WO2022149410A1 - 妊孕性を判定するためのバイオマーカー及びそれを用いた判定方法 - Google Patents
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- G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
- G01N33/689—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids related to pregnancy or the gonads
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- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
- G01N2333/705—Assays involving receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
- G01N2333/70596—Molecules with a "CD"-designation not provided for elsewhere in G01N2333/705
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- G—PHYSICS
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- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2800/00—Detection or diagnosis of diseases
- G01N2800/36—Gynecology or obstetrics
- G01N2800/367—Infertility, e.g. sperm disorder, ovulatory dysfunction
Definitions
- the present invention relates to a method for determining fertility of an egg or embryo using the concentration of soluble CD163 in human body fluid as an index.
- Non-Patent Document 1 The number of treatment cycles in Japan's infertility treatment in 2017 exceeds 400,000, and the number of babies born exceeds 50,000. It is expected that the number of infertility treatments and the number of babies born by in vitro fertilization will continue to increase due to the effects of late marriage (Non-Patent Document 1).
- Patent Document 1 Since the quality of eggs obtained by egg collection cannot be determined, even if in vitro fertilization is performed and a good embryo obtained through embryo culture is transplanted, the probability of implantation is about 30% (non-). Patent Document 1). In order to increase this implantation probability, attempts have been made to transfer multiple embryos obtained by in vitro fertilization, but since multiple pregnancies place a heavy physical burden, at present, only one embryo is transferred in principle. It has been shown to be an embryo transfer (Non-Patent Document 2).
- Non-Patent Document 3 The Veck classification (Non-Patent Document 3) and the Gardner classification (Non-Patent Document 4) are mainly used as morphological methods to be evaluated at the time of each embryo transfer. Generally, embryos obtained by in vitro fertilization are morphologically evaluated, and then the top-rated embryos are transplanted within the same cycle. However, transplanting the highest-rated embryos does not necessarily lead to implantation and pregnancy. Not exactly, and vice versa, so morphological embryo evaluation does not strictly correlate with actual embryo quality. In recent years, time-lapse cultures have been developed to confirm the growth process of embryos.
- Non-Patent Document 5 A method of evaluating the embryo growth process rather than the final morphological judgment after embryo culture has been proposed (Non-Patent Document 5), but there is no clear judgment standard. Therefore, in order to determine the transplantation of a single embryo that is likely to implant or become pregnant, a biomarker that can provide better objective criteria by combining with morphological evaluation is required. There is.
- Patent Document 1 discloses MICA (MHC class I chain-related protein A) as a biomarker for non-invasively evaluating in vitro fertilization. It has been proposed as a biomarker indicating implantation failure rate, in vitro fertilization failure or miscarriage when the MICA level in a human sample exceeds the threshold, but does not indicate the actual egg or embryo quality.
- MICA MHC class I chain-related protein A
- Patent Document 2 proposes soluble CD146 as a biomarker for preselecting embryos suitable for intrauterine implantation.
- a method for selecting an appropriate embryo for transplantation using soluble CD146 that can be confirmed in the embryo culture medium as an index is disclosed, but human body fluid is not targeted.
- Patent Document 3 discloses a genetic means for identifying an oocyte having a pregnancy-accepting ability. Assay evaluation of genes obtained from cumulus cells discloses indicators that can lead to viable pregnancy when the oocyte is transplanted, but is examined at the protein level. And does not target human body fluids.
- CD163 which was the focus of the present invention, is known as a hemoglobin / haptoglobulin scavenger receptor, belongs to the scavenger receptor cysteine-rich superfamily, and is a type I transmembrane protein expressed in monocytes or macrophages. Cleavage by metalloproteinase during macrophage activation produces solubilized CD163 and circulates in the blood. Therefore, the circulating solubilized CD163 is a macrophage activity marker, and at the same time, it has recently been reported as a therapeutic effect predictive marker of nivolumab, which is a molecular-targeted therapeutic agent for the treatment of malignant melanoma and advanced non-small cell lung cancer. (Patent Document 4).
- the present invention uses a biomarker capable of determining an embryo having a high implantation / pregnancy probability, that is, an embryo having a high fertility, from embryos obtained through embryo culture after in vitro fertilization in infertility treatment. It is an object of the present invention to provide a determination method and a determination reagent.
- the inventors of the present application measured the concentration of soluble CD163 present in the body fluid such as follicular fluid collected at the same time as the egg during in vitro fertilization and serum immediately before egg collection. We have found that it is possible to determine the fertility of an egg or an embryo that develops after fertilization from an egg, and completed the following invention of the present application.
- the present invention is as follows.
- a biomarker comprising soluble CD163 for determining the fertility of an egg or an embryo generated after fertilization from an egg.
- the soluble CD163 concentration is higher than the standard value, it is determined that the fertilization of the egg or the embryo generated after fertilization from the egg is high, and the standard value is that the embryo developed after fertilization from the human egg is transplanted.
- a method for treating infertility in a patient or a method for enhancing the establishment of pregnancy by in vitro fertilization. (I) Step of measuring the concentration of soluble CD163 in the body fluid collected from the patient, (Ii) When the measured value exceeds a preset reference value, an egg collected from the same patient on the same day as the sample or an embryo generated after fertilization from the egg is identified as having high fertility, and (Iii) A method comprising transplanting an embryo developed after fertilization from an egg identified in (ii) or an identified embryo into the patient.
- the first aspect of the present invention is a biomarker for determining the fertility of an egg or an embryo generated after fertilization from an egg in infertility treatment.
- the biomarker of the present invention consists of soluble CD163 present in human body fluids.
- CD163 which is a protein having a molecular weight of about 130 to 160 kDa, is a transmembrane protein expressed on monocytes and macrophages. After macrophages are activated by lipopolysaccharide (LPS) or the like, they are cleaved from the membrane by metalloproteinase to generate soluble CD163 and are released into the body.
- LPS lipopolysaccharide
- CD163 For CD163, four types of isoforms (Uniprotkb protein isoforms: Q86VB7-1, 2, 3, 4, and amino acid sequences are shown in SEQ ID NOs: 1 to 4, respectively) having different C-terminal sequences are known. Each of these four isoforms is cleaved at a specific position to give soluble CD163. At this time, the same soluble CD163 is produced from the CD163 isoforms 1, 2 and 3. On the other hand, the CD163 isoform 4 yields a soluble CD163 having a different sequence. Both soluble CD163s have sequences corresponding to positions 42-578 and 580-1050 of SEQ ID NO: 1.
- the biomarker of the present invention may be any one or two of the two soluble CD163s.
- the soluble CD163 concentration (also referred to as level) in the follicular fluid containing the ovum that had been embryo-transplanted and the pregnancy was established or in the serum immediately before the egg collection of the same patient did not establish the pregnancy. It is significantly higher than that in the follicular fluid containing the egg or in the serum immediately before the egg collection of the same patient. Therefore, the soluble CD163 in the follicular fluid or the serum immediately before egg collection can be an index for determining the fertility of an egg or an embryo generated after fertilization from the egg.
- Another aspect of this embodiment is the use of soluble CD163 as a biomarker for determining the fertility of an egg or an embryo that develops after fertilization from an egg.
- the second aspect of the present invention based on such findings is a method of measuring the concentration of soluble CD163 in a human body fluid and determining the fertility of an egg or an embryo generated after fertilization from the egg from the measured value.
- Measurement of soluble CD163 concentration in human body fluids is usually performed in vitro.
- an egg that is highly fertile or an embryo that develops after fertilization can be selected from the egg.
- a judgment material for selecting an embryo suitable for transplantation into the uterus is provided, and the probability of the establishment of pregnancy can be increased.
- the method of the present invention includes up to the stage of determining fertility, and does not include the final determination act regarding whether or not embryos can be transplanted.
- the doctor decides whether or not to transplant to the uterus, selects an embryo suitable for transplantation, and makes a policy for infertility treatment by referring to the determination result by the method of the present invention.
- the term "fertility” refers to the degree of ability of an egg or an embryo generated after fertilization from an egg to implant and achieve all processes leading to pregnancy. By selecting embryos with high fertility before transplanting into the uterus, the probability of pregnancy can be increased.
- Soluble CD163 levels in human specimens can be determined by measurement of soluble CD163 protein or fragments thereof in the sample. Since CD163 is a membrane-bound protein, it exists in fragmented form, ie, soluble CD163, in body fluids. The soluble CD163 protein to be measured or a fragment thereof is present in the sample in a form bound or associated with other proteins or the like (for example, in the sample in a form constituting a completely or partially decomposed soluble CD163 molecule). What exists in) is included.
