WO2018199546A1 - 신규한 피루브산 전달효소 - Google Patents

신규한 피루브산 전달효소 Download PDF

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WO2018199546A1
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장광석
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    • Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel

Definitions

  • the present invention relates to a novel pyruvic acid transferase and its use.
  • Microalgae have the basic mechanisms of intracellular reactions, such as photosynthesis, there is also a basic study, but in recent years (advanced biofuel) advanced biofuels such as bio-diesel and other hydrocarbons is spotlighted as a next generation feedstock (Kilian et al ., 2011). Compared to ground crops, microalgae do not require arable land, and many species have the advantage that they can be cultured in aquatic environments containing sewage or salt.
  • microalgae are ideal for increasing biomass production or lipid content in external open ponds or unopened photobioreactors in commercially important microalgae. There is still a need to develop new proteins, vectors or transformants for genetic engineering modifications for the development of microalgae with growth characteristics.
  • An object of the present invention is to provide a novel pyruvic acid transferase, specifically, by controlling the delivery of pyruvic acid, which is known to be a very important metabolic precursor involved in biosynthesis located in a pigment such as fatty acids, terpenoids and amino acids, Paodactil may affect the increase in biomass yield or metabolite yield Pyruvic acid transferase derived from triconium and a gene encoding the same have been newly identified, thereby providing a vector comprising the gene, a transformant comprising the vector, and a method for producing biomass or biodiesel using the same.
  • pyruvic acid which is known to be a very important metabolic precursor involved in biosynthesis located in a pigment such as fatty acids, terpenoids and amino acids
  • Paodactil may affect the increase in biomass yield or metabolite yield Pyruvic acid transferase derived from triconium and a gene encoding the same have been newly identified, thereby providing a vector comprising the gene,
  • the present inventors have continued research to increase the synthesis of metabolites in the biosynthesis process using microorganisms biomass or microorganisms, the novel pyruvic acid delivery plays an important role in the metabolism process of microorganisms
  • the enzyme was newly identified.
  • the present invention was completed by confirming that the mass and lipid contents were improved.
  • the present invention provides a pyruvic acid transferase comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the present invention also provides a nucleic acid molecule encoding the pyruvic acid transferase.
  • the present invention also provides a vector comprising the nucleic acid molecule.
  • the present invention also provides a transformant comprising the vector.
  • the present invention also provides a method for producing biomass or biodiesel comprising culturing the transformant.
  • the present invention also provides a composition for producing biomass comprising at least one selected from the group consisting of a pyruvic acid transferase comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 and a nucleic acid molecule encoding the pyruvic acid transferase.
  • the present invention also provides a nucleic acid molecule encoding a pyruvate transferase protein of SEQ ID NO: 1; And a promoter for over-expressing the nucleic acid molecule.
  • the new enzyme of the present invention it is possible to increase the production of biomass and metabolite of the microorganism, thereby improving the productivity of the target substance through the mass culture of the microorganism with improved metabolic properties, improving the efficiency of biodiesel production and Reducing the cost of production can also expect the effects of industrial development.
  • Figure 1 shows a gene analysis result for ortholog search using the plant BASS2 protein according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a pdadocilum , in accordance with an embodiment of the present invention.
  • the result of analyzing the sequence of the protein predicted by triconium- derived pyruvate transferase at the JGI site is shown.
  • Figure 3 shows the PCR results performed to confirm that RNA is generated from the expected gene based on the JGI genome analysis, according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 4a shows a schematic diagram of the overexpressed recombinant vector of pyruvate transferase prepared according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 4b shows the result of confirming the plasmid structure according to the embodiment of the present invention by PCR.
  • Figure 5 shows the PCR result confirming whether the foreign gene insertion of the transformant prepared according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 6 shows the results of analyzing the mRNA expression level of the insertion gene (PtPTP) in the transformant prepared according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 7 shows the growth curve of the transformant prepared according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 8 shows the results of confirming the biomass and lipid content of the transformant prepared according to an embodiment of the present invention.
  • the present invention provides a novel pyruvate transporter derived from microalgae.
  • pyruvate transporter or pyruvate transporter protein
  • pyruvate transporter protein means a protein involved in the delivery of pyruvate to the pigment body. Protein pyruvate transfer function is known to exist, but a lot of C4 plants, L ohdak tilreom In diatoms such as triconium , pyruvate transferase was not found.
  • the inventor of the present invention strives to find a transfer enzyme derived from diatoms, paodactil
  • the genome analysis of triconutium revealed the amino acid sequence of pyruvate transferase and the sequence of the nucleic acid molecule encoding the same, and the protein was named pyruvate transporter plastid-type (PtPTP).
  • PtPTP pyruvate transporter plastid-type
  • the pyruvic acid transferase of the present invention is paodactilum It may be a pyruvic acid transferase derived from triconium, and may be used interchangeably with terms such as pyruvate transporter plastid-type (PtPTP), pyruvate transport enzyme pigment-type, and the like.
  • PtPTP pyruvate transporter plastid-type
  • pyruvate transport enzyme pigment-type and the like.
  • Pyruvate transferase of the present invention may be one comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • pyruvic acid transferases of the present invention include functional equivalents.
  • the term "functional equivalent” means at least 70%, preferably 80%, more preferably 90%, even more preferably at least 70% of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 as a result of the addition, substitution, or deletion of the amino acid. Means having at least 95% sequence homology. It means a protein that exhibits substantially the same physiological activity as the protein represented by SEQ ID NO: 1.
  • substantially homogeneous physiological activity means activity of delivering pyruvic acid in a microorganism.
