WO2021125323A1 - ワタアカミムシの防除方法 - Google Patents

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beetle
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欽也 小川
佐藤　一臣
伸顕 石沢
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信越化学工業株式会社
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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01M—CATCHING, TRAPPING OR SCARING OF ANIMALS; APPARATUS FOR THE DESTRUCTION OF NOXIOUS ANIMALS OR NOXIOUS PLANTS
    • A01M1/00—Stationary means for catching or killing insects
    • A01M1/02—Stationary means for catching or killing insects with devices or substances, e.g. food, pheronones attracting the insects
    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01P—BIOCIDAL, PEST REPELLANT, PEST ATTRACTANT OR PLANT GROWTH REGULATORY ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR PREPARATIONS
    • A01P19/00—Pest attractants

Definitions

  • the present invention relates to a method for controlling cotton beetles, which are pests of cotton.
  • the main pest of cotton the cotton beetle (scientific name: Pectinophora gossypiella , Pink bollworm, hereinafter also referred to as "PBW"), invades young shoots, flowers, and young balls of cotton immediately after the larvae hatch, and thus kills insects. It is difficult for agents and natural enemies to come into contact with the larva, and its control has been difficult in the past. Therefore, various methods have been studied for controlling the cotton beetle.
  • PBW Pectinophora gossypiella , Pink bollworm
  • Non-Patent Document 1 As a communication disrupting method for disturbing the mating activity of males and females using sex pheromones secreted by adult females, considering that the female spawning site of the early mated cotton beetle is cotton flower buds, etc. It has been proposed to install a sex pheromone preparation before flower buds are formed (Non-Patent Document 1).
  • Btcotton which incorporates the gene of Bacillus thuringiensis , an insecticidal microorganism, into cotton seeds has also been used to control cotton beetles. Since Btcotton has the Bt gene incorporated into the seeds in advance, the cotton beetle larvae invade the young cotton balls and eat the cotton seeds containing Bt, which causes the insects to be killed in the balls and damage the balls. It can be suppressed.
  • Non-Patent Document 1 when an attempt is made to install the sex pheromone preparation before the initial flower buds are formed as in Non-Patent Document 1, the cotton tree has not yet grown sufficiently, so that the adult bends down and installs the pheromone preparation. Therefore, there was a problem in workability. In addition, since the control of cotton pests has been promoted from the viewpoint of how to reduce the damage to cotton balls, the damage to the balls caused by the larvae of the cotton beetle was measured. Was not investigated.
  • Bacillus thuringiensis gene which is an insecticidal microorganism
  • the damage to the balls can be suppressed to some extent, but the insecticidal component has a very weak effect, so only in the cotton balls.
  • the non-existent insecticidal component alone has no effect on PBW larvae outside the ball.
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and by disturbing the mating of cotton beetles by a communication disturbance method to control cotton beetles, damage to flower buds, buds or flowers and damage to balls are suppressed, and cotton It is an object of the present invention to provide a method for controlling cotton beetles whose yield does not decrease.
  • the present inventors have made cotton seedlings based on the adult pheromone outbreak time so that a sufficient effect can be obtained even in an area where the temperature is relatively high in early spring.
  • the planting time and the installation time of the sustained-release pheromone preparation By selecting the planting time and the installation time of the sustained-release pheromone preparation, the damage to flower buds, buds or flowers caused by the cotton beetle, and the damage to the balls can be suppressed, and the cotton yield is increased more than before.
  • the adult pheromone that has developed is the first generation, it is within 21 to 41 days after the emergence date of the adult pheromone, and if it is the second generation or later, it is after the emergence date of the adult pheromone.
  • the step of planting cotton seedlings in the field and the sex pheromone of the cotton beetle within 2 to 15 days before the expected adult outbreak of the next generation of the above-mentioned adult cotton beetle derived from the effective integrated temperature.
  • a sustained-release pheromone preparation containing at least Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienyl acetate, which is a substance, is installed in the field, and the sex pheromone substance in the sustained-release pheromone preparation is used in the field.
  • a method for controlling the pheromone is provided, which includes at least a step of releasing into.
  • the timing of planting cotton seedlings in the field depends on whether the adults of the cotton beetles that have developed are the first generation or the second generation or later.
  • the generation of pests that occur several times a year is called according to the method specified by the Japanese Society of Applied Animal and Insects, and the descendants of the wintering generation that appear within the year are the first and second generations. Call with ordinal numbers.
  • the cotton beetle to be controlled is preferably the second generation or later, more preferably the third generation and the fourth generation cotton beetle. Since the first generation of the cotton beetle was called the suicide generation, the cotton beetle to be controlled has been the second generation or later.
  • the problem of water shortage can be solved because there are many areas with reservoirs in the double cropping area.
  • the adults of the cotton beetle are the first generation, it is within 21 to 41 days after the adult emergence date of the cotton beetle.
  • the cotton seedlings are planted within 1 to 21 days, preferably 1 to 15 days after the adult emergence date of the second generation or later cotton beetle. If the cotton seedlings are planted less than one day after the adult cotton beetle emerges, early flower buds may be formed during the period when the cotton beetle of that generation is growing, so the flower buds may be damaged. become. On the other hand, after 21 days, it is difficult to install a sustained-release pheromone preparation before the emergence of adults of the next-generation cotton beetle because the cotton tree is still small.
