WO2022195239A1 - Cellule immunitaire comprenant un recepteur fc a sa surface, et sur lequel est greffe une molecule hybride comprenant un fragment fc d'anticorps et au moins un peptide citrulline derive de la fibrine, et ses utilisations - Google Patents

Cellule immunitaire comprenant un recepteur fc a sa surface, et sur lequel est greffe une molecule hybride comprenant un fragment fc d'anticorps et au moins un peptide citrulline derive de la fibrine, et ses utilisations Download PDF

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WO2022195239A1
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peptide
seq
fragment
spacer
coupled
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PCT/FR2022/050506
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Inventor
Cyril Clavel
Guy Bruno René SERRE
Pierre Martineau
Nerea ALLENDE-VEGA
Florence Apparailly
Martin VILLALBA
Christian Jorgensen
Original Assignee
Universite Toulouse Iii - Paul Sabatier
INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale)
Centre Hospitalier Universitaire De Toulouse
Centre Hospitalier Universitaire De Montpellier
Universite De Montpellier
Arthritis Recherche & Developpement
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Definitions

  • Immune cell comprising an Fc receptor on its surface, and onto which is grafted a hybrid molecule comprising an Fc antibody fragment and at least one citrullinated peptide derived from fibrin, and uses thereof
  • the present invention relates to an immune cell comprising at least one Fc receptor on its surface, characterized in that a hybrid molecule is grafted at the level of the Fc receptor, said hybrid molecule comprising at least one Fc antibody fragment covalently linked to at least one fibrin-derived peptide comprising one or more citrullyl residue(s).
  • the present invention also relates to the uses of such a grafted cell, as well as its method of production.
  • Rheumatoid arthritis is the most common inflammatory rheumatism or arthritis, but also the most common autoimmune disease. The disease is characterized by chronic inflammation of the synovial joints resulting in irreversible joint destruction.
  • ACPA anti-citrullinated protein autoantibodies
  • ACPAs The antigenic targets of ACPAs have been characterized. They are in particular directed specifically against deiminated or citrullinated forms of the a and b polypeptide chains of fibrin, a protein abundant in inflammatory synovial tissue. This citrullination corresponds to the enzymatic deimination of the arginyl residues of the polypeptide chains, under the action of peptidyl-arginine deiminases (PAD).
  • PAD peptidyl-arginine deiminases
  • the immunodominant epitopes recognized by ACPAs on the a and b polypeptide chains of fibrin have been characterized and published, in particular in applications PCT/FR00/01857 or PCT/FR2007/000758.
  • the five citrullinated peptides carrying immunodominant epitopes are more particularly the peptides named a36-50Cit (as represented in SEQ ID NO: 5), a171-185Cit (as represented in SEQ ID NO: 6), a501-515Cit (as shown in SEQ ID NO: 14), a621-635Cit (as shown in SEQ ID NO: 18) and b60-74OK (as shown in SEQ ID NO: 19).
  • Sera from ACPA-positive patients recognize one or more of these five peptides.
  • ACPAs Secreted into the rheumatoid synovial tissue by local plasma cells, ACPAs present there in a high concentration, close to their main target, citrullinated fibrin, which is also abundant there in the form of interstitial deposits.
  • An object of the present invention is thus to provide a treatment for rheumatoid arthritis.
  • ACPAs are oligoclonal and therefore secreted by only a few plasma cell clones, themselves resulting from the differentiation of a few B lymphocyte clones.
  • B lymphocyte clones express on their membrane immunoglobulins carrying ACPA specificity (these are ACPA-positive B lymphocytes), whereas plasma cells resulting from the differentiation of ACPA-positive B lymphocyte clones (these are ACPA-positive plasma cells) secrete these same ACPAs in abundance into their microenvironment.
  • the present invention is based on the results of the inventors showing that it is possible to target B lymphocyte clones expressing ACPAs on their surface and to eliminate them using an "armed" immune cell, i.e. say a cell expressing an Fc receptor at its surface and onto which is grafted a hybrid molecule comprising (i) at least one fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue and (ii) an Fc fragment of human immunoglobulin.
  • the hybrid molecule is linked to the Fc receptor through its Fc fragment.
  • ACPA-positive B lymphocytes using the peptide derived from fibrin having at least one citrullyl residue, which is recognized by said ACPAs
  • ACPA-positive B lymphocytes are thus eliminated by phagocytosis
  • NK cells ACPA-positive B lymphocytes are thus eliminated by antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity - ADCC
  • the grafted immune cells of the invention thus aim to eliminate ACPAs from the body of patients.
  • the invention relates to an immune cell comprising at least one Fc receptor on its surface, characterized in that a hybrid molecule is grafted at the level of the Fc receptor, said hybrid molecule comprising at least one Fc antibody fragment covalently linked to at least one fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue, a spacer being optionally present between said Fc fragment and said peptide.
  • a hybrid molecule is grafted at the level of the Fc receptor, said hybrid molecule comprising at least one Fc antibody fragment covalently linked to at least one fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue, a spacer being optionally present between said Fc fragment and said peptide.
  • an “immune cell” is a cell of the innate or adaptive immune system which expresses at least one Fc receptor on its surface.
  • the immune cell is chosen from an NK cell or a macrophage.
  • said cell is allogenic or autologous.
  • hybrid molecule means a molecule having at least two components of different nature, in this case the antibody Fc fragment and said peptide.
  • an “Fc receptor” means the transmembrane protein which reacts with an Fc fragment, and which contributes to the protective functions of the immune system.
  • Fc receptor refers to Fcgamma receptor, Neonatal Fcgamma, Fcalpha receptor and Fcepsilon receptor.
  • the Fc receptor is an Fcgamma receptor, in particular FcyRIII (CD16).
  • a “hybrid molecule is grafted at the level of the Fc receptor” means that the immune cell expresses at least one Fc receptor on its surface and that a hybrid molecule as defined here is linked to the Fc receptor via a fragment FC. Through the Fc receptor/Fc fragment binding, the hybrid molecule is bound to the immune cell. In the case where the immune cell expresses several Fc receptors on its surface, several hybrid molecules can thus be grafted onto the immune cell, i.e. one hybrid molecule per receptor.
  • an "Fc fragment" of an antibody means the constant region of an immunoglobulin excluding the first immunoglobulin constant region domain (i.e. CH1-CL).
  • the Fc fragment refers to a homodimer, each monomer comprising the last two constant domains of IgA, IgD, IgG (i.e. CH2 and CH3), or the last three constant domains of IgE and IgM (i.e. CH2, CH3 and CH4).
  • covalently bonded means a covalent bond, that is to say a chemical bond in which two atoms share two electrons. Said covalent bond can be polar or non-polar.
  • a "spacer” is a linking agent which makes it possible to covalently link an Fc fragment of an antibody to said fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue, while separating said Fc fragment from said peptide (thus reducing possible steric hindrance).
  • it can be a molecule or a peptide.
  • the spacer does not modify the physico-chemical properties of the hybrid molecule.
  • the presence of at least one spacer is advantageous: it makes it possible to facilitate the independent accessibility of the two partners of the hybrid molecule (the Fc fragment is more easily accessible to bind to the Fc receptor, just as said peptide is more easily accessible to bind to ACPA-positive B lymphocytes), and/or to stabilize the hybrid molecule, and/or to increase the solubility of the hybrid molecule.
  • the hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention may comprise one or more spacers.
  • the hybrid molecule includes one or two spacers.
  • said Fc fragment when at least one spacer is present in said hybrid molecule of the invention, said Fc fragment is covalently linked to a spacer, said spacer being itself covalently linked to said peptide.
  • said Fc fragment when at least two spacers are present in said hybrid molecule of the invention, said Fc fragment is covalently linked to a first spacer, said first spacer being itself covalently linked to a second spacer and the second spacer is itself covalently linked to said peptide.
  • the bond between the Fc fragment and the peptide can therefore be direct, or even indirect in the presence of spacers.
  • the hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention may comprise at least one peptide derived from fibrin having at least one citrullyl residue.
  • the Fc fragment can be linked to one or two peptides.
  • the Fc fragment comprises two monomers, and the Fc fragment can thus be covalently linked to a peptide on only one of the two monomers, or else the Fc fragment can be covalently linked to a peptide on each monomer.
  • the two peptides are identical, for example two peptides of SEQ ID NO: 18 or SEQ ID NO: 19.
  • said spacer is a polymer containing one or more repeat units containing the ether group.
  • said spacer is polyethylene glycol of formula PEGn, in which n represents an integer between 1 and 100, preferentially between 1 and 10, and in particular 1, 2, 3, 4 or 8.
  • said polyethylene glycol can be functionalized, for example with an amine group (PEGn-amine such as PEG-NH 2 ).
  • PEGn-amine such as PEG-NH 2
  • an integer between 1 and 100 represents all the integer values between 1 and 100, ie; 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16,
  • the expression “peptide derived from fibrin having at least one citrullyl residue” means a molecule of fibrin or of fibrinogen in which at least one arginyl residue has been substituted by a citrullyl residue.
  • a "fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue” according to the invention means a peptide recognized by the ACPAs, and can also be called a "citrullinated peptide".
  • Such peptides can be obtained from natural, recombinant or synthetic fibrin or fibrinogen fragments.
  • Such peptides can also be directly synthesized.
  • the amino acids constituting the peptide can be of the L or D series, preferably of the L series.
  • substitution can for example be carried out by an enzymatic deimination step under the action of peptidyl-arginine deiminases (PAD).
  • PAD peptidyl-arginine deiminases
  • Such a peptide can also be obtained by directly incorporating one or more citrullyl residues into the synthesized peptide.
  • a peptide according to the invention binds to ACPAs, and the bond between said peptide fibrin derivative having at least one citrullyl residue and one ACPA can be checked using an ELISA test or as described in the publication Sebbag M, Moinard N, Auger I, Clavel C, Arnaud J, Nogueira L, Roudier J, Serre G. Epitopes of human fibrin recognized by the rheumatoid arthritis-specific autoantibodies to citrullinated proteins. Eur J Immunol 36:2250-2263, 2006.
  • said peptide in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, is derived from all or part of the sequence of the a or b chain of a vertebrate fibrin, by substitution of at least an arginyl residue with a citrullyl residue.
  • said peptide is derived from a sequence of at least 5 consecutive amino acids of the chain a (in particular represented by SEQ ID NO: 27) or b (in particular represented by SEQ ID NO: 28), of a fibrin of vertebrate.
  • said vertebrate fibrin is a mammalian, preferably human, fibrin.
  • the peptide in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, has a size of at least 2 consecutive amino acids, 3 consecutive amino acids, 4 consecutive amino acids, preferably 5 consecutive amino acids , and even more preferably between 5 and 25 amino acids.
  • “between 5 and 25” means all values: 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20 , 21, 22, 23, 24 and 25.
  • said peptide has a size of between 10 and 20 amino acids, more particularly 15 amino acids.
  • the peptide in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, is linear.
  • the peptide in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, can be modified so as to improve its reactivity towards ACPAs.
  • the peptides can be cyclized, the peptides can be of the retro type (the amino acids of the L series are linked together according to a reverse sequence to that of the peptide to be reproduced), or of the retro-inverso type (the amino acids are of type D instead of the natural series L and are linked according to a sequence inverse to that of the peptide to be reproduced).
  • the terminal carboxyl function (COOH) of said peptide is replaced by a carboxamide function (CONH2).
  • the terminal carboxyl function (COOH) of said peptide is replaced by a carboxamide function (CONH2).
  • COOH carboxyl function
  • CONH2 carboxamide function
  • the peptide in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, can be modified so as to facilitate its synthesis and/or improve its stability, for example by alkylation.
  • the terminal amine function (NH2) of said peptide is acetylated.
  • the terminal amine function of said peptide is acetylated.
  • the peptide a621-635Cit (as represented in SEQ ID NO: 18) advantageously has such a terminal amine function (NH2).
  • the amine and carboxyl functions of the peptide can be in the form of the salt corresponding to the acid or to the base.
  • said peptide comprises at least one citrullyl residue, and is chosen from the group consisting of: a) a peptide defined by the sequence X1PAPPPISGGGYX2AX3 (SEQ ID NO: 1) wherein X1, X2, and X3 each represents a citrullyl residue or an arginyl residue, and at least one of X1 or X 2 or X3 is a citrullyl residue; b) a peptide defined by the sequence GPX 1 VVEX 2 HQSACKDS (SEQ ID NO: 2) in which X 1 and X 2 each represent a citrullyl residue or an arginyl residue, and at least one of the residues X 1 or X 2 is a citrullyl residue; c) a peptide defined by the sequence SGIGTLDGFX 1 HX 2 HPD (SEQ ID NO: 3) in which X 1 and
  • said peptide comprises at least one citrullyl residue, and is chosen from the group consisting of:
  • - a peptide defined by the sequence SEQ ID NO: 2 in which at least X 1 or X 2 is a citrullyl residue, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said residue(s) ) citrullyl;
  • - a peptide defined by the sequence SEQ ID NO: 3 in which at least X 1 or X 2 is a citrullyl residue, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said residue(s) ) citrullyl;
  • - a peptide defined by the sequence SEQ ID NO: 4 in which at least X 1 or X 2 is a citrullyl residue, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said residue(s) ) citrullyl;
  • - a peptide defined by the sequence SEQ ID NO: 12 in which at least one residue chosen from Xi or X2 or X3 is a citrullyl residue, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said citrullyl residue(s).
  • said peptide comprises at least one citrullyl residue, and is chosen from the group consisting of:
  • X1 and X2 are citrullyl residues, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said citrullyl residues (these are a peptide of SEQ ID NO: 5);
  • X1 and X2 are citrullyl residues, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said citrullyl residues (these are a peptide of SEQ ID NO: 14);
  • X1 and X2 are citrullyl residues, or a peptide comprising a fragment of at least 5 consecutive amino acids of said sequence containing said citrullyl residues (these are a peptide of SEQ ID NO: 6);
  • said peptide is chosen from the group consisting of: SEQ ID NO: 5 ( a36-50cit 38.42), SEQ ID NO: 6 (a171-185citi78,isi), SEQ ID NO: 7 (a183-197citis6,i9o), SEQ ID NO: 8 (a246-260cit 258 ), SEQ ID NO: 9 (a259-273cit 263,27i ), SEQ ID NO: 10 (a366-380cit 367 ), SEQ ID NO: 11 (a396-410cit 04 ), SEQ ID NO: 13 (a411-425cit 425 ), SEQ ID NO: 14 (a501-515cit 5i o,5i2) , SEQ ID NO: 15 (a546-560cit 547 ), SEQ ID NO: 16 (a561-575cit 573 ), SEQ ID NO: 17 (a588-602cit
  • said Fc fragment is a human Fc fragment, in particular of IgG, more particularly of IgGI.
  • the IgGI can correspond to any allotypic variant, for example G1 m3 or nG1 m1.
  • the Fc fragment of IgGI is represented by SEQ ID NO: 24, SEQ ID NO: 25 (Fc+Qtag) or SEQ ID NO: 26 (Fc+Qtag bis).
  • said Fc fragment is wild-type or mutated.
  • the mutation(s) may aim to increase the plasma half-life, reduce it, modify the effector functions of the Fc fragment.
  • said mutated Fc fragment comprises at least the following mutations:
  • said mutated Fc fragment comprises at least the GASDIE, GASDALIE, or SDH mutations.
  • said Fc fragment has a fucosylation rate of between 0% and 100% of the glycosylated forms.
  • “between 0% and 100%” represents all integer values between 0 and 100, i.e; 0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16,
  • said Fc fragment has a fucosylation rate of between 0% and 60% of the glycosylated forms, in particular 50%, 40%, 30%, 20%, 10% or 0%.
  • the fucosylation rate is defined as the average proportion of fucose carried by the Fc fragment, relative to the maximum quantity of fucose that an Fc fragment can carry.
  • the Fc fragment and the peptide each have N- and C-termini.
  • the Fc fragment can therefore be linked via its N- or C-terminus to the N- or C-terminus of the peptide.
  • said covalent bond is located between the Cterminal end of said Fc fragment and the Nterminal end of said peptide, or between the Nterminal end of said Fc fragment and the N-terminus of said peptide.
  • the spacer when a spacer is present, the spacer can be linked to the Fc fragment via its N- or C-terminus.
  • the first spacer when two spacers are present, the first spacer can be linked to the Fc fragment via its N- or C-terminal end and the second spacer can be linked to the peptide via its N- or C-terminal end, in particular N-terminal.
  • said covalent bond between said Fc fragment and said peptide (optionally in the presence of one or more spacers) can be created on all or part of the Fc fragment.
  • all or part of the Fc fragment means that different and/or several amino acids constituting the Fc fragment can be involved in a covalent bond with said peptide.
  • this when at least one spacer is present in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, this makes it possible to bind the Fc fragment to an azide or to an alkyne which will itself be involved in the covalent bond with said peptide.
  • this when at least one spacer is present in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, this can also make it possible to bind the peptide to an alkyne or to an azide which will itself be involved in the covalent bond with the Fc fragment.
  • the hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention comprises at least two spacers: a first spacer which makes it possible to bind the Fc fragment to an azide or to an alkyne and a second spacer which makes it possible to bind the peptide to an azide (when the Fc fragment is linked to an alkyne) or to an alkyne (when the Fc fragment is linked to an azide).
  • said Fc fragment in said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention, said Fc fragment:
  • - is coupled to at least one azide or an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, or
  • - is linked to at least one spacer which is itself coupled to an azide or an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, and said peptide is:
  • the Fc fragment is coupled to at least one azide and said peptide is coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, or
  • the Fc fragment is coupled to at least one alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, and said peptide is coupled to an azide, the covalent bond between said Fc fragment and said peptide being created between the azide and the alkyne.
  • alkyne such as a cyclooctyne, and in particular DBCO
  • the Fc fragment is coupled to at least one azide and said peptide is linked to a spacer, itself coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO or
  • the Fc fragment is coupled to at least one alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, and said peptide is linked to a spacer, itself coupled to an azide or
  • the Fc fragment is linked to at least one spacer, itself coupled to an azide, and said peptide is coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO or - the Fc fragment is linked to at least one spacer, itself coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, and said peptide is coupled to an azide or
  • the Fc fragment is linked to at least one spacer, itself coupled to an azide, and said peptide is linked to a spacer, itself coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO or
  • the Fc fragment is linked to at least one spacer, itself coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO, and said peptide is linked to a spacer, itself coupled to an azide, the covalent bond between said Fc fragment and said peptide, in the presence of one or more spacers, being created between the azide and the alkyne.
  • an alkyne such as a cyclooctyne, and in particular DBCO
  • the spacer used is preferably a PEGn spacer, n more particularly representing an integer between 1 and 10.
  • the n of the two spacers can be identical or different.
  • the first spacer can be a PEG ⁇ and the second spacer can be a PEG3 or PEG4.
  • the peptide is derived from human fibrin or fibrinogen and the Fc fragment is a human Fc, preferably human IgGI.
  • the creation of the covalent bond between the azide and the alkyne corresponds to a so-called “chemistry-click” step, the N3 part of the azide reacting with an alkyne.
  • Azide refers to salts of hydrazoic acid FIN3, or organic azides in which one of the nitrogen atoms is covalently bonded to a carbon atom of an organic compound (e.g. methyl azide CFI3N3).
  • the azide is represented by the formula N3.
  • the alkyne means molecules having the general formula C n Fl2n-2, and which are characterized by the presence of at least one triple bond.
  • the alkyne is a cyclooctyne, even more preferably dibenzocyclooctyne (DBCO).
  • the Fc fragment, said peptide and optionally said spacer are coupled to the alkyne or to the azide by any conventionally used molecular coupling technique (such as conjugation). Any technique can also be used to covalently link the Fc fragment to the spacer and/or the peptide to the spacer.
  • a conjugation technique means an enzymatic conjugation or a chemical conjugation.
  • An enzymatic conjugation means for example a conjugation using a transglutaminase which catalyzes the formation of covalent bonds between free amine groups and glutamine or lysine residues or even using a transpeptidase such as sortase.
  • a transglutaminase which catalyzes the formation of covalent bonds between free amine groups and glutamine or lysine residues or even using a transpeptidase such as sortase.
  • the transglutaminase substrate is for example a peptide comprising a glutamyl residue (a Qtag), as represented by SEQ ID NO: 29 (LLQG).
  • a chemical conjugation means for example a covalent bond between a cysteine isolated or participating in a disulphide bridge after reduction of the latter and for example a maleimide.
  • An example of such a conjugation is shown in Figure 7.
  • the Fc fragment comprises a Qtag peptide and said Fc fragment is linked to a spacer (itself coupled to an azide), thanks to the action of the transglutaminase which will create a covalent bond between the glutamyl residue of Qtag and the NH2 group carried by the PEGn spacer.
  • the term “coupled” or “molecular coupling” means re-establishment of a covalent bond, thus the Fc fragment and/or the peptide and/or the spacer is covalently bonded to an alkyne or an azide.
  • the term “linked” also means a covalent bond.
  • the expression “the Fc fragment is coupled to an azide and said peptide is linked to a spacer, itself coupled to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular DBCO” can also read “the Fc fragment is covalently linked to an azide and said peptide is covalently linked to a spacer, said spacer being itself covalently linked to an alkyne, such as a cyclooctyne, and in particular the DBCO”.
  • the hybrid molecule is grafted onto the immune cell thanks to the bond between the Fc receptor and the Fc fragment.
