WO2020032027A1 - アルツハイマー病の判定薬および判定方法 - Google Patents

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WO2020032027A1
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alzheimer
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篤志 大野
康博 寺西
雅典 楠本
雅一 橋本
昌次 柏原
まき 橋本
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大日本住友製薬株式会社
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    • G01N2800/00Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/56Staging of a disease; Further complications associated with the disease

Definitions

  • the present invention relates to a drug for determining Alzheimer's disease, a method for determining Alzheimer's disease, a method for treating Alzheimer's disease, a method for selecting a candidate substance for a drug for treating Alzheimer's disease, a novel anti-S38AA antibody, and the like.
  • Alzheimer's disease begins with impaired short-term memory, mild learning impairment, and is associated with higher brain dysfunction, especially visuospatial agnosia, mental apology, and ataxia, eventually leading to movement disorders and so-called personality destruction. With progressive dementia, no curative treatment is currently found. It is predicted that the number of Alzheimer's disease patients will increase to 2.4 million by 2040 in the world, and the importance of root treatment or early diagnosis is increasing. The progression is considered to be several years to more than 10 years, unlike the vasculopathy dementia often observed in Japan. Many patients with familial Alzheimer's disease due to a genetic mutation, which is one of the Alzheimer's diseases, rapidly deteriorate in a few years, and the onset age is as early as the 30s to 40s. Is the feature. Age, family history, genotype, hypertension, diabetes, smoking, etc. are known as risk factors for Alzheimer's disease other than gene mutation.
  • Alzheimer's disease pathological changes characteristic of Alzheimer's disease include the accumulation of amyloid plaque, which is mainly composed of amyloid beta, outside the cell, and the accumulation of highly phosphorylated tau protein in nerve cells. ing.
  • amyloid plaque which is mainly composed of amyloid beta
  • CA1 the accumulation of phosphorylated tau in the hippocampus of patients with early-stage Alzheimer's disease, especially in the area called CA1
  • it is strongly and early affected by Alzheimer's disease both spatially and temporally, that is, it shows vulnerability (Non-Patent Document 2).
  • Purkinje cells in the cerebellum are considered to be most resistant to Alzheimer's disease.
  • Alzheimer's disease is expected to increase rapidly at the age of 75, and early detection and early treatment are important to prevent the progress of the disease state by symptomatic drug therapy.
  • the search for diagnostic markers for early detection of Alzheimer's disease has been made energetically, and amyloid beta (A ⁇ 40, A ⁇ 42), phosphorylated tau protein in blood or cerebrospinal fluid Measurements are considered the most influential.
  • these markers are used alone or in combination of these markers (for example, the ratio of A ⁇ 40 to A ⁇ 42), it is difficult to clearly identify future Alzheimer's disease, that is, a preliminary group of Alzheimer's disease.
  • S38AA particularly its extracellular domain
  • S38AA has been reported as a diagnostic marker for Alzheimer's disease (Patent Document 1).
  • Patent Document 1 since early detection and early treatment of Alzheimer's disease are important, there is a need for a method that can determine the onset of Alzheimer's disease and the Alzheimer's disease preliminary group with even higher sensitivity.
  • the object of the present invention is to provide a drug for determining Alzheimer's disease, a method for determining Alzheimer's disease, a method for treating Alzheimer's disease, a method for selecting a candidate substance for a drug for treating Alzheimer's disease, and the like.
  • S38AA fragment is known to increase in cerebrospinal fluid and plasma of Alzheimer's disease patients (hereinafter sometimes referred to as “AD patients”)
  • AD patients Alzheimer's disease patients
  • S38AA fragments are highly correlated with Alzheimer's disease.
  • Two types of S38AA fragments (S38AA @ short @ fragment (hereinafter sometimes abbreviated as “short @ fragment”) and S38AA @ long @ fragment (hereinafter sometimes abbreviated as "long @ fragment”) have been found.
  • short @ fragment hereinafter sometimes abbreviated as "short @ fragment”
  • long @ fragment Two types of S38AA fragments
  • the present inventors have found that S38AA short fragment has extremely high reliability as an index for determining the onset of Alzheimer's disease or a spare group and determining the degree of progression of the disease with high accuracy, The present invention has been completed.
  • a polypeptide consisting of any of the following amino acid sequences: (1) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1; or (2) an amino acid sequence in which one to several amino acids have been substituted, deleted, added or inserted in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • a kit comprising the antibody according to [2].
  • the method for detecting the polypeptide according to [1] comprising a step of bringing the test sample into contact with the antibody according to [2].
  • a drug for determining Alzheimer's disease comprising a single or plural types of anti-S38AA antibodies capable of measuring the amount of the polypeptide according to [1].
  • the test animal may be currently suffering from Alzheimer's disease or may be suffering from Alzheimer's disease in the future Determining that The method according to [11], comprising: [13] The following steps (i) to (iii): (I) a step of quantifying the polypeptide according to [1] in a sample collected from a test animal suffering from or possibly suffering from Alzheimer's disease; (Ii) comparing the amount of the polypeptide quantified in (i) with the amount of the polypeptide in a sample previously collected from the test animal (hereinafter, referred to as a control value); and (iii) ( Based on the result of ii), when the amount of the polypeptide quantified in (i) is larger than the control value, it is determined that Alzheimer's disease in the test animal is progressing, and when the amount is smaller than the control value.
  • a method for assisting the determination of the degree of progression of Alzheimer's disease the method further comprising the step of determining that the Alzheimer's disease of the subject animal has been improved.
  • the sample is blood, cerebrospinal fluid, saliva, tears or urine.
  • a method for treating or preventing Alzheimer's disease which comprises the step of administering a therapeutic or prophylactic agent for Alzheimer's disease to a test animal determined to be likely to suffer from Alzheimer's disease in the future.
  • a step of determining that the Alzheimer's disease of the test animal has been improved (Iv) a step of selecting a therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease based on the determination result of (iii), and (v) a step of administering the therapeutic drug for Alzheimer's disease selected in (iv) to a subject animal, Dosing method for treating or preventing Alzheimer's disease.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease is selected from the group consisting of a cholinesterase inhibitor, an NMDA receptor antagonist, an amyloid ⁇ remover and an accumulation inhibitor, and a tau protein remover and an accumulation inhibitor, [17] or [ 18].
  • a therapeutic drug for Alzheimer's disease used for a patient whose progress of Alzheimer's disease is determined in the following steps (i) to (iv): (I) a step of quantifying the polypeptide according to [1] in a sample collected from a test animal having or possibly having Alzheimer's disease; (Ii) comparing the amount of the polypeptide quantified in (i) with the amount of the polypeptide in a sample previously collected from the test animal (hereinafter, referred to as a control value); (Iii) Based on the results of (ii), when the amount of the polypeptide quantified in (i) is larger than a control value, it is determined that Alzheimer's disease in the test animal is progressing, and the control value A step of determining that the Alzheimer's disease of
  • An agent that reduces the amount of the polypeptide according to [1] in the body of an Alzheimer's disease patient or a person who may have Alzheimer's disease, or an Alzheimer's disease or Alzheimer's disease An agent for treating or preventing Alzheimer's disease, which comprises, as an active ingredient, an agent that inhibits production of the polypeptide in a living body of a subject.
  • the test substance reduces the amount of the polypeptide according to [1] in the body of an Alzheimer's disease patient or a person who may have Alzheimer's disease, or reduces the amount of an Alzheimer's disease patient or Alzheimer's disease.
  • an antibody that recognizes the polypeptide of SEQ ID NO: 1 or 2 The amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 20, or Has at least 95% homology to number 22;
  • the amino acid sequence of the light chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 21, or An antibody having at least 95% homology to No.
  • kits comprising the antibody of [24] or [25].
  • the kit of [26] further comprising the polypeptide of SEQ ID NO: 1.
  • a method for detecting the polypeptide of SEQ ID NO: 1, comprising a step of contacting the test sample with the antibody according to [24] or [25].
  • the kit of [26] or [27] which is used for determining Alzheimer's disease.
  • a drug for determining Alzheimer's disease comprising the antibody according to [24] or [25], wherein the amount of the polypeptide of SEQ ID NO: 1 can be measured.
  • the animal is currently suffering from Alzheimer's disease, wherein the polypeptide of SEQ ID NO: 1 in a sample collected from a test animal is detected using the antibody according to [24] or [25]. For determining the likelihood of being affected or having Alzheimer's disease in the future.
  • Determining the progress of Alzheimer's disease in the test animal [34] The method of any one of [31] to [33], wherein the test animal is a human. [35] The method according to any one of [31] to [34], wherein the sample is blood, cerebrospinal fluid, saliva, tears, or urine. [36] The method of any one of [31] to [35], further comprising detecting one or more other Alzheimer's disease diagnostic markers.
  • a method for treating Alzheimer's disease which comprises administering a therapeutic agent for Alzheimer's disease to a patient whose degree of progression of Alzheimer's disease is determined, comprising the steps of: [38] an agent for reducing the amount of the polypeptide of SEQ ID NO: 1 in a living body of an Alzheimer's disease patient or a person who is susceptible to Alzheimer's disease diagnosed using the antibody of [24] or [25];
  • a method for treating or preventing Alzheimer's disease which comprises, as an active ingredient, an agent that inhibits the production of the polypeptide in the body of the Alzheimer's disease patient or a person who may have Alzheimer's disease.
  • the test substance reduces the amount of the polypeptide described in SEQ ID NO: 1 in the body of an Alzheimer's disease patient or a person who may have Alzheimer's disease, or reduces the amount of an Alzheimer's disease patient or Alzheimer's disease.
  • [Item 1] A polypeptide consisting of any of the following amino acid sequences: (1) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1, or (2) an amino acid sequence in which one to several amino acids have been substituted, deleted, added or inserted in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • the polypeptide according to Item 1 consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • the polypeptide according to Item 3 A nucleic acid encoding the polypeptide according to Item 1 or 2.
  • the antibody of Item 4 which further recognizes the polypeptide of SEQ ID NO: 2.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 20, or at least 95% homology to SEQ ID NO: 22, and the amino acid sequence of the light chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 13, Item 6.
  • the antibody according to Item 4 or 5 having at least 95% homology with SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 17, SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 21, or SEQ ID NO: 23.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 20, or at least 99% homology with SEQ ID NO: 22, and the amino acid sequence of the light chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 13, Item 7.
  • the amino acid sequence of the heavy chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 4, SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 8, SEQ ID NO: 10, SEQ ID NO: 12, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 16, SEQ ID NO: 18, SEQ ID NO: 20, or SEQ ID NO: 22, and the amino acid sequence of the light chain variable region of the antibody is SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 7, SEQ ID NO: 9, SEQ ID NO: 11, SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 17, Item 7.
  • the antibody according to any one of Items 4 to 6, which is SEQ ID NO: 19, SEQ ID NO: 21, or SEQ ID NO: 23.
  • [Claim 9] (1) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 4 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 5, (2) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 6 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 7, (3) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 8 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 9, (4) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 10 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 11, (5) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 12 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 13, (6) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 14 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 15, (7) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 16 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 17, (8) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 18 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 19, (9) an
  • a kit comprising the antibody according to any one of items 4 to 9.
  • the kit according to item 11 further comprising the polypeptide according to item 1 or 2.
  • the kit according to Item 11 or 12 which is used for determining Alzheimer's disease.
  • a drug for determining Alzheimer's disease comprising one or more kinds of anti-S38AA antibodies capable of measuring the amount of the polypeptide according to item 1 or 2.
  • the method according to Item 17 or 18, comprising: [Item 20] The method according to Item 19, wherein the amount of the polypeptide quantified in (i) is at least 1.1 times the control value.
  • the method according to Item 17 or 18, comprising: [Item 22] The method according to Item 21, wherein the cutoff value is 45 to 75 units. [Item 23] The method according to Item 21, wherein the cutoff value is 45 to 75 ng / mL. [Item 24] The method according to any one of Items 17 to 23, wherein the subject animal is a human. [Item 25] The method according to any one of Items 17 to 24, wherein the sample is blood, cerebrospinal fluid, saliva, tears or urine. [Item 26] The method according to any one of Items 17 to 25, further comprising detecting one or more other diagnostic markers for Alzheimer's disease.
  • [Item 27] A method for determining the degree of progression of Alzheimer's disease, comprising detecting the polypeptide according to Item 1 or 2 in a sample collected from a test animal.
  • [Item 28] The degree of progression of Alzheimer's disease according to Item 27, wherein the polypeptide according to Item 1 or 2 is detected using the antibody according to any one of Items 4 to 9. How to determine.
  • the method for judging the degree of progression of Alzheimer's disease according to Item 27 or 28, comprising: [Item 30] The method for judging the degree of progression of Alzheimer's disease according to Item 29, wherein the amount of the polypeptide quantified in (i) is at least 1.1 times the control value. . [Item 31] The following steps (i) to (ii): (I) quantifying the polypeptide according to item 1 or 2 in a sample collected from a test animal, (Ii) When the amount of the polypeptide quantified in (i) is larger than the cut-off value, it is possible that the test animal is currently suffering from Alzheimer's disease or possibly suffering from Alzheimer's disease in the future. Determining that there is, Item 29.
  • the method for judging the degree of progression of Alzheimer's disease according to Item 27 or 28, comprising: [Item 32] The method for judging the degree of progression of Alzheimer's disease according to Item 31, wherein the cutoff value is 45 to 75 units. [Item 33] The method for judging the degree of progression of Alzheimer's disease according to Item 31, wherein the cutoff value is 45 to 75 ng / mL. [Item 34] The method according to any one of Items 27 to 33, wherein the test animal is a human. [Item 35] The method for determining the degree of progression of Alzheimer's disease according to any one of Items 27 to 34, wherein the sample is blood, cerebrospinal fluid, saliva, tears, or urine.
  • [Item 36] The method for determining the degree of progression of Alzheimer's disease according to any one of Items 27 to 35, further comprising detecting one or more other diagnostic markers for Alzheimer's disease.
  • [Item 37] A method for treating or preventing Alzheimer's disease, comprising detecting the polypeptide according to Item 1 or 2 in a sample collected from a test animal, and administering a therapeutic drug for Alzheimer's disease to the test animal. .
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease is selected from the group consisting of a cholinesterase inhibitor, an NMDA receptor antagonist, an amyloid ⁇ remover and a production inhibitor, and a tau protein remover and a production inhibitor.
  • the NMDA receptor antagonist is memantine.
  • the amyloid ⁇ -removing agent and the production inhibitor are at least selected from the group consisting of an amyloid ⁇ vaccine, an amyloid ⁇ -removing antibody, an amyloid ⁇ -producing enzyme inhibitor, an amyloid ⁇ aggregation inhibitor, and an amyloid ⁇ degradation accelerator.
  • amyloid ⁇ -removing agent and the production inhibitor are CNP-520, E-2609, aducanumab, solanezumab, gantenerumab, crenezumab, amilomotide, ASD-005, HSH-971, ELND-005, ALZT-OP1, elvad.
  • the treatment or prevention method according to Item 47 which is at least one of the following.
  • At least the tau protein removing agent and the production inhibitor are selected from the group consisting of a tau protein vaccine, a tau protein removing antibody, a tau protein modification inhibitor, a tau protein aggregation inhibitor, and a tau protein degradation accelerator.
  • the tau protein removing agent and the production inhibitor are TRx-237, TPI-287, ABBV-8E12, RG-6100, AADvac1, RO7105705, PTI-80, JNJ-63733657, UCB-0107, BIIB-076. 48.
  • the treatment or prevention method according to item 47 which is at least one selected from the group consisting of, MC-1, ACI-35, and AZP-2006.
  • a step of quantifying the polypeptide according to [1] in a sample collected from a test animal currently suffering from or possibly suffering from Alzheimer's disease (Ii) comparing the amount of the polypeptide quantified in (i) with the amount of the polypeptide in a sample previously collected from the test animal (hereinafter, referred to as a control value); and (iii) ( Based on the result of ii), when the amount of the polypeptide quantified in (i) is larger than the control value, it is determined that Alzheimer's disease in the test animal is progressing, and when the amount is smaller than the control value.
  • a step of determining that the Alzheimer's disease of the test animal has been improved (Iv) a step of selecting a therapeutic or prophylactic agent for Alzheimer's disease based on the determination result of (iii), and (v) a step of administering the therapeutic agent for Alzheimer's disease selected in (iv) to a subject animal, Item 61.
  • [Item 57] When the amount of the polypeptide quantified in the above (i) is 1.1 times or more the control value, it is determined that Alzheimer's disease of the test animal is progressing.
  • Item 60 The administration method according to Item 56.
  • Item 58 When the amount of the polypeptide quantified in (i) is not more than 0.9 times the control value, it is determined that the test animal has improved Alzheimer's disease.
  • Item 60 The administration method according to Item 56.
  • Item 59 The administration method according to any one of Items 54 to 58, wherein the subject animal is a human.
  • the administration method according to any one of Items 54 to 59 wherein the sample is blood, cerebrospinal fluid, saliva, tears or urine.
  • the administration method according to any one of Items 54 to 60 further comprising detecting one or more other diagnostic markers for Alzheimer's disease.
  • the cholinesterase inhibitor is at least one selected from the group consisting of donepezil, galantamine, rivastigmine, huperzine A, and tacrine.
  • the NMDA receptor antagonist is memantine.
  • the amyloid ⁇ -removing agent and the production inhibitor are at least selected from the group consisting of an amyloid ⁇ vaccine, an amyloid ⁇ -removing antibody, an amyloid ⁇ -producing enzyme inhibitor, an amyloid ⁇ aggregation inhibitor, and an amyloid ⁇ degradation accelerator. 63.
  • the administration method according to Item 62 which is one.
  • the amyloid ⁇ -removing agent and the production inhibitor are CNP-520, E-2609, aducanumab, solanezumab, gantenerumab, crenezumab, amilomotide, ASD-005, HSH-971, ELND-005, ALZT-OP1, elvad.
  • the administration method according to Item 62 which is at least one of [Item 67]
  • the tau protein removing agent and the production inhibitor are at least selected from the group consisting of a tau protein vaccine, a tau protein removing antibody, a tau protein modification inhibitor, a tau protein aggregation inhibitor, and a tau protein degradation accelerator.
  • the administration method according to Item 62 which is one.
  • the tau protein removing agent and the production inhibitor are TRx-237, TPI-287, ABBV-8E12, RG-6100, AADvac1, RO7105705, PTI-80, JNJ-63733657, UCB-0107, BIIB-076. 63.
  • the administration method according to item 62 which is at least one selected from the group consisting of: MC-1, ACI-35, and AZP-2006.
  • a therapeutic drug for Alzheimer's disease which is used for a patient in whom the degree of progression of Alzheimer's disease is determined by quantifying the polypeptide of Item 1 or 2 in a sample collected from a test animal.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 69 or Item 70 which is used for a patient whose progress of Alzheimer's disease has been determined in the following steps (i) to (iv): (I) a step of quantifying the polypeptide according to item 1 or 2 in a sample collected from a test animal currently suffering from or possibly suffering from Alzheimer's disease; (Ii) comparing the amount of the polypeptide quantified in (i) with the amount of the polypeptide in a sample previously collected from the test animal (hereinafter, referred to as a control value); (Iii) Based on the results of (ii), when the amount of the polypeptide quantified in (i) is larger than a control value, it is determined that Alzheimer's disease in the test animal is progressing, and the control value A step of determining that the Alzheimer's disease of the test animal has been improved when the value is smaller than the above, and a step of determining to administer the therapeutic agent for Alzheimer's disease based on the determination result of
  • a therapeutic agent for Alzheimer's disease according to item 70 (I) a step of quantifying the polypeptide according to item 1 or 2 in a sample collected from a test animal currently suffering from or possibly suffering from Alzheimer's disease; (Ii) When the amount of the polypeptide quantified in (i) is larger than the cutoff value, the test animal may have Alzheimer's disease or may have Alzheimer's disease in the future. Determining that there is, (Iii) a step of deciding to administer a therapeutic agent for Alzheimer's disease based on the determination result of (ii). [Item 75] The therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 74, wherein the cutoff value is 45 to 75 units.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease is selected from the group consisting of cholinesterase inhibitors, NMDA receptor antagonists, amyloid ⁇ -removing agents and production inhibitors, and tau protein-removing agents and production inhibitors.
  • the cholinesterase inhibitor is at least one selected from the group consisting of donepezil, galantamine, rivastigmine, huperzine A, and tacrine.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 80, wherein the NMDA receptor antagonist is memantine.
  • the amyloid ⁇ -removing agent and the production inhibitor are at least selected from the group consisting of an amyloid ⁇ vaccine, an amyloid ⁇ -removing antibody, an amyloid ⁇ -producing enzyme inhibitor, an amyloid ⁇ aggregation inhibitor, and an amyloid ⁇ degradation accelerator.
  • Item 80 The therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 80.
  • the amyloid ⁇ -removing agent and the production inhibitor are CNP-520, E-2609, aducanumab, solanezumab, gantenerumab, crenezumab, amiromotide, ASD-005, HSH-971, ELND-005, ALZT-OP1, elvad.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 80 which is at least one of [Item 85] At least the tau protein removing agent and the production inhibitor are selected from the group consisting of a tau protein vaccine, a tau protein removing antibody, a tau protein modification inhibitor, a tau protein aggregation inhibitor, and a tau protein degradation accelerator.
  • the tau protein removing agent and the production inhibitor are TRx-237, TPI-287, ABBV-8E12, RG-6100, AADvac1, RO7105705, PTI-80, JNJ-63733657, UCB-0107, BIIB-076. Item 80.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 80 which is at least one selected from the group consisting of, MC-1, ACI-35, and AZP-2006.
  • An agent for reducing the amount of the polypeptide according to Item 1 or 2 in the body of an Alzheimer's disease patient or a person who is likely to suffer Alzheimer's disease, or an Alzheimer's disease patient or Alzheimer's disease susceptibility An agent for treating or preventing Alzheimer's disease, which comprises, as an active ingredient, an agent that inhibits the production of the polypeptide in a living body of a sex-bearing individual.
  • the therapeutic agent for Alzheimer's disease according to Item 87 wherein the polypeptide according to Item 1 or 2 is detected using the antibody according to any one of Items 4 to 9. Or prophylactic drugs.
  • the test substance reduces the amount of the polypeptide according to Item 1 or 2 in the body of an Alzheimer's disease patient or a person who is likely to suffer from Alzheimer's disease, or an Alzheimer's disease patient or Alzheimer's disease A method for selecting a candidate substance for a therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease, using the index of inhibiting the production of the polypeptide in a living body of a person who may be affected by the disease as an index.
  • the Alzheimer according to Item 89 wherein the decrease in the amount of the polypeptide according to Item 1 or 2 is detected using the antibody according to any one of Items 4 to 9. A method for selecting candidate therapeutic or prophylactic agents for a disease.
  • a drug for determining Alzheimer's disease a method for determining Alzheimer's disease, a method for treating Alzheimer's disease, a method for selecting a candidate compound for a drug for treating Alzheimer's disease, a novel anti-S38AA antibody, and the like.
  • FIG. 1 shows the amino acid sequence of S38AA.
  • the peptide sequence detected by the LC-MS / MS method in identifying the N-terminal of S38AA @ long @ fragment is shown in bold.
  • FIG. 2 shows the MS / MS peak spectrum of the 399 EEVPEDLAEEAPGGR 413 peptide detected by the LC-MS / MS method in identifying the N-terminus of S38AA long fragment.
  • the vertical axis indicates the peak intensity of each ion, and the horizontal axis indicates m / z.
  • FIG. 3 shows the amino acid sequence of S38AA.
  • FIG. 4 shows the MS / MS peak spectrum of the 617 GLAVGGGEKAK 627 peptide detected by the LC-MS / MS method in identifying the N-terminus of S38AA short fragment.
  • the vertical axis indicates the peak intensity of each ion, and the horizontal axis indicates m / z.
  • FIG. 5 shows the amino acid sequence of S38AA. Among them, the sequence of the peptide detected by the LC-MS / MS method in identifying the C-terminal of S38AA @ long @ fragment is shown in bold.
  • FIG. 4 shows the MS / MS peak spectrum of the 617 GLAVGGGEKAK 627 peptide detected by the LC-MS / MS method in identifying the N-terminus of S38AA short fragment.
  • the vertical axis indicates the peak intensity of each ion, and the horizontal axis indicates m / z.
  • FIG. 5 shows the amino acid sequence of S38AA. Among them, the sequence of the peptide
  • FIG. 6 shows the MS / MS peak spectrum of the 1040 DLKLQAGSDL 1049 peptide detected by the LC-MS / MS method in identifying the C-terminus of S38AA long fragment.
  • the vertical axis indicates the peak intensity of each ion, and the horizontal axis indicates m / z.
  • FIG. 7 shows the quantification (calibration curve) when the expression levels of Escherichia coli recombinant S38AA ⁇ long fragment and S38AA ⁇ short fragment were measured by the Long ELISA and Total ELISA measurement systems, respectively.
  • the vertical axis of each graph indicates absorbance at 450 nm, and the horizontal axis indicates the concentration of each protein.
  • FIG. 8 shows the quantified value of each sample when quantifying S38AAAlong fragment and S38AA short fragment in human plasma by the subtraction method.
  • the vertical axis shows quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment, and the horizontal axis shows each sample. Numbers beginning with D represent healthy subjects, and numbers beginning with AG represent moderate and severe AD patients.
  • FIG. 9 shows the quantitative values in each group when S38AA @ long @ fragment (left figure) and S38AA @ short @ fragment (right figure) in human plasma were determined by the subtraction method.
  • the vertical axis shows the quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment, and the horizontal axis shows each group. Individual samples are shown in each plot.
  • FIG. 10 shows the quantified value of each group when quantifying S38AA ⁇ long fragment and S38AA short fragment in human plasma by immunoprecipitation elimination.
  • the vertical axis shows the quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment, and the horizontal axis shows each group.
  • FIG. 11 shows the quantification value of each sample when quantifying S38AA @ long @ fragment and S38AA @ shortfragment in human plasma by the subtraction method.
  • the vertical axis shows quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment, and the horizontal axis shows each sample. Numbers beginning with TSUM represent healthy individuals, and numbers beginning with ASUM represent mild AD patients.
  • FIG. 10 shows the quantified value of each group when quantifying S38AA ⁇ long fragment and S38AA short fragment in human plasma by immunoprecipitation elimination.
  • the vertical axis shows the quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment, and the horizontal axis shows each sample. Number
  • FIG. 12 shows quantitative values of each group when quantification of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ shortfragment (left figure), S38AA @ short @ fragment (middle figure) and S38AA @ long @ fragment (right figure) in human plasma by the subtraction method. .