  • the adult emergence date of the cotton beetle is specified by the date when the adult cotton beetle was captured in the trap. Specifically, one or two traps are set in the field where cotton seedlings are planted before the adult cotton beetle emerges, and the day when the adult cotton beetle is captured is set as the adult emergence date of the cotton beetle. Most commercially available traps can be used, but a delta trap is preferable from the viewpoint of stability.
  • the trap is preferably installed at a height of 20 to 70 cm above the ground, depending on the height of the cotton tree.
  • the time to install the sustained-release pheromone preparation is within 2 to 15 days, preferably within 2 to 10 days, and more preferably within 2 to 5 days before the expected emergence date of the next generation of the cotton beetle derived from the effective integrated temperature. is there. For example, if the adult imago of the outbreak is the first generation, the adult of the next generation that predicts the outbreak date will be the second generation, and if the adult of the outbreak of the cotton beetle is the second generation, the outbreak date is predicted. The next generation of adults will be the third generation.
  • the reason why the sustained-release pheromone preparation was set based on the expected date of adult emergence of the next generation is that the sustained-release pheromone preparation cannot exert its effect because it mates after the outbreak of the cotton beetle. Is.
  • the installation time of the sustained-release pheromone preparation is earlier than 15 days before the expected emergence date of the next generation of cotton beetle, it becomes difficult to install the sustained-release pheromone preparation due to the small cotton tree, and the next generation. In the period later than 2 days before the expected adult outbreak date, the next-generation mating cannot be prevented and the pheromone cannot be controlled.
  • the expected adult outbreak date for the next generation of the cotton beetle is derived from the effective accumulated temperature of the cotton beetle (Accumulated degree days, hereinafter also referred to as "ADD").
  • ADD effective accumulated temperature of the cotton beetle
  • o F average daily temperature
  • the basal temperature of the day is set to 0 o F.
  • the date of occurrence of each generation of cotton beetle in the western United States can be estimated as follows.
  • the sustained-release pheromone preparation is a polymer container containing Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienyl acetate as a sex pheromone substance.
  • sex pheromone substance examples include Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienyl acetate, which is a sex pheromone substance of cotton beetle.
  • Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienyl acetate and Z, Z / Z, E-7,11 from the viewpoint of preventing a decrease in the communication disturbance method when the cotton beetle is present at a high density.
  • -It is preferable to use a mixture with hexadecadienol.
  • the mass ratio of Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienyl acetate to Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienol is preferably from 99.5: 0.5. It is 95.0: 5.0, more preferably 99.0: 1.0 to 96.0: 4.0, and even more preferably 98.5: 1.5 to 96.5: 3.5.
  • the sustained-release pheromone preparation may contain additives such as an antioxidant and an ultraviolet absorber as appropriate depending on the degree of stability of the sex pheromone substance, in addition to the sex pheromone substance.
  • Antioxidants include synthetic antioxidants such as BHT (butylhydroxytoluene), BHA (butylhydroxyanisole), ethyl protocatechuate, isoamyl gallate, and propyl gallate, NDGA (nordihydroguayaletinic acid), Examples thereof include antioxidants such as natural antioxidants such as guayak fat.
  • Examples of the ultraviolet absorber include para-aminobenzoic acid such as octyl paradimethylaminobenzoate, benzophenone derivatives such as oxybenzone (2-hydroxy-4-methoxybenzophenone) and 2-hydroxy-4-octoxybenzophenone, and methoxycinnamic acid derivatives. Examples thereof include salicylic acid derivatives.
  • the content of each of the antioxidant and the ultraviolet absorber is preferably 0.01 to 5% by mass, and the total content thereof is preferably 0.02 to 10% by mass.
  • the material of the polymer container is preferably a polyolefin-based polymer.
  • examples thereof include polyolefins exemplified by polyethylene and polypropylene, and ethylene-vinyl acetate copolymers. With these materials, sex pheromone substances and the like can permeate and be released to the outside of the polymer membrane at an appropriate speed.
  • biodegradable polyester and vinyl chloride can also be used.
  • the shape of the polymer container may be a tube or a bag, but the tube is preferable from the viewpoint that the sex pheromone substance is released for a long period of time and the release is uniform.
  • the inner diameter thereof is preferably 0.5 to 2.0 mm, more preferably 0.6 to 1.5 mm, and the wall thickness is preferably 0.3 to 0.8 mm from the viewpoint of release at an appropriate speed. , More preferably 0.4 to 0.6 mm.
  • the length of the tube is preferably 10 cm to 1 m, more preferably 20 to 50 cm.
  • the polymer container having the above-mentioned shape is not limited to one chamber for enclosing the sex pheromone substance, and may include two or more chambers. When two or more chambers are provided, the inner diameter and the wall thickness may be different, and the sex pheromone substance may be enclosed in at least one of the chambers.
