WO2020008988A1 - タンパク質の製造方法 - Google Patents

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望 柴田
俊陽 新井
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    • C12R2001/885—Trichoderma

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a protein using a microorganism.
  • Filamentous fungi are attracting attention as plant polysaccharide-degrading bacteria because they produce various cellulases and xylanases.
  • Trichoderma has been studied as a microorganism for producing a cellulase-based biomass-degrading enzyme because it can produce cellulase and xylanase simultaneously and in large quantities.
  • proteins such as enzymes by microorganisms may require an inducer in addition to a carbon source.
  • an inducer in addition to a carbon source.
  • the expression of the alpha amylase gene of Aspergillus oryzae is induced in starch, maltose and the like.
  • the expression of the major cellulase genes cbh1, cbh2, egl1 and egl2 of Trichoderma is induced by cellulose, cellobiose and the like (Non-Patent Document 2).
  • Starch, maltose, cellulose, cellobiose can also be used as a carbon source in the culture.
  • microcrystalline cellulose such as Avicel is generally used.
  • Patent Document 3 discloses a method for producing cellulase by a microorganism using lignocellulose as an inducer instead of pure cellulose.
  • cellulase is produced by culturing Trichoderma in a medium containing a cellulosic material while feeding glucose as a carbon source and phosphoric acid or aqueous ammonia as a pH adjuster.
  • Non-Patent Document 3 discloses that amino acids were produced by Corynebacterium while repeatedly or continuously feeding saccharides to a medium.
  • Patent Literature 4 and Non-Patent Literature 4 describe that a mixed solution of glucose and ammonia was fed to a culture, and a lysine was fermented and produced by adding a carbon source and a nitrogen source while controlling the pH value. Has increased the productivity of lysine.
  • Glycosylamine is a monosaccharide derivative in which the hydroxyl group at the C-1 position has been substituted with an amino group, and is often synthesized and used as an intermediate of various sugar derivatives. It has been reported that ⁇ -D-glycosylamine acts as an inhibitor of ⁇ -glycosidase (Non-Patent Document 5). Non-Patent Document 6 describes that ⁇ -D-glucosylamine is produced by a reaction between glucose and ammonia. Non-Patent Document 7 describes that various D-glucose derivatives including ⁇ -D-glucopyranosylamine could be used as a carbon source for mycelial growth of Candida albicans. (Patent Document 1) Japanese Patent Application Laid-Open No.
  • Patent Document 2 Japanese Patent Publication No. 11-512930 (Patent Document 3) US Patent Publication No. 2008/0199908 (Patent Document 4) Chinese Patent Registration No. 101967501 No. 1 (Non-Patent Document 1) Appl. Environ. Microbiol., 63: 1298-1306 (1997) (Non-Patent Document 2) Curr. Genomics, 14: 230-249 (2013) (Non-Patent Document 3) Journal of Biotechnology, 104: 155-172 (2003) (Non-Patent Document 4) The Chinese Journal of Process Engineering, 11 (3): 492-496 (2011) (Non-Patent Document 5) Adv. Carbohydr. Chem. Biochem., 48: 319-384 (1990). (Non-Patent Document 6) Journal of the Japanese Society of Agricultural Chemistry, 36: 305-310 (1962) (Non-Patent Document 7) Journal of Basic Microbiology, 23 (5): 303-312 (1983)
  • the present invention provides a method for producing a protein, comprising culturing a microorganism in the presence of glycosylamine.
  • the relative protein production of the culture indicates a relative value on the second, third, or fourth day of the culture day when the protein production amount on the third day of culture in Comparative Example 1 is 100%.
  • the relative protein production of the culture indicates a relative value when the protein production on the third day of culture in Comparative Example 1 is 100%.
  • upstream and downstream refer to upstream and downstream in the transcription direction of the gene.
  • a gene located downstream of the promoter means that the gene is present 3 ′ to the promoter in the DNA sense strand
  • upstream of the gene means 5 ′ of the gene in the DNA sense strand. Side area.
  • operably linking between a promoter and a gene means that the promoter is linked so as to induce transcription of the gene. Procedures for "operably linking" a promoter and a gene are well known to those skilled in the art.
  • promoter activity refers to an activity that promotes the expression of a gene located downstream thereof, and more specifically, an activity that promotes transcription of a gene located downstream from DNA to mRNA.
  • the term “original” used for the function, property, or trait of a cell is used to indicate that the function, property, or trait originally exists in the cell.
  • the term “foreign” is used to describe a function, property, or trait that is not originally present in the cell but is introduced from outside.
  • a “foreign” gene or polynucleotide is a gene or polynucleotide that has been introduced into a cell from outside.
  • the foreign gene or polynucleotide may be from the same organism as the cell into which it has been introduced, or may be from a different organism (ie, a heterologous gene or polynucleotide).
  • amino acid sequence or nucleotide sequence refers to 90% or more, preferably 95% or more, more preferably 96% or more, even more preferably 97% or more, and even more preferably. Refers to identity of 98% or more, more preferably 99% or more.
  • the identity of the nucleotide sequence and the amino acid sequence is calculated by the Lipman-Pearson method (Science, 1985, 227: 1435-1441). Specifically, it is calculated by performing analysis by setting Unit @ size @ to @ compare (ktup) to 2 using a homology analysis (Search @ homology) program of genetic information processing software Genetyx-Win.
  • the present inventors have found that culturing microorganisms in the presence of glycosylamine improves the productivity of proteins such as enzymes by the microorganisms.
  • the productivity of a protein by a microorganism can be improved by a simple procedure.
  • the method for producing a protein according to the present invention includes culturing a microorganism in the presence of glycosylamine.
  • glycosylamine used in the present invention include ⁇ -D-glucopyranosylamine (CAS No. 7284-37-9), ⁇ -D-mannopyranosylamine (CAS No. 7388-99-0), ⁇ -D-galactopyranosylamine (CAS No. 74867-91-7) and the like, and any one or a combination of two or more of them can be used.
  • the glycosylamine used in the present invention is ⁇ -D-glucopyranosylamine, which is a compound in which the hydroxyl group at the C-1 position of ⁇ -D-glucose is substituted with an amino group.
  • Glycosylamines are commercially available or Org. Chem, 1958, 23 (9): 1309-1319.
  • the microorganism is cultured in a medium containing glycosylamine.
  • glycosylamine is added to the initial culture medium, and the microorganism is cultured using the culture medium.
  • the amount of glycosylamine to be added to the initial medium is preferably 50 g or less, more preferably 30 g or less, further preferably 0.5 to 20 g, and still more preferably 1 to 10 g, per liter of the initial medium.
  • glycosylamine is fed into a culture of a microorganism.
  • the feed rate of glycosylamine to the culture is preferably 5 g / hr or less, more preferably 4 g / hr or less, more preferably 0.005 to 4 g / hr, and still more preferably 0.1 g / hr or less, per 1 L of the initial medium. 01 to 3 g / hr.
  • the addition of glycosylamine to the above-mentioned initial medium and the feeding of glycosylamine to the culture may be combined.
  • the initial medium is adjusted so that the content of glycosylamine in the culture is preferably 0.5 to 50 g, more preferably 0.5 to 20 g, and still more preferably 1 to 10 g per liter of the culture. It is preferable to adjust the amount of glycosylamine to be added to and the amount of glycosylamine fed.
  • the fed-batch may be intermittent or the flow acceleration may be varied. Fed-batch conditions are set in consideration of protein productivity.
  • glycosylamine when glycosylamine is fed to a culture of a microorganism, it is preferable that an aqueous solution containing glycosylamine is fed to the culture.
  • the content of glucosylamine in the aqueous solution is preferably 2 to 90% by mass, more preferably 2 to 50% by mass. If the amount of glycosylamine in the aqueous solution is too small, a large amount of the aqueous solution will be added to the culture, which will burden the culture equipment. On the other hand, if the amount of glycosylamine in the aqueous solution is too large, it becomes difficult to control the amount of the aqueous solution fed to the culture.
  • the aqueous solution containing glycosylamine may be an aqueous solution in which glycosylamine is directly added to water and dissolved therein, or a mixture of glucose and ammonia (including glucosylamine generated by the reaction of glucose and ammonia. , Non-Patent Document 6).
  • the method of the invention may include culturing the microorganism while feeding a mixture of glucose and ammonia.
  • the mixture of glucose and ammonia is a liquid mixture prepared by mixing glucose and ammonia.
  • the mixture is a mixture of glucose, ammonia, and their solvent (eg, water).
  • the mixture is a mixture prepared by mixing glucose or an aqueous solution thereof, ammonia, a salt thereof or an aqueous solution thereof, and optionally water. More preferably, the mixture is a mixture obtained by mixing glucose, an aqueous ammonia solution, and, if necessary, water.
  • glucose and ammonia are preferably mixed at a mass ratio of preferably 0.5 to 10: 1, more preferably 2 to 8: 1. If the ratio of glucose is too high, the cells tend to shift from an enzyme producing state to a growing state, and the enzyme productivity tends to decrease, while if the ratio of glucose is too low, the carbon source becomes insufficient, and as a result, the enzyme becomes insufficient. Productivity cannot be improved.
  • the amount of glucose added is preferably adjusted to 2 to 90 g, more preferably 5 to 80 g, per 100 mL of the obtained mixture. If the amount of glucose added to the mixture is too small, a large amount of the mixture will be fed to the culture in order to achieve the above-mentioned amount of glycosylamine fed, which will burden the culture equipment. On the other hand, if the amount of glucose added to the mixture is too large, it becomes difficult to control the amount of the mixture fed to the culture.
  • the mixture may be prepared by mixing an appropriate amount of glucose with an aqueous ammonia solution so as to achieve the above-described glucose: ammonia ratio and / or glucose addition amount, or any amount. After mixing glucose and an aqueous ammonia solution, the resulting aqueous solution may be appropriately diluted with water so as to achieve the above-mentioned glucose: ammonia ratio and / or the amount of added glucose.
