WO2019041013A1 - Trim21-sonda e sua utilização como detecção e purificação de anticorpos do tipo igg - Google Patents

Trim21-sonda e sua utilização como detecção e purificação de anticorpos do tipo igg Download PDF

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WO2019041013A1
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Maria MAGALHÃES
Carla VOGEL
Luiz MILETTI
Gustavo DA SILVA
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    • G01—MEASURING; TESTING
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    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531—Production of immunochemical test materials

Definitions

  • hybrid protein which consists of the fusion of: TRIM21 family protein (or only its C-terminal PRYSPRY domain) fused to the enzymes peroxidase, alkaline phosphatase or luciferase (for enzymatic detection) or further fused to the streptavidin protein binds to various fluorophores or biotinylated enzymes / proteins), generating hybrid proteins, generally referred to herein as TRIM21-SONDA. It further uses the family of TRIM21 proteins or their PRYSPRY C-terminal domain covalently linked to solid supports for purification and immunoprecipitation of IgG antibodies.
  • Detection of the primary antibody requires the use of secondary molecules that detect the antigen-bound primary IgG antibody.
  • these secondary antibody molecules Although binding to the primary antibody, these secondary antibody molecules still need to be coupled to molecules capable of generating detection signals.
  • detection signals may be visible colored signals (through the action of the alkaline phosphatase or peroxidase enzymes), luminous signals (through the action of luciferase enzymes or peroxidase) or fluorescent signals (through the action of fluorophores).
  • detection signals may be visible colored signals (through the action of the alkaline phosphatase or peroxidase enzymes), luminous signals (through the action of luciferase enzymes or peroxidase) or fluorescent signals (through the action of fluorophores).
  • binding to the primary antibodies of the IgG type may also be effected through the use of G (streptococcus), type A (Staphylococcus aureus) or type L (of Peptostreptococcus magnus) , which have variable affinity for immunoglobulins of type G (IgGs).
  • G streptococcus
  • type A Staphylococcus aureus
  • type L of Peptostreptococcus magnus
  • the G, A and L proteins are capable of binding to the primary antibody, but can only emit detection signals if they are coupled to other molecules capable of emitting color, light or fluorescence.
  • reagents consisting of antibody molecules secondary (anti-IgG) or G, A or L type proteins, connected to signal-emitting molecules (light, fluorescence or color). These reagents capture and detect the presence of IgG-like primary antibodies linked to specific antigens in biological samples such as viruses, bacteria, tumor cells, specific proteins, etc. These secondary antibodies and the A, G and L type proteins are sold commercially by various companies worldwide. Such molecules are coupled directly or indirectly to enzyme detection probes; in particular the enzymes peroxidase, alkaline phosphatase or luciferase.
  • Secondary antibodies or proteins of type A, G and L may also be coupled to fluorescence detection probes by directly or indirectly binding to fluorescence-emitting fluorescents for reading the laboratory test.
  • the production of secondary antibodies coupled to such probes is expensive and complex, since it requires high cost infrastructure for its production; by the production of hybridomas or by the use of laboratory animals, and highly specialized labor.
  • G, A and L type proteins are not as expensive and complex as the production of secondary antibodies, but it has a number of disadvantages as set out below:
  • type A, G or L proteins in the purification and detection of IgG-like immunoglobulins presents disadvantages since such proteins have low affinity and specificity for certain immunoglobulin G (IgGs) isotypes.
  • IgGs immunoglobulin G
  • Protein A does not bind to the human IgG (IgG3) isotype 3, therefore human IgG3-like immunoglobulins can not be detected nor purified by the use of protein A.
  • Protein A has high affinity also for IgA, IgE and IgM, in addition to the affinity for IgG.
  • protein A is used as a purification or detection tool for IgGs, contaminants of the IgA, IgE and IgM type may be present in the final purification preparation or detected in the immunoassay.
  • the L protein binds to representatives of all types of antibodies, including IgG, IgM, IgA, IgE and IgD. Thus, if L protein is used as a purification or detection tool for IgGs, IgA, IgE, IgM and IgD type contaminants may be present in the final preparation, or be detected in the immunoassays.
  • the L protein is not a universal antibody binding protein. L-protein binding is restricted to antibodies that contain kappa light chains. Therefore, aipha light chain antibodies can not be detected or purified using the L protein
  • the TRIM21 protein is an intracellular receptor for IgG-like antibodies. Therefore, TRIM21 binds to IgGs with dissociation constant in the nanomolar range, indicating a high affinity binding (Keeble, AH et al, 2008). Said article only describes the function of TRIM21 intracellularly.
  • the human and mouse TRIM21 protein binds to IgG immunoglobulins in the full TRIM21 form as well as only its C-terminal PRYSPRY domain. When the TRIM21 protein is in intact form, it forms a dimer, whose binding to IgG has a higher affinity (around 0.6 nM). When only the C-terminal PRYSPRY domain is used, it also binds to IgG but has a 300-fold lower affinity (150 nM), as it does not dimerize.
  • TRIM21 hybrid protein fused to proteins capable of emitting detection signals to replace the in vitro use of the immunoassay reagents secondary antibodies (anti-IgG) and G-type proteins, A and L for use as detection, capture and purification of antibodies of the IgG type.
  • anti-IgG secondary antibodies
  • G-type proteins A and L for use as detection, capture and purification of antibodies of the IgG type.
  • TRIM21-SONDA can be produced by bacterial or yeast cells, easily produced and purified, which makes the process simple and inexpensive.
  • the hybrid TRIM21-SONDA gene gene will be encoded so as to contain the TRIM21 protein sequence (or only the C-terminal domain sequence), adjacent to the PROBE protein gene sequence.
  • the antibody detection reagent which describes this invention IgG ligand moiety (TRIM21) + detection probe
  • TAM21 IgG ligand moiety + detection probe
  • PROBE proteins that will be fused to TRIM21 may be the peroxidase enzyme (which emits light or color signal), the enzyme alkaline phosphatase (which emits color signal), the enzyme luciferase (which emits light signal), or the protein streptavidin (which has the ability to bind to various biotinylated molecules)
  • Biotinylated molecules may be fluorophores, other enzymes, or other proteins of interest. In this way it will be possible to make a connection between TRIM21, streptavidin, and any biotinylated molecules of interest, including fluorophores, peroxidase enzymes, alkaline phosphatase, luciferase, as long as these molecules are biotinylated.
  • the innovation described in this report also encompasses the use of TRIM21 protein or its C-terminal PRYSPRY domain immobilized on solid support (agarose resins, sepharose or magnetic nanoparticles) as a tool for purification and immunoprecipitation of antibodies of the IgG type, because the C-terminal PRYSPRY domain of TRIM21 has high affinity for all IgG isotypes (1, 2, 3 and 4), but has low affinity for IgE, IgA or IgM.
