WO2020099708A2 - Método para predecir o pronosticar el desarrollo de diabetes mellitus tipo 2 en un individuo - Google Patents
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- WO2020099708A2 WO2020099708A2 PCT/ES2019/070777 ES2019070777W WO2020099708A2 WO 2020099708 A2 WO2020099708 A2 WO 2020099708A2 ES 2019070777 W ES2019070777 W ES 2019070777W WO 2020099708 A2 WO2020099708 A2 WO 2020099708A2
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- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
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Definitions
- the present invention is within the field of medicine and endocrinology and is directed to a method for predicting or forecasting the development of DMT2 in an individual, to a prognosis kit or device, and to its uses.
- Type 2 diabetes mellitus is a major health problem in developed countries, as its incidence and prevalence have increased in recent decades, along with increased obesity, unhealthy eating, and sedentary lifestyle.
- T2DM family history, BMI> 30 and / or dysregulation of insulin metabolism
- T2DM is closely associated with cardiovascular disease (CVD), since, for example, patients with myocardial infarction and T2DM have a higher risk of developing a new cardiovascular event than those without T2DM (Martin-Timon I, et al. Type 2 diabetes and cardiovascular disease: have all risk factors the same strength. (World J Diabetes. 2014). Therefore, the early identification of individuals with a high risk of developing T2DM, especially among patients with CVD, is essential for prevention (Blanco-Rojo R, et al. HDL Cholesterol efflux normalised to apoa-i is associated with future development of type 2 diabetes: from the CORDIOPREV trial. Sci Rep. 2017; Camargo A, et al. Postprandial endotoxemia may influence the development of type 2 diabetes mellitus: from the CORDIOPREV study. Clin Nutr., 2018).
- CVD cardiovascular disease
- Opportunistic screening within the context of screening for other cardiovascular risk factors, consists of:
- Two-stage screening using FINDRISC insulin resistance indices consists of performing the FINDRISC every 3-5 years in people from the age of 40 and in people between 25-39 years if they have risk factors for T2DM.
- the action to follow according to the score in FINDRISC is:
- Prediabetes offer intensive measures of lifestyle modification and annual control (with GBP or HbA1 c).
- Phenotypic flexibility i.e., the ability to cope with stressors while maintaining metabolic homeostasis
- Phenotypic flexibility may have a predictive potential (Stroeve JHM, et al. Phenotypic flexibility as a measure of health: the optimal nutritional stress response test. Genes Nutr., 2015).
- PBMC peripheral blood mononuclear cells
- dysregulations in splicing processes are associated with the development of various pathologies (Dlamini Z, et al. Abnormalities in alternative splicing in diabetes: therapeutic targets. J Mol Endocrinol. 2017.).
- the splicing process is catalyzed by the minor and major spliceosomes, which act on different types of introns.
- the spliceosome is a macromolecular complex, the functional nucleus of which consists of several subunits of small nuclear ribonucleoproteins (snRNPs), which interact dynamically to regulate the splicing process. Furthermore, spliceosome activity is modulated by more than 300 splicing factors (SFs) that specifically recognize certain sequences in exons and introns. Therefore, dysregulation of the expression and / or function of certain components of the spliceosome can lead to aberrant alteration of the normal splicing process. In fact, the proper function of the splicing machinery, that is, the components of the spliceosome and the SFs, is an essential mechanism for maintaining homeostasis of the entire body. Therefore, deregulations of the splicing process may play an important role as a pathogenic factor and could serve as a predictive marker of the development of DMT2.
- SFs splicing factors
- FIG. 1 Baseline expression pattern of the spliceosome components and selected splicing factors in the PBMCs of the patients who will develop DMT2 (Incident-T2DM) and controls (non-T2DM).
- mRNA expression levels [adjusted for a normalization factor (NF) calculated from GAPDH and ACTB expression levels] of specific spliceosome components (first row) and splicing factors (second row) in PBMCs of non-diabetic patients and controls. Values represent mean ⁇ SEM. Asterisks indicate values that differ significantly from control patients (t-test: *, p ⁇ 0.05).
- FIG. 1 Baseline expression pattern of the spliceosome components and selected splicing factors in the PBMCs of the patients who will develop DMT2 (Incident-T2DM) and controls (non-T2DM) during the postprandial phase.
- Significantly altered spliceosome components or splicing factors are highlighted in bold
- mRNA expression levels [adjusted for a normalization factor (NF) calculated from GAPDH and ACTB expression levels] of spliceosome components and factors of specific splicing in the PBMCs of the non-diabetic patients and controls.
- NF normalization factor
- these selected components were RNU4ATAC, TIA1, KHDRBS1, SRSF10, PTBP1, RAVER1, RNU2, RNU5, SRSF9, U2AF2, RBM45, SRSF4, RBM3 fasting, RNU4ATAC, RNU6ATAC, RAVER1, SF3 ESRP1, U2AF1 in the postprandio, and SRSF3, SRSF10, SRSF6, TRA2B, PTBP1, SF3B1 in fasting, as well as RNU4ATAC, RAVER1, RNU4ATAC, NOVA1, RNU4, RNU6, PRPF8 in the postprandio, for the analyzes.
- ROC curves were calculated considering only those patients who developed diabetes during the first two years of follow-up (c and d).
- the selection of machinery components were RNUU4ATAC, PTBP1, TRA2A, RM17, RNU12, TIA1, SRSF5, RNU2 fasting, RNU4ATA, PTBP1, MAGOH, SRSF9, RAVER1, PRP8, PRPF40A, SRRM1, SRSF6, , TIA1, RNU2 in the postprandio, and RNU4ATAC, TRA2A, SRSF5, RBM17, SRSF10, SRSF3, RNU2 fasting and RNU4ATAC, RNU4, RNU6ATAC, MAGOH, RAVER1, PRPF40A, RBM4, U2AF, U2AF, U2AF postprandio for combined analyzes.
- HbA1 c glycated hemoglobin
- FINDRISK FINDRISK
- FIG. 4 Levels of expression of key components of the spliceosome in the PBMCs of healthy subjects treated with serum from patients who will develop DMT2 (lncident-T2DM) and controls (non-T2DM) fasting for 24 hours (a) or postprandial for 4 hours (b).
- Asterisks indicate values that differ significantly from PBMCs treated with serum from non-diabetic patients (t-test: *, p ⁇ 0.05; ***, p ⁇ 0.001).
- the present invention is a tool for the early diagnosis of patients at risk of developing DMT2.
- the creation of the biomarker evaluation models proposed here allows: 1) to discriminate between healthy individuals and patients with high risk of developing T2DM, with high sensitivity and specificity, 2) to clinically stratify the patients based on clinical parameters and the expression of components of the splicing machinery in blood cells; and 3) facilitate clinical monitoring of these patients, contributing to the development of personalized medicine.
- the present invention proposes the standardized evaluation of a panel of biomarkers, in this case related to the splicing machinery, in blood cells of patients. This information would allow, for example, the development of a chip or array for the stratification of patients in various risk groups and the definition of their specific needs for clinical monitoring and therapeutic management.
- the deregulation of the cutting and splicing process of mRNA molecules, or splicing is emerging as a hallmark in various pathologies.
- the objective of the present invention has been the identification of certain components of the dysregulated splicing machinery in blood cells of patients at risk of developing DMT2, as well as their influence on the activity of the disease.
- the authors of the present invention have identified that the alteration in the expression of certain components of the spliceosome and splicing factors are related to the development of DMT2, preceding the clinical establishment of this pathology and that, therefore, they could serve as sensors and early predictors of DMT2 development. They have identified a molecular footprint formed by certain of these components that is capable of predicting the future development of DMT2 in patients with high precision, which even exceeds the capacity of classic predictors of DMT2 development, such as glycated hemoglobin, resistance indices. insulin or FINDRISC.
- a first aspect of the invention relates to the use of the product of the expression of the genes RNU2, RNU4, RNU4ATAC, RNU6, RNU6ATAC, RNU12, SNRNP200, ESRP1, SRSF1, SRSF5, SNRNP70 and / or NOVA1, or any of their combinations, to predict or forecast the development of DMT2 in an individual.
- RNU2 refers to the component gene of the spliceosome major.
- the spliceosome is a complex of ribonucleoproteins that catalyzes the removal of introns from nuclear mRNA precursors.
- the spliceosome is composed of four small ribonucleoprotein particles (the snRNPs U1, U2, and U4 / U6) and numerous additional proteins.
- the small nuclear U2 RNA (snRNA) is an RNA component of the snRNP U2 that interacts with the 3 'region of the intron at the branch site. Several sites in the human genome express U2 snRNAs.
- This locus represents an array of snRNA U2 genes located at 17q21-22 that undergo a concerted evolution to homogenize repeat units within the array. Each repeat in this array is approximately 6.1 kb long and contains a single copy of snRNA 1/2.
- RNU2 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the snRNP sequence "RNU2", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules comprising SEQ ID NO: 1, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- RNU4 refers to the gene, factor of splicing machinery.
- RNU4 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the snRNP sequence "RNU4", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules comprising SEQ ID NO: 2, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- RNU4ATAC refers to the small nuclear RNA (snRNP) encoded by this gene is part of the U12-dependent minor spliceosome complex. In addition to the encoded RNA, this ribonucleoprotein complex consists of snRNPs U11, U12, U5 and U6atac.
- RNU4ATAC is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the snRNP sequence "RNU4", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules comprising SEQ ID NO: 3, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- RNU6 refers to the gene, factor of the splicing machinery.
- RNU6 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the snRNP sequence "RNU6”, and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules comprising SEQ ID NO: 4, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- RNU6ATAC refers to the small nuclear RNA (snRNP) encoded by this gene is part of the spliceosome complex minor dependent on U12.
- this ribonucleoprotein complex consists of snRNPs U 11, U12, U5 and U6atac.
- RNU6ATAC is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the snRNP sequence "RNU6ATAC”, and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules comprising SEQ ID NO: 5, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- RNU12 refers to the small nuclear RNA (snRNP) encoded by this gene that is part of the U12-dependent minor spliceosome complex.
- this ribonucleoprotein complex consists of snRNPs U1 1, U12, U5 and U6atac.
- RNU12 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the snRNP sequence "RNU12", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules comprising SEQ ID NO: 6, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- SNRNP200 refers to both the gene and the human protein, subunit 200 of the small nuclear ribonucleoprotein U5.
- Pre-mRNA splicing is catalyzed by the spliceosome, a complex of specialized RNA and protein subunits that removes introns from a previously transcribed mRNA segment.
- the spliceosome consists of small nuclear RNA proteins (snRNPs) U1, U2, U4, U5 and U6, along with approximately 80 conserved proteins.
- U5 snRNP contains nine specific proteins.
- This gene encodes one of the snRNP U5 specific proteins.
- This protein belongs to the DEXH-box family of putative RNA helicases. It is a central component of the U4 / U6-U5 snRNPs and appears to catalyze an ATP-dependent unwinding of U4 / U6 RNA duplicates. Mutations in this gene cause autosomal dominant retinitis pigmentosa. Alternatively, spliced transcription variants encoding different isoforms have been found, but the full nature of these variants has not been determined.
- SNRNP200 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence for the protein "SNRNP200", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7, b) nucleic acid molecules whose complementary strand hybrid to the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due upon degeneration of the genetic code, d) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 7. in which the polypeptide encoded by said nucleic acids possesses the activity and structural characteristics of the SRSF5 protein.
- SEQ ID NO: 7 nucleotide sequence encoding SRSF5 is, but is not limited to, SEQ ID NO: 7.
- TCCCTCCT CAAT CAACAACTTCCT ATT GAAAGCCAG AT GGTTT CAAAGCTTCCT GACATGCT
- ERPT ' also referred to in the literature as DFNB109, RBM35A, RMB35A refers to both the gene and the human protein.
- ESPR1 is an epithelial cell type specific spliáng regulator.
- ESRP1 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the sequence" ESRP1 ", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising SEQ ID NO: 9, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code,
- SRSFT also referred to in the ASF literature; SF2; SFRS1; SF2p33; SRp30a
- SRSFT refers to both the gene encoding a member of the arginine / serine-rich splicing factor protein family.
- the encoded protein may activate or repress splicing, depending on its phosphorylation status and its interaction partners.Multiple transcription variants have been found for this gene.There is a pseudogene of this gene on chromosome 13.
- SRSF1 refers to both the gene and the human protein, a factor in the splicing machinery.
- SRSF1 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence for the "SRSF1" protein, and which would comprise various variants derived from:
- nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10 b) nucleic acid molecules whose complementary strand hybrid to the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs of a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code, d) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98 % or 99% with SEQ ID NO: 10. in which the polypeptide encoded by said nucleic acids possesses the activity and structural characteristics of the SRSF1 protein.
- SEQ ID NO: 1 nucleotide sequences encoding SRSF1 is, but is not limited to, SEQ ID NO: 1 1.
- SRSF5 also called in the HRS literature; SFRS5; SRP40 refers to both the gene and the human protein.
- the protein encoded by this gene is a member of the serine / arginine-rich (SR) family of pre-mRNA splicing factors, which are part of the spliceosome. Each of these factors contains an RRM (RNA Recognition Motif) to bind RNA and an RS domain to bind other proteins.
- RRM RNA Recognition Motif
- the RS domain is rich in serine and arginine residues and facilitates the interaction between different SR splicing factors.
- SR proteins In addition to being critical for the splicing of mRNA, SR proteins have also been shown to be involved in the export of mRNA from the nucleus and in translation. Alternative cutting and splicing results in multiple transcription variants.
- SRSF5 refers to both the human gene and protein, a factor in splicing machinery.
- SRSF5 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence for the" SRSF5 "protein, and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules that encode a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 12, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code, d) molecules nucleic acid encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 12. where the polypeptide encoded by dec The nucleic acids possess the activity and
- NOVA1 refers to the gene encoding a specific neuronal RNA binding protein, a member of the Nova family of paraneoplastic disease antigens, which is recognized and inhibited by paraneoplastic antibodies. These antibodies are found in the sera of patients with paraneoplastic opsoclone ataxia, breast cancer, and small cell lung cancer.
- NOVA 1 refers to both the gene and the human protein, a factor in the splicing machinery.
- "NOVA 1" is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence for the "NOVA 1" protein, and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 14, b) nucleic acid molecules whose complementary strand hybrid to the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b ) due to the degeneracy of the genetic code, d) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 14. in which the polypeptide encoded by said nucleic acids possesses the
- SNRNP70 refers to both the gene and the human protein. Unless otherwise indicated, when used herein the term “SNRNP70” refers to both the gene and the human protein, a factor of the splicing machinery.
- SNRNP70 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the coding sequence for the protein" SNRNP70 ", and which would comprise various variants derived from: a) nucleic acid molecules encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16, b) nucleic acid molecules whose hybrid complementary chain with the polynucleotide sequence of a), c) nucleic acid molecules whose sequence differs from a) and / or b) due to the degeneracy of the genetic code, d) molecules nucleic acid encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence with an identity of at least 80%, 90%, 95%, 98% or 99% with SEQ ID NO: 16. where the polypeptide coded by said nucleic acids it possesses the activity and the structural characteristics of the SNRNP70 protein.
- SNRNP70 is also defined by a nucleotide or polynucleotide sequence, which constitutes the
- the molecular traces comprised of the fasting and, especially, post-prandial levels of some of these components of the splicing machinery were able to differentiate between patients who subsequently developed DMT2 (incident-T2DM) from those patients who they did not develop the disease during the five years of follow-up with an AUO 0.8 after the cross-validation analysis, which is significantly higher than the current standard procedures (HbA1c and F ⁇ NDR ⁇ SC showed AUC ⁇ 0.88 in our cohort).
- patients with low levels of expression of specific components of the splicing machinery in PBMC including RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA 1, SRSF1 and / or SRSF5, are at increased risk. (QR> 4) of DMT2 development compared to those patients with high levels of PBMC of these components and / or those with increased levels of SNRNP70.
- another aspect of the invention refers to a method of obtaining useful data to diagnose, predict or forecast the development of DMT2 in an individual, hereinafter the first method of the invention, which comprises the following steps: a) Determination of the levels of the expression product of the RNU2, RNU4,
- biological sample refers to, but is not limited to, cells, tissues and / or biological fluids of an organism, obtained by any method known to a person skilled in the art; that is, any selected from the group of body fluids or cells, or from a cell extract or the supernatant of the cell culture of said cells, and / or liquid biopsy (blood, serum, plasma, urine, ).
- the sample is a fabric.
- the term "individual” as used in the description refers to animals, preferably mammals, and more preferably, humans.
- the term “individual” in this memory is synonymous with “patient”, and is not intended to be limiting in any respect, as it may be of any age, sex and physical condition.
- the expression levels of the genes will give a certain gene expression profile.
- level “expression level”, also called “gene product quantity” refers to the biochemical material, either RNA or protein, resulting from the expression of a gene. Sometimes a measure of the amount of gene product is used to infer how active a gene is.
- Gene expression profile is understood as the gene profile obtained after quantification of the MRNA and / or protein produced by the genes of interest or biomarkers, that is, by the genes used as biological markers in the present invention, in an isolated biological sample.
- the expression profile of the genes is carried out, preferably, by determining the level of mRNA derived from their transcription, after extraction of the total RNA present in the isolated biological sample, which can be carried out using protocols known in the state of the art.
- the determination of the level of mRNA derived from the transcription of the genes used as biological markers in the present invention can be carried out, for example, but not limited to, by polymerase chain reaction (PCR) amplification, reverse transcription in combination with polymerase chain reaction (RT-PCR), quantitative RT-PCR (qPCR), reverse transcription in combination with the ligase chain reaction (RT-LCR), or any other nucleic acid amplification method; serial analysis of gene expression (SAGE, SuperSAGE); DNA chips made from oligonucleotides deposited by any mechanism; DNA microarrays made with oligonucleotides synthesized in situ by photolithography or by any other mechanism; in situ hybridization using specific probes labeled with any labeling method; by means of electrophoresis gels; by membrane transfer and hybridization with a specific probe; by nuclear magnetic resonance or any other diagnostic imaging technique using paramagnetic nanoparticles or any other type of detectable nanoparticles functionalized with antibodies or by any other means.
- PCR polymerase chain
- the gene expression profile could also be obtained by detecting and / or quantifying the proteins resulting from the translation of mRNA derived from the transcription of genes used as biological markers in the present invention, by, for example, but not limited to, immunodetection. for western blot.
- the quantitative detection of the expression of the genes used as biological markers in the present invention can be carried out more preferably by real-time PCR (RT-PCR or RTqPCR). Real-time detection of amplified products can be carried out using fluorescent molecules that are intercalated in double-stranded DNA or by hybridization with different types of probes.
- detection of protein levels or gene expression level can be done by any of the techniques known to the person skilled in the art.
- Steps (b) and / or (c), of the method described above can be totally or partially automated, for example, by means of a robotic sensor equipment for the detection of the presence in step (b) or the computerized classification in step (c).
- step (b) detection of step (b) is performed by PCR, preferably RT-PCR.