  • Shinshu pyruvic acid transferase of the present invention may be preferably represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • Pyruvic acid transferase referred to in the present invention is paodactilum
  • it is meant to include recombinant proteins prepared using nucleic acid molecules encoding pyruvic acid transferase.
  • the present invention provides nucleic acid molecules encoding pyruvate transferases.
  • nucleic acid molecule is meant to include DNA (gDNA and cDNA) and RNA molecules inclusive, nucleotides that are the basic structural unit in a nucleic acid molecule is not only natural nucleotides, but also analogs in which sugar or base sites are modified ) Is also included.
  • the nucleic acid molecule of the present invention may be represented by including the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 or the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3.
  • the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 is cDNA obtained from the pyruvic acid transferase of the present invention, and the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2 is paodactilum GDNA obtained through genome analysis from triconium .
  • the protein or nucleic acid molecule of the present invention may have a mutation that does not affect the activity or function of pyruvate transferase, the nucleic acid molecule encoding the pyruvate transferase of the present invention or a nucleic acid molecule thereof is listed in the attached amino acid sequence or nucleotide sequence It should be apparent to those skilled in the art that the present invention is not limited thereto. Specifically, variations in nucleotides do not result in changes in protein.
  • Such nucleic acids include functionally equivalent codons or codons that encode the same amino acid (eg, by degeneracy of the codon, there are six codons for arginine or serine), or codons that encode biologically equivalent amino acids.
  • nucleic acid molecule may include a nucleic acid molecule.
  • nucleotide variation that can change the protein of pyruvate transferase itself, any variation having a function or activity almost identical to the pyruvate transfer function or activity of the present invention can be included in the present invention. have.
  • sequence which shows substantial identity with the nucleotide sequence of the nucleic acid molecule which encodes a pyruvate transfer enzyme of this invention is also interpreted that it is included in the scope of the present invention.
  • substantially identity means that at least 80% of the sequence of the present invention described above is aligned with the maximal correspondence with any other sequence, and the aligned sequence is analyzed using algorithms commonly used in the art. Refers to a sequence that exhibits homology, more preferably 90% homology, most preferably 98% homology, and alignment methods and algorithms for sequence comparison are determined by methods commonly known in the art. Can be done.
  • the nucleic acid molecule may be a gene construct including a nucleic acid molecule encoding a pyruvic acid transferase.
  • "expressing construct” is defined as meaning a nucleic acid molecule containing only a minimum element (elemnet) for protein expression in the cell.
  • the expression construct of the present invention further comprises a restriction enzyme recognition sequence capable of cloning a foreign protein coding nucleotide sequence operably linked to the promoter sequence.
  • restriction enzyme of the restriction enzyme recognition base sequence included in the expression construct of the present invention is not limited to a specific one, for example, EcoRI, EcoRII, BamHI, HindIII, TaqI, NotI, HinfI, Sau3A, PovII, SmaI, HaeIII , HgaI, AluI, EcoRV, EcoP15I, KpnI, PstI, SacI, SalI, ScaI, SpeI, SphI, StuI, XbaI, and the like.
  • operably linked means a functional bond between a nucleic acid expression control sequence (eg, a promoter sequence) and another nucleic acid sequence, whereby the regulatory sequence regulates transcription and / or translation of the other nucleic acid sequence.
  • a nucleic acid expression control sequence eg, a promoter sequence
  • Exogenous proteins in the present invention include all proteins that can be expressed for beneficial transformation of algae, and are not particularly limited.
  • the expression construct of the present invention may include a poly adenylation sequence as a transcription termination sequence.
  • the invention also provides a vector comprising a nucleic acid molecule encoding a pyruvic acid transferase.
  • the vector system of the present invention may be constructed through various methods known in the art, and specific methods thereof are disclosed in Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press (2001), This document is incorporated herein by reference.
  • a "vector” may be used interchangeably with a transformation vector, an expression vector, and the like, and may include a recombinant DNA molecule containing a desired nucleic acid sequence and an appropriate nucleic acid sequence essential for expressing a coding sequence operably linked to a specific host organism.
  • the appropriate nucleic acid sequence may be a promoter, and may further include an enhancer, a transcription terminator and a polyadenylation signal.
  • pyruvate transferase of the present invention is derived from eukaryotic cells
  • eukaryotic cells can be used as a host in consideration of culture convenience, and promoters, enhancers, transcription terminators, and polyadenylation signals available in eukaryotic cells are known.
  • the vector may be an expression vector into which the base sequence of the gene may be inserted and directly introduced into eukaryotic cells.
  • the vector of the present invention as an optional marker, and includes antibiotic resistance genes commonly used in the art, for example, zeocin, ampicillin, gentamicin, carbenicillin, chloramphenicol, streptomycin, kanamycin, geneticin Resistance genes for neomycin, pleomycin and tetracycline.
  • the expression vector of the present invention may further comprise a gene encoding a reporter molecule (eg luciferase and beta-glucuronidase).
  • the vector may be for overexpressing pyruvate transferase or a nucleic acid molecule encoding the same in a transformant.
  • Overexpression of pyruvate transferase of the present invention may increase the production of metabolites.
  • overexpression of pyruvate transferase in microalgae increases pyruvate transfer to a pigment, resulting in increased biomass of microalgae and Since it is possible to increase the content of lipids in microalgae, there is an advantage that can greatly improve the production efficiency in microalgae culture for the production of biodiesel and the like.
  • microorganisms such as yeast, bacteria, etc.
  • the "overexpression" means to induce the expression of the target protein or gene above the level expressed in wild-type microorganisms, the method of overexpressing is not particularly limited and can be carried out using a variety of known techniques.