  • the feed rate of the mixture with respect to the culture may be an amount that can achieve the above-described range of the feed rate of glycosylamine.
  • the amount of glucose added to the mixture per 1 L of the initial medium (medium not containing the mixture to be fed) is preferably 8 g / hr or less, more preferably 6 g / hr or less, Preferably it is 0.05 to 8 g / hr, more preferably 0.1 to 6 g / hr.
  • Catabolite suppression may occur when the glucose feed rate is high.
  • the feed rate of the mixture (total) to the culture may be appropriately adjusted according to the glucose or ammonia content, the pH of the culture described below, and is not particularly limited.
  • the feed rate of the mixture (total) per 1 L of the initial medium may be adjusted to about 0.1 to 10 g / hr, preferably about 0.3 to 8 g / hr.
  • the pH of the culture is adjusted by feeding the mixture of glucose and ammonia.
  • the amount and timing of the feed of the mixture depend on the pH of the culture fed with the mixture.
  • an initial medium having a predetermined pH is prepared by a usual procedure, and then the mixture of glucose and ammonia is fed while the fed culture keeps the predetermined pH. Is cultured.
  • the measurement of the pH of the culture and the control of the feed rate based on the pH value can be performed using a commercially available jar fermenter or the like.
  • the pH of the culture can be set to an appropriate value according to the type of microorganism and the type of protein to be produced.
  • the pH of the culture is preferably maintained at pH 3 to 7, more preferably at pH 3.5 to 6.
  • the pH of the culture can generally be measured with electrodes provided on the jar fermenter.
  • the pH of the culture in the present invention is a pH sensor of F-635 Autoclavable pH Electrode (Broadley-James Corp) or 405-DPAS-SC-K8S pH sensor (METTLER TOLEDO) at a culture temperature of 28 ° C. Refers to the value measured using
  • the pH of the aqueous solution containing the glycosylamine is preferably 25 ° C., preferably alkaline, more preferably pH 8 or higher, still more preferably pH 9 or higher, even more preferably pH 10 or higher, and preferably Is pH 13 or less.
  • the pH of the mixture of glucose and ammonia is 25 ° C., preferably alkaline, more preferably pH 8 or more, and still more preferably pH 9 or more. , More preferably pH 10 or higher, and preferably pH 13 or lower.
  • a pH adjuster such as an alkali agent (ammonia or the like) as necessary.
  • the pH of the aqueous solution containing glycosylamine can be measured using a general pH meter.
  • a pH meter HORIBA Ltd. made by pH / ion meter F-52, etc.
  • a pH measuring composite electrode HORIBA Ltd. made by glass rubbing sleeve type, etc.
  • a saturated potassium chloride aqueous solution (3.33 mol / L) is used as the pH electrode internal solution. The measurement is performed at 25 ° C.
  • the aqueous solution containing the glycosylamine may further contain other substances that can be usually added to the culture medium of the microorganism.
  • examples of such other substances include organic salts, inorganic salts, pH adjusters, carbon sources and nitrogen sources other than glycosylamine, surfactants, defoamers, and the like.
  • glucose is preferable to use as a carbon source, and to use ammonia as a nitrogen source.
  • Ammonia can also be used as a pH adjuster.
  • One or more selected from glucose and ammonia may be partially or entirely contained in the initial medium, or may be fed.
  • the flow rate of the aqueous solution containing the same is such that the total feed rate of glycosylamine, glucose and ammonia does not exceed the feed rate of glycosylamine described above.
  • the total amount of glucose, ammonia and glycosylamine in the initial medium and the culture does not exceed the above-mentioned content of glycosylamine in the initial medium and the culture.
  • the mixture of glucose and ammonia described above may further contain other substances that can be usually added to the culture medium of the microorganism.
  • other substances preferably those that do not impair the pH adjusting function of the mixture, such as organic salts, inorganic salts, other pH adjusting agents, carbon and nitrogen sources other than glucose and ammonia, surfactants, Defoamers and the like.
  • the initial medium used for culturing the microorganism may be any medium that is usually used for culturing the microorganism.
  • the initial medium is generally used as a medium for microorganisms such as carbon sources, nitrogen sources, metal salts such as magnesium salts and zinc salts, sulfates, phosphates, pH adjusters, surfactants, and antifoaming agents.
  • Various contained components can be contained.
  • the component composition in the medium can be appropriately selected.
  • the initial medium may be any of a synthetic medium, a natural medium, a semi-synthetic medium, or a commercially available medium.
  • the initial medium is preferably a liquid medium.
  • the culturing of the microorganism in the method of the present invention is performed in the presence of an inducer of the expression of the gene encoding the protein of interest.
  • the productivity of the target protein can be further increased.
  • the culture of the microorganism may contain the inducer.
  • the inducer may be included in the initial medium, fed into the culture, or both.
  • Preferred examples of the inducer include cellulose and cellobiose, and either one or both of them can be used. Cellulose or cellobiose in culture can be consumed as a carbon source, as well as serving as inducers.
  • the concentration of cellulose or cellobiose in the culture is preferably 1 to 15% by mass / volume as the total concentration of cellulose and cellobiose.
  • the concentration of cellulose or cellobiose in the initial medium is preferably 1 to 15% by mass / volume as the total concentration of cellulose and cellobiose.
  • the gene encoding the protein of interest to a promoter induced by cellulose or cellobiose, such as a promoter of a gene encoding cellulase possessed by a filamentous fungus (so-called filamentous fungal cellulase gene promoter), Cellobiose can induce gene expression of the protein of interest. Therefore, in a preferred embodiment of the method of the present invention, the culturing of the microorganism is performed in the presence of at least one selected from the group consisting of cellulose and cellobiose, and the microorganism is derived from cellulose or cellobiose.
  • a gene encoding a protein of interest is operably linked downstream of the promoter.
  • Examples of the cellulose or cellobiose-inducible promoter include a promoter of a filamentous fungal cellulase gene or a xylanase gene.
  • Examples of the promoter of the cellulase gene of the filamentous fungus include the promoter of the cellulase gene of Trichoderma sp.
  • preferred examples include the promoter of the cellulase gene of Trichoderma reesei consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 or 2.
  • Examples of the promoter of the filamentous fungal xylanase gene include a promoter of the xylanase gene of Trichoderma, and a preferred example includes a promoter of the xylanase gene of Trichoderma reesei consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3.
  • Further examples of the cellulose or cellobiose-inducible promoter include a promoter activity consisting of a nucleotide sequence having at least 90% identity to the nucleotide sequence of any of SEQ ID NOs: 1 to 3, and being induced by cellulose or cellobiose. And a polynucleotide having the formula:
  • the promoter may be a native promoter of the microorganism cultured by the method of the present invention, or may be a foreign promoter introduced into the microorganism. Ligation of these promoters and the gene encoding the target protein can be performed by a known procedure such as a restriction enzyme method or a homologous recombination method. For example, a vector or DNA fragment having a polynucleotide containing a gene encoding a target protein is introduced into a microbial cell, and the polynucleotide is incorporated into a genome downstream of a target promoter, whereby the promoter and the gene encoding the target protein are introduced. Are operably linked on the genome.
  • a vector or DNA fragment having a promoter sequence and a polynucleotide containing a gene encoding a target protein linked downstream thereof may be constructed, and the vector or fragment may be introduced into a microbial cell. If necessary, the vector or DNA fragment may further have a selection marker such as an antibiotic resistance gene, an auxotrophy-related gene, or the like.
  • the vector may be a vector such as a plasmid capable of autonomous propagation and replication outside a chromosome, or may be a vector integrated into a chromosome.
  • the preferred type of vector depends on the species of microorganism into which it is introduced.
  • preferred examples of the filamentous fungal vector include, but are not limited to, a plasmid containing AMA1 that functions as an autonomous replication factor in a microorganism of the genus Aspergillus.
  • a general transformation method for example, an electroporation method, a transformation method, a transfection method, a conjugation method, a protoplast method, a particle gun method, an Agrobacterium method, etc. Can be used.
  • the microorganism into which the desired vector or DNA fragment has been introduced can be selected using a selection marker.
  • the selection marker is an antibiotic resistance gene
  • the microorganism into which the target vector or DNA fragment has been introduced can be selected by culturing the microorganism in the antibiotic-added medium.
  • the selectable marker is an auxotrophic gene such as an amino acid synthesis-related gene or a base synthesis-related gene
  • the gene is introduced into the auxotrophic host, and then the presence or absence of the auxotrophy is used as an index, A microorganism into which a vector or a DNA fragment has been introduced can be selected.
  • the introduction of the target vector or DNA fragment can be confirmed by examining the DNA sequence of the microorganism by PCR or the like.
  • the gene encoding the target protein linked to the promoter may be linked to a secretory signal peptide. Since the expressed target protein is secreted extracellularly by linking with the secretory signal peptide, the target protein can be separated from the culture supernatant without destroying the microbial cells.
  • the secretory signal peptide include a signal peptide derived from cellobiohydrolase 1 of Trichoderma reesei, alpha amylase of Aspergillus oryzae, glucoamylase of Rhizopus oryzae, or alpha factor of Saccharomyces cerevisiae.
  • target protein produced by the method of the present invention examples include oxidoreductase (Oxidoductase), transferase (Transferase), hydrolase (Hydrolase), lyase (Lyase), isomerase (Isomerase), and synthesis. Enzymes (Ligase or Synthase), glycolytic enzymes, lactate synthase (LDH and the like), TCA cycle enzymes, and the like.
  • the target protein may be a protein originally contained in the microorganism cultured by the method of the present invention, or may be a foreign protein. Preferred examples of the target protein include enzymes involved in biomass degradation or saccharification of biomass.
  • enzymes involved in biomass degradation or saccharification include cellulase (eg, ⁇ -endoglucanase, cellobiohydrolase, ⁇ -glucosidase, etc.), hemicellulase (eg, endoxylanase, ⁇ -xylosidase, arabinofuranosidase, glucuronidase, acetyl Xylan esterase, mannanase, ⁇ -mannosidase, ferulic acid esterase, etc.), xylanase, etc., of which cellulase is preferable.
