WO2020009232A1 - 脂肪酸含有油脂を分解する新規微生物 - Google Patents

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WO2020009232A1
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克敏 堀
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国立大学法人名古屋大学
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    • C02F3/34—Biological treatment of water, waste water, or sewage characterised by the microorganisms used
    • C02F3/343—Biological treatment of water, waste water, or sewage characterised by the microorganisms used for digestion of grease, fat, oil
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    • C02F2103/32—Nature of the water, waste water, sewage or sludge to be treated from the food or foodstuff industry, e.g. brewery waste waters
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    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Definitions

  • the present disclosure relates to a microorganism having an ability to decompose fats and / or fatty acids and use thereof. More specifically, the present invention relates to a novel microorganism that degrades trans fat-containing fats and oils.
  • Wastewater from food factories and oil and fat factories contains large amounts of oil.
  • This oil is used for various biological treatment functions, such as a decrease in treatment capacity by activated sludge, a failure in solid-liquid separation due to a decrease in sedimentation, membrane fouling in the membrane separation activated sludge method (MBR), and inhibition of methane fermentation in anaerobic digestion.
  • MLR membrane separation activated sludge method
  • oil is removed by, for example, a pressurized flotation device or the like as a preceding stage of biological treatment of oil-rich wastewater.
  • a grease strap for removing oil is installed.
  • Decomposition rate is a problem in oil removal by microorganisms, as described above. Especially, activity decrease due to low temperature in winter often makes it difficult to apply microorganisms. Particularly at low temperatures in winter, the rate of decomposition of fats and oils by microorganisms is extremely slow, and it is considered impossible to perform wastewater treatment and waste treatment by specific microorganisms.
  • microorganisms belonging to Burkholderia family
  • This microorganism can efficiently degrade fats and oils and / or fatty acids even at a low temperature of about 15 ° C.
  • the present disclosure also relates to applications of the microorganisms of the present disclosure, such as oil treatment.
  • the present disclosure provides a novel microorganism having an ability to decompose fats and oils and a method for decomposing fats and / or fatty acids using the microorganism.
  • the present disclosure provides the following.
  • Burkholderia bacteria having the ability to decompose oils and fats at 15 ° C.
  • the Burkholderia bacterium according to any one of items 1 to 4, wherein the ability to assimilate or degrade is maintained at 15 ° C.
  • Item 7 The fungus according to any one of Items 1 to 6, which is a bacterium belonging to the genus Burkholderia.
  • Item 8 The fungus according to any one of items 1 to 7, which is a microorganism belonging to Burkholderia arboris, Burkholderia ambifaria, or Burkholderia cepacia complex.
  • An oil disintegrant according to item 10 comprising an additional oil treating component.
  • a kit for decomposing oil comprising the bacterium according to any one of items 1 to 9 or the oleolytic agent according to item 10, and an additional oil treatment component.
  • An oil decomposition removal method comprising: causing the bacterium according to any one of items 1 to 9 or the oil decomposing agent according to item 10 or 11 to act on an object to be treated.
  • Item 14 Item 14. The method according to Item 13, wherein the object to be treated includes a trans fatty acid or a trans fatty acid-containing fat or oil.
  • the microorganism of the present disclosure and a composition containing the same are capable of decomposing trans fatty acids and fats and oils containing the same fatty acids. Can be used at lower temperatures than before, so it can be used in a wide range of applications such as purification of environmental pollution by oils and fats, waste treatment such as garbage disposal, composting treatment, wastewater treatment, and composting. It can be applied to various situations.
  • the present disclosure can also solve the problem of oils and fats that are difficult to decompose, that is, oil types.
  • the microorganism of the present disclosure and a composition containing the same are capable of decomposing trans-fatty acids generated in the hydrogenation step of fats and oils and fats and oils containing the same, and in particular, margarine, fat spread, shortening, etc., containing a large amount of such fats and oils containing fats and oils
  • the present disclosure provides an effect of achieving trans-fatty acid decomposition, which can be used at a practical level as a bacterium that becomes a leading microorganism in wastewater treatment and waste treatment.
  • the microorganism of the present disclosure and a composition containing the same may be capable of decomposing fats and oils and fatty acids at a low temperature.
  • FIG. 5 shows the activity of KH-1 to decompose elaidic acid-containing fats and oils (trielaidin). Culture was performed at 28 ° C. and 130 rpm for 5 days. It is the photograph which analyzed glyceride and fatty acid in the culture solution by TLC. The left column shows the results of TBS buffer, and the right column shows the results of KH-1. [Fig. 4] Fig. 4 shows the activity of decomposing elaidic acid-containing fats and oils (trielaidin) in the culture supernatant of KH-1. Incubation was performed at 28 ° C. and 130 rpm for 24 hours. It is a photograph which analyzed glyceride and fatty acid in a solution by TLC.
  • the left is the result of TBS buffer, and the right is the result of KH-1.
  • 4 shows a comparison of fat and oil resolution between KH-1 and BioRemove 3200 (BR3200) using actual wastewater.
  • the cells were cultured at 28 ° C., and samples were collected after 24 hours and 48 hours.
  • (B) shows the result of measuring the oil content equivalent to the normal hexane value using an oil content measurement kit.
  • FIG. 4 shows the degradation of canola oil by KH-1 (5 L volume fermenter, 250 rpm, 200 ml / min air reflux, pH 7.0) at 15 ° C. culture. It is the result of measuring the oil content equivalent to the normal hexane value using an oil content measurement reagent kit. From the left, the results at 0, 24, 48, and 72 hours after the start of culture are shown. The vertical axis shows the ratio with the standard deviation when the measured value at 0 hour is taken as 100%.
  • Fig. 4 shows the oil / fat degradability of KH-1 in 28 ° C culture. It is the result of measuring the oil content equivalent to the normal hexane value using an oil content measurement reagent kit. From the left, the results at 0, 24, and 48 hours after the start of culture are shown. The vertical axis shows the ratio with the standard deviation when the measured value at 0 hour is taken as 100%. 3 shows a comparison between KH-1 and a detergent.
  • FIG. 5 is a photograph in which a ventilation fan filter with oil stains is immersed in a KH-1 culture supernatant, a detergent for oil, and a general detergent and washed.
  • the left shows the state before performing the processing.
  • the middle row and the right row are KH-1 treatment (center row 30 minutes, right row 1 hour), middle row: detergent treatment for oil (center row 2 hours, right row 4 hours), and lower row: general detergent, respectively. Processing (center row 2 hours, right row 4 hours).
  • 3 shows a comparison of the palmiteridic and baccenolytic activities of KH-1 and BioRemove 3200 (BR3200) (Novozymes, Denmark).
  • FIG. 4 shows the degradation of canola oil by KH-1AL1 in 15 ° C. culture. The results at 0, 24, 48, 72 and 96 hours after the start of the culture are shown.
  • the left is a photograph in which residual oil in the culture solution was analyzed by TLC.
  • the upper right shows the result of quantifying the total fatty acids (total of the fatty acids in triglyceride and free fatty acids) by gas chromatography, and the vertical axis shows the total fatty acid concentration (error bars indicate standard deviation).
  • the lower right part shows the result of measuring the oil content equivalent to the normal hexane value using an oil content measurement kit, and the vertical axis shows the percentage of the residual oil content when the measured value at 0 hours is 100% (error bars are standard values). Deviation).
  • FIG. 4 shows the degradation of canola oil by KH-1AL2 in 15 ° C. culture. The results at 0, 24, 48, 72 and 96 hours after the start of the culture are shown. The left is a photograph in which residual oil in the culture solution was analyzed by TLC.
  • the upper right shows the result of quantifying the total fatty acids (total of the fatty acids in triglyceride and free fatty acids) by gas chromatography, and the vertical axis shows the total fatty acid concentration (error bars indicate standard deviation).
  • the lower right part shows the result of measuring the oil content equivalent to the normal hexane value using an oil content measurement kit, and the vertical axis shows the percentage of the residual oil content when the measured value at 0 hours is 100% (error bars are standard values). Deviation).
  • FIG. 4 shows the degradation of canola oil by KH-1AL3 in 15 ° C. culture. The results at 0, 24, 48, 72 and 96 hours after the start of the culture are shown. The left is a photograph in which residual oil in the culture solution was analyzed by TLC.
  • FIG. 2 is a photograph of TEL analysis of the degradation of trielaidin by the culture supernatant of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 and KH-1AL3 in 28 ° C. culture.
  • FIG. 2 shows the assimilation and degradation of elaidic acid by KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 and KH-1AL3 in 28 ° C. culture.
  • the left is a photograph of residual elaidic acid in the culture solution analyzed by TLC.
  • the right side shows the result of measuring the oil content corresponding to the normal hexane value using an oil content measurement kit, and the vertical axis shows the residual oil content concentration (mg / L).
  • FIG. 2 shows the assimilation and degradation of elaidic acid by KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 and KH-1AL3 in 15 ° C. culture.
  • the left is a photograph of residual elaidic acid in the culture solution analyzed by TLC.
  • the right side shows the result of measuring the oil content corresponding to the normal hexane value using an oil content measurement kit, and the vertical axis shows the residual oil content concentration (mg / L).
  • the results for the sterile group (control), KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 and KH-1AL3 are shown, respectively (error bars indicate standard deviation).
  • lipase is a type of esterase, and refers to an enzyme that reversibly catalyzes the reaction of hydrolyzing neutral fats (glycerol esters) to decompose them into fatty acids and glycerol.
  • lipase includes triglycerol lipase classified into EC 3.1.1.3 by enzyme number (EC number).
  • oil and fat refers to an oily substance, and an oil and fat includes an ester group-containing compound formed by dehydration condensation of a hydroxyl group-containing compound and a fatty acid.
  • the compound containing the hydroxyl group is glycerin, but other examples include polyglycerin.
  • an ester group-containing compound formed by dehydration-condensation of glycerin and a fatty acid is referred to as “glyceride”, similarly to the meaning commonly used in this technical field.
  • the compound containing a hydroxyl group has a plurality of hydroxyl groups, if at least one of the hydroxyl groups forms an ester by dehydration condensation with a fatty acid, the compound falls under the category of the ester group-containing compound in the present specification. .
  • Oils and fats are contained in, for example, kitchen wastewater of the food service industry, wastewater of food factories, and the like, and grease traps and pressure flotation devices, which are processing equipment that removes them by solid-liquid separation, are sources of odors and pests.
  • grease traps and pressure flotation devices which are processing equipment that removes them by solid-liquid separation, are sources of odors and pests.
  • the labor and costs involved in the maintenance such as collection and transportation of separated oil, cleaning, etc., the cost of coagulants, etc.
  • the microorganisms of the present disclosure or the present disclosure in order to extinguish the oil in the grease trap or in the factory wastewater treatment equipment.
  • the composition is used.
  • This disclosure provides microbial formulations for grease traps and industrial effluents that include the lipolytic bacteria of the present disclosure.
  • Food factory effluents contain trans fatty acids, which are often not ultimately removed and can be problematic as soil residues, but the microorganisms of the present disclosure can also solve them.
  • kitchen wastewater in the food service industry usually contains not less than 1 g / L, and if it is high, not less than 10 g / L of high-concentration fats and oils.
  • the retention time of wastewater in many grease traps is as extremely as about 10 minutes.
  • Fats and oils are also abundant in garbage, livestock waste, and sludge from wastewater treatment plants. Many of them contain trans fatty acids. Microorganisms are often used for the treatment of such solid waste, but if the oil content is large, the treatment becomes difficult or the oil remains. The microorganisms or compositions of the present disclosure are also applicable to the treatment of decomposing oil in such waste.
  • fatty acid is a compound having 2 to 100 carbon atoms and having at least one carboxyl group.
  • the carbon chain in the fatty acid is straight, but it may be branched or contain a ring.
  • a fatty acid contains one carboxyl group, but may contain more than one carboxyl group.
  • trans fatty acid-containing fat or oil refers to a compound formed by the dehydration condensation of a trans fatty acid and a compound containing a hydroxyl group.
  • the trans fatty acid includes elaidic acid, vaccenic acid and the like, but when referred to in the present specification, there is no particular limitation on the type of trans fatty acid.
  • the ratio of trans fatty acid present in the trans fatty acid-containing fat or oil is not particularly limited.
  • trans form and “cis form” of a double bond are used in a meaning commonly used in the art, and four substituents (R 1 , R 2 , R 3 and R 4 ) are bonded to the following structure
  • R 1 , R 2 , R 3 and R 4 substituents
  • R 1 and R 2 or R 3 and R 4 are groups other than hydrogen and the remaining two substituents are hydrogen atoms
  • trans type the case where 2 is a group other than hydrogen and the remaining two substituents are hydrogen atoms.
  • Trans fatty acids are naturally present in trace amounts as conjugated linoleic acid or vaccenic acid, and are relatively high in, for example, ruminant fat.
  • Trans fatty acids can occur during the hydrogenation step to produce saturated fatty acids from unsaturated fatty acids and during the refining of vegetable oils rich in unsaturated fatty acids. Therefore, margarine, fat spreads, shortenings, etc. may contain relatively high amounts of trans fatty acids.
  • normal hexane (n-Hex) value refers to the amount of a non-volatile substance extracted by normal hexane, and is an index indicating the amount of oil (such as oils and fats and hydrolysis products thereof) in water. Point.
  • the n-Hex value can be determined according to, for example, JIS ⁇ K ⁇ 0102. In addition, it can also be determined using a simple measurement reagent kit for measuring a polynipam extract substance.
  • assimilation refers to utilization as a nutrient source, and a substance (eg, fat or oil) subject to assimilation is lost as a result.
  • composition when used for fats and oils and / or fatty acids, means that the subject fats and oils and / or fatty acids become smaller molecules, for example, divided into glycerol and (free) fatty acids. That is, the conversion of fatty acids into fatty acids having fewer carbon atoms and the conversion to carbon dioxide and water are also called decomposition.
  • the term “ability to assimilate trans-fatty acid-containing fats and oils” refers to the activity of assimilating trans-fatty acid-containing fats and oils.
  • "utilizing trans fatty acid-containing fats and oils” is used in a meaning commonly used in the art, and means that microorganisms take in trans fat-containing fats and oils as a nutrient source such as a carbon source.
  • "Utilization” includes hydrolysis to glycerol and free fatty acids, as well as conversion to part of other substances. The ability to assimilate trans-fatty acid-containing fats and oils can be measured and identified by the following tests.
  • -A test to confirm whether it is possible to grow on a medium containing trans fatty acid-containing fats and oils as the sole carbon source.
  • -A test to confirm whether colonies are formed in a medium containing trans fat containing fats and oils as a sole carbon source.
  • ⁇ Test to measure decrease in normal hexane value in culture supernatant with growth.
  • -A test in which all fatty acids (sum of fatty acids and free fatty acids in fats and oils) in the culture supernatant are converted to methyl esters as the cells grow, and the total amount is measured by gas chromatography.
  • a test in which the amount of fats and oils and free fatty acids in the culture supernatant is measured by thin-layer chromatography as the cells grow. Individual, more detailed measurement methods are provided herein, and one of skill in the art can perform these measurements using any other equipment and conditions.
  • the ability to decompose trans-fatty acid-containing fats and oils refers to the activity of hydrolyzing trans-fatty acid-containing fats and oils to glycerol and free fatty acids.
  • the ability to degrade trans fatty acids-containing fats and oils can be measured and identified in the following tests. -A test to confirm the ability to assimilate trans-fatty acid-containing fats and oils.
  • a test in which trans fatty acid-containing fats and oils are fed as a carbon source and cultured, and the amount of decrease in normal hexane value in the culture supernatant is measured.
  • -A test for measuring the concentration of free fatty acids in the culture supernatant by gas chromatography.
  • -A test for measuring the concentration of free fatty acids in the culture supernatant by GC-MS.
  • ⁇ Test for measuring the concentration of free fatty acids in the culture supernatant by HPLC.
  • -A test to confirm whether a clear zone is observed around a colony formed on an agar medium containing a trans fatty acid-containing fat or oil.
  • -A test in which a test water containing trans fatty acid-containing fats and oils as a main organic substance (for example, 70% by weight or more of all organic substances) is prepared, and a biochemical oxygen demand (BOD) is measured.
  • BOD biochemical oxygen demand
  • the ability to assimilate trans fatty acids refers to the ability to assimilate trans fatty acids.
  • the ability to assimilate trans fatty acids can be measured and identified in the following tests. -A test to determine if growth is possible on media containing trans fatty acids as the sole carbon source. -A test to confirm whether colonies are formed in a medium containing trans fatty acids as the sole carbon source. ⁇ Test to measure decrease in normal hexane value in culture supernatant with growth. -A test in which the concentration of trans fatty acid in the culture supernatant is measured by gas chromatography with the growth. -A test for measuring the concentration of trans fatty acid in the culture supernatant by HPLC with proliferation. -A test in which the amount of trans fatty acid in the culture supernatant is measured by thin-layer chromatography during growth. Individual, more detailed measurement methods are provided herein, and one of skill in the art can perform these measurements using any other equipment and conditions.
  • the ability to degrade trans fatty acids refers to the ability to degrade trans fatty acids.
  • the ability to degrade trans fatty acids can be measured and identified in the following tests. -A test to determine if there is an ability to assimilate trans fatty acids. -A test for measuring the amount of trans fatty acid in the culture supernatant by thin-layer chromatography. A test in which trans fatty acids are fed as a carbon source and cultured, and a decrease in the normal hexane value in the supernatant is measured. -A test for measuring the concentration of trans fatty acid in the culture supernatant by gas chromatography. -Test for measuring the concentration of trans fatty acid in the culture supernatant by GC-MS.
  • test to measure the concentration of trans fatty acid in the culture supernatant by HPLC.
  • a test to confirm whether a clear zone is observed around a colony formed on an agar medium containing trans fatty acids.
  • BOD biochemical oxygen demand
  • the ability to decompose fats and oils at 15 ° C.” refers to the activity of hydrolyzing fats and oils to glycerol and free fatty acids at low temperatures.
  • the ability to decompose fats and oils at 15 ° C. can be measured and identified by the following test. Degradation ability may be shown in any of the following tests, and not necessarily in all tests. A test to confirm whether or not there is an ability to use fats and oils at 15 ° C. -A test to confirm whether a clear zone is observed around a colony formed on an agar medium containing oil at 15 ° C.
  • a test in which fats and oils are given as a carbon source and cultured at 15 ° C., and a decrease in normal hexane value in the culture supernatant is measured.
  • a test in which fats and oils are given as a carbon source and cultured at 15 ° C., and changes in the amounts of fats and fats and free fatty acids in the culture supernatant with time are measured by thin-layer chromatography. If the amount of fats and oils decreases over time, there is a decomposition ability. Alternatively, it can be said that once the amount of free fatty acid increases, it has the ability to degrade.
  • oil treatment component means a component that assists in assimilation and decomposition of fats and oils and / or fatty acids. Specifically, components such as biosurfactants that promote the dispersing of fats and oils and / or fatty acids, components that break down fats and oils into fatty acids and glycerol, those that break down fatty acids, those that break down glycerol, That are adsorbed and removed from the object to be treated.
  • the oil processing component may include a biosurfactant produced by the microorganism of the present disclosure.
  • oil disintegrant refers to a preparation capable of decomposing fats and oils and / or fatty acids, using the microorganism of the present disclosure as an active ingredient.
  • an oil decomposer may be used in combination with an oil treatment component. In this case, the timing of the combined use of the oil decomposer and the oil treatment component may be used simultaneously or one of them may be used first.
  • the lipolytic agent includes a component to enhance the activity of the bacterial strain or a lipase derived from the bacterial strain to be used (for example, a carbon source or a nitrogen source), a surfactant, a desiccant, a component for maintaining bacteria for a long time, Preservatives, excipients, fortifiers, antioxidants and the like may be further included.
  • a component to enhance the activity of the bacterial strain or a lipase derived from the bacterial strain to be used for example, a carbon source or a nitrogen source
  • a surfactant for example, a carbon source or a nitrogen source
  • a desiccant for maintaining bacteria for a long time
  • Preservatives, excipients, fortifiers, antioxidants and the like may be further included.
  • an "derived strain”, “similar strain” or “mutant” preferably, but not limited to, comprises a region substantially homologous to the DNA of the microorganism of interest.
  • a gene eg, 16S ⁇ rDNA
  • such strains may, in various embodiments, be aligned by a computer homology program known in the art and compared to the entire genome sequence of the original strain, It has a whole genome sequence that is at least 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 95% or 99% identical.
  • gene mutations can be introduced using any known mutagen, UV, plasma, and the like.
  • an "derived strain,” “similar strain,” or “mutant” is a strain that is of the same genus and / or species as the original strain.
  • the biological function of such microorganisms can be determined by suitable and available in vitro assays described herein or known in the art.
  • homology of a gene refers to the degree of identity between two or more gene sequences, and generally having “homology” means that the degree of identity or similarity is high. Say. Thus, the higher the homology of a given two genes, the higher the identity or similarity of their sequences. Whether two genes have homology can be determined by direct sequence comparison or, in the case of nucleic acids, by hybridization under stringent conditions. When two gene sequences are directly compared, the DNA sequences between the gene sequences are typically at least 50% identical, preferably at least 70% identical, more preferably at least 80%, 90% , 95%, 96%, 97%, 98% or 99% identical, the genes are homologous.
