body possesses a "neutralizing antibody” capable of inhibiting the binding of S1 protein and ACE2.
  • S1 protein spike protein
  • ACE2 angiotensin-converting enzyme 2
  • Patent Document 1 discloses an instrument for immunochromatography in which proteins such as antibodies are immobilized on a nitrocellulose membrane.
  • Non-Patent Document 1 discloses a method for testing whether or not a specimen such as blood of a subject has a neutralizing antibody against the novel coronavirus (SARS-CoV-2) by immunochromatography.
  • SARS-CoV-2 novel coronavirus
  • FIG. 11 schematically shows a main part of the inspection method (immunochromatographic method) of Non-Patent Document 1.
  • S1 is the novel coronavirus spike protein
  • ACE2 is the receptor ACE2 present on the human cell membrane.
  • a tape-shaped nitrocellulose base material is provided with a region W1, a region W2, and a region W3 in order from the upstream side to the downstream side.
  • an analyte includes neutralizing antibodies and non-neutralizing antibodies.
  • Region W1 is pre-impregnated with S1 labeled with colloidal gold.
  • S1 on W1 contacts S1 on W1, causing neutralizing antibodies to bind to S1 to form complexes and non-neutralizing antibodies to bind to S1 to form complexes. .
  • These complexes flow further downstream while impregnating the base material and reach the region W2.
  • ACE2 is immobilized in advance in the region W2. Since S1 and ACE2 are known to bind in a defined manner and non-neutralizing antibodies do not inhibit the binding of S1 and ACE2, the non-neutralizing antibody-S1 complex is captured by ACE2 in region W2 and Stay at W2.
  • the neutralizing antibody inhibits the binding of S1 and ACE2, the neutralizing antibody-S1 complex is not captured by ACE2, and flows further downstream while infiltrating the substrate, reaching region W3. reach.
  • An anti-human antibody is previously immobilized on the region W3.
  • the neutralizing antibody-S1 complex is captured by this and remains in region W3. Since the labeling substance is bound to S1 in advance, it is possible to detect that the neutralizing antibody has reached the region W3 by detecting the labeling substance that has reached the region W3. Based on this result, it is determined that the specimen contains neutralizing antibodies.
  • Non-Patent Document 1 To summarize the inspection method of Non-Patent Document 1, the following three stages of treatment are continuously performed on the base material. 1) A specimen obtained from a human is brought into contact with labeled S1 on a substrate to obtain a treatment liquid. 2) contacting the treatment liquid with ACE2 immobilized on the substrate; 3) contacting the treatment liquid with the anti-human antibody immobilized on the substrate; In 1), a neutralizing antibody and a non-neutralizing antibody that may be contained in the specimen bind to S1 to form a complex. In 2) the non-neutralizing antibody-S1 complex is captured by ACE2 and removed from the treatment solution. In 3), the neutralizing antibody-S1 complex is captured by the anti-human antibody (immobilized on the substrate). Finally, the presence or absence of the neutralizing antibody-S1 complex captured in 3) is determined by detecting the labeling substance possessed by S1.
  • Non-Patent Document 1 In the inspection method of Non-Patent Document 1, the above 1) to 3) processes are performed in order by the sample flowing from the upstream side to the downstream side of the nitrocellulose base material, but the above 2) process is incomplete. However, there is a problem that the sample is flowed downstream and shifts to the process of 3) above. A small number of ACE2 immobilized on a small area on a nitrocellulose substrate may not be able to capture all non-neutralizing antibody-S1 complexes and prevent their flow downstream. For this reason, there is always the risk that the above process 2) will be insufficient. Also, in the method of Non-Patent Document 1, it is necessary to immobilize ACE2 on a nitrocellulose substrate.
  • ACE2 is a protein with a high steric structure, and has the problem that it is denatured by heating and its function is deactivated or attenuated. When the heating step is performed, there is always the risk that the treatment in 2) above will be insufficient. If the non-neutralizing antibody is not completely removed from the treatment solution in 2) above, not only the neutralizing antibody-S1 complex but also the non-neutralizing antibody-S1 complex is captured by the anti-human antibody in 3) above. .
  • the present invention provides a test method that can easily test whether or not a substance to be detected such as a neutralizing antibody is contained in a sample.
  • First processing A sample-treated liquid containing the sample and the active substance B to which the labeling substance is bound is obtained.
  • Second processing After the adsorbent having the particulate insoluble carrier supporting the substance C to be acted upon is brought into contact with the sample treatment liquid, the adsorption amount of the labeling substance to the adsorbent is measured.
  • the adsorption amount measured in the second process is smaller than a predetermined value, it is determined that the sample contains the substance A to be detected, and the adsorption amount measured in the second process is less than a predetermined value.
  • the inspection method according to any one of [1] to [5], wherein, when the value is larger than the value, it is determined that the sample does not contain the substance A to be detected.
  • the substance A to be detected is a neutralizing antibody
  • the agent B is a protein derived from a pathogen
  • the substance C to be detected is a protein derived from cells infected by the pathogen
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the active substance B is a part or all of the spike protein possessed by coronavirus
  • the substance to be acted C is a receptor possessed by human or animal cells.
  • the test method according to any one of [1] to [7], which is part or all of a somatic protein.
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the active substance B is a part or all of the spike protein possessed by coronavirus
  • the substance to be acted C is a receptor possessed by human or animal cells.
  • the labeling substance is colloidal gold, and in the second treatment, before the measurement, the adsorbent and the sample treatment liquid after contact with the adsorbent are combined.
  • Agent B, affected substance C, labeling substance, particulate insoluble for carrying out the test method according to any one of [1] to [9] or the test method described herein
  • Agent B subject substance C, labeling substance, particulate insoluble carrier, and particulate insoluble carrier for producing a test kit for testing whether or not substance A to be detected is contained in a sample
  • the test kit is the test method according to any one of [1] to [9] or the test method according to this specification used for
  • the test kit optionally contains one or more liquid agents containing one or more selected from the group consisting of an active substance B, an affected substance C, a labeling substance, a particulate insoluble carrier, and an adsorbent having a particulate insoluble carrier. It is preferable to have them in combination.
  • a test kit comprising a first liquid agent containing an active substance B and a labeling substance, and a second liquid agent containing an adsorbent in which a subject substance C is supported on a particulate insoluble carrier.
  • a sample contains a substance to be detected A (an example of an embodiment: a neutralizing antibody).
  • the substance to be acted C (an example of the embodiment: ACE2) is supported on an insoluble carrier, and the insoluble carrier and the sample treatment liquid are mixed, so that they can sufficiently come into contact with the components in the sample treatment liquid. Therefore, a sufficient chance of binding between the substance to be acted C and the acting substance B (one example of embodiment: S1) is obtained.
  • the substance to be acted C is carried on the insoluble carrier, it is easy to keep it in a wet state, and the binding force (binding function) of the substance to be acted C to the acting substance B can be sufficiently retained.
  • the substance to be acted C is carried on the insoluble carrier, even if the amount of one sample (the volume of the sample-treated liquid) increases, it is easy to increase the amount of the insoluble carrier that is brought into contact with the sample-treated liquid. be.
  • conventional immunochromatography can handle only a very small amount (several ⁇ L to several hundred ⁇ L) of a sample, but the present invention can increase the amount of one sample without upper limit.
  • FIG. 2 is a conceptual diagram of a treatment for binding streptoavidin to colloidal gold.
  • FIG. 2 is a conceptual diagram of the process for obtaining colloidal gold-labeled S1 protein.
  • FIG. 2 is a conceptual diagram of processing for obtaining agarose beads with ACE2 supported on the surface.
  • FIG. 2 is a conceptual diagram of how S1 protein-gold colloid is trapped on ACE2 beads in the presence of contaminants. Schematic diagram of S1 protein-gold colloid capture on ACE2 beads in the presence of non-neutralizing antibodies.
  • FIG. 2 is a conceptual diagram of how S1 protein-gold colloids are trapped on ACE2 beads in the presence of neutralizing antibodies.
  • FIG. 2 is a conceptual diagram of how S1 protein-gold colloids are trapped on ACE2 beads in the presence of neutralizing and non-neutralizing antibodies.
  • 1 is a photograph showing one of the results of Examples 1 and 2.
  • FIG. 1 is a photograph showing one of the results of Examples 1 and 2.
  • FIG. 4 is a graph showing one of the results of Examples 1-2.
  • FIG. 3 is a schematic diagram for explaining the essential points of the inspection method of Non-Patent Document 1; 10 is a graph showing the results of Examples 3-4. 10 is a graph showing the results of Examples 5-6. 10 is a photograph showing one of the results of Examples 7-8. 10 is a graph showing the results of Examples 7-8. 10 is a graph showing the results of Examples 9-10.
  • 11 is a photograph showing one of the results of Example 11.
  • FIG. 11 is a graph showing the results of Example 11.
  • FIG. 12 is a graph showing curves that approximate the results of Example 11;
  • One aspect of the present invention is a method for testing whether or not a substance to be detected A is contained in a sample.
  • the substance to be detected A binds to the active substance B, for example, thereby inhibiting the binding of the active substance B and the to-be-affected substance C in a predetermined manner.
  • the first process is a process for obtaining a sample-treated solution containing the sample and the active substance B to which the labeling substance is bound.
  • the second process is a process of contacting an adsorbent having particulate insoluble carriers carrying a substance C to be acted upon with the sample treatment liquid, and then measuring the adsorption amount of the labeling substance on the adsorbent.
  • the sample is an object to be inspected to determine whether or not the substance to be detected A is contained.
  • test objects include samples derived from living organisms.
  • viruses are also considered to be living organisms.
  • Biological samples include, for example, blood (whole blood), serum, plasma, lymph fluid, tears, saliva, runny nose, sputum, sebum, deposits in the nasal cavity and pharynx, urine, sweat, feces, and other body fluids. These biological samples can be made into liquid samples by dissolving or dispersing them in a suitable liquid medium as necessary.
  • the substance to be detected A is a substance that is qualitatively or quantitatively detected by the testing method of this aspect.
  • examples of such substances include, for example, substance a that inhibits interaction (for example, binding to each other) of substance b and substance c.
  • the substance A to be detected is, for example, a substance derived from a living body, and includes proteins, lipids, and nucleic acids.
  • Examples of the protein include antibodies. Antibodies are generally known to bind to specific sites (epitopes) of antigens (antigen-antibody reaction). An example of an antigen is the pathogen itself or one derived from the pathogen. Antibodies that inhibit the function of an antigen by binding to it are called neutralizing antibodies. On the other hand, antibodies that bind antigen but do not inhibit the function of the bound antigen are called non-neutralizing antibodies.
  • the acting substance B and the acted substance C interact with each other through physical contact.
  • the agonist B and the affected substance C bind to each other in a defined manner.
  • the substance to be detected A binds to the acting substance B, thereby inhibiting the binding of the acting substance B and the to-be-affected substance C in a predetermined manner. is preferred.
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the active substance B is a biological substance (e.g., protein) derived from a pathogen
  • the substance to be tested C is derived from cells infected by the pathogen.
  • a biological substance e.g, protein
  • the biological substance derived from the pathogen may be in a native state or an intact state when it exists in nature, and the function of binding in the predetermined manner is not impaired. It may be in an artificially modified state within the range.
  • pathogen examples include viruses such as coronaviruses and influenza viruses.
  • Coronaviruses include, for example, the novel coronavirus (SARS-CoV-2).
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the acting substance B is a part or all of the spike protein possessed by the coronavirus
  • the substance to be acted C is the substance that the coronavirus infects.
  • a part or all of a receptor protein possessed by human or animal cells is included.
  • a portion of the spike protein includes, for example, a binding domain (RBD) for the receptor.
  • the receptor include angiotensin converting enzyme 2 (ACE2) and sialic acid receptor.
  • ACE2 angiotensin converting enzyme 2
  • the novel coronavirus is known to invade and infect cells by binding a spike protein (eg, S1 protein) to ACE2 in a predetermined manner.
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the active substance B is a part or all of the HA protein possessed by the influenza virus
  • the substance to be acted C is the influenza virus that infects it.
  • a part or all of a sialic acid or receptor protein possessed by human or animal cells is included.
  • Influenza viruses are known to enter and infect cells by binding HA proteins to voltage-gated Ca 2+ channels (receptors) having sialic acid in a predetermined manner.
  • a method for obtaining the sample-treated liquid containing the sample and the agent B to which the labeling substance is bound includes, for example, a method in which the sample and the agent B are brought into contact with each other in any liquid. .
  • blood and S1 protein (hereinafter sometimes referred to as S1) are brought into contact with each other in a pH buffer solution to obtain a sample-treated liquid containing them.
  • S1 protein hereinafter sometimes referred to as S1
  • the pH buffer solution is adjusted to a pH range in which the complex is stably formed in the sample treatment solution.
  • a labeling substance is preferably bound in advance to the active substance B used in the first treatment. That is, it is preferable that the labeling substance is bound to the acting substance B in advance before the substance to be detected A binds to the acting substance B in the sample treatment liquid.