- soluble CD163 used as a biomarker in the present invention is in the form of binding or association with a full-length protein of soluble CD163 present in a sample and a partial fragment thereof, as well as other proteins or protein fragments. Soluble CD163 protein and its partial fragments are included. Further, the soluble CD163 measured by the method of the present invention may be one or two of the above-mentioned two types of soluble CD163.
- the human sample is a human body fluid, and follicular fluid, blood, serum, plasma, urine and the like can be used, but follicular fluid, blood, serum or plasma is preferably used, and in particular, follicular fluid or serum is used. Is even more desirable.
- the specimen used in the method of the present invention refers to a specimen taken from a subject, i.e. isolated.
- the human (subject) from which the sample is collected is usually a female patient who is indicated for in vitro fertilization in infertility treatment.
- the sample collection from the subject is preferably performed on the same day as the egg collection normally performed before ovulation, and specifically, is collected around the 10th to 14th day after the start of menstruation.
- the sample When the sample is follicular fluid, it is usually collected together with the egg collected (egg collection) from the ovary.
- the sample When the sample is blood, serum, plasma, urine, etc., it is preferable to collect the sample immediately before egg collection because it is considered that the state of the collected egg is more reflected.
- the time for measuring and determining the method of the present invention may be any time before embryo transfer, after egg collection, after fertilization, after division into blastocysts, and the like. Usually, it is measured and judged by the time when the doctor decides whether or not the embryo can be transplanted. And will be issued by the time of the decision on whether or not to transplant. Further, it is also preferable to perform measurement / determination by the method of the present invention at an early stage after egg collection from the viewpoint of efficiency of infertility treatment. This is because the possibility of pregnancy can be increased by advancing the step of fertilizing and culturing the egg determined to be highly fertile.
- Follicular fluid is present in mature follicles. It is collected together with the egg when it is collected from a mature follicle using an egg collection needle with proper fertility management. Since the follicular fluid is discarded in the usual infertility treatment, there is no further burden on the patient by making the determination of the present invention.
- the method for measuring soluble CD163 in a human sample is not particularly limited as long as it is a quantitative measurement method such as an immunoassay method, a liquid chromatography method, an electrophoresis method, or a mass spectrometry method, but the immunoassay method is a large-scale device. Is not required and the measurement operation is simple, so that it can be preferably used in the present invention.
- Immunoassay itself is well known in this field. When immunoassays are classified based on the reaction type, there are sandwich method, competition method, agglutination method, Western blotting, etc., and when classified based on the label, enzyme immunoassay, radioimmunoassay, fluorescence immunoassay, etc. be.
- any immunoassay method capable of quantitative detection may be used.
- a sandwich method such as sandwich ELISA can be preferably used.
- the method for producing the antibody used in the present invention is not particularly limited, and is typically a non-human animal polyclonal or monoclonal antibody prepared in a non-human animal such as a mouse or a rabbit.
- a soluble CD163 antibody that specifically recognizes a specific site of soluble CD163 by a conventional hybridoma method or the like is prepared and used. May be good.
- the antibody used in the present invention may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody.
- Antiserum may be used as the polyclonal antibody.
- the term polyclonal antibody also includes antiserum before purification.
- an antigen-binding fragment of the antibody can be used instead of the antibody.
- the term "antibody” also includes an antigen-binding fragment of the antibody, unless it is clear from the context that this is not the case.
- the polyclonal antibody, the monoclonal antibody, and the antigen-binding fragment can all be prepared by a well-known conventional method.
- the polyclonal antibody that recognizes a specific site of soluble CD163 can be obtained, for example, by mixing a plurality of types of monoclonal antibodies that specifically recognize the site.
- a polypeptide containing the relevant site of soluble CD163 prepared by a well-known method such as chemical synthesis, a soluble CD163 protein, or a polynucleotide encoding these is used as an immunogen to immunize a non-human animal with an appropriate adjuvant and the animal. It can be obtained by obtaining an antiserum from blood collected from the blood and purifying the polyclonal antibody (non-human animal anti-soluble CD163 polyclonal antibody) in the antiserum.
- Immunization is usually performed multiple times over several weeks in order to increase the antibody titer in the immunized animal.
- Purification of the antibody in the antiserum can be performed, for example, by ammonium sulfate precipitation, fractionation by anion chromatography, affinity column purification, or the like.
- a hybridoma method can be mentioned. Specifically, for example, antibody-producing cells such as splenocytes and lymphocytes are collected from non-human animals immunized as described above, and these are fused with myeloma cells to prepare hybridomas, and specific sites of soluble CD163 are prepared. A hybridoma that produces an antibody that binds to can be selected and propagated to obtain a monoclonal antibody that specifically recognizes a specific site of non-human animal anti-soluble CD163 from the culture supernatant.
- antibody-producing cells such as splenocytes and lymphocytes are collected from non-human animals immunized as described above, and these are fused with myeloma cells to prepare hybridomas, and specific sites of soluble CD163 are prepared.
- a hybridoma that produces an antibody that binds to can be selected and propagated to obtain a monoclonal antibody that specifically recognizes a specific site of non-human animal anti-soluble CD163 from the culture supern
- the "antigen-binding fragment” means an antibody fragment that maintains the binding property (antigen-antibody reactivity) of the antibody to the corresponding antigen, such as a Fab fragment of immunoglobulin or an F (ab') 2 fragment. do. It is well known that such antigen-binding fragments are also available for immunoassays and are as useful as the original antibodies. Fab fragments and F (ab') 2 fragments can be obtained by treating the antibody with a proteolytic enzyme such as papain or pepsin, as is well known.
- the antigen-binding fragment is not limited to the Fab fragment or the F (ab') 2 fragment, and may be any fragment that maintains the binding property to the corresponding antigen, and may be any fragment that maintains the binding property to the corresponding antigen by a genetic engineering method. It may be prepared. Further, for example, an antibody expressing a single chain fragment of variable region (scFv) in Escherichia coli by a genetic engineering method can also be used. The method for producing scFv is also well known. The mRNA of the hybridoma prepared as described above is extracted, single-chain cDNA is prepared, and PCR is performed using primers specific for immunoglobulin H chain and L chain to immunize.
- scFv single chain fragment of variable region
- ScFv by amplifying globulin H-chain and L-chain genes, linking them with a linker, imparting appropriate limiting enzyme sites and introducing into a plasmid vector, thereby transforming E. coli and recovering scFv from E. coli. Can be produced.
- Such scFv is also included in the "antigen-binding fragment".
- the immunoassay method itself is a well-known technique, but briefly, for example, in the sandwich method, an antibody that binds to soluble CD163 is immobilized on a solid phase (immobilized antibody) and reacted with a sample, if necessary. After washing, the labeled antibody labeled with the antibody that binds to soluble CD163 is reacted at the same or different site as the immobilized antibody, and after washing, the labeled antibody bound to the solid phase is measured.
- the labeled antibody can be measured by measuring the signal from the labeled substance.
- the method for measuring the signal is appropriately selected according to the type of the labeling substance. For example, in the case of an enzyme label, a substrate such as a color-developing substrate, a fluorescent substrate, or a luminescent substrate corresponding to the enzyme is reacted with the enzyme, and signals such as color development and luminescence generated as a result are appropriately signaled by an absorptiometer, a luminometer, or the like. By measuring with an instrument, the enzyme activity can be obtained and the object to be measured can be measured.
- a luminescent substrate such as 2 sodium (for example, trade name AMPPD) can be used.
- the labeling substance may be directly bound to the antibody, or a specific binding molecule such as biotin or hapten is bound to the antibody, and the partner of the specific binding molecule to which the labeling substance is bound (streptavidin or hapten antibody, etc.). ) May be indirectly bound to the labeling substance.
- Immunometric measurements were performed on standard samples containing soluble CD163 at various concentrations using anti-soluble CD163 antibodies or antigen-binding fragments thereof, and the correlation between the amount of signal from the label and the concentration of soluble CD163 in the standard sample.
- the soluble CD163 performs the same operation on an unknown sample to measure the amount of signal from the label, and the measured value is applied to this calibration curve to obtain the soluble CD163 in the sample. Can be quantified.
- Whether or not the soluble CD163 level in the body fluid is high is determined by, for example, using a reference value determined from the soluble CD163 level in another body fluid containing the original egg of the embryo in which the pregnancy was unsuccessful as a threshold value. It can be judged by comparison with.