  • the enzyme involved in biomass decomposition or biomass saccharification is preferably an enzyme derived from a filamentous fungus, more preferably an enzyme derived from a genus Trichoderma.
  • Examples of microorganisms cultured by the method of the present invention include bacteria, yeasts, and filamentous fungi, of which filamentous fungi are preferred.
  • Examples of the filamentous fungi include the genus Acremonium, the genus Aspergillus, the genus Aureobasidium, the genus Bjerkandera, the genus Ceriporopsis, the genus Chrysosporium, the genus Coprinus, the genus Coriolus, the genus Coriolus, the genus Coriolus, the genus Coriolus, the genus Coriolus, and the genus Ms.
  • Neocallimastix Neurospora, Paecilomyces, Penicillium, Phanachaete, Phlebia, Piromyces, Pleurotus, Rhizopus, Schizophylla genus es, Thermoascus, Thielavia, Polypocladium, Trametes, and Trichoderma spp., among them, Acremonium (Acremonium), Aspergillus, Crisperium sp.
  • Trichoderma Trichoderma is more preferable.
  • Trichoderma genus Trichoderma reesei and its mutants are preferable. Examples of Trichoderma reesei and its mutants include Trichoderma reesei QM9414 strain and its mutants.
  • Various conditions for culturing a microorganism in the method of the present invention can be appropriately set according to a conventional method according to the species of the microorganism, the scale of the culture, and the like.
  • the pH of the culture is preferably maintained at pH 3 to 7, more preferably at pH 3.5 to 6.
  • the method for measuring the pH of the culture is as described above.
  • the protein can be recovered from the culture supernatant.
  • the protein is contained in the cells, the cells are disrupted, the fraction containing the protein is removed, and used to recover the protein.
  • the protein can be recovered by a method commonly used in the art, for example, by a gradient method, membrane separation, centrifugation, electrodialysis, use of an ion exchange resin, distillation, salting out, or a combination thereof. it can.
  • the recovered target protein may be further isolated or purified.
  • the microorganism used for producing the protein in the present invention can be used repeatedly. That is, by collecting the microbial cells separated from the culture supernatant and culturing them again in the presence of glycosylamine as described above, the target protein can be produced again.
  • the method for producing the protein of the present invention may be a batch method in which culture of microorganisms and collection of the protein accumulated in the culture and replacement of the medium are alternately performed, or some of the microorganisms and the medium may be intermittently exchanged.
  • a semi-batch or continuous method in which the culture of the microorganism and the recovery of the protein are carried out in parallel while sequentially or continuously changing over may be used.
  • a method for producing a protein comprising culturing a microorganism in the presence of glycosylamine.
  • the culture of the microorganism is preferably performed in the presence of at least one selected from the group consisting of cellulose and cellobiose.
  • the microorganism comprises a cellulose-inducible promoter or a cellobiose-inducible promoter
  • the promoter is Preferably a filamentous fungal cellulase gene promoter or a filamentous fungal xylanase gene promoter, More preferably, it is a cellulase gene promoter of Trichoderma or a promoter of a xylanase gene of Trichoderma.
  • [4] The production method according to [3], wherein a gene encoding the protein is preferably linked downstream of the promoter.
  • the protein is preferably an enzyme, preferably an enzyme involved in biomass degradation or biomass saccharification, more preferably cellulase.
  • the enzyme involved in biomass degradation or saccharification of biomass is preferably an enzyme derived from a filamentous fungus, more preferably an enzyme derived from a genus Trichoderma, further preferably a cellulase derived from a filamentous fungus, and still more preferably from a genus Trichoderma.
  • Cellulase The production method according to [4] or [5].
  • the amount of glycosylamine to be added is preferably 50 g or less, more preferably 30 g or less, further preferably 0.5 to 50 g, further preferably 0.5 to 30 g, and still more preferably 0.1 g / L of the initial medium.
  • the production method according to [7], wherein the amount is 5 to 20 g, more preferably 1 to 10 g.
  • the feed rate of the glycosylamine is preferably 5 g / hr or less, more preferably 4 g / hr or less, still more preferably 0.005 to 4 g / hr, further preferably 0.01 to 1 g / L of the initial medium.
  • the glycosylamine is added to the initial medium and fed to the culture, and the content of glycosylamine in the culture is preferably 0.5 to 50 g per liter of the culture. , More preferably 0.5 to 20 g, even more preferably 1 to 10 g.
  • the aqueous solution containing the glycosylamine is fed, and the content of the glycosylamine in the aqueous solution is preferably 2 to 90% by mass, more preferably 2 to 50% by mass.
  • the production method according to [12] preferably including culturing the microorganism while feeding a mixture of glucose and ammonia.
  • the mixture is converted to the amount of glucose added to the mixture, and is preferably 8 g / hr or less, more preferably 6 g / hr or less, and still more preferably 0.05 to 8 g / L of the initial medium.
  • the pH of the aqueous solution containing the glycosylamine or the mixture of the glucose and the ammonia at 25 ° C. preferably alkaline, more preferably pH 8 or more, still more preferably pH 9 or more, further preferably pH 10 or more, and The production method according to any one of [12] to [17], wherein the pH is preferably 13 or less.
  • the glycosylamine is preferably at least one selected from the group consisting of ⁇ -D-glucopyranosylamine, ⁇ -D-mannopyranosylamine, and ⁇ -D-galactopyranosylamine.
  • the microorganism is a filamentous fungus.
  • the production method according to [21], wherein the filamentous fungus is a genus Trichoderma.
  • the production method according to [22], wherein the Trichoderma genus is Trichoderma reesei.
  • the microorganism is a filamentous fungus
  • the protein is preferably an enzyme involved in biomass degradation or biomass saccharification, and more preferably a cellulase, [2] to [23].
  • the manufacturing method as described.
  • the production method according to [24] wherein the filamentous fungus is a genus Trichoderma.
  • the production method according to [25], wherein the Trichoderma genus is Trichoderma reesei.
  • the production according to any one of [2] to [26] wherein the concentration of cellulose or cellobiose in the culture is 1 to 15% by mass / volume as a total concentration of cellulose and cellobiose.
  • Method [28]
  • % means “w / v%” unless otherwise specified.
  • the pH of the culture was measured using a pH sensor such as F-635 Autoclavable pH Electrode (Broadley-James Corp) or 405-DPAS-SC-K8S pH sensor (METTLER TOLEDO) attached to a jar fermenter.
  • a pH sensor such as F-635 Autoclavable pH Electrode (Broadley-James Corp) or 405-DPAS-SC-K8S pH sensor (METTLER TOLEDO) attached to a jar fermenter.
  • Trichoderma reesei strain X3AB1 (J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 2012, 174: 1-9; hereinafter, referred to as strain X3AB1) was cultured in a cellulose-containing medium to produce a protein containing cellulase.
  • strain X3AB1 As a preculture, 50 mL of a medium was added to a 500 mL flask, and spores of the X3AB1 strain were inoculated at a concentration of 1 ⁇ 10 5 cells / mL, followed by shaking culture at 28 ° C. and 220 rpm (PRECI, PRXYg-98R).
  • the medium composition is as follows: 1% glucose, 0.14% (NH 4 ) 2 SO 4 , 0.2% KH 2 PO 4 , 0.03% CaCl 2 .2H 2 O, 0.03% MgSO 4 4 ⁇ 7H 2 O, 0.1% Bacto Peptone (BD Difco), 0.05% Bacto Yeast extract (BD Difco), 0.1% Tween 80,0.1% Trace element, 50mM tartrate buffer (pH 4.0 ).
  • composition of Trace element are as follows: 6mg H 3 BO 3, 26mg (NH 4) 6 Mo 7 O 24 ⁇ 4H 2 O, 100mg FeCl 3 ⁇ 6H 2 O, 40mg CuSO 4 ⁇ 5H 2 O, 8mg MnCl 2 ⁇ 4H 2 O, up to a total volume 100mL with distilled water 200 mg ZnCl 2.
  • the initial medium for the main culture contained 10% powdered cellulose (KC Floc W100; Nippon Paper) and the following other medium components: 0.42% (NH 4 ) 2 SO 4 , 0.2% KH 2 PO 4, 0.03% CaCl 2 ⁇ 2H 2 O, 0.03% MgSO 4 ⁇ 7H 2 O, 0.1% Bacto Peptone, 0.05% Bacto Yeast extract, 0.1% Tween 80,0.1% Trace element, 0.2% Antifoam PE-L.
  • the preculture solution was inoculated into 10 mL (v / v%) of a 1 L jar fermenter BMZ-01KP2 (Biot) containing 500 mL of the medium, and cultured for 4 days.
  • the pH of the culture solution was maintained in the above-mentioned predetermined range by feeding a 10% aqueous ammonia solution.
  • the culture solution was sampled.
  • Example 1 Microorganisms were cultured in the same manner as in Comparative Example 1 except that 0.5% of ⁇ -D-glucopyranosylamine was added to the initial medium of the main culture, and a culture solution was sampled.
  • Example 2 During the main culture, an 8% aqueous solution of ⁇ -D-glucopyranosylamine was fed to the medium under the conditions shown in Table 1 (a total of 0.2% ⁇ -D-glucopyranosylamine was fed per medium charged). Other than that, the culture of the microorganism was performed in the same procedure as in Comparative Example 1, and the culture solution was sampled.
  • Test 1 Amount of Protein Production
  • the culture solution obtained in Comparative Example 1 and Example 1-2 was centrifuged, and then the bacterial cells and the supernatant were separated using a membrane filter 25CS020AN (Advantech).
  • the protein concentration of the supernatant was measured by the Bradford method.
  • BioRad Quick Start protein assay
  • the protein concentration of the supernatant was calculated based on a calibration curve using bovine gamma globulin as a standard protein, and the protein production was determined.