  • solid support agarose resins, sepharose or magnetic nanoparticles
  • the probe described would be the sepharose, agarose or nanoparticle resin covalently connected to the TRIM21 protein or its C-terminal PRYSPRY domain, for consequent immobilization, generating a hybrid molecule TRIM21-SUPORTE.
  • Figure 1 shows a schematic of the TRIM21 -SONDA protein.
  • FIG. 2 shows the TRIM21 proteins binding to the Fc region of
  • Figure 3 shows the sequence of the TRIM21-PHOSPHATASE ALKALINE gene. In this case, the portion of TRIM21 corresponds to its C-terminal PRYSPRY domain.
  • Figure 4 shows the sequence of the TRIM21-ESTREPTAVIDINE gene. In this case, the portion of TRIM21 corresponds to its C-terminal PRYSPRY domain.
  • Figure 5 shows the sequence of the TRIM21-PEROXIDASE gene.
  • the portion of TRIM21 corresponds to its C-terminal PRYSPRY domain.
  • the purpose of the present invention is the in vitro detection of IgG (1) type antibodies, bound to antigens (2), using the TRIM21 protein fused to the enzymes peroxidase, alkaline phosphatase or luciferase (for enzymatic detection) or fused to the streptavidin protein (which binds to various fluorophores, proteins and biotinylated enzymes), generating hybrid proteins, commonly referred to herein as TRIM21-SOLDA (3).
  • Figure 2A shows the hybrid protein TRIM21-SOUND (3) connected to the IgG (1) type antibody, bound to the antigen (2), which generates the detection signal.
  • Figure 2B shows the hybrid TRIM21-SONDA (3) protein that does not bind to the free primary IgG antibody (4), with no antigen (2), which does not generate the detection signal.
  • immunoassay reagents utilize mammalian alkaline phosphatases, specifically bovine enzyme for visual detection, as they are enzymes with catalytic performance suitable for use in immunoassays.
  • mammalian enzymes must be expressed in eukaryotic or yeast cells, because of the post translational modifications that eukaryotic proteins undergo, such as glycosylation.
  • An article by 2001, by Muller BH et al demonstrates that mutations (the D153G / D330N and D330N / D153H mutant double mutants) of Escherichia coli alkaline phosphatase are capable of rendering such an enzyme with the same catalytic efficiency as the bovine enzyme, with the advantage of being heat resistant and can be expressed in bacteria.
  • TRIM21-FOSFATASE ALKALINE will use the alkaline phosphatase portion of Escherichia coli (D153G / D330N or D330N / D153H), which can be expressed in a bacterial system, since it does not require post-translational modification, which makes the production process very easy and cheap.
  • TRIM21-INTREPTAVIDINE fused protein may also be expressed in E. coli bacterial cells, as both proteins (TRIM21 and Streptavidin) can be expressed in bacterial system. However, such fused protein must be expressed in the insoluble form, as the streptavidin protein is toxic to cells and is sent to inclusion bodies during protein expression. After expression, TRIM21 - ESTREPTAVIDINE fused protein will be denatured by the action of Guanidine Hydrochloride and renaturated by successive dialysis steps to remove the denaturing Guanidine. Thus, it is also guaranteed that all fused proteins will be free of the presence of biotin and can be coupled to biotinylated molecules of interest.
  • the TRIM21-PEROXIDASE fused protein should be expressed in yeast cells because it lacks the production of heme grouping, which can not be performed on bacterial cells.
  • protein expression in yeast cells such as Sacharomyces cerevisae or Pichia pastoris is a reasonably simple and inexpensive method of producing proteins.
  • the aim of the present invention is to use the TRIM21 family of proteins or its PRYSPRY C-terminal domain to detect the presence of IgG antibodies in immunoassays.
  • the present invention aims to use the TRIM21 proteins or their PRYSPRY C-terminal domain immobilized on solid support for capture and purification procedures of primary antibodies of the IgG type, replacing the use of type A, G and L proteins .
  • the present invention relates to the use of the TRIM21 protein in a complete manner, as well as the use of only its PRYSPRY C-terminal domain with the function of detecting, capturing and purifying primary antibodies of the IgG type in immunoassays.
  • the present invention also relates to the use of mouse TRIM21 S370L mutant, since mutagenicity studies in Keeble's article 2008 show that such a mutant has a more comprehensive specificity against IgGs of various species, having greater affinity for several species of mammals.
  • mouse and human TRIM21 proteins can bind to mammalian IgG immunoglobulins in general, including dogs, humans, guinea pigs, mice and rats.
  • mammalian IgG immunoglobulins in general, including dogs, humans, guinea pigs, mice and rats.
  • the presently produced secondary antibodies (5) are capable of binding to the primary antibodies (1) bound to antigens (2), but also bind considerably to free primary antibodies (4), shown 2C and 2D, generating a percentage of false positive results, ie detection of the final stimulus (light, fluorescence or color) without the presence of the antigen (virus, bacteria, tumor, etc.).
  • the TRIM21 protein binds physiologically to the IgG Fc region bound to the antigen, and such binding must generate a more specific ligand than the traditional secondary antibodies, which do not differentiate bound antibodies from those not bound to their antigen.
  • TRIM21 or its PRYSPRY C-terminal domain to the antibodies is insensitive to pH variation, and the pH change between 5 and 8 does not affect the binding affinity (Keeble A H et al.).
  • the TRIM21 protein or its PRYSPRY C-terminal domain immobilized on solid support has advantages for procedures for capturing or purifying IgGs, since the elution of the binding antibodies can be done by adding increasing concentrations of salt in the eluent liquid, since according to Leo C. James et al., the binding affinity between TRIM21 and IgGs is sensitive change in salt concentration. Thus, pH alteration (as occurs in G-protein elution) and possible denaturation of the target molecule is not required.
  • trim21 protein or C-terminal domain PRYSPRY immobilized on the solid support presents advantages for IgG purification procedures, it binds to all isotypes (IgGl, IgG3 IgG 2 and IgG 4), the contrary to protein A, which does not bind to the IgG3 isotype.
  • TRIM21-SOLDA fused protein is expressed containing the TRIM21 protein in a complete (whole) form, it forms a dimer, increasing the binding affinity between the fused protein and the antibody for avidity (0.6 nM).
  • the TRIM21-SONDA fused protein is expressed containing only the PRYSPRY C-terminal domain of TRIM21, it does not form a dimer, and the affinity for other immunoglobulin isotypes such as IgA and IgM, decreases considerably.
  • the fused protein is composed only of the PRYSPRY C-terminal domain of TRIM21 the specificity for immunoglobulins of the IgG type is much higher, avoiding contamination by antibodies from other isotypes.
  • the use of the C-terminal PRYSPRY domain immobilized on solid support has advantages for IgG purification procedures, since it binds preferentially to IgG type antibodies, with possibility of contamination with other types of antibodies such as IgE, IgA or IgM.