- the protein level or levels are detected, it can be done, as in the case of genes, by any of the techniques known to the person skilled in the art. So, in another preferred embodiment of this aspect of the invention, detection of expression levels is performed by an immunological technique.
- the immunological techniques are based on precipitation, agglutination, immunolabeling, radioimmunoassay and radioimmunometric techniques, preferably ELISA (Enzyme Linked ImmunoadSorbent Assay), or Western blot or in any combination thereof.
- ELISA Enzyme Linked ImmunoadSorbent Assay
- another aspect of the invention relates to a method for diagnosing, predicting or forecasting the development of DMT2 in an individual, hereinafter the second method of the invention, comprising steps (a) and (b) of the first method of the invention, and further comprises:
- (c) include individuals with a lower expression of the factors RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA 1, SRSF1 and / or SRSF5, or any of their combinations, with respect to a sample reference, in the group of individuals most likely to develop DMT2.
- (d) include individuals with a higher expression of the SNRNP70 factor compared to a reference sample, in the group of individuals with the highest probability of developing DMT2.
- a “reference sample”, as used herein, means a sample obtained from a group of healthy subjects that does not have a particular disease state or phenotype.
- Reference levels of suitable gene expression can be determined by measuring the levels of expression of such genes in several suitable subjects, and those reference levels can be adjusted to specific populations (for example, a reference level can be age-related, so comparisons can be made between expression levels in samples from subjects of a certain age and reference levels for a particular disease, phenotype, or lack of it in a certain age group ).
- the reference sample is obtained from several healthy subjects or patients with no previous history of T2DM. The person skilled in the art will appreciate that the type of reference sample may vary depending on the specific method to be performed.
- the expression profile of genes in the preferred reference sample can be generated from a population of two or more people.
- the population for example, can contain 3, 4, 5, 10, 15, 20, 30, 40, 50 or more people.
- the expression profile of the genes in the reference sample and in the sample of the person to be diagnosed according to the methods of the present invention can be generated from it. person, as long as the profiles are analyzed and the reference profile are generated from the biological samples taken at different times and compared with each other. For example, a sample from an individual can be obtained at the beginning of a study period. A reference biological marker profile from this sample can be compared to the biomarker profiles generated from subsequent samples from the same person.
- the reference sample is a set of samples from various individuals.
- the expression of a gene is considered increased in a sample of the matter under study when the levels of increase with respect to the reference sample are at least 5%, at least 10%, at least 15%, for at least 20%, at least 25%, at least 30%, at least 35%, at least 40%, at least 45%, at least 50%, at least 55 %, at least 60%, at least at least 65%, at least 70%, at least 75%, at least 80%, at least 85%, at least 90 %, at least 95%, at least 100%, at least 1 10%, at least 120%, at least 130%, at least 140%, at least 150%, or more.
- the expression of a gene is considered decreased when its levels decrease with respect to the reference sample by at least 5%, at least 10%, at least 15%, at least 20%, for at least 25%, at least 30%, at least 35%, at least 40%, at least 45%, at least 50%, at least 55%, at least 60%), at least 65%, at least 70%, at least 75%, at least 80%, at least 85%, at least 90%, at least 95 %, at least 100% (i.e. absent).
- kit or device of the invention comprising the elements necessary to detect the expression levels of RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA1, SRSF1, SRSF5 and / or SNRNP70, or any of their combinations, and where:
- the primers or primers are polynucleotide sequences of between 10 and 30 base pairs, more preferably between 15 and 25 base pairs, even more preferably between 18 and 22 base pairs, and still much more preferably around 20 base pairs, having an identity of at least 80%, more preferably at least 90%, even more preferably at least 95%, still much more preferably at least 98%, and particularly 100 %, with a fragment of the complementary sequences to SEQ ID N ° 1 (RNU2), SEQ ID N °: 2 (RNU4), SEQ ID N ° 3 (RNU4ATAC), SEQ ID N ° 4 (RNU6), SEQ ID N ° 1 (RNU2), SEQ ID N °: 2 (RNU4), SEQ ID N ° 3 (RNU4ATAC), SEQ ID N ° 4 (RNU6), SEQ ID N ° 1 (RNU2), SEQ ID N °: 2 (RNU4), SEQ ID N ° 3 (RNU4ATAC), SEQ ID N °
- the probes are polynucleotide sequences of between 80 and 1100 base pairs, more preferably between 100 and 1000 base pairs, and even more preferably between 200 and 500 base pairs, which have an identity of at least 80% , more preferably at least 90%, even more preferably at least 95%, still much more preferably at least 98%, and particularly 100%, with a fragment of the sequences complementary to SEQ ID N ° 1 (RNU2), SEQ ID N °: 2 (RNU4), SEQ ID N ° 3 (RNU4ATAC), SEQ ID N ° 4 (RNU6), SEQ ID N ° 5 (RNU6ATAC), SEQ ID N ° 6 (RNU12 ), SEQ ID No. 7 (SNRNP200), SEQ ID No. 9 (ESRP1), SEQ ID No. 10 (SRSF1), SEQ ID No. 12 (SRSF5), SEQ ID No. 14 (NOVA1), and / or SEQ ID No. 16 (SNRNF70),
- the antibodies are capable of specifically binding to a region formed by any of the amino acid sequences SEQ ID No. 8 (SNRNP200), SEQ ID No. 11 (SRSF1), SEQ ID No. 13 (SRSF5), SEQ ID No. 15 (NOVA 1), and / or SEQ ID N ° 17 (SNRNF70),
- the primers, probes or antibodies are modified or labeled, for example, but not limited to, by radioactive or immunological labeling.
- the oligonucleotides present modifications in some of their nucleotides, such as, for example, but not limited to, nucleotides that have any of their atoms with a radioactive isotope, normally 32 P or tritium, immunologically labeled nucleotides, such as with a digoxigenin molecule, and / or immobilized on a membrane.
- a radioactive isotope normally 32 P or tritium
- immunologically labeled nucleotides such as with a digoxigenin molecule, and / or immobilized on a membrane.
- Another aspect of the invention relates to a computer program comprising instructions for carrying out the procedure according to any of the methods of the invention.
- the invention encompasses computer programs arranged on or within a carrier.
- the carrier can be any entity or device capable of supporting the program.
- the carrier could be an integrated circuit in which the program is included and which has been adapted to run, or to be used in the execution of the corresponding processes.
- the programs could be embedded in a storage medium, such as a ROM, a CD ROM or a semiconductor ROM, a USB memory, or a magnetic recording medium, for example, a floppy disk or a disk. Lasted.
- the programs could be supported on a transmittable carrier signal; for example, it could be an electrical or optical signal that could be transported through an electrical or optical cable, by radio or by any other means.
- the invention also extends to computer programs adapted so that any processing means can carry out the methods of the invention.
- Computer programs also encompass cloud applications based on this procedure.
- FPG fasting plasma glucose concentration
- IGF impaired fasting glucose
- ITT Impaired glucose tolerance
- HbA1 c Glycated hemoglobin
- T2DM inddent-T2DM
- the random selection of the non-DMT2 subjects was made by means of the computed stratified sampling of the 462 non-T2DM subjects of the CORDIOPREV study according to the following clinical, anthropometric and biochemical variables: diet, age, sex, fasting blood glucose, mass index Body, Cholesteroi LDL and HDL cholesterol.
- diet age, sex, fasting blood glucose, mass index Body, Cholesteroi LDL and HDL cholesterol.
- OGTT oral glucose tolerance test
- a high-fat food test was carried out (0.7 g of fat and 5 mg of cholesterol per kg of body weight with 12% saturated fatty acids, 10% of polyunsaturated fatty acids, 43% monounsaturated fatty acids, 10% protein and 25% carbohydrates). Blood samples were collected before the meal and after 4 b.
- PBMC RNA was isolated using the Direct-zol RNA kit (Zymo Research, irevine, CA, BE. USA). The amount of recovered RNA was determined and its quality was evaluated using the NanoDrop2QG0 spectrophotometer (Thermo Fisher) Specifically, all the RNA samples passed the quality controls, with the absorbance ratios being 260/280 and 230/280 between 1.8-2.0. One pg of RNA was reverse transcribed into cDNA using random hexameric primers with the First Sirand Synthesis Kit (Thermo Fisher).
- PBMC peripheral blood mononuclear cells
- the component panel of the spiicing machinery was selected based on two main criteria:
- Primers were selected using the Pri erS software with established selection parameters to identify primer pairs that: (1) span an intron (when possible), (2) differ by no more than 1 ° C in annealing temperature, (3) have a length of at least 20 bp, (4) have a GC content between 45 and 55%, but (5) exclude primers that can form primer dimers.
- the sequences of the selected primers were used in BLAST searches (NCBI) to verify possible homology with sequences other than the designated target.
- PCR products were column purified (FAVGRGEN Biotech, Vienna, Austria) and sequenced to confirm target specificity. After confirmation of the efficacy and specificity of the primer, the concentration of purified products was determined and the PCR products were serially diluted to obtain standards containing 1.1G ⁇ 1G 2 , 10 3 , 1G 4 , 10 5 and 1 Q 6 copies of the synthetic template. Standards were then amplified by qPCR, and standard curves were generated using Stratagene Mx3000p software. The slope of a standard curve for each template examined was approximately -3.33 (R2 ⁇ 1), or indicating that the amplification efficiency of our primers was 100%, meaning that all templates were copied from each cycle.
- the basal expression of the components of the splicing machinery is different between incident-T2DM and non-T2DM patients.
- a subgroup of these machine components and computationally selected SFs shows even greater predictability compared to that of the full set of biomarkers.
- Table 2 Association between the expression of the components of the splicing machinery in PBMCs during fasting or postprandio and the relative risk of DMT2 development by means of logistic regression analysis of the relative risk (odds ratio, OR). Subjects were categorized into tertiles according to the level of expression of each component of the spliceosome or splicing factor as follows: low expression levels (T1), medium expression levels (T2) and high expression levels (T3), and the relative risk (OR) was estimated between the T1 and T3 tercies for each of the elements of interest. Cl. Confidence interval; p- value. p value
- Supplementary Table 1 Capacity of the molecular footprint composed of the expression levels of the components of the spliceosome and splicing factors (SFs) in fasting and / or postprandio as predictive models of DMT2 using different computational algorithms.
- the Logistic Regression, Random Forest and C4.5 algorithms were applied using R language to determine the capacity of the molecular fingerprint composed of the expression levels of the fasting and / or postprandio splicing machinery to predict the development of DMT2 using the cohort. of patients or only those who developed diabetes during the first two years of follow-up. These analyzes (training) were confirmed by cross validation (CV) analysis. The areas under the training and CV curve are indicated.
- HbA1c glycated hemoglobin
- SFs splicing factors.
Landscapes
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Abstract
Biomarcadores, método, kit de diagnóstico y usos para predecir o pronosticar el desarrollo de diabetes mellitus tipo 2 en un individuo.
Description
MÉTODO PARA PREDECIR O PRONOSTICAR EL DESARROLLO DE DIABETES MELLITUS TIPO 2 EN UN INDIVIDUO
CAMPO DE LA INVENCIÓN
La presente invención se encuentra dentro del campo de la medicina y la endocrinología y está dirigida a un método para predecir o pronosticar el desarrollo de DMT2 en un individuo, a un kit o dispositivo de pronóstico y a sus usos.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN
La diabetes mellitus tipo 2 (DMT2) es un importante problema de salud en los países desarrollados, ya que su incidencia y prevalencia han aumentado en las últimas décadas, junto con el aumento de la obesidad, una alimentación poco saludable y el sedentarismo. Si bien los principales factores de riesgo de DMT2 están bien definidos (antecedentes familiares, IMC> 30 y/o desregulación del metabolismo de la insulina), es una afección heterogénea, cuya base fisiopatológica sigue siendo desconocida en gran medida.
La DMT2 está estrechamente asociada con la enfermedad cardiovascular (ECV), ya que, por ejemplo, los pacientes con infarto de miocardio y DMT2 tienen un mayor riesgo de desarrollar un nuevo evento cardiovascular que aquellos sin DMT2 (Martin-Timon I, et al. Type 2 diabetes and cardiovascular disease: have all risk factors the same strength. World J Diabetes. 2014). Por lo tanto, la identificación temprana de individuos con alto riesgo de desarrollo de DMT2, especialmente entre pacientes con ECV es fundamental para la prevención ( Blanco-Rojo R, et al. HDL Cholesterol efflux normalised to apoa-i is associated with future development of type 2 diabetes: from the CORDIOPREV trial. Sci Rep. 2017; Camargo A, et al. Postprandial endotoxemia may influence the development oftype 2 diabetes mellitus: from the CORDIOPREV study. Clin Nutr., 2018).
Tradicionalmente, esta estrategia se ha basado en biomarcadores como los parámetros relacionados con la homeostasis de la glucosa, incluida la hemoglobina glicosilada (HbA1 c), los niveles de las diferentes clases de lípidos y diversos scores predictivos, como el índice de resistencia a la insulina o FINDRISC; sin embargo, estos parámetros y pruebas tienen limitaciones y no pueden predecir con precisión el riesgo individual de desarrollar DMT2.
Específicamente se utilizan dos estrategias de cribado en personas de riesgo:
1. El cribado oportunista, dentro del contexto de cribado de otros factores de riesgo cardiovascular, consiste en:
En personas a partir de 45 años, cribado de DMT2 cada 4 años mediante glucemia basal en plasma venoso (GBP).
En personas de riesgo, definidas por hipertensión, hiperlipemia, obesidad, diabetes gestacional o patología obstétrica, glucemia basal alterada o intolerancia a la glucosa, cribado de DMT2 anual mediante GBP.
2. El cribado en dos etapas mediante índices de resistencia a la insulina FINDRISC: consiste en realizar el FINDRISC cada 3-5 años en personas a partir de los 40 años y en personas entre 25-39 años si tienen factores de riesgo de DMT2. La actuación a seguir según la puntuación en FINDRISC es:
• £ 14p: repetir FINDRISC a los 5 años.
• ³ 15p: realizar glucemia en ayunas o HbA1 c:
• a) Si no hay DMT2 ni prediabetes: FINDRISC cada 3 años.
• b) Si Prediabetes: ofrecer medidas intensivas de modificación de estilo de vida y control anual (con GBP o HbA1 c).
•c) Si Diabetes: tratamiento de DMT2 y seguimiento.
En estudios recientes se ha demostrado que el desarrollo de DMT2 se ve afectado críticamente por la pérdida de flexibilidad fenotípica (es decir, la capacidad para hacer frente a factores estresantes manteniendo la homeostasis metabólica), y que la identificación de factores que puedan modular la plasticidad fenotípica que define la susceptibilidad individual para desarrollar DMT2 pueden tener un potencial predictivo (Stroeve JHM, et al. Phenotypic flexibility as a measure of health: the optimal nutritional stress response test. Genes Nutr., 2015).
En concreto, existen estudios que sugieren que bajo condiciones metabólicas adversas (obesidad, resistencia a la insulina, etc.) la maquinaria de splicing está desregulada en la mayoría de los tejidos, incluidas las células mononucleares de sangre periférica (PBMC); y que las desregulaciones en los procesos de splicing están asociadas con el desarrollo de varias patologías (Dlamini Z, et al. Abnormalities in alternative splicing in diabetes: therapeutic targets. J Mol Endocrinol. 2017.). Específicamente, el proceso de splicing es catalizado por los spliceosomas menor y mayor, que actúan sobre diferentes tipos de intrones. El spliceosoma es un complejo macromolecular, cuyo núcleo funcional está compuesto por varias subunidades de pequeñas ribonucleoproteínas nucleares (snRNPs), que interactúan dinámicamente para regular el proceso de splicing. Además, la actividad del spliceosoma está modulada por más de 300 factores de splicing (SFs) que reconocen específicamente ciertas secuencias en exones e
intrones. Por lo tanto, la desregulación de la expresión y/o función de ciertos componentes del spliceosoma puede conducir a la alteración aberrante del proceso normal de splicing. De hecho, la función correcta de la maquinaria de splicing , es decir, los componentes del spliceosoma y los SFs, es un mecanismo esencial para mantener la homeostasis de todo el cuerpo. Por lo tanto, las desreguiaciones del proceso de splicing pueden jugar un papel importante como factor patógeno y podrían servir como un marcador predictivo del desarrollo de DMT2.
Por todo esto, podría ser de utilidad la caracterización del perfil molecular de la maquinaria de splicing en pacientes con riesgo de desarrollar DMT2, de forma que pudiera servir como biomarcador para predecir el desarrollo futuro de DMT2 en dichos pacientes.
DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1. Patrón de expresión basal de los componentes del spliceosoma y factores de splicing seleccionados en las PBMCs de los pacientes que desarrollarán DMT2 ( Incident - T2DM) y controles (non-T2DM). a) Cambio (Fold-change) en los niveles de expresión entre pacientes que desarrollarán DMT2 y controles, representados en rojo (aumento) o azul (disminución). Los componentes del spliceosoma o factores de splicing significativamente alterados están resaltados en negrita b) Niveles de expresión de ARNm [ajustados por un factor de normalización (NF) calculado a partir de los niveles de expresión de GAPDH y ACTB] de componentes del spliceosoma específicos (primera fila) y factores de splicing (segunda fila) en las PBMCs de los pacientes no diabéticos y controles. Los valores representan la media ± EEM. Los asteriscos indican valores que difieren significativamente de los pacientes control (t-test: *, p< 0.05).
Figura 2. Patrón de expresión basal de los componentes del spliceosoma y factores de splicing seleccionados en las PBMCs de los pacientes que desarrollarán DMT2 (Incident- T2DM) y controles (non-T2DM) durante la fase postprandial. a) Cambio (Fold-change) en los niveles de expresión entre pacientes que desarrollarán DMT2 y controles, representados en rojo (aumento) o azul (disminución). Los componentes del spliceosoma o factores de splicing significativamente alterados están resaltados en negrita b) Niveles de expresión de ARNm [ajustados por un factor de normalización (NF) calculado a partir de los niveles de expresión de GAPDH y ACTB] de componentes del spliceosoma y factores de splicing específicos en las PBMCs de los pacientes no diabéticos y controles. Los valores representan la media ± EEM. Los asteriscos indican valores que difieren significativamente de los pacientes no diabéticos (t-test: *, p<0.05).