  • Amino acids may be referred to herein by either their commonly known three-letter symbols or by the one-letter symbols recommended by IUPAC-IUB Biochemical Nomenclature Commission. Nucleotides may also be referred to by the generally recognized one-letter code.
  • BLAST a sequence analysis tool
  • the search for identity can be performed, for example, using NCBI's BLAST 2.7.1 (issued 2017.10.19).
  • the value of “identity” usually refers to a value when the above-mentioned BLAST is used and aligned under default conditions.
  • Similarity is a numerical value calculated for similar amino acids in addition to identity.
  • “70% or more” which is a numerical value of identity or the like is, for example, 70% or more, 75% or more, 80% or more, 85% or more, 90% or more, 95% or more, 96% or more. , 97% or more, 98% or more, 99% or more, or 100% or more, and may be in the range of any two of the starting values.
  • the “identity” is calculated by calculating the ratio of the number of homologous amino acids or bases in two or more amino acids or base sequences according to the known method as described above.
  • the amino acids or base sequences of the amino acid or base sequence group to be compared are aligned, and if necessary to maximize the ratio of the same amino acid or base, the amino acid or base is used. Introduce gaps in part of the array. Alignment methods, percentage calculation methods, comparison methods, and their associated computer programs are well known in the art (eg, BLAST, etc., described above).
  • “identity” and “similarity” can be represented by values measured by BLAST of NCBI unless otherwise specified. Blastp can be used with default settings for the algorithm when comparing amino acid or base sequences in BLAST. The measurement result is quantified as Positives or Identities.
  • the term “similarity” instead of “identity” is a numerical value that also takes into account the definition of “similar” “amine acid” or “base” described in the present specification.
  • the decomposition of trans-fatty acid-containing fats and oils there can be mentioned, but not limited to, the decomposition of cis fatty acids-containing fats and oils, the decomposition of cis fatty acids, the decomposition of saturated fatty acids-containing fats and oils, and the decomposition of saturated fatty acids. .
  • a biological function may be performed by a corresponding “biological activity”.
  • biological activity refers to an activity that a certain microorganism may have in a certain environment, and includes an activity that exerts various functions (for example, an activity of decomposing trans-fatty acid-containing fats and oils). You. Such a biological activity can be measured by techniques well known in the art.
  • “activity” refers to various measurable indicators that affect the response (ie, have a measurable effect in response to some exposure or stimulus), for example, some stimuli of the microorganisms of the present disclosure. Measures of the amount of protein upstream or downstream after or after an event or other similar function may also be included.
  • the “amount” of an analyte in a sample generally refers to an absolute value that reflects the mass of the analyte that can be detected in the volume of the sample. However, amounts also contemplate relative amounts as compared to another analyte amount. For example, the amount of the analyte in the sample may be greater than the control or normal levels of the analyte normally present in the sample.
  • kit refers to a kit which is usually divided into two or more compartments and provided with a portion to be provided (eg, a composition containing the microorganism of the present disclosure, additional components, buffers, instructions, and the like). Refers to the unit provided. This kit form is preferred when it is intended to provide a composition that should not be provided as a mixture for stability and the like, but is preferably used by mixing immediately before use. Such kits preferably include instructions or instructions describing how to use or provide the provided portions (eg, compositions containing microorganisms, additional components) and the like. It is advantageous to have instructions. When a kit is used in the present specification, the kit usually contains instructions and the like describing how to use the microorganism, the composition and the like of the present disclosure.
  • the “instruction” describes a method for using the present disclosure to a user.
  • the instruction includes a statement instructing how to use the present disclosure.
  • This directive may be provided, if necessary, to the competent authority of the country in which this disclosure is implemented (eg, the Ministry of Health, Labor and Welfare or the Ministry of Agriculture, Forestry and Fisheries in Japan, the Food and Drug Administration (FDA) in the United States, the Ministry of Agriculture (USDA) ), Etc.), and specify that they have been approved by the competent authority.
  • the instruction sheet may be provided in a paper medium, but is not limited thereto.
  • the instruction sheet may be provided in a form such as an electronic medium (for example, a homepage provided on the Internet, an e-mail).
  • the present disclosure provides a new microorganism capable of degrading fat.
  • the microorganisms of the present disclosure have the ability to assimilate trans-fatty acid-containing fats, assimilate trans-fatty acids, degrade trans-fatty acids, degrade trans-fatty acid-containing fats and / or oils and fats at 15 ° C. And / or has one or more characteristics of its ability to assimilate and / or degrade fatty acids.
  • the microorganism of the disclosure is a bacterium of the family Burkholderiaceae. In one embodiment, the microorganism of the present disclosure is a bacterium of the genus Burkholderia. Burkholderia is a gram-negative, non-spore-forming aerobic polar flagellar bacillus and is the reference genus of the Burkholderia family. In one embodiment, the microorganism of the present disclosure is Burkholderia arboris, Burkholderia ambifaria or Burkholderia cepacia, preferably Burkholderia arboris or Burgholderia ⁇ Ambifaria.
  • the microorganism of the present disclosure is a microorganism belonging to Burkholderia cepacia complex.
  • Burkholderia cepacia complex is a classification of microorganisms of the genus Burkholderia that are genetically very close, ambifaria, anthina, arboris, cenocepacia, cepacia, contaminans, diffusa, dolosa, lata, latens, metallica, multivorans, pseudomultivorans, puraquae, pyrrocinia.
  • a Burkholderia bacterium of the present disclosure comprises a metallica, seminalis, anthina, ambifaria, diffusa, ubonensis, multivorans, latens, cenocepacia, vietnamiensis, pyrrocinia, stabilis, glumee, gladioli, plantarii, oklahomensis, thailandensis, mallei.
  • the present inventor identified a new microorganism (KH-1) as Burkholderia arboris by determining the base sequence of 16S ribosomal DNA and analyzing the phylogenetic sequence, and submitted it to the Patent Organism Depositary of the National Institute of Technology and Evaluation, the Patent Microorganisms Depositary. Deposited, received on June 4, 2018, and issued a deposit certificate on June 12, 2018. The receipt number is NITE @ ABP-02731. Further, bacteria belonging to the genus Burkholderia (KH-1AL1, KH-1AL2 and KH-1AL3) were further identified and deposited with the National Institute of Technology and Evaluation, Patent Microorganisms Depositary, and incorporated on June 28, 2019.
  • the microorganism of the present disclosure is a Burkholderia strain KH-1 (accession number: NITE @ BP-02731 / a strain identified by accession number NITE @ ABP-027331), a KH-1AL1 strain (accession number NITE).
  • the microorganism of the present disclosure is a Burkholderia strain KH-1 (strain identified by accession number NITE @ BP-02731 / accession number NITE @ ABP-027331), strain KH-1AL1 (accession number NITE @ ABP). Strain derived from KH-1AL2 (strain specified by accession number NITE @ ABP-02978) or KH-1AL3 strain (strain specified by accession number NITE @ ABP-02979).
  • the derivative strain does not need to be a strain obtained based on the strains of Burkholderia KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3.
  • the microorganism that is the derivative strain of the present disclosure is a low-temperature (eg, 25 ° C. or lower), similar to the Burkholderia KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2, or KH-1AL3 strain. , 20 ° C. or less, 15 ° C. or less, 10 ° C. or less, 5 ° C. or less, etc .; Shows a biological function selected from the group, but the degree of the biological function may be different from the KH-1, Strain KH-1AL1, Strain KH-1AL2 or Strain KH-1AL3.
  • the microorganism that is the derivative strain of the present disclosure is a bacterium belonging to the family Burkholderia (Burkholderiaceae), more specifically, a bacterium belonging to the genus Burkholderia, and more specifically, Is a microorganism belonging to Burkholderia arboris, Burkholderia ambifaria, or Burkholderia cepacia complex.
  • Burkholderia Burkholderiaceae
  • Is a microorganism belonging to Burkholderia arboris, Burkholderia ambifaria, or Burkholderia cepacia complex.
  • the microorganism of the present disclosure contains an oil or fat as a sole carbon source and has an inorganic pH adjusted to 6 to 8. It may be isolable on a salt agar medium.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) is cleared around colonies formed on an agar medium. It may be possible to determine by confirming that a zone (halo) is formed.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) has the ability to assimilate trans-fatty acids or trans-fatty acid-containing fats and oils. Having.
  • a microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) has the ability to degrade trans fatty acids.
  • the microorganism of the present disclosure is capable of degrading trans fatty acid-containing fats and oils.
  • the microorganism of the present disclosure including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3, has the ability to degrade fats and / or fatty acids at 15 ° C. Having.
  • the microorganism of the present disclosure (including the KH-1, Strain KH-1AL1, Strain KH-1AL2 or derived strain of KH-1AL3) comprises trans fatty acids or fats and oils containing trans fatty acids. The ability to crack or decompose is maintained at 15 ° C.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) is cultured in a medium containing fats and oils, Surfactants can be secreted.
  • the oil content equivalent to the normal hexane value in the subsequent supernatant is less than 9 g / L, less than 8 g / L, less than 7 g / L, less than 6 g / L, less than 5 g / L, less than 4 g / L, less than 3 g / L, and less than 2 g / L.
  • It is preferable to have an oil / fat degrading ability to reduce the oil content corresponding to the normal hexane value, and to reduce the oil content corresponding to the normal hexane value to less than 6 g / L when inoculated at a density of OD 660 0.03 and cultured for 24 hours. It is particularly preferred to have a resolution, and microorganisms having such a low-temperature fat / oil resolution can be beneficially used in various applications of the present disclosure.
  • a microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) is a trans fatty acid (eg, elaidic acid, palmiteridic acid) , (Vaccenic acid) -containing fats and oils capable of assimilating and / or decomposing the trans-fatty acid-containing fats and oils in a medium at pH 7.0 and 15 ° C. or 28 ° C.
  • a trans fatty acid eg, elaidic acid, palmiteridic acid
  • (Vaccenic acid) -containing fats and oils capable of assimilating and / or decomposing the trans-fatty acid-containing fats and oils in a medium at pH 7.0 and 15 ° C. or 28 ° C.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2, or KH-1AL3) comprises Triton X-100 and elaidic acid at 0.25 each.
  • the elaidic acid concentration in the supernatant in% by weight is less than 0.15%, less than 0.12%, less than 0.1%, less than 0.09%, less than 0.08%, less than 0.07%, 0.
  • microorganisms of the present disclosure include KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3 derived strains) have less than 0.15% and less than 0.12% as determined under these conditions.
  • it has the ability to reduce elaidic acid concentration in the supernatant to less than 0.1%, or less than 0.05%, especially less than 0.12%, and microorganisms having such trans fatty acid degradability are disclosed herein. Can be beneficially used in various applications.
  • the elaidic acid concentration in the supernatant in% by weight is less than 0.15%, less than 0.12%, less than 0.1%, less than 0.09%, less than 0.08%, less than 0.07%, 0.
  • microorganisms of the present disclosure include KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3 derived strains
  • the microorganisms of the present disclosure have less than 0.15% and less than 0.12% as determined under these conditions. , Preferably less than 0.1%, less than 0.05%, less than 0.02% or less than 0.01%, in particular less than 0.1%.
  • Microorganisms having such trans fatty acid degradability can be beneficially used in various applications of the present disclosure.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) is placed in an inorganic salt medium containing 10 g / L of canola oil.
  • an inorganic salt medium containing 10 g / L of canola oil.
  • the oil equivalent to the normal hexane value in the supernatant after 24 hours is 1000% or less, 800% or less, 600% or less, and 400% compared to the oil equivalent to the normal hexane value in the supernatant after 24 hours in 28 ° C. culture.
  • the microorganisms of the present disclosure (including the derivative strain of the KH-1 strain), when determined under these conditions, have a fat / oil residual ratio of 800% or less, 700% or less, and 600% or less at 15 ° C culture compared to 28 ° C culture.
  • a fat and oil decomposability of 500% or less, 400% or less, and particularly 700% or less, and a microorganism having such a low temperature fat and oil decomposability can be advantageously used in various applications of the present disclosure.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2 or KH-1AL3) is placed in an inorganic salt medium containing 10 g / L of canola oil.
  • culture compared to culture is 1000% or more, 800% or more, 600% or more, 400% or more, 200% or more, 150% or more, 100% or more, 80% or more, 60% or more, It has a fat and oil resolution of 50% or more, 40% or more, 30% or more, 20% or more, 10% or more, or 5% or more.
  • the microorganism of the present disclosure (including the derivative strain of the KH-1 strain) has a total fatty acid degradation rate of 50% or more, 40% or more, and 30% or more at 15 ° C. culture as compared with 28 ° C. culture, as determined under these conditions. % Or more, preferably 20% or more, or 10% or more, particularly 30% or more. Microorganisms having such a low-temperature fat / oil resolution can be advantageously used in various applications of the present disclosure. .
  • the ability of microorganisms to decompose and assimilate fats and oils and fatty acids can be evaluated by analyzing the fats and oils remaining in the culture medium and fatty acids, which are decomposition products, by thin-layer chromatography (TLC). Specifically, first, an oil or fat is extracted by adding an equal amount of chloroform to a culture supernatant. 5 ⁇ l of the extract is developed on a silica gel-coated plate using a developing solvent containing chloroform, acetone and methanol at a volume ratio of 96: 4: 1, respectively. The plate is treated with molybdate n-hydrate to develop oils and / or fatty acids.
  • TLC thin-layer chromatography
  • the ability of microorganisms to decompose and assimilate fats and oils and fatty acids can be evaluated by examining the ability to grow on a medium using each as a sole carbon source.
  • a microorganism of the present disclosure may be capable of secreting lipase, It may not have the ability to secrete lipase.
  • the microorganism of the present disclosure (including a derivative of KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2, or KH-1AL3) is under mildly acidic conditions (eg, a pH of about 5.5 to about 5.5). 6.0) may be capable of growing and decomposing fats and oils.
  • the growth ability of the microorganism can be examined by a method of measuring the absorbance (turbidity) (OD 660 ) at 660 nm as an optical density of the cells, a method of measuring a colony forming unit (CFU), or the like. it can. In the latter, a fixed amount of a stock solution and a diluent of a culture solution are spread on an agar medium, and colonies formed by stationary culture are counted.
  • a method of measuring the absorbance (turbidity) (OD 660 ) at 660 nm as an optical density of the cells a method of measuring a colony forming unit (CFU), or the like.
  • the microorganism of the present disclosure may secrete lipase.
  • the ability of a microorganism to secrete lipase can be evaluated by measuring the lipase activity of a culture supernatant obtained by centrifuging a microorganism culture solution.
  • the lipase activity is determined by measuring the amount of 4-nitrophenol produced by performing an enzymatic reaction using 4-nitrophenyl palmitate (4-NPP), which is an ester of palmitic acid and 4-nitrophenol, as a substrate and hydrolyzing the ester.
  • 4-NPP 4-nitrophenyl palmitate
  • composition containing microorganisms provides a composition comprising a microorganism of the present disclosure.
  • the present disclosure provides a composition comprising a culture supernatant of the microorganism of the present disclosure.
  • the microorganism of the present disclosure can be produced by culturing by any appropriate method.
  • the composition is an oil disintegrant.
  • the composition is a fatty acid decomposer. By treating with the fatty acid decomposer of the present disclosure, a compound containing fewer carbon atoms than the number of carbon atoms contained in the fatty acid can be produced.
  • the composition is a trans fatty acid decomposer.
  • the fats and oils to which the oil disintegrant of the present disclosure is applied include, for example, vegetable fats (cottonseed oil, rapeseed oil, soybean oil, corn oil, olive oil, safflower oil, rice oil, sesame oil, palm oil, coconut oil) , Peanut oil, etc.), animal fats (lard, beef tallow, milk fat, etc.), fish oil, processed products of these fats (margarine, shortening, butter, etc.), insulating oils, lubricating oils, etc., but are not limited thereto. Not done.
  • the fat or oil may be present in the form of an emulsion or in a free state.
  • fats and oils to which the oil decomposer of the present disclosure is applied include fats and oils containing trans fatty acids, and such fats and oils include processed products such as fats and oils produced by hydrogenation (margarine). , Shortening, butter, etc.), but are not limited thereto.
  • hydrogenation (margarine). , Shortening, butter, etc.), but are not limited thereto.
  • the addition of hydrogen reduces the number of double bonds in unsaturated fatty acids and increases the proportion of saturated fatty acids, which may produce trans fatty acids. It is said that trans-fatty acids are contained in margarine, fat spread, shortening produced by hydrogenation, Western confectionery such as bread, cake and donut using such raw materials, and fried foods.
  • treatment is carried out at high temperatures to remove unwanted odors.
  • trans-fatty acids are formed from cis-type unsaturated fatty acids contained in the oil, refined vegetable oils such as salad oil also contain a small amount of trans-fatty acids.
  • the target to which the oil decomposer or fatty acid decomposer of the present disclosure is applied is not particularly limited.
  • industrial wastewater domestic wastewater, industrial waste, household waste (such as garbage), livestock waste, aquaculture (and Wastewater), barn (and its wastewater), and slaughterhouses (and its wastewater), soil contaminated with grease, water contaminated with grease (sea, ponds, rivers, potable water for animals, etc.), animal body Insulation oil or deterioration leaked from tables, aquariums (for aquaculture, appreciation, etc.), any oil-and-fat contaminated products (tableware, machine parts, etc.), grease traps, fatbergs, drain pipes, transformers installed in kitchens, etc. But not limited thereto.
  • any of these subjects may include trans-fatty acid-containing fats and / or trans-fatty acids, and the oil disintegrant or fatty acid decomposer of the present disclosure may be suitably applied.
  • "Grease trap” is a device for separating and collecting oil in drainage, and is typically composed of three tanks. The first tank has a basket and captures food pieces, leftovers, and the like. Oil and water are separated in the second tank. The wastewater separated from the oil is sent to the third tank to remove sedimentary debris and the like. Grease straps are required to be installed in commercial kitchens such as restaurants, hospitals and hotels. When applied to the grease trap, a separate decomposition treatment tank may be provided, but the fat and oil decomposing agent and microorganisms may be directly charged into the grease trap to perform the decomposition treatment in the grease trap.
  • the microorganisms of the present disclosure have high efficiency of low-temperature treatment, there may be embodiments in which low-temperature treatment is desirable.
  • low-temperature treatment For example, industrial wastewater, domestic wastewater, industrial waste, domestic waste (such as garbage), soil contaminated with fats and oils, water contaminated with fats (sea, ponds, rivers, drinking water for animals, etc.)
  • An example in which a process at a temperature lower than 20 ° C. (for example, 15 ° C.) is assumed is a preferable example as a target to be processed according to the present disclosure.
  • a preparation or the like is charged or added, or a carrier or the like on which the microorganism of the present disclosure is immobilized is placed in a drainage channel, a drainage storage tank, a grease trap, or the like.
  • a dedicated decomposition treatment tank may be separately provided outside the grease strap.
  • the wastewater includes, but is not limited to, wastewater from restaurants, hospitals, hotels, etc., domestic wastewater, industrial wastewater discharged from food processing factories, oil and fat processing plants, and the like.
  • Examples of the form of the microorganism or the composition of the present disclosure include a liquid state and a solid state.
  • the liquid-state microorganism or composition include a culture solution of the microorganism, a microorganism collected from the culture solution by centrifugation or the like, and then dispersed again in water, a buffer solution, a culture solution, or the like.
  • Microorganisms or compositions in the solid state include those dehydrated by centrifugation or press compression, those in the paste or mayonnaise state between the solid and liquid, and those dried (eg, dried under reduced pressure and freeze-dried). And the like.
  • the solid form include powder, granules, tablets and the like. Further, the composition may be provided in a state where the microorganism or the culture supernatant is fixed on a carrier.
  • the microorganism or composition of the present disclosure comprises about 1 ⁇ 10 8 cells / mL, about 1 ⁇ 10 7 cells / mL, about 1 ⁇ 10 6 cells / mL, about 1 ⁇ 10 5 cells / mL. , About 1 ⁇ 10 4 cells / mL, about 1 ⁇ 10 3 cells / mL, about 1 ⁇ 10 2 cells / mL, or about 10 cells / mL.
  • the microorganisms or compositions of the present disclosure can be used in any suitable environment.
  • the microorganism or composition of the present disclosure is 0-100 ° C., 5-70 ° C., less than 10-50 ° C., 15-40 ° C., 20-35 ° C., less than 70 ° C., less than 60 ° C., 50 Less than 40C, less than 40C, less than 30C, less than 25C, less than 20C, less than 15C, less than 10C, less than 5C, less than 0C, about 70C, about 60C, about 50C, about 40C. , About 30 ° C, about 25 ° C, about 15 ° C, about 10 ° C, about 5 ° C or about 0 ° C.
  • the microorganism or composition of the present disclosure has a pH of 3-13, pH 4-12, pH 5-11, pH 6-10, pH 7-9, pH 5.5-8.5, about pH 3, about pH 4, about 4 It can be used in an environment of pH 5, about pH 6, about pH 7, about pH 8, about pH 9, about pH 10, about pH 11, about pH 12, or about pH 13.
