WO2021214360A1 - Uso de ésteres de (z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas - Google Patents

Uso de ésteres de (z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas Download PDF

Info

Publication number
WO2021214360A1
WO2021214360A1 PCT/ES2021/070259 ES2021070259W WO2021214360A1 WO 2021214360 A1 WO2021214360 A1 WO 2021214360A1 ES 2021070259 W ES2021070259 W ES 2021070259W WO 2021214360 A1 WO2021214360 A1 WO 2021214360A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
spp
plants
hymenoptera
formula
compound
Prior art date
Application number
PCT/ES2021/070259
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Meritxel PÉREZ HEDO
Alberto URBANEJA GARCÍA
Miquel ALONSO VALIENTE
Vicente Navarro Llopis
Sandra VACAS GONZÁLEZ
José Luis RAMBLA NEBOT
Antonio Granell Richart
Original Assignee
Universitat Politècnica De València
Instituto Valenciano De Investigaciones Agrarias (Ivia)
Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Universitat Politècnica De València, Instituto Valenciano De Investigaciones Agrarias (Ivia), Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) filed Critical Universitat Politècnica De València
Priority to MX2022013232A priority Critical patent/MX2022013232A/es
Priority to EP21792498.4A priority patent/EP4140302A4/en
Priority to US17/920,656 priority patent/US20230240290A1/en
Priority to CA3178669A priority patent/CA3178669A1/en
Priority to IL297478A priority patent/IL297478A/en
Priority to BR112022021347A priority patent/BR112022021347A2/pt
Publication of WO2021214360A1 publication Critical patent/WO2021214360A1/es

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests
    • A01N25/18—Vapour or smoke emitting compositions with delayed or sustained release
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N25/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests
    • A01N25/02—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests containing liquids as carriers, diluents or solvents
    • A01N25/04—Dispersions, emulsions, suspoemulsions, suspension concentrates or gels
    • A01N25/06—Aerosols
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N37/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing organic compounds containing a carbon atom having three bonds to hetero atoms with at the most two bonds to halogen, e.g. carboxylic acids
    • A01N37/06—Unsaturated carboxylic acids or thio analogues thereof; Derivatives thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P15/00—Biocides for specific purposes not provided for in groups A01P1/00 - A01P13/00
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P19/00—Pest attractants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P21/00—Plant growth regulators
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C69/00—Esters of carboxylic acids; Esters of carbonic or haloformic acids
    • C07C69/003—Esters of saturated alcohols having the esterified hydroxy group bound to an acyclic carbon atom

Definitions

  • the present invention relates to the use of (Z) -3-bexenyl esters (acetate, propanoate or butanoate), or of a composition comprising said compounds, to protect plants, in particular agricultural crops, against pests, by means of the stimulation of the defense mechanisms that the plants themselves have.
  • the invention also relates to a method for protecting plants against pests by applying said esters to plants.
  • the present invention falls within the technical field of plant pest control.
  • the first line of crop protection should be the implementation of preventive control methods such as cultural methods, the use of resistant / tolerant plants, the application of strict quarantine regulations, and the promotion of natural pest control. It is in this foregoing context that the use of the present invention would be framed.
  • biological pest control should be the first option to use, if necessary in combination with other control tactics. GIF (where pesticides would be last).
  • Tomato plants can have different degrees of attraction for pests and natural enemies depending on whether the phytophagy is produced, for example, by N. tenuis, Macrolophus pygmaeus (Rambur) or Dicyphus maroccanus Wagner (Hemiptera: Miridae).
  • N. tenuis Macrolophus pygmaeus
  • Dicyphus maroccanus Wagner Hemiptera: Miridae
  • Iaevigatus triggers the release of a mixture of volatiles (5 terpenes, 2 GLVs, methyl salicylate and one to be identified) and the activation of the metabolic pathways of jasmonic acid and salicylic acid.
  • the phytophagy of the myrids N. tenuis and M. pygmaeus in pepper also caused repellency for B. tabaci and F. occidentalis and attraction for E, formosa and triggered volatiles of a nature similar to those triggered by O. / aevigatus,
  • (Z) -3-hexenyl esters are elicitors of the induction of direct and indirect defenses in crops, such as tomato cultivation. Specifically, it has been possible to activate plants defensively simply by exposing them to these synthetic volatiles.
  • the exposure of the esters of (Z) -3-hexenyl have been described as repellants of phytophagous plagues the whitefly, Bemisia tabaci and attractant of natural enemies such as the whitefly parasitoid, Encarsia formosa (Pérez-Hedo, M. et ai. Biocontroi, 63: 203-213 (2016)). Attraction to parasitoids is an indirect effect that can benefit the biological control of a pest.
  • the present invention is a sustainable and biorational pest control tool based on communication between plants for crop protection.
  • the plants use the emission of these volatiles to communicate certain aggressions to their “neighbors”.
  • the plants receiving these signals enter a state of alert in which they prepare for a future attack. This is known as priming.
  • the plant is defensively activated through the hormonal pathways of jasmonic acid and salicylic acid, both phytohormones involved in defense mechanisms in the plant.
  • the present invention refers to the use of at least one compound of formula I defined above, or of a composition comprising it, for the protection of plants against pests by stimulating the natural defense mechanisms of these plants.
  • the compounds used in the present invention are (Z) -3-hexenyl acetate, propanoate or butanoate.
  • the invention relates to the use of (Z) -3-hexenyl propanoate, or of a composition comprising it, for the protection of plants against pests by stimulating the natural defense mechanisms of said plants. .
  • the defense mechanisms of plants cause the repellency of at least one pest selected from the list comprising: Bemisia tabaci (Gennadius) and Triaieurodes vaporariorum (Westwood), Aieurothrixus floccosus (Maskell), Dialeurodes citri (Ashmead) and Paraleyrodes minei laccarino (Hemiptera: Aieyroididae), Frankliniella ocddentalis Pergande thrips, Pezothr ⁇ ps kellyanus Bagnall, Chaetanaphothrips orchidii (Moulton) and Thrips tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thripidae), eastern red spiders, Tetraisutechus urtchus (Kleeutinchus Eutetranychus banksi (McGregor), T.
  • Bemisia tabaci Genenadius
  • the pest is selected from the list comprising: the whitefly Bemisia tabad (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae), the trips Frankliniella occidentalis Pergande (Thysanoptera: Thripidae), the red spider Tetranychus urticae Koch (Acari : Tetranychidae), the lepidopteran Tula absolute (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae) and the psilid Diaphorina citri.
  • the whitefly Bemisia tabad (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae)
  • the trips Frankliniella occidentalis Pergande Thysanoptera: Thripidae
  • the red spider Tetranychus urticae Koch Acari : Tetranychidae
  • the lepidopteran Tula absolute Meyrick
  • Lepidoptera Gelechiidae
  • the defense mechanisms of plants cause the attraction of at least one parasitoid selected from the list comprising: species of the genera Encarsia spp., Aphytis spp. Limes spp., Eretmocerus spp., Aphelinus spp., (Hymenoptera: Aphelinidae), Aphidius spp. Lysiphlebus spp. (Hymenoptera: Braconidae) Metaphycus spp., Anagyrus spp. (Hymenoptera: Encyrtidae), Tamarixia spp. Citrostichus spp., Cirrospilus spp., Diglyphus spp.
  • Hymenoptera Eulophidae
  • Trissolcus spp. Telenomus spp.
  • Telenomus spp. Hymenoptera: Scelionidae
  • Trichogramma spp Hymenoptera. Trichogrammatidae
  • the aforementioned compound has been shown to repel pests of horticultural crops of different orders of Insecta (Hemiptera, Thysanoptera and Lepidoptera), which was not to be expected precisely because they are very phylogenetically separated species. In the case of citrus fruits, it has been observed how activation with this same volatile reduces the spawning of the psyid Diaphor ⁇ na citri.
  • the protected plants are horticultural plants or citrus plants.
  • Horticultural plants are preferably selected from the list comprising: tomatoes, peppers, aubergines, onions, leeks, squash, zucchini, cucumbers, chard, lettuce and legumes.
  • the horticultural plants are tomato (Solanum iycopersicum) or bell pepper (Capsicum annuum) plants.
  • Citrus fruits are preferably selected from the list comprising lemons, limes, oranges, grapefruits and mandarins.
  • the plant is a tomato plant and the pest is the whitefly B, tabaci, the trips Frankliniella occidentalis or the lepidopteran Juta Absolute.
  • the plant is a citrus fruit and the pest is the psilid Diaphorina citri.
  • the use comprises the application of the compounds according to Formula I by means of diffusers, which makes it possible to efficiently use said compounds via exposure under field conditions as an inducer / elicitor of plant defenses.
  • This system of emission through diffusers achieves that, in the atmosphere that surrounds the plants to be protected, a sustained and sufficient concentration of the inducer is obtained, which would not be obtained with a specific application of the same.
  • “diffuser” also called “emitter” is understood to be a device or vehicle (formulation) that distributes at least one of the compounds of the invention (Formula i) via exposure thereof at a controlled rate. to plants under field conditions.
  • the devices are containers for the compounds according to Formula I that allow said substances to be released into the atmosphere in a controlled manner through a membrane, a valve or even through the wall of the container itself.
  • Vehicles are formulations of liquid, gelled or pasty substances that contain the compounds according to Formula I and that are applied in the form of drops or granules so that the volatiles are emitted as the vehicle degrades or dehydrates.
  • formulations or vehicles can be applied on some part of the plant, on the substrate, on structures in the crop or anywhere from which it can be emitted close to the plants.
  • substances such as paraffins, silicones, pectins, heavy oils, polysaccharides, proteins, etc.
  • the following can be named by way of example: agar-agar, alginine, carrageenan, collagen, cornstarch, gelatin, guar gum, locust bean gum, pectin, xanthan gum, mineral oil, silicone oil, paraffins, definas or mineral or vegetable oils.
  • Diffusers are preferably devices of two types:
  • passive emitters that consist of a container of the compounds according to Formula I configured to allow the diffusion of said substances, so the container must be permeable to the compounds of Formula I, either through their own enclosure of a polymeric material or through a membrane placed in part of its enclosure to regulate the emission;
  • the compounds according to Formula i are applied by means of diffusers consisting of low density polyethylene (LDPE) vials.
  • LDPE low density polyethylene
  • the present invention refers to a method for the protection of plants against pests by stimulating the natural defense mechanisms of said plants, said method is characterized in that it comprises contacting at least one compound of Formula i , or a composition comprising it, with plants.
  • the contact can be direct, through the direct application of the compound to the plant or indirect, through the exposure of the plant to an environment that contains said compound.
  • the pest is selected from the list comprising: Bemisia tabaci (Gennadius) and Tnaleurodes vaporariorum (Westwood), Aieurothr ⁇ xus f ⁇ occosus (Maskell), Diaieurodes citri (Ashmead) and Parateyrodes minei laccarino (Hemiptera: Aleyroididae) the trips Frankliniella occidenialis Pergande, Pezothr ⁇ ps kellyanus Bagnall, Chaetanaphothrips orchidii (Moulton) and Thrips tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thripidae), the red spiders Tetranychus urticae, Eutetranychus orientalis (Klein), Eutetranyorchus, Panregony 7 ) Koch and Tetranychus evansi Baker & Pritchard (Acari: Tetranychida