Figura 3. Modelos predictivos basados en la expresión de los componentes del spliceosoma y los factores de splicing, generados mediante el algoritmo computacional Random Forest y análisis de curvas ROC. Los parámetros de las curvas ROC fueron calculados para los modelos predictivos generados por Random Forest, considerando la expresión de todos los elementos de la maquinaria de splicing medidos durante el ayuno (naranja), postprandio (azul) o la combinación de estos (verde) en los pacientes no diabéticos y diabéticos (a) o utilizando una selección de los componentes de la maquinaria de splicing más relevantes y discriminatorios (b). Específicamente, estos componentes seleccionados fueron RNU4ATAC, TIA1 , KHDRBS1 , SRSF10, PTBP1 , RAVER1 , RNU2, RNU5, SRSF9, U2AF2, RBM45, SRSF4, RBM3 en ayuno, RNU4ATAC, RNU6ATAC, RAVER1 , SF3B1 , SRSF3, NOVA1 , SRM160, SRSF6, ESRP1 , U2AF1 en el postprandio, y SRSF3, SRSF10, SRSF6, TRA2B, PTBP1 , SF3B1 en ayuno, así como RNU4ATAC, RAVER1 , RNU4ATAC, NOVA1 , RNU4, RNU6, PRPF8 en el postprandio, para los análisis combinados. Las mismas curvas ROC fueron calculadas considerando únicamente aquellos pacientes que desarrollaron diabetes durante los dos primeros años de seguimiento (c y d). En este caso, la selección de los componentes de la maquinaria fueron RNUU4ATAC, PTBP1 , TRA2A, RM17, RNU12, TIA1 , SRSF5, RNU2 en ayuno, RNU4ATA, PTBP1 , MAGOH, SRSF9, RAVER1 , PRP8, PRPF40A, SRRM1 , SRSF6, SNRNP200, TIA1 , RNU2 en el postprandio, y RNU4ATAC, TRA2A, SRSF5, RBM17, SRSF10, SRSF3, RNU2 en ayuno y RNU4ATAC, RNU4, RNU6ATAC, MAGOH, RAVER1 , PRPF40A, RBM4, U2AF2, SRSF10, RNU1 1 TRA2B, SND1 en el postprandio para los análisis combinados. Se determinaron también las curvas ROC de la hemoglobina glicosilada (HbA1 c) y el FINDRISK. HbA 1c: hemoglobina glicosilada; AUC\ Área debajo de la curva; TPR\ ratio de verdaderos positivos; TNR-. ratio de verdaderos negativos; p: p valor.
Figura 4. Niveles de expresión de componentes clave del spliceosoma en las PBMCs de sujetos sanos tratados con suero de pacientes que desarrollarán DMT2 ( lncident-T2DM) y controles (non-T2DM) de ayunas durante 24 horas (a) o postprandial durante 4 horas (b). Niveles de expresión de ARNm, ajustados por los niveles de expresión de ACTB, de componentes del spliceosoma y factores de splicing específicos. Los valores representan la media ± EEM. Los asteriscos indican valores que difieren significativamente de las PBMCs tratadas con suero de pacientes no diabéticos (t-test: *, p< 0.05; ***, p<0.001).
DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN
La presente invención supone una herramienta para el diagnóstico temprano de pacientes con riesgo a desarrollar DMT2. La creación de los modelos de evaluación de los biomarcadores aquí propuestos permite: 1) discriminar entre individuos sanos y pacientes con alto riesgo de desarrollar DMT2, con elevada sensibilidad y especificidad, 2) estratificar clínicamente los pacientes en base a parámetros clínicos y la expresión de componentes de la maquinaria de splicing en células sanguíneas; y 3) facilitar el seguimiento clínico de estos pacientes, contribuyendo al desarrollo de una medicina personalizada.
La presente invención propone la evaluación estandarizada de un panel de biomarcadores, en este caso relacionados con la maquinaria de splicing, en células sanguíneas de pacientes. Esta información permitiría, por ejemplo, el desarrollo de un chip o array para la estratificación de pacientes en diversos grupos de riesgo y la definición de sus necesidades específicas de seguimiento clínico y manejo terapéutico.
La desregulación del proceso de corte y empalme de moléculas de ARNm, o splicing, está emergiendo como un sello distintivo en diversas patologías. En la presente invención se realiza el análisis del patrón de expresión de ciertos componentes de maquinaria de splicing, incluidos ciertos componentes del spliceosoma mayor (n = 13) y menor (n = 4) y factores de splicing específicos (n = 28) en células sanguíneas de pacientes sin DMT2 pero con alto riesgo de desarrollar DMT2 (individuos que sufrieron un evento cardiovascular).
El objetivo de la presente invención ha sido la identificación de ciertos componentes de la maquinaria de splicing desregulados en células sanguíneas de pacientes con riesgo a desarrollar DMT2, así como su influencia en la actividad de la enfermedad.
Los autores de la presente invención han identificado que la alteración en la expresión de ciertos componentes del spliceosoma y factores de splicing están relacionados con el desarrollo de DMT2, precediendo a la instauración clínica de esta patología y que, por lo tanto, podrían servir como sensores y predictores tempranos de desarrollo de DMT2. Han identificado una huella molecular formada por ciertos de estos componentes que es capaz de predecir el desarrollo futuro de DMT2 en pacientes con alta precisión, que incluso supera la capacidad de los predictores clásicos de desarrollo de DMT2, tales como hemoglobina glicosilada, los índices de resistencia a la insulina o el FINDRISC.
Por tanto, un primer aspecto de la invención se refiere al uso del producto de la expresión de los genes RNU2, RNU4, RNU4ATAC, RNU6, RNU6ATAC, RNU12, SNRNP200, ESRP1, SRSF1, SRSF5, SNRNP70 y/o NOVA1, o cualquiera de sus combinaciones, para predecir o pronosticar el desarrollo de DMT2 en un individuo.
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “RNU2” (también llamado en literatura U2) se refiere al gen componente del spliceosoma mayor. El spliceosoma es un complejo de ribonucleoproteínas que cataliza la eliminación de intrones de precursores de ARNm nuclear. El spliceosoma está compuesto por cuatro pequeñas partículas de ribonucleoproteínas (las snRNPs U1, U2 y U4 / U6) y numerosas proteínas adicionales. El ARN nuclear pequeño U2 (snRNA) es un componente de ARN del snRNP U2 que interactúa con la región 3 'del intrón en el sitio de la rama. Varios sitios en el genoma humano expresan snRNAs de U2. Este locus representa una matriz de genes snRNA U2 ubicados en 17q21-22 que experimenta una evolución concertada para homogeneizar unidades de repetición dentro de la matriz. Cada repetición en esta matriz es de aproximadamente 6.1 kb de largo y contiene una sola copia del snRNA 1/2. En el contexto de la presente invención,“RNU2” se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye la secuencia del snRNP“RNU2", y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que comprende la SEQ ID NO: 1 , b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 6066
Localización del gen: 17q21.31 SEQ ID NO: 1
ATCGCTTCTCGGCCTTTTGGCTAAGATCAAGTGTAGTATCTGTTCTTATCAGTTTAATATCT
GATACGTCCTCTATCCGAGGACAATATATTAAATGGATTTTTGGAGCAGGGAGATGGAATA
GGAGCTTGCTCCGTCCACTCCACGCATCGACCTGGTATTGCAGTACCTCCAGGAACGGTG
CACCC
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “RNU4”, (también llamado en literatura U4; U4BL; RNU4A; RNU4B2) se refiere al gen, factor de la maquinaria de splicing. En el contexto de la presente invención,“RNU4" se define también por
una secuencia de nucleótidos o polinucleótidos, que constituye la secuencia del snRNP“RNU4”, y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que comprende la SEQ ID NO:2, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 26835
Localización del gen: 12q24.23 SEQ ID N° 2:
AGCTTTGCGCAGTGGCAGTATCGTAGCCAATGAGGTCTATCCGAGGCGCGATTATTGCTAA TT GAAAACTTTTCCCAAT ACCCCGCCGTGACGACTTGCAAT AT AGTCGGCACTGGCAATTTT TGACAGTCTCTACGGAGACTG
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “ RNU4ATAC (también llamado en literatura MOPD1 , RFMN1 , TALS, U4ATAC, RNU4ATAC) se refiere al pequeño ARN nuclear (snRNP) codificado por este gen es parte del complejo de spliceosoma menor dependiente de U12. Además del ARN codificado, este complejo de ribonucleoproteínas consiste en snRNPs U11 , U12, U5 y U6atac. En el contexto de la presente invención,“RNU4ATAC" se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótidos, que constituye la secuencia del snRNP “RNU4", y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que comprende la SEQ ID NO: 3, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 100151683
Localización del gen: 2q14.2
SEQ ID N° 3:
AACCATCCTTTTCTTGGGGTTGCGCTACTGTCCAATGAGCGCATAGTGAGGGCAGTACTGC
TAACGCCTGAACAACACACCCGCATCAACTAGAGCTTTTGCTTTATTTTGGTGCAATTTTTG
GAAAAAT
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “RNU6”, (también llamado en literatura RNU6, RNU6A, U6, U6-1) se refiere al gen, factor de la maquinaria de splicing. En el contexto de la presente invención,“RNU6" se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótidos, que constituye la secuencia del snRNP“RNU6", y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que comprende la SEQ ID NO:4, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 26827
Localización del gen: 15q23
SEQ ID N° 4:
GTGCTCGCTTCGGCAGCACATATACTAAAATTGGAACGATACAGAGAAGATTAGCATGGCC
CCTGCGCAAGGATGACACGCAAATTCGTGAAGCGTTCCATATTTT
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “RNU6ATAC”, (también llamado en literatura RNU6ATAC1 , U6ATAC) se refiere al pequeño ARN nuclear (snRNP) codificado por este gen es parte del complejo de spliceosoma menor dependiente de U12. Además del ARN codificado, este complejo de ribonucleoproteínas consiste en snRNPs U 11 , U12, U5 y U6atac. En el contexto de la presente invención,“RNU6ATAC” se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótidos, que constituye la secuencia del snRNP“RNU6ATAC", y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que comprende la SEQ ID NO: 5, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 100151684
Localización del gen: 9q34.2
SEQ ID N° 5:
GTGTTGTATGAAAGGAGAGAAGGTTAGCACTCCCCTTGACAAGGATGGAAGAGGCCCTCG
GGCCTGACAACACGCATACGGTTAAGGCATTGCCACCTACTTCGTGGCATCTAACCATCGT
TTTT
El término "RNU12" (también llamado en la literatura RNU12L; RNU12P; RNU12-1; dJ222E13.7) se refiere al pequeño ARN nuclear (snRNP) codificado por este gen es parte del complejo de spliceosoma menor dependiente de U12. Además del ARN codificado, este complejo de ribonucleoproteínas consiste en snRNPs U1 1 , U12, U5 y U6atac. En el contexto de la presente invención,“RNU12” se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótidos, que constituye la secuencia del snRNP“RNU12”, y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que comprende la SEQ ID NO: 6, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 267010
Localización del gen: 22q13.2
SEQ ID N° 6:
TGCCTTAAACTTATGAGTAAGGAAAATAACGATTCGGGGTGACGCCCGAATCCTCACTGCT
AATGTGAGACGAATTTTTGAGCGGGTAAAGGTCGCCCTCAAGGTGACCCGCCTACTTTGC
GGGATGCCTGGGAGTTGCGATCTGCCCG
El término "SNRNP200" (también llamado en la literatura BRR2; RP33; HELIC2; ASCC3L1 ; U5- 200KD) se refiere tanto al gen como a la proteína humana, subunidad 200 de la ribonucleoproteína nuclear pequeña U5. El splicing de pre-ARNm es catalizado por el spliceosoma, un complejo de subunidades de proteínas y ARN especializadas que elimina los intrones de un segmento de ARNm previo transcrito. El spliceosoma consiste en pequeñas proteínas de ARN nuclear (snRNPs) U1 , U2, U4, U5 y U6, junto con aproximadamente 80 proteínas conservadas. U5 snRNP contiene nueve proteínas específicas. Este gen codifica una de las proteínas específicas de snRNP U5. Esta proteína pertenece a la familia DEXH-box de ARN helicasas putativas. Es un componente central de los snRNPs U4 / U6-U5 y parece catalizar
un desenrollado dependiente de ATP de los duplicados de ARN U4 / U6. Las mutaciones en este gen causan retinitis pigmentosa autosómica dominante. Alternativamente, se han encontrado variantes de transcripción empalmadas que codifican diferentes isoformas, pero no se ha determinado la naturaleza completa de estas variantes. En el contexto de la presente invención, “SNRNP200” se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye la secuencia codificante de la proteína“SNRNP200”, y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica de la SEQ ID NO: 7, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con la SEQ ID NO: 7. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee la actividad y las características estructurales de la proteína SRSF5. Entre otras posibles secuencias nucleotídicas que codifican SRSF5 se encuentra, pero sin limitarse, la SEQ ID NO: 8.
Gene ID: 23020
Localización del gen: 2q1 1.2
SEQ ID N° 7:
GAACCCGTTTCTTTTCCTTCCCCAGTGCGTCTTTCCTGCGTCGTTCCGGCGCGGCGGGAG
CAGAGATCTGCGGCCGTTTGCAGCTTGCGGTAGGGAGGCGTGGTGGTCTGAAGCCTCCG
AGCAGCCGCGGCCATGGCGGATGTAACCGCCCGTAGTCTGCAATACGAGTACAAGGCGA
ACTCGAATCTTGTGCTCCAAGCTGACCGTTCTCTCATTGACCGGACCCGCCGGGATGAAC
CCACAGGAGAGGTGCTGTCCCTTGTTGGGAAGCTGGAGGGCACCCGTATGGGAGACAAG
GCTCAACGGACCAAACCGCAGATGCAGGAGGAAAGAAGAGCCAAGCGAAGAAAGCGTGA
TGAGGACCGGCATGACATCAACAAGATGAAGGGTTATACTCTGCTGTCGGAGGGCATTGA
TGAGATGGTGGGCATCATCTACAAGCCCAAAACTAAAGAGACTCGGGAGACCTATGAGGT