  • the human and mouse TRIM21 proteins sequence as well as their PRYSPR C-terminal domain were obtained from the Protein Data BaNK site (pbd.org) and a number of other proteins that can be fused to the TRIM21 protein for the purpose of use as an immunoassay reagent, among them: alkaline phosphatase, luciferase, peroxidase and streptavidin.
  • TRIM21 By analyzing the three-dimensional structure of TRIM21 it was decided to create hybrid proteins where the N-terminal end contained a poly histidine peptide for detection and purification purposes. In addition, it was observed that the terminus of the PRYSPRY domain of TRIM21 could receive the fusion of probe proteins as will be described below.
  • alkaline phosphatase enzymes could be expressed in bacterial cells and yeast.
  • the sequence of said enzyme was obtained from the site of the American Health Institute (NCBI.NIH.NLM.GOV). It is important to note that such a version of alkaline phosphatase (with mutations D153G and D330N) has U.S.
  • the expression vector pET15a (+) :: TRIM21 -FA was constructed by inserting the PRYSPRY C terminal end of TRIM21 from mutant mouse (S370L) adjacent to the E. coli alkaline phosphatase gene sequence (D153G and D330N) , as shown in figure 3.
  • TRIM21-FAH hybrid protein was made by electroporation of the recombinant vector pET15b (+) :: TRIM21-FA in Escherichia coli BL21 (DE3) cells in LB medium containing ampicillin as the selection antibiotic.
  • Isolated colonies were inoculated in LB liquid medium containing ampicillin as a selection antibiotic and biotin and grown at 37 ⁇ C under agitation until reaching optical density at 600 nm of 0.4, whereupon the culture was induced by the addition of 0, 1 mM IPTG and subjected to growth at 37 ° C under agitation for a further 24 hours.
  • the cells were centrifuged, the medium discarded and the cells sonicated.
  • the soluble fraction was separated from the insoluble cell fraction by means of centrifugation, and the soluble fraction was subjected to purification using nickel resin.
  • the TRIM21-SERREVTAVIDINE gene sequence is outlined in figure 4 and was constructed by inserting the streptavidin protein gene followed by a linker which is formed by four replicates of EAAAK residues to connect streptavidin to the PRYSPRY C-terminal end of TRIM21 of mutant mouse (S370L).
  • TRIM21-SERREVTAVIDINE hybrid protein was made by electroporation of the recombinant vector pET15b (+) :: SA-TRIM21 in Escherichia coli BL21 (DE3) pLysS cells in LB medium containing ampicillin as the selection antibiotic and presence of biotin free.
  • Isolated colonies were inoculated in LB liquid medium containing ampicillin as a selection antibiotic and biotin and grown at 37 ⁇ ° C under stirring until reaching optical density at 600 nm of 0.4, when the culture was then induced by the addition of 0.1 mM IPTG and grown at 37 ⁇ C under agitation for another 24 hours.
  • the cells were centrifuged, the medium discarded and the cells sonicated.
  • the soluble fraction was separated from the insoluble fraction, and both fractions were analyzed by SDS PAGE. Analysis showed a protein band corresponding to the size of 38kDA, which corresponds to the total size of the SA-TRIM21 fused protein in the insoluble fraction.
  • the insoluble fraction was solubilized with stirring in buffer containing 6M guanidine hydrochloride, 20 mM phosphate buffer, pH 1.5, for 30 min at room temperature.
  • the sample was centrifuged for 30 minutes at 10,000 RPM to remove the proteins that remained insoluble, and the pH of the supernatant was adjusted to 8.
  • the protein solution was then admixed with 0.5 ml of Ni-NTA resin, washed with 10 volumes of guanidine hydrochloride buffer column, 10 mM Tris-HCl buffer, pH 8.0, followed by washing with 25 column volumes of 8M urea buffer, 10 mM tris-HCl, 10 mM imidazole, pH 8.0. Elution was done with 10 mM Tris-HCl, 250 mM imidazole, pH 8.0, and the refolding was done by dialysis against tris buffered saline buffer tween-20 (TBST).
  • TST tris buffered saline buffer
  • the TRIM21-PEROXIDASE gene sequence is outlined in figure 5, where black residues (EAAAK) 4 produce a hard alpha-helix linker between the Trim21 domain (S370L) (red) and the enzyme domain peroxidase (yellow highlight). In blue the mutation is shown in TRIM21 (Leucine at position 370 instead of a serine).
  • Pichia pastoris X33 was transformed with the recombinant vector pPICZb :: TRIM21-PEROXIDASE by electroporation and the transformers were selected by seeding on YPD plates containing zeocin as the selection marker.
  • the culture was placed in a 1 liter flask and taken to the incubator to continue growth for 24 hours at 28 ° C.
  • Methanol a was added in a final concentration of 0.5% methanol every 24 hours to maintain induction.
  • the cells were separated from the medium by centrifugation, and the cells were disrupted by sonication, the soluble fraction separated from the insoluble fraction by centrifugation.
  • the soluble fraction was subjected to purification using nickel resin.

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Abstract

escreve uma proteína híbrida que consiste na fusão de: proteína da família TRIM21 (ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY) fusionada às enzimas peroxidase, fosfatase alcalina ou luciferase (para detecção enzimática) ou ainda fusionada à proteína estreptavidina (que se liga à diversos fluorofóros ou enzimas/proteínas biotiniladas), gerando proteínas híbridas, aqui denominadas genericamente TRIM21-SONDA. Utiliza ainda a família de proteínas TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY ligados covalentemente a suportes sólidos para purificação e imunoprecipitação de anticorpos do tipo IgG.

Description

TRIM21 -SONDA E SUA UTILIZAÇÃO COMO DETECÇÃO E PURIFICAÇÃO DE ANTICORPOS DO TIPO IgG
[001 ] Descreve uma proteína híbrida que consiste na fusão de: proteína da família TRIM21 (ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY) fusionada às enzimas peroxidase, fosfatase alcalina ou luciferase (para detecção enzimática) ou ainda fusionada à proteína estreptavidina (que se liga à diversos fluorofóros ou enzimas/proteínas biotiniladas), gerando proteínas híbridas, aqui denominadas genericamente TRIM21 -SONDA. Utiliza ainda a família de proteínas TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY ligados covalentemente a suportes sólidos para purificação e imunoprecipitação de anticorpos do tipo IgG.
ESTADO DA TÉCNICA
[002] Muitos testes laboratoriais como Western Blotting, Citometria de Fluxo, ELISA (enzyme linked immunoassay), imunoprecipitação e microscopia de fluorescência necessitam a utilização de moléculas de anticorpos para a captura e detecção de antígenos específicos ligados a alvos moleculares em análise.