  • the labeling substance is not particularly limited as long as its presence can be detected by any method. Examples of the labeling substance include metal particles, dyes, pigments, enzymes, fluorescent substances, luminescent substances, radioisotopes, biotin, avidin or streptavidin, polylysine, polyhistidine and the like. Also included are carriers containing or carrying any of these labeling substances. Such carriers include, for example, particles formed from polymer compounds such as latex, agarose and polystyrene, and particles formed from inorganic substances such as silica and metals.
  • Preferred labeling substances include colloidal gold (gold particles that can be dispersed in a dispersion medium such as water to form a colloidal state).
  • the color of colloidal gold varies depending on the state of the liquid and the particle size of the fine gold particles. may be understood to be microparticles of
  • the shape of the colloidal gold is not particularly limited, and examples thereof include various shapes such as spherical, rod-like, plate-like, and sea urchin-like.
  • the average particle size of gold colloid is preferably, for example, 5 nm to 400 nm.
  • the average particle size of the colloidal gold to be bound to the S1 protein is preferably 10 nm to 80 nm because of the ease of binding and the ease of detection.
  • colloidal gold commonly used for immunostaining can be used as the labeling substance.
  • Preferred labeling substances other than colloidal gold include polystyrene microspheres (having polystyrene as a constituent). Standards are commercially available in which the colorant is dyed internally in polystyrene. The color of polystyrene microspheres varies depending on the type of coloring agent, and specific examples include red, yellow, black, blue, purple, orange, and green. Blue and red are preferred from the viewpoint of sensitivity and accuracy, and in this case, polystyrene microspheres may be understood to be blue and red fine particles.
  • the average particle size of polystyrene microspheres is preferably, for example, 0.02 ⁇ m to 150 ⁇ m.
  • the average particle size of the polystyrene microspheres to be bound to the S1 protein is preferably 0.1 ⁇ m to 20 ⁇ m for easy binding and easy detection.
  • the labeling substance may be directly bound to the active substance B, or may be indirectly bound via a connector (linker).
  • Methods for binding the labeling substance to the agent B include, for example, passive adsorption by electrostatic interaction, hydrophobic interaction, hydrogen bonding, Van der Waals force and the like.
  • a covalent bond formed by reaction of a reactive group such as a carboxy group, amino group, thiol group, or hydroxy group possessed by at least one of the labeling substance and the active substance B can also be mentioned.
  • Affinity binding between protein A, protein G, or protein L possessed by one of the labeling substance and active substance B and an antibody or a portion thereof possessed by the other can also be mentioned.
  • Affinity binding between avidin or streptavidin in one of the labeling substance and active substance B and biotin in the other can also be mentioned.
  • Labeling of the agent B with the labeling substance can be performed by common techniques of bioexperimentation (passive adsorption labeling, covalent labeling, affinity binding labeling).
  • the insoluble carrier for supporting the substance to be acted C used in the second treatment may be any carrier capable of supporting the substance to be acted C in a state where it can be acted upon from the outside.
  • the term "insoluble” refers to the property of being able to retain its original form without dissolving in the sample treatment solution.
  • materials constituting the insoluble carrier include polysaccharides such as agarose, dextran, cellulose and nitrocellulose, and hydrogels formed from polymers such as acrylamide, which are commonly used in bio-experiments. Synthetic resins such as polystyrene and polypropylene, ceramics, and metals (magnetic materials) are also included.
  • the color of the insoluble carrier may be any color different from that of the labeling substance because it facilitates identification of the color of the labeling substance in the colorimetric method described below. is preferably white. Insoluble carriers of these colors can be easily obtained by forming the insoluble carrier with the materials described above. Examples of the form of the insoluble carrier include particulate, thread (strand), network, porous, fiber, and the like. However, the insoluble carrier is preferably different from the nitrocellulose membrane used in immunochromatography, that is, it is an insoluble carrier other than a nitrocellulose sheet (film, membrane). From the viewpoint of increasing the efficiency of contact with the sample treatment liquid, it is more preferably particulate.
  • the shape of the particles is not particularly limited, and includes various shapes such as spherical, rod-like, plate-like, and sea urchin-like.
  • the average particle diameter of the particles is, for example, preferably 1 ⁇ m to 10 mm, more preferably 10 ⁇ m to 1000 ⁇ m, even more preferably 20 ⁇ m to 500 ⁇ m, and particularly preferably 40 ⁇ m to 200 ⁇ m.
  • it is at least the lower limit of the above range, it becomes easy to support a sufficient amount of the substance C to be acted on the surface of the particles. It also facilitates the separation of particles and supernatant. If it is equal to or less than the upper limit of the above range, the dispersibility in the sample-treated liquid increases, and the frequency of contact with the sample-treated liquid in the second treatment increases, so contact with the active substance B becomes easier.
  • the average particle size of the particles can be measured by a low-tap method, a laser diffraction scattering method, a Coulter counter electrical resistance method, an optical microscope method, or the like, and measured by a Coulter counter electrical resistance method or an optical microscope method. It is preferable that the number distribution average particle size is determined.
  • particulate insoluble carriers examples include commercially available agarose beads (average particle size: about 40 ⁇ m to 200 ⁇ m) and magnetic beads (average particle size: about 1 ⁇ m to 10 ⁇ m) used in bio-experiments.
  • the substance to be acted C may be directly bound to the insoluble carrier, or may be indirectly bound via a connector (linker).
  • Methods for binding the substance C to be acted to the insoluble carrier include, for example, passive adsorption by electrostatic interaction, hydrophobic interaction, hydrogen bonding, Van der Waals force and the like. Further examples include covalent bonds formed by reaction of reactive groups such as carboxy groups, amino groups, thiol groups, and hydroxy groups possessed by at least one of the substance to be acted C and the insoluble carrier.
  • a covalent bond formed by a reaction between an alkyne (alkynyl group) possessed by one of the substance to be acted C and the insoluble carrier and an azide (azido group) possessed by the other is exemplified.
  • Affinity binding between protein A, protein G, or protein L possessed by one of the substance to be acted C and the insoluble carrier and an antibody or a portion thereof possessed by the other is also possible.
  • Affinity binding between the avidin or streptavidin possessed by one of the substance to be acted C and the insoluble carrier and the biotin possessed by the other can also be mentioned.
  • General bioexperimental techniques passive adsorption labeling, covalent binding labeling, affinity binding labeling
  • the insoluble carrier of the adsorbent carries the substance C to be acted upon, and it is easy to store the adsorbent in a state in which the substance C to be acted upon is kept stable. For example, it can be stored in a temperature controlled pH buffer.
  • the substance to be acted C can be maintained in a wet state without drying even once. Therefore, when the substance C to be acted upon is a protein, denaturation of the substance to be acted upon by drying can be prevented, and the binding force (binding function) to the acting substance B can be sufficiently maintained.
  • the method of bringing the adsorbent into contact with the sample treatment liquid includes, for example, a method of adding the adsorbent to the sample treatment liquid.
  • a method of adding the adsorbent composed of agarose beads supporting ACE2 to the sample treatment liquid and gently stirring the mixture.
  • Another example is a method in which the sample-treated liquid is allowed to flow through a column filled with an adsorbent composed of agarose beads supporting ACE2.
  • the amount of the subject substance C contained in the adsorbent is larger than the amount of the active substance B contained in the sample treatment liquid. At this ratio, a part of the acting substance B binds to saturate the adsorbent substance C to be acted upon, and the remaining acting substance B cannot bind to the adsorbent and remains in the sample treatment solution. can be prevented.
  • the quantitative ratio of each substance may be determined on a mass basis, or may be determined on a number basis (molar ratio).
  • the adsorbent can be labeled with the labeling substance by utilizing the binding property of S1 and ACE2 of the adsorbent. can.
  • the sample treatment liquid contains a neutralizing antibody that inhibits the binding of S1 and ACE2, at least part of the adsorbent is not labeled.
  • the method for measuring the amount of adsorption of the labeling substance on the adsorbent is not particularly limited as long as it is a method capable of qualitatively or quantitatively measuring the labeling substance, and is appropriately determined according to the properties of the labeling substance. selected. For example, when the labeling substance can be visually recognized as a color different from that of the adsorbent, the adsorption of the labeling substance to the adsorbent can be determined by measuring the color change of the adsorbent. Further, by measuring the degree of color change of the adsorbent, the labeled substance adsorbed to the adsorbent can be quantified.
  • the method for measuring the change in color of the adsorbent is not particularly limited, and a known colorimetric method can be applied. Examples thereof include visual measurement, image analysis measurement, and colorimetric analyzer measurement.
  • the second process it is preferable to separate the adsorbent from the sample treatment liquid after contact with the adsorbent before performing the measurement.
  • the labeling substance is located away from the adsorbent, so that the accuracy of the measurement can be improved.
  • Methods for sorting include, for example, natural sedimentation, centrifugation, filtration, magnetic separation and the like. After sorting, it is preferable to perform the above measurement on the sorted adsorbent.
  • the adsorption amount measured in the second process is smaller than a predetermined value that is arbitrarily determined in advance, it can be determined that the analyte A is contained in the sample.
  • the adsorption amount is larger than the predetermined value, it can be determined that the analyte A is not contained in the sample.
  • the amount of the substance A to be detected contained in the specimen is large as the adsorption amount becomes smaller than the upper limit saturation value.
  • the adsorption amount reaches the upper limit saturation value it can be considered that the amount of the substance to be detected A contained in the sample is below the detection limit.
  • the concentration of the substance to be detected A is increased stepwise, the correspondence relationship between the concentration of the substance to be detected A and the adsorption amount is investigated in advance, and a calibration curve is prepared to prepare a calibration curve.
  • the concentration of the contained substance to be detected A can be estimated with high accuracy.
  • the color of the supernatant is measured to eliminate the influence of the color of the sample itself. can.
  • the specimen is blood
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the acting substance B is S1
  • the substance to be acted C is ACE2
  • the labeling substance is colloidal gold.
  • colloidal gold is bound with streptavidin (see FIG. 1). If S1 protein conjugated with biotin is prepared in advance and gold colloid conjugated with streptavidin is mixed with it, the gold colloid-labeled S1 protein "S1 protein-gold colloid" is obtained (see FIG. 2).
  • agarose beads "ACE2 beads” having ACE2 supported on the surface can be obtained (see FIG. 3).
  • Blood normally contains contaminants that do not interact with ACE2.
  • the ACE2 beads are further mixed, and the S1 protein-gold colloid is captured by the ACE2 beads (see FIG. 4). In other words, contaminants can be ignored because they do not inhibit the binding of ACE2 and S1.
  • blood contains non-neutralizing antibodies
  • S1 protein-gold colloid when this blood is mixed with S1 protein-gold colloid, the non-neutralizing antibodies bind to the S1 protein.
  • the specimen is blood
  • the substance to be detected A is a neutralizing antibody
  • the acting substance B is S1
  • the substance to be acted C is ACE2
  • the labeling substance is colloidal gold.
  • the inspection instrument for the case will be described.
  • blood whole blood
  • contaminants can usually be ignored because contaminants do not inhibit the binding of ACE2 and S1, but red blood cells interfere with the colorimetric test to obtain accurate values. Therefore, it is preferable to perform pretreatment to obtain serum or plasma before the first treatment, and the pretreatment, first treatment, and second treatment are incorporated into one test instrument. Morphology is preferred.
  • the filter part of a filter-integrated filtration vial (for example, Cytiva's "Mini Uni G") is replaced with a filter made of glass fiber filter paper or a porous sheet with a pore size that does not completely allow blood cell components to pass through.
  • -Gold colloid is filled in the sample injection part, and the filtrate collection part is filled with "ACE2 beads".
  • the "S1 protein-gold colloid” may be impregnated in a filter instead of filling the sample injection part, or a separately impregnated filter may be attached.
  • the pretreatment and the first treatment proceed at the same time, and the sample treated liquid that has undergone the first treatment is collected in the filtrate collection part.
  • a blood coagulation factor such as thrombin
  • the filter material and pore size are not limited. Since the second treatment is performed in the filtrate collection part, the S1 protein-gold colloid is captured by the ACE2 beads when the neutralizing antibody is not contained. On the other hand, less S1 protein-gold colloids are captured by ACE2 beads when neutralizing antibodies are included.
  • the amount of neutralizing antibody can be estimated by preparing a color sample corresponding to the amount of neutralizing antibody in advance and comparing it with the color of the ACE2 beads.
  • a test instrument is a centrifugal tube body with a pad attached to the head (for example, Eiken Chemical's "Easy Tube 'Eiken'"). and chondroitin sulfate that agglutinates, a test device containing "ACE2 beads".
  • the "S1 protein-gold colloid" may be impregnated in the pad portion without being contained in the tube main body, or a separately impregnated pad may be attached.
  • the blood is impregnated into the pad portion and the test instrument is centrifuged with a centrifuge, the blood is first treated in the pad portion or the tube body, and the pretreatment is completed by passing through the chondroitin sulfate separation portion. Subsequently, a second treatment is performed by contact with "ACE2 beads", so that the S1 protein-gold colloid is captured on the ACE2 beads if the blood does not contain neutralizing antibodies. On the other hand, less S1 protein-gold colloids are captured by ACE2 beads when neutralizing antibodies are included.