  • the pest is selected from the list comprising: the whitefly Bemisia ⁇ abaci (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae), the thrips Frankiiniella occidentalis Pergande (Thysanoptera: Thripidae), the red spider Tetranychus ur ⁇ icae Koch (Acari : Tetranychidae), the lepidoptera Juta absolu (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae) and the psyllid Diaphor ⁇ na citri.
  • plant protection occurs by attracting parasitoids selected from the list comprising: species of the genera Encarsia spp, Aphytis spp. Limes spp ,, Eretmocerus spp., Aphelinus spp., (Hymenoptera: Aphelinidae), Aphidius spp. Lysiphlebus spp. (Hymenoptera: Braconidae) Metaphycus spp., Anagyrus spp. (Hymenoptera: Encyrtidae), Tamarixia spp. Citrostichus spp., Cirrospilus spp., Diglyphus spp.
  • Tr ⁇ ssolcus spp. Telenomus spp.
  • Tr ⁇ chogramma spp. Tr ⁇ chogramma spp.
  • the protected plants are horticultural plants or citrus plants.
  • Horticultural plants are preferably selected from the list comprising: tomatoes, peppers, aubergines, onions, leeks, squash, zucchini, cucumbers, chard, lettuce and legumes.
  • the horticultural plants are tomato (Solanum lycopersicum) or bell pepper (Capsicum annuum) plants.
  • Citrus fruits are preferably selected from the list comprising lemons, limes, oranges, grapefruits and mandarins.
  • the plant is a tomato plant and the pest is the whitefly B. tabaci, the thrips Frankiiniella occidentalis or the lepidopteran Juta absolu.
  • the plant is a citrus fruit and the pest is the psyllid Diaphor ⁇ na citr ⁇ .
  • the compounds according to Formula I, or of a composition comprising them are applied through the use of diffusers.
  • Diffusers and preferred embodiments thereof according to the present invention have been defined in the first aspect of the invention.
  • the compounds according to Formula i are applied by means of consistent diffusers in low-density polyethylene vials.
  • the application is carried out at the rate of one diffuser for every 20 m 2 of planted area.
  • the diffuser distributes the compound to the environment that surrounds the plants and they detect it.
  • the compounds according to Formula I are applied to the culture environment at a dose between 25 mg / ha / day and 25 g / ha / day, and more preferably between 200 mg / ha / day and 10 g / ha / day.
  • the present invention is a new pest management method not used to date in any crop.
  • Fig, 1 Franscriptional response of the defensive genes PR1 (a marker gene for the salicylic acid signaling pathway, SA) (Fig. 1A) and SI-PI-I and Sl-PI-ll (two markers for inhibitors of plant proteinases) (fig, 1B and 1C respectively) in tomato plants exposed to (Z) -3-hexenyl acetate (HA), (Z) -3-hexenyl butanoate (HB) and (Z) propanoate -3-bexenyl (HP) and the control.
  • Fig. 2 Transcriptional response of the PIN2 gene (a marker gene for the jasmonic acid (JA) signaling pathway in tomato plants exposed under semi-field conditions to (Z) -3-hexenyl propanoate [(Z) -3-HP] with different volatile emission levels: 5 mg / day / diffuser in the low-density polyethylene (LD) emitter and 0.01 mg / day / diffuser in the high-density polyethylene (HD) emitter.
  • the control treatment consists of in plants not exposed to the volatile Significant differences based on the ANOVA test are marked with different letters (P ⁇ 0.05).
  • Fig. 3 Transcriptional response of the defense genes PR1 (a marker gene for the SA signaling pathway) (Fig. 3A) and PIN2 (a marker gene for the jasmonic acid signaling pathway) (Fig. 3B) in plants tomatoes exposed under field conditions to (Z) -3-hexeni! or [(Z) -3-HP] propanoate released in a polymeric (LD) dispenser 4 ml low-density polyethylene vial (KarieM) one day before, 4 and 8 weeks after the placement of the diffuser. The significant differences between treatments for each of the dates are marked with an asterisk (f-test; P ⁇ 0.05). Number of Nesid ⁇ coris tenuis per plant (mean ⁇ standard error) (fig.
  • Fig. 3C and number of infested leaflets per plant (mean ⁇ standard error) (fig. 3D) in the commercial greenhouse (GLMM, P ⁇ 0.05).
  • Fig. 5 Number of receptive shoots (mean ⁇ SE) and clutch (mean ⁇ SE) of Diaphorina streak the Murraya panicuiata seedlings used as sentinel plants with and without a diffuser loaded with HP. Different letters on the bars show significant differences (t-test P ⁇ 0.05).
  • Example 1 Defensive activation tests in tomato via exposure under laboratory conditions
  • the nucleotides of the EF1 housekeeping gene were forward 5'-GATTGGT GGT ATT GGAACT GT C-3 '(SEQ ID NO: 7) and reverse: 50-AGCTT CGT GGTGCATCT C-3Q (SEQ ID NO: 8).
  • (Z) -3-hexenyl propanoate was selected from among the three volatiles as a model for (Z) -3-hexenyl asters.
  • urticae were obtained from a colony established in the IVIA in 2011 whose original origin was clementines located in La Plana (Castelló, Spain). The mites were kept on tomato plants in a climatic chamber under the same conditions described above.
  • Females of T. absolut were obtained from colonies on tomato kept in a greenhouse at the IVIA at 25 ⁇ 4 ° C, 60 ⁇ 15% RH and under natural photoperiod. Newly emerged adult females less than 5 days old were used in all trials.
  • Both side arms were connected through high-density polyethylene (HDPE) tubes to two identical glass jars (5 liter volume), each of which was connected to an air pump that produced a unidirectional bumidified air flow at 150 ml / min (Pérez-Hedo et al. Journal or Pest Science 3: 543 -554 (2015)).
  • HDPE high-density polyethylene
  • a female was introduced individually into the inlet tube of the olfactometer and observed until she had walked at least 3 cm on one of the arms of choice or until 15 minutes had elapsed. A total of 40 valid replicates were recorded for each species for each pair of odor sources. Each individual was tested only once. Females who did not choose a lateral arm within 15 minutes were recorded as "no response" and were excluded from data analysis. After recording five responses, tube Y was rinsed with soapy water and then cleaned with acetone and allowed to dry for 5 minutes. The odor sources were subsequently switched between the left and right side arms to minimize any spatial effect on the choice. The two types of plants (intact and induced) were used only once to assess the response of 10 females and then replaced with new plants. The Y-tube experiment was performed under the following environmental conditions: 23 ⁇ 2 ° C and 60 ⁇ 10% RH.
  • the cages were evenly distributed at a distance of one and a half meters between them. Each cage represented a replica. Two portions of impregnated filter paper were placed on the bottom of each cage as explained above for both the (Z) -3-hexenyl propanoate treatment and the control. In the treatment where volatiles were exposed throughout the experiment, the impregnated filter paper portions were replaced every other day.
  • T. absolute To evaluate the effect of exposure to both volatiles on T, absolute, two consecutive experiments were carried out. In the first, the effect on the laying of T. absolute was studied. The selected eggs laid in the first experiment were used later in the second to study the mortality of the immature T. absolute developed in plants exposed to (Z) -3-hexenyl propanoate, The same three treatments described above for T. urticae they were also tested for T. absolute. The laying of T. absolute was evaluated in 8 tomato plants (cv. Moneymaker) per treatment.
  • Each of the plants was isolated inside a plastic cage (60 x 60 x 60 cm) (BugDorm-2) and kept in a climatic chamber at 25 ⁇ 2 ° C, 65 ⁇ 5% RH, 14:10 ( L: D) h photoperiod following the same test distribution described for T. urticae.
  • a plastic cage 60 x 60 x 60 cm
  • BugDorm-2 a plastic cage
  • climatic chamber 25 ⁇ 2 ° C, 65 ⁇ 5% RH, 14:10 ( L: D)
  • T. absolute To study the mortality of T. absolute in the plants exposed to the 3 treatments described above, 6 eggs of T. absolute per plant were distributed equally in all the leaves with the help of a fine brush. The eggs used in each treatment came from the corresponding treatment of the first experiment.
  • the mortality of T. absolute was evaluated in 8 tomato plants (cv. Moneymaker) per treatment. Each of the plants was isolated inside a plastic cage (60 x 60 x 60 cm) (BugDorm-2 insect tents) kept in a climatic chamber at 25 ⁇ 2 ° C, 65 ⁇ 5% RH, 14:10 (L: D) h photoperiod following the same treatment distribution described above. The plants were left intact until the adults of T, absolute emerged. As soon as the adults began to emerge, they were counted and removed from the cages daily.
  • the recorded weights (y) are related to the aging time (x) by means of a multiple regression analysis.
  • the emitters were kept inside the corresponding booths throughout the test and samples were taken from the plants of each booth 4 weeks after the installation of the treatment. From these samples, the transcriptional response of the defensive PIN2 gene (a marker gene for the jasmonic acid signaling pathway, JA) was studied. Five repetitions per treatment were carried out. For the extraction and quantification of gene expression, the methodology described by Pérez-Hedo et al. Journal of Pest Science 3: 543-554 (2015).
  • sequences of the primer used for the quantification of the PIN2 gene were direct (forward): 5'- GA AA AT CGTTAATTT AT CCC AC-3 '(SEG ID NO: 9) and inverse (reverse): 5'- ACATACAAACTTTCCATCTTTA-3' (SEQ ID NO: 10), while the EF1 constitutive gene sequences were forward: 5'-GATTGGTGGTATTGGAACTGTC-3 '(SEQ ID NO: 7) and reverse: 5G-AGCTT CGTGGTGCATCT C-30 (SEQ ID NO: 8) .
  • Example 3 Defensive activation tests in tomato via exposure under field conditions
  • Example 4 Defensive activation tests in citrus fruits via exposure under laboratory conditions
  • Volatile (Z) -3-hexenyl propanoate was available from Sigma-Aidrich (St. Louis, MO, USA). The volatile was exposed by using a 2 x 2 cm portion of filter paper on which 10 ⁇ l of a solution containing the volatile corresponding to a concentration of 1: 10,000 [(Z) -3- propanoate was impregnated. bexenyl: methanol] as an emitting source of the corresponding volatile (Pérez-Hedo, M. et al. Biocontrol, 63: 203-213 (2016)).
  • the nucleotides of the housekeeping gene gene glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase were forward: 5'-GGAAGGTCAAGATCGGAATCAA-3 '(SEQ ID NO: 17) and reverse: 5'-CGTCCCTCTGCAAGATGACTCT-3 : (SEQ ID NO: 18).
  • citriy females of the T. radiata parasitoid to Carrizo cltrange plants that were previously exposed for 24 ha (Z) -3-HP in relation to intact plants, a Y-shaped olfactometer of the same form that described in Example 1 and the plants were exposed to both volatiles as described above with the use of the filter paper portions.
  • a total of 40 valid replicates were recorded for each species for each pair of odor sources. Each individual was tested only once.
  • Females who did not choose a lateral arm within 15 minutes were recorded as "no response" and were excluded from data analysis. After recording five responses, tube Y was rinsed with soapy water and then cleaned with acetone and allowed to dry for 5 minutes.
  • the odor sources were subsequently switched between the left and right side arms to minimize any spatial effect on the choice.
  • the two types of plants (intact and induced) were used only once to assess the response of 10 females and then replaced with new plants.
  • the Y-tube experiment was performed under the following environmental conditions: 25 ⁇ 1 ° C and 60 ⁇ 10% RH.
  • the adults of D. citri were obtained from a colony established at SWFREC (University of Florida) whose original provenance was citrus fruits located in their experimental plots. The parasitodes were collected in these experimental fields. Newly emerged adult females less than 5 days old were used in all trials.
  • Each seedling was distributed in the field following a random block design (using row of trees as a block) and in each block a seedling with a diffuser and another without was placed. The seedlings were located at a minimum distance of 50 meters between them to avoid any edge effect.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Abstract