  • said hybrid molecule grafted onto the immune cell according to the invention is represented by:
  • an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621 -635cit62i,627,630),
  • an Fc fragment comprising the mutations L234A, L235A and P329G which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (P60-74cit6o,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621 -635cit62i,627,630),
  • an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to a cyclooctyne covalently linked to an azide coupled to a PEGn spacer itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60- 74cit6o,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630),
  • an Fc fragment comprising the L234A, L235A and P329G mutations which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to a cyclooctyne covalently linked to an azide coupled to a PEGn spacer itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74cit6o,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630),
  • an Fc fragment comprising the L234A, L235A and P329G mutations which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74cit6o,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630),
  • an Fc fragment comprising the mutations G236A, S239D and I332E, which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 t ⁇ 60-74cit ⁇ ,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630),
  • an Fc fragment comprising the mutations G236A, S239D, A330L and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 t ⁇ 60-74cit ⁇ ,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630),
  • an Fc fragment comprising the mutations G236A, S239D and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 ⁇ 60-74cit6o,7 2.74 ) or SEQ ID NO: 18 (a621 -635cit62i, 627,630), - an Fc fragment comprising the mutations G236A, S239D, A330L and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself -even coupled to an azide covalently bonded to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74a ⁇ 6o,7 2.74 ) or SEQ ID NO: 18 (a621 -635cit62i, 627,630), n preferably representing an integer between 1 and 10, more particularly
  • an Fc fragment comprising the mutations L234A, L235A and P329G which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 ⁇ 60-74cit6o,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621 -635cit62i ,627,630) ,
  • an Fc fragment comprising the mutations S239D, FI268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (p60-74cifeo, T2,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630), n preferably representing an integer between 1 and 10, more particularly 1, 2, 3, 4 or 8.
  • said hybrid molecule is represented by:
  • an Fc fragment comprising the S239D, FI268F, S324T and I332E mutations which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74),
  • an Fc fragment comprising the mutations L234A, L235A and P329G which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (P60-74cit6o,72,74),
  • an Fc fragment comprising the mutations S239D, FI268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 t ⁇ 60-74cit ⁇ ,72,74) or SEQ ID NO: 18 (a621-635cit62i, 627,630), n preferably representing an integer between 1 and 10, more particularly 1, 2, 3 , 4 or 8.
  • the present invention also relates to an immune cell on which is grafted a hybrid molecule as defined above, for its use as a medicament.
  • said immune cells onto which the hybrid molecules are grafted are intended to target and lyse in the organism of the patients, by ADCC and/or phagocytosis and/or complement activation, all the B cells " ACPA-positive” (i.e. B lymphocytes which express on their surface anti-citrullinated protein auto-antibodies (ACPA)).
  • ACPA-positive i.e. B lymphocytes which express on their surface anti-citrullinated protein auto-antibodies (ACPA)
  • ACPA surface anti-citrullinated protein auto-antibodies
  • the hybrid molecule according to the invention also binds to cells making it possible to destroy "ACPA-positive" B lymphocytes, immune cells expressing an Fc receptor, thanks to its Fc fragment, natural ligand of Fc receptors, (for example Fcgamma receptor ( FcyR) if the Fc fragment is derived from an IgG), present in particular on the surface of macrophages but also of NK cells (“Natural killers”).
  • FcyR Fcgamma receptor
  • the invention relates to an immune cell on which is grafted a hybrid molecule, as defined above for its use in the treatment of autoimmune diseases associated with the production of autoantibodies against citrullinated proteins , in particular Gougerot-Sjogren syndrome and rheumatoid arthritis.
  • autoimmune diseases associated with the production of autoantibodies against citrullinated proteins in particular Gougerot-Sjogren syndrome and rheumatoid arthritis.
  • the severe forms of said autoimmune diseases associated with the production of anti-citrullinated protein autoantibodies are targeted, as well as various so-called "border” forms with other chronic arthritis, such as psoriatic arthritis or systemic lupus erythematosus.
  • the invention also relates to a pharmaceutical composition
  • a pharmaceutical composition comprising an immune cell on which is grafted a hybrid molecule, as defined previously, in combination with a pharmaceutically acceptable vehicle.
  • a pharmaceutically acceptable vehicle means any formulation making the composition suitable for administration to a patient, in any galenic form.
  • the invention also relates to a set of elements (or a kit) comprising (a) a cell of the innate or adaptive immune system which expresses on its surface at least one Fc receptor, in particular an NK cell or a macrophage, and (b) a hybrid molecule as previously defined.
  • the present invention aims to destroy “ACPA-positive” B lymphocytes.
  • “ACPA-positive” B lymphocytes which have differentiated into ACPA-secreting plasma cells are no longer targeted by the hybrid molecules previously described.
  • the present invention thus relates to an immune cell as previously described, for its use as a medicament, in combination with a hybrid molecule (this second hybrid molecule not being grafted onto the immune cell).
  • Said second hybrid molecule comprises at least one fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue, said peptide being covalently linked to at least one antibody or to at least one antibody fragment, said antibody or fragment being capable of binding to CD38 and/or CD138, one or more spacers being optionally present between said peptide and said antibody or said fragment.
  • the antibody used in this second hybrid molecule is preferably a monoclonal antibody.
  • the fragment means a portion of antibody which carries the antigen-binding site.
  • antibody fragments are, for example, Fab, F(ab')2, Fv, dsFv, scFv, single chain fragments such as isolated VH or VL fragments, VHHs from camelids, VNARs from cartilaginous fish, or else multispecific antibodies composed of different fragments, such as bi-specific antibodies, or even "nanobodies", “diabodies”, “triabodies”, “tetrabodies”, or scFvs in tandem, etc. These fragments are well known to the skilled in the art.
  • the fragment is a Fab or F(ab')2.
  • said antibody or F(ab′)2 fragment is a bispecific antibody or F(ab′)2 fragment directed against CD38 and another plasma cell target.
  • said antibody or F(ab')2 fragment is a bispecific antibody or F(ab')2 fragment directed against CD138 and another plasma cell target.
  • an "other plasma cell target” means any marker being expressed on the surface of the plasma cells.
  • said antibody or F(ab')2 fragment is a bispecific antibody or F(ab')2 fragment directed against CD38 and CD138.
  • the grafted immune cell and the second hybrid molecule are administered simultaneously, separately or spread over time.
  • the hybrid molecule according to the invention grafted onto the immune cell as previously described can be coupled to at least one radioisotope or to at least one fluorochrome, such as A488 or A647.
  • Such molecules can advantageously be used as molecular tracer tools.
  • the invention thus relates to the in vitro or ex vivo use of an immune cell comprising at least one Fc receptor at its surface onto which is grafted a hybrid molecule, said hybrid molecule comprising at least one fragment FC of antibody covalently linked to at least one fibrin-derived peptide having at least one citrullyl residue, at least one spacer being optionally present between said Fc fragment and said peptide, as a molecular tool.
  • Such constructions can in particular be used to analyze the binding of hybrid molecules to ACPAs and to the Fc receptors of macrophages and NK cells, as well as to analyze the reactivity of macrophages and NK cells to the binding of hybrids followed by the bridging of these. ci by the ACPA....
  • the radioisotopes and/or fluorochromes are preferably coupled to the Fc fragment, even more particularly at the level of the Qtag (if present) or at the level of the lysines.
  • the invention also relates to a method making it possible to obtain an immune cell grafted with a hybrid molecule as defined above.
  • the invention thus relates to a method for producing an immune cell grafted with a hybrid molecule as defined above, comprising the following steps:
  • step (iv) contacting an immune cell comprising at least one Fc receptor on its surface and a hybrid molecule as obtained in step (iii),
  • step (i) being able to be carried out before or after step (ii), or else concomitantly.
  • the invention thus relates to a method for producing an immune cell grafted with a hybrid molecule as defined above, comprising the following steps:
  • step (iv) contacting an immune cell comprising at least one Fc receptor on its surface and a hybrid molecule as obtained in step (iii),
  • step (i) being able to be carried out before or after step (ii), or else concomitantly.
  • the invention thus relates to a method for producing an immune cell grafted with a hybrid molecule as defined above, comprising the following steps:
  • step (iv) contacting an immune cell comprising at least one Fc receptor on its surface and a hybrid molecule as obtained in step (iii),
  • step (i) being able to be carried out before or after step (ii), or else concomitantly.
  • hybrid molecules exemplified it is the Nterminal end of the Fc fragment which is linked to a PEGn spacer (except in the case indicated Cter-PEG (see Figure 4)), and it is always the Nterminal end of said peptide which is linked to cycloctyne DBCO or to a second PEGn spacer if present.
  • n represents more particularly 3 or 4
  • the PEGn spacer represents 3 or 8, although any other value of n, in particular between 1 and 10, can be used.
  • an “armed or pre-armed” cell means a cell to which a hybrid molecule according to the invention is fixed.
  • the hybrid molecule is linked to the Fc receptor of the cell thanks to its Fc fragment.
  • FIG. 1 represents the diagram of an example of a hybrid molecule according to the invention.
  • a spacer (which is optional) is shown between the antibody Fc fragment and the fibrin-derived peptide having a citrullyl residue (referred to as “citrullinated peptide”).
  • FIG. 2 represents a B lymphocyte expressing at its surface transmembrane ACPAs bound to a hybrid molecule according to the invention, said hybrid molecule being itself bound by the Fc fragment to an NK cell.
  • the NK cell will thus be able to destroy the B lymphocyte by ADCC. More specifically, this figure shows a B cell (or B lymphocyte) which expresses on its surface an ACPA-type BCR and which interacts specifically with the citrullinated peptide carried by the hybrid molecule. The engagement of the Fc fragment carried by the same hybrid molecule with FcyRIIIa (CD16a) expressed on the surface of an NK cell will activate the ADCC and induce the specific destruction of the ACPA-positive B lymphocyte.
  • B cell or B lymphocyte
  • FcyRIIIa CD16a
  • ACPA Anti-Citrullinated Protein Autoantibodies
  • ADCC Antibody-Dependent Cell Cytotoxicity
  • BCR B-Cell Receptor
  • Fc y R Fc-gamma Receptor
  • NK cell Natural Killer cell
  • Fig. 3 represents a B lymphocyte expressing at its surface transmembrane ACPAs bound to a hybrid molecule according to the invention, said hybrid molecule being itself bound by the Fc fragment to a macrophage.
  • the macrophage will thus be able to destroy the B lymphocyte by phagocytosis. More specifically, this Figure shows B cells (or B lymphocytes) which express an ACPA-type BCR on their surface and which interact specifically with citrullinated peptides carried by the hybrid molecules. The commitment of the Fc fragments carried by these same hybrid molecules to different FcyRs expressed on the surface of a macrophage will activate ADP, i.e. phagocytosis, and induce the specific destruction of ACPA-positive B lymphocytes. . (ACPA, Anti-Citrullinated Protein Autoantibodies; ADP, Antibody-Dependent Phagocytosis; BCR, B-Cell Receptor; FcyR, Fc-gamma Receptor).
  • ACPA Anti-Citrullinated Protein Autoantibodies
  • ADP Antibody-Dependent Phagocytosis
  • BCR B-Cell Receptor
  • FcyR Fc-gamma Receptor
  • FIG. 4 represents the reactivity of several hybrid molecules comprising the peptide of SEQ ID NO: 19 (P60-74citeo, 72.74 ) with respect to ACPAs.
  • b60-74 represents the peptide of SEQ ID NO: 19.
  • Fc-WT ⁇ 60-74 represents a wild type Fc fragment (Wild Type) which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide linked covalently to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (P60-74dt6o,72,74).
  • Fc-LALA-p60-74 represents an Fc fragment comprising the mutations L234A, L235A and P329G which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19.
  • Fc-SDH-p60-74 represents an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide linked to covalently to a cyclooctyne DBCO coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19.
  • Fc-WT-PEG-p60-74 represents a wild-type Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74a ⁇ 6o,72,74).
  • Fc-SDH-PEG ⁇ 60-74 represents an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a PEGn spacer, itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74dt6o,72,74).
  • Fc-SDH(Cter)-PEG ⁇ 60-74 corresponds to Fc-SDH-PEG ⁇ 60-74, except that in the Fc-SDH(Cter)-PEG ⁇ 60-74 hybrid, the first PEGn is attached at the C-terminal end of the Fc fragment, unlike the other examples in which the first PEGn is attached at the N-terminal end.
  • n represents a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • FIG. 5 represents the reactivity of a hybrid molecule comprising the peptide of SEQ ID NO: 18 (a621-635cit 62i, 027,030) with respect to ACPAs.
  • a621-635 represents the peptide of SEQ ID NO: 18.
  • Fc-WT-PEG-a621-635 represents a wild-type (WT) Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 18.
  • Fc-SDFI-PEG-a621-635 represents an Fc fragment comprising the mutations S239D, FI268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO : 18.
  • n represents a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • FIG. 6 represents the reactivity of a recombinant human monoclonal ACPA (clone 2H06), comprising an unmodified or modified Fc with SDH-type mutations, with respect to hybrid molecules comprising the peptide of SEQ ID NO: 18.
  • FcWT-PEG-a621-635 represents a wild-type Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 18.
  • FcSDH-PEG-a621-635 represents an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E, which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 18.
  • n represents a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • FIG.7 represents a process for manufacturing a hybrid molecule according to the invention, comprising the derivation and conjugation scheme of the Fc fragments.
  • FIG. 8 represents the evolution of the percentage of phagocytosis and of B lymphocytes in the presence of hybrid molecules Fc-WT-PEG-a621-635arg and Fc-WT-PEG-a621-635cit.
  • the P value is as follows: * ⁇ 0.05 ** ⁇ 0.01 *** ⁇ 0.001.
  • FIG. 9 represents the lysis by human NK cells of cells of a transduced malignant lymphoblastic human B cell line expressing at its membrane a recombinant monoclonal ACPA, in the presence of the hybrids FcWT-N3-DBCO-PEG3-a621-635Cit and FcSDH- N3-DBCO-PEG3-a621-635Cit.
  • Nalm6 represents the case where only Nalm6 cells were incubated; Nalm6+NK the case where the Nalm6 cells were incubated with the NK cells; WTaCIT the case where the WTaCIT hybrid was incubated with Nalm6 cells and NK cells; WTaArg the case where the WTaArg hybrid was incubated with Nalm6 cells and NK cells; SDHaCIT the case where the hybrid SDHaCIT was incubated with Nalm6 cells and NK cells and SDHaArg the case where the SDHaArg hybrid was incubated with Nalm6 cells and NK cells.
  • the transduced lymphoblastic malignant human B cell line expressing a recombinant monoclonal ACPA on its membrane corresponds to the Nalm6 line as described in Example 11 and Figure 10.
  • the monoclonal antibody is the clone 022014CCP14CFCT2H06, called 2H06.
  • FIG. 10 represents the membrane expression of the monoclonal ACPA 2H06 by the B lymphoblastic line Nalm6 after transduction (Nalm62H06).
  • Fc-WT-PEG-a621-635 represents a wild type (WT) Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 18.
  • Fc-WT-PEG-a621-635arg represents a wild-type (WT) Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 18 in which the X residues are not citrullinated (i.e. they are arginyl residues) .
  • the Nalm6 cells expressing the monoclonal ACPA 2H06 correspond to the Nalm6 transduced line mentioned in the examples.
  • FIG. 11 represents the phagocytosis of B cells transduced Nalm6 ACPA+ 2H06 by macrophages armed with Fc-peptide a621-635 hybrids.
  • A- The Figure shows the results of a flow cytometry experiment where the cell populations are represented in the form of scatter plots.
  • T0 represents the result at time 0, after contacting the Nalm6 target cells and the macrophages.
  • T2 represents the result at time 2 h, after 2 h of bringing Nalm6 target cells and macrophages into contact, in the absence of hybrid molecules (spontaneous phagocytosis).
  • All of the other cytometry diagrams represent the results obtained after 2 hours of bringing Nalm6 target cells into contact with macrophages armed with Fc-PEG-a621-635cit (citrullinated) hybrids or Fc-PEG-a621 control hybrids -635arg (non-citrullinated).
  • the hybrids are identical to those described in Figure 10, except that different types of Fc fragment were used: a wild-type (WT) Fc fragment, a GASDIE Fc fragment (presenting the G236A mutations, S239D and I332E), or an Fc SDH fragment (with the mutations S239D, H268F, S324T and I332E).
  • WT wild-type
  • GASDIE Fc fragment presenting the G236A mutations, S239D and I332E
  • Fc SDH fragment with the mutations S239D, H268F, S324T and I332E.
  • the cells showing the double fluorescence correspond to macrophages which have phagocytosed target cells.
  • the cells exhibiting a simple PKH-26 fluorescence correspond to the residual Nalm6 target cells, that is to say not phagocytosed after 2 hours in the presence of macrophages (% target population).
  • the different cell populations are expressed as a percentage of the total cell population.
  • B- The Figures show in the form of histograms, for each experimental condition described in A, the mean of the % of double-positive cells and the mean of the % of cells of the target population, calculated from the results of 3 experiments.
  • the histograms in black represent the control conditions.
  • the histograms in white represent the conditions in the presence of hybrid Fc-PEG- ⁇ 621-635cit.
  • the p-value is as follows: *p ⁇ 0.05;**p ⁇ 0.01.
  • FIG. 12 represents the phagocytosis of cells of the Nalm6 ACPA+ 2H06 B line by pre-armed macrophages in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids at various concentrations.
  • the Figure shows the results of a flow cytometry experiment performed after phagocytosis of Nalm6 2H06 B cells by pre-armed macrophages by incubation in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids at various concentrations.
  • A- The Figure shows in the form of histograms, for each experimental condition, the % of double-positive cells.
  • B- The figure shows the % of the residual target Nalm6 population, i.e. not phagocytosed.
  • the dark histograms represent the control conditions obtained in the presence of non-citrullinated Fc-PEG- ⁇ 621-635arg hybrids.
  • the light histograms represent the conditions in the presence of hybrid Fc-PEG- ⁇ 621-635cit.
  • the concentrations of hybrids used are between 5 pg/ml and 5 ng/ml.
  • the hybrids are identical to those described in Figure 11, except that a hybrid molecule with an Fc GASDALIE fragment (including the G236A, S239D, A330L and I332E mutations) was also tested.
  • FIG. 13 represents confirmation of the phagocytosis process of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by macrophages pre-armed with FcWT-PEG-peptide a621-635 hybrids.
  • FIG. 14 represents the phagocytosis of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by macrophages pre-armed with Fc-peptide a621-635 hybrids or incubated in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids.
  • the Figure shows the results of an experiment analyzed by flow cytometry: the point clouds correspond to cell populations.
  • T0 represents the result at time 0, just after contacting the Nalm6 target cells and the macrophages.
  • T2 represents the result at the 2nd hour after bringing Nalm6 target cells and macrophages into contact, in the absence of hybrid molecules (spontaneous phagocytosis).
  • All the other cytometry diagrams present the results obtained after 2 hours of bringing Nalm6 target cells and macrophages into contact, either pre-armed with FcWT-PEG-a621-635 or FcGASDIE-PEG-a621-635 hybrids, citrullinated or no, or incubated with the WT-PEG-0621-635 or FcGASDIE-PEG-a621-635 hybrids, citrullinated or not, solubilized in the incubation medium.
  • the hybrids are identical to those described in FIG. 11 .
  • Cells showing double fluorescence correspond to macrophages that have phagocytosed Nalm6 target B cells (% double positive).
  • Cells showing simple PKH-67 fluorescence correspond to residual Nalm6 target B cells, i.e. not phagocytosed after 2 hours in the presence of macrophages.
  • the different cell populations are expressed as a percentage of the total cell population.
  • FIG. 15 represents the phagocytosis of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by macrophages prearmed with Fc-PEG-a621-635 peptide hybrids, and, or not, in the presence of human IgG at physiological serum concentration.
  • the figure shows, for each experimental condition, the mean residual percentage of the population of target cells, 2 hours after phagocytosis by the pre-armed macrophages of the citrullinated (cit) or non-citrullinated (arg) Fc-PEG-a621-635 hybrids, in the presence (gray histograms) or absence (black histograms) of competing human IgGs.
  • the hybrids are identical to those described in FIG. 11 .
  • FIG. 16 represents the phagocytosis of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by human macrophages incubated with Fc-peptide a621-635 hybrids, in the presence, or not, of human IgG at physiological concentration or of human serum.
  • the Figure shows the results of an experiment analyzed by flow cytometry where the cell populations are represented by point clouds.
  • T0 corresponds to the result obtained immediately after contacting the Nalm6 2H06 target cells and the macrophages.
  • T2 represents the result 2 hours after bringing the target cells and the macrophages into contact in the absence of hybrid molecules (spontaneous phagocytosis).
  • the other diagrams represent the results obtained 2 hours after bringing the target cells and macrophages into contact, incubated with the FcWT-PEG-a621-635 or FcGASDIE-PEG-a621-635 hybrids, citrullinated (cit) or not (arg), and this in the presence or absence of human IgG at the physiological serum concentration or of human serum.
  • the double-positive CFSE+ CD11 b+ cells correspond to macrophages which have phagocytosed target cells.
  • the CFSE+ single-positive cells correspond to the residual Nalm6 target cells, not phagocytosed after 2 h. In each quadrant of the cytometry diagrams, the different cell populations are expressed as a percentage of the total cell population.
  • the hybrids are identical to those described in FIG. 11 .
  • FIG. 17 represents the phagocytosis of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by human macrophages pre-armed with the Fc-peptide a621-635 hybrids, in the presence of the non-transduced Nalm6 line.
  • the Figure shows the results of an experiment of phagocytosis of cells of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by macrophages pre-armed with the Fc-peptide a621-635 hybrids, in the presence of cells of the same Nalm6 line, wild-type, non-transduced .
  • the results of the flow cytometry analysis appear in the form of point clouds representing cell populations.
  • T0 represents the situation at time 0, just after contacting the Nalm6 2H06 target cells, the non-transduced Nalm6 NT cells and the macrophages.
  • T2 represents the result after 2 hours in the absence of hybrid molecules (spontaneous basal phagocytosis).
  • cytometry diagrams represent the results obtained after 2 hours in the presence of macrophages armed with the FcWT-PEG-0621-635 or FcGASDIE-PEG-a621-635 hybrids, citrullinated (cit) or non-citrullinated (arg).
  • CFSE+ CD19+ double-positive cells correspond to residual Nalm6 2H06 target cells, i.e. not phagocytosed after 2 hours in the presence of macrophages.
  • CFSE-CD19- double-negative cells correspond to macrophages.
  • Single-positive CFSE-CD19+ cells correspond to residual non-transduced (NT) Nalm6 cells, i.e. not phagocytosed after 2 hours in the presence of macrophages.
  • the CFSE+ CD19- positive single cells correspond to macrophages which have phagocytosed Nalm6 2H06 target cells.
  • the different cell populations are expressed as a percentage of the total cell population.
  • the hybrids are identical to those described in FIG. 11 .
  • FIG. 18 represents the specific in vivo destruction of the Nalm6 ACPA+ 2H06 line by human NK cells in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids, in SCID/BEIGE immunodeficient mice.