- the reference value can be based on, for example, the median concentration of soluble CD163 in a large number of follicular fluids, which contained the original egg of an embryo that was unsuccessful in pregnancy.
- the measured value of the soluble CD163 level in each follicular fluid obtained by collecting the egg as the subject is higher than this reference value, the fertility is high, that is, the quality of the egg is high and implantation / pregnancy occurs. It can be judged that there is a high possibility of reaching.
- This threshold value may be set for each age group (for example, under 30 years old, 30s, 40s, 50s, etc.).
- the egg or embryo to be determined to be fertile is an egg collected on or at the time of collection of the sample to be measured, or an embryo generated after fertilization from the egg.
- the embryo whose fertility can be determined may be either a split embryo or a blastocyst, but a blastocyst is preferable.
- the method for determining fertility of the present invention can be applied to a method for treating infertility. That is, according to the present invention, it is a method for treating infertility in a patient or a method for enhancing the establishment of pregnancy by in vitro fertilization.
- Step of measuring the concentration of soluble CD163 in the body fluid collected from the patient (Ii) When the measured value exceeds a preset reference value, an egg collected from the same patient on the same day as the sample or an embryo generated after fertilization from the egg is identified as having high fertility, and (Iii) Provided is a method comprising transplanting an embryo developed after fertilization from an egg identified in (ii) or an identified embryo into the patient.
- a third aspect of the present invention relates to a reagent containing an antibody that specifically recognizes soluble CD163 and used in a method for determining fertility.
- This determination reagent may consist only of an antibody or an antigen-binding fragment that specifically recognizes soluble CD163, or further contains other components useful for stabilizing these antibodies or the antigen-binding fragment thereof. You may. Further, these antibodies or antigen-binding fragments thereof may be in a form in which a specific binding molecule such as a labeling substance or biotin is bound, or in a form immobilized on a solid phase such as a plate or particles.
- the fourth aspect of the present invention may also be a kit for determining fertility, which comprises the above-mentioned determination reagent of the present invention.
- the kit is an immunoassay kit and may include other reagents and the like necessary for immunoassay. Other reagents required for immunoassay are well known.
- the kit may further contain a sample diluent, a washing solution, and a substrate solution of the enzyme when the labeling substance used for the labeled antibody is an enzyme. Kits also usually include instructions for use.
- Another aspect of this embodiment is the use of an antibody that specifically recognizes soluble CD163 in the manufacture of reagents for determining fertility. Another aspect is the use of an antibody that specifically recognizes soluble CD163 in determining fertility. Another aspect is an antibody that specifically recognizes soluble CD163, which is used to determine fertility.
- ovulation was obtained from a patient who had appropriate induction of ovulation. The ones that can be collected at the same time as the collection were used.
- Follicular fluid was collected and then stored at -80 ° C. The culture record of the collected eggs is compared with the feasibility of the patient, and the pregnancy is divided into the pregnancy-established group and the pregnancy-unsuccessful group. board.
- the purchased anti-CD163 polyclonal antibody (R & D system) was used. Since this antibody was prepared by immunizing the sequence corresponding to Gly46-Ser1050 of SEQ ID NO: 1, soluble CD163 can be measured. This antibody was diluted with carbonate buffer (pH 9.8) to 50 ng / well and immobilized on a MaxiSorp 96-well plate (manufactured by Nunc). After reacting overnight at 4 ° C, wash 3 times with TBS-T (Tris-Buffered Saline containing 0.05% Tween 20) and add a TBS solution containing 3% bovine serum albumin (BSA; Bovine Serum Albumin) to 200 ⁇ L / well. Was added to each well and left at room temperature for 2 hours.
- BSA bovine serum albumin
- the purchased anti-CD163 monoclonal antibody (R & D system) was diluted with a TBS-T solution containing 1% bovine serum albumin to 1.0 ⁇ g / mL, and 40 ⁇ L / well. Was added and left at room temperature for 1 hour.
- HRP horseradish peroxidase
- SIGMA horseradish peroxidase
- the reaction was stopped with a 1 mol / L phosphoric acid solution, and the absorption value at 450 nm was measured with an absorption measurement plate reader.
- the measurement system of Measurement Example 1 can measure soluble CD163.
- Tables 1 and 2 show the results of evaluation of the ability of soluble CD163 in follicular fluid to detect the establishment of pregnancy by ROC analysis. This result suggests a relationship between the concentration of soluble CD163 in follicular fluid, which is an independent variable, and the outcome, which is a dichotomous variable, whether or not pregnancy is established.
- the area under the ROC curve (AUC: area under the curve) was 0.73.
- Recombinant Human CD163 Protein (recombinant CD163) manufactured by R & D was used as a standard sample for the calibration curve.
- This recombinant CD163 is obtained by preparing a sequence corresponding to Gly46-Ser1050 of SEQ ID NO: 1 in mouse melanoma, and is also a sequence possessed by soluble CD163.
- This recombinant CD163 was prepared with a TBS-T solution containing 1% bovine serum albumin and measured with the measurement system of Measurement Example 1 to prepare a calibration curve. The results are shown in FIG.
- the target follicular fluid was pretreated with High Select (registered trademark) Top14 Abundant Protein Depletion Mini Spin Columns (manufactured by Thermo) according to the protocol.
- the protein concentration of the obtained eluate was measured, applied to a 5-20% gradient gel so as to be 10 ⁇ g / Lane, and SDS / PAGE was performed.
- the protein was transferred to the PVDF membrane using a transcription device.
- the PVDF membrane on which the protein was transcribed was blocked for 1 hour at room temperature using a TBST buffer containing 5% Skim Milk.
- the PVDF membrane was adjusted to 1.0 ⁇ g / mL of anti-CD163 polyclonal antibody (the same as that used in Measurement Example 1 by R & D system) in TBST buffer containing 5% Skim Milk. The reaction was carried out at room temperature for 1 hour. After the reaction, after washing 3 times with TBST buffer, the PVDF membrane was diluted 2000-fold with TBST buffer containing 5% Skim Milk to prepare a solution of horseradish peroxidase (HRP) -labeled anti-goat IgG (manufactured by SIGMA). Then, the reaction was carried out at room temperature for 1 hour.
- HRP horseradish peroxidase
- the cells were washed three times with a TBST buffer, then emitted with an ECL Prime Western Blotting Detection Reagent (manufactured by GE Healthcare), and detected and confirmed with a CCD camera.
- ECL Prime Western Blotting Detection Reagent manufactured by GE Healthcare
- the signal analysis of the detected band was performed using MultiGage (Fujifilm).
- Table 2 shows the signal analysis results. The pregnancy-established group showed a clearly higher signal than the follicular fluid of non-pregnancy.
- the patient serum used was collected immediately before egg collection from a patient who had appropriate induction of ovulation. It was used. After collecting the serum, it was stored at -80 ° C. After in vitro fertilization using the collected eggs, the fertilized eggs were transplanted and the feasibility of the patient was checked. Eggs that were pregnant were divided into groups that could be collected and groups that could not be collected. Sixteen sera samples from patients who were able to collect pregnant eggs and six sera samples from patients who could not be collected were used. Soluble CD163 in the sample was measured in the same manner as in Measurement Example 1. The results are shown in FIG.
- Soluble CD163 in serum was clearly higher in the group in which pregnant eggs could be collected than in the group in which pregnant eggs could not be collected.
- the median of the group that could not collect the pregnant eggs was 278.0 ng / mL, while the median of the pregnant group was 360.2 ng / mL.
- Tables 3 and 6 show the results of evaluation of the ability of soluble CD163 in serum to detect the establishment of pregnancy by ROC analysis. This result suggests a relationship between the concentration of soluble CD163 in serum, which is an independent variable, and the outcome, which is a dichotomous variable, whether or not pregnancy is established.
- the area under the ROC curve was 0.75.
- Follicular fluid was collected and then stored at -80 ° C.
- the patient serum used was collected immediately before the egg was collected from a patient who had appropriate induction of ovulation. After collecting the serum, it was stored at -80 ° C.
- After in vitro fertilization using the collected eggs the feasibility of the patient transplanted with the fertilized egg was checked. Eggs that were pregnant were divided into groups that could be collected and groups that could not be collected.
- Soluble CD163 in the sample was measured in the same manner as in Measurement Example 1. The results are shown in FIG.
- the serum of the patient who was able to collect the eggs with the establishment of pregnancy and the follicular fluid of the patient with the establishment of pregnancy were clearly higher in the follicular fluid and the soluble CD163 in the serum than the group in which the egg with the establishment of pregnancy could not be collected.