  • the relative protein production on the second, third, and fourth days of culture in Comparative Example 1 and Example 1-2 when the protein production on the third day of culture in Comparative Example 1 is 100%. 1 is shown.
  • Example 1 the maximum productivity was shown on the third day of the culture, and in Example 2, the productivity was shown on the fourth day of the culture. From the above, it has been clarified that the use of glycosylamine as a medium raw material greatly improves the protein production amount even when added to the medium components in advance or when fed during culture.
  • Comparative Example 2 During the culturing of the main culture, microorganisms were cultured in the same manner as in Comparative Example 1 except that a 40% aqueous glucose solution was fed to the culture under the conditions shown in Table 2, and the culture solution was sampled.
  • Example 3 During the main culture, the microorganism was cultured in the same manner as in Comparative Example 1 except that a 38% glucose / 2% ⁇ -D-glucopyranosylamine aqueous solution was fed to the culture under the conditions shown in Table 2. The culture was sampled.
  • Example 4 During the main culture, the microorganism was cultured in the same procedure as in Comparative Example 1 except that a 35% glucose / 5% ⁇ -D-glucopyranosylamine aqueous solution was fed to the culture under the conditions shown in Table 2. The culture was sampled.
  • Comparative Example 3 During the main culture, microorganisms were cultured in the same manner as in Comparative Example 1 except that a 40% aqueous glucose solution was fed to the culture under the conditions shown in Table 3, and the culture solution was sampled.
  • Example 5 During the culturing of the main culture, the microorganism was cultured in the same procedure as in Comparative Example 1, except that a 38% glucose / 2% ⁇ -D-glucopyranosylamine aqueous solution was fed to the culture under the conditions shown in Table 3. The culture was sampled.
  • Example 6 During the main culture, the microorganism was cultured in the same manner as in Comparative Example 1 except that a 35% glucose / 5% ⁇ -D-glucopyranosylamine aqueous solution was fed to the culture under the conditions shown in Table 3. The culture was sampled.
  • Test 2 Protein Production The protein production was measured for the culture solutions obtained in Comparative Example 2-3 and Example 3-6 in the same manner as in Test 1.
  • FIG. 2 shows the relative protein production at the maximum production in Comparative Example 2-3 and Example 3-6 when the protein production on the third day of culture in Comparative Example 1 was 100%. It was confirmed that the higher the amount of ⁇ -D-glucopyranosylamine added in the culture, the higher the protein productivity.

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Abstract

安価かつ効率よい微生物学的タンパク質製造のための方法の提供。グリコシルアミンの存在下で微生物を培養することを含む、タンパク質の製造方法。

Description

タンパク質の製造方法
　本発明は、微生物を用いたタンパク質の製造方法に関する。
　糸状菌は、多種のセルラーゼ及びキシラナーゼを生産することから、植物性多糖の分解菌として注目されている。なかでも、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）は、セルラーゼとキシラナーゼを同時に、かつ大量に生産することが可能であることから、セルラーゼ系バイオマス分解酵素の製造のための微生物として研究されている。
　微生物の培養においては、従来、炭素源としてグルコースが汎用されている。しかしながら、グルコース存在下では、カタボライト抑制と呼ばれる制御機構により、微生物による物質生産性の低下又は飽和が起こる。アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属等の糸状菌のカタボライト抑制に、広域制御型転写因子CreAや、CreB、CreC、CreD等が関与していることが報告されている（特許文献１）。これらの転写因子の制御によりアスペルギルスのカタボライト抑制を調節できる可能性があるが、未だ充分な成果は得られていない。トリコデルマについても、カタボライト抑制の機構解析が進められている（特許文献２、非特許文献１）。しかし、トリコデルマのカタボライト抑制の機構には未だ不明な点が多く、抑制回避には至っていない。
　また、微生物による酵素などタンパク質の生産には、炭素源に加えて、誘導物質が必要なことがある。例えば、アスペルギルス・オリゼのアルファアミラーゼ遺伝子の発現は、デンプンやマルトースなどに誘導される。また、トリコデルマの主要なセルラーゼ遺伝子cbh1、cbh2、egl1及びegl2の発現は、セルロース、セロビオースなどにより誘導される（非特許文献２）。デンプンやマルトース、セルロース、セロビオースはまた、培養の炭素源としても使用できる。微生物を用いたセルラーゼ生産においては、一般にアビセル等の微結晶性セルロースが使用されている。
　特許文献３には、純粋なセルロースの代わりにリグノセルロースを誘導物質として用いた、微生物によるセルラーゼの製造方法が開示されている。特許文献３では、セルロース系素材を含む培地で、炭素源としてグルコースを、かつｐＨ調整剤としてリン酸やアンモニア水をそれぞれ流加しながら、トリコデルマを培養し、セルラーゼを生産している。非特許文献３では、糖類を培地に繰り返し又は継続的に流加しながら、コリネバクテリウムにアミノ酸を製造させたことが開示されている。特許文献４及び非特許文献４には、培養物にグルコースとアンモニアの混合溶液を流加して、ｐＨ値を制御しながら炭素源と窒素源を加えることによりリジンを発酵生産したこと、この方法によりリジンの生産性が増加したことが開示されている。
　グリコシルアミンは、Ｃ－１位の水酸基がアミノ基で置換された単糖誘導体であり、多くの場合、各種糖誘導体の中間体として合成され、利用されている。β－Ｄ－グリコシルアミンがβ－グリコシダーゼの阻害剤として働くことが報告されている（非特許文献５）。非特許文献６には、β－Ｄ－グルコシルアミンがグルコースとアンモニアとの反応により生成することが記載されている。非特許文献７では、β－Ｄ－グルコピラノシルアミンを含む各種Ｄ－グルコース誘導体がＣａｎｄｉｄａ　ａｌｂｉｃａｎｓの菌糸成長のための炭素源として利用できたことが記載されている。
（特許文献１）特開２０１５－３９３４９号公報
（特許文献２）特表平１１－５１２９３０号公報
（特許文献３）米国特許公開公報第２００８／０１９９９０８号
（特許文献４）中国特許登録公報第１０１９６７５０１号
（非特許文献１）Appl. Environ. Microbiol., 63:1298-1306 (1997)
（非特許文献２）Curr. Genomics, 14:230-249 (2013)
（非特許文献３）Journal of Biotechnology, 104:155-172 (2003)
（非特許文献４）The Chinese Journal of Process Engineering, 11(3):492-496 (2011)
（非特許文献５）Adv. Carbohydr. Chem. Biochem., 48:319-384 (1990)