  • the Figure shows the destruction by human NK cells, in the peritoneal cavity of SCID/BEIGE immunodeficient mice, of ACPA+ target cells (transduced Nalm6 line 2H06) in the presence of citrullinated Fc-peptide a621-635 hybrids.
  • A- The figure represents the analysis of the populations of non-transduced Nalm6 2FI06 and Nalm6 NT cells, by flow cytometry. The peaks observed correspond to the target cells (Nalm6 2H06 CTV h ⁇ 9 h ) or to the control cells (Nalm6 NT CTV
  • B- The figure represents all the results obtained for four groups of 7 SCID/BEIGE immunodeficient mice.
  • FIG. 19 represents the specific destruction in vivo of the Nalm6 ACPA+ 2H06 line by human macrophages armed with the Fc-peptide hybrids a621-635, in SCID/BEIGE immunodeficient mice.
  • the figure shows the destruction by human macrophages, in the peritoneal cavity of SCID/BEIGE immunodeficient mice, of ACPA+ target cells (Nalm6 line transduced 2H06) in the presence of citrullinated Fc-peptide 0621-635 hybrids.
  • the figure represents the results obtained for 4 groups of 5 SCID/BEIGE immunodeficient mice.
  • the number of residual Nalm6 2H06 CTV hi a h target cells for each group at the end of the experiment is presented, it indicates the efficiency of the phagocytosis.
  • the "p" value is as follows: * p ⁇ 0.05.
  • the hybrids are identical to those described in Figure 10.
  • Example 1 Example of production of a hybrid molecule according to the invention, and of an immune cell grafted with such a hybrid molecule
  • the hybrid molecule described here comprises the following construction: an Fc fragment covalently linked to a PEGn, itself coupled to an azide, said azide being covalently linked to an alkyne, which is itself linked to a spacer coupled to a citrullinated peptide.
  • a molecule may read: Fc-PEGn-N3-DBCO-PEGn-citrullinated peptide.
  • the two PEGn can be identical or different (for example the first PEGn is PEG3 and the second PEGn is PEG2).
  • An immune cell grafted with such a hybrid molecule is then obtained by bringing into contact an immune cell expressing at least one surface Fc receptor and a hybrid molecule. Thanks to the Fc receptor/Fc fragment bond, the hybrid molecule and the immune cell are grafted.
  • Fc-PEGn-DBCO and Ish-PEGn-citrullinated peptide can be obtained and then coupled to obtain Fc-PEGn-DBCO-lsh-PEGn-citrullinated peptide.
  • an Fc-PEGn-DBCO and a citrullinated Ish-peptide can be obtained, or an Fc-PEGn-ish and a citrullinated DBCO-peptide, then coupled to obtain respectively Fc-PEGn-DBCO-lsh-citrullinated peptide or Fc -PEGn-lsh-DBCO-citrullinated peptide.
  • Example 2 Reactivity of ACPAs purified by affinity chromatography on citrullinated peptides and eluted at pH3 (pH3 fraction), with respect to the hybrid molecules according to the invention
  • the ACPAs used are ACPAs obtained from serum of patients suffering from ACPA-positive rheumatoid arthritis. Such ACPAs were obtained by a standard column affinity chromatography method known to those skilled in the art, using as bound antigens one or more of the five immunodominant peptides of the invention (cf SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 18 or SEQ ID NO: 19). has. Examples with hybrid molecules containing the B60-74cit peptide
  • ELISA microtiter plate wells were passively coated with 100 ⁇ L of a solution containing either the b60-74oK peptide (SEQ ID NO: 19, also referred to as b60-74) or an Fc hybrid molecule -WT ⁇ 60-74cit, Fc-LALA ⁇ 60-74cit, Fc-SDH ⁇ 60-74cit, Fc-WT-PEG ⁇ 60-74cit, Fc-SDH-PEG ⁇ 60-74cit or Fc-SDH(Cter)- PEG ⁇ 60-74cit.
  • These solutions were each used at a concentration of 5 ⁇ g/mL in PBS (Phosphate Buffered Saline) buffer and incubated overnight at 4°C.
  • non-citrullinated peptide and the hybrid molecules constructed with the non-citrullinated peptide ⁇ 60-74arg, corresponding to a peptide of SEQ ID NO: 19 in which the citrullyl residues have been replaced by arginyl residues were used at the same concentration as negative controls.
  • the wells were then saturated with 2% BSA (Bovine Serum Albumin) for 1 hour at 4°C. After washing, the purified ACPAs were incubated at 1, 0.5 or 0.25 pg/mL, diluted in PBS 2% BSA 2M NaCl buffer for 1 hour at 4°C.
  • ELISA plate wells were coated with 100 ⁇ L of a solution containing the peptide a621-635cit (SEQ ID NO: 18, also referred to as a621-635) or a hybrid molecule Fc-WT-PEG-a621- 635cit or else Fc-SDH-PEG- ⁇ 621-635cit, at a concentration of 5 pg/mL in PBS (Phosphate Buffered Saline) buffer, incubated overnight at 4°C.
  • PBS Phosphate Buffered Saline
  • non-citrullinated peptide a621-635arg and the corresponding hybrid molecules constructed with the non-citrullinated peptide were used to the same concentration as negative controls.
  • the wells were then saturated with 2% BSA (Bovine Serum Albumin) in PBS buffer for 1 hour at 4°C. After washing, the purified ACPAs were incubated at 4, 2 and 1 pg/mL diluted in PBS 2% BSA 2M NaCl buffer for 1 hour at 4°C.
  • the ACPA used here is a recombinant human monoclonal ACPA ((clone 022014CCP14CFCT2H06, said 2H06).
  • Such ACPA can be obtained as described in Titcombe P. J., Wigerblad G., Sippl N., Zhang N., Shmagel A. K., Sahlström P. , Zhang Y., Barsness L.O., Ghodke Puranik Y., Baharpoor A., et al. Pathogenic Citrulline-Multispecific B Cell Receptor Clades in Rheumatoid Arthritis. Arthritis & Rheumatology 2018, 70 (12), 1933-1945. https:// doi.org/10.1002/art.40590 ACPA's VH 2H06 has accession number MH629710.1 under Genbank, and VL has accession number MH629700.1.
  • ELISA plate wells were coated with 100 ⁇ L of a solution containing either the hybrid molecule Fc-WT-PEG-a 621-635cit or Fc-SDH-PEG-a 621-635cit, used in the concentration of 5 pg/mL in PBS buffer (Phosphate Buffered Saline) incubated overnight at 4°C.
  • PBS buffer Phosphate Buffered Saline
  • the hybrid molecules constructed with a non-citrullinated peptide (621-635arg) were used at the same concentration as negative controls.
  • the wells were then saturated in PBS 2% BSA (Bovine Serum Albumin) buffer for 1 hour at 4°C.
  • Fc-WT-PEG-a621-635cit and Fc-SDH-PEG-a621-635cit hybrid molecules are identical to those used in Example 2.
  • the results are presented in Figure 6.
  • the results show a strong dose-dependent reactivity of the WT and SDH monoclonal ACPAs towards the hybrid molecules Fc-WT-PEG-a621-635cit and Fc-SDH-PEG-a621- 635cit.
  • Example 4 Binding of hybrid molecules on macrophages at 2 a.m. and 8 p.m., at physiological temperature
  • FcWT-N3-DBCO-p60-74Cit a wild type Fc fragment which is linked to a PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO: 19, referred to as WT in Tables 2 and 3
  • FcSDHFSTIE-N3-DBCO-60-74Cit an Fc fragment comprising the S239D, H268F, S324T and I332E mutations which is linked to a PEGn spacer which is itself even coupled to an azide covalently bonded to a DBCO which is coupled to a peptide represented by SEQ ID NO
  • n a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • NM and “ANTI FC” respectively represent the well containing the macrophages incubated without antibody or with the anti-Fc antibody alone.
  • Example 5 Phagocytosis induced by the hybrid Fc-SDH peptide p60citrullinated when the B lymphocytes are armed via their FcyRIIb (CD32b) with the purified ACPA
  • FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-360-74Cit hybrid an Fc fragment comprising the S239D, H268F, S324T and I332E mutations which is linked to at least one spacer PEGn which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a PEGn spacer itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19).
  • This construct is referred to as CIT in Table 4 below).
  • the cells were also placed in the presence of the hybrid FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG ⁇ 60-74Arg (which corresponds to the construction FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3 ⁇ 60-74Cit in which the peptide b60-74 is not not citrullinated).
  • This construct is referred to as NCIT in Table 4 below.
  • the cells were placed in the presence of the hybrids at 10 ⁇ g/mL for 30 min at 37°C. After washing, the cells were brought into contact with macrophages (marked PKH-26 red), at the rate of 1 B lymphocyte for 1 macrophage, for 2 hours at 37°C. The cells were then separated and then analyzed by flow cytometry.
  • n represents a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3 , 4 or 8.
  • Human B lymphocytes freshly purified from peripheral blood of healthy donors by CD19+ magnetic sorting, were labeled with PKH-67 green (Paul Karl Horan / fluorescent lipid marker) then incubated for 1 hour at 37°C with monoclonal ACPA human recombinant 2H06 whose Fc is mutated SDH, at a concentration of 10 pg/mL.
  • PKH-67 green Paul Karl Horan / fluorescent lipid marker
  • Fc-WT-PEG-a621-635cit hybrids a wild-type Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a DBCO which is coupled to a PEGn spacer which is itself linked to the peptide represented by SEQ ID NO: 18
  • Fc-WT- PEG-a621-635arg this is the hybrid Fc-WT-PEG-a621-635cit, with the difference that the peptide is not citrullinated
  • n represents a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • NCIT represents the result with the Fc-WT-PEG-a621-635arg peptide
  • CIT represents the result with the Fc-WT-PEG-a621-635cit peptide
  • D OIT-NCIT represents the difference between the OD obtained in the presence of Fc-WT-PEG-a621-635cit and the OD obtained in the presence of Fc-WT-PEG-a621-635arg, divided by the OD obtained in the presence of Fc-WT-PEG-a621-635arg.
  • NK cells were incubated for 30min, 24h or 48h at 37°C in the presence of FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 (an Fc fragment comprising the S239D, H268F, S324T and I332E mutations which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a DBCO, the molecule being labeled with the fluorochrome A488) or FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-360-74cit-lysineA488 (an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a DBCO which is coupled to a PEGn spacer linked to a peptide of SEQ ID NO: 19, the molecule being labeled with fluorochrome A488 which is linked to the molecule via
  • Example 8 Binding on NK cells of the Fc-SDH fragment labeled with the fluorochrome A647 compared with the binding of the same hybrids in the presence of human IgG at increasing concentrations, up to the physiological serum concentration
  • the NK cells were incubated for 30 min at 37°C either in the presence of the FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 fragment (an Fc fragment comprising the S239D, H268F, S324T and I332E mutations which is linked to at least one PEGn spacer which is itself even coupled to an azide covalently bound to a DBCO, the molecule being labeled with the fluorochrome A647) at 10 pg/mL, or in the presence of this same FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 fragment at 10 pg/mL, co- incubated with human IgG at increasing concentrations (1, 10, 100, 1,000, 10,000 pg/mL).
  • FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 fragment an Fc fragment comprising the S239D, H268F, S324T and I332E mutations which is linked to at least one PEGn spacer which is itself even coupled to an azide
  • n represents a number between 1 and 10 when a PEGn spacer is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • SDH FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 fragment
  • the results show a dose-dependent reduction in the binding of FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 to NK cells from 100 pg/mL of IgG but this remains effective and high, even in the presence of a concentration of IgG 1,000 times greater than that of the Fc fragment (10,000 pg/mL) which corresponds to the physiological serum concentration of IgG in humans.
  • Example 9 Lysis by human NK cells, of cells of a transduced plasmoblastic malignant human B line expressing at its membrane a recombinant monoclonal ACPA, in the presence of the hybrids FcWT-N3-DBCO-PEG3-a621-635Cit and FcSDH-N3- DBCO-PEG3-cx621-635Cit
  • WTaCIT represents the hybrid comprising a wild-type Fc fragment which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a PEGn spacer which is itself linked to the peptide represented by SEQ ID NO: 18;
  • WTaArg corresponds to the hybrid WTaCIT except that the peptide of SEQ ID NO: 18 is not citrullinated;
  • SDHaCIT represents an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to at least one PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne DBCO which is coupled to a PEGn spacer which is itself linked to the peptide represented by SEQ ID NO: 18;
  • SDFIaArg corresponds to the hybrid SDFIaCIT except that the peptide of SEQ ID NO:
  • the experiment was performed in 96-well round bottom plates.
  • Cells of the Nalm6 line (transduced for the membrane expression of the recombinant human monoclonal ACPA 2H06) were used as target cells. 100,000 cells/well were incubated in the presence, on the one hand, of WTaCit or SDHaCit hybrid molecules used at 15 pg/mL and, on the other hand, of freshly purified NK cells (marked with the purple cell tracker) used as effector cells , also at 100,000 cells/well, for 17 h at 37°C.
  • the WTaArg and SDFIaArg hybrid molecules, used as specificity controls were incubated under the same conditions.
  • FcWT-p60-74 represents a wild-type Fc fragment which is linked to a PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74oK6o,72, 74).
  • FcSDH ⁇ 60-74 represents an Fc fragment comprising the mutations S239D, H268F, S324T and I332E which is linked to a PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself -even linked to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74oK6o,72,74).
  • FcLALAPG-b60-74 represents an Fc fragment comprising the mutations L234A, L235A and P329G which is linked to a PEGn spacer which is itself coupled to an azide covalently linked to a cyclooctyne coupled to a PEGn spacer which is itself to a peptide represented by SEQ ID NO: 19 (b60-74cit60.7 2.74 ).
  • n represents a number between 1 and 10 when a spacer
  • PEGn is used, preferably 1, 2, 3, 4 or 8.
  • the NK cells were incubated for 30 min at 37° C. in the presence of the hybrid molecules Fc-WT ⁇ 60-74cit, Fc-SDH ⁇ 60-74cit, Fc-LALAPG ⁇ 60-74cit at 10 ⁇ g/mL. After washing, the cells were incubated for 30 min at 4° C. in the presence of an anti-CD107a fluorescent antibody (degranulation marker). After washing, the analysis of the membrane expression of CD107a was carried out by flow cytometry.
  • Example 11 Membrane expression of the monoclonal ACPA 2H06 by the B lymphoblastic line Nalm6 after transduction
  • A- The human lymphoblastic B cell line "Nalm6" was transduced to induce the expression of the recombinant monoclonal ACPA 2H06 at its membrane. Transduction efficiency was analyzed by flow cytometry using double labeling using an IgG anti-Fab antibody and a biotinylated a621-635cit peptide tetramer attached to fluorescent Avidin.
  • B- A sorting carried out from 70 million Nalm6 cells made it possible to recover the Nalm6 Fab+ cells from which a pool of 300,000 cells was returned to culture. After proliferation, the enrichment of the transduced line Nalm62H06 was confirmed by flow cytometry.
  • C- Fc-WT-PEG-a621-635 cit and arg hybrids were labeled with Alexa Fluor 647 using the “Lightning Link” kit.
  • the non-transduced Nalm6 (NT) and Nalm6 2H06 lines were incubated with the Fc-WT-PEG-a621-635 hybrids. After washing, the membrane binding of the Fc-WT-PEG- ⁇ 621-635 hybrids was analyzed by flow cytometry.
  • Table 12 represents the average fluorescence intensities (MFI) and the ratio of MFI between the condition in the presence of fluorescent hybrid and the control condition where the cells are not labeled nm represents the unlabeled Nalm6 cells, without fluorescent hybrids.
  • the results show that after cell sorting and proliferation, 89.1% of the Nalm6 cells express an IgG Fab, that of ACPA 2H06, making it possible to validate the success of the transduction and the establishment of the Nalm62H06 line (B ).
  • the results show a strong interaction between the Nalm6 2H06 line and the fluorescent Fc-WT-PEG-a621-635 cit hybrid, whereas no interaction exists with the Fc-WT-PEG-a621-635 arg hybrid, non-citrullinated (C).
  • the macrophages were labeled with the membrane fluorochrome PKH-67 green then were incubated with the hybrids Fc-WT-PEG-a621-635, Fc-SDH-PEG-a621-635 or Fc-GASDIE-PEG-a621-635, in citrullinated (Cit) or non-citrullinated (Arg) form, at a concentration of 5 ⁇ g/ml for 60 min at 37°C.
  • the results in Figure 11A show that at T2, in the absence of hybrids, there is an increase in double-positive cells which testifies to a spontaneous basal phagocytosis of Nalm6 cells.
  • Example 13 Phagocytosis of cells of the B line Nalm6 ACPA+ 2H06 by pre-armed macrophages in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids at various concentrations
  • the macrophages were labeled with the membrane fluorochrome PKH-67 green then armed with the hybrids Fc-WT-PEG-a621-635, Fc-SDH-PEG-a621-635 Fc-GASDIE-PEG-a621-635 or Fc-GASDALIE -PEG-a621-635, in citrullinated (Cit) or non-citrullinated (Arg) form, at different concentrations (5pg/ml; 1 pg/ml; 100ng/ml; 50ng/ml; 10ng/ml; 5ng/ml) during 60 mins at 37°C.
  • the cells of the B line Nalm6 transduced for the expression of the monoclonal ACPA 2H06 were marked with red PKH-26 (fluorescent lipid marker) then placed in the presence of armed macrophages, at the rate of 1 Nalm6 target cell for 1 macrophages. After 2 h at 37° C., the macrophages were detached then the cell populations analyzed by flow cytometry.
  • the results presented in Figure 12 show a strong increase in the percentage of double-positive cells (A) associated with a strong decrease in the percentage of target cells (B), when the macrophages are armed with the Fc-PEG-a621- 635 citrullines, whether WT, SDH, GASDIE or GASDALIE.
  • the Fc-GASDIE-PEG-a621-635 Cit and Fc-GASDALIE-PEG-a621-635Cit hybrids are more effective than the Fc-WT-PEG a621-635 Cit or Fc-SDFI-PEG-a621-635Cit, and remain active above 50 ng/ml.
  • Example 14 Confirmation of the phagocytosis process of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by macrophages armed with FcWT-PEG-peptide a621-635 hybrids
  • Nalm6 2FI06 B cells were labeled with a pH-sensitive dye, pFIROdoSE, which exhibits low fluorescence intensity at neutral pH but emits fluorescence. strong in acidic medium.
  • pFIROdoSE a pH-sensitive dye
  • the pH in the intra-cytoplasmic vesicles (lysosomes) where the phagocytosed elements are found is acidic. Non-phagocytosed cells are therefore not detectable, whereas phagocytosed cells, internalized in the lysosomal compartment, become fluorescent.
  • Nalm6 2H06 cells were labeled with pHRodoSE (Thermofisher) at 20 ng/ml.
  • the labeled Nalm6 cells were incubated with macrophages armed or not with Fc-WT-PEG-a621-635 Cit or Arg hybrids, at 5 ⁇ g/ml for 1 hour at 37° C., treated or not with cytochalasin D for 30 min. at 2pg/ml then 1pg/ml during phagocytosis.
  • the cells were incubated for 2 h at 37° C., then the macrophages were detached and the cell populations analyzed by flow cytometry or stained with May Grunwald Giemsa (MGG) for morphological analysis by optical microscopy.
  • MMG May Grunwald Giemsa
  • the results presented in Figure 13 show the appearance of a pFIROdoSE-positive population (2nd peak) in the presence of macrophages armed with the hybrid Fc-WT-PEG a621-635 Cit, population which is absent when the macrophages are armed of the non-citrullinated version of the hybrids.
  • Example 15 Phagocytosis of the transduced line Nalm6 ACPA+ 2H06 by macrophages prearmed with Fc-peptide a621-635 hybrids or incubated in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids
  • the cells of the Nalm6 2H06 B line were labeled with the green PKH-67 membrane fluorochrome and the macrophages with the red PKH-26.
  • the macrophages were then separated and the cell populations analyzed by flow cytometry.
  • Example 16 Phagocytosis of the transduced line Nalm6 ACPA+ 2H06 by macrophages prearmed with Fc-PEG-a621-635 peptide hybrids, in the presence or absence of human IgG at physiological serum concentration
  • the cells of the Nalm6 2H06 line were labeled with the fluorescent dye CFSE (CarboxyFluorescein Succinimidyl Ester) then incubated with macrophages pre-armed with the hybrids Fc-WT-PEG-a621-635 and Fc-GASDIE-PEG-a621-635 in citrullinated (Cit) or non-citrullinated (Arg) form, by incubation for 1 hour with the hybrids at a concentration of 1 mg/mL then washing.
  • the phagocytosis experiment took place for 2 hours at 37°C, in the presence or absence of competing human IgGs at a physiological concentration of 10mg/mL.
  • the macrophages were detached then labeled with an anti-CD11 b BV421 antibody and the cell populations were analyzed by flow cytometry
  • IgG The presence of IgG induces a total inhibition of spontaneous phagocytosis at T2, a partial inhibition (approximately 50%) of the phagocytosis induced by the wild hybrid Fc-WT-PEG-a621-635cit, whereas no inhibition is observed with the mutated hybrid Fc-GASDIE-PEG-a621-635, whose Fc is more affine for Fc gamma macrophage receptors than that of serum IgG.
  • Example 17 Phagocytosis of the transduced line Nalm6 ACPA+ 2H06 by human macrophages incubated with Fc-peptide hybrids a621-635, in the presence or not of human IgG at physiological concentration or of human serum
  • the cells of the Nalm6 2H06 line were labeled with the fluorescent dye CFSE (CarboxyFluorescein Succinimidyl Ester) then incubated with macrophages in the presence of Fc-WT-PEG-a621-635 or Fc-GASDIE-PEG-a621-635 hybrids under citrullinated (cit) or non-citrullinated (arg) form, at a concentration of 10 pg/mL.
  • the experiment took place for 2 hours at 37° C. in the presence or absence of competing human IgGs at a concentration of 10 mg/mL or of a mixture of human sera, having the same IgG concentration.
  • the concentration ratio between hybrids and IgG is therefore here 1/1000.
  • the cells were removed and marked with an anti-CD11b BV421 antibody in order to identify the macrophages then analyzed by flow cytometry.