- the median serum of the group that could not collect the pregnant egg was 240.5 ng / mL and the median follicular fluid was 112.0 ng / mL, while the median serum of the pregnant group was 360.2 ng / mL.
- the median follicular fluid was 198.4 ng / mL.
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Abstract
本発明は、不妊治療において体外受精後、胚培養を経て得られた胚の中から、着床・妊娠確率の高い、すなわち妊孕性の高い胚の選別を可能とするバイオマーカー及びその判断基準を提供することを目的とする。不妊治療における採卵時に卵子と同時に採取される卵胞液中又は採卵直前の血清中に存在する可溶性ＣＤ１６３濃度を測定することで、着床・妊娠に適切な卵子を判断できる基準を提供する。
Description
本発明は、ヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を指標として、卵子または胚の妊孕性を判定する方法等に関する。
２０１７年の日本の不妊治療における治療周期数は４０万周期数を超え、出生児数は５万人を超える。今後も晩婚化等の影響により、不妊治療の件数増加と体外受精による出生児が増加していくことが予測される（非特許文献１）。
不妊の要因は男女ともに存在する。男性の場合は主に造精機能障害、精子輸送路閉塞、精子機能障害等が挙げられる。一方女性の場合、加齢の他、婦人科疾患（子宮内膜症、子宮筋腫等）、内分泌、代謝疾患等が挙げられる。しかし一般的な不妊検査で異常が認められない原因不明なケースもあり、明らかな異常が認められない場合、卵質の低下による妊孕性の低下が考えられる。ここで妊孕性とは妊娠しやすさのことであり、卵子又は卵子から受精後に発生する胚が、着床して妊娠に至る全ての過程を達成できる能力の程度のことである。採卵で得られる卵子の質は判断できない為、体外受精を行い、胚培養を経て得られた良好な胚を移植しても、着床に至る確率は最も高い確率でも３０％程度である（非特許文献１）。この着床確率を上げるため、体外受精にて得られた胚を複数移植する試みが行われていたが、多胎妊娠は身体的負担が大きいため、現在は原則１個のみ胚移植を行う単一胚移植とすることが示されている（非特許文献２）。
現在の胚移植には、分割胚にて行う分割胚移植と、胚盤胞に達した胚を移植する胚盤胞移植がある。各胚移植時に評価する形態学的な方法として、それぞれＶｅｅｃｋ分類（非特許文献３）及びＧａｒｄｎｅｒ分類（非特許文献４）が主に使用されている。一般的に体外受精にて得られた胚を形態学的な評価後、同一周期内でトップ評価の胚を移植するが、最も評価が高い胚を移植しても必ずしも着床・妊娠に至る訳ではなく、またその逆もあることから、形態学的な胚評価は実際の胚の質と厳密に相関している訳ではない。近年、胚の成長過程を確認するタイムラプス培養が開発された。胚培養後の最終的な形態学的判断ではなく、胚の成長過程をもって評価する方法も提唱されているが（非特許文献５）、明確な判断基準があるわけでは無い。その為、着床・妊娠が見込まれる可能性の高い単一胚の移植を判断するため、形態学的な評価と合わせる事で、より良好な客観的判断基準を提供できるバイオマーカーが求められている。
近年不妊治療を対象としたバイオマーカーの研究は多数報告されている。特許文献１には非侵襲的に体外受精の評価を行うバイオマーカーとしてＭＩＣＡ（ＭＨＣクラスＩ 鎖関連タンパク質Ａ）を開示している。ヒト検体中のＭＩＣＡレベルが閾値を超えた場合、着床不全率、体外受精の失敗または流産を示すバイオマーカーとして提案されているが、実際の卵子もしくは胚の質を示すものではない。
特許文献２には子宮内着床に適格な胚を予備選択する為のバイオマーカーとして、可溶性ＣＤ１４６を提案している。胚培養液中に確認できる可溶性ＣＤ１４６を指標として、移植に的確な胚を選択する方法を開示しているが、ヒト体液を対象としていない。
特許文献３には妊娠受容能をもつ卵母細胞を同定する遺伝学的手段が開示されている。卵丘細胞から得られる遺伝子群のアッセイ評価を行うことで、該当の卵母細胞を移植した際に、生存可能な妊娠をもたらすことが可能である指標を開示しているが、タンパク質レベルで検討を行っておらず、ヒト体液を対象としていない。
本発明で着目したＣＤ１６３はヘモグロビン/ハプトグロブリンスカベンジャーレセプターとして知られ、スカベンジャー受容体システインリッチスーパーファミリーに属し、単球またはマクロファージで発現するＩ型膜貫通タンパク質である。マクロファージ活性化過程でメタロプロテイナーゼによる切断により、可溶化ＣＤ１６３を生じ血中を循環する。その為循環する可溶化ＣＤ１６３はマクロファージ活性マーカーであると同時に、近年悪性黒色腫や進行期非小細胞肺癌の治療を目的とした分子標的治療薬であるニボルマブの治療効果予測マーカーとして報告されている（特許文献４）。
日本産婦人科学会 2018年ARTデータブック
日本産婦人科学会「生殖補助医療における多胎妊娠防止に関する見解」平成20年4月発表
Atlas of The Human Oocyte & Early Conceptus, 2, 1991
Gardner DK, et al, Fertil. Steril., 73: 1155－1158, 2000
Pribenszky et al, Reprod. Biomed. Online, 35(5): 511-520, 2017
本発明は、不妊治療において体外受精後、胚培養を経て得られた胚の中から、着床・妊娠確率の高い、すなわち妊孕性の高い胚を判定することができるバイオマーカー及びそれを用いた判定方法、及び判定試薬を提供することを目的とする。
本願発明者らは、鋭意研究の結果、体外受精の際に行われる採卵時に卵子と同時に採取される卵胞液や採卵直前の血清等の体液中に存在する、可溶性ＣＤ１６３濃度を測定することにより、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判断できることを見出し、以下の本願発明を完成した。
すなわち本発明は以下の通りである。
［１］可溶性ＣＤ１６３からなる、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカー。
［２］可溶性ＣＤ１６３の、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカーとしての使用。
［３］ヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定し、その測定値から卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定する方法。
［４］可溶性ＣＤ１６３濃度が基準値よりも高い場合には、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性が高いと判定し、当該基準値は、ヒト卵子から受精後に発生する胚を移植して妊娠が不成立だった他のヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度である、［３］に記載の方法。
［５］前記体液が、卵胞液、全血、血清、血漿又は尿である、［３］又は［４］に記載の方法。
［６］可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する方法が免疫学的測定法である、［３］～［５］のいずれかに記載の方法。
［７］可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体を含有することを特徴とする、［６］に記載の方法に使用するための判定試薬又は判定キット。
［８］可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性を判定するための試薬又は判定キットの製造における使用。
［９］可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性の判定における使用。
［１０］妊孕性の判定のために使用される、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体。
［１１］患者における不妊症を治療する方法又は体外受精による妊娠成立を高める方法であって、
（ｉ）患者から採取した体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する工程、
（ｉｉ）前記測定値が予め設定した基準値を超える場合に、同患者から前記検体と同日に採取された卵子又は該卵子から受精後に発生した胚を妊孕性が高いと同定する工程、及び
（ｉｉｉ）（ｉｉ）で同定された卵子から受精後に発生した胚又は同定された胚を、前記患者に移植する工程、を含む方法。
［１］可溶性ＣＤ１６３からなる、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカー。