（非特許文献６）日本農芸化学会誌, 36:305-310 (1962)
（非特許文献７）Journal of Basic Microbiology, 23(5):303-312 (1983)
　本発明は、グリコシルアミンの存在下で微生物を培養することを含む、タンパク質の製造方法を提供する。
培養物の相対タンパク質生産量。値は比較例１の培養３日目のタンパク質生産量を１００％としたときの培養日２日目、３日目又は４日目の相対値を示す。 培養物の相対タンパク質生産量。値は比較例１の培養３日目のタンパク質生産量を１００％としたときの相対値を示す。
発明の詳細な説明
　本明細書中で引用された全ての特許文献、非特許文献、及びその他の刊行物は、その全体が本明細書中において参考として援用される。
　本明細書において、遺伝子に関する「上流」及び「下流」とは、該遺伝子の転写方向の上流及び下流をいう。例えば、「プロモーターの下流に配置された遺伝子」とは、ＤＮＡセンス鎖においてプロモーターの３’側に該遺伝子が存在することを意味し、遺伝子の上流とは、ＤＮＡセンス鎖における該遺伝子の５’側の領域を意味する。
　本明細書において、プロモーターと遺伝子との「作動可能な連結」とは、該プロモーターが該遺伝子の転写を誘導し得るように連結されていることをいう。プロモーターと遺伝子との「作動可能な連結」の手順は当業者に周知である。
　本明細書において、「プロモーター活性」とは、その下流に位置する遺伝子の発現を促進する活性、より詳細には、下流に位置する遺伝子のＤＮＡからｍＲＮＡへの転写を促進する活性を意味する。
　本明細書において、細胞の機能や性状、形質に対して使用する用語「本来」とは、当該機能や性状、形質が当該細胞に元から存在していることを表すために使用される。対照的に、用語「外来」とは、当該細胞に元から存在するのではなく、外部から導入された機能や性状、形質を表すために使用される。例えば、「外来」遺伝子又はポリヌクレオチドとは、細胞に外部から導入された遺伝子又はポリヌクレオチドである。外来遺伝子又はポリヌクレオチドは、それが導入された細胞と同種の生物由来であっても、異種の生物由来（すなわち異種遺伝子又はポリヌクレオチド）であってもよい。
　本明細書において、アミノ酸配列又はヌクレオチド配列に関する「少なくとも９０％の同一性」とは、９０％以上、好ましくは９５％以上、より好ましくは９６％以上、さらに好ましくは９７％以上、さらにより好ましくは９８％以上、なお好ましくは９９％以上の同一性をいう。
　本明細書において、ヌクレオチド配列及びアミノ酸配列の同一性は、Ｌｉｐｍａｎ－Ｐｅａｒｓｏｎ法（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９８５，２２７：１４３５－１４４１）によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアＧｅｎｅｔｙｘ－Ｗｉｎのホモロジー解析（Ｓｅａｒｃｈ　ｈｏｍｏｌｏｇｙ）プログラムを用いて、Ｕｎｉｔ　ｓｉｚｅ　ｔｏ　ｃｏｍｐａｒｅ（ｋｔｕｐ）を２として解析を行うことにより算出される。
　微生物による安価かつ効率よい酵素等のタンパク質製造のための培養技術の開発が求められている。グルコースを繰り返し又は継続的に培養物に流加する流加培養により、カタボライト抑制が抑止され、微生物のタンパク質生産性が向上する可能性がある。しかし、グルコースが少ないとタンパク質合成のプロセスが充分に進まず、一方、大量のグルコースの流加はカタボライト抑制を引き起こすため、グルコース流加培養によるタンパク質生産では、培養物中のグルコース濃度の精密な制御が求められる。
　本発明者らは、グリコシルアミンの存在下で微生物を培養することで、微生物による酵素等のタンパク質生産性が向上することを見出した。
　本発明によれば、簡便な手順で、微生物によるタンパク質の生産性を向上させることができる。
　本発明によるタンパク質の製造方法は、グリコシルアミンの存在下で微生物を培養することを含む。本発明で用いられるグリコシルアミンとしては、β－Ｄ－グルコピラノシルアミン（ＣＡＳ　Ｎｏ．７２８４－３７－９）、β－Ｄ－マンノピラノシルアミン（ＣＡＳ　Ｎｏ．７３８８－９９－０）、β－Ｄ－ガラクトピラノシルアミン（ＣＡＳ　Ｎｏ．７４８６７－９１－７）などが挙げられ、これらのいずれか１種又は２種以上を組み合わせて用いることができる。好ましくは、本発明で用いられるグリコシルアミンはβ－Ｄ－グルコピラノシルアミンであり、これはβ－Ｄ－グルコースのＣ－１位の水酸基がアミノ基で置換されている化合物である。グリコシルアミンは、市販されており、又はＪ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ，１９５８，２３（９）：１３０９－１３１９に記載される手順を参考に製造することもできる。
　本発明の方法の一実施形態においては、グリコシルアミンを含有する培地で微生物を培養する。一例においては、培養の初期培地にグリコシルアミンを添加し、該培地を用いて微生物を培養する。初期培地へのグリコシルアミンの添加量は、初期培地１Ｌあたり、好ましくは５０ｇ以下、より好ましくは３０ｇ以下であり、さらに好ましくは０．５～２０ｇ、さらに好ましくは１～１０ｇである。別の一例においては、グリコシルアミンを、微生物の培養物に流加する。該培養物に対するグリコシルアミンの流加量は、初期培地１Ｌあたり、好ましくは５ｇ／ｈｒ以下、より好ましくは４ｇ／ｈｒ以下であり、さらに好ましくは０．００５～４ｇ／ｈｒ、さらに好ましくは０．０１～３ｇ／ｈｒである。あるいは、上述した初期培地へのグリコシルアミンの添加と、培養物へのグリコシルアミンの流加とを組み合わせてもよい。その場合、培養物中のグリコシルアミンの含有量が、該培養物１Ｌあたり、好ましくは０．５～５０ｇ、より好ましくは０．５～２０ｇ、さらに好ましくは１～１０ｇとなるように、初期培地へのグリコシルアミンの添加量およびグリコシルアミンの流加量を調整することが好ましい。流加は断続的であってもよく、また流加速度を変動させてもよい。流加の条件はタンパク質の生産性を考慮した上で設定される。
　本発明の方法において、微生物の培養物にグリコシルアミンを流加する場合、グリコシルアミンを含む水溶液が該培養物に流加されることが好ましい。該水溶液中におけるグルコシルアミンの含有量は、好ましくは２～９０質量％、より好ましくは２～５０質量％である。該水溶液中のグリコシルアミンの量が少なすぎると、培養物へ大量の水溶液を流加することになるため培養設備に負担がかかる。一方、水溶液中のグリコシルアミンの量が多すぎると、培養物への水溶液の流加量の制御が困難になる。
　当該グリコシルアミンを含む水溶液は、水にグリコシルアミンを直接添加し、溶解させた水溶液であってもよく、又は、グルコースとアンモニアとの混合物（グルコースとアンモニアとの反応により生成したグルコシルアミンが含まれる、非特許文献６を参照）であってもよい。したがって、一実施形態として本発明の方法は、グルコースとアンモニアとの混合物を流加しながら微生物を培養することを含み得る。該グルコースとアンモニアとの混合物は、グルコースとアンモニアとを混合することにより調製された、液状の混合物である。例えば、該混合物は、グルコース、アンモニア、及びそれらの溶媒（例えば水）の混合物である。好ましくは、該混合物は、グルコース又はその水溶液と、アンモニア、その塩又はそれらの水溶液と、必要に応じて水とを混合することにより調製された混合物である。より好ましくは、該混合物は、グルコースとアンモニア水溶液と、必要に応じて水とを混合して得られた混合物である。該グルコースとアンモニアとの混合物を調製する際には、グルコースとアンモニアとを、質量比で好ましくは０．５～１０：１、より好ましくは２～８：１の割合で混合するとよい。グルコースの比率が高すぎると、細胞が酵素生産状態から増殖状態に移行し、酵素生産性が低下していく傾向があり、一方、グルコースの比率が低すぎると炭素源不足になり、結果として酵素生産性の向上が望めなくなる。また、該グルコースとアンモニアとの混合物を調製する際には、グルコースの添加量を、得られる混合物１００ｍＬあたり、好ましくは２～９０ｇ、より好ましくは５～８０ｇに調整するとよい。混合物へのグルコースの添加量が少なすぎると、上述したグリコシルアミンの流加量を達成するために、培養物へ大量の混合物を流加することになるため培養設備に負担がかかる。一方、混合物へのグルコースの添加量が多すぎると、培養物への混合物の流加量の制御が困難になる。例えば、該混合物は、上記のグルコース：アンモニア比、及び／又はグルコース添加量を達成できるように、適切な量のグルコースとアンモニア水溶液とを混合することで調製されてもよく、あるいは、任意の量のグルコースとアンモニア水溶液とを混合した後、得られた水溶液を、上記のグルコース：アンモニア比、及び／又はグルコース添加量を達成できるように適宜水で希釈することで調製されてもよい。
　当該グルコースとアンモニアとの混合物を微生物の培養物に流加する場合、該培養物に対する該混合物の流加量は、上述したグリコシルアミンの流加量の範囲を達成できる量であればよく、例えば、初期培地（流加される該混合物を含まない培地）１Ｌあたり、該混合物に添加されたグルコースの量に換算して、好ましくは８ｇ／ｈｒ以下、より好ましくは６ｇ／ｈｒ以下であり、さらに好ましくは０．０５～８ｇ／ｈｒ、さらに好ましくは０．１～６ｇ／ｈｒである。グルコースの流加量が多いと、カタボライト抑制が起こることがある。一方、該培養物に対する該混合物（全体）の流加量は、そのグルコース又はアンモニアの含有量や、後述する培養物のｐＨなどに応じて適宜調整すればよく、特に限定されない。経済性の観点からは、初期培地１Ｌあたりの該混合物（全体）の流加量を０．１～１０ｇ／ｈｒ程度、好ましくは０．３～８ｇ／ｈｒ程度に調整するとよい。
　好ましくは、当該グルコースとアンモニアとの混合物の流加により、培養物のｐＨが調整される。この場合、該混合物の流加の量やタイミングは、該混合物を流加された培養物のｐＨに依存する。好適には、通常の手順で所定のｐＨの初期培地を調製し、次いで流加後の培養物が該所定のｐＨ値を維持するように該グルコースとアンモニアとの混合物を流加しながら、これを培養する。培養中の培養物のｐＨの調整には、該グルコースとアンモニアとの混合物のみが使用されることが好ましいが、他のｐＨ調整剤を併用してもよい。培養物のｐＨの測定と、ｐＨ値に基づく流加量の制御は、市販のジャーファーメンター等を用いて行うことができる。培養物のｐＨは、微生物の種や、製造するタンパク質の種類に応じて適切な値に設定することができる。例えば微生物が糸状菌の場合、培養物のｐＨは、好ましくはｐＨ３～７、より好ましくはｐＨ３．５～６に維持される。培養物のｐＨは、一般にジャーファーメンターに備え付けの電極で測定することができる。好適には、本発明における培養物のｐＨは、培養温度２８℃において、F-635 Autoclavable pH Electrode（Broadley-James Corp）、又は405-DPAS-SC-K8S pHセンサ（METTLER TOLEDO）のｐＨセンサを用いて測定された値をいう。