  • the amount of the sex pheromone substance and the additive stored in each chamber is the release period, the volatility of the sex pheromone substance, and the affinity with the material of the container. It varies depending on the above, but is preferably 50 to 500 mg.
  • Example 1-1, Example 1-2, Example 1-3 and Comparative Example 1 A field of 250 m in length and 1000 m in width is divided into five horizontally (north and south), and from the south side, A1 ward (Example 1-1), B1 ward (Example 1-2), C1 ward (Example 1-3). , D1 plot (Comparative Example 1-1) and E1 plot (Comparative Example 1-2) were provided with 5 ha of each field. On the 5th day after the occurrence of the 2nd generation PBW in the A1 ward, on the 10th day after the 2nd generation PBW occurred in the B1 ward, and on the 15th day after the 2nd generation PBW occurred in the C1 ward. Btcotton seedlings were planted.
  • the sustained-release pheromone preparation is 400 bottles / ha 4 days before the expected adult outbreak date of the 3rd generation PBW derived from the effective integrated temperature in each of the fields of A1, B1, C1 and D1. No sustained-release pheromone preparation was installed in the field of E1 plot.
  • the flower buds did not grow during the period when the second generation PBW was occurring, so that there was almost no damage to the initial flower buds. Therefore, the yield of cotton was higher than that of the field of the comparative example, and the non-defective rate was high.
  • the field in B1 plot was sandwiched between fields in which sustained-release pheromone preparations were installed on both sides, the yield of cotton and the non-defective rate were the highest.
  • the damage to flowers was less than in the field in the E1 plot where the sustained-release pheromone preparation was not installed, and the cotton yield and non-defective rate were high, but the cotton seedlings were planted earlier. By the time of early flower buds, the second generation PBW survived, and vegetation reduced the cotton yield.
  • Example 2-1 and Example 2-2 and Comparative Example 2 A field of 300 m in length and 600 m in width is divided into three horizontally (from northeast to southwest), and from the northeast side, A2 ward (Example 2-1), B2 ward (Example 2-2) and D2 ward (Comparative example 2). ), Each of which has a field of 6 ha. Cotton seedlings were planted in all fields 7 days after the outbreak of 3rd generation PBW, but normal cotton seedlings that had not been genetically modified were planted in the A2 plot, and Btcotton in the B2 and D2 plots. Seedlings were planted.
  • the damage to flowers and the damage to balls were lower than in the field of the comparative example, the yield of cotton was high, and the non-defective rate was high. In particular, the A2 ward was leeward, so the results were good.
  • the density of PBW is high, by increasing the proportion of Z, Z / Z, E-7,11-hexadecadienol, even ordinary cotton seedlings that have not been genetically modified can be used. , Sufficient effect was obtained.
  • Example 3-1 and Example 3-2, Example 3-3 and Comparative Example 3 A field of 1600 m from northwest to southeast and 300 m from southwest to northeast is divided into four from northwest to southeast, and from the northwest side, A3 ward (Example 3-1), B3 ward (Example 3-2), C3 ward (implementation). A field of 12 ha was provided for each of Examples 3-3) and D3 (Comparative Example 3). The A3 ward is on the 21st day after the first generation PBW occurs, the B3 ward is on the 28th day after the first generation PBW occurs, and the C3 ward is on the 35th day after the first generation PBW occurs. Btcotton seedlings were planted.
  • the sustained-release pheromone preparation was installed at a rate of 500 / ha 7 days before the expected adult outbreak date of the second generation PBW derived from the effective integrated temperature in each of the fields of A3, B3, and C3.
  • the sustained-release pheromone preparation was not installed in the field of D3 plot.
  • the insecticide Urara DF manufactured by Ishihara Bioscience was applied to control Sucking pests twice, 6 weeks and 10 weeks after planting cotton seedlings, and Mospiran (Nippon Soda).
  • the flower buds did not grow during the period when the first generation PBW was occurring, so that there was almost no damage to the initial flower buds. Therefore, the yield of cotton was higher than that of the field of the comparative example, and the non-defective rate was high. In the field of C3 plot, the non-defective rate was lower than that of the fields of other examples even though the damage of flowers was low, because the planting time of cotton seedlings was later than that of the fields of other examples. Therefore, it is probable that the growth of cotton trees was poor, and some of the sustained-release pheromone preparations fell together with the lower leaves of cotton in the latter half, and the sex pheromone concentration in the field decreased, so that communication could not be sufficiently disturbed.