La presente invención se refiere al uso de los ésteres acetato, propionato y butirato de (Z)-3-hexenüo, o de una composición que comprende dichos compuestos, para proteger plantas, en particular de cultivos agrícolas, frente a plagas, mediante la estimulación de los mecanismos de defensa que tienen las propias plantas. La invención también se refiere a un método para proteger plantas frente a plagas poniendo los mencionados ésteres en contacto con las plantas.

Description

DESCRIPCIÓN
Uso de ésteres de (Z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas
La presente invención se refiere al uso de ios ésteres (acetato, propanoato o butanoato) de (Z)-3-bexenilo, o de una composición que comprende dichos compuestos, para proteger plantas, en particular de cultivos agrícolas, frente a plagas, mediante la estimulación de los mecanismos de defensa que tienen las propias plantas. La invención también se refiere a un método para proteger plantas frente a plagas aplicando ios mencionados ésteres a las plantas.
Por tanto, la presente invención se encuadra en el sector técnico del control de plagas en plantas.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
Garantizar la seguridad alimentaria es uno de los desafíos más acuciantes con los que se encuentra la población mundial en la actualidad. La producción agrícola mundial se enfrenta con el reto de cubrir las demandas crecientes de alimentos para una población que de acuerdo con la FAO alcanzará 9.000 millones de habitantes en 2050. Esta necesidad deberá poder abordarse a pesar de las adversidades que pueden suponer ios cambios en los patrones de consumo, los impactos del cambio climático y la creciente escasez de agua y tierra cultivable. Además, a estas adversidades hay que añadir las ya importantes pérdidas de rendimiento en los cultivos que provocan los distintos estreses tanto abióticos como bióticos.
En el caso particular de plagas, patógenos y malas hierbas, las pérdidas en los cultivos varían con cada cultivo concreto, pero en general, se admite que las plagas y enfermedades participan de forma parecida, con un 15 % cada grupo, mientras que las malas hierbas lo hacen con otro 13 %. A estas cantidades habría que sumar entre un 9 y un 20 % de pérdidas adicionales en postcosecba.
Desgraciadamente estas cifras se acentuarán en los próximos años como consecuencia de las nuevas condiciones derivadas del cambio climático, tales como la introducción de nuevas plagas o enfermedades exóticas en nuestra agricultura. A modo de ejemplo, en la Comunidad Valencia ei número de plagas agrícolas exóticas introducidas durante los últimos 20 años liega a casi una por año. En algunas ocasiones son introducciones que pueden pasar desapercibidas, pero desafortunadamente algunas de ellas irrumpen con fuerza en nuestros cultivos ai no venir acompañadas de sus enemigos naturales, convirtiéndose rápidamente en plagas clave. Un caso conocido por la repercusión mediática que supuso, y que puede servir de ejemplo paradigmático de plaga exótica en dicha Comunidad, es la polilla del tomate, Tula absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: Gelichiidae), que se detectó a finales del 2006 en la provincia de Castellón y que rápidamente pasó a convertirse en una plaga clave de este cultivo en todo el mundo.
Desde el nacimiento de la agricultura como tal hace unos 10.000 años hasta hace tan sólo 65 años, la agricultura fue una actividad holística, basada en un enfoque sistémico. Las sociedades agrícolas diseñaron programas de protección de cultivos basados principalmente en la prevención de plagas. Esta forma verdadera de gestión agroecológica incluía, entre otras, rotación de cultivos, planificación de distintas combinaciones de cultivos, uso de cultivares resistentes o tolerantes, elección de períodos correctos de siembra y cosecha, control biológico, mecánico y físico, etc.
Sin embargo, a medida que la genética vegetal, los fertilizantes sintéticos y los plaguicidas se fueron desarrollando, la investigación agrícola cambió de un enfoque holística a una ciencia extremadamente reduccionista donde las plagas eran combatidas principalmente a base de calendario de tratamientos o tratamientos curativos. El uso cada vez mayor de plaguicidas sintéticos dio lugar a una grave pérdida de biodíversidad, y ésta a su vez a una reducción del funcionamiento de las infraestructuras ecológicas que permiten la regulación de plagas, la polinización y la purificación de agua. Además, ha supuesto también un aporte exorbitante de recursos y consecuencias financieras de miles de millones de euros.
Llegados a este punto, en ios últimos años y desde diversos gobiernos y organizaciones del todo el mundo, se ha hecho un llamamiento para volver a un enfoque de protección de cultivos más cercano a la ecología. En toda la Unión Europea se ha establecido un marco de actuación comunitaria para conseguir un uso sostenible de los plaguicidas (Directiva 2009/128/CE) que ha dado lugar a la obligatoriedad que toda producción hortofrutícoia producida en la unión europea sea bajo ios preceptos de Gestión Integrada de Plagas (GIF) (o en su caso agricultura ecológica). A pesar de todos estos esfuerzos, en la actualidad tanto en GIF como en agricultura ecológica, desgraciadamente en la mayor parte de los casos el control de plagas reside todavía en los tratamientos curativos con plaguicidas, ya que en ambos tipos de agricultura existen productos autorizados para ello. En el contexto en que se presenta esta invención se entiende que, independientemente del tipo de manejo de plagas que se esté utilizando (GIP o ecológica), la primera línea de protección de los cultivos debería ser la implementación de métodos preventivos de control como son los métodos culturales, utilización de plantas resistentes/tolerantes, la aplicación de estrictos reglamentos de cuarentena, y el fomento del control natural de las plagas. En este contexto anterior es donde se encuadraría la utilización de la presente invención. Cuando a pesar de estos esfuerzos las plagas excedan o se prevea que vayan a exceder ios niveles aceptables de población (umbral económico de daño), el control biológico de piagas debería ser la primera opción a utilizar, si es necesario en combinación con otras tácticas de GIF (donde en último lugar estarían los plaguicidas).
Este concepto, que últimamente se ha acuñado como "agricultura consciente", respetaría el medio ambiente y la disponibilidad de recursos para las generaciones futuras.
En los últimos años el uso de enemigos naturales omnívoros en cultivos hortícolas, y en particular los depredadores zoofitófagos que pueden alimentarse tanto de la planta como de presas, ha dado lugar a alguno de los éxitos más rotundos del control biológico en nuestro país. Así, por ejemplo, en pimiento la liberación y conservación del ácaro depredador Amblyseius swirskii (Athias-Henriot) (Acari: Phytoseiidae) junto con el antocórido Orius laevigatus (Fieber) (Hemiptera: Anthocoridae) permite manejar con éxito las poblaciones de las plagas clave de este cultivo: la mosca blanca Bemisia iabaci Gennadius y el trips Frankliniella occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae). De manera similar en tomate, el mírido cosmopolita Nesidiocoris tenuis (Reuter) (Hemiptera: Miridae) permite el control eficaz de B. iabaci y la polilla del tomate T. absoluta.
Recientemente, se ha demostrado cómo algunos de estos depredadores zoofitófagos debido a su fitofagia, activan los mismos mecanismos de defensa que provocan los artrópodos herbívoros obligados. Es ampliamente conocido, que las plantas responden a ataques de fitófagos (defensas inducidas) a través de varias vías de respuesta. Estas defensas pueden entre otros fenómenos, provocar la producción de metabolitos secundarios y proteínas que tienen efectos tóxicos, repelentes y/o antialimenticios sobre ios herbívoros (defensas directas). También desencadenar la producción y liberación de volátiles (Volátiles de las plantas inducidos por los herbívoros: HIPVs, del inglés Herbivore-induced p!ant volátiles ) por parte de la planta que pueden modificar el comportamiento tanto de las plagas fitófagas como de sus enemigos naturales (defensas indirectas). Trabajos anteriores citados más adelante han demostrado que varias especies de depredadores zoofitófagos que vienen utilizándose en estrategias biológicas de control de plagas son capaces de inducir defensas en varios cultivos hortícolas como son el pimiento y el tomate. Estas defensas inducidles son sin duda un valor añadido que poseen estos agentes de control biológico y gestionadas adecuadamente, podrían ofrecer una excelente herramienta para aumentar la resliienela de ios cultivos.
En una primera etapa se pudo verificar cómo la fitofagia del depredador N. tenuis activó la ruta metabólica del ácido abscísico y ácido jasmónico (JA) en plantas de tomate, lo que las hizo menos atractivas para la mosca blanca B. t abad , y más atractivas para el parasitoide de mosca blanca Encarsia formosa (Gahan) (Hymenoptera: Apheiinldae). Además, se observó cómo ios volátiles emitidos por plantas picadas por N. tenuis podían inducir defensas en plantas vecinas intactas al activarles la ruta del JA, lo que también resultaba en la atracción de parasitoides por estas plantas intactas que no habían sido expuestas a N. tenuis. Posteriormente se confirmó que todos ios estados de desarrollo de N. tenuis (desde ninfas jóvenes hasta adultos) son capaces de desencadenar estas respuestas defensivas. Sin embargo, no todos los depredadores zoofitofagos tienen la misma capacidad de inducir dichas respuestas en plantas de tomate. Las plantas de tomate pueden tener distintos grados de atracción para plagas y enemigos naturales dependiendo de si la fitofagia es producida, por ejemplo, por N. tenuis, Macrolophus pygmaeus (Rambur) o Dicyphus maroccanus Wagner (Hemiptera: Miridae). Así, mientras que las plantas dañadas por N. tenuis rechazan B. tabaci y T. absoluta, ia fitofagia de M. pygmaeus y D. maroccanus no tiene efecto sobre la repelencia en B. tabaci y atrae a 7. absoluta. Contrariamente la actividad de los tres míridos resulta en ia atracción de E. formosa.
Recientemente se han identificado los volátiles (HIPVs) implicados en las respuestas defensivas de las plantas de tomate inducidas por M. pygmaeus y N. tenuis: seis volátiles de hojas verdes (GLVs), el metil salicilato y el acetato de octilo ((Pérez-Hedo, M. et al. Biocontroi, 83: 203-213 (2018)). En general, las plantas expuestas a N. tenuis emitieron más volátiles que las plantas expuestas a M. pygmaeus, y estas últimas emitieron más volátiles que las plantas intactas. Los seis GLVs y el metil salicilato resultaron ser repelentes para B. tabaci y atractivos para E. formosa, mientras que no mostraron efecto sobre T, absoluta , Estos resultados muestran claramente como la herbivoría de los míridos puede modular la preferencia de una plaga o en un enemigo natural en función de la exposición a un determinado volátil y abre las puertas a posibles aplicaciones prácticas de dichos compuestos.
En pimiento se ha comprobado cómo también la fitofagia del antocórido O. ¡aevigatus desencadena respuestas defensivas en la planta (Bouagga et ai. Journal of Pest Science, 91 : 55-64 (2018)). En concreto plantas de pimiento expuestas a O. I aevigatus inducen repelencia frente a la mosca blanca B, tabaci y al trips F. occidentalis , Contrariamente, el parasitoide de la mosca blanca E. formosa se siente atraído a las plantas expuestas a O. / aevigatus . La fitofagia de O. Iaevigatus desencadena la liberación de una mezcla de volátiles (5 terpenos, 2 GLVs, metil salicilato y uno por identificar) y la activación de las rutas metabólicas del ácido jásmónico y del ácido salicílico. De manera similar, la fitofagia de los míridos N. tenuis y M. pygmaeus en pimiento también provocó repelencia para B. tabaci y F. occidentalis y atracción para E, formosa y desencadenó volátiles de naturaleza similar a ios desencadenes por O. /aevigatus ,
Quizás uno de ios resultados más interesantes hasta la fecha haya sido el comprobar como en ensayos de invernadero en plantas tanto de tomate como de pimiento que previamente habían sido activadas (expuestas) durante 24 horas por N. tenuis, la infestación de la araña roja, Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae) y de B. tabaci era significantemente menor en comparación a plantas de pimiento no expuestas al depredador. Desde que se vienen utilizando depredadores zoofitofagos en cultivos hortícolas se ha observado una menor incidencia de determinadas virosis. Recientemente se ha comprobado como las defensas inducidas por miridos depredadores disminuyen la multiplicación de virus fitopatógenos, en concreto el virus del bronceado del tomate en pimiento (TSWV) (Bouagga et ai. Pest Management Science, 76: 561-567 (2020)). Tal como se ha comentado con anterioridad se han identificado compuestos volátiles que son responsables de la repelencia y atracción a plagas y a enemigos naturales.
En los últimos años, el número de proyectos de investigación que intentan utilizar estos volátiles para inducir defensas vegetales ha aumentado considerablemente (Turlings, T.C.J., Erb, M. Annu. Rev. Entorno /. 63, 433-452 (2018)). Por ejemplo, en maíz, la exposición a (Z)-3-hexenal, (Z)-3-hexen-1-ol y el (Z)-3-bexenil acetato consiguió sobreexpresar la ruta del ácido jasmónico (Engeíberth, J., H. T. Alborn, E. A. Proa Nati. Acad. Sci. 101 , 1781-1785 (2004). Sin embargo, ninguno de ellos ha conseguido obtener resultados en que se vea respuesta defensiva de las plantas en condiciones reales de campo. En cambio, la aplicación del propionato (Z)-3-hexenilo mediante difusores ha provocado una respuesta defensiva en cultivos comerciales tai y como se presenta en esta invención.
En esta invención se muestra que los esteres de (Z)-3-hexenilo, son elicitores de la inducción de defensas directas e indirectas en cultivos, como el cultivo de tomate. En concreto se ha podido activar defensivamente las plantas simplemente exponiéndolas a estos volátiles de origen sintético. La exposición de ios esteres de (Z)-3-hexenilo se han descrito como repelentes de fitófagos plaga la mosca blanca, Bemisia tabaci y atrayente de enemigos naturales como es el parasitoide de moscas blancas, Encarsia formosa (Pérez-Hedo, M. et ai. Biocontroi, 63: 203-213 (2018)). La atracción a parasitoides es un efecto indirecto que puede beneficiar el control biológico de una plaga.