  • the amount of neutralizing antibody can be estimated by preparing a color sample corresponding to the amount of neutralizing antibody in advance and comparing it with the color of the ACE2 beads.
  • a 0.1% w/v BSA solution was obtained by adding 30 mM Tris buffer (pH 7.5) to BSA (bovine serum albumin). After suspending the above precipitate a in 1800 ⁇ L of BSA solution, the suspension was centrifuged to precipitate again (buffer replacement by suspension/centrifugation) was repeated once. The liquid obtained in this manner was used in subsequent experiments as a "streptavidin-gold colloid liquid" (see Fig. 1).
  • the colloidal gold aggregate of fine gold particles is a labeling substance that looks red.
  • Example preparation> Commercially available neutralizing antibody (mouse-derived neutralizing antibody) that has been confirmed to bind to a specific site (RBD domain) of S1 of the new coronavirus (SARS-CoV-2) and inhibit the binding of S1 and ACE2
  • the solution concentration 1 mg/ml
  • an antibody that binds to the novel coronavirus S1 protein but does not inhibit the binding of S1 to ACE2 is called a non-neutralizing antibody.
  • the above biotin-S1 protein used in this example is a recombinant protein and contains a His-tag on the C-terminal side that does not inhibit the binding function of S1 to ACE2.
  • an antibody that binds to the His tag was used as a non-neutralizing antibody.
  • a solution (concentration 1 mg/ml) of a commercially available His-tag antibody (derived from mouse) was used as "specimen 2" in subsequent experiments.
  • Example 1 (First processing) 49 ⁇ L of “S1 protein-gold colloid solution” was added to 1 ⁇ L of “specimen 1” and allowed to react at 4° C. for 60 minutes while gently stirring (see FIG. 6).
  • Example 2 (First processing) 49 ⁇ L of “S1 protein-gold colloid solution” was added to 1 ⁇ L of “specimen 2” and allowed to react at 4° C. for 60 minutes while gently stirring (see FIG. 5).
  • Example 2 since it is known in advance that "specimen 2" used in Example 2 does not contain neutralizing antibodies, the results of Example 2 may be understood to be tests that determine the above reference values. . That is, when the measured value “66.2” of Example 2 is taken as a reference value, the measured value “48.6” of Example 1 is significantly below the reference value, so the neutralizing antibody in "specimen 1" From the measurement results of Example 1, it can be determined that the "specimen 1" contains a neutralizing antibody without knowing in advance that it contains .
  • Example 2 Even when using a specimen S that is unknown whether or not it contains neutralizing antibodies, it is tested in the same manner as in Example 1, and if the measurement result is below a predetermined reference value, the specimen S It can be determined that the sample S contains neutralizing antibodies, and if the measurement result is equivalent to a predetermined reference value, it can be determined that the sample S does not contain neutralizing antibodies.
  • ⁇ Labeling agent B 1.5 ⁇ L of biotin-S1 protein solution (50 ⁇ g/mL), 7 ⁇ L of 30 mL Tris buffer (pH 7.0) and 0.5 ⁇ L of 10% Tween 20 solution (dissolved in the Tris buffer) were added to 40 ⁇ L of 15 nm streptavidin-gold colloid solution. ) was added. This mixed solution was incubated for 5 minutes with stirring at room temperature, and the resulting solution was used in subsequent experiments as "S1 protein-gold colloidal solution (15 nm)". Similarly to the above, 60 nm streptavidin-gold colloidal solution was used to prepare "S1 protein-gold colloidal solution (60 nm)" and used for subsequent experiments.
  • Example 3 (First processing) 49 ⁇ L of “S1 protein-gold colloid solution (15 nm)” was added to 1 ⁇ L of “specimen 1” and allowed to react at room temperature for 30 minutes while gently stirring.
  • Example 4 The procedure was carried out in the same manner as in Example 3, except that the type of specimen was changed to "specimen 2". The color of the finally precipitated beads was visually dark red. The results are shown in the graph of FIG. 12 (labeled as non-neutralizing antibody). The measured bead redness was 105.7 (arbitrary units).
  • Example 5 The procedure was carried out in the same manner as in Example 3, except that the type of active substance B was changed to "S1 protein-gold colloidal solution (60 nm)". The results are shown in the graph of FIG. 13 (labeled as neutralizing antibody). The measured bead redness was 114.2 (arbitrary units).
  • Example 6 The procedure was carried out in the same manner as in Example 5, except that the type of specimen was changed to "specimen 2". The results are shown in the graph of FIG. 13 (labeled as non-neutralizing antibody). The measured bead redness was 128.0 (arbitrary units).
  • Example 7 (First processing) To 2 ⁇ L of “specimen 1”, 40 ⁇ L of “blue colored S1 solution” and 8 ⁇ L of PBS were added and allowed to react at room temperature for 30 minutes while gently stirring.
  • Example 8 The procedure was carried out in the same manner as in Example 7, except that the type of specimen was changed to "specimen 2". The color of the beads finally obtained by precipitation was visually dark blue. The results are shown in the graph of FIG. 15 (labeled as non-neutralizing antibody). The measured bead blueness was 151.8 (arbitrary units).
  • Example preparation (2) A solution (concentration: 1 mg/mL) was used as "specimen 3" in subsequent experiments.
  • An antibody that binds to the influenza virus HA protein but does not inhibit the binding of the HA protein to sialic acid is called a non-neutralizing antibody.
  • the HA protein used in the examples below is a recombinant protein and contains a His-tag on the C-terminal side that does not inhibit the binding function of the HA protein to sialic acid. Therefore, antibodies that bind to the His tag were also used as non-neutralizing antibodies in the Examples described later. Specifically, the "specimen 2" was used.
  • ⁇ Labeling agent B (4)> 20 ⁇ L of 100 mM Tris buffer (pH 7.0) was added to 500 ⁇ L of the 20 nm colloidal gold solution, and then 50 ⁇ L of HA protein (prepared with 4 mM Tris buffer (pH 7.0) to 250 ⁇ g/mL) was added. was added and the mixture was incubated for 30 minutes at room temperature with agitation. By this reaction, a reaction solution in which HA protein was passively bound to gold colloid was obtained. Subsequently, 4 mM Tris buffer (pH 7.0) was added to bovine serum albumin (BSA) to obtain a BSA solution adjusted to a BSA concentration of 0.1% w/v.
  • BSA bovine serum albumin
  • Example 9 (First processing) 49 ⁇ L of “HA protein-gold colloid solution” was added to 1 ⁇ L of “specimen 3” and allowed to react at room temperature for 10 minutes while gently stirring.
  • sample preparation (3) A human plasma sample that does not contain a neutralizing antibody against the new coronavirus is designated as "specimen 4". They were used in subsequent experiments as “specimen 5", “specimen 6", “specimen 7” and “specimen 8".
  • IU is a notation that abbreviates International Unit, and the same unit is a unit that indicates the strength of neutralizing activity against the new coronavirus determined by the World Health Organization.
  • ⁇ Labeling agent B (5)> Add 20 ⁇ L of 100 mM sodium phosphate buffer (pH 7.0) to 500 ⁇ L of 20 nm colloidal gold solution, then add 50 ⁇ L of unlabeled S1 protein (prepared with PBS to 500 ⁇ g/mL), The mixture was incubated for 30 minutes with stirring at room temperature. This reaction yielded a reaction solution in which the unlabeled S1 protein was passively bound to the gold colloid. Subsequently, PBS was added to bovine serum albumin (BSA) to obtain a BSA solution adjusted to a BSA concentration of 0.1% w/v.
  • BSA bovine serum albumin
  • Example 11 (First processing) Add 6 ⁇ L of “S1 protein-gold colloid solution (#2)” to each of 10 ⁇ L of “specimen 4,” “specimen 5,” “specimen 6,” “specimen 7,” “specimen 8,” and “PBS”. 16 ⁇ L of “colloidal gold-specimen mixture” or “colloidal gold-PBS mixture” was obtained. These were allowed to react for 30 minutes at room temperature with gentle stirring.
  • each reaction solution was allowed to stand for about 10 minutes to naturally precipitate the beads.
  • a microtube containing each reaction solution in this state is shown in the photograph of FIG.
  • the color of the supernatant in the positive control was almost colorless and transparent, and the color of the precipitated beads was dark red, not the original white.
  • the color of the supernatant was dark red, and the color of the precipitated beads was pale red, close to the original white.
  • the reaction solution to which "specimen 4" to "specimen 8" were added the higher the neutralization activity (IU/mL), the redder the color of the supernatant, and the color of the precipitated beads showed a light red color close to the original white color. rice field.
  • Step 1 The "redness of beads” and the “redness of supernatant” were measured for each sample, and the ratio ( ⁇ ) represented by “redness of beads”/"redness of supernatant” was calculated. The reason for calculating this ratio ( ⁇ ) is to reduce the influence of plasma, which generally exhibits a yellow or red color, on the “redness of the beads”.
  • Step 2 The calculated value of the following formula was taken as the neutralizing activity (%). ⁇ ((specimen ⁇ )-(positive control ⁇ ))/((negative control ⁇ )-(positive control ⁇ )) ⁇ 100 Positive control is an abbreviation for positive control, and negative control is an abbreviation for negative control.
  • the values shown in Table 1 are obtained.
  • the measurement value of redness is an arbitrary unit.
  • the 20 nm colloidal gold liquid used was product name: Gold Nanoparticle Size Optimization Panel, manufacturer: Cytodiagnostics, model number: G-SIZE-01.
  • the gold colloid has an average particle size of 20 nm.
  • Streptavidin was manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd., model number: 192-17864.
  • the protein A beads used were product name: Immunoprecipitation Starter Pack, manufacturer: Cytiva, model number: 17-6002-35.
  • the bead body is made of agarose (trade name: Sepharose), and has a particle diameter range of 45 to 165 ⁇ m and an average particle diameter of 90 ⁇ m.
  • the mouse-derived neutralizing antibody used was product name: SARS-CoV-2 Neutralizing Antibody (5B7D7), manufacturer: Genscript, model number: A02057-100.
  • the mouse-derived non-neutralizing antibody used was the product name: Anti-6X His tag antibody [HIS.H8], manufacturer: Abcam, model number: ab18184.
  • the 15 nm streptavidin-gold colloid solution used was a product name: Streptavidin, Gold Colloidal Particle 15 nm, manufacturer: Cytodiagnostics, model number: AC-15-04-05.
  • the colloidal gold is bound to streptavidin, and the colloidal gold portion has an average particle size of 15 nm.
  • the 60 nm streptavidin-gold colloidal liquid used was a product name: Streptavidin, Gold Colloidal Particle 60 nm, manufacturer: Cytodiagnostics, model number: AC-60-04-05.
  • the biotin-ACE2 solution used was product name: Human ACE2/Angiotensin-Converting Enzyme 2 Protein (His Tag), Biotinylated, manufacturer: SinoBiological, model number: 10108-H08H-B.
  • the streptavidin bead suspension used was product name: Streptavidin Sepharose High Performance, manufacturer: Cytiva, model number: 17511301.
  • the beads had an average particle size of 34 ⁇ m, and were made of Sepharose beads with streptavidin supported on their surfaces.
  • the alkyne bead suspension used was product name: Alkyne Agarose, manufacturer: Merck, model number: 901982-2ML.
  • the particle size ranges from 50 to 150 ⁇ m, and the surface of agarose beads is provided with functional groups having terminal alkynes.
  • the HA protein used was product name: Influenza A H10N8 (A/Jiangxi-Donghu/346/2013) Hemagglutinin/HA Protein (His Tag), manufacturer: SinoBiological, model number: 40359-V08B.
  • sialic acid azide solution product name: Disialylnonasaccharide- ⁇ -ethylazide, manufactured by Tokyo Kasei Kogyo, model number: D4217 was used.
  • the HA neutralizing antibody used was product name: Influenza A H10 Hemagglutinin/HA Neutralizing Antibody, manufacturer: SinoBiological, model number: 40359-M001.
  • the plasma sample used was the product name: 1st International Reference Panel for anti-SARS-CoV-2 immunoglobulin, manufacturer: National Institute for Biological Standards and Control, model number: 20/268.