[003] A detecção do anticorpo primário (do tipo IgG que se liga no antígeno) necessita a utilização de moléculas secundárias que detectam o anticorpo primário IgG ligado ao antígeno.
[004] Atualmente a maior parte da detecção de anticorpos do tipo IgG em imunoensaios é baseada na utilização de moléculas de anticorpos secundários (anticorpos anti-lgG) produzidos por técnicas de hibridoma e/ou produzidos em animais de laboratório, os quais se ligam ao anticorpo primário. [005] Técnicas de produção de anticorpos por hibridoma ou por utilização de animais de laboratório são procedimentos caros que necessitam infraestrutura de alto custo.
[006] Apesar de ligar-se ao anticorpo primário, estas moléculas de anticorpos secundários precisam ainda ser acopladas a moléculas capazes de gerar sinais de detecção. Estes sinais de detecção podem ser sinais visíveis coloridos (através da ação das enzimas fosfatase alcalina ou peroxidase), sinais luminosos (através da ação das enzimas luciferase ou peroxidase) ou sinais fluorescentes (através da ação de fluoroforos). Dessa forma, após a produção de tais anticorpos secundários, estes ainda devem ser submetidos a reações químicas complexas de ligação a moléculas emissoras de sinais para detecção (enzimas, proteínas ou fluoroforos) para a geração final dos reagentes de imunoensaios.
[007] Além da utilização de anticorpos secundários, a ligação aos anticorpos primários do tipo IgG também pode ser efetuada através da utilização de proteínas do tipo G (de estreptococcus), tipo A (de Staphylococcus aureus) ou tipo L (de Peptostreptococcus magnus), as quais possuem afinidade variável por imunoglobulinas do tipo G (IgGs).
[008] Assim como os anticorpos secundários, as proteínas G, A e L, são capazes de se ligar ao anticorpo primário, mas só conseguem emitir sinal de detecção se forem acopladas à outras moléculas, capazes de emitir cor, luz ou fluorescência.
[009] Inúmeros testes laboratoriais de pesquisa e diagnóstico baseiam - se na utilização de reagentes que consistem em moléculas de anticorpos secundários (anti-lgG) ou proteínas do tipo G, A ou L, conectados à moléculas emissoras de sinais (luz, fluorescência ou cor). Tais reagentes, capturam e detectam a presença de anticorpos primários, do tipo IgG, ligados à antígenos específicos em amostras biológicas como vírus, bactérias, células tumorais, proteínas específicas, etc. Estes anticorpos secundários e as proteínas do tipo A, G e L, são vendidos comercialmente por diversas empresas no mundo todo. Tais moléculas são acopladas direta ou indiretamente a sondas de detecção enzimática; em especial às enzimas peroxidase, fosfatase alcalina ou luciferase. Os anticorpos secundários ou proteínas do tipo A, G e L, podem ainda ser acoplados a sondas de detecção fluorescente, por ligar-se diretamente ou indiretamente a fluorofóros que emitem fluorescência para leitura do teste laboratorial. A produção de anticorpos secundários acoplados a tais sondas é cara e complexa, pois necessita infraestrutura de alto custo para sua produção; pela produção de hibridomas ou pela utilização de animais de laboratório, e mão de obra altamente especializada.
[0010] A produção e utilização de proteínas do tipo G, A e L, não é tão cara e complexa quanto a produção de anticorpos secundários, mas apresenta uma série de desvantagens, como explicitado abaixo:
[001 1 ] A utilização das proteínas do tipo A, G ou L na purificação e detecção de imunoglobulinas do tipo IgG apresenta desvantagens pois tais proteínas possuem baixa afinidade e especificidade por certos isotipos de imunoglobulinas G (IgGs). Por exemplo: a Proteína A não se liga ao isotipo 3 das IgGs humanas (lgG3), portanto, imunoglobulinas humanas do tipo lgG3 não podem ser detectadas nem tampouco purificadas pela utilização de proteína A. [0012] A proteína A possui alta afinidade também por IgA, IgE e IgM, além da afinidade por IgG. Dessa forma, se a proteína A for utilizada como ferramenta de purificação ou detecção de IgGs, contaminantes do tipo IgA, IgE e IgM podem estar presentes na preparação final de purificação, ou ainda detectados no imunoensaio.
[0013] A proteína L se liga a representantes de todas as ciasses de anticorpos, incluindo IgG, IgM, IgA, IgE e IgD. Dessa forma, se a proteína L for utilizada como ferramenta de purificação ou detecção de IgGs, contaminantes do tipo IgA, IgE, IgM e IgD podem estar presentes na preparação final, ou serem detectados nos imunoensaios.
[0014] Além disso, a proteína L não é uma proteína de ligação de anticorpo universal. A ligação da proteína L é restrita aos anticorpos que contêm cadeias leves kappa. Portanto, os anticorpos com cadeia leve aípha não poderão ser detectados nem purificados usando a proteína L
[0015] A purificação de anticorpos do tipo IgG utilizando a proteína G como ligante apresenta desvantagens, pois a eluição deve ser feita alterando-se o pH do eluente para valores entre 2 e 3. Essa alteração de pH pode levar a desnaturação do anticorpo primário que está sendo purificado, com consequente inviabilidade de uso.
[0016] Segundo artigo publicado na revista PNAS em 2008, a proteína TRIM21 é um receptor intracelular de anticorpos do tipo IgG. Portanto, a TRIM21 liga-se à IgGs com constante de dissociação na faixa de nanomolar, indicando uma ligação de alta afinidade (Keeble, AH et al, 2008). O referido artigo apenas descreve a função da TRIM21 intracelularmente. [0017] A proteína TRIM21 de humanos e de camundongos, liga-se a imunoglobulinas IgG, na forma TRIM21 completa, assim como apenas seu domínio C-Terminal PRYSPRY. Quando a proteína TRIM21 está na forma intacta, ela forma um dímero, cuja ligação à IgG possui maior afinidade (em torno de 0.6 nM). Quando apenas o domínio C-Terminal PRYSPRY é utilizado, este liga-se também à IgG mas com afinidade 300 vezes menor (150 nM), pois ele não dimeriza.
[0018] A inovação, descrita neste relatório, compreende o uso da proteína híbrida TRIM21 fusionada a proteínas capazes de emitir sinais de detecção para substituir o uso in vitro dos reagentes de imunoensaios anticorpos secundários (anti-lgG) e de proteínas do tipo G, A e L para utilização como detecção, captura e purificação de anticorpos do tipo IgG. Tal proteína, aqui denominada de TRIM21 -SONDA, pode ser produzida por células bacterianas ou de leveduras, de fácil produção e purificação, o que torna o processo simples e barato.