  • the microorganism or composition of the present disclosure is in an environment with a dissolved oxygen concentration (DO) of 0.05 mg / L or more, 0.1 mg / L or more, 0.5 mg / L or more, or 1 mg / L or more.
  • DO dissolved oxygen concentration
  • the microorganisms or compositions of the present disclosure may be used in wastewater with normal hexane values of 100 to 40000 mg / L, 200 to 30000 mg / L, 300 to 30000 mg / L.
  • solid wastes which may include water
  • sludge slurries and garbage disposal higher concentrations of oils and fats may be present, but in one embodiment, the microorganisms or compositions of the present disclosure may comprise It can also be applied to such solid wastes.
  • the microorganism or composition of the present disclosure comprises 50% or more, 20% or more, 10% or more, 7% or more, 5% or more, 2% or more, 1% or more, 0.7 wt% or more, 0.5 wt% or more, 0.2 wt% or more, 0.1 wt% or more, 0.07 wt% or more, 0.05 wt% or more, 0.02 wt% or more, 0 It may be added to a subject containing at least 0.01% by weight, at least 0.007% by weight, at least 0.005% by weight, at least 0.002% by weight, or at least 0.001% by weight of trans fatty acids.
  • the ratio of trans fatty acids (total of free fatty acids and fatty acids in the ester group-containing compound) in the fats and oils contained is 50% by weight or more, and 20% by weight. % Or more, 7% or more, 5% or more, 2% or more, 1% or more, 0.7% or more, 0.5% or more, 0.2% or more, 0% or more 0.1 wt% or more, 0.07 wt% or more, 0.05 wt% or more, 0.02 wt% or more, 0.01 wt% or more, 0.007 wt% or more, 0.005 wt% or more, 0.1 wt% or more. It may be added to a subject that is at least 002 wt% or at least 0.001 wt%.
  • the microorganism or composition of the present disclosure is added to a form in which nitrogen is available to the microorganism, preferably an ammonium salt, nitrate, sulfate, or organic nitrogen compound, more preferably ammonium sulfate, urea.
  • nitrogen is available to the microorganism, preferably an ammonium salt, nitrate, sulfate, or organic nitrogen compound, more preferably ammonium sulfate, urea.
  • C / N is the weight ratio of carbon atoms derived from n-Hex and nitrogen atoms contained in the wastewater.
  • nitrogen may be further added to be in these ranges.
  • the phosphorus (P) is present in a form available to the microorganism, preferably in the form of phosphate or nucleic acid, more preferably in the form of phosphate. It may be.
  • N / P is the weight ratio of nitrogen atoms to phosphorus atoms contained in the wastewater.
  • phosphorus may be further added to be in these ranges.
  • the microorganisms or compositions of the present disclosure may be used in the presence of salts, surfactants, light, current, agitation, aeration, or any combination thereof.
  • the microorganisms or compositions of the present disclosure may be applied after killing the microorganisms of the present disclosure and removing substances that inhibit growth (chlorine, antibiotics, etc.).
  • the microorganism or composition of the present disclosure may be used with a carrier capable of immobilizing the microorganism. Washout can be effectively avoided by using such a carrier.
  • the material of the carrier is not particularly limited as long as it can fix microorganisms.
  • carbon fiber PAN-based, pitch-based, phenolic-based, etc.
  • polyethylene resin polypropylene resin, polyurethane resin, polystyrene resin, polyvinyl chloride Resin, polyvinyl acetate resin, polyvinyl alcohol resin, polyethylene glycol resin, acrylic resin, gelatin, sodium alginate, carrageenan, dextrin, ceramics, silicon, metal, charcoal, activated carbon, minerals (zeolites, diatomaceous earth, etc.), and composites of these Is mentioned.
  • a porous or fibrous carrier in order to increase the immobilization rate of microorganisms and the efficiency of action of microorganisms.
  • microorganisms may be included in the gel carrier.
  • the shape of the carrier include a cubic shape, a rectangular parallelepiped shape, a columnar shape, a spherical shape, a disk shape, a sheet shape, and a film shape.
  • the technology for immobilizing microorganisms include, for example, “Wastewater treatment by microorganism immobilization method (edited by Ryuichi Sudo, Industrial Water Research Committee)” and “Water treatment by microorganism immobilization method-carrier immobilization method comprehensive immobilization method bioactive carbon method (New water treatment series (1)) (Kazuhiro Mochizuki, Katsutoshi Horizaki, Hideki Tatemoto (author), NTT Co., Ltd.).
  • the microorganisms or compositions of the present disclosure may be used in combination with additional components.
  • the additional components may be added to the composition, or used separately from the microorganism or composition, and if used separately, provided as a kit. Is also good.
  • additional components include components that enhance the activity of the microorganisms used (eg, carbon sources, nitrogen sources), surfactants, desiccants, components for maintaining the microorganisms for long periods of time, preservatives, emulsifiers.
  • components that enhance the activity of the microorganisms used eg, carbon sources, nitrogen sources
  • surfactants e.g., surfactants, desiccants
  • components for maintaining the microorganisms for long periods of time e.g., ocogen, ocants, emulsifiers.
  • the other microorganisms include microorganisms having an ability to decompose fats and oils, microorganisms that produce lipase, microorganisms that degrade (utilize) fatty acids and / or glycerol (which is a degradation product of fats and oils by lipase), proteins, Examples include microorganisms that degrade (utilize) amino acids, nucleic acids, or polysaccharides (eg, cellulose). Other microorganisms are preferably compatible with the microorganisms of the present disclosure.
  • Perilipase-producing microorganisms include eubacteria, yeasts, filamentous fungi and the like, preferably eubacteria and yeasts, more preferably Gram-positive bacteria and proteobacteria.
  • the true bacteria include, for example, Bacillus bacteria, Corynebacterium bacteria, Rhodococcus bacteria, Burkholderia bacteria, Acinetobacter bacteria, and Pseudomonas pseudomonas.
  • proteobacteria for example, alpha bacteria, beta bacteria, and gamma bacteria can be used.
  • Candida yeast is used.
  • a specific example of the yeast of the genus Candida is Candida albicans strain SL1B2 (deposited with the National Institute of Technology and Evaluation, Patent Microorganism Depositary under the accession number NITE @ P-714).
  • This strain has not only excellent glycerol assimilation ability, but also a property that it can be symbiotic with Burkholderia arboris. Therefore, the combined use of Candida albicans SL1B2 strain is particularly preferable in an embodiment using Burgholderia alboris.
  • Microorganisms that degrade (assimilate) fatty acids include eubacteria, yeasts, filamentous fungi, and the like, preferably eubacteria and yeasts, and more preferably yeast.
  • yeast include yeast of the genus Yarrowia, yeast of the genus Cryptococcus, yeast of the genus Trichosporon, and yeast of the genus Hansenula.
  • the present disclosure provides a method for removing fats and oils and / or fatty acids, which comprises applying the microorganism or composition of the present disclosure to a treatment target.
  • This treatment target may include trans fatty acids or trans fatty acids containing fats and oils.
  • the subject to be treated can be any of the subjects described herein to which the microorganisms or compositions of the present disclosure can be applied.
  • the fat and / or fatty acid degradation removal methods of the present disclosure can be performed in any of the environments described herein to which the microorganisms or compositions of the present disclosure can be applied.
  • the fat and / or fatty acid degradation removal method of the present disclosure may employ any of the additional components described herein that may be used in combination with the microorganisms or compositions of the present disclosure.
  • the method for removing fats and oils and / or fatty acids according to the present disclosure includes a step of introducing the microorganisms or the composition of the present disclosure into a fat-decomposing tank, and the input may be continuous or sequential. There may be.
  • the HRT (hydraulic residence time) of the fat and oil decomposition tank is usually 12 hours or more, preferably 18 hours or more, more preferably 20 hours or more, and further preferably 24 hours or more.
  • the HRT can be usually 18 hours or more, preferably 20 hours or more, more preferably 24 hours or more.
  • the HRT is usually at least 8 hours, preferably at least 12 hours, more preferably at least 18 hours. obtain.
  • the concentration of microorganisms in the fat and oil decomposition tank may depend on the concentration of fats and oils and / or fatty acids in the wastewater, and the higher the concentration of fats and oils and / or fatty acids, the higher the cell concentration can be maintained.
  • a defoaming operation such as shortening the HRT, showering, and adding an antifoaming agent can be performed.
  • an antifoaming agent can inhibit the growth of microorganisms, it is desirable to set the amount to be added in consideration of such matters.
  • the n-Hex value of the effluent from the oil / fat decomposition tank is preferably 60 mg / L or less, more preferably 30 mg / L or less in the case of low-concentration wastewater having an inflow water n-Hex value of about 300 mg / L or less.
  • the n-Hex value of the influent water is medium concentration wastewater of about 3000 mg / L, it is preferably 600 mg / L or less, more preferably 300 mg / L or less, further preferably 150 mg / L or less, and most preferably 30 mg / L or less. is there.
  • high-concentration wastewater having an n-Hex value of influent water of about 10000 mg / L preferably 1000 mg / L or less, more preferably 500 mg / L or less, still more preferably 100 mg / L or less, and most preferably 30 mg / L or less. is there.
  • high-concentration wastewater having an n-Hex value of inflow water of about 30,000 mg / L or more it is preferably 3,000 mg / L or less, more preferably 1,000 mg / L or less, and still more preferably 300 mg / L or less.
  • the method of the present disclosure reduces the n-Hex value of oil and / or fatty acid containing wastewater to preferably 80% or more, more preferably 90% or more, even more preferably 95% or more, and most preferably 99% or more. % Or more.
  • the n-Hex value of the effluent from the fat and oil decomposition tank is less than 30 mg / L, which is the standard value for discharge to sewerage in many municipalities.
  • this reference value is achieved, even if this treatment such as the activated sludge treatment at the subsequent stage is unnecessary, focusing only on the n-Hex value, it may be unnecessary.
  • the amount of microorganisms introduced in the effluent is preferably 0.01 times or more, more preferably 0.1 times or more, still more preferably 0.5 times or more, and most preferably 1 time or more, based on the amount introduced. is there.
  • the method for removing fats and oils and / or fatty acids by decomposition according to the present disclosure may include additional steps in addition to the above steps.
  • Such a step includes, for example, a step of returning all or a part of the effluent from the fat / oil decomposition tank to the fat / oil decomposition tank again.
  • all or a part of the effluent from the fat and oil decomposition tank is again transferred to the fat and oil decomposition tank. It is not mandatory to return.
  • Example 1 Identification of microorganisms capable of assimilating and decomposing trans-fatty acid-containing fats and oils
  • a sample was taken from a river near a food factory from which oil-and-fat effluent flows out, and microorganisms were separated therefrom.
  • microorganisms that can be cultured at low temperatures using oils and fats as a nutrient source were found.
  • the cells were cultured in a 15 mL harmony centrifuge tube (LMS, Tokyo) at 28 ° C. and 130 rpm for 24 hours. As a result, a microorganism capable of decomposing and assimilating trans-fatty acid elaidic acid and growing was found.
  • one isolated microorganism strain can be cultured in a low-temperature environment using fats and oils as a nutrient source, can assimilate (decompose) fats and oils at low temperatures, and decompose and assimilate trans fatty acids.
  • this strain was named KH-1.
  • KH-1 was identified as Burkholderia arboris.
  • RAST Rapid Annotation using Subsystem Technology, http://rast.nmpdr.org
  • SNPs / INDELs analysis using CLC ⁇ Genomics ⁇ server ⁇ 9.0 detected variants at several hundred locations, indicating that KH-1 is a new strain of Burkholderia ⁇ arboris.
  • Burkholderia arboris strain KH-1 was streaked on an agar medium containing canola oil (Nisshin Canola Oil, Nisshin Oillio, Tokyo) as the sole carbon source and cultured at 15 ° C. for 5 days. The result is shown in FIG. Since the KH-1 strain grew well, it is considered that the KH-1 strain is suitable for survival in an environment containing oils and fats.
  • canola oil Nisshin Canola Oil, Nisshin Oillio, Tokyo
  • Example 2 Comparison of resolution of fats and oils containing trans fatty acids with other microorganisms
  • Trans Fatty Acid Degrading Activity The activity of KH-1 for degrading the trans fatty acid elaidic acid (trans form of oleic acid) was compared with that of BioRemove 3200 (BR3200) (Novozymes, Denmark) (FIG. 2).
  • a stock solution was prepared by dissolving 2% elaidic acid in a 2.5% Triton X-100 (Sigma-Aldrich) solution. Since elaidic acid is solid at room temperature, then heated at 65 ° C.
  • the stock solution of 4 ml, mineral salts medium of 40ml (Na 2 HPO 4 3.5g / L, KH 2 PO 4 2.0g / L, (NH 4) 2 SO 4 4.0g / L , MgCl 2 ⁇ 6H 2 O 0.34g / L, FeSO 4 ⁇ 7H 2 O 2.8mg / L, MnSO 4 ⁇ 5H 2 O 2.4mg / L, CoCl 2 ⁇ 6H 2 O 2.4mg / L, CaCl 2 ⁇ 2H 2 O 1.7mg / L, CuCl 2 ⁇ 2H 2 O 0.2mg / L, ZnSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.3mg / L, and NaMoO 4 0.
  • Example 3 Comparison of resolution of trans fatty acid-containing fats and oils
  • a HITACHI U-2810 spectrophotometer (Hitachi, Tokyo, Japan) was added to a TBS buffer (20 mM Tris, 150 mM NaCl, pH 7.0) to which trielaidin was added to a final concentration of 0.1%.
  • TBS buffer (20 mM Tris, 150 mM NaCl, pH 7.0)
  • trielaidin was added to a final concentration of 0.1%.
  • OD 660 0.04. This was cultured in a Falcon tube (130 rpm, 28 ° C.), and a sample was collected 5 days later.
  • the sample was extracted with an equal volume of chloroform, and 5 ⁇ l was subjected to TLC.
  • the sample was applied to a TLC (silica gel plate, developed with a chloroform: acetone: methanol (96: 4: 2) solution, and then visualized with molybphosphoric acid n-hydrate (2.4 g in 60 ml ethanol) (FIG. 3B). From these results, it was confirmed that trans-fatty acid-containing fats and oils (trielaidin) could be decomposed into trans-fatty acids (elaidic acid) even when the supernatant of KH-1 was used.
  • KH-1 and BR3200 were compared (FIG. 4).
  • Nitrogen (ammonium sulfate) and phosphorus equivalent to an inorganic salt medium were added to a wastewater sample containing a large amount of trans-fatty acid-containing fats and oils from a food factory using hydrogenated fats and oils, and cultured.
  • KH-1 was cultured in LB medium, washed twice with PBS medium, and inoculated at 1 ⁇ 10 6 cells / ml
  • BR3200 was inoculated at 1 ⁇ 10 8 cells / ml, which is 10 times the recommended concentration of the manufacturer. Inoculated.
  • the cells were cultured at 28 ° C., and samples were collected after 24 hours and 48 hours.
  • the sample was applied to a TLC (silica gel plate, developed with a chloroform: acetone: methanol (96: 4: 1) solution, and then visualized with molybphosphoric acid n-hydrate) (FIG. 4A) and an oil measurement reagent kit (equivalent to normal hexane extraction) , Supra) (FIG. 4B).
  • BR3200 showed a slow progression of decomposition even in excess, whereas KH-1 showed excellent decomposition ability.
  • Example 4 Decomposition ability of KH-1 strain at 15 ° C.
  • the oil content corresponding to the normal hexane value in this supernatant was measured using an oil content measurement kit (normal hexane extraction, described above) (FIG. 5A).
  • Total fatty acids (total amount of fatty acids and free fatty acids in triglycerides) were quantified by gas chromatography (FIG. 5B). Specifically, 3 ml of the culture supernatant was acidified with hydrochloric acid, and twice the amount of ethyl acetate was added. After stirring for 5 minutes, the mixture was centrifuged, and 1 ml of the ethyl acetate layer was transferred to an organic solvent resistant tube and completely evaporated.
  • Example 4A assimilation ability of trans fatty acid of KH-1 strain and oil and fat containing the same at 15 ° C.
  • the assimilation ability of the KH-1 strain was evaluated by culturing the KH-1 strain in a medium containing elaidic acid or trielaidin as the sole carbon source.
  • An inorganic salt medium (the composition described above, prepared by adding a stock solution of elaidic acid or trielaidin (2.5% aqueous solution of Triton X-100) to adjust the final concentration of elaidic acid or trielaidin to 0.1%.
  • Example 5 Ability of KH-1 strain to decompose fats and oils at 28 ° C.
  • FIG. 6A The residual oil in the culture was analyzed by thin layer chromatography (TLC) (FIG. 6A). Specifically, an equal amount of ethyl acetate was added to 3 ml of the sample supernatant, and the mixture was stirred for 5 minutes. After the ethyl acetate layer was separated and the solvent was completely evaporated, it was dissolved in 300 ⁇ L of chloroform.
  • Example 4 the total fatty acids (total amount of fatty acids and free fatty acids in triglycerides) were quantified by gas chromatography even at 28 ° C. (FIG. 6B). Similarly to Example 4, residual oils and fats were measured at 28 ° C. using the oil content measurement kit (FIG. 6C). KH-1 retained a good fat and oil decomposability even at 28 ° C.
  • fatty acids were extracted with a half amount of chloroform of the sample, 6 ⁇ l of the extract was applied to a silica gel plate, and developed with a chloroform: acetone: methanol (96: 4: 2) solution. After the development, the fatty acids were visualized with a 12-molybdo (IV) phosphoric acid ethanol solution in the same manner as in Example 5, and the amount of the fatty acids remaining in the medium was compared (FIGS. 8 and 9). KH-1 was able to completely decompose palmiteridic acid and vaccenic acid within 24 hours at 28 ° C and within 72 hours at 15 ° C. On the other hand, BR3200 had no ability to decompose these fatty acids. Thus, the microorganisms of the present disclosure may be able to degrade various trans fatty acids.
  • Example 7 Comparison between KH-1 strain and detergent
  • time culture After culturing, the supernatant was used after centrifugation to remove bacterial cells), detergent for oil (natural enzyme detergent for Nico Eco kitchen (Nico Eco, Nagano) diluted 143 times with water according to the instructions), general detergent (Family (registered trademark) (Kao, Tokyo), diluted 666 times according to the instructions) at room temperature (25 ° C.) and washed (FIG. 7).
  • detergent for oil natural enzyme detergent for Nico Eco kitchen (Nico Eco, Nagano) diluted 143 times with water according to the instructions
  • general detergent Fluor (registered trademark) (Kao, Tokyo), diluted 666 times according to the instructions) at room temperature
  • Example 8 Acquisition of another strain
  • a sample was taken from a river near a food factory from which oil-and-fat effluent flows out, and microorganisms were separated therefrom.
  • the isolated microorganisms were examined for their ability to degrade trans-fatty acids or trans-fatty acid-containing fats and oils in a low-temperature environment (15 ° C.).
  • microorganisms capable of decomposing trans fatty acids and trans fatty acids containing fats and oils at low temperatures were found.
  • These microbial strains were named KH-1AL1, KH-1AL2, and KH-1AL3, respectively.
  • KH-1AL1 was identified as Burkholderia ambifaria because the partial nucleotide sequence of 16rDNA matched Burkholderia ambifaria with a homology of 100%.
  • KH-1AL2 has a partial nucleotide sequence of 16 rDNA that is identical to Burkholderia contaminans with a homology of 99.9%, and that on the molecular phylogenetic tree, B. seminalis, B. territorii, and B. cepacia (each has a homology in the partial nucleotide sequence of 16 rDNA).
  • KH-1AL2 was identified as a bacterium of Burkholderia cepacia complex.
  • KH-1AL3 has a partial nucleotide sequence of 16 rDNA that is identical to Burkholderia contaminans with a homology of 99.9%.
  • B. seminalis, B. territorii, and B. cepacia were identified as a bacterium of Burkholderia cepacia complex.
  • Burkholderia cepacia complex is a classification of microorganisms of the genus Burkholderia that are genetically very close, ambifaria, anthina, arboris, cenocepacia, cepacia, contaminans, diffusa, dolosa, lata, latens, metallica, multivorans, pseudomultivorans, puraquae, pyrrocinia. , Seminalis, stabilis, stagnalis, territorii, ubonensis, and vietnamiensis (Martina P et al., Int J Syst Evol Microbiol. 2018 Jan; 68 (1): 14-20.). As a result of the analysis, various bacteria belonging to Burkholderia cepacia complex showed high ability to degrade fats and / or fatty acids, so that bacteria belonging to Burkholderia cepacia complex are expected to be particularly useful.
  • Example 10A Comparison between strains of trans-fatty acid-containing fats and oils at 28 ° C resolution by culture supernatant
  • KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2, and KH-1AL3 were each added to an inorganic salt medium (the above composition, pH 7) in which the final concentration of trielaidin was adjusted to 0.2%.