　当該グリコシルアミンを含む水溶液のｐＨは、グリコシルアミンの安定性の観点から、２５℃で、好ましくはアルカリ性、より好ましくはｐＨ８以上、さらに好ましくはｐＨ９以上、さらに好ましくはｐＨ１０以上であり、そして、好ましくはｐＨ１３以下である。該グリコシルアミンを含む水溶液が、上述したグルコースとアンモニアとの混合物である場合、該グルコースとアンモニアとの混合物のｐＨは、２５℃で、好ましくはアルカリ性、より好ましくはｐＨ８以上、さらに好ましくはｐＨ９以上、さらに好ましくはｐＨ１０以上であり、そして、好ましくはｐＨ１３以下である。必要に応じてアルカリ剤（アンモニア等）などのｐＨ調整剤を用いて、該グリコシルアミンを含む水溶液のｐＨを上述の範囲に調整することが好ましい。該グリコシルアミンを含む水溶液のｐＨは、一般のｐＨメーターを用いて測定することができる。例えばｐＨメーター（ＨＯＲＩＢＡ　Ｌｔｄ．製　ｐＨ／イオンメーターＦ－５２、など）にｐＨ測定用複合電極（ＨＯＲＩＢＡ　Ｌｔｄ．製　ガラス摺り合わせスリーブ型、など）を接続したものを用いる。ｐＨ電極内部液としては、飽和塩化カリウム水溶液（３．３３ｍｏｌ／Ｌ）を使用する。測定は２５℃で行う。
　当該グリコシルアミンを含む水溶液は、微生物の培養培地に通常添加し得る他の物質をさらに含有していてもよい。当該他の物質の例としては、有機塩、無機塩、ｐＨ調整剤、グリコシルアミン以外の炭素源や窒素源、界面活性剤、消泡剤などが挙げられる。炭素源としてグルコースを併用することが好ましく、窒素源としてはアンモニアを用いることが好ましい。アンモニアはｐＨ調整剤としても使用できる。グルコース及びアンモニアから選ばれる１種以上は、初期培地に一部乃至全部が含まれていてもよく、又は流加されてもよい。グルコース及びアンモニアの１種以上を流加する場合、それを含む水溶液の流加速度は、グリコシルアミン、グルコース及びアンモニアの合計での流加量が、上述したグリコシルアミンの流加量を超えない速度であることが好ましい。また初期培地及び培養物中におけるグルコース、アンモニア及びグリコシルアミンの合計量も、上述したグリコシルアミンの初期培地及び培養物中での含有量を越えないことが好ましい。
　上述したグルコースとアンモニアとの混合物もまた、微生物の培養培地に通常添加し得る他の物質をさらに含んでいてもよい。当該他の物質の例としては、好ましくは該混合物のｐＨ調整機能を損なわないもの、例えば有機塩、無機塩、他のｐＨ調整剤、グルコースとアンモニア以外の炭素源や窒素源、界面活性剤、消泡剤などが挙げられる。
　本発明の方法において、微生物の培養に使用される初期培地は、該微生物の培養に通常使用される培地であればよい。例えば、該初期培地は、炭素源、窒素源、マグネシウム塩、亜鉛塩等の金属塩、硫酸塩、リン酸塩、ｐＨ調整剤、界面活性剤、消泡剤などの微生物の培地に一般的に含まれる各種成分を含有することができる。培地中の成分組成は適宜選択可能である。該初期培地は、合成培地、天然培地、半合成培地のいずれであってもよく、又は市販の培地であってもよい。該初期培地は、好ましくは液体培地である。
　好ましくは、本発明の方法における微生物の培養は、目的のタンパク質をコードする遺伝子の発現の誘導物質の存在下で行われる。これにより、目的のタンパク質の生産性をより高めることができる。より詳細には、該微生物の培養物が該誘導物質を含有していればよい。例えば、該誘導物質は、初期培地に含まれていてもよく、培養物に流加されてもよく、またはその両方であってもよい。該誘導物質の好ましい例としては、セルロース及びセロビオースが挙げられ、これらのいずれか一方又は両方を使用することができる。培養物中のセルロース又はセロビオースは、誘導物質として働くだけでなく、炭素源として消費され得る。該培養物中におけるセルロース又はセロビオースの濃度は、セルロース及びセロビオースの合計濃度として、好ましくは１～１５質量／容量％である。例えば、セルロース又はセロビオースを初期培地に添加する場合、該初期培地中のセルロース又はセロビオースの濃度は、セルロース及びセロビオースの合計濃度として、好ましくは１～１５質量／容量％である。トリコデルマ等の糸状菌のセルラーゼ遺伝子の発現は、セルロース、セロビオースなどにより誘導され、グルコースによりカタボライト抑制を受けることが知られている（特許文献２、非特許文献１～２）。したがって、該誘導物質を用いた本発明の方法は、糸状菌を用いたセルラーゼの製造に好適に使用することができる。
　あるいは、目的のタンパク質をコードする遺伝子を、糸状菌が持つセルラーゼをコードする遺伝子のプロモーター（いわゆる糸状菌セルラーゼ遺伝子プロモーター）のような、セルロース又はセロビオースに誘導されるプロモーターに連結することで、セルロース又はセロビオースにより目的のタンパク質の遺伝子の発現を誘導することができる。したがって、本発明の方法の好ましい実施形態において、該微生物の培養は、セルロース及びセロビオースからなる群より選択される少なくとも１種の存在下で行われ、かつ該微生物は、セルロース又はセロビオースに誘導されるプロモーターを含み、該プロモーターの下流には、目的のタンパク質をコードする遺伝子が作動可能に連結されている。
　該セルロース又はセロビオースに誘導されるプロモーターの例としては、糸状菌セルラーゼ遺伝子又はキシラナーゼ遺伝子のプロモーターなどが挙げられる。糸状菌セルラーゼ遺伝子のプロモーターの例としては、トリコデルマ属菌のセルラーゼ遺伝子のプロモーターが挙げられ、好ましい例としては、配列番号１又は２のヌクレオチド配列からなるトリコデルマ・リーセイのセルラーゼ遺伝子のプロモーターが挙げられる。糸状菌キシラナーゼ遺伝子のプロモーターの例としては、トリコデルマ属菌のキシラナーゼ遺伝子のプロモーターが挙げられ、好ましい例としては、配列番号３のヌクレオチド配列からなるトリコデルマ・リーセイのキシラナーゼ遺伝子のプロモーターが挙げられる。該セルロース又はセロビオースに誘導されるプロモーターのさらなる例としては、配列番号１～３のいずれかのヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有するヌクレオチド配列からなり、かつセルロース又はセロビオースに誘導されるプロモーター活性を有するポリヌクレオチドが挙げられる。
　該プロモーターは、本発明の方法で培養される微生物が本来有するプロモーターであってもよく、又は該微生物に導入された外来のプロモーターであってもよい。これらのプロモーターと目的タンパク質をコードする遺伝子との連結は、制限酵素法、相同組換え法などの公知の手順により行うことができる。例えば、目的タンパク質をコードする遺伝子を含むポリヌクレオチドを有するベクター又はＤＮＡ断片を微生物細胞に導入し、ゲノム内の標的プロモーターの下流に該ポリヌクレオチドを組み込むことで、該プロモーターと目的タンパク質をコードする遺伝子とがゲノム上で作動可能に連結される。あるいは、プロモーター配列とその下流に連結された目的タンパク質をコードする遺伝子を含むポリヌクレオチドとを有するベクター又はＤＮＡ断片を構築し、該ベクター又は断片を微生物細胞に導入してもよい。必要に応じて、該ベクター又はＤＮＡ断片はさらに、抗生物質耐性遺伝子、栄養要求性関連遺伝子などの選択マーカーを有していてもよい。
　該ベクターは、プラスミド等の染色体外で自立増殖及び複製可能なベクターであってもよく、又は染色体内に組み込まれるベクターであってもよい。好ましいベクターの種類は、それが導入される微生物の種に依存する。例えば、糸状菌用のベクターの好ましい例としては、アスペルギルス属微生物で自立複製因子として働くＡＭＡ１を含むプラスミドなどが挙げられるがこれらに限定されない。
　微生物へのベクター又はＤＮＡ断片の導入には、一般的な形質転換法、例えば、エレクトロポレーション法、トランスフォーメーション法、トランスフェクション法、接合法、プロトプラスト法、パーティクルガン法、アグロバクテリウム法などを用いることができる。
　目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された微生物は、選択マーカーを利用して選択することができる。例えば、選択マーカーが抗生物質耐性遺伝子である場合、該抗生物質添加培地で微生物を培養することで、目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された微生物を選択することができる。また例えば、選択マーカーがアミノ酸合成関連遺伝子、塩基合成関連遺伝子等の栄養要求性関連遺伝子である場合、該栄養要求性の宿主に遺伝子導入した後、該栄養要求性の有無を指標に、目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された微生物を選択することができる。あるいは、ＰＣＲ等によって微生物のＤＮＡ配列を調べることで目的のベクター又はＤＮＡ断片の導入を確認することもできる。
　該プロモーターに連結される目的のタンパク質をコードする遺伝子は、分泌シグナルペプチドと連結されていてもよい。分泌シグナルペプチドとの連結により、発現した目的のタンパク質は細胞外に分泌されるので、微生物細胞を破壊することなく、培養上清から目的のタンパク質を分離することができる。分泌シグナルペプチドの例としては、トリコデルマ・リーセイのセロビオヒドロラーゼ１、アスペルギルス・オリゼのアルファアミラーゼ、リゾプス・オリゼのグルコアミラーゼ、又はサッカロミセス・セレビジエのアルファ因子由来のシグナルペプチドなどが挙げられる。
　本発明の方法により製造される目的タンパク質の例としては、酸化還元酵素（Ｏｘｉｄｏｒｅｄｕｃｔａｓｅ）、転移酵素（Ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）、加水分解酵素（Ｈｙｄｒｏｌａｓｅ）、脱離酵素（Ｌｙａｓｅ）、異性化酵素（Ｉｓｏｍｅｒａｓｅ）、合成酵素（Ｌｉｇａｓｅ又はＳｙｎｔｈｅｔａｓｅ）、解糖系の酵素、乳酸合成酵素（ＬＤＨ等）、ＴＣＡ回路の酵素などが挙げられる。該目的タンパク質は、本発明の方法で培養される微生物が本来有するタンパク質であってもよく、外来のタンパク質であってもよい。目的タンパク質の好ましい例としては、バイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素が挙げられる。バイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素の例としては、セルラーゼ（例えばβ－エンドグルカナーゼ、セロビオヒドロラーゼ、β－グルコシダーゼ等）、ヘミセルラーゼ（例えばエンドキシラナーゼ、β－キシロシダーゼ、アラビノフラノシダーゼ、グルクロニダーゼ、アセチルキシランエステラーゼ、マンナナーゼ、β－マンノシダーゼ、フェルラ酸エステラーゼ等）、キシラナーゼなどが挙げられ、このうち、セルラーゼが好ましい。該バイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素は、好ましくは糸状菌由来、より好ましくはトリコデルマ属菌由来の酵素である。