  • the vertical axis shows the quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment, and the horizontal axis shows each group. Individual samples are shown in each plot.
  • the graph bar represents (mean of each group ⁇ standard deviation).
  • FIG. 13 is a diagram showing recognition sites for an antibody for Long fragment, antibody A, antibody B and antibody C.
  • FIG. 14 shows the quantified value of each sample when quantifying S38AA ⁇ fragment in human plasma by combining various anti-S38AA fragment antibodies.
  • the combinations of the antibodies were three patterns of antibody A and antibody B, antibody A and antibody C, and antibody B and antibody C, and ELISA was performed using the combinations.
  • the vertical axis shows the quantitative value of the total amount of S38AA fragment, and the horizontal axis shows each sample. Numbers beginning with TSUM represent healthy individuals, and numbers beginning with ASUM represent AD patients.
  • FIG. 15 shows the quantitative value of each sample when quantifying S38AA ⁇ fragment in human plasma by combining various anti-S38AA ⁇ fragment antibodies.
  • the combinations of the antibodies were three patterns of the antibody for Long fragment and the antibody A, the antibody for Long fragment and the antibody B, and the antibody for Long fragment and the antibody C, and ELISA was performed by the combination.
  • the vertical axis indicates the quantitative value of S38AA long fragment
  • the horizontal axis indicates each sample.
  • Numbers beginning with TSUM represent healthy individuals, and numbers beginning with ASUM represent AD patients.
  • FIG. 16 shows the quantitative value of each sample when the S38AA ⁇ short ⁇ fragment in human plasma was quantified from the results of FIGS. 14 and 15 by the subtraction method.
  • the vertical axis shows the quantitative value of S38AA ⁇ short ⁇ fragment, and the horizontal axis shows each sample.
  • Numbers beginning with TSUM represent healthy individuals, and numbers beginning with ASUM represent AD patients.
  • Alzheimer's disease includes both of the above “familial Alzheimer's disease” and “sporadic Alzheimer's disease”.
  • ⁇ affected by Alzheimer's disease '' that is, ⁇ is a patient with Alzheimer's disease '' means that the patient has developed Alzheimer's disease by clinical diagnosis based on impairment of memory or cognitive function or image diagnosis based on brain atrophy etc. A condition that can be diagnosed as being present.
  • treating Alzheimer's disease refers to clinical diagnostic criteria for Alzheimer's disease, for example, the diagnostic criteria of the National Institute of Neurological Diseases and Stroke and the Association for Alzheimer's Disease and Related Disorders (NINCDS-ADRDA), or The state diagnosed with Alzheimer's disease based on the Alzheimer's disease revised diagnostic criteria (hereinafter abbreviated as “Alzheimer's disease revised diagnostic criteria (2011)”) by the National Institute of Aging and the Alzheimer's Disease Association (NIA-AA), etc. Show. Both diagnostic criteria include the presence of cognitive dysfunction centering on memory impairment, slow onset and progressive course, impairment of social and daily activities associated with cognitive dysfunction, and non-AD dementia. Exclusion is an indicator of diagnosis.
  • Alzheimer's disease is developed in three stages (mild, moderate (or moderate), advanced (or severe), or first stage (or amnesia) depending on the severity of the symptoms. , The second stage (or confusion) and the third stage (or bed). Severity is evaluated by mini-mental state test (MMSE), which measures the degree of cognitive impairment, stage of dementia function evaluation (FAST), which determines the severity mainly based on activities of daily living, clinically severe.
  • MMSE mini-mental state test
  • FAST stage of dementia function evaluation
  • CDR clinical dementia scale
  • the evaluation can be performed using the Alzheimer's disease cognitive function evaluation scale (ADAS-cog), advanced cognitive impairment test (SIB), etc. used in clinical trials.
  • the score of the Mini Mental State Examination can be used as one of the judgment criteria.
  • a score of 9 or less is judged as severe Alzheimer's disease, 10 to 19 is judged as moderate Alzheimer's disease, 20 to 23 is judged as mild Alzheimer's disease, and 24 or more is judged as mild cognitive impairment or normal.
  • pre-Alzheimer's disease that is, “a person who may have Alzheimer's disease (human)” and “a person with a high risk group of Alzheimer's disease (human)”
  • the pre-Alzheimer's disease onset stage in which the accumulation of A ⁇ and tau protein in brain tissue has started and the possibility of developing Alzheimer's disease is high in the near future Ie, humans in which A ⁇ or tau protein is accumulated in brain tissue (also referred to as Preclinical AD).
  • accumulation of A ⁇ or tau protein in brain tissue can be confirmed using amyloid PET or tau PET, A ⁇ or phosphorylated tau in cerebrospinal fluid as a biomarker.
  • pre-onset Alzheimer's disease refers to a biologic that suggests a pathology of Alzheimer's disease as defined in the Preclinical AD research criteria in the above-mentioned revised diagnostic criteria for Alzheimer's disease (2011).
  • cognitive function is a condition in which only minor cognitive impairment that does not meet the diagnostic criteria for normal or mild cognitive impairment (MCI) is recognized.
  • MCI mild cognitive impairment
  • a human who is not diagnosed as having Alzheimer's disease but is diagnosed with mild cognitive impairment is a symptom of a precursor of Alzheimer's disease and may have Alzheimer's disease in the future. , "Patients (humans) who may be affected by Alzheimer's disease”.
  • MCI mild cognitive impairment
  • Dementia is not diagnosed, that is, a precursor state of dementia.
  • Diagnosis of mild cognitive impairment can be performed, for example, by the diagnostic criteria proposed by MCI Key Symposium in 2003 (Winblad B et al., (2004) J. Intern. Med. 256: 240-246), or Alzheimer's disease by NIA-AA described above. The diagnosis can be performed based on the diagnostic criteria for mild cognitive impairment described in the disease diagnostic criteria (2011).
  • Polypeptide of the present invention The present inventors first found that in the blood of AD patients, the amount of S38AA long fragment generated by cleavage at the extramembrane portion of S38AA was increased, and in the blood of AD patients, An enzyme that specifically cleaves the C-terminal side of the long fragment is present, or the activity of the enzyme is high, the amount of S38AA short fragment is greatly increased, and the amount of S38AA short fragment in blood is Alzheimer's disease.
  • An enzyme that specifically cleaves the C-terminal side of the long fragment is present, or the activity of the enzyme is high the amount of S38AA short fragment is greatly increased, and the amount of S38AA short fragment in blood is Alzheimer's disease.
  • a finger for determining the onset of Alzheimer's disease and the spare group with a high amount of short fragment It was found to have a very high reliability as.
  • the present invention first provides a polypeptide comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 (S38AA short fragment) (the amino acid sequence of S38AA represented by SEQ ID NO: 3 (1-1119): 617-1049) And a polypeptide consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2, which is S38AA long fragment (the amino acid sequence of S38AA represented by SEQ ID NO: 3 (1-1119)). (Corresponding to the amino acid sequence at position 1049).
  • S38AA @ short @ fragment may have one or several amino acids in the amino acid sequence as long as it is recognized by an antibody that specifically binds to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 described below. It may be missing, added or inserted.
  • S38AA longAfragment has one or several amino acids substituted in the amino acid sequence as long as it is recognized by an antibody that specifically binds to a polypeptide consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 described below. It may be deleted, added or inserted.
  • the number is not particularly limited, and may be, for example, 2 to 10, 2 to 8, 2 to 6, or 2 to The number may be four, two or three, or two.
  • S38AA ⁇ short ⁇ fragment can be prepared by methods known to those skilled in the art as appropriate at its N-terminus, C-terminus or side chain, such as N-terminal acetyl modification, C-terminal amide modification, N-terminal and / or C-terminal It may be modified by addition of a tag (His tag or the like) and addition of a sugar chain to a side chain.
  • the polypeptide of the present invention can be produced according to a known peptide synthesis method, for example, a solid phase synthesis method, a liquid phase synthesis method and the like.
  • the obtained polypeptide can be purified and isolated by a known purification method, for example, solvent extraction, distillation, column chromatography, liquid chromatography, recrystallization, or a combination thereof.
  • the polypeptide of the present invention can also be produced by culturing a transformant containing the nucleic acid encoding the polypeptide and separating and purifying the polypeptide from the resulting culture.
  • the nucleic acid encoding the polypeptide of the present invention may be DNA or RNA, or may be a DNA / RNA chimera, but is preferably DNA.
  • the nucleic acid may be double-stranded or single-stranded. In the case of double-stranded, it may be double-stranded DNA, double-stranded RNA or DNA: RNA hybrid. In the case of a single strand, it may be a sense strand (ie, a coding strand) or an antisense strand (ie, a non-coding strand).
  • SEQ ID NO: and “SEQ ID NO:” have the same meaning.
  • SEQ ID NO: 1 and “SEQ ID NO: 1” have the same meaning.
  • Examples of the DNA encoding the polypeptide of the present invention include synthetic DNA and the like, and methods known per se, for example, using a Reverse Transcriptase-PCR method and an ODA-LA PCR method, a Gapped Duplex method, a Kunkel method, or the like, or It can be obtained using a colony or plaque hybridization method or a PCR method.
  • Anti-S38AA Antibody used herein is not particularly limited as long as it is an antibody that specifically recognizes S38AA or an antibody that specifically recognizes S38AA long fragment and / or S38AA short fragment.
  • an antibody recognizing the N-terminal region of S38AA long fragment an antibody recognizing the C-terminal region of S38AA long fragment, an antibody recognizing the C-terminal region common to S38AA long fragment and S38AA short fragment, and the like.
  • the anti-S38AA antibody may be a commercially available anti-S38AA antibody, a polyclonal or monoclonal antibody produced using a known technique, or a fragment thereof (eg, Fab, F (ab ′) 2 , ScFv, minibody, etc.). Good.
  • mammal-derived monoclonal antibodies and polyclonal antibodies are preferable.
  • monoclonal and polyclonal antibodies derived from mammals those produced in the blood of animals, those produced by hybridomas, and those produced by hosts transformed with expression vectors containing antibody genes by genetic engineering techniques
  • the optimal antibody is screened from a huge clone library consisting of 1 trillion molecules by phage display, and the gene is mass-produced by CHO cells from the gene, or directly obtained from transgenic mice producing human antibodies. Human antibodies and the like.
  • Monoclonal and polyclonal antibodies can be produced by methods known to those skilled in the art.
  • the polypeptide of the present invention is administered to a mammal at a site where the antibody can be produced by administration to itself or together with a carrier or a diluent.
  • Complete Freund's adjuvant or incomplete Freund's adjuvant may be administered in order to enhance the antibody-producing ability upon administration.
  • the administration is usually performed once every 2 to 6 weeks, about 2 to 10 times in total.
  • mammals to be used include monkeys, rabbits, dogs, guinea pigs, mice, rats, sheep and goats, and mice and rats are preferably used.
  • a mammal having been immunized with the antigen for example, an individual having an antibody titer is selected from a mouse, and the spleen or lymph node is collected 2 to 5 days after the final immunization and contained therein.
  • an individual having an antibody titer is selected from a mouse, and the spleen or lymph node is collected 2 to 5 days after the final immunization and contained therein.
  • the antibody titer in the antiserum can be measured, for example, by reacting the labeled S38AA described below with the antiserum, and then measuring the activity of the labeling agent bound to the antibody.
  • the fusion operation can be performed according to a known method, for example, the method of Kohler and Milstein [Nature, 256, 495 (1975)].
  • the fusion promoter include polyethylene glycol (PEG) and Sendai virus, and PEG is preferably used.
  • PEG polyethylene glycol
  • Sendai virus a polyethylene glycol
  • an auxiliary agent such as dimethyl sulfoxide can be used as appropriate to enhance the fusion efficiency.
  • myeloma cells examples include NS-1, P3U1, SP2 / 0 and the like, and P3U1 is preferably used.
  • the preferred ratio between the number of antibody-producing cells (spleen cells) and the number of myeloma cells used is about 1: 1 to 20: 1, and PEG (preferably, PEG1000 to PEG6000) is added at a concentration of about 10 to 80%. Incubation at about 20 to 40 ° C., preferably about 30 to 37 ° C. for about 1 to 10 minutes allows efficient cell fusion.
  • a hybridoma culture supernatant is added to a solid phase (eg, a microplate) on which an antigen such as a protein is directly or adsorbed together with a carrier, and then radioactively.
  • a solid phase eg, a microplate
  • a method for detecting a monoclonal antibody bound to a solid phase by adding an anti-immunoglobulin antibody labeled with a substance or an enzyme (if the cell used for cell fusion is a mouse, an anti-mouse immunoglobulin antibody is used) or protein A A method in which a hybridoma culture supernatant is added to a solid phase to which an anti-immunoglobulin antibody or protein A is adsorbed, a protein or the like labeled with a radioactive substance or an enzyme is added, and a monoclonal antibody bound to the solid phase is detected. .
  • the selection of the monoclonal antibody can be carried out according to a method known per se or a method analogous thereto. Usually, it can be carried out in a medium for animal cells to which HAT (hypoxanthine, aminopterin, thymidine) is added.
  • HAT hyperxanthine, aminopterin, thymidine
  • any medium can be used as long as a hybridoma can grow.
  • RPMI 1640 medium containing 1-20%, preferably 10-20% fetal bovine serum, GIT medium containing 1-10% fetal bovine serum (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) or serum-free for hybridoma culture A medium (SFM-101, Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) or the like can be used.
  • the culture temperature is usually 20 to 40 ° C, preferably about 37 ° C.
  • the culturing time is usually 5 days to 3 weeks, preferably 1 week to 2 weeks.
  • the culture can be usually performed under 5% carbon dioxide.
  • the antibody titer of the hybridoma culture supernatant can be measured in the same manner as the measurement of the antibody titer in the antiserum described above.
  • Monoclonal antibodies can be separated and purified by immunoglobulin separation and purification methods [eg, salting out, alcohol precipitation, isoelectric precipitation, electrophoresis, ion exchanger (eg, DEAE) adsorption / desorption method, ultracentrifugation method, gel filtration method, antigen-binding solid phase or specific purification method of collecting antibody only with an active adsorbent such as protein A or protein G and dissociating the bond to obtain the antibody]
  • immunoglobulin separation and purification methods eg, salting out, alcohol precipitation, isoelectric precipitation, electrophoresis, ion exchanger (eg, DEAE) adsorption / desorption method, ultracentrifugation method, gel filtration method, antigen-binding solid phase or specific purification method of collecting antibody only with an active adsorbent such as protein A or protein G and dissociating the bond to obtain the antibody
  • an active adsorbent such as protein A or protein G and dissociating the
  • a polyclonal antibody against the polypeptide of the present invention can be produced according to a method known per se or a method analogous thereto. For example, a complex of an immunizing antigen (antigen such as a protein) and a carrier protein is formed, and a mammal is immunized or a chicken is immunized in the same manner as in the above-described method for producing a monoclonal antibody. It can be produced by collecting the contents and separating and purifying the antibody.
  • the type of carrier protein and the mixing ratio of the carrier and the hapten are determined by the efficiency of the antibody against the hapten immunized by crosslinking the carrier.
  • any material may be cross-linked at any ratio.
  • bovine serum albumin, bovine thyroglobulin, keyhole limpet hemocyanin, etc. may be used in a weight ratio of about 0.1 to 1 hapten.
  • a method of coupling at a rate of about 20, preferably about 1 to 5 is used.
  • various condensing agents can be used.
  • glutaraldehyde, carbodiimide, a maleimide active ester, an active ester reagent containing a thiol group or a dithiopyridyl group, or the like is used.
  • the condensation product is administered to a mammal or chicken at a site capable of producing an antibody by itself or together with a carrier or a diluent.
  • Complete Freund's adjuvant or incomplete Freund's adjuvant may be administered in order to enhance the antibody-producing ability upon administration.
  • the administration can usually be performed once every about 2 to 6 weeks, for a total of about 3 to 10 times.
  • the polyclonal antibody can be collected from the blood, ascites, breast milk, etc. of the mammal immunized by the above method, preferably from blood, and in the case of chicken, from the blood and egg yolk.
  • the measurement of the polyclonal antibody titer in the antiserum can be performed in the same manner as the measurement of the antibody titer in the serum described above.
  • the polyclonal antibody can be separated and purified according to the same method for separating and purifying immunoglobulins as in the above-described method for separating and purifying a monoclonal antibody.
  • a rabbit-derived anti-S38AA polyclonal antibody (hereinafter, also referred to as “MBL” or “antibody for long fragment”) may be mentioned.
  • the antibody for long @ fragment has a characteristic of specifically recognizing S38AA @ long @ fragment and not recognizing S38AA @ short @ fragment.
  • the antibody for long fragment can be used in Long ELISA described later by using it together with the antibody A, B or C.
  • Antibody that specifically recognizes S38AA short fragment includes an antibody that specifically recognizes S38AA short fragment represented by SEQ ID NO: 1.
  • An antibody that specifically recognizes S38AA short fragment includes, for example, an antibody that recognizes the C-terminal sequence or N-terminal sequence of S38AA short fragment.
  • An antibody that specifically recognizes S38AA short fragment can be prepared by a method well known to those skilled in the art.
  • a peptide obtained by using a peptide of several amino acids from the N-terminus of S38AA short fragment (glycine at position 617 in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3) as an immunizing antigen, and further adding several amino acids to the N-terminal side thereof can be obtained by selecting an antibody that is negative for S38AA long fragment.
  • a monoclonal antibody or a polyclonal antibody can be obtained according to the method (1) or (2), respectively. Examples of the antibody that specifically recognizes S38AA short fragment include antibody A, antibody B, and antibody C described below.
  • Antibody A (hereinafter, also referred to as “mouse-derived anti-S38AA monoclonal antibody A”) is an antibody that recognizes the C-terminal region of S38AA, and immunizes a partial peptide of the C-terminal amino acid sequence of the S38AA fragment.
  • Antibody A has the characteristic of specifically recognizing S38AA ⁇ short ⁇ fragment and S38AA ⁇ long ⁇ fragment.
  • Antibody A can be used for Long @ ELISA together with "antibody for long @ fragment”.
  • the antibody A can be used in the Total ELISA described below by using it together with the antibody B or C.
  • antibody A preferably: (1) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 4, (2) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 6, (3) an antibody including the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 8, and (4) an antibody including the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 10,
  • antibody A includes the following: (1) an antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 5, (2) an antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 7, (3) an antibody including the light chain variable region of SEQ ID NO: 9, and (4) an antibody including the light chain variable region of SEQ ID NO: 11, Antibodies selected from the group consisting of:
  • an antibody comprising a heavy chain variable region of SEQ ID NO: 4 and a light chain variable region of SEQ ID NO: 5 (2) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 6 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 7, (3) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 8 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 9, and (4) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 10 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 11
  • Antibody B is an antibody that recognizes the C-terminal region of S38AA, and refers to an antibody obtained by establishing an antibody-producing hybridoma using a partial peptide of the C-terminal amino acid sequence of the S38AA fragment as an immunogen, and separating and purifying the antibody.
  • Antibody B has a feature of specifically recognizing S38AA ⁇ short ⁇ fragment and S38AA ⁇ long ⁇ fragment.
  • Antibody B can be used for Long @ ELISA together with "Antibody for long @ fragment”.
  • Antibody B can be used for Total ELISA, when used with antibody A or C.
  • antibody B preferably: (5) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 12, (6) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 14, (7) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 16, and (8) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 18, Antibodies selected from the group consisting of:
  • Another preferred embodiment of the antibody B is as follows: (5) an antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 13, (6) an antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 15, (7) an antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 17, and (8) an antibody comprising the light chain variable region of SEQ ID NO: 19; Antibodies selected from the group consisting of:
  • antibody B (5) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 12 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 13, (6) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 14 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 15, (7) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 16 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 17, and (8) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 18 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 19 , Antibodies selected from the group consisting of:
  • Antibody C is an antibody that recognizes the C-terminal region of S38AA, and refers to an antibody obtained by establishing an antibody-producing hybridoma using the Escherichia coli recombinant protein of S38AA long fragment as an immunogen, and separating and purifying the antibody.
  • Antibody C has the characteristic of specifically recognizing S38AA @ short ⁇ fragment and S38AA ⁇ long ⁇ fragment.
  • Antibody C can be used for Long @ ELISA together with "Antibody for long @ fragment”.
  • the antibody C can be used for the Total ELISA when used together with the antibody A or B.
  • antibody C preferably: An antibody selected from the group consisting of (9) an antibody containing the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 20, and (10) an antibody containing the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 22.
  • Another preferred embodiment of the antibody C is as follows: An antibody selected from the group consisting of (9) an antibody containing the light chain variable region of SEQ ID NO: 21 and (10) an antibody containing the light chain variable region of SEQ ID NO: 23.
  • antibody C More preferably, as antibody C: (9) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 20 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 21, and (10) an antibody comprising the heavy chain variable region of SEQ ID NO: 22 and the light chain variable region of SEQ ID NO: 23 Antibodies selected from the group consisting of:
  • each of the antibodies has 90% or more, preferably 95%, of the amino acid sequence of the variable region contained therein. More preferably, it contains a variable region having homology of 96% or more, still more preferably 97% or more, still more preferably 98%, still more preferably 99% or more, and most preferably 99.5% or more. There may be.
  • homology refers to an optimal alignment (preferably, the algorithm is optimized for optimal alignment) when two amino acid sequences are aligned using a mathematical algorithm known in the art. (Which may take into account the introduction of gaps in one or both of the sequences), the percentage of identical and similar amino acid residues to all overlapping amino acid residues.
  • NCBI BLAST National Center for Biotechnology Information Basic Local Alignment Search Tool
  • Other algorithms for determining amino acid sequence homology include, for example, Karlin et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
  • the CDRs contained in the antibodies A, B and C of the present invention as long as the antibodies can specifically recognize S38AA ⁇ short ⁇ fragment and S38AA ⁇ long ⁇ fragment, one to several amino acid sequences per CDR ( 2, 3, 4, 5, etc.), preferably no more than two, more preferably one amino acid may be substituted, deleted, inserted and / or added.
  • the number of CDRs in which the amino acids of each antibody have substitutions, deletions, insertions, and / or additions is not particularly limited as long as each antibody can specifically recognize S38AA short fragment and S38AA long fragment.
  • Amino acid substitutions, deletions, insertions, and / or additions may be made in both the light chain variable region and the heavy chain variable region, or may be made in only one of them.
  • similar amino acids means amino acids that are similar in physicochemical properties, such as aromatic amino acids (Phe, Trp, Tyr), aliphatic amino acids (Ala, Leu, Ile, Val), and polar amino acids (Gln , Asn), basic amino acids (Lys, Arg, His), acidic amino acids (Glu, Asp), amino acids having a hydroxyl group (Ser, Thr), small side chain amino acids (Gly, Ala, Ser, Thr, Met), etc. And amino acids classified in the same group. It is expected that substitutions with such similar amino acids will not change the phenotype of the protein (ie, are conservative amino acid substitutions). Specific examples of conservative amino acid substitutions are well known in the art and are described in various documents (see, for example, Bowie et al., Science, 247: 1306-1310 (1990)).
  • site-directed mutagenesis As a method for substituting one or more amino acid residues with another amino acid of interest, for example, site-directed mutagenesis (Hashimoto-Gotoh, T, Mizuno, T, Ogasahara, Y, and @Nakagawa, M. (1995) ) An oligodeoxyribonucleotide-directed dual amber method for site-directed mutagenesis. Gene 152,271-275, Zoller, MJ, and Smith, M. (1983) Oligonucleotide-directed mutagenesis of DNA fragments cloned into M13 vectors. Methods Enzymol.
  • the desired amino acids of the antibody can be replaced with other amino acids of interest.
  • library techniques such as framework shuffling (Mol Immunol. ⁇ 2007 ⁇ Apr; 44 (11): 3049-60) and CDR repair (US2006 / 0122377), amino acids in the framework and CDRs can be replaced with other appropriate amino acids. It is also possible to substitute for an amino acid.
  • the determination drug of the present invention contains one or more kinds of anti-S38AA antibodies capable of detecting the amount of S38AA Short fragment, determines whether or not the subject is suffering from Alzheimer's disease, In addition to determining whether or not there is a high possibility of having the disease, the determination of the Alzheimer's disease preliminary group, i.e., determining whether or not the patient has not yet suffered from the disease but is likely to suffer in the near future be able to. In other words, the determination agent of the present invention can identify Alzheimer's disease regardless of whether the severity is mild, moderate, or severe.
  • the ⁇ determination '' of Alzheimer's disease in the present invention is not only determination of whether or not Alzheimer's disease is already present, determination of whether or not Alzheimer's disease is likely to be presently present, but also Alzheimer's disease It is used in a sense that includes determining whether a person is not afflicted with a disease, but is likely to be affected in the near future.
  • Kit for determining Alzheimer's disease provides a kit for determining Alzheimer's disease.
  • the kit of the present invention includes a reagent for measuring the amount of S38AA short fragment. Alzheimer's disease can be determined by measuring the amount of S38AA short fragment using the kit of the present invention.
  • the kit of the present invention contains an anti-S38AA antibody that is a combination of a single antibody or a plurality of antibodies capable of quantifying S38AA short fragment, and specifically, is an antibody that specifically recognizes S38AA short fragment. Or an antibody that recognizes S38AA long fragment but does not recognize S38AA short fragment, and a combination of antibodies that recognize both S38AA long fragment and S38AA short fragment.
  • An antibody that recognizes S38AA long fragment and does not recognize S38AA short fragment includes, for example, an antibody that recognizes the N-terminal region of S38AA long fragment described above.
  • Examples of the antibody that recognizes both S38AA long fragment and S38AA short fragment include an antibody that recognizes the C-terminal region common to S38AA long fragment and S38A short fragment.
  • the antibodies used in the kit of the present invention preferably include antibodies for long fragment, antibody A, antibody B, and / or antibody C.
  • the antibody may be a fluorescently-labeled antibody, an enzyme-labeled antibody, a streptavidin-labeled antibody, a biotin-labeled antibody, or a radio-labeled antibody.
  • the anti-S38AA antibody is usually used in the form of the kit of the present invention in the form of an aqueous solution dissolved in water or an appropriate buffer (eg, TE buffer, PBS, etc.) to an appropriate concentration, or in the form of a lyophilized product. include.
  • the measurement may be performed using one type of antibody, or may be performed using a plurality of types, preferably two types of antibodies (for example, a sandwich ELISA method). Etc.).
  • the kit of the present invention may further include, as a component, other components necessary for performing the method according to the method of measuring S38AA ⁇ short ⁇ fragment.