GCTACTCAGCTTCATCCAGGCTGCTCTTGGGGACCAGCCACGTGATATCCTTTGTGGGGC
AGCTGATGAAGTTCTAGCTGTTCTAAAGAATGAAAAGCTGCGGGACAAGGAAAGGCGAAA
GGAGATT GACCTGCTGCT GGGTCAAACAGATGAT ACCAGATACCAT GTGCT AGT GAACCT G
GGCAAAAAGAT CACAG ACT ATGGT GG AG AT AAGG AAATCCAAAAT AT GG AT G ACAACATT G
ATGAGACATACGGTGTGAATGTGCAGTTTGAGTCTGATGAGGAGGAAGGTGATGAAGACG
T AT ACGGGGAGGTTCGAGAAGAGGCATCT GAT GAT GACAT GGAAGGGGACGAGGCT GTC
GTGCGCTGCACCCTCTCGGCTAATCTCGTAGCCTCAGGTGAACTGATGAGTTCCAAGAAG
AAGGATTTGCACCCTCGGGATATTGATGCATTTTGGCTGCAGCGGCAGCTCAGTCGTTTCT
ATGATGATGCCATCGTGTCGCAGAAGAAGGCAGATGAAGTATTGGAGATTTTGAAGACGG
CCAGTGATGATCGGGAATGTGAAAATCAGCTGGTTCTGCTGCTTGGTTTCAACACCTTTGA
TTTCATTAAAGTGTTGCGGCAGCACAGGATGATGATTTTATACTGTACCTTGCTGGCCAGT
GCACAAAGTGAAGCTGAAAAGGAAAGGATTATGGGAAAGATGGAAGCTGACCCAGAGCTA
TCCAAGTTCCTCTACCAGCTTCATGAAACCGAGAAGGAGGATCTGATCCGAGAGGAAAGG
TCCCGGAGAGAGCGAGTGCGTCAGTCTCGAATGGACACAGATCTGGAAACCATGGATCTC
GACCAGGGTGGAGAGGCACTGGCTCCACGGCAGGTTCTGGACTTGGAGGACCTGGTTTTT
ACCCAAGGGAGCCACTTTATGGCCAATAAACGCTGTCAGCTTCCTGATGGATCCTTCCGTC
GCCAGCGTAAGGGCTATGAAGAGGTGCATGTGCCTGCTCTGAAGCCCAAGCCCTTTGGCT
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GCTTCAAAACACTGAATCGGATCCAGAGTAAGCTCTACCGTGCTGCCCTTGAGACGGATGA
GAATCTGCTGCTGTGTGCTCCTACTGGTGCTGGGAAGACCAACGTGGCCCTGATGTGCAT
GCTCCGAGAGATTGGGAAACACATAAACATGGACGGCACCATCAATGTGGATGACTTCAA
GATTATCTACATTGCCCCCATGCGCTCCTTGGTGCAGGAGATGGTGGGCAGCTTTGGAAA
GCGCCTGGCCACTTATGGCATCACTGTTGCTGAACTGACTGGGGACCACCAGCTGTGCAA
AGAAGAGATCAGTGCCACTCAGATCATCGTCTGCACCCCCGAGAAGTGGGACATCATCAC
CCGCAAGGGTGGTGAGCGCACCTACACCCAGCTGGTGCGGCTCATCATTCTGGATGAGAT
TCATCTTCTCCACGATGACAGAGGTCCTGTCTTAGAAGCTTTAGTGGCCAGGGCCATCCGA
AACATTGAGATGACCCAAGAGGATGTCCGACTCATTGGTCTCAGTGCCACCCTACCCAACT
ATGAAGATGTAGCCACCTTTCTACGTGTTGACCCTGCCAAGGGTCTCTTTTACTTTGACAAC
AGCTTCCGTCCAGTGCCTCTGGAACAGACATATGTGGGTATCACAGAGAAAAAAGCTATCA
AGCGTTTCCAG AT CAT G AAT G AAAT CGTCT AT G AAAAAAT CATGGAACATGCTGGAAAAAAT
CAGGTGCTGGTGTTTGTCCACTCCCGGAAGGAGACTGGAAAGACAGCCAGGGCCATCCG
GGACATGTGCCTAGAAAAGGACACTCTGGGTCTGTTTCTGAGGGAGGGCTCAGCCTCCAC
AGAAGTCCTGCGAACAGAAGCTGAGCAGTGCAAGAACCTAGAGCTGAAGGATCTTCTGCC
TTATGGCTTTGCTATTCATCACGCAGGCATGACCAGGGTTGACCGAACACTCGTGGAGGAT
CTTTTTGCTGATAAACATATTCAGGTTTTAGTTTCCACAGCAACTCTAGCTTGGGGTGTGAA
TCTCCCTGCACATACAGTCATCATCAAAGGCACCCAGGTGTACAGTCCAGAGAAGGGGCG
TTGGACAGAACTGGGAGCACTGGACATTCTGCAGATGCTGGGACGTGCCGGAAGACCCCA
GTATGACACCAAGGGTGAAGGCATACTCATCACATCTCATGGGGAGCTACAGTACTACCTG
TCCCTCCT CAAT CAACAACTTCCT ATT GAAAGCCAG AT GGTTT CAAAGCTTCCT GACATGCT
CAATGCAGAAATCGTGCTAGGAAATGTCCAGAATGCCAAGGATGCGGTGAACTGGCTGGG
CTATGCCTACCTCTATATCCGAATGCTGCGATCCCCAACCCTCTATGGCATCTCTCATGAT
GACCTCAAGGGAGATCCCCTGCTGGACCAGCGCCGACTAGATCTGGTTCATACAGCTGCC
CTGATGCTGGACAAGAACAATCTGGTCAAGTACGACAAGAAGACGGGCAACTTCCAGGTG
ACAGAACT GGGCCGTAT AGCCAGCCACTACT ACAT CACCAAT GAT ACAGTGCAGACTTACA
ACCAGCTGCTGAAGCCCACCCTGAGTGAGATTGAGCTTTTCAGGGTCTTCTCATTGTCCTC
TGAGTTCAAGAACATCACAGTGAGAGAGGAGGAGAAGCTGGAGCTGCAGAAGTTGCTGGA
GAGGGTGCCTATCCCTGTAAAGGAGAGCATTGAGGAACCCAGTGCTAAGATCAACGTTCTT
CTGCAAGCCTTCATCTCACAGCTGAAATTGGAGGGCTTTGCACTGATGGCTGACATGGTGT
AT GTCACACAGTCGGCTGGCCGGTT GAT GCGAGCGATATTT GAAATT GTCCT GAACCGAG
GTTGGGCACAGCTTACAGACAAGACCCT GAACCTCTGCAAGAT GATCGACAAACGCAT GT
GGCAGTCCATGTGTCCTCTGCGCCAGTTCCGGAAACTCCCTGAGGAAGTAGTGAAGAAGA
TT G AGAAGAAG AATTTCCCCTTT GAGCGTCT GT ACG ACCT GAAT CAT AAT G AG ATT GGGG A
GCTTATCCGCATGCCAAAGATGGGGAAGACCATCCACAAATATGTCCATCTGTTTCCCAAG
TTGGAGTTGTCAGTGCACCTGCAGCCTATCACACGCTCCACCCTGAAGGTGGAGCTGACC
ATCACGCCAGACTTCCAGTGGGATGAAAAGGTGCATGGTTCATCCGAGGCTTTTTGGATTC
TGGTGGAGGATGTGGACAGCGAGGTGATTCTGCACCATGAGTATTTTCTCCTCAAGGCCA
AGTACGCCCAGGACGAGCACCTCATTACATTCTTCGTGCCTGTCTTTGAACCGCTGCCCCC
TCAGTACTTCATCCGAGTGGTGTCTGACCGCTGGCTCTCTTGTGAGACCCAGCTGCCTGTC
TCCTTCCGGCACCTGATCTTGCCGGAGAAGTACCCCCCTCCAACCGAACTTTTGGACCTG
CAGCCCTTGCCCGTGTCTGCTCTGAGAAACAGTGCCTTTGAGAGTCTTTACCAAGATAAAT
TTCCTTT CTT CAATCCCATCCAGACCCAGGT GTTT AACACT GT AT ACAACAGT GACG ACAAC
GTGTTTGTGGGGGCCCCCACGGGCAGCGGGAAGACTATTTGTGCAGAGTTTGCCATCCTG
CGAATGCTGCTGCAGAGCTCGGAGGGGCGCTGTGTGTACATCACCCCCATGGAGGCCCT
GGCAGAGCAGGTATACATGGACTGGTACGAGAAGTTCCAGGACAGGCTCAACAAGAAGGT
GGTACTCCTGACAGGCGAGACCAGCACAGACCTGAAGCTGCTGGGCAAAGGGAACATTAT
CATCAGCACCCCTGAGAAGTGGGACATACTTTCCCGGCGATGGAAGCAGCGCAAGAACGT
GCAGAACATCAACCTCTTCGTGGTGGATGAGGTCCACCTTATCGGGGGCGAGAATGGGCC
TGTCTTAGAAGTGATCTGCTCCCGAATGCGCTACATCTCCTCCCAGATTGAGCGGCCCATT
CGCATTGTGGCACTCAGCTCTTCGCTCTCCAATGCCAAGGATGTGGCCCACTGGCTGGGC
TGCAGTGCCACCTCCACCTTCAACTTCCATCCCAATGTGCGTCCCGTCCCCTTGGAGCTGC
ACATCCAGGGCTTCAACATCAGCCATACACAAACCCGCCTGCTCTCCATGGCCAAGCCTGT
GTACCATGCTATCACCAAGCACTCGCCCAAGAAGCCTGTCATTGTCTTTGTGCCGTCTCGC
AAGCAGACCCGCCTCACTGCCATTGACATCCTCACCACCTGTGCAGCAGACATCCAACGG
CAGAGGTTCTTGCACTGCACCGAGAAGGATCTGATTCCGTACCTGGAGAAGCTAAGTGAC
AGCACGCTCAAGGAAACGCTGCTAAATGGGGTGGGCTACCTGCATGAGGGGCTCAGCCC
CATGGAGCGACGCCTGGTGGAGCAGCTCTTCAGCTCAGGGGCTATCCAGGTGGTGGTGG
CTTCTCGGAGTCTCTGCTGGGGCATGAACGTGGCTGCCCACCTGGTAATCATCATGGATA
CCCAGTACTACAATGGCAAGATCCACGCCTATGTGGATTACCCCATCTATGACGTGCTTCA
GATGGTGGGCCACGCCAACCGCCCTTTGCAGGACGATGAGGGGCGCTGTGTCATCATGT
GTCAGGGCTCCAAGAAGGATTTCTTCAAGAAGTTCTTATATGAGCCATTGCCAGTAGAATC
TCACCTGGACCACTGTATGCATGACCACTTCAATGCTGAGATCGTCACCAAGACCATTGAG
AACAAGCAGGATGCTGTGGACTACCTCACCTGGACCTTTCTGTACCGCCGCATGACACAG
AACCCCAATTACTACAACCTGCAGGGCATCTCCCATCGTCACTTGTCGGACCACTTGTCAG
AGCTGGTGGAGCAGACCCTGAGTGACCTGGAGCAGTCCAAGTGCATCAGCATCGAGGAC
GAGATGGACGTGGCGCCTCTGAACCTAGGCATGATCGCCGCCTACTATTACATCAACTACA
CCACCATTGAGCTCTTCAGCATGTCCCTCAATGCCAAGACCAAGGTGCGAGGGCTTATCG
AGATCATCTCCAATGCAGCAGAGTATGAGAACATTCCCATCCGGCACCATGAAGACAATCT
CCTGAGGCAGTTGGCTCAGAAGGTCCCCCACAAGCTGAATAACCCTAAGTTCAATGATCC
GCACGTCAAGACCAACCTGCTCCTGCAGGCTCACTTGTCTCGCATGCAGCTGAGTGCTGA
GTTGCAGTCAGATACGGAGGAAATCCTTAGTAAGGCAATCCGGCTCATCCAGGCCTGCGT
GGATGTCCTTTCCAGCAATGGGTGGCTCAGCCCTGCTCTGGCAGCTATGGAACTGGCCCA
GATGGTCACCCAAGCCATGTGGTCCAAGGACTCATACCTGAAGCAGCTGCCACACTTCAC
CTCTGAGCATATCAAACGTTGCACAGACAAGGGAGTGGAGAGTGTTTTCGACATCATGGAG
ATGGAGGATGAAGAACGGAACGCGTTGCTTCAGCTGACTGACAGCCAGATTGCAGATGTG
GCTCGCTTTTGTAACCGCTACCCTAATATCGAACTATCTTATGAGGTGGTAGATAAGGACA
GCATCCGCAGTGGCGGGCCAGTTGTGGTGCTGGTGCAGCTGGAGCGAGAGGAGGAAGTC
ACAGGCCCTGTCATTGCGCCTCTCTTCCCGCAGAAACGTGAAGAGGGCTGGTGGGTGGTG
ATTGGAGATGCCAAGTCCAATAGCCTCATCTCCATCAAGAGGCTGACCTTGCAGCAGAAG
GCCAAGGTGAAGTTGGACTTTGTGGCCCCAGCCACTGGTGCCCACAACTACACTCTGTAC
TTCAT GAGT GACGCTT ACATGGGAT GT GACCAGGAGT ACAAATTCAGCGT GGATGT GAAAG
AAGCTGAGACAGACAGTGATTCAGATTGAGTCCTGAGGCATTTACTTTTGGGTAAAGGAGA
GTTGAGCCTGAATTAGGAATGTGTACATTGTAGGAATCCTGGTTGTGGGGACCAGGTCTGT
GGGCCTCAGGTCTGGCCAGCCAGGGCTGGTGCTGTCCCCGCCTACCTCCACTTCCTTTCC
CTTGCTCACTCTGGATCCAGTGACAGCAGGTGTCATGGGTCAAGCATAAATCATATATAGC
ATTTT CAGGCAT GTTCCTGGT AGTT CTTTT G AGT CT G ACATT CT AAT AAAAT AATTTGT AG AA
ACCATTT GTCTTT GTAGTG ATTCCAAATT AAAAGTTTT CTTT CTCCAACCT GAGGGCACGGC
CAAAAAGATCTGGTT ATTTTTT AGCCAGGAACGTGCTT GTT AAT GAGT ATGTCTGGAGGACA
GACCTGCTCATTAGGTGTGCTGTCCCCTGTAGCCTCGTGAGTCAGCCCAGAGGAGGGTAC
ATGCGACTGTGGCCTGGCCTCAGTGGTACCCACACATCAGCACTACCACAAGAACCAACA
CTGAGCCTCGGAAGCTAGATCACAGGTTAGGGGTTTCTCTAGATGGGGGTTCTGAAATTTG
CAGTGTCTGCTCCTGGGAGGCAGCACCAGAAAGGGCACTGAAATGTACTAGCTGGATGTG
ACCCAGTCTT AAT AAACAGGTTTT CT AATCCAGAAAAAAAAAAAA
SEQ ID N° 8:
MADVTARSLQYEYKANSNLVLQADRSLIDRTRRDEPTGEVLSLVGKLEGTRMGDKAQRTKPQ
MQEERRAKRRKRDEDRHDINKMKGYTLLSEGIDEMVGIIYKPKTKETRETYEVLLSFIQAALGD
QPRDILCGAADEVLAVLKNEKLRDKERRKEIDLLLGQTDDTRYHVLVNLGKKITDYGGDKEIQN
MDDNIDETYGVNVQFESDEEEGDEDVYGEVREEASDDDMEGDEAVVRCTLSANLVASGELMS
SKKKDLHPRDIDAFWLQRQLSRFYDDAIVSQKKADEVLEILKTASDDRECENQLVLLLGFNTFD
FIKVLRQHRMMILYCTLLASAQSEAEKERIMGKMEADPELSKFLYQLHETEKEDLI REERSRRER
VRQSRMDTDLETMDLDQGGEALAPRQVLDLEDLVFTQGSHFMANKRCQLPDGSFRRQRKGY
EEVHVPALKPKPFGSEEQLLPVEKLPKYAQAGFEGFKTLNRIQSKLYRAALETDENLLLCAPTG
AGKTNVALMCMLREIGKHINMDGTINVDDFKIIYIAPMRSLVQEMVGSFGKRLATYGITVAELTG
DHQLCKEEISATQIIVCTPEKWDIITRKGGERTYTQLVRLI ILDEIHLLHDDRGPVLEALVARAIRNI
EMTQEDVRLIGLSATLPNYEDVATFLRVDPAKGLFYFDNSFRPVPLEQTYVGITEKKAIKRFQIM
NEIVYEKIMEHAGKNQVLVFVHSRKETGKTARAIRDMCLEKDTLGLFLREGSASTEVLRTEAEQ
CKNLELKDLLPYGFAIHHAGMTRVDRTLVEDLFADKHIQVLVSTATLAWGVNLPAHTVIIKGTQV
YSPEKGRWTELGALDILQMLGRAGRPQYDTKGEGILITSHGELQYYLSLLNQQLPIESQMVSKL
PDMLNAEIVLGNVQNAKDAVNWLGYAYLYIRMLRSPTLYGISHDDLKGDPLLDQRRLDLVHTAA
LMLDKNNLVKYDKKTGNFQVTELGRIASHYYITNDTVQTYNQLLKPTLSEIELFRVFSLSSEFKNI
TVREEEKLELQKLLERVPIPVKESIEEPSAKINVLLQAFISQLKLEGFALMADMVYVTQSAGRLM
RAIFEIVLNRGWAQLTDKTLNLCKMIDKRMWQSMCPLRQFRKLPEEVVKKIEKKNFPFERLYDL
NHNEIGELIRMPKMGKTIHKYVHLFPKLELSVHLQPITRSTLKVELTITPDFQWDEKVHGSSEAF
WILVEDVDSEVILHHEYFLLKAKYAQDEHLITFFVPVFEPLPPQYFIRVVSDRWLSCETQLPVSF
RHLILPEKYPPPTELLDLQPLPVSALRNSAFESLYQDKFPFFNPIQTQVFNTVYNSDDNVFVGAP
TGSGKTICAEFAILRMLLQSSEGRCVYITPMEALAEQVYMDWYEKFQDRLNKKVVLLTGETSTD
LKLLGKGNIIISTPEKWDILSRRWKQRKNVQNINLFVVDEVHLIGGENGPVLEVICSRMRYISSQI
ERPIRIVALSSSLSNAKDVAHWLGCSATSTFNFHPNVRPVPLELHIQGFNISHTQTRLLSMAKPV
YHAITKHSPKKPVIVFVPSRKQTRLTAIDILTTCAADIQRQRFLHCTEKDLI PYLEKLSDSTLKETLL
NGVGYLHEGLSPMERRLVEQLFSSGAIQWVASRSLCWGMNVAAHLVIIMDTQYYNGKIHAYV
DYPIYDVLQMVGHANRPLQDDEGRCVIMCQGSKKDFFKKFLYEPLPVESHLDHCMHDHFNAEI
VTKTIENKQDAVDYLTWTFLYRRMTQNPNYYNLQGISHRHLSDHLSELVEQTLSDLEQSKCISIE
DEMDVAPLNLGMIAAYYYINYTTIELFSMSLNAKTKVRGLI EIISNAAEYENIPIRHHEDNLLRQLA
QKVPHKLNNPKFNDPHVKTNLLLQAHLSRMQLSAELQSDTEEILSKAIRLIQACVDVLSSNGWL
SPALAAMELAQMVTQAMWSKDSYLKQLPHFTSEHIKRCTDKGVESVFDIMEMEDEERNALLQL
TDSQIADVARFCNRYPNIELSYEVVDKDSIRSGGPVWLVQLEREEEVTGPVIAPLFPQKREEG
WWVVIGDAKSNSLISIKRLTLQQKAKVKLDFVAPATGAHNYTLYFMSDAYMGCDQEYKFSVDV
KEAETDSDSD
El término "ESRPT' (también llamado en la literatura DFNB109, RBM35A, RMB35A) se refiere tanto al gen como a la proteína humana. ESPR1 es un regulador de spliáng específico del tipo de célula epitelial. En el contexto de la presente invención,“ESRP1” se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótidos, que constituye la secuencia “ESRP1”, y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la SEQ ID NO: 9, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético,
Gene ID: 54845
Localización del gen: 8q22.1 SEQ ID N° 9:
ACAGGTGGCAGCTCTCGTCCCCTGAGAGCGGGCGAAGGCCAGGGTCCCACACTCGCAGC
GCTGCGACGGCGCTCGGGACCTCCCTCGTCCACTGCTTGAGTTCCAGAGGTGGGTGCTT
CCCTGTCCTGAACTTCAGAGTGCGGAGTCATAAATGGGTTCCGGCTGGCTTACTGCAGTA
GCCTCGCTCCTCCCCAGCCCCGGTAACTCCGAGCTACCCGTCCAGGCCCTCGGGCGTCG
CGGGGGCAGGGACTGGGCGCGGAACGAGGCAGGGAGGGACCTGGAAAAACCACCCAGA
TTGCATTGCAGTGGGCGAGGCCGCCTGGAGGAGCCGGTTCCCCCTAACCACCTCCCCGT
GGGGCTCTCGGTGCGCGGTTCCCAGGTGCTCAGCTCTGCTGGGCCCAGGAGGTGCCGCC
TCACAGGGACGCGGAACCCCGTGCGTGGCCCCCGCCGGGTGGAACAGATAGCGCGGGG
CGGTCCGGAGGCTCGTCGCCAAGCAGGT GACTCTTGCT GAAAAAGT GGTT GGAACACTT G
AGGAAACCCGGCCCCGCCTGTTCTTTCTAGGTCTTTGGAGTTTGGATTAATCATTTGTGTA
GCCCGTTTGGATAAACCGAAGACTTTATTAAATCAGCGCGTTTAACAGGAATTCCGCAGTA
GT ATCCACATTAGAAT CTT GAGTCTT GG AGTT G AACAT ATT CACACAG ACTTGCCTT CTTCC
TGTTTAGTTTATGCCTTGTGTTCCGTTATTGGAACGCTAAGCTTGTGGGAGTTGTTTACATC
CTACTGCTCAAGGTCATCGCTAAGGTGTGATTTTTCACAAAAAGAATTTGCAACCTCCGGC
AT G AAT G ACTT AAGGGAAGTCT AATCCCGGTTT CT G ATTTTTTTTTTTTTTTT AATTT AAA AGT
TAATCTTTCTGGGCCGGGCGCGGTGGCTCACGCCTGTAATCCCAGCACTTTGGGAGGCCG
AGGCGGATCACGAGGTCAGGAGTTCGAGACCAGCCTGACCAACATGGTGAAACCCCGTCT
CTACTAAAAACACAAAAATTAGCCGGGCGGGGTGGCGCGCACCTGTAATCCCAGCTGCTC
GGGAGGCTGAGGCAGGAGAATCGCTTGAACCTGGGAGGCGGGGGGTTGCAGTGAGCCG
AGATCTGGCCATTGCACTCCAGCGTGGGCAACAGAGTGAGACTCCATCTCAAAAAAAAAG
GTT AAT CTTTCCAACT AG ATTTT CAAGG AT GAGG ATTTT GTTGTTGTTGTTGTTGTTGTTCTC
AAATGTATTCCCAGGGCTTGGAACAGAGCCTGACATATACTAGGCACTCAACAAATATTTGT
T G AAT G ATT GTAAT G AGTAACACCCATTTTTGCAG AT CTTTGTCTT CT G AGCCT AGGGCAT A
GGTCATCACTGCAGGGGTGAGATTGTCAAAATGGGAGTCTACAGGTAATTTAAGACTTAAA
T GTTT AAAG AGT ATGTGCT CATT CTT CAACAAACTT ACTTTT GTT AAATT AAAATGGTAAAAT
GTGGT GG AGGGGTTGGAAT AT AT GTAATT CAAG ACAGTT CT G AAT ACAAAAATGTTTT ACTG
T CT AT CACCACCAT CT AT AAAT CT AATT CACT AAGGAT AAT CTGT GTAAGGTGGCTGGAAAG
AACCTTGAGGAGAGAGGCTTATTTAAGTATTGGCTCAGGACCACACCTAAAATTCTCAAAA
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El término "SRSFT (también llamado en la literatura ASF; SF2; SFRS1 ; SF2p33; SRp30a) se refiere tanto al gen que codifica a un miembro de la familia de proteínas del factor de splicing rico en arginina / serina. La proteína codificada puede activar o reprimir el splicing, dependiendo de su estado de fosforilación y sus compañeros de interacción. Se han encontrado múltiples variantes de transcripción para este gen. Hay un pseudogen de este gen en el cromosoma 13. A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “SRSF1", se refiere tanto al gen como a la proteína humana, factor de la maquinaria de splicing. En el contexto de la presente invención, “SRSF1" se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye la secuencia codificante de la proteína“SRSF1", y que comprendería diversas variantes procedentes de:
a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica de la SEQ ID NO: 10, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con la SEQ ID NO: 10. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee la actividad y las características estructurales de la proteína SRSF1. Entre otras posibles secuencias nucleotídicas que codifican SRSF1 se encuentra, pero sin limitarse, la SEQ ID NO: 1 1.