La presente invención es una herramienta sostenible y bioracional de control de plagas basada en la comunicación entre plantas para la protección cultivos. Las plantas utilizan la emisión de estos volátiles para comunicar a sus “vecinas” determinadas agresiones. Las plantas receptoras de estas señales entran en un estado de alerta en el cual se preparan para un futuro ataque. A esto se le conoce como priming.
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
Los inventores de la presente invención han encontrado que los compuestos según la Fórmula I, donde R=CH3, CH2-CH3 o CH2-CH2-CH3, son capaces de alertar plantas expuestas a ios mismos e inducir mecanismos de defensa en ellas que reducen el impacto de plagas, de manera que induce o elidía las defensas naturales de las plantas. Mediante la utilización de estos compuestos volátiles la planta se activa defensivamente a través de las rutas hormonales del ácido jasmónico y del ácido salicílico, ambas fitohormonas involucradas en mecanismos de defensas en planta.
La activación defensiva que se consigue con estos compuestos hace a las plantas activadas más resistente ai ataque de plagas.
Luego, en un primer aspecto, la presente invención se refiere ai uso de al menos un compuesto de fórmula I definida anteriormente, o de una composición que io comprende, para la protección de plantas frente a plagas mediante la estimulación de ios mecanismos naturales de defensa de dichas plantas.
Estos mecanismos hacen que las plantas repelan a las plagas y/o atraigan parasitoides de dichas plagas. Estos parasitoides son enemigos naturales de las plagas, por lo que, en consecuencia, la atracción de ios mismos hace que las plantas queden protegidas frente a las mencionadas plagas.
Los compuestos usados en la presente invención son acetato, propanoato o butanoato de (Z)-3-hexenilo. En una realización preferida, la invención se refiere al uso de propanoato de (Z)-3-hexenilo, o de una composición que ios comprende, para la protección de plantas frente a plagas mediante la estimulación de los mecanismos naturales de defensa de dichas plantas.
En una realización preferida, los mecanismos de defensa de las plantas provocan la repelencia de al menos una plaga seleccionada de la lista que comprende: Bemisia tabaci (Gennadius) y Triaieurodes vaporariorum (Westwood), Aieurothrixus floccosus (Maskell), Dialeurodes cííri (Ashmead) y Paraleyrodes minei laccarino (Hemiptera: Aieyroididae), los trips Frankliniella ocddentalis Pergande, Pezothríps kellyanus Bagnall, Chaetanaphothrips orchidii (Moulton) y Thrips tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thripidae), las arañas rojas Tetranychus urticae, Eutetranychus orientalis (Klein), Eutetranychus banksi (McGregor), T. urticae, Panonychus citri (McGregor) Koch y Tetranychus evansi Baker & Pritchard (Acari: Tetranychidae), ios lepidópteros Tufa absoluta (Meyrick), Phyllocnistís citrella Stainton (Lepidoptera: Gracillariidae), Spodoptera exigua Hübner y Helicoverpa armígera (Hübner) (Lepidoptera: Noetuidae) en cultivos hortícolas; y ios psílidos Diaphorína citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) y Tríoza erytreae (Del Guercio) (Hemiptera: Psyllidae), en cítricos.
En una realización aún más preferida, la plaga es seleccionada de la lista que comprende: la mosca blanca Bemisia tabad (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae), el trips Frankliniella occidentalis Pergande (Thysanoptera: Thripidae), la araña roja Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae), el lepidóptero Tula absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae) y el psilido Diaphorina citri.
En una realización preferida, los mecanismos de defensa de las plantas provocan la atracción de ai menos un parasitoide seleccionado de la lista que comprende: especies de los géneros Encarsia spp., Aphytis spp. Cales spp., Eretmocerus spp., Aphelinus spp., (Hymenoptera: Aphelinidae), Aphidius spp. Lysiphlebus spp. (Hymenoptera: Braconidae) Metaphycus spp., Anagyrus spp. (Hymenoptera: Encyrtidae), Tamarixia spp. Citrostichus spp., Cirrospilus spp., Diglyphus spp. (Hymenoptera: Eulophidae), Trissolcus spp., Telenomus spp. (Hymenoptera: Scelionidae) y Trichogramma spp, (Hymenoptera. Trichogrammatidae).
El mencionado compuesto ha demostrado repeler a plagas de cultivos hortícolas de órdenes de Insecta distintos (Hemiptera, Thysanoptera y Lepidoptera), lo cual no era de esperar precisamente por tratarse de especies muy separadas filogenéticamente. En el caso de ios cítricos se ha observado cómo la activación con este mismo volátil disminuye la puesta del psíiido Diaphorína citri.
En una realización preferida las plantas protegidas son plantas hortícolas o plantas de cítricos. Las plantas hortícolas son seleccionadas preferiblemente de la lista que comprende: tomates, pimientos, berenjenas, cebollas, puerros, calabazas, calabacines, pepinos, acelgas, lechugas y leguminosas. Más preferiblemente, las plantas hortícolas son plantas de tomate ( Solanum iycopersicum) o pimiento ( Capsicum annuum). Los cítricos son seleccionados preferiblemente de la lista que comprende limones, limas, naranjas, pomelos y mandarinas. En una realización más particular, la planta es una planta de tomate y la plaga es la mosca blanca B, tabaci, el trips Frankliniella occidentalis o el lepidóptero Juta absoluta.
En otra realización más particular, la planta es un cítrico y la plaga es el psilido Diaphorina citri.
En una realización preferida, el uso comprende la aplicación de los compuestos según la Formula I mediante difusores, lo que permite utilizar de forma eficaz dichos compuestos vía exposición en condiciones de campo como lnductor/elicitor de las defensas de las plantas. Este sistema de emisión mediante difusores consigue que se obtenga, en la atmósfera que rodea a las plantas a proteger, una concentración mantenida en el tiempo y suficiente del inductor, que no se obtendría con una aplicación puntual del mismo.
De acuerdo con la presente invención, se entiende por “difusor” (también denominado “emisor”) un dispositivo o vehículo (formulación) que distribuye a velocidad controlada al menos uno de los compuestos de la invención (Formula i) vía exposición de los mismos a las plantas en condiciones de campo. Los dispositivos son contenedores de los compuestos según la Formula I que permiten que dichas sustancias se liberen a la atmósfera de forma controlada a través de una membrana, una válvula o incluso a través de la propia pared del contenedor. Los vehículos son formulaciones de sustancias líquidas, gelificadas o pastosas que contienen los compuestos según la Fórmula I y que se aplican en forma de gotas o granulos de forma que los volátiles se van emitiendo conforme el vehículo se va degradando o deshidratando. Estas formulaciones o vehículos se pueden aplicar sobre alguna parte de la planta, sobre el sustrato, sobre estructuras en el cultivo o en cualquier sitio desde el que se pueda emitir cercano a las plantas. Dentro de los vehículos se encuentran sustancias como las parafinas, las siliconas, pectinas, aceites pesados, polisacáridos, proteínas, etc. Entre ellas se puede nombrar a modo de ejemplo las siguientes: agar-agar, alginina, carragenato, colágeno, almidón de maíz, gelatina, goma guar, goma de algarrobo, pectina, goma xantana, aceite mineral, aceite de silicona, parafinas, definas o aceites minerales o vegetales.
Los difusores son preferiblemente dispositivos de dos tipos:
(1) emisores pasivos que consisten en un contenedor de los compuestos según la Fórmula i configurado para permitir ia difusión de dichas sustancias, por lo que el contenedor debe ser permeable a los compuestos de fórmula l, bien a través de su propio cerramiento de un material polimérico o bien a través de una membrana colocada en parte de su cerramiento para regular la emisión;
(2) emisores activos en los que ios compuestos según la Fórmula I se envasan en un recipiente a presión que contiene una válvula configurada para accionarse de forma programada, como es el caso de los nebulizadores que producen un aerosol.
En una realización más preferida, ios compuestos según la Fórmula i se aplican mediante difusores consistentes en viales de polietileno de baja densidad (LDPE, por sus siglas en inglés, Low Density Polyethyiene).
En un segundo aspecto, la presente invención se refiere a un método para la protección de plantas frente a plagas mediante la estimulación de ios mecanismos naturales de defensa de dichas plantas, dicho método está caracterizado porque comprende poner en contacto al menos un compuesto de Fórmula i, o una composición que lo comprende, con las plantas. El contacto puede ser directo, mediante la aplicación directa del compuesto a la planta o indirecto, mediante la exposición de la planta a un ambiente que contenga dicho compuesto.
Estos mecanismos naturales de defensa de las plantas permiten repeler las plagas o atraer a parasitoides naturales de las mismas.
En una realización preferida del método se caracteriza porque comprende la aplicación del propanoato de (Z)-3-hexení!o o de una composición que le comprende.
En una realización preferida del método, la plaga es seleccionada de la lista que comprende: Bemisia tabaci (Gennadius) y Tnaleurodes vaporariorum (Westwood), Aieurothríxus fíoccosus (Maskell), Diaieurodes citri (Ashmead) y Parateyrodes minei laccarino (Hemiptera: Aleyroididae), los trips Frankliniella occidenialis Pergande, Pezothríps kellyanus Bagnall, Chaetanaphothrips orchidii (Moulton) y Thrips tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thripidae), las arañas rojas Tetranychus urticae, Eutetranychus orientalis (Klein), Eutetranychus banksi (McGregor), 7 urticae, Panonychus citrí (McGregor) Koch y Tetranychus evansi Baker & Pritchard (Acari: Tetranychidae), los lepidópteros Tuta absoluta (Meyrick), Phyllocnistis cítrella Stainton (Lepidoptera: Graciliariidae), Spodoptera exigua Hübner y Heticoverpa armígera (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae) en cultivos hortícolas; y los psílidos Diaphohna citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) y Trioza erytreae (Del Guercio) (Hemiptera: Psyllidae), en cítricos.
En una realización aún más preferida, la plaga es seleccionada de la lista que comprende: la mosca blanca Bemisia íabaci (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae), el trips Frankiiniella occidentalis Pergande (Thysanoptera: Thripidae), la araña roja Tetranychus uríicae Koch (Acari: Tetranychidae), el lepidóptero Juta absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae) y el psílido Diaphorína citri.
En una realización preferida del método, la protección de las plantas se produce por la atracción de parasitoides seleccionados de la lista que comprende: especies de los géneros Encarsia spp,, Aphytis spp. Cales spp,, Eretmocerus spp., Aphelinus spp., (Hymenoptera: Aphelinidae), Aphidius spp. Lysiphlebus spp. (Hymenoptera: Braconidae) Metaphycus spp., Anagyrus spp. (Hymenoptera: Encyrtidae), Tamarixia spp. Citrostichus spp., Cirrospilus spp., Diglyphus spp. (Hymenoptera: Eulophidae), Tríssolcus spp., Telenomus spp. (Hymenoptera: Scelionidae) y Tríchogramma spp. (Hymenoptera, Tricbogrammatidae).
En una realización preferida del método, las plantas protegidas son plantas hortícolas o plantas de cítricos. Las plantas hortícolas son seleccionadas preferiblemente de la lista que comprende: tomates, pimientos, berenjenas, cebollas, puerros, calabazas, calabacines, pepinos, acelgas, lechugas y leguminosas. Más preferiblemente, las plantas hortícolas son plantas de tomate ( Solanum lycopersicum) o pimiento ( Capsicum annuum ). Los cítricos son seleccionados preferiblemente de la lista que comprende limones, limas, naranjas, pomelos y mandarinas.
En una realización más particular, la planta es una planta de tomate y la plaga es la mosca blanca B. tabaci, el trips Frankiiniella occidentalis o el lepidóptero Juta absoluta.
En otra realización más particular, la planta es un cítrico y la plaga es el psílido Diaphorína citrí.
En una realización preferida del método, los compuestos según la Fórmula I, o de una composición que los comprende, son aplicados mediante el uso de difusores. Los difusores y las realizaciones preferidas de ios mismos de acuerdo con la presente invención se han definido en el primer aspecto de la invención. En una realización más preferida, los compuestos según la Fórmula i se aplican mediante difusores consistentes en viales de polietileno de baja densidad.
En una realización preferida, la aplicación se realiza a razón de un difusor por cada 20 m2 de superficie plantada. De esta manera el difusor distribuye el compuesto ai ambiente que rodea a las plantas y éstas lo detectan.
En una realización preferida del método, ios compuestos según la Fórmula I son aplicados al ambiente del cultivo en una dosis entre 25 mg/ha/día y 25 g/ha/día, y más preferiblemente entre 200 mg/ha/día y 10 g/ha/día.
Durante el desarrollo de esta invención se ha observado, mediante ei uso de distintos difusores, como la planta se activa defensivamente cuando las fuentes emisoras del volátil lo hacen a partir de 25 mg/ha/día de los compuestos según la Fórmula I. Se ha comprobado como ei uso de un difusor polimérico pasivo es capaz de liberar en función de las condiciones ambientales una dosis del volátil en el rango suficiente para activar plantas tanto de tomate, pimiento o cítricos en condiciones de campo.
Ei desarrollo de esta invención permite por primera vez activar defensivamente plantas como ei tomate, pimiento y cítricos y hacerlas más resilientes frente a plagas mediante la exposición de las plantas a ios volátiles según la Fórmula I.
La metodología descrita en la presente solicitud mediante la exposición a los compuestos según la Fórmula I, activa una respuesta en la planta anteriormente no descrita relacionada con la sobrexpresión de las rutas del ácido salicílico y la del ácido jasmónico. Esta activación provoca en las plantas activadas la emisión de volátiles que atraen y repelen enemigos naturales y plagas, respectivamente. En el caso del tomate se ha observado como plantas expuestas al propanoato de (Z)-3-bexenilo repelen plagas clave de este cultivo como la mosca blanca, B, tabaci, el trips F. occidentalis y al lepidóptero T, absoluta. Esta activación permite repeler por tanto tres plagas clave, lo cual no era de esperar por pertenecer estas tres especies a tres órdenes de insectos distintos (Hemiptera, Thysanoptera y Lepidoptera). En ei caso de los cítricos se ha observado cómo la activación con este mismo volátil repele a/ psílido D. citri. Se ha demostrado en el caso de ios cítricos que la puesta de D. citri se reduce también a más de la mitad cuando la planta de cítrico ha estado expuesto a este volátil. También las plantas activadas por exposición al propanoato de (Z)-3-hexenilo son más atrayentes a enemigos naturales de las plagas como son ios parasitoides Encarsia formosa en tomate y Tamarixia radíala en cítricos.