  • the kit of the present invention can further include a blotting buffer, a labeling reagent, a blotting membrane, a detection reagent, a standard solution, and the like.
  • the “standard solution” refers to a purified preparation of S38AA @ short @ fragment and / or S38AA @ long @ fragment, for example, a peptide of the present invention in water or a suitable buffer (eg, TE buffer, PBS containing fetal bovine serum). An aqueous solution in which a specific concentration is dissolved is exemplified.
  • the kit of the present invention can further include a solidified antibody measurement plate, a washing solution, and the like in addition to the above.
  • agglutination method including a latex agglutination method
  • antibody-coated latex, gelatin, and the like can be included.
  • the measurement is performed by a chemifluorescence method or a chemifluorescence electron method
  • the antibody can contain antibody-bound magnetic particles and an appropriate buffer.
  • Detection of S38AA using LC / MS, LC-MS / MS or immunochromatography can include an antibody-coated column, microcolumn, or microchip as part of the detection device.
  • a plurality of labeled anti-S38AA antibodies and other necessary components may be included as components.
  • kits of the present invention include the following.
  • the antibody contained in the kit described below may be labeled (for example, labeled with peroxidase or biotin). If not, the antibody may be separately bound to the antibody and labeled. May be included.
  • the “antibody specifically recognizing S38AA short fragment”, the “first antibody specifically recognizing S38AA short fragment”, and the “second antibody recognizing S38AA short fragment” are antibodies. A, antibody B and antibody C.
  • an antibody recognizing the N-terminal region of S38AA long fragment” and "a first antibody recognizing the N-terminal region of S38AA long fragment” preferably include “antibodies for long fragment”.
  • antibody recognizing the C-terminal region of S38AAlong fragment is preferably antibody A, antibody B and antibody C. Is mentioned.
  • Examples of the anti-S38AA long fragment antibody and anti-S38AA short fragment antibody capable of specifically detecting S38AA long fragment and S38AA short fragment include, for example, the antibodies described in detail in “2. Antibody of the present invention”. .
  • Method of the Present Invention (1) Method for Judging and Testing Alzheimer's Disease As described above, the present inventors first increase the amount of S38AA long fragment in blood of AD patients caused by cleavage at the extramembrane portion of S38AA. In addition, in the blood of AD patients, there is an enzyme that specifically cleaves the long fragment, or the activity of the enzyme is high, or the enzyme is directly cleaved by the extramembrane portion of S38AA. The resulting amount of S38AA short fragment is greatly increased, and the amount of S38AA short fragment in the blood is irrespective of whether the severity of Alzheimer's disease (progression of cognitive dysfunction) is mild, moderate, or severe. Increased, and found to be higher in moderate and severe than in mild.
  • Determination 38A a short fragment amount of onset and pre-set precision of Alzheimer's disease, and found to have an extremely high reliability as an index for determining the degree of progression of Alzheimer's disease. Accordingly, the present invention provides a method for determining Alzheimer's disease, for example, mild, moderate or severe Alzheimer's disease, by detecting S38AA short fragment in a sample collected from a test animal.
  • the determination method of the present invention determines whether or not the subject is suffering from Alzheimer's disease, not only whether or not the subject is currently likely to suffer from the disease, but has not yet suffered from the disease, It is also possible to determine whether it is highly likely to be affected in the near future.
  • the present invention also provides a method of testing the possibility of having Alzheimer's disease at present or of Alzheimer's disease in the future by detecting S38AA short fragment in a sample collected from a test animal. The determination of the possibility and the test (result) are useful at least for assisting a physician in confirming the diagnosis of Alzheimer's disease.
  • the determination and test method of the present invention is characterized by detecting S38AA short fragment in a sample collected from a test animal.
  • the determination and test method of the present invention include, as specific steps, for example, (i) a step of quantifying S38AA short fragment in a sample collected from a test animal, and (ii) an S38AA short quantified in (i).
  • the method may include a step of comparing the amount of the fragment with the amount of the S38AA short fragment in a sample collected from a healthy animal (hereinafter, referred to as “control value”).
  • the test animal is suffering from Alzheimer's disease or is currently suffering from Alzheimer's disease. Or may have Alzheimer's disease in the future.
  • the judgment and test method of the present invention further comprises the steps of: The method may include determining that the test animal has Alzheimer's disease, or is likely to have Alzheimer's disease at present or possibly Alzheimer's disease in the future.
  • the value of S38AA short fragment in blood increases regardless of whether the severity of Alzheimer's disease (the degree of progression of cognitive dysfunction) is mild, moderate, or severe.
  • the present invention provides a method for assisting the determination of the degree of progression of Alzheimer's disease, because the degree of moderate and severe cases is higher than that of mild cases.
  • the method of assisting the determination according to the present invention is also characterized by detecting S38AA short fragment in a sample collected from a test animal.
  • the method of assisting the determination according to the present invention includes, as a specific step, for example, (i) quantifying S38AA short fragment in a sample collected from a test animal having or possibly suffering from Alzheimer's disease.
  • control value a sample previously collected from the test animal
  • the method may include a step of determining that the disease is improving.
  • the present invention provides that the amount of S38AA short fragment in blood is increased regardless of whether the severity of Alzheimer's disease (the degree of progression of cognitive dysfunction) is mild, moderate, or severe, and moreover, is moderate. Since the severity and severity are higher than mild, the present invention also provides a method for evaluating the therapeutic effect of a patient under treatment for Alzheimer's disease or a preliminary group of Alzheimer's disease under treatment for preventing the onset of Alzheimer's disease. The method for evaluating the therapeutic effect of the present invention is also characterized by detecting S38AA short fragment in a sample collected from a test animal.
  • the method for evaluating the therapeutic effect of the present invention includes, as a specific step, for example, (i) collection from a test animal which has started drug treatment for Alzheimer's disease or drug treatment for preventing the onset of Alzheimer's disease.
  • the step of quantifying S38AA short fragment in the sample obtained, and (ii) the amount of S38AA short fragment quantified in (i) is a sample obtained in the past from the subject animal (eg, a sample collected before the start of drug treatment) And the amount of S38AA short fragment (hereinafter, referred to as “control value”) in the sample after the start of the medication treatment and before the time of collection in (i).
  • the method of evaluating the therapeutic effect of the present invention is based on the results of (iii) and (ii), based on the results of (i), when the amount of S38AA short fragment quantified in (i) is larger than the control value. Assessing that the medication (or the selected therapeutic) is ineffective and evaluating that the current medication (or the selected therapeutic) is effective if less than the control value.
  • the term “therapeutic agent used for the medication treatment” is a concept that includes not only therapeutic agents that have already been approved and marketed, but also investigational drugs that are undergoing clinical trials. That is, the method for evaluating the therapeutic effect of the present invention can also be used for monitoring the efficacy of a drug in a clinical test.
  • the animal that can be a test subject of the method of the present invention is not particularly limited as long as it expresses S38AA. , Rabbits, hamsters, guinea pigs, mice, rats, etc.) and birds (eg, chickens, etc.). Preferably, it is a mammal, more preferably a human.
  • the biological sample derived from the test animal is not particularly limited, and examples include blood, serum, plasma, saliva, tears, urine, and cerebrospinal fluid. More preferably, it is plasma or cerebrospinal fluid. Serum or plasma can be prepared by collecting blood from a test animal in accordance with a conventional method and separating a liquid component. Cerebrospinal fluid can be collected by known means such as spinal tap.
  • ⁇ ⁇ Detection (quantification) of S38AA long fragment and S38AA short fragment in a sample can be performed by a known method. For example, Western blotting, gel electrophoresis (eg, SDS-PAGE, two-dimensional gel electrophoresis, etc.) and various separation and purification methods (eg, ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, gel filtration chromatography, affinity chromatography) , Reversed-phase chromatography, isoelectric focusing, capillary electrophoresis, etc., ionization methods (eg, electron impact ionization, field desorption, secondary ionization, fast atom bombardment, matrix-assisted laser desorption ionization) (MALDI) method, electrospray ionization method, etc.), mass spectrometer (eg, double focusing mass spectrometer, quadrupole spectrometer, time-of-flight mass spectrometer, Fourier transform mass spectrometer,
  • the detection (quantification) of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment should be performed by a known immunochemical method (nephrometry, competition method, immunometric method, chemifluorescence method, chemifluorescence electron method, sandwich method, etc.). You can also.
  • immunochemical methods are described in, for example, “Radio Immunoassay” edited by Hiroshi Irie (Kodansha, published in 1974), “Sequence Radioimmunoassay” edited by Hiroshi Irie (Kodansha, published in 1979), and “Enzyme Immunology” edited by Eiji Ishikawa et al.
  • S38Agram in a sample obtained using "an antibody recognizing the C-terminal region common to S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment. From the measured values of S38AA @ short @ fragment, using "an antibody recognizing the N-terminal region of S38AA @ long @ fragment” alone, or “antibody recognizing the N-terminal region of S38AA @ long @ fragment” and “S38AA @ long @ fragment C” S38AA ⁇ long ⁇ fra in a sample obtained using the antibody in combination with "an antibody recognizing the terminal region”.
  • the amount of S38AA short ⁇ fragment may be quantified by subtracting the measured value of the ment, or the measured value obtained by the same method may be quantified as a ratio of the amount of S38AA short fragment to the amount of S38AA long fragment.
  • the amount of S38AA ⁇ short ⁇ fragment may be directly quantified using the "antibody specifically recognizing S38AA ⁇ short ⁇ fragment" of the present invention.
  • Examples of the anti-S38AA @ long @ fragment antibody and the anti-S38AA @ short @ fragment antibody capable of specifically detecting S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment include, for example, the antibodies detailed in "2. Antibody of the present invention”. .
  • preferred examples of the “antibody that recognizes a C-terminal region common to S38AA long fragment and S38AA short fragment” include antibodies A, B, and C.
  • Preferred examples of the “antibody recognizing the N-terminal region of S38AA long fragment” include “antibody for long fragment”.
  • Preferred examples of the “antibody that recognizes the C-terminal region of S38AA long fragment” include antibodies A, B, and C.
  • Preferred examples of the “antibody specifically recognizing S38AA short fragment” include antibodies A, B, and C.
  • “Long ELISA” is a method for detecting (quantifying) the amount of S38AA @ long @ fragment using "an antibody for long @ fragment” and "at least one antibody selected from the group consisting of antibodies A, B and C”. It has the characteristics of a sandwich ELISA method.
  • Total @ ELISA is mentioned, for example.
  • Total @ ELISA is a method for detecting (quantifying) "the total amount of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment", and a sandwich using "at least two antibodies selected from the group consisting of antibodies A, B and C". It has the feature of an ELISA method.
  • control value used in the method of the present invention
  • the amount of S38AA short fragment in a control sample or the amount of S38AA short fragment previously measured or set for a control or the like may be used, and the method of the present invention may be used. There is no need to measure at the same time.
  • a plurality of individuals may be used as a control group, and an average value of measured values of the plurality of individuals may be used as a control value. That is, the above determination and the like are performed using the amount of S38AA short fragment in a control sample derived from a control group (healthy animal, animal with Alzheimer's disease having a specific progression, etc.) that has already been obtained as a control value. This is also included in the scope of the method of the present invention.
  • a sample derived from a healthy animal is used as a control sample
  • the patient is suffering from Alzheimer's disease or is currently suffering from Alzheimer's disease. It can be determined or determined that one is likely to be affected or likely to be affected by Alzheimer's disease in the future.
  • a sample derived from an animal suffering from Alzheimer's disease at a specific degree of progress as a control sample, if the amount of S38AA short fragment in the test sample is greater than the amount in the control sample, Alzheimer's disease It can be determined or determined that the progress of the disease is higher than the progress of the animal suffering from the disease as a control.
  • the amount of S38AA short fragment in the test sample is larger than the amount in the control sample, Alzheimer's disease It is determined that the disease is progressing, and if the amount is smaller than the amount in the control sample, it can be determined that the disease has been improved.
  • the amount of S38AA short fragment in the test sample is larger than that of the control sample derived from a healthy animal.
  • the Alzheimer's disease preliminary group that is, it cannot be definitely diagnosed that the disease still develops, but A ⁇ and tau protein Accumulation has begun and it can be determined that Alzheimer's disease is likely to develop in the near future.
  • the amount of S38AA ⁇ short ⁇ fragment in the test sample can be reduced. If it is greater than this amount, the current medication may be assessed as ineffective, and if less than the amount in the control sample, the medication may be assessed as effective.
  • the amount of the “polypeptide of SEQ ID NO: 1 in a sample collected from a test animal” is preferably 1.1 to 10 times the control value. More preferably, the ratio is 1.1 to 8 times. More preferably, the ratio is 1.2 to 5 times. Most preferably, the ratio is 1.2 times to 3 times.
  • the amount of the “polypeptide of SEQ ID NO: 1 in a sample collected from a test animal” is preferably 1.1 to 10 times the control value. More preferably, the ratio is 1.1 to 8 times. More preferably, the ratio is 1.2 to 5 times. Most preferably, the ratio is 1.2 times to 3 times.
  • the amount of the “polypeptide of SEQ ID NO: 1 in a sample collected from a test animal” is preferably 0.1 to 0.9 times the control value. More preferably, the ratio is 0.2 times to 0.9 times. More preferably, the ratio is 0.3 to 0.9 times. Most preferably, the ratio is 0.4 times to 0.9 times.
  • the quantitative analysis of S38AA short fragment may be performed by normalizing the amount of S38AA short fragment in the sample with the amount of a standard protein (internal standard protein). That is, after quantifying the amount of S38AA short fragment and the amount of standard protein in the sample using the above method, the ratio of both signals (S38AA short fragment / standard protein) was calculated, and the amount of S38AA short fragment in the sample was calculated. May be expressed as a ratio to the abundance of the standard protein.
  • the standard protein may be a protein that is constantly expressed in a constant amount, and is preferably a protein that is commonly expressed in many tissues and cells.
  • proteins essential for cell survival for example, proteins encoded by genes (housekeeping genes) such as RNA synthases, energy-generating enzymes, ribosome proteins, and cytoskeletal proteins are exemplified.
  • genes housekeeping genes
  • proteins include, but are not limited to, proteins such as ⁇ -actin, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH), and ⁇ -tubulin.
  • GPDH glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase
  • ⁇ -tubulin Particularly preferred is ⁇ -actin.
  • a cut-off value of the amount of S38AA short fragment in blood for Alzheimer's disease or mild cognitive impairment is set in advance, and the amount of S38AA short fragment in blood of the test animal and the cut-off value are set. And may be compared. For example, when the amount of S38AA short fragment in the blood of the test animal is equal to or greater than the cutoff value, the test animal may have Alzheimer's disease, or may have Alzheimer's disease at present or may have Alzheimer's disease in the future. It can be determined that there is a possibility of suffering from the disease.
  • the “cut-off value” is a value that satisfies both high diagnostic sensitivity (diagnosis rate) and high diagnostic specificity (diagnosis rate) when a disease is determined based on the value. For example, a value that shows a high positive rate in an individual who has developed Alzheimer's disease and a high negative rate in an individual who has not developed Alzheimer's disease can be set as the cutoff value.
  • the method of calculating the cutoff value is well known in this field. For example, the amount of S38AA short fragment in the blood of an individual who has developed Alzheimer's disease and an individual who has not developed Alzheimer's disease is calculated, and the diagnostic sensitivity and diagnostic specificity of the calculated values are determined. A ROC (Receiver ⁇ Operating ⁇ Characteristic) curve is created by using the analysis software of (1). Then, a value when the diagnostic sensitivity and the diagnostic specificity are as close to 100% as possible can be obtained, and that value can be used as a cutoff value. Further, for example, it is also preferable to set the cut-off value of “mean value + 2 standard deviation” of the amount of S38AAAshort fragment in the blood of a large number of healthy animals.
  • a value that maximizes the likelihood ratio between the diagnostic sensitivity and the diagnostic specificity is obtained from the ROC curve, and by setting that value as a cutoff value, Alzheimer's disease can be determined with high sensitivity.
  • the point with the lowest diagnostic ability in the ROC curve that is, the point farthest from the line where the area under the ROC curve becomes 0.5 is set as the cutoff value, that is, “sensitivity + specificity ⁇ 1” is calculated. It is also preferable to set the point at which the value becomes the maximum value as the cutoff value.
  • the cutoff value of the amount of S38AA short fragment in terms of the recombinant protein of the present specification is, for example, 45 to 75 units.
  • the cut-off value is preferably 49 to 69 units. More preferably, the cutoff value is 54 to 64 units. More preferably, the cutoff value is 56 to 62 units. More preferably, the cutoff value is from 58 to 61 units. Most preferably, the cutoff value is 59 units.
  • Another preferred cutoff value is 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, and 75 units.
  • the cutoff value of the amount of S38AA short fragment contained in the living body is, for example, 45 to 75 ng / mL.
  • the cut-off value is 49 to 69 ng / mL.
  • the cutoff value is 54 to 64 ng / mL.
  • the cutoff value is 56 to 62 ng / mL.
  • the cutoff value is 58 to 61 ng / mL.
  • the cutoff value is 59 ng / mL.
  • Another preferred cutoff value is 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, and 75 ng / mL.
  • Alzheimer's disease diagnostic markers include, for example, A ⁇ , homocysteine, neurofilament, various inflammation-related proteins (C-reactive protein, IL-1 ⁇ , TNF, IL -6 and TGF ⁇ ), cholesterol, tau, phosphorylated tau and the like, which can be detected according to well-known conventional detection methods.
  • the test animal may have Alzheimer's disease, may have Alzheimer's disease at present, or will have Alzheimer's disease in the future. If it is determined that there is a possibility of performing the treatment, a therapeutic or prophylactic agent for Alzheimer's disease to be administered to the test animal is determined based on the result of the determination, and the test animal is treated with a therapeutically effective amount of the therapeutic or prophylactic agent. By administering the drug, Alzheimer's disease can be treated or prevented.
  • the ⁇ agent for treating Alzheimer's disease '' includes not only a drug intended for the curative treatment of Alzheimer's disease, but also includes, for example, a drug intended for suppressing the progression of Alzheimer's disease. May be used as an “Alzheimer's disease preventive drug”.
  • Alzheimer's disease therapeutic agents include, for example, cholinesterase inhibitors, NMDA receptor antagonists, amyloid ⁇ removers and production inhibitors, and tau protein removers and production inhibitors.
  • Cholinesterase inhibitors include, for example, donepezil, galantamine, rivastigmine, huperzine A, and tacrine.
  • Examples of the NMDA receptor antagonist include memantine.
  • Examples of the amyloid ⁇ removing agent and the production inhibitor include amyloid ⁇ vaccine, amyloid ⁇ removing antibody, amyloid ⁇ producing enzyme inhibitor, amyloid ⁇ aggregation inhibitor, and amyloid ⁇ degradation accelerator.
  • Examples of the tau protein removing agent and the production inhibitor include a tau protein vaccine, a tau protein removing antibody, a tau protein modification inhibitor, a tau protein aggregation inhibitor, and a tau protein degradation accelerator.
  • a tau protein vaccine e.g., a tau protein vaccine, a tau protein removing antibody, a tau protein modification inhibitor, a tau protein aggregation inhibitor, and a tau protein degradation accelerator.
  • the above therapeutic agents may be used in an appropriate combination according to the symptoms of the patient.
  • the above-mentioned Alzheimer's therapeutic agent can be used depending on the severity of the symptom (mild, moderate, severe, etc.), and thus assists in the determination of the above-mentioned progression of Alzheimer's disease of the present invention.
  • the therapeutic agent to be administered to the test animal may be determined using the determination result of the method. Accordingly, the present invention provides a therapeutic drug for Alzheimer's disease, which is used for a test animal (patient) in which the degree of progression of Alzheimer's disease has been determined.
  • the present invention provides an agent for reducing the amount of S38AA short fragment in a living body of an Alzheimer's disease patient or a person who is likely to be affected by Alzheimer's disease (human), or an Alzheimer's disease patient or Alzheimer's disease. It is intended to provide a therapeutic or preventive agent for Alzheimer's disease, which contains, as an active ingredient, a drug that inhibits the production of S38AA short fragment in a living body of a person (human) who may be affected.
  • the amount of S38AA short fragment in a living body of a patient or a person who may be affected includes the amount of S38AA short fragment contained in a tissue or a body fluid of a patient or a person who may be a diseased person.
  • Can include blood, cerebrospinal fluid, urine, saliva, tears, and the like.
  • the agent that reduces the amount of S38AA short fragment include a neutralizing antibody.
  • the agent binds to S38AA short fragment in a living body of a patient or a person who is likely to be affected, thereby forming a free S38AA short fragment in the living body. Can be reduced.
  • the agent that inhibits the production of S38AA short fragment include an inhibitor of an enzyme that cleaves S38AA long fragment to produce 38AA short fragment, and each can be obtained by a method well known to those skilled in the art.
  • a method for selecting a candidate substance for a therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease provides an Alzheimer's disease index using whether a test substance removes S38AA short fragment or inhibits generation of S38AA short fragment. It is intended to provide a method for selecting a candidate substance for a therapeutic or prophylactic drug for a disease, and a substance obtainable by the method.
  • a substance that reduces the amount of S38AA short fragment in blood or a substance that down-regulates the production of S38AA short fragment is selected as a candidate substance for treating or preventing Alzheimer's disease.
  • test substance to be subjected to the selection method of the present invention may be any known compound and a novel compound, for example, using nucleic acids, carbohydrates, lipids, proteins, peptides, low-molecular organic compounds, and combinatorial chemistry techniques.
  • examples include prepared compound libraries, random peptide libraries, and natural components derived from microorganisms, animals, plants, marine organisms, and the like.
  • the selection method of the present invention includes, for example, a step of (i) contacting a test substance with a cell capable of measuring the generation of S38AA short fragment, and (ii) an amount of S38AA short fragment generated in the cell contacted with the test substance. Is measured, and the amount of S38AA short fragment is compared with the amount of S38AA short fragment in control cells not contacted with the test substance.
  • the method may include a step of selecting a test substance to be down-regulated as a candidate substance for a therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease.
  • the selection method of the present invention includes, for example, (i) a step of bringing a test substance into contact with an enzyme that produces S38AA short fragment, and (ii) a step of: Measuring and comparing the amount of S38AA short fragment production with the control enzyme not contacting the test substance; and (iii) reducing the amount of S38AA short fragment production based on the comparison result
  • the method may include a step of selecting a test substance to be controlled as a candidate substance for a therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease.
  • the substrate of the enzyme is not particularly limited as long as it produces S38AA short fragment, and examples thereof include S38AA, S38AA long fragment, and S38AA fragment.
  • the step of contacting the test substance with S38AA @ short @ fragment; and (ii) the amount of free S38AA @ short @ fragment remaining after contacting the test substance is measured to determine the amount of the free S38AA.
  • the free S38AA @ short fragment is bound to the S38AA @ short fragment.
  • the method may include a step of selecting a test substance whose amount is down-regulated as a candidate substance for a therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease.
  • the method may be performed by adding a test substance to a system containing the enzyme that produces the above-mentioned S38AA ⁇ short ⁇ fragment and its substrate, or adding the test substance to a system containing a previously prepared S38AA ⁇ short ⁇ fragment. May be performed.
  • the S38AA @ short @ fragment may be precipitated (for example, by immunoprecipitation) by the contact.
  • the "cell” used in the selection method of the present invention refers to a cell which can evaluate the generation level of S38AA ⁇ short ⁇ fragment to be measured.
  • S38AA @ short @ fragment to be measured can be naturally generated, S38AA @ short @ fragment can be generated by applying a stimulus, or S38AA-expressing cells that have been genetically modified to generate S38AA @ shortfragment. Cells and the like.
  • Cells capable of naturally producing S38AA @ short @ fragment are not particularly limited, and primary cells of mammals (eg, human, mouse, etc.), cell lines derived from the primary cells, and the like may be used as the cells. Can be. It is known that S38AA is expressed in U251 cells and SHSY-5Y cells, and S38AA is also expressed in BE (2) -C cells and SK-N-MC cells. Using a known technique, it is also possible to prepare a transgenic cell in which S38AA or a labeled S38AA such as a FLAG tag is overexpressed. In the S38AA-expressing cells, S38AA ⁇ short ⁇ fragment is released by cutting S38AA or the like by culturing.
  • the generation of S38AA ⁇ short ⁇ fragment can be measured by appropriately culturing under conditions in which S38AA is easily cut or the like.
  • Conditions under which S38AA is easily cleaved or the like include, for example, culture in a medium depleted in glucose or a medium containing a substance known to stimulate the brain physiologically.
  • Specific examples of the substance include cytokines such as TNF ⁇ , interferon ⁇ , interleukin 1, and interleukin 6, amyloid beta and aggregates thereof.
  • the contact between the test substance and cells capable of measuring the generation of S38AA short fragment is performed in a culture medium.
  • the culture medium is appropriately selected depending on the cells capable of measuring the generation of S38AA short fragment. And so on. Culture conditions are also determined as appropriate. For example, the pH of the medium is about 6 to about 8, the culture temperature is usually about 30 to about 40 ° C., and the culture time is about 0.1 to about 72 hours. is there.
  • the contact between the test substance and the enzyme that produces S38AA short fragment is performed in a reaction system containing the enzyme and its substrate.
  • the enzyme concentration, substrate concentration, pH, temperature, etc., enzyme substrate, reaction time, etc. of the reaction system can be appropriately set.
  • an enzyme for producing S38AA short fragment a solution containing the enzyme can be used as an enzyme for producing S38AA short fragment. Examples of the solution include a body fluid (plasma or the like) capable of producing S38AA short fragment, an organ / tissue extract, a cell extract, and the like.
  • the amount of S38AA @ short fragment produced is measured by measuring the amount of S38AA @ short fragment released in the cell culture supernatant or the reaction system according to the method described in (5. Method of the present invention). Can be.
  • the comparison of the production amounts can be preferably performed based on the presence or absence of a significant difference.
  • the amount of S38AA short fragment produced in the control cells or enzymes not contacted with the test substance is the amount of production measured in advance with respect to the measurement of the amount of S38AA short fragment produced in the cells or enzymes contacted with the test substance. Or the amount of production measured at the same time.
  • the substance obtained by the selection method of the present invention is useful as a candidate substance for the development of a new therapeutic or preventive drug for Alzheimer's disease.
  • Example 1 Identification of N-Terminal Cleavage Site of S38AA Long Fragment in Human Plasma After separating a plasma protein from an AD patient by polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), a gel piece containing an S38AA fragment was cut out, and trypsinized. After in-gel digestion, analysis was performed by liquid chromatography-mass spectrometry (LC-MS / MS), and the measured data was subjected to MASCOT database search to determine the N-terminal sequence of the S38AA fragment.
