WO2021166022A1 - 試料保存用組成物 - Google Patents

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WO2021166022A1
WO2021166022A1 PCT/JP2020/005991 JP2020005991W WO2021166022A1 WO 2021166022 A1 WO2021166022 A1 WO 2021166022A1 JP 2020005991 W JP2020005991 W JP 2020005991W WO 2021166022 A1 WO2021166022 A1 WO 2021166022A1
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PCT/JP2020/005991
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博嘉 西川
民代 小林
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日本ベクトン・ディッキンソン株式会社
国立研究開発法人国立がん研究センター
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    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5094—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for blood cell populations
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
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    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5044—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
    • G01N33/5047—Cells of the immune system
    • G01N33/505—Cells of the immune system involving T-cells

Definitions

  • the present disclosure relates to a composition for storing a sample.
  • the present disclosure further relates to a method for storing a sample, a method for preparing a sample suspension containing a target substance from the stored sample, and a method for analyzing the target substance in the sample suspension.
  • Immune checkpoint inhibitors which are attracting attention as a new cancer treatment method, inhibit immunosuppressive molecules such as PD-1 or CTLA-4 expressed on immune cells, and the antitumor immune response of immune cells. It is a drug that enhances cancer, and has been shown to have a strong and persistent tumor retraction effect on various types of cancer, including malignant melanoma and gastric cancer. It is known that there are effective patients (responders) and ineffective patients (non-responders) for immune checkpoint inhibitors, and clinically, immune checkpoint inhibitors are treated before administration. Tests (companion diagnostics) are being performed to predict responsiveness.
  • PD-L1 is a surface molecule of tumor cells.
  • PD-L1 IHC 22C3 which is approved as a companion diagnostic agent of Keytruda (registered trademark).
  • tumorDx "Dako" is an assay kit based on immunohistochemical staining using an anti-PD-L1 mouse monoclonal antibody.
  • immune cells including lymphocytes and macrophages play important roles in the antitumor immune response, the presence or absence of these immune cells and the expression of molecules in the immune cells are examined.
  • PD-L1 tests on tumor cells are used to predict the effects of immune checkpoint inhibitors. It is becoming clear that alone is not enough.
  • immune cells There are several types of immune cells, and there are many molecules expressed in immune cells, but the number of markers that can be detected at one time by immunohistochemical staining is extremely limited to about one or two. Therefore, in order to examine in detail the presence or absence of various immune cells around the tumor tissue and the expression state of molecules in the immune cells, a new analytical method capable of detecting a large number of markers is required. As such an analysis method, a method of multicolor analysis using a flow cytometer has been attracting attention in recent years, but it has not been put into practical use.
  • cell extraction is performed by mechanically dispersing a sample tissue using a mixer, a homogenizer, or the like and centrifuging it.
  • a mechanical dispersion method also destroys or damages the cells to be analyzed at a high rate, so that a sufficient number of live and intact cells can be obtained for analysis. Have difficulty.
  • Patent No. 4947948 Japanese Unexamined Patent Publication No. 2012-116823
  • the invention according to the present disclosure for solving the above problems has the following aspects.
  • a composition for storing a sample which contains albumin and lactic acid or a salt thereof, and has a sodium ion concentration of 50 to 300 mmol / L in the composition.
  • composition according to (1) wherein albumin is contained in an amount of 0.01 to 2% (w / v).
  • BSA bovine serum albumin
  • composition according to any one of (1) to (5) which comprises 0.01 to 10 mmol / L of potassium dihydrogen phosphate and 0.01 to 50 mmol / L of disodium hydrogen phosphate. thing.
  • composition according to (7), wherein the polysaccharide is selected from the group consisting of trehalose, fructooligosaccharides, indigestible dextrins, and mixtures thereof.
  • composition according to any one of (1) to (9), wherein the sample is collected from a mammal.
  • composition according to (10), wherein the mammal is selected from the group consisting of humans, dogs, rats and mice.
  • a method for preparing a sample suspension containing a target substance from a sample wherein a) the step of providing the composition according to any one of (1) to (11), and b) the composition. It includes a step of immersing the sample and c) a step of treating the sample with an enzyme to prepare a sample suspension.
  • a method for analyzing a target substance in a sample wherein a) the step of providing the composition according to any one of (1) to (11) and b) the step of immersing the sample in the composition. And c) a step of treating the sample with an enzyme to prepare a sample suspension, and d) a step of analyzing an object in the sample suspension.
  • Step d) by at least one selected from the group consisting of flow cytometry, mass cytometry, gene analysis including single cell gene analysis, imaging, immunoassay, mass spectrometry, spectroscopic analysis, and combinations thereof.
  • compositions and sample storage methods of the present disclosure make it possible to store samples, especially cells or tissues, while maintaining their state in the body. Further, according to the composition and the sample storage method of the present disclosure, the sample can be stored for a long time, so that the sample can be transported over a long distance. Therefore, for example, it is possible to transport a sample collected in a foreign country to Japan while maintaining the state of cells.
  • the target substance contained in the sample can be made into a suspension while maintaining the state in the body.
  • the sample suspension can be prepared under milder conditions than the conventional method, so that a larger number of living cells can be locally present in the body than the conventional dispersion method. It can be extracted while maintaining it.
  • the target substance contained in the sample can be analyzed while maintaining the state in the body. This makes it possible to analyze cells as they are in the body, and it is expected that responsiveness to drugs can be predicted more accurately than before, for example, in companion diagnostics related to immune checkpoint inhibitors. Will be done.
  • the results (control) of the tumor tissue analyzed by flow cytometry according to the method described in Example 9 are shown.
  • the result (48 hours later) of the analysis of the tumor tissue by flow cytometry according to the method described in Example 9 is shown.
  • the result (72 hours later) of the analysis of the tumor tissue by flow cytometry according to the method described in Example 9 is shown.
  • composition for storing samples is a composition for storing a sample, which contains albumin and lactic acid or a salt thereof, and has a sodium ion concentration of 50 to 300 mmol / L in the composition.
  • the composition of the present disclosure contains albumin.
  • Albumin is a water-soluble protein contained in animal and plant cells and body fluids.
  • Albumin that can be used in one embodiment of the compositions of the present disclosure includes serum albumin contained in vertebrate serum, egg white albumin contained in egg white, lactic albumin contained in milk, and seed albumin contained in plant seeds. Etc. are included. Examples of vertebrates include, but are not limited to, humans, cows, horses, rabbits and the like.
  • albumin is preferably serum albumin, more preferably human-derived, bovine-derived, or horse-derived albumin, and most preferably bovine serum albumin (BSA).
  • BSA bovine serum albumin
  • albumin is 0.01-2% (w / v), preferably 0.05-1% (w / v), more preferably 0.1-0.5% (w / v). Most preferably, it is contained in the composition at a concentration of 0.1 to 0.3% (w / v).
  • composition of the present disclosure contains lactic acid or a salt thereof.
  • "Lactic acid or a salt thereof” means lactic acid, or any lactate that dissolves in water to produce lactic acid ions and cations.
  • Examples of the lactate include, but are not limited to, lithium lactate, sodium lactate, potassium lactate, calcium lactate, ammonium lactate, aluminum lactate, magnesium lactate and the like. Lactic acid or a salt thereof is preferably sodium lactate.
  • the lactic acid or salt thereof has a concentration of lactic acid ions in the composition of 0.1 to 100 mmol / L, preferably 1.0 to 50 mmol / L, more preferably 1.0 to 30 mmol / L, most preferably. It is contained in the composition so as to preferably be 3.0 to 20 mmol / L.
  • Lactic acid has two three-dimensional structures, D-form and L-form, which are related to enantiomers, and lactate also has a three-dimensional structure corresponding to the structure of lactic acid.
  • the enantiomer means a stereoisomer having an image-mirror image relationship in which three-dimensional structures cannot be superimposed.
  • Equal mixture of D-form and L-form is called racemic or DL-form.
  • the lactic acid or a salt thereof is preferably L-form or DL-form, and more preferably L-form.
  • compositions of the present disclosure contain sodium ions at a concentration of 50-300 mmol / L, preferably 80-250 mmol / L, more preferably 100-200 mmol / L.
  • concentration of 50-300 mmol / L preferably 80-250 mmol / L, more preferably 100-200 mmol / L.
  • the sodium ion concentration is adjusted by adding a substance that dissolves in water and produces sodium ions.
  • substances that generate sodium ions include sodium hydroxide, sodium chloride, sodium carbonate, sodium nitrate, sodium sulfate, sodium hydrogensulfate, sodium acetate, sodium oxalate, sodium citrate, sodium dihydrogen phosphate, and dihydrogen phosphate. Examples include, but are not limited to, sodium and the like.
  • the substance that produces sodium ions is preferably sodium chloride.
  • the composition of the present disclosure may further contain potassium dihydrogen phosphate and disodium hydrogen phosphate.
  • potassium dihydrogen phosphate is added to the composition at a concentration of 0.01 to 10 mmol / L, preferably 0.05 to 5.0 mmol / L, more preferably 1.0 to 2.5 mmol / L.