En el desarrollo de la presente invención, también se ha observado como la activación de la planta defensivamente no afecta al establecimiento ni desarrollo de depredadores zoofitófagos que puedan colonizar dicho cultivo.
Por lo contrario a lo que se cabría esperar, la sobreexpresión de las rutas defensivas en planta provocada por la exposición del volátil propanoato de (Z)-3-hexenilo, no reduce el crecimiento ni la producción de la planta, obteniendo como resultado final unas plantas igual de productivas pero más resistentes al ataque de plagas.
La presente invención es un nuevo método de gestión de plagas no utilizada hasta la fecha en ningún cultivo.
A lo largo de la descripción y las reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos. Para ios expertos en la materia, otros objetos, ventajas y características de la invención se desprenderán en parte de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Los siguientes ejemplos y figuras se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Fig, 1.: Respuesta franscripcional de los genes defensivos PR1 (un gen marcador para la vía de señalización de ácido salicílico, SA) (fig. 1 A) y SI-PI-I y Sl-PI-ll (dos marcadores para inhibidores de proteinasas de plantas) (fig, 1B y 1C respectivamente) en plantas de tomate expuestas a acetato de (Z)-3-hexenilo (HA), butanoato de (Z)-3-hexenilo (HB) y propanoato de (Z)-3-bexenilo (HP) y al control. Los datos se presentan como la media de ocho análisis independientes de expresiones de transcripción en relación con un gen de limpieza ± error estándar (n = 8). Las diferencias significativas basadas en la prueba ANOVA están marcadas con distintas letras (P <0.05). Respuesta (% ± SE (Error estándar)) de ias hembras Encarsía formosa (E.í.), Tufa absoluta ( T.a .), Tetranychus uríícae ( T.u .), Bemisía tabaci (B. tí) y Frankliniella occidentalis ( F.o .') en un olfatómetro de tubo en Y cuando se exponen al control (1: 10,000 metanol: agua) y a propanoato de (Z)-S-hexenilo ((Z) -3-HP) (1 : 10,000 con el volátil para probar). Los asteriscos Indican diferencias significativas en la distribución de las elecciones de brazo lateral (pruebas c2; P <0.05) (fig. 1D). Número (media ± error estándar) de hembras de Tetranychus urticae por planta de tomate al comparar el desarrollo de ácaros en plantas de tomate expuestas a propanoato de (Z)-3-hexenilo [(Z) -3-HP)] en comparación con plantas de tomate no expuesto (Control), La exposición a (Z)-3-HP se probó en dos tipos de bioensayos, (24 b) y (Per): en el primer tipo, las plantas solo estuvieron expuestas durante 24 horas al volátil antes de la liberación de T. urticae (24 h); En el otro tipo de prueba, las plantas estuvieron permanentemente expuestas al volátil durante todo el experimento (Per). Las barras con letras diferentes son significativamente diferentes (GLMM, medidas repetidas a <0.05) (fig 1 E). Número de huevos (media ± error estándar) puestos por 2 hembras Tuta absoluta durante 72 horas en plantas expuestas a propanoato de (Z)-3-hexenilo [(Z) -3-HP)] en comparación con las plantas de tomate no expuestas (Control), Las barras con letras diferentes son significativamente diferentes (ANOVA, Tukey a <0.05) (fig. 1F). Porcentaje de mortalidad (media ± error estándar) de T. absoluta desde huevo a adulto cuando se desarrolló en plantas de tomate expuestas a a propanoato de (Z)-3-hexenilo [(Z)-3-HP)] en comparación con las plantas de tomate no tratadas (Control). Las barras con letras diferentes son significativamente diferentes (ANOVA, Tukey a <0.05) (fig, 1G).
Fíg. 2. Respuesta transcripcional del gen PIN2 (un gen marcador para la vía de señalización del ácido jasmónico (JA) en plantas de tomate expuestas en condiciones de semicampo ai propanoato de (Z)-3-hexenilo [(Z) -3-HP] con distintos niveles de emisión del volátil: 5 mg/día/difusor en el emisor de polietileno de baja densidad (LD) y 0,01 mg/día/difusor en el emisor de poiietileno de alta densidad (HD). El tratamiento control consiste en plantas no expuestas al volátil. Las diferencias significativas basadas en la prueba ANOVA están marcadas con distintas letras (P <0.05).
Fig. 3: Respuesta transcripcional de ios genes defensivos PR1 (un gen marcador para la vía de señalización de SA) (fig. 3A) y PIN2 (un gen marcador para la vía de señalización del ácido jasmónico) (fig, 3B) en plantas de tomate expuestas en condiciones de campo a propanoato de (Z)-3-hexeni!o [(Z) -3-HP] liberado en un dispensador polimérico (LD) vial de poiietileno de baja densidad de 4 mi (KaríeM) un día antes, 4 y 8 semanas tras la colocación del difusor. Las diferencias significativas entre tratamientos para cada una de las fechas están marcadas con un asterisco (f-test; P <0.05). Número de Nesidícoris tenuis por planta (media ± error estándar) (fig. 3C) y número de folíolos infestados por planta (media ± error estándar) (fig. 3D) en el invernadero comercial (GLMM, P <0.05). Perfil de liberación del dispensador empleado ajustado del modelo de regresión lineal (fig. 3E), Fíg. 4: Respuesta transcripcional de los genes defensivos LOX2 (precursor del ácido jasmónico JA) (fig 4A) y PAL y NPR1 dos genes relacionados con la ruta del ácido salicílico (fig, 4B y C, respectivamente) en plantas de citrange Carrizo expuestas a propanoato de (Z)-3-hexenilo y a! control. Los datos se presentan como la media de seis análisis independientes de expresiones de transcripción en relación con un gen de limpieza ± Error estándar (n = 6). Las diferencias significativas basadas en la prueba t están marcadas con (*) (P <0.05). Respuesta (% ± SE) de las hembras Diaphorina ciírí y Tamarixia radiata en un olfatómetro de tubo en Y cuando se exponen al control (1 : 10,000 metanol: agua) y a propanoato de (Z)-3-hexenilo ((Z) -3-HP) (1 : 10,000 con el volátil para probar). Los asteriscos indican diferencias significativas en la distribución de las elecciones de brazo lateral (pruebas c2: P <0.05) (fig. 4D).
Fig. 5: Número de brotes receptivos (media ± SE) y puesta (media ± SE) de Diaphorina estríen los plantones de Murraya panicuiata utilizados como plantas centinela con y sin difusor cargado con HP. Letras distintas sobre las barras muestran diferencias significativas (t-test P < 0,05).
EJEMPLOS
A continuación, se ilustrará ia invención mediante unos ensayos realizados por los inventores.
Ejemplo 1 : Ensayos de activación defensiva en tomate vía exposición en condiciones de laboratorio
Metodología
Para demostrar que ia exposición de los volátiles propanoato de (Z)-3-hexenilo, acetato de (Z)-3-hexenilo de y butanoato de (Z)-3-hexenilo activa defensas en plantas se utilizaron plantas de tomate Sotanum ¡ycopersicum cv. Moneymaker. Dos semanas tras ia germinación de las semillas, las plántulas se trasplantaron individualmente en macetas (8 x 8 x 8 cm). Las plantas se mantuvieron a 25 ± 2 °C, con una humedad relativa constante del 65% ± 5% y un fotoperiodo de 14:10 h (luz: oscuridad). Se utilizaron plantas de tomate que no habían recibido ningún tratamiento plaguicida a las cuatro semanas de edad (aproximadamente 20 cm de altura). Todos los volátiles utilizados se consiguieron a través de Sigma-Aldrich (St. Louis, MO, USA). Cada volátil se expuso mediante la utilización de una porción de papel de filtro de 2 x 2 cm sobre el cual se impregnó 10 mI de una disolución que contenía el volátil correspondiente a una concentración de 1:10.000 [éster de (Z)-3-bexenilo:metanol] como fuente emisora del volátil correspondiente (Pérez-Hedo, M. et al. Biocontroi, 63: 203-213 (2018)).
Para activar una planta se colocaron dos porciones de papel de filtro impregnadas con el volátil en la parte inferior de una jaula de plástico de 30 x 30 x 30 cm (BugDorm-1 Insect Tents; MegaView Science Co., Ltd, Taichung, Taiwan) en la cual se introdujo la planta. Se realizó un tratamiento control en el cual las dos porciones de papel de filtro se impregnaron con 10 mI de metanol. Se realizaron ocho repeticiones por tratamiento. Las plantas de los tratamientos se mantuvieron expuestas al volátil sin perturbar durante 24 horas en cámaras climáticas separadas y aisladas para evitar cualquier interferencia de los volátiles y se mantuvieron a 25 ± 2°C, 65 ± 10% HR y un fotoperíodo de 14:10 h (L: D). Transcurridas las 24 horas se estudió la expresión de 3 genes relacionados con la activación defensiva en planta en ambos tratamientos: se estudiaron el precursor de la proteína relacionada con la patogénesis básica (PR-1), un gen marcador de la vía de señalización del SA y dos marcadores de ios inhibidores de la proteinasa de la planta (SI-PI-I y SI-Pl-II),
Para la extracción y cuantificación de la expresión génica se siguió la metodología descrita por Pérez-Hedo et al. Journal of Pest Science 3: 543-554 (2015). Los cebadores empleados fueron directo ( forward ): 5'- CTCATATGAGACGTCGAGAAG-3’ (SEG ID NO: 1) e inverso (reverse): 5’-GGAAACAAGAAGATGCAGT ACTT AA -3’ (SEQ ID NO: 2) para la cuantificación del PR1, forward: 5’-T GAAACT CT CATGGCACGAA-3’ (SEQ ID NO: 3) y reverse: 5’- TTTTGACATATTGTGGCTGCTT-3’ (SEQ ID NO: 4) para Sl-Pi-I, y forward 5’-GGCCAAATGCTTGCACCTTT-3’ (SEQ ID NQ: 5) y reverse: 5’- CAAC ACGT GGT ACATCCGGT -3’ (SEQ ID NO: 6) para el gen SI-PI-II. Los nucleótidos del gen constitutivo EF1 fueron forward 5’-GATTGGT GGT ATT GGAACT GT C-3’ (SEQ ID NO: 7) y reverse: 50-AGCTT CGT GGTGCATCT C-3Q (SEQ ID NO: 8).
Tras comprobar que la exposición a los tres volátiles activaba genes relacionados con las defensas de las plantas, se seleccionó de entre los tres volátiles el propanoato de (Z)-3-hexenilo como modelo de los ásteres de (Z)-3-hexenilo.
Se estudió si la activación defensiva conseguida por la exposición a propanoato de (Z)- 3-hexenilo podía tener un efecto de repelencia y/o atracción en herbívoros que atacan al tomate, la mosca blanca Bemisia tabaci (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae), el trips Frankliniella occidentalis Pergande (Tbysanoptera: Thripidae), la araña roja Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae) y e! barrenador del tomate, Tuta absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae), y en un enemigo natural que se ha venido utilizando como organismo modelo en este cultivo, el parasitoide Encarsia formosa Gahan (Hymenoptera: Apbelinidae).
Las ninfas de último estadio de B. tabací y las pupas de E. formosa fueron proporcionadas por Koppert Biológica! Systems, S.L. (Águilas, Murcia, España). Los adultos de B. tabaci recién emergidos (de menos de 2 días de edad) se liberaron en plantas de tomate en el interior de jaulas de plástico (BugDorm-2) de 60 x 60 x 60 cm y se colocaron en una cámara climática a 25 ± 2°C, 65 ± 10% HR y un 14:10 h (L: D) fotoperíodo en IVIA. Se usaron B, tabací adultos de cinco días en todos los experimentos. En el caso de E. formosa, las pupas se depositaron en una placa de Petri de 9 cm de diámetro y se dejaron emerger en condiciones ambientales de laboratorio (25 ± 2°C), con una pequeña gota de miel como alimento. Se usaron hembras de E. formosa de menos de dos días de edad en todos los experimentos. Los adultos de F. occídentaíis procedían de una cría mantenida en cautividad establecida en el instituto Valenciano de Investigaciones Agrarias (IVIA) en 2010, procedente originalmente del Campo de Cartagena (Murcia, España). La cría de trips se mantuvo en vainas de judía (Phaseo!us vu!garis L.; Rabales: Fabaceae) en las mismas condiciones descritas anteriormente. Todas las hembras de F. occídentaíis utilizadas para la experimentación tenían menos de cinco días. Los adultos de T. urticae se obtuvieron de una colonia establecida en el IVIA en 2011 cuya procedencia original eran clementinos localizados en La Plana (Castelló, España). Los ácaros se mantenían en plantas de tomate en una cámara climática en las mismas condiciones descritas anteriormente. Las hembras de T. absoluta se obtuvieron de colonias sobre tomate mantenidas en un invernadero del IVIA a 25 ± 4°C, 60 ± 15% HR y bajo fotoperiodo natural. Se utilizaron hembras adultas recién emergidas de menos de 5 días en todos los ensayos.
Para evaluar la preferencia de F. occídentaíis, B. tabací, T. urticae, T. absoluta y E. formosa a plantas de tomate que estuvieron expuestas previamente durante 24 h a (Z) -3 -HP en relación con las plantas intactas se utilizó un olfactómetro en forma de Y. Las plantas se expusieron a ambos volátiles como se describió anteriormente con el uso de las porciones de papel de filtro. El olfactómetro (Analytical Research Systems, Gainesville, FL) consistía en un tubo de vidrio en forma de Y de 2,4 cm de diámetro con una base de 13,5 cm de largo y dos brazos cada uno de 5,75 cm de largo. Ambos brazos laterales se conectaron a través de tubos de políetíleno de alta densidad (HDPE) a dos frascos de vidrio idénticos (volumen de 5 litros), cada uno de los cuales se conectó a una bomba de aire que produjo un flujo de aire bumidifícado unidireccional a 150 ml / min (Pérez-Hedo et al. Journal o Pest Science 3: 543-554 (2015)).
Para cada especie se introdujo una hembra individualmente en el tubo de entrada del olfactómetro y se observó hasta que había caminado al menos 3 cm por uno de los brazos de elección o hasta que habían transcurrido 15 minutos. Se registraron un total de 40 réplicas válidas para cada especie para cada par de fuentes de olor. Cada individuo fue probado solo una vez. Las hembras que no eligieron un brazo lateral en 15 minutos se registraron como "no respuesta" y se excluyeron del análisis de datos. Después de registrar cinco respuestas, el tubo Y se enjuagó con agua jabonosa y luego se limpió con acetona y se dejó secar durante 5 minutos. Las fuentes de olor se cambiaron posteriormente entre ios brazos laterales izquierdo y derecho para minimizar cualquier efecto espacial en la elección. Los dos tipos de plantas (intactas e inducidas) se usaron solo una vez para evaluar la respuesta de 10 hembras y luego se reemplazaron con plantas nuevas. El experimento con el tubo en Y se realizó en las siguientes condiciones ambientales: 23 ± 2 ° C y 60 ± 10% de HR.