  • SDS-PAGE polyacrylamide gel electrophoresis
  • a sample obtained by mixing plasmas of a plurality of AD patients was applied to 4-12% ⁇ Bis-TrisGel (invitrogen), and the protein was subjected to SDS-PAGE (25 mA, 110 minutes, MOPS buffer). Separation was performed. After staining the gel with Coomassie Brilliant Blue staining, the band seen at 80-100 kDa was cut out and proceeded to the digestion step.
  • the cut gel pieces were placed in a 96-well microplate, acetonitrile was added, the mixture was centrifuged under reduced pressure, 10 mM DTT / 100 mM NH 4 HCO 3 was added, and incubation was performed. After removing the solvent, the 55 mM ICH 2 CONH 2/100 mM NH 4 HCO 3 was added and incubated. After removing the solvent, 100 mM NH 4 HCO 3 was added, the gel was centrifuged under reduced pressure, 0.1% RapiGest / 25 mM NH 4 HCO 3 was added, and incubation was performed.
  • Cleavage of the digestive enzyme trypsin is an enzyme that specifically cleaves the C-terminal of lysine (K) or arginine (R). Since the cleavage reaction does not occur on the C-terminal side of serine (S) of this fragment, this site has already been cleaved. It was suggested that it had been cut. The detection of this peptide fragment revealed that the N-terminal side of the purified S38AA fragment was cleaved at the S / E at positions 398 to 399. The S38AA fragment identified here is called S38AA ⁇ long ⁇ fragment.
  • Example 2 Identification of N-terminal cleavage site of S38AA short fragment in human plasma Anti-S38AA polyclonal antibody derived from rabbit recognizing the N-terminus of S38AA Long fragment ("MBL”, "Antibody for S38AA Long fragment”, or “Long fragment") Anti-S38AA long fragment was removed by immunoprecipitation using a mouse-derived anti-S38AA monoclonal antibody A (antibody-producing hybridoma using the peptide of a part of the C-terminal amino acid sequence of the S38AA fragment as an immunogen).
  • Antibody A mouse-derived anti-S38AA monoclonal antibody B (antibody-producing hybridoma was established using a partial peptide of the C-terminal amino acid sequence of the S38AA fragment as an immunogen). Separated and purified; antibody B) or mouse-derived anti-S38AA monoclonal antibody C (antibody-producing hybridoma established using E. coli recombinant protein of S38AA long fragment as an immunogen, separated and purified; remaining using antibody C) The resulting S38AA fragment was immunoprecipitated, the fraction was purified on a reverse phase column, digested with trypsin, and analyzed by LC-MS / MS to determine the N-terminal sequence of the S38AA fragment.
  • a PBS containing a protease inhibitor (cComplete Tablets Mini, Roche) is added to a plasma mixture of AD patients, and Protein G Mag Sepharose Xtra (beads, GE Healthcare) is further added and mixed. Endogenous immunoglobulins were removed. An antibody for long fragment was added to the supernatant from which the beads had been removed, and an antigen-antibody reaction was performed. After mixing, beads were newly added, and the recovered protein containing the antibody for long fragment and the S38AA long fragment adsorbed on the antibody was removed. The antibody A, B or C described above was added to the supernatant from which the beads had been removed, and an antigen-antibody reaction was performed.
  • each of the obtained fractions was measured by a sandwich ELISA using two antibodies recognizing the C-terminal region of the S38AA fragment, and the fraction containing the S38AA fragment was subjected to an enzyme solution (1 M NH 4 HCO 3 , 10 mM CaCl 2 , 1 ng) / ⁇ L trypsin), and the obtained peptide was concentrated with GL-tip SDB and GL-Tip GC (GL Science).
  • the obtained peptide was analyzed by LC-MS / MS.
  • MASCOT ⁇ database ⁇ search was performed on the data obtained by the Q-Active ⁇ HF mass spectrometer against the SwissProt database, S38AA was identified with the highest score, and a plurality of peptide fragments were identified (FIG. 3).
  • the peptide located at the N-terminal side was the sequence from the 617th to the 627th, and an MS / MS spectrum showing the sequence was observed (FIG. 4). This cleavage site was located at the C-terminal side of asparagine (N) at position 616.
  • Cleavage of the digestive enzyme trypsin is an enzyme that specifically cleaves the C-terminal of lysine (K) or arginine (R). Since the cleavage reaction does not occur on the C-terminal side of asparagine (N) of this fragment, Was cut off. From the detection of this peptide fragment, it was found that the purified S38AA fragment was cleaved at N / G at positions 617 to 618. The S38AA fragment identified here is called S38AA ⁇ short ⁇ fragment.
  • Example 3 Identification of C-terminal Cleavage Site of S38AA Long Fragment Fragment in Human Plasma An S38AA long fragment was purified by an antibody column purification method using the “polyclonal antibody for rabbit S38AA long fragment (antibody for long fragment)” used in Example 2. After separating the fractions by SDS-PAGE, a gel piece containing S38AA long fragment was cut out, analyzed by LC-MS / MS after in-gel digestion with trypsin, and subjected to MASCOT database search for the measured data. The sequence of the C-terminal fragment of S38AA long fragment was determined.
  • the column was eluted with 0.1 M Glycine-HCl / 0.05% Tween-20 (pH 2.7). The eluate was immediately returned to neutral with 1M Tris-HCl (pH 9.0).
  • the obtained sample was applied to HiTrap ⁇ Q ⁇ FF ⁇ column (GE Healthcare) which had been equilibrated with 50 mM mM Tris-HCl (pH 7.4) in advance to remove the surfactant.
  • the sample was concentrated by vacuum centrifugation, 50 mM DTT / LDS buffer was added thereto, and the mixture was heated.
  • the cut gel pieces were placed in a 96-well microplate, acetonitrile was added, and sonication was performed. Then, it was centrifugally dried under reduced pressure, 10 mM DTT / 25 mM NH 4 HCO 3 was added, and incubation was performed. After removing the solvent, the 55 mM ICH 2 CONH 2/25 mM NH 4 HCO 3 was added and incubated at the dark. After removing the solvent, 50 mM NH 4 HCO 3 was added and allowed to stand, and then acetonitrile was added for sonication.
  • an enzyme solution 50 mM NH 4 HCO 3 , 5 ng / ⁇ L trypsin
  • the obtained peptide was analyzed by LC-MS / MS.
  • LC-MS / MS When the data obtained by the Orbitrap mass spectrometer were subjected to MASCOT38database search for the amino acid sequence of the S38AA protein, a plurality of peptide fragments were identified in the amino acid sequence of the S38AA protein (FIG. 5).
  • the peptide located at the C-terminal side is the 1040th to 1049th sequence, and an MS / MS spectrum showing the sequence was observed (FIG. 6).
  • this cleavage site was on the C-terminal side of leucine (L) at position 1049.
  • Cleavage of the digestive enzyme trypsin is an enzyme that specifically cleaves the C-terminal of lysine (K) or arginine (R). Since the cleavage reaction does not occur on the C-terminal side of leucine (L) of this fragment, this site has already been cleaved. It was suggested that it had been cut. From the detection of this peptide fragment, it was found that the C-terminal side of the purified S38AA ⁇ long ⁇ fragment was cleaved at the 1049th to 1050th L / R.
  • S38AA @ short fragment had the same reactivity with the "antibody recognizing the C-terminus of S38AA @ long fragment (antibody A, antibody B, or antibody C)" used in Example 2, and thus S38AA @ short fragment was used. It was considered that the C-terminus of the fragment was also cleaved at the same site.
  • Example 4 Preparation of S38AA long fragment and S38AA short fragment Escherichia coli recombinant protein and measurement by ELISA S38AA long fragment and S38AA short fragment Escherichia coli recombinant proteins were prepared, and only S38AA long quantification was performed using them as samples. An ELISA and a Total ELISA that quantifies both fragments were constructed.
  • a transformant of Escherichia coli BL21 (DE3) into which plasmid DNA of S38AAAlong fragment sequence (399-1049 amino acid sequence) and S38AA short fragment sequence (617-1049 amino acid sequence) was introduced was prepared. After the shaking culture was continued, the cells were collected by centrifugation. A small amount of cells was suspended by adding a protein extraction reagent B-PER (Thermo Fisher Scientific), and the centrifuged supernatant was subjected to SDS-PAGE to confirm the expression of the target protein.
  • a protein extraction reagent B-PER Thermo Fisher Scientific
  • Buffer A (20 mM Tris HCl pH 8.0, 200 mM NaCl, 10% glycerol, 20 mM imidazole), protease inhibitor cOmplete EDTA-free (Roche) and nucleolytic enzyme Benzonase were added to the cells and suspended. The cells were disrupted and centrifuged. After removing the residual cells from the centrifuged supernatant using a 0.22 ⁇ m filter, Ni affinity purification was performed using HisTrap @ HP. The eluted fractions of the target protein were collected and used as a standard. As a result of measuring the protein concentration of the sample, they were 1.4 mg / mL (long fragment) and 1.6 mg / mL (short fragment), respectively.
  • Example 5 Quantification of S38AA long fragment and S38AA short fragment in human plasma (Total ELISA-Long ELISA subtraction method) In order to quantify S38AA long fragment and S38AA short fragment contained in human plasma, quantification by ELISA using a subtraction method was performed.
  • the amount of S38AA short fragment contained in each of the plasmas derived from 4 healthy subjects and 8 moderate and severe AD patients was quantified using the above-described Total ELISA and Long ELISA.
  • the quantification was performed according to the method described in Example 4.
  • the calibration curve of each ELISA was prepared by measuring the S38A Along fragment standard protein.
  • the amount of S38AA short fragment was calculated by subtracting the quantitative value of Long ELISA from the quantitative value of Total ELISA.
  • quantitative values of S38AA long fragment and S38AA short fragment in each sample were obtained (FIG. 8).
  • the amount of S38AA short fragment and the amount of S38AA long fragment contained in the plasma derived from healthy subjects and AD patients were analyzed. It was found that the discrimination of patients was high, and that moderate and severe AD patients could be determined with high sensitivity (FIG. 9).
  • Example 6 Quantification of S38AA long fragment and S38AA short fragment in human plasma (Long fragment immunoprecipitation method) In order to quantify S38AA long fragment and S38AA short fragment contained in human plasma, removal of S38AA long fragment using immunoprecipitation method and ELISA quantification were performed.
  • endogenous endogenous by adding PBS to each of samples obtained by mixing plasmas of a plurality of healthy persons and AD patients, adding Protein G G Mag Sepharose Xtra (beads, GE Healthcare) and mixing. Immunoglobulin was removed. After the reaction, a rabbit-derived polyclonal antibody for S38AA @ long @ fragment (antibody for long @ fragment) was added to the supernatant to carry out an antigen-antibody reaction. After the reaction, this reaction solution was mixed with new beads, and the antigen-antibody complex was collected on the beads. By adding 0.1 M Gly-HCl (pH 2.8) to the collected beads, the collected protein containing S38AA ⁇ long ⁇ fragment was eluted.
  • the eluate was immediately neutralized with 1M Tris-HCl (pH 9.0).
  • the amounts of S38AAlongfragment and S38AAshortfragment contained in the obtained eluate (S38AA ⁇ ⁇ ⁇ long fragment fraction) and supernatant (S38AA ⁇ ⁇ short fragment fraction) were quantified using Total ELISA, respectively.
  • the quantification was performed according to the method described in Example 4.
  • the calibration curve of each ELISA was prepared by measuring the S38AA @ long @ fragment standard protein. As a result, quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment in each sample were obtained (FIG. 10). This result suggested that the amount of S38AA ⁇ short ⁇ fragment was significantly increased in AD patients as compared to S38AA ⁇ long ⁇ fragment.
  • Example 7 Comparison of AD diagnostic ability by quantification of each S38AA fragment (Total ELISA-Long ELISA subtraction method) For comparison of AD diagnostic ability by quantification of each S38AA fragment, ELISA quantification using a subtraction method was performed.
  • the quantification was performed according to the method described in Example 4.
  • the calibration curve of each ELISA was prepared by measuring the S38AA @ long @ fragment standard protein.
  • the amount of S38AA short fragment was calculated by subtracting the quantitative value of Long ELISA from the quantitative value of Total ELISA.
  • quantitative values of S38AA @ long @ fragment and S38AA @ short @ fragment for each sample were obtained (FIG. 11). It was also suggested that mild AD can be diagnosed with high sensitivity by quantifying only the amount of S38AA ⁇ short ⁇ fragment compared to the total amount or the amount of S38AA ⁇ long ⁇ fragment (FIG. 12).
  • Example 8 Quantification of S38AA fragment in human plasma by combining various anti-S38AA fragment antibodies 1
  • ELISA quantification using various anti-S38AA fragment antibodies in combination was performed.
  • Plasmas from four healthy subjects and eight AD patients were respectively subjected to ELISA using an antibody consisting of two combinations of antibody A, antibody B, and antibody C (patterns 1, 2, and 3). Or 3) ".
  • the quantification was performed according to the method described in Example 4.
  • the calibration curve of each ELISA was prepared by measuring the S38AA long fragment standard protein, and the quantitative value of each sample was obtained (FIG. 14).
  • Pattern 1 ELISA using antibody A and antibody B
  • Pattern 2 ELISA using antibody A and antibody C
  • Pattern 3 ELISA using antibody B and antibody C
  • Example 9 Quantification of S38AA fragment in human plasma by combining various anti-S38AA fragment antibodies 2
  • ELISA quantification using various anti-S38AA fragment antibodies in combination was performed.
  • Plasmas from four healthy subjects and eight AD patients were respectively referred to as “One of the antibodies for Long fragment and the other as one combination ELISA of antibody A, antibody B, and antibody C (pattern 4). , 5 or 6) ".
  • the quantification was performed according to the method described in Example 4.
  • the calibration curve of each ELISA was prepared by measuring the S38AA long fragment standard protein, and the quantitative value of each sample was obtained (FIG. 15).
  • Pattern 4 ELISA using antibody for Long fragment and antibody A
  • Pattern 5 ELISA using antibody for Long fragment and antibody B
  • Pattern 6 ELISA using antibody for Long fragment and antibody C
  • Example 10 Quantification of S38AA short fragment in human plasma using the results of Examples 8 and 9 From the “total amount of“ amount of S38AA short fragment ”and“ amount of S38AA short fragment ”obtained in Example 8, By subtracting the “amount of S38AA long fragment” obtained in Example 9, the “amount of S38AA short fragment” was obtained (FIG. 16). Specifically, subtraction was performed using the following combinations.
  • Pattern 1-4 Result of subtracting "Measurement result of Pattern 4" from “Measurement result of Pattern 1"
  • Pattern 1-5 Subtracting "Measurement result of Pattern 5" from “Measurement result of Pattern 1”
  • Result of pattern 1-6 Result of subtracting “measurement result of pattern 6” from “measurement result of pattern 1”
  • Pattern 2-4 result of “measurement result of pattern 4” from “measurement result of pattern 2”
  • Pattern 2-5 Result of subtracting "Measurement result of Pattern 5" from “Measurement result of Pattern 2”
  • Pattern 2-6 Result of subtraction of "Measurement result of Pattern 2” Result of subtracting “Result”
  • Pattern 3-4 Result of subtracting “Measurement result of Pattern 4” from “Result of measurement of Pattern 3”
  • Pattern 3-5 Result of “Measurement result of Pattern 3” 3-6: Result of subtracting “measurement result of pattern 6” from “measurement result of pattern 3”
  • the present invention is based on Japanese Patent Application No. 2018-148924 filed in Japan (filing date: August 7, 2018), the contents of which are incorporated in full herein.
  • the present invention is useful for diagnosis and treatment of Alzheimer's disease.

Abstract

本発明は、アルツハイマー病の判定に有用な以下のいずれかのアミノ酸配列からなるポリペプチド: (1)配列番号:1で表されるアミノ酸配列;または (2)配列番号:1で表されるアミノ酸配列において、1~数個のアミノ酸が置換、欠失、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列 等を提供する。

Description

アルツハイマー病の判定薬および判定方法
 本発明は、アルツハイマー病の判定薬、アルツハイマー病の判定方法、アルツハイマー病の治療方法、アルツハイマー病の治療薬の候補物質の選別方法、および新規な抗S38AA抗体等に関する。