Gene ID: 6426 Localización del gen: 17q22 SEQ ID N° 10:
GTTGCGCTCCCGCGCGTGCGTGTTGGGATCGAATCGCTGTTTCCTTCCGCTTCTCTTCCTC
TGTCTCCCCCCCATATCCGTGCGCCGAGCTGATAAAGGCGCCATTTTGGAGGGGCCGCG
GGAGACGTGGTGCCGCTGCGGGCTCGCTCTGCCGTGCGCTAGGCTTGGTGGGAAGGCCT
GTTCTCGAGTCCGCGCTTTTCGTCACCGCCATGTCGGGAGGTGGTGTGATTCGTGGCCCC
GCAGGGAACAACGATTGCCGCATCTACGTGGGTAACTTACCTCCAGACATCCGAACCAAG
GACATTGAGGACGTGTTCTACAAATACGGCGCTATCCGCGACATCGACCTCAAGAATCGC
CGCGGGGGACCGCCCTTCGCCTTCGTTGAGTTCGAGGACCCGCGAGACGCGGAAGACGC
GGTGTATGGTCGCGACGGCTATGATTACGATGGGTACCGTCTGCGGGTGGAGTTTCCTCG
AAGCGGCCGTGGAACAGGCCGAGGCGGCGGCGGGGGTGGAGGTGGCGGAGCTCCCCG
AGGTCGCTATGGCCCCCCATCCAGGCGGTCTGAAAACAGAGTGGTTGTCTCTGGACTGCC
TCCAAGTGGAAGTTGGCAGGATTTAAAGGATCACATGCGTGAAGCAGGTGATGTATGTTAT
GCTGATGTTTACCGAGATGGCACTGGTGTCGTGGAGTTTGTACGGAAAGAAGATATGACCT
ATGCAGTTCGAAAACTGGATAACACTAAGTTTAGATCTCATGAGGGAGAAACTGCCTACAT
CCGGGTTAAAGTTGATGGGCCCAGAAGTCCAAGTTATGGAAGATCTCGATCTCGAAGCCG
TAGTCGTAGCAGAAGCCGTAGCAGAAGCAACAGCAGGAGTCGCAGTTACTCCCCAAGGAG
AAGCAGAGGATCACCACGCTATTCTCCCCGTCATAGCAGATCTCGCTCTCGTACATAAGAT
G ATT GGT G ACACTTTTT GT AG AACCCAT GTT GT AT AC AGTTTTCCTTT ATT CAGT AC AAT CTT
TT CATTTTTT AATT CAAACTGTTTT GTT CAG AATGGG CT AAAGT GTT GAATTGCATT CTT GTA
AT ATCCCCTTGCTCCT AACAT CT ACATTCCCTTCGT GTCTTT G AT AAATT GT ATTTT AAGT GA
T GTCAT AG ACAGG ATTGTTT AAATTTAGTT AACTCCAT ACT CTT CAGACT GT GAT ATTGT GTA
AATGTCTATCTGCCCTGGTTTGTGTGAACTGGGATGTTGGGGGTGTTTGTGGTTATCTTAC
CTGGGGAAGTTCTTATGTTTATCTTGCTTTTCATGTGTCTTTCTGTAGACATATCTGAAGAG
ATGGATTAAGAATGCTTTGGATTAAGGATTGTGGAGCACATTTCAATCATTTTAGGATTGTC
AAAAGGAGGATT GAGGAGGATCAGATCAAT AATGGAGGCAATGGTAT GACTCCAAGTGCT A
TTGTCACAGATGAAATTGGCAGTATTGACCTTATACTAAAAGGCAGGGGTTAAAAATGATTA
T AT ACATTTTCCTT AAAACACTTGCAAACATTTT ATT CAGTTGTCTTT AGCTACAATTGCTTT G
CTTTTT AAACCTT GGCAATT GT GGCAAAATTATATTGCCCATTTT GTAGCAACTT ATTTTGCT
CCCTTCCCCCCATTTTT GTTTT AAT AGGGACT AAT GT GGGAAGAACT GGCT AATTTGTCACA
GTGCTTAGTTACAACTGTTAATGTGTGACCTGCTGTTGGTGTACATGTGGGTACAGGGTGT
TTTT AAATCCAACAAGAT AGAGTAT AAT AT CAAT ACTGCT AAAT CTGCAT GTCCTCTGT GTG A
CT G AT AGAGCGTTGCT ATTT CATTTTTTT AAG ACAAAAT G AAAGCAAAAT AT AG AGTTCCAAT
GT ATT GGTGT AG AT AAT CT AGTTGGG AAT ACTTTT AAGTCT CACCTTCCCCTTT AAACT AAT A
TT CAT AATTGGTT CAT AT GTTT AAAAGACTTT AATTT ACAAATT AAATTGCAAAT GGGAG CAT
TAGATTTAGTTTTAGACTTAGGTGGGTAGCAATGCCAGTAAACTTAAATTACGTAACTTCTT
GCAACCACGAAACCTGTAATACGCTGTACAGTAACAAGTGTTGGCATTATCAGTTGAACTG
T AAATACAAAATGCTT CTTCCAATTAGTCT CT AT G AT GATT AAGTTT CT AAAATTT AT CT GAAC
ACCATT CAGAAACTT GTTTT GGGG AATTT G AT AGTT ATT GAT GT GCAT CT GTT AAACT G AT G
ACAGACAT AACT CAT CATTCCCCAG AAACCTTTTTT G ATT ACAGTATCT AACATTTTGCCTCC
TCTTTTTTGGTTTTGCTGGTTATAAAGGTTTGGATTGGAGAGGGCTCACTGGATCCCAATCC
TTGGAGCTGGATCATTGGATTCAAATCATAATGTGGATAGGATAGGGAGGATGAATTACCA
GGATTCATGGAGCGGGATCAGATTACCAGGAACATAGGAGTGGATTCCTGCCCCAACCAA
ACCGCATTCGTGTGGATTTTTTT ATT CAACTT AATTGGCT ATTCCAAAG ATTTTTTTTTTCCT A
TTTTT GACGATTGGAGCCCTT AAGATGCACGATGGAATT GT GTTTTGCGTTTTTT GGT AAAA
GGAGCAAAGCGAGGACCTGGAGATAAACGCTGGAGCAATCTCCTTGGAAGGATTCAGCAC
GAGTAGATGGTAAACATTTAAAGGGGAAAGGGGGGGTTTGTTTAAAATAGTAAATCAGTAA
GTCACTT CT AAATTT AAAG AAAACAAAATT GG AGTT G AAG AAT AAGT AGGTTTCCAATT GGC
T ATTGCCGTTTT CTTT GAAAAAAT AAA CATTTTTT AAAAAACT ATGCAT GGTTGTCCTTTTTCC
T CTT CAT GT AAG ATT CT AACT GGGTCT AT CAGTT AAT CTTT AAATT GTT AAGT AAG AT AAG AT
TTT G ACT CTT GTGTT AATGT GTT AGCAAATT AAAAGTT CTT AAAAGGCAAT CT AATGGT ATT A
GCCATCTTTTATTGTTAATTGTAAAAGTCTTCAGGGGAAAGCAAAAGGGGAGAATAAGGCA TTTGTGTATGTAACTTGGTAAATGACGGTGGGGGATGGATCTAGCATCTGAAAGATAAGCT T CT CT ACTTT GTT AT AAAGTGGTT AAAAAACT AT AGATGCTGCTT ATTTT CTGGT GGTCAT AG ACAACATAGGCTTTTGTGCAAAATTGGTTGATGGCTACTAATGTTCACTTGGAGATAGCTTT T G AT ATT CT CAAT GAAACT CAT CT CAAAAAAAGGT AAGT ATT AAATGTT AACAT CAGCACAG A TGT ATT AG AACTGTTTTTT GTTTTT G AGACAG AGTCTCGCT CT GTT CTCCAGACTGGAG GGC AGTGGTGTGATCTAGGCTCACTGCAACCTCCACCCCTGGATTTGAGTGATTCTCGTGCCTC AGTCTCCCAAGTAGCTGAGACTACAAGTGTGTGCCACCCTTGCCCGGCTAATTTTGTATTT TTAGTAGAGATGTGGTTTCTCTGTGTTACCCAGGCTGGTCCCAAAACTCCTGGCCTCAAGT GATCTGCCTGCCTTGGCCTCCCAAAGTGTTAGGATTACAGGTGTGAGCCACCATGCTCAG CCTGT AG AACTTTT AACCCAAGTCT CATTT CTTTTTT G AAAGGG AAG AGTGCACAAG ATT AA CTG CTT CTTT G G AT G A AT C ATT GTTA AT A A AA AG CTG G G CATTT AG A ATTTT GCCTTATAAGC CCTT CTCCAACCAT AAG ATT ATTTT GTACCAAAAACTTT GGTGTTCTCT ACCAAAGCAGTT AA AAACTTTTAGCCTGCTACTTCTTGTATTTGTCTACTGACAGCCCCTTGGTACTATTTAGGTT GGGGGAGGGGACCTAAAATAAATAGACTTTAACATTTCCCTTGGGTGCTAATCATAGTTGG AAGTTGAATTTAAGGTGATTATTTGGGTGACAATTAAAAACCTAAGGAAAACCAGAAATCTT GGTAGTGGAAGAAATGTGTAAGGTCACCCCAATCGGTAGATTTTAATGAACGTTGTGGAAT GTTGGGAAGAGGGGATGTTAAGTTGAATGCAGAATTTCACTAAGTACTTAGTGTAAGTTTAA GG ATGT AGCT CTTTTT AT CT AAG AATT CAATGTAAT GGCCAAAAGGCAG ATTT ACTGTTT AA AAATTT G AAT AATTTTACAT G ACATT CTT G AAATT CT AAGAAGTTTT ATGTGT AG AACATTTT A AAAATT CAT CAG ATT ATT AAAGGGAAAAT AAAT G ATT AAT GATAATTTTGGAAGGTT AAT GT G AGCT AGACTT AAGTAAACTTTGGTT CATTTGT GTT CATT G AAT GTTTT GG AAAT GACCAAAAA ATGT AAAT GGCCTT CACT CAAGTTT GAGTGTTT AAAGTT G AAAG AT GTGCTCTACT AAAAGT T AT AGTAATT CT AACCT CACATT G AAAT GAGACAGT ATTCCTT GTTATACAGGCT G AATTT G A AGATTAGAGAGGATCTAATGTTTACTTAGGTAAAGGGGCATAGGTTTTGTAGTTAAGATGAC CAGACAGCTAAAAGCTGTGATGGGAAGTATGGACTGCTCCTATTTATAGTCTCAGAAAATG G ACCTTT AGGTCTCT ATCCGTATTGGCAATT ATT AGAAG AAAGTT ACACCCTTTT G AAACT A CAAAAGCT GTCTTGG AATTTCCCCCT CTT CTCCCT ATTT AT GTCCCCTT AG AAT ATTTT AGG G AGCCT AT AATT ATTTT CT AACCAAGG AAAAACTT AAGTCT CTTT AAGAAGCAATTACTTTT C ATAACATCAGATTGAATAACCCACCTTGCTGTTCAGCCCACATCCTACTGGAAACAAAAGGT AAGAAACCCATTTT CTGGTT CTT G ATT GTTTGGGTCT G AATTTT GTTTTT AAAACT AAGCT AA GTTT AATGTTTTTT AAAATGCT GTTT GG AAT AT G AATAG ATTCCCCGTAAAAT G ATTTTTCCT AAGTTTTATGCTTTAGTAAATATTCAGTGCTCACGTCTGTGCATCATAGTGCTTGCGTTTAAT AT G ATTT ATT GT AG AAT CT CAACTTTT CTTGGT GTTT GTT GTCTTT GAAACATT GTCTTGGT C ATTAGGGCTGGTGTTTTCACATTTCTGTGGTCAAGGTGGATTTCTTATGTGTGCCTTTTTGC TT ACTTT GTATAT G AATTTT GTAATTT AAATTGCAAGTAAGTT AT AT ATATGT ATTT ACCAT AA AT AGTATT AAAAG AT G AGAAACT GTT AG ACT GAAGTT CTGTTGT AACAT AACCATT ATTTCCA TCACAGTAT G AAGACTGCAAACGCAG AAAACAG ATT ACAGTCT CTT ATCCATTTTTT G AAAT CCAAAAACT ACG AAAACAAAAGATTTT CT GTTGTT G AGCT AATT AAAT GT GAACCCT GACCA GAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAA
SEQ ID N° 1 1 :
MSGGGVIRGPAGNNDCRIYVGNLPPDIRTKDIEDVFYKYGAIRDIDLKNRRGGPPFAFVEFEDP
RDAEDAVYGRDGYDYDGYRLRVEFPRSGRGTGRGGGGGGGGGAPRGRYGPPSRRSENRV
VVSGLPPSGSWQDLKDHMREAGDVCYADVYRDGTGWEFVRKEDMTYAVRKLDNTKFRSHE
GETAYIRVKVDGPRSPSYGRSRSRSRSRSRSRSRSNSRSRSYSPRRSRGSPRYSPRHSRSR
SRT
El término "SRSF5" (también llamado en la literatura HRS; SFRS5; SRP40) se refiere tanto al gen como a la proteína humana. La proteína codificada por este gen es un miembro de la familia rica en serina / arginina (SR) de factores de splicing pre-ARNm, que constituyen parte dei spliceosoma. Cada uno de estos factores contiene un RRM ( RNA Recognition Motif) para unir ARN y un dominio RS para unir otras proteínas. Ei dominio RS es rico en residuos de serina y arginina y facilita la interacción entre diferentes factores de splicing SR. Además de ser crítico para ei splicing de ARNm, también se ha demostrado que las proteínas SR están implicadas en la exportación de ARNm desde el núcleo y en la traducción. El corte y splicing alternativo da como resultado múltiples variantes de transcripción.
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “SRSF5", se refiere tanto al gen como a la proteína humana, factor de la maquinaria de splicing. En el contexto de la presente invención, “SRSF5" se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye la secuencia codificante de la proteína“SRSF5", y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica de la SEQ ID NO: 12, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con la SEQ ID NO: 12. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee la actividad y las características estructurales de la proteína SRSF5. Entre otras posibles
secuencias nucleotídicas que codifican SRSF5 se encuentra, pero sin limitarse, la SEQ ID NO: 13.
Gene ID: 6430
Localización del gen: 14q24.1 SEQ ID N° 12:
GGAAGTGACGTAGGACGCGCCCTCCATTTTGTGGAGCGCCAGAGCTGCTAAGTGCGTCAG
TTGTGGAGTGGCGTAGACGAGTTAAGTCCTGGTCTGCGTGGAGGTCGACGACTCCGTCGC
AGACTACGGACCTGTCTGGGTCTCAGCCGCCAAAGACCCCGTCCGGTAGGAAGTACTAGC
CGGACATCATGAGTGGCTGTCGGGTATTCATCGGGAGACTAAATCCAGCGGCCAGGGAGA
AGGACGTGGAAAGATTCTTCAAGGGATATGGACGGATAAGAGATATTGATCTGAAAAGAGG
CTTTGGTTTT GT GGAATTT GAGGATCCAAGGGATGCAGAT GAT GCT GTGT AT GAGCTTGAT
GGAAAAGAACTCTGTAGTGAAAGGGTTACTATTGAACATGCTAGGGCTCGGTCACGAGGT
GGAAGAGGTAGAGGACGATACTCTGACCGTTTTAGTAGTCGCAGACCTCGAAATGATAGA
CG AAATGCTCCACCT GTAAGAACAG AAAATCGT CTT ATAGTT G AGAATTT ATCCT CAAG AGT
CAGCTGGCAGGATCTCAAAGATTTCATGAGACAAGCTGGGGAAGTAACGTTTGCGGATGC
ACACCGACCTAAATTAAATGAAGGGGTGGTTGAGTTTGCCTCTTATGGTGACTTAAAGAAT
GCT ATT GAAAAACTTT CT GG AAAGG AAAT AAATGGGAG AAAAAT AAAATT AATT G AAGGCAG
CAAAAGGCACAGTAGGTCAAGAAGCAGGTCTCGATCCCGGACCAGAAGTTCCTCTAGGTC
TCGTAGCCGATCCCGTTCCCGTAGTCGCAAATCTTACAGCCGGTCAAGAAGCAGGAGCAG
GAGCCGGAGCCGGAGCAAGTCCCGTTCTGTTAGTAGGTCTCCCGTGCCTGAGAAGAGCC
AGAAACGTGGTTCTTCAAGTAGATCTAAGTCTCCAGCATCTGTGGATCGCCAGAGGTCCCG
GTCCCGATCAAGGTCCAGATCAGTTGACAGTGGCAATTAAACTGTAAATAACTTGCCCTGG
GGGCCTTTTTTTAAAAAACAAAAACCACAAAAATTCCCAAACCATACTTGCTAAAAATTCTG
GTAAGTATGTGCTTTTCTGTGGGGGTGGGATTTGGAAGGGGGGTTGGGTTGGGCTGGATA
T CTTT GT AGAT GT GG ACCACCAAGGGGTTGTT G AAAACT AATT GTATT AAAT GTCTTTT GAT
AAGCCTT CTGCT CACATTTTT GTG AAT GTCT GAAGT AT AT AGTTTGT GTAT ATT GAC AG AGC
T CTTTT AT AACT AAAGCAAATTT AATTTTTTT GTACT AGAAAAAAATTT G AACATTTT AGTT CT
TGGTTAT AAAAATGTT AATT CAGAATTAGTTT AAT GCCTT AATT AAACT AATT AATAG CTTTGG
ACACTTAAAAGAGCTCTAAATTTGCTTGTACATAAAGGCTTAATTTGTTTTCCTTGTTAGGGT
CAAGGGTGTCCTCCACTCTTTAACAGCTGCTGGACAGACACATTAGAGCAGCTGTTTGTTA
TT GAT AAT AAAAT ATT AT AAAACT A
SEQ ID N° 13
MSGCRVFIGRLNPAAREKDVERFFKGYGRIRDIDLKRGFGFVEFEDPRDADDAVYELDGKELC
SERVTIEHARARSRGGRGRGRYSDRFSSRRPRNDRRNAPPVRTENRLIVENLSSRVSWQDLK
DFMRQAGEVTFADAHRPKLNEGVVEFASYGDLKNAI EKLSGKEINGRKIKLIEGSKRHSRSRSR
SRSRTRSSSRSRSRSRSRSRKSYSRSRSRSRSRSRSKSRSVSRSPVPEKSQKRGSSSRSKS
PASVDRQRSRSRSRSRSVDSGN
El término "NOVA1 " se refiere al gen que codifica una proteína de unión a ARN neuronal específica, un miembro de la familia Nova de antígenos de enfermedad paraneoplásica, que es
reconocida e inhibida por los anticuerpos paraneoplásicos. Estos anticuerpos se encuentran en los sueros de pacientes con ataxia opsoclono paraneoplásica, cáncer de mama y cáncer de pulmón de células pequeñas.