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Abstract

交信撹乱法によりワタアカミムシの交尾を撹乱してワタアカミムシを防除することにより、花芽、蕾又は花の被害及びボールの被害を抑えると共に、綿の収量が減少しないワタアカミムシの防除方法を提供する。具体的には、発生したワタアカミムシの成虫が、第１世代である場合には前記成虫の発生日後２１～４１日以内に、第２世代以降である場合には前記成虫の発生日後１～２１日以内に、圃場に綿の苗を定植するステップと、有効積算温度から導かれる前記発生したワタアカミムシの成虫の次の世代の成虫発生予想日前２～１５日以内に、ワタアカミムシの性フェロモン物質であるＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートを少なくとも含む徐放性フェロモン製剤を前記圃場に設置して、前記徐放性フェロモン製剤中の性フェロモン物質を前記圃場に放出するステップとを少なくとも含むワタアカミムシの防除方法を提供する。

Description

ワタアカミムシの防除方法
　本発明は、綿の害虫であるワタアカミムシの防除方法に関する。
　綿の主要害虫であるワタアカミムシ（学名：Ｐｅｃｔｉｎｏｐｈｏｒａ　ｇｏｓｓｙｐｉｅｌｌａ、Ｐｉｎｋ　ｂｏｌｌｗｏｒｍ、以下、「ＰＢＷ」ともいう。）は、幼虫が孵化した直後に直ちに若芽、花、綿の若いボールの中に侵入するため、殺虫剤や天敵がその幼虫に接触することが困難であり、その防除は従来から困難であった。そのため、ワタアカミムシの防除方法については、種々の方法が検討されてきた。
　例えば、雌成虫が分泌する性フェロモンを用いて、雌雄の交尾活動を撹乱する交信撹乱法としては、初期に交尾したワタアカミムシの雌の産卵場所が綿の花芽等であることを考慮して、初期の花芽等のできる前に性フェロモン製剤を設置することが提案されている（非特許文献１）。
　また、殺虫微生物であるＢａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓの遺伝子を綿の種子に組み込んだＢｔｃｏｔｔｏｎによるワタアカミムシの防除も行われている。Ｂｔｃｏｔｔｏｎは予め種子にＢｔの遺伝子を組み込んでいるため、ワタアカミムシの幼虫が綿の若いボールの中に侵入してＢｔを含んだ綿実を食べることにより、ボールの中で殺虫されてボールの被害を抑えることができる。
日本農薬学会誌２５,４５６－４６１（２０００）
　しかし、非特許文献１のように初期の花芽等のできる前に性フェロモン製剤を設置しようとした場合、綿樹がまだ十分に成長していないため、大人が腰をかがめてフェロモン製剤を設置することになり、作業性に問題があった。また、従来から綿の害虫の防除は、綿のボールの被害をいかに少なくするかの観点で進められてきた関係から、ワタアカミムシの幼虫によるボールの被害を測定したために、実際には花芽の被害については調べられていなかった。
　一方、殺虫微生物であるＢａｃｉｌｌｕｓ　ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓの遺伝子を綿の種子に組み込んだＢｔｃｏｔｔｏｎを用いた場合には、ボールの被害はある程度抑えられるが、殺虫成分は非常に効果が弱いため、綿のボール中にしか存在しない殺虫成分のみでは、ボールの外のＰＢＷの幼虫に対しては効果がない。
　また、綿の花芽、蕾又は花に産み付けられたワタアカミムシの卵から孵化した幼虫により、初期の花芽、蕾又は花が被害を受けると、綿樹はボールを形成する意欲を失うか又は葉、茎等の生育にエネルギーを消費し、結果としてボールを作る能力が低下し、ボールの数が減少して、綿の収量が減少してしまうベジテーション（Ｖｅｇｅｔａｔｉｏｎ）という現象を起こすことも判明した。
　本発明は、前記事情に鑑みてなされたものであり、交信撹乱法によりワタアカミムシの交尾を撹乱してワタアカミムシを防除することにより、花芽、蕾又は花の被害及びボールの被害を抑えると共に、綿の収量が減少しないワタアカミムシの防除方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、前記課題を解決するために鋭意検討した結果、春先の気温が比較的高い地域においても十分な効果が得られるように、ワタアカミムシの成虫発生時期を基準にして、綿の苗の定植時期と徐放性フェロモン製剤の設置時期を選択することによって、ワタアカミムシによる花芽、蕾又は花の被害、及びボールの被害を抑えると共に、従来よりも綿の収量が増加するワタアカミムシの防除方法を見出し、本発明に至った。
　本発明の一つの態様によれば、発生したワタアカミムシの成虫が第１世代である場合には前記成虫の発生日後２１～４１日以内に、第２世代以降である場合には前記成虫の発生日後１～２１日以内に、圃場に綿の苗を定植するステップと、有効積算温度から導かれる前記発生したワタアカミムシの成虫の次の世代の成虫発生予想日前２～１５日以内に、ワタアカミムシの性フェロモン物質であるＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートを少なくとも含む徐放性フェロモン製剤を前記圃場に設置して、前記徐放性フェロモン製剤中の性フェロモン物質を前記圃場に放出するステップとを少なくとも含むワタアカミムシの防除方法が提供される。