［２］可溶性ＣＤ１６３の、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカーとしての使用。
［３］ヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定し、その測定値から卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定する方法。
［４］可溶性ＣＤ１６３濃度が基準値よりも高い場合には、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性が高いと判定し、当該基準値は、ヒト卵子から受精後に発生する胚を移植して妊娠が不成立だった他のヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度である、［３］に記載の方法。
［５］前記体液が、卵胞液、全血、血清、血漿又は尿である、［３］又は［４］に記載の方法。
［６］可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する方法が免疫学的測定法である、［３］～［５］のいずれかに記載の方法。
［７］可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体を含有することを特徴とする、［６］に記載の方法に使用するための判定試薬又は判定キット。
［８］可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性を判定するための試薬又は判定キットの製造における使用。
［９］可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性の判定における使用。
［１０］妊孕性の判定のために使用される、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体。
［１１］患者における不妊症を治療する方法又は体外受精による妊娠成立を高める方法であって、
（ｉ）患者から採取した体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する工程、
（ｉｉ）前記測定値が予め設定した基準値を超える場合に、同患者から前記検体と同日に採取された卵子又は該卵子から受精後に発生した胚を妊孕性が高いと同定する工程、及び
（ｉｉｉ）（ｉｉ）で同定された卵子から受精後に発生した胚又は同定された胚を、前記患者に移植する工程、を含む方法。
本発明によれば、これまで医師の経験による形態学的な判断に頼るだけではなく、客観的な数値を加味して、移植に適した胚の選定が可能となり、医師による胚の評価・選定判断の大きな補助となる。
本発明の第一の態様は、不妊治療における卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカーである。本発明のバイオマーカーは、ヒト体液中に存在する可溶性ＣＤ１６３からなる。
分子量約１３０～１６０ｋＤａのタンパク質であるＣＤ１６３は、単球やマクロファージ上に発現する膜貫通タンパク質である。リポポリサッカライド（ＬＰＳ）等によりマクロファージが活性化された後、メタロプロテイナーゼにより膜から切断されることで、可溶性ＣＤ１６３が生じ体内に放出される。
ＣＤ１６３には、主としてＣ末端部分の配列が異なる４種類のアイソフォーム（Uniprotkb protein isoforms: Q86VB7-1, 2, 3, 4、アミノ酸配列を配列番号１～４にそれぞれ示す）が知られている。これら４つのアイソフォームは、それぞれ特定の位置で切断され、可溶性ＣＤ１６３が生じる。このときＣＤ１６３アイソフォーム１、２及び３からは、同一の可溶性ＣＤ１６３が生じる。一方、ＣＤ１６３アイソフォーム４からは、それとは異なる配列を有する可溶性ＣＤ１６３が生じる。どちらの可溶性ＣＤ１６３も、配列番号１の４２から５７８位及び５８０から１０５０位に相当する配列を有している。本発明のバイオマーカーとしては、２種の可溶性ＣＤ１６３のいずれか一種又は二種であってよい。
後述の実施例が示す通り、胚移植を行い妊娠が成立した卵子を含んでいた卵胞液中又は同患者の採卵直前の血清中の可溶性ＣＤ１６３濃度（レベルともいう）は、妊娠が成立しなかった卵子を含んでいた卵胞液中又は同患者の採卵直前の血清中のそれに比べて有意に高い。そのため、卵胞液中又は採卵直前の血清中の可溶性ＣＤ１６３は、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するための指標となり得る。
本態様の別の側面は、可溶性ＣＤ１６３の、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカーとしての使用である。
かかる知見に基づく本発明の第二の態様は、ヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定し、その測定値から卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定する方法である。ヒト体液中における可溶性ＣＤ１６３濃度の測定は、通常インビトロ（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で行われる。この方法により、妊孕性の高い卵子又は卵子から受精後に発生する胚を選択することができる。その結果、従来の顕微鏡観察による胚盤胞の形態学的評価に加えて、子宮へ移植するのに適した胚を選択するための判断材料が提供され、妊娠成立の確率を高めることができる。
なお、本発明の方法は、妊孕性を判定する段階までを含むものであり、胚の移植可否に関する最終的な判断行為は含まれない。医師は、本発明の方法による判定結果等を参照して、子宮への移植の可否を決定したり、移植に適した胚を選択したり、不妊治療の方針を立てたりする。
本明細書において「妊孕性」とは、卵子又は卵子から受精後に発生する胚が、着床して妊娠に至る全ての過程を達成できる能力の程度のことをいう。子宮へ移植する前に、妊孕性が高い胚を選択することで、妊娠成立の確率を高めることができる。
ヒト検体中の可溶性ＣＤ１６３レベルは、試料中の可溶性ＣＤ１６３タンパク質又はその断片の測定により調べることができる。ＣＤ１６３は膜結合型タンパク質であるため、体液中では断片化した形態、すなわち可溶性ＣＤ１６３として存在する。測定される可溶性ＣＤ１６３タンパク質又はその断片には、他のタンパク質等と結合ないしは会合した形態で検体中に存在するもの（例えば、完全な又は一部分解した可溶性ＣＤ１６３分子を構成している形態で検体中に存在するもの）が包含される。従って、本発明においてバイオマーカーとして使用される「可溶性ＣＤ１６３」という語には、検体中に存在する可溶性ＣＤ１６３の全長タンパク質及びその部分断片、並びに他のタンパク質又はタンパク質断片と結合ないしは会合した形態にある可溶性ＣＤ１６３タンパク質及びその部分断片が包含される。
また、本発明の方法において測定される可溶性ＣＤ１６３は、前述した２種の可溶性ＣＤ１６３のいずれか一種又は二種であってよい。
また、本発明の方法において測定される可溶性ＣＤ１６３は、前述した２種の可溶性ＣＤ１６３のいずれか一種又は二種であってよい。
ヒト検体とは、ヒト体液であり、卵胞液、血液、血清、血漿、尿等を用いることができるが、卵胞液、血液、血清又は血漿を用いることが望ましく、特に卵胞液又は血清を用いることがさらに望ましい。本発明の方法に用いられる検体は、被験者から採取された、すなわち単離された検体を指す。
検体を採取されるヒト（被験者）は、通常、不妊治療において体外受精適応となる女性患者である。
被験者からの検体採取は、通常は排卵前に行われる採卵と同日に好ましくは同時に行われ、具体的には月経開始１０～１４日目頃に採取される。検体が卵胞液である場合は、通常は卵巣から卵子を採取（採卵）するときに共に採取される。検体が血液、血清、血漿、尿等の場合は、採卵の直前に検体を採取すると、採取された卵子の状態をより反映していると考えられるため好ましい。
検体を採取されるヒト（被験者）は、通常、不妊治療において体外受精適応となる女性患者である。
被験者からの検体採取は、通常は排卵前に行われる採卵と同日に好ましくは同時に行われ、具体的には月経開始１０～１４日目頃に採取される。検体が卵胞液である場合は、通常は卵巣から卵子を採取（採卵）するときに共に採取される。検体が血液、血清、血漿、尿等の場合は、採卵の直前に検体を採取すると、採取された卵子の状態をより反映していると考えられるため好ましい。
本発明の方法の測定・判定を行う時期は、胚移植前であれば、採卵後、受精後、胚盤胞まで分割した後等のいつでもよい。通常は、医師が胚の移植可否を判断するときまでに測定・判定し、好ましくは、医師が胚盤胞を顕微鏡で観察し形態学的にグレード分類した結果と、本発明の方法による判定結果とを、移植可否の決定時点までに出す。
また、採卵後の早い時期に本発明の方法による測定・判定を行うことも不妊治療の効率の観点から好ましい。これは、妊孕性が高いと判定された卵子を、受精させる工程、培養する工程に進めることで、妊娠の可能性を高めることができるからである。