  • the final concentrations of trielaidin and Triton X100 are adjusted to 0.4% and 0.5%, respectively. And incubated at 37 ° C. with shaking at 130 rpm for 24 hours. Then, the residual oil in the culture solution was analyzed by thin layer chromatography (TLC). Specifically, fats and oils and free fatty acids were extracted with a half amount of chloroform as a sample, 5 ⁇ l of the extract was applied to a silica gel plate, and developed with a chloroform: acetone: methanol (96: 4: 2) solution. .
  • TLC thin layer chromatography
  • Example 10B Comparison between strains of assimilation and resolution of trans fatty acid at 28 ° C.
  • a control sample in which no microorganism was used was also prepared. Then, the residual oil in the culture solution was analyzed by thin layer chromatography (TLC). Specifically, fatty acids were extracted with a half amount of chloroform of the sample, 5 ⁇ l of the extract was applied to a silica gel plate, and developed with a chloroform: acetone: methanol (96: 4: 2) solution. After the development, free fatty acids were visualized with a 12-molybdo (IV) phosphoric acid ethanol solution as in Example 5, and the amount of fatty acids remaining in the medium was compared (left in FIG. 14).
  • TLC thin layer chromatography
  • Example 10A the residual oil equivalent to the normal hexane value was measured by an oil content measuring reagent kit in the same procedure as in Example 4 (right in FIG. 14).
  • KH-1, KH-1AL1, KH-1AL2, and KH-1AL3 can efficiently degrade trans fatty acids, and that these strains are all useful for removing oil containing trans fatty acids.
  • trans-fatty acid-containing fats and oils eg, trielaidin
  • Example 10C Comparison between strains of assimilation and resolution of trans fatty acid at 15 ° C.
  • HITACHI U-2810 spectrophotometer Hitachi, Tokyo
  • a control sample in which no microorganism was used was also prepared.
  • the residual oil in the culture solution was analyzed by thin layer chromatography (TLC). Specifically, free fatty acids were extracted with a half amount of chloroform of the sample, 5 ⁇ l of the extract was applied to a silica gel plate, and developed with a chloroform: acetone: methanol (96: 4: 2) solution. After the development, free fatty acids were visualized with a 12-molybdo (IV) phosphoric acid-ethanol solution in the same manner as in Example 5, and the amount of fatty acids remaining in the medium was compared (FIG. 15, left). Further, the residual oil equivalent to the normal hexane value was measured by the oil content measuring reagent kit in the same procedure as in Example 4 (right in FIG. 15).
  • TLC thin layer chromatography
  • KH-1 was inoculated into a disappearing garbage disposer at a concentration of 1.2 ⁇ 10 7 cells / mL and treated at 30 ° C. for 24 hours.
  • the normal hexane value in the wastewater discharged from the garbage disposer was measured.
  • the garbage in the disappearing garbage processing machine was obtained by removing bones and shells from garbage discharged from a restaurant kitchen.
  • the garbage disposal capacity of the extinguishable garbage disposal machine was 20 kg / day, and the amount of water injected / discharged was 38.4 L / day.
  • KH-1 is cultured to 2 ⁇ 10 10 cells / mL in an inorganic salt medium containing 10 mL / L of canola oil to obtain a stock culture solution. This is diluted 10-fold to obtain a microbial preparation (2 ⁇ 10 9 cells / mL). This is refrigerated and stored in a microorganism storage tank of the automatic amplification and injection device to be used as a seed. This inoculum is automatically inoculated in an inorganic salt medium in a culture amplification tank of the same apparatus in an amount of 1/100 every day, and cultured until the number of microorganisms becomes 100 times, that is, the cell concentration becomes the same as that of the microorganism preparation.
  • the microorganism concentration of the decomposing bacteria in the oil treatment water is set to 2 ⁇ 10 6 cells / mL, and the wastewater containing a large amount of trans fatty acid-containing fats and oils is discharged for 24 hours.
  • Example 13 Another embodiment
  • a carrier such as charcoal, various plastics, and ceramic pieces is put into the grease trap, and an appropriate amount (for example, 1 ⁇ 10 6 cells / mL) of KH-1 is automatically put in every day after the operation of the canteen. Every day, water is collected just before the start of operation, and the normal hexane value is analyzed. One week later, in addition to the remarkable decrease in the normal hexane value as compared with the control example in which KH-1 was not added, the effect of the grease trap itself was also observed, such as reduced oil adhesion and floating.
  • the present disclosure provides a microorganism having an ability to degrade fats and oils and a composition containing the same, and by using such microorganisms or the composition, it is possible to reduce the environmental load caused by food factory wastewater containing a large amount of fats and oils.
  • KH-1 strain (NITE BP-02731) KH-1AL1 strain (NITE ABP-02977) KH-1AL2 strain (NITE ABP-02978) KH-1AL3 strain (NITE ABP-02979)

Abstract

本開示は、油脂分解能のある新たな微生物を提供する。一つの実施形態では、微生物は、ブルクホルデリア科である。一つの実施形態では、微生物は、ブルクホルデリア属である。一つの実施形態では、微生物は、ブルクホルデリア　アルボリス（Burkholderia　arboris）またはBurkholderia　cepacia　complexなどである。一つの実施形態では、本開示の微生物は、トランス脂肪酸を資化する能力を有する。一つの実施形態では、本開示の微生物は、トランス脂肪酸を分解する能力を有する。一つの実施形態では、本開示の微生物は、トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力を有する。一つの実施形態では、本開示の微生物は、トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力を有する。

Description

脂肪酸含有油脂を分解する新規微生物
　本開示は、油脂および／または脂肪酸分解能力を有する微生物およびその使用に関する。より特定すると、トランス脂肪酸含有油脂を分解する新規微生物に関する。
　食品工場や油脂工場の排水には多量の油分が含まれる。この油分は、活性汚泥による処理能力の低下、沈降性の低下による固液分離不全、膜分離活性汚泥法（ＭＢＲ）における膜のファウリング、嫌気消化におけるメタン発酵阻害など、様々な生物処理機能の低下を引き起こす。そのため、油分高含有排水の生物処理の前段として、例えば加圧浮上分離装置などにより油分を除去することが行われている。また、外食産業の厨房排水も油分を多く含むため、油分を除くためのグリーストラップが設置されている。加圧浮上分離装置もグリーストラップのどちらも、悪臭や害虫の発生源であること、分離した油の回収・運搬と産業廃棄物処理にかかるコスト、管理や清掃等にかかる労苦やコストなどの問題を抱えている。このような問題を解決する手段として、微生物による油分解技術が検討され、関連する微生物製剤も複数、市販されているが、設定可能な滞留時間内で望まれるレベルまで、油分濃度を微生物分解により下げるのは極めて困難である。そのため、現状では、加圧浮上分離装置や従来のグリーストラップが用いられていることがほとんどである。
　また、生ゴミの発酵処理においても、油分が多い場合は、発酵阻害や消滅型処理機における排水中への油の高含有などの問題がある。また、加圧浮上分離装置やグリーストラップにより分離回収した油性汚泥は産業廃棄物となるため、その処理には大きなコストがかかる。そこで、これらの油分を微生物で分解することが検討されているが、やはり上述の排水処理と同様に、微生物の分解能力に限界があるのが実情である。
　微生物による油分除去では、以上のように分解速度が問題になるが、特に冬場の低温による活性低下が、微生物の適用を困難にしている場合が多い。特に冬場の低温では、微生物による油脂の分解速度は極めて遅く、特定の微生物により排水処理や廃棄物処理を行うことは不可能であると考えられている。
Journal　of　Bioscience　and　Biotechnology,Vol.107,No.4　401-408,2009
　本発明者らは、鋭意研究した結果、トランス脂肪酸含有油脂を分解する新規微生物であるブルクホルデリア菌（科）に属する微生物を見出した。この微生物は、１５℃程度の低温でも効率的に油脂および／または脂肪酸を分解できる局面も見出された。本開示は、本開示の微生物の応用、例えば油処理等にも関する。
　本開示は、油脂分解能力を有する新たな微生物およびこの微生物を用いた油脂および／または脂肪酸分解方法を提供する。
　したがって、本開示は以下を提供する。
（項目１）
トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
（項目２）
トランス脂肪酸を資化する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
（項目３）
トランス脂肪酸を分解する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
（項目４）
トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
（項目５）
１５℃において油脂を分解する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
（項目６）
前記資化または分解する能力が１５℃において保持される、項目１～４のいずれか一項に記載のブルクホルデリア科細菌。
（項目７）
ブルクホルデリア属の細菌である、項目１～６のいずれか一項に記載の菌。
（項目８）
ブルクホルデリア　アルボリス（Burkholderia　arboris）、ブルクホルデリア　アンビファリア（Burkholderia　ambifaria）、またはBurkholderia　cepacia　complexに属する微生物である、項目１～７のいずれか一項に記載の菌。
（項目９）
ブルクホルデリア属細菌ＫＨ－１株（受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０２７３１で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ１株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７７で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ２株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７８で特定される菌株）もしくはＫＨ－１ＡＬ３株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７９で特定される菌株）であるか、またはその誘導株であって該誘導株は、項目１～７のいずれか一項または複数に記載の細菌の特徴を有する、項目１～８のいずれか一項に記載の細菌。
（項目１０）
項目１～９のいずれか一項に記載の細菌を含む、油分解剤。
（項目１１）
さらなる油処理成分を含む、項目１０に記載の油分解剤。
（項目１２）
項目１～９のいずれか一項に記載の細菌もしくは項目１０に記載の油分解剤と、さらなる油処理成分とを備える、油分解のためのキット。
（項目１３）
項目１～９のいずれか一項に記載の細菌、または項目１０もしくは１１に記載の油分解剤を処理対象に作用させることを包含する、油分解除去方法。
（項目１４）
前記処理対象はトランス脂肪酸またはトランス脂肪酸含有油脂を含む、項目１３に記載の方法。
　本開示において、上記１または複数の特徴は、明示された組み合わせに加え、さらに組み合わせて提供されうることが意図される。本開示のなおさらなる実施形態および利点は、必要に応じて以下の詳細な説明を読んで理解すれば、当業者に認識される。
　本開示の微生物およびこれを含む組成物は、トランス脂肪酸および同脂肪酸含有油脂を分解し得るという点で、特に食品工場などから出される排水等に代表される油脂含有対象の処理が可能となり、広範囲の油脂濃度に対応可能であり、また、従来より低い温度で使用可能であり得るので、油脂による環境汚染の浄化、生ごみ処理、コンポスト化処理、排水処理などの廃棄物処理および堆肥化など広範な状況に適用可能である。
　本開示は分解が難しい油脂、すなわち油種の問題も解決することができる。本開示の微生物およびこれを含む組成物は、油脂の水素化工程で生じるトランス脂肪酸とその含有油脂を分解し得るものであり、特にそのような脂肪酸含有油脂を多く含むマーガリン、ファットスプレッド、ショートニングなどの、従来微生物で処理できなかったものでも処理し得るという効果を奏する。特に本開示は、排水処理や廃棄物処理の主役微生物となる細菌として実用レベルで利用可能な、トランス脂肪酸分解を達成する効果を提供する。また、本開示の微生物およびこれを含む組成物は、低温での油脂や脂肪酸の分解を可能とし得る。
Burkholderia　arboris　ＫＨ－１株のキャノーラ油添加培地上での１５℃で５日間培養の結果を示す。 ＫＨ－１およびＢｉｏＲｅｍｏｖｅ３２００（ＢＲ３２００）（Novozymes、デンマーク）のエライジン酸分解活性の比較を示す。２８℃、１３０ｒｐｍで２４時間培養を行った。（Ａ）ＴＬＣによって培養液中の脂肪酸を解析した写真である。左列はＫＨ－１であり、右列はＢＲ３２００である。（Ｂ）ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果である。左はＢＲ３２００であり、右はＫＨ－１である。エラーバーは標準偏差を示す。 ＫＨ－１のエライジン酸含有油脂（トリエライジン）分解活性を示す。２８℃、１３０ｒｐｍで５日間培養を行った。ＴＬＣによって培養液中のグリセリドおよび脂肪酸を解析した写真である。左列はＴＢＳ緩衝液、右列はＫＨ－１の結果である。 ＫＨ－１の培養上清のエライジン酸含有油脂（トリエライジン）分解活性を示す。２８℃、１３０ｒｐｍで２４時間インキュベートを行った。ＴＬＣによって溶液中のグリセリドおよび脂肪酸を解析した写真である。左はＴＢＳ緩衝液、右はＫＨ－１の結果である。 実排水を使用したＫＨ－１とＢｉｏＲｅｍｏｖｅ３２００（ＢＲ３２００）との油脂分解能の比較を示す。２８℃で培養し、２４時間および４８時間後にサンプルを採取した。（Ａ）ＴＬＣによって排水中の残存油分を解析した写真（左は培養開始後２４時間であり、右は培養開始後４８時間である）である。それぞれの列は、左から、微生物添加なし、ＢＲ３２００添加、ＫＨ－１添加の結果を示す。（Ｂ）ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果である。左から、それぞれ、微生物添加なし、ＢＲ３２００添加、ＫＨ－１添加の結果を示す。 １５℃培養における（５Ｌ容積ファーメンター、２５０ｒｐｍ、２００ｍｌ／ｍｉｎの空気還流下、ｐＨ７．０）ＫＨ－１によるキャノーラ油の分解を示す。ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果である。左から、それぞれ、培養開始後０時間、２４時間、４８時間、７２時間の結果を示す。縦軸は０時間の測定値を１００％としたときの割合を標準偏差とともに示す。 １５℃培養における（５Ｌ容積ファーメンター、２５０ｒｐｍ、２００ｍｌ／ｍｉｎの空気還流下、ｐＨ７．０）ＫＨ－１によるキャノーラ油の分解を示す。培養開始後０時間、２４時間、４８時間および７２時間における全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との合計）をガスクロマトグラフィーにより定量した結果である。エラーバーは標準偏差を示す。 １５℃培養におけるＫＨ－１株のエライジン酸またはトリエライジンの資化能を示す。エライジン酸またはトリエライジンを唯一の炭素源とする培地において１５℃で５日間培養した結果である。左から、ＫＨ－１添加エライジン酸培地、微生物添加なしエライジン酸培地、ＫＨ－１添加トリエライジン培地、微生物添加なしトリエライジン培地の写真である。 ２８℃培養におけるＫＨ－１の油脂（キャノーラ油）分解能を示す。薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によって培養液中の残存油分を解析した写真である。それぞれの列は、左から、培養開始時、培養開始後２４時間、４８時間の結果を示す。 ２８℃培養におけるＫＨ－１の油脂分解能を示す。培養開始後０時間、２４時間および４８時間における全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との合計）をガスクロマトグラフィーにより定量した結果である。エラーバーは標準偏差を示す。 ２８℃培養におけるＫＨ－１の油脂分解能を示す。ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果である。左から、それぞれ、培養開始後０時間、２４時間、４８時間の結果を示す。縦軸は０時間の測定値を１００％としたときの割合を標準偏差とともに示す。 ＫＨ－１と洗剤との比較を示す。油汚れのついた換気扇フィルターを、ＫＨ－１の培養上清、油用洗剤、一般洗剤に漬け置き洗いをした写真である。左は処理を行う前を示す。中央列および右列は、それぞれ、上段：ＫＨ－１処理（中央列３０分、右列１時間）、中段：油用洗剤処理（中央列２時間、右列４時間）、および下段：一般洗剤処理（中央列２時間、右列４時間）。 ＫＨ－１およびＢｉｏＲｅｍｏｖｅ３２００（ＢＲ３２００）（Novozymes、デンマーク）のパルミテライジン酸およびバクセン酸分解活性の比較を示す。１５℃で４８時間または７２時間培養を行った後、ＴＬＣによって培養液中の脂肪酸を解析した写真である。パネルは、左から、パルミテライジン酸４８時間培養、バクセン酸４８時間培養、パルミテライジン酸７２時間培養、およびバクセン酸７２時間培養である。各パネルにおいて、左は陰性対照（ＢＳ）であり、中央はＢＲ３２００であり、右はＫＨ－１である。 ＫＨ－１およびＢｉｏＲｅｍｏｖｅ３２００（ＢＲ３２００）（Novozymes、デンマーク）のパルミテライジン酸およびバクセン酸分解活性の比較を示す。２８℃で２４時間培養を行った後、ＴＬＣによって培養液中の脂肪酸を解析した写真である。左のパネルはパルミテライジン酸培養、右のパネルはバクセン酸培養である。