 アルツハイマー病は、短期記憶力の低下、軽度学習障害より始まり、高次脳機能障害、とりわけ視空間失認、観念失行、構成失行等を伴い、最終的に運動障害やいわゆる人格的破壊に至る進行性認知症であって、現在根治的治療法は見出されていない。2040年にはアルツハイマー病患者は世界で240万人になるとも予測されており、その根治療法あるいは早期診断の重要性が高まっている。その進行は、本邦でしばしば認められる血管障害性認知症とは異なり、数年から十年以上にわたると考えられている。アルツハイマー病の一つである、遺伝子変異の異常による家族性アルツハイマー病患者の場合、その多くが数年で急速にその病状が悪化し、発症年齢も30歳~40歳代と早期発症であることが特徴である。遺伝子変異以外のアルツハイマー病のリスクファクターとして、年齢・家族歴・遺伝子型・高血圧・糖尿病・喫煙等が知られている。
 アルツハイマー病に特徴的な病理変化として、細胞外にアミロイドベータを主たる構成成分とするアミロイドプラークが蓄積すること、および神経細胞内に高度にリン酸化されたタウ蛋白の蓄積が起こることが広く知られている。空間的・時間的な脳内の病理変化については、早期アルツハイマー病患者の海馬、特にCA1と呼ばれる領域の錐体細胞内リン酸化タウの蓄積がすでにみとめられることから、本領域の錐体細胞が空間的にも時間的にもアルツハイマー病の影響を強くかつ早期に受ける、すなわち脆弱性を示すと考えられる(非特許文献2)。一方、上述したように運動障害はアルツハイマー病のほぼ最終段階で現れることから、小脳のプルキンエ細胞は最もアルツハイマー病に抵抗性を示すと考えられている。
 アルツハイマー病の発症率に関しては75歳を境に急速に増加すると考えられ、対症的薬物療法による病態の進行抑制のため、早期発見、早期治療の開始が重要である。現状ではアルツハイマー病の根治療法がないため、アルツハイマー病の早期発見のための診断マーカーの探索が精力的に行われ、血中あるいは脳脊髄液中のアミロイドベータ(Aβ40、Aβ42)、リン酸化タウ蛋白の測定が、最も有力と考えられている。しかしながら、これらのマーカー単独あるいは、これらのマーカーの組み合わせ(例えば、Aβ40とAβ42比)を用いても、将来におけるアルツハイマー病の罹患、すなわちアルツハイマー病予備群を明確に見出すことは困難である。
 一方、アルツハイマー病の診断マーカーとしてS38AA、特にその細胞外ドメインが報告されている(特許文献1)。
 しかしながら、アルツハイマー病は、早期発見、早期治療の開始が重要であるがゆえに、更に高感度でアルツハイマー病の発症やアルツハイマー病予備群を判定できる方法が求められていた。
国際公開第2012/091138号パンフレット
Exp Gerontol.(2000)35:851-64
 本発明の課題は、アルツハイマー病の判定薬、アルツハイマー病の判定方法、アルツハイマー病の治療方法、アルツハイマー病の治療薬の候補物質の選別方法等を提供することにある。
 S38AA断片は、アルツハイマー病患者(以下、「AD患者」という場合がある)の脳脊髄液および血漿で増加することが知られているところ、本発明者らは、アルツハイマー病と特に相関性の高い2種のS38AA断片(S38AA short fragment(以下、「short fragment」と略記する場合がある)、およびS38AA long fragment(以下、「long fragment」と略記する場合がある)を見出した。更に、鋭意検討を重ねた結果、本発明者らは、S38AA short fragmentが、高精度のアルツハイマー病の発症や予備群の判定および該疾患の進行の程度の判定の指標として極めて高い信頼性を有することを見出し、本発明を完成するに至った。
 すなわち、本発明は以下に関する。
[1]以下のいずれかのアミノ酸配列からなるポリペプチド:
(1)配列番号:1で表されるアミノ酸配列;または
(2)配列番号:1で表されるアミノ酸配列において、1~数個のアミノ酸が置換、欠失、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列。
[2][1]に記載のポリペプチドを特異的に認識する抗体。
[3][1]に記載のポリペプチドをコードする核酸。
[4][2]に記載の抗体を含むキット。
[5]更に[1]に記載のポリペプチドを含む、[4]に記載のキット。
[6]被検試料と[2]に記載の抗体を接触させる工程を含む、[1]に記載のポリペプチドを検出する方法。
[7]アルツハイマー病を判定するために用いられる、[4]または[5]に記載のキット。
[8][1]に記載のポリペプチドの量を測定可能な単一、または複数種類の抗S38AA抗体を含有する、アルツハイマー病の判定薬。
[9]前記抗S38AA抗体が[2]に記載の抗体である、[8]に記載の判定薬。
[10][2]に記載の抗体の、アルツハイマー病の判定薬の製造のための使用。
[11]被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを検出することを特徴とする、該動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性を判定する方法。
[12]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、[11]に記載の方法。
[13]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)アルツハイマー病に罹患しているまたは罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程を含む、アルツハイマー病の進行度の判定を補助する方法。
[14]被検動物がヒトである、[11]~[13]のいずれか一つに記載の方法。
[15]試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、[11]~[14]のいずれか一つに記載の方法。
[16]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、[11]~[15]のいずれか一つに記載の方法。
[17]以下の(i)~(iv)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患しているもしくは罹患している可能性がある、または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、および
(iv)(iii)の結果に基づき、現在アルツハイマー病に罹患しているもしくは罹患している可能性がある、または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定された被検動物に、アルツハイマー病治療薬または予防薬を投与する工程を含む、アルツハイマー病の治療または予防方法。
[18]以下の(i)~(v)の工程:
(i)現在アルツハイマー病に罹患しているまたは罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程、
(iv)(iii)の判定結果に基づき、アルツハイマー病治療薬または予防薬を選定する工程、および
(v)(iv)により選定されたアルツハイマー病治療薬を被検動物に投与する工程を含む、アルツハイマー病の治療または予防のための投薬方法。
[19]アルツハイマー病治療薬が、コリンエステラーゼ阻害薬、NMDA受容体拮抗薬、アミロイドβ除去薬および蓄積抑制薬、ならびにタウタンパク質除去薬および蓄積抑制薬からなる群から選択される、[17]または[18]に記載の方法。
[20]コリンエステラーゼ阻害薬が、ドネペジル、ガランタミン、リバスチグミン、フペルジンA、またはタクリンであり、NMDA受容体拮抗薬がメマンチンである、[19]に記載の方法。
[21]以下の(i)~(iv)の工程で、アルツハイマー病の進行度が判定された患者に用いられる、アルツハイマー病治療薬:
(i)現在アルツハイマー病に罹患しているまたは罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程、および
(iv)(iii)の判定結果に基づき、アルツハイマー病治療薬を投与することを決定する工程。
[22]アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の[1]に記載のポリペプチドの量を減少させる薬剤、またはアルツハイマー病患者またはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害する薬剤を、有効成分として含有するアルツハイマー病の治療薬または予防薬。
[23]被検物質が、アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の[1]に記載のポリペプチドの量を減少させること、またはアルツハイマー病患者またはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害することを指標とする、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質を選別する方法。
[24]配列番号1または2のポリペプチドを認識する抗体であって、
 前記抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号4、配列番号6、配列番号8、配列番号10、配列番号12、配列番号14、配列番号16、配列番号18、配列番号20、または配列番号22と少なくとも95%の相同性を有し、
 前記抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号5、配列番号7、配列番号9、配列番号11、配列番号13、配列番号15、配列番号17、配列番号19、配列番号21、または配列番号23と少なくとも95%の相同性を有する、抗体。
[25]配列番号1または2のポリペプチドを認識する抗体であって、
(1)配列番号4の重鎖可変領域、および配列番号5の軽鎖可変領域、
(2)配列番号6の重鎖可変領域、および配列番号7の軽鎖可変領域、
(3)配列番号8の重鎖可変領域、および配列番号9の軽鎖可変領域、
(4)配列番号10の重鎖可変領域、および配列番号11の軽鎖可変領域、
(5)配列番号12の重鎖可変領域、および配列番号13の軽鎖可変領域、
(6)配列番号14の重鎖可変領域、および配列番号15の軽鎖可変領域、
(7)配列番号16の重鎖可変領域、および配列番号17の軽鎖可変領域、
(8)配列番号18の重鎖可変領域、および配列番号19の軽鎖可変領域、
(9)配列番号20の重鎖可変領域、および配列番号21の軽鎖可変領域、または
(10)配列番号22の重鎖可変領域、および配列番号23の軽鎖可変領域
を含む抗体。
[26][24]または[25]に記載の抗体を含むキット。
[27]更に配列番号1のポリペプチドを含む、[26]に記載のキット。
[28]被検試料と[24]または[25]に記載の抗体を接触させる工程を含む、配列番号1のポリペプチドを検出する方法。
[29]アルツハイマー病を判定するために用いられる、[26]または[27]に記載のキット。
[30]配列番号1のポリペプチドの量を測定可能な、[24]または[25]に記載の抗体を含有する、アルツハイマー病の判定薬。
[31]被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチドを、[24]または[25]に記載の抗体を用いて検出することを特徴とする、該動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性を判定する方法。
[32]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチドを、[24]または[25]に記載の抗体を用いて、定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、[31]に記載の方法。
[33]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)アルツハイマー病に罹患または罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の請求項1に記載のポリペプチドを、[24]または[25]に記載の抗体を用いて、定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程
を含む、アルツハイマー病の進行度の判定をする方法。
[34]被検動物がヒトである、[31]~[33]のいずれか一つに記載の方法。
[35]試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、[31]~[34]のいずれか一つに記載の方法。
[36]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、[31]~[35]のいずれか一つに記載の方法。
[37]以下の(i)~(iv)の工程:(i)現在アルツハイマー病に罹患または罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の配列番号1に記載のポリペプチドを、[24]または[25]のいずれか一項に記載の抗体を用いて、定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程、および
(iv)(iii)の判定結果に基づき、それを必要とする被験動物にアルツハイマー病治療薬を投与する工程
を含む、アルツハイマー病の進行度が判定された患者に、アルツハイマー病治療薬を投与することを特徴とする、アルツハイマー病の治療方法。
[38][24]または[25]に記載の抗体を用いて診断したアルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の配列番号1のポリペプチドの量を減少させる薬剤、または前記アルツハイマー病患者あるいは前記アルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害する薬剤を、有効成分として含有するアルツハイマー病の治療方法または予防方法。
[39]被検物質が、アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の配列番号1に記載のポリペプチドの量を減少させること、またはアルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害することを指標とする、[24]または[25]に記載の抗体を用いたアルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質を選別する方法。
[項1]以下のいずれかのアミノ酸配列からなるポリペプチド:
(1)配列番号1で表されるアミノ酸配列、または
(2)配列番号1で表されるアミノ酸配列において、1~数個のアミノ酸が置換、欠失、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列。
[項2]配列番号1で表されるアミノ酸配列からなる、項1に記載のポリペプチド。
[項3]項1または2に記載のポリペプチドをコードする核酸。
[項4]項1または2に記載のポリペプチドを認識する抗体。
[項5]さらに配列番号2のポリペプチドを認識する、項4に記載の抗体。
[項6]前記抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号4、配列番号6、配列番号8、配列番号10、配列番号12、配列番号14、配列番号16、配列番号18、配列番号20、または配列番号22と少なくとも95%の相同性を有し、かつ
前記抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号5、配列番号7、配列番号9、配列番号11、配列番号13、配列番号15、配列番号17、配列番号19、配列番号21、または配列番号23と少なくとも95%の相同性を有する、項4または5に記載の抗体。
[項7]前記抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号4、配列番号6、配列番号8、配列番号10、配列番号12、配列番号14、配列番号16、配列番号18、配列番号20、または配列番号22と少なくとも99%の相同性を有し、かつ
前記抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号5、配列番号7、配列番号9、配列番号11、配列番号13、配列番号15、配列番号17、配列番号19、配列番号21、または配列番号23と少なくとも99%の相同性を有する、項4~6のいずれか一項に記載の抗体。
[項8]前記抗体の重鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号4、配列番号6、配列番号8、配列番号10、配列番号12、配列番号14、配列番号16、配列番号18、配列番号20、または配列番号22であり、かつ
前記抗体の軽鎖可変領域のアミノ酸配列が、配列番号5、配列番号7、配列番号9、配列番号11、配列番号13、配列番号15、配列番号17、配列番号19、配列番号21、または配列番号23である、項4~6のいずれか一項に記載の抗体。
[項9](1)配列番号4の重鎖可変領域、および配列番号5の軽鎖可変領域を含む抗体、
(2)配列番号6の重鎖可変領域、および配列番号7の軽鎖可変領域を含む抗体、
(3)配列番号8の重鎖可変領域、および配列番号9の軽鎖可変領域を含む抗体、
(4)配列番号10の重鎖可変領域、および配列番号11の軽鎖可変領域を含む抗体、
(5)配列番号12の重鎖可変領域、および配列番号13の軽鎖可変領域を含む抗体、
(6)配列番号14の重鎖可変領域、および配列番号15の軽鎖可変領域を含む抗体、
(7)配列番号16の重鎖可変領域、および配列番号17の軽鎖可変領域を含む抗体、
(8)配列番号18の重鎖可変領域、および配列番号19の軽鎖可変領域を含む抗体、
(9)配列番号20の重鎖可変領域、および配列番号21の軽鎖可変領域を含む抗体、または
(10)配列番号22の重鎖可変領域、および配列番号23の軽鎖可変領域を含む抗体
である、項4~8のいずれか一項に記載の抗体。
[項10]被検試料と項4~9のいずれか一項に記載の抗体を接触させる工程を含む、項1または2に記載のポリペプチドを検出する方法。
[項11]項4~9のいずれか一項に記載の抗体を含むキット。
[項12]更に項1または2に記載のポリペプチドを含む、項11に記載のキット。
[項13]アルツハイマー病を判定するために用いられる、項11または12に記載のキット。
[項14]項1または2に記載のポリペプチドの量を測定可能な単一、または複数種類の抗S38AA抗体を含有する、アルツハイマー病の判定薬。
[項15]前記抗S38AA抗体が項4~9のいずれか一項に記載の抗体である、項14に記載の判定薬。
[項16]項4~9のいずれか一項に記載の抗体の、アルツハイマー病の判定薬の製造のための使用。
[項17]被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを検出することを特徴とする、該動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性を判定する方法。
[項18]前記項1または2に記載のポリペプチドを、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて検出することを特徴とする、項17に記載の方法。
[項19]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、項17または18に記載の方法。
[項20]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の1.1倍以上の量であることを特徴とする、項19に記載の方法。
[項21]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、カットオフ値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、項17または18に記載の方法。
[項22]前記カットオフ値が、45~75ユニットであることを特徴とする、項21に記載の方法。
[項23]前記カットオフ値が、45~75ng/mLであることを特徴とする、項21に記載の方法。
[項24]前記被検動物がヒトである、項17~23のいずれか一項に記載の方法。
[項25]前記試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、項17~24のいずれか一項に記載の方法。
[項26]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、項17~25のいずれか一項に記載の方法。
[項27]被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを検出することを特徴とする、アルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項28]前記項1または2に記載のポリペプチドを、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて検出することを特徴とする、項27に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項29]以下の(i)~(iii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、項27または28に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項30]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の1.1倍以上の量であることを特徴とする、項29に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項31]以下の(i)~(ii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、カットオフ値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、項27または28に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項32]前記カットオフ値が、45~75ユニットであることを特徴とする、項31に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項33]前記カットオフ値が、45~75ng/mLであることを特徴とする、項31に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項34]前記被検動物がヒトである、項27~33のいずれか一項に記載の方法。
[項35]前記試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、項27~34のいずれか一項に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項36]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、項27~35のいずれか一項に記載のアルツハイマー病の進行度を判定する方法。
[項37]被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを検出し、被検動物にアルツハイマー病治療薬を投与することを特徴とする、アルツハイマー病の治療または予防方法。
[項38]前記項1または2に記載のポリペプチドを、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて検出することを特徴とする、項37に記載の治療または予防方法。
[項39]以下の(i)~(iv)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患しているもしくは罹患している可能性がある、または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、および
(iv)(iii)の結果に基づき、現在アルツハイマー病に罹患しているもしくは罹患している可能性がある、または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定された被検動物に、アルツハイマー病治療薬または予防薬を投与する工程を含む、項37または38に記載の治療または予防方法。
[項40]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の1.1倍以上の量であることを特徴とする、項39に記載の治療または予防方法。
[項41]以下の(i)~(ii)の工程:
(i)被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、カットオフ値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
を含む、項37または38に記載の治療または予防方法。
[項42]前記カットオフ値が、45~75ユニットであることを特徴とする、項41に記載の治療または予防方法。
[項43]前記カットオフ値が、45~75ng/mLであることを特徴とする、項41に記載の治療または予防方法。
[項44]前記被検動物がヒトである、項37~43のいずれか一項に記載の治療または予防方法。
[項45]前記試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、項37~44のいずれか一項に記載の治療または予防方法。
[項46]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、項37~45のいずれか一項に記載の治療または予防方法。
[項47]アルツハイマー病治療薬が、コリンエステラーゼ阻害薬、NMDA受容体拮抗薬、アミロイドβ除去薬および産生抑制薬、ならびにタウタンパク質除去薬および産生抑制薬からなる群から選択される、項37~46のいずれか一項に記載の治療または予防方法。
[項48]前記コリンエステラーゼ阻害薬が、ドネペジル、ガランタミン、リバスチグミン、フペルジンA、およびタクリンからなる群から選択される少なくとも一つである、項47に記載の治療または予防方法。
[項49]前記NMDA受容体拮抗薬が、メマンチンである、項47に記載の治療または予防方法。
[項50]前記アミロイドβ除去薬および産生抑制薬が、アミロイドβワクチン、アミロイドβ除去抗体、アミロイドβ産生酵素阻害剤、アミロイドβ凝集抑制剤およびアミロイドβ分解促進剤からなる群から選択される少なくとも一つである、項47に記載の治療または予防方法。
[項51]前記アミロイドβ除去薬および産生抑制薬が、CNP-520、E-2609、aducanumab、solanezumab、gantenerumab、crenezumab、amilomotide、ASD-005、HSH-971、ELND-005、ALZT-OP1、nilvadipine、ACI-24、UB-311、AFFITOPE AD-02、LY-3002813、BAN-2401、Neurostem-AD、CT-1812、ID-1201、NIC5-15、BI-425809、Posiphen、PQ-912、bryostatin-1、Apabetalone、PBT-2、RIV-1061-IR、MEDI-1814、PF-05236812、SAR-228810、Lu-AF20513、PRI-002、IRX-4204、GC-021109、AAD-2004、CTS-21166、LY-3323795、benfotiamine、bisnorcymserine、MDR-1339、KHK-6640、およびNPT-088からなる群から選択される少なくとも一つである、項47に記載の治療または予防方法。
[項52]前記タウタンパク質除去薬および産生抑制薬が、タウタンパク質ワクチン、タウタンパク質除去抗体、タウタンパク質修飾抑制剤、タウタンパク質凝集抑制剤、およびタウタンパク質分解促進剤からなる群から選択される少なくとも一つである、項47に記載の治療または予防方法。
[項53]前記タウタンパク質除去薬および産生抑制薬が、TRx-237、TPI-287、ABBV-8E12、RG-6100、AADvac1、RO7105705、PTI-80、JNJ-63733657、UCB-0107、BIIB-076、MC-1、ACI-35、およびAZP-2006からなる群から選択される少なくとも一つである、項47に記載の治療または予防方法。
[項54]被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量し、アルツハイマー病治療薬または予防薬を選定し、被検動物にアルツハイマー病治療薬を投与することを特徴とする、アルツハイマー病の治療または予防のための投薬方法。
[項55]前記項1または2に記載のポリペプチドを、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて定量することを特徴とする、項54に記載の投薬方法。
[項56](i)現在アルツハイマー病に罹患しているまたは罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の[1]に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程、
(iv)(iii)の判定結果に基づき、アルツハイマー病治療薬または予防薬を選定する工程、および
(v)(iv)により選定されたアルツハイマー病治療薬を被検動物に投与する工程を含む、項54または55に記載の投薬方法。
[項57]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の1.1倍以上の量である場合、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定することを特徴とする、項56に記載の投薬方法。
[項58]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の0.9倍以下の量である場合、前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定することを特徴とする、項56に記載の投薬方法。
[項59]前記被検動物がヒトである、項54~58のいずれか一項に記載の投薬方法。
[項60]前記試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、項54~59のいずれか一項に記載の投薬方法。
[項61]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、項54~60のいずれか一項に記載の投薬方法。
[項62]アルツハイマー病治療薬が、コリンエステラーゼ阻害薬、NMDA受容体拮抗薬、アミロイドβ除去薬および産生抑制薬、ならびにタウタンパク質除去薬および産生抑制薬からなる群から選択される、項54~61のいずれか一項に記載の投薬方法。
[項63]前記コリンエステラーゼ阻害薬が、ドネペジル、ガランタミン、リバスチグミン、フペルジンA、およびタクリンからなる群から選択される少なくとも一つである、項62に記載の投薬方法。
[項64]前記NMDA受容体拮抗薬が、メマンチンである、項62に記載の投薬方法。
[項65]前記アミロイドβ除去薬および産生抑制薬が、アミロイドβワクチン、アミロイドβ除去抗体、アミロイドβ産生酵素阻害剤、アミロイドβ凝集抑制剤およびアミロイドβ分解促進剤からなる群から選択される少なくとも一つである、項62に記載の投薬方法。
[項66]前記アミロイドβ除去薬および産生抑制薬が、CNP-520、E-2609、aducanumab、solanezumab、gantenerumab、crenezumab、amilomotide、ASD-005、HSH-971、ELND-005、ALZT-OP1、nilvadipine、ACI-24、UB-311、AFFITOPE AD-02、LY-3002813、BAN-2401、Neurostem-AD、CT-1812、ID-1201、NIC5-15、BI-425809、Posiphen、PQ-912、bryostatin-1、Apabetalone、PBT-2、RIV-1061-IR、MEDI-1814、PF-05236812、SAR-228810、Lu-AF20513、PRI-002、IRX-4204、GC-021109、AAD-2004、CTS-21166、LY-3323795、benfotiamine、bisnorcymserine、MDR-1339、KHK-6640、およびNPT-088からなる群から選択される少なくとも一つである、項62に記載の投薬方法。
[項67]前記タウタンパク質除去薬および産生抑制薬が、タウタンパク質ワクチン、タウタンパク質除去抗体、タウタンパク質修飾抑制剤、タウタンパク質凝集抑制剤、およびタウタンパク質分解促進剤からなる群から選択される少なくとも一つである、項62に記載の投薬方法。
[項68]前記タウタンパク質除去薬および産生抑制薬が、TRx-237、TPI-287、ABBV-8E12、RG-6100、AADvac1、RO7105705、PTI-80、JNJ-63733657、UCB-0107、BIIB-076、MC-1、ACI-35、およびAZP-2006からなる群から選択される少なくとも一つである、項62に記載の投薬方法。
[項69]被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量し、アルツハイマー病の進行度が判定された患者に用いられる、アルツハイマー病治療薬。
[項70]前記項1または2に記載のポリペプチドを、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて定量することを特徴とする、項69に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項71]以下の(i)~(iv)の工程で、アルツハイマー病の進行度が判定された患者に用いられる、項69または項70に記載のアルツハイマー病治療薬:
(i)現在アルツハイマー病に罹患しているまたは罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、
(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程、および
(iv)(iii)の判定結果に基づき、アルツハイマー病治療薬を投与することを決定する工程。
[項72]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の1.1倍以上の量である場合、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定することを特徴とする、項71に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項73]前記(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値の0.9倍以下の量である場合、前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定することを特徴とする、項71に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項74]以下の(i)~(iv)の工程で、現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定された患者に用いられる、項69または項70に記載のアルツハイマー病治療薬:
(i)現在アルツハイマー病に罹患しているまたは罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の項1または2に記載のポリペプチドを定量する工程、
(ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、カットオフ値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
(iii)(ii)の判定結果に基づき、アルツハイマー病治療薬を投与することを決定する工程。