また、採卵後の早い時期に本発明の方法による測定・判定を行うことも不妊治療の効率の観点から好ましい。これは、妊孕性が高いと判定された卵子を、受精させる工程、培養する工程に進めることで、妊娠の可能性を高めることができるからである。
卵胞液とは、成熟した卵胞中に存在する。適切な排卵誘発管理により成熟した卵胞より採卵針を用いて採取する際に、卵子と共に採取される。通常の不妊治療では卵胞液は廃棄されるので、本発明の判定を行うことによる患者への更なる負担は伴わない。
ヒト検体中の可溶性ＣＤ１６３を測定する方法は、免疫測定法、液体クロマト法、電気泳動法、質量分析法等定量性のある測定法であれば特に限定されないが、免疫測定法は大掛かりな機器類が不要であり測定操作も簡便なので、本発明においても好ましく用いることができる。
免疫測定自体はこの分野において周知である。免疫測定法を反応形式に基づいて分類すると、サンドイッチ法、競合法、凝集法、ウェスタンブロット法等があり、また、標識に基づいて分類すると、酵素免疫分析、放射免疫分析、蛍光免疫分析等がある。本発明においては、定量的検出が可能な免疫測定方法のいずれを用いてもよい。特に限定されないが、例えば、サンドイッチＥＬＩＳＡ等のサンドイッチ法を好ましく用いることができる。
本発明に用いられる抗体の製法は特に限定はなく、典型的には、マウス、ウサギ等の非ヒト動物で調製された非ヒト動物ポリクローナル又はモノクローナル抗体である。また、上述の通り可溶性ＣＤ１６３のアミノ酸配列及びこれをコードする塩基配列も公知であるので、常法のハイブリドーマ法等により可溶性ＣＤ１６３の特定部位を特異的に認識する可溶性ＣＤ１６３抗体を調製して用いてもよい。
免疫測定自体はこの分野において周知である。免疫測定法を反応形式に基づいて分類すると、サンドイッチ法、競合法、凝集法、ウェスタンブロット法等があり、また、標識に基づいて分類すると、酵素免疫分析、放射免疫分析、蛍光免疫分析等がある。本発明においては、定量的検出が可能な免疫測定方法のいずれを用いてもよい。特に限定されないが、例えば、サンドイッチＥＬＩＳＡ等のサンドイッチ法を好ましく用いることができる。
本発明に用いられる抗体の製法は特に限定はなく、典型的には、マウス、ウサギ等の非ヒト動物で調製された非ヒト動物ポリクローナル又はモノクローナル抗体である。また、上述の通り可溶性ＣＤ１６３のアミノ酸配列及びこれをコードする塩基配列も公知であるので、常法のハイブリドーマ法等により可溶性ＣＤ１６３の特定部位を特異的に認識する可溶性ＣＤ１６３抗体を調製して用いてもよい。
本発明に用いられる抗体はポリクローナル抗体でもモノクローナル抗体でもよい。ポリクローナル抗体として抗血清を用いてもよい。本発明において、ポリクローナル抗体という語には、精製前の抗血清も包含される。また、抗体に代えて該抗体の抗原結合性断片を用いることもできる。以下、本明細書において、文脈からそうではないことが明らかな場合を除き、「抗体」という語には当該抗体の抗原結合性断片も包含される。ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、抗原結合性断片は、いずれも周知の常法により調製することができる。
具体的には、可溶性ＣＤ１６３の特定部位を認識するポリクローナル抗体は、例えば、当該部位を特異的に認識するモノクローナル抗体を複数種混合して得ることができる。又は、化学合成等の周知の手法により調製した可溶性ＣＤ１６３の当該部位を含むポリペプチド、可溶性ＣＤ１６３タンパク質、又はこれらをコードするポリヌクレオチドなどを免疫原として適宜アジュバントと共に非ヒト動物に免疫し、該動物から採取した血液から抗血清を得て、該抗血清中のポリクローナル抗体（非ヒト動物抗可溶性ＣＤ１６３ポリクローナル抗体）を精製することで得ることができる。免疫は、被免疫動物中での抗体価を上昇させるため、通常数週間かけて複数回行なう。抗血清中の抗体の精製は、例えば、硫酸アンモニウム沈殿や陰イオンクロマトグラフィーによる分画、アフィニティーカラム精製等により行なうことができる。
モノクローナル抗体の周知の作製方法の一例として、ハイブリドーマ法を挙げることができる。具体的には、例えば、上記のように免疫した非ヒト動物から脾細胞やリンパ球のような抗体産生細胞を採取し、これをミエローマ細胞と融合させてハイブリドーマを調製し、可溶性ＣＤ１６３の特定部位と結合する抗体を産生するハイブリドーマを選択し、これを増殖させて培養上清から非ヒト動物抗可溶性ＣＤ１６３の特定部位を特異的に認識するモノクローナル抗体を得ることができる。
「抗原結合性断片」とは、例えば免疫グロブリンのFab断片やF(ab’)2断片のような、当該抗体の対応抗原に対する結合性（抗原抗体反応性）を維持している抗体断片を意味する。このような抗原結合性断片もイムノアッセイに利用可能であることは周知であり、もとの抗体と同様に有用である。Fab断片やF(ab’)2断片は、周知の通り、抗体をパパインやペプシンのようなタンパク分解酵素で処理することにより得ることができる。なお、抗原結合性断片は、Fab断片やF(ab’)2断片に限定されるものではなく、対応抗原との結合性を維持しているいかなる断片であってもよく、遺伝子工学的手法により調製されたものであってもよい。また、例えば、遺伝子工学的手法により、一本鎖可変領域（scFv: single chain fragment of variable region）を大腸菌内で発現させた抗体を用いることもできる。scFvの作製方法も周知であり、上記の通りに作製したハイブリドーマのｍＲＮＡを抽出し、一本鎖ｃＤＮＡを調製し、免疫グロブリンＨ鎖及びＬ鎖に特異的なプライマーを用いてPCRを行なって免疫グロブリンＨ鎖遺伝子及びＬ鎖遺伝子を増幅し、これらをリンカーで連結し、適切な制限酵素部位を付与してプラスミドベクターに導入し、それで大腸菌を形質転換し、大腸菌からscFvを回収することによりscFvを作製することができる。このようなscFvも「抗原結合性断片」に包含される。
免疫測定法自体は周知の技術であるが、簡単に記載すると、例えば、サンドイッチ法では、可溶性ＣＤ１６３に結合する抗体を固相に不動化し（固相化抗体）、試料と反応させ、必要に応じて洗浄後、固相化抗体と同一又は異なる部位で可溶性ＣＤ１６３に結合する抗体に標識を付した標識抗体を反応させ、洗浄後、固相に結合した標識抗体を測定する。
標識抗体の測定は、標識物質からのシグナルを測定することにより行なうことができる。シグナルの測定方法は、標識物質の種類に応じて適宜選択される。例えば、酵素標識の場合、該酵素に対応した発色基質、蛍光基質又は発光基質等の基質を該酵素と反応させ、その結果発生する発色や発光等のシグナルを吸光光度計やルミノメータ等の適当な機器で測定することにより、酵素活性を求め測定対象物を測定することができる。例えば、標識物質としてＡＬＰを用いる場合、３－（４－メトキシスピロ（１，２－ジオキセタン－３，２’－トリシクロ［３．３．１．１３，７］デカン）－４－イル）フェニルホスフェート２ナトリウム（例えば商品名ＡＭＰＰＤ）などの発光基質を用いることができる。標識抗体は、標識物質が当該抗体に直接結合されていてもよいし、ビオチン又はハプテン等の特異結合分子を抗体に結合させ、標識物質を結合した特異結合分子のパートナー（ストレプトアビジン又はハプテン抗体等）を反応させることにより、間接的に標識物質が結合されていてもよい。可溶性ＣＤ１６３を種々の濃度で含む濃度既知の標準試料について、抗可溶性ＣＤ１６３抗体又はその抗原結合性断片を用いて免疫測定を行ない、標識からのシグナルの量と標準試料中の可溶性ＣＤ１６３濃度との相関関係をプロットして検量線を作成しておき、可溶性ＣＤ１６３が未知の検体について同じ操作を行なって標識からのシグナル量を測定し、測定値をこの検量線に当てはめることにより、検体中の可溶性ＣＤ１６３を定量することができる。
体液中の可溶性ＣＤ１６３レベルが高いか否かは、例えば、妊娠が不成立だった胚の元の卵子を含んでいた他の体液中の、可溶性ＣＤ１６３レベルから定められた基準値を閾値とし、この閾値との比較により判断することができる。基準値は、例えば妊娠が不成立だった胚の元の卵子を含んでいた、多数の卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３濃度の中央値を基準とすることができる。そして、被検体となる採卵で得られた各卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３レベルの測定値が、この基準値よりも高い場合には、妊孕性が高いすなわち卵子の質が高く着床・妊娠に至る可能性が高い、と判断することができる。この閾値は、年代ごと（例えば、３０歳未満、３０歳代、４０歳代、５０歳代など）に設定してもよい。
本発明の方法において、妊孕性を判定される卵子又は胚は、測定に供される検体の採取日又は採取時に採取された卵子又は該卵子から受精後に発生した胚である。
また、本発明の方法において、妊孕性を判定することができる胚としては、分割胚、胚盤胞のどちらでもよいが、好ましくは胚盤胞である。
また、本発明の方法において、妊孕性を判定することができる胚としては、分割胚、胚盤胞のどちらでもよいが、好ましくは胚盤胞である。
本発明の妊孕性を判定する方法は、不妊治療方法に適用することができる。すなわち、本発明により、患者における不妊症を治療する方法又は体外受精による妊娠成立を高める方法であって、