  • nucleic acid molecule inducible promoter encoding the pyruvate transfer enzyme of the present invention may increase expression, and may increase expression by extending the life of mRNA.
  • nucleic acid molecules can be overexpressed by changing the composition of the medium and / or the culture technique.
  • the promoter for overexpression may be known in the art, for example, a promoter of fcp (fucoxathin chlorophyll a / c binding protein) gene, which is a promoter used for microalgae transformant development, a microalgae target It may be, but is not limited to, a promoter for non-photoperiodic expression of an exogenous gene of (Ef2 promoter, KR10-1646991 is included as a reference).
  • fcp fucoxathin chlorophyll a / c binding protein
  • the vector of the present invention may further include a promoter for overexpressing a nucleic acid molecule encoding pyruvate transferase.
  • a transformation system capable of inducing overexpression of pyruvate transfer enzyme using a transformation vector (pPhaT-EF2) developed to operate a non-photoperiodic promoter of an exogenous gene and constructing a transformant using the same To prepare the experimentally confirmed the effect of overexpression.
  • the present invention provides a transformant comprising a vector comprising a nucleic acid molecule encoding a pyruvic acid transferase.
  • transformation refers to a molecular biological technique that alters genotyping by incorporating DNA chain manipulations or plasmids with foreign genes different from those of the original cells and infiltrating the cells with the original DNA.
  • transformation means that a nucleic acid molecule encoding pyruvate transferase is inserted into a microorganism, preferably a microalgae together with a vector.
  • the transformant may be microalgae.
  • Delivery of the vector to the subject cell is performed by CaCl 2 method (Cohen, SNet al., Proc. Natl. Acac. Sci. USA, 9: 2110-2114 (1973)), one method (Cohen, SN et al., Proc. Natl. Acac. Sci. USA, 9: 2110-2114 (1973); and Hanahan, D., J. Mol. Biol., 166: 557-580 (1983)), electroporation methods (Dower, WJ et al., Nucleic.Acids Res., 16: 6127-6145 (1988)), particle delivery methods (Seo et al. 2015) and the like can be used in the art.
  • Vectors injected into a microorganism can be expressed in the microorganism and overexpression can be induced.
  • pyruvic acid may be actively transferred in the microorganism, thereby actively generating metabolites.
  • the microorganism to be transformed may be a cell, preferably prokaryotic or eukaryotic.
  • the transformant may also be referred to as recombinant cells or recombinant microorganisms.
  • the microorganism may be more preferably yeast, E. coli, or microalgae.
  • the metabolism of the microorganism may be actively activated to increase the production of a target substance through metabolism.
  • the target material means a material for producing through culturing the microorganism into which the pyruvate transferase of the present invention is introduced.
  • it may be a protein or peptide produced by introducing a foreign gene, or may be a fatty acid obtained through a metabolic process of a microorganism.
  • the transformant may be transformed yeast, E. coli or microalgae.
  • the present inventors construct a recombinant vector construct inserted with a gene encoding pyruvate transferase and a promoter for inducing overexpression thereof, and Paodactilum Triconutium
  • a recombinant vector construct inserted with a gene encoding pyruvate transferase and a promoter for inducing overexpression thereof
  • Paodactilum Triconutium Two PTP gene overexpressing transformants through two-step selection Paodactilum Triconutium ( Phaeodactylum Tricornutum CCMP632 PtPTP-OE11) Paodactilum Triconutium ( Phaeodactylum Tricornutum CCMP632 PtPTP-OE16) was confirmed, and it was deposited with BRC on March 21, 2017, and each was given an accession number of KCTC 18558P and KCTC 18559P. Received the accession number of KCTC13253BP and KCTC13254BP
  • the present invention also provides a biomass production method comprising culturing a transformant comprising a vector comprising a nucleic acid molecule encoding a pyruvic acid transferase.
  • the transformant may be a transforming microorganism, and preferably may be cultured for transforming Escherichia coli, yeast or microalgae.
  • the transformant may be a transformant comprising an overexpression vector constructed to overexpress a nucleic acid molecule encoding pyruvate transferase, or the culture may be made to induce overexpression of a transgene. See description above for induction of overexpression.
  • the metabolite precursor of pyruvate which is a precursor of the microorganism
  • the metabolite precursor of pyruvate can be actively delivered to the pigment body, so that biosynthesis occurs actively in the metabolic process of the microorganism, thereby increasing the content of the metabolite in the microorganism.
  • the microorganism recombined through the enzyme of the present invention can be utilized to improve the productivity of the target material or biodiesel.
  • the culture may be carried out according to the optimum culture conditions, using a culture medium known in the art of the present invention, in consideration of the culture characteristics of the transformant, and the like, a large amount of cultures and industrial applications It is meant to include all culture systems.
  • the present invention also provides a nucleic acid molecule encoding a pyruvate transferase protein of SEQ ID NO: 1; And a promoter for over-expressing the nucleic acid molecule.
  • the present invention also provides a composition for producing biomass comprising at least one selected from the group consisting of pyruvate transferase and a nucleic acid molecule encoding the pyruvate transferase; Composition for improving biomass yield; Or it provides a composition for improving the metabolite content in microorganisms.
  • the transformation method includes introducing into the microorganism to increase the biomass in the microorganism or to increase the production of metabolites in the microorganism.
  • the present invention provides a nucleic acid molecule encoding a pyruvate transferase protein; And it provides a method for increasing the biomass production or metabolite content of a microorganism comprising introducing a promoter for overexpressing the nucleic acid molecule.
  • the metabolite content improvement or increase may be, for example, an improvement or increase in lipid content in a microorganism.