各パネルにおいて、左は陰性対照（ＢＳ）であり、中央はＢＲ３２００であり、右はＫＨ－１である。 １５℃培養におけるＫＨ－１ＡＬ１によるキャノーラ油の分解を示す。培養開始後０時間、２４時間、４８時間、７２時間および９６時間における結果を示す。左は、ＴＬＣによって培養液中の残存油分を解析した写真である。右上は、全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との合計）をガスクロマトグラフィーにより定量した結果であり、縦軸に全脂肪酸濃度を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。右下は、ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果であり、縦軸は０時間時点の測定値を１００％とした場合の残留油分の割合を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。 １５℃培養におけるＫＨ－１ＡＬ２によるキャノーラ油の分解を示す。培養開始後０時間、２４時間、４８時間、７２時間および９６時間における結果を示す。左は、ＴＬＣによって培養液中の残存油分を解析した写真である。右上は、全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との合計）をガスクロマトグラフィーにより定量した結果であり、縦軸に全脂肪酸濃度を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。右下は、ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果であり、縦軸は０時間時点の測定値を１００％とした場合の残留油分の割合を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。 １５℃培養におけるＫＨ－１ＡＬ３によるキャノーラ油の分解を示す。培養開始後０時間、２４時間、４８時間、７２時間および９６時間における結果を示す。左は、ＴＬＣによって培養液中の残存油分を解析した写真である。右上は、全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との合計）をガスクロマトグラフィーにより定量した結果であり、縦軸に全脂肪酸濃度を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。右下は、ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果であり、縦軸は０時間時点の測定値を１００％とした場合の残留油分の割合を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。 ２８℃培養におけるＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２およびＫＨ－１ＡＬ３の培養上清によるトリエライジンの分解をＴＬＣによって解析した写真である。左から、それぞれ、無菌区（対照）、ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ３およびＫＨ－１ＡＬ２の結果を示す。 ２８℃培養におけるＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２およびＫＨ－１ＡＬ３によるエライジン酸の資化および分解を示す。左は、ＴＬＣによって培養液中の残存エライジン酸を解析した写真である。右は、ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果であり、縦軸に残存油分濃度（ｍｇ／Ｌ）を示す。左から、それぞれ、無菌区（対照）、ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ３およびＫＨ－１ＡＬ２の結果を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。 １５℃培養におけるＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２およびＫＨ－１ＡＬ３によるエライジン酸の資化および分解を示す。左は、ＴＬＣによって培養液中の残存エライジン酸を解析した写真である。右は、ノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キットにより測定した結果であり、縦軸に残存油分濃度（ｍｇ／Ｌ）を示す。左から、それぞれ、無菌区（対照）、ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２およびＫＨ－１ＡＬ３の結果を示す（エラーバーは標準偏差を示す）。
　以下、本開示を最良の形態を示しながら説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。従って、単数形の冠詞（例えば、英語の場合は「ａ」、「ａｎ」、「ｔｈｅ」など）は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用される全ての専門用語および科学技術用語は、本開示の属する分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。矛盾する場合、本明細書（定義を含めて）が優先する。
　以下に本明細書において特に使用される用語の定義および／または基本的技術内容を適宜説明する。
　（定義等）
　本明細書において「リパーゼ」とは、エステラーゼの一種であり、中性脂肪(グリセロールエステル)を加水分解して、脂肪酸とグリセロールに分解する反応を可逆的に触媒する酵素をいう。例えば、リパーゼとして、酵素番号（ＥＣ番号）でEC3.1.1.3に分類される、トリグリセロールリパーゼが挙げられる。
　本明細書において、「油脂」とは、オイル状の物質を指し、油脂には、ヒドロキシル基を含有する化合物と脂肪酸とが脱水縮合して形成されるエステル基含有化合物が含まれる。代表的には、このヒドロキシル基を含有する化合物はグリセリンであるが、その他にも、ポリグリセリンなどが挙げられる。本技術分野において通常使用される意味と同様に、本明細書において、グリセリンと脂肪酸とが脱水縮合して形成されるエステル基含有化合物を「グリセリド」と呼ぶ。このヒドロキシル基を含有する化合物が複数のヒドロキシル基を有する場合、そのヒドロキシル基のうちの少なくとも１つが脂肪酸と脱水縮合してエステルを形成していれば、本明細書におけるエステル基含有化合物に該当する。
　油脂は、例えば、外食産業の厨房排水や、食品工場の排水などに含まれ、固液分離によりこれを除く処理設備であるグリーストラップや加圧浮上分離装置は、悪臭や害虫の発生源であること、分離した油の回収や運搬、清掃等のメンテナンスにかかる労苦やコスト、凝集剤のコストなどを考慮すると、グリーストラップ内や工場排水処理設備内の油を消滅させるために本開示の微生物または組成物は用いられる。
　本開示は、本開示の油脂分解細菌を含むグリーストラップ用および工場排水用微生物製剤を提供する。特に工場排水に適用すれば、加圧浮上分離装置の稼働率の低減や代替まで可能である。食品工場排水にはトランス脂肪酸が含まれ、これが最終的に取り除かれないことが多く、汚れの残留として問題となることがあるが、本開示の微生物はこれらも解決し得る。また、外食産業の厨房排水は通常１ｇ／Ｌ以上、高いときは１０ｇ／Ｌ以上もの高濃度の油脂を含んでいるだけでなく、多くのグリーストラップ内の排水の滞留時間は１０分程度と極めて短いが、本開示の微生物はこのような環境でも用いることができる。
　油脂は生ごみや畜産廃棄物、排水処理場からの汚泥などにも多く含まれる。その中にはトランス脂肪酸を含むものも少なくない。このような固形廃棄物の処理には微生物が利用されることも多いが、含有油分が多いと処理が困難になったり、油分が残存してしまったりする。本開示の微生物または組成物は、そのような廃棄物中の油分の分解処理にも適用可能である。
　本明細書において、「脂肪酸」とは、２～１００の炭素原子を有し、少なくとも１つのカルボキシル基を有する化合物である。代表的には、脂肪酸における炭素鎖は直鎖であるが、分枝鎖であってもよいし、環を含んでもよい。代表的には、脂肪酸は、カルボキシル基を一つ含むが、複数のカルボキシル基を含んでもよい。脂肪酸における炭素鎖はＣ＝Ｃの二重結合を含んでもよく、「トランス脂肪酸」は、本技術分野において通常使用される意味で使用され、トランス型の二重結合を有する不飽和脂肪酸を意味する。本明細書において、「トランス脂肪酸含有油脂」とは、トランス脂肪酸とヒドロキシル基を含有する化合物とが脱水縮合して形成される化合物を指す。トランス脂肪酸には、エライジン酸、バクセン酸などが包含されるが、本明細書中で言及する場合、トランス脂肪酸の種類に特に制限はない。トランス脂肪酸含有油脂中に存在するトランス脂肪酸の比率は、特に限定されない。二重結合の「トランス型」および「シス型」は、本技術分野において通常使用される意味で使用され、二重結合を形成した２つの炭素原子に４つの置換基（Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３およびＲ４）が結合した以下の構造
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において、Ｒ１およびＲ２またはＲ３およびＲ４が水素以外の基であり、残りの２個の置換基が水素原子である場合をシス型とよび、Ｒ１およびＲ４またはＲ３およびＲ２が水素以外の基であり、残りの２個の置換基が水素原子である場合をトランス型と呼ぶ。トランス脂肪酸は、天然には共役リノール酸やバクセン酸として微量に存在し、例えば、反芻動物の脂肪分に比較的多く含まれている。トランス脂肪酸は、不飽和脂肪酸から飽和脂肪酸を製造するための水素化工程、および不飽和脂肪酸を多く含む植物油の精製の際に生じ得る。そのため、マーガリン、ファットスプレッド、ショートニングなどには、トランス脂肪酸が比較的多く含まれ得る。
　本明細書において、「ノルマルヘキサン（ｎ－Ｈｅｘ）値」とは、ノルマルヘキサンにより抽出される不揮発性物質の量であり、水中の油分（油脂、その加水分解産物など）の量を示す指標を指す。ｎ－Ｈｅｘ値は、例えば、ＪＩＳ　Ｋ　０１０２に従って求めることができる。また、ポリニッパム抽出物質測定による簡易測定試薬キットなどを用いて求めることもできる。
　本明細書において、「資化」とは、栄養源として利用することをいい、資化の対象となった物質（例えば油脂）は、結果として消失することになる。
　本明細書において、「分解」とは、油脂および／または脂肪酸について用いる場合、対象となった油脂および／または脂肪酸がそれより小さな分子になることをいい、例えば、グリセロールと（遊離）脂肪酸に分かれることをいい、脂肪酸がより炭素数の少ない脂肪酸に変換されることや、二酸化炭素や水にまで変換されることも分解とよぶ。
　本明細書において、「トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力」とは、トランス脂肪酸含有油脂を資化する活性を指す。本明細書において、「トランス脂肪酸含有油脂を資化する」は、本技術分野において通常使用される意味で使用され、微生物がトランス脂肪酸含有油脂を炭素源などの栄養源として取り込むことを意味する。「資化」する場合、グリセロールと遊離脂肪酸とに加水分解することのほか、他の物質の一部に変化することも含まれる。トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力は、以下の試験で測定し、同定することができる。
・トランス脂肪酸含有油脂を唯一の炭素源として含む培地で増殖可能であるかどうかを確認する試験。
・トランス脂肪酸含有油脂を唯一の炭素源として含む培地でコロニーを形成するかどうかを確認する試験。
・増殖に伴い培養上清中のノルマルヘキサン値の減少を測定する試験。
・増殖に伴い培養上清中の全脂肪酸（油脂中の脂肪酸と遊離脂肪酸との和）を、メチルエステルに変換後、その総量をガスクロマトグラフィーで測定する試験。
・増殖に伴い培養上清中の油脂および遊離脂肪酸の量を薄層クロマトグラフィーで測定する試験。
　個々のより詳細な測定方法は、本明細書に提供されており、また、当業者であれば、任意のその他の機器・条件を使用してこれらの測定を実施することができる。
　本明細書において、「トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力」とは、トランス脂肪酸含有油脂を、グリセロールと遊離脂肪酸とに加水分解する活性を指す。トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力は、以下の試験で測定し、同定することができる。
・トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力があるかどうかを確認する試験。
・培養上清中の油脂および遊離脂肪酸の量を薄層クロマトグラフィーで測定する試験。
・トランス脂肪酸含有油脂を炭素源として与えて培養し、培養上清中のノルマルヘキサン値の減少量を測定する試験。
・培養上清中の遊離脂肪酸の濃度をガスクロマトグラフィーで測定する試験。
・培養上清中の遊離脂肪酸の濃度をＧＣ－ＭＳで測定する試験。
・培養上清中の遊離脂肪酸の濃度をＨＰＬＣで測定する試験。
・トランス脂肪酸含有油脂を含む寒天培地上で形成されるコロニーの周辺に、クリアゾーンが観察されるかどうかを確認する試験。
・トランス脂肪酸含有油脂を主たる有機物（例えば、全有機物中の７０重量％以上）として含む検水を作成し、生化学的酸素要求量（ＢＯＤ）を測定する試験。
　個々のより詳細な測定方法は、本明細書に提供されており、また、当業者であれば、任意のその他の機器・条件を使用してこれらの測定を実施することができる。
　本明細書において、「トランス脂肪酸を資化する能力」とは、トランス脂肪酸を、資化する能力を指す。トランス脂肪酸を資化する能力は、以下の試験で測定し、同定することができる。
・トランス脂肪酸を唯一の炭素源として含む培地で増殖可能であるかどうかを確認する試験。
・トランス脂肪酸を唯一の炭素源として含む培地でコロニーを形成するかどうかを確認する試験。
・増殖に伴い培養上清中のノルマルヘキサン値の減少を測定する試験。
・増殖に伴い培養上清中のトランス脂肪酸の濃度をガスクロマトグラフィーで測定する試験。
・増殖に伴い培養上清中のトランス脂肪酸の濃度をＨＰＬＣで測定する試験。
・増殖に伴い培養上清中のトランス脂肪酸の量を薄層クロマトグラフィーで測定する試験。
　個々のより詳細な測定方法は、本明細書に提供されており、また、当業者であれば、任意のその他の機器・条件を使用してこれらの測定を実施することができる。
　本明細書において、「トランス脂肪酸を分解する能力」とは、トランス脂肪酸を、分解する能力を指す。トランス脂肪酸を分解する能力は、以下の試験で測定し、同定することができる。
・トランス脂肪酸を資化する能力があるかどうかを確認する試験。
・培養上清中のトランス脂肪酸の量を薄層クロマトグラフィーで測定する試験。
・トランス脂肪酸を炭素源として与えて培養し、上清中のノルマルヘキサン値の減少を測定する試験。
・培養上清中のトランス脂肪酸の濃度をガスクロマトグラフィーで測定する試験。
・培養上清中のトランス脂肪酸の濃度をＧＣ－ＭＳで測定する試験。
・培養上清中のトランス脂肪酸の濃度をＨＰＬＣで測定する試験。
・トランス脂肪酸を含む寒天培地上で形成されるコロニーの周辺に、クリアゾーンが観察されるかどうかを確認する試験。
・トランス脂肪酸を主たる有機物（例えば、全有機物中の７０重量％以上）として含む検水を作成し、生化学的酸素要求量（ＢＯＤ）を測定する試験。
　個々のより詳細な測定方法は、本明細書に提供されており、また、当業者であれば、任意のその他の機器・条件を使用してこれらの測定を実施することができる。
　本明細書において、「１５℃において油脂を分解する能力」とは、低温において油脂を、グリセロールと遊離脂肪酸とに加水分解する活性を指す。１５℃において油脂を分解する能力は、以下の試験で測定し、同定することができる。次のいずれかの試験で分解能力が示されればよく、必ずしも全ての試験で分解が認められなければいけないものではない。
・１５℃で油脂を資化する能力があるかどうかを確認する試験。
・１５℃で油脂を含む寒天培地上で形成されるコロニーの周辺に、クリアゾーンが観察されるかどうかを確認する試験。
・油脂を炭素源として与えて１５℃で培養し、培養上清中のノルマルヘキサン値の減少量を測定する試験。
・油脂を炭素源として与えて１５℃で培養し、培養上清中の油脂および遊離脂肪酸の量の時間変化を薄層クロマトグラフィーで測定する試験。油脂の量が時間の経過とともに減少すれば分解能力がある。あるいは、遊離脂肪酸の量がいったん増えれば、分解する能力があると言える。
・油脂を炭素源として与えて１５℃で培養し、培養上清中の遊離脂肪酸の濃度をガスクロマトグラフィー、ＧＣ－ＭＳ、ＨＰＬＣ等の機器分析により測定する試験。遊離脂肪酸の濃度がいったん増えれば、分解する能力があると言える。
・油脂を主たる有機物（例えば、全有機物中の７０重量％以上）として含む検水を作成し、生化学的酸素要求量（ＢＯＤ）を測定する試験。
　個々のより詳細な測定方法は、本明細書に提供されており、また、当業者であれば、任意のその他の機器・条件を使用してこれらの測定を実施することができる。
　本明細書において、「油処理成分」とは、油脂および／または脂肪酸の資化および分解を補助する成分を意味する。具体的には、バイオサーファクタントなどの、油脂および／または脂肪酸の分散化を促進する成分、油脂を脂肪酸とグリセロールとに分解する成分のほか、脂肪酸を分解するもの、グリセロールを分解するもののほか、油を吸着して処理の対象物から除去するものなどを包含する。一局面では、油処理成分には、本開示の微生物が産生するバイオサーファクタントが含まれてもよい。
　本明細書において「油分解剤」とは、本開示の微生物を有効成分とする、油脂および／または脂肪酸の分解が可能な製剤を指す。本開示において、油分解剤は、油処理成分と併用して使用されてもよい。この場合の油分解剤と油処理成分との併用使用のタイミングは、同時に使用しても、いずれか片方を先に使用することにしてもよい。さらに、油分解剤には、使用する細菌株または細菌株由来のリパーゼの活性を高める成分（例えば炭素源、窒素源）、界面活性剤、乾燥保護剤、細菌を長期間維持するための成分、防腐剤、賦形剤、強化剤、酸化防止剤等を更に含有させてもよい。
　本明細書で使用される「誘導株」、「類似株」または「変異株」は、好ましくは、限定を意図するものではないが、対象となる微生物のＤＮＡに実質的に相同な領域を含む遺伝子（例えば、１６Ｓ　ｒＤＮＡ）を含み、このような株は、種々の実施形態において、当該分野で公知のコンピュータ相同性プログラムによってアラインメントを行って元となる株の全ゲノムの配列と比較した際、少なくとも３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％または９９％同一である全ゲノム配列を有する。これは、遺伝子の変異、置換、欠失および／または付加によって改変された微生物であり、その誘導株がなお元の微生物の生物学的機能を、必ずしも同じ度合いでなくてもよいが示す微生物を意味する。例えば、遺伝子の変異は、任意の公知の変異剤、ＵＶ、プラズマなどを使用して導入することができる。一つの実施形態では、「誘導株」、「類似株」または「変異株」は、元の株と同じ属および／または種である株である。例えば、本明細書において記載されあるいは当該分野で公知の適切で利用可能なｉｎ　ｖｉｔｒｏアッセイによって、このような微生物の生物学的機能を調べることが可能である。
　本明細書において遺伝子の「相同性」とは、２以上の遺伝子配列の、互いに対する同一性の程度をいい、一般に「相同性」を有するとは、同一性または類似性の程度が高いことをいう。従って、ある２つの遺伝子の相同性が高いほど、それらの配列の同一性または類似性は高い。２種類の遺伝子が相同性を有するか否かは、配列の直接の比較、または核酸の場合ストリンジェントな条件下でのハイブリダイゼーション法によって調べられ得る。２つの遺伝子配列を直接比較する場合、その遺伝子配列間でＤＮＡ配列が、代表的には少なくとも５０％同一である場合、好ましくは少なくとも７０％同一である場合、より好ましくは少なくとも８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％同一である場合、それらの遺伝子は相同性を有する。本明細書において遺伝子または塩基配列の「類似性」は、２以上の遺伝子配列の、互いに対する類似性の程度をいい、同一性の他配列の類似の程度が高いことをいう。「類似性」は、同一性に加え、類似の塩基についても計算に入れた数値であり、ここで類似の塩基とは、混合塩基（例えば、Ｒ＝Ａ＋Ｇ、Ｍ＝Ａ＋Ｃ、Ｗ＝Ａ＋Ｔ、Ｓ＝Ｃ＋Ｇ、Ｙ＝Ｃ＋Ｔ、Ｋ＝Ｇ＋Ｔ、Ｈ＝Ａ＋Ｔ＋Ｃ、Ｂ＝Ｇ＋Ｔ＋Ｃ、Ｄ＝Ｇ＋Ａ＋Ｔ、Ｖ＝Ａ＋Ｃ＋Ｇ、Ｎ＝Ａ＋Ｃ＋Ｇ＋Ｔ）において、一部が一致する場合をいう。
　アミノ酸は、その一般に公知の３文字記号か、またはＩＵＰＡＣ－ＩＵＢ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ　Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎにより推奨される１文字記号のいずれかにより、本明細書中で言及され得る。ヌクレオチドも同様に、一般に認知された１文字コードにより言及され得る。本明細書では、アミノ酸配列および塩基配列の類似性、同一性および相同性の比較は、配列分析用ツールであるＢＬＡＳＴを用いてデフォルトパラメータを用いて算出される。同一性の検索は例えば、ＮＣＢＩのＢＬＡＳＴ２．７．１（２０１７．１０．１９発行）を用いて行うことができる。本明細書における「同一性」の値は通常は上記ＢＬＡＳＴを用い、デフォルトの条件でアラインした際の値をいう。ただし、パラメータの変更により、より高い値が出る場合は、最も高い値を同一性の値とする。複数の領域で同一性が評価される場合はそのうちの最も高い値を同一性の値とする。「類似性」は、同一性に加え、類似のアミノ酸についても計算に入れた数値である。
　本開示の一実施形態において同一性等の数値である「７０％以上」は、例えば、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、または１００％以上であってもよく、それら起点となる数値のいずれか２つの値の範囲内であってもよい。上記「同一性」は、２つもしくは複数間のアミノ酸または塩基配列において相同なアミノ酸または塩基数の割合を、上述したような公知の方法に従って算定される。具体的に説明すると、割合を算定する前には、比較するアミノ酸または塩基配列群のアミノ酸または塩基配列を整列させ、同一アミノ酸または塩基の割合を最大にするために必要である場合はアミノ酸または塩基配列の一部に間隙を導入する。整列のための方法、割合の算定方法、比較方法、およびそれらに関連するコンピュータプログラムは、当該分野で従来からよく知られている（例えば、上述したＢＬＡＳＴ等）。本明細書において「同一性」および「類似性」は、特に断りのない限りＮＣＢＩのＢＬＡＳＴによって測定された値で表すことができる。ＢＬＡＳＴでアミノ酸または塩基配列を比較するときのアルゴリズムには、Ｂｌａｓｔｐをデフォルト設定で使用できる。測定結果はPositivesまたはIdentitiesとして数値化される。この場合、「同一性」に代えて「類似性」という場合は、本明細書に記載される「類似」する「アミン酸」または「塩基」の定義に該当するものも考慮した数値である。
　本明細書において「生物学的機能」とは、ある微生物について言及するとき、その微生物が有し得る特定の機能をいい、これには、例えば、油脂の分解（例えば、トランス脂肪酸含有油脂の分解）等を挙げることができるがそれらに限定されない。本開示においては、例えば、トランス脂肪酸含有油脂の分解のほか、シス脂肪酸含有油脂の分解、シス脂肪酸の分解、飽和脂肪酸含有油脂の分解、飽和脂肪酸の分解などを挙げることができるがそれらに限定されない。本明細書において、生物学的機能は、対応する「生物学的活性」によって発揮され得る。本明細書において「生物学的活性」とは、ある微生物が、ある環境において有し得る活性のことをいい、種々の機能（例えば、トランス脂肪酸含有油脂の分解活性）を発揮する活性が包含される。このような生物学的活性は、当該分野において周知の技術によって測定することができる。従って、「活性」は、応答に影響する（すなわち、いくらかの曝露または刺激に応答する測定可能な影響を有する）、種々の測定可能な指標をいい、例えば、本開示の微生物のいくつかの刺激後または事象後の上流または下流のタンパク質の量あるいは他の類似の機能の尺度も含まれ得る。
　本明細書で使用されるとき、試料中の分析物の「量」は、一般には、試料の体積中で検出し得る分析物の質量を反映する絶対値を指す。しかし、量は、別の分析物量と比較した相対量も企図する。例えば、試料中の分析物の量は、試料中に通常存在する分析物の対照レベルまたは正常レベルより大きい量であってもよい。