　本発明の方法で培養される微生物の例としては、細菌、酵母、糸状菌などが挙げられ、このうち糸状菌が好ましい。糸状菌としては、例えば、Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ属、Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属、Ａｕｒｅｏｂａｓｉｄｉｕｍ属、Ｂｊｅｒｋａｎｄｅｒａ属、Ｃｅｒｉｐｏｒｉｏｐｓｉｓ属、Ｃｈｒｙｓｏｓｐｏｒｉｕｍ属、Ｃｏｐｒｉｎｕｓ属、Ｃｏｒｉｏｌｕｓ属、Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｆｉｌｉｂａｓｉｄｉｕｍ属、Ｆｕｓａｒｉｕｍ属、Ｈｕｍｉｃｏｌａ属、Ｍａｇｎａｐｏｒｔｈｅ属、Ｍｕｃｏｒ属、Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔｈｏｒａ属、Ｎｅｏｃａｌｌｉｍａｓｔｉｘ属、Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ属、Ｐａｅｃｉｌｏｍｙｃｅｓ属、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ属、Ｐｈａｎｅｒｏｃｈａｅｔｅ属、Ｐｈｌｅｂｉａ属、Ｐｉｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｐｌｅｕｒｏｔｕｓ属、Ｒｈｉｚｏｐｕｓ属、Ｓｃｈｉｚｏｐｈｙｌｌｕｍ属、Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｔｈｅｒｍｏａｓｃｕｓ属、Ｔｈｉｅｌａｖｉａ属、Ｔｏｌｙｐｏｃｌａｄｉｕｍ属、Ｔｒａｍｅｔｅｓ属、及びＴｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ属の糸状菌が挙げられ、このうち、アクレモニウム属（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、クリソスポリウム属（Ｃｈｒｙｓｏｓｐｏｒｉｕｍ）、フサリウム属（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）、フミコーラ属（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）、ミセリオフトラ属（Ｍｙｃｅｌｉｏｐｈｔｈｏｒａ）、ニューロスポラ属（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ）、ペニシリウム属（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）、ピロマイセス属（Ｐｉｒｏｍｙｃｅｓ）、タラロマイセス属（Ｔａｌａｒｏｍｙｃｅｓ）、サーモアスカス属（Ｔｈｅｒｍｏａｓｃｕｓ）、チエラビア属（Ｔｈｉｅｌａｖｉａ）、及びトリコデルマ属（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）が好ましく、トリコデルマ属がより好ましい。トリコデルマ属菌としては、トリコデルマ・リーセイ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ　ｒｅｅｓｅｉ）及びその変異株が好ましい。トリコデルマ・リーセイ及びその変異株の例としては、トリコデルマ・リーセイＱＭ９４１４株及びその変異株が挙げられる。
　本発明の方法における微生物の培養のための諸条件は、該微生物の種や、培養のスケールなどに合わせて、常法に従って適宜設定することができる。例えば微生物が糸状菌の場合、培養物のｐＨは、好ましくはｐＨ３～７、より好ましくはｐＨ３．５～６に維持される。培養物のｐＨの測定方法は上述したとおりである。
　次いで、培養物から目的のタンパク質を回収する。タンパク質が培養上清中に分泌されている場合、培養上清からタンパク質を回収することができる。タンパク質が細胞中に含まれる場合、細胞を破壊して、タンパク質を含む画分を取り出し、タンパク質の回収に使用する。タンパク質の回収は、当該分野で通常使用される方法、例えば、傾斜法、膜分離、遠心分離、電気透析法、イオン交換樹脂の利用、蒸留、塩析等、又はこれらの組み合わせにより、行うことができる。回収した目的のタンパク質を、さらに単離又は精製してもよい。
　目的タンパク質が培養上清中に分泌される場合、本発明でタンパク質の製造に使用された微生物は、繰り返し使用することができる。すなわち、培養上清と分離した微生物細胞を回収し、これを再度、上記のようにグリコシルアミンの存在下で培養することで、再び目的のタンパク質を製造することができる。
　本発明のタンパク質の製造方法は、微生物の培養と、培養物に蓄積したタンパク質の回収及び培地の入れ替えとを交互に行う回分式方法であってもよく、又は、一部の微生物と培地を断続的もしくは連続的に入れ替えながら微生物の培養とタンパク質の回収とを並行して行う半回分式もしくは連続的な方法であってもよい。
　本発明の例示的実施形態として、以下の物質、製造方法、用途、方法等をさらに本明細書に開示する。但し、本発明はこれらの実施形態に限定されない。
〔１〕グリコシルアミンの存在下で微生物を培養することを含む、タンパク質の製造方法。
〔２〕好ましくは、前記微生物の培養がセルロース及びセロビオースからなる群より選択される少なくとも１種の存在下で行われる、〔１〕記載の製造方法。
〔３〕好ましくは、前記微生物が、セルロース誘導性プロモーター又はセロビオース誘導性プロモーターを含み、
　該プロモーターが、
　好ましくは糸状菌セルラーゼ遺伝子プロモーター又は糸状菌キシラナーゼ遺伝子のプロモーターであり、
　より好ましくはトリコデルマ属菌のセルラーゼ遺伝子プロモーター又はトリコデルマ属菌のキシラナーゼ遺伝子のプロモーターである、
〔２〕記載の製造方法。
〔４〕好ましくは、前記プロモーターの下流に前記タンパク質をコードする遺伝子が連結されている、〔３〕記載の製造方法。
〔５〕好ましくは、前記プロモーターが糸状菌セルラーゼ遺伝子プロモーターであり、前記タンパク質が酵素である〔４〕記載の製造方法。
〔６〕前記タンパク質が、好ましくは酵素であり、好ましくは、バイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素であり、より好ましくはセルラーゼであり、
　該バイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素が、好ましくは糸状菌由来の酵素であり、より好ましくはトリコデルマ属菌由来の酵素であり、さらに好ましくは糸状菌由来セルラーゼであり、さらに好ましくはトリコデルマ属菌由来セルラーゼである、
〔４〕又は〔５〕記載の製造方法。
〔７〕好ましくは、前記グリコシルアミンが初期培地に添加されている、〔１〕～〔６〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔８〕前記グリコシルアミンの添加量が、初期培地１Ｌあたり、好ましくは５０ｇ以下、より好ましくは３０ｇ以下、さらに好ましくは０．５～５０ｇ、さらに好ましくは０．５～３０ｇ、さらに好ましくは０．５～２０ｇ、さらに好ましくは１～１０ｇである、〔７〕記載の製造方法。
〔９〕好ましくは、前記グリコシルアミンが培養物に流加される、〔１〕～〔８〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔１０〕前記グリコシルアミンの流加量が、初期培地１Ｌあたり、好ましくは５ｇ／ｈｒ以下、より好ましくは４ｇ／ｈｒ以下、さらに好ましくは０．００５～４ｇ／ｈｒ、さらに好ましくは０．０１～３ｇ／ｈｒである、〔９〕記載の製造方法。
〔１１〕好ましくは、前記グリコシルアミンが、初期培地に添加され、かつ培養物に流加され、該培養物中のグリコシルアミンの含有量が、該培養物１Ｌあたり、好ましくは０．５～５０ｇ、より好ましくは０．５～２０ｇ、さらに好ましくは１～１０ｇである、〔１〕～〔１０〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔１２〕好ましくは、前記グリコシルアミンを含む水溶液が流加され、該水溶液中におけるグリコシルアミンの含有量が、好ましくは２～９０質量％、より好ましくは２～５０質量％である、〔９〕～〔１１〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔１３〕好ましくは、グルコースとアンモニアとの混合物を流加しながら微生物を培養することを含む、〔１２〕記載の製造方法。
〔１４〕前記混合物を、該混合物に添加されたグルコースの量に換算して、初期培地１Ｌあたり、好ましくは８ｇ／ｈｒ以下、より好ましくは６ｇ／ｈｒ以下、さらに好ましくは０．０５～８ｇ／ｈｒ、さらに好ましくは０．１～６ｇ／ｈｒで流加する、〔１３〕記載の製造方法。
〔１５〕前記混合物の流加により、培養物のｐＨを、好ましくはｐＨ３～７、より好ましくはｐＨ３．５～６に調整する、〔１３〕又は〔１４〕記載の製造方法。
〔１６〕前記混合物が、グルコースとアンモニアとを、質量比で好ましくは０．５～１０：１、より好ましくは２～８：１で含む混合物である、〔１３〕～〔１５〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔１７〕好ましくは、前記混合物が１００ｍＬあたり２～９０ｇのグルコースを含む、〔１３〕～〔１６〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔１８〕前記グリコシルアミンを含む水溶液又は前記グルコースとアンモニアとの混合物のｐＨが、２５℃で、好ましくはアルカリ性、より好ましくはｐＨ８以上、さらに好ましくはｐＨ９以上、さらに好ましくはｐＨ１０以上であり、かつ好ましくはｐＨ１３以下である、〔１２〕～〔１７〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔１９〕前記グリコシルアミンが、好ましくは、β－Ｄ－グルコピラノシルアミン、β－Ｄ－マンノピラノシルアミン、及びβ－Ｄ－ガラクトピラノシルアミンからなる群より選択される少なくとも１種であり、より好ましくはβ－Ｄ－グルコピラノシルアミンである、〔１〕～〔１８〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔２０〕前記培養において、培養物のｐＨを、好ましくはｐＨ３～７、より好ましくはｐＨ３．５～６に調整する、〔１〕～〔１９〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔２１〕前記微生物が糸状菌である、〔１〕～〔２０〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔２２〕前記糸状菌がトリコデルマ属菌である、〔２１〕記載の製造方法。