  • the nucleic acid molecule and promoter may be inserted into an expression vector.
  • the biomass production or lipid content of such microalgae may be utilized in the production of biodiesel.
  • the microalgae having improved biomass production capacity and lipid content through overexpression of the pyruvate transfer enzyme of the present invention is scaled up.
  • the present invention provides a biodiesel production method comprising culturing the transformant of the present invention.
  • the biodiesel production method may vary conditions depending on the type of the transformant transformed to include pyruvate transferase, culture characteristics, and the like, and may typically produce diesel according to the culture method of the transformant.
  • the transformant of the present invention is characterized in that the production of biomass and lipids that can be converted to biodiesel is higher or improved than that of wild-type microorganisms, and the method of converting the culture product obtained from the transformant to biodiesel is conventional. It can be carried out according to the method used in the art.
  • Triconium Phaeodactylum tricornutum Bohlin, CCMP632
  • NMA National Center for Marine Algae and Microbiota
  • Paodactilum Triconium Phaeodactylum tricornutum
  • Example 2 pyruvic acid delivery ( Pyruvate transporter Investigate related genes and acquire full-length open reading frame (ORF) genes
  • Pyruvic acid is known as a metabolic precursor of a very important metabolite involved in biosynthesis located in plastids such as fatty acids, terpenoids and branched-chain amino acids. .
  • pyruvate transporter function which is important for the production of metabolites, diatomaceous diodactyl using plant-derived pyruvate transferase (BASS2) Ohsol find the log (orthologue) present in tricot nutyum (Phaeodactylum tricornutum) was performed genetic analysis. First, homology analysis was performed in NCBI with the amino acid sequence of At2g26900, the Arabidopsis BASS2 gene.
  • L ohdak tilreom One gene located on the triconium chromosome 6 was found to have the highest level of 49% similarity with At2g26900, and the gene was defined as Pyruvate Transporter Plastid-type (PtPTP). .
  • NCBI Reference Sequence: XM_002179385 was not an intact full-length gene, further analysis was performed to analyze and secure the full-length gene sequence.
  • PCR was performed on the basis of mRNA to obtain a pyruvate-transferring chromosome-type full-length open reading frame (ORF).
  • CCMP632 cells Wild-type Paodactilum for RNA Isolation Triconium ( Phaeodactylum) tricornutum ) CCMP632 cells were collected in an exponential growth phase by centrifugation (2,000 g, 10 minutes) and RNA was purified using an RNA purification kit Hybrid-R (GeneAll Inc., Korea). Was separated.
  • the isolated RNA was converted to cDNA using the High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit (Applied Biosystems Inc.).
  • the position was selected to include the full length sequence based on the JGI gene sequence.
  • the primers expected to correspond to the positions were prepared as follows.
  • PCR was performed using genomic DNA and RNA-derived cDNA as a template using primers prepared as described above.
  • fusion high-fidelity DNA polymerase Phusion High-Fidelity DNA Polymerase, NEB Co., Ltd.
  • PCR reaction conditions were initial denaturation (98 ° C, 30sec), denaturation (98 ° C, 10sec), and annealing (58 ° C, 20 cycles), 35 cycles were performed with elongation (72 ° C., 1 min), and finally final elongation (72 ° C., 10 min).
  • PCR results in which genomic DNA was used as a template were confirmed to have a relatively large band size compared to the result of cDNA as a template.
  • the reason for the difference in the size of PCR products based on genomic DNA and cDNA is that there is an intron region in the ORF.
  • SEQ ID NO 1 Amino acid encoded by ORF of PtPTP cDNA
  • SEQ ID NO: 2 PtPTP cDNA full length sequence
  • SEQ ID NO 3 Genome From DNA Obtained PtPTP Sequence (ATG: Initiation codon ; TAG : Stop codon; Underlined: intron region; Exon area)
  • pPhaT-EF2 vector construct (FIG. 4a), a transformation system, which was previously invented and manufactured, was used.
  • a primer containing a linker for the Xba I position (Foward primer 5'-TCTAGATGCCAATGATTGCTCCCACGA-3 '; Reverse primer 5'-TCTAGACCCCGTCATCGAGAAACTAC-3') was prepared for easy insertion.
  • the full-length cDNA of the PtPTP ORF gene was performed by the same PCR method as in Example 2, and the obtained DNA fragment was cut with Xba I restriction enzyme and inserted into a pPhaT-EF2 expression vector cut with Xba I and Spe I restriction enzymes.
  • the recombinant vector pPhaT-EF2-PTP was constructed (FIG. 4A).
  • pPhaT-EF2-PTP has a zeocin resistant gene, which allows the selection of transformants for zeocin resistance.
  • the transformed plasmids were coated with tungsten particles and then diodactyl was obtained through a biolistic bombardment (particle delivery) method.
  • Tungsten particles coated with plasmid DNA were specifically mixed with plasmid, CaCl 2 , and spermidine in tungsten particle M17 (Bio-rad, 1.1 ⁇ m in diameter), and then mixed with 70% ethanol and 100% ethanol. Obtained by washing twice.
  • Genomic DNA PCR was performed to determine whether the foreign genes inserted on the genomic DNA were stably present in the resistant colonies grown in the Zeocin selection medium. The colonies were transferred to a new solid medium and independently cultured for one week, and some microalgae were taken from the grown microalgae and released in distilled water (DW), followed by forward primers (5'-CTGTGAAGCCGTGGTGAATCTT-3 ') and PtPTP of the EF2 promoter site. PCR was performed using genomic DNA as a template using a reverse primer (5'-CCGGGCAATGTAGGTACACAAG-3 ') of the ORF site.