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Abstract

被検出物質Ａが検体に含まれるか否かを検査する方法であって、前記被検出物質Ａは、作用物質Ｂに結合することにより、前記作用物質Ｂと被作用物質Ｃが所定の様式で結合することを阻害するものであり、少なくとも下記の第１処理～第２処理をこの順で行う、検査方法。（第１処理：前記検体と、標識物質が結合した前記作用物質Ｂと、を含む検体処理液を得る。）（第２処理：前記被作用物質Ｃを担持した粒子状不溶性担体を有する吸着体を、前記検体処理液に接触させた後、前記吸着体に対する前記標識物質の吸着量を計測する。）

Description

検査方法
　本発明は、検体に中和抗体が含まれるか否かを検査することが可能な検査方法に関する。本願は、２０２１年４月２日に、日本に出願された特願２０２１－０６３３６２号、及び２０２２年３月１日に、日本に出願された特願２０２２－０３０７６８号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　新型コロナウイルスが蔓延している現状、同ウイルスの感染に対する防御力を有しているか否かを判定することは大きな意義がある。同ウイルスは、ウイルス中に含まれるスパイクタンパク質（Ｓ１）とヒト又は動物の細胞が有する受容体タンパク質（アンジオテンシン変換酵素２、ＡＣＥ２と称する場合がある）との結合を介して感染する。従って、ウイルス感染に対する防御力を有するということは、Ｓ１タンパク質とＡＣＥ２の結合を阻害することが可能な「中和抗体」を体内に保有していることと言い換えられる。現在、被験者から得た血液などの検体中に中和抗体を検出する手法には、実際のウイルスを用いて行う培養細胞実験やＥＬＩＳＡ法と呼ばれる技術が存在している。しかし、高度な専門技術や専用の設備を要するため、検査を簡便に実施することができない。
　特許文献１には、ニトロセルロース膜に抗体等のタンパク質を固定したイムノクロマト法に関する器具が開示されている。
　非特許文献１には、イムノクロマト法によって、被験者の血液等の検体に、新型コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）に対する中和抗体があるか否かを検査する方法が開示されている。
特開２００９－０８５７５１号公報
medRxiv preprint"A lateral flow test detecting SARS-CoV-2 neutralizing antibodies"Nan Zhang, Shuo Chen, Jin V. Wu, Xinhai Yang, Jianfu J. Wang、doi: https://doi.org/10.1101/2020.11.05.20222596
　図１１に、非特許文献１の検査方法（イムノクロマト法）の要部を模式的に示す。ここで、Ｓ１は新型コロナウイルスのスパイクタンパク質であり、ＡＣＥ２はヒト細胞膜に存在する受容体ＡＣＥ２である。
　基本構成として、テープ状のニトロセルロース基材の上流側から下流側に向けて順に、領域Ｗ１、領域Ｗ２、領域Ｗ３が設けられている。
　領域Ｗ１の上流側に検体を滴下し、基材に含浸させると、検体は下流側へ向けて基材に浸潤しながら流れる。検体の一例は中和抗体と非中和抗体を含む。領域Ｗ１には、金コロイドで標識されたＳ１が予め含浸されている。検体がＷ１に到達すると、検体はＷ１上でＳ１と接触し、これにより、中和抗体がＳ１に結合して複合体を形成し、非中和抗体もＳ１に結合して複合体を形成する。これらの複合体はさらに下流側へ向けて基材に浸潤しながら流れて、領域Ｗ２に到達する。
　領域Ｗ２には、ＡＣＥ２が予め固定化されている。Ｓ１とＡＣＥ２は所定の様式で結合することが知られており、非中和抗体はＳ１とＡＣＥ２の結合を阻害しないので、非中和抗体－Ｓ１複合体は領域Ｗ２においてＡＣＥ２に捕捉され、領域Ｗ２に留まる。一方、中和抗体はＳ１とＡＣＥ２の結合を阻害するので、中和抗体－Ｓ１複合体はＡＣＥ２に捕捉されることなく、さらに下流側へ向けて基材に浸潤しながら流れて、領域Ｗ３に到達する。
　領域Ｗ３には、抗ヒト抗体が予め固定化されている。中和抗体－Ｓ１複合体はこれに捕捉され、領域Ｗ３に留まる。Ｓ１には予め標識物質が結合されているので、領域Ｗ３に到達した標識物質を検出することにより、中和抗体が領域Ｗ３に到達したことを検知することができる。この結果から、検体に中和抗体が含まれると判定する。
　非特許文献１の検査方法を要約すると、次の３段階の処理を基材上で連続的に行う。
１）ヒトから得た検体を、標識されたＳ１と基材上で接触させ、処理液を得る。
２）処理液を、基材に固定されたＡＣＥ２と接触させる。
３）処理液を、基材に固定された抗ヒト抗体と接触させる。
１）において、検体に含まれ得る中和抗体と非中和抗体がＳ１に結合して複合体となる。２）において、非中和抗体－Ｓ１複合体がＡＣＥ２に捕捉され、処理液から除かれる。
３）において、中和抗体－Ｓ１複合体が抗ヒト抗体に捕捉される（基材上に固定される）。
最後に、３）で捕捉された中和抗体－Ｓ１複合体の有無を、Ｓ１が有する標識物質を検知することにより判定する。
　非特許文献１の検査方法では、ニトロセルロース基材の上流側から下流側へ検体が流れることによって上記１）～３）の処理が順に行われるが、上記２）の処理が不完全であっても検体は下流側に流され、上記３）の処理に移行してしまう問題がある。ニトロセルロース基材上の小さな面積に固定された少数のＡＣＥ２が、全ての非中和抗体－Ｓ１複合体を捕捉して下流側への流出を防ぐことができない場合がある。このため、上記２）の処理が不充分になるリスクが常につきまとう。
　また、非特許文献１の方法では、ＡＣＥ２をニトロセルロース基材上に固定する必要がある。固定処理には乾燥が必要であり、製造プロセスの効率化のために加熱を行うことが多い。ＡＣＥ２は立体的に高度な構造を有するタンパク質であり、加熱により変性し、機能が失活又は減弱するという問題がある。加熱工程を行う場合、上記２）の処理が不十分になるリスクが常につきまとう。
　上記２）において処理液から非中和抗体が完全に除かれない場合、上記３）において中和抗体－Ｓ１複合体だけでなく、非中和抗体－Ｓ１複合体が抗ヒト抗体に捕捉される。この結果、検体中に中和抗体が存在せず、非中和抗体のみが存在する場合においても、上記判定において、陽性（中和抗体が存在する）という誤った判定（偽陽性）がなされてしまう、という問題がある。
また、加熱せずに乾燥を行うためには長時間の乾燥工程が必要となり、製造の効率が著しく低下する。
　本発明は、中和抗体等の被検出物質が検体に含まれるか否かを簡便に検査できる検査方法を提供する。
［１］　被検出物質Ａが検体に含まれるか否かを検査する方法であって、前記被検出物質Ａは、作用物質Ｂに結合することにより、前記作用物質Ｂと被作用物質Ｃが所定の様式で結合することを阻害するものであり、少なくとも下記の第１処理～第２処理をこの順で行う、検査方法。
（第１処理）
前記検体と、標識物質が結合した前記作用物質Ｂと、を含む検体処理液を得る。
（第２処理）
前記被作用物質Ｃを担持した粒子状不溶性担体を有する吸着体を、前記検体処理液に接触させた後、前記吸着体に対する前記標識物質の吸着量を計測する。
［２］　前記第２処理において、前記計測の前に、前記吸着体と、前記吸着体に接触した後の前記検体処理液とをより分ける、［１］に記載の検査方法。
［３］　前記より分ける方法が静置又は遠心分離であり、前記静置又は前記遠心分離によって生じた上清を除去した後で、前記計測を行う、［２］に記載の検査方法。
［４］　前記標識物質が金コロイドである、［１］～［３］の何れか一項に記載の検査方法。
［５］　前記計測の方法が比色法である、［１］～［４］の何れか一項に記載の検査方法。
［６］　前記第２処理で計測した前記吸着量が、所定値よりも小さい場合、前記検体に前記被検出物質Ａが含まれると判定し、前記第２処理で計測した前記吸着量が、所定値よりも大きい場合、前記検体に前記被検出物質Ａが含まれないと判定する、［１］～［５］の何れか一項に記載の検査方法。
［７］　前記被検出物質Ａが中和抗体であり、前記作用物質Ｂが病原体に由来するタンパク質であり、前記被作用物質Ｃは前記病原体が感染する細胞に由来するタンパク質である、［１］～［６］の何れか一項に記載の検査方法。
［８］　前記被検出物質Ａが中和抗体であり、前記作用物質Ｂは、コロナウイルスが有するスパイクタンパク質の一部又は全部であり、前記被作用物質Ｃは、ヒト又は動物の細胞が有する受容体タンパク質の一部又は全部である、［１］～［７］の何れか一項に記載の検査方法。
［９］　前記被検出物質Ａが中和抗体であり、前記作用物質Ｂは、コロナウイルスが有するスパイクタンパク質の一部又は全部であり、前記被作用物質Ｃは、ヒト又は動物の細胞が有する受容体タンパク質の一部又は全部であり、前記標識物質が金コロイドであり、前記第２処理において、前記計測の前に、前記吸着体と、前記吸着体に接触した後の前記検体処理液とを静置又は遠心分離により分け、前記静置又は遠心分離によって生じた上清を除去した後で、前記計測を比色法で行う、［１］に記載の検査方法。
［１０］［１］～［９］の何れか一項に記載の検査方法又は本明細書に記載の検査方法を実施するための、作用物質Ｂ、被作用物質Ｃ、標識物質、粒子状不溶性担体、及び粒子状不溶性担体を有する吸着体、からなる群から選択される１つ以上の使用。
［１１］被検出物質Ａが検体に含まれるか否かを検査するための検査キットを製造するための、作用物質Ｂ、被作用物質Ｃ、標識物質、粒子状不溶性担体、及び粒子状不溶性担体を有する吸着体、からなる群から選択される１つ以上の使用であって、検査キットは［１］～［９］の何れか一項に記載の検査方法又は本明細書に記載の検査方法に使用される。検査キットは、作用物質Ｂ、被作用物質Ｃ、標識物質、粒子状不溶性担体、及び粒子状不溶性担体を有する吸着体、からなる群から選択される１つ以上を含む液剤を１つ以上任意に組み合わせて備えることが好ましい。例えば、作用物質Ｂ及び標識物質を含む第１の液剤と、被作用物質Ｃが粒子状不溶性担体に担持されてなる吸着体を含む第２の液剤とを備える検査キットが挙げられる。
　本発明によれば、被検出物質Ａ（実施形態の一例：中和抗体）が検体に含まれるか否かを簡便に検査することができる。
　被作用物質Ｃ（実施形態の一例：ＡＣＥ２）は不溶性担体に担持されており、この不溶性担体と検体処理液を混合するため、検体処理液中の成分と充分に接触できる。このため、被作用物質Ｃと作用物質Ｂ（実施形態の一例：Ｓ１）とが結合する機会が充分に得られる。
　また、被作用物質Ｃは不溶性担体に担持されているので、湿潤状態に保ちやすく、被作用物質Ｃの作用物質Ｂに対する結合力（結合機能）を充分に保持することができる。
　また、被作用物質Ｃは不溶性担体に担持されているので、１つの検体の量（検体処理液の体積）が増えても、検体処理液に接触させる前記不溶性担体の量を増やすことは容易である。つまり、従来のイムノクロマト法では微量（数μＬ～数百μＬ）の検体しか取り扱えないが、本発明にあっては上限なく１つの検体の量を増やすことが可能である。
金コロイドにストレプトアビジンを結合させる処理の概念図である。 金コロイドで標識されたＳ１タンパク質を得る処理の概念図である。 ＡＣＥ２が表面に担持されたアガロースビーズを得る処理の概念図である。 夾雑物質の存在下で、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される様子の概念図である。 非中和抗体の存在下で、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される様子の概念図である。 中和抗体の存在下で、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される様子の概念図である。 中和抗体及び非中和抗体の存在下で、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される様子の概念図である。 実施例１～２の結果の一つを示す写真である。 実施例１～２の結果の一つを示す写真である。 実施例１～２の結果の一つを示すグラフである。 非特許文献１の検査方法の要点を説明するための模式図である。 実施例３～４の結果を示すグラフである。 実施例５～６の結果を示すグラフである。 実施例７～８の結果の一つを示す写真である。 実施例７～８の結果を示すグラフである。 実施例９～１０の結果を示すグラフである。 実施例１１の結果の一つを示す写真である。 実施例１１の結果を示すグラフである。 実施例１１の結果を近似する曲線を示すグラフである。
　以下、本発明の実施形態について図面を参照しながら説明する。
　本発明の一態様は、被検出物質Ａが検体に含まれるか否かを検査する方法である。被検出物質Ａは、例えば、作用物質Ｂに結合することにより、作用物質Ｂと被作用物質Ｃが所定の様式で結合することを阻害するものである。本態様の検査方法は、少なくとも下記の第１処理及び第２処理をこの順で行うことが好ましい。また、第１処理及び第２処理に加えて任意に他の処理を行ってもよい。
　第１処理は、前記検体と、標識物質が結合した作用物質Ｂと、を含む検体処理液を得る処理である。
　第２処理は、被作用物質Ｃを担持した粒子状不溶性担体を有する吸着体を、前記検体処理液に接触させた後、前記吸着体に対する前記標識物質の吸着量を計測する処理である。