  • Disodium hydrogen phosphate is included in the composition at a concentration of 0.01 to 50 mmol / L, preferably 1.0 to 25 mmol / L, more preferably 5 to 15 mmol / L.
  • the composition of the present disclosure preferably does not contain calcium ions.
  • the expression of some molecules, especially CTLA-4 may be increased in cells. Therefore, with a composition containing calcium ions, it is difficult to store the sample while maintaining the state immediately after collection.
  • the composition of the present disclosure may contain a polysaccharide.
  • a polysaccharide is a compound formed by dehydration bonding of two or more monosaccharides, their substituted derivatives, or a mixture thereof.
  • Polysaccharides include, for example, disaccharides such as sucrose, lactose, maltose and trehalose, trisaccharides such as raffinose and maltotriose, tetrasaccharides such as acarbose and starch, oligosaccharides such as malto-oligosaccharides and fructo-oligosaccharides, and many more. Examples thereof include, but are not limited to, glycogen composed of molecules, starch, dextrin and the like.
  • the polysaccharide is preferably selected from the group consisting of trehalose, fructooligosaccharides, indigestible dextrins, and mixtures thereof, more preferably trehalose.
  • the compositions of the present disclosure are 0.01-3.0% (w / v), preferably 0.03-1.0% (w / v), more preferably 0.05-0. Contains polysaccharides at a concentration of 5.5% (w / v).
  • the sample preserved by the compositions of the present disclosure is selected from cells, tissues, or mixtures thereof.
  • the cells that can be preserved by the compositions of the present disclosure include various cells such as lymphocytes, stem cells, skin cells, mucosal cells, hepatocytes, pancreatic islet cells, nerve cells, chondrocytes, endothelial cells, epithelial cells, bones. Examples include, but are not limited to, cells, muscle cells, bone marrow cells, hematopoietic stem cells, tumor cells and the like.
  • the cells conserved by the compositions of the present disclosure may be living cells or dead cells, preferably including living cells.
  • tissue means a population of many types of cells. Tissues that can be preserved by the compositions of the present disclosure include connective tissue, including epithelial tissue, bone tissue, cartilage tissue, blood cell tissue, nerve tissue, muscle tissue, and tumor tissue derived from these tissues. Is done. The tissue may be collected from an organism or may be artificially constructed by culturing cells. The tissue preserved by the compositions of the present disclosure is preferably tumor tissue.
  • cells, tissues, or mixtures thereof are preferably taken from animals, more preferably from mammals.
  • Mammals include, but are not limited to, for example, humans, orangutans, chimpanzees, monkeys, horses, cows, pigs, dogs, rabbits, mice, rats, hamsters, guinea pigs and the like.
  • the mammal is preferably selected from the group consisting of humans, dogs, mice, rats, hamsters, guinea pigs, more preferably humans.
  • compositions of the present disclosure are particularly suitable for the preservation of tumor tissues collected from humans.
  • sample storage method The present disclosure further provides a method of storing a sample.
  • Preservation of the sample can be carried out by any method as long as the sample can be immersed in the composition of the present disclosure.
  • the immersion of the sample may be carried out by putting the collected sample in the container in which the composition is dispensed, or by putting the collected sample in the container and pouring the composition of the present disclosure later. May be good.
  • the storage temperature is preferably about 0 ° C. to about 4 ° C., more preferably about 0 ° C. to about 1 ° C., and more than 0 ° C. to 1 ° C. or less.
  • the temperature at which the preservation solution and the sample do not freeze is most preferable. If the storage temperature is lower than 0 ° C., the sample and composition may freeze and the state of the sample may not be maintained. Even if the storage temperature exceeds 4 ° C, the state of the sample may not be maintained.
  • a sample particularly a collected cell, tissue, or a mixture thereof, can be stored for a long time such as 24 hours, 48 hours, or 72 hours while maintaining the state immediately after collection.
  • the present disclosure further provides a method for preparing a sample suspension containing an object.
  • the method for preparing the sample suspension is as follows: a) a step of providing the composition of the present disclosure, b) a step of immersing the sample in the composition of the present disclosure, and c) treating the sample with an enzyme to prepare the sample suspension. Includes steps to prepare.
  • compositions of the present disclosure can be performed in any way, including, for example, dispensing into a container with a lid.
  • the step of immersing the sample in the composition of the present disclosure can be performed by any method as long as the sample can be immersed.
  • the method of immersing the sample follows the description in the [Sample storage method] section.
  • the step of enzymatically treating a sample to prepare a sample suspension should be performed in any manner known to those skilled in the art, provided that the enzyme treatment can disperse the sample, especially cells, tissues, or mixtures thereof. Can be done.
  • Enzymes that can be used for enzyme treatment include, but are not limited to, for example, collagenase, elastase, hyaluronidase, neutral proteases including dispase®, glycosidases, deoxyribonuclease (DNase), trypsin and the like. ..
  • the enzyme treatment may also be performed using an existing cell dispersion or the like.
  • the existing cell dispersion include BD Horizon (trademark) Dri Tumor & Tissue Dissociation Reagent (TTDR) available from Becton Dickinson Corporation.
  • TTDR Tumor & Tissue Dissociation Reagent
  • the enzymatic treatment in the method of the present disclosure can sufficiently disperse the sample, particularly cells or tissues, under milder conditions than before.
  • the effect of enzyme treatment on dispersing cells or tissues varies depending on factors such as the type of enzyme used, the concentration of the enzyme, the treatment temperature, and the treatment time. In particular, the type of enzyme used and the concentration of the enzyme are determined by the cells. Or it greatly affects the dispersed state of the organization.
  • measures such as selecting an enzyme that strongly acts on the substrate or increasing the concentration of the enzyme are taken, but at the same time, the yield and viability of the cell are reduced. It also increases the risk of cell dysfunction. Therefore, until now, it has been difficult to achieve a high cell viability and to sufficiently disperse the sample while maintaining the state of the cells.
  • the sample is sufficiently dispersed, and therefore the cells contained in the sample. It is possible to increase the viability and yield of the cells, and to disperse the cells without changing the state of the cells.
  • conventional storage solutions long-term immersion of samples, especially cells, tissues or mixtures thereof, changes the state of the cells or tissues and therefore cannot be soaked for long periods of time, and therefore under mild conditions. The cells or tissues could not be sufficiently dispersed.
  • the sample since the sample can be immersed for a long time, the sample becomes soft when the liquid composition sufficiently permeates the sample. Since the enzyme can easily act not only on the surface of the sample but also on the inside, it is considered that the sample is sufficiently dispersed even by the enzyme treatment under milder conditions than before.
  • the enzyme treatment can be carried out at any temperature, but is preferably 1 to 45 ° C, more preferably 10 to 40 ° C, and most preferably 15 to 15 to obtain sufficient dispersion without changing the state of the sample. It is carried out at 30 ° C.
  • the enzyme treatment may be carried out while controlling the temperature using a device such as a constant temperature water tank capable of keeping the temperature constant, but it can also be carried out at room temperature. Room temperature refers to a state in which neither heating nor cooling is performed from the outside.
  • the time of the enzyme treatment is not particularly limited, but the treatment time is preferably about 1 to about 60 minutes, more preferably about 5 to 30 minutes, for the purpose of not changing the state of the sample and obtaining sufficient dispersion. , More preferably about 10-20 minutes.
  • the enzyme treatment may be performed in a stationary state, or may be performed while stirring or shaking. In order for the enzyme to act evenly throughout the sample, the enzyme treatment is preferably carried out with gentle shaking at a strength that does not damage the cells.
  • the step of preparing the sample suspension may include any additional operations such as filtration, centrifugation, and staining.
  • the sample suspension prepared by the method of the present disclosure contains the target product.
  • the target substance may be any substance that can be contained in the sample.
  • Examples of the target product include, but are not limited to, cells, genes, proteins including antibodies, amino acids, and chemical substances containing neurotransmitters.
  • the object is a cell.
  • the cell may be a living cell or a dead cell, but the object preferably comprises a living cell.
  • Examples of cells that can be targets include immune cells, erythrocytes, platelets, tumor cells, stem cells, skin cells, mucosal cells, hepatocytes, pancreatic islet cells, nerve cells, chondrocytes, endothelial cells, epithelial cells, and bone cells. Examples include, but are not limited to, muscle cells, bone marrow cells, hematopoietic stem cells, and the like.
  • Immune cells include lymphocytes containing T cells, B cells, and NK cells, granulocytes containing neutrophils, eosinophils, and basophils, dendritic cells, and macrophages.
  • the object is preferably an immune cell, more preferably a tumor infiltrating immune cell, most preferably a tumor infiltrating lymphocyte (TIL).
  • TIL tumor infiltrating lymphocyte
  • TIL Tumor-infiltrating immune cells mean immune cells infiltrating into tumor tissue, among which lymphocytes are particularly referred to as TIL.