  • PCR was performed using rTaq 5 ⁇ PCR Master Mix (ELPIS-Biotech, Daejeon, Korea), and was performed at denaturation temperature: 95 ° C, annealing temperature: 58 ° C, and extension temperature: 72 ° C (10 seconds each).
  • RNA was separated from the two transformants, followed by qRT-PCR method.
  • RNA separation was performed according to the usage of the kit using an RNA purification kit Hybrid-R (GeneAll, Korea). RNA was converted to cDNA using a High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit (Applied Biosystems Inc.). A reverse-quantitative PCR (real-time PCR) was performed on the synthesized cDNA using a gene cycle (Thermal Cycler Dice Real Time System TP 810, Takala Bio Inc) using SYBR pre-mix Ex Taq (Takara Bio Inc). Was performed.
  • the reaction conditions are 30 seconds at 95 °C; 40 cycles of 5 seconds at 95 ° C., 30 seconds at 58 ° C .; And 15 seconds at 95 ° C, 30 seconds at 60 ° C, and 15 seconds at 95 ° C.
  • Relative changes in gene expression were analyzed by Thermal Cycler Dice Real Time System Software Ver. 5 (Takara Bio Inc) was analyzed using the DDCT method (Pfaffl, 2001).
  • the TATA box-binding protein (TBP, JGI protein ID: 10199) gene was used as the internal control as used in the previous study (Seo et al. 2015).
  • a forward primer (5'-TGGATGGCCTTGATCGGTTC-3 ') and a reverse primer (5'-AACGCTCGCTTGGGACTAAA-3') were used, and a TATA box protein was used as an internal reference gene.
  • Forward primers (5′-TTGCCAGTTACGAGCCAGAG-3 ′) and reverse primers (5′-CGCCAGGTCCATTTCCTTCT-3 ′) were used as primer sets for (TBP) gene identification.
  • PtPTP transcript (mRNA) expression levels of the selected transformants are shown in FIG. 6.
  • the produced transformant was commissioned a patent resource deposit to the Korea Biological Resource Center (KCTC), and was given the following accession number.
  • KCTC13253BP Phaeodactylum tricornutum CCMP632 PtPTP-OE11
  • KCTC13254BP Phaeodactylum tricornutum CCMP632 PtPTP-OE16
  • the growth rate of the two transformants showed a normal growth rate without showing a difference compared to the control bird (WT). Therefore, biomass and lipid content analysis of transformants showing normal growth curves were performed.
  • Biomass was filtered using a 1.2 ⁇ m Isopore membrane filter (RTTP; Merck Millipore, Cork, IRL) to harvest microalgae and dried in a chamber at 65 ° C. for 24 hours and then weighed. .
  • RTTP Isopore membrane filter
  • the total lipid content was analyzed on a dry weight basis of biomass at 3, 5, and 7 days after the inoculation of microalgae, and the stationary phase, which is a stationary phase in which growth is stopped and accumulated as lipid components, is analyzed. On day one the total lipid content was investigated.
  • wild-type microalgae WT190.0
  • transformed microalgae PTP-OE11 and transformed microalgae PTP-OE16 were each cultured, and the cultured microalgae were supernatant through centrifugation (2,000 g, 15 minutes).
  • 2 ml of chloroform, 2 ml of methanol, and 1 ml of 5% NaCl were added to the harvest, followed by vortexing for 2 minutes, followed by centrifugation (2,000 g, 10 minutes) to induce layer separation.
  • the bottom chloroform layer was carefully taken and collected in another tube three times.
  • the solution was collected on a pre-weighed aluminum dish, and the dish was slightly heated to evaporate chloroform. It was then left overnight in a 65 ° C. chamber to dry completely and the lipid content was determined by weight.
  • Growth curves of the transformants are shown in Table 1 and FIG.

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Abstract

본 발명은 신규한 피루브산 전달효소에 관한 것으로, 본 발명의 신규 효소를 이용하면, 미생물의 바이오 매스 및 대사 물질의 생산량을 증가시킬 수 있어, 성장 특성이 개선된 미생물의 대량 배양을 통한 바이오 매스, 목적 단백질의 생산, 또는 바이오 디젤 생산 효율성 향상 및 바이오 에너지의 생산의 비용절감을 통해 산업 발전의 효과도 기대할 수 있다.

Description

신규한 피루브산 전달효소
본 발명은 신규한 피루브산 전달효소 및 이의 용도에 관한 발명이다.
미세조류는 광합성과 같은 기본적인 세포 내 반응 기작을 가지고 있어 기본 연구 대상이기도 하지만, 최근에는 바이오 디젤과 다른 탄화수소와 같은 선진 바이오 연료(advanced biofuel)로서 다음 세대 공급 원료로 각광 받고 있다(Kilian et al., 2011). 지상의 농작물과 비교해서 미세조류는 경작지가 필요하지 않고, 많은 종들이 오수나 염분이 포함된 수중 환경에서도 배양할 수 있다는 장점이 있다.
하지만, 개량되지 않은 야생형의 미세조류로부터 바이오 연료를 경제적으로 생산하는 데에는 한계가 있어, 이의 극복을 위한 종 최적화 수단 중 하나로 강력한 분자생물학적 도구가 필요하며, 이에 대한 개발연구가 진행되고 있다(Radakovits et al., 2010). 예전부터, 녹조류인 클라미도모나스 레인하티(Chlamydomonas reinhardtii)에서 대부분의 분자생물학적 유전학적 연구가 수행되어 왔다. 따라서 전이유전자(transgene)의 발현과 유전자 넉다운(gene knockdown)과 같은 분자생물학적 방법은 대부분 C. 레인하티(C. reinhardtii) 종에 국한해서 개발되어 왔다.