　本発明によれば、ワタアカミムシによる初期の花芽等の被害及び全期間に亘るボールの被害を抑えると共に、綿の収量が増加する。
　ワタアカミムシの防除方法において圃場に綿の苗を定植する時期は、発生したワタアカミムシの成虫が第１世代であるか、第２世代以降であるかによって変わる。年に数回発生する害虫の世代の呼び方は、日本応用動物昆虫学会で規定されている方法に準ずるものであり、越冬世代の子孫で年内に出現する世代を第１世代、第２世代と序数詞をつけて呼ぶ。
　防除対象となるワタアカミムシは、好ましくは第２世代以降、より好ましくは第３世代及び第４世代のワタアカミムシである。ワタアカミムシの第１世代は自殺世代と呼ばれていたことから、従来から防除対象となるワタアカミムシは、第２世代以降であった。また、春先の気温が高いインドやパキスタン等の南アジアの場合、第１世代のワタアカミムシの成虫が発生する時期に、降雨が少ないために農業用水が確保できず、綿の苗を定植できない場合も多い。したがって、第１世代のワタアカミムシの成虫を防除対象とするのは難しい。
　第２世代のワタアカミムシの成虫を防除対象とする場合、第１世代のワタアカミムシの成虫発生日後２１～４１日以内、好ましくは２５～３５日以内に綿の苗を定植することになる。第１世代のワタアカミムシの成虫発生日後２１～４１日以内に定植することにより、通常、低温である第１世代であっても、第１世代のワタアカミムシの成虫が発生している期間に初期の花芽等が形成されないようにすることができる。また、第２世代のワタアカミムシの成虫を防除対象とする場合、二毛作地帯では、貯水池がある地域が多いため、水不足の問題は解消できる。
　このように、ワタアカミムシの成虫が第１世代である場合は、ワタアカミムシの成虫発生日後２１～４１日以内である。
　第３世代以降のワタアカミムシを防除対象とする場合、すなわち、第２世代以降のワタアカミムシの成虫発生日後１～２１日以内、好ましくは１～１５日以内に綿の苗を定植することになる。綿の苗を定植する時期がワタアカミムシの成虫発生日後１日未満の場合、その世代のワタアカミムシが発生している期間に初期の花芽等が形成される場合があるため、花芽等の被害を受けることになる。一方、２１日を過ぎる場合、綿樹がまだ小さいために、次世代のワタアカミムシの成虫発生前の徐放性フェロモン製剤の設置が困難である。このようにワタアカミムシの成虫の発生しない時期に、綿の初期の花芽が出るように綿の苗の定植時期を調整することにより、初期の花芽等の被害が抑えられ、その結果、綿樹はボールを形成する意欲を失わず、ボールの生育にエネルギーを使用して、ボールの数の減少、引いては綿の収量の減少を抑えることができる。
　ワタアカミムシの成虫発生日は、ワタアカミムシの成虫がトラップに捕獲された日により特定される。具体的には、ワタアカミムシの成虫発生前に、綿の苗を定植する圃場にトラップを１～２基設置し、ワタアカミムシの成虫が捕獲された日をワタアカミムシの成虫発生日とする。トラップは、市販されているほとんどのものが使用可能であるが、安定性の観点から、デルタトラップが好ましい。また、トラップの設置位置は、綿樹の高さに応じて、地上から２０～７０ｃｍの高さが好ましい。
　徐放性フェロモン製剤の設置時期は、有効積算温度から導かれる前記ワタアカミムシの次の世代の成虫発生予想日前２～１５日以内、好ましくは２～１０日以内、より好ましくは２～５日以内である。例えば、発生したワタアカミムシの成虫が第１世代である場合は、発生日を予想する次の世代の成虫は第２世代となり、発生したワタアカミムシの成虫が第２世代である場合は、発生日を予想する次の世代の成虫は第３世代となる。ここで、徐放性フェロモン製剤の設置時期を次の世代の成虫発生予想日を基準にしたのは、ワタアカミムシが発生してからでは交尾してしまい、徐放性フェロモン製剤の効力を発揮できないためである。また、徐放性フェロモン製剤の設置時期がワタアカミムシの次の世代の成虫発生予想日前１５日より早い時期の場合、綿樹が小さいため徐放性フェロモン製剤を設置することは困難となり、次の世代の成虫発生予想日前２日より遅い時期では、次世代の交尾を妨げることができず、ワタアカミムシを防除できない。
　ワタアカミムシの次の世代の成虫発生予想日は、ワタアカミムシの有効積算温度（Ａｃｃｕｍｕｌａｔｅｄ　ｄｅｇｒｅｅ　ｄａｙｓ、以下、「ＡＤＤ」ともいう。）から導かれる。例えば、米国の西部においては、ワタアカミムシの次の世代の成虫発生が予想される圃場において、２月１日から毎日の平均温度（ｏＦ）を測定し、その平均温度からワタアカミムシ発育に最低限必要な温度の限界点である発育零点５７ｏＦを引いた値をその日のＡＤＤ用の基礎温度とし、毎日の基礎温度を積算する。この際、その日の平均温度が発育零点を下回る場合には、その日の基礎温度は０ｏＦとする。そして、ＡＤＤが４０８ｏＦになるとＰＢＷの第１世代が発生し、９１８ｏＦになるとピークを迎え、１８２５ｏＦになると第１世代が終了し、第１世代の終了から次の世代の成虫の発生までのＡＤＤは８００ｏＦであり、次の世代の成虫発生から終了までのＡＤＤは８８６ｏＦであると言われている（カルフォルニア大学出版　「Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ　Ｐｅｓｔ　Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ　ｆｏｒ　Ｃｏｔｔｏｎ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｒｅｇｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｕｎｉｔｅｄ　Ｓｔａｔｅｓ　Ｓｅｃｏｎｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ」参照）。