  • the IgGs inhibit the phagocytosis of the Nalm6 2H06 cells by the macrophages, but the inhibitory effect is much stronger for the Fc-WT hybrid (wild) than for the GASDIE hybrid (mutated, more affin for the Fc gamma Macrophage receptors Equivalent results are obtained in the presence of human serum, showing that the latter therefore does not contain factors that inhibit phagocytosis other than IgG.
  • Example 18 Phagocytosis of the Nalm6 ACPA+ 2H06 transduced line by human macrophages armed with the Fc-peptide a621-635 hybrids, in the presence of the non-transduced Nalm6 line
  • the cells of the Nalm6 2H06 line were labeled with the fluorescent dye CFSE (CarboxyFluorescein Succinimidyl Ester) then mixed with non-transduced Nalm6 NT cells according to the ratio 1 ⁇ 4 (1 transduced cell for 4 non-transduced cells).
  • the macrophages were prearmed with the Fc-WT-PEG-a621-635 or Fc-GASDIE-PEG-a621-635 hybrids, in citrullinated (Cit) or non-citrullinated (Arg) form, by incubation for 1 hour at the concentration of 1g/mL at 37°C.
  • the Nalm6 cells were then placed in the presence of the macrophages for 2 hours at 37°C, then the macrophages were detached, the total cell population sampled and marked with an anti-CD19 APC antibody, in order to discriminate Nalm6 2H06 cells and Nalm6 NT cells not transduced. The total cell population was then analyzed by flow cytometry.
  • Example 19 Specific destruction in vivo of the Nalm6 ACPA+ 2H06 line by human NK cells in the presence of Fc-peptide a621-635 hybrids, in SCID/BEIGE immunodeficient mice
  • mice received 50m9 of anti-FcR antibodies intraperitoneally (IP) in order to block the FcRs of the murine peritoneal macrophages then, 30 minutes later, the Nalm6 2H06 target cells and Nalm6 NT cells not transduced were injected IP, in the presence or not, of freshly prepared human NK cells and Fc-WT-PEG-a621-635 hybrids citrullinated (cit) or not (arg).
  • IP intraperitoneally
  • Example 20 Specific destruction in vivo of the Nalm6 ACPA+ 2H06 line by human macrophages pre-armed with the Fc-peptide hybrids a621-635, in SCID/BEIGE immunodeficient mice
  • the macrophages were armed with the various Fc-WT-PEG-a621-635 hybrids citrullinated (cit) or not (arg) and the target cells Nalm6-2H06 were been labeled with the CTV fluorescent marker (CelITrace Violet) at 0.5 mM: strongly fluorescent when they are free (Nalm6 2H06 CTV h '9 h ), these cells show a much weaker fluorescence (Nalm6-2H06 CTV
  • CTV fluorescent marker CelITrace Violet
  • the cells were recovered by peritoneal lavage with PBS 5% FCS, the erythrocytes were removed by gentle lysis and the cells were labeled with an anti-human CD45-FITC antibody then with 7AAD (Becton Dickinson kit) before flow cytometry analysis.
  • 7AAD Becton Dickinson kit

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Abstract

L'invention concerne une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu'une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d'anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine comprenant un ou plusieurs résidu(s) citrullyl. La présente invention concerne également les utilisations d'une telle cellule greffée, ainsi que son procédé de production.

Description

Cellule immunitaire comprenant un récepteur Fc à sa surface, et sur lequel est greffé une molécule hybride comprenant un fragment Fc d’anticorps et au moins un peptide citrulliné dérivé de la fibrine, et ses utilisations
La présente invention concerne une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine comprenant un ou plusieurs résidu(s) citrullyl. La présente invention concerne également les utilisations d’une telle cellule greffée, ainsi que son procédé de production.
Contexte de l’invention
La polyarthrite rhumatoïde est le plus fréquent des rhumatismes inflammatoires ou arthrites, mais aussi la plus fréquente des maladies auto-immunes. La maladie est caractérisée par une inflammation chronique des articulations synoviales aboutissant à une destruction articulaire irréversible.
La présence d’auto-anticorps de classe G dirigés contre les protéines citrullinées et appelés auto-anticorps anti-protéines citrullinées (ACPA), est hautement spécifique de la polyarthrite rhumatoïde. Les sérums des patients qui contiennent des ACPA, les cellules lymphocytaires qui les expriment à leur membrane et les patients eux-mêmes, sont dits ‘ACPA- positifs’. Plusieurs études ont démontré que ces ACPA sont au cœur des réactions auto-immunes propres à la maladie rhumatoïde et représentent ainsi une cible thérapeutique de choix.
Les cibles antigéniques des ACPA ont été caractérisées. Ils sont notamment dirigés spécifiquement contre des formes désiminées ou citrullinées des chaînes polypeptidiques a et b de la fibrine, protéine abondante dans le tissu synovial inflammatoire. Cette citrullination correspond à la désimination enzymatique des résidus arginyl des chaînes polypeptidiques, sous l'action de peptidyl-arginine désiminases (PAD).
Plus spécifiquement, les épitopes immunodominants reconnus par les ACPA sur les chaînes polypeptidiques a et b de la fibrine ont été caractérisés et publiés, notamment dans les demandes PCT/FR00/01857 ou PCT/FR2007/000758. Les cinq peptides citrullinés porteurs des épitopes immunodominants sont plus particulièrement les peptides nommés a36-50Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 5), a171 -185Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 6), a501-515Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 14), a621-635Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 18) et b60-74OK (tel que représenté en SEQ ID NO : 19). Les sérums de patients ACPA-positifs reconnaissent un ou plusieurs de ces cinq peptides.
Sécrétés dans le tissu synovial rhumatoïde par des plasmocytes locaux, les ACPA y présentent une concentration élevée, à proximité de leur principale cible, la fibrine citrullinée, qui y est, elle aussi, abondante sous forme de dépôts interstitiels. La fixation des ACPA sur ces dépôts et donc la formation de complexes immuns immobilisés, fixant à leur tour les facteurs rhumatoïdes, autres auto-anticorps associés à la polyarthrite rhumatoïde et eux aussi sécrétés par des plasmocytes locaux, déclenche une cascade d’évènements pro-inflammatoires.
La stimulation de cellules macrophagiques par ces macro-complexes immuns, essentiellement via leurs récepteurs Fcgamma membranaires, les conduit à sécréter des cytokines pro-inflammatoires et notamment du TNF-alpha qui a été identifié comme la principale cytokine responsable de l’inflammation rhumatoïde.
A ce jour il n’existe pas de traitement curatif de la polyarthrite rhumatoïde. Les traitements visent uniquement à soigner les poussées et/ou prévenir leur apparition.
Un objet de la présente invention est ainsi de fournir un traitement à la polyarthrite rhumatoïde.
Les ACPA sont oligoclonaux et donc sécrétés par seulement quelques clones plasmocytaires, résultant eux-mêmes de la différenciation de quelques clones lymphocytaires B.
En cas de polyarthrite rhumatoïde, des clones de lymphocytes B expriment à leur membrane des immunoglobulines porteuses de la spécificité ACPA (il s’agit de lymphocytes B ACPA-positifs), alors que les plasmocytes issus de la différenciation des clones lymphocytaires B ACPA-positifs (il s’agit de plasmocytes ACPA-positifs) sécrètent en abondance ces mêmes ACPA dans leur microenvironnement.
La présente invention repose sur les résultats des Inventeurs montrant qu'il est possible de cibler les clones lymphocytaires B exprimant des ACPA à leur surface et de les éliminer à l’aide d’une cellule immunitaire « armée », c’est-à-dire une cellule exprimant un récepteur Fc à sa surface et sur lequel est greffé une molécule hybride comprenant (i) au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl et (ii) un fragment Fc d’immunoglobuline humaine. La molécule hybride est liée au récepteur Fc grâce à son fragment Fc. Ces molécules hybrides cibleront spécifiquement les lymphocytes B ACPA-positifs (à l’aide du peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, qui est reconnu par lesdits ACPA) qui seront ensuite éliminées, après fixation du fragment Fc sur les récepteurs Fc des cellules immunitaires exprimant au moins un récepteur Fc. De telles cellules sont notamment les macrophages (les lymphoctes B ACPA- positifs sont ainsi éliminés par phagocytose) et/ou des cellules NK (les lymphocytes B ACPA- positifs sont ainsi éliminés par cytotoxicité à médiation cellulaire dépendante des anticorps - ADCC).
En ciblant les clones lymphocytaires B exprimant des ACPA les cellules immunitaires greffées de l'invention visent ainsi à faire disparaître les ACPA de l’organisme des patients.
Exposé de l’invention
Cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride selon l’invention
Dans un premier aspect, l’invention concerne une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide. Le schéma d’une telle construction est présenté en Figure 1.
Selon l’invention, une « cellule immunitaire » est une cellule du système immunitaire inné ou adaptatif qui exprime à sa surface au moins un récepteur Fc. Selon un mode de réalisation préféré, la cellule immunitaire est choisie parmi une cellule NK ou un macrophage. Selon un mode de réalisation, ladite cellule est allogénique ou autologue.
Selon l’invention, une « molécule hybride » s’entend d’une molécule ayant au moins deux composants de nature différente, en l’espèce le fragment Fc d’anticorps et ledit peptide.
Selon l’invention, un « récepteur Fc » s’entend de la protéine transmembranaire qui réagit avec un fragment Fc, et qui contribue aux fonctions protectrices du système immunitaire. Le récepteur Fc s’entend du récepteur Fcgamma, Fcgamma néonatal, récepteur Fcalpha et récepteur Fcepsilon. Selon un mode de réalisation, le récepteur Fc est un récepteur Fcgamma, notamment FcyRIII (CD16).
Selon l’invention, une « molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc » signifie que la cellule immunitaire exprime à sa surface au moins un récepteur Fc et qu’une molécule hybride telle qu'ici définie est lié au récepteur Fc via un fragment Fc. Grâce à la liaison récepteur Fc/fragment Fc, la molécule hybride est liée à la cellule immunitaire. Dans le cas où la cellule immunitaire exprime plusieurs récepteurs Fc à sa surface, plusieurs molécules hybrides peuvent ainsi être greffées sur la cellule immunitaire, i.e. une molécule hybride par récepteur.
Selon l’invention, un « fragment Fc » d’anticorps s’entend de la région constante d'une immunoglobuline à l'exclusion du premier domaine de région constante d'immunoglobuline (i.e. CH1-CL). Ainsi le fragment Fc fait référence à un homodimère, chaque monomère comprenant les deux derniers domaines constants des IgA, IgD, IgG (i.e. CH2 et CH3), ou les trois derniers domaines constants des IgE et IgM (i.e. CH2, CH3 et CH4).
Selon l’invention, l'expression « lié de façon covalente » s'entend d'une liaison covalente, c'est-à-dire une liaison chimique dans laquelle deux atomes se partagent deux électrons. Ladite liaison covalente peut être polaire ou non-polaire.
Selon l’invention, un « espaceur » est un agent de liaison qui permet de lier de façon covalente un fragment Fc d’anticorps audit peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, tout en éloignant ledit fragment Fc dudit peptide (diminuant ainsi un éventuel encombrement stérique). Par exemple, il peut s’agir d’une molécule ou d’un peptide. De manière préférée, l’espaceur ne modifie pas les propriétés physico-chimiques de la molécule hybride.
La présence d'au moins un espaceur est avantageuse : elle permet de faciliter l'accessibilité indépendante des deux partenaires de la molécule hybride (le fragment Fc est plus facilement accessible pour se lier au récepteur Fc, de même que ledit peptide est plus facilement accessible pour se lier aux lymphocytes B ACPA-positifs), et/ou de stabiliser la molécule hybride, et/ou augmenter la solubilité de la molécule hybride.
Selon un mode de réalisation, la molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l'invention peut comprendre un ou plusieurs espaceurs. De préférence, la molécule hybride comprend un ou deux espaceurs. Selon un mode de réalisation, lorsqu’au moins un espaceur est présent dans ladite molécule hybride de l’invention, ledit fragment Fc est lié de façon covalente à un espaceur, ledit espaceur étant lui-même lié de façon covalente audit peptide. Selon un autre mode de réalisation, lorsqu'au moins deux espaceurs sont présents dans ladite molécule hybride de l’invention, ledit fragment Fc est lié de façon covalente à un premier espaceur, ledit premier espaceur étant lui-même lié de façon covalente à un deuxième espaceur et le deuxième espaceur est lui-même lié de façon covalente audit peptide. La liaison entre le fragment Fc et le peptide peut donc être directe, ou bien indirecte en présence d’espaceurs.
Selon un mode de réalisation, la molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention peut comprendre au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl. Cela signifie que le fragment Fc peut être lié à un ou deux peptides. En effet, le fragment Fc comprend deux monomères, et le fragment Fc peut ainsi être lié de façon covalente à un peptide sur un seul des deux monomères, ou bien le fragment Fc peut être lié de façon covalente à un peptide sur chaque monomère. De préférence, lorsque deux peptides sont liés sur le fragment Fc, les deux peptides sont identiques, par exemple deux peptides de SEQ ID NO : 18 ou SEQ ID NO : 19.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l'invention, ledit espaceur est un polymère contenant un ou plusieurs motifs de répétition contenant le groupe éther. Selon un mode de réalisation particulier, ledit espaceur est le polyéthylène glycol de formule PEGn, dans laquelle n représente un nombre entier compris entre 1 et 100, préférentiellement entre 1 et 10, et notamment 1 , 2, 3, 4 ou 8. Selon l’invention ledit polyéthylène glycol peut être fonctionnalisé, par exemple avec un groupement amine (PEGn-amine tel que PEG-NH2). Selon l’invention « un nombre entier compris entre 1 et 100 » représente toutes les valeurs entières comprises entre 1 et 100, i.e ; 1 , 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 , 12, 13, 14, 15, 16,
17, 18, 19, 20, 21 , 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31 , 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41 , 42,
43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51 , 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61 , 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68,
69, 70, 71 , 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81 , 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91 , 92, 93, 94,
95, 96, 97, 98, 99 et 100.
Selon l’invention, l’expression « peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl » s’entend d’une molécule de fibrine ou de fibrinogène dans laquelle au moins un résidu arginyl a été substitué par un résidu citrullyl. Un « peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl » selon l’invention s’entend d'un peptide reconnu par les ACPA, et peut également être nommé un « peptide citrulliné ». De tels peptides peuvent être obtenus à partir de fragments de fibrine ou de fibrinogène naturels, recombinants ou de synthèse. De tels peptides peuvent également être directement synthétisés. Les acides aminés constituant le peptide peuvent être de série L ou D, de préférence de série L. Ladite substitution peut par exemple être réalisée par une étape de désimination enzymatique sous l'action de peptidyl-arginine désiminases (PAD). Un tel peptide peut aussi être obtenu en incorporant directement un ou plusieurs résidus citrullyl dans le peptide synthétisé. Un peptide selon l'invention se lie aux ACPA, et la liaison entre ledit peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl et un ACPA peut être vérifiée à l’aide d’un test ELISA ou tel que décrit dans la publication Sebbag M, Moinard N, Auger I, Clavel C, Arnaud J, Nogueira L, Roudier J, Serre G. Epitopes of human fibrin recognized by the rheumatoid arthritis- specific autoantibodies to citrullinated proteins. Eur J Immunol 36:2250-2263, 2006.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide est dérivé de tout ou partie de la séquence de la chaîne a ou b d’une fibrine de vertébré, par substitution d’au moins un résidu arginyl par un résidu citrullyl. Préférentiellement, ledit peptide est dérivé d’une séquence d’au moins 5 acides aminés consécutifs de la chaîne a (notamment représentée par SEQ ID NO : 27) ou b (notamment représentée par SEQ ID NO : 28), d’une fibrine de vertébré. Encore plus particulièrement, ladite fibrine de vertébré est une fibrine de mammifère, de préférence humaine.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide a une taille d’au moins 2 acides aminés consécutifs, 3 acides aminés consécutifs, 4 acides aminés consécutifs, de préférence 5 acides aminés consécutifs, et encore plus préférentiellement entre 5 et 25 acides aminés. Selon l’invention, « entre 5 et 25 » s’entend de toutes les valeurs : 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 , 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21 , 22, 23, 24 et 25. Préférentiellement, ledit peptide a une taille comprise entre 10 et 20 acides aminés, plus particulièrement 15 acides aminés.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide est linéaire.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide peut être modifié de façon à améliorer sa réactivité vis-à- vis des ACPA. A titre d’exemple, les peptides peuvent être cyclisés, les peptides peuvent être de type rétro (les acides aminés de série L sont enchaînés selon une séquence inverse de celle du peptide à reproduire), ou de type rétro-inverso (les acides aminés sont de type D au lieu de la série naturelle L et sont enchaînés selon une séquence inverse de celle du peptide à reproduire). Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride selon l'invention, la fonction carboxyle (COOH) terminale dudit peptide est remplacée par une fonction carboxamide (CONH2). De préférence, dans le peptide de SEQ ID NO : 12, la fonction carboxyle (COOH) terminale dudit peptide est remplacée par une fonction carboxamide (CONH2). A titre d’exemple, le peptide b60-74OK (tel que représenté en SEQ ID NO : 19) présente avantageusement une telle fonction carboxamide.
Selon un autre mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l'invention, le peptide peut être modifié de façon à faciliter sa synthèse et/ou améliorer sa stabilité, par exemple par alkylation. Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride selon l’invention, la fonction amine (NH2) terminale dudit peptide est acétylée. De préférence, dans le peptide de SEQ ID NO : 1 , la fonction amine terminale dudit peptide est acétylée. A titre d’exemple, le peptide a621-635Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 18) présente avantageusement une telle fonction amine (NH2) terminale. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, les fonctions amine et carboxyle du peptide peuvent être sous forme du sel correspondant à l'acide ou à la base.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par : a) un peptide défini par la séquence X1PAPPPISGGGYX2AX3 (SEQ ID NO : 1) dans laquelle X1, X2, et X3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 ou X3 est un résidu citrullyl ; b) un peptide défini par la séquence GPX1VVEX2HQSACKDS (SEQ ID NO : 2) dans laquelle X1 et X2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 est un résidu citrullyl ; c) un peptide défini par la séquence SGIGTLDGFX1HX2HPD (SEQ ID NO : 3) dans laquelle X1 et X2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 est un résidu citrullyl ; d) un peptide défini par la séquence VDIDIKIX1SCX2GSCS (SEQ ID NO : 4) dans laquelle X1 et X2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 est un résidu citrullyl ; e) un peptide défini par la séquence X1GHAKSX2PVX3GIHTS (SEQ ID NO : 12) dans laquelle X1, X2 et X3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 ou X3 est un résidu citrullyl ; f) un peptide comprenant au moins 5 acides aminés consécutifs, dont au moins un résidu citrullyl, de l'un des peptides a) à e) ci-dessus.
Selon un mode de réalisation particulier, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par :
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 1 dans laquelle au moins un résidu choisi parmi Xi ou X2 ou X3 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 2 dans laquelle au moins X1 ou X2 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 3 dans laquelle au moins X1 ou X2 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 4 dans laquelle au moins X1 ou X2 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 12 dans laquelle au moins un résidu choisi parmi Xi ou X2 ou X3 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl.
Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par :
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 1 dans laquelle X1 , X2, et X3 sont des résidus citrullyl, ou un peptide d'au moins 15 acides aminés comprenant ladite séquence (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 19) ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 2 dans laquelle X1 et X2 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 5) ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 3 dans laquelle X1 et X2 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 14) ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 4 dans laquelle X1 et X2 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 6) ;
- un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 12 dans laquelle X1 , X2 et X3 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 10 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 18).
Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide est choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5 (a36-50cit38,42), SEQ ID NO : 6 (a171-185citi78,isi ), SEQ ID NO : 7 (a183- 197citis6,i9o), SEQ ID NO : 8 (a246-260cit258), SEQ ID NO : 9 (a259-273cit263,27i), SEQ ID NO : 10 (a366-380cit367), SEQ ID NO : 11 (a396-410cit 04), SEQ ID NO : 13 (a411-425cit425), SEQ ID NO : 14 (a501-515cit5io,5i2), SEQ ID NO : 15 (a546-560cit547), SEQ ID NO : 16 (a561-575cit573), SEQ ID NO : 17 (a588-602cit59i), SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630), SEQ ID NO : 19 (360-74cit6o,72,74), SEQ ID NO : 20 ( 210-224cit224), SEQ ID NO : 21 ^281-295cit285,294), SEQ ID NO : 22 (b420- 434cit42i) et SEQ ID NO : 23 ^433-447cit436,44s), plus particulièrement choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5 (a36-50cit38,42), SEQ ID NO : 6 (a171 -185citi78,isi ), SEQ ID NO : 14 (□501-515citsio, 512), SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630) et SEQ ID NO : 19 ^60-74cit6o,72,74), encore plus particulièrement choisi parmi SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630) et SEQ ID NO : 19 (360-74citæ,72,74).
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc est un fragment Fc humain, notamment d’IgG, plus particulièrement d’IgGI . L’IgGI peut correspondre à n’importe quel variant allotypique par exemple G1 m3 ou nG1 m1. A titre d’exemple, le fragment Fc d’IgGI est représenté par SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 25 (Fc+Qtag) ou SEQ ID NO : 26 (Fc+Qtag bis). Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc est de type sauvage ou muté. La ou les mutations peuvent viser à augmenter la demi-vie plasmatique, la diminuer, modifier les fonctions effectrices du fragment Fc. Selon un mode de réalisation encore plus particulier, ledit fragment Fc muté comprend au moins les mutations suivantes :
- L234A et L235A (LALA), ou
- L234A, L235A et P329G (LALAPG), ou
- G236A, S239D et I332E (GASDIE), ou
- G236A, S239D, A330L et I332E (GASDALIE), ou
- S239D, H268F, S324T et I332E (SDHFSTIE ou SDH), la numérotation étant indiquée dans la séquence d’une IgG 1 humaine selon l’index EU. De telles mutations sont notamment décrites dans l’article Bruhns and Jonsson, Immunol Rev. 2015 Nov;268(1):25-51. De préférence, lorsque la molécule hybride est utilisée en thérapie, ledit fragment Fc muté comprend au moins les mutations GASDIE, GASDALIE, ou SDH.
Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc présente un taux de fucosylation compris entre 0% à 100% des formes glycosylées. Selon l’invention « entre 0% et 100% » représente toutes les valeurs entières comprises entre 0 et 100, i.e ; 0, 1 , 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 , 12, 13, 14, 15, 16,
17, 18, 19, 20, 21 , 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31 , 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41 , 42,
43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51 , 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61 , 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68,
69, 70, 71 , 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81 , 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91 , 92, 93, 94,
95, 96, 97, 98, 99 et 100%. Une faible fucosylation du fragment Fc provoque une forte réponse ADCC. C’est pourquoi selon un mode de réalisation particulier, ledit fragment Fc présente un taux de fucosylation compris entre 0% à 60% des formes glycosylées, notamment 50%, 40%, 30%, 20%, 10% ou 0%. Selon l'invention, le taux de fucosylation est défini comme la proportion moyenne de fucose portée par le fragment Fc, par rapport à la quantité maximale de fucose que peut porter un fragment Fc.
Le fragment Fc et le peptide ont chacun des extrémités N- et Cterminale. Le fragment Fc peut donc être lié via son extrémité N- ou Cterminale à l’extrémité N- ou Cterminale du peptide. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ladite liaison covalente se situe entre l’extrémité Cterminale dudit fragment Fc et l'extrémité Nterminale dudit peptide, ou entre l’extrémité Nterminale dudit fragment Fc et l’extrémité Nterminale dudit peptide. Selon un mode de réalisation, lorsqu’un espaceur est présent, l’espaceur peut être lié au fragment Fc via son extrémité N- ou Cterminale. Selon un autre mode de réalisation, lorsque deux espaceurs sont présents, le premier espaceur peut être lié au fragment Fc via son extrémité N- ou Cterminale et le deuxième espaceur peut être lié au peptide via son extrémité N- ou Cterminale, notamment Nterminale. Alternativement, ladite liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide (éventuellement en présence d’un ou plusieurs espaceurs) peut être créée sur tout ou partie du fragment Fc. Selon l'invention « tout ou partie du fragment Fc » signifie que différents et/ou plusieurs acides aminés constituant le fragment Fc peuvent être impliqués dans une liaison covalente avec ledit peptide.
Selon un mode de réalisation préféré, lorsqu’au moins un espaceur est présent dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l'invention, celui-ci permet de lier le fragment Fc à un azoture ou à un alcyne qui sera lui-même impliqué dans la liaison covalente avec ledit peptide. Selon un mode de réalisation, lorsqu’au moins un espaceur est présent dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, celui-ci peut également permettre de lier le peptide à un alcyne ou à un azoture qui sera lui-même impliqué dans la liaison covalente avec le fragment Fc. Selon un mode de réalisation préféré, la molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention comprend au moins deux espaceurs : un premier espaceur qui permet de lier le fragment Fc à un azoture ou à un alcyne et un deuxième espaceur qui permet de lier le peptide à un azoture (lorsque le fragment Fc est lié à un alcyne) ou à un alcyne (lorsque le fragment Fc est lié à un azoture).
Selon un mode de réalisation selon l’invention, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc :
- est couplé à au moins un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou
- est lié à au moins un espaceur qui est lui-même couplé à un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est :
- soit couplé à un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO,
- soit lié à un espaceur qui est lui-même couplé à un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide, éventuellement en présence d’un ou plusieurs espaceurs, étant créée entre l’azoture et l’alcyne.
Selon un mode de réalisation selon l’invention, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention,
- le fragment Fc est couplé à au moins un azoture et ledit peptide est couplé à un alcyne, tel qu'un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou
- le fragment Fc est couplé à au moins un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide étant créée entre l’azoture et l’alcyne.
Selon un mode de réalisation selon l’invention, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention :
- le fragment Fc est couplé à au moins un azoture et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ou
- le fragment Fc est couplé à au moins un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture ou
- le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ou - le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture ou
- le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu'un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ou
- le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide, en présence d’un ou plusieurs espaceurs, étant créée entre l’azoture et l’alcyne.
Selon un mode de réalisation, dans les molécules décrites ci-dessus qui sont greffées sur la cellule immunitaire, plus particulièrement de la page 9, ligne 14 à la page 10, ligne 10, l’espaceur utilisé est de préférence un espaceur PEGn, n représentant plus particulièrement un entier compris entre 1 et 10. Lorsque la molécule hybride selon l’invention comprend au moins deux espaceurs PEGn, les n des deux espaceurs peuvent être identiques ou différents. Par exemple le premier espaceur peut être un PEGået le deuxième espaceur peut être un PEG3 ou PEG4.
Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, dans les molécules décrites ci- dessus qui sont greffées sur la cellule immunitaire, plus particulièrement de la page 9, ligne 14 à la page 10, ligne 10, le peptide est dérivé de fibrine ou fibrinogène humain et le fragment Fc est un Fc humain, de préférence d’IgGI humaine.
Selon l’invention, la création de la liaison covalente entre l’azoture et l’alcyne correspond à une étape dite de « chimie-click », la partie N3 de l’azoture réagissant avec un alcyne. L’azoture s’entend des sels de l'acide azothydrique FIN3, ou des azotures organiques dans lesquels un des atomes d'azote est lié de façon covalente avec un atome de carbone d'un composé organique (par exemple l’azoture de méthyle CFI3N3). Préférentiellement l’azoture est représenté par la formule N3. L'alcyne s’entend des molécules ayant pour formule générale CnFl2n-2, et qui sont caractérisées par la présence d'au moins une triple liaison. Préférentiellement l’alcyne est un cyclooctyne, encore plus préférentiellement le dibenzocyclooctyne (DBCO).
Le fragment Fc, ledit peptide et éventuellement ledit espaceur, sont couplés à l’alcyne ou à l’azoture par toute technique de couplage moléculaire classiquement utilisée (telle qu’une conjugaison). Toute technique peut également être utilisée pour lier de façon covalente le fragment Fc à l’espaceur et/ou le peptide à l'espaceur.
Plus particulièrement, une technique de conjugaison s’entend d'une conjugaison enzymatique ou d’une conjugaison chimique. Une conjugaison enzymatique s’entend par exemple d’une conjugaison à l’aide d’une transglutaminase qui catalyse la formation de liaisons covalentes entre des groupes amines libres et des résidus de glutamine ou de lysine ou encore à l’aide d’une transpeptidase telle que la sortase. Pour de plus amples informations concernant la conjugaison enzymatique, voir par exemple la demande de brevet US20160361434 ou US20170313787, ou encore la publication Ohtsuka et al., Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry Volume 64, 2000 - Issue 12, Comparison of Substrate Specificities of Transglutaminases Using Synthetic Peptides as Acyl donors. Le substrat de la transglutaminase est par exemple un peptide comportant un résidu glutamyl (un Qtag), tel que représenté par SEQ ID NO : 29 (LLQG). Une conjugaison chimique s’entend par exemple d’une liaison covalente entre une cystéine isolée ou participant à un pont disulfure après réduction de celui-ci et par exemple un maléimide. Un exemple d’une telle conjugaison est représenté en Figure 7. Dans cet exemple, le fragment Fc comprend un peptide Qtag et ledit fragment Fc est lié à un espaceur (lui-même couplé à un azoture), grâce à l’action de la transglutaminase qui va créer une liaison covalente entre le résidu glutamyl du Qtag et le groupe NH2 porté par l’espaceur PEGn.
Selon l’invention, le terme « couplé » ou « couplage moléculaire » s’entend de rétablissement d’une liaison covalente, ainsi le fragment Fc et/ou le peptide et/ou l’espaceur est lié de façon covalente à un alcyne ou un azoture. Le terme « lié » s’entend également d’une liaison covalente. Ainsi, à titre d’exemple, l’expression « le fragment Fc est couplé à un azoture et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO » peut également se lire « le fragment Fc est lié de façon covalente à un azoture et ledit peptide est lié de façon covalente à un espaceur, ledit espaceur étant lui-même lié de façon covalente à un alcycne, tel qu'un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ».
Selon l’invention, la molécule hybride est greffée sur la cellule immunitaire grâce à la liaison entre le récepteur Fc et le fragment Fc.
Selon un mode de réalisation selon l’invention, ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention est représentée par :
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) ,
- un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) ,
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un cyclooctyne lié de façon covalente à un azoture couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-
635CÏt621 ,627,63q) ,
- un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un cyclooctyne lié de façon covalente à un azoture couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60- 74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un cyclooctyne lié de façon covalente à un azoture couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60- 74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60-74oK6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) , - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, FI268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 të60-74citæ,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60- 74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D et I332E, qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 të60-74citæ,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D, A330L et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 të60-74citæ,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630),
- un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 ^60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) , - un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D, A330L et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60-74aί6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) , n représentant de préférence un entier entre 1 et 10, plus particulièrement 1 , 2, 3, 4 ou 8. Selon un mode de réalisation selon l’invention, ladite molécule hybride est représentée par :
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60-74oίΐ6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (360-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) ,
- un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 ^60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) ,
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (360-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621 -635cit62i ,627,630) ,
- un fragment Fc comprenant les mutations S239D, FI268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (p60-74cifeo,T2,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630), n représentant de préférence un entier entre 1 et 10, plus particulièrement 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Selon un mode de réalisation encore plus particulier selon l’invention, ladite molécule hybride est représentée par :
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74),
- un fragment Fc comprenant les mutations S239D, FI268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74),
- un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74),
- un fragment Fc de type sauvage qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à au moins un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui- même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74cit6o,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-
635CÏt621 ,627,63q) ,
- un fragment Fc comprenant les mutations S239D, FI268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 të60-74citæ,72,74) ou SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 627,630), n représentant de préférence un entier entre 1 et 10, plus particulièrement 1 , 2, 3, 4 ou 8. Utilisation des molécules hybrides selon l'invention
Dans un second aspect, la présente invention concerne également une cellule immunitaire sur laquelle est greffée une molécule hybride telle que définie précédemment, pour son utilisation comme médicament.
Plus particulièrement, selon l’invention, lesdites cellules immunitaires sur lesquelles sont greffées les molécules hybrides sont destinées à cibler et à lyser dans l’organisme des patients, par ADCC et/ou phagocytose et/ou activation du complément, toutes les cellules B « ACPA- positives » (i.e. les lymphocytes B qui expriment à leur surface les auto-anticorps anti-protéines citrullinées (ACPA)). En effet, la molécule hybride selon l’invention se lie aux lymphocytes B « ACPA-positifs » grâce au peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl : il s’agit de la cible épitopique dudit ACPA. La molécule hybride selon l’invention se lie aussi aux cellules permettant de détruire les lymphocytes B « ACPA-positifs », les cellules immunitaires exprimant un récepteur Fc, grâce à son fragment Fc, ligand naturel des récepteurs Fc, (par exemple Fcgamma récepteur (FcyR) si le fragment Fc est issu d’une IgG), présents notamment à la surface des macrophages mais aussi des cellules NK (“Natural killers").
Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne une cellule immunitaire sur laquelle est greffée une molécule hybride, telle que définie précédemment pour son utilisation dans le traitement des maladies auto-immunes associées à la production d’auto-anticorps anti-protéines citrullinées, en particulier le syndrome de Gougerot-Sjogren et la polyarthrite rhumatoïde. Dans ce mode de réalisation, les formes sévères desdites maladies auto-immunes associées à la production d’auto-anticorps anti-protéines citrullinées sont ciblées, de même que diverses formes dites « frontières » avec d’autres arthrites chroniques, telles que l’arthrite psoriasique ou le lupus érythémateux disséminé.
Selon un mode de réalisation, l'invention concerne également une composition pharmaceutique comprenant une cellule immunitaire sur laquelle est greffée une molécule hybride, telle que définie précédemment, en combinaison avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable.
Selon l’invention « un véhicule pharmaceutiquement acceptable » s’entend de toute formulation rendant la composition apte à être administrée à un patient, sous n’importe quelle forme galénique.
Selon un mode de réalisation, l’invention concerne également un ensemble d’éléments (ou un kit) comprenant (a) une cellule du système immunitaire inné ou adaptatif qui exprime à sa surface au moins un récepteur Fc, notamment une cellule NK ou un macrophage, et (b) une molécule hybride telle que définie précédemment.
Comme indiqué ci-dessus, la présente invention vise à détruire les lymphocytes B « ACPA-positifs ». Cependant, les lymphocytes B « ACPA-positifs » qui se sont différenciés en plasmocytes sécréteurs d’ACPA ne sont plus ciblés par les molécules hybrides précédemment décrites. Selon un mode de réalisation particulier, la présente invention concerne ainsi une cellule immunitaire telle que précédemment décrite, pour son utilisation comme médicament, en combinaison avec une molécule hybride (cette deuxième molécule hybride n’étant pas greffée sur la cellule immunitaire). Ladite deuxième molécule hybride comprend au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, ledit peptide étant lié de façon covalente à au moins un anticorps ou à au moins un fragment d'anticorps, ledit anticorps ou fragment étant capable de se lier à CD38 et/ou CD138, un ou plusieurs espaceurs étant optionnellement présents entre ledit peptide et ledit anticorps ou ledit fragment. Une telle thérapie de combinaison permet de cibler et détruire spécifiquement les clones plasmocytaires et lymphocytaires B ACPA-positifs, et ainsi de faire disparaître les ACPA de l’organisme des patients. L’anticorps utilisé dans cette deuxième molécule hybride est de préférence un anticorps monoclonal .
Selon un mode de réalisation particulier, dans cette deuxième molécule hybride, le fragment s’entend d’une portion d’anticorps qui est porteuse du site de liaison à l’antigène. De tels fragments d’anticorps sont par exemple Fab, F(ab’)2, Fv, dsFv, scFv, les fragments simples chaînes tel que les fragments VH ou VL isolés, les VHH de camélidés, les VNAR de poisson cartilagineux, ou encore des anticorps multispécifiques composés de différents fragments, tels que des anticorps bi-spécifiques, ou encore des « nanobodies » « diabodies », « triabodies », « tetrabodies », ou des scFv en tandem, ... Ces fragments sont bien connus de l’homme du métier. De plus amples informations concernant ces fragments et constructions sont par exemple décrites dans la demande internationale WO2017137579, Bird et al., 1988 Science 242:423-426; and Huston et al., 1988 Proc. Natl. Acad. Sci. 85:5879-5883, ou encore Nelson, mAbs 2:1 , 77-83; January/February 2010. De préférence le fragment est un Fab ou F(ab’)2. Selon un mode de réalisation particulier, dans cette deuxième molécule hybride ledit anticorps ou fragment F(ab’)2 est un anticorps ou fragment F(ab’)2 bispécifique dirigé contre CD38 et une autre cible plasmocytaire. Alternativement, dans cette deuxième molécule hybride ledit anticorps ou fragment F(ab’)2 est un anticorps ou fragment F(ab’)2 bispécifique dirigé contre CD138 et une autre cible plasmocytaire. Selon l'invention, une « autre cible plasmocytaire » s’entend de tout marqueur étant exprimé à la surface des plasmocytes.
Selon un autre mode de réalisation particulier, dans cette deuxième molécule hybride ledit anticorps ou fragment F(ab’)2 est un anticorps ou fragment F(ab’)2 bispécifique dirigé contre CD38 et CD138.
Selon ce mode de réalisation particulier de l’invention, la cellule immunitaire greffée et la deuxième molécule hybride sont administrées de façon simultanée, séparée ou étalée dans le temps.
Selon un autre mode de réalisation, la molécule hybride selon l'invention greffée sur la cellule immunitaire telle que précédemment décrite peut être couplée à au moins un radioisotope ou à au moins un fluorochrome, tels que A488 ou A647. De telles molécules peuvent avantageusement être utilisées comme outils moléculaires traceurs.
Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne ainsi l’utilisation in vitro ou ex vivo d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface sur laquelle est greffée une molécule hybride, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, au moins un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide, comme outil moléculaire. De telles constructions peuvent notamment être utilisées pour analyser la fixation des molécules hybrides aux ACPA et aux récepteurs Fc des macrophages et des cellules NK, ainsi que pour analyser la réactivité des macrophages et des cellules NK à la fixation des hybrides suivie du pontage de ceux-ci par les ACPA.... Les radioisotopes et/ou fluorochromes sont de préférence couplés sur le fragment Fc, encore plus particulièrement au niveau du Qtag (si présent) ou au niveau des lysines.
Procédé de production des molécules hybrides selon l’invention
Dans un autre aspect, l’invention concerne également un procédé permettant d’obtenir une cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment.
Selon un mode de réalisation, l’invention concerne ainsi un procédé de production d’une cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment, comprenant les étapes suivantes :
- (i) obtention d’un azoture couplé à un fragment Fc ou obtention d’un alcyne couplé à un fragment Fc,
- (ii) obtention d'un alcyne couplé à un peptide ou obtention d’un azoture couplé à un peptide,
- (iii) réalisation de la liaison covalente entre l’azoture et l’alcyne,
- (iv) mise en contact d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface et une molécule hybride telle qu’obtenue à l’étape (iii),
- l’étape (i) pouvant être réalisée avant ou après l’étape (ii), ou bien de façon concomitante.
Selon un mode de réalisation, l’invention concerne ainsi un procédé de production d’une cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment, comprenant les étapes suivantes :
- (i) couplage d'un azoture et d’un fragment Fc, éventuellement en présence d’un espaceur, ou couplage d’un alcyne et d'un fragment Fc, éventuellement en présence d’un espaceur,
- (ii) couplage d’un alcyne et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur, ou couplage d’un azoture et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur,
- (iii) réalisation de la liaison covalente entre l’azoture et l’alcyne,
- (iv) mise en contact d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface et une molécule hybride telle qu'obtenue à l'étape (iii),
- l'étape (i) pouvant être réalisée avant ou après l’étape (ii), ou bien de façon concomitante.
Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne ainsi un procédé de production cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment, comprenant les étapes suivantes :
- (i) couplage d’au moins un azoture sur chaque monomère du fragment Fc, éventuellement en présence d’au moins un espaceur, ou couplage d’au moins un alcyne sur chaque monomère du fragment Fc, éventuellement en présence d’un espaceur, - (ii) couplage d’un alcyne et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur, ou couplage d’un azoture et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur,
- (iii) réalisation de la ou les liaison(s) covalente(s) entre l’azoture et l'alcyne,
- (iv) mise en contact d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface et une molécule hybride telle qu’obtenue à l’étape (iii),
- l’étape (i) pouvant être réalisée avant ou après l’étape (ii), ou bien de façon concomitante.
Les séquences de l’invention sont représentées dans le Tableau 1 ci-après.
Figure imgf000018_0001
Figure imgf000019_0001
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[Tableau 1]. Tableau récapitulatif des séquences de l’invention
D’autres caractéristiques, détails et avantages de l’invention apparaîtront à la lecture des Figures annexées et des exemples qui illustrent l’invention et ne visent en aucun cas à la limiter.
Dans les molécules hybrides exemplifiées, c’est l’extrémité Nterminale du fragment Fc qui est liée à un espaceur PEGn (sauf dans le cas indiqué Cter-PEG (voir la Figure 4)), et c’est toujours l’extrémité Nterminale dudit peptide qui est lié au cycloctyne DBCO ou à un deuxième espaceur PEGn le cas échéant. De plus, dans les molécules hybrides exemplifiées, dans l'espaceur PEGn lié au fragment Fc, n représente plus particulièrement 3 ou 4, et dans l'espaceur PEGn lié au peptide, l’espaceur PEGn représente 3 ou 8, bien que toute autre valeur de n, notamment entre 1 et 10, puisse être utilisée.
Dans les exemples ci-après une cellule « armée ou pré-armée » s’entend d’une cellule sur laquelle est fixée une molécule hybride selon l’invention. Ainsi, la molécule hybride est liée au récepteur Fc de la cellule grâce à son fragment Fc.
Brève description des Figures Fig. 1
[Fig. 1] représente le schéma d’un exemple de molécule hybride selon l’invention.
Un espaceur (qui est optionnel) est représenté entre le fragment Fc d’anticorps et le peptide dérivé de fibrine ayant un résidu citrullyl (dénommé « peptide citrulliné »).
Fig. 2
[Fig. 2] représente un lymphocyte B exprimant à sa surface des ACPA transmembranaires liés à une molécule hybride selon l’invention, ladite molécule hybride étant elle-même liée par le fragment Fc à une cellule NK.
La cellule NK va ainsi pouvoir détruire le lymphocyte B par ADCC. Plus spécifiquement, cette figure montre une cellule B (ou lymphocyte B) qui exprime à sa surface un BCR de type ACPA et qui interagit spécifiquement avec le peptide citrulliné porté par la molécule hybride. L’engagement du fragment Fc porté par la même molécule hybride au FcyRIIIa (CD16a) exprimé à la surface d'une cellule NK va activer l’ADCC et induire la destruction spécifique du lymphocyte B ACPA-positif. (ACPA, Anti-Citrullinated Protein Autoantibodies; ADCC : Antibody-Dependent Cell Cytotoxicity; BCR, B-Cell Receptor ; Fc y R, Fc-gamma Receptor; NK cell, Natural Killer cell).
Fig. 3 [Fig. 3] représente un lymphocyte B exprimant à sa surface des ACPA transmembranaires liés à une molécule hybride selon l’invention, ladite molécule hybride étant elle-même liée par le fragment Fc à un macrophage.
Le macrophage va ainsi pouvoir détruire le lymphocyte B par phagocytose. Plus spécifiquement, cette Figure montre des cellules B (ou lymphocytes B) qui expriment à leur surface un BCR de type ACPA et qui interagissent spécifiquement avec des peptides citrullinés portés par les molécules hybrides. L’engagement des fragments Fc portés par ces mêmes molécules hybrides à différents FcyRs exprimés à la surface d’un macrophage va activer l’ADP, c’est-à-dire la phagocytose, et induire la destruction spécifique des lymphocytes B ACPA-positifs. (ACPA, Anti- Citrullinated Protein Autoantibodies; ADP, Antibody-Dependent Phagocytosis; BCR, B-Cell Receptor; FcyR, Fc-gamma Receptor).