  • TIL is known to express cell surface molecules such as CD4, CD8, CTLA-4, and PD-1, depending on the type of cell.
  • TIL includes CD4 positive (CD4 + ) T cells, CD8 positive (CD8 + ) T cells, regulatory T cells (Treg) and NK cells.
  • the disclosure further provides a method of analyzing a sample.
  • the methods for analyzing a sample include a) a step of providing the composition according to claims 1 to 10, b) a step of immersing the sample in the composition, and c) treating the sample with an enzyme to suspend the sample. It includes a step of preparing a turbid solution and d) a step of analyzing an object in the sample suspension. Steps a) to c) are in accordance with the description in the section [Method for preparing sample suspension].
  • Analytical methods include, but are not limited to, flow cytometry, mass cytometry, gene analysis including single cell gene analysis, imaging, immunoassay, mass spectrometry, spectroscopic analysis and combinations thereof.
  • the analytical methods are preferably flow cytometry and mass cytometry, more preferably flow cytometry.
  • the sample can be analyzed without changing the target substance contained in the sample, particularly the cells from the state immediately after collection.
  • the analysis method of the present disclosure is suitable for analysis of cells contained in tissues, and particularly suitable for analysis of TIL in tumor tissues by flow cytometry. According to the analysis method of the present disclosure, more living cells can be analyzed while being maintained in the patient's body. Therefore, the analytical methods of the present disclosure are expected to be useful for accurate prediction of drug responsiveness and patient prognosis, for example in companion diagnostics related to immune checkpoint inhibitors.
  • the analysis method of the present disclosure enables long-distance transportation of the sample because the collected sample can be stored for a long time while being maintained in the state immediately after collection. Therefore, according to the method of the present disclosure, for example, a sample collected in a hospital can be transported to a distant analysis institution for analysis.
  • Performance of the composition according to the present disclosure by analyzing the number of living cells and the proportion of each cell in each cell population from the results of labeling the cells contained in the sample suspension and analyzing by flow cytometry.
  • the cells to be analyzed were labeled with the reagents shown in Table 1 for human-derived samples and Table 2 for mouse-derived samples.
  • BD Harmingen (trademark) Human BD Fc Block (trademark) (BD) was added before antibody staining in order to prevent non-specific binding of the antibody.
  • both the human-derived sample and the mouse-derived sample were subjected to cell membrane fixation permeation treatment by BD Harmingen (trademark) Transcription Factor Buffer Set (BD), and intracellular FoxP3 molecule was stained with an antibody.
  • lymphocytes> CD3 + cells> CD4 + cells or CD8 + cells were gated in this order, and among the CD4 + cells, FoxP3 was positive and CD45RA was Negative cells were designated as Treg (regulatory T cells).
  • Treg regulatory T cells
  • the proportion of each cell is the proportion of lymphocytes in the living cell population, the proportion of CD3 + cells in the lymphocyte population, the proportion of CD3 + CD4 + cells or CD8 + cells in the cell population, and CD4. + Means the percentage of Treg in the cell population.
  • CTLA-4 + cells and PD-1 + cells were further gated, respectively.
  • the number of cells per tissue (mg) was calculated using the absolute number count beads BD Trucount TM Absolute Counting Tubes (Becton, Dickinson and Company, hereinafter also referred to as “BD”).
  • Example 1 Evaluation of the effect of BSA 1
  • the components shown in Table 3 were dissolved in ultrapure water to prepare Composition 1 and Composition 2.
  • About 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of colorectal cancer-derived tumor tissue removed from the patient was mixed with about 15 mL of the composition and stored at a temperature of 0 ° C to 1 ° C. After 24 and 48 hours, the composition was removed with an ejector, 7 mL of TTDR (BD) was added, and the tissues were enzymatically treated with gentle shaking at room temperature for 15 minutes.
  • the reagents listed in Table 1 were then added to label the cells. After labeling, the sample suspension was washed and analyzed with a flow cytometer BD FACSLiric TM (BD). Controls were operated in the same manner, except that they were not stored with the composition.
  • BD flow cytometer BD FACSLiric TM
  • composition 2 containing BSA enhances the ability to maintain the survival of cells as compared with the composition 1 containing no BSA. More interestingly, more live cells were detected in the tissues preserved in Composition 2 than in controls.
  • Example 2 Evaluation of the effect of BSA 2
  • the components shown in Table 5 were dissolved in ultrapure water to prepare compositions 3 to 5. Subsequently, 6 pieces of 1 ⁇ 10 PBMCs derived from healthy subjects were mixed with about 5 mL of the composition and stored at a temperature of 0 ° C. to 1 ° C. After 24 hours, the reagents listed in Table 1 were added and the cells were labeled. After labeling, the sample suspension was washed and analyzed with a flow cytometer.
  • Example 3 Evaluation of the effect of lactate ion concentration
  • the components shown in Table 7 were dissolved in ultrapure water to prepare compositions 6-9. Subsequently, about 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of colon cancer-derived tumor tissue removed from the patient was added to the composition 6 to about 15 mL, and about 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of lung cancer-derived tumor tissue was added to the composition. 7-9 Immersed in about 15 mL and stored at a temperature of 0 ° C to 1 ° C. After 24 hours, the composition was removed with an ejector, 7 mL of TTDR was added, and the tissue was enzymatically treated with gentle shaking for 15 minutes at room temperature.
  • Example 4 Evaluation of influence of sodium ion concentration
  • the components shown in Table 11 were dissolved in ultrapure water to prepare compositions 10 to 13. Subsequently, about 20 mg (2 pieces: about 10 mg / piece) of the spleen removed from the mouse was immersed in about 15 mL of the composition and stored at a temperature of 0 ° C. to 1 ° C. After 24 hours, the composition was removed with an ejector, 7 mL of TTDR was added, and the tissue was enzymatically treated with gentle shaking for 15 minutes at room temperature. Next, the reagents listed in Table 2 were added to label the cells. After labeling, the sample suspension was washed and analyzed with a flow cytometer. Controls were operated in the same manner except that the excised tissue was immediately enzymatically treated without storage with the composition.
  • lymphocytes, CD4 + cells, Treg, and CD8 + cells were detected in the same proportion as the control.
  • CD3 + cells were detected in Composition 9 and Composition 10 at similar rates as controls.
  • the sodium ion concentration in the composition was low, the expression of PD-1 tended to increase.
  • compositions 14 to 16 having the following compositions.
  • about 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of colorectal cancer-derived tumor tissue removed from the patient was immersed in about 15 mL of the composition and stored at a temperature of 0 ° C. to 1 ° C.
  • the composition was removed with an ejector, 7 mL of TTDR was added, and the tissue was enzymatically treated with gentle shaking for 15 minutes at room temperature.
  • the reagents listed in Table 1 were added to label the cells. After labeling, the sample suspension was washed and analyzed with a flow cytometer. Controls were operated in the same manner except that the excised tissue was immediately enzymatically treated without storage with the composition.
  • Composition 17 was prepared by adding 58 mL of ultrapure water to 942 mL of GIBCO® D-PBS (-) (Thermo Fisher Scientific, Catalog Number: 14190), followed by BSA and sodium L-lactate. Subsequently, about 20 mg (2 pieces: about 10 mg / piece) of the spleen removed from the mouse was immersed in about 15 mL of the composition and stored on ice and at 4 ° C. After 48 hours, the composition was removed with an ejector, 7 mL of TTDR was added, and the tissue was enzymatically treated with gentle shaking at room temperature for 15 minutes. Next, the reagents listed in Table 2 were added to label the cells. After labeling, the sample suspension was washed and analyzed with a flow cytometer. Controls were operated in the same manner except that the excised tissue was immediately enzymatically treated without storage with the composition.
  • Example 7 Effect of calcium ion
  • the components shown in Table 7 were dissolved in ultrapure water to prepare composition 7.
  • a glucose-free RPMI medium containing 0.2% BSA (Thermo Fisher Scientific) was prepared.
  • 6 ⁇ 10 PBMCs derived from healthy subjects were suspended in about 5 mL of the composition or about 5 mL of RPMI medium, and stored at a temperature of 0 ° C to 1 ° C. After 24 hours, the reagents listed in Table 1 were added and the cells were labeled. After labeling, the sample suspension was washed and analyzed with a flow cytometer. Controls were operated in the same manner, except that the excised tissue was immediately enzymatically treated without storage with the composition.
  • composition 18 was prepared by adding 58 mL of ultrapure water to 942 mL of GIBCO D-PBS ( ⁇ ), followed by BSA and sodium L-lactate. Further, the components shown in Table 19 were dissolved in ultrapure water to prepare a composition 19. Subsequently, about 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of colorectal cancer-derived tumor tissue removed from the patient was immersed in about 15 mL of the composition and stored at a temperature of 0 ° C. to 1 ° C.