　そして、これらの情報又は、予め前年以前に実際に綿の栽培を行う地域におけるワタアカミムシの発生及び終了について測定して求めたＡＤＤをもとに、必要に応じて修正して、次の世代の成虫発生日を予想する。例えば、次のように米国西部での各世代のワタアカミムシの発生日を推定することができる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　ＡＤＤは、地方によっては１日の最低温度と最高温度によって左右されるため、徐放性フェロモン製剤を使用する地域でのＡＤＤを確認することが望ましい。
　また、ワタアカミムシの成虫が発生すると予想される日の１０日前からトラップを圃場に設置し、前年以前のＡＤＤとの誤差を予め調べることにより、ワタアカミムシの次世代の成虫の発生予想日をより精度よく推定することができる。
　徐放性フェロモン製剤は、性フェロモン物質としてＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートを封入した高分子製の容器である。
　性フェロモン物質としては、ワタアカミムシの性フェロモン物質であるＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートが挙げられる。
　また、ワタアカミムシが高密度に存在する場合の交信撹乱法の低下を防ぐ観点から、Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートとＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールとの混合物を用いることが好ましい。Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートとＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールとの質量比は、好ましくは９９．５：０．５から９５.０：５．０、より好ましくは９９．０：１．０から９６.０：４．０、更に好ましくは９８．５：１．５から９６.５：３．５である。
　徐放性フェロモン製剤は、性フェロモン物質の他に、性フェロモン物質の安定性の度合いによって適宜、抗酸化剤、紫外線吸収剤等の添加剤を含有することもできる。
　抗酸化剤としては、ＢＨＴ（ブチルヒドロキシトルエン）、ＢＨＡ（ブチルヒドロキシアニソール）、プロトカテキュア酸エチル、没食子酸イソアミル、没食子酸プロピル等の合成酸化防止剤、ＮＤＧＡ（ノルジヒドログアヤレチン酸）、グアヤク脂等の天然酸化防止剤等の抗酸化剤が挙げられる。
　紫外線吸収剤としては、パラジメチルアミノ安息香酸オクチル等のパラアミノ安息香酸系、オキシベンゾン（２－ヒドロキシ－４－メトキシベンゾフェノン）、２－ヒドロキシ－４－オクトキシベンゾフェノン等のベンゾフェノン誘導体、メトキシ桂皮酸誘導体、サリチル酸誘導体等が挙げられる。
　抗酸化剤及び紫外線吸収剤の各含有量は、好ましくは０．０１～５質量％であり、その合計の含有量は、好ましくは０．０２～１０質量％である。
　高分子製の容器の材質は、ポリオレフィン系重合体が好ましい。これには、ポリエチレンやポリプロピレンに例示されるポリオレフィン、エチレン－酢酸ビニル共重合体が挙げられる。これらの材質では、性フェロモン物質等が透過し、適度な速度で高分子膜の外に放出させることができる。また、生分解性のポリエステルや塩化ビニルも用いることができる。
　高分子製の容器の形状は、チューブ又は袋状のものが挙げられるが、性フェロモン物質を放出する期間が長く、放出が均一である観点から、チューブが好ましい。その内径は、適度な速度での放出の観点から、好ましくは０．５～２．０ｍｍ、より好ましくは０．６～１．５ｍｍであり、その肉厚は好ましくは０．３～０．８ｍｍ、より好ましくは０．４～０．６ｍｍである。また、チューブの長さは、好ましくは１０ｃｍ～１ｍ、より好ましくは２０～５０ｃｍである。
　上記のような形状を有する高分子製の容器は、性フェロモン物質を封入する室が１つに限定されるものではなく、２室以上を備えてもよい。２室以上を備える場合は、その内径や肉厚は異なっていても良く、性フェロモン物質はその中の少なくとも１室以上に封入されていれば良い。
　１室以上を備える容器において、各室への性フェロモン物質並びに添加剤を含む場合の性フェロモン物質及び添加剤の収納量は、放出期間、性フェロモン物質の揮発性及び容器の材質との親和性等によって異なるが、好ましくは５０～５００ｍｇである。
　以下、実施例及び比較例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の実施例に制限されるものではない。
＜徐放性フェロモン製剤の製造＞
　Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテート及びＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールを９７．８：２．２の質量比で混合し、これらの合計質量に対して２質量％のブチルヒドロキシトルエン及び２質量％の２－ヒドロキシ－４－オクトキシベンゾフェノンを各々酸化防止剤及び紫外線吸収剤として添加した。これら成分を内径０．９ｍｍ、肉厚０．６ｍｍのポリエチレンよりなる２０ｃｍの細管に１６０ｍｇ充填したものを実施例の圃場に処理する徐放性フェロモン製剤とした。
＜花の被害＞
　第１世代の成虫発生日後に綿の苗を定植する場合には、綿の苗の定植後６週間目から１０週間目にかけて１週間ごとに、第２世代以降の成虫発生日後に綿の苗を定植する場合には、綿の苗の定植後５週間目から９週間目にかけて１週間ごとに、各区における１００個の花について観察を行った。そして、ワタアカミムシの幼虫を含んでいる場合又は花の色が濃くなり萎んだ場合を「被害あり」とし、黄白色又は桃色の場合は「被害なし」として、被害があった花の数の平均値を求めた。
＜ボールの被害＞
　綿の苗の定植後１１週間目から１５週間目にかけて、１週間ごとに若いボールを５０個採取し、３０℃、湿度７０％の飼育箱で２週間保育した後、ボールを割って赤色に変化したＰＢＷの幼虫がいる場合を「被害あり」とした。
＜良品率＞
　第１世代の成虫発生日後に綿の苗を定植する場合には、綿の苗の定植後１５週間後、２０週間後、２６週間後に、第２世代以降の成虫発生日後に綿の苗を定植する場合には綿の苗の定植後１４週間後、１９週間後、２５週間後に、各区の圃場から５０樹の開実している綿実を採取し、綿が着色せず白い場合を「良品」、綿が黒色から黄色に着色した場合を「不良品」に分け、採取した綿実全体に対する良品の割合として求めた。
実施例１－１、実施例１－２、実施例１－３及び比較例１
　縦２５０ｍ、横１０００ｍの圃場を横に（南北に）５分割して、南側からＡ１区（実施例１－１）、Ｂ１区（実施例１－２）、Ｃ１区（実施例１－３）、Ｄ１区（比較例１－１）及びＥ１区（比較例１－２）のそれぞれ５ｈａの圃場を設けた。Ａ１区には第２世代のＰＢＷの発生日後５日目に、Ｂ１区には第２世代のＰＢＷが発生後１０日目に、Ｃ１区には第２世代のＰＢＷが発生後１５日目にＢｔｃｏｔｔｏｎの苗を定植した。また、Ｄ１区及びＥ１区には、有効積算温度から導かれるＰＢＷの第２世代の成虫発生予想日より５日前に綿の苗を定植したが、実際の成虫の発生は前記予定日から２日遅れ、第２世代のＰＢＷの成虫発生日の７日前に定植したことになった。
　その後、前記Ａ１区、Ｂ１区、Ｃ１区及びＤ１区の各圃場における有効積算温度から導かれる第３世代のＰＢＷの成虫発生予想日の４日前に徐放性フェロモン製剤を４００本／ｈａとなるように設置し、Ｅ１区の圃場には徐放性フェロモン製剤を設置しなかった。
　また、各圃場には、サッキングペスト（Ｓｕｃｋｉｎｇ　ｐｅｓｔｓ）防除用に殺虫剤ウララ　ＤＦ（石原バイオサイエンス社製）を綿の苗の定植後６週間後と１０週間後の２回、モスピラン（日本曹達社製）を綿の苗の定植後８週間後１回散布した。
　各圃場における花の被害、綿の収量及び良品率を求めた。その結果を表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　実施例における圃場は、第２世代のＰＢＷが発生している期間は花芽が成長していなかったため、初期の花芽の被害はほとんどなかった。このため、綿の収量も比較例の圃場に比べていずれも綿の収量が高い上に、良品率が高かった。また、Ｂ１区の圃場は両サイドに徐放性フェロモン製剤を設置した圃場に挟まれているため、綿の収量及び良品率が最も高かった。
　一方、Ｄ１区では、徐放性フェロモン製剤を設置しなかったＥ１区の圃場に比べて花の被害が少なく、かつ綿の収量及び良品率が高かったが、綿の苗の定植時期が早かったため、初期の花芽の時期までに第２世代のＰＢＷが生存し、ベジテーションにより綿の収量が低下した。
実施例２－１、実施例２－２及び比較例２
　縦３００ｍ、横６００ｍの圃場を横に（東北から西南に）３分割して、東北側からＡ２区（実施例２－１）、Ｂ２区（実施例２－２）及びＤ２区（比較例２）のそれぞれ６ｈａの圃場を設けた。いずれの圃場にも、第３世代のＰＢＷの発生日後７日後に綿の苗を定植したが、Ａ２区には遺伝子組み換えを行っていない通常の綿の苗を、Ｂ２区及びＤ２区にはＢｔｃｏｔｔｏｎの苗を定植した。
　その後、Ｂ２区圃場のみについて、Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテート及びＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールを９９．６：０．４の質量比で混合した以外は実施例１－１～１－３と同様にして、前記Ａ２区及びＢ２区の各圃場における有効積算温度から導かれる第３世代のＰＢＷの成虫発生予想日の８日前に徐放性フェロモン製剤を４００本／ｈａとなるように設置して、Ｄ２区の圃場には徐放性フェロモン製剤を設置しなかった。
　また、各圃場には、サッキングペスト（Ｓｕｃｋｉｎｇ　ｐｅｓｔｓ）防除用に殺虫剤ウララ　ＤＦ（石原バイオサイエンス社製）を綿の苗の定植後６週間後と１０週間後の２回、モスピラン（日本曹達社製）を綿の苗の定植後８週間後１回散布した。