[項75]前記カットオフ値が、45~75ユニットであることを特徴とする、項74に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項76]前記カットオフ値が、45~75ng/mLであることを特徴とする、項74に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項77]前記被検動物がヒトである、項69~76のいずれか一項に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項78]前記試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、項69~77のいずれか一項に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項79]他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、項69~78のいずれか一項に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項80]アルツハイマー病治療薬が、コリンエステラーゼ阻害薬、NMDA受容体拮抗薬、アミロイドβ除去薬および産生抑制薬、ならびにタウタンパク質除去薬および産生抑制薬からなる群から選択される、項69~79のいずれか一項に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項81]前記コリンエステラーゼ阻害薬が、ドネペジル、ガランタミン、リバスチグミン、フペルジンA、およびタクリンからなる群から選択される少なくとも一つである、項80に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項82]前記NMDA受容体拮抗薬が、メマンチンである、項80に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項83]前記アミロイドβ除去薬および産生抑制薬が、アミロイドβワクチン、アミロイドβ除去抗体、アミロイドβ産生酵素阻害剤、アミロイドβ凝集抑制剤およびアミロイドβ分解促進剤からなる群から選択される少なくとも一つである、項80に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項84]前記アミロイドβ除去薬および産生抑制薬が、CNP-520、E-2609、aducanumab、solanezumab、gantenerumab、crenezumab、amilomotide、ASD-005、HSH-971、ELND-005、ALZT-OP1、nilvadipine、ACI-24、UB-311、AFFITOPE AD-02、LY-3002813、BAN-2401、Neurostem-AD、CT-1812、ID-1201、NIC5-15、BI-425809、Posiphen、PQ-912、bryostatin-1、Apabetalone、PBT-2、RIV-1061-IR、MEDI-1814、PF-05236812、SAR-228810、Lu-AF20513、PRI-002、IRX-4204、GC-021109、AAD-2004、CTS-21166、LY-3323795、benfotiamine、bisnorcymserine、MDR-1339、KHK-6640、およびNPT-088からなる群から選択される少なくとも一つである、項80に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項85]前記タウタンパク質除去薬および産生抑制薬が、タウタンパク質ワクチン、タウタンパク質除去抗体、タウタンパク質修飾抑制剤、タウタンパク質凝集抑制剤、およびタウタンパク質分解促進剤からなる群から選択される少なくとも一つである、項80に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項86]前記タウタンパク質除去薬および産生抑制薬が、TRx-237、TPI-287、ABBV-8E12、RG-6100、AADvac1、RO7105705、PTI-80、JNJ-63733657、UCB-0107、BIIB-076、MC-1、ACI-35、およびAZP-2006からなる群から選択される少なくとも一つである、項80に記載のアルツハイマー病治療薬。
[項87]アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の項1または項2に記載のポリペプチドの量を減少させる薬剤、またはアルツハイマー病患者またはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害する薬剤を、有効成分として含有するアルツハイマー病の治療薬または予防薬。
[項88]前記項1または2に記載のポリペプチドを、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて検出することを特徴とする、項87に記載のアルツハイマー病の治療薬または予防薬。
[項89]被検物質が、アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の項1または2に記載のポリペプチドの量を減少させること、またはアルツハイマー病患者またはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害することを指標とする、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質を選別する方法。
[項90]前記項1または2に記載のポリペプチドの量の減少を、項4~9のいずれか一項に記載の抗体を用いて検出することを特徴とする、項89に記載のアルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質を選別する方法。
 本発明によれば、アルツハイマー病の判定薬、アルツハイマー病の判定方法、アルツハイマー病の治療方法、アルツハイマー病の治療薬の候補化合物を選別する方法、および新規な抗S38AA抗体等を提供することができる。
図1は、S38AAのアミノ酸配列を示している。このうち、S38AA long fragmentのN末端の同定において、LC-MS/MS法により検出したペプチドの配列を太字にて示す。 図2は、S38AA long fragmentのN末端の同定において、LC-MS/MS法により検出した399EEVPEDLAEEAPGGR413ペプチドのMS/MSピークスペクトルを示す。縦軸は各イオンのピーク強度を、横軸はm/zを示している。 図3は、S38AAのアミノ酸配列を示している。このうち、S38AA short fragmentのN末端の同定において、LC-MS/MS法により検出したペプチドの配列を太字にて示す。 図4は、S38AA short fragmentのN末端の同定において、LC-MS/MS法により検出した617GLAVGGGEKAK627ペプチドのMS/MSピークスペクトルを示す。縦軸は各イオンのピーク強度を、横軸はm/zを示している。 図5は、S38AAのアミノ酸配列を示している。このうち、S38AA long fragmentのC末端の同定において、LC-MS/MS法により検出したペプチドの配列を太字にて示す。 図6は、S38AA long fragmentのC末端の同定において、LC-MS/MS法により検出した1040DLKLQAGSDL1049ペプチドのMS/MSピークスペクトルを示す。縦軸は各イオンのピーク強度を、横軸はm/zを示している。 図7は、Long ELISAおよびTotal ELISA測定系にて大腸菌組換えS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの発現量をそれぞれ測定した際の定量性(検量線)を示す。各グラフの縦軸は450nmにおける吸光度を、横軸は各タンパク質の濃度を示している。 図8は、減算法によるヒト血漿中S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量を行った際の各サンプルにおける定量値を示す。縦軸はS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値を、横軸は各サンプルを示している。Dから始まる番号は健常者、AGから始まる番号は中等度および重度AD患者を表している。 図9は、減算法によるヒト血漿中S38AA long fragment(左図)およびS38AA short fragment(右図)の定量を行った際の各群における定量値を示す。縦軸はS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値を、横軸は各群を示している。個別のサンプルを各プロットにて表記している。グラフバーは(各群の平均値±標準偏差)を表している。 図10は、免疫沈降除去法によるヒト血漿中S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量を行った際の各群における定量値を示す。縦軸はS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値を、横軸は各群を示している。 図11は、減算法によるヒト血漿中S38AA long fragmentおよびS38AA shortfragmentの定量を行った際の各サンプルにおける定量値を示す。縦軸はS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値を、横軸は各サンプルを示している。TSUMから始まる番号は健常者、ASUMから始まる番号は軽度AD患者を表している。 図12は、減算法によるヒト血漿中S38AA long fragmentおよびS38AA shortfragment(左図)、S38AA short fragment(中図)ならびにS38AA long fragment(右図)の定量を行った際の各群における定量値を示す。縦軸はS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値を、横軸は各群を示している。個別のサンプルを各プロットにて表記している。グラフバーは(各群の平均値±標準偏差)を表している。 図13は、Long fragment用抗体、抗体A、抗体Bおよび抗体Cの認識部位を示した図である。 図14は、各種抗S38AA fragment抗体を組み合わせたヒト血漿中S38AA fragmentの定量を行った際の各サンプルにおける定量値を示す。抗体の組み合わせは、抗体Aと抗体B、抗体Aと抗体C、および抗体Bと抗体Cの3パターンであり、該組み合わせによりELISAを行った。縦軸はS38AA fragment総量の定量値を、横軸は各サンプルを示している。TSUMから始まる番号は健常者、ASUMから始まる番号はAD患者を表している。 図15は、各種抗S38AA fragment抗体を組み合わせたヒト血漿中S38AA fragmentの定量を行った際の各サンプルにおける定量値を示す。抗体の組み合わせは、Long fragment用抗体と抗体A、Long fragment用抗体と抗体B、およびLong fragment用抗体と抗体Cの3パターンであり、該組み合わせによりELISAを行った。縦軸はS38AA long fragmentの定量値を、横軸は各サンプルを示している。TSUMから始まる番号は健常者、ASUMから始まる番号はAD患者を表している。 図16は、図14および15の結果から、減算法によりヒト血漿中S38AA short fragmentの定量を行った際の、各サンプルにおける定量値を示す。縦軸はS38AA short fragmentの定量値を、横軸は各サンプルを示している。TSUMから始まる番号は健常者、ASUMから始まる番号はAD患者を表している。
 本明細書において「アルツハイマー病」には、前記の「家族性アルツハイマー病」と「孤発性アルツハイマー病」のいずれもが含まれる。
 本発明において、「アルツハイマー病に罹患している」すなわち「アルツハイマー病患者である」とは、記憶や認知機能の障害に基づく臨床診断または脳の萎縮などに基づく画像診断によってアルツハイマー病を発症していると診断され得る状態をいう。
 本明細書において「アルツハイマー病を発症している」とは、アルツハイマー病の臨床診断基準、例えば、米国立神経疾患・脳卒中研究所とアルツハイマー病・関連障害協会(NINCDS-ADRDA)の診断基準、または、米国立老化研究所とアルツハイマー病協会(NIA-AA)によるアルツハイマー病改訂診断基準(以下、「アルツハイマー病改訂診断基準(2011)」と略記する。)等に基づきアルツハイマー病と診断された状態を示す。
 いずれの診断基準も、記憶障害を中心とする認知機能障害の存在、緩徐な発症と進行性の経過、認知機能の障害に伴う社会生活や日常生活動作の障害、非AD型認知症の鑑別・除外、等が、診断の指標となっている。
 また、アルツハイマー病を発症している状態は、その症状の重篤度に応じて3段階(軽度、中等度(または中度)、高度(または重度)、または、第一期(または健忘期)、第二期(または混乱期)、第三期(または臥床期))に大別される。重篤度の評価は、認知機能障害の程度を測定するミニメンタルステイト検査(MMSE)、日常生活動作を主体に重症度を判定する認知症機能評価別病期分類(FAST)、臨床的に重症度を判定する臨床認知症尺度(CDR)等の他、臨床試験で用いられるアルツハイマー病認知機能評価尺度(ADAS-cog)や高度認知機能障害検査(SIB)等を用いて行うことができる。
 アルツハイマー病における認知機能の障害の程度を評価する方法としては、例えば、ミニメンタルステイト検査(MMSE)のスコアを判断基準の一つとして使用することができ、0~30点のスケールのうち、目安として、9点以下は重度アルツハイマー病、10~19点が中等度アルツハイマー病、20~23点が軽度アルツハイマー病、24点以上は軽度認知障害ないし正常と判定されている。
 本明細書において「アルツハイマー病予備群」(Pre-Alzheimer’s disease)、すなわち「アルツハイマー病への罹患可能性のある者(ヒト)」、「アルツハイマー病ハイリスク群の者(ヒト)」としては、上述の診断ではまだアルツハイマー病を発症していると診断され得ないが、脳組織でのAβやタウ蛋白の蓄積が始まっており近い将来アルツハイマー病を発症する可能性が高いアルツハイマー病発症前段階の状態、すなわち脳組織でのAβやタウ蛋白が蓄積している状態(Preclinical ADともいう)のヒトが挙げられる。ここで、脳組織でのAβあるいはタウ蛋白の蓄積は、アミロイドPETあるいはタウPETや脳髄液中のAβあるいはリン酸化タウ等をバイオマーカーとして確認することができる。
 本明細書において「発症前段階のアルツハイマー病(Preclinical AD)」とは、前記のアルツハイマー病改訂診断基準(2011)におけるPreclinical ADの研究基準で定義されているとおり、アルツハイマー病の病態を示唆するバイオマーカー陽性であるが、認知機能は正常または軽度認知障害(MCI)の診断基準を満たさないごく軽微な認知機能障害のみを認める状態である。
 また、アルツハイマー病に罹患していると診断されないが、軽度認知障害と診断される状態のヒトは、当該症状がアルツハイマー病の前兆の症状であり、将来アルツハイマー病に罹患する可能性があることから、「アルツハイマー病への罹患可能性のある者(ヒト)」に含まれる。
 本明細書において「軽度認知障害(または軽度認知機能障害)」(MCI)とは、正常と認知症の中間の状態で、認知機能が正常域を越えて悪いが、日常生活は保たれており、認知症とは診断されない状態、すなわち認知症の前駆状態を示す。
 軽度認知障害の診断は、例えば、2003年のMCI Key Symposiumで提唱された診断基準(Winblad B等、(2004) J. Intern. Med. 256: 240-246)、または前記のNIA-AAによるアルツハイマー病改訂診断基準(2011)に記載された軽度認知障害の診断基準等に基づき行うことができる。
 認知症の重症度の評価尺度を指標とした場合、目安として、CDR(Clinical Dementia Rating)スコアが0.5(認知症の疑い)、または、FAST(Functinal Assessment Staging)ステージが3(認知症の疑い)の状態が、軽度認知障害に相当する。また、前述のMMSEスコアを指標とした場合は、目安として、スコアが24以上でありアルツハイマー病と診断されない状態が軽度認知障害に相当し、同スコアが24~28であれば、軽度認知障害である可能性が高いと言える。
1.本発明のポリペプチド
 本発明者らは、まず、AD患者の血液では、S38AAの膜外部分で切断を受けて生じるS38AA long fragment量が上昇していることを見出し、さらにAD患者の血液では、該long fragmentのC末端側を特異的に切断する酵素が存在するか、または該酵素の活性が高く、S38AA short fragment量が大きく上昇しており、かつ血中のS38AA short fragment量は、アルツハイマー病の重篤度(認知機能障害の進行度)が軽度、中程度および重症のいずれであっても健常人に比べて高いこと、さらに中等度および重度では軽度に比べて高いことを見出し、該S38AA short fragment量が高精度のアルツハイマー病の発症や予備群の判定の指標として極めて高い信頼性を有することを見出した。
 従って、本発明は、まず、S38AA short fragmentである配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド(配列番号3で表されるS38AAのアミノ酸配列(1~1119)のうち、617番目~1049番目のアミノ酸配列部分に相当)、およびS38AA long fragmentである配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド(配列番号3表されるS38AAのアミノ酸配列(1~1119)のうち、399番目~1049番目のアミノ酸配列部分に相当)を提供するものである。
 また、S38AA short fragmentは、後述する配列番号1で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドに特異的に結合する抗体により認識される限り、該アミノ酸配列において、1~数個のアミノ酸が置換、欠失、付加または挿入されていてもよい。同様に、S38AA long fragmentは、後述する配列番号2で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドに特異的に結合する抗体により認識される限り、該アミノ酸配列において、1~数個のアミノ酸が置換、欠失、付加または挿入されていてもよい。ここで、数個とは、特に限定されず、例えば、2~10個であってもよいし、2~8個であってもよいし、2~6個であってもよいし、2~4個であってもよいし、2~3個であってもよいし、2個であってもよい。
 S38AA short fragmentは、適宜そのN末端、C末端、または側鎖において当業者に周知の方法、例えば、N末端のアセチル基修飾、C末端のアミド基修飾、N末端および/またはC末端へのタンパク質タグ(Hisタグ等)の付加、および側鎖への糖鎖の付加等で修飾されていてもよい。
 本発明のポリペプチドは、公知のペプチド合成法、例えば、固相合成法、液相合成法等に従って製造することができる。得られたポリペプチドは、公知の精製法、例えば、溶媒抽出、蒸留、カラムクロマトグラフィー、液体クロマトグラフィー、再結晶、これらの組み合わせ等により精製単離することができる。
 また、本発明のポリペプチドは、それをコードする核酸を含有する形質転換体を培養し、得られる培養物からポリペプチドを分離精製することによって製造することもできる。本発明のポリペプチドをコードする核酸はDNAであってもRNAであってもよく、あるいはDNA/RNAキメラであってもよいが、好ましくはDNAである。該核酸は二本鎖であっても、一本鎖であってもよい。二本鎖の場合は、二本鎖DNA、二本鎖RNAまたはDNA:RNAのハイブリッドでもよい。一本鎖の場合は、センス鎖(すなわち、コード鎖)であっても、アンチセンス鎖(すなわち、非コード鎖)であってもよい。
 本明細書において、「配列番号」と「配列番号:」は同義である。例えば、「配列番号1」と「配列番号:1」は同義である。
 本発明のポリペプチドをコードするDNAとしては、合成DNAなどが挙げられ、自体公知の方法、例えば、Reverse Transcriptase-PCR法とODA-LA PCR法、Gapped duplex法、Kunkel法等を用いて、あるいはコロニーもしくはプラークハイブリダイゼーション法またはPCR法を用いて取得することができる。
2.抗S38AA抗体
 本明細書において用いられる「抗S38AA抗体」としては、S38AAを特異的に認識する抗体、あるいはS38AA long fragmentおよび/またはS38AA short fragmentを特異的に認識する抗体であれば特に限定されず、例えば、S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体、S38AA long fragmentのC末端側領域を認識する抗体、S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentに共通するC末端側領域を認識する抗体等が挙げられる。
 抗S38AA抗体は、市販の抗S38AA抗体、公知の手法を用いて製造されるポリクローナルまたはモノクローナル抗体、あるいはこれらのフラグメント(例えば、Fab、F(ab’)、ScFv、minibody等)であってもよい。
 本発明で使用される抗S38AA抗体としては、哺乳動物由来のモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体が好ましい。
 哺乳動物由来のモノクローナル抗体およびポリクローナル抗体としては、動物の血中に産生されるもの、ハイブリドーマに産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるもの、ファージディスプレイにより1兆個の分子からなる莫大なクローンライブラリーから最適抗体がスクリーニングされ、その遺伝子からCHO細胞により大量生産されるもの、もしくは、ヒトの抗体を生産するトランスジェニックマウスから直接得られるヒト抗体などが挙げられる。
 モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体は当業者に公知の方法によって作製することができる。
(1)モノクローナル抗体の作製
 本発明のポリペプチドが、哺乳動物に対して投与により抗体産生が可能な部位にそれ自体あるいは担体、希釈剤とともに投与される。投与に際して抗体産生能を高めるため、完全フロイントアジュバントや不完全フロイントアジュバントを投与してもよい。投与は通常2~6週毎に1回ずつ、計2~10回程度行なわれる。用いられる哺乳動物としては、例えば、サル、ウサギ、イヌ、モルモット、マウス、ラット、ヒツジ、ヤギが挙げられるが、マウスおよびラットが好ましく用いられる。
 モノクローナル抗体産生細胞の作製に際しては、抗原を免疫された哺乳動物、例えば、マウスから抗体価の認められた個体を選択し最終免疫の2~5日後に脾臓またはリンパ節を採取し、それらに含まれる抗体産生細胞を骨髄腫細胞と融合させることにより、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを調製することができる。抗血清中の抗体価の測定は、例えば、後記の標識化S38AAと抗血清とを反応させた後、抗体に結合した標識剤の活性を測定することにより行なうことができる。融合操作は既知の方法、例えば、ケーラーとミルスタインの方法[Nature,256,495(1975年)]に従い実施することができる。融合促進剤としては、例えば、ポリエチレングリコール(PEG)やセンダイウィルスなどが挙げられるが、好ましくはPEGが用いられる。さらに、融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を適宜使用することもできる。
 骨髄腫細胞としては、例えば、NS-1、P3U1、SP2/0などが挙げられるが、P3U1が好ましく用いられる。用いられる抗体産生細胞(脾臓細胞)数と骨髄腫細胞数との好ましい比率は1:1~20:1程度であり、PEG(好ましくは、PEG1000~PEG6000)が10~80%程度の濃度で添加され、約20~40℃、好ましくは約30~37℃で約1~10分間インキュベートすることにより効率よく細胞融合を実施できる。
 モノクローナル抗体産生ハイブリドーマのスクリーニングには種々の方法が使用できるが、例えば、蛋白質等の抗原を直接あるいは担体とともに吸着させた固相(例、マイクロプレート)にハイブリドーマ培養上清を添加し、次に放射性物質や酵素などで標識した抗免疫グロブリン抗体(細胞融合に用いられる細胞がマウスの場合、抗マウス免疫グロブリン抗体が用いられる)またはプロテインAを加え、固相に結合したモノクローナル抗体を検出する方法、抗免疫グロブリン抗体またはプロテインAを吸着させた固相にハイブリドーマ培養上清を添加し、放射性物質や酵素などで標識した蛋白質等を加え、固相に結合したモノクローナル抗体を検出する方法などが挙げられる。
 モノクローナル抗体の選別は、自体公知あるいはそれに準じる方法に従って行なうことができるが、通常はHAT(ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン)を添加した動物細胞用培地などで行なうことができる。選別および育種用培地としては、ハイブリドーマが生育できるものならばどのような培地を用いても良い。例えば、1~20%、好ましくは10~20%のウシ胎児血清を含むRPMI 1640培地、1~10%のウシ胎児血清を含むGIT培地(和光純薬工業(株))またはハイブリドーマ培養用無血清培地(SFM-101、日水製薬(株))などを用いることができる。培養温度は、通常20~40℃、好ましくは約37℃である。培養時間は、通常5日~3週間、好ましくは1週間~2週間である。培養は、通常5%炭酸ガス下で行なうことができる。ハイブリドーマ培養上清の抗体価は、上記の抗血清中の抗体価の測定と同様にして測定できる。
 モノクローナル抗体の分離精製は、通常のポリクローナル抗体の分離精製と同様に免疫グロブリンの分離精製法〔例、塩析法、アルコール沈殿法、等電点沈殿法、電気泳動法、イオン交換体(例、DEAE)による吸脱着法、超遠心法、ゲルろ過法、抗原結合固相またはプロテインAあるいはプロテインGなどの活性吸着剤により抗体のみを採取し、結合を解離させて抗体を得る特異的精製法〕に従って行なうことができる。
(2)ポリクローナル抗体の作製
 本発明のポリペプチドに対するポリクローナル抗体は、それ自体公知あるいはそれに準じる方法にしたがって製造することができる。例えば、免疫抗原(蛋白質等の抗原)とキャリアー蛋白質との複合体を作り、上記のモノクローナル抗体の製造法と同様に哺乳動物に免疫を行なうかニワトリに免疫を行ない、該免疫動物からS38AAに対する抗体含有物を採取して、抗体の分離精製を行なうことにより製造できる。
 哺乳動物およびニワトリを免疫するために用いられる免疫抗原とキャリアー蛋白質との複合体に関し、キャリアー蛋白質の種類およびキャリアーとハプテンとの混合比は、キャリアーに架橋させて免疫したハプテンに対して抗体が効率良くできれば、どの様なものをどの様な比率で架橋させてもよいが、例えば、ウシ血清アルブミン、ウシサイログロブリン、キーホール・リンペット・ヘモシアニン等を重量比でハプテン1に対し、約0.1~20、好ましくは約1~5の割合でカプルさせる方法が用いられる。
 また、ハプテンとキャリアーのカップリングには、種々の縮合剤を用いることができるが、グルタルアルデヒドやカルボジイミド、マレイミド活性エステル、チオール基、ジチオピリジル基を含有する活性エステル試薬等が用いられる。
 縮合生成物は、哺乳動物またはニワトリに対して、抗体産生が可能な部位にそれ自体あるいは担体、希釈剤とともに投与される。投与に際して抗体産生能を高めるため、完全フロイントアジュバントや不完全フロイントアジュバントを投与してもよい。投与は、通常約2~6週毎に1回ずつ、計約3~10回程度行なうことができる。
 ポリクローナル抗体は、上記の方法で免疫された哺乳動物の血液、腹水、母乳など、好ましくは血液から採取することができ、ニワトリの場合は血液および卵黄から採取できる。
 抗血清中のポリクローナル抗体価の測定は、上記の血清中の抗体価の測定と同様にして測定できる。ポリクローナル抗体の分離精製は、上記のモノクローナル抗体の分離精製と同様の免疫グロブリンの分離精製法に従って行なうことができる。
 本発明におけるポリクローナル抗体として、例えばウサギ由来抗S38AAポリクロ―ナル抗体(以下、「MBL」、または「long fragment用抗体」とも称する。)が挙げられる。long fragment用抗体は、S38AA long fragmentを特異的に認識し、S38AA short fragmentを認識しない特徴を有する。long fragment用抗体は、抗体A、B、またはCとともに用いることで、後述のLong ELISAに使用することができる。
(3)S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体
 本発明の一態様として、配列番号1で表されるS38AA short fragmentを特異的に認識する抗体が挙げられる。S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体として、例えばS38AA short fragmentのC末端配列またはN末端配列を認識する抗体を挙げることができる。S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体は、当業者に周知の方法で作成することができる。例えば、S38AA short fragmentのN末端(配列番号3で表されるアミノ酸配列における617番目のグリシン)から数アミノ酸のペプチドを免疫抗原とし、それよりもさらにN末端側に数アミノ酸が付加されたペプチド、あるいはS38AA long fragmentに対しては陰性となる抗体を選択することで取得できる。具体的には、モノクロ―ナル抗体あるいはポリクロ―ナル抗体をそれぞれ上記(1)あるいは(2)の方法に準拠して取得できる。
 S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体としては、例えば、後述の抗体A、抗体Bまたは抗体Cが挙げられる。
 抗体A(以下、「マウス由来の抗S38AAモノクロ―ナル抗体A」とも称する。)は、S38AAのC末端側領域を認識する抗体であり、S38AA断片のC末端アミノ酸配列の一部のペプチドを免疫源として抗体産生ハイブリドーマを樹立し、分離精製した抗体を意味する。抗体AはS38AA short fragmentおよびS38AA long fragmentを特異的に認識する特徴を有する。抗体Aは、「long fragment用抗体」とともに、Long ELISAに用いることができる。抗体Aは、抗体BまたはCとともに使用することで、後述のTotal ELISAに使用することができる。
 抗体Aとしては、好ましくは、以下:
(1)配列番号4の重鎖可変領域を含む抗体、
(2)配列番号6の重鎖可変領域を含む抗体、
(3)配列番号8の重鎖可変領域を含む抗体、および
(4)配列番号10の重鎖可変領域を含む抗体、
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Aとしては、別の好ましい態様としては、以下:
(1)配列番号5の軽鎖可変領域を含む抗体、
(2)配列番号7の軽鎖可変領域を含む抗体、
(3)配列番号9の軽鎖可変領域を含む抗体、および
(4)配列番号11の軽鎖可変領域を含む抗体、
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
抗体Aとしては、より好ましくは、以下:
(1)配列番号4の重鎖可変領域、および配列番号5の軽鎖可変領域を含む抗体、
(2)配列番号6の重鎖可変領域、および配列番号7の軽鎖可変領域を含む抗体、
(3)配列番号8の重鎖可変領域、および配列番号9の軽鎖可変領域を含む抗体、および
(4)配列番号10の重鎖可変領域、および配列番号11の軽鎖可変領域を含む抗体、
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Bは、S38AAのC末端側領域を認識する抗体であり、S38AA断片のC末端アミノ酸配列の一部のペプチドを免疫源として抗体産生ハイブリドーマを樹立し、分離精製した抗体を意味する。抗体Bは、S38AA short fragmentおよびS38AA long fragmentを特異的に認識する特徴を有する。抗体Bは、「long fragment用抗体」とともに、Long ELISAに用いることができる。抗体Bは、抗体AまたはCとともに使用することで、Total ELISAに使用することができる。
 抗体Bとしては、好ましくは、以下:
(5)配列番号12の重鎖可変領域を含む抗体、
(6)配列番号14の重鎖可変領域を含む抗体、
(7)配列番号16の重鎖可変領域を含む抗体、および
(8)配列番号18の重鎖可変領域を含む抗体、
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Bとしては、別の好ましい態様としては、以下:
(5)配列番号13の軽鎖可変領域を含む抗体、
(6)配列番号15の軽鎖可変領域を含む抗体、
(7)配列番号17の軽鎖可変領域を含む抗体、および
(8)配列番号19の軽鎖可変領域を含む抗体、
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Bとして、より好ましくは、以下:
(5)配列番号12の重鎖可変領域、および配列番号13の軽鎖可変領域を含む抗体、
(6)配列番号14の重鎖可変領域、および配列番号15の軽鎖可変領域を含む抗体、
(7)配列番号16の重鎖可変領域、および配列番号17の軽鎖可変領域を含む抗体、および
(8)配列番号18の重鎖可変領域、および配列番号19の軽鎖可変領域を含む抗体、
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Cは、S38AAのC末端側領域を認識する抗体であり、S38AA long fragmentの大腸菌組換えタンパク質を免疫源として抗体産生ハイブリドーマを樹立し、分離精製した抗体を意味する。抗体Cは、S38AA short fragmentおよびS38AA long fragmentを特異的に認識する特徴を有する。抗体Cは、「long fragment用抗体」とともに、Long ELISAに用いることができる。抗体Cは、抗体AまたはBとともに使用することで、Total ELISAに使用することができる。
 抗体Cとして、好ましくは、以下:
(9)配列番号20の重鎖可変領域を含む抗体、および
(10)配列番号22の重鎖可変領域を含む抗体
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Cとしては、別の好ましい態様としては、以下:
(9)配列番号21の軽鎖可変領域を含む抗体、および
(10)配列番号23の軽鎖可変領域を含む抗体
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 抗体Cとして、より好ましくは、以下:
(9)配列番号20の重鎖可変領域、および配列番号21の軽鎖可変領域を含む抗体、および
(10)配列番号22の重鎖可変領域、および配列番号23の軽鎖可変領域
を含む抗体
からなる群から選択される抗体が挙げられる。
 本発明の抗体A、BおよびCが、S38AA short fragmentおよびS38AA long fragmentを特異的に認識し得る限り、該各抗体は、それに含まれる上記可変領域のアミノ酸配列と90%以上、好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より一層好ましくは97%以上、さらに好ましくは98%、さらに一層好ましくは99%以上、最も好ましくは99.5%以上の相同性を有する可変領域を含むものであってもよい。
 本明細書において「相同性」とは、当該技術分野において公知の数学的アルゴリズムを用いて2つのアミノ酸配列をアラインさせた場合の、最適なアラインメント(好ましくは、該アルゴリズムは最適なアラインメントのために配列の一方もしくは両方へのギャップの導入を考慮し得るものである)における、オーバーラップする全アミノ酸残基に対する同一アミノ酸および類似アミノ酸残基の割合(%)を意味する。
 本明細書におけるアミノ酸配列の相同性は、相同性計算アルゴリズムNCBI BLAST(National Center for Biotechnology Information Basic Local Alignment Search Tool)を用い、以下の条件(期待値=10;ギャップを許す;マトリクス=BLOSUM62;フィルタリング=OFF)にて計算することができる。アミノ酸配列の相同性を決定するための他のアルゴリズムとしては、例えば、Karlinら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,90:5873-5877(1993)に記載のアルゴリズム[該アルゴリズムはNBLASTおよびXBLASTプログラム(version 2.0)に組み込まれている(Altschulら,Nucleic Acids Res.,25:3389-3402(1997))]、Needlemanら,J.Mol.Biol.,48:444-453(1970)に記載のアルゴリズム[該アルゴリズムはGCGソフトウェアパッケージ中のGAPプログラムに組み込まれている]、MyersおよびMiller,CABIOS,4:11-17(1988)に記載のアルゴリズム[該アルゴリズムはCGC配列アラインメントソフトウェアパッケージの一部であるALIGNプログラム(version 2.0)に組み込まれている]、Pearsonら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,85:2444-2448(1988)に記載のアルゴリズム[該アルゴリズムはGCGソフトウェアパッケージ中のFASTAプログラムに組み込まれている]等が挙げられ、それらも同様に好ましく用いられ得る。
 また、本発明の抗体A、BおよびCに含まれるCDRについて、該抗体が、S38AA short fragmentおよびS38AA long fragmentを特異的に認識し得る限り、1つのCDRのアミノ酸配列につき、1~数個(2、3、4、5等)、好ましくは2個以内、より好ましくは1つのアミノ酸が置換、欠失、挿入、および/または付加されていてもよい。また、上記各抗体が有するアミノ酸が置換、欠失、挿入、および/または付加されたCDRの数は、該各抗体が、S38AA short fragmentおよびS38AA long fragmentを特異的に認識し得る限り、特に限定されないが、1つの軽鎖可変領域につき、好ましくは2つ以内、より好ましくは1つであり、1つの重鎖可変領域につき、好ましくは2つ以内、より好ましくは1つである。アミノ酸の置換、欠失、挿入、および/または付加は、軽鎖可変領域と重鎖可変領域の両方において行われてもよく、いずれか一方のみにおいて行われてもよい。