También se estudió si la activación defensiva inducida por la exposición a propanoato de (Z)-3-hexenilo podía influenciar el desarrollo de dos fitófagos de gran importancia en el cultivo del tomate, la araña roja, T. urticae y el lepldóptero T. absoluta. Los individuos utilizados en estos experimentos procedían de las crías en cautividad de estas especies que se mantienen en el IVIA descritas anteriormente. Sobre ambos fitófagos se probó de dos maneras distintas el tiempo de exposición de la planta ai volátil, una donde la planta tan solo estuvo 24 horas expuesta al volátil y a continuación se liberó inmediatamente el herbívoro a ensayar y el otro donde el volátil estuvo expuesto de forma permanente a lo largo de todo el experimento.
Para ello se utilizaron 2 cámaras climáticas bajo las mismas condiciones ambientales [25 ± 2 °C, 65 ± 5% HR y 14:10 h (L: D) de fotoperiodo], donde, para evitar interferencias entre ios volátiles, una se asignó a los tratamientos de propanoato de (Z)-3-hexenilo y otra al tratamiento de control. En la cámara climática donde se ensayó la exposición al propanoato de (Z)-3-hexenilo se colocaron 12 jaulas de plástico (60 cm x 60 cm x 60 cm) (BugDorm-2. MegaView Science Co., Ltd., Taichung, Taiwán), seis por cada tratamiento probado (24 h de exposición y exposición permanente) mientras que en la cámara climática donde se ensayó el tratamiento de control se colocaron seis jaulas. Las jaulas se distribuyeron equitativamente a una distancia de un metro y medio entre ellas. Cada jaula representaba una réplica. En cada jaula se colocaron en la parte inferior dos porciones de papel de filtro impregnadas tal como se explicó anteriormente tanto para el tratamiento con propanoato de (Z)-3-hexenilo como para el control. En el tratamiento donde los volátiles se expusieron durante todo el experimento, las porciones de papel de filtro impregnado se reemplazaron cada dos días.
En cada jaula se introdujeron ocho plantas de tomate ( Lycopersicon escuíeníum cv. Moneymaker). En el experimento con T. urticae, para evitar el movimiento de ios ácaros de una planta a otra, las plantas se aislaron individualmente, sin tocarse entre sí ni con las paredes de la jaula. Además, las plantas se colocaron sobre un pequeño ladrillo dentro de una bandeja de plástico llena de agua, y todas las macetas se pintaron con una banda de pegamento. Las plantas se infestaron artificialmente con T. urticae de la población de laboratorio mencionada anteriormente. Veinte hembras de T. urticae se liberaron por planta, distribuidas equitativamente en todas las hojas con la ayuda de un pincel fino. Se realizaron muéstreos a ojo desnudo, siete, 14 y 21 días después de la liberación de T. urticae, donde se contó el número total de hembras de T. urticae en cada planta.
Para evaluar el efecto de la exposición a ambos volátiles sobre T, absoluta, se realizaron dos experimentos consecutivos. En el primero, se estudió el efecto sobre la puesta de T. absoluta. Los huevos seleccionados puestos en el primer experimento se usaron posteriormente en el segundo para estudiar la mortalidad de los inmaduros de T. absoluta desarrollados en plantas expuestas al propanoato de (Z)-3-hexenilo, Los mismos tres tratamientos descritos anteriormente para T. urticae se ensayaron también para T. absoluta. La puesta de T. absoluta se evaluó en 8 plantas de tomate (cv. Moneymaker) por tratamiento. Cada una de las plantas se aisló dentro de una jaula de plástico (60 x 60 x 60 cm) (BugDorm-2) y se mantuvieron en una cámara climática a 25 ± 2 °C, 65 ± 5% HR, 14:10 (L: D) h fotoperiodo siguiendo la misma distribución de ensayo descrita para T. urticae. Dentro de cada jaula (réplica), se liberaron 2 parejas adultas de T. absoluta (machos y hembras) y se dejaron sin perturbar durante 72 horas. Después de este tiempo, se eliminaron los adultos de T. absoluta y se contó el número de huevos.
Para estudiar la mortalidad de T. absoluta en las plantas expuestas a los 3 tratamientos descritos anteriormente, 6 huevos de T. absoluta por planta se distribuyeron por igual en todas las hojas con la ayuda de un pincel fino. Los huevos utilizados en cada tratamiento provinieron del tratamiento correspondiente del primer experimento. Se evaluó la mortalidad de T. absoluta en 8 plantas de tomate (cv. Moneymaker) por tratamiento. Cada una de las plantas se aisló dentro de una jaula de plástico (60 x 60 x 60 cm) (carpas de insectos BugDorm-2) mantenidas en una cámara climática a 25 ± 2 °C, 65 ± 5% HR, 14:10 (L: D) h fotoperiodo siguiendo la misma distribución de tratamiento descrita anteriormente. Las plantas se dejaron intactas basta que emergieron los adultos de T, absoluta. Tan pronto como los adultos comenzaron a emerger, se contaron y se retiraron diariamente de las jaulas.
Resultado
La exposición a los tres volátiles propanoato de (Z)-3-hexenilo, acetato de (Z)-3-bexenilo de y butanoato de (Z)-3-bexenilo de plantas intactas de tomate sobreexpresó significativamente los tres marcadores estudiados respecto al control, sin encontrar diferencias entre ellos (Figura 1 A,B,C). PR-1 : F1-19 = 14,09; P < 0,0001 SPI-1 : F1-19 = 21 ,91 ; P < 0,0001 y SPI-2: F1-19 = 16,28; P < 0,0001.
Las plantas activadas expuestas 24 horas a propanoato de (Z)-3-hexenilo resultaron ser repelentes frente a plagas de gran importancia en el tomate como son el lepidóptero T. absoluta (X 2 = 9.80; P = 0.0017), la mosca blanca B. tabaci (X 2 =12.80; P= 0.0003) y el trips F. occldentalls (X 2 =5.00; P = 0.0253) (Figura 1 D). Además, las plantas expuestas a este volátil fueron más atrayentes para el parasitoide E. formosa (X 2 = 5.00; P = 0.0253). La araña roja T. urticae fue la única especie que no mostró preferencia (X 2 = 1.80; P= 0.1797) (Figure 1D).
En el caso de la araña roja, a los 21 días tras su liberación, se obtuvo una reducción del número de ácaros por planta del 50,3 ± 6,3 % y del 83,9 ± 5,0 % respecto al control, en los tratamientos donde se mantuvo la planta expuesta 24 h y durante todo el experimento al propanoato de (Z)-3-hexenilo, respectivamente (F4,85 = 4,437; P= 0.003) (Figura 1 E). En el caso de T. absoluta, en ei tratamiento de exposición permanente a (Z)-3-HP se obtuvo una reducción de la puesta de 67,2 ± 15,0 % respecto al control = 3.746; P= 0.0406) (Figura 1F). Además, la mortalidad desde huevo a adulto de T. absoluta en plantas expuestas permanentemente a (Z)-3-HP se situó en torno ai 80%, lo cual fue significativamente mayor que el tratamiento control (F2,23 = 6.944; P= 0.0048) (Figura 1G). la puesta (F2,23 = 1.147; P~ 0.3367) ni en la mortalidad (F2,23 = 0.5881; P~ 0.5643) de T. absoluta. Ejemplo 2: Ensayos de liberación en semicampo con distintas dosis de aplicación del propionato de (Z)-3-hexenilo desde emisores pasivos de tipo polimérico,
Metodología
Para comprobar el nivel de activación que pueden proporcionar diferentes niveles de emisión del propionato de (Z)-3-hexenilo se utilizaron dos tipos diferentes de emisores poliméricos: (LD) vial de polietileno de baja densidad de 4-ml y (HD) vial de polietileno de alta densidad de 4-ml. Mediante estudios previos en laboratorio, el nivel más alto de emisión (5 mg/día) se consiguió con emisores LD cargados con 20 mg de la sustancia pura. El nivel de emisión más bajo (0,01 mg/día) lo proporcionaron los viales HD cargados con una mezcla 1 :100 de propionato de (Z)-3-hexeni!o y aceite parafínico (0,02:2; g:g). Durante los experimentos se controló la cinética de emisión de los emisores utilizados mediante el estudio de la pérdida de peso (método gravimétrico). Se colocaron emisores adicionales en las mismas condiciones ambientales, midiendo semanalmente su peso con una balanza de precisión (0.0001 g). La diferencia de peso registrada en cada periodo será la cantidad emitida de la sustancia para cada tipo de emisor. Para obtener el nivel de emisión medio de cada emisor, los pesos registrados (y) se relacionan con el tiempo de envejecimiento (x) por medio de un análisis de regresión múltiple.
Una vez establecidos los niveles de emisión mencionados, 5 y 0,01 mg/día/difusor, se expusieron las plantas de tomate a los distintos niveles de emisión mediante un experimento en condiciones de semicampo, en invernadero de cristal. Para ello, se contó con tres cabinas de 24 m2 para los distintos tratamientos: (CONTROL) sin emisores del volátil, (HD) con 1 emisor de 0,01 mg/día, y (LD) con 1 emisor de 5 mg/día. La humedad relativa fue del 85% ± 10% y el fotoperíodo fue natural (aproximadamente 14:10 h L: D) en los tres cubículos. Las condiciones ambientales se controlaron y registraron utilizando un registrador de datos Mithra clima (ver, 1 ,01.03, Priva nutrí control ibérica S.L). En cada uno de los tres cubículos se transplantaron 30 plantas de tomate en macetas individuales de polietileno de 20 litros llenas con una mezcla de arena y turba (1 : 2 w: w, respectivamente). Las macetas se distribuyeron en cada cabina en cuatro filas de cinco plantas cada una (2 plantas / m2). Se siguieron las técnicas de cultivo típicas del cultivo de tomate en invernadero en España: entutorado a una guía para cada planta, poda semanal de brotes secundarios, aplicación de una solución nutritiva estándar para tomate mediante un sistema de riego automatizado con una frecuencia de riego ajustada a las condiciones ambientales y un tiempo de riego de 15 min. Los difusores se colocaron a 50 cm por encima del ápice de las plantas de tomate y se adaptaron en altura según el crecimiento de las plantas.
Los emisores se mantuvieron dentro de las cabinas correspondientes durante todo el ensayo y se tomaron muestras de ias plantas de cada cabina a las 4 semanas tras la instalación del tratamiento. De dichas muestras se estudió la respuesta transcripcional del gen defensivo PIN2 (un gen marcador para la vía de señalización de ácido jasmónico, JA). Se realizaron cinco repeticiones por tratamiento. Para la extracción y cuantificación de ia expresión génica se siguió la metodología descrita por Pérez-Hedo et al. Journal oí Pest Science 3: 543-554 (2015). Las secuencias del cebador empleado para ia cuantificación del gen PIN2 fue directa ( forward): 5’- G A AA AT CGTTAATTT AT CCC AC-3’ (SEG ID NO: 9) y inversa (reverse): 5’- ACATACAAACTTTCCATCTTTA-3’ (SEQ ID NO: 10), mientras que el gen constitutivo EF1 las secuencias fueron forward: 5’-GATTGGTGGTATTGGAACTGTC-3’ (SEQ ID NO: 7) y reverse: 5G-AGCTT CGTGGTGCATCT C-30 (SEQ ID NO: 8).
Resultados
Los estudios de expresión mostraron que el nivel más bajo de emisión de propionato de (Z)-3-hexenilo (0,01 mg/día) no tuvo ningún efecto sobre las plantas expuestas. Sin embargo, una emisión de 5 mg/día consiguió una activación significativa de ia ruta metabólica del ácido jasmónico (Figura 2).
Ejemplo 3, Ensayos de activación defensiva en tomate vía exposición en condiciones de campo
Metodología
Para conocer el comportamiento de ios difusores cargados con propionato de (Z)-3- hexenilo bajo condiciones reales de cultivo se seleccionaron cuatro invernaderos comerciales de tomate cv Raf localizados en Xiixes (provincia de Castellón) con un histórico de problemas de T. absoluta a la salida del invierno. Se realizó un diseño experimental de bloques ai azar donde cada invernadero se consideró un bloque con dos tratamientos por bloque y 4 repeticiones por tratamiento. En dichos invernaderos de tomate se viene utilizando al depredador zoofitófago Nesidiocoris tenuis Reuter (Hemiptera: Miridae) el cual se libera desde el semillero a finales de agosto y mantiene las poblaciones de fitófagos plaga bajo control tras su trasplante en invernadero a final de agosto hasta la llegada del invierno. Sin embargo, las poblaciones de este depredador descienden bruscamente bajo las condiciones ambientales que se dan en invierno. A la salida del invierno sus poblaciones empiezan a recuperarse lentamente de tal forma que las poblaciones de T. absoluta lo hacen más rápido y es común recurrir a insecticidas selectivos durante la primavera para mantener a raya a T, absoluta. Por tanto, se consideró estos invernaderos un marco idóneo donde confirmar el efecto sobre T. absoluta encontrado en condiciones de laboratorio.
El cultivo se inició el 4 de septiembre de 2018 con el trasplante con un marco de plantación de 0,4 x 1 m lo cual resultó en 1 ,2 plantas por metro cuadrado (25.450 plantas en 21.200 m2). Se siguieron las técnicas de cultivo comunes en la zona: el tallo principal se llevó a dos brazos, se podaron semanalmente brotes secundarios y hojas senescentes y se aplicó semanalmente una solución nutritiva estándar para tomate mediante un sistema de riego por goteo automatizado. Las plantas trasplantadas se inocularon en semillero con el depredador N. tenuis. Se liberó una dosis de 1 N. tenuís por planta en el vivero y se usaron huevos de E. kuehníella como presa alternativa (Urbaneja-Bernat et al. Journal of Applied Entomology 139: 61-167 (2015)). Desde la fecha de siembra hasta el día en que se colgaron los difusores, ninguno de los invernaderos recibió tratamiento químico alguno y el control de plagas residió solo en el depredador N. tenuis.
Tal como se ha comentado anteriormente, se seleccionaron 2 zonas en cada uno de ios invernaderos en las cuales en una de ellas el 22 de febrero 2019 se colgó un difusor ((LD) vial de polietileno de baja densidad de 4-ml) cargado de 4 ml de propanoato de (Z)-3-hexenilo cada 20 m2 y la otra de igual superficie se utilizó como tratamiento control. En las cuatro zonas con volátil, se colocaron un total de 260 difusores en una superficie total de 5,200 m2 (equivalente a una densidad de 500 difusores/ha). Tai y como se describe en el ejemplo 2, se estudió la cinética de emisión de los difusores por medio del método gravimétrico.
Se muestrearon semanalmente durante 11 semanas, veinte plantas elegidas ai azar por repetición, comenzando el 30 de enero de 2019. En primer lugar, se contó ei número de folíolos infestados por T. absoluta por planta. Luego se contó ei número de N. tenuis (adultos y ninfas) en todo el tercio apical de cada planta planta (hojas, flores y brotes). Siguiendo ia metodología descrita anteriormente, se tomaron 6 muestras de la parte apical de cada planta por repetición que se introdujeron inmediatamente en nitrógeno líquido para cuantificar la expresión de ios genes PR1 y del PIN2 (descritos en ei ejemplo 1 y ejemplo 2). La expresión de estos genes se cuantificó un día antes, 4 y 8 semanas después de colgar los difusores en los invernaderos.
Resultado
Al iniciar el ensayo la expresión de ambos genes marcadores de rutas de defensa era igual, pero a los 30 y a ios 80 días la expresión de ambos genes fue significativamente mayor en las plantas expuestas ai volátil en comparación a las plantas de la zona control (Figure 3 A,B) (Tabla 1). labia 1. Valores de la probabilidad para la comparación por pares de la respuesta transcripcional de los genes defensivos PR1 (un gen marcador para la ruta de señalización SA) y PIN2 (un gen marcador para la ruta de señalización JA) en plantas de tomate expuestas a propanoato de (Z)- 3-hexenilo [(Z) -3-HP] liberado en un difusor pollmérico (LD) vial de polietlleno de baja densidad de 4 mi (Karteil) y en plantas de tomate del control 24 horas antes y 4 y 8 semanas después delestableclmiento de los difusores en ios invernaderos de tomate. Los valores en negrita corresponden a valores estadísticamente significativos. Prueba t (P <Q.G5).