[0019] O gene da proteína híbrida TRIM21 -SONDA será codificado de forma que contenha a sequência gênica da proteína TRIM21 (ou apenas a sequência gênica do seu domínio C terminal), adjacente à sequência do gene da proteína SONDA. Dessa forma, o reagente de detecção de anticorpos que descreve esta invenção (porção ligante de IgG (TRIM21 ) + Sonda de detecção) são expressos e traduzidos pela célula hospedeira como um único polipeptídio, não necessitando reações químicas posteriores à expressão proteica para conectar a TRIM21 à proteína SONDA.
[0020] As proteínas denominadas SONDA que serão fusionadas à TRIM21 poderão ser a enzima peroxidase (que emite sinal de cor ou luz), a enzima fosfatase alcalina (que emite sinal de cor), a enzima luciferase (que emite sinal de luz), ou a proteína estreptavidina (que tem a capacidade de ligar-se à diversas moléculas biotiniladas)
[0021 ] As moléculas biotiniladas podem ser fluorofóros, outras enzimas, ou outras proteínas de interesse. Dessa forma será possível fazer conexão entre a TRIM21 , a estreptavidina, e qualquer molécula biotinilada de interesse, incluindo fluorofóros, enzimas peroxidase, fosfatase alcalina, luciferase, desde que estas moléculas sejam biotiniladas.
[0022] A inovação, descrita neste relatório, também compreende o uso da proteína TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY imobilizada em suporte sólido (resinas de agarose, sefarose ou nanopartículas magnéticas) como ferramenta para purificação e imunoprecipitação de anticorpos do tipo IgG, pois o domínio C-terminal PRYSPRY de TRIM21 possui alta afinidade por todos os isotipos de IgG (1 , 2, 3 e 4), mas possui baixa afinidade por IgE, IgA ou IgM.
[0023] Neste caso, a sonda descrita, seria a resina de sefarose, agarose ou nanopartícula conectada covalentemente à proteína TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY, para consequente imobilização, gerando uma molécula híbrida TRIM21 -SUPORTE.
[0024] A figura 1 mostra um esquema da proteína TRIM21 -SONDA.
[0025] A figura 2 mostra as proteínas TRIM21 ligando-se à região Fc de
IgG.
[0026] A figura 3 mostra a sequência do gene TRIM21 -FOSFATASE ALCALINA. Neste caso, a porção de TRIM21 corresponde ao seu domínio C- terminal PRYSPRY. [0027] A figura 4 mostra a sequência do gene TRIM21 - ESTREPTAVIDINA. Neste caso, a porção de TRIM21 corresponde ao seu domínio C-terminal PRYSPRY.
[0028] A figura 5 mostra a sequência do gene TRIM21 -PEROXIDASE. Neste caso, a porção de TRIM21 corresponde ao seu domínio C-terminal PRYSPRY.
OBJETO DA INVENÇÃO
[0029] Conforme mostrado nas figuras 1 e 2, o propósito da presente invenção é a detecção in vitro dos anticorpos do tipo IgG (1 ), ligados a antígenos (2), utilizando a proteína TRIM21 fusionada às enzimas peroxidase, fosfatase alcalina ou luciferase (para detecção enzimática) ou fusionada à proteína estreptavidina (que se liga à diversos fluorofóros, proteínas e enzimas biotiniladas), gerando proteínas híbridas, aqui denominadas genericamente TRIM21 -SONDA (3). A figura 2A, mostra a proteína híbrida TRIM21 -SONDA (3) conectada ao anticorpo do tipo IgG (1 ), ligado ao antígeno (2), o que gera o sinal de detecção. Já a figura 2B, mostra a proteína híbrida TRIM21 -SONDA (3) que não se conecta ao anticorpo primário IgG livre (4), com ausência de antígeno (2), o que não gera o sinal de detecção.
[0030] Muitos reagentes de imunoensaio utilizam fosfatases alcalinas de mamíferos, em específico a enzima bovina para detecção visual, pois são enzimas com performance catalítica adequada para utilização em imunoensaios. No entanto, as enzimas de mamíferos, devem ser expressas em células eucarióticas ou de leveduras, devido às modificações pós traducionais que proteínas de eucariotos sofrem, como por exemplo, glicosilação. Um artigo de 2001 , de Muller B.H. et al, demonstra que mutações (a dupla mutante D153G /D330N e a dupla mutante D330N/D153H) da fosfatase alcalina de Escherichia coli são capazes de tornar tal enzima com a mesma eficiência catalítica da enzima bovina, com a vantagem de ser termorresistente e poder ser expressa em bactérias. Dessa forma, a utilização de tais mutantes é superior pois tal enzima pode ser produzida em células bacterianas, um processo muito mais fácil e barato do que a utilização da enzima bovina. Dessa forma, a TRIM21- FOSFATASE ALCALINA, utilizará a porção de fosfatase alcalina de Escherichia coli (D153G/D330N ou D330N/D153H), podendo ser expressa em sistema bacteriano, pois não necessita de modificação pós traducional, o que torna o processo produtivo muito fácil e barato.
[0031 ] A proteína fusionada TRIM21 -ESTREPTAVIDINA, também poderá ser expressa em células bacterianas de E. coli, pois ambas proteínas (TRIM21 e Estreptavidina) podem ser expressas em sistema bacteriano. No entanto, tal proteína fusionada deve ser expressa na forma insolúvel, pois a proteína estreptavidina é tóxica para a células, sendo enviada para corpos de inclusão durante a expressão proteica. Após a expressão, a proteína fusionada TRIM21 - ESTREPTAVIDINA será desnaturada pela ação de Cloridrato de Guanidina e renaturada por sucessíveis passos de diálise para remoção do desnaturante Guanidina. Dessa forma, garante-se também que toda proteína fusionada será livre da presença de biotina, podendo ser acoplada a moléculas biotiniladas de interesse.
[0032] A proteína fusionada TRIM21 -PEROXIDASE, deverá ser expressa em células de leveduras pois carece de produção de grupamento heme, o que não pode ser realizado em células bacterianas. No entanto, a expressão proteica em células de levedura como Sacharomyces cerevisae ou Pichia pastoris é um método razoavelmente simples e barato de produção de proteínas.
[0033] A presente invenção tem por objetivo a utilização da família de proteínas TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY com função de detectar a presença de anticorpos do tipo IgG em imunoensaios.
[0034] Além disso a presente invenção objetiva o uso das proteínas TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY imobilizados em suporte sólido para procedimentos de captura e purificação de anticorpos primários do tipo IgG, substituindo o uso de proteínas do tipo A, G e L.
[0035] A presente invenção se relaciona ao uso da proteína TRIM21 de forma completa, assim como a utilização de apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY com função de detectar, capturar e purificar anticorpos primários do tipo IgG em imunoensaios.
[0036] A presente invenção se relaciona também ao uso da mutante S370L da TRIM21 de camundongo, pois estudos de mutagênese no artigo de Keeble, 2008, mostram que tal mutante possui uma especificidade mais abrangente contra IgGs de várias espécies, possuindo maior afinidade por várias espécies de mamíferos.