　用語「約」は、示された値プラスまたはマイナス１０％を指す。
　本明細書において「キット」とは、通常２つ以上の区画に分けて、提供されるべき部分（例えば、本開示の微生物を含む組成物、追加的な成分、緩衝液、説明書など）が提供されるユニットをいう。安定性等のため、混合されて提供されるべきでなく、使用直前に混合して使用することが好ましいような組成物の提供を目的とするときに、このキットの形態は好ましい。そのようなキットは、好ましくは、提供される部分（例えば、微生物を含む組成物、追加的な成分）などをどのように使用するか、あるいは、どのように処理すべきかを記載する指示書または説明書を備えていることが有利である。本明細書においてキットが使用される場合、キットには、通常、本開示の微生物や組成物等の使い方などを記載した指示書などが含まれる。
　本明細書において「指示書」は、本開示を使用する方法を使用者に対する説明を記載したものである。この指示書は、本開示の使用方法を指示する文言が記載されている。この指示書は、必要な場合は、本開示が実施される国の監督官庁（例えば、日本であれば厚生労働省または農林水産省等、米国であれば食品医薬品局（ＦＤＡ）、農務省（ＵＳＤＡ）など）が規定した様式に従って作成され、その監督官庁により承認を受けた旨が明記される。指示書は、紙媒体で提供され得るが、それに限定されず、例えば、電子媒体（例えば、インターネットで提供されるホームページ、電子メール）のような形態でも提供され得る。
　（好ましい実施形態）
　以下に本開示の好ましい実施形態を説明する。以下に提供される実施形態は、本開示のよりよい理解のために提供されるものであり、本開示の範囲は以下の記載に限定されるべきでないことが理解される。従って、当業者は、本明細書中の記載を参酌して、本開示の範囲内で適宜改変を行うことができることは明らかである。また、本開示の以下の実施形態は単独でも使用されあるいはそれらを組み合わせて使用することができることが理解される。
　（油脂分解性微生物）
　一つの局面において、本開示は、油脂分解能のある新たな微生物を提供する。特に、本開示の微生物は、トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力、トランス脂肪酸を資化する能力、トランス脂肪酸を分解する能力、トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力、および／または１５℃において油脂および／または脂肪酸を資化および／または分解する能力という１つ以上の特徴を有するものである。
　一つの実施形態では、本開示の微生物は、ブルクホルデリア（Burkholderiaceae）科の細菌である。一つの実施形態では、本開示の微生物は、ブルクホルデリア（Burkholderia）属の細菌である。ブルクホルデリア属はグラム陰性の非芽胞形成好気性の極鞭毛を持つ桿菌であり、ブルクホルデリア科の基準属である。一つの実施形態では、本開示の微生物は、ブルクホルデリア　アルボリス（Burkholderia　arboris）、ブルクホルデリア　アンビファリア（Burkholderia　ambifaria）またはブルクホルデリア　セパシア（Burkholderia　cepacia）であり、好ましくは、ブルクホルデリア　アルボリスまたはブルクホルデリア　アンビファリアである。一つの実施形態では、本開示の微生物は、Burkholderia　cepacia　complexに属する微生物である。Burkholderia　cepacia　complexとは、遺伝子的に非常に近いBurkholderia属の微生物の分類であり、ambifaria、anthina、arboris、cenocepacia、cepacia、contaminans、diffusa、dolosa、lata、latens、metallica、multivorans、pseudomultivorans、puraquae、pyrrocinia、seminalis、stabilis、stagnalis、territorii、ubonensis、およびvietnamiensisが含まれる（Martina　Pら、Int　J　Syst　Evol　Microbiol.　2018　Jan;68(1):14-20.）。別の実施形態では、本開示のブルクホルデリア細菌は、metallica、seminalis、anthina、ambifaria、diffusa、ubonensis、multivorans、latens、cenocepacia、vietnamiensis、pyrrocinia、stabilis、glumae、gladioli、plantarii、oklahomensis、thailandensis、mallei、pseudomalleiまたはphytofirmansであってもよい。本発明者は、１６ＳリボゾームＤＮＡの塩基配列の決定及び系統解析によって、新たな微生物（ＫＨ－１）をブルクホルデリア　アルボリスと同定し、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターにこれを寄託し、２０１８年６月４日に受領され、２０１８年６月１２日に受託証が発行された。受領番号はＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２７３１である。また、ブルクホルデリア属の細菌（ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２およびＫＨ－１ＡＬ３）をさらに同定し、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターにこれらを寄託し、２０１９年６月２８日に受領された。受領番号はそれぞれ、ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７７、ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７８、およびＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７９である。一つの実施形態では、本開示の微生物は、ブルクホルデリア菌ＫＨ－１株（受託番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－０２７３１／受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２７３１で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ１株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７７で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ２株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７８で特定される菌株）もしくはＫＨ－１ＡＬ３株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７９で特定される菌株）であるか、またはその誘導株である。
　一つの実施形態では、本開示の微生物は、ブルクホルデリア菌ＫＨ－１株（受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０２７３１／受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２７３１で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ１株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７７で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ２株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７８で特定される菌株）もしくはＫＨ－１ＡＬ３株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７９で特定される菌株）の誘導株である。ここで、誘導株とは、ブルクホルデリア菌ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株を元として得られた株であることは必要とせず、これらのブルクホルデリア菌株の生物学的機能を、必ずしも同じ度合いでなくてもよいが示す微生物を指す。一つの実施形態では、本開示の誘導株である微生物は、ブルクホルデリア菌ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株と同様に、低温（例えば、２５℃以下、２０℃以下、１５℃以下、１０℃以下、５℃以下など）において油脂（例えば、トランス脂肪酸含有油脂）を資化（分解）する能力、およびトランス脂肪酸を資化（分解）する能力からなる群から選択される生物学的機能を示すが、その生物学的機能の程度はＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株と異なっていてもよい。一つの実施形態では、本開示の誘導株である微生物は、ブルクホルデリア（Burkholderiaceae）科の細菌であり、より具体的には、ブルクホルデリア（Burkholderia）属の細菌であり、さらに具体的には、ブルクホルデリア　アルボリス（Burkholderia　arboris）、ブルクホルデリア　アンビファリア（Burkholderia　ambifaria）、またはBurkholderia　cepacia　complexに属する微生物である。
　本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、油脂を唯一の炭素源として含み、ｐＨを６～８に調整した無機塩寒天培地上で単離可能であり得る。また、一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、寒天培地上に生じたコロニー周辺にクリアゾーン（ハロー）が形成されるのを確認することで判別可能であり得る。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、トランス脂肪酸またはトランス脂肪酸含有油脂を資化する能力を有する。一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、トランス脂肪酸を分解する能力を有する。一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力を有する。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、１５℃において油脂および／または脂肪酸を分解する能力を有する。一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、トランス脂肪酸またはトランス脂肪酸を含有する油脂を、資化または分解する能力が１５℃において保持される。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、油脂や脂肪酸を含む培地中で培養すると、バイオサーファクタントを分泌し得る。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、１０ｇ／Ｌのキャノーラオイルを含む無機塩培地に、最終濃度がＯＤ６６０＝０．０３または０．０２となるような密度で微生物を植菌し、２００ｍｌ／ｍｉｎの空気還流下、ｐＨ７．０、１５℃で培養したときに、２４または４８時間後の上清におけるノルマルヘキサン値相当の油分が、９ｇ／Ｌ未満、８ｇ／Ｌ未満、７ｇ／Ｌ未満、６ｇ／Ｌ未満、５ｇ／Ｌ未満、４ｇ／Ｌ未満、３ｇ／Ｌ未満、２ｇ／Ｌ未満、１ｇ／Ｌ未満、０．７ｇ／Ｌ未満、０．５ｇ／Ｌ未満、０．２ｇ／Ｌ未満、０．１ｇ／Ｌ未満、０．０７ｇ／Ｌ未満、０．０５ｇ／Ｌ未満、０．０２ｇ／Ｌ未満、または０．０１ｇ／Ｌ未満となる油脂分解能を有する。特に、本開示の微生物（ＫＨ－１株の誘導株を含む）は、この条件で判定した場合にＯＤ６６０＝０．０２の密度で植菌し４８時間培養した場合に約６ｇ／Ｌ未満までノルマルヘキサン値相当の油分を低下させる油脂分解能を有することが好ましく、ＯＤ６６０＝０．０３の密度で植菌し２４時間培養した場合に６ｇ／Ｌ未満までノルマルヘキサン値相当の油分を低下させる油脂分解能を有することが特に好ましく、このような低温油脂分解能を有する微生物は本開示の種々の用途において有益に使用することができる。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、トランス脂肪酸（例えば、エライジン酸、パルミテライジン酸、バクセン酸）含有油脂を含むｐＨ７．０かつ１５℃または２８℃の培地中で、トランス脂肪酸含有油脂を資化および／または分解する油脂分解能を有し得る。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００およびエライジン酸をそれぞれ０．２５重量％および０．２重量％の濃度で含む無機塩培地に終濃度ＯＤ６６０＝０．０８となるような密度で微生物を植菌し、ｐＨ７．０、１５℃で培養したときに７２時間後の上清におけるエライジン酸濃度が、重量％において０．１５％未満、０．１２％未満、０．１％未満、０．０９％未満、０．０８％未満、０．０７％未満、０．０６％未満、０．０５％未満、０．０４％未満、０．０３％未満、０．０２％未満、０．０１５％未満、０．０１％未満、０．００７％未満、０．００５％未満、０．００２％未満、０．００１％未満、０．０００７％未満、０．０００５％未満、０．０００２％未満、または０．０００１％未満となるトランス脂肪酸分解能を有する。本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、この条件で判定した場合に０．１５％未満、０．１２％未満、０．１％未満、または０．０５％未満、特に、０．１２％未満まで上清におけるエライジン酸濃度を低下させる能力を有することが好ましく、このようなトランス脂肪酸分解能を有する微生物は本開示の種々の用途において有益に使用することができる。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００およびエライジン酸をそれぞれ０．２５重量％および０．２重量％の濃度で含む無機塩培地に終濃度ＯＤ６６０＝０．０４となるような密度で微生物を植菌し、ｐＨ７．０、２８℃で培養したときに２４時間後の上清におけるエライジン酸濃度が、重量％において０．１５％未満、０．１２％未満、０．１％未満、０．０９％未満、０．０８％未満、０．０７％未満、０．０６％未満、０．０５％未満、０．０４％未満、０．０３％未満、０．０２％未満、０．０１５％未満、０．０１％未満、０．００７％未満、０．００５％未満、０．００２％未満、０．００１％未満、０．０００７％未満、０．０００５％未満、０．０００２％未満、または０．０００１％未満となるトランス脂肪酸分解能を有する。本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、この条件で判定した場合に０．１５％未満、０．１２％未満、０．１％未満、０．０５％未満、０．０２％未満または０．０１％未満、特に、０．１％未満まで上清におけるエライジン酸濃度を低下させる能力を有することが好ましく、このようなトランス脂肪酸分解能を有する微生物は本開示の種々の用途において有益に使用することができる。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、１０ｇ／Ｌのキャノーラオイルを含む無機塩培地に、最終濃度がＯＤ６６０＝０．０３となるような密度で微生物を植菌し、２００ｍｌ／ｍｉｎの空気還流下、ｐＨ７．０、１５℃および２８℃でそれぞれ培養したときに、１５℃培養における２４時間後の上清におけるノルマルヘキサン値相当の油分が、２８℃培養における２４時間後の上清におけるノルマルヘキサン値相当の油分と比較して１０００％以下、８００％以下、６００％以下、４００％以下、２００％以下、１５０％以下、１００％以下、８０％以下、６０％以下、４０％以下、２０％以下、１０％以下または５％以下となる油脂分解能を有する。本開示の微生物（ＫＨ－１株の誘導株を含む）は、この条件で判定した場合に、２８℃培養に比べて１５℃培養における油脂残存率が、８００％以下、７００％以下、６００％以下、５００％以下、４００％以下、特に、７００％以下である油脂分解能を有することが好ましく、このような低温油脂分解能を有する微生物は本開示の種々の用途において有益に使用することができる。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、１０ｇ／Ｌのキャノーラオイルを含む無機塩培地に、最終濃度がＯＤ６６０＝０．０３となるような密度で微生物を植菌し、２００ｍｌ／ｍｉｎの空気還流下、ｐＨ７．０、１５℃および２８℃でそれぞれ培養を開始したときに、２８℃培養に比べて１５℃培養における全脂肪酸分解速度が、１０００％以上、８００％以上、６００％以上、４００％以上、２００％以上、１５０％以上、１００％以上、８０％以上、６０％以上、５０％以上、４０％以上、３０％以上、２０％以上、１０％以上または５％以上となる油脂分解能を有する。本開示の微生物（ＫＨ－１株の誘導株を含む）は、この条件で判定した場合に、２８℃培養に比べて１５℃培養における全脂肪酸分解速度が、５０％以上、４０％以上、３０％以上、２０％以上または１０％以上、特に、３０％以上である油脂分解能を有することが好ましく、このような低温油脂分解能を有する微生物は本開示の種々の用途において有益に使用することができる。
　一つの実施形態では、微生物の油脂および脂肪酸の分解・資化能力は、培地中に残存する油脂に含まれる脂肪酸および分解により生じた遊離脂肪酸をガスクロマトグラフィーで定量することにより評価できる。具体的な定量手順を示すと、まず、培養上清１ｍＬを塩酸により酸性にし、２ｍＬのクロロホルムを加える。２分間攪拌後遠心し、クロロホルム層１ｍＬを別容器に移して溶媒を蒸発させて濃縮する。メタノリシス溶液（メタノール：硫酸＝１７：３）を２ｍＬ加えて１００℃で２時間加熱し、油脂および遊離脂肪酸をメチルエステル化させる。その後、クロロホルム２ｍＬ、純水１ｍＬを加えて攪拌の後、クロロホルム層をガスクロマトグラフィーで分析し、全脂肪酸のメチルエステルを定量する。
　一つの実施形態では、微生物の油脂および脂肪酸の分解・資化能力は、培地中に残存する油脂および分解生成物である脂肪酸を薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）で分析することにより評価できる。具体的な手順を示すと、まず、培養上清に等量のクロロホルムを加えることによって、油脂を抽出する。この抽出物５μｌを、クロロホルム、アセトンおよびメタノールを、体積比でそれぞれ９６：４：１の比率で含む展開溶媒を使用し、シリカゲルコートプレート上に展開する。プレートをモリブデン酸ｎ水和物により処理し、油脂および／または脂肪酸を発色させる。
　一つの実施形態では、微生物の油脂および脂肪酸の分解・資化能力は、それぞれを唯一の炭素源とする培地での増殖能を調べることで評価できる。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、リパーゼを分泌する能力があってもよいし、リパーゼを分泌する能力がなくてもよい。
　一つの実施形態では、本開示の微生物（ＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を含む）は、弱酸性条件（例えば、ｐＨ約５．５～６．０）において増殖・油脂分解可能であり得る。
　一つの実施形態では、微生物の増殖能力は、菌体の光学密度として６６０ｎｍの吸光度（濁度）（ＯＤ６６０）を測定する方法や、コロニーフォーミングユニット（ＣＦＵ）を測定する方法などで調べることができる。後者では、寒天培地上に培養液の原液および希釈液を一定量塗り拡げ、静置培養により形成されたコロニーを計数する。
　一つの実施形態では、本開示の微生物はリパーゼを分泌し得る。微生物のリパーゼ分泌能力については、微生物培養液の遠心分離によって得られる培養上清のリパーゼ活性を測定することにより評価することができる。リパーゼ活性は、パルミチン酸と４－ニトロフェノールとのエステルである４－ニトロフェニルパルミテート（４－ＮＰＰ）を基質として用いて酵素反応を行い、エステルの加水分解により生じた４－ニトロフェノールの量を４１０ｎｍの吸光度を測定することによって決定できる。まず、４－ＮＰＰ（１８．９ｍｇ）を３％（ｖ／ｖ）トリトンＸ－１００（１２ｍｌ）に加え、７０℃で溶解して基質溶液とする。基質溶液１ｍＬ、イオン交換水０．９ｍＬおよび１５０ｍＭ　ＧＴＡ緩衝液（１５０ｍＭ　３，３－ジメチルグルタル酸、１５０ｍＭ　Ｔｒｉｓおよび１５０ｍＭ　２－アミノ－２－メチル－１，３－プロパンジオールにＮａＯＨまたはＨＣｌを加えてｐＨ７に調製）１ｍＬをセルに入れ、２８℃で５分間保温する。これに培養上清を０．１ｍＬ添加して、攪拌しながら４１０ｎｍの値を測定する。
　当業者は、上記の測定法を適当に使用してＫＨ－１株、ＫＨ－１ＡＬ１株、ＫＨ－１ＡＬ２株もしくはＫＨ－１ＡＬ３株の誘導株を試験して、上記の生物学的機能（およびその程度）を有する誘導株を取得することができる。
　（微生物を含む組成物）
　一つの局面において、本開示は、本開示の微生物を含む組成物を提供する。一つの局面において、本開示は、本開示の微生物の培養上清を含む組成物を提供する。本開示の微生物は、任意の適当な方法により培養することで製造することができる。一つの実施形態では、組成物は油分解剤である。一つの実施形態では、組成物は脂肪酸分解剤である。本開示の脂肪酸分解剤によって処理することで、脂肪酸に含まれる炭素数よりも少ない炭素を含む化合物が生成され得る。一つの実施形態では、組成物はトランス脂肪酸分解剤である。
　（適用対象）
　一つの実施形態では、本開示の油分解剤を適用する油脂として、例えば、植物性油脂（綿実油、菜種油、大豆油、トウモロコシ油、オリーブ油、サフラワー油、米油、ごま油、パーム油、ヤシ油、落花生油等）、動物性油脂（ラード、牛脂、乳脂肪等）、魚油、これらの油脂の加工品（マーガリン、ショートニング、バター等）、絶縁油、潤滑油などが挙げられるが、これらに限定されない。油脂は、エマルジョンの形態で存在していてもよいし、遊離の状態で存在していてもよい。
　具体的な実施形態としては、本開示の油分解剤を適用する油脂として、トランス脂肪酸を含む油脂が挙げられ、そのような油脂としては、水素添加して製造される油脂などの加工品（マーガリン、ショートニング、バター等）が挙げられるがこれに限定されない。水素を添加することで不飽和脂肪酸の二重結合の数が減り、飽和脂肪酸の割合が増えるが、これによって、トランス脂肪酸が生成する場合がある。水素添加によって製造されるマーガリン、ファットスプレッド、ショートニングや、それらを原材料に使ったパン、ケーキ、ドーナツなどの洋菓子、揚げ物などにトランス脂肪酸が含まれるとされる。植物や魚からとった油を精製する工程で、好ましくない臭いを取り除くために高温で処理を行う。この際に、油に含まれているシス型の不飽和脂肪酸からトランス脂肪酸ができるため、サラダ油などの精製した植物油にも微量のトランス脂肪酸が含まれるとされる。
　本開示の油分解剤または脂肪酸分解剤を適用する対象は、特に制限されず、例えば、産業排水、家庭排水、産業廃棄物、家庭廃棄物（生ゴミなど）、畜産廃棄物、養殖場（およびその排水）、畜舎（およびその排水）、と殺場（およびその排水）、油脂により汚染された土壌、油脂により汚染された水（海、池、川、動物用飲用水など）、動物の体表、水槽（養殖用、鑑賞用など）、任意の油脂汚染製品（食器、機械部品など）、厨房等に設置されるグリーストラップ、ファットバーグ、排水管、変圧器などから漏れた絶縁油や劣化した絶縁油などが挙げられるが、これらに限定されない。これらのうちの任意の対象には、トランス脂肪酸含有油脂および／またはトランス脂肪酸が含まれる場合があり、本開示の油分解剤または脂肪酸分解剤を好適に適用し得る。「グリーストラップ」とは、排水中の油を分離し、収集するための装置であり、典型的には３槽から構成される。第１槽はバスケットを備え、食材片や残飯などを捕捉する。第２槽では油水が分離される。油と分離した排水は第３槽に送られ、沈降性のゴミなどが除去される。飲食店や病院、ホテル等の業務用厨房にはグリーストラップの設置が義務づけられている。グリーストラップに適用する際は、別に分解処理槽を設けてもよいが、油脂分解剤や微生物を直接グリーストラップに投入してグリーストラップ内で分解処理することもできる。
　本開示の微生物は、低温での処理の効率が高いことから、低温処理が望ましい実施形態があり得る。例えば、産業排水、家庭排水、産業廃棄物、家庭廃棄物（生ゴミなど）、油脂により汚染された土壌、油脂により汚染された水（海、池、川、動物用飲用水など）などの、２０℃未満（例えば、１５℃）での処理が想定される例は、本開示によって処理される対象として好ましい一例である。