Fig. 4
[Fig. 4] représente la réactivité de plusieurs molécules hybrides comprenant le peptide de SEQ ID NO : 19 (P60-74citeo,72,74) vis-à-vis des ACPA. b60-74 représente le peptide de SEQ ID NO : 19. Fc-WT^60-74 représente un fragment Fc de type sauvage (Wild Type) qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (P60-74dt6o,72,74). Fc-LALA-p60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19. Fc-SDH-p60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui- même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19. Fc-WT-PEG-p60-74 représente un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60-74aί6o,72,74). Fc-SDH-PEG^60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn, lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60- 74dt6o,72,74). Fc-SDH(Cter)-PEG^60-74 correspond au Fc-SDH-PEG^60-74, à la différence près que dans l’hybride Fc-SDH(Cter)-PEG^60-74, le premier PEGn est fixé au niveau de l'extrémité Cterminale du fragment Fc, contrairement aux autres exemples dans laquelle le premier PEGn est fixé au niveau de l’extrémité Nterminale. n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Fig. 5
[Fig. 5] représente la réactivité d’une molécule hybride comprenant le peptide de SEQ ID NO : 18 (a621-635cit62i, 027,030) vis-à-vis des ACPA. a621-635 représente le peptide de SEQ ID NO : 18. Fc-WT-PEG-a621-635 représente un fragment Fc de type sauvage (WT) qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. Fc-SDFI-PEG-a621-635 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, FI268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Fig. 6
[Fig. 6] représente la réactivité d’un ACPA monoclonal humain recombinant (clone 2H06), comprenant un Fc non modifié ou modifié avec les mutations de type SDH, vis-à-vis des molécules hybrides comprenant le peptide de SEQ ID NO : 18.
FcWT-PEG-a621-635 représente un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. FcSDH-PEG-a621-635 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E, qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Fig. 7
[Fig.7] représente un procédé de fabrication d’une molécule hybride selon l’invention, comprenant le schéma de dérivation et de conjugaison des fragments Fc.
Fig. 8
[Fig. 8] représente l’évolution du pourcentage de phagocytose et de lymphocytes B en présence de molécules hybrides Fc-WT-PEG-a621-635arg et Fc-WT-PEG-a621-635cit.
Les résultats des 6 expériences présentés en Exemple 6 sont indiqués (N=6). La valeur P est comme suit : * < 0,05 ** < 0,01 *** < 0,001 .
Fig. 9
[Fig. 9] représente la lyse par des cellules NK humaines, de cellules d’une lignée cellulaire B humaine maligne lymphoblastique transduite exprimant à sa membrane un ACPA monoclonal recombinant, en présence des hybrides FcWT-N3-DBCO-PEG3-a621- 635Cit et FcSDH-N3-DBCO-PEG3-a621-635Cit.
Nalm6 représente le cas où seules les cellules Nalm6 ont été incubées ; Nalm6+NK le cas où les cellules Nalm6 ont été incubées avec les cellules NK ; WTaCIT le cas où l’hybride WTaCIT a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK ; WTaArg le cas où l’hybride WTaArg a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK ; SDHaCIT le cas où l’hybride SDHaCIT a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK et SDHaArg le cas où l’hybride SDHaArg a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK.
La lignée cellulaire B humaine maligne lymphoblastique transduite exprimant à sa membrane un ACPA monoclonal recombinant correspond à la lignée Nalm6 telle que décrite dans l’Exemple 11 et la Figure 10. L’anticorps monoclonal est le clone 022014CCP14CFCT2H06, dit 2H06.
Fig. 10
[Fig. 10] représente l’expression membranaire de l’ACPA monoclonal 2H06 par la lignée lymphoblastique B Nalm6 après transduction (Nalm62H06).
A- Analyse par cytométrie de flux de l’efficacité de transduction de la lignée B Nalm6 pour l’expression à sa membrane de l’ACPA monoclonal 2H06, grâce à un double marquage par un anticorps anti-Fab d’IgG et un tétramère du peptide a621-635cit (SEQ ID NO : 18). B- Analyse en cytométrie de flux de l’enrichissement en cellules transduites Nalm6 2H06, consécutif à un tri cellulaire réalisé grâce à un anticorps anti-Fab. C- Analyse en cytométrie de flux de l’interaction entre l’ACPA 2H06 membranaire exprimé par la lignée Nalm6 transduite et les hybrides Fc-WT- PEG-a621-635cit (cit) ou Fc-WT-PEG-a621-635arg (arg), couplés au fluorochrome A647. Nalm6 NT : lignée Nalm6 contrôle non transduite. Fc-WT-PEG-a621-635 représente un fragment Fc de type sauvage (WT) qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. Fc-WT-PEG-a621-635arg représente un fragment Fc de type sauvage (WT) qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui- même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18 dans laquelle les résidus X ne sont pas citrullinés (i.e. ce sont des résidus arginyls).
Les cellules Nalm6 exprimant l’ACPA monoclonal 2H06 correspondent à la lignée transduite Nalm6 mentionnée dans les exemples.
Fig. 11
[Fig. 11] représente la phagocytose de cellules de la lignée B transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages armés d’hybrides Fc-peptide a621-635.
A- La Figure montre les résultats d’une expérience de cytométrie de flux où les populations cellulaires sont représentées sous forme de nuages de points. T0 représente le résultat au temps 0, après mise en contact des cellules-cibles Nalm6 et des macrophages. T2 représente le résultat au temps 2h, après 2h de mise en contact des cellules-cibles Nalm6 et des macrophages, en l'absence de molécules hybrides (phagocytose spontanée). L’ensemble des autres diagrammes de cytométrie représente les résultats obtenus après 2h de mise en contact des cellules-cibles Nalm6 et des macrophages armés d’hybrides Fc-PEG-a621-635cit (citrulliné) ou d’hybrides contrôles Fc-PEG-a621-635arg (non citrulliné). Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 10, à la différence près que différents types de fragment Fc ont été utilisés : un fragment Fc de type sauvage (WT), un fragment Fc GASDIE (présentant les mutations G236A, S239D et I332E), ou un fragment Fc SDH (présentant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E). Les cellules présentant la double fluorescence (PKH-67 vert / PKH-26 rouge) correspondent aux macrophages qui ont phagocyté des cellules-cibles. Les cellules présentant une simple fluorescence PKH-26 correspondent aux cellules-cibles Nalm6 résiduelles, c'est-à-dire non phagocytées après 2h en présence des macrophages (% population-cible). Dans chaque cadran des diagrammes de cytométrie, les différentes populations cellulaires sont exprimées en pourcentage de la population cellulaire totale. B- Les Figures montrent sous forme d’histogrammes, pour chaque condition expérimentale décrite en A, la moyenne du % de cellules doubles-positives et la moyenne du % de cellules de la population-cible, calculées à partir des résultats de 3 expériences. Les histogrammes en noir représentent les conditions contrôles. Les histogrammes en blanc représentent les conditions en présence d’hybride Fc-PEG-a621-635cit. La valeur p est comme suit : * p< 0,05 ; ** p< 0,01.
Fig. 12
[Fig. 12] représente la phagocytose de cellules de la lignée B Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635 à diverses concentrations.
La Figure montre les résultats d’une expérience de cytométrie de flux réalisée après phagocytose des cellules B Nalm6 2H06 par des macrophages pré-armés par incubation en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635 à diverses concentrations. A- La Figure montre sous forme d’histogrammes, pour chaque condition expérimentale, le % de cellules doubles-positives. B- La Figure montre le % de la population Nalm6 cible résiduelle, c’est-à-dire non phagocytée. Les histogrammes sombres représentent les conditions contrôles obtenues en présence hybrides Fc- PEG-a621-635arg, non citrullinés. Les histogrammes clairs représentent les conditions en présence d'hybride Fc-PEG-a621-635cit. Les concentrations d’hybrides utilisées sont comprises entre 5 pg/ml et 5 ng/ml. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 11 , à la différence près qu’une molécule hybride avec un fragment Fc GASDALIE (comprenant les mutations G236A, S239D, A330L et I332E) a également été testée.
Fig. 13
[Fig. 13] représente la confirmation du processus de phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés d’hybrides FcWT-PEG- peptide a621-635.
Ces Figures montrent que les cellules doubles-positives observées en cytométrie dans les expériences précédentes correspondent bien à la phagocytose des cellules-cibles Nalm6 par les macrophages. Les quatre panneaux de gauche montrent des résultats de cytométrie de flux obtenus après mise en présence de cellules Nalm6 2H06 marquées au pHRodo SE et de macrophages armés d’hybrides Fc-WT-PEG-a621-635, ceci en présence ou non de cytochalasine D, inhibiteur de phagocytose. Les deux panneaux de droite montrent les populations cellulaires au terme de l’expérience, observées en microscopie optique après coloration au MGG. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 10. Fig. 14
[Fig. 14] représente la phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés d’hybrides Fc-peptide a621-635 ou incubés en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635. La Figure montre les résultats d’une expérience analysée en cytométrie de flux : les nuages de points correspondent à des populations cellulaires. T0 représente le résultat au temps 0, juste après mise en contact des cellules-cibles Nalm6 et des macrophages. T2 représente le résultat à la 2ème heure après mise en contact des cellules-cibles Nalm6 et des macrophages, en l’absence de molécules hybrides (phagocytose spontanée). Tous les autres diagrammes de cytométrie présentent les résultats obtenus après 2h de mise en contact des cellules-cibles Nalm6 et des macrophages, soit pré-armés par les hybrides FcWT-PEG-a621-635 ou FcGASDIE-PEG- a621-635, citrullinés ou non, soit incubés avec les hybrides WT-PEG-0621-635 ou FcGASDIE- PEG-a621-635, citrullinés ou non, solubilisés dans le milieu d’incubation. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 11 . Les cellules présentant la double fluorescence (PKH-67 vert/PKH-26 rouge) correspondent aux macrophages qui ont phagocyté des cellules B cibles Nalm6 (% doubles positives). Les cellules présentant une simple fluorescence PKH-67 correspondent aux cellules B cibles Nalm6 résiduelles, c’est-à-dire non phagocytées après 2h en présence des macrophages. Dans chaque cadran des diagrammes de cytométrie, les différentes populations cellulaires sont exprimées en pourcentage de la population cellulaire totale.
Fig. 15
[Fig. 15] représente la phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés d’hybrides Fc-PEG-peptide a621-635, et, ou non, en présence d’IgG humaines à concentration sérique physiologique. La Figure montre les résultats de deux expériences identiques indépendantes, (n=2) de phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés avec des hybrides Fc-PEG-peptide a621-635, en présence, ou non, d’IgG humaines à concentration sérique physiologique. La figure montre, pour chaque condition expérimentale, le pourcentage résiduel moyen de la population de cellules-cibles, 2h après phagocytose par les macrophages pré-armés des hybrides Fc-PEG-a621-635 citrullinés (cit) ou non citrullinés (arg), en présence (histogrammes gris) ou en absence (histogrammes noirs) des IgG humaines compétitrices. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 11 .
Fig. 16
[Fig. 16] représente la phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages humains incubés avec des hybrides Fc-peptide a621-635, en présence, ou non, d’IgG humaines à concentration physiologique ou de sérum humain.
La Figure montre les résultats d’une expérience analysée en cytométrie de flux où les populations cellulaires sont représentées par des nuages de points. T0 correspond au résultat obtenu immédiatement après mise en contact des cellules-cibles Nalm6 2H06 et des macrophages. T2 représente le résultat 2h après mise en contact des cellules-cibles et des macrophages en l’absence de molécules hybrides (phagocytose spontanée). Les autres diagrammes représentent les résultats obtenus 2h après mise en contact des cellules-cibles et des macrophages, incubés avec les hybrides FcWT-PEG-a621-635 ou FcGASDIE-PEG-a621-635, citrullinés (cit) ou non (arg), et ceci en présence ou non d’IgG humaines à la concentration sérique physiologique ou de sérum humain. Les cellules doubles-positives CFSE+ CD11 b+ correspondent aux macrophages qui ont phagocyté des cellules-cibles. Les cellules simples-positives CFSE+ correspondent aux cellules- cibles Nalm6 résiduelles, non phagocytées après 2h. Dans chaque cadran des diagrammes de cytométrie, les différentes populations cellulaires sont exprimées en pourcentage de la population cellulaire totale. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 11 .
Fig. 17
[Fig. 17] représente la phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages humains pré-armés avec les hybrides Fc-peptide a621-635, en présence de la lignée Nalm6 non transduite.
La Figure montre les résultats d’une expérience de phagocytose de cellules de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés avec les hybrides Fc-peptide a621-635, en présence de cellules de la même lignée Nalm6, sauvages, non transduites. Les résultats de l’analyse en cytométrie de flux apparaissent sous la forme de nuages de points représentant des populations cellulaires. T0 représente la situation au temps 0, juste après mise en contact des cellules-cibles Nalm6 2H06, des cellules Nalm6 NT non transduites et des macrophages. T2 représente le résultat après 2h en l’absence de molécules hybrides (phagocytose basale spontanée). Tous les autres diagrammes de cytométrie représentent les résultats obtenus après 2h en présence des macrophages armés par les hybrides FcWT-PEG- 0621-635 ou FcGASDIE-PEG-a621-635, citrullinés (cit) ou non citrullinés (arg). Les cellules doubles-positives CFSE+ CD19+ correspondent aux cellules-cibles Nalm6 2H06 résiduelles c’est- à-dire non phagocytées après 2h en présence des macrophages. Les cellules doubles-négatives CFSE- CD19- correspondent aux macrophages. Les cellules simples-positives CFSE- CD19+ correspondent aux cellules Nalm6 non-transduites (NT) résiduelles, c’est-à-dire non phagocytées après 2h en présence des macrophages. Les cellules simples positives CFSE+ CD19- correspondent aux macrophages qui ont phagocyté des cellules-cibles Nalm6 2H06. Dans chaque cadran des diagrammes de cytométrie, les différentes populations cellulaires sont exprimées en pourcentage de la population cellulaire totale. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 11 .
Fig. 18
[Fig. 18] représente la destruction spécifique in vivo de la lignée Nalm6 ACPA+ 2H06 par des cellules NK humaines en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635, chez des souris immunodéficientes SCID/BEIGE.
La Figure montre la destruction par des cellules NK humaines, dans la cavité péritonéale de souris immunodéficientes SCID/BEIGE, de cellules-cibles ACPA+ (lignée Nalm6 transduite 2H06) en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635 citrullinés. A- La Figure représente l’analyse des populations de cellules Nalm6 2FI06 et Nalm6 NT non-transduites, en cytométrie de flux. Les pics observés correspondent aux cellules-cibles (Nalm6 2H06 CTVh'9h) ou aux cellules contrôles (Nalm6 NT CTV|0W). B- La figure représente l'ensemble des résultats obtenus pour quatre groupes de 7 souris immunodéficientes SCID/BEIGE. Ces résultats sont exprimés sous forme de ratio des fluorescences CTVh'9h/CTVl0W, correspondant respectivement aux cellules Nalm6 2H06 (CTVh'9) et aux cellules Nalm6 NT (CTV|0W). Une diminution du ratio traduit la disparition des cellules-cibles Nalm6 2H06. La valeur « p » est comme suit : * p < 0,05 ; ** p < 0,01 , *** p < 0,001 . Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 10.
Fig. 19
[Fig. 19] représente la destruction spécifique in vivo de la lignée Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages humains armés avec les hybrides Fc-peptide a621-635, chez des souris immunodéficientes SCID/BEIGE.
La Figure montre la destruction par des macrophages humains, dans la cavité péritonéale de souris immunodéficientes SCID/BEIGE, de cellules-cibles ACPA+ (lignée Nalm6 transduite 2H06) en présence d’hybrides Fc-peptide 0621-635 citrullinés. La Figure représente les résultats obtenus pour 4 groupes de 5 souris immunodéficientes SCID/BEIGE. Le nombre de cellules-cibles Nalm6 2H06 CTVhiah résiduelles pour chaque groupe au terme de l'expérience est présenté, il indique l'efficacité de la phagocytose. La valeur « p » est comme suit : * p < 0,05. Les hybrides sont identiques à ceux décrits en Figure 10.
Exemples
Exemple 1 : Exemple de production d’une molécule hybride selon l’invention, et d’une cellule immunitaire greffée avec une telle molécule hybride
La molécule hybride ici décrite comprend la construction suivante : un fragment Fc lié de façon covalente à un PEGn, lui-même couplé à un azoture, ledit azoture étant lié de façon covalente à un alcyne, qui est lui-même lié à un espaceur couplé à un peptide citrulliné. Une telle molécule peut se lire : Fc-PEGn-N3-DBCO-PEGn-peptide citrulliné. Les deux PEGn peuvent être identiques ou bien différents (par exemple le premier PEGn est PEG3 et le deuxième PEGn est PEG2).
1. Synthèse d’un NFI2-PEGn-N3 (i.e. un espaceur couplé à un azoture à une extrémité et possédant une fonction amine libre à une autre extrémité).
2. Mise en présence du NH2-PEGn-N3, avec un fragment Fc possédant un Qtag, et une transglutaminase, de préférence pendant 16h à 37°C. Cette étape dite « de dérivation » est de préférence réalisée avec 20 fois plus de moles de NH2-PEGn-N3 que de moles de fragment Fc. La transglutaminase est utilisée, à hauteur de 15U/pmol par Qtag présent. Eventuellement un dessalage peut être réalisé pour retirer l’excédent d’espaceur non lié au fragment Fc à l’issue de l’étape. Un Fc-PEGn-N3 est ainsi obtenu. Si le fragment Fc comporte 2Qtag (un porté sur chaque monomère), alors le fragment Fc peut porter deux PEGn-N3. 3. Synthèse d’un Cys-PEGn-peptide citrulliné (i.e. un espaceur couplé à un peptide à une extrémité et possédant une cystéine libre à une autre extrémité). Le DBCO est ensuite couplé au Cys-PEGn-peptide citrulliné au niveau de la cystéine, et un DBCO-PEGn-peptide citrulliné est ainsi obtenu.
4. Réalisation du « click » : couplage entre le N3 et le DBCO. Le DBCO-PEGn-peptide citrulliné est mis en présence Fc-PEGn-ish avec, de préférence 10 fois plus de moles de DBCO- PEGn-peptide citrulliné que de moles de Fc-PEGn-ish. La réaction du click se déroule à température ambiante, et est presque complète au bout de 4h.
5. Obtention de la molécule hybride : Fc-PEGn-lsh-DBCO-PEGn-peptide citrulliné. Ce mode de réalisation est illustré en Figure 7.
6. Une cellule immunitaire greffée avec une telle molécule hybride est ensuite obtenue en mettant en contact une cellule immunitaire exprimant au moins un récepteur Fc en surface et une molécule hybride. Grâce à la liaison récepteur Fc/fragment Fc, la molécule hybride et la cellule immunitaire sont greffées.
De façon similaire un Fc-PEGn-DBCO et un Ish-PEGn-peptide citrulliné peuvent être obtenus, puis couplés pour obtenir Fc-PEGn-DBCO-lsh-PEGn-peptide citrulliné.
De façon similaire un Fc-PEGn-DBCO et un Ish-peptide citrulliné peuvent être obtenus, ou un Fc-PEGn-ish et un DBCO-peptide citrulliné, puis couplés pour obtenir respectivement Fc- PEGn-DBCO-lsh-peptide citrulliné ou Fc-PEGn-lsh-DBCO-peptide citrulliné.
Exemple 2 : Réactivité d’ACPAs purifiés par chromatographie d’affinité sur peptides citrullinés et élués à pH3 (fraction pH3), vis-à-vis des molécules hybrides selon l’invention
Les ACPA (ici ACPA, fraction pH3) utilisés sont des ACPA obtenus à partir de sérum de patients atteints de polyarthrite rhumatoïde ACPA-positifs. De tels ACPA ont été obtenus par une méthode classique de chromatographie d'affinité sur colonne connue de l’homme de l’art, utilisant comme antigènes liés un ou plusieurs des cinq peptides immunodominants de l’invention (cf SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 18 ou SEQ ID N O : 19). a. Exemples avec des molécules hybrides contenant le peptide B60-74cit
Des puits de plaque de microtitration ELISA ont été revêtus par adsorption passive à l’aide de 100 pL d’une solution contenant soit le peptide b60-74oK (SEQ ID NO : 19, également dénommé b60-74), soit une molécule hybride Fc-WT^60-74cit, Fc-LALA^60-74cit, Fc-SDH^60- 74cit, Fc-WT-PEG^60-74cit, Fc-SDH-PEG^60-74cit ou Fc-SDH(Cter)-PEG^60-74cit. Ces solutions ont été utilisées chacune à la concentration de 5 pg/mL en tampon PBS (Phosphate Buffered Saline) et incubées pendant une nuit à 4°C. Le peptide non citrulliné et les molécules hybrides construites avec le peptide non citrulliné ^60-74arg, correspondant à un peptide de SEQ ID NO : 19 dans lequel les résidus citrullyl ont été remplacés par des résidus arginyl) ont été utilisés à la même concentration comme contrôles négatifs. Les puits ont ensuite été saturés par la BSA (Bovine Sérum Albumin) à 2%, pendant 1h à 4°C. Après lavages, les ACPA purifiés ont été incubés à 1 , 0,5 ou 0,25 pg/mL, dilués en tampon PBS 2% BSA 2M NaCI pendant 1 h à 4°C. Après lavages, la réactivité des ACPA a été détectée à l’aide d’un anticorps secondaire anti-Fab d’IgG humaines dilué au 1/2500 en tampon PBS 2% BSA. Les résultats sont exprimés en ADO (Delta- Densité Optique), correspondant à la DO obtenue avec le peptide p60-74cit ou avec les molécules hybrides construites avec le peptide b60-74a1, soustraite respectivement de la DO obtenue avec le peptide b60-743G9 ou avec les molécules hybrides correspondantes construites avec le peptide b60-743G9·
Les résultats sont présentés en Figure 4. Ils montrent une réactivité dose-dépendante des ACPA purifiés sur peptide b60-74a1, vis-à-vis des molécules hybrides Fc-WT^60-74cit, Fc- LALA^60-74cit, Fc-SDH^60-74cit, Fc-WT-PEG^60-74cit, Fc-SDH-PEG^60-74cit ou Fc- SDH(Cter)-PEG^60-74cit. Ils montrent qu’inclus dans les différents hybrides, les peptides citrullinés restent parfaitement réactifs avec les ACPA. b. Exemples avec des molécules hybrides contenant le peptide a621-635cit
Des puits de plaque ELISA ont été revêtus à l’aide de 100 pL d’une solution contenant le peptide a621-635cit (SEQ ID NO : 18, également dénommé a621-635) ou une molécule hybride Fc-WT-PEG-a621-635cit ou encore Fc-SDH-PEG-a621-635cit, à la concentration de 5 pg/mL en tampon PBS (Phosphate Buffered Saline), incubée pendant une nuit à 4°C. Le peptide non citrulliné a621-635arg et les molécules hybrides correspondantes construites avec le peptide non citrulliné (a621-635arg, correspondant à un peptide de SEQ ID NO : 18 dans lequel les résidus citrullyl ont été remplacés par des résidus arginyl) ont été utilisés à la même concentration comme contrôles négatifs. Une saturation des puits a ensuite été réalisée par la BSA (Bovine Sérum Albumin) à 2% en tampon PBS pendant 1 h à 4°C. Après lavages, les ACPA purifiés ont été incubés à 4, 2 et 1 pg/mL dilués en tampon PBS 2% BSA 2M NaCI pendant 1 h à 4°C. Après lavages, la réactivité des ACPA a été détectée à l’aide d’un anticorps secondaire anti-Fab d’IgG humaines dilué au 1/2500 en tampon PBS 2% BSA. Les résultats sont exprimés en ADO (Delta- Densité Optique), correspondant à la DO obtenue avec le peptide a621 -635cit ou avec les molécules hybrides construites avec le peptide a621-635cit, soustraite respectivement de la DO obtenue avec le peptide a621-635arg ou avec les molécules hybrides construites avec le peptide a621-635arg.