  • Example 9 Performance evaluation of the composition of the present disclosure in human-derived tumor tissue 2
  • Composition 20 was prepared by adding 58 mL of ultrapure water to 942 mL of GIBCO D-PBS ( ⁇ ), and then adding BSA, L-sodium lactate and trehalose. Subsequently, about 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of colorectal cancer-derived tumor tissue removed from the patient is immersed in the composition 20 or about 15 mL of Hyperthermosol® (HemaCare) at 0 ° C to 1 ° C. Stored at the temperature of.
  • Hyperthermosol® HemaCare
  • TTDR TTDR
  • the tissues were enzymatically treated with gentle shaking for 15 minutes at room temperature.
  • the reagents listed in Table 1 were added to label the cells.
  • Example 10 Performance evaluation of the composition of the present disclosure on myeloid cells
  • the performance of the compositions of the present disclosure on myeloid cells was evaluated.
  • the myeloid cells mean neutrophils, eosinophils, basophils and progenitor cells derived from bone marrow.
  • the components shown in Table 19 were dissolved in ultrapure water to prepare composition 18.
  • about 30 mg (3 pieces: about 10 mg / piece) of colorectal cancer-derived tumor tissue removed from the patient was immersed in about 15 mL of the composition and stored at 0 to 1 ° C.
  • the reagents listed in Table 27 were added and the cells were labeled.
  • the results of flow cytometry first identify living cells, and then analyze populations other than the lymphocyte cell population, and then use CD14-negative and HLA-negative or low-expressing cells (CD14 - HLAeg / low cells). , CD14-positive and HLA-negative or low-expressing cells (CD14 + HLAneg / low cells) and CD14 and HLA-positive cells (CD14 + HLA + cells) were developed, respectively. In each cell, CD11b + CD11c + cells and CD11b + CD33 + cells were further gated. In the CD14 + HLA + cell population, CD68-negative and CD163-negative cells (CD68 - CD163 - cells) and CD68-negative and CD163-positive cells (CD68 - CD163 + cells) were also gated.

Abstract

試料を保存するための組成物、特に細胞の状態を変化させることなく、細胞または組織を保存できる組成物を提供することを目的とする。さらに、試料の保存方法、保存した試料から目的物を含む懸濁液を調製する方法、および試料に含まれる目的物を分析する方法を提供することを目的とする。本開示は、アルブミンと、乳酸またはその塩と、を含み、組成物中のナトリウムイオン濃度が５０～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、試料を保存するための組成物を提供する。さらに、組成物を用いた試料の保存方法、試料懸濁液の調製方法、および試料懸濁液に含まれる目的物の分析方法を提供する。

Description

試料保存用組成物
　本開示は、試料を保存するための組成物に関する。本開示はさらに、試料の保存方法、保存した試料から目的物を含む試料懸濁液を調製する方法、および試料懸濁液中の目的物を分析する方法に関する。
　細胞には、その細胞の種類に応じた様々な分子が発現することが知られており、細胞が発現する分子の種類、機能、および発現状態等の解析は、細胞同士の相互作用または薬剤に対する応答性等を解明する上で有用な手段である。
　新しいがん治療法として注目されている免疫チェックポイント阻害薬は、免疫細胞上に発現する、ＰＤ－１またはＣＴＬＡ－４といった、免疫抑制に関わる分子を阻害して、免疫細胞の抗腫瘍免疫応答を増強させる薬剤であり、悪性黒色腫および胃がんを含めた、様々な種類のがんに対して、強力かつ持続的な腫瘍退縮効果が認められている。免疫チェックポイント阻害薬に対しては、効果のある患者（レスポンダー）と効果のない患者（ノンレスポンダー）が存在することが知られており、臨床においては、投与前に免疫チェックポイント阻害薬に対する応答性を予測するための検査（コンパニオン診断）が行われている。しかし、コンパニオン診断を行っているにも関わらず、免疫チェックポイント阻害薬の奏効率は２０～４０％とも言われており、既存の検査方法では必ずしも正確な結果が得られているとはいえない。ノンレスポンダーへの薬剤の投与は、効果がないにも関わらず高額な医療費を支払うという経済的負担だけでなく、副作用に伴う精神的、肉体的負担をもたらす。また、新規の免疫チェックポイント阻害薬が次々と開発されている一方で、新薬の保険適用により、国の医療費が圧迫されつつある。したがって、レスポンダーとノンレスポンダーとに患者を層別化することは、患者の負担軽減、および国の医療費削減のために重要な課題となっている。
　コンパニオン診断で正確な結果が得られない原因として、診断の際の分子マーカーが適切でないことが考えられている。現在のコンパニオン診断においては、腫瘍細胞の表面分子であるＰＤ－Ｌ１の発現を検査することが主流であり、例えば、キイトルーダ（登録商標）のコンパニオン診断薬として承認を受けているＰＤ－Ｌ１　ＩＨＣ　２２Ｃ３　ｐｈａｒｍＤｘ「ダコ」は、抗ＰＤ－Ｌ１マウスモノクローナル抗体を用いた免疫組織化学染色法に基づいたアッセイキットである。一方、抗腫瘍免疫応答においては、リンパ球およびマクロファージを含む免疫細胞が重要な役割を担っているにも関わらず、それら免疫細胞の存在の有無、および免疫細胞における分子の発現については何ら検査されていない。さらに、複数の種類のがんにおいて、ＰＤ－Ｌ１発現陰性患者に対しても奏効した例が認められており、免疫チェックポイント阻害薬の効果の予測には、腫瘍細胞上のＰＤ－Ｌ１の検査だけでは不十分であることが明らかとなってきている。
　免疫細胞にはいくつかの種類があり、さらに免疫細胞に発現する分子は多数存在するが、免疫組織化学染色法では、一度に検出できるマーカーは１～２つ程度と著しく限られている。したがって、腫瘍組織周辺の各種免疫細胞の存在の有無、および免疫細胞における分子の発現状態を詳細に検査するためには、多数のマーカーを検出できる新たな分析方法が必要である。そのような分析方法として、近年、フローサイトメーターを用いたマルチカラー解析の手法が注目されているが、実用化には至っていない。
　その理由の１つとして、患者から摘出した腫瘍組織を、患者の体内局所にある状態に維持したまま、臨床現場から検査機関まで輸送する手段がないことが挙げられる。臨床現場においてフローサイトメトリーのような分析を実施することは稀であり、摘出した細胞または組織は、通常、検査機関に送られて分析される。輸送の際には、摘出した細胞または組織を、生理食塩水、細胞保存液または組織保存液等を利用して一時的に保存する必要があり、細胞または組織を生きた状態で保存するための保存液は、例えば特許文献１および特許文献２に開示されている。これらの保存液を用いることにより、細胞または組織を生きたまま保存することは可能であるが、これらの保存液は、細胞または組織を、患者の体内にある状態に維持したまま保存することまでは考えられていないため、輸送の間に細胞における分子の発現状態等には変化が生じてしまう。したがって、検査機関で行う必要があるような分析方法では、患者の体内の状態を反映した結果が得られず、正確な診断を行うことが難しい。
　また別の理由として、組織等の試料から、免疫細胞等を１つ１つの細胞（シングルセル）として抽出する方法が確立されていないことも挙げられる。従来、細胞の抽出は、試料となる組織をミキサーまたはホモジナイザー等を用いて機械的に分散させ、遠心分離することで行われている。しかし、このような機械的な分散方法は、分析の対象となる細胞も高い割合で破壊し、または傷害してしまうため、分析に十分な数の生きたままで、かつ無傷の細胞を得ることが困難である。
　このように、分析の目的となる細胞の状態を変化させることなく、細胞または組織等の試料を保存し、分析する方法が必要とされている。
特許第４９４７９４８号明細書 特開第２０１２－１１６８２３号公報