하지만, 최근에는 산업적인 응용에 관심이 증대되고 있는 규조류(diatoms)나 다른 미세조류에 대한 연구 방법(tools)이 빠르게 개발 되고 있다(Radakovits et al. 2010). 이러한 다양한 방법들 중에 영양 제한(nutrient limitation), 영양 상태(heterotrophic growth condition), 유전공학적 방법(genetic engineering method) 등을 이용하여 미세조류에서 바이오 매스 증가에 따른 유용 지질 함량의 개선을 시도하는 연구가 많이 이루어지고 있다. 현재까지도 미세조류에서 바이오 매스 혹은 지질 함량의 변화를 위해 유용 유전자를 활용한 유전학적 변형을 이용해서 바이오 연료를 개발하는 긍정적인 성과를 확인하는 연구가 지속적으로 수행되고 있다(Kilian et al., 2011; Kranz et al., 2013).
따라서 미세조류의 성장과 배양에 관한 여러 고려사항에서는 상업적으로 중요한 미세조류에서 외부 개방 폰드(pond) 혹은 비개방의 광생물반응기(photobioreactor)에서의 바이오 매스의 생산량 또는 지질 함량을 증가시킬 수 있는 이상적인 성장 특성을 갖는 미세조류의 개발을 위한 유전공학적인 변형을 위한 신규 단백질, 벡터 또는 형질전환체의 개발이 여전히 요구되고 있다.
본 발명의 목적은 신규한 피루브산 전달효소를 제공하고자 하는 것으로, 구체적으로 지방산, 테르페노이드, 아미노산과 같은 색소체에 위치하는 생합성에 관여하는 매우 중요한 대사 전구체로 알려진 피루브산의 전달을 조절하여 미세조류의 바이오 매스 생산량 또는 대사물질의 생산량의 증가에 영향을 줄 수 있는 패오닥틸럼 트리코누튬 유래의 피루브산 전달효소 및 이를 코딩하는 유전자를 새롭게 규명하였고, 이에 따라 상기 유전자를 포함하는 벡터, 상기 벡터를 포함하는 형질전환체 및 이를 이용하여 바이오 매스 또는 바이오 디젤을 생산하는 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
상기와 같은 목적을 달성하기 위해서, 본 발명자들은 미생물의 바이오매스 또는 미생물을 이용한 생합성 과정에서 대사물질의 합성을 증가시키기 위해 지속적인 연구를 한 결과, 미생물의 대사 과정에서 중요한 역할을 하는 신규한 피루브산 전달효소를 새롭게 규명하였다. 특히, 새롭게 규명한 피루브산 전달효소를 이용해서 미세조류의 지질함량 및 바이오매스 생산량을 증가시킬 수 있음을 구체적인 실험을 통해서 확인하였고, 이를 과발현 벡터에 포함시켜 형질전환체를 제조하여, 미세조류의 바이오 매스 및 지질 함량이 향상됨을 확인하여 본 발명을 완성하였다.
이러한 측면에서 본 발명은 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피루브산 전달효소를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 핵산 분자를 포함하는 벡터를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 벡터를 포함하는 형질전환체를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 형질전환체를 배양하는 것;을 포함하는 바이오매스 또는 바이오디젤 생산방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피루브산 전달효소 및 상기 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상을 포함하는 바이오매스 생산용 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 서열번호 1의 피루브산 전달효소 단백질을 코딩하는 핵산 분자; 및 상기 핵산 분자를 과발현시키기 위한 프로모터;를 미생물로 도입하는 것을 포함하는 미생물의 형질전환 방법을 제공한다.
본 발명의 신규 효소를 이용하면, 미생물의 바이오 매스 생산량 및 대사 물질 생산량을 증가시킬 수 있어, 대사 특성이 개선된 미생물의 대량 배양을 통한 목적 물질의 생산성, 바이오 디젤 생산 효율성을 향상 및 바이오 에너지의 생산의 비용절감을 통해 산업 발전의 효과도 기대할 수 있다.
도 1은 본 발명의 일 실시예 따라, 식물의 BASS2 단백질을 이용하여 오솔로그(ortholog) 검색을 위한 유전자 분석 결과를 나타낸다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따라, 패오닥틸럼 트리코누튬 유래 피루브산 전달효소로 예상되는 단백질의 서열을 JGI 사이트에서 분석한 결과를 나타낸다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 따라, JGI 유전체 분석을 기반으로 예상되는 유전자로부터 RNA가 생성되는지 확인하기 위해 수행한 PCR 결과를 나타낸다.
도 4a는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 피루브산 전달효소의 과발현 재조합 벡터의 모식도를 나타낸다.
도 4b는 본 발명의 일 실시예에 따른 플라스미드 구조체를 PCR로 확인한 결과를 나타낸다.
도 5는 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 형질전환체의 외래 유전자 삽입 여부를 확인한 PCR 결과를 나타낸다.
도 6은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 형질전환체에서 삽입 유전자(PtPTP)의 mRNA 발현 수준을 분석한 결과를 나타낸다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 형질전환체의 성장곡선도를 나타낸다.
도 8은 본 발명의 일 실시예에 따라 제조된 형질전환체의 바이오매스 및 지질 함량을 확인한 결과를 나타낸다.
본 발명은 다양한 변경을 가할 수 있고 여러 가지 형태를 가질 수 있는 바, 이하에서 기술하는 특정 실시예 및 설명은 본 발명의 이해를 돕기 위한 것일 뿐, 본 발명을 특정한 개시 형태에 대해 한정하려는 것이 아니다. 본 발명의 범위는 본 발명의 사상 및 기술 범위에 포함되는 모든 변경, 균등물 내지 대체물을 포함하는 것으로 이해되어야 한다.