 例えば、「類似アミノ酸」とは物理化学的性質において類似したアミノ酸を意味し、例えば、芳香族アミノ酸(Phe、Trp、Tyr)、脂肪族アミノ酸(Ala、Leu、Ile、Val)、極性アミノ酸(Gln、Asn)、塩基性アミノ酸(Lys、Arg、His)、酸性アミノ酸(Glu、Asp)、水酸基を有するアミノ酸(Ser、Thr)、側鎖の小さいアミノ酸(Gly、Ala、Ser、Thr、Met)などの同じグループに分類されるアミノ酸が挙げられる。このような類似アミノ酸による置換はタンパク質の表現型に変化をもたらさない(即ち、保存的アミノ酸置換である)ことが予測される。保存的アミノ酸置換の具体例は当該技術分野で周知であり、種々の文献に記載されている(例えば、Bowieら,Science,247:1306-1310(1990)を参照)。
 1または複数のアミノ酸残基を目的の他のアミノ酸に置換する方法としては、例えば、部位特異的変異誘発法(Hashimoto-Gotoh,T,Mizuno,T,Ogasahara,Y,and Nakagawa,M.(1995)An oligodeoxyribonucleotide-directed dual amber method for site-directed mutagenesis. Gene 152,271-275、Zoller,MJ,and Smith,M.(1983) Oligonucleotide-directed mutagenesis of DNA fragments cloned into M13 vectors. Methods Enzymol. 100,468-500、Kramer,W, Drutsa,V,Jansen,HW,Kramer,B,Pflugfelder,M, and Fritz,HJ(1984) The gapped duplex DNA approach to oligonucleotide-directed mutation construction. Nucleic Acids Res. 12,9441-9456、Kramer W,and Fritz HJ(1987) Oligonucleotide-directed construction of mutations via gapped duplex DNA Methods. Enzymol. 154, 350-367、Kunkel,TA(1985) Rapid and efficient site-specific mutagenesis without phenotypic selection.Proc Natl Acad Sci USA. 82,488-492)が挙げられる。該方法を用いて、抗体の所望のアミノ酸を目的の他のアミノ酸に置換することができる。また、フレームワークシャッフリング(Mol Immunol. 2007 Apr;44(11):3049-60)およびCDR修復(US2006/0122377)等のライブラリー技術を用いることにより、フレームワークおよびCDRにおけるアミノ酸を適切な他のアミノ酸に置換することも可能である。
3.アルツハイマー病の判定薬
 本発明の判定薬はS38AA Short fragment量を検出することが可能な1または複数種類の抗S38AA抗体を含み、アルツハイマー病に罹患しているか否かの判定、現在該疾患に罹患している可能性が高いか否かの判定だけでなく、アルツハイマー病予備群の判定、すなわち、まだ該疾患に罹患していないが、近い将来罹患する可能性が高いか否かの判定をすることができる。言い換えると、本発明の判定薬は、アルツハイマー病の重篤度が軽度、または中等度・重度のいずれであっても識別することができる。そのため、本発明においてアルツハイマー病の「判定」とは、既にアルツハイマー病に罹患しているか否かの判定、現在アルツハイマー病に罹患している可能性が高いか否かの判定だけでなく、まだアルツハイマー病に罹患していないが、近い将来罹患する可能性が高いか否かを判定することを包含する意味で使用される。
4.アルツハイマー病を判定するためのキット
 本発明は、アルツハイマー病を判定するためのキットを提供するものである。本発明のキットには、S38AA short fragment量を測定するための試薬が含まれる。本発明のキットを用いてS38AA short fragment量を測定することにより、アルツハイマー病を判定することができる。
 本発明のキットは、S38AA short fragmentを定量可能な単一若しくは複数の抗体の組み合せである抗S38AA抗体を含むものであり、具体的には、S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体であるか、またはS38AA long fragmentを認識しS38AA short fragmentを認識しない抗体、ならびにS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentを共に認識する抗体の組み合せが挙げられる。S38AA long fragmentを認識しS38AA short fragmentを認識しない抗体として、例えば、上述のS38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体が挙げられる。また、S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentを共に認識する抗体としては、S38AA long fragmentとS38A short fragment共通のC末端側領域を認識する抗体が挙げられる。
 本発明のキットに使用される抗体として好ましくは、long fragment用抗体、抗体A、抗体B、および/または抗体Cが挙げられる。
 また、抗体は、蛍光標識抗体、酵素標識抗体、ストレプトアビジン標識抗体、ビオチン標識抗体あるいは放射性標識抗体であってもよい。
 抗S38AA抗体は、通常、水もしくは適当な緩衝液(例:TEバッファー、PBSなど)中に適当な濃度となるように溶解された水溶液の態様、あるいは凍結乾燥品の態様で、本発明のキットに含まれる。
 また、S38AA short fragmentおよび/またはS38AA long fragment量を測定する際には、1種類の抗体で測定してもよいし、複数種類、好ましくは2種類の抗体を使用して測定(例えばサンドイッチELISA法など)してもよい。
 本発明のキットは、S38AA short fragmentの測定方法に応じて、当該方法の実施に必要な他の成分を構成としてさらに含んでいてもよい。例えば、ウエスタンブロッティングで測定する場合には、本発明のキットは、ブロッティング緩衝液、標識化試薬、ブロッティング膜等、検出試薬、標準液などをさらに含むことができる。ここで「標準液」としては、S38AA short fragmentおよび/またはS38AA long fragment)の精製標品、例えば、本発明のペプチドを水または適当な緩衝液(例:TEバッファー、ウシ胎児血清含有PBSなど)中に特定の濃度となるように溶解した水溶液が挙げられる。
 また、サンドイッチELISAで測定する場合には、本発明のキットは、上記に加え固層化抗体測定プレート、洗浄液等をさらに含むことができる。ラテックス凝集法を含む凝集法で測定する場合には、抗体コーティングしたラテックス、ゼラチン等を含むことができる。化学蛍光法、化学蛍光電子法で測定する場合には、抗体結合磁性粒子、適当な緩衝液を含むことができる。LC/MS、LC-MS/MSあるいはイムノクロマトグラフィー法を用いたS38AAの検出には、抗体コーティングしたカラムあるいはマイクロカラム、マイクロチップを検出機器の一部として、含むことができる。さらに時間分解蛍光測定法あるいはそれに類似した蛍光測定法であれば、複数のラベル化した抗S38AA抗体と必要な他の成分を構成として含んでもよい。
 本発明のキットとして、例えば、以下のものが挙げられる。なお、下記のキットに含まれる抗体に関しては、標識化されたもの(例えばペルオキシダーゼやビオチンによる標識等)であってもよく、標識化されていない場合は、別途抗体に結合して当該抗体を標識するための標識化抗体が含まれていてもよい。
1)1または2種類の「S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体」、洗浄液、発色試薬、反応停止液、希釈用緩衝液および標準液;
2)1または2種類の「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体」、1または2種類の「S38AAlong fragmentのC末端側領域を認識する抗体(すなわち、S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentに共通するC末端側領域を認識する抗体)」、洗浄液、発色試薬、反応停止液、希釈用緩衝液および標準液;
3)「S38AA short fragmentを特異的に認識する第一の抗体」、「S38AA short fragmentを認識する第二の抗体」、洗浄液、発色試薬、反応停止液、希釈用緩衝液および標準液;
4)「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する第1の抗体」および「S38AA long fragmentを認識する第2の抗体」、1または2種類の「S38AA long fragmentのC末端側領域を認識する抗体(すなわち、S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentに共通するC末端側領域を認識する抗体)」、洗浄液、発色試薬、反応停止液、希釈用緩衝液および標準液。
 ここにおいて、「S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体」、「S38AA short fragmentを特異的に認識する第一の抗体」、および「S38AA short fragmentを認識する第二の抗体」として好ましくは、抗体A、抗体Bおよび抗体Cが挙げられる。
 ここにおいて、「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体」および「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する第1の抗体」として好ましくは、「long fragment用抗体」が挙げられる。
 ここにおいて、「S38AAlong fragmentのC末端側領域を認識する抗体(すなわち、S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentに共通するC末端側領域を認識する抗体)」として好ましくは、抗体A、抗体Bおよび抗体Cが挙げられる。S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentを特異的に検出し得る抗S38AA long fragment抗体および抗S38AA short fragment抗体としては、例えば、「2.本発明の抗体」に詳述されている抗体を挙げることができる。
5.本発明の方法
(1)アルツハイマー病の判定および試験方法
 上述したように、本発明者らは、まず、AD患者の血液では、S38AAの膜外部分で切断を受けて生じるS38AA long fragment量が上昇していることを見出し、さらにAD患者の血液では、該long fragmentを特異的に切断する酵素が存在するか、または該酵素の活性が高く、あるいはS38AAの膜外部分で直接切断されることで生じるS38AA short fragment量が大きく上昇しており、かつ血中のS38AA short fragment量は、アルツハイマー病の重篤度(認知機能障害の進行度)が軽度、中等度・重度であるかどうかに関わらず上昇すること、さらに中等度および重度では軽度に比べて高いことを見出し、該S38AA short fragment量が高精度のアルツハイマー病の発症や予備群の判定、およびアルツハイマー病の進行の程度の判定の指標として極めて高い信頼性を有することを見出した。
 従って、本発明は被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを検出することにより、アルツハイマー病、例えば、軽度または中等度・重度のアルツハイマー病を判定する方法を提供するものである。
 本発明の判定方法は、アルツハイマー病に罹患しているか否かの判定、現在該疾患に罹患している可能性が高いか否かの判定だけでなく、まだ該疾患に罹患していないが、近い将来罹患する可能性が高いか否かの判定をすることもできる。
 また本発明は、被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを検出することにより、現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性を試験する方法も提供する。
 上記可能性の判定および試験(結果)は、少なくとも医師によるアルツハイマー病の確定診断を補助するために有用である。
 本発明の判定および試験方法は、被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを検出することを特徴とする。また本発明の判定および試験方法は、具体的な工程として、例えば、(i)被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを定量する工程、および(ii)(i)で定量したS38AA short fragmentの量を、健常動物より採取した試料中のS38AA short fragmentの量(以下、「対照値」という)と比較する工程を含んでもよい。
 (ii)の比較の結果として、(i)で定量したS38AA short fragmentの量が、対照値よりも大きい場合、前記被検動物がアルツハイマー病に罹患している、または現在アルツハイマー病に罹患している可能性もしくは将来アルツハイマー病に罹患する可能性があることを示している。
 さらに本発明の判定および試験方法は、上記工程に加えて、(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量したS38AA short fragmentの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物がアルツハイマー病に罹患している、または現在アルツハイマー病に罹患している可能性もしくは将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程を含んでもよい。
 さらに本発明は、上述した通り血中のS38AA short fragmentの値がアルツハイマー病の重篤度(認知機能障害の進行度)が軽度、中等度、重度であるかどうかに関わらず上昇する、さらには中等度および重症では軽度に比べて高いため、アルツハイマー病の進行度の判定を補助する方法を提供するものである。
 本発明の判定を補助する方法も、被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを検出することを特徴とする。また本発明の判定を補助する方法は、具体的な工程として、例えば、(i)アルツハイマー病に罹患または罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを定量する工程、および(ii)(i)で定量したS38AA short fragmentの量を、該被検動物より過去に採取した試料中のS38AA short fragmentの量(以下、「対照値」という)と比較する工程を含んでもよい。
 (ii)の比較の結果として、(i)で定量したS38AA short fragmentの量が、対照値よりも大きい場合、前記被検動物のアルツハイマー病が進行しているもしくはアルツハイマー病に罹患している可能性が高いことを示し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善しているまたはアルツハイマー病に罹患していない可能性が高いことを示している。
 本発明の判定を補助する方法は、上記工程に加えて、(iii)(ii)の結果に基づき、
(i)で定量したS38AA short fragmentの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程を含んでもよい。
 そのうえ本発明は、上述した通り血中のS38AA short fragment量がアルツハイマー病の重篤度(認知機能障害の進行度)が軽度、中等度、重度であるかどうかに関わらず上昇し、さらには中等度および重症では軽度に比べて高いため、アルツハイマー病の治療中の患者あるいはアルツハイマーの発症を予防するための治療中のアルツハイマー病予備群について、その治療効果を評価する方法も提供する。
 本発明の治療効果を評価する方法も、被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを検出することを特徴とする。また本発明の治療効果を評価する方法は、具体的な工程として、例えば、(i)アルツハイマー病の投薬治療またはアルツハイマー病の発症を予防するための投薬治療を開始している被検動物より採取した試料中のS38AA short fragmentを定量する工程、および(ii)(i)で定量したS38AA short fragmentの量を、該被検動物より過去に採取した試料(例:投薬治療開始前に採取した試料、投薬治療開始後であって(i)の採取時点より前に採取した試料)中のS38AA short fragmentの量(以下、「対照値」という)と比較する工程を含んでもよい。
 (ii)の比較の結果として、(i)で定量したS38AA short fragmentの量が、対照値よりも大きい場合、現在の投薬治療(あるいは選定した治療薬)が有効でないことを示し、対照値よりも小さい場合、現在の投薬治療(あるいは選定した治療薬)が有効であることを示している。
 本発明の治療効果を評価する方法は、上記工程に加えて、(iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量したS38AA short fragmentの量が、対照値よりも大きい場合に、現在の投薬治療(あるいは選定した治療薬)が有効でないと評価し、対照値よりも小さい場合に、現在の投薬治療(あるいは選定した治療薬)が有効であると評価する工程を含んでもよい。
 本明細書において、投薬治療に用いられる治療薬は、既に承認され上市されている治療薬のみでなく、臨床試験中の治験薬も含む概念である。すなわち本発明の治療効果を評価する方法は、臨床試験における薬効のモニター等にも利用することができる。
 本発明の方法の被検対象となり得る動物は、S38AAを発現するものであれば特に制限はなく、例えば、哺乳動物(例:ヒト、サル、ウシ、ブタ、ウマ、イヌ、ネコ、ヒツジ、ヤギ、ウサギ、ハムスター、モルモット、マウス、ラット等)、鳥類(例:ニワトリ等)などが挙げられる。好ましくは、哺乳動物、より好ましくはヒトである。
 試料となる被検動物由来の生体試料は特に限定されないが、例えば、血液、血清、血漿、唾液、涙液、尿、脳脊髄液などが挙げられる。より好ましくは、血漿または脳脊髄液である。
 血清や血漿は、常法に従って被検動物から採血し、液性成分を分離することにより調製することができる。脳脊髄液は、脊椎穿刺等の公知の手段により採取することができる。
 試料中のS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの検出(定量)は、公知の方法により実施することができる。例えば、ウエスタンブロッティング、ゲル電気泳動(例:SDS-PAGE、二次元ゲル電気泳動など)や、各種の分離精製法(例:イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、等電点クロマトグラフィー、キャピラリー電気泳動など)、イオン化法(例:電子衝撃イオン化法、フィールドディソープション法、二次イオン化法、高速原子衝突法、マトリックス支援レーザー脱離イオン化(MALDI)法、エレクトロスプレーイオン化法など)、質量分析計(例:二重収束質量分析計、四重極型分析計、飛行時間型質量分析計、フーリエ変換質量分析計、イオンサイクロトロン質量分析計など)等に供することにより行うことができる。また、これら測定原理を応用した測定デバイスでの検出(定量)も本発明の方法に含まれる。
 また、S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの検出(定量)は、公知の免疫化学的方法(ネフロメトリー、競合法、イムノメトリック法、化学蛍光法、化学蛍光電子法およびサンドイッチ法等)で実施することもできる。これらの免疫化学的方法は、例えば、入江 寛編「ラジオイムノアッセイ」(講談社、昭和49年発行)、入江 寛編「続ラジオイムノアッセイ」(講談社、昭和54年発行)、石川栄治ら編「酵素免疫測定法」(第3版)(医学書院、昭和62年発行)、「Methods in ENZYMOLOGY」Vol. 121(Immunochemical Techniques(Part I:Hybridoma Technology and Monoclonal Antibodies))(アカデミックプレス社発行)などを参照することができる。
 具体的なS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの検出(定量)方法としては、「S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentに共通するC末端側領域を認識する抗体」を用いて得られる試料中のS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの測定値から、「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体」のみを用いて、または「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体」と「S38AA long fragmentのC末端側領域を認識する抗体」とを組み合わせて用いて得られる試料中のS38AA long fragmentの測定値を減じることで、S38AA short fragment量を定量してもよいし、同様の方法で得た測定値をS38AA long fragment量に対するS38AA short fragment量の比として定量してもよいし、本発明の「S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体」を用いて、S38AA short fragment量を直接定量してもよい。S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentを特異的に検出し得る抗S38AA long fragment抗体および抗S38AA short fragment抗体としては、例えば、「2.本発明の抗体」に詳述されている抗体を挙げることができる。
 ここにおいて、「S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentに共通するC末端側領域を認識する抗体」として好ましくは、抗体A、B、およびCが挙げられる。
 「S38AA long fragmentのN末端側領域を認識する抗体」として好ましくは、「long fragment用抗体」が挙げられる。
 「S38AA long fragmentのC末端側領域を認識する抗体」として好ましくは、抗体A、B、およびCが挙げられる。
 「S38AA short fragmentを特異的に認識する抗体」として好ましくは、抗体A、B、およびCが挙げられる。
 本発明における測定方法として、例えば、「Long ELISA」が挙げられる。「Long ELISA」は、S38AA long fragmentの量を検出(定量)する方法であり、「long fragment用抗体」、および「抗体A、BおよびCからなる群から選択される少なくとも一つの抗体」を用いたサンドイッチELISA法である特徴を有する。
 本発明における測定方法として、例えば、「Total ELISA」が挙げられる。「Total ELISA」は、「S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの総量」を検出(定量)する方法であり、「抗体A、BおよびCからなる群から選択される少なくとも二つの抗体」を用いたサンドイッチELISA法である特徴を有する。
 本発明における「S38AA short fragmentの量を検出(定量)する方法」として、上記「Total ELISAでの測定結果(定量値)」から「Long ELISAでの測定結果(定量値)」を減算する方法が挙げられる。
 本発明の方法において用いられる「対照値」としては、対照試料中のS38AA short fragment量、または予め対照等について測定された、または設定されたS38AA short fragment量を用いてもよく、本発明の方法と同時に測定する必要はない。
 ここで対照値を設定するために、複数個体を対照群として、複数個体の測定値の平均値を対照値として用いることもできる。すなわち、対照値として、既に取得された対照群(健常動物、特定の進行度にあるアルツハイマー病に罹患した動物等)由来の対照試料中のS38AA short fragment量を使用して、上記判定等を行うことも、本発明の方法の範疇に包含される。
 例えば、健常動物由来の試料を対照試料として用いる場合、被検試料中のS38AA short fragment量が、対照試料中の該量よりも多い場合には、アルツハイマー病に罹患している、または現在アルツハイマーに罹患している可能性があるもしくは将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定あるいは決定することができる。
 また、特定の進行度にあるアルツハイマー病に罹患した動物由来の試料を対照試料として用いることにより、被検試料中のS38AA short fragment量が、対照試料中の該量よりも多い場合には、アルツハイマー病の進行度が対照とした該疾患に罹患した動物の進行度よりも高いと判定あるいは決定することができる。
 さらに、被検試料を採取した被検動物より過去に採取した試料を対照試料として用いることにより、被検試料中のS38AA short fragment量が、対照試料中の該量よりも多い場合には、アルツハイマー病が進行していると判定し、対照試料中の該量よりも少ない場合には、該疾患が改善していると判定することができる。
 そのうえ、アルツハイマー病を発症している動物由来の対照試料および健常動物由来の対照試料等の複数の対照試料を用いることにより、被検試料におけるS38AA short fragment量が健常動物由来の対照試料よりも大きく、かつアルツハイマー病を発症している動物由来の対照試料よりも小さいことを指標として、アルツハイマー病予備群、すなわち、まだ該疾患を発症していると確定診断され得ないが、Aβやタウ蛋白の蓄積が始まっており近い将来アルツハイマー病を発症する可能性が高いと判定することもできる。
 また、被検試料を採取したアルツハイマー病の投薬治療を開始している被検動物より過去に採取した試料を対照試料として用いることにより、被検試料中のS38AA short fragment量が、対照試料中の該量よりも多い場合には、現在の投薬治療が有効でないと評価し、対照試料中の該量よりも少ない場合には、該投薬治療が有効であると評価することもできる。
 「被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチド」が、「健常動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチドの量(対照値)」より大きい場合に、被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定することができる。
 「被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチド」の量として好ましくは、対照値の1.1倍~10倍が挙げられる。より好ましくは1.1倍~8倍が挙げられる。更に好ましくは、1.2~5倍が挙げられる。最も好ましくは、1.2倍~3倍が挙げられる。
 「被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチド」が、「被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(対照値)」より大きい場合に、被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定することができる。
 「被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチド」の量として好ましくは、対照値の1.1倍~10倍が挙げられる。より好ましくは1.1倍~8倍が挙げられる。更に好ましくは、1.2~5倍が挙げられる。最も好ましくは、1.2倍~3倍が挙げられる。
 「被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチド」が、「被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(対照値)」より小さい場合に、被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定することができる。
 「被検動物より採取した試料中の配列番号1のポリペプチド」の量として好ましくは、対照値の0.1倍~0.9倍が挙げられる。より好ましくは0.2倍~0.9倍が挙げられる。更に好ましくは、0.3~0.9倍が挙げられる。最も好ましくは、0.4倍~0.9倍が挙げられる。
 S38AA short fragmentの定量的解析は、試料中のS38AA short fragment量を標準タンパク質(内部標準タンパク質)の量で標準化することにより実施してもよい。すなわち、上記の方法を用いて、試料中のS38AA short fragment量と標準タンパク質の量を定量した後、両者のシグナルの比(S38AA short fragment/標準タンパク質)を算出し、試料中のS38AA short fragment量を、標準タンパク質の存在量との比で表せばよい。
 標準タンパク質は、恒常的に一定量発現しているタンパク質であればよく、多くの組織や細胞中に共通して発現しているタンパク質が好ましい。例えば、細胞の生存に必須のタンパク質、例えば、RNA合成酵素、エネルギー生成系酵素、リボソームのタンパク質、細胞骨格タンパク質等の遺伝子(ハウスキーピング遺伝子)によりコードされるタンパク質が挙げられる。具体的には、特に限定されないが、例えば、βアクチン、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ(GAPDH)、βチューブリン等のタンパク質が挙げられる。特に好ましくは、βアクチンが挙げられる。
 また上述の対照値に替えて、血中のS38AA short fragment量のアルツハイマー病あるいは軽度認知障害に関するカットオフ値をあらかじめ設定しておき、被検動物の血中のS38AA short fragment量と該カットオフ値とを比較してもよい。
 例えば、被検動物の血中のS38AA short fragment量がカットオフ値以上である場合には、被検動物がアルツハイマー病に罹患しているか、または現在アルツハイマー病に罹患している可能性もしくは将来アルツハイマー病に罹患する可能性を有すると判定することができる。
 「カットオフ値」は、その値を基準として疾患の判定をした場合に、高い診断感度(有病正診率)および高い診断特異度(無病正診率)の両方を満足できる値である。例えば、アルツハイマー病を発症した個体で高い陽性率を示し、かつ、アルツハイマー病を発症していない個体で高い陰性率を示す値をカットオフ値として設定することができる。
 カットオフ値の算出方法は、この分野において周知である。例えば、アルツハイマー病を発症した個体およびアルツハイマー病を発症していない個体における血中のS38AA short fragment量を算出し、算出された値における診断感度および診断特異度を求め、これらの値に基づき、市販の解析ソフトを使用してROC(Receiver Operating Characteristic)曲線を作成する。そして、診断感度と診断特異度が可能な限り100%に近いときの値を求めて、その値をカットオフ値とすることができる。また、例えば、多数の健常動物における血中のS38AA short fragment量の「平均値+2標準偏差」をカットオフ値とすることも好ましく、この値を用いれば良好な感度および特異性でアルツハイマー病を発症していると判定することが可能となる。また、例えば、ROC曲線から診断感度と診断特異度の尤度比が最大となるような値を求めて、その値をカットオフ値とすることで高感度にアルツハイマー病を判定することが可能となる。あるいは、ROC曲線において最も診断能が低い点、すなわちROC曲線下面積が0.5となる線から最も離れた点をカットオフ値にする、すなわち、「感度+特異度-1」を計算して、その値が最大値となる点をカットオフ値にすることも好ましい。
 本願明細書のリコンビナントタンパク質で換算した、S38AA short fragment量のカットオフ値として、例えば、45~75ユニットが挙げられる。カットオフ値として好ましくは、49~69ユニットが挙げられる。カットオフ値としてより好ましくは、54~64ユニットが挙げられる。カットオフ値としてより好ましくは、56~62ユニットが挙げられる。カットオフ値として更に好ましくは、58~61ユニットが挙げられる。カットオフ値として最も好ましくは、59ユニットが挙げられる。
 カットオフ値として別の好ましい値として、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、および75ユニットが挙げられる。
 生体内に含まれるS38AA short fragment量のカットオフ値として、例えば、45~75ng/mLが挙げられる。カットオフ値として好ましくは、49~69ng/mLが挙げられる。カットオフ値としてより好ましくは、54~64ng/mLが挙げられる。カットオフ値としてより好ましくは、56~62ng/mLが挙げられる。カットオフ値として更に好ましくは、58~61ng/mLが挙げられる。カットオフ値として最も好ましくは、59ng/mLが挙げられる。
 カットオフ値として別の好ましい値として、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、および75ng/mLが挙げられる。
 本発明の方法は、アルツハイマー病の判定等に際して、S38AA short fragmentに加えて、他のアルツハイマー病の診断マーカーの変動を調べてもよい。他のアルツハイマー病の診断マーカーとしては、例えば、血漿バイオマーカーとしての可能性が研究されているAβ、ホモシステイン、ニューロフィラメント、種々の炎症関連タンパク質(C反応性蛋白、IL-1β、TNF、IL-6およびTGFβ)、コレステロール、タウ、リン酸化タウ等の公知のマーカーが挙げられ、これらは周知慣用の検出法に従って検出することができる。
(2)アルツハイマー病の治療および予防方法
 上記本発明のアルツハイマー病の判定方法等において、被検動物がアルツハイマー病に罹患している、現在アルツハイマーに罹患している可能性、または将来アルツハイマー病に罹患する可能性を有すると判定された場合、該判定結果に基づき該被検動物に投与すべきアルツハイマー病治療薬または予防薬を決定し、該被検動物に治療的有効量の該治療薬または予防薬を投与することにより、アルツハイマー病を治療または予防することができる。
 本明細書において、「アルツハイマー病治療薬」には、アルツハイマー病の根治治療を目的とする医薬だけでなく、例えば、アルツハイマー病の進行抑制を目的とする医薬も含まれ、該進行抑制を目的とする医薬は、「アルツハイマー病予防薬」として用いられてもよい。
 アルツハイマー病治療薬としては、例えば、コリンエステラーゼ阻害薬、NMDA受容体拮抗薬、アミロイドβ除去薬および産生抑制薬、ならびにタウタンパク質除去薬および産生抑制薬が挙げられる。
 コリンエステラーゼ阻害薬としては、例えば、ドネペジル、ガランタミン、リバスチグミン、フペルジンA、およびタクリンが挙げられる。
 NMDA受容体拮抗薬としては、例えば、メマンチンが挙げられる。
 アミロイドβ除去薬および産生抑制薬としては、例えば、アミロイドβワクチン、アミロイドβ除去抗体、アミロイドβ産生酵素阻害剤、アミロイドβ凝集抑制剤およびアミロイドβ分解促進剤が挙げられる。具体的には、CNP-520、E-2609、aducanumab、solanezumab、gantenerumab、crenezumab、amilomotide、ASD-005、HSH-971、ELND-005、ALZT-OP1、nilvadipine、ACI-24、UB-311、AFFITOPE AD-02、LY-3002813、BAN-2401、Neurostem-AD、CT-1812、ID-1201、NIC5-15、BI-425809、Posiphen、PQ-912、bryostatin-1、Apabetalone、PBT-2、RIV-1061-IR、MEDI-1814、PF-05236812、SAR-228810、Lu-AF20513、PRI-002、IRX-4204、GC-021109、AAD-2004、CTS-21166、LY-3323795、benfotiamine、bisnorcymserine、MDR-1339、KHK-6640、およびNPT-088が挙げられる。
 タウタンパク質除去薬および産生抑制薬としては、例えば、タウタンパク質ワクチン、タウタンパク質除去抗体、タウタンパク質修飾抑制剤、タウタンパク質凝集抑制剤、およびタウタンパク質分解促進剤が挙げられる。具体的には、TRx-237、TPI-287、ABBV-8E12、RG-6100、AADvac1、RO7105705、PTI-80、JNJ-63733657、UCB-0107、BIIB-076、MC-1、ACI-35、およびAZP-2006が挙げられる。
 上記治療薬は、患者の症状に合わせて、適宜組み合わせて使用してもよい。
6.本発明の治療薬
 上記アルツハイマー治療薬は、その症状の重篤度(軽度、中等度、重度等)に応じて使用できるものが異なるため、上述の本発明のアルツハイマー病の進行度の判定を補助する方法の判定結果を用いて、被検動物に投与すべき治療薬を決定してもよい。