Figure imgf000025_0001
La población del mírido, N. tenuis se mantuvo igual en ambos tratamientos (F1,86 = 2,112; P = 0,150) (Figura 3C), pero no así la infestación de T. absoluta, la cual fue significativamente menor (aprox. el 58%) en el tratamiento con volátil (F1,86 = 11,375; P < 0,0001) (Figura 3D). El volátil propanoato de (Z)-3-hexenllo volátil se emitió de manera sustancialmente constante durante el período de estudio a una tasa media de 12,2 mg / día, según la pendiente del modelo ajustado (Figura 3E), lo que supone una dosis de aplicación aproximada de 6 g/ha/día.
Ejemplo 4. Ensayos de activación defensiva en cítricos vía exposición en condiciones de laboratorio
Para demostrar que la exposición al volátil propanoato de (Z)-3-hexeni!o activa defensas en plantas de cítricos se utilizaron plántulas del patrón citrange Carrizo ( Ciírus sinensis Osb. x Poncirus trifoliata L. Raí). Dos semanas tras la germinación de las semillas, las plántulas se trasplantaron individualmente en macetas (8 x 8 x 8 cm). Las plantas se mantuvieron en un invernadero con cubierta plástica a unas condiciones climáticas aproximadas de 25 ± 5 °C, una humedad relativa del 65% ± 5% y un fotoperiodo de luz natural, aproximadamente 14:10 h (luz: oscuridad). Se utilizaron plantas de citrange Carrizo que no habían recibido ningún tratamiento plaguicida a las 8 semanas de edad (aproximadamente 20 cm de altura). El volátil propanoato de (Z)-3-hexenilo se consiguió a través de Sigma-Aidrich (St. Louis, MO, USA). El volátil se expuso mediante la utilización de una porción de papel de filtro de 2 x 2 cm sobre el cual se impregnó 10 μl de una disolución que contenía el volátil correspondiente a una concentración de 1 :10.000 [propanoato de (Z)-3-bexenilo:metanol] como fuente emisora del volátil correspondiente (Pérez-Hedo, M. et al. Biocontrol, 63: 203-213 (2018)).
Para activar una planta se colocaron dos porciones de papel de filtro impregnadas con el volátil en la parte inferior de una jaula de plástico de 30 x 30 x 30 cm (BugDorm-1 Insect Tents; MegaView Science Co., Ltd, Taichung, Taiwan) en la cual se introdujo la planta. Se realizó un tratamiento control en el cual las dos porciones de papel de filtro se impregnaron con 10.000 μl de metanol. Se realizaron seis repeticiones por tratamiento. Las plantas de ambos tratamientos se mantuvieron expuestas al volátil sin perturbar durante 24 horas en cámaras climáticas separadas y aisladas para evitar cualquier interferencia del volátil y se mantuvieron a 25 ± 2°C, 65 ± 10% HR y un fotoperiodo de 14:10 h (L: D). Transcurridas las 24 horas se estudió la expresión de 3 genes relacionados con la activación defensiva en planta en ambos tratamientos: se estudiaron un precursor de ácido jasmónico JA (LOX2) y dos relacionados con la ruta del ácido salicílico un downstream (PAL), y un precusor (NPR1).
Para la extracción y cuantificación de la expresión génico se siguió la metodología descrita por Pérez-Hedo et ai. Journal of Pest Science 3: 543-554 (2015). Los cebadores empleados fueron directa (forward): 5’- G AACCAT ATTGCCACTTTCG -3’ (SEQ ID NO: 11) e inversa (reverse): 5’- CGTCAT CAAT G ACTT G ACO A -3’ (SEQ ID NO: 12) para la cuantificación del LOX2, forward: 5’- CACATTCTTGGTAGCGCTTTG-3’ (SEQ ID NO: 13) y reverse: 5’- AGCT ACTTGGCT G ACAGT ATTC-3’ (SEQ ID NO: 14) para PAL y forward: 5’- TACCTCCACCTCTCTCATTCTT-3’ (SEQ ID NO: 15) y reverse: 5’- GTGCGAGAGAAGGTT AGCT AT G-3’ (SEQ lD NO: 16) para el gen NPR5. Los nucleótidos del gen constitutivo gene glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) fueron forward: 5’-GGAAGGTCAAGATCGGAATCAA-3’ (SEQ ID NO: 17) y reverse: 5’-CGTCCCTCTGCAAGATGACTCT-3: (SEQ ID NO: 18).
Para evaluar la preferencia de hembras de D, citriy del parasitoide T. radiata a plantas de cltrange Carrizo que estuvieron expuestas previamente durante 24 h a (Z)-3-HP en relación con las plantas intactas se utilizó un olfactómetro en forma de Y de igual forma al descrito en el ejemplo 1 y las plantas se expusieron a ambos volátiles como se describió anteriormente con el uso de las porciones de papel de filtro. Se registraron un total de 40 réplicas válidas para cada especie para cada par de fuentes de olor. Cada individuo fue probado solo una vez. Las hembras que no eligieron un brazo lateral en 15 minutos se registraron como "no respuesta" y se excluyeron del análisis de datos. Después de registrar cinco respuestas, el tubo Y se enjuagó con agua jabonosa y luego se limpió con acetona y se dejó secar durante 5 minutos. Las fuentes de olor se cambiaron posteriormente entre ios brazos laterales izquierdo y derecho para minimizar cualquier efecto espacial en la elección. Los dos tipos de plantas (intactas e inducidas) se usaron solo una vez para evaluar la respuesta de 10 hembras y luego se reemplazaron con plantas nuevas. El experimento con el tubo en Y se realizó en las siguientes condiciones ambientales: 25 ± 1 ° C y 60 ± 10% de HR.
Los adultos de D. citri se obtuvieron de una colonia establecida en el SWFREC (University of Florida) cuya procedencia original eran cítricos localizados en sus parcelas experimentales. Los parasitodes se colectaron en dichos campos experimentales. Se utilizaron hembras adultas recién emergidas de menos de 5 días en todos los ensayos.
Resultado
La exposición al volátil propanoato de (Z)-3-hexenilo a plantas intactas de cltrange Carrizo sobreexpresó significativamente ios tres marcadores estudiados (fig. 4A, B y C). Las plantas activadas expuestas 24 horas a propanoato de (Z)-3-hexenilo resultaron ser altamente atrayentes al parasitoide Tamarixia radiata (X 2 = 6,914; P = 0.0043) y se mostraron indiferentes frente a Diaphorina citri (X 2 = 1,429; P = 0.1160) (fig. 4D).
Ejemplo 5. Respuesta a la activación defensiva en cítricos en condiciones de campo
Metodología
Eficacia del uso de difusores cargados con HR en campo. Se seleccionó un campo de naranjas Valencia con alta presencia de brotes receptivos y una población de adultos de D. citri localizado en ios campos experimentales de SWFREC (University of Florida). El campo tenía una extensión aproximada de 0,3 ha. Se utilizaron plantas centinela que se colgaron en el interior de la copa del árbol. Las plantas centinelas eran plantones de Murraya panicuiata con brotes receptivos a la puesta de D, citri . Se utlizaron 7 plantones con difusor (difusor polimérico que se cargó con 1,5 ml de propanoato de (Z)-3-hexenilo y 7 plantones sin difusor. Cada plantón se distribuyó en el campo siguiendo un diseño de bloques al azar (utilizando fila de árboles como bloque) y en cada bloque se colocó un plantón con difusor y otro sin. Los plantones se localizaron a una distancia mínima entre ellos de 50 metros para evitar cualquier efecto borde.
Tras 4 días de la colocación de los plantones, éstos se recogieron del campo y se llevaron al laboratorio donde bajo lupa binocular se contó el número de huevos por brote en cada uno de los plantones.
Resultado
No se encontraron diferencias entre el número de brotes receptivos entre ambos tratamientos. Al igual que lo observado anteriormente en laboratorio y en invernadero, la colocación de los difusores del volátil consiguió reducir la puesta de D. citri en más de un 70% (Figura 5).
Aunque se han descrito experimentos específicos llevados a cabo con plantas de tomate y cítricos, el experto en la técnica entenderá que el compuesto descrito en la presente invención (propanoato de (Z)-3-hexenllo) será igualmente útil para su uso en la protección de otro tipo de plantas mediante el estímulo o inducción de mecanismos de defensa. Asimismo, aunque se han descrito experimentos en los que se han sometido plantas de tomate a ciertas plagas, el experto en la técnica entenderá que el compuesto descrito en la presente invención será igualmente útil para su uso en la protección de plantas frente a otras plagas.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Uso de al menos un compuesto de fórmula I
Figure imgf000029_0001
fórmula I donde R—CH3, -CH2-CH3 o -CH2-CH2-CH3,, o de una composición que lo comprende, para la protección de plantas frente a plagas mediante la estimulación de los mecanismos naturales de defensa de dichas plantas.
2. Uso, según la reivindicación 1, donde el compuesto de fórmula I es propanoato de (Z)-3-bexenilo.
3. Uso, según la reivindicación 1 ó 2, donde la protección de las plantas se produce mediante la repelencia de las plagas y/o la atracción de parasitoides de las plagas.
4. Uso, según la reivindicación cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, donde los mecanismos de defensa de las plantas provocan la repelencia de las plagas que se seleccionan de la lista que comprende: las moscas blancas Bemisia íabaci (Gennadius) y Tríaieurodes vaporariorum (Westwood), Aieurothríxus floccosus (Maskell), Dialeurodes citrí (Ashmead) y Paraleyrodes minei laccarino (Hemiptera: Aieyroididae), ios trips Frankliniella occidentalis Pergande, Pezothrips keltyanus Bagnall, Chaetanaphothríps orchidii (Moulton) y Thríps tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thrlpidae), las arañas rojas Tetranychus urtícae, Eutetranychus orientalis (Klein), Eutetranychus banksi (McGregor), T. urtícae, Panonychus citrí (McGregor) Koch y Tetranychus evansi Baker & Pritchard (Acari: Tetranychidae), los lepidópteros Tuta absoluta (Meyrick), Phyllocnistis citrella Stainton (Lepidoptera: Graciilariidae), Spodoptera exigua Hübner y Hellcoverpa armígera (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae) y ios psilidos Diaphorína citrí Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) y Trioza erytreae (Del Guercio) (Hemiptera: Psyllidae).
5. Uso, según la reivindicación cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 donde los mecanismos de defensa de las plantas provocan la atracción de los parasitoides seleccionados de la lista que comprende especies de los géneros: Encarsia spp., Aphytis spp, Cales spp., Eretmocerus spp., Aphellnus spp., (Hymenoptera: Aphelinidae), Aphidius spp. Lysiphlebus spp. (Hymenoptera: Braconidae) Metaphycus spp., Anagyrus spp. (Hymenoptera: Encyrtidae), Tamarixia spp. Citrostichus spp., Cirrospilus spp., Diglyphus spp. (Hymenoptera: Eulophidae), Tríssolcus spp., Telenomus spp. (Hymenoptera: Scelionidae) y Trichogramma spp. (Hymenoptera. Trichogrammatidae).
6. Uso, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, donde las plantas protegidas son plantas hortícolas o de cítrico.
7. Uso, según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, donde al menos un compuesto de la fórmula I, o de una composición que lo comprende, es aplicado a las plantas mediante difusores.
8. Método para protección de plantas frente a plagas mediante la estimulación de los mecanismos naturales de defensa de dichas plantas caracterizado porque comprende poner en contacto al menos un compuesto de fórmula I, o de una composición que los comprende, con las plantas:
Figure imgf000030_0001
formula I siendo R—CH3, -CH2-CH3 o -CH2-CH2-CH3,
9. Método, según la reivindicación 8, caracterizado por que el compuesto de fórmula I es propanoato de (Z)-3-hexenilo.
10. Método, según la reivindicación 8 ó 9, caracterizado por que el compuesto de fórmula I, o de una composición que lo comprende, es puesto en contacto con la planta mediante difusores.
11. Método, según la reivindicación 10, caracterizado por que el difusor es un emisor pasivo que consisten en un contenedor del compuesto de fórmula I configurado para permitir la difusión de dicho compuesto ai ambiente que rodea a la planta.
12. Método, según la reivindicación 10, caracterizado por que el difusor consiste en un nebulizador que produce un aerosol.
13. Método, según la reivindicación 10, caracterizado por que el difusor es una composición liquida o en gel que contiene el compuesto de la fórmula I y que está formulada para permitir la difusión de dicho compuesto al ambiente.
14. Método según cualquiera de las reivindicaciones 10 a 13, caracterizado por que la dosis de compuesto aplicada al ambiente que rodea a las plantas por el difusor está entre 25 mg/ha/día y 25 g/ha/día.
15. Método, según cualquiera de las reivindicaciones anteriores 8 a 14, caracterizado porque ios mecanismos naturales de defensa estimulados en las plantas provocan la repelencia de plagas seleccionadas de la lista que comprende: las moscas blancas Bemisia tabaci (Gennadius) y Tnaleurodes vaporariorum (Westwood), Aleuroíhrixus floccosus (Maskell), Diaíeurodes citri (Ashmead) y Paraleyrodes minei laccarino (Hemiptera: Aleyroididae), los trips Frankllniella occidentalis Pergande, Pezothrips kellyanus Bagnall, Chaetanaphothrips orchidii (Moulton) y Thrips tabaci Lindeman (Thysanoptera: Thripidae), las arañas rojas Tetranychus urticae, Eutetranychus orientalis (Klein), Eutetranychus banksi (McGregor), T, urticae, Panonychus citri (McGregor) Koch y Tetranychus evansi Baker & Pritchard (Acari: Tetranychidae), los lepidópteros Tufa absoluta ( Meyrick), Phyllocnisíis citreiia Stainton (Lepidoptera: Gracillariidae), Spodoptera exigua Hübner y Hellcoverpa armígera (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae); y los psílidos Diaphorina citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) y Trioza erytreae (Del Guercio) (Hemiptera: Psyilidae).
18. Método, según cualquiera de las reivindicaciones 8 a 15, caracterizado porque los mecanismos naturales de defensa estimulados en las plantas provocan la atracción de parasitoides seleccionados de la lista que comprende especies de ios géneros: Encarsia spp., Aphytis spp. Cates spp., Eretmocerus spp., Aphellnus spp., (Hymenoptera: Aphelinidae), Aphidius spp. Lysiphlebus spp. (Hymenoptera: Braconidae) Metaphycus spp., Anagyrus spp. (Hymenoptera: Encyrtidae), Tamaríxia spp. Citrostichus spp., Cirrospiius spp., Diglyphus spp. (Hymenoptera: Eulophidae), Trissolcus spp., Telenomus spp. (Hymenoptera: Scelionidae) y Trichogramma spp. (Hymenoptera. T richogrammatidae).
17, Método, según cualquiera de las reivindicaciones 8 a 16, caracterizado porque la planta es una planta hortícola o un cítrico.
PCT/ES2021/070259 2020-04-21 2021-04-20 Uso de ésteres de (z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas WO2021214360A1 (es)