이하, 본 발명에 대하여 보다 상세히 설명한다.
본 발명은 미세조류 유래 신규한 피루브산 전달효소(pyruvate transporter)를 제공한다.
본 발명에서 "피루브산 전달효소(pyruvate transporter; 또는 pyruvate transporter protein)"는 피루브산의 색소체로의 전달에 관여하는 단백질을 의미한다. 피루브산 전달 기능을 하는 단백질은 C4 식물에 많이 존재하는 것으로 알려져 있으나, 패오닥틸럼 트리코누튬과 같은 규조류에서는 피루브산 전달효소가 밝혀지지 않았다. 본 발명의 발명자는 규조류 유래의 전달효소를 찾고자 노력하여, 패오닥틸럼 트리코누튬의 유전체 분석을 통해 피루브산 전달효소의 아미노산 서열 및 이를 코딩하는 핵산분자의 서열을 밝히고, 상기 단백질을 피루브산 전달 효소 색소체-형(Pyruvate transporter plastid-type, PtPTP)으로 명명하였다. 또한, 상기 전달효소를 미세조류를 포함한 미생물에 삽입하여 과발현 시키는 경우, 형질전환된 미생물의 바이오 매스와 지질 함량이 야생형과 비교해서 약 20% 이상 향상되는 것을 실험적으로 확인하였다.
따라서, 본 발명의 피루브산 전달효소는 패오닥틸럼 트리코누튬 유래의 피루브산 전달효소 일 수 있고, 본 명세서에서 PtPTP(Pyruvate transporter plastid-type), 피루브산 전달 효소 색소체-형 등의 용어와 혼용되서 사용될 수 있다.
본 발명의 피루브산 전달효소는 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 것 일 수 있다. 또한, 본 발명의 피루브산 전달효소는 기능적 동등물을 포함한다. 상기 "기능적 동등물"이란 아미노산의 부가, 치환 또는 결실의 결과, 상기 서열번호 1로 표시되는 아미노산 서열과 적어도 70% 이상, 바람직하게는 80% 이상, 더욱 바람직하게는 90% 이상, 더더욱 바람직하게는 95% 이상의 서열 상동성을 갖는 것을 의미한다. 서열번호 1로 표시되는 단백질과 실질적으로 동질의 생리활성을 나타내는 단백질을 의미한다. 상기 "실질적으로 동질의 생리활성"이란 미생물에서 피루브산을 전달하는 활성을 의미한다.
본 발명의 신슈한 피루브산 전달효소는 바람직하게는 서열번호 1의 아미노산 서열로 표시되는 것 일 수 있다.
본 발명에서 언급되는 피루브산 전달효소는 패오닥틸럼 트리코누튬으로부터 분리 및 정제된 단백질뿐 아니라, 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자를 이용하여 제조된 재조합 단백질도 포함하는 의미이다.
이러한 측면에서, 본 발명은 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산분자를 제공한다.
본 발명에서 "핵산분자"는 DNA(gDNA 및 cDNA) 그리고 RNA 분자를 포괄적으로 포함하는 의미이고, 핵산 분자에서 기본 구성 단위인 뉴클레오티드는 천연의 뉴클레오티드 뿐 아니라, 당 또는 염기 부위가 변형된 유사체(analogue)도 포함하는 의미이다.
본 발명의 일 구현예에 따르면, 본 발명의 핵산 분자는 서열번호 2의 뉴클레오티드 서열 또는 서열번호 3의 뉴클레오티드 서열을 포함하여 표시될 수 있다. 서열번호 2의 뉴클레오티드 서열은 본 발명 피루브산 전달효소로부터 얻어진 cDNA이고, 서열번호 2의 뉴클레오티드 서열은 패오닥틸럼 트리코누튬으로부터 유전체 분석을 통해서 얻어진 gDNA이다.
본 발명의 단백질 또는 핵산 분자는 피루브산 전달효소의 활성 또는 기능에 영향을 주지 않는 변이가 존재할 수 있고, 본 발명의 피루브산 전달효소 또는 이를 코딩하는 핵산 분자는 첨부된 서열목록에 기재된 아미노산 서열 또는 뉴클레오티드 서열에 한정되지 않는 것은 당업자에게 명확하다. 구체적으로 뉴클레오티드에서의 변이는 단백질에서 변화를 가져오지 않는 것도 있다. 이러한 핵산은 기능적으로 균등한 코돈 또는 동일한 아미노산을 코딩하는 코돈(예를 들어, 코돈의 축퇴성에 의해, 아르기닌 또는 세린에 대한 코돈은 여섯 개이다), 또는 생물학적으로 균등한 아미노산을 코딩하는 코돈을 포함하는 핵산분자를 포함할 수 있다. 또한, 피루브산 전달효소의 단백질 자체에 변화를 줄 수 있는 뉴클레오티드의 변이의 경우에도, 본 발명의 피루브산 전달 기능 또는 활성과 거의 동일한 기능 또는 활성을 갖는 단백질이 얻어질 수 있는 변이라면 본 발명에 포함될 수 있다.