〔２３〕前記トリコデルマ属菌がトリコデルマ・リーセイである、〔２２〕記載の製造方法。
〔２４〕好ましくは、前記微生物が糸状菌であり、前記タンパク質が、好ましくはバイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素であり、より好ましくはセルラーゼである、〔２〕～〔２３〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔２５〕好ましくは、前記糸状菌がトリコデルマ属菌である、〔２４〕記載の製造方法。
〔２６〕前記トリコデルマ属菌がトリコデルマ・リーセイである、〔２５〕記載の製造方法。
〔２７〕好ましくは、前記培養物中におけるセルロース又はセロビオースの濃度が、セルロース及びセロビオースの合計濃度として１～１５質量／容量％である、〔２〕～〔２６〕のいずれか１項記載の製造方法。
〔２８〕好ましくは、前記微生物の培養物からタンパク質を回収することをさらに含む、〔１〕～〔２７〕のいずれか１項記載の製造方法。
　以下、実施例に基づき本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。なお以下の実施例において、特に説明しない限り、「％」は「ｗ／ｖ％」を意味する。培養物のｐＨは、ジャーファーメンターに備え付けたF-635 Autoclavable pH Electrode（Broadley-James Corp）、又は405-DPAS-SC-K8S pHセンサ（METTLER TOLEDO）のｐＨセンサを用いて測定した。
参考例１　β－Ｄ－グルコピラノシルアミンの合成
　２００ｍＬのメタノールに８０ｇのＤ－グルコースと２ｇの塩化アンモニウムを加え、１３℃で溶解するまでアンモニアガスを吹き込んだ。溶解後４℃にて静置することで結晶を得た。得られた結晶をろ過にて回収後、メタノールにて洗浄後、乾燥させ、β－Ｄ－グルコピラノシルアミンを得た。得られたβ－Ｄ－グルコピラノシルアミンを以下の実施例で用いた。
比較例１
　トリコデルマ・リーセイＸ３ＡＢ１株（Ｊ．Ｉｎｄ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，２０１２，１７４：１－９；以下、Ｘ３ＡＢ１株と呼ぶ）をセルロース含有培地で培養することで、セルラーゼを含むタンパク質を生産した。前培養として５００ｍＬフラスコに培地５０ｍＬを加え、１×１０5個／ｍＬとなるようＸ３ＡＢ１株の胞子を植菌し、２８℃、２２０ｒｐｍ（ＰＲＥＣＩ社、ＰＲＸＹｇ－９８Ｒ）にて振とう培養した。培地組成は以下の通りである：１％グルコース、０．１４％ （ＮＨ4）2ＳＯ4、０．２％ ＫＨ2ＰＯ4、０．０３％ ＣａＣｌ2・２Ｈ2Ｏ、０．０３％ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ、０．１％ Ｂａｃｔｏ　Ｐｅｐｔｏｎｅ（ＢＤ　Ｄｉｆｃｏ）、０．０５％ Ｂａｃｔｏ　Ｙｅａｓｔ　ｅｘｔｒａｃｔ（ＢＤ　Ｄｉｆｃｏ）、０．１％ Ｔｗｅｅｎ ８０、０．１％ Ｔｒａｃｅ　ｅｌｅｍｅｎｔ、５０ｍＭ酒石酸バッファー（ｐＨ４．０）。Ｔｒａｃｅ　ｅｌｅｍｅｎｔの組成は以下の通りである：６ｍｇ Ｈ3ＢＯ3、２６ｍｇ （ＮＨ4）6Ｍｏ7Ｏ24・４Ｈ2Ｏ、１００ｍｇ ＦｅＣｌ3・６Ｈ2Ｏ、４０ｍｇ ＣｕＳＯ4・５Ｈ2Ｏ、８ｍｇ ＭｎＣｌ2・４Ｈ2Ｏ、２００ｍｇ ＺｎＣｌ2を蒸留水にて１００ｍＬにメスアップ。
　２日間の前培養後、本培養を行った。本培養の初期培地は、粉末セルロース（ＫＣフロックＷ１００；日本製紙）１０％、及び以下のその他の培地成分を含有した：０．４２％（ＮＨ4）2ＳＯ4、０．２％ ＫＨ2ＰＯ4、０．０３％ ＣａＣｌ2・２Ｈ2Ｏ、０．０３％ ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ、０．１％ Ｂａｃｔｏ　Ｐｅｐｔｏｎｅ、０．０５％ Ｂａｃｔｏ　Ｙｅａｓｔ　ｅｘｔｒａｃｔ、０．１％ Ｔｗｅｅｎ ８０、０．１％ Ｔｒａｃｅ　ｅｌｅｍｅｎｔ、０．２％ Ａｎｔｉｆｏａｍ　ＰＥ－Ｌ。該培地５００ｍＬを含む１Ｌ容ジャーファーメンターＢＭＺ－０１ＫＰ２（バイオット）に、前培養液を１０％（ｖ／ｖ％）植菌して４日間培養した。ジャーファーメンターの設定は以下のとおりとした：温度２８℃、通気量０．５ｖｖｍ、ｐＨ：４．５±０．１、撹拌数はＤＯ＝３．０ｐｐｍを保つよう変動。培養中、１０％アンモニア水溶液を流加することで培養液のｐＨを上記所定の範囲に維持した。培養２、３、４日目において培養液をサンプリングした。
実施例１
　本培養の初期培地にβ－Ｄ－グルコピラノシルアミンを０．５％添加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
実施例２
　本培養の培養中、β－Ｄ－グルコピラノシルアミンの８％水溶液を表１に示す条件で培地に流加（培地仕込み量あたり計０．２％のβ－Ｄ－グルコピラノシルアミンを流加）したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
  
試験１　タンパク質生産量
　比較例１、及び実施例１－２で得られた培養液を遠心分離し、次いでメンブレンフィルター２５ＣＳ０２０ＡＮ（アドバンテック）にて菌体と上清を分離した。上清のタンパク質の濃度をｂｒａｄｆｏｒｄ法にて測定した。ｂｒａｄｆｏｒｄ法に基づくＱｕｉｃｋ　Ｓｔａｒｔプロテインアッセイ（ＢｉｏＲａｄ）を使用し、ウシγグロブリンを標準タンパク質とした検量線をもとに上清のタンパク質濃度を計算し、タンパク質生産量とした。比較例１の培養３日目のタンパク質生産量を１００％としたときの、比較例１、及び実施例１－２の培養２日目、３日目及び４日目の相対タンパク質生産量を図１に示す。実施例１では培養３日目において、実施例２では培養４日目において最大生産性を示し、いずれにおいても比較例１よりも２０％以上高い生産性を示した。以上から、グリコシルアミンを培地原料として用いることで、培地成分に予め添加した場合においても、また培養中に流加した場合においても、タンパク質生産量が大きく向上することが明らかとなった。
比較例２
　本培養の培養中、４０％グルコース水溶液を表２に示す条件で培養物に流加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
実施例３
　本培養の培養中、３８％グルコース／２％β－Ｄ－グルコピラノシルアミン水溶液を表２に示す条件で培養物に流加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
実施例４
　本培養の培養中、３５％グルコース／５％β－Ｄ－グルコピラノシルアミン水溶液を表２に示す条件で培養物に流加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
  
比較例３
　本培養の培養中、４０％グルコース水溶液を表３に示す条件で培養物に流加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
実施例５
　本培養の培養中、３８％グルコース／２％β－Ｄ－グルコピラノシルアミン水溶液を表３に示す条件で培養物に流加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
実施例６
　本培養の培養中、３５％グルコース／５％β－Ｄ－グルコピラノシルアミン水溶液を表３に示す条件で培養物に流加したこと以外は、比較例１と同様の手順で微生物の培養を行い、培養液をサンプリングした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
  
試験２　タンパク質生産量
　比較例２－３、及び実施例３－６で得られた培養液について、試験１と同様にタンパク質生産量を測定した。比較例１の培養３日目のタンパク質生産量を１００％としたときの、比較例２－３、及び実施例３－６における最大生産時の相対タンパク質生産量を図２に示す。培養物中のβ－Ｄ－グルコピラノシルアミン添加量が高くなるにつれてタンパク質生産性が向上する傾向が確認された。また、流加液の流加開始のタイミングと流加速度が異なる比較例２、実施例３－４と比較例３、実施例５－６とを比較すると、早くから少量ずつ流加を開始した場合の方が高い生産性を示す傾向が確認された。以上から、培養物へのグリコシルアミンの添加は、グルコースなどの別の炭素源とともに添加した場合においても、タンパク質生産性を向上させることが明らかとなった。

Claims (18)

  1. 　グリコシルアミンの存在下で微生物を培養することを含む、タンパク質の製造方法。
  2. 　前記微生物の培養がセルロース及びセロビオースからなる群より選択される少なくとも１種の存在下で行われる、請求項１記載の製造方法。
  3. 　前記微生物がセルロース誘導性プロモーター又はセロビオース誘導性プロモーターを含む、請求項２記載の製造方法。
  4. 　前記プロモーターの下流に前記タンパク質をコードする遺伝子が連結されている、請求項３記載の製造方法。
  5. 　前記プロモーターが糸状菌セルラーゼ遺伝子プロモーターであり、前記タンパク質が酵素である、請求項４記載の製造方法。
  6. 　前記タンパク質がセルラーゼである、請求項５記載の製造方法。
  7. 　前記グリコシルアミンが初期培地に添加されている、請求項１～６のいずれか１項記載の製造方法。
  8. 　前記グリコシルアミンの添加量が初期培地１Ｌあたり５０ｇ以下である、請求項７記載の製造方法。
  9. 　前記グリコシルアミンが培養物に流加される、請求項１～６のいずれか１項記載の製造方法。
  10. 　前記グリコシルアミンの流加量が初期培地１Ｌあたり５ｇ／ｈｒ以下である、請求項９記載の製造方法。
  11. 　前記グリコシルアミンがβ－Ｄ－グルコピラノシルアミンである、請求項１～１０のいずれか１項記載の製造方法。
  12. 　前記培養において、培養物のｐＨを３～７に調整する、請求項１～１１のいずれか１項記載の製造方法。
  13. 　前記微生物が糸状菌である、請求項１～１２のいずれか１項記載の製造方法。
  14. 　前記糸状菌がトリコデルマ属菌である、請求項１３記載の製造方法。
  15. 　前記トリコデルマ属菌がトリコデルマ・リーセイである、請求項１４記載の製造方法。
  16. 　前記タンパク質がバイオマス分解又はバイオマス糖化に関わる酵素である、請求項１３～１５のいずれか１項記載の製造方法。
  17. 　前記微生物の培養物中におけるセルロース又はセロビオースの合計濃度が１～１５質量／容量％である、請求項２～１６のいずれか１項記載の製造方法。
  18. 　前記微生物の培養物からタンパク質を回収することをさらに含む、請求項１～１７のいずれか１項記載の製造方法。
     
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