A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término “NOVA 1”, se refiere tanto al gen como a la proteína humana, factor de la maquinaria de splicing. En el contexto de la presente invención, “NOVA 1” se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye la secuencia codificante de la proteína“NOVA 1”, y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica de la SEQ ID NO: 14, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con la SEQ ID NO: 14. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee la actividad y las características estructurales de la proteína NOVA1. Entre otras posibles secuencias nucleotídicas que codifican NOVA1 se encuentra, pero sin limitarse, la SEQ ID NO: 15.
Gene ID: 4857
Localización del gen: 14q12
SEQ ID N° 14:
CTCTCCCTTCTCCACTCTCTCCCCCTGTCTCCTTTCTTCTTCTTCTTTCACCCTCCGTCTCTC ACACCCCCTCCATTCCCCTGTCTCCTTTCTGACACTGCACTGCAGCTGCTCCTCAGCCCTG CCCCCTCCCCAGT G AGAACAAACCAGCAACATTGCTTTTTTTCCT AAAG AG ATTT AT ATT GA TCCGATTAAAAAAAAAAAACCTTAAGAAACCCCAAACGCAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAG AAAAAAGAAAAGAAAAAGCCAAAACAAAAGGGAGAACCTTCTCCCGGTAGCAGCGGCAGG AACTGCAAACATGATGGCGGCAGCTCCCATCCAGCAGAACGGGACCCACACTGGGGTTCC CATAGACCTGGACCCGCCGGACTCGCGGAAAAGGCCGCTGGAAGCCCCCCCTGAAGCCG GCAGCACCAAGAGGACCAATACGGGCGAAGACGGCCAGTATTTTCTAAAGGTTCTCATAC CTAGTTATGCTGCTGGATCTATAATTGGGAAGGGAGGACAGACAATTGTTCAGTTGCAAAA AGAAACTGGAGCCACCATCAAGCTGTCTAAGTCCAAAGATTTTTACCCAGGTACTACTGAG CGAGTGTGCTTGATCCAGGGAACGGTTGAAGCACTGAATGCAGTTCATGGATTCATTGCAG AAAAAATTCGAGAAATGCCCCAAAATGTGGCCAAGACAGAACCAGTCAGCATTCTACAACC CCAGACCACCGTTAATCCAGATCGCATCAAACAAGTAAAGATTATAGTTCCCAACAGCACA GCAGGTCTGATAATAGGGAAGGGAGGTGCTACTGTGAAGGCTGTAATGGAGCAGTCAGGG GCTTGGGTGCAGCTTTCCCAGAAACCTGATGGGATCAACTTGCAAGAGAGGGTTGTCACT GT G AGTGGAG AACCT G AACAAAACCG AAAAGCT GTT G AACTT AT CATCCAG AAG ATACAAG
AGGATCCACAAAGTGGCAGCTGTCTCAATATCAGTTATGCCAATGTGACAGGTCCAGTGGC AAATTCCAATCCAACCGGATCTCCTTATGCAAACACTGCTGAAGTGTTACCAACTGCTGCA GCAGCTGCAGGGCTATTAGGACATGCTAACCTTGCTGGCGTTGCAGCCTTTCCAGCAGTTT TATCTGGCTTCACAGGCAATGACCTGGTGGCCATCACCTCTGCACTTAATACATTAGCCAG CTATGGATATAATCTCAACACTTTAGGTTTAGGTCTCAGTCAAGCAGCAGCAACAGGGGCT TTGGCTGCAGCAGCTGCCAGTGCCAACCCAGCAGCAGCAGCAGCCAATTTATTGGCCACC TATGCCAGTGAAGCCTCAGCCAGTGGCAGCACAGCTGGTGGTACGGCGGGGACATTTGC ATTAGGTAGCCTGGCTGCTGCTACTGCTGCAACCAATGGATATTTTGGAGCTGCTTCTCCC CT AGCTGCCAGTGCCATTCTAGGAACAGAAAAGTCCACAGAT GGATCCAAGGAT GT AGTT G AAATAGCAGTGCCAGAAAACTTAGTTGGTGCAATACTTGGCAAAGGAGGGAAAACATTAGT GGAATACCAGGAGTTGACTGGTGCAAGGATACAGATCTCCAAAAAAGGAGAATTCGTACCT GGCACAAGGAATCGGAAGGTAACCATTACTGGAACACCAGCTGCAACACAGGCTGCTCAA TATTTAATTACACAAAGGATCACATATGAGCAAGGAGTTCGGGCTGCCAATCCTCAGAAAG TGGGTTGAGTGCCCCAGTTACACATCAGATTGTTTTAACCCCTCCTTTACCCCATTTTCAAG AAGG AT GTACT GTACTTTGCAG AAGT GAAGTTTTT CT GTT ATT AAT AT AT AATT AT GCAAAT G AATGCGACT ATGTT G ACAATGT GTATAT GT AAAT AAT AT GT GTTTT ACCAG AT GTTT CAT AGA AAGAATTTTTT CTT GAT CT GTTTTGTT CT CT AT ACTTTGCTT GTGTAT ATTT GTCAG AGGT GTT TCTAGT GTAAGATTT AAGCCTGCCATTTTACCAGCATT ATTGT AGTTT AAT G ATT GAATGT AG ACAGGGATATGCGTATAGTTTTCAGTATTAGTTCTAGATAACACTAAATTAACTACTGTTAG GTTGAGTATGGTGGGGTCAGTGACCTAAAATGGAGTGAGGCCAAAGCACTGTCCTGTAAG T CTT ACTTCCTGCTT AGGGCACAGT GAAGT AGG AAACAAT ATTTT GAAAAT AAGTTTT AAATT T AAAAT GAT CAAAAAGCAAT ATAGTTGCAT AAAAGCACT GTAAAAT ATTT AAAAGGTT AAAAC T GTGGAAAATT AT ATTGGTAAGTTT ACAG AT CAAT AAAAGCACCT GTT CTCCAT CT GAACT A GACAATGGAAATAATGCTGCATGCTGGCCATGGCCCATTCTTCATCATTTGTAAGTTCAACA AAAGTT CT CACATGG AGTCCCACCT CTT CAGAGGTTT GTACATTT GTTTTT AAGCACT GAAT TCACTACTGATCCCATCGCCTGGCCAGTAGAACAGTCATTACTCCATTAACATCCTCACTGT TT AG ACACAT AACTGTGGTACAGT GTATTGGAAATTTT AT AAACAAAAGT G AAAGTGCCAAC AAATT ATT GAT AGCT G AT AAT GTTT CATT AT CTGCAACTGCTT G AT AAGTAT GTTGCATTTT A AG AGCTT AT AATT GTGTAT AATTT GTT AACACTAG AAACCT ATTAGTATT GT GAATGT AG ATT TTACTGT GAAGCT ATCTGT GATTT AGCT GTTT GCTCCCAT G AT GG AGTCTTTGCAGCAT GG C GCTAGCAGCCAATGCAGTTTCTAATACTCGGTAATTTGCATGTTTTGTGGAGCATTTTTATG TCACCAACCAGACAGTATTTCCTGCATGCTTATTTAGAAGAGGCAGCTTATCTTGAGAGGTA GTGTTAT CTACCTTT GTCAGGCTTTTT GACAGGTCATTT CAGAGTAAGCCTTTGTTCCCAAG ACCCAACAACTGTCACCCTCTTCTGTACCTCTCCTGAGTGCCAACTGTCCAGGCCATTTGA CACACCATCTGTTAACCTCTGAGTTTGCCCACTCAAGGCCACTCATAGGGGCATCCATCCC CAAGCACCTCCTCATGCTGTGCATGCAGTCTTAAATTCAATGGACAAAAATAAAATGCTGG CTACCT CTGG AT CAT CTGGCT GAGCAACT GAATT ACAAAAGAGAATTACTTCCAT CT CAACT TCAACCCATTGATTACGTCCATCCTAGCAAGCTAAATGGCATCCCAGCTGCTCCTTTCTGT GCAACCAATT AAAGAACAAT GAGTGT G ATGCTCCAT GTCT G AATTTCGTCCAGCCT CT CT CT G AACT GTG AT CTTTGTCCT CAT GAACTTTCCCTTTT GTT CATT GAACT AT AT GG ACT CTT CAT TT CAT ATT GATTT ACT GTGCAATTTACTTTT GGACATT GAG AACTT GAAATT ATTTCCT G AT C CCTTCCCCTTCCACT ATT AAT AATT CATTT CT GT CAAACT GTAAG AGT AG ACT CATTTTTTTTT TTTT AGTTTTT AACATT GG ACT GTT ATTT CATTTAG AGTT CT CT AT CT CT AAAT ATTT ATTT AG AG AAT G ATTTT AAAAGGGAAT GAT ATGCTT GTTT AAAT G AAAGAGAAAAGCT GTAGTAAACT GTGTT AATTGGTAAT G ACT ATTT ATCGTCGAT ACT CTGTAGCTGTGT AAGTTTT GAC AAAT A GTGTATCTCGTGGAATCAGTGGTTAGCATTGCCGCTATTATATTTACTCATTTTATCATTATA AAT GTGCTT AGTT CAT CAT GTAGCAT CA
SEQ ID N° 15
MMAAAPIQQNGTHTGVPIDLDPPDSRKRPLEAPPEAGSTKRTNTGEDGQYFLKVLIPSYAAGSII
GKGGQTIVQLQKETGATIKLSKSKDFYPGTTERVCLIQGTVEALNAVHGFIAEKIREMPQNVAKT
EPVSILQPQTTVNPDRIKQVKIIVPNSTAGLIIGKGGATVKAVMEQSGAWVQLSQKPDGINLQER
VVTVSGEPEQNRKAVELIIQKIQEDPQSGSCLNISYANVTGPVANSNPTGSPYANTAEVLPTAA
AAAG LLG H A N LAG VAA F PAVLSG FTG N D LVA I TSA LNTLASY G YN LN TLG LG LSQAAAT G A LAA
AAASANPAAAAANLLATYASEASASGSTAGGTAGTFALGSLAAATAATNGYFGAASPLAASAIL
GTEKSTDGSKDWEIAVPENLVGAILGKGGKTLVEYQELTGARIQISKKGEFVPGTRNRKVTITG
TPAATQAAQYLITQRITYEQGVRAANPQKVG
El término "SNRNP70" (también llamado en la literatura RPU1 ; Snp1 ; U1AP; U170K; U1 RNP; RNPU1Z; SNRP70; U1-70K) se refiere tanto al gen como a la proteína humana. A no ser que se indique lo contrario, cuando se utiliza en el presente documento el término“SNRNP70", se refiere tanto al gen como a la proteína humana, factor de la maquinaria de splicing. En el contexto de la presente invención, “SNRNP70" se define también por una secuencia de nucleótidos o polinucleótido, que constituye la secuencia codificante de la proteína “SNRNP70", y que comprendería diversas variantes procedentes de: a) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica de la SEQ ID NO: 16, b) moléculas de ácido nucleico cuya cadena complementaria híbrida con la secuencia polinucleotídica de a), c) moléculas de ácido nucleico cuya secuencia difiere de a) y/o b) debido a la degeneración del código genético, d) moléculas de ácido nucleico que codifican un polipéptido que comprende la secuencia aminoacídica con una identidad de al menos un 80%, un 90%, un 95%, un 98% o un 99% con la SEQ ID NO: 16. en las que el polipéptido codificado por dichos ácidos nucleicos posee la actividad y las características estructurales de la proteína SNRNP70. Entre otras posibles secuencias nucleotídicas que codifican SNRNP70 se encuentra, pero sin limitarse, la SEQ ID NO: 17.
Gene ID: 6625
Localización del gen: 19q13.33 SEQ ID N° 16:
ATGCGCGAAAGATCCGGGAAGTGTGATCGGAAAGGGGCGGAGCATCAGGGAGAGTCTCG
CGGACATAGGCGGTTCGGCGCGGAAAGCGGGAGGTGGAGGGGCGGCTTGGGGCAAGCG
CGCGCGCGCAGTGCAGAAGCCAGCCCCCCGCGGCTGAGGTACTCAAGGTGCCCAAAGGC
GGGGTAGTGACCTCGCGCGTGCGCTGTGCCCGCGGCAGCGCCGGGTCCTAGTGTGTGG
GTTGTTGTTGGCACCGCACGGCGCGTGCGCAGTGAGGACGGCGGAGGGATTTGCGGCCG
GGACCCACCCCCTGCTCCAGTCGCTATCGGAGGCCGCGCGGGTGGCTGAGCAGCGGCCT
GGTGCGCTCGCTTAGCGGGCGACGGAATCAGACGGACGTGGACGCCCCCGGAGTGGAA
GCCGAAGCAGGAGTTGTTGTTGCTGAGGGGCTGCCGCAGCCGCCGCGAGCCTCCGGACA
GACGCCAGAGCGAGGAGGGCGCTACGCGACTTGGCAAGATGACCCAGTTCCTGCCGCCC
AACCTTCTGGCCCTCTTTGCCCCCCGT GACCCT ATTCCAT ACCTGCCACCCCTGGAGAAAC
TGCCACATGAAAAACACCACAATCAACCTTATTGTGGCATTGCGCCGTACATTCGAGAGTT
TGAGGACCCTCGAGATGCCCCTCCTCCAACTCGTGCTGAAACCCGAGAGGAGCGCATGGA
GAGGAAAAGACGGGAAAAGATTGAGCGGCGACAGCAAGAAGTGGAGACAGAGCTTAAAAT
GTGGGACCCTCACAATGATCCCAATGCTCAGGGGGATGCCTTCAAGACTCTCTTCGTGGC
GAGAGTGAATTATGACACAACAGAATCCAAGCTCCGGAGAGAGTTTGAGGTGTACGGACC
TATCAAAAGAATACACATGGTCTACAGTAAGCGGTCAGGAAAGCCCCGTGGCTATGCCTTC
ATCGAGTACGAACACGAGCGAGACATGCACTCCGCTTACAAACACGCAGATGGCAAGAAG
ATTGATGGCAGGAGGGTCCTTGTGGACGTGGAGAGGGGCCGAACCGTGAAGGGCTGGAG
GCCCCGGCGGCTAGGAGGAGGCCTCGGTGGTACCAGAAGAGGAGGGGCTGATGTGAAC
ATCCGGCATTCAGGCCGCGATGACACCTCCCGCTACGATGAGAGGCCCGGCCCCTCCCC
GCTTCCGCACAGGGACCGGGACCGGGACCGTGAGCGGGAGCGCAGAGAGCGGAGCCGG
GAGCGAGACAAGGAGCGAGAACGGCGACGCTCCCGCTCCCGGGACCGGCGGAGGCGCT
CACGGAGTCGCGACAAGGAGGAGCGGAGGCGCTCCAGGGAGCGGAGCAAGGACAAGGA
CCGGGACCGGAAGCGGCGAAGCAGCCGGAGTCGGGAGCGGGCCCGGCGGGAGCGGGA
GCGCAAGGAGGAGCTGCGTGGCGGCGGTGGCGACATGGCGGAGCCCTCCGAGGCGGGT
GACGCGCCCCCTGATGATGGGCCTCCAGGGGAGCTCGGGCCTGACGGCCCTGACGGTC
CAGAGGAAAAGGGCCGGGATCGTGACCGGGAGCGACGGCGGAGCCACCGGAGCGAGCG
CGAGCGGCGCCGGGACCGGGATCGTGACCGTGACCGTGACCGCGAGCACAAACGGGGG
GAGCGGGGCAGTGAGCGGGGCAGGGATGAGGCCCGAGGTGGGGGCGGTGGCCAGGAC
AACGGGCTGGAGGGTCTGGGCAACGACAGCCGAGACATGTACATGGAGTCTGAGGGCGG
CGACGGCTACCTGGCTCCGGAGAATGGGTATTTGATGGAGGCTGCGCCGGAGTGAAGAG
GTCGTCCTCTCCATCTGCTGTGTTTGGACGCGTTCCTGCCCAGCCCCTTGCTGTCATCCCC
TCCCCCAACCTTGGCCACTTGAGTTTGTCCTCCAAGGGTAGGTGTCTCATTTGTTCTGGCC
CCTTGG ATTT AAAAAT AAAATT AATTTCCT GTT G AT AGTGGGCAAAAAAAAAAAAAAAAAA
SEQ ID N° 17:
MTQFLPPNLLALFAPRDPIPYLPPLEKLPHEKHHNQPYCGIAPYIREFEDPRDAPPPTRAETREE
RMERKRREKIERRQQEVETELKMWDPHNDPNAQGDAFKTLFVARVNYDTTESKLRREFEVYG
PIKRIHMVYSKRSGKPRGYAFIEYEHERDMHSAYKHADGKKIDGRRVLVDVERGRTVKGWRPR
RLGGGLGGTRRGGADVNIRHSGRDDTSRYDERPGPSPLPHRDRDRDRERERRERSRERDKE
RERRRSRSRDRRRRSRSRDKEERRRSRERSKDKDRDRKRRSSRSRERARRERERKEELRG
GGGDMAEPSEAGDAPPDDGPPGELGPDGPDGPEEKGRDRDRERRRSHRSERERRRDRDR
DRDRDREHKRGERGSERGRDEARGGGGGQDNGLEGLGNDSRDMYMESEGGDGYLAPENG
YLMEAAPE
Los autores de la presente invención han demostrado que los niveles de expresión durante el ayuno y/o el post-prandio de los genes RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA1, SRSF1 y SRSF5 están significativamente reducidos y el de SNRNP70 significativamente aumentado en PBMCs de pacientes que desarrollarán DMT2 en comparación con pacientes que no desarrollarán DMT2 (Figuras 1 y 2).
Para ello, se ha medido el patrón de expresión de elementos seleccionados de ¡a maquinaria de splicing en PBMC de pacientes sin DMT2 pero que han sufrido un evento cardiovascular y que, por lo tanto, presentan alto riesgo de desarrollar DMT2, a ios que hizo seguimiento durante 5 años. Establecieron que los niveles de expresión en PBMCs de ciertos componentes de la maquinaria de splicing estaban alteraros significativamente en pacientes que desarrollaron DMT2
durante ¡os cinco años de seguimiento (incident-T2DM) y se asociaron con el desarrollo de DMT2. De hecho, ¡as huellas moleculares comprendidas por los niveles en ayuno y, especialmente, post-prandiales de algunos de estos componentes de la maquinaria de splicing fueron capaces de diferenciar entre los pacientes que posteriormente desarrollaron DMT2 (incident-T2DM) de aquellos pacientes que no desarrollaron ¡a enfermedad durante ¡os cinco años de seguimiento con un AUO 0,8 después del análisis de validación cruzada, que es significativamente más alto que los procedimientos estándar actuales (HbA1c y FÍNDRÍSC mostraron AUC <0,88 en nuestra cohorte). Además, los pacientes con bajos niveles de expresión de componentes específicos de la maquinaria de splicing en PBMC, incluidos RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA 1, SRSF1 y/o SRSF5, tienen un mayor riesgo (QR> 4) de desarrollo de DMT2 en comparación con aquellos pacientes con altos niveles de PBMC de estos componentes y/o los que presentan niveles aumentados de SNRNP70.