　前記検体は、被検出物質Ａが含まれているか否かを検査する検査対象である。検査対象として、例えば、生体に由来する試料が挙げられる。ここではウイルスも生体に該当するものとする。
　生体試料として、例えば、血液（全血）、血清、血漿、リンパ液、涙、唾液、鼻水、喀痰、皮脂、鼻腔や咽頭の付着物、尿、汗、糞便、その他の体液等が挙げられる。これらの生体試料は、必要に応じて適当な液性媒体に溶解又は分散することにより、液性試料とすることができる。
　生体試料として血液（全血）を用いる場合、血液中の血球成分、特に赤血球が混入すると、比色試験を妨害し、正確な値を得ることができない場合があるため、第１処理の前に、血清や血漿を得る前処理を行うことが好ましい。前処理の方法として、例えば、遠心分離法（上清を回収する）、ガラス繊維濾紙や血球成分が完全に通過できないポアサイズの多孔性シートによるフィルター法、多孔性膜担体を用いた分離法、コンドロイチン硫酸などとの接触により赤血球を凝集させた後に上清を回収する方法等が挙げられる。好ましい前処理方法としては、コンドロイチン硫酸などとの接触により赤血球を凝集させた後に上清を回収する方法である。
　被検出物質Ａは、本態様の検査方法によって定性的又は定量的に検出する物質である。このような物質の例として、例えば、物質ｂと物質ｃが相互作用する（例えば互いに結合する）ことを阻害する物質ａが挙げられる。
　被検出物質Ａは、例えば生体由来物質であり、タンパク質、脂質又は核酸が挙げられる。
　前記タンパク質として、例えば抗体が挙げられる。一般に抗体は抗原の特定部位（エピトープ）に結合することが知られている（抗原抗体反応）。抗原の一例は、病原体そのもの又は病原体に由来するものである。抗原に結合することにより抗原の機能を阻害する抗体は、中和抗体と呼ばれる。一方、抗原に結合するが、結合された抗原の機能を阻害しない抗体は、非中和抗体と呼ばれる。
　作用物質Ｂと被作用物質Ｃは、例えば、互いに物理的な接触を介して相互作用するものである。作用物質Ｂと被作用物質Ｃは、所定の様式で互いに結合するものであることが好ましい。
　本態様の検査方法において、被検出物質Ａは、作用物質Ｂに結合することにより、作用物質Ｂと被作用物質Ｃが所定の様式で結合することを阻害するものである、という関係性を有することが好ましい。
　前記関係性を有する例として、被検出物質Ａが中和抗体であり、作用物質Ｂが病原体に由来する生体物質（例えばタンパク質）であり、被作用物質Ｃは前記病原体が感染する細胞に由来する生体物質（例えばタンパク質）である場合が挙げられる。
　ここで、前記病原体に由来する生体物質は、自然界に存在するときのネイティブ（native）な状態又はインタクト（intact）な状態であってもよいし、前記所定の様式で結合する機能が損なわれない範囲で人為的に改変された状態であってもよい。
　前記病原体として、例えば、コロナウイルス、インフルエンザウイルス等のウイルスが挙げられる。コロナウイルスとして、例えば新型コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）が挙げられる。
　前記関係性を有する例として、被検出物質Ａが中和抗体であり、作用物質Ｂは、コロナウイルスが有するスパイクタンパク質の一部又は全部であり、被作用物質Ｃは、前記コロナウイルスが感染するヒト又は動物の細胞が有する受容体タンパク質の一部又は全部である場合が挙げられる。
　前記スパイクタンパク質の一部としては、例えば、前記受容体に対する結合ドメイン（ＲＢＤ）を含むものが挙げられる。
　前記受容体としては、例えば、アンジオテンシン変換酵素２（ＡＣＥ２）、シアル酸受容体等が挙げられる。
　なお、新型コロナウイルスは、スパイクタンパク質（例えばＳ１タンパク質）をＡＣＥ２に所定の様式で結合することにより、細胞内へ侵入して感染することが知られている。
　前記関係性を有する例として、被検出物質Ａが中和抗体であり、作用物質Ｂは、インフルエンザウイルスが有するＨＡタンパク質の一部又は全部であり、被作用物質Ｃは、前記インフルエンザウイルスが感染するヒト又は動物の細胞が有する、シアル酸若しくは受容体タンパク質の一部又は全部である場合が挙げられる。
　なお、インフルエンザウイルスは、ＨＡタンパク質を、シアル酸を有する電位依存性Ｃａ２＋チャネル（受容体）に所定の様式で結合することにより、細胞内へ侵入して感染することが知られている。
　第１処理において、前記検体と、標識物質が結合した作用物質Ｂと、を含む検体処理液を得る方法としては、例えば、前記検体と作用物質Ｂを任意の液体中で接触させる方法が挙げられる。
　具体的には、例えば、血液とＳ１タンパク質（以下、Ｓ１ということがある）とをｐＨ緩衝液中で接触させ、これらが含まれた検体処理液を得る方法が挙げられる。血液にＳ１に結合する抗体が含まれている場合、検体処理液中でＳ１－抗体複合体が形成される。ここでｐＨ緩衝液は、検体処理液中で前記複合体の形成が安定に行われるｐＨ範囲に調整するものである。
　第１処理で使用する作用物質Ｂには予め標識物質が結合されていることが好ましい。つまり、前記検体処理液において被検出物質Ａが作用物質Ｂに結合する前に、作用物質Ｂに予め標識物質が結合されていることが好ましい。
　前記標識物質は、任意の方法でその存在を検知することが可能なものであれば特に制限されない。前記標識物質としては、例えば、金属粒子、色素、顔料、酵素、蛍光物質、発光物質、放射性同位元素、ビオチン、アビジン若しくはストレプトアビジン、ポリリジン、ポリヒスチジン等が挙げられる。また、これらの標識物質の何れかを含有する又は担持する担体が挙げられる。このような担体としては、例えば、ラテックス、アガロース、ポリスチレン等の高分子化合物によって形成された粒子や、シリカ、金属等の無機物質によって形成された粒子が挙げられる。
　好ましい標識物質として、金コロイド（水等の分散媒に分散してコロイド状態になり得る金粒子）が挙げられる。金コロイドの色は、液の状態や金微粒子の粒子径によって変わるが、例えば後述する比色法では、被験出物質Ａの検出感度や精度の点から赤色が好ましく、この場合、金コロイドは赤色の微粒子であると理解してもよい。
　金コロイドの形状は特に制限されず、例えば、球状、棒状、板状、ウニ状等の種々の形状が挙げられる。
　金コロイドの平均粒子径は、例えば、５ｎｍ～４００ｎｍであることが好ましい。Ｓ１タンパク質に結合させる金コロイドの平均粒子径は、結合が容易であり、検出も容易であることから、１０ｎｍ～８０ｎｍであることが好ましい。例えば、免疫染色に使用される一般的な金コロイドを前記標識物質として使用することができる。
　金コロイド以外の好ましい標識物質としては、ポリスチレンマイクロスフェア（ポリスチレンを構成成分とする）が挙げられる。ポリスチレン中に着色剤が内部まで染色されている標準品が市販されている。ポリスチレンマイクロスフェアの色は、着色剤の種類によって変わり、具体的には赤色、黄色、黒色、青色、紫色、橙色、緑色が挙げられるが、例えば後述する比色法では、被験出物質Ａの検出感度や精度の点から青色、赤色が好ましく、この場合、ポリスチレンマイクロスフェアは青色、赤色の微粒子であると理解してもよい。
　ポリスチレンマイクロスフェアの平均粒子径は、例えば、０．０２μｍ～１５０μｍであることが好ましい。Ｓ１タンパク質に結合させるポリスチレンマイクロスフェアの平均粒子径は、結合が容易であり、検出も容易であることから、０．１μｍ～２０μｍであることが好ましい。
　前記標識物質は作用物質Ｂに直接に結合していてもよいし、連結体（リンカー）を介して間接的に結合していてもよい。
　前記標識物質が作用物質Ｂに結合する方法としては、例えば、静電相互作用、疎水性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力等による受動吸着が挙げられる。また、前記標識物質及び作用物質Ｂの少なくとも一方が有するカルボキシ基、アミノ基、チオール基、ヒドロキシ基等の反応性基の反応によって形成される共有結合が挙げられる。また、前記標識物質及び作用物質Ｂのうち、一方が有するプロテインＡ、プロテインＧ、又はプロテインＬと、他方が有する抗体又はその一部とのアフィニティ結合が挙げられる。また、前記標識物質及び作用物質Ｂのうち、一方が有するアビジン又はストレプトアビジンと、他方が有するビオチンとのアフィニティ結合が挙げられる。
　前記標識物質による作用物質Ｂの標識は、バイオ実験の一般的な技法（受動吸着標識、共有結合標識、アフィニティ結合標識）によって行うことができる。
　第２処理において使用する、被作用物質Ｃを担持するための不溶性担体は、被作用物質Ｃが外部から作用を受けることが可能な状態で担持できるものであればよい。ここで、不溶性であるとは、前記検体処理液中において溶解せずに元の形態を保持し得る性質をいう。
　前記不溶性担体を構成する材料としては、例えば、バイオ実験において一般的に利用されるアガロース、デキストラン、セルロース、ニトロセルロース等の多糖類や、アクリルアミド等の重合体によって形成されたヒドロゲルが挙げられる。また、ポリスチレンやポリプロピレン等の合成樹脂、セラミックス、金属（磁性体）が挙げられる。
　前記不溶性担体の色は、後述する比色法において標識物質の色を識別することが容易になることから、標識物質と異なる色であればよく、例えば、透明無色、半透明の白色、又は不透明の白色であることが好ましい。これらの色の不溶性担体は、上記の材料によって不溶性担体を形成すれば容易に得られる。
　前記不溶性担体の形態は、例えば、粒子状、糸（ストランド）状、網状、多孔質状、ファイバー状等が挙げられる。ただし、前記不溶性担体は、イムノクロマト法で使用されるニトロセルロース膜とは異なるものであること、すなわち、ニトロセルロースシート（フィルム、膜）以外の不溶性担体であることが好ましい。検体処理液との接触効率を高める観点から、粒子状であることがより好ましい。
　前記粒子の形状は特に制限されず、球状、棒状、板状、ウニ状等の種々の形状が挙げられる。
　前記粒子の平均粒子径は、例えば、１μｍ～１０ｍｍが好ましく、１０μｍ～１０００μｍがより好ましく、２０μｍ～５００μｍがさらに好ましく、４０μｍ～２００μｍが特に好ましい。
　上記範囲の下限値以上であると、粒子の表面に充分な量の被作用物質Ｃを担持することが容易になる。また、粒子と上清の分離も容易になる。
　上記範囲の上限値以下であると、前記検体処理液中における分散性が高まり、また第２処理において検体処理液との接触頻度が高くなるので、作用物質Ｂに対する接触が容易になる。
　なお、前記粒子の平均粒子径は、ロータップ法、レーザー回折散乱法、コールターカウンター式電気抵抗法、光学顕微鏡法等を用いて測定することができ、コールターカウンター式電気抵抗法や光学顕微鏡法で測定される個数分布平均粒子径であることが好ましい。
　このような粒子状の不溶性担体としては、例えば、バイオ実験に使用される市販のアガロースビーズ（平均粒子径：４０μｍ～２００μｍ程度）や磁性ビーズ（平均粒子径：１μｍ～１０μｍ程度）が挙げられる。
　被作用物質Ｃは不溶性担体に直接に結合していてもよいし、連結体（リンカー）を介して間接的に結合していてもよい。
　被作用物質Ｃが不溶性担体に結合する方法としては、例えば、静電相互作用、疎水性相互作用、水素結合、ファンデルワールス力等による受動吸着が挙げられる。また、被作用物質Ｃ及び不溶性担体の少なくとも一方が有するカルボキシ基、アミノ基、チオール基、ヒドロキシ基等の反応性基の反応によって形成される共有結合が挙げられる。また、被作用物質Ｃ及び不溶性担体のうち、一方が有するアルキン（アルキニル基）と、他方が有するアジド（アジド基）の反応によって形成される共有結合が挙げられる。また、被作用物質Ｃ及び不溶性担体のうち、一方が有するプロテインＡ、プロテインＧ、プロテインＬと、他方が有する抗体又はその一部とのアフィニティ結合が挙げられる。また、被作用物質Ｃ及び不溶性担体のうち、一方が有するアビジン又はストレプトアビジンと、他方が有するビオチンとのアフィニティ結合が挙げられる。
　被作用物質Ｃを不溶性担体に担持させる方法は、バイオ実験の一般的な技法（受動吸着標識、共有結合標識、アフィニティ結合標識）を適用することができる。
　吸着体が有する不溶性担体は被作用物質Ｃを担持しており、被作用物質Ｃが安定に保たれる状態で吸着体を保管することが容易である。例えば、温度管理されたｐＨ緩衝液中で保管することができる。また、不溶性担体に被作用物質Ｃを担持させる製造工程だけでなく、吸着体を第２処理で使用する時まで、被作用物質Ｃを一度も乾燥させることなく、湿潤状態に保つことができる。このため、被作用物質Ｃがタンパク質である場合、被作用物質Ｃの乾燥による変性を防止し、作用物質Ｂに対する結合力（結合機能）を充分に保持することができる。
　第２処理において、吸着体を前記検体処理液に接触させる方法としては、例えば、前記検体処理液に吸着体を添加する方法が挙げられる。
　具体的には、例えば、ＡＣＥ２が担持されたアガロースビーズからなる吸着体を前記検体処理液に添加して穏やかに撹拌する方法が挙げられる。また、ＡＣＥ２が担持されたアガロースビーズからなる吸着体が充填されたカラムに、前記検体処理液を流す方法が挙げられる。
　吸着体が有する被作用物質Ｃの量は、前記検体処理液に含まれる作用物質Ｂの量よりも多いことが好ましい。この量比であると、一部の作用物質Ｂが結合することによって吸着体の被作用物質Ｃが飽和し、残りの作用物質Ｂが吸着体に結合できずに前記検体処理液中に残存することを防止することができる。ここで、各物質の量比は、質量基準で定められてもよいし、個数基準（モル比）で定められてもよい。