Les résultats sont présentés en Figure 5. Ils montrent une forte réactivité dose- dépendante des ACPA purifiés sur peptide a621-635cit vis-à-vis des molécules hybrides Fc-WT- PEG-a621-635cit et Fc-SDH-PEG-a621-635cit. La réactivité des ACPA vis-à-vis des molécules hybrides est comparativement plus forte alors que la densité épitopique qu’elles présentent est inférieure à celle du peptide a621-635cit. Exemple 3 : Réactivité des ACPA monoclonaux recombinants 2H06 sous forme sauvage (wild type - WT) ou mutée sur leur fragment Fc (mutation SDH), vis-à-vis des molécules hybrides selon l’invention
L’ACPA ici utilisé est un ACPA humain monoclonal recombinant ((clone 022014CCP14CFCT2H06, dit 2H06). Un tel ACPA peut être obtenu comme décrit dans Titcombe P. J., Wigerblad G., Sippl N., Zhang N., Shmagel A. K., Sahlstrôm P., Zhang Y., Barsness L. O., Ghodke Puranik Y., Baharpoor A., et al. Pathogenic Citrulline-Multispecific B Cell Receptor Clades in Rheumatoid Arthritis. Arthritis & Rheumatology 2018, 70 (12), 1933-1945. https://doi.org/10.1002/art.40590. Le VH de l’ACPA 2H06 a le numéro d’accession MH629710.1 sous Genbank, et le VL a le numéro d’accession MH629700.1.
Des puits de plaque ELISA ont été revêtus à l’aide de 100 pL d’une solution contenant soit la molécule hybride Fc-WT-PEG- a 621-635cit, soit Fc-SDH-PEG- a 621-635cit, utilisée à la concentration de 5 pg/mL en tampon PBS (Phosphate Buffered Saline) incubées pendant une nuit à 4°C. Les molécules hybrides construites avec un peptide non citrulliné ( 621-635arg) ont été utilisées à la même concentration comme contrôles négatifs. Une saturation des puits a ensuite été réalisée en tampon PBS 2% BSA (Bovine Sérum Albumin), pendant 1h à 4°C. Après lavages, les ACPA monoclonaux recombinants 2H06, WT et SDH, ont été incubés à 40, 20 et 10 pg/mL, dilués en tampon PBS 2% BSA 2M NaCI pendant 1h à 4°C. Après lavages, leurs réactivités ont été détectées à l’aide d’un anticorps secondaire anti-Fab d’IgG humaines dilué au 1/2500 en tampon PBS 2% BSA. Les résultats sont exprimés en D DO (Delta-Densité Optique), correspondant à la DO obtenue avec les molécules hybrides construites avec le peptide 621-635cit soustraite de la DO obtenue avec les molécules hybrides construites avec le peptide contrôle négatif a621-635arg.
Les molécules hybrides Fc-WT-PEG-a621-635cit et Fc-SDH-PEG-a621-635cit sont identiques à celles utilisées dans l’Exemple 2.
Les résultats sont présentés en Figure 6. Les résultats montrent une forte réactivité dose- dépendante, des ACPA monoclonaux WT et SDH vis-à-vis des molécules hybrides Fc-WT-PEG- a621-635cit et Fc-SDH-PEG-a621-635cit.
Exemple 4 : Fixation des molécules hybrides sur macrophages à 2h et 20h, à température physiologique
Des macrophages humains, différenciés in vitro en présence de M-CSF (100ng/mL) à partir de monocytes CD14+ isolés du sang périphérique d'un sujet sain ont été incubés à 500.000 cellules/puits, en présence de molécules hybrides à 5 pg/mL, FcWT-N3-DBCO-p60-74Cit (un fragment Fc de type sauvage qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19, dénommé WT dans les Tableaux 2 et 3), FcSDHFSTIE-N3-DBCO- 60-74Cit (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19, dénommé SDH dans les Tableaux 2 et 3) ou FcLALAPG-N3- DBCO-p60-74Cit (un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19, dénommé LALAPG dans les Tableaux 2 et 3), pendant 2h ou 20h à 37°C. La fixation des molécules hybrides à la surface des macrophages est mise en évidence et quantifiée par cytofluorimétrie (FACS Canto II) après incubation des macrophages avec un anticorps anti-Fc couplé au FITC, utilisé 1/1000. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8. Les résultats sont présentés dans les Tableaux 2 et 3 ci-après. « NM » et « ANTI FC » représentent respectivement le puits contenant les macrophages incubés sans anticorps ou avec l’anticorps anti-Fc seul.
Figure imgf000031_0001
[Tableau 2]. Résultats à 2h
Figure imgf000031_0002
[Tableau 3]. Résultats à 20h
Les résultats présentés dans les Tableaux 2 et 3, montrent que les molécules hybrides FcWT-N3-DBCO-p60-74Cit et FcSDHFSTIE-N3-DBCO-p60-74Cit à la température physiologique de 37°C, se fixent dès la 2ème heure à la membrane des macrophages et y sont encore présentes 20h plus tard. Ces résultats montrent également que la fixation de l’hybride FcSDHFSTIE-N3- DBCO-p60-74Cit est supérieure à celle de la forme sauvage FcWT-N3-DBCO-p60-74Cit.
Exemple 5 : Phagocytose induite par l’hybride Fc-SDH peptide p60citrulliné lorsqu’on arme les lymphocytes B via leurs FcyRIIb (CD32b) avec les ACPA purifiés
Des lymphocytes B humains fraîchement purifiés à partir de sang périphérique de donneurs sains par tri magnétique CD19+, ont été marqués au PKH-67 vert (Paul Karl Horan / marqueur lipidique fluorescent) puis incubés avec des ACPA purifiés (fraction pH3, obtenus comme dans l’Exemple 2) sur peptide |360-74cit (SEQ ID NO : 19) à une concentration de 5 pg/mL durant 30min à 37°C. Par la suite, les cellules ont été lavées puis mises en présence de l’hybride FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-360-74Cit (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn lui- même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19). Cette construction est dénommée CIT dans le Tableau 4 ci-après). Les cellules ont également été mises en présence de l’hybride FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG^60-74Arg (qui correspond à la construction FcSDHFSTIE-N3- DBCO-PEG3^60-74Cit dans laquelle le peptide b60-74 n’est pas citrulliné). Cette construction est dénommée NCIT dans le Tableau 4 ci-après). Les cellules ont été mises en présence des hybrides à 10 pg/mL durant 30 min à 37°C. Après lavage, les cellules ont été mises au contact des macrophages (marqués PKH-26 rouge), à raison de 1 lymphocyte B pour 1 macrophage, durant 2h à 37°C. Les cellules ont ensuite été décollées puis analysées par cytométrie en flux. Les cellules présentant la double fluorescence (PKH-67 vert/PKH-26 rouge) correspondent aux macrophages qui ont phagocyté des lymphocytes. Les différentes populations cellulaires sont exprimées en pourcentage de la population cellulaire totale : pourcentage de phagocytose et pourcentage de lymphocytes B. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu'un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Les résultats sont présentés dans le Tableau 4 selon quatre lignes qui correspondent à quatre expériences indépendantes.
Figure imgf000032_0002
[Tableau 4]. Pourcentage de phagocytose et pourcentage de lymphocytes B
Les résultats obtenus confirment que l'activité de phagocytose est majorée en présence des hybrides citrullinés (augmentation de la phagocytose associée à une diminution de la population de lymphocytes B). En effet, dans les 4 expériences indépendantes, une augmentation significative du pourcentage de phagocytose, toujours associée à une diminution significative de la population de lymphocytes B, a été observée lorsque les lymphocytes B étaient recouverts de versus FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-
Figure imgf000032_0001
Exemple 6 : Phagocytose de lymphocytes B chargés avec l’ACPA humain monoclonal recombinant 2H06 muté SDH, par des macrophages armés avec l’hybride Fc-WT-PEG-a621- 635cit
Des lymphocytes B humains fraîchement purifiés à partir de sang périphérique de donneurs sains par tri magnétique CD19+, ont été marqués au PKH-67 vert (Paul Karl Horan / marqueur lipidique fluorescent) puis incubés durant 1 h à 37°C avec l’ACPA monoclonal humain recombinant 2H06 dont le Fc est muté SDH, à une concentration de 10 pg/mL. De tels anticorps peuvent être obtenus comme dans l’Exemple 3. En parallèle, des macrophages marqués au PKH- 26 rouge ont été mis en présence des hybrides Fc-WT-PEG-a621-635cit (un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié au peptide représenté par SEQ ID NO : 18) et Fc-WT-PEG-a621-635arg (il s’agit de l’hybride Fc-WT-PEG- a621-635cit, à la différence près que le peptide n’est pas citrulliné), à 5 pg/mL durant 1 h à 37°C. Après lavage, les cellules ont été mises en contact, à raison de 1 lymphocyte B pour 1 macrophage, durant 2h à 37°C. Les cellules ont ensuite été décollées puis analysées par cytométrie en flux. Le pourcentage de phagocytose correspond au pourcentage de cellules marquées par les 2 fluorochromes (PKH-67 vert/PKH-26 rouge). Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Les résultats sont présentés dans le Tableau 5 selon six lignes qui correspondent à cinq expériences indépendantes. NCIT représente le résultat avec le peptide Fc-WT-PEG-a621-635arg, CIT représente le résultat avec le peptide Fc-WT-PEG-a621-635cit, et ( D OIT-NCIT) représente la différence entre la DO obtenue en présence de Fc-WT-PEG-a621-635cit et la DO obtenue en présence de Fc-WT-PEG-a621-635arg, divisée par la DO obtenue en présence de Fc-WT-PEG- a621-635arg.
Figure imgf000033_0001
Figure imgf000034_0001
[Tableau 5]. Pourcentage de phagocytose et pourcentage de lymphocytes B
Les résultats montrent que l’activité de phagocytose est majorée en présence des hybrides citrullinés : augmentation de la phagocytose (de 21 à 63%), associée à une diminution de la population de lymphocytes B (de 3 à 17%). Dans chacune des six expériences, le % de doubles- positifs est plus élevé, donc la phagocytose est majorée et la population B diminue lorsque les macrophages sont armés avec les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635cit (CIT) versus Fc-WT-PEG- a621-635arg (NCIT). Les résultats sont également présentés en Figure 8A et 8B. Exemple 7 : Stabilité de la fixation des Fc-SDH A488 et des hybrides Fc-SDH peptide b60 citrulliné, sur des cellules NK après 30min, 24h et 48h, à température physiologique
Les cellules NK ont été incubées 30min, 24h ou 48h à 37°C en présence de FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO, la molécule étant marquée avec le fluorochrome A488) ou de FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-360-74cit-lysineA488 (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO qui est couplé à espaceur PEGn lié à un peptide de SEQ ID NO : 19, la molécule étant marquée avec le fluorochrome A488 qui est liée à la molécule via une lysine). La fixation de ces 2 sondes fluorescentes aux cellules NK a été analysée par cytofluorimétrie. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Les résultats sont présentés dans les Tableaux 6 (30 minutes), 7 (24 heures) et 8 (48 heures) suivants. NM représente les cellules NK non marquées, sans anticorps.
Figure imgf000034_0002
[Tableau 6]. Résultats à 30 minutes
Figure imgf000034_0003
[Tableau 7]. Résultats à 24 heures
Figure imgf000035_0001
[Tableau 8]. Résultats à 48 heures
Les résultats présentés dans les Tableaux 6 à 8, montrent que le FcSDHFSTIE-N3- DBCO-A488 et le FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3^60-74cit-lysine A488 restent fixés à la membrane des cellules NK au moins jusqu’à 48h à température physiologique et que la fixation du peptide sur le fragment Fc n’empêche pas son interaction avec les Fc gamma récepteurs des cellules NK.
Exemple 8 : Fixation sur cellules NK du fragment Fc-SDH marqué par le fluorochrome A647 comparée à la fixation des mêmes hybrides en présence d’IgG humaines à des concentrations croissantes, jusqu’à la concentration sérique physiologique
Les cellules NK ont été incubées 30min à 37°C soit en présence du fragment FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO, la molécule étant marquée avec le fluorochrome A647) à 10 pg/mL, soit en présence de ce même fragment FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 à 10 pg/mL, co-incubé avec des IgG humaines à concentrations croissantes (1 , 10, 100, 1.000, 10.000 pg/mL). Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu'un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8. La fixation du fragment FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 (dit SDH) aux cellules NK a été analysée par cytofluorométrie.
Les résultats sont présentés dans le Tableau 9.
Figure imgf000035_0002
[Tableau 9]. Résultats
Les résultats montrent, une diminution dose-dépendante de la fixation du FcSDHFSTIE- N3-DBCO-A647 aux cellules NK à partir de 100 pg/mL d’IgG mais celle-ci reste effective et élevée, même en présence d’une concentration en IgG 1.000 fois supérieure à celle du fragment Fc (10.000 pg/mL) qui correspond à la concentration sérique physiologique des IgG chez l’Homme. Exemple 9 : Lyse par des cellules NK humaines, de cellules d’une lignée B humaine maligne plasmoblastique transduite exprimant à sa membrane un ACPA monoclonal recombinant, en présence des hybrides FcWT-N3-DBCO-PEG3-a621-635Cit et FcSDH-N3-DBCO-PEG3- cx621-635Cit
WTaCIT représente l’hybride comprenant un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié au peptide représenté par SEQ ID NO : 18 ; WTaArg correspond à l’hybride WTaCIT à la différence près que le peptide de SEQ ID NO : 18 n’est pas citrulliné ; SDHaCIT représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui- même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié au peptide représenté par SEQ ID NO : 18 ; et SDFIaArg correspond à l’hybride SDFIaCIT à la différence près que le peptide de SEQ ID NO : 18 n’est pas citrulliné. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
L’expérience a été réalisée en plaques de 96 puits à fond rond. Des cellules de la lignée Nalm6 (transduite pour l’expression membranaire de l'ACPA monoclonal humain recombinant 2H06) ont été utilisées comme cellules-cibles. 100.000 cellules/puits ont été incubées en présence, d'une part, des molécules hybrides WTaCit ou SDHaCit utilisées à 15pg/mL et, d’autre part, des cellules NK fraîchement purifiées (marquées avec le cell tracker violet) utilisées comme cellules effectrices, également à 100.000 cellules/puits, durant 17h à 37°C. Les molécules hybrides WTaArg et SDFIaArg, utilisées comme contrôles de spécificité, ont été incubées dans les mêmes conditions. Comme contrôles négatifs, les cellules Nalm6 ont été incubées en l’absence d’hybrides, seules ou en présence de cellules NK. La lyse cellulaire a été mesurée en cytométrie de flux par un marquage avec la sonde fluorescente 7-AAD. Les résultats montrent le pourcentage de cellules positives pour ce marqueur (% de cellules mortes). (%) (ACIT-Arg) représente la différence entre les pourcentages de cellules mortes 7-AAD-positives en présence des hybrides porteurs de peptides citrullinés WT et SDH versus leurs homologues non-citrullinés, divisée par le pourcentage de cellules 7-AAD-positives en présence de l’hybride non citrulliné correspondant.
Les résultats sont présentés en Figure 9 et dans le Tableau 10.
Figure imgf000036_0001
Figure imgf000037_0002
[Tableau 10]. Résultats
Les résultats montrent que les hybrides citrullinés (WT et SDH) sont capables de majorer spécifiquement la lyse par ADCC des cellules-cibles Nalm6 ACPA-positives provoquée par les cellules NK. Cette augmentation de mortalité est de 62 % pour les hybrides WT et de 83 %, pour les hybrides SDH.
Exemple 10 : La fixation des hybrides Fc (WT, SDH, LALAPG)-peptide b60 Cit sur les cellules NK n’induit pas leur dégranulation Les hybrides ici utilisés sont les suivants : FcWT-p60-74 représente un fragment Fc de type sauvage qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60-74oK6o,72,74). FcSDH^60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60-74oK6o,72,74). FcLALAPG- b60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (b60- 74cit6o,72,74). Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur
PEGn est utilisé, de préférence 1 , 2, 3, 4 ou 8.
Les cellules NK ont été incubées 30 min à 37°C en présence des molécules hybrides Fc- WT^60-74cit, Fc-SDH^60-74cit, Fc-LALAPG^60-74cit à 10 pg/mL. Après lavage, les cellules ont été incubées 30 min à 4°C en présence d'un anticorps fluorescent anti-CD107a (marqueur de dégranulation). Après lavage, l’analyse de l’expression membranaire de CD107a a été réalisée en cytométrie de flux.
Les résultats sont présentés dans le Tableau 11.
Figure imgf000037_0001
[Tableau 11]. Résultats Les résultats présentés dans le Tableau 11 montrent que l'expression membranaire du marqueur de dégranulation CD107a est équivalente (entre 1 ,8 et 3%), que la cellule NK soit revêtues ou non des molécules hybrides selon l’invention. La fixation des molécules hybrides n'induit donc pas la dégranulation des cellules NK.
Exemple 11 : Expression membranaire de l’ACPA monoclonal 2H06 par la lignée lymphoblastique B Nalm6 après transduction
A- La lignée cellulaire humaine B lymphoblastique « Nalm6 » a été transduite pour induire l’expression à sa membrane de l’ACPA monoclonal recombinant 2H06. L’efficacité de transduction a été analysée en cytométrie de flux grâce à un double marquage utilisant un anticorps anti-Fab d’IgG et un tétramère du peptide a621-635cit biotinylé fixé Avidine fluorescente. B- Un tri réalisé à partir de 70 millions de cellules Nalm6 a permis de récupérer les cellules Nalm6 Fab+ dont un pool de 300.000 cellules a été remis en culture. Après prolifération, l’enrichissement de la lignée transduite Nalm62H06 a été confirmé par cytométrie de flux. C- Les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 cit et arg ont été marqués à l’Alexa Fluor 647 à l’aide du kit « Lightning Link ». Les lignées Nalm6 non transduite (NT) et Nalm6 2H06, ont été incubées avec les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635. Après lavage, la fixation membranaire des hybrides Fc-WT- PEG-a621-635 a été analysée par cytométrie de flux.
Les résultats sont présentés dans la Figure 10 et dans le Tableau 12.
Le Tableau 12 représente les intensités moyennes de fluorescence (MFI) et le ratio de MFI entre la condition en présence d’hybride fluorescent et la condition contrôle où les cellules ne sont pas marquées nm représente les cellules Nalm6 non marquées, sans hybrides fluorescents.
Figure imgf000038_0001
[Tableau 12]. Résultats
Les résultats montrent qu’après tri et prolifération cellulaire, 89,1% des cellules Nalm6 expriment un Fab d’IgG, celui de l'ACPA 2H06, permettant de valider le succès de la transduction et l’établissement de la lignée Nalm62H06 (B). Les résultats montrent une interaction forte entre la lignée Nalm6 2H06 et l’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 cit fluorescent, alors qu’aucune interaction n’existe avec l’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 arg, non citrulliné (C). Un double marquage avec l’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 cit fluorescent et l’anticorps anti-Fab d’IgG fluorescent, montre une parfaite corrélation des 2 marquages sur la lignée Nalm6 2H06, alors qu’aucun des deux ne marque la lignée Nalm6 non transduite (A). Ces résultats montrent que la fixation de l’hybride Fc- WT-PEG-a621-635 cit est strictement liée à l’expression de l’ACPA 2H06 membranaire. Exemple 12 : Phagocytose de cellules de la lignée B transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages armés d’hybrides Fc-peptide a621-635
Les macrophages ont été marqués avec le fluorochrome membranaire PKH-67 vert puis ont été incubés avec les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635, Fc-SDH-PEG-a621-635 ou Fc-GASDIE- PEG-a621-635, sous forme citrullinée (Cit) ou non citrullinée (Arg), à une concentration de 5pg/ml durant 60 min à 37°C. Les cellules de la lignée humaine lymphoblastique B Nalm6 transduite pour l’expression de l’ACPA monoclonal 2H06 à sa membrane, ont été marquées au PKH-26 rouge (marqueur lipidique fluorescent) puis mises en présence des macrophages à raison de 2 cellules- cibles Nalm6 pour 1 macrophage. Après 2h à 37°C, les macrophages ont été décollés puis les populations cellulaires analysées par cytométrie en flux. Les résultats de la Figure 11A montrent qu’à T2, en l’absence d’hybrides, il existe une augmentation des cellules doubles-positives qui témoigne d’une phagocytose basale spontanée des cellules Nalm6. A 2 heures, en présence d’hybrides, quel que soit l’hybride utilisé (WT, SDH ou GASDIE), une forte augmentation des cellules doubles-positives et un effondrement du nombre des cellules-cibles, sont observés lorsque les macrophages sont armés d’hybrides citrullinés, mais absents avec les versions non citrullinées des hybrides. On passe ici de 52% de cellules doubles-positives à 14,6% en présence de l’hybride Fc-WT-PEG-a621 -635, 24,5% pour Fc-SDH-PEG-a621-635 et jusqu’à 8% pour Fc-GASDIE-PEG- a621-635 qui est le plus efficace.