Por tanto, otro aspecto de la invención se refiere a un método de obtención de datos útiles para diagnosticar, predecir o pronosticar el desarrollo de DMT2 en un individuo, de ahora en adelante primer método de la invención, que comprende los siguientes pasos: a) Determinación de los niveles del producto de expresión de los genes RNU2, RNU4,
RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA 1, SRSF1, SRSF y/o SNRNP70 o cualquiera de sus combinaciones, en una muestra biológica ex vivo de dicho individuo,
b) Comparar los niveles obtenidos en el paso anterior con los estándares.
En la presente invención "muestra biológica", tal como aquí se utiliza, se refiere, pero no se limita, a células, tejidos y/o fluidos biológicos de un organismo, obtenidos mediante cualquier método conocido por un experto en la materia; es decir, cualquiera seleccionada del grupo de fluidos corporales o células, o de un extracto celular o el sobrenadante del cultivo celular de dichas células, y/o biopsia líquida (sangre, suero, plasma, orina, ... ). Preferiblemente la muestra es un tejido.
El término “individuo”, tal y como se utiliza en la descripción, se refiere a animales, preferiblemente mamíferos, y más preferiblemente, humanos. El término “individuo” en esta memoria, es sinónimo de“paciente”, y no pretende ser limitativo en ningún aspecto, pudiendo ser éste de cualquier edad, sexo y condición física.
Los niveles de expresión de los genes van a dar un determinado perfil de expresión génica. El término "nivel", "nivel de expresión", también denominado "cantidad producto génico" se refiere al material bioquímico, ya sea ARN o proteína, resultado de la expresión de un gen. Algunas veces se usa una medida de la cantidad de producto génico para inferir qué tan activo es un gen. Se entiende por "perfil de expresión génica" el perfil génico obtenido tras la cuantificación del
ARNm y/o de proteína producida por los genes de interés o biomarcadores, es decir, por los genes empleados como marcadores biológicos en la presente invención, en una muestra biológica aislada. El perfil de expresión de los genes se realiza, preferiblemente, determinando el nivel de ARNm derivado de su transcripción, previa extracción del ARN total presente en la muestra biológica aislada, lo cual puede realizarse mediante protocolos conocidos en el estado de la técnica. La determinación del nivel de ARNm derivado de la transcripción de los genes empleados como marcadores biológicos en la presente invención, puede realizarse, por ejemplo, aunque sin limitarnos, mediante amplificación por reacción en cadena de la polimerasa (PCR), retrotranscripción en combinación con la reacción en cadena de la polimerasa (RT-PCR), RT- PCR cuantitativa (qPCR), retrotranscripción en combinación con la reacción en cadena de la ligasa (RT-LCR), o cualquier otro método de amplificación de ácidos nucleicos; análisis en serie de la expresión génica (SAGE, SuperSAGE); chips de ADN elaborados con oligonucleótidos depositados por cualquier mecanismo; microarrays de ADN elaborados con oligonucleótidos sintetizados in situ mediante fotolitografía o por cualquier otro mecanismo; hibridación in situ utilizando sondas específicas marcadas con cualquier método de mareaje; mediante geles de electroforesis; mediante transferencia a membrana e hibridación con una sonda específica; mediante resonancia magnética nuclear o cualquier otra técnica de diagnóstico por imagen utilizando nanopartículas paramagnéticas o cualquier otro tipo de nanopartículas detectables funcionalizadas con anticuerpos o por cualquier otro medio. El perfil de expresión génica también podría obtenerse mediante la detección y/o cuantificación de las proteínas producto de la traducción del ARNm derivado de la transcripción de los genes empleados como marcadores biológicos en la presente invención, mediante, por ejemplo, pero sin limitarnos, inmunodetección por western blot. La detección cuantitativa de la expresión de los genes empleados como marcadores biológicos en la presente invención puede realizarse más preferiblemente mediante PCR en tiempo real (RT-PCR o RTqPCR). La detección en tiempo real de los productos amplificados puede llevarse a cabo mediante la utilización de moléculas fluorescentes que se intercalan en el ADN de cadena doble o mediante hibridación con diferentes tipos de sondas.
Así pues, la detección de los niveles de proteínas o del nivel de expresión de los genes puede hacerse por cualquiera de las técnicas conocidas por el experto en la materia.
Los pasos (b) y/o (c), del método descrito anteriormente pueden ser total o parcialmente automatizados, por ejemplo, por medio de un equipo robótico sensor para la detección de la presencia en el paso (b) o la clasificación computarizada en el paso (c).
En una realización preferida de este aspecto de la invención, la detección del paso (b) se realiza mediante PCR, preferiblemente RT-PCR.
En el caso de que se detecte el nivel o los niveles de proteínas puede hacerse, al igual que en el caso de los genes, por cualquiera de las técnicas conocidas por el experto en la materia. Así,
en otra realización preferida de este aspecto de la invención, la detección de los niveles de expresión se realiza por una técnica inmunológica.
En una realización más preferida, las técnicas inmunológicas están basadas en reacciones de precipitación, de aglutinación, inmunomarcación, radioinmunoanálisis y técnicas radioinmunométricas, preferentemente ELISA (Enzime Linked ImmunoadSorbent Assay), o Western blot o en cualquiera de sus combinaciones.
Por tanto, otro aspecto de la invención se refiere a un método para diagnosticar, predecir o pronosticar el desarrollo de DMT2 en un individuo, de ahora en adelante segundo método de la invención, que comprende los pasos (a) y (b) del primer método de la invención, y además comprende:
(c) incluir a los individuos que presentan una menor expresión de los factores RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA 1, SRSF1 y/o SRSF5, o cualquiera de sus combinaciones, respecto a una muestra de referencia, en el grupo de individuos con mayor probabilidad de desarrollar DMT2.
(d) incluir a los individuos que presentan una mayor expresión del factor SNRNP70 respecto a una muestra de referencia, en el grupo de individuos con mayor probabilidad de desarrollar DMT2.
Una "muestra de referencia", como se usa aquí, significa una muestra obtenida de un grupo de sujetos sanos que no tiene un estado de enfermedad o fenotipo particular.
Los niveles de referencia adecuada expresión de los genes puede ser determinada mediante la medición de los niveles de expresión de dichos genes en varios temas adecuados, y esos niveles de referencia se puede ajustar a las poblaciones específicas (por ejemplo, un nivel de referencia puede estar relacionada con la edad, por lo que las comparaciones se puede hacer entre los niveles de expresión en las muestras de los sujetos de una cierta edad y niveles de referencia para una enfermedad particular, el fenotipo, o falta de ella en un determinado grupo de edad). En una realización preferida, la muestra de referencia se obtiene de varios sujetos sanos o pacientes sin historia previa de DMT2. El experto en la técnica apreciará que el tipo de muestra de referencia puede variar dependiendo del método específico a realizar.
El perfil de expresión de los genes en la muestra de referencia de preferencia puede ser generados a partir de una población de dos o más personas. La población, por ejemplo, pueden contener 3, 4, 5, 10, 15, 20, 30, 40, 50 o más personas. Además, el perfil de expresión de los genes en la muestra de referencia y en la muestra de la persona que va a ser diagnosticada de acuerdo con los métodos de la presente invención pueden ser generados a partir de la misma
persona, siempre que los perfiles sean analizados y el perfil de referencia son generados a partir de las muestras biológicas tomadas en diferentes momentos y se comparan entre sí. Por ejemplo, una muestra de un individuo puede obtener en el inicio de un período de estudio. Un perfil de marcador biológico de referencia de esta muestra se puede comparar con los perfiles de biomarcadores generados a partir de las muestras posteriores de la misma persona. En una realización preferida, la muestra de referencia es un conjunto de muestras de varios individuos.
Una vez que los niveles de expresión de los genes marcadores en relación con los valores de referencia para dichos genes se han determinado, es necesario identificar si existen alteraciones en la expresión de dichos genes (aumento o disminución de la expresión). La expresión de un gen se considera aumentada en una muestra de la materia objeto de estudio cuando los niveles de incremento con respecto a la muestra de referencia son al menos de un 5%, por lo menos 10%, por lo menos 15%, por lo menos el 20%, al menos un 25%, por lo menos 30%, por lo menos el 35%, por lo menos el 40%, por lo menos 45%, por lo menos el 50%, por lo menos el 55%, por lo menos el 60%, por menos por lo menos 65%, por lo menos el 70%, por lo menos el 75%, por lo menos el 80%, por lo menos el 85%, por lo menos el 90%, por lo menos el 95%, por lo menos 100%, por lo menos 1 10 %, por lo menos 120%, por lo menos 130%, por lo menos 140%, por lo menos 150%, o más. Del mismo modo, la expresión de un gen se considerada disminuida cuando sus niveles disminuyen con respecto a la muestra de referencia en al menos un 5%, por lo menos 10%, por lo menos 15%, por lo menos el 20%, por lo menos el 25%, al menos un 30%, por lo menos el 35%, por lo menos el 40%, por lo menos 45%, por lo menos el 50%, por lo menos el 55%, por lo menos el 60%), por lo menos el 65%, por lo menos 70%, por lo menos el 75%, por lo menos el 80%, por lo menos el 85%, por lo menos el 90%, por lo menos el 95%, por lo menos 100% (es decir, ausente).
KIT O DISPOSITIVO DE LA INVENCIÓN
Otro aspecto de la invención se refiere a un kit o dispositivo, de ahora en adelante kit o dispositivo de la invención, que comprende los elementos necesarios para detectar los niveles de expresión de RNU2, RNU4, RNU6, RNU12, RNU4ATAC, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, NOVA1, SRSF1, SRSF5 y/o SNRNP70, o cualquiera de sus combinaciones, y donde:
- los cebadores o primers son secuencias de polinucleótidos de entre 10 y 30 pares de bases, más preferiblemente de entre 15 y 25 pares de bases, aún más preferiblemente de entre 18 y 22 pares de bases, y aún mucho más preferiblemente de alrededor de 20 pares de bases, que presentan una identidad de al menos un 80%, más preferiblemente de al menos un 90%, aún más preferiblemente de al menos un 95%, aún mucho más preferiblemente de al menos un 98%, y particularmente de un 100%, con un fragmento de las secuencias complementarias a la SEQ ID N° 1 (RNU2), SEQ ID N°: 2 (RNU4), SEQ ID N° 3 ( RNU4ATAC ), SEQ ID N° 4 (RNU6), SEQ
TI
ID N° 5 ( RNU6ATAC ), SEQ ID N° 6 ( RNU12 ), SEQ ID N° 7 ( SNRNP200 ), SEQ ID N° 9 ( ESRP1 ), SEQ ID N° 10 ( SRSF1 ), SEQ ID N° 12 ( SRSF5 ), SEQ ID N° 14 ( NOVA1 ), y/o SEQ ID N° 16 ( SNRNF70 ),
- las sondas son secuencias de polinucleótidos de entre 80 y 1100 pares de bases, más preferiblemente de entre 100 y 1000 pares de bases, y aún más preferiblemente de entre 200 y 500 pares de bases, que presentan una identidad de al menos un 80%, más preferiblemente de al menos un 90%, aún más preferiblemente de al menos un 95%, aún mucho más preferiblemente de al menos un 98%, y particularmente de un 100%, con un fragmento de las secuencias complementarias a la SEQ ID N° 1 (RNU2), SEQ ID N°: 2 (RNU4), SEQ ID N° 3 (RNU4ATAC), SEQ ID N° 4 (RNU6), SEQ ID N° 5 ( RNU6ATAC ), SEQ ID N° 6 ( RNU12 ), SEQ ID N° 7 ( SNRNP200 ), SEQ ID N° 9 ( ESRP1 ), SEQ ID N° 10 ( SRSF1 ), SEQ ID N° 12 ( SRSF5 ), SEQ ID N° 14 ( NOVA1 ), y/o SEQ ID N° 16 ( SNRNF70 ),
- los anticuerpos son capaces de unirse específicamente a una región formada por cualquiera de las secuencias aminoacídicas SEQ ID N° 8 ( SNRNP200 ), SEQ ID N° 11 ( SRSF1 ), SEQ ID N° 13 ( SRSF5 ), SEQ ID N° 15 ( NOVA 1 ), y/o SEQ ID N° 17 ( SNRNF70 ),
En otra realización preferida de este aspecto de la invención, los cebadores, sondas o anticuerpos están modificados o marcados, por ejemplo, pero sin limitarnos, mediante un mareaje radiactivo o inmunológico. Así, preferiblemente, los oligonucleótidos presentan modificaciones en alguno de sus nucleótidos, como, por ejemplo, pero sin limitarnos a, nucleótidos que tengan alguno de sus átomos con un isótopo radiactivo, normalmente 32P o tritio, nucleótidos marcados inmunológicamente, como por ejemplo con una molécula de digoxigenina, y/o inmovilizadas en una membrana. Varias posibilidades son conocidas en el estado de la técnica.
AUTOMATIZACIÓN DEL MÉTODO DE LA INVENCIÓN IMPLEMENTÁNDOLO EN UN PROGRAMA DE ORDENADOR
Otro aspecto de la invención se refiere a un programa de ordenador que comprende instrucciones para realizar el procedimiento de acuerdo con cualquiera de los métodos de la invención.
En particular, la invención abarca programas de ordenador dispuestos sobre o dentro de una portadora. La portadora puede ser cualquier entidad o dispositivo capaz de soportar el programa. Como variante, la portadora podría ser un circuito integrado en el que va incluido el programa y que se haya adaptado para ejecutar, o para ser utilizado en la ejecución de los procesos correspondientes.
Por ejemplo, los programas podrían estar incorporados en un medio de almacenamiento, como una memoria ROM, una memoria CD ROM o una memoria ROM de semiconductor, una memoria USB, o un soporte de grabación magnética, por ejemplo, un disco flexible o un disco duro. Alternativamente, los programas podrían estar soportados en una señal portadora transmisible; por ejemplo, podría tratarse de una señal eléctrica u óptica que podría transportarse a través de cable eléctrico u óptico, por radio o por cualesquiera otros medios.
La invención se extiende también a programas de ordenador adaptados para que cualquier medio de procesamiento pueda llevar a la práctica los métodos de la invención. Los programas de ordenador también abarcan aplicaciones en la nube basadas en dicho procedimiento.
Otros aspectos de la invención se refieren al medio de almacenamiento legible y a la señal transmisible que comprende instrucciones de programa necesarias para la ejecución del método de invención por un ordenador.
EJEMPLOS DE LA INVENCIÓN.
Este estudio se ha desarrollado en el contexto del estudio CORDIOPREV, que es un ensayo prospectivo, aieatorizado, controlado y de intervención en el que un total de 1002 pacientes que han sufrido un evento cardiovascular y sin eventos clínicos en ios últimos seis meses son seguidos anualmente para evaluar el posible desarrollo de DMT2. Los criterios de inclusión y exclusión y los factores de riesgo cardiovascular de ios pacientes se han publicado previamente (Delgado-Lista, CORonary Diet íntervention with Olive oil and cardiovascular PREVention 562 study (the CORDIOPREV study): Rationaíe, ethods, and baseline characteristics: A cíinicaí tria! comparing the efficacy of a Mediterranean diet rich in olive oil versus a low-fat diet on cardiovascular disease in coronary patients. Am Heart J. 2016.). En concreto, se seleccionaron los pacientes de 20 a 75 años de edad con enfermedad coronaria crónica establecida pero sin eventos clínicos en ios últimos seis meses, sin otras enfermedades graves y con una esperanza de vida de ai menos cinco años, con la intención de reaiizar un estudio de seguimiento a iargo plazo. Además del tratamiento convencional para la enfermedad coronaria, los sujetos fueron aieaforizados en dos modelos dietéticos diferentes (dietas mediterráneas o bajas en grasas). Específicamente, 462 de esos pacientes no presentaron DMT2 (en el momento de la inclusión en el estudio) y, de ellos, 107 pacientes desarroilaron DMT2 ( incident~T2DM) después de un seguimiento medio de 60 meses, según todos ios criterios de diagnóstico de la Asociación Americana de Diabetes (ADA), evaluados sobre la base de las pruebas de tolerancia a la glucosa realizadas cada año. Se diagnosticó DMT2 si uno o más de ios siguientes criterios estaban presentes en los sujetos del estudio:
concentración de glucosa en plasma en ayunas (FPG) >126 mg / di,
glucosa en ayunas alterada (IFG);
FPG >200 mg / di después de 2 h de prueba oral de glucosa (OGTT),
Tolerancia a la glucosa alterada (IGT);
Hemoglobina glucosilada (HbA1 c) >8.5%.
Específicamente, entre los 107 pacientes que desarrollaron DMT2 ( inddent-T2DM ), 43 sujetos fueron diagnosticados durante el primer año de seguimiento, 24 durante el segundo año, 11 durante el tercer año, 19 durante el cuarto año y 10 durante el quinto año.
Los 355 sujetos restantes no desarrollaron DMT2 durante el periodo de estudio. Todos los casos incidentes de DMT2 (n = 107) se incluyeron junto con 108 controles seleccionados y seleccionados ai azar, que no desarrollaron DMT2 durante el seguimiento ( non-T2DM)
La selección aleatoria de los sujetos no DMT2 se realizó mediante el maestreo estratificado computacionai de los 462 sujetos non-T2DM del estudio CORDIOPREV de acuerdo con las siguientes variables clínicas, antropométricas y bioquímicas: dieta, edad, sexo, glucemia en ayunas, índice de masa corporal, Colesteroi LDL y colesterol HDL. Para implementar este tipo de muestreo, la población objetivo se dividió primero en estratos separados y luego, las muestras se seleccionaron al azar dentro de cada estrato mediante un muestreo automático simple utilizando el software R.
MATERIALES Y METODOS
Para determinar dinámicamente el estado metabólico del paciente se implementaron en todos los pacientes:
La prueba de tolerancia oral a ia glucosa (OGTT), (75 g de dextrosa monohidrato en 250 mi de agua, NUTER. TEC GLUCOSA, Subra, Toulouse, Francia) a las 8:00 am, y se recogieron muestras de plasma a 0, 30, 60, 90 y 120 min para determinar ia glucosa en plasma y niveles de insulina;
y las pruebas de comidas ricas en grasa, a las 8:00 am se realizó una prueba de comida rica en grasa (0.7 g de grasa y 5 mg de colesteroi por kg de peso corporal con 12% de ácidos grasos saturados, 10% de ácidos grasos poiiinsaturados, 43% de ácidos grasos monoinsaturados, 10% de proteínas y 25% de carbohidratos). Se recogieron muestras de sangre antes de ia comida y después de 4 b.
Para aislar PBMCs se recolectó la sangre venosa de los pacientes (12 h en ayunas durante ia noche) en tubos que contenían EDTA durante la prueba de comida rica en grasas, a las 0 y 4 h.