　本開示は、試料を保存するための組成物、特に細胞の状態を変化させることなく、細胞、組織、またはその混合物を保存できる組成物を提供することを目的とする。さらに、本開示は、試料の保存方法、保存した試料から目的物を含む懸濁液を調製する方法、および試料に含まれる目的物を分析する方法を提供することを目的とする。
　上記課題を解決するための本開示に係る発明は、以下の態様を有する。
（１）アルブミンと、乳酸またはその塩と、を含み、組成物中のナトリウムイオン濃度が５０～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、試料を保存するための組成物。
（２）アルブミンが０．０１～２％（ｗ／ｖ）の量で含まれる、（１）に記載の組成物。
（３）乳酸またはその塩が０．１～１００ｍｍｏｌ／Ｌの量で含まれる、（１）または（２）に記載の組成物。
（４）アルブミンがウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）である、（１）～（３）のいずれかに記載の組成物。
（５）乳酸またはその塩が乳酸ナトリウムである、（１）～（４）のいずれかに記載の組成物。
（６）０．０１～１０ｍｍｏｌ／Ｌのリン酸二水素カリウムと、０．０１～５０ｍｍｏｌ／Ｌのリン酸水素二ナトリウムと、を含む、（１）～（５）のいずれかに記載の組成物。
（７）多糖類を含む、（１）～（６）のいずれかに記載の組成物。
（８）多糖類がトレハロース、フルクトオリゴ糖、難消化性デキストリン、およびそれらの混合物からなる群から選択される、（７）に記載の組成物。
（９）試料が細胞、組織、またはその混合物である、（１）～（８）いずれかに記載の組成物。
（１０）試料が哺乳類から採取される、（１）～（９）のいずれかに記載の組成物。
（１１）哺乳類がヒト、イヌ、ラット、マウスからなる群から選択される、（１０）に記載の組成物。
（１２）（１）～（１１）のいずれかに記載の組成物に試料を浸漬させる、試料の保存方法。
（１３）保存温度が０℃～４℃であり、組成物が非凍結状態である、（１２）に記載の保存方法。
（１４）試料から目的物を含む試料懸濁液を調製する方法であって、ａ）（１）～（１１）のいずれかに記載の組成物を提供するステップと、ｂ）前記組成物に試料を浸漬するステップと、ｃ）前記試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップと、を含む。
（１５）酵素がコラゲナーゼ、エラスターゼ、ヒアルロニダーゼ、ディスパーゼ、グリコシダーゼ、デオキシリボヌクレアーゼ、およびトリプシンからなる群から選択される少なくとも１つを含む、（１４）に記載の方法。
（１６）目的物が細胞である、（１４）または（１５）に記載の方法。
（１７）細胞が生きている細胞を含む、（１６）に記載の方法。
（１８）細胞が腫瘍浸潤免疫細胞である、（１６）または（１７）に記載の方法。
（１９）試料中の目的物を分析する方法であって、ａ）（１）～（１１）のいずれかに記載の組成物を提供するステップと、ｂ）前記組成物に試料を浸漬するステップと、ｃ）前記試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップと、ｄ）前記試料懸濁液中の目的物を分析するステップと、を含む。
（２０）ステップｄ）が、フローサイトメトリー、マスサイトメトリー、シングルセル遺伝子解析を含む遺伝子解析、イメージング、イムノアッセイ、質量分析、分光分析、およびそれらの組合せからなる群から選択される少なくとも１つにより行われる、（１９）に記載の方法。
　本開示の組成物および試料の保存方法は、試料、特に細胞または組織を、体内における状態を維持したまま保存することを可能にする。さらに、本開示の組成物および試料の保存方法によれば、試料を長時間保存することができるため、試料の長距離輸送が可能になる。したがって、例えば、外国で採取された試料を、細胞の状態を維持したまま、国内に輸送することも可能である。
　また、本開示の試料懸濁液の調製方法によれば、試料に含まれる目的物、特に目的の細胞を、体内における状態を維持したまま懸濁液とすることができる。本開示の方法によれば、従来の方法よりも穏やかな条件で試料懸濁液を調製することができるため、従来の分散方法よりも多くの数の生きた細胞を、体内局所にある状態に維持したまま、抽出することができる。
　さらに、本開示の分析方法によれば、試料に含まれる目的物、特に目的の細胞を、体内にある状態を維持したまま分析することができる。これにより、体内にある状態のままの細胞を解析することができるため、例えば免疫チェックポイント阻害薬に関連するコンパニオン診断において、薬剤に対する応答性を従来よりも正確に予測できるようになることが期待される。
実施例９に記載の方法にしたがい、腫瘍組織をフローサイトメトリーで分析した結果（対照）を示す。 実施例９に記載の方法にしたがい、腫瘍組織をフローサイトメトリーで分析した結果（４８時間後）を示す。 実施例９に記載の方法にしたがい、腫瘍組織をフローサイトメトリーで分析した結果（７２時間後）を示す。
　以下、本開示に係る発明の実施の形態について説明するが、本開示は以下の実施の形態に限定されるものではない。
［試料を保存するための組成物］
　本開示の組成物は、試料を保存するための組成物であり、アルブミンと、乳酸またはその塩と、を含み、組成物中のナトリウムイオン濃度が５０～３００ｍｍｏｌ／Ｌである。
　本開示の組成物はアルブミンを含む。アルブミンは動植物の細胞および体液等に含まれる水溶性タンパクである。本開示の組成物の一実施形態において用いることのできるアルブミンには、脊椎動物の血清に含まれる血清アルブミン、卵白に含まれる卵白アルブミン、乳汁に含まれる乳アルブミン、植物の種子に含まれる種子アルブミン等が含まれる。脊椎動物としては、ヒト、ウシ、ウマ、ウサギ等が挙げられるが、これらに限定されない。本開示において、アルブミンは好ましくは血清アルブミンであり、より好ましくはヒト由来、ウシ由来、またはウマ由来のアルブミンであり、最も好ましくはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）である。
　一実施形態において、アルブミンは、０．０１～２％（ｗ／ｖ）、好ましくは０．０５～１％（ｗ／ｖ）、より好ましくは０．１～０．５％（ｗ／ｖ）、最も好ましくは０．１～０．３％（ｗ／ｖ）の濃度で組成物に含まれる。
　本開示の組成物は乳酸またはその塩を含む。「乳酸またはその塩」とは、乳酸、または水に溶解して乳酸イオンおよびカチオンを生じるあらゆる乳酸塩を意味する。乳酸塩としては、例えば乳酸リチウム、乳酸ナトリウム、乳酸カリウム、乳酸カルシウム、乳酸アンモニウム、乳酸アルミニウム、乳酸マグネシウム等が挙げられるが、これらに限定されない。乳酸またはその塩は、好ましくは乳酸ナトリウムである。
　一実施形態において、乳酸またはその塩は、組成物中の乳酸イオンの濃度が０．１～１００ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは１．０～５０ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは１．０～３０ｍｍｏｌ／Ｌ、最も好ましくは３．０～２０ｍｍｏｌ／Ｌとなるように、組成物に含まれる。
　乳酸には、鏡像異性体の関係にあるＤ体およびＬ体の２つの立体構造があり、乳酸塩も、乳酸の構造に対応した立体構造を有する。鏡像異性体とは、立体構造を重ね合わすことができない、像と鏡像の関係にある立体異性体を意味する。Ｄ体およびＬ体の等量混合物はラセミ体、もしくはＤＬ体という。本開示の組成物において、乳酸またはその塩はＬ体およびＤＬ体が好ましく、Ｌ体がより好ましい。
　本開示の組成物は、５０～３００ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは８０～２５０ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは１００～２００ｍｍｏｌ／Ｌの濃度でナトリウムイオンを含む。ナトリウムイオン濃度をこの範囲に調整することにより、本開示の組成物は、体内における状態を維持したまま、試料、特に細胞または組織を保存することができる。
　ナトリウムイオン濃度は、水に溶解してナトリウムイオンを生じる物質を添加することで調整される。ナトリウムイオンを生じる物質としては、例えば水酸化ナトリウム、塩化ナトリウム、炭酸ナトリウム、硝酸ナトリウム、硫酸ナトリウム、硫酸水素ナトリウム、酢酸ナトリウム、シュウ酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム等が挙げられるが、これらに限定されない。ナトリウムイオンを生じる物質は、好ましくは、塩化ナトリウムである。
　本開示の組成物は、さらにリン酸二水素カリウムおよびリン酸水素二ナトリウムを含んでもよい。一実施形態において、リン酸二水素カリウムは、０．０１～１０ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは０．０５～５．０ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは１．０～２．５ｍｍｏｌ／Ｌの濃度で組成物に含まれ、リン酸水素二ナトリウムは、０．０１～５０ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは１．０～２５ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは５～１５ｍｍｏｌ／Ｌ濃度で組成物に含まれる。
　本開示の組成物は、好ましくはカルシウムイオンを含まない。カルシウムイオンの存在下では、細胞において、一部の分子、特にＣＴＬＡ－４の発現が高まることがある。したがって、カルシウムイオンを含む組成物では、採取直後の状態を維持したまま、試料を保存することが難しい。
　本開示の組成物は、多糖類を含んでもよい。多糖類とは、２個以上の単糖類、その置換誘導体、またはそれらの混合物が脱水結合して生じる化合物である。多糖類としては、例えばスクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース等の二糖類、ラフィノース、マルトトリオース等の三糖類、アカルボース、スタキオース等の四糖類、マルトオリゴ糖、フルクトオリゴ糖などのオリゴ糖、およびさらに多くの分子からなるグリコーゲン、デンプン、デキストリン等が挙げられるが、これらに限定されない。多糖類は、好ましくはトレハロース、フルクトオリゴ糖、難消化性デキストリン、およびそれらの混合物からなる群から選択され、より好ましくはトレハロースである。一実施形態において、本開示の組成物は、０．０１～３．０％（ｗ／ｖ）、好ましくは０．０３～１．０％（ｗ／ｖ）、より好ましくは０．０５～０．５％（ｗ／ｖ）の濃度で多糖類を含む。