[0037] Como vantagens da utilização desta tecnologia, existe a possibilidade de produção de proteínas híbridas TRIM21 -SONDA em células bacterianas ou de leveduras, uma estratégia de produção muito mais fácil e barata do que a produção atual de anticorpos secundários que ocorre em cultivo celular de mamíferos ou através de utilização de animais de laboratório. Além disso, é possível expressar a TRIM21 já fusionada à molécula sonda (enzimas ou estreptavidina), não necessitando o acoplamento da molécula sonda quimicamente após a expressão proteica, como ocorre nos casos dos anticorpos secundários.
[0038] Além disso, as proteínas TRIM21 de camundongos e humanos, e a mutante S370L de camundongo, podem ligar-se a imunoglobulinas IgG de mamíferos em geral, incluindo cães, humanos, porcos da índia, camundongos e ratos. Dessa forma, através da produção de um único reagente é possível produzir um reagente capaz de detectar imunoglobulinas de muitas espécies.
[0039] Além disso, os anticorpos secundários (5) atualmente produzidos são capazes de ligar-se aos anticorpos primários (1 ) ligados a antígenos (2), mas também ligam-se de forma considerável a anticorpos primários livres (4), mostrado nas figuras 2C e 2D, gerando um percentual de resultados falsos positivos, ou seja, detecção do estimulo final (luz, fluorescência ou cor) sem a presença do antígeno (vírus, bactéria, tumor, etc). No caso da proteína TRIM21 , esta se liga fisiologicamente à região Fc de IgG ligadas ao antígeno, e tal ligação deve gerar um ligante mais específico do que os anticorpos secundários tradicionais, os quais não diferenciam anticorpos ligados dos não ligados ao seu antígeno.
[0040] A ligação da TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY aos anticorpos é insensível à variação do pH, sendo que a alteração de pH entre 5 e 8 não afeta a afinidade de ligação (Keeble A H e colaboradores).
[0041 ] Além disso, a proteína TRIM21 ou seu domínio C-terminal PRYSPRY imobilizados em suporte sólido apresenta vantagens para procedimentos de captura ou purificação de IgGs, pois a eluição dos anticorpos ligantes pode ser feita através da adição de concentrações crescentes de sal no liquido eluente, pois de acordo com Leo C. James e colaboradores, a afinidade de ligação entre TRIM21 e IgGs é sensível à alteração da concentração de sal. Dessa forma, não é necessária a alteração de pH (como ocorre na eluição de proteína G) e possível desnaturação da molécula alvo.
[0042] Além disso, a utilização da proteína TRIM21 ou seu domínio C- terminal PRYSPRY imobilizados em suporte sólido apresenta vantagens para procedimentos de purificação de IgGs, pois liga-se a todos isotipos (IgGi, lgG2 lgG3 e lgG4), ao contrário da proteína A, que não se liga ao isotipo lgG3.
[0043] Caso a proteína fusionada TRIM21 -SONDA seja expressa contendo a proteína TRIM21 de forma completa (inteira), esta forma um dímero, aumentando a afinidade de ligação entre a proteína fusionada e o anticorpo por efeitos de avidez (0.6 nM).
[0044] Caso a proteína fusionada TRIM21 -SONDA seja expressa contendo apenas o domínio C-terminal PRYSPRY da TRIM21 , este não forma dímero, e a afinidade por outros isotipos de imunoglobulinas como IgA e IgM, diminui consideravelmente. Dessa forma, caso a proteína fusionada seja composta apenas do domínio C-terminal PRYSPRY da TRIM21 a especificidade por imunoglobulinas do tipo IgG é muito maior, evitando contaminação por anticorpos de outro isotipos.
[0045] Dessa forma, a utilização do domínio C-terminal PRYSPRY imobilizados em suporte sólido apresenta vantagens para procedimentos de purificação de IgGs, pois liga-se preferencialmente a anticorpos do tipo IgG, com possibilidade diminuída de contaminação com outros tipos de anticorpos como IgE, IgA ou IgM.
[0046] A aplicação industrial do TRIM21 -SONDA apresenta:
[0047] Criação de uma ferramenta molecular nova capaz de purificar anticorpos de todos isotipos de IgGs, expandindo e melhorando a capacidade de purificação de anticorpos que serão utilizados na manufatura de medicamentos, reagentes de diagnóstico e de pesquisa.
[0048] Criação de uma ferramenta molecular nova capaz de purificar anticorpos do tipo IgG, com presença diminuída de contaminantes de outros tipos de imunoglobulinas como por IgA, IgE e IgM, melhorando a capacidade de purificação de anticorpos que serão utilizados na manufatura de medicamentos, reagentes de diagnóstico e de pesquisa.
[0049] O aumento da produtividade de reagentes de detecção de anticorpos primários em imunoensaios, pois estes reagentes podem ser produzidos (expressos) em bactérias ou leveduras tornando o processo produtivo mais fácil e barato do que os métodos tradicionais;
[0050] A diminuição do custo de produção dos reagentes de detecção de anticorpos primários;
[0051 ] O descarte da utilização de animais de laboratório para produção dos reagentes;
[0052] O aumento da especificidade e sensibilidade do teste de imunoensaio pela utilização da TRIM21 -Sonda. [0053] Diminuição do custo para o consumidor final já que este poderá adquirir apenas um reagente que seja útil para detecção de IgGs de mamíferos em geral, incluindo cães, humanos, porcos da índia, camundongos ou ratos. DIÁRIO DE LABORATÓRIO
[0054] Primeiramente, se observou o artigo publicado pela PNAS de 2008 (Keeble AH, 2008) que demonstrou que as proteínas TRIM21 de camundongos e humanos tinham a capacidade de ligar-se especificamente a imunoglobulinas IgG de cães, humanos, porcos da índia, camundongos e ratos, intracelularmente. Neste artigo, as constantes de dissociação estão publicadas onde se observa alta afinidade de ligação entre as proteínas TRIM21 e as imunoglobulinas do tipo IgG de diversas espécies de mamíferos.
[0055] Não se encontrou nenhum depósito de patente sobre a utilização da TRIM21 como ferramenta molecular para detecção in vitro de anticorpos primários em imunoensaios nem purificação de anticorpos.
[0056] Obteve-se a sequência das proteínas TRIM21 humana e de camundongo, assim como seu domínio C-terminal PRYSPR a partir do site do Protein Data BaNK (pbd.org) e elencou-se uma série de outras proteínas que podem ser fusionadas à proteína TRIM21 com o objetivo de utilização como reagente de imunoensaio, entre elas: Fosfatase alcalina, luciferase, peroxidase e estreptavidina.