Priority Applications (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
MX2022013232A MX2022013232A (es) 2020-04-21 2021-04-20 Uso de esteres de (z)-3-hexenilo y metodo para proteger plantas frente a plagas.
EP21792498.4A EP4140302A4 (en) 2020-04-21 2021-04-20 USE OF (Z)-3-HEXENYL ESTERS AND METHOD FOR PROTECTING PLANTS AGAINST PARASITES
US17/920,656 US20230240290A1 (en) 2020-04-21 2021-04-20 Use of (z)-3-hexenyl esters and method for protecting plants against pests
CA3178669A CA3178669A1 (en) 2020-04-21 2021-04-20 Use of (z)-3-hexenyl esters and method for protecting plants against pests
IL297478A IL297478A (en) 2020-04-21 2021-04-20 Use of esters of (g)-3-hexenyl and a method for protecting plants from pests
BR112022021347A BR112022021347A2 (pt) 2020-04-21 2021-04-20 Uso de ésteres (z)-3-hexenila e método para proteger plantas contra pragas

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ES202030330A ES2763224B2 (es) 2020-04-21 2020-04-21 Uso de ésteres de (Z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas
ESP202030330 2020-04-21

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2021214360A1 true WO2021214360A1 (es) 2021-10-28

Family

ID=70776988

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/ES2021/070259 WO2021214360A1 (es) 2020-04-21 2021-04-20 Uso de ésteres de (z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas

Country Status (8)

Country Link
US (1) US20230240290A1 (es)
EP (1) EP4140302A4 (es)
BR (1) BR112022021347A2 (es)
CA (1) CA3178669A1 (es)
ES (1) ES2763224B2 (es)
IL (1) IL297478A (es)
MX (1) MX2022013232A (es)
WO (1) WO2021214360A1 (es)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106614583A (zh) * 2016-12-12 2017-05-10 江苏省农业科学院 一种植物源引诱剂及其应用
CN110074143A (zh) * 2019-05-08 2019-08-02 金华市农业科学研究院 一种引诱茶籽象甲成虫的组合物及其制备方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA201390851A1 (ru) * 2010-12-10 2014-01-30 Оберн Юниверсити Инокуляты, включающие бактерии bacillus для индукции продукции летучих органических соединений в растениях
ES2623386B2 (es) * 2017-05-11 2018-03-02 Universitat Politècnica De València Uso de un compuesto para la protección de plantas mediante cierre estomático y método de protección de plantas mediante cierre estomático que comprende aplicar a las plantas dicho compuesto

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106614583A (zh) * 2016-12-12 2017-05-10 江苏省农业科学院 一种植物源引诱剂及其应用
CN110074143A (zh) * 2019-05-08 2019-08-02 金华市农业科学研究院 一种引诱茶籽象甲成虫的组合物及其制备方法

Non-Patent Citations (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BOUAGGA ET AL., JOURNAL OF PEST SCIENCE, vol. 91, 2018, pages 55 - 64
BOUAGGA ET AL., PEST MANAGEMENT SCIENCE, vol. 76, 2020, pages 561 - 567
ENGELBERTH, J.H. T. ALBORN, PROC. NATL. ACAD. SCI., vol. 101, 2004, pages 1781 - 1785
GASMI LAILA, MARTÍNEZ-SOLÍS MARÍA, FRATTINI ADA, YE MENG, COLLADO MARÍA CARMEN, TURLINGS TED C. J., ERB MATTHIAS, HERRERO SALVADOR: "Can Herbivore-Induced Volatiles Protect Plants by Increasing the Herbivores’ Susceptibility to Natural Pathogens?", APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, AMERICAN SOCIETY FOR MICROBIOLOGY, US, vol. 85, no. 1, 1 January 2019 (2019-01-01), US , pages e01468-18, XP055868247, ISSN: 0099-2240, DOI: 10.1128/AEM.01468-18 *
GEORG VON MREY; NATHALIE VEYRAT; GEORGE MAHUKU; RAYMUNDO LOPEZ VALDEZ; TED C.J. TURLINGS; MARCO DALESSANDRO;: "Dispensing synthetic green leaf volatiles in maize fields increases the release of sesquiterpenes by the plants, but has little effect on the attraction of pest and beneficial insects", PHYTOCHEMISTRY, ELSEVIER, AMSTERDAM , NL, vol. 72, no. 14, Amsterdam , NL , pages 1838 - 1847, XP028256720, ISSN: 0031-9422, DOI: 10.1016/j.phytochem.2011.04.022 *
GIRON-CALVA PATRICIA SARAI; LI TAO; BLANDE JAMES D.: "Volatile-Mediated Interactions between Cabbage Plants in the Field and the Impact of Ozone Pollution", JOURNAL OF CHEMICAL ECOLOGY, SPRINGER, NL, vol. 43, no. 4, 29 March 2017 (2017-03-29), NL , pages 339 - 350, XP036216348, ISSN: 0098-0331, DOI: 10.1007/s10886-017-0836-x *
PEREZ-HEDO ET AL., JOURNAL OF PEST SCIENCE, vol. 3, 2015, pages 543 - 554
PéREZ-HEDO MERITXELL; RAMBLA JOSE LUIS; GRANELL ANTONIO; URBANEJA ALBERTO: "Biological activity and specificity of Miridae-induced plant volatiles", BIOCONTROL, KLUWER ACADEMIC PUBLISHERS, DORDRECHT, NL, vol. 63, no. 2, 23 November 2017 (2017-11-23), NL , pages 203 - 213, XP036456224, ISSN: 1386-6141, DOI: 10.1007/s10526-017-9854-4 *
PEREZ-HEDO, M. ET AL., BIOCONTROL, vol. 63, 2018, pages 203 - 213
See also references of EP4140302A4
TURLINGS, T.C.J.ERB, M., ANNU. REV. ENTOMOL., vol. 63, 2018, pages 433 - 452
URBANEJA-BERNAT ET AL., JOURNAL OF APPLIED ENTOMOLOGY, vol. 139, 2015, pages 61 - 167

Also Published As

Publication number Publication date
MX2022013232A (es) 2023-01-24
EP4140302A1 (en) 2023-03-01
CA3178669A1 (en) 2021-10-28
IL297478A (en) 2022-12-01
ES2763224A1 (es) 2020-05-27
ES2763224B2 (es) 2021-02-23
US20230240290A1 (en) 2023-08-03
EP4140302A4 (en) 2024-05-22
BR112022021347A2 (pt) 2023-01-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Smart et al. Role of semiochemicals in integrated pest management
Navarro-Llopis et al. Mass trapping for fruit fly control
Tremblay et al. Effects of bird predation on some pest insect populations in corn
JP6467177B2 (ja) 花の香り由来の天敵昆虫誘引成分およびその利用
Raja et al. Efficacy of the entomopathogenic nematode Heterorhabditis bacteriophora using different application methods in the presence or absence of a natural enemy
Sanda et al. Biological invasion of tomato leaf miner, Tuta absoluta (Meyrick) in Nigeria: problems and management strategies optimization: a review
Sampson Management of the western flower thrips on strawberry
ES2351449A1 (es) Procedimiento para la producción de una especie de parasitoide autóctono y utilización del mismo para el control de lepidópteros plaga de cultivos.
Leon et al. Seed production and control of sicklepod (Senna obtusifolia) and pitted morningglory (Ipomoea lacunosa) with 2, 4-D, dicamba, and glyphosate combinations
ES2763224B2 (es) Uso de ésteres de (Z)-3-hexenilo y método para proteger plantas frente a plagas
Hashemi Influence of Pheromone Trap Color and Placement on Catch of Male Potato Tuber Moth, Phthorimaea operculella (Zeller, 1873).
KR100421779B1 (ko) 한국산 곤충병원성 선충 및 그에 의한 방제법
Huiting et al. Biology, control and luring of the cockchafer, Melolontha melolontha: literature report on biology, life cycle and pest incidence, current control possibilities and pheromones
Otieno Integration of soil-applied azadirachtin with predators, entomopathogens and optical/chemical traps for the management of western flower thrips, Frankliniella occidentalis Pergande (Thysanoptera: Thripidae)
Montemayor et al. Is UV-C light compatible with biological control of twospotted spider mite?
KR101102113B1 (ko) 친환경적인 녹지공간 병·해충관리 시스템 및 방법
Cutler Integrated pest management (IPM): from theory to application
Marsh Use of Curry Leaf (Murraya koenigii) and Volkamer Lemon (Citrus volkameriana) as Potential Trap Crops for the Asian Citrus Psyllid (Diaphorina citri) in a Commercial Citrus Grove
Kwon et al. An Evidence to Use Cotes/a plutellae (Kurdjumov)(Hymenoptera: Braconidae) as a Field Control Agent against Diamondback Moth, Plutella xylostella L (Lepidoptera: Plutellidae)
Skënderasi et al. MONITORING THE BIOLOGY OF THE CORN ROOTWORM (DIABROTICA VIRGIFERA) FOR THE REGION OF KORÇA
Puppato Development of new tools for an agroecological management of spotted wing drosophila, Drosophila suzukii
Nishantha et al. Moth Repellent Yellow-Specific Bulbs for the Management of Lepidopteran Pod Borers and Leaf Eating Caterpillars on Vegetable Pest Management Programs in Sri Lanka
Baruah et al. Chapter-6 Insect Pest Management in Organic Farming: An Indian Perspective
UA134096U (uk) Інтегрований метод біозахисту рослин з використанням комплексу ентомофагів (chrysopa cornea steph, trichogramma, habrobracon hebertor say)
Hazir et al. Efficacy of the entomopathogenic nematode Heterorhabditis bacteriophora using different application...

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 21792498

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

REG Reference to national code

Ref country code: BR

Ref legal event code: B01A

Ref document number: 112022021347

Country of ref document: BR

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 3178669

Country of ref document: CA

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2021792498

Country of ref document: EP

Effective date: 20221121

REG Reference to national code

Ref country code: BR

Ref legal event code: B01E

Ref document number: 112022021347

Country of ref document: BR

Free format text: 1) FAVOR EFETUAR, EM ATE 60 (SESSENTA) DIAS, O PAGAMENTO DE GRU CODIGO DE SERVICO 260 PARAA REGULARIZACAO DO PEDIDO, CONFORME ART 2O 1O DA RESOLUCAO 189/2017 E NOTA DEESCLARECIMENTO PUBLICADA NA RPI 2421 DE 30/05/2017, UMA VEZ QUE A PETICAO NO 870220108774DE 23/11/2022 APRESENTA DOCUMENTOS REFERENTES A 3 SERVICOS DIVERSOS (COMPLEMENTACAO DATRADUCAO, MODIFICACAO DE PAGINAS JA ENVIADAS NO PEDIDO E APRESENTACAO DE PROCURACOES) TENDOSIDO PAGA SOMENTE 2 RETRIBUICAO. DEVERA SER PAGA MAIS 1 (UMA) GRU CODIGO DE SERVICO 260ALEM DO PAGAMENTE DA GRU 207 DE RESPOSTA A ESSA EXIGENCIA. 2) APRESENTE NOVO CONTEUDOELETRONICO DE LISTAGEM DE SEQUENCIAS BIOLOGICAS, UMA VEZ QUE O APRESENTADO NA PETICAO NO870220

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 112022021347

Country of ref document: BR

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20221020