　一実施形態において、本開示の組成物により保存される試料は、細胞、組織、またはその混合物から選択される。
　本開示の組成物により保存することのできる細胞には、種々の細胞、例えばリンパ球、幹細胞、皮膚細胞、粘膜細胞、肝細胞、膵島細胞、神経細胞、軟骨細胞、内皮細胞、上皮細胞、骨細胞、筋細胞、骨髄細胞、造血幹細胞、および腫瘍細胞等を挙げることができるが、これらに限定されない。細胞を保存する場合、生物から採取された直後の細胞を保存することもでき、人為的に培養された後の細胞を保存することもできる。本開示の組成物により保存される細胞は、生きている細胞でも、死んでいる細胞でもよく、好ましくは生きている細胞を含む。
　本明細書において、「組織」とは、多種類の細胞の集団を意味する。本開示の組成物により保存することのできる組織には、上皮組織、骨組織と、軟骨組織と、血球組織とを含む結合組織、神経組織、筋肉組織、およびこれらの組織由来の腫瘍組織が含まれる。組織は、生物から採取されたものでも、細胞を培養し人為的に構成されたものでもよい。本開示の組成物により保存される組織は、好ましくは腫瘍組織である。
　一実施形態において、細胞、組織、またはその混合物は、好ましくは動物から採取され、より好ましくは、哺乳類から採取される。哺乳類としては、例えばヒト、オラウータン、チンパンジー、サル、ウマ、ウシ、ブタ、イヌ、ウサギ、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等が挙げられるが、これらに限定されない。一実施形態において、哺乳類は、好ましくはヒト、イヌ、マウス、ラット、ハムスター、モルモットからなる群から選択され、より好ましくはヒトである。
　本開示の組成物は、特にヒトから採取された腫瘍組織の保存に適する。
［試料の保存方法］
　本開示はさらに試料の保存方法を提供する。試料の保存は、試料を本開示の組成物に浸漬させることができれば、あらゆる方法で行うことができる。例えば、試料の浸漬は、組成物を分注した容器に採取した試料を入れることで行われてもよく、採取した試料を容器に入れ、本開示の組成物を後から注ぐことで行われてもよい。
　本開示の試料の保存方法において、保存温度は約０℃～約４℃であることが好ましく、約０℃～約１℃であることがより好ましく、０℃超～１℃以下の温度であり、かつ保存液および試料が凍らない温度が最も好ましい。保存温度が０℃より低くなると、試料および組成物が凍り、試料の状態が維持できないおそれがある。保存温度が４℃を超えた場合も、試料の状態を維持できないことがある。
　本開示の方法により、試料、特に採取した細胞、組織、またはその混合物を、採取した直後の状態を維持したまま、例えば２４時間、４８時間、または７２時間といった長時間保存することができる。
［試料懸濁液の調製方法］
　本開示はさらに、目的物を含む試料懸濁液の調製方法を提供する。試料懸濁液の調製方法は、ａ）本開示の組成物を提供するステップと、ｂ）試料を本開示の組成物に浸漬するステップと、ｃ）試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップと、を含む。
　ａ）本開示の組成物を提供するステップは、あらゆる方法で行うことができ、例えば、蓋付きの容器に分注することを含む。
　ｂ）試料を本開示の組成物に浸漬するステップは、試料を浸漬させることができれば、あらゆる方法で行うことができる。試料を浸漬する方法は、［試料の保存方法］の項の記載に従う。
　ｃ）試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップは、酵素処理により、試料、特に細胞、組織、またはその混合物を分散させることができれば、当業者に既知のあらゆる方法で行うことができる。
　酵素処理には、あらゆる酵素を使用することができる。酵素処理に用いることのできる酵素としては、例えば、コラゲナーゼ、エラスターゼ、ヒアルロニダーゼ、ディスパーゼ（登録商標）を含む中性プロテアーゼ、グリコシダーゼ、デオキシリボヌクレアーゼ（ＤＮａｓｅ）、およびトリプシン等が挙げられるが、これらに限定されない。
　酵素処理はまた、既存の細胞分散液等を用いて行ってもよい。既存の細胞分散液としては、例えば、ベクトン・ディッキンソン株式会社から入手可能なＢＤ　Ｈｏｒｉｚｏｎ（商標）　Ｄｒｉ　Ｔｕｍｏｒ＆Ｔｉｓｓｕｅ　Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　Ｒｅａｇｅｎｔ（ＴＴＤＲ）等が挙げられる。本開示の方法における酵素処理は、好ましくはＴＴＤＲを用いる。
　本開示の方法における酵素処理は、従来よりも穏やかな条件において、試料、特に細胞または組織を十分に分散させることができる。酵素処理による細胞または組織を分散させる効果は、使用する酵素の種類、酵素の濃度、処理温度、および処理時間等の要因により変化するが、特に、使用する酵素の種類および酵素の濃度は、細胞または組織の分散状態に大きく影響する。従来、細胞または組織の十分な分散を得るために、基質に強く作用する酵素を選択し、または酵素の濃度を高めるといった手段が取られるが、これらは同時に細胞の収率および生存率の低下、ならびに細胞の機能不全をもたらす危険性を増加させる。したがって、これまで、細胞の高い生存率を達成することと、細胞の状態を維持したまま、試料を十分に分散させることの両立は困難であった。
　しかし、本開示の方法によれば、酵素処理における酵素の種類および濃度、処理時間、ならびに処理温度といった条件を、従来よりも穏やかにしても試料が十分に分散されるため、試料に含まれる細胞の生存率および収率を高めることができ、かつ、細胞の状態を変化させずに分散させることが可能になる。従来の保存液では、試料、特に細胞、組織またはその混合物を長時間浸漬すると、細胞または組織の状態が変化してしまうため、長時間浸漬しておくことができず、したがって、穏やかな条件では細胞または組織を十分に分散させることができなかった。一方、これに限定されるものではないが、本開示の組成物は、試料を長時間浸漬しておくことができることから、試料に液体である組成物が十分に浸透することで試料が柔らかくなり、酵素が試料の表面だけでなく、内部にも容易に作用できるようになるため、従来よりも穏やかな条件での酵素処理によっても試料が十分に分散されると考えられる。
　酵素処理はあらゆる温度で行うことができるが、試料の状態を変化させず、かつ十分な分散を得るという目的から、好ましくは１～４５℃、より好ましくは１０～４０℃、最も好ましくは１５～３０℃で行われる。酵素処理は、温度を一定に保つことのできる恒温水槽等の装置を用いて、温度を制御しながら行ってもよいが、室温下で行うこともできる。室温とは、外部から加熱も冷却もしていない状態を指す。
　酵素処理の時間に特に制限はないが、試料の状態を変化させず、かつ十分な分散を得るという目的から、処理時間は、好ましくは約１～約６０分間、より好ましくは約５～３０分間、より好ましくは約１０～２０分間である。
　酵素処理は静置した状態で行ってもよく、撹拌または振とうしながら行ってもよい。酵素を試料全体に満遍なく作用させるために、酵素処理は、好ましくは、細胞を傷害しない強さで穏やかに振とうしながら行う。
　試料懸濁液を調製するステップは、ろ過、遠心分離、および染色等、あらゆる追加の操作を含んでもよい。
　本開示の方法により調製された試料懸濁液は目的物を含む。目的物は、試料に含まれ得る物質ならいかなるものでもよい。目的物としては、例えば、細胞、遺伝子、抗体を含むタンパク質、アミノ酸、および神経伝達物質を含む化学物質等が挙げられるが、これらに限定されない。一実施形態において、目的物は細胞である。細胞は、生きている細胞でも、死んでいる細胞でもよいが、目的物は、好ましくは生きている細胞を含む。
　目的物になり得る細胞としては、例えば、免疫細胞、赤血球、血小板、腫瘍細胞、幹細胞、皮膚細胞、粘膜細胞、肝細胞、膵島細胞、神経細胞、軟骨細胞、内皮細胞、上皮細胞、骨細胞、筋細胞、骨髄細胞、造血幹細胞等が挙げられるが、これらに限定されない。免疫細胞は、Ｔ細胞、Ｂ細胞、およびＮＫ細胞を含むリンパ球と、好中球、好酸球、および好塩基球を含む顆粒球と、樹状細胞と、マクロファージとを含む。目的物は、好ましくは免疫細胞、より好ましくは腫瘍浸潤免疫細胞、最も好ましくは腫瘍浸潤リンパ球（ＴＩＬ）である。
　腫瘍浸潤免疫細胞とは、腫瘍組織内に浸潤している免疫細胞を意味し、その中でリンパ球を特にＴＩＬという。ＴＩＬは、細胞の種類に応じて、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＴＬＡ－４、およびＰＤ－１等の細胞表面分子を発現することが知られている。ＴＩＬには、ＣＤ４陽性（ＣＤ４＋）Ｔ細胞、ＣＤ８陽性（ＣＤ８＋）Ｔ細胞、制御性Ｔ細胞（Ｔｒｅｇ）およびＮＫ細胞が含まれる。
［目的物を分析する方法］
　本開示はさらに、試料を分析する方法を提供する。試料を分析する方法は、ａ）請求項１～１０に記載の組成物を提供するステップと、ｂ）前記組成物に試料を浸漬するステップと、ｃ）前記試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップと、ｄ）前記試料懸濁液中の目的物を分析するステップと、を含む。ステップａ）～ｃ）については、［試料懸濁液の調製方法］の項の記載に準ずる。
　ｄ）分析するステップは、あらゆる分析方法を用いることができる。分析方法としては、フローサイトメトリー、マスサイトメトリー、シングルセル遺伝子解析を含む遺伝子解析、イメージング、イムノアッセイ、質量分析、分光分析およびそれらの組合せが挙げられるが、これらに限定されない。本開示の方法において、分析方法は、好ましくはフローサイトメトリーおよびマスサイトメトリーであり、より好ましくはフローサイトメトリーである。
　本開示の分析方法によれば、試料に含まれる目的物、特に細胞を採取直後の状態から変化させることなく、試料を分析することができる。