（ｉ）患者から採取した体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する工程、
（ｉｉ）前記測定値が予め設定した基準値を超える場合に、同患者から前記検体と同日に採取された卵子又は該卵子から受精後に発生した胚を妊孕性が高いと同定する工程、及び
（ｉｉｉ）（ｉｉ）で同定された卵子から受精後に発生した胚又は同定された胚を、前記患者に移植する工程、を含む方法が提供される。
（ｉ）患者から採取した体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する工程、
（ｉｉ）前記測定値が予め設定した基準値を超える場合に、同患者から前記検体と同日に採取された卵子又は該卵子から受精後に発生した胚を妊孕性が高いと同定する工程、及び
（ｉｉｉ）（ｉｉ）で同定された卵子から受精後に発生した胚又は同定された胚を、前記患者に移植する工程、を含む方法が提供される。
また本発明の第三の態様は、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体を含有する、妊孕性を判定する方法に使用するための試薬に関する。
この判定試薬は、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体ないし抗原結合性断片のみからなっていてもよいし、これら抗体又はその抗原結合性断片の安定化等に有用な他の成分をさらに含んでいてもよい。また、これら抗体又はその抗原結合性断片は、標識物質ないしはビオチン等の特異結合分子が結合した形態や、プレート、粒子等の固相に固定化された形態であってもよい。
本発明の第四の態様はまた、上記した本発明の判定試薬を含む、妊孕性を判定するキットであってもよい。当該キットは免疫測定キットであり、免疫測定に必要な他の試薬類等も含んでいてよい。免疫測定に必要な他の試薬類は周知である。例えば、当該キットには、上記した判定試薬のほか、検体希釈液、洗浄液、及び、標識抗体に使用されている標識物質が酵素の場合には該酵素の基質液等がさらに含まれ得る。また、キットには通常、使用説明書が含まれる。
本態様の別の側面は、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性を判定するための試薬の製造における使用である。
また、別の側面は、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性の判定における使用である。
また別の側面は、妊孕性の判定のために使用される、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体である。
また、別の側面は、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性の判定における使用である。
また別の側面は、妊孕性の判定のために使用される、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体である。
以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
＜測定例１＞抗ＣＤ１６３抗体を用いたＥＬＩＳＡによる卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３測定
妊娠成立及び不成立が判明している卵子を含んでいた卵胞液検体は、適切な排卵誘発を行った患者より卵子を採取した時に、同時に採取できるものを使用した。卵胞液は回収した後、-80℃で保存した。採卵された卵子の培養記録と患者の妊娠可否を照合し、妊娠成立群と妊娠不成立群に群分けを行い、妊娠成立が認められた卵胞液１３検体、妊娠不成立だった卵胞液６検体を用いた。
妊娠成立及び不成立が判明している卵子を含んでいた卵胞液検体は、適切な排卵誘発を行った患者より卵子を採取した時に、同時に採取できるものを使用した。卵胞液は回収した後、-80℃で保存した。採卵された卵子の培養記録と患者の妊娠可否を照合し、妊娠成立群と妊娠不成立群に群分けを行い、妊娠成立が認められた卵胞液１３検体、妊娠不成立だった卵胞液６検体を用いた。
購入した抗ＣＤ１６３ポリクローナル抗体（R&D system社）を使用した。この抗体は配列番号１のＧｌｙ４６－Ｓｅｒ１０５０に相当する配列を免疫し作製したものであるため、可溶性ＣＤ１６３を測定することができる。この抗体を５０ ｎｇ/ウェルになるようカーボネート緩衝液（ｐＨ 9.8）で希釈し、ＭａｘｉＳｏｒｐ９６穴プレート（Nunc社製）に固相化した。４℃にて一晩反応後、ＴＢＳ－Ｔ（0.05％ Tween20を含むTris－Buffered Saline）により３回洗浄し、３％ウシ血清アルブミン（BSA; Bovine Serum Albumin）を含むＴＢＳ溶液を２００μＬ/ウェルにて各ウェルに添加し、室温で２時間放置した。
ＴＢＳ－Ｔで３回洗浄を行なった後、妊娠成立卵胞液群１３名又は妊娠不成立卵胞液群６検体を、１％ウシ血清アルブミンを含むＴＢＳ－Ｔ溶液にて４倍希釈し４０μＬ/ウェルにて添加し、室温で１時間放置した。
ＴＢＳ－Ｔにより３回洗浄を行なった後、購入した抗ＣＤ１６３モノクローナル抗体（R&D system社）を１％ウシ血清アルブミンを含むＴＢＳ－Ｔ溶液で１．０μｇ/ｍＬになるよう希釈し、４０μＬ/ウェルで添加し、室温で１時間放置した。ＴＢＳ－Ｔにより３回洗浄を行なった後、１％ウシ血清アルブミンを含むＴＢＳ－Ｔ溶液で２００００倍希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）標識抗マウスＩｇＧ（SIGMA社製）溶液を４０μＬ/ウェルにて添加し、室温で１時間放置した。ＴＢＳ－Ｔにより４回洗浄を行ない、ＴＭＢ Ｍｉｃｒｏｗｅｌｌ Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（ＫＰＬ社製）を添加後、１ ｍｏｌ/Ｌリン酸溶液で反応停止し、吸光測定プレートリーダーにて４５０ ｎｍの吸光値を測定した。なお、測定例１の測定系は、参考例１に示すように、可溶性ＣＤ１６３を測定しうるものである。
結果を図１に示す。妊娠不成立群と比較して、妊娠成立群では明らかに卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３が高値であった。妊娠不成立群の中央値が１１９．９ ｎｇ／ｍＬであったのに対し、妊娠成立群の中央値は２１３．５ ｎｇ／ｍＬであった。
表１及び図２は、卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３による妊娠成立の検出能をROC解析により評価した結果である。この結果より、独立変数である卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３濃度と二分変数である妊娠成立の有無というアウトカムとの関係が示唆された。また、ROC曲線下面積（AUC: area under the curve）は０．７３であった。
＜参考例１＞
検量線用標準試料としてＲ＆Ｄ社製，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＣＤ１６３ Ｐｒｏｔｅｉｎ（組換えＣＤ１６３）を使用した。この組換えＣＤ１６３は、配列番号１のＧｌｙ４６－Ｓｅｒ１０５０に相当する配列をマウスメラノーマで作製したものであり、可溶性ＣＤ１６３が有する配列でもある。この組換えＣＤ１６３を１％ウシ血清アルブミンを含むＴＢＳ－Ｔ溶液で調整し、測定例１の測定系で測定して、検量線を作成した。結果を図４に示す。
検量線用標準試料としてＲ＆Ｄ社製，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＣＤ１６３ Ｐｒｏｔｅｉｎ（組換えＣＤ１６３）を使用した。この組換えＣＤ１６３は、配列番号１のＧｌｙ４６－Ｓｅｒ１０５０に相当する配列をマウスメラノーマで作製したものであり、可溶性ＣＤ１６３が有する配列でもある。この組換えＣＤ１６３を１％ウシ血清アルブミンを含むＴＢＳ－Ｔ溶液で調整し、測定例１の測定系で測定して、検量線を作成した。結果を図４に示す。
＜測定例２＞抗ＣＤ１６３抗体を用いたウェスタンブロット法による可溶性ＣＤ１６３測定
妊娠成立及び不成立が判明している卵子を含んでいた卵胞液検体は、排卵誘発を行った患者より卵子を採取した時に、同時に採取できる卵胞液を使用した。卵胞液は回収した後、-80℃で保存した。採卵された卵子の培養記録と患者の妊娠可否を照合し、妊娠成立群と妊娠不成立群に群分けを行い、妊娠成立が認められた卵胞液２検体、妊娠不成立だった卵胞液２検体を用いた。
妊娠成立及び不成立が判明している卵子を含んでいた卵胞液検体は、排卵誘発を行った患者より卵子を採取した時に、同時に採取できる卵胞液を使用した。卵胞液は回収した後、-80℃で保存した。採卵された卵子の培養記録と患者の妊娠可否を照合し、妊娠成立群と妊娠不成立群に群分けを行い、妊娠成立が認められた卵胞液２検体、妊娠不成立だった卵胞液２検体を用いた。