[0057] Pela análise da estrutura tridimensional da TRIM21 decidiu-se criar proteínas híbridas onde a extremidade N terminal contivesse um peptídeo de poli histidina para fins de detecção e purificação. Além disso, observou-se que a extremidade C terminal do domínio PRYSPRY da TRIM21 poderia receber a fusão de proteínas sondas como serão descritas abaixo.
QUANTO À PRODUÇÃO DA PROTEÍNA HÍBRIDA TRIM-FOSFATASE ALCALINA
[0058] Em um segundo momento, pesquisou-se quais enzimas fosfatase alcalinas poderiam ser expressas em células bacterianas e leveduras. Encontrou-se o artigo de Muller B.H. et al, 2001 ; que demonstra que duas mutações (D153G e D330N) em uma enzima fosfatase alcalina de Escherichia coli é capaz de tornar tal enzima com a mesma eficiência catalítica da enzima bovina, com a vantagem de ser termorresistente e poder ser expressa em bactérias. Dessa forma, obteve-se a sequência da referida enzima a partir do site do Instituto de Saúde Americano (NCBI.NIH.NLM.GOV). É importante ressaltar que tal versão da fosfatase alcalina (com as mutações D153G e D330N) possui registro de patente americana US 5891699 A de 29 de junho de 1995; e registro de patente internacional WO 1994001531 A1 de 7 jul. 1992. O pedido de patente é para a utilização da própria enzima mutante (D153G e D330N), mas não se refere ao híbrido TRIM21 -FOSFATASE ALCALINA que está sendo reivindicado.
[0059] Fez-se a análise estrutural de ambas enzimas através do Software de Análise Molecular PYMOL e decidiu-se preparar uma proteína híbrida onde a extremidade amino terminal teria uma cauda de poli (6X) histidina seguida da sequência da TRIM21 de camundongo (S370L), adicionou-se um linker com quatro repetições dos resíduos EAAAK e por fim, a sequência da fosfatase alcalina mutante de Escherichia coli (D153G e D330N), figura 3. Portanto, o presente pedido de patente também tem o objetivo de resguardar o uso da proteína híbrida TRIM-FOSF (D153G e D330N) como reagente de imunoensaio.
[0060] O vetor de expressão pET15a(+)::TRIM21 -FA foi construído ao inserir a extremidade C terminal PRYSPRY da TRIM21 de camundongo mutante (S370L) adjacente à sequência do gene da fosfatase alcalina de E. coli (D153G e D330N), conforme sequência representada na figura 3.
[0061 ] Na figura 3, em verde se observa a cauda de histidina na porção N-terminal da proteína. Os resíduos em preto (EAAAK)4 produzem um linker rígido em forma de alfa hélice entre o domínio Trim21 (S370L) (em vermelho) e o domínio da enzima fosfatase alcalina (em azul). Em highlight amarelo são mostradas as mutações na TRIM21 (Leucina na posição 370 ao invés de uma serina), e a dupla mutante (D153G e D330N) na sequência de fosfatase alcalina.
[0062] A expressão da proteína híbrida TRIM21 -FA foi feita por eletroporação do vetor recombinante pET15b(+)::TRIM21 -FA em células de Escherichia coli BL21 (DE3) em meio LB ágar contendo ampicilina como antibiótico de seleção.
[0063] Colónias isoladas foram inoculadas em meio líquido LB contendo ampicilina como antibiótico de seleção e biotina e crescidas a 37°C sob agitação até atingir densidade ótica a 600 nm de 0,4, quando então a cultura foi induzida pela adição de 0, 1 mM de IPTG e submetida a crescimento a 37°C sob agitação por mais 24 horas. As células foram centrifugadas, o meio descartado e as células foram submetidas a sonicação. A fração solúvel foi separada da fração insolúvel celular por meio de centrifugação, e a fração solúvel foi submetida à purificação utilizando resina de níquel. QUANTO À PRODUÇÃO DA PROTEÍNA HÍBRIDA SA-TRIM21
[0064] Utilizando o Software de Análise Molecular PYMOL, analisou-se a estrutura das proteínas TRIM21 e estreptavidina.
[0065] Fez-se a análise estrutural de ambas proteínas através do Software de Análise Molecular PYMOL e decidiu-se preparar uma proteína híbrida onde a extremidade amino terminal teria uma cauda de poli (6X) histidina seguida da sequência da estreptavidina seguida e um linker com quatro repetições dos resíduos EAAAK seguido da proteína TRIM21 de camundongo mutante S370L.
[0066] A sequência do gene TRIM21 -ESTREPTAVIDINA é esquematizada na figura 4 e foi construída ao inserir o gene da proteína estreptavidina seguida de um linker o qual é formado por quatro repetições dos resíduos EAAAK para conectar a estreptavidina à extremidade C terminal PRYSPRY da TRIM21 de camundongo mutante (S370L).
[0067] Na figura 4, em azul está representada a sequência da estreptavidina, os resíduos em preto (EAAAK)4 produzem um linker rígido em forma de alfa hélice entre o domínio TRIM21 (S370L) (em vermelho) e o domínio da estreptavidina (em azul). Em amarelo são mostradas as mutações na TRIM21 (Leucina na posição 370 ao invés de uma serina).
[0068] A expressão da proteína híbrida TRIM21 -ESTREPTAVIDINA foi feita por eletroporação do vetor recombinante pET15b(+)::SA-TRIM21 em células de Escherichia coli BL21 (DE3) pLysS em meio LB ágar contendo ampicilina como antibiótico de seleção e presença de biotina livre.
[0069] Colónias isoladas foram inoculadas em meio líquido LB contendo ampicilina como antibiótico de seleção e biotina e crescidas a 37°c sob agitação até atingir densidade ótica a 600 nm de 0,4, quando então a cultura foi induzida pela adição de 0, 1 mM de IPTG e submetida a crescimento a 37°C sob agitação por mais 24 horas. As células foram centrifugadas, o meio descartado e as células foram submetidas a sonicação. A fração solúvel foi separada da fração insolúvel, e ambas frações analisadas por SDS PAGE. Análise mostrou banda proteica correspondente ao tamanho de 38kDA, que corresponde ao tamanho total da proteína fusionada SA-TRIM21 na fração insolúvel.
[0070] A fração insolúvel foi solubilizada com agitação em tampão contendo 6M de cloridrato de guanidina, 20 mM tampão fosfato, pH 1.5, por 30 min a temperatura ambiente. A amostra foi centrifugada por 30 minutos a 10,000 RPM para remover as proteínas que se mantiveram insolúveis, e o pH do sobrenadante foi ajustado para 8. A solução proteica foi então misturada com 0,5 ml_ de resina Ni-NTA, lavada com 10 volumes de coluna de tampão com cloridrato de guanidina, 10 mM tampão Tris-HCI, pH 8.0, seguido de lavagem com 25 volumes de coluna de tampão 8M ureia, 10 mM tris-HCI, 10 mM imidazol, pH 8.0.A eluição foi feita com tampão 8M de uréia, 10 mM Tris-HCI, 250 mM imidazol, pH 8.0, e o redobramento foi feito por diálise contra tampão tris- buffered saline tween-20 (TBST).