　各圃場における花の被害、ボールの被害、綿の収量及び良品率を求めた。その結果を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　徐放性フェロモン製剤を設置した実施例における圃場は、比較例の圃場に比べて花の被害及びボールの被害が低く、かつ綿の収量が高い上に、良品率が高かった。特にＡ２区は風下であるため、成績が良かった。また、ＰＢＷの密度が高い場合には、Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールの割合を高くすることにより、遺伝子組み換えを行っていない通常の綿の苗であっても、十分な効果が得られた。
　なお、実施例１－１～１－３と比べて花の被害は全般的にやや高かったのは、周辺の農地での収穫により、餌がなくなったＡＢＷが綿の圃場に飛来したためだと考えられ、これに伴って綿の収量もやや低くなった。
　一方、比較例２はＢｔｃｏｔｔｏｎの苗を定植したため、ボールの被害はある程度抑えられたが、花の被害が大きかった。その結果、ベジテーション（Ｖｅｇｅｔａｔｉｏｎ）が起こり、ボールを作る能力が低下し、ボールの数が減少して、綿の収量が減少した。
実施例３－１、実施例３－２、実施例３－３及び比較例３
　北西から南東に１６００ｍ、南西から北東に３００ｍの圃場を北西から南東に４分割して、北西側からＡ３区（実施例３－１）、Ｂ３区（実施例３－２）、Ｃ３区（実施例３－３）及びＤ３区（比較例３）のそれぞれ１２ｈａの圃場を設けた。Ａ３区には第１世代のＰＢＷの発生日後２１日目に、Ｂ３区には第１世代のＰＢＷの発生日後２８日目に、Ｃ３区には第１世代のＰＢＷの発生日後３５日目にＢｔｃｏｔｔｏｎの苗を定植した。また、Ｄ３区には、有効積算温度から導かれるＰＢＷの第１世代の成虫発生予想日の２８日に後定植した。
　その後、前記Ａ３区、Ｂ３区及びＣ３区の各圃場における有効積算温度から導かれる第２世代のＰＢＷの成虫発生予想日の７日前に徐放性フェロモン製剤を５００本／ｈａとなるように設置し、Ｄ３区の圃場には徐放性フェロモン製剤を設置しなかった。
　また、各圃場には、サッキングペスト（Ｓｕｃｋｉｎｇ　ｐｅｓｔｓ）防除用に殺虫剤ウララ　ＤＦ（石原バイオサイエンス社製）を綿の苗の定植後６週間目と１０週間目の２回、モスピラン（日本曹達社製）を綿の苗の定植後８週間目の１回散布した。更に、Ｂ３の圃場には、ＢＴ剤ゼンターリ（住友化学社製）を第２世代のＰＢＷの発生後、１週間目と２週間目の２回散布した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　実施例における圃場は、第１世代のＰＢＷが発生している期間は花芽が成長していなかったため、初期の花芽の被害はほとんどなかった。このため、綿の収量も比較例の圃場に比べていずれも綿の収量が高い上に、良品率が高かった。
　なお、Ｃ３区の圃場において、花の被害が低いにも拘わらず良品率が他の実施例の圃場と比べて低かったのは、綿の苗の定植時期が他の実施例の圃場よりも遅かったため、綿木の生育が悪く、一部の徐放性フェロモン製剤が後半に綿の下葉と共に落下し、圃場内の性フェロモン濃度が低下して、十分に交信撹乱できなかったためと考えられる。
　一方、比較例における圃場ではＢｔｃｏｔｔｏｎを用いたことから、ボールの被害はある程度抑えられるが、殺虫成分であるＢｔは非常に効果が弱いため、Ｂｔ剤を散布してもボールの外のＰＢＷの幼虫に対しては効果がなかった。このため、初期の花芽の被害はひどく、その結果、ベジテーション（Ｖｅｇｅｔａｔｉｏｎ）が起こり、ボールを作る能力が低下し、ボールの数が減少して、綿の収量が大幅に減少した。

Claims (4)

  1. 　発生したワタアカミムシの成虫が、第１世代である場合には前記成虫の発生日後２１～４１日以内に、第２世代以降である場合には前記成虫の発生日後１～２１日以内に、圃場に綿の苗を定植するステップと、
    　有効積算温度から導かれる前記発生したワタアカミムシの成虫の次の世代の成虫発生予想日前２～１５日以内に、ワタアカミムシの性フェロモン物質であるＺ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートを少なくとも含む徐放性フェロモン製剤を前記圃場に設置して、前記徐放性フェロモン製剤中の性フェロモン物質を前記圃場に放出するステップと
    を少なくとも含むワタアカミムシの防除方法。
  2. 　前記発生したワタアカミムシの成虫が、第２世代である請求項１に記載のワタアカミムシの防除方法。
  3. 　前記発生したワタアカミムシの成虫が、第３世代である請求項１に記載のワタアカミムシの防除方法。
  4. 　前記徐放性フェロモン製剤が、Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールを更に含み、前記Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエニルアセテートと前記Ｚ,Ｚ／Ｚ,Ｅ－７,１１－ヘキサデカジエノールとの質量比が、９９．５：０．５から９５.０：５．０の混合物である請求項１～３のいずれか１項に記載のワタアカミムシの防除方法。
     
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