　具体的には、製剤などを投入ないし添加したり、または本開示の微生物を固定化した担体などを排水経路や排水貯留槽、グリーストラップ内等に設置したりする。グリーストラップ外に、別途、専用の分解処理槽を設けることにしてもよい。
　一つの実施形態では、排水としては、飲食店、病院、ホテル等の排水、家庭排水、食品加工工場、油脂加工工場等から排出される産業排水などが挙げられるが、これらに限定されない。
　（使用形態）
　本開示の微生物または組成物の形態としては、例えば、液体状態、固体状態などが挙げられる。液体状態の微生物または組成物としては、微生物の培養液、培養液から微生物を遠心分離などにより集菌した後、水や緩衝液或いは培養液などに再度分散させたものなどが例示される。固体状態の微生物または組成物としては、遠心分離やプレス圧縮等により脱水したもの、固体と液体の中間のようなペースト状態・マヨネーズ状態のもの、乾燥（例えば、減圧乾燥、凍結乾燥）した乾燥体などが例示される。固体の形状として、例えば、粉末、顆粒、錠剤などが挙げられる。また、組成物は、微生物または培養上清が担体に固定された状態で提供されてもよい。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、約１×１０８細胞／ｍＬ、約１×１０７細胞／ｍＬ、約１×１０６細胞／ｍＬ、約１×１０５細胞／ｍＬ、約１×１０４細胞／ｍＬ、約１×１０３細胞／ｍＬ、約１×１０２細胞／ｍＬまたは約１０細胞／ｍＬの密度となるように液体に添加され得る。
　（適用環境）
　本開示の微生物または組成物は、任意の好適な環境下で使用できる。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、０～１００℃、５～７０℃、１０～５０℃未満、１５～４０℃、２０～３５℃、７０℃未満、６０℃未満、５０℃未満、４０℃未満、３０℃未満、２５℃未満、２０℃未満、１５℃未満、１０℃未満、５℃未満、０℃未満、約７０℃、約６０℃、約５０℃、約４０℃、約３０℃、約２５℃、約１５℃、約１０℃、約５℃または約０℃の環境で使用され得る。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、ｐＨ３～１３、ｐＨ４～１２、ｐＨ５～１１、ｐＨ６～１０、ｐＨ７～９、ｐＨ５．５～８．５、約ｐＨ３、約ｐＨ４、約ｐＨ５、約ｐＨ６、約ｐＨ７、約ｐＨ８、約ｐＨ９、約ｐＨ１０、約ｐＨ１１、約ｐＨ１２または約ｐＨ１３の環境で使用され得る。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、０．０５ｍｇ／Ｌ以上、０．１ｍｇ／Ｌ以上、０．５ｍｇ／Ｌ以上、または１ｍｇ／Ｌ以上の溶存酸素濃度（ＤＯ）の環境で使用され得る。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、１００～４００００ｍｇ／Ｌ、２００～３００００ｍｇ／Ｌ、３００～３００００ｍｇ／Ｌのノルマルヘキサン値の排水中で使用され得る。汚泥のスラリーや生ごみ処理などの固形廃棄物（水を含んでもよい）では、より高濃度に油脂が存在する場合があるが、一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、このような固形廃棄物に対しても有用に適用され得る。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、５０重量％以上、２０重量％以上、１０重量％以上、７重量％以上、５重量％以上、２重量％以上、１重量％以上、０．７重量％以上、０．５重量％以上、０．２重量％以上、０．１重量％以上、０．０７重量％以上、０．０５重量％以上、０．０２重量％以上、０．０１重量％以上、０．００７重量％以上、０．００５重量％以上、０．００２重量％以上または０．００１重量％以上のトランス脂肪酸を含む対象に添加され得る。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、含まれる油脂の中のトランス脂肪酸（遊離の脂肪酸と、エステル基含有化合物における脂肪酸との合計）が占める割合が５０重量％以上、２０重量％以上、１０重量％以上、７重量％以上、５重量％以上、２重量％以上、１重量％以上、０．７重量％以上、０．５重量％以上、０．２重量％以上、０．１重量％以上、０．０７重量％以上、０．０５重量％以上、０．０２重量％以上、０．０１重量％以上、０．００７重量％以上、０．００５重量％以上、０．００２重量％以上または０．００１重量％以上である対象に添加され得る。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物を添加する対象には、窒素が微生物に利用可能な形態、好ましくはアンモニウム塩、硝酸塩、硫酸塩、又は有機窒素化合物、より好ましくは硫酸アンモニウム、尿素、アミノ酸、又はペプトン、トリプトン、カザミノ酸などのペプチドを含む形態で存在していてもよい。存在する窒素の量は、Ｃ／Ｎ＝２～５０の範囲（ここでのＣはｎ－Ｈｅｘ由来のみの炭素を指す）であり得、好ましくはＣ／Ｎ＝２～３０、より好ましくはＣ／Ｎ＝２～２０の範囲であり得る。ただし、Ｃ／Ｎとは、排水中に含まれるｎ－Ｈｅｘ由来炭素原子と窒素原子の重量比である。一つの実施形態において、これらの範囲となるように窒素をさらに添加してもよい。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物を添加する対象には、リン（Ｐ）が微生物が利用可能な形態、好ましくはリン酸塩又は核酸、より好ましくはリン酸塩の形態で存在していてもよい。存在するリンの量は、窒素に対してＮ／Ｐ＝１～２０となる量であり得る。ただし、Ｎ／Ｐとは、排水中に含まれる窒素原子とリン原子の重量比である。一つの実施形態において、これらの範囲となるようにリンをさらに添加してもよい。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、塩、界面活性剤、光、電流、撹拌操作、ばっ気操作、またはこれらの任意の組み合わせが存在する条件で使用されてもよい。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、本開示の微生物を殺傷し、生育を抑制する物質（塩素、抗生物質など）を除去した後で適用してもよい。
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、微生物を固定できる担体とともに使用されてもよい。このような担体を使用することでウォッシュアウトを効果的に避けられ得る。担体の材質としては、微生物を固定できるものであれば特に制限なく、例えば、炭素繊維（ＰＡＮ系、ピッチ系、フェノール樹脂系等）、ポリエチレン樹脂、ポリプロピレン樹脂、ポリウレタン樹脂、ポリスチレン樹脂、ポリ塩化ビニル樹脂、ポリ酢酸ビニル樹脂、ポリビニルアルコール樹脂、ポリエチレングリコール樹脂、アクリル樹脂、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム、カラギーナン、デキストリン、セラミックス、シリコン、金属、木炭、活性炭、鉱物（ゼオライト、珪藻土等）、これらの複合体などが挙げられる。微生物の固定化率及び微生物の作用効率を高めるために、多孔質又は繊維状の担体を用いることが好ましい。また、ゲル状担体に微生物を包含させてもよい。担体の形状は、例えば、立方体状、直方体状、円柱状、球状、円板状、シート状、膜状などが挙げられる。微生物の固定化技術については、例えば、「微生物固定化法による排水処理（須藤隆一編著、産業用水調査会）」や「微生物固定化法による水処理―担体固定化法包括固定化法　生物活性炭法（新しい水処理シリーズ(1))（望月　和博、堀　克敏、立本英機(著)、株式会社エヌ・ティー・エス）」などを参照のこと。
　（追加成分）
　一つの実施形態において、本開示の微生物または組成物は、追加の成分と組み合わされて使用してもよい。一つの実施形態において、追加の成分は、組成物に添加されていてもよいし、微生物または組成物とは別個に使用されてもよく、別個に使用される場合には、キットとして提供されてもよい。
　一つの実施形態において、追加の成分として、使用する微生物の活性を高める成分（例えば炭素源、窒素源）、界面活性剤、乾燥保護剤、微生物を長期間維持するための成分、防腐剤、賦形剤、強化剤、酸化防止剤、他の微生物が挙げられるが、これらに限定されず任意の好適な成分を使用することができる。
　一つの実施形態において、他の微生物として、油脂分解能力を有する微生物、リパーゼを生産する微生物、脂肪酸および／またはグリセロール（油脂のリパーゼによる分解産物である）を分解（資化）する微生物、タンパク質、アミノ酸、核酸、または多糖類（例えば、セルロース）を分解（資化）する微生物などが挙げられる。他の微生物は、本開示の微生物と共生可能であることが好ましい。
　リパーゼを生産する微生物としては、真性細菌、酵母、糸状真菌類などが挙げられ、好ましくは真性細菌及び酵母、より好ましくはグラム陽性細菌、プロテオバクテリアである。真性細菌としては、例えば、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属細菌、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属細菌、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属細菌、ブルクホルデリア（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ）属細菌、アシネトバクター（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属細菌、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属細菌、アルカリゲネス（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ）属細菌、ロドバクター（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ）属細菌、ラルストニア（Ｒａｌｓｔｏｎｉａ）属細菌、アシドボラックス（Ａｃｉｄｏｖｏｒａｘ）属細菌、セラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）属細菌、フラボバクテリウム（Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属細菌等を用いることができる。プロテオバクテリアとしては、例えば、アルファバクテリア、ベータバクテリア、ガンマバクテリアを用いることができる。
　グリセロールを分解（資化）する微生物としては、例えば、真性細菌、酵母、糸状真菌類を用いることができる。好ましくは、カンジダ属酵母を用いる。カンジダ属酵母の具体例はカンジダ　シリンドラセアＳＬ１Ｂ２株である（受託番号ＮＩＴＥ　Ｐ－７１４で独立行政法人製品評価技術基盤機構　特許微生物寄託センターに寄託されている）。当該菌株はグリセロール資化能に優れることに加え、ブルクホルデリア　アルボリスと共生可能であるという特性を備える。従って、カンジダ　シリンドラセアＳＬ１Ｂ２株を組み合わせて使用することは、ブルクホルデリア　アルボリスを使用する態様において特に好ましい。グリセロールを分解（資化）する微生物を併用することで、グリセロールの蓄積による油脂分解速度の低下が防止され、一層効率的な油脂分解が達成可能となり得る。
　脂肪酸を分解（資化）する微生物としては、真性細菌、酵母、糸状真菌類などが挙げられ、好ましくは真性細菌及び酵母、より好ましくは酵母である。酵母としては、ヤロウィア（Ｙａｒｒｏｗｉａ）属酵母、クリプトコッカス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）属酵母、トリコスポロン（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ）属酵母、及びハンゼヌラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）属酵母が挙げられる。
　（微生物を使用する方法）
　一つの局面において、本開示は、本開示の微生物または組成物を処理対象に作用させることを包含する、油脂および／または脂肪酸分解除去方法を提供する。この処理対象は、トランス脂肪酸またはトランス脂肪酸含有油脂を含んでいてもよい。処理対象は、本開示の微生物または組成物を適用することができる任意の本明細書に記載の処理対象であり得る。本開示の油脂および／または脂肪酸分解除去方法は、本開示の微生物または組成物を適用することができる任意の本明細書に記載の環境において実施することができる。本開示の油脂および／または脂肪酸分解除去方法では、本開示の微生物または組成物と組み合わせて使用され得る任意の本明細書に記載の追加成分を使用することができる。
　一つの実施形態において、本開示の油脂および／または脂肪酸分解除去方法は、本開示の微生物または組成物を油脂分解槽に投入する工程を含み、投入は、連続的であっても、逐次的であってもよい。油脂分解槽のＨＲＴ（水理学的滞留時間）は、通常１２時間以上、好ましくは１８時間以上、より好ましくは２０時間以上、更に好ましくは２４時間以上である。ｎ－Ｈｅｘが１００００ｍｇ／Ｌを超える排水について、８０％以上のｎ－Ｈｅｘ値の低減を期待する場合は、ＨＲＴを通常１８時間以上、好ましくは２０時間以上、より好ましくは２４時間以上であり得る。ｎ－Ｈｅｘ値が３０００ｍｇ／Ｌ以下の排水について、８０％以上のｎ－Ｈｅｘ値の低減を期待する場合は、ＨＲＴを通常８時間以上、好ましくは１２時間以上、より好ましくは１８時間以上であり得る。
　油脂分解槽の微生物濃度は排水中の油脂および／または脂肪酸濃度に依存する場合があり、油脂および／または脂肪酸濃度が高いほど菌体濃度が高く維持され得る。油脂分解槽が発泡する場合は、対策として、ＨＲＴを短くする、シャワリング、消泡剤添加などの消泡操作を行うことができる。ただし、消泡剤は微生物の生育を阻害し得るので、添加量は当該事項を考慮して設定することが望ましい。
　油脂分解槽からの流出水のｎ－Ｈｅｘ値は、流入水のｎ－Ｈｅｘ値が３００ｍｇ／Ｌ程度以下の低濃度排水の場合、好ましくは６０ｍｇ／Ｌ以下、より好ましくは３０ｍｇ／Ｌ以下である。流入水のｎ－Ｈｅｘ値が３０００ｍｇ／Ｌ程度の中濃度排水の場合、好ましくは６００ｍｇ／Ｌ以下、より好ましくは３００ｍｇ／Ｌ以下、更に好ましくは１５０ｍｇ／Ｌ以下、最も好ましくは３０ｍｇ／Ｌ以下である。流入水のｎ－Ｈｅｘ値が１００００ｍｇ／Ｌ程度の高濃度排水の場合、好ましくは１０００ｍｇ／Ｌ以下、より好ましくは５００ｍｇ／Ｌ以下、更に好ましくは１００ｍｇ／Ｌ以下、最も好ましくは３０ｍｇ／Ｌ以下である。流入水のｎ－Ｈｅｘ値が３００００ｍｇ／Ｌ程度以上の高濃度排水の場合、好ましくは３０００ｍｇ／Ｌ以下、より好ましくは１０００ｍｇ／Ｌ以下、更に好ましくは３００ｍｇ／Ｌ以下である。
　一つの実施形態において、本開示の方法により、油脂および／または脂肪酸含有排水のｎ－Ｈｅｘ値を、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、更に好ましくは９５％以上、最も好ましくは９９％以上低下させることができる。その結果、多くの排水において、油脂分解槽からの流出水のｎ－Ｈｅｘ値を、多くの自治体で下水道への放流基準値となっている３０ｍｇ／Ｌ未満に下げることも可能である。この基準値を達成すると、ｎ－Ｈｅｘ値だけに着目すれば、後段の活性汚泥処理などの本処理すら不要となり得る。
　油脂分解槽からの流出水中において、投入した微生物の量が増加している必要はない。流出水中の投入した微生物の量は、投入した量に対して、好ましくは０．０１倍以上、より好ましくは０．１倍以上、更に好ましくは０．５倍以上、最も好ましくは１倍以上である。
　本開示の油脂および／または脂肪酸分解除去方法は、上記工程以外にも追加の工程を含むことができる。そのような工程としては、例えば、油脂分解槽からの流出水の全部又は一部を再度油脂分解槽に戻す工程などが挙げられる。しかしながら、本開示の方法では、このような返送処理を行わなくても十分な油脂および／または脂肪酸分解効果が得られるので、油脂分解槽からの流出水の全部又は一部を再度油脂分解槽に戻すことは必須ではない。
　（一般技術）
　本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、Savli,H.,　Karadenizli,A.,　Kolayli,F.,　Gundes,S.,　Ozbek,U.,　Vahaboglu,H.　2003.　Expression　stability　of　six　housekeeping　genes:A　proposal　for　resistance　gene　quantification　studies　of　Pseudomonas　aeruginosa　by　real-time　quantitative　RT-PCR.　J.Med.Microbiol.　52:403-408.、Marie-Ange　Teste,　Manon　Duquenne,　Jean　M　Francois　and　Jean-Luc　Parrou　2009.　Validation　of　reference　genes　for　quantitative　expression　analysis　by　real-time　RT-PCR　in　Saccharomyces　cerevisiae.　BMC　Molecular　Biology　10:99、石井誠治、奥村弘、松原チヨ、二宮扶実、吉岡浩、2004年、「熱感応性ポリマーを用いた水中油分の簡易測定方法」Vol　46、No.12、「用水と排水」などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分（全部であり得る）が参考として援用される。
　（注記）
　本明細書において「または」は、文章中に列挙されている事項の「少なくとも１つ以上」を採用できるときに使用される。「もしくは」も同様である。本明細書において「２つの値」の「範囲内」と明記した場合、その範囲には２つの値自体も含む。
　本明細書において引用された、科学文献、特許、特許出願などの参考文献は、その全体が、各々具体的に記載されたのと同じ程度に本明細書において参考として援用される。
　以上、本開示を、理解の容易のために好ましい実施形態を示して説明してきた。以下に、実施例に基づいて本開示を説明するが、上述の説明および以下の実施例は、例示の目的のみに提供され、本開示を限定する目的で提供したのではない。従って、本開示の範囲は、本明細書に具体的に記載された実施形態にも実施例にも限定されず、特許請求の範囲によってのみ限定される。
　以下に実施例を記載する。必要な場合、以下の実施例で用いる生物の取り扱いは、必要な場合、名古屋大学や監督官庁およびカルタヘナ法において規定される基準を遵守した。試薬類は具体的には実施例中に記載した製品を使用したが、他メーカー（Sigma－Aldrich、富士フイルム、和光純薬、ナカライ、R&D　Systems、USCN　Life　Science　INC、関東化学、フナコシ、東京化成、Ｍｅｒｃｋ等）の同等品でも代用可能である。
　（実施例１：トランス脂肪酸含有油脂を資化・分解し得る微生物の同定）
　油脂含有排水が流出する食品工場近傍の河川から試料を採取し、そこから微生物を分離した。分離した微生物について、低温環境下（１５℃）で培養可能かどうかを調べるために、キャノーラ油を唯一の炭素源として含む寒天培地上に各微生物を画線植菌して、１５℃で５日間培養した。その結果、油脂を栄養源とする低温で培養可能な微生物が見出された。
　また、各微生物の低温（１５℃）における油脂分解能を調べた。各微生物のコロニーを、１０ｇ／Ｌのキャノーラ油を唯一の炭素源として含む２０ｍＬの無機塩培地に、爪楊枝を使って植菌し、１００ｍＬ三角フラスコ中で培養した。その結果、低温で油脂を分解、資化して増殖する微生物が見出された。
　次に、各微生物のトランス脂肪酸の分解・資化能を調べた。唯一の炭素源としてエライジン酸を０．２％の終濃度で添加した２ｍＬの無機塩培地に、終濃度ＯＤ６６０＝０．０４となるように各微生物を植菌した。１５ｍＬのハーモニー遠沈管（エルエムエス、東京）中、２８℃、１３０ｒｐｍで２４時間培養を行った。その結果、トランス脂肪酸であるエライジン酸を分解、資化して増殖可能な微生物が見出された。
　これらの試験により、分離したある微生物株は、油脂を栄養源とする低温環境下で培養可能であり、低温で油脂を資化（分解）することができ、トランス脂肪酸を分解・資化することが見出され、この株をＫＨ－１と命名した。
　ＫＨ－１をさらに特徴付けるために１６Ｓ　ｒＤＮＡの遺伝子配列解析を行った。その結果、ＫＨ－１はＢurkholderia　arborisであると同定された。また、以前に分離された同種細菌株とＲＡＳＴ（Rapid　Annotation　using　Subsystem　Technology、http://rast.nmpdr.org）により全ゲノム配列解析を比較した結果、ゲノムサイズに違いがあり、数十か所に欠損・挿入を伴う変異が認められた。また、CLC　Genomics　server　9.0を使用したSNPs/INDELs解析からも数百か所にバリアントが検出され、以上の結果からＫＨ－１は、Ｂurkholderia　arborisの新規株であることが判明した。
　ここでは、ＫＨ－１に注目して解析を行ったが、同様の試験により油脂および／または脂肪酸分解能を調べることによって他の株の油脂および／または脂肪酸分解能も特定することができる。
　Burkholderia　arboris　ＫＨ－１株を、キャノーラ油（日清キャノーラ油、日清オイリオ、東京）を唯一の炭素源として含む寒天培地上に画線植菌して、１５℃で５日間培養した。その結果を図１に示す。
　ＫＨ－１株は良好に増殖したため、ＫＨ－１株は油脂存在環境下での生存に適していると考えられる。
（実施例２：他の微生物とのトランス脂肪酸を含む油脂の分解能比較）
　トランス脂肪酸分解活性
　ＫＨ－１がトランス脂肪酸であるエライジン酸（オレイン酸のトランス体）を分解する活性をＢｉｏＲｅｍｏｖｅ３２００（ＢＲ３２００）（Novozymes、デンマーク）と比較した（図２）。
　２．５％Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００（Sigma－Aldrich）溶液に２％エライジン酸を溶解して、ストック溶液を作製した。エライジン酸は常温で固体であるため、４ｍｌのストック溶液を６５℃で加熱して、４０ｍｌの無機塩培地（Ｎａ２ＨＰＯ４　３．５ｇ／Ｌ、ＫＨ２ＰＯ４　２．０ｇ／Ｌ、（ＮＨ４）２ＳＯ４　４．０ｇ／Ｌ、ＭｇＣｌ２・６Ｈ２Ｏ　０．３４ｇ／Ｌ、ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ　２．８ｍｇ／Ｌ、ＭｎＳＯ４・５Ｈ２Ｏ　２．４ｍｇ／Ｌ、ＣｏＣｌ２・６Ｈ２Ｏ　２．４ｍｇ／Ｌ、ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ　１．７ｍｇ／Ｌ、ＣｕＣｌ２・２Ｈ２Ｏ　０．２ｍｇ／Ｌ、ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ　０．３ｍｇ／Ｌ、およびＮａＭｏＯ４　０．２５ｍｇ／Ｌ）に添加した後、オートクレーブにかけた。Ｔｒｉｔｏｎ　Ｘ－１００及びエライジン酸の終濃度は、それぞれ０．２５％と０．２％であった。ＬＢ培地にて一晩培養したＫＨ－１をＰＢＳ培地で２回洗浄した後、ＭＸ－１００　微量高速遠心機（トミー精工、東京）を用いて濃縮し、終濃度ＯＤ６６０＝０．０４（HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京））となるように上記培地に植菌した。ＢＲ３２００は、基剤と共に１ｇを計り取り１００ｍｌの蒸留水に懸濁した後、３０分間攪拌を行い、ＫＨ－１と初期接種濃度が同じとなるように植菌した（各菌の終濃度を４ｘ１０５細胞／ｍｌに統一した）。２８℃、１３０ｒｐｍで２４時間培養を行った。サンプルはＴＬＣ（図２Ａ）および油分測定試薬キット（共立理化学研究所、東京）（ポリニッパム抽出物質測定法による測定試薬キット）（図２Ｂ）を使用して解析した。その結果、ＫＨ－１は０．２％のエライジン酸を２４時間で殆ど完全に分解・資化することが見出された（少なくとも２００ｍｇ／Ｌ（０．０２％）以下の濃度に低減した）。他方、ＢＲ３２００では、エライジン酸が残留した。
（実施例３：トランス脂肪酸含有油脂の分解能比較）
　微生物のトランス脂肪酸含有油脂分解能
　終濃度０．１％となるようにトリエライジンを添加したＴＢＳ緩衝液（２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ、１５０ｍＭ　ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）に、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０４となるようにＫＨ－１株を植菌した。これをファルコンチューブ（１３０ｒｐｍ、２８℃）で培養し、５日後にサンプルを採取した。サンプルはＴＬＣ（シリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：２）溶液で展開後、モリブトリン酸ｎ水和物（６０ｍｌエタノール中２．４ｇ））で可視化した（図３Ａ）。対照として、ＴＢＳ緩衝液のみを添加した場合のデータも示す。