QUANTO À PRODUÇÃO DA PROTEÍNA HÍBRIDA TRIM-PEROXIDASE
[0071 ] Utilizando o Software de Análise Molecular PYMOL, analisou-se a estrutura das proteínas TRIM21 e peroxidase. Projetou-se um peptídeo o qual é formado por quatro repetições dos resíduos EAAAK para conectar ambos domínios usando conhecimento teórico de artigo publicado. [0072] Fez-se a análise estrutural de ambas enzimas através do Software de Análise Molecular PYMOL e decidiu-se preparar uma proteína híbrida onde a extremidade amino terminal teria o domínio C terminal PRYSPRY da TRIM21 de camundongo (S370L) seguida da sequência da horseadish peroxidase conectadas por quatro repetições dos resíduos (EAAAK).
[0073] A sequência do gene TRIM21 -PEROXIDASE é esquematizada na figura 5, onde os resíduos em preto (EAAAK)4 produzem um linker rígido em forma de alfa hélice entre o domínio Trim21 (S370L) (em vermelho) e o domínio da enzima peroxidase (em highlight amarelo). Em azul é mostrada a mutação na TRIM21 (Leucina na posição 370 ao invés de uma serina).
[0074] Pichia pastoris X33 foi transformada com o vetor recombinante pPICZb::TRIM21 -PEROXIDASE por eletroporação e os transform antes foram selecionados por semeadura em placas de YPD contendo zeocina como marcador de seleção. Uma colónia transformante foi inoculada em meio MGY e crescidos a 28°C sob agitação até cultura atingir um OD600 = 2-6 (crescimento em fase logarítmica, aproximadamente 16-18 horas). Células foram centrifugadas por centrifugação a 1 .500-3.000 χ g durante 5 minutos, o sobrenadante foi removido e as células foram suspensas em meio MMY a fim de se obter densidade ótica de 1 para induzir a expressão.
[0075] A cultura foi colocada num frasco de 1 litro e levado à incubadora para continuar crescimento por 24 horas a 28°C. Metanol a foi adicionado em uma concentração final de 0,5% de metanol a cada 24 horas para manter a indução. Após o crescimento, as células foram separadas do meio por centrifugação, e as células foram rompidas por sonicação, sendo a fração solúvel separada da fração insolúvel por centrifugação. A fração solúvel foi submetida à purificação utilizando resina de níquel.

Claims

REIVINDICAÇÕES
1 . Proteína híbrida denominada TRIM21 -SONDA, que utiliza proteína TRIM21 ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY para a detecção de anticorpos do tipo IgG, caracterizada por compreender a proteína TRIM21 fusionada a outras proteínas (aqui denominadas SONDA) para detecção fluorescente, enzimática ou luminosa de anticorpos do tipo IgG em imunoensaios.
2. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 1 , caracterizada por possuir a proteína TRIM21 fusionada à estreptavidina.
3. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 2, caracterizada por possuir a proteína TRIM21 fusionada à estreptavidina e ligada a fluorofóros biotinilados.
4. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 2, caracterizada por possuir a proteína TRIM21 fusionada à estreptavidina e ligada a enzima peroxidase biotinilada.
5. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 2, caracterizada por possuir a proteína TRIM21 fusionada à estreptavidina e ligada enzima fosfatase alcalina biotinilada.
6. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 2, caracterizada por possuir a proteína TRIM21 fusionada à estreptavidina e ligada a luciferase biotinilada.
7. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 1 , caracterizada por possuir a TRIM21 fusionada a enzima peroxidase para detecção enzimática do anticorpo do tipo IgG.
8. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 7, caracterizada por a enzima peroxidase consistir na horseadish peroxidase (HRP) fusionada à TRIM21 para detecção enzimática do anticorpo do tipo IgG.
9. TRIM21 -SONDA de acordo com a reivindicação 7, caracterizada por a enzima peroxidase consistir na soybean peroxidase fusionada à TRIM21 para detecção enzimática do anticorpo do tipo IgG.
10. TRIM21 -SONDA de acordo com a reivindicação 1 , caracterizada por conter a proteína TRIM21 fusionada à enzima fosfatase alcalina para detecção enzimática do anticorpo do tipo IgG.
1 1. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 10, caracterizada por a proteína fosfatase alcalina consistir na enzima fosfatase alcalina de Escherichia coli mutante (D153G / D330N) ou mutante (K328R/D330N).
12. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 1 , caracterizada por conter a TRIM21 fusionada à enzima luciferase, para detecção enzimática luminosa do anticorpo do tipo IgG.
13. TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 1 , caracterizada por possuir um peptídeo conector de pelo menos uma repetição do peptídeo- linker EAAKK, entre a proteína TRIM21 e a proteína SONDA.
14. TRIM21 -SONDA de acordo com a reivindicação 1 caracterizada por possuir um peptídeo conector de pelo menos uma repetição do peptídeo- linker GGGGS, entre a proteína TRIM21 e a proteína SONDA.
15. Proteína TRIM21 ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY como ferramenta de purificação de anticorpos, caracterizada por imobilização da proteína TRIM21 ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY em suporte sólido e sua utilização em processo cromatográfico para purificação e/ou imunoprecipitação de anticorpos do tipo IgG.
16. Proteína TRIM21 , de acordo com a reivindicação 15, caracterizada pelo suporte sólido consistir em resina de agarose ligada covalentemente à TRIM21.
17. Proteína TRIM21 , de acordo com a reivindicação 15, caracterizada pelo suporte sólido consistir em resina de sepharose ligada covalentemente à TRIM21.
18. Proteína TRIM21 , de acordo com a reivindicação 15, caracterizada pelo suporte sólido consistir em nanopartículas magnéticas ligada covalentemente à TRIM21.
19. Proteína híbrida denominada TRIM21 -SONDA, de acordo com a reivindicação 1 , que utiliza proteína TRIM21 ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY para a detecção de anticorpos do tipo IgG, caracterizada por compreender o domínio C-terminal PRYSPRY da proteína TRIM21 fusionada a outras proteínas (aqui denominadas SONDA) para detecção fluorescente, enzimática ou luminosa de anticorpos do tipo IgG em imunoensaios.
20. Proteína TRIM21 ou apenas seu domínio C-terminal PRYSPRY como ferramenta de purificação de anticorpos, caracterizada por imobilização do domínio C-terminal PRYSPRY da proteína TRIM21 em suporte sólido e sua utilização em processo cromatográfico para purificação e/ou imunoprecipitação de anticorpos do tipo IgG.
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