Se aisló el ARN total de PBMC utilizando el kit de ARN Dírect-zol (Zymo Research, írvine, CA, BE. UU.). Se determinó la cantidad de ARN recuperado y su calidad se evaluó mediante el espectrofotómetro NanoDrop2QG0 (Thermo Fisher) Específicamente, todas las muestras de ARN pasaron ios controles de calidad, siendo las relaciones de absorbencia 260/280 y 230/280 entre 1.8-2.0. Un pg de ARN se transcribió de forma inversa a ADNc utilizando cebadores hexaméricos aleatorios con el kit First Sirand Synthesis (Thermo Fisher).
Se extrajeron PBMC de n = 7 sujetos sanos y luego se cultivaron en medio RPMI sin suero (Lonza). Se sembraron 500,000 células / pocilio de cada sujeto en placas de 12 pocilios de fijación ultra baja (Corning Costar, Sigma) y se trataron por duplicado con un 10% de ayuno de línea de base y suero postprandial derivado de pacientes de control e incident-T2DM. Después de los períodos de incubación (4 y 24 h), las PBMC se centrifugaron y el ARN se extrajo y se aisló utilizando el reactivo TRI (Sigma).
Para determinar la expresión de 48 transcripciones en 48 muestras, simultáneamente, se implemento un Array Dinámico 48.48 basado en tecnología microfluídíca (Fluidigm, San Francisco, CA, EE UU.). Se diseñaron específicamente cebadores específicos para transcritos humanos que incluyen componentes del espliceosoma principal (n = 13) y secundario (n = 4), ios SF asociados (n = 28) y tres genes housekeeping (Tabla 1).
El panel de componentes de la maquinaria de spiicing se seleccionó sobre la base de dos criterios principales:
1. la relevancia de ios componentes del spíeciosoma dado en el proceso de spiicing (como los componentes del núcleo del spíeciosoma) y
2. la implicación demostrada en la regulación del spiicing
Las variantes ya han demostrado estar implicadas en la fisíopatoíogía de la DMT2 (como es el caso de los 28 factores de spiicing seleccionados en este estudio).
Tabla 1, Primers específicos para ios transcritos humanos medidos, incluyendo componentes de los spiiceosomas mayor y menor factores de spilcing asociados y tres genes housekeeping (hk) que fueron específicamente diseñados y utilizados en un array de qPCR basado en tecnoiogía microfluídica. Los números de acceso de NCBI, secuencias de los primers, tamaño de producto esperado y posición nucleotídica de ios genes estudiados han sido incluidos.
Los cebadores se seleccionaron utilizando el software Pri erS con parámetros de selección establecidos para identificar pares de cebadores que: (1) abarcan un intrón (cuando es posible), (2) difieren en no más de 1°C en la temperatura de recocido, (3) tienen una longitud de al menos 20 pb, (4) tienen un contenido de GC entre 45 y 55%, pero (5) excluyen ios cebadores que pueden formar dímeros de cebador. Las secuencias de los cebadores seleccionados se utilizaron en ias búsquedas de BLAST (NCBI) para verificar la posible homología con secuencias distintas al objetivo designado. La seiección inicial de la eficacia del cebador utilizando la detección en
tiempo real se realizó amplificando diluciones de 2 veces de productos de RT, donde la eficiencia óptima se demostró mediante una diferencia de un umbral de ciclo entre diluciones y un pico de fusión claro seguido de una disociación graduada dependiente de la temperatura a Verifique que solo un producto fue amplificado. El perfil de termociclado consistió en: 1) 95°C durante 1 minuto; 2) 35 ciclos de desnaturalización (95°C durante 5 segundos) y recocido / extensión (60°C durante 20 segundos); y 3) un último ciclo en el que los productos de la PCR final se sometieron a una disociación graduada dependiente de la temperatura (60°C a 95°C, aumentando 1°C / 3 segundos). Los productos de la PCR se purificaron en la columna (FAVGRGEN Biotech, Viena, Austria) y se secuenciaron para confirmar la especificidad del objetivo. Después de la confirmación de la eficacia y especificidad del cebador, se determinó la concentración de productos purificados y los productos de PCR se diluyeron en serie para obtener estándares que contenían 1 , 1G\ 1G2, 103, 1G4, 105 y 1 Q6 copias de la plantilla sintética. Los estándares luego se amplificaron mediante qPCR, y las curvas estándar se generaron utilizando el software Stratagene Mx3000p. La pendiente de una curva estándar para cada plantilla examinada fue de aproximadamente -3.33 (R2~1), ¡o que indica que la eficiencia de la amplificación de nuestros cebadores fue del 100%, lo que significa que se copiaron todas las plantillas de cada ciclo.
Las preamplificaciones, el tratamiento con exonucleasas y la matriz dinámica de qPCR basada en tecnología microfluídica se implementaron siguiendo las instrucciones del fabricante utilizando el sistema Bíomark y el software de análisis de PCR en tiempo real (Fluidigm). Finalmente, en el caso de las muestras de PBMC de pacientes no T2DM e incident~T2DM: el nivel de expresión de cada transcripción se ajustó mediante un factor de normalización (NF) obtenido a partir de los niveles de expresión de dos genes de mantenimiento diferentes [Beta-actina (ACTB) y gliceraldehído-3-fosfato desbidrogenasa (GAPDH)] utilizando Genorm 3.3 mientras que ACTB fue el gen de mantenimiento utilizado para normalizar el nivel de expresión de cada transcripción en el experimento in vitro.
RESULTADOS
La expresión basal de los componentes de la maquinaria de splicing es diferente entre pacientes incident-T2DM y non-T2DM.
El patrón de expresión de diferentes componentes del spliceosoma y SFs se encontró alterada en PBMCs de pacientes incident-T2DM comparado con pacientes non-T2DM (Figura 1A). Así, las PBMCs de pacientes que desarrollaron DMT2 ( incident-T2DM) mostraron niveles de expresión significativamente menores de RNU2, RNU4, RNU6ATAC, SNRNP200, ESRP1, SRSF1 y SRSF5 (Figura 1 B).
Además, la expresión de algunos componentes del spliceosoma y SFs se encontró dinámicamente y diferencialmente regulada en PBMCs de estos individuos durante un test de sobrecarga de lípidos (una situación de estrés que estima la flexibilidad metabólica (Figura suplementaria 1). Así, algunos componentes del spliceosoma y SFs se alteraron selectivamente durante el post-prandio en un grupo específico de pacientes (p.e. RNU12 se incrementó en pacientes non-T2DM, mientras que SNRNP70 se incrementó en incident-T2DM), lo que dio lugar a la aparición de cambios significativos (Figura suplementaria 1 A). Además, muchos de los cambios observados en el ayuno se mantuvieron en el post-prandio ( RNU2 , RNU4, RNU6ATAC, ESRP1 y SRSF1) aunque otros no se mantuvieron ( SNRNP200 y SRSF5) (Figura suplementaria 1 B y C).
Así, la comparación entre los perfiles de expresión de las PBMCs de los pacientes incident-T2DM y non-T2DM en el estado post-prandial reveló una drástica desregulación de varios componentes del spliceosoma y SFs (Figura 2A). Específicamente, los niveles de expresión de RNU2, RNU4, RNU6, RNU4ATAC, RNU6ATAC, RNU12, NOVA1, ESRP1 y SRSF1 fueron menores, mientras que los de SNRNP70 fueron mayores en PBMCs de pacientes incident-T2DM vs. non-T2DM durante la fase post-prandial (Figura 2B).
La expresión de algunos componentes del spliceosoma y SFs está asociado con el riesgo de desarrollar DMT2.
La posible asociación entre la expresión de los componentes del spliceosoma y SFs con el riesgo de desarrollar DMT2 se analizó mediante estudios de regresión logística (odds ratio, OR). Este análisis reveló que bajos niveles básales de expresión en ayuno de RNU4 y RNU2, así como bajos niveles básales de expresión en post-prandio de RNU4ATAC, NOVA 1, RNU6ATAC, RNU6, RNU12, SRSF1 y RNU4 están fuertemente asociados con el riesgo relativo de desarrollar DMT2, una vez ajustado por edad, genero, dieta, IMC, HbA1c, c-HDL y TG (Tabla 2).
Las alteraciones en la expresión de los componentes de la maquinaria de splicing pueden predecir el desarrollo de DMT2.
Las huellas moleculares determinadas por los niveles de expresión de los componentes del spliceosoma y SFs durante el ayuno, el post-prandio o su combinación generaron curvas ROC para la predicción del desarrollo de DMT2 con AUOO.85 usando diferentes algoritmos (Table 3 y tabla suplementaria 1), las cuales fueron validadas por métodos de validación cruzada (AUCs entre 0.65-0.81). En concreto, la huella molecular formada por los niveles de expresión en ayuno y post-prandio de los componentes del spliceosoma y SFs presentó una AUC=0.813
(TPR=0.802, TNR=0.689) tras la validación cruzada (Figura 3A - línea verde), la cual fue significativamente mejor que la capacidad predictiva de los predictores de DMT2 clínicamente utilizados en la actualidad HbA1 c y FINDRISK (Figura 3A), tal y como demuestra el test de DeLong de comparación de las AUCs (p<0.05 vs. HbA1c o FINDRISC).
Además, un subgrupo de estos componentes de la maquinaria y SFs seleccionados computacionalmente (mediante feature ranking analysis) muestra incluso una mayor capacidad de predicción comparada con la del conjunto completo de biomarcadores. Así, un modelo predictivo comprendido por los niveles en ayunas de RNU4ATAC, SRSF3, SRSF6, SRSF10, TRA2B, PTBP1, SF3B1 y los niveles post-prandiales de RNU4, RNU6, RNU4ATAC, RAVER1, NOVA1 y PRPF8 presenta un AUC=0.881 (TPR=0.801 , TNR=0.700) tras la validación cruzada (Figura 3B - línea verde), lo cual fue también confirmado por diferentes modelos y mejoró claramente la capacidad predictiva de los predictores de DMT2 clínicamente utilizados en la actualidad HbA1 c y FINDRISK (p<0.001 en el test de DeLong vs. HbA1 c o FINDRISC) (Figura 3B).
Finalmente, la capacidad de las alteraciones de la maquinaria de splicing de predecir el desarrollo de DMT2 es incluso superior cuando se trata de predecir el desarrollo de DMT2 durante los dos primeros años de seguimiento (Figura 3C y tabla suplementaria 1).
El suero de pacientes incident-T2DM alteró la expresión de componentes del spliceosoma en PBMCs de pacientes sanos
Incubación durante 24h con suero basal en ayuno de pacientes incident-T2DM redujo la expresión de RNU4 comparado con el suero de los pacientes control en PBMCs de individuos sanos (Figura 4a); mientras que la expresión de otros componentes del spliceosoma y SFs no fue alterada significativamente (Figura suplementaria 2). Además, la incubación durante 4h con suero post-prandial de pacientes incident-T2DM redujo la expresión de RNU4 y RNU12 comparado con el suero de los pacientes control en PBMCs de individuos sanos (Figura 4b)
Tabla 2. Asociación entre la expresión de los componentes de la maquinaria de splicing en PBMCs durante el ayuno o postprandio y el riesgo relativo de desarrollo de DMT2 mediante análisis de regresión logística del riesgo relativo (odds ratio, OR). Los sujetos fueron categorizados en terciles de acuerdo con el nivel de expresión de cada componente del spliceosoma o factor de splicing del siguiente modo: niveles de expresión bajos (T1), niveles de expresión medios (T2) y niveles de expresión altos (T3), y el riesgo relativo (OR) se estimó entre los tercies T1 y T3 para cada uno de los elementos de interés. Cl. intervalo de confianza; p- value. p valor
Tabla 3. Capacidad de la huella molecular compuesta por los niveles de expresión de los componentes del spliceosoma y factores de splicing en ayunas y/o postprandio como modelos predictivos de DMT2 mediante regresión logística y análisis de curva ROC. Se construyeron modelos de regresión logística considerando los niveles básales de expresión en el ayuno y/o postprandio de los elementos medidos, solos o en combinación con los predictores clásicos de DMT2 [HbA1c (hemoglobina glicosilada) y FINDRISK] AUC\ Área bajo la curva p- value. p valor.
Tabla suplementaria 1. Capacidad de la huella molecu ar compuesta por los niveles de expresión de los componentes del spliceosoma y factores de splicing (SFs) en ayunas y/o postprandio como modelos predictivos de DMT2 utilizando diferentes algoritmos computacionales. Se aplicaron los algoritmos Regresión logística, Random Forest y C4.5 utilizando lenguaje R para determinar la capacidad de la huella molecular compuesta por los niveles de expresión de la maquinaria de splicing en ayuno y/o postprandio para predecir el desarrollo de DMT2 utilizando la cohorte completa de pacientes o únicamente aquellos que desarrollaron diabetes durante los dos primeros años de seguimiento. Estos análisis (training) fueron confirmados mediante análisis de validación cruzada (CV). Las áreas bajo la curva de training y CV están indicadas. HbA1c: hemoglobina glicosilada; SFs: factores de splicing.
Claims
1.- Uso del producto de expresión de los genes RNU2, RNU4, RNU4ATAC, RNU6, RNU6ATAC, RNU12, SNRNP200, ESRP1, SRSF1 SRSF5, SNRNP70 y/o NOVA1 para predecir o pronosticar el desarrollo de DMT2 en un individuo.
2 - Un método in vitro de obtención de obtención de datos útiles para predecir o pronosticar el desarrollo de Diabetes Mellitus tipo 2 (DMT2) en un individuo, que comprende:
a) medir en una muestra biológica aislada de dicho individuo los niveles del producto de expresión de los genes RNU2, RNU4, RNU4ATAC, RNU6, RNU6ATAC, RNU12, SNRNP200, ESRP1, SRSF1 SRSF5, SNRNP70 /o NOVA1, o cualquiera de sus combinaciones, según se define en las reivindicaciones 1-2, y b) comparar los niveles obtenidos en el paso anterior con los estándares,
3.- Un método in vitro para predecir o pronosticar el desarrollo de Diabetes Mellitus tipo 2 (DMT2) en un individuo, que comprende los pasos (a) y (b) según la reivindicación 3, y además comprende incluir en el grupo de individuos con mayor riesgo de desarrollo de DMT2 aquellos pacientes con bajos niveles de los factores de splicing RNU2, RNU4, RNU4ATAC, RNU6, RNU6ATAC, RNU12, SNRNP200, ESRP1, SRSF1 SRSF5 y/o NOVA1 y/o aquellos pacientes con altos niveles de SNRNP70, en comparación con una muestra de referencia.
4 - El método según cualquiera de las reivindicaciones 2-3 donde la muestra biológica es sangre periférica.
5.- El método según cualquiera de las reivindicaciones 2-4, donde los niveles de los componentes del spliceosoma o factores de splicing concretos se obtienen mediante cualquier técnica de expresión génica, como métodos analíticos para examinar niveles de expresión del ARNm.
6.- El método según la reivindicación anterior donde la detección del producto de expresión de los genes se realiza mediante RT-PCR y/o PCR cuantitativa (qPCR).
7.- El método según la reivindicación anterior donde el producto de expresión son proteínas, preferiblemente SNRNP200, SRSF1, SRSF5, NOVA 1 y/o SNRNP70, o cualquiera de sus combinaciones.
8.- El método según la reivindicación anterior donde las proteínas se identifican por un método inmunohistoquímico, preferiblemente seleccionado de entre Western Blot, espectrometría de masa, fluorescencia, absorción y/o luminiscencia, y más preferiblemente se utiliza Western Blot.
9.- El método según la reivindicación anterior donde al individuo se le incluye en el grupo de individuos con mayor probabilidad de desarrollar o tener DMT2, cuando estos componentes de maquinaria de splicing específicos, incluyendo RNU2, RNU4, RNU4ATAC, RNU6, RNU6ATAC, RNU12, SNRNP200, ESRP1, SRSF1 SRSF5 y/o NOVA1, o cualquiera de sus combinaciones, presentan bajos niveles de expresión por debajo del tercil inferior de expresión, con un AUC de 0.902 (sensibilidad del 85% y especificidad del 82%).
10. -Un kit o dispositivo que comprende los elementos necesarios para cuantificar los niveles de expresión de los genes, y donde:
- los cebadores o primers son secuencias de polinucleótidos de entre 10 y 30 pares de bases, más preferiblemente de entre 15 y 25 pares de bases, aún más preferiblemente de entre 18 y 22 pares de bases, y aún mucho más preferiblemente de alrededor de 20 pares de bases, que presentan una identidad de al menos un 80%, más preferiblemente de al menos un 90%, aún más preferiblemente de al menos un 95%, aún mucho más preferiblemente de al menos un 98%, y particularmente de un 100%, con un fragmento de las secuencias complementarias a la SEQ ID N° 1 ( RNU2 ), SEQ ID N°: 2 ( RNU4 ), SEQ ID N° 3 ( RNU4ATAC ), SEQ ID N° 4 (RNU6), SEQ ID N° 5 ( RNU6ATAC ), SEQ ID N° 6 ( RNU12 ), SEQ ID N° 7 ( SNRNP200 ), SEQ ID N° 9 ( ESRP1 ), SEQ ID N° 10 ( SRSF1 ), SEQ ID N° 12 ( SRSF5 ), SEQ ID N° 14 ( NOVA1 ), y/o SEQ ID N° 16 ( SNRNF70 ),
- las sondas son secuencias de polinucleótidos de entre 80 y 1100 pares de bases, más preferiblemente de entre 100 y 1000 pares de bases, y aún más preferiblemente de entre 200 y 500 pares de bases, que presentan una identidad de al menos un 80%, más preferiblemente de al menos un 90%, aún más preferiblemente de al menos un 95%, aún mucho más preferiblemente de al menos un 98%, y particularmente de un 100%, con un fragmento de las secuencias complementarias a la SEQ ID N° 1 ( RNU2 ), SEQ ID N°: 2 ( RNU4 ), SEQ ID N° 3 ( RNU4ATAC ), SEQ ID N° 4 (RNU6), SEQ ID N° 5 ( RNU6ATAC ), SEQ ID N° 6 ( RNU12 ), SEQ ID N° 7 ( SNRNP200 ), SEQ ID N° 9 ( ESRP1 ), SEQ ID N° 10 ( SRSF1 ), SEQ ID N° 12 ( SRSF5 ), SEQ ID N° 14 ( NOVA1 ), y/o SEQ ID N° 16 ( SNRNF70 ),
- los anticuerpos son capaces de unirse específicamente a una región formada por cualquiera de las secuencias aminoacídicas SEQ ID N° 8 ( SNRNP200 ), SEQ ID N° 11 ( SRSF1 ), SEQ ID N° 13 ( SRSF5 ), SEQ ID N° 15 ( NOVA1 ), y/o SEQ ID N° 17 ( SNRNF70 ).
11.- El uso del kit o dispositivo según la reivindicación anterior para predecir o pronosticar el desarrollo de Diabetes Mellitus tipo 2 (DMT2) en un individuo.
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