　本開示の分析方法は、組織に含まれる細胞の分析に適し、特に、フローサイトメトリーによる腫瘍組織内のＴＩＬの分析に適する。本開示の分析方法によれば、より多くの生きた細胞を、患者の体内にある状態に維持したまま分析することができる。したがって、本開示の分析方法は、例えば免疫チェックポイント阻害薬に関連するコンパニオン診断において、薬剤に対する応答性および患者の予後の正確な予測に役立つことが期待される。
　さらに、本開示の分析方法は、採取した試料を、採取直後の状態に維持したまま長時間保存することができるため、試料の長距離輸送を可能にする。したがって、本開示の方法によれば、例えば病院で採取した試料を、遠く離れた分析機関に輸送して分析することができる。
　以下に、本開示の態様を実施例により詳細に説明するが、これらは単なる例示であり、本開示の範囲を狭めることを意図するものではない。
　試料懸濁液に含まれる細胞を標識し、フローサイトメトリーにより分析した結果から、生きた細胞の数、およびそれぞれの細胞集団における各細胞の割合を解析することで、本開示による組成物の性能を評価した。分析対象の細胞は、ヒト由来サンプルにおいては、表１に、マウス由来サンプルにおいては表２に記載する試薬を用いて標識した。なお、ヒト由来サンプルにおいては、抗体の非特異的結合を防止するために、抗体染色前にＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ（商標）Ｈｕｍａｎ ＢＤ Ｆｃ Ｂｌｏｃｋ（商標）（ＢＤ社）を添加した。さらに、ヒト由来サンプル、マウス由来サンプルともに、ＢＤ　Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ（商標）Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ　Ｆａｃｔｏｒ　Ｂｕｆｆｅｒ　Ｓｅｔ（ＢＤ社）により細胞膜固定透過処理を行い、細胞内のＦｏｘＰ３分子の抗体染色を行った。
　結果は、ＦＶＳ（Ｆｉｘａｂｌｅ　Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ　Ｓｔａｉｎ）により生きた細胞を同定した後、リンパ球＞ＣＤ３＋細胞＞ＣＤ４＋細胞またはＣＤ８＋細胞の順にゲーティングし、ＣＤ４＋細胞のうち、ＦｏｘＰ３が陽性かつＣＤ４５ＲＡが陰性の細胞をＴｒｅｇ（制御性Ｔ細胞）とした。一方、マウス由来サンプルにおいてはＦｏｘＰ３が陽性かつＣＤ２５が陽性の細胞をＴｒｅｇ（制御性Ｔ細胞）とした。したがって、それぞれの細胞の割合とは、生きた細胞集団中のリンパ球の割合、リンパ球集団中のＣＤ３＋細胞の割合、ＣＤ３＋細胞集団中のＣＤ４＋細胞またはＣＤ８＋細胞の割合、およびＣＤ４＋細胞集団中のＴｒｅｇの割合を意味する。ＣＤ８＋細胞およびＴｒｅｇについては、さらにＣＴＬＡ－４＋細胞およびＰＤ－１＋細胞をそれぞれゲーティングした。組織（ｍｇ）あたりの細胞数は、絶対数カウントビーズ　ＢＤ　Ｔｒｕｃｏｕｎｔ（商標）　Ａｂｓｏｌｕｔｅ　Ｃｏｕｎｔｉｎｇ　Ｔｕｂｅｓ（Ｂｅｃｔｏｎ，　Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ　ａｎｄ　Ｃｏｍｐａｎｙ、以下「ＢＤ社」ともいう）を用い算出した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
（実施例１：ＢＳＡの影響の評価１）
　表３に記載の成分を超純水に溶解し、組成物１および組成物２を調製した。患者から摘出した大腸がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ/ピース）を組成物約１５ｍＬと混合し、０℃～１℃の温度で保存した。２４時間後および４８時間後、組成物をアスピレーターで除去し、ＴＴＤＲ（ＢＤ社）７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次いで、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターＢＤ　ＦＡＣＳＬｙｒｉｃ（商標）（ＢＤ社）で分析した。対照は、組成物による保存を行わなかった以外は、同様に操作した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　結果は表４に示し、ヒト大腸がん由来腫瘍組織１０ｍｇあたりのそれぞれの生きた細胞の数で表す。この結果より、ＢＳＡを含む組成物２は、ＢＳＡを含まない組成物１と比べて、細胞の生存維持能力を高めることが示された。さらに興味深いことに、組成物２で保存した組織において、対照よりも多くの生きた細胞が検出された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
（実施例２：ＢＳＡの影響の評価２）
　表５に記載の成分を超純水に溶解し、組成物３～５を調製した。続いて、健常人由来ＰＢＭＣ１×１０６個を組成物約５ｍＬと混合し、０℃～１℃の温度で保存した。２４時間後、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　結果を表６に示す。各細胞の割合は、ＢＳＡの添加量を変化させた組成物３～組成物５の間でほとんど同じであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
（実施例３：乳酸イオン濃度の影響の評価）
　表７に記載の成分を超純水に溶解し、組成物６～９を調製した。続いて、患者から摘出した大腸がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物６約１５ｍＬに、肺がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物７～９約１５ｍＬに浸漬させ、０℃～１℃の温度で保存した。２４時間後、組成物をアスピレーターで除去し、ＴＴＤＲ７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次に、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は、同様に操作した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　結果を表８～１０に示す。いずれの細胞においても、ＣＴＬＡ－４の発現は対照と同程度であった。一方、Ｌ－乳酸ナトリウムの増加に伴い、特にＴｒｅｇにおいて、ＰＤ－１の発現は増加する傾向にあった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
（実施例４：ナトリウムイオン濃度の影響の評価）
　表１１に記載の成分を超純水に溶解し、組成物１０～１３を調製した。続いて、マウスから摘出した脾臓約２０ｍｇ（２ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物約１５ｍＬに浸漬させ、０℃～１℃の温度で保存した。２４時間後、組成物をアスピレーターで除去し、ＴＴＤＲ７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次に、表２に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は同様に操作した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　結果を以下に示す。いずれの組成物においても、リンパ球、ＣＤ４＋細胞、Ｔｒｅｇ、ＣＤ８＋細胞は対照と同程度の割合で検出された。ＣＤ３＋細胞は、組成物９および組成物１０において、対照と同程度の割合で検出された。組成物中のナトリウムイオン濃度が低いと、ＰＤ－１の発現が増加する傾向が認められた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
（実施例５：多糖類添加の影響）
　表１３に記載の成分を超純水に溶解し、以下の組成を有する組成物１４～１６を調製した。続いて、患者から摘出した大腸がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物約１５ｍＬに浸漬させ、０℃～１℃の温度で保存した。４８時間後、組成物をアスピレーターで除去し、ＴＴＤＲ７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次に、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は同様に操作した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　結果を表１４に示す。いずれの組成物においても、それぞれの細胞の割合は、対照と同程度であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
（実施例６：保存温度の影響）
　ＧＩＢＣＯ（登録商標）Ｄ－ＰＢＳ（－）（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、カタログナンバー：１４１９０）９４２ｍＬに超純水５８ｍＬを加え、次いでＢＳＡおよびＬ－乳酸ナトリウムを加えることで組成物１７を調製した。続いて、マウスから摘出した脾臓約２０ｍｇ（２ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物約１５ｍＬに浸漬させ、氷上および４℃で保存した。４８時間後、アスピレーターで組成物を取り除き、ＴＴＤＲ７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次に、表２に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は同様に操作した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　結果を表１６に示す。組織１０ｍｇあたりの細胞の数において、氷上で保存した組織からは、対照と同程度の細胞が検出されたが、４℃で保存した組織では、ＴｒｅｇおよびＣＤ８＋細胞の減少が認められた。細胞の割合については、どちらの条件でも対照と同程度であった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
（実施例７：カルシウムイオンの影響）