　前記検体処理液に前記標識物質によって標識されたＳ１が含まれている場合、そのＳ１と、吸着体が有するＡＣＥ２とが結合する性質を利用して、吸着体を前記標識物質によって標識することができる。ただし、前記検体処理液にＳ１とＡＣＥ２の結合を阻害する中和抗体が含まれている場合、吸着体の少なくとも一部は標識されない。
　第２処理において、吸着体に対する前記標識物質の吸着量を計測する方法は、前記標識物質を定性的又は定量的に計測できる方法であれば特に制限されず、前記標識物質の性質に応じて適宜選択される。
　例えば、前記標識物質が吸着体と異なる色として視認できるものである場合、吸着体の色の変化を計測することにより、前記標識物質が吸着体に吸着したことが分かる。さらに吸着体の色の変化の程度を計測することにより、吸着体に吸着した前記標識物質を定量することができる。
　吸着体の色の変化を計測する方法は特に制限されず、公知の比色法を適用することができ、例えば、目視による計測、画像解析による計測、比色分析装置による計測等が挙げられる。
　第２処理において、前記計測を行う前に、吸着体と、吸着体に接触した後の前記検体処理液とをより分けることが好ましい。より分けておくことにより、吸着体に結合しない状態で前記検体処理液に含まれている前記標識物質を、吸着体から離れた位置におけるので、前記計測の精度を高めることができる。
　より分ける方法としては、例えば、自然沈降、遠心分離、濾過、磁性分離等が挙げられる。より分けた後、分取した吸着体について前記計測を行うことが好ましい。
　第２処理で計測した前記吸着量が、予め任意に定めた所定値よりも小さい場合、前記検体に被検出物質Ａが含まれると判定することができる。一方、前記吸着量が、前記所定値よりも大きい場合、前記検体に被検出物質Ａが含まれないと判定することができる。
　また、前記吸着量が上限の飽和値よりも少なくなる程、前記検体に含まれる被検出物質Ａの量が多いと判定できる。一方、前記吸着量が上限の飽和値に達している場合、前記検体に含まれる被検出物質Ａの量は検出限界以下であるとみなせる。
　被検出物質Ａが含まれる濃度を段階的に高めた標準試料を用いて、被検出物質Ａの濃度と前記吸着量の対応関係を予め調べておき、検量線を作成しておくと、検体に含まれる被検出物質Ａの濃度を高い精度で推定することができる。
また、検量線を作成する場合、検体自身の色の影響を排除するため、上清の色を計測し、吸着体の色の計測値を補正することで、検量線の精度を向上することができる。
＜具体的な実施形態の一例＞
　本態様の検査方法の一例として、検体が血液であり、被検出物質Ａが中和抗体であり、作用物質ＢがＳ１であり、被作用物質ＣがＡＣＥ２であり、標識物質が金コロイドである場合について、ここでまとめて簡単に説明する。
　まず、金コロイドにストレプトアビジンを結合させる（図１参照）。予めビオチンが結合されたＳ１タンパク質を準備し、これにストレプトアビジンが結合した金コロイドを混ぜると、金コロイドで標識されたＳ１タンパク質「Ｓ１タンパク質－金コロイド」が得られる（図２参照）。また、予めプロテインＡが結合されたアガロースビーズに、予めＩｇＧのＦｃ領域が融合されたＡＣＥ２を混ぜると、ＡＣＥ２が表面に担持されたアガロースビーズ「ＡＣＥ２ビーズ」が得られる（図３参照）。
　通常、血液にはＡＣＥ２と相互作用しない夾雑物質が含まれている。この血液にＳ１タンパク質－金コロイドを混合した後、さらにＡＣＥ２ビーズを混合すると、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される（図４参照）。つまり、夾雑物質はＡＣＥ２とＳ１の結合を阻害しないので、夾雑物質は無視することができる。
　さて、血液に非中和抗体が含まれている場合、この血液にＳ１タンパク質－金コロイドを混合すると、Ｓ１タンパク質に非中和抗体が結合する。その後、さらにＡＣＥ２ビーズを混合すると、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される（図５参照）。
　一方、血液に中和抗体が含まれている場合、この血液にＳ１タンパク質－金コロイドを混合すると、Ｓ１タンパク質に中和抗体が結合する。その後、さらにＡＣＥ２ビーズを混合すると、中和抗体が結合したＳ１タンパク質はＡＣＥ２ビーズに結合せず、中和抗体が結合していない残りのＳ１タンパク質のみがＡＣＥ２ビーズに捕捉される（図６参照）。つまり、検体に中和抗体が含まれている場合、ＡＣＥ２ビーズに捕捉されるＳ１タンパク質－金コロイドが少なくなる。同様の結果は、検体に中和抗体及び非中和抗体が含まれている場合にも得られる（図７参照）。
　従って、ＡＣＥ２ビーズに吸着した金コロイドを計測することにより、血液に中和抗体が含まれるか否かを検査することができる。
　本態様の実施形態の一例として、検体が血液であり、被検出物質Ａが中和抗体であり、作用物質ＢがＳ１であり、被作用物質ＣがＡＣＥ２であり、標識物質が金コロイドである場合の検査器具について説明する。
生体試料として血液（全血）を用いる場合、夾雑物質はＡＣＥ２とＳ１の結合を阻害しないので、通常夾雑物質は無視することができるが、赤血球は比色試験を妨害し、正確な値を得ることができない場合があるため、第１処理の前に、血清や血漿を得る前処理が行えることが好ましく、前記前処理と第１処理と第２処理が一つの検査器具に組み込まれている実施形態が好ましい。
具体的には、フィルター一体型ろ過バイアル（例えば、サイティバ製「ミニユニG」）のフィルター部を、ガラス繊維濾紙や血球成分が完全に通過できないポアサイズの多孔性シートによるフィルターに置換し、「Ｓ１タンパク質－金コロイド」をサンプル注入部に充てんし、ろ液捕集部には「ＡＣＥ２ビーズ」を充てんした検査器具が挙げられる。なお、「Ｓ１タンパク質－金コロイド」をサンプル注入部に充てんせず、フィルターに含浸させてもよく、また、別途含浸させたフィルターを装着してもよい。血液をサンプル注入部に充てんしろ過処理を行うと、前処理と第１処理が同時に進行し、ろ液捕集部には第１処理された検体処理液が捕集される。また、サンプル注入部にトロンビン等の血液凝固因子を加えると、赤血球のろ過をより効率的に実施できるため好ましい。血液凝固因子を加える場合は、上記フィルターの材質やポアサイズは限定されない。
ろ液捕集部において第２処理が行われるため、中和抗体が含まれていない場合、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される。一方、中和抗体が含まれている場合、ＡＣＥ２ビーズに捕捉されるＳ１タンパク質－金コロイドが少なくなる。ろ液捕集部のＡＣＥ２ビーズに吸着した金コロイドを計測することにより、血液に中和抗体が含まれるか否かを検査することができる。また、予め中和抗体量と対応した色味見本を準備し、ＡＣＥ２ビーズの色と対比させることで、中和抗体量を推定することも可能である。
検査器具の別の一例としては、ヘッド部にパッドが装着された遠心用チューブ本体（例えば、栄研化学製「かんたんチューブ ‘栄研’」）のチューブ本体に「Ｓ１タンパク質－金コロイド」、赤血球を凝集させるコンドロイチン硫酸、「ＡＣＥ２ビーズ」を含有させた検査器具が挙げられる。なお、「Ｓ１タンパク質－金コロイド」はチューブ本体に含有させず、パッド部に含浸させてもよく、また、別途含浸させたパッドを装着してもよい。血液をパッド部に染み込ませ、検査器具を遠心機で遠心処理すると、パッド部もしくはチューブ本体内で第１処理され、コンドロイチン硫酸の分離部を通過することで前処理が完了する。続いて、「ＡＣＥ２ビーズ」との接触により第２処理が行われるため、血液に中和抗体が含まれていない場合、ＡＣＥ２ビーズにＳ１タンパク質－金コロイドが捕捉される。一方、中和抗体が含まれている場合、ＡＣＥ２ビーズに捕捉されるＳ１タンパク質－金コロイドが少なくなる。捕集部のＡＣＥ２ビーズに吸着した金コロイドを計測することにより、血液に中和抗体が含まれるか否かを検査することができる。また、予め中和抗体量と対応した色味見本を準備し、ＡＣＥ２ビーズの色と対比させることで、中和抗体量を推定することも可能である。
＜標識物質の準備＞
　ストレプトアビジンに４ｍＭリン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．７９）を加え、３３０μｇ／ｍＬとなるように調製したストレプトアビジン液を得た。
　１８００μＬの２０ｎｍ金コロイド液に対して７２μＬの１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．７９）を加え、その後、上記ストレプトアビジン液を１８０μＬ添加した。室温（２０～２５℃、以下の室温記載も同様）で攪拌しながら３０分間インキュベーションして反応させた後、反応液を遠心し（６，５００ｇ、４℃、３０分）、上清を除去し、沈殿ａを得た。
　ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）に３０ｍＭトリスバッファー（ｐＨ７．５）を加え、０．１％ｗ／ｖとなるように調製したＢＳＡ液を得た。
　上記沈殿ａを１８００μＬのＢＳＡ液に懸濁した後、懸濁液を遠心して再び沈殿させる処理（懸濁・遠心処理によるバッファー置換処理）を１回繰り返した。このようにして得た液を「ストレプトアビジン-金コロイド液」として、後の実験に使用した（図１参照）。
　なお、金コロイド（金微粒子の集合体）は、赤色に見える標識物質である。
＜作用物質Ｂの標識＞
　ストレプトアビジン-金コロイド液４０μＬに、１．５μＬのビオチン－Ｓ１タンパク質溶液（５０μｇ／ｍＬ）、７μＬの３０ｍＭトリスバッファー（ｐＨ７．０）及び０．５μＬの１０％Ｔｗｅｅｎ２０溶液（前記トリスバッファーに溶解されたもの）を添加した。この混合液を室温で攪拌しながら５分間インキュベーションし、得られた液を「Ｓ１タンパク質－金コロイド液」として、後の実験に使用した（図２参照）。
＜被作用物質Ｃを担持した吸着体の準備＞
　１００μＬのプロテインＡビーズ懸濁液（ビーズ含量が５０％ｖ／ｖとなるように３０ｍＭトリスバッファー（ｐＨ７．０）に懸濁されたもの）に、７．６３μＬのＦｃ－ＡＣＥ２溶液（１．３１ｍｇ／ｍＬ）を加え、４℃にて１６時間反応させた。この反応によりＦｃ－ＡＣＥ２が、ビーズ表面に担持されたプロテインＡに結合した。この反応を経たビーズを、以下では単にビーズということがある。
　続いて上記の反応液を１２，０００ｇ、４℃、１分間の条件で遠心し、ビーズを沈殿させた。上清を除去し、ビーズと同体積の上記トリスバッファーを加え、遠心により再度ビーズを沈殿させる処理（懸濁・遠心処理によるバッファー置換処理）を数回繰り返し、最後に得た懸濁液を「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液」として、後の実験に使用した（図３参照）。
＜検体の準備＞
　新型コロナウイルス（ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）のＳ１の特定部位（ＲＢＤドメイン）に結合し、Ｓ１とＡＣＥ２の結合を阻害することが確認されている市販の中和抗体（マウス由来中和抗体）の溶液（濃度１ｍｇ／ｍｌ）を「検体１」として、後の実験に使用した。
　一般に、新型コロナウイルスのＳ１タンパク質に結合するが、Ｓ１とＡＣＥ２の結合を阻害しない抗体を非中和抗体という。本実施例で使用する上記のビオチン－Ｓ１タンパク質は、組換えタンパク質であり、Ｓ１のＡＣＥ２に対する結合機能を阻害しないＣ末端側にＨｉｓタグを含む。従い、本実施例では、Ｈｉｓタグに結合する抗体を非中和抗体として使用した。具体的には、市販のＨｉｓタグ抗体（マウス由来）の溶液（濃度１ｍｇ／ｍｌ）を「検体２」として、後の実験に使用した。
［実施例１］
（第１処理）
　１μＬの「検体１」に、４９μＬの「Ｓ１タンパク質－金コロイド液」を加え、穏やかに攪拌しながら、４℃で６０分間反応させた（図６参照）。
（第２処理）
　上記の反応液（検体処理液）から２０μＬを分取し、これに２５μＬの「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液」を加え、穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた（図６参照）。
　上記の反応液を１０分程度静置し、自然にビーズを沈殿させた。この状態の反応液を含むマイクロチューブを図８の写真（中和抗体と表示した方）に示す。目視したところ、上清の色は濃い赤色であり、沈殿したビーズの色は元の白色に近い薄い赤色であった。
　次に、上清を除去して、沈殿したビーズが底部に付着したマイクロチューブを、天地逆さまに置いた様子を図９の写真（中和抗体と表示した方）に示す。目視したところ、チューブに付着したビーズの色は元の白色に近い薄い赤色であった。
　さらに、撮影した写真について、公知の画像解析ソフトウェア（Image J 1.52a 、米国National Institutes of Health製）を使用して、ビーズの赤味を測定した。この結果を図１０のグラフ（中和抗体と表示した方）に示す。測定した赤味は、４８．６（任意単位）であった。
　なお、上記の測定値にはビーズが本来的に有する色味の値（赤味＝３０）を含む。
　以下の別の実施例においても各測定値にはビーズが本来的に有する色味の値をバックグラウンドとして含む。