La synthèse de 3 expériences indépendantes (voir Figure 11 B), confirme que l’effet est reproductible et significatif dans toutes les conditions, avec une augmentation moyenne de 70% des cellules doubles-positives et une diminution d’au moins 50% des cellules-cibles Nalm6.
Exemple 13 : Phagocytose de cellules de la lignée B Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635 à diverses concentrations
Les macrophages ont été marqués avec le fluorochrome membranaire PKH-67 vert puis armés avec les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635, Fc-SDH-PEG-a621-635 Fc-GASDIE-PEG-a621- 635 ou Fc-GASDALIE-PEG-a621-635, sous forme citrullinée (Cit) ou non citrullinée (Arg), à différentes concentrations (5pg/ml ; 1 pg/ml ; 100ng/ml ; 50ng/ml ; 10ng/ml ; 5ng/ml) durant 60 min à 37°C. Les cellules de la lignée B Nalm6 transduite pour l’expression de l’ACPA monoclonal 2H06, ont été marquées au PKH-26 rouge (marqueur lipidique fluorescent) puis mises en présence des macrophages armés, à raison d’1 cellule-cible Nalm6 pour 1 macrophage. Après 2h à 37°C, les macrophages ont été décollés puis les populations cellulaires analysées par cytométrie en flux. Les résultats présentés dans la Figure 12 montrent une forte augmentation du pourcentage de cellules doubles-positives (A) associée à une forte diminution du pourcentage de cellules-cibles (B), lorsque les macrophages sont armés avec les hybrides Fc-PEG-a621-635 citrullinés, qu’ils soient WT, SDH, GASDIE ou GASDALIE. L’une et l’autre sont absentes avec les hybrides non citrullinés (Fc-PEG-a621-635 Arg). Cette phagocytose spécifique est corrélée avec la concentration des hybrides Fc-PEG-a621-635 dans la solution utilisée pour les armer. Le modèle est particulièrement robuste car la phagocytose est encore observée pour tous les hybrides citrullinés jusqu’à 50ng/mL. Du fait de leurs affinités accrues vis-à-vis des FcyR, les hybrides Fc-GASDIE-PEG-a621-635 Cit et Fc-GASDALIE-PEG-a621-635Cit, sont plus efficaces que les Fc-WT-PEG a621-635 Cit ou Fc- SDFI-PEG-a621-635Cit, et restent actifs au-delà de 50 ng/ml.
Exemple 14 : Confirmation du processus de phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages armés d’hybrides FcWT-PEG-peptide a621-635
Pour confirmer que la destruction des cellules B Nalm6 2H06 résulte d’un processus de phagocytose, des cellules B Nalm6 2FI06 ont été marquées avec un colorant sensible au pH , le pFIRodoSE, qui présente une faible intensité de fluorescence à pH neutre mais émet une fluorescence intense en milieu acide. Or le pH dans les vésicules intra-cytoplasmiques (lysosomes) où se retrouvent les éléments phagocytés est acide. Les cellules non phagocytées ne sont donc pas détectables, alors que les cellules phagocytées, internalisées dans le compartiment lysosomal, deviennent fluorescentes.
Ainsi, des cellules Nalm6 2H06 ont été marquées avec le pHRodoSE (Thermofisher) à 20ng/ml. Les cellules Nalm6 marquées ont été incubées avec les macrophages armés ou non d'hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 Cit ou Arg, à 5pg/ml pendant 1h à 37°C, traités ou non par la cytochalasine D pendant 30 min à 2pg/ml puis 1pg/ml au cours de la phagocytose. Les cellules ont été incubées 2h à 37°C, puis les macrophages ont été décollés et les populations cellulaires analysées par cytométrie en flux ou colorées au May Grunwald Giemsa (MGG) pour analyse morphologique en microscopie optique. Les résultats présentés dans la Figure 13 montrent l’apparition d’une population pFIRodoSE-positive (2ème pic) en présence de macrophages armés de l’hybride Fc-WT-PEG a621-635 Cit, population qui est absente lorsque les macrophages sont armés de la version non citrullinée des hybrides. En présence de cytochalasine D (inhibiteur de la phagocytose), cette population n’apparaît pas, confirmant qu'elle correspond bien à une population de macrophages ayant phagocytée spécifiquement des cellules B Nalm62H06. Ces résultats sont confirmés par une analyse en microscopie optique dans laquelle on observe de nombreuses cellules B Nalm6 2H06 en situation intra-cytoplasmique dans des macrophages lorsqu’ils sont armés d’hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 citrulliné (panneau haut), alors que cette situation est totalement absente lorsque les macrophages étaient armés de la forme non citrullinée de l’hybride.
Exemple 15 : Phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés d’hybrides Fc-peptide a621-635 ou incubés en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635
Les cellules de la lignée B Nalm6 2H06 ont été marquées par le fluorochrome membranaire PKH-67 vert et les macrophages par le PKH-26 rouge. Les hybrides Fc-WT-PEG- a621-635 et Fc-GASDIE-PEG-a621-635, sous forme citrullinée (Cit) ou non citrullinée (Arg), ont été soit incubés durant 1h à 37°C avec les macrophages à la concentration de 5pg/ml (armement suivi de lavage), avant leur mise en contact des cellules-cibles selon le ratio 1 cellule-cible Nalm6 pour 1 macrophage, pendant 2h à 37°C, soit incubés à la même concentration dans le milieu contenant les cellules-cibles Nalm6 et les macrophages selon le même ratio 1/1 , pendant 2h à 37°C. Les macrophages ont été ensuite décollés et les populations cellulaires analysées par cytométrie de flux.
Les résultats présentés dans la Figure 14 montrent une forte augmentation des cellules doubles-positives (phagocytose), associée à un effondrement de la population de cellules-cibles Nalm6 2H06, lorsque les macrophages ont été soit pré-armés, soit incubés avec les hybrides Fc- WT-PEG-a621-635 ou Fc-GASDIE-PEG-a621-635 sous forme citrullinée. Ce résultat est spécifique puisque non retrouvé avec les formes non-citrullinées des hybrides.
Exemple 16 : Phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages pré-armés d’hybrides Fc-PEG-peptide a621-635, en présence ou non d’IgG humaines à concentration sérique physiologique
Les cellules de la lignée Nalm6 2H06 ont été marquées avec le colorant fluorescent CFSE ( CarboxyFluorescein Succinimidyl Ester) puis incubées avec des macrophages pré-armés par les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 et Fc-GASDIE-PEG-a621-635 sous forme citrullinée (Cit) ou non citrullinée (Arg), par incubation 1h avec les hybrides à la concentration de 1 mg/mL puis lavage. L’expérience de phagocytose s’est déroulée pendant pendant 2h à 37°C, en présence ou non des IgG humaines compétitrices à la concentration physiologique de 10mg/mL. Les macrophages ont été décollés puis marqués avec un anticorps anti-CD11 b BV421 et les populations cellulaires ont été analysées en cytométrie de flux
Les résultats présentés dans la Figure 15 montrent qu’en absence d’IgG compétitrices, les formes citrullinées des 2 hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 et Fc-GASDIE-PEG-a621-635 armées sur les macrophages, induisent une phagocytose quasi-totale et spécifique, car absente avec les formes non-citrullinées, de la population de cellules Nalm6 2H06. La présence des IgG induit une inhibition totale de la phagocytose spontanée à T2, une inhibition partielle (environ 50%) de la phagocytose induite par l’hybride sauvage Fc-WT-PEG-a621-635cit, alors qu’aucune inhibition n’est constatée avec l’hybride muté Fc-GASDIE-PEG-a621-635, dont le Fc est plus affin pour les Fc gamma récepteurs macrophagiques que celui des IgG sériques.
Exemple 17 : Phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages humains incubés avec des hybrides Fc-peptide a621-635, en présence ou non d’IgG humaines à concentration physiologique ou de sérum humain
Les cellules de la lignée Nalm6 2H06 ont été marquées avec le colorant fluorescent CFSE (CarboxyFluorescein Succinimidyl Ester) puis incubées avec des macrophages en présence d’hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 ou Fc-GASDIE-PEG-a621-635 sous forme citrullinée (cit) ou non citrullinée (arg), à la concentration de 10pg/mL. L’expérience s’est déroulée pendant 2h à 37°C en présence ou non d’IgG humaines compétitrices à la concentration de 10mg/mL ou d’un mélange de sérums humains, présentant la même concentration en IgG. Le rapport de concentration entre hybrides et IgG est donc ici de 1/1000. Les cellules ont été prélevées et marquées avec un anticorps anti-CD11b BV421 afin d’identifier les macrophages puis analysées en cytométrie de flux.
Les résultats présentés dans la Figure 16 montrent que les 2 hybrides Fc-WT-PEG-a621- 635 et Fc-GASDIE-PEG-a621-635, citrullinés, utilisés à la concentration de 10pg/ml, induisent spécifiquement et très efficacement la phagocytose des cellules Nalm6 2H06. Par compétition avec les hybrides, les IgG inhibent la phagocytose des cellules Nalm6 2H06 par les macrophages mais l’effet inhibiteur est beaucoup plus fort pour l’hybride Fc-WT (sauvage) que pour l’hybride GASDIE (muté, plus affin pour les Fc gamma Récepteurs macrophagiques. Des résultats équivalents sont obtenus en présence de sérum humain montrant que celui-ci ne contient donc pas d’autres facteurs inhibiteurs de la phagocytose que les IgG.
Exemple 18 : Phagocytose de la lignée transduite Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages humains armés avec les hybrides Fc-peptide a621-635, en présence de la lignée Nalm6 non transduite
Les cellules de la lignée Nalm6 2H06 ont été marquées avec le colorant fluorescent CFSE (CarboxyFluorescein Succinimidyl Ester) puis mélangées à des cellules Nalm6 NT non transduites selon le ratio ¼ (1 cellule transduite pour 4 cellules non-transduites). Les macrophages ont été pré-armés avec les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 ou Fc-GASDIE-PEG-a621-635, sous forme citrullinée (Cit) ou non citrullinée (Arg), par une incubation d'1h à la concentration d’1g/mL à 37°C. Les cellules Nalm6 ont ensuite été mises en présence des macrophages pendant 2h à 37°C, puis les macrophages ont été décollés, la population cellulaire totale prélevée et marquée avec un anticorps anti-CD19 APC, afin de discriminer cellules Nalm6 2H06 et cellules Nalm6 NT non- transduites. La population cellulaire totale a été ensuite analysée en cytométrie de flux.
Pour confirmer la spécificité de la phagocytose à l’égard des cellules ACPA+ en présence des hybrides citrullinés, nous avons co-incubé les cellules-cibles Nalm6 2H06 (ACPA+) et les cellules Nalm6 NT non transduites (ACPA-). Les résultats présentés dans la Figure 17 montrent que seules les cellules Nalm6 exprimant l’ACPA membranaire 2H06 (CFSE+CD19+) disparaissent et se retrouvent phagocytées par les macrophages lorsque ceux-ci ont été préalablement armés avec les hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 ou Fc-GASDIE-PEG-a621-635 sous forme citrullinée (Cit). Au contraire, la proportion de cellules Nalm6 NT, sauvages non transduites ACPA- (CD19+CFSE-) est inchangée, quelles que soient les conditions, confirmant que l’interaction induite est bien spécifique et due à la liaison du peptide citrulliné et des ACPA. Les mêmes résultats ont été obtenus pour un ratio 1/9 (1 cellule Nalm62H06 pour 9 cellules Nalm6 NT non transduites).
Exemple 19 : Destruction spécifique in vivo de la lignée Nalm6 ACPA+ 2H06 par des cellules NK humaines en présence d’hybrides Fc-peptide a621-635, chez des souris immunodéficientes SCID/BEIGE
L’expression membranaire des ACPA 2H06 sur les cellules-cibles Nalm6 2H06 a été contrôlée par marquage avec un anticorps anti-Fab et l’activité lytique (ADCC) des cellules NK humaines effectrices vérifiée in vitro. Les cellules-cibles Nalm6 2H06 ont été marquées avec le marqueur fluorescent CTV (CelITrace Violet) à forte concentration (5mM) alors que des cellules Nalm6 NT non transduites, ont été marquées avec le même marqueur mais à une concentration dix fois inférieure (0,5mM). En cytométrie de flux, les cellules fortement marquées (Nalm6 2H06 CTVh'9h) peuvent ainsi être distinguées des cellules faiblement marquées (Nalm6 NT CTV|0W). Les souris immunodéficientes SCID/BEIGE ont reçu 50m9 d’anticorps anti-FcR en intra-péritonéal (IP) afin de bloquer les FcR des macrophages péritonéaux murins puis, 30 minutes plus tard, les cellules-cibles Nalm6 2H06 et des cellules Nalm6 NT non transduites ont été injectées en IP, en présence ou non, de cellules NK humaines fraîchement préparées et des hybrides Fc-WT-PEG- a621-635 citrullinés (cit) ou non (arg).
Quatre groupes de 7 souris SCID/BEIGE ont reçu en IP les combinaisons de cellules et d’hybrides suivantes :
1/ 2.105 cellules-cibles Nalm6-2H06 + 2.105 cellules Nalm6 NT 212.105 cellules-cibles Nalm6-2H06 + 2.105 cellules Nalm6 NT + 2.105 cellules NK 3/ 2.105 cellules-cibles Nalm6-2H06 + 2.105 cellules Nalm6 NT + 2.105 cellules NK + 3pg/souris d’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 Cit
4/ 2.105 cellules-cibles Nalm6-2H06 + 2.105 cellules Nalm6 NT + 2.105 cellules NK + 3pg/souris d’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 Arg
Cinq heures après l’injection, les cellules ont été récupérées par lavage péritonéal avec du PBS 2% SVF puis analysées par cytométrie de flux après marquage avec 7AAD et Annexine (kit Becton Dickinson).Les résultats présentés dans la Figure 18 montrent que dans la cavité péritonéale des souris immunodéficientes SCID/BEIGE, l’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 Cit induit la destruction totale et spécifique des cellules-cibles Nalm6 2H06 par les cellules NK. En effet, le pic CTVh'9h correspondant aux cellules Nalm6 2H06 disparait exclusivement en présence des cellules NK et de l’hybride Fc-WT-PEG-a621-635 Cit.
Ce résultat très significatif (***, p<0.001 ) apporte la preuve in vivo de l’efficacité et de la spécificité de la lyse par ADCC des cellules ACPA+ par les cellules NK humaines, en présence d’hybrides Fc-peptides citrullinés porteurs des épitopes-cibles des ACPA.
Exemple 20 : Destruction spécifique in vivo de la lignée Nalm6 ACPA+ 2H06 par des macrophages humains pré-armés avec les hybrides Fc-peptide a621-635, chez des souris immunodéficientes SCID/BEIGE
L’expression membranaire des ACPA 2H06 sur les cellules-cibles Nalm6 2H06 a été contrôlée par marquage avec un anticorps anti-Fab. La purification des monocytes en macrophages a été effectuée à partir de sang périphérique d’un donneur sain. La différenciation des monocytes a été induite en présence de 100 ng/ml de M-CSF et l’activité phagocytaire des macrophages ainsi générés a été vérifiée in vitro.
Avant injection intra-péritonéale (IP), les macrophages ont été armés avec les différents hybrides Fc-WT-PEG-a621-635 citrullinés (cit) ou non (arg) et les cellules-cibles Nalm6-2H06 ont été marquées avec le marqueur fluorescent CTV (CelITrace Violet) à 0,5mM : fortement fluorescentes lorsqu’elles sont libres (Nalm6 2H06 CTVh'9h), ces cellules présentent une fluorescence beaucoup plus faible (Nalm6-2H06 CTV|0W) après phagocytose par les macrophages.
Quatre groupes de 5 souris SCID/BEIGE ont reçu en IP les cellules-cibles, en présence ou non de macrophages frais pré-armés et, ou non, d’hybrides FcWT-PEG-a621-635 cit ou arg, selon les combinaisons suivantes :
1/ 2.105 cellules-cibles Nalm6-2H06
212.105 cellules-cibles Nalm6-2H06 + 2.105 macrophages non armés
3/ 2.105 cellules-cibles Nalm6-2H06 + 2.105 macrophages pré-armés d’hybride Fc-WT- PEG-a621-635 Cit
4/ 2.105 cellules cibles Nalm6-2H06 2.105 macrophages pré-armés d’hybride Fc-WT- PEG-a621-635 Arg
Deux heures après l’injection, les cellules ont été récupérées par lavage péritonéal avec du PBS 5% SVF, les érythrocytes ont été éliminés par une lyse douce et les cellules ont été marquées avec un anticorps anti-CD45 humain-FITC puis avec du 7AAD (kit Becton Dickinson) avant analyse en cytométrie de flux.
Les résultats présentés dans la Figure 19 montrent que dans la cavité péritonéale des souris immunodéficientes SCID/BEIGE, des macrophages chargés par l’hybride Fc-WT-PEG- a621-635 cit phagocytent spécifiquement des cellules-cibles Nalm6 2H06 leur diminution par rapport au contrôle (hybride Fc-WT-PEG-a621-635 arg, non citrulliné) étant significative (p<0.05). Ce résultat apporte la preuve in vivo de l’efficacité et de la spécificité de la phagocytose des cellules ACPA+ par des macrophages humains chargés d’hybrides Fc-peptides citrullinés porteurs des épitopes-cibles des ACPA.

Claims

Revendications
[Revendication 1] Cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide citrulliné.
[Revendication 2] Cellule immunitaire selon la revendication 1 , ladite cellule étant choisie parmi une cellule NK ou un macrophage.
[Revendication 3] Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle le récepteur Fc est un récepteur Fc gamma, notamment FcyRIII.
[Revendication 4] Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit peptide de la molécule hybride est dérivé de tout ou partie de la séquence de la chaîne a ou b d’une fibrine de vertébré, par substitution d’au moins un résidu arginyl par un résidu citrullyl, ladite fibrine de vertébré étant de préférence une fibrine de mammifère, plus particulièrement humaine.
[Revendication 5] Cellule immunitaire selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit espaceur de la molécule hybride est un polymère contenant un ou plusieurs motifs de répétition contenant le groupe éther, ledit espaceur étant de préférence le polyéthylène glycol de formule PEGn, dans laquelle n représente un nombre entier compris entre 1 et 100, préférentiellement entre 1 et 10 et notamment 1 , 2, 3, 4 ou 8.
[Revendication 6] Cellule immunitaire selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit peptide de la molécule hybride comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par : a) un peptide défini par la séquence X1PAPPPISGGGYX2AX3 (SEQ ID NO : 1) dans laquelle X1, X2, et X3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 ou X3 est un résidu citrullyl ; b) un peptide défini par la séquence GPX1VVEX2FIQSACKDS (SEQ ID NO : 2) dans laquelle X1 et X2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 est un résidu citrullyl ; c) un peptide défini par la séquence SGIGTLDGFX1FIX2FIPD (SEQ ID NO : 3) dans laquelle X1 et X2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 est un résidu citrullyl ; d) un peptide défini par la séquence VDIDIKIX1SCX2GSCS (SEQ ID NO : 4) dans laquelle X1 et X2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou
X2 est un résidu citrullyl ; e) un peptide défini par la séquence X1GFIAKSX2PVX3GIFITS (SEQ ID NO : 12) dans laquelle X1, X2 et X3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X2 ou X3 est un résidu citrullyl ; f) un peptide comprenant au moins 5 acides aminés consécutifs, dont au moins un résidu citrullyl, de l'un des peptides a) à e) ci-dessus.
[Revendication 7] Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications 1-5, dans laquelle ledit peptide de la molécule hybride est choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 7 , SEQ ID NO : 8, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 11 , SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 17, SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 20, SEQ ID NO : 21 , SEQ ID NO : 22 et SEQ ID NO : 23, plus particulièrement choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 18 et SEQ ID NO : 19.
[Revendication 8] Cellule immunitaire selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit fragment Fc de la molécule hybride est un fragment Fc humain, notamment d’IgG, plus particulièrement d’IgGI .
[Revendication 9] Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit fragment Fc de la molécule hybride est de type sauvage ou muté, ledit fragment Fc muté comprenant de préférence au moins les mutations suivantes :
- L234A et L235A, ou
- L234A, L235A et P329G, ou
- G236A, S239D et I332E, ou
- G236A, S239D, A330L et I332E, ou
- S239D, H268F, S324T et I332E, la numérotation étant indiquée dans la séquence d’une IgG 1 humaine selon l’index EU.
[Revendication 10] Cellule immunitaire selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle dans ladite molécule hybride :
- le fragment Fc est couplé à un azoture et ledit peptide est couplé à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou
- le fragment Fc est couplé à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture, ou
- le fragment Fc est couplé à un azoture et ledit peptide est lié à un espaceur lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou
- le fragment Fc est couplé à un alcyne, tel qu'un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur lui-même couplé à un azoture, ou
- le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou
- le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture, ou
- le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide, éventuellement en présence d’un ou plusieurs espaceurs, étant créée entre l’azoture et l’alcyne.
[Revendication 11] Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, pour son utilisation comme médicament, notamment pour son utilisation dans le traitement des maladies auto-immunes associées à la production d’auto-anticorps anti-protéines citrullinées, en particulier le syndrome de Gougerot-Sjogren et la Polyarthrite Rhumatoïde. [Revendication 12] Ensemble d’éléments comprenant :
(a) une cellule du système immunitaire inné ou adaptatif qui exprime à sa surface au moins un récepteur Fc, notamment une cellule NK ou un macrophage, et
(b) une molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide citrulliné.
PCT/FR2022/050506 2021-03-19 2022-03-18 Cellule immunitaire comprenant un recepteur fc a sa surface, et sur lequel est greffe une molecule hybride comprenant un fragment fc d'anticorps et au moins un peptide citrulline derive de la fibrine, et ses utilisations WO2022195239A1 (fr)

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