　この結果から、ＫＨ－１はトランス脂肪酸含有油脂を分解・資化し、さらにトランス脂肪酸も分解・資化する能力を有することが確認された。
　微生物培養上清のトランス脂肪酸含有油脂分解能
　同様に、１．５ｍＬマイクロチューブ（ワトソン、東京）に、上記のＫＨ－１株培養上清（推定リパーゼ濃度；５０ｕ／ｍｌ）、またはＴＢＳ緩衝液（ｐＨ７．０）の１ｍＬと、０．０５ｍＬのトリエライジンストック溶液（２％トリエライジン、５％トリトンＸ－１００水溶液）とを添加し、トリエライジンの終濃度が０．１％となるように反応溶液を調製した。これを１３０ｒｐｍ、２８℃で２４時間インキュベートすることでサンプルを得た。サンプルを等量のクロロホルムで抽出し、５μｌをＴＬＣに供した。サンプルはＴＬＣ（シリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：２）溶液で展開後、モリブトリン酸ｎ水和物（６０ｍｌエタノール中２．４ｇ）で可視化した（図３Ｂ）。
　この結果から、ＫＨ－１の上清を使用しても、トランス脂肪酸含有油脂（トリエライジン）をトランス脂肪酸（エライジン酸）に分解することが可能であることが確認された。
　実排水を使用して、ＫＨ－１とＢＲ３２００との油脂分解能を比較した（図４）。
　水素添加油脂を使用している食品工場からのトランス脂肪酸含有油脂を多く含む廃水サンプルに無機塩培地相当の窒素分（硫酸アンモニウム）とリンを添加して培養した。ＫＨ－１はＬＢ培地にて培養し、ＰＢＳ培地で２回洗浄した後、１×１０６細胞／ｍｌで植菌し、ＢＲ３２００はメーカー推奨濃度の１０倍である１×１０８細胞／ｍｌで植菌した。２８℃で培養し、２４時間および４８時間後にサンプルを採取した。サンプルはＴＬＣ（シリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：１）溶液で展開後、モリブトリン酸ｎ水和物で可視化）（図４Ａ）および油分測定試薬キット（ノルマルヘキサン抽出相当、上記）（図４Ｂ）を使用して解析した。ＢＲ３２００は過剰量でも分解の進行が遅かったのに対し、ＫＨ－１は優れた分解能力を示した。
（実施例４：１５℃におけるＫＨ－１株の油脂分解能力）
　Burkholderia　arboris　ＫＨ－１を、１０ｇ／Ｌのキャノーラ油（日清キャノーラ油、日清オイリオ）を含む３Ｌの無機塩培地（上記組成）に、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０３となるように植菌した。これを５Ｌ容積ファーメンター（２５０ｒｐｍ、２００ｍｌ／ｍｉｎの空気還流下、ｐＨ７．０、１５℃）で培養し、経時的にサンプリングを行った。サンプリングした培養液から、遠心分離により菌体を除去した。この上清におけるノルマルヘキサン値相当の油分を、油分測定試薬キット（ノルマルヘキサン抽出、上記）により測定した（図５Ａ）。
　全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との総量）をガスクロマトグラフィーにより定量した（図５Ｂ）。具体的には、培養上清３ｍｌを塩酸により酸性にし、倍量の酢酸エチルを添加した。５分間攪拌後遠心分離し、酢酸エチル層１ｍｌを耐有機溶媒チューブに移し完全に蒸発させた。メタノール：硫酸＝１７：３で混合したメタノリシス溶液を４ｍｌ添加し、１００℃で２時間加熱することにより、全脂肪酸をメチルエステル化した。クロロホルム：純水＝１：１の割合で混合した溶液を添加して十分攪拌した後、クロロホルム層と０．５％オクタン酸メチル(内部標準)を１：１で混合し、ＦＩＤ検出器を搭載したガスクロマトグラフィー（ＧＣ-１７Ａ（島津製作所、京都））により解析した。
　これらの結果から、ＫＨ－１は低温でも高い油脂分解・資化能力を有することが確認された。
（実施例４Ａ：１５℃におけるＫＨ－１株のトランス脂肪酸およびその含有油脂の資化能）
　エライジン酸またはトリエライジンを唯一の炭素源とする培地においてＫＨ－１株を培養することでＫＨ－１株の資化能を評価した。
　エライジン酸またはトリエライジンのストック溶液（２．５％トリトンＸ－１００水溶液）を添加して、エライジン酸またはトリエライジンの終濃度が０．１％となるように調製した無機塩培地（上記組成、ｐＨ７）２ｍＬに、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０８となるようにＫＨ－１株を植菌した。
　これを１５℃で５日間培養し、微生物の増殖を観察した。エライジン酸およびトリエライジン添加培地におけるそれぞれの結果を図５Ｃに示す。対照として微生物を添加しなかった場合の結果も示す。
　ＫＨ－１株を植菌した試料では、培地が濁っていることが観察され、このことから、ＫＨ－１株は、１５℃でもエライジン酸またはトリエライジンを唯一の炭素源とする環境下で増殖可能であり、これらの化合物を資化する能力があることが示された。
（実施例５：２８℃におけるＫＨ－１株の油脂分解能力）
　上記と同様に、２８℃培養におけるＫＨ－１の油脂分解能についても同様に評価した（図６）。
　薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によって培養液中の残存油分を解析した（図６Ａ）。具体的には、サンプル上清３ｍｌに等量の酢酸エチルを加えて、５分間攪拌した。酢酸エチル層を分離し完全に溶媒を蒸発させた後、クロロホルム３００μＬに溶解した。この混合物３μｌをシリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン（９６：４）溶液で展開した。展開後、４％（ｗ／ｖ）１２モリブド（ＩＶ）リン酸エタノール溶液を噴霧し、１１０℃で１２分加熱することで油脂と遊離脂肪酸を可視化し、培地中に残存する油脂及びその分解産物である脂肪酸量を比較した。微生物が分泌したリパーゼによりトリグリセリドが分解された結果、加水分解産物である遊離脂肪酸が検出された（２４ｈ）。この脂肪酸も、時間が経過するにつれ分解された。ＫＨ－１は４８ｈで遊離脂肪酸を完全に消失させた。
　実施例４と同様に、２８℃においても全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との総量）をガスクロマトグラフィーにより定量した（図６Ｂ）。実施例４と同様に、２８℃においても油分測定試薬キットで残留油脂を測定した（図６Ｃ）。
　ＫＨ－１は２８℃においても良好な油脂分解能を保持していた。
（実施例６：種々のトランス脂肪酸の分解能）
　ＫＨ－１がトランス脂肪酸であるパルミテライジン酸（１６：１）およびバクセン酸（１８：１）を分解する活性をＢｉｏＲｅｍｏｖｅ３２００（ＢＲ３２００）（Novozymes、デンマーク）と比較した。
　ＫＨ－１およびＢＲ３２００を、それぞれ、パルミテライジン酸またはバクセン酸の終濃度が０．２％かつＴｒｉｔｏｎ　Ｘ１００の終濃度が０．２５％となるように調製した無機塩培地（上記組成、ｐＨ７）５ｍLに、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０５となるようにＫＨ－１を植菌し、ＯＤ６６０＝０．０５に相当する約５×１０６ＣＦＵ／ｇとなるようにＢＲ３２００を植菌した。これを１３０ｒｐｍで振盪しながら１５℃で４８時間または７２時間、あるいは２８℃で２４時間培養した後、それぞれの株の培養上清を取得した。微生物を使用しなかった対照試料も用意した。
　その後、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によって培養液中の残存油分を解析した。具体的には、サンプルの２分の１の量のクロロホルムで脂肪酸を抽出し、抽出液６μｌをシリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：２）溶液で展開した。展開後、実施例５と同様に１２モリブド（ＩＶ）リン酸エタノール溶液で脂肪酸を可視化し、培地中に残存する脂肪酸量を比較した（図８、９）。
　ＫＨ－１は、２８℃では２４時間以内に、１５℃では７２時間以内に、パルミテライジン酸およびバクセン酸を完全に分解可能であった。他方、ＢＲ３２００には、これら脂肪酸の分解能力はなかった。このように、本開示の微生物は、種々のトランス脂肪酸を分解可能であり得る。
（実施例７：ＫＨ－１株と洗剤との比較）
　油汚れのついた換気扇フィルターを、ＫＨ－１の培養上清（培養条件：１％キャノーラオイル添加無機塩培地（上記組成）、初期濃度ＯＤ６６０＝０．０１になるよう接種、２８℃、２４時間培養。培養後、遠心分離して菌体を除去した上清を使用した）、油用洗剤（天然酵素洗剤ニコエコ台所用（ニコエコ、長野）説明書に従って１４３倍に水で希釈）、一般洗剤（ファミリー（登録商標）（花王、東京）、説明書に従い、６６６倍に希釈）に室温（２５℃）で漬け置き洗いした（図７）。一般洗剤と油用洗剤では４時間の浸漬洗浄でも油汚れを完全に落とすことはできなかったが、ＫＨ－１は１時間の浸漬洗浄で新品のようにフィルターは真っ白になった。
（実施例８：別種株の取得）
　油脂含有排水が流出する食品工場近傍の河川から試料を採取し、そこから微生物を分離した。分離した微生物について、低温環境下（１５℃）でトランス脂肪酸またはトランス脂肪酸含有油脂を分解可能か調べた。その結果、低温でトランス脂肪酸およびトランス脂肪酸含有油脂を分解することができる微生物が見出された。これらの微生物株を、それぞれ、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３と命名した。
　ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３をさらに特徴付けるために１６Ｓ　ｒＤＮＡの遺伝子配列解析を行った。
　ＫＨ－１ＡＬ１は、１６ｒＤＮＡの部分塩基配列がBurkholderia　ambifariaに相同率１００％で一致したため、Burkholderia　ambifariaと同定された。
　ＫＨ－１ＡＬ２は、１６ｒＤＮＡの部分塩基配列がBurkholderia　contaminansに相同率９９．９％で一致し、分子系統樹上ではB.　seminalis、B.　territorii、B.　cepacia（それぞれ、１６ｒＤＮＡの部分塩基配列における相同性は９９．７％、９９．７％、９９．８％）と同じ群に分類された。その結果、ＫＨ－１ＡＬ２は、Burkholderia　cepacia　complexの細菌であると同定された。
　ＫＨ－１ＡＬ３は、１６ｒＤＮＡの部分塩基配列がBurkholderia　contaminansに相同率９９．９％で一致し、分子系統樹上ではB.　seminalis、B.　territorii、B.　cepacia（それぞれ、１６ｒＤＮＡの部分塩基配列における相同性は９９．７％、９９．７％、９９．８％）と同じ群に分類された。その結果、ＫＨ－１ＡＬ３は、Burkholderia　cepacia　complexの細菌であると同定された。
　Burkholderia　cepacia　complexとは、遺伝子的に非常に近いBurkholderia属の微生物の分類であり、ambifaria、anthina、arboris、cenocepacia、cepacia、contaminans、diffusa、dolosa、lata、latens、metallica、multivorans、pseudomultivorans、puraquae、pyrrocinia、seminalis、stabilis、stagnalis、territorii、ubonensis、およびvietnamiensisが含まれる（Martina　Pら、Int　J　Syst　Evol　Microbiol.　2018　Jan;68(1):14-20.）。
　分析の結果、Burkholderia　cepacia　complexに属する種々の細菌が、高い油脂および/または脂肪酸分解能力を示したため、Burkholderia　cepacia　complexに属する細菌は、特に有用に利用できると期待される。
（実施例９：１５℃におけるさらなる３株の油脂分解能力）
　ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３を、それぞれ、ＬＢ培地で前培養した後、ＰＢＳ中での２５℃、３０００ｇ、１０分間の遠心分離を２回繰り返し、洗浄して、それぞれの菌株のサンプルを調製した。
　これら３種の菌株サンプルを、１％のキャノーラ油（日清キャノーラ油、日清オイリオ）を含むｐＨ７の無機塩培地（上記組成）に、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０２となるように植菌した。これを１５℃で９６時間培養し、経時的にサンプリングを行った。サンプリングした培養液から、遠心分離により菌体を除去した。これら３種の菌株の各上清について、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）による培養液中の残存油分の解析、全脂肪酸（トリグリセリド中の脂肪酸と遊離脂肪酸との総量）のガスクロマトグラフィーによる定量、およびノルマルヘキサン値相当の油分の油分測定試薬キットによる測定を、上記実施例と同様の手順に従って実施した。
　結果を図１０～１２に示す。これらの結果から、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３は低温でも油脂を効率よく分解・資化できることが確認された。
（実施例１０Ａ：培養上清によるトランス脂肪酸含有油脂の２８℃分解能の株間比較）
　ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３を、それぞれ、トリエライジンの終濃度が０．２％となるように調製した無機塩培地（上記組成、ｐＨ７）に、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０８となるように植菌した。これを２８℃で６日間培養した後、それぞれの株の培養上清を取得した。微生物を使用しなかった対照試料も用意した。
　それぞれの株から取得した培養上清を孔径０．４５μｍの酢酸セルロースメンブレンフィルター（ＡＤＶＡＮＴＥＣ、東京）でろ過後、トリエライジンおよびＴｒｉｔｏｎ　Ｘ１００を終濃度がそれぞれ０．４％および０．５％となるように添加し、１３０ｒｐｍで振盪しながら３７℃で２４時間インキュベートした。
　その後、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によって培養液中の残存油分を解析した。具体的には、サンプルの２分の１の量のクロロホルムで油脂および遊離脂肪酸を抽出し、抽出液５μｌをシリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：２）溶液で展開した。展開後、実施例５と同様に１２モリブド（ＩＶ）リン酸エタノール溶液で油脂と遊離脂肪酸を可視化し、培地中に残存する油脂及びその分解産物である脂肪酸量を比較した（図１３）。
　その結果、ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３の培養上清は、トランス脂肪酸含有油脂を効率よく分解できることが確認された。この結果は、これらの株によってリパーゼが分泌されたためであると考えることができ、これらの微生物自体であっても、その培養上清であってもトランス脂肪酸含有油脂の分解に有用に使用され得ることが示唆された。
（実施例１０Ｂ：２８℃におけるトランス脂肪酸の資化・分解能の株間比較）
　ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３を、それぞれ、エライジン酸の終濃度が０．２％かつＴｒｉｔｏｎ　Ｘ１００の終濃度が０．２５％となるように調製した無機塩培地（上記組成、ｐＨ７）に、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０４となるように植菌した。これを１３０ｒｐｍで振盪しながら２８℃で２０時間培養した後、それぞれの株の培養上清を取得した。微生物を使用しなかった対照試料も用意した。
　その後、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によって培養液中の残存油分を解析した。具体的には、サンプルの２分の１の量のクロロホルムで脂肪酸を抽出し、抽出液５μｌをシリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：２）溶液で展開した。展開後、実施例５と同様に１２モリブド（ＩＶ）リン酸エタノール溶液で遊離脂肪酸を可視化し、培地中に残存する脂肪酸量を比較した（図１４左）。また、実施例４と同様の手順でノルマルヘキサン値相当の残留油分を、油分測定試薬キットにより測定した（図１４右）。
　その結果、ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３は、トランス脂肪酸を効率よく分解できることが確認され、これらの株がいずれもトランス脂肪酸を含む油の除去に有用であることが示唆された。実施例１０Ａの結果と併せて考えると、これら微生物によってトランス脂肪酸含有油脂（例えば、トリエライジン）が完全に分解され得ると予測される。
（実施例１０Ｃ：１５℃におけるトランス脂肪酸の資化・分解能の株間比較）
　ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３を、それぞれ、エライジン酸の終濃度が０．２％かつＴｒｉｔｏｎ　Ｘ１００の終濃度が０．２５％となるように調製した無機塩培地（上記組成、ｐＨ７）に、HITACHI　U-2810分光光度計（日立製作所、東京）を使用して、菌体光学密度による最終濃度がＯＤ６６０＝０．０８となるように植菌した。これを１３０ｒｐｍで振盪しながら１５℃で７２時間培養した後、それぞれの株の培養上清を取得した。微生物を使用しなかった対照試料も用意した。
　その後、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）によって培養液中の残存油分を解析した。具体的には、サンプルの２分の１の量のクロロホルムで遊離脂肪酸を抽出し、抽出液５μｌをシリカゲルプレートにアプライし、クロロホルム：アセトン：メタノール（９６：４：２）溶液で展開した。展開後、実施例５と同様に１２モリブド（ＩＶ）リン酸エタノール溶液で遊離脂肪酸を可視化し、培地中に残存する脂肪酸量を比較した（図１５左）。また、実施例４と同様の手順でノルマルヘキサン値相当の残留油分を、油分測定試薬キットにより測定した（図１５右）。
　その結果、ＫＨ－１、ＫＨ－１ＡＬ１、ＫＨ－１ＡＬ２、およびＫＨ－１ＡＬ３は、トランス脂肪酸を効率よく分解できることが確認され、これらの株がいずれもトランス脂肪酸を含む油の除去に有用であることが示唆された。実施例１０Ａの結果と併せて考えると、これら微生物によってトランス脂肪酸含有油脂（例えば、トリエライジン）が完全に分解され得ると予測される。
（実施例１１：生ゴミ処理への適用）
　消滅型生ゴミ処理機にＫＨ－１を１．２×１０７細胞／ｍＬとなるように植菌し、３０℃で２４時間処理した。生ゴミ処理機から出る排水中のノルマルヘキサン値を測定した。ＫＨ－１を投入しない対照例（３．２６ｇ／Ｌ）と比較して有意差のあるノルマルヘキサン値の低減（２．２２ｇ／Ｌ）が認められた。ここで、消滅型生ゴミ処理機中の生ゴミは、レストランの厨房から出た生ゴミから骨および貝殻を除いたものであった。消滅型生ゴミ処理機の生ごみ処理能力は２０ｋｇ／日であり、注水・排水量は３８．４Ｌ／日であった。
（実施例１２：装置内での使用）
　１０ｍＬ／Ｌのキャノーラ油を含む無機塩培地でＫＨ－１を２×１０１０細胞／ｍＬまで培養し、培養原液とする。これを１０倍希釈して微生物製剤（２×１０９細胞／ｍＬ）とする。これを自動増幅投入装置の微生物保存タンク中に冷蔵保存し、種菌とする。この種菌を、同装置の培養増幅槽中の無機塩培地中に、毎日１／１００量ずつ自動植菌し、微生物数が１００倍、すなわち微生物製剤と同じ細胞濃度になるまで培養する。これを油分解処理槽の排水量の１／１０００投入することで、油処理水中の分解菌の微生物濃度を２×１０６細胞／ｍＬとし、２４時間、トランス脂肪酸含有油脂を多く含む排水を排出する食品工場からの排水を分解処理する。この時の季節は冬で、処理中の水温は１２～１７℃の間で変動する。
　その結果、微生物を投入しない対照例と比較して顕著なノルマルヘキサン値の低減が観察される。
（実施例１３：他の実施形態）
　グリーストラップに木炭、各種プラスチック、セラミックス片などの担体を投入し、適量（例えば、１×１０６細胞／ｍＬ）のＫＨ－１を毎日、食堂の操業終了後に自動投入する。毎日、操業開始直前に採水し、ノルマルヘキサン値を分析する。１週間後には、ＫＨ－１を投入しない対照例と比較して顕著なノルマルヘキサン値の低下が認められる他、グリーストラップ自体の見た目も、油の付着や浮遊が減るなどの効果が認められる。
　（注記）
　以上のように、本開示の好ましい実施形態を用いて本開示を例示してきたが、本開示は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願及び他の文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。
　本開示は、油脂分解能を有する微生物およびこれを含む組成物を提供し、このような微生物または組成物を使用することで、油脂を多く含む食品工場排水などによる環境負荷を低減させることができる。
　ＫＨ－１株（ＮＩＴＥ　ＢＰ－０２７３１）
　ＫＨ－１ＡＬ１株（ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７７）
　ＫＨ－１ＡＬ２株（ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７８）
　ＫＨ－１ＡＬ３株（ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７９）

Claims (14)

  1. トランス脂肪酸含有油脂を資化する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
  2. トランス脂肪酸を資化する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
  3. トランス脂肪酸を分解する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
  4. トランス脂肪酸含有油脂を分解する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
  5. １５℃において油脂を分解する能力を有する、ブルクホルデリア科細菌。
  6. 前記資化または分解する能力が１５℃において保持される、請求項１～４のいずれか一項に記載のブルクホルデリア科細菌。
  7. ブルクホルデリア属の細菌である、請求項１～６のいずれか一項に記載の菌。
  8. ブルクホルデリア　アルボリス（Burkholderia　arboris）、ブルクホルデリア　アンビファリア（Burkholderia　ambifaria）、またはBurkholderia　cepacia　complexに属する微生物である、請求項１～７のいずれか一項に記載の菌。
  9. ブルクホルデリア属細菌ＫＨ－１株（受託番号ＮＩＴＥ　ＢＰ－０２７３１で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ１株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７７で特定される菌株）、ＫＨ－１ＡＬ２株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７８で特定される菌株）もしくはＫＨ－１ＡＬ３株（受領番号ＮＩＴＥ　ＡＢＰ－０２９７９で特定される菌株）であるか、またはその誘導株であって該誘導株は、請求項１～７のいずれか一項または複数に記載の細菌の特徴を有する、請求項１～８のいずれか一項に記載の細菌。
  10. 請求項１～９のいずれか一項に記載の細菌を含む、油分解剤。
  11. さらなる油処理成分を含む、請求項１０に記載の油分解剤。
  12. 請求項１～９のいずれか一項に記載の細菌もしくは請求項１０に記載の油分解剤と、さらなる油処理成分とを備える、油分解のためのキット。
  13. 請求項１～９のいずれか一項に記載の細菌、または請求項１０もしくは１１に記載の油分解剤を処理対象に作用させることを包含する、油分解除去方法。
  14. 前記処理対象はトランス脂肪酸またはトランス脂肪酸含有油脂を含む、請求項１３に記載の方法。
     
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