　以上の結果は、ビーズが担持するＡＣＥ２に対して結合したＳ１の量が少ないことを示している。Ｓ１の結合量が基準値（中和抗体が入っていないことが事前に分かっている対照検体を同様に試験した場合の結合量）よりも少ないことは、検体１に中和抗体が含まれていると判定する根拠となる。この判定は、使用した検体１には中和抗体が含まれている事実と符合する。
［実施例２］
（第１処理）
　１μＬの「検体２」に、４９μＬの「Ｓ１タンパク質－金コロイド液」を加え、穏やかに攪拌しながら、４℃で６０分間反応させた（図５参照）。
（第２処理）
　上記の反応液（検体処理液）から２０μＬを分取し、これに２５μＬの「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液」を加え、穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた（図５参照）。
　上記の反応液を１０分程度静置し、自然にビーズを沈殿させた。この状態の反応液を含むマイクロチューブを図８の写真（非中和抗体と表示した方）に示す。目視したところ、上清の色はほとんど無色透明であり、沈殿したビーズの色は元の白色ではなく、濃い赤色であった。
　次に、上清を除去して、沈殿したビーズが底部に付着したマイクロチューブを、天地逆さまに置いた様子を図９の写真（非中和抗体と表示した方）に示す。目視したところ、チューブに付着したビーズの色は元の白色ではなく、濃い赤色であった。
　さらに、撮影した写真について、実施例１と同様に画像解析を行い、ビーズの赤味を測定した。この結果を図１０のグラフ（非中和抗体と表示した方）に示す。測定した赤味は、６６．２（任意単位）であった。
　以上の結果は、ビーズが担持するＡＣＥ２に対して結合したＳ１の量が多いことを示している。Ｓ１の結合量が基準値（中和抗体が入っていないことが事前に分かっている対照検体を同様に試験した場合の結合量）と同程度に多いことは、「検体２に中和抗体が含まれていない」と判定する根拠となる。この判定は、使用した検体２に中和抗体が含まれていない事実と符合する。
　なお、実施例２で使用した「検体２」が中和抗体を含まないことは事前に分かっているので、実施例２の結果は、上記の基準値を定める試験であると理解してもよい。つまり、実施例２の測定値「６６．２」を基準値としたとき、実施例１の測定値「４８．６」は、基準値を大きく下回っているので、「検体１」に中和抗体が入っていることを事前に知らなくても、実施例１の測定結果から「検体１」に中和抗体が入っていると判定することができる。
　同様に、中和抗体が入っているか否か未知の検体Ｓを使用した場合においても、実施例１と同様に試験し、その測定結果が予め定めた基準値を下回っていれば、検体Ｓに中和抗体が入っていると判定でき、その測定結果が予め定めた基準値と同等であれば、検体Ｓに中和抗体は含まれていないと判定できる。
＜作用物質Ｂの標識（２）＞
　１５ｎｍストレプトアビジン-金コロイド液４０μＬに１．５μＬのビオチン－Ｓ１タンパク質溶液（５０μｇ／ｍＬ）、７μＬの３０ｍＬトリスバッファー（ｐＨ７．０）及び０．５μＬの１０％Ｔｗｅｅｎ２０溶液（前記トリスバッファーに溶解されたもの）を添加した。この混合液を室温で攪拌しながら５分間インキュベーションし、得られた液を「Ｓ１タンパク質－金コロイド液（１５ｎｍ）」として後の実験に使用した。
　上記と同様に、６０ｎｍストレプトアビジン-金コロイド液を使用して、「Ｓ１タンパク質－金コロイド液（６０ｎｍ）」を調製し、後の実験に使用した。
［実施例３］
（第１処理）
　１μＬの「検体１」に、４９μＬの「Ｓ１タンパク質－金コロイド液（１５ｎｍ）」を加え、穏やかに攪拌しながら、室温で３０分間反応させた。
（第２処理）
　上記の反応液（検体処理液）から２０μＬを分取し、これに２５μＬの「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液」を加え、穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた（図６参照）。
　上記の反応液を１０分程度静置し、自然にビーズを沈殿させた。この状態の反応液を含むマイクロチューブの様子は図８と同様であり、目視したところ、上清の色は濃い赤色であり、沈殿したビーズの色は元の白色に近い薄い赤色であった。
　次に、このビーズを撮影した写真について、前記画像解析ソフトウェアを使用し、ビーズの赤味を測定した。この結果を図１２のグラフ（中和抗体と表示した方）に示す。測定した赤味は、９１．４（任意単位）であった。
［実施例４］
　検体の種類を「検体２」に変更した以外は、実施例３と同様に行った。最終的に沈殿して得たビーズの色は目視で濃い赤色であった。その結果を図１２のグラフ（非中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの赤味は、１０５．７（任意単位）であった。
［実施例５］
　作用物質Ｂの種類を「Ｓ１タンパク質－金コロイド液（６０ｎｍ）」に変更した以外は、実施例３と同様に行った。その結果を図１３のグラフ（中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの赤味は、１１４．２（任意単位）であった。
［実施例６］
　検体の種類を「検体２」に変更した以外は、実施例５と同様に行った。その結果を図１３のグラフ（非中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの赤味は、１２８．０（任意単位）であった。
＜標識物質の準備（２）＞
　２００μＬの０．５μｍ青着色ポリスチレンマイクロスフェア（以下では単に青着色剤ということがある）に１００ｍＭホウ酸バッファー（ｐＨ８．５）を５００μＬ加え、１４，０００ｇ、４℃、１０分間の条件で遠心し、青着色剤を沈殿させた。上清を除去し、５００μＬの上記ホウ酸バッファーを加え、遠心により再度青着色剤を沈殿させる処理（懸濁・遠心によるバッファー置換処理）を２回繰り返し、最後に２００μＬの３０ｍＭリン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．０）に懸濁させた液を「青着色剤液」として、後の実験に使用した。
＜作用物質Ｂの標識（３）＞
　８μＬの青着色剤液を１９２μＬの上記リン酸ナトリウムバッファーにて希釈した後、７．５μＬの非標識Ｓ１タンパク質（５００μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳで調製）を添加し、この混合液を４℃で攪拌しながら１６時間インキュベーションした。この反応により、非標識Ｓ１タンパク質が青着色剤に受動的に結合した。１４，０００ｇ、４℃、１０分間の条件で遠心し、青着色剤で標識されたＳ１タンパク質を沈殿させた。上清を除去し、５００μＬのＰＢＳを加え、遠心により再度沈殿させる処理（懸濁・遠心によるバッファー置換処理）を２回繰り返し、最後に２００μＬのＰＢＳで懸濁させた液を「青着色Ｓ１液」として、後の実験に使用した。
＜被作用物質Ｃを担持した吸着体の準備（２）＞
　１００μＬのストレプトアビジンビーズ懸濁液（ビーズ含量が５０％ｖ／ｖとなるようにＰＢＳに懸濁されたもの）に、１２μＬのビオチン－ＡＣＥ２溶液（０．２５ｍｇ／ｍＬ）を加え、４℃にて１時間反応させた。この反応によりビオチン－ＡＣＥ２が、ビーズ表面に担持されたストレプトアビジンに結合した。この反応を経たビーズを、以下では単にビーズということがある。
　続いて上記の反応液を１４，０００ｇ、４℃、１分間の条件で遠心し、ビーズを沈殿させた。上清を除去し、ビーズと同体積のＰＢＳを加え、遠心により再度ビーズを沈殿させる処理（懸濁・遠心処理によるバッファー置換処理）を数回繰り返し、最後に得た懸濁液を「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液（＃２）」として、後の実験に使用した。
［実施例７］
（第１処理）
　２μＬの「検体１」に、４０μＬの「青着色Ｓ１液」及び８μＬのＰＢＳを加え、穏やかに攪拌しながら、室温で３０分間反応させた。
（第２処理）
　上記の反応液（検体処理液）から５０μＬを分取し、これに１５μＬの「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液（＃２）」を加え、穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた。
　上記の反応液を１０分程度静置し、自然にビーズを沈殿させた。この状態の反応液を含むマイクロチューブを図１４の写真（中和と表示した方）に示す。目視したところ、上清の色は濃い青色であり、沈殿したビーズの色は元の白色に近い薄い青色であった。
　次に、撮影した写真について、前記画像解析ソフトウェアを使用して、ビーズの青味を測定した。この結果を図１５のグラフ（中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの青味は、９６．２（任意単位）であった。
［実施例８］
　検体の種類を「検体２」に変更した以外は、実施例７と同様に行った。最終的に沈殿して得たビーズの色は目視で濃い青色であった。その結果を図１５のグラフ（非中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの青味は、１５１．８（任意単位）であった。
＜検体の準備（２）＞
　インフルエンザウイルス（Ｈ１０Ｎ８型）のＨＡタンパク質の特定の部位に結合し、ＨＡタンパク質とシアル酸の結合を阻害することが確認されている市販のＨＡ中和抗体（マウス由来中和抗体）の溶液（濃度１ｍｇ／ｍＬ）を「検体３」として、後の実験に使用した。
　インフルエンザウイルスのＨＡタンパク質に結合するが、ＨＡタンパク質とシアル酸の結合を阻害しない抗体を非中和抗体という。後述の実施例で使用するＨＡタンパク質は、組換えタンパク質であり、ＨＡタンパク質のシアル酸に対する結合機能を阻害しないＣ末端側にＨｉｓタグを含む。従って、後述の実施例においても、Ｈｉｓタグに結合する抗体を非中和抗体として使用した。具体的には、前記「検体２」を使用した。
＜作用物質Ｂの標識（４）＞
　５００μＬの２０ｎｍ金コロイド液に対して２０μＬの１００ｍＭトリスバッファー（ｐＨ７．０）を加え、その後、５０μＬのＨＡタンパク質（２５０μｇ／ｍＬとなるように４ｍＭトリスバッファー（ｐＨ７．０）で調製したもの）を添加し、この混合液を室温で攪拌しながら３０分間インキュベーションした。この反応により、ＨＡタンパク質が金コロイドに受動的に結合した反応液を得た。
　続いて、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）に４ｍＭトリスバッファー（ｐＨ７．０）を加え、ＢＳＡ濃度０．１％ｗ／ｖとなるように調製したＢＳＡ液を得た。
　上記反応液に上記ＢＳＡ液５００μＬを添加し、室温で攪拌しながら３０分間インキュベーションした後、６，５００ｇ、４℃、３０分間の条件で遠心し、２０ｎｍ金コロイドで標識されたＨＡタンパク質を沈殿させた。上清を除去し、５００μＬの上記ＢＳＡ液を加えた。この懸濁液４０μＬに８．５μＬの前記トリスバッファー及び０．５μＬの１０％Ｔｗｅｅｎ２０溶液（前記トリスバッファーに溶解されたもの）を添加した。この混合液を「ＨＡタンパク質-金コロイド液」として、後の実験に使用した。
＜被作用物質Ｃを担持した吸着体の準備（３）＞
　１００μＬのアルキンビーズ懸濁液（ビーズ含量が５０％ｖ／ｖとなるように０．１ｍＭアスコルビン酸、０．０２ｍＭ硫酸銅水溶液に懸濁されたもの）に、５μＬのシアル酸アジド溶液（１ｍＭとなるようにジメチルスルホキシドに溶解されたもの）を加え、４℃にて１６時間反応させた。この反応によりシアル酸が、ビーズ表面に担持されたアルキンに共有結合した。この反応を経たビーズを、以下では単にビーズということがある。
　続いて上記の反応液を１２，０００ｇ、４℃、１分間の条件で遠心し、ビーズを沈殿させた。上清を除去し、ビーズと同体積のＰＢＳを加え、遠心により再度ビーズを沈殿させる処理（懸濁・遠心処理によるバッファー置換処理）を数回繰り返し、最後に得た懸濁液を「シアル酸ビーズ懸濁液」として、後の実験に使用した。
［実施例９］
（第１処理）
　１μＬの「検体３」に、４９μＬの「ＨＡタンパク質-金コロイド液」を加え、穏やかに攪拌しながら、室温で１０分間反応させた。
（第２処理）
　上記の反応液（検体処理液）５０μＬに、１５μＬの「シアル酸ビーズ懸濁液」を加え、穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた。
　上記の反応液を１０分程度静置し、自然にビーズを沈殿させた。この状態の反応液を含むマイクロチューブの様子は図８と同様であり、目視したところ、上清の色は濃い赤色であり、沈殿したビーズの色は元の白色に近い薄い赤色であった。
　次に、このビーズを撮影した写真について、前記画像解析ソフトウェアを使用して、ビーズの赤味を測定した。この結果を図１６のグラフ（中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの赤味は、１６５．８（任意単位）であった。
［実施例１０］
　検体の種類を「検体２」に変更した以外は、実施例９と同様に行った。最終的に沈殿して得たビーズの色は目視で濃い赤色であった。その結果を図１６のグラフ（非中和抗体と表示した方）に示す。測定したビーズの赤味は、１８８．１（任意単位）であった。