 従って、本発明は、アルツハイマー病の進行度が判定された被検動物(患者)に用いられる、アルツハイマー病治療薬を提供するものである。
 また、上述したようにAD患者の血液ではS38AA short fragment量が大きく上昇しており、かつ血中のS38AA long fragment量とアルツハイマー病の重篤度(認知機能障害の進行度)との間に正の相関があるため、本発明は、アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者(ヒト)の生体内のS38AA short fragmentの量を減少させる薬剤、またはアルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者(ヒト)の生体内におけるS38AA short fragmentの産生を阻害する薬剤を有効成分として含有するアルツハイマー病の治療薬または予防薬を提供するものである。ここで患者あるいは罹患可能性のある者の生体内のS38AA short fragmentの量としては、患者あるいは罹患可能性のある者の生体内組織もしくは体液に含まれるS38AA short fragmentの量が挙げられ、具体的には、血液、脳脊髄液、尿、唾液または涙液等を挙げることができる。
 S38AA short fragmentの量を減少させる薬剤としては、例えば、中和抗体が挙げられ、患者あるいは罹患可能性のある者の生体内のS38AA short fragmentと結合することにより、生体中の遊離のS38AA short fragmentを減少させることができる。S38AA short fragmentの産生を阻害する薬剤としては、例えば、S38AA long fragmentを切断し38AA short fragmentを産生する酵素の阻害剤が挙げられ、それぞれ自体当業者に周知の方法により取得することができる。
7.アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質の選別方法
 本発明は、被検物質がS38AA short fragmentを除去するか否か、またはS38AA short fragmentの生成を阻害するか否かを指標とする、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質を選別する方法、および該方法により取得され得る物質を提供するものである。本発明の選別方法においては、血中のS38AA short fragmentの量を低減する物質、あるいはS38AA short fragmentの生成を下方制御する物質が、アルツハイマー病を治療薬または予防薬の候補物質として選別される。
 本発明の選別方法に供される被検物質は、いかなる公知化合物および新規化合物であってもよく、例えば、核酸、糖質、脂質、蛋白質、ペプチド、有機低分子化合物、コンビナトリアルケミストリー技術を用いて作製された化合物ライブラリー、ランダムペプチドライブラリー、あるいは微生物、動植物、海洋生物等由来の天然成分等が挙げられる。
 本発明の選別方法は、例えば(i)被検物質とS38AA short fragmentの生成を測定可能な細胞とを接触させる工程と、(ii)被検物質を接触させた細胞におけるS38AA short fragmentの生成量を測定し、該生成量と被検物質を接触させない対照細胞におけるS38AA short fragmentの生成量とを比較する工程、および(iii)(ii)の比較結果に基づいて、S38AA short fragmentの生成量を下方制御する被検物質を、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質として選別する工程を含んでもよい。
 また本発明の選別方法は、例えば、(i)被検物質とS38AA short fragmentを生成する酵素とを接触させる工程と、(ii)被検物質を接触させた酵素におけるS38AA short fragmentの生成量を測定し、該生成量と被検物質を接触させない対照酵素におけるS38AA short fragmentの生成量とを比較する工程、および(iii)(ii)の比較結果に基づいて、S38AA short fragmentの生成量を下方制御する被検物質を、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質として選別する工程を含んでもよい。上記酵素の基質としては、S38AA short fragmentを生成する限り特に限定されないが、例えば、S38AA、S38AA long fragment、S38AA断片等が挙げられる。
 さらに、例えば、(i)被検物質とS38AA short fragmentとを接触させる工程と、(ii)被検物質を接触させた後に残存する遊離のS38AA short fragmentの存在量を測定し、該遊離のS38AA short fragment量と被検物質を接触させない場合の遊離のS38AA short fragment量とを比較する工程、および(iii)(ii)の比較結果に基づいて、S38AA short fragmentと結合し、遊離のS38AA short fragment量を下方制御する被検物質を、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質として選別する工程を含んでもよい。該方法は、上述のS38AA short fragmentを生成する酵素とその基質を含む系に被検物質を添加することで行ってもよく、予め用意したS38AA short fragmentを含む系に被検物質を添加することで行ってもよい。また(i)の被験物質とS38AA short fragmentとを接触させる工程において、該接触によりS38AA short fragmentが沈降(例えば、免疫沈降等)してもよい。
 本発明の選別方法に用いる「細胞」とは、測定対象のS38AA short fragmentの生成レベルが評価可能な細胞をいう。該細胞としては、測定対象のS38AA short fragmentを天然で生成可能な細胞、刺激を加えることによりS38AA short fragmentを生成することができるS38AA発現細胞、あるいはS38AA short fragmentを生成できるように遺伝子組換えした細胞等が挙げられる。
 S38AA short fragmentを天然で生成可能な細胞は、特に限定されないが、当該細胞として、哺乳動物(例えば、ヒト、マウス等)の初代培養細胞、当該初代培養細胞から誘導された細胞株などを用いることができる。S38AAはU251細胞やSHSY-5Y細胞に発現していることが公知であり、BE(2)-C細胞、SK-N-MC細胞にもS38AAは発現している。公知技術を用いてS38AA、あるいはFLAGタグ等のラベル化S38AAなどを過剰発現させた遺伝子組換細胞を作製することも可能である。S38AA発現細胞は、培養によりS38AAの切断等を経て、S38AA short fragmentが遊離する。生成されるS38AA short fragmentの量が少ない場合には、適宜、S38AAが切断等され易い条件で培養することにより、S38AA short fragmentの生成を測定することができる。S38AAが切断等され易い条件としては、例えば、グルコースを枯渇させた培地、あるいは脳に生理的に刺激を与えることが知られている物質を含む培地で培養することが挙げられる。当該物質としては、具体的には、TNFα、インタ―フェロンγ、インターロイキン1、インターロイキン6などのサイトカイン、アミロイドベータあるいはその凝集体などを例示することができる。
 被検物質とS38AA short fragmentの生成を測定可能な細胞との接触は、培養培地中で行われる。培養培地は、S38AA short fragmentの生成を測定可能な細胞に応じて適宜選択されるが、例えば、約5~20%のウシ胎仔血清を含む最少必須培地(MEM)、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)などである。培養条件も同様に適宜決定されるが、例えば、培地のpHは約6~約8であり、培養温度は通常約30~約40℃であり、培養時間は約0.1~約72時間である。
 また、被検物質とS38AA short fragmentを生成する酵素との接触は、該酵素とその基質を含む反応系中で行われる。反応系の酵素濃度、基質濃度、pH、温度等、酵素基質、反応時間などは、適宜設定し得る。
 ここで、S38AA short fragmentを生成する酵素として、当該酵素を含む溶液を用いることができる。当該溶液としては、S38AA short fragmentを生成可能な体液(血漿等)、臓器・組織抽出物、および細胞抽出物等が挙げられる。
 S38AA short fragmentの生成量の測定は、細胞の培養上清中または反応系中に遊離したS38AA short fragment量を、(5.本発明の方法)の項で述べた方法に従って測定することにより行うことができる。
 生成量の比較は、好ましくは、有意差の有無に基づいて行なわれ得る。なお、被検物質を接触させない対照細胞または酵素におけるS38AA short fragmentの生成量は、被検物質を接触させた細胞または酵素におけるS38AA short fragmentの生成量の測定に対し、事前に測定した生成量であっても、同時に測定した生成量であってもよい。
 本発明の選別方法で得られる物質は、新たなアルツハイマー病の治療薬または予防薬の開発のための候補物質として有用である。
 以下に実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明は何らこれらに限定されるものではない。
実施例1:ヒト血漿中S38AA long fragmentのN末端切断部位の同定
 AD患者由来の血漿中タンパク質をポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)により分離後、S38AA断片を含むゲル片を切り出し、トリプシンによるインゲル消化後に液体クロマトグラフィー-質量分析法(LC-MS/MS)により分析し、測定データに対しMASCOT database searchを行い、S38AA 断片のN末端の配列を決定した。
 具体的な操作としては、複数人のAD患者の血漿を混合したサンプルを、4-12% Bis-TrisGel(invitrogen)にアプライし、SDS-PAGE(25 mA、110分、MOPSバッファー)によりタンパク質の分離を実施した。クマシーブリリアントブルー染色にてゲルを染色後、80-100kDaに見られるバンドを切り出し、消化工程へと進めた。
 切り出したゲル片を96穴マイクロプレートに入れ、アセトニトリルを添加し、減圧遠心乾燥させ、10 mM DTT/100 mM NHHCOを加え、インキュベーションを行った。溶媒除去後、55 mM ICHCONH/100 mM NHHCOを加え、インキュベーションした。溶媒除去後、100 mM NHHCOを加え、ゲルを減圧遠心乾燥させ、0.1% RapiGest/25 mM NHHCOを加え、インキュベーションを行った。その後、減圧遠心乾燥させ、酵素溶液(50 mM NHHCO、12.5 ng/μL トリプシン)を添加し、酵素消化を行った。反応後、ペプチド溶液を別の96穴マイクロプレートに移し、アセトニトリル:milliQ:トリフルオロ酢酸(TFA)=500:500:1の混合溶媒をゲルに加え、得られたペプチド抽出液を減圧濃縮した。そこにTFAを加え、減圧濃縮をかけ、MS解析用サンプルとした。
 得られたサンプルをLC-MS/MSにより分析した。オービトラップ質量分析計により得られたデータを、S38AAタンパク質のアミノ酸配列に対してMASCOT database searchを実施したところ、S38AAタンパク質のアミノ酸配列のうち、複数のペプチドフラグメントが同定された(図1)。これらの配列のうち、最もN末端側にあるペプチドは399番目から413番目のアミノ酸配列であり、当該の配列を示すMS/MSスペクトルが観察された(図2)。また、この切断個所は398番目のセリン(S)のC末端側にあった。消化酵素トリプシンの切断はリジン(K)かアルギニン(R)のC末端を特異的に切断する酵素であり、本フラグメントのセリン(S)のC末端側では切断反応が起こらないため、すでにこの部位で切断されていたことが示唆された。本ペプチドフラグメントが検出されたことにより、精製したS38AA断片のN末端側は、398番目から399番目のS/Eで切断されていることがわかった。ここで同定されたS38AA断片を、S38AA long fragmentという。
実施例2:ヒト血漿中S38AA short fragmentのN末端切断部位の同定
 S38AA Long fragmentのN末端を認識するウサギ由来抗S38AAポリクロ―ナル抗体(「MBL」、「S38AAlong fragment用抗体」、または「long fragment用抗体」とも称する。)による免疫沈降法でS38AA long fragmentを取り除いたのち、マウス由来抗S38AAモノクロ―ナル抗体A(S38AA断片のC末端アミノ酸配列の一部のペプチドを免疫源として抗体産生ハイブリドーマを樹立し、分離精製したもの;抗体A)、マウス由来抗S38AAモノクロ―ナル抗体B(S38AA断片のC末端アミノ酸配列の一部のペプチドを免疫源として抗体産生ハイブリドーマを樹立し、分離精製したもの;抗体B)またはマウス由来抗S38AAモノクロ―ナル抗体C(S38AA long fragmentの大腸菌組換えタンパク質を免疫源として抗体産生ハイブリドーマを樹立し、分離精製したもの;抗体C)を用いて残存するS38AA断片を免疫沈降し、その画分を逆相カラムで精製し、トリプシンにより消化後、LC-MS/MSにより分析し、当該S38AA断片のN末端の配列を決定した。
 具体的な操作としては、AD患者の血漿の混合物にプロテアーゼ阻害剤(cOmplete Tablets Mini、Roche)を含むPBSを加え、さらにProtein G Mag Sepharose Xtra(ビーズ、GEヘルスケア)を加え、混和させることにより内在性イムノグロブリンを除去した。ビーズを取り除いた上清に、long fragment用抗体を添加し、抗原抗体反応を実施した。混和後、新たにビーズを加え、long fragment用抗体および抗体に吸着したS38AA long fragmentを含んだ回収タンパク質を取り除いた。ビーズを取り除いた上清に、前述の抗体A、BまたはCを添加し、抗原抗体反応を実施した。混和後、新たにビーズを加え、その後ビーズを回収することにより当該抗体とこの抗体に吸着したS38AA 断片を得た。免疫沈降で回収したビーズに、8M 尿素/1%TFA溶液を添加し、S38AA断片を溶出した。得られたS38AA断片を含む溶液を濃縮し、全量を逆相カラム(ZORBAX 300SB-C3、4.6x150 mm with guardcolumn、Agilent)で分離した。分離条件は下表1の通りである。得られた各画分を、S38AA断片のC末端側領域を認識する2つの抗体によるサンドイッチELISAにて測定し、S38AA断片を含む画分を酵素溶液(1M NHHCO、10mM CaCl、1ng/μLトリプシン)にて消化し、得られたペプチドをGL-tip SDB およびGL-Tip GC(ジーエルサイエンス)で濃縮した。
 得られたペプチドをLC-MS/MSにより分析した。Q-Exactive HF質量分析計により得られたデータを、SwissProt データベースに対してMASCOT database searchを実施したところ、S38AAが最も高いスコアで同定され、複数のペプチドフラグメントが同定された(図3)。これらの配列のうち、最もN末端側にあるペプチドは617番目から627番目の配列であり、当該の配列を示すMS/MSスペクトルが観察された(図4)。また、この切断個所は616番目のアスパラギン(N)のC末端側にあった。消化酵素トリプシンの切断はリジン(K)かアルギニン(R)のC末端を特異的に切断する酵素であり、本フラグメントのアスパラギン(N)のC末端側では切断反応が起こらないため、すでにこの部位で切断されていたことが示された。本ペプチドフラグメントが検出されたことより、精製したS38AA断片は、617番目から618番目のN/Gで切断されていることがわかった。ここで同定されたS38AA断片を、S38AA short fragmentという。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
実施例3:ヒト血漿中S38AA long fragment断片のC末端切断部位の同定
 実施例2で使用した「ウサギ由来S38AA long fragment用ポリクロ―ナル抗体(long fragment用抗体)」による抗体カラム精製法でS38AA long fragmentを分取し、その画分をSDS-PAGEにより分離後、S38AA long fragmentを含むゲル片を切り出し、トリプシンによるインゲル消化後にLC-MS/MSにより分析し、測定データに対しMASCOT database searchを行い、S38AA long fragmentのC末端のフラグメントの配列を決定した。
 具体的な操作としては、複数人のAD患者の血漿を混合したサンプルに50 mM Tris-HCl/0.05% Tween-20(pH7.4)を添加し、陰イオン交換カラム精製(Hitrap Q FF、GEヘルスケア)にアプライした。続いて、50 mM リン酸/0.05% Tween-20/500 mM NaCl(pH7.4)にて溶出した。溶出画分をlong fragment用抗体を結合させたカラム(HiTrap NHS-activated HP column、GEヘルスケア)にアプライした。カラムをPBS-Tにて洗浄後、0.1 M Glycine-HCl/0.05%Tween-20(pH2.7)にて溶出した。溶出液は1M Tris-HCl(pH9.0)にて直ちに中性に戻した。得られたサンプルをあらかじめ50 mM Tris-HCl(pH7.4)にて平衡化させたHiTrap Q FF column(GEヘルスケア)にアプライし、界面活性剤を除去した。サンプルを減圧遠心にて濃縮し、そこに50 mM DTT/LDSバッファーを添加し、加熱した。本サンプルを、4-12% Bis-Tris Gel(invitrogen)に全量アプライし、SDS-PAGE(50 mA、90分、MOPSバッファー)によりタンパク質の分離を実施した。ゲルをSypro Ruby(pierce)にて染色後、80-100 kDaに見られるバンドを切り出し、消化工程へと進めた。
 切り出したゲル片を96穴マイクロプレートに入れ、アセトニトリルを添加し、ソニケーションを行った。その後、減圧遠心乾燥させ、10 mM DTT/25 mM NHHCOを加え、インキュベーションを行った。溶媒除去後、55 mM ICHCONH/25 mM NHHCOを加え、遮光下にてインキュベーションした。溶媒除去後、50 mM NHHCOを加え静置した後、アセトニトリルを添加し、ソニケーションを行った。溶媒除去後、ゲルを減圧遠心乾燥させ、0.1% RapiGest/25 mM NHHCOを加え、インキュベーションを行った。その後、減圧遠心乾燥させ、インキュベーションを行った後、酵素溶液(50 mM NHHCO、5ng/μL トリプシン)を添加し、インキュベーションした。溶媒除去後、50 mM NHHCOを加え、インキュベーションし、酵素消化を行った。反応後、ペプチド溶液を別の96穴マイクロプレートに移し、アセトニトリル:milliQ:TFA=500:500:1の混合溶媒をゲルに加え、ソニケーションを行った。この操作をもう一度繰り返し、得られたペプチド抽出液を減圧濃縮し、MS解析用サンプルとした。
 得られたペプチドをLC-MS/MSにより分析した。オービトラップ質量分析計により得られたデータを、S38AAタンパク質のアミノ酸配列に対してMASCOT database searchを実施したところ、S38AAタンパク質のアミノ酸配列のうち、複数のペプチドフラグメントが同定された(図5)。これらの配列のうち、最もC末端側にあるペプチドは1040番目から1049番目の配列であり、当該の配列を示すMS/MSスペクトルが観察された(図6)。また、この切断個所は1049番目のロイシン(L)のC末端側にあった。消化酵素トリプシンの切断はリジン(K)かアルギニン(R)のC末端を特異的に切断する酵素であり、本フラグメントのロイシン(L)のC末端側では切断反応が起こらないため、すでにこの部位で切断されていたことが示唆された。本ペプチドフラグメントが検出されたことより、精製したS38AA long fragmentのC末端側は、1049番目から1050番目のL/Rで切断されていることがわかった。なお、S38AA short fragmentは、実施例2で用いた「S38AA long fragmentのC末端を認識する抗体(抗体A、抗体B、または抗体C)」への反応性が同じであったことから、S38AA short fragmentのC末端も同一の部位で切断されていると考えられた。
実施例4:S38AA long fragmentおよびS38AA short fragment大腸菌組換えタンパク質の作製およびELISAによる測定
 S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの大腸菌組換えタンパク質を作製し、それらを標品としS38AA long fragmentのみを定量するLong ELISAおよび両方のfragmentを定量するTotal ELISAを構築した。
 具体的な操作としては、S38AA long fragment配列(399-1049アミノ酸配列)およびS38AA short fragment配列(617-1049アミノ酸配列)のプラスミドDNAを導入した大腸菌BL21(DE3)の形質転換体を作製した。振とう培養を継続した後に、遠心して集菌した。少量の菌体にタンパク質抽出試薬B-PER(Thermo Fisher Scientific)を加えて懸濁し、その遠心上清をSDS-PAGEにて泳動し、目的タンパク質の発現を確認した。本菌体にバッファーA(20 mM Tris HCl pH 8.0, 200 mM NaCl, 10% glycerol, 20 mM imidazole)とプロテアーゼ阻害剤cOmplete EDTA-free(Roche)および核酸分解酵素Benzonaseを加え、懸濁して菌体を破砕し、遠心した。0.22μmフィルターを用いて遠心上清から残存菌体を取り除いた後に、HisTrap HPを用いてNiアフィニティ精製を行った。目的タンパク質の溶出フラクションをまとめ、標品とした。標品のタンパク質濃度を測定した結果、それぞれ1.4 mg/mL(long fragment)、1.6 mg/mL(short fragment)であった。
 「S38AA long fragmentに対するN末端側領域を認識する抗体(実施例2で用いたlong fragment用抗体)」と「C末端側領域を認識する抗体A」、「抗体B」、または「抗体C」によるサンドイッチELISA(Long ELISA)と、S38AA long fragmentとS38AA short fragment両方に共通するC末端側領域を認識する「抗体A」、「抗体B」および「抗体C」から選択される2つの抗体によるサンドイッチELISA(Total ELISA)を作製した。定量に用いる標品として、上記の大腸菌組換えタンパク質(スタンダードタンパク質)を準備し、両ELISAにて測定した。各抗体を固相したプレートにサンプルをアプライし、インキュベーションした。3回洗浄後、各HRP標識抗体を添加し、インキュベーションした。3回洗浄後、3% 3,3’,5,5’-Tetramethylbenzidine(TMB)溶液を添加し、遮光下でインキュベーションした。最後に8%硫酸を添加して反応を停止し、450nmの吸光度(O.D.)を測定した。その結果、スタンダードタンパク質濃度依存的な反応が認められ、良好な検量線が得られた(図7)。Long ELISAでは、S38AA short fragmentスタンダードタンパク質への反応は認められなかった。
実施例5:ヒト血漿中S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量(Total ELISA-Long ELISA減算法)
 ヒト血漿中に含まれるS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentを定量するため、減算法を用いたELISAによる定量を実施した。
 具体的な操作としては、4名の健常者および8名の中等度および重度AD患者由来の血漿それぞれに含まれるS38AA short fragment量を、上述のTotal ELISAおよびLong ELISAを用いて定量した。定量は実施例4に記載の方法に準じて実施した。各ELISAの検量線は、S38AAlong fragmentスタンダードタンパク質の測定により作成した。S38AA short fragment量に関しては、Total ELISAの定量値からLong ELISAの定量値を減算することにより算出した。その結果、各サンプルにおけるS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値が得られた(図8)。
 得られた結果に基づき、健常者およびAD患者由来の血漿に含まれるS38AA short fragmentおよびS38AA long fragment量を解析した結果、S38AA long fragment量に比して、S38AA short fragment量が、健常者とAD患者の識別性が高く、高感度に中等度および重度AD患者を判定できることがわかった(図9)。
実施例6:ヒト血漿中S38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量(Long fragment免疫沈降除去法)
 ヒト血漿中に含まれるS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentを定量するため、免疫沈降法を用いたS38AA long fragmentの除去およびELISA定量を実施した。
 具体的な操作としては、複数人の健常者およびAD患者の血漿を混合したサンプルそれぞれにPBSを添加し、Protein G Mag Sepharose Xtra(ビーズ、GEヘルスケア)を加えて混和させることにより、内在性イムノグロブリンを除去した。反応後、上清にウサギ由来S38AA long fragment用ポリクロ―ナル抗体(long fragment用抗体)を添加し、抗原抗体反応を行った。反応後、新たなビーズに本反応液を混合し、抗原抗体複合体をビーズに回収した。回収したビーズに0.1M Gly-HCl(pH2.8)を添加することによりS38AA long fragmentを含んだ回収タンパク質を溶出した。溶出液は、1M Tris-HCl(pH9.0)にて直ちに中性とした。得られた溶出液(S38AA long fragment画分)および上清(S38AA short fragment画分)に含まれるS38AAlong fragmentおよびS38AA short fragmentの量を、それぞれTotal ELISAを用いて定量した。定量は実施例4に記載の方法に準じて実施した。各ELISAの検量線は、S38AA long fragmentスタンダードタンパク質の測定により作成した。その結果、各サンプルにおけるS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値が得られた(図10)。本結果から、AD患者ではS38AA long fragmentに比べてS38AA short fragment量が大きく上昇していることが示唆された。
実施例7:各S38AA fragmentの定量によるAD診断能比較(Total ELISA-Long ELISA減算法)
 各S38AA fragmentの定量によるAD診断能の比較のため、減算法を用いたELISA定量を実施した。
 具体的には、10名の健常者および10名の軽度AD患者由来の血漿それぞれに含まれるS38AA short fragment量およびS38AA long fragment量を、Total ELISAおよびLong ELISAを用いて定量した。定量は実施例4に記載の方法に準じて実施した。各ELISAの検量線は、S38AA long fragmentスタンダードタンパク質の測定により作成した。S38AA short fragment量に関しては、Total ELISAの定量値からLong ELISAの定量値を減算することにより算出した。その結果、各サンプルにおけるS38AA long fragmentおよびS38AA short fragmentの定量値が得られた(図11)。また、総量やS38AA long fragment量に比しS38AA short fragment量のみを定量することにより高感度に軽度ADを診断できることが示唆された(図12)。
実施例8:各種抗S38AA fragment抗体を組み合わせたヒト血漿中S38AA fragmentの定量1
ヒト血漿中に含まれる『「S38AA short fragmentの量」と「S38AA long fragmentの量」との総量』を定量するため、各種抗S38AA fragment抗体を組み合わせ使用したELISA定量を実施した。
 具体的には、4名の健常者および8名のAD患者由来の血漿それぞれを、「抗体A、抗体B、抗体Cのうちの2つの組み合わせからなる抗体を用いたELISA(パターン1、2、または3)」を用いて定量した。定量は実施例4に記載の方法に準じて実施した。各ELISAの検量線は、S38AA long fragmentスタンダードタンパク質の測定により作成し、各サンプルにおける定量値を取得した(図14)。
 パターン1:抗体A、および抗体Bを用いたELISA
 パターン2:抗体A、および抗体Cを用いたELISA
 パターン3:抗体B、および抗体Cを用いたELISA
 測定の結果、『「S38AA short fragmentの量」と「S38AA short fragmentの量」との総量』に係る測定値は、各サンプルにおいて同等であり、使用した抗体の組み合わせに関わらず、一貫した定量性が得られた。
実施例9:各種抗S38AA fragment抗体を組み合わせたヒト血漿中S38AA fragmentの定量2
ヒト血漿中に含まれる「S38AA long fragmentの量」を定量するため、各種抗S38AA fragment抗体を組み合わせて使用したELISA定量を実施した。
 具体的には、4名の健常者および8名のAD患者由来の血漿それぞれを、「一方がLong fragment用抗体および他方が抗体A、抗体B、抗体Cのうちの1つの組み合わせELISA(パターン4、5、または6)」を用いて定量した。定量は実施例4に記載の方法に準じて実施した。各ELISAの検量線は、S38AA long fragmentスタンダードタンパク質の測定により作成し、各サンプルにおける定量値を取得した(図15)。
 パターン4:Long fragment用抗体、および抗体Aを用いたELISA
 パターン5:Long fragment用抗体、および抗体Bを用いたELISA
 パターン6:Long fragment用抗体、および抗体Cを用いたELISA
 測定の結果、「S38AA long fragmentの量」係る測定値は、各サンプルにおいて同等であり、使用した抗体の組み合わせに関わらず、一貫した定量性が得られた。
実施例10:実施例8および9の結果を用いたヒト血漿中S38AA short fragmentの定量
 実施例8で取得した『「S38AA short fragmentの量」と「S38AA short fragmentの量」との総量』から、実施例9で取得した「S38AA long fragmentの量」を減算することで、「S38AA short fragmentの量」を求めた(図16)。
 具体的には、以下の組み合わせで減算を行った。
 パターン1-4:「パターン1での測定結果」から「パターン4での測定結果」を減算した結果
 パターン1-5:「パターン1での測定結果」から「パターン5での測定結果」を減算した結果
 パターン1-6:「パターン1での測定結果」から「パターン6での測定結果」を減算した結果
 パターン2-4:「パターン2での測定結果」から「パターン4での測定結果」を減算した結果
 パターン2-5:「パターン2での測定結果」から「パターン5での測定結果」を減算した結果
 パターン2-6:「パターン2での測定結果」から「パターン6での測定結果」を減算した結果
 パターン3-4:「パターン3での測定結果」から「パターン4での測定結果」を減算した結果
 パターン3-5:「パターン3での測定結果」から「パターン5での測定結果」を減算した結果
 パターン3-6:「パターン3での測定結果」から「パターン6での測定結果」を減算した結果
 減算して求めた「S38AA short fragmentの量」は、いずれの抗体の組み合わせを用いても一貫した定量性が得られた。
 本発明は、日本国で出願された特願2018-148924(出願日:2018年8月7日)を基礎としており、その内容はすべて本明細書に包含されるものとする。
 本発明は、アルツハイマー病の診断および治療等に有用である。

Claims (18)

  1.  以下のいずれかのアミノ酸配列からなるポリペプチド:
    (1)配列番号:1で表されるアミノ酸配列;または
    (2)配列番号:1で表されるアミノ酸配列において、1~数個のアミノ酸が置換、欠失、付加もしくは挿入されたアミノ酸配列。
  2.  請求項1に記載のポリペプチドを特異的に認識する抗体。
  3.  請求項1に記載のポリペプチドをコードする核酸。
  4.  請求項2に記載の抗体を含むキット。
  5.  更に請求項1に記載のポリペプチドを含む、請求項4に記載のキット。
  6.  被検試料と請求項2に記載の抗体を接触させる工程を含む、請求項1に記載のポリペプチドを検出する方法。
  7.  アルツハイマー病を判定するために用いられる、請求項4または5に記載のキット。
  8.  請求項1に記載のポリペプチドの量を測定可能な単一、または複数種類の抗S38AA抗体を含有する、アルツハイマー病の判定薬。
  9.  前記抗S38AA抗体が請求項2に記載の抗体である、請求項8に記載の判定薬。
  10.  被検動物より採取した試料中の請求項1に記載のポリペプチドを検出することを特徴とする、該動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性を判定する方法。
  11.  以下の(i)~(iii)の工程:
    (i)被検動物より採取した試料中の請求項1に記載のポリペプチドを定量する工程、
    (ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、健常動物より採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
    (iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物が現在アルツハイマー病に罹患している可能性または将来アルツハイマー病に罹患する可能性があると判定する工程、
    を含む、請求項10に記載の方法。
  12.  以下の(i)~(iii)の工程:
    (i)アルツハイマー病に罹患または罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の請求項1に記載のポリペプチドを定量する工程、
    (ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、および
    (iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程
    を含む、アルツハイマー病の進行度の判定を補助する方法。
  13.  被検動物がヒトである、請求項10~12のいずれか一項に記載の方法。
  14.  試料が、血液、脳脊髄液、唾液、涙液または尿である、請求項10~13のいずれか一項に記載の方法。
  15.  他の1以上のアルツハイマー病診断マーカーを検出することを更に含む、請求項10~14のいずれか一項に記載の方法。
  16.  以下の(i)~(iv)の工程で、アルツハイマー病の進行度が判定された患者に用いられる、アルツハイマー病治療薬:
    (i)現在アルツハイマー病に罹患または罹患している可能性がある被検動物より採取した試料中の請求項1に記載のポリペプチドを定量する工程、
    (ii)(i)で定量した前記ポリペプチドの量を、該被検動物より過去に採取した試料中の前記ポリペプチドの量(以下、対照値という)と比較する工程、
    (iii)(ii)の結果に基づき、(i)で定量した前記ポリペプチドの量が、対照値よりも大きい場合に、前記被検動物のアルツハイマー病が進行していると判定し、対照値よりも小さい場合に前記被検動物のアルツハイマー病が改善していると判定する工程、および
    (iv)(iii)の判定結果に基づき、アルツハイマー病治療薬を投与することを決定する工程。
  17.  アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の請求項1に記載のポリペプチドの量を減少させる薬剤、またはアルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害する薬剤を、有効成分として含有するアルツハイマー病の治療薬または予防薬。
  18.  被検物質が、アルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内の請求項1に記載のポリペプチドの量を減少させること、またはアルツハイマー病患者あるいはアルツハイマー病への罹患可能性のある者の生体内における該ポリペプチドの産生を阻害することを指標とする、アルツハイマー病の治療薬または予防薬の候補物質を選別する方法。
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