　表７に記載の成分を超純水に溶解し、組成物７を調製した。また、比較として、０．２％ＢＳＡを含むグルコース不含ＲＰＭＩ培地（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用意した。続いて、健常人由来ＰＢＭＣ１×１０６個を組成物約５ｍＬまたはＲＰＭＩ培地約５ｍＬに懸濁させ、０℃～１℃の温度で保存した。２４時間後、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は、同様に操作した。
　結果を表１８に示す。ＲＰＭＩ培地で保存したＰＢＭＣでは、ＣＴＬＡ－４の発現が顕著に高まることが示された。これは、ＲＰＭＩ培地に含まれるカルシウムイオンが、ＣＴＬＡ－４の発現を増強させたものと考えられる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
（実施例８：ヒト由来腫瘍組織における本開示の組成物の性能評価１）
　ＧＩＢＣＯ　Ｄ－ＰＢＳ（－）９４２ｍＬに超純水５８ｍＬを加え、次いでＢＳＡおよびＬ－乳酸ナトリウムを加えることで組成物１８を調製した。また、表１９に記載の成分を超純水に溶解し、組成物１９を調製した。続いて、患者から摘出した大腸がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物約１５ｍＬに浸漬させ、０℃～１℃の温度で保存した。７２時間後、アスピレーターで組成物を取り除きＴＴＤＲ７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次に、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は同様に操作した。試験は、対照はｎ＝４で行い、それ以外はｎ＝３で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
　結果は表２０および表２１に、平均および標準偏差（ＳＤ）で表す。どちらの組成物においても、組織１０ｍｇあたりの細胞の数は、対照と同等以上であった。また、各細胞の割合は、どちらの組成物においても対照とほとんど変わらなかった。したがって、本開示の組成物は、ＴＩＬを腫瘍局所にあった状態に維持したまま、腫瘍組織を長時間保存できることが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
（実施例９：ヒト由来腫瘍組織における本開示の組成物の性能評価２）
　既存の細胞の保存液と、本開示による組成物との性能を比較した。ＧＩＢＣＯ　Ｄ－ＰＢＳ（－）９４２ｍＬに超純水５８ｍＬを加え、次いでＢＳＡ、Ｌ－乳酸ナトリウムおよびトレハロースを加えることで組成物２０を調製した。続いて、患者から摘出した大腸がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ／ピース）を、組成物２０またはＨｙｐｏＴｈｅｒｍｏｓｏｌ（登録商標）（ＨｅｍａＣａｒｅ社）約１５ｍＬに浸漬させ、０℃～１℃の温度で保存した。４８時間および７２時間後、ＴＴＤＲ７ｍＬを加え、室温で１５分間、穏やかに振とうしながら組織を酵素で処理した。次に、表１に記載する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、試料懸濁液を洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は同様に操作した。試験は、対照および４８時間はｎ＝３で行い、７２時間はｎ＝２で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000022
　結果を表２３～２６に示す。本開示の組成物２０で保存した組織からは、ＨｙｐｏＴｈｅｒｍｏｓｏｌで保存した組織からよりもより多くの生きた細胞が検出された。これは、本開示の組成物が、既存の保存液よりも細胞の生存維持能力を高めることができることを示す。また、図１～図３に示すように、ＨｙｐｏＴｈｅｒｍｏｓｏｌで保存した組織では、７２時間後において、ＣＤ８の発現が著しく低下することが示されたが、本開示の組成物で保存した組織では対照と同程度であった。したがって、この結果から、本開示の組成物は、ＴＩＬを腫瘍局所にあった状態に維持したまま、腫瘍組織を保存できることが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000023
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000024
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000025
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000026
（実施例１０：ミエロイド系細胞に対する本開示の組成物の性能評価）
　ミエロイド系細胞に対する本開示の組成物の性能を評価した。ここで、ミエロイド系細胞とは、骨髄に由来する好中球、好酸球、好塩基球とこれらの前駆細胞を意味する。まず、表１９に記載の成分を超純水に溶解し、組成物１８を調製した。次に、患者から摘出した大腸がん由来腫瘍組織約３０ｍｇ（３ピース：約１０ｍｇ／ピース）を組成物約１５ｍＬに浸漬し、０～１℃で保存した。４８時間および７２時間後、表２７に列挙する試薬類を加え、細胞を標識した。標識後、洗浄し、フローサイトメーターで分析した。対照は、組成物による保存を行わず、摘出した組織を直ちに酵素処理した以外は、同様に操作した。試験はｎ＝３で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000027
　フローサイトメトリーの結果は、まず生きた細胞を同定し、そこからリンパ球細胞集団以外の集団を解析対象として、さらにＣＤ１４が陰性かつＨＬＡが陰性または低発現細胞（ＣＤ１４－ＨＬＡｎｅｇ／ｌｏｗ細胞）と、ＣＤ１４が陽性かつＨＬＡが陰性または低発現細胞（ＣＤ１４＋ＨＬＡｎｅｇ／ｌｏｗ細胞）と、ＣＤ１４およびＨＬＡ陽性細胞（ＣＤ１４＋ＨＬＡ＋細胞）とをそれぞれ展開した。それぞれの細胞において、ＣＤ１１ｂ＋ＣＤ１１ｃ＋細胞、およびＣＤ１１ｂ＋ＣＤ３３＋細胞をさらにゲーティングした。ＣＤ１４＋ＨＬＡ＋細胞集団においては、ＣＤ６８が陰性かつＣＤ１６３が陰性の細胞（ＣＤ６８－ＣＤ１６３-細胞）、およびＣＤ６８が陰性かつＣＤ１６３が陽性の細胞（ＣＤ６８－ＣＤ１６３＋細胞）もまたゲーティングした。
　結果を表２８～２９に示す。いずれの時間においても、対照と同等以上の数の細胞が検出された。また、各細胞の割合は、対照とほとんど同じであった。したがって、本開示の分析方法は、ミエロイド系細胞においても、細胞の状態を維持したまま、より多くの生きた細胞を検出できることが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000028
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000029

Claims (20)

  1. 　試料を保存するための組成物であって、
    　アルブミンと、
    　乳酸またはその塩と、
    を含み、前記組成物中のナトリウムイオン濃度が５０～３００ｍｍｏｌ／Ｌである、組成物。
  2. 　前記アルブミンが０．０１～２％（ｗ／ｖ）の量で含まれる、請求項１に記載の組成物。
  3. 　前記乳酸またはその塩が０．１～１００ｍｍｏｌ／Ｌの量で含まれる、請求項１または２に記載の組成物。
  4. 　前記アルブミンがウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）である、請求項１～３のいずれか一項に記載の組成物。
  5. 　前記乳酸またはその塩が乳酸ナトリウムである、請求項１～４のいずれか一項に記載の組成物。
  6. 　０．０１～１０ｍｍｏｌ／Ｌのリン酸二水素カリウムと、
    　０．０１～５０ｍｍｏｌ／Ｌのリン酸水素二ナトリウムと、
    を含む、請求項１～５のいずれか一項に記載の組成物。
  7. 　前記組成物が多糖類を含む、請求項１～６のいずれか一項に記載の組成物。
  8. 　前記多糖類がトレハロース、フルクトオリゴ糖、難消化性デキストリン、およびそれらの混合物からなる群から選択される、請求項７に記載の組成物。
  9. 　前記試料が細胞、組織、またはその混合物である、請求項１～８のいずれか一項に記載の組成物。
  10. 　前記試料が哺乳類から採取される、請求項１～９のいずれか一項に記載の組成物。
  11. 　前記哺乳類がヒト、イヌ、ラット、マウスからなる群から選択される、請求項１０に記載の組成物。
  12. 　請求項１～１１のいずれか一項に記載の組成物に試料を浸漬させる、試料の保存方法。
  13. 　保存温度が０℃～４℃であり、前記組成物が非凍結状態である、請求項１２に記載の保存方法。
  14. 　試料から目的物を含む試料懸濁液を調製する方法であって、
    　ａ）請求項１～１１のいずれか一項に記載の組成物を提供するステップと、
    　ｂ）前記組成物に試料を浸漬するステップと、
    　ｃ）前記試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップと、
    を含む、方法。
  15. 　前記酵素が、コラゲナーゼ、エラスターゼ、ヒアルロニダーゼ、ディスパーゼ、グリコシダーゼ、デオキシリボヌクレアーゼ、およびトリプシンからなる群から選択される少なくとも１つを含む、請求項１４に記載の方法。
  16. 　前記目的物が細胞である、請求項１４または１５に記載の方法。
  17. 　前記細胞が生きている細胞を含む、請求項１６に記載の方法。
  18. 　前記細胞が腫瘍浸潤免疫細胞である、請求項１６または１７に記載の方法。
  19. 　試料中の目的物を分析する方法であって、
    　ａ）請求項１～１１のいずれか一項に記載の組成物を提供するステップと、
    　ｂ）前記組成物に試料を浸漬するステップと、
    　ｃ）前記試料を酵素で処理して試料懸濁液を調製するステップと、
    　ｄ）前記試料懸濁液中の目的物を分析するステップと、
    を含む方法。
  20. 　前記ステップｄ）が、フローサイトメトリー、マスサイトメトリー、シングルセル遺伝子解析を含む遺伝子解析、イメージング、イムノアッセイ、質量分析、分光分析、およびそれらの組合せからなる群から選択される少なくとも１つにより行われる、請求項１９に記載の方法。
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