＜検体の準備（３）＞
　新型コロナウイルスに対する中和抗体を含まないヒト血漿サンプルを「検体４」として、新型コロナウイルスに対する中和抗体を含み、その中和活性が４４、９５、２１０、１４７３ＩＵ／ｍＬのヒト血漿サンプルをそれぞれ「検体５」、「検体６」、「検体７」、「検体８」として、後の実験に使用した。なお、ＩＵとはＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｕｎｉｔを省略した表記であり、同単位は世界保健機関にて定められた新型コロナウイルスに対する中和活性の強さを示す単位である。
＜作用物質Ｂの標識（５）＞
　５００μＬの２０ｎｍ金コロイド液に対して２０μＬの１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．０）を加え、その後、５０μＬの非標識Ｓ１タンパク質（５００μｇ／ｍＬとなるようにＰＢＳで調製したもの）を添加し、この混合液を室温で攪拌しながら３０分間インキュベーションした。この反応により、非標識Ｓ１タンパク質が金コロイドに受動的に結合した反応液を得た。
　続いて、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）にＰＢＳを加え、ＢＳＡ濃度０．１％ｗ／ｖとなるように調製したＢＳＡ液を得た。
　上記反応液に上記ＢＳＡ液５００μＬを添加し、室温で攪拌しながら３０分間インキュベーションした後、６，５００ｇ、４℃、３０分間の条件で遠心し、２０ｎｍ金コロイドで標識されたＳ１タンパク質を沈殿させた。上清を除去し、６２．５μＬの上記ＢＳＡ液を加えた液を「Ｓ１タンパク質－金コロイド液（＃２）」として、後の実験に使用した。
［実施例１１］
（第１処理）
　１０μＬの「検体４」、「検体５」、「検体６」、「検体７」、「検体８」、「ＰＢＳ」のそれぞれに、６μＬの「Ｓ１タンパク質－金コロイド液（＃２）」を添加し、１６μＬの「金コロイド-検体混合液」もしくは「金コロイド-ＰＢＳ混合液」を得た。これらを穏やかに攪拌しながら室温で３０分間反応させた。
（第２処理）
　各「金コロイド-検体混合液」１５μＬと前記「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液（＃２）」の１５μＬとをそれぞれ混合し、穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた。これと同時に、「金コロイド-ＰＢＳ混合液」１５μＬと前記「ＡＣＥ２ビーズ懸濁液（＃２）」１５μＬとを混合した反応液（ポジティブコントロール）を準備した。さらに、「金コロイド-ＰＢＳ混合液」１５μＬと「ストレプトアビジンビーズ懸濁液」１５μＬとを混合した反応液（ネガティブコントロール）を準備した。これらを穏やかに撹拌しながら、室温で３０分間反応させた。
　攪拌後、各反応液を１０分程度静置し、自然にビーズを沈殿させた。この状態の各反応液を含むマイクロチューブを図１７の写真に示す。目視したところ、ポジティブコントロールにおいては上清の色はほとんど無色透明であり、沈殿したビーズの色は元の白色ではなく、濃い赤色であった。また、ネガティブコントロールにおいては上清の色は濃い赤色であり、沈殿したビーズの色は元の白色に近い薄い赤色であった。「検体４」～「検体８」を加えた反応液においては、中和活性（ＩＵ／ｍＬ）が高いほど上清の色は赤く、沈殿したビーズの色は元の白色に近い薄い赤色を示した。撮影した写真について、前記画像解析ソフトウェアを使用して、後述の方法により解析した。
　解析の結果、既知の中和活性と、本実施例により算出された中和活性（％）には明瞭な相関が認められ、本発明による臨床検体の中和活性（中和抗体量）の定量性が確認された。その結果のグラフを図１８に示す。
＜解析方法＞
（ステップ１）
　各サンプルについて「ビーズの赤味」及び「上清の赤味」を測定し、「ビーズの赤味」／「上清の赤味」で表される比（α）を算出した。この比（α）を算出する理由は、一般的に黄色もしくは赤色を呈する血漿による「ビーズの赤味」への影響を低減するためである。
（ステップ２）
　下記式の計算値を中和活性（％）とした。
｛（(検体のα)－(ポジコンのα)）／（(ネガコンのα)－(ポジコンのα)）｝×１００
　なお、ポジコンはポジティブコントロールの略語であり、ネガコンはネガティブコントロールの略語である。
　上記の解析方法を実施例１１に適用すると、表１に示す値が得られる。なお、赤味の測定値は任意単位である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　Ｘ軸に既知の中和活性（ＩＵ／ｍＬ）の１０を底とする対数をとり、Ｙ軸に算出した中和活性（％）をとり、表１を参照して各サンプルをプロットした散布図を図１９に示す。
　各プロットの近似曲線を表す式（フィッティング式）は下記が妥当であると考えられた。
ｙ =－８．５５２＋１１８．６５２／（１＋１０^（（１．９０４－ｘ）×１．３１２））
Ｒ２＝０．９６９４
　上記フィッティング式は、医学統計解析ソフトウェアＰｒｉｓｍ９（ＧｒａｐｈＰａｄ社製）を用いて求めた。Ｒ２は相関係数であり、１に近い値であるほど、妥当な近似であることを意味する。フィッティング式を求めるにあたり、各プロットは線型的に表わされるものではないと推定されることから、シグモイド曲線を前提とした。この前提が妥当であることは、相関係数が高いことから支持される。このようにシグモイド曲線で近似することは、作用物質Ｂ（例えばＳ１）と被作用物質Ｃ（例えばＡＣＥ２）の結合が被検出物質Ａ（例えば中和抗体）により競合的に阻害されていることを考慮しても妥当である。
［使用材料］
　２０ｎｍ金コロイド液は、製品名：Gold Nanoparticle Size Optimization Panel、製造会社：Cytodiagnostics、型番：G-SIZE-01を使用した。その金コロイドの平均粒子径は２０ｎｍである。
　ストレプトアビジンは、製造会社：富士フイルム和光純薬、型番：192-17864を使用した。
　ビオチン－Ｓ１タンパク質は、製品名：Biotinylated Recombinant SARS-CoV-2 Spike S1-His-Avi Protein、製造会社：Syd Labs、型番：BP003055を使用した。Ｓ１にビオチンが結合した複合体である。
　プロテインAビーズは、製品名：Immunoprecipitation Starter Pack、製造会社：Cytiva、型番：17-6002-35を使用した。ビーズ本体はアガロース（商品名：セファロース）によって形成されたものであり、ビーズ本体の粒径の幅は４５～１６５μｍであり、平均粒子径は９０μｍである。
　Ｆｃ－ＡＣＥ２は、製品名：ACE-2 Fc Chimera, Human、製造会社：Genscript、型番：Z03484を使用した。ＦｃとＡＣＥ２の融合タンパク質である。
　マウス由来中和抗体は、製品名：SARS-CoV-2 Neutralizing Antibody (5B7D7)、製造会社：Genscript、型番：A02057-100を使用した。
　マウス由来非中和抗体は、製品名：Anti-6X His tag 抗体 [HIS.H8]、製造会社：Abcam、型番：ab18184を使用した。
１５ｎｍストレプトアビジン-金コロイド液は、製品名：Streptavidin, Gold Colloidal Particle 15nm、製造会社：Cytodiagnostics、型番：AC-15-04-05を使用した。金コロイドにストレプトアビジンが結合したものであり、その金コロイド部分の平均粒子径は１５ｎｍである。
６０ｎｍストレプトアビジン-金コロイド液は、製品名：Streptavidin, Gold Colloidal Particle 60nm、製造会社：Cytodiagnostics、型番：AC-60-04-05を使用した。金コロイドにストレプトアビジンが結合したものであり、その金コロイド部分の平均粒子径は６０ｎｍである。 
　０．５μｍ青着色ポリスチレンマイクロスフェアは、製品名Polybead(登録商標) Blue Dyed Microsphere Sampler Kit、製造会社：Polysciences, Inc.、型番：19821-1のうち、平均粒子径０．５μｍのものを使用した。
　非標識Ｓ１タンパク質は、製品名：SARS-CoV-2 Spike Protein (S1, His Tag)、製造会社：GenScript、型番：Z03485-100を使用した。
　ビオチン－ＡＣＥ２溶液は、製品名：Human ACE2/Angiotensin-Converting Enzyme 2 Protein (His Tag), Biotinylated、製造会社：SinoBiological、型番：10108-H08H-Bを使用した。ビオチンが結合したＡＣＥ２タンパク質の溶液である。
　ストレプトアビジンビーズ懸濁液は、製品名：Streptavidin Sepharose High Performance、製造会社：Cytiva、型番：17511301を使用した。ビーズの平均粒子径は３４μｍであり、セファロース製ビーズの表面にストレプトアビジンが担持されたものである。
　アルキンビーズ懸濁液は、製品名：Alkyne Agarose、製造会社：Merck、型番：901982-2MLを使用した。粒子径の幅は５０～１５０μｍであり、アガロース製ビーズの表面に、末端アルキンを有する官能基が備えられたものである。
ＨＡタンパク質は、製品名：Influenza A H10N8 (A/Jiangxi-Donghu/346/2013) Hemagglutinin/HA Protein (His Tag)、製造会社：SinoBiological、型番：40359-V08Bを使用した。
シアル酸アジド溶液は、製品名：Disialylnonasaccharide-β-ethylazide、製造会社；東京化成工業、型番：D4217を使用した。
ＨＡ中和抗体は、製品名：Influenza A H10 Hemagglutinin/HA Neutralizing Antibody、製造会社：SinoBiological、型番：40359-M001を使用した。
　血漿サンプルは、製品名：1st International Reference Panel for anti-SARS-CoV-2 immunoglobulin、製造元：National Institute for Biological Standards and Control、型番：20/268を使用した。

Claims (9)

  1. 被検出物質Ａが検体に含まれるか否かを検査する方法であって、
    前記被検出物質Ａは、作用物質Ｂに結合することにより、前記作用物質Ｂと被作用物質Ｃが所定の様式で結合することを阻害するものであり、
    少なくとも下記の第１処理～第２処理をこの順で行う、検査方法。
    （第１処理）
    前記検体と、標識物質が結合した前記作用物質Ｂと、を含む検体処理液を得る。
    （第２処理）
    前記被作用物質Ｃを担持した粒子状不溶性担体を有する吸着体を、前記検体処理液に接触させた後、前記吸着体に対する前記標識物質の吸着量を計測する。
  2. 前記第２処理において、前記計測の前に、前記吸着体と、前記吸着体に接触した後の前記検体処理液とをより分ける、請求項１に記載の検査方法。
  3. 前記より分ける方法が静置又は遠心分離であり、前記静置又は前記遠心分離によって生じた上清を除去した後で、前記計測を行う、請求項２に記載の検査方法。
  4. 前記標識物質が金コロイドである、請求項１～３の何れか一項に記載の検査方法。
  5. 前記計測の方法が比色法である、請求項１～４の何れか一項に記載の検査方法。
  6. 前記第２処理で計測した前記吸着量が、所定値よりも小さい場合、
    前記検体に前記被検出物質Ａが含まれると判定し、
    前記第２処理で計測した前記吸着量が、所定値よりも大きい場合、
    前記検体に前記被検出物質Ａが含まれないと判定する、
    請求項１～５の何れか一項に記載の検査方法。
  7. 前記被検出物質Ａが中和抗体であり、前記作用物質Ｂが病原体に由来するタンパク質であり、前記被作用物質Ｃは前記病原体が感染する細胞に由来するタンパク質である、請求項１～６の何れか一項に記載の検査方法。
  8. 前記被検出物質Ａが中和抗体であり、前記作用物質Ｂは、コロナウイルスが有するスパイクタンパク質の一部又は全部であり、前記被作用物質Ｃは、ヒト又は動物の細胞が有する受容体タンパク質の一部又は全部である、請求項１～７の何れか一項に記載の検査方法。
  9. 前記被検出物質Ａが中和抗体であり、前記作用物質Ｂは、コロナウイルスが有するスパイクタンパク質の一部又は全部であり、前記被作用物質Ｃは、ヒト又は動物の細胞が有する受容体タンパク質の一部又は全部であり、前記標識物質が金コロイドであり、前記第２処理において、前記計測の前に、前記吸着体と、前記吸着体に接触した後の前記検体処理液とを静置又は遠心分離により分け、前記静置又は遠心分離によって生じた上清を除去した後で、前記計測を比色法で行う、請求項１に記載の検査方法。
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