対象の卵胞液をプロトコルに従い、High Select（登録商標） Top14 Abundant Protein Depletion Mini Spin Columns（Thermo社製）にて前処理を行った。得られた溶出液のタンパク質濃度を測定し、１０μｇ/Laneとなるように５－２０％グラジエントゲルにアプライし、ＳＤＳ／ＰＡＧＥを行った。泳動後、転写装置を用いてＰＶＤＦ膜にタンパク質を転写した。タンパク質が転写されたＰＶＤＦ膜を５％Ｓｋｉｍ Ｍｉｌｋを含むＴＢＳＴ ｂｕｆｆｅｒを用いて室温で１時間ブロッキングを行った。ブロッキング操作後、ＰＶＤＦ膜を５％Ｓｋｉｍ Ｍｉｌｋを含むＴＢＳＴ ｂｕｆｆｅｒ中に抗ＣＤ１６３ポリクローナル抗体（R＆D system社、測定例１で使用したものと同一）を１．０ μｇ/ｍＬとなるように調整し、室温で１時間反応を行った。反応後、ＴＢＳＴ ｂｕｆｆｅｒにて３回洗浄後、ＰＶＤＦ膜を５％Ｓｋｉｍ Ｍｉｌｋを含むＴＢＳＴ ｂｕｆｆｅｒで２０００倍に希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）標識抗ヤギＩｇＧ（ＳＩＧＭＡ社製）溶液となるように調整し、室温で１時間反応を行った。反応後、ＴＢＳＴ ｂｕｆｆｅｒにて３回洗浄後、ＥＣＬ Ｐｒｉｍｅ Ｗｅｓｔｅｒｎ Ｂｌｏｔｔｉｎｇ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＧＥヘルスケア社製）にて発光させ、ＣＣＤカメラで検出確認を行った。また検出したバンドのシグナル解析はＭｕｌｔｉ Ｇａｕｇｅ（富士フイルム）を用いて行った。
結果を図３に示す。妊娠成立群は妊娠不成立の卵胞液に比べて明らかに濃いバンドが検出できた。
シグナル解析結果を表２に示す。妊娠成立群は妊娠不成立の卵胞液に比べて明らかに高いシグナルを示した。
＜測定例３＞抗ＣＤ１６３抗体を用いたＥＬＩＳＡによる、採卵直前に採取した血清中の可溶性ＣＤ１６３測定
使用した患者血清は、適切な排卵誘発を行った患者より、卵子を採取する直前に採取したものを使用した。血清は回収した後、-80℃で保存した。採卵した卵子を用いて体外受精後、受精卵を移植し、その患者の妊娠可否を照合した。妊娠が成立した卵を採取できた群と採取できなかった群に群分けを行った。妊娠成立卵を採取できた患者の血清１６検体、採取できなかった患者の血清６検体を用いた。
検体中の可溶性ＣＤ１６３は、測定例１と同様にして測定した。
結果を図５に示す。妊娠成立卵を採取できなかった群と比較して、妊娠成立卵を採取できた群では明らかに血清中の可溶性ＣＤ１６３が高値であった。妊娠成立卵を採取できなかった群の中央値が２７８．０ｎｇ／ｍＬであったのに対し、妊娠成立群の中央値は３６０．２ ｎｇ／ｍＬであった。
表３及び図６は、血清中の可溶性ＣＤ１６３による妊娠成立の検出能をROC解析により評価した結果である。この結果より、独立変数である血清中の可溶性ＣＤ１６３濃度と二分変数である妊娠成立の有無というアウトカムとの関係が示唆された。また、ROC曲線下面積は０．７５であった。
使用した患者血清は、適切な排卵誘発を行った患者より、卵子を採取する直前に採取したものを使用した。血清は回収した後、-80℃で保存した。採卵した卵子を用いて体外受精後、受精卵を移植し、その患者の妊娠可否を照合した。妊娠が成立した卵を採取できた群と採取できなかった群に群分けを行った。妊娠成立卵を採取できた患者の血清１６検体、採取できなかった患者の血清６検体を用いた。
検体中の可溶性ＣＤ１６３は、測定例１と同様にして測定した。
結果を図５に示す。妊娠成立卵を採取できなかった群と比較して、妊娠成立卵を採取できた群では明らかに血清中の可溶性ＣＤ１６３が高値であった。妊娠成立卵を採取できなかった群の中央値が２７８．０ｎｇ／ｍＬであったのに対し、妊娠成立群の中央値は３６０．２ ｎｇ／ｍＬであった。
表３及び図６は、血清中の可溶性ＣＤ１６３による妊娠成立の検出能をROC解析により評価した結果である。この結果より、独立変数である血清中の可溶性ＣＤ１６３濃度と二分変数である妊娠成立の有無というアウトカムとの関係が示唆された。また、ROC曲線下面積は０．７５であった。
＜測定例４＞抗ＣＤ１６３抗体を用いたＥＬＩＳＡによる、採卵直前に採取した血清及び卵胞液中の可溶性ＣＤ１６３測定
妊娠成立及び不成立が判明している卵子を含んでいた卵胞液検体は、適切な排卵誘発を行った患者より卵子を採取した時に、同時に採取できるものを使用した。卵胞液は回収した後、-80℃で保存した。使用した患者血清は、適切な排卵誘発を行った患者より、卵子を採取する直前に採取したものを使用した。血清は回収した後、-80℃で保存した。採卵した卵子を用いて体外受精後、受精卵を移植した患者の妊娠可否を照合した。妊娠が成立した卵を採取できた群と採取できなかった群に群分けを行った。妊娠成立が認められた患者の血清１２検体、同患者の妊娠成立卵胞液１２検体、妊娠成立卵を採取できなかった患者の血清３検体、同患者の妊娠不成立卵胞液３検体を用いた。
妊娠成立及び不成立が判明している卵子を含んでいた卵胞液検体は、適切な排卵誘発を行った患者より卵子を採取した時に、同時に採取できるものを使用した。卵胞液は回収した後、-80℃で保存した。使用した患者血清は、適切な排卵誘発を行った患者より、卵子を採取する直前に採取したものを使用した。血清は回収した後、-80℃で保存した。採卵した卵子を用いて体外受精後、受精卵を移植した患者の妊娠可否を照合した。妊娠が成立した卵を採取できた群と採取できなかった群に群分けを行った。妊娠成立が認められた患者の血清１２検体、同患者の妊娠成立卵胞液１２検体、妊娠成立卵を採取できなかった患者の血清３検体、同患者の妊娠不成立卵胞液３検体を用いた。
検体中の可溶性ＣＤ１６３は、測定例１と同様にして測定した。
結果を図７に示す。妊娠成立が認められた卵を採取できた患者の血清及び同患者の妊娠成立卵胞液は、妊娠成立卵を採取できなかった群と比較して、明らかに卵胞液及び血清中の可溶性ＣＤ１６３が高値であった。妊娠成立卵を採取できなかった群の血清中央値が２４０．５ｎｇ／ｍＬ、卵胞液中央値が１１２．０ｎｇ／ｍＬであったのに対し、妊娠成立群の血清中央値は３６０．２ ｎｇ／ｍＬ、卵胞液中央値が１９８．４ｎｇ／ｍＬであった。
結果を図７に示す。妊娠成立が認められた卵を採取できた患者の血清及び同患者の妊娠成立卵胞液は、妊娠成立卵を採取できなかった群と比較して、明らかに卵胞液及び血清中の可溶性ＣＤ１６３が高値であった。妊娠成立卵を採取できなかった群の血清中央値が２４０．５ｎｇ／ｍＬ、卵胞液中央値が１１２．０ｎｇ／ｍＬであったのに対し、妊娠成立群の血清中央値は３６０．２ ｎｇ／ｍＬ、卵胞液中央値が１９８．４ｎｇ／ｍＬであった。
Claims (11)
- 可溶性ＣＤ１６３からなる、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカー。
- 可溶性ＣＤ１６３の、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定するためのバイオマーカーとしての使用。
- ヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定し、その測定値から卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性を判定する方法。
- 可溶性ＣＤ１６３濃度が基準値よりも高い場合には、卵子又は卵子から受精後に発生する胚の妊孕性が高いと判定し、当該基準値は、ヒト卵子から受精後に発生する胚を移植して妊娠が不成立だった他のヒト体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度である、請求項３に記載の方法。
- 前記体液が、卵胞液、全血、血清、血漿又は尿である、請求項３又は４に記載の方法。
- 可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する方法が免疫学的測定法である、請求項３～５のいずれか１項に記載の方法。
- 可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体を含有することを特徴とする、請求項６に記載の方法に使用するための判定試薬又は判定キット。
- 可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性を判定するための試薬又は判定キットの製造における使用。
- 可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体の、妊孕性の判定における使用。
- 妊孕性の判定のために使用される、可溶性ＣＤ１６３を特異的に認識する抗体。
- 患者における不妊症を治療する方法又は体外受精による妊娠成立を高める方法であって、
（ｉ）患者から採取した体液中の可溶性ＣＤ１６３濃度を測定する工程、
（ｉｉ）前記測定値が予め設定した基準値を超える場合に、同患者から前記検体と同日に採取された卵子又は該卵子から受精後に発生した胚を妊孕性が高いと同定する工程、及び
（ｉｉｉ）（ｉｉ）で同定された卵子から受精後に発生した胚又は同定された胚を、前記患者に移植する工程、を含む方法。
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