따라서, 본 발명의 피루브산 전달 효소를 코딩하는 핵산분자의 뉴클레오티드 서열과 실질적인 동일성을 나타내는 서열도 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석된다. 상기 "실질적인 동일성" 이란 상기한 본 발명의 서열과 임의의 다른 서열을 최대한 대응되도록 얼라인하고, 당업계에서 통상적으로 이용되는 알고리즘을 이용하여 얼라인된 서열을 분석한 경우에, 최소 80%의 상동성, 보다 바람직하게는 90%의 상동성, 가장 바람직하게는 98%의 상동성을 나타내는 서열을 의미하며, 서열비교를 위한 얼라인먼트 방법 및 알고리즘은 본 발명의 기술분야에서 통상적으로 알려진 방법에 의하여 수행할 수 있다.
상기 핵산분자는 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산분자를 포함하는 유전자 컨스트럭트 일 수 있다. 본 발명에서 "발현 컨스트럭트"는 세포 내에서 단백질 발현을 위한 최소의 엘리먼트(elemnet)만을 포함하는 핵산분자를 의미하는 것으로 정의된다. 본 발명의 발현 컨스트럭트는 추가적으로 상기 프로모터 서열에 작동 가능하게 연결된 외래 단백질 코딩 뉴클레오타이드 서열을 클로닝할 수 있는 제한효소 인식 염기서열을 포함한다. 본 발명의 발현 컨스트럭트에 포함되는 제한효소 인식 염기 서열의 제한효소는 특정의 것으로 한정되지 않으며, 예를 들어 EcoRI, EcoRII, BamHI, HindIII, TaqI, NotI, HinfI, Sau3A, PovII, SmaI, HaeIII, HgaI, AluI, EcoRV, EcoP15I, KpnI, PstI, SacI, SalI, ScaI, SpeI, SphI, StuI, XbaI 등을 포함하나 이에 한정되지 않는다. 본 발명에서 "작동 가능하게 연결된"핵산 발현 조절 서열(예: 프로모터 서열)과 다른 핵산 서열 사이의 기능적인 결합을 의미하며, 이에 의해 상기 조절 서열은 상기 다른 핵산 서열의 전사 및/또는 번역을 조절하게 된다. 본 발명에서의 외래 단백질은 조류(algae)의 유익한 형질 변형을 위해 발현할 수 있는 모든 단백질을 포함하며, 특별히 제한되지 않는다. 본 발명의 발현 컨스트럭트에는 전사 종결 서열로서, 폴리 아데닐화 서열이 포함될 수 있다.
본 발명은 또한, 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자를 포함하는 벡터를 제공한다.
본 발명의 벡터 시스템은 당업계에 공지된 다양한 방법을 통해 구축될 수 있으며, 이에 대한 구체적인 방법은 Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press(2001)에 개시되어 있으며, 이 문헌은 본 명세서에 참조로서 삽입된다.
본 발명에서 "벡터"는 형질전환 벡터, 발현벡터 등과 혼용하여 사용될 수 있는 것으로, 목적한 코딩 서열과, 특정 숙주 생물에서 작동 가능하게 연결된 코딩 서열을 발현하는데 필수적인 적정 핵산 서열을 포함하는 재조합 DNA 분자를 의미한다. 상기 적정 핵산 서열은 프로모터가 될 수 있으며, 그 외에도 추가적으로 인핸서, 전사종결자 및 폴리아데닐레이션 신호 등을 더 포함할 수 있다.
본 발명의 피루브산 전달효소는 진핵세포 유래이므로, 배양의 편의성을 고려하여, 진핵세포를 숙주로 할 수 있고, 진핵세포에서 이용 가능한 프로모터, 인핸서, 전사종결자 및 폴리아데닐레이션 신호는 공지되어 있다. 상기 벡터는 상기 유전자의 염기서열이 삽입되어 진핵세포로 직접 도입될 수 있는 발현 벡터일 수 있다.
한편, 본 발명의 벡터는 선택표지로서, 당업계에서 통상적으로 이용되는 항생제 내성 유전자를 포함하며, 예를 들어 제오신, 암피실린, 겐타마이신, 카베니실린, 클로람페니콜, 스트렙토마이신, 카나마이신, 게네티신, 네오마이신, 플레오마이신 및 테트라사이클린에 대한 내성 유전자가 있다. 또한, 본 발명의 발현 벡터는 리포터 분자(예를 들어 루시퍼라아제 및 beta-글루쿠로니다아제)를 코딩하는 유전자를 추가로 포함할 수 있다.
상기 벡터는 형질전환체에서 피루브산 전달효소 또는 이를 코딩하는 핵산 분자를 과발현 시키기 위한 것 일 수 있다. 본 발명의 피루브산 전달효소를 미생물에서 과발현 시키는 경우 대사산물의 생산을 증가시킬 수 있는 바, 일 예로, 미세조류에서 피루브산 전달효소의 과발현 시키는 경우 색소체로의 피루브산 전달이 증가하여 미세조류의 바이오 매스 및 미세조류 내 지질의 함량을 증가시킬 수 있어, 바이오 디젤 등의 생산을 위한 미세조류 배양에서 생산 효율을 크게 향상시킬 수 있는 장점이 있다. 또한, 본 발명의 피루브산 전달효소를 효모, 박테리아 등과 같은 미생물에 삽입하여 대사산물을 증가시키는 방법으로 목적 물질의 생산을 증가시킬 수 있어.
상기 "과발현"이란 야생형 미생물에서 발현되는 수준 이상으로 목적 단백질 또는 유전자의 발현을 유도하는 것을 의미하고, 상기 과발현 시키는 방법은 특별히 제한되지 않고 다양하게 공지된 기술을 이용하여 수행할 수 있다.
예를 들어, 구조 유전자로부터 상부스트림에 위치한 리보솜 결합 부위 또는 프로모터 및 조절영역을 돌연변이 시키거나 도입하여 적절한 유전자의 복제수를 증가시키으로써 수행할 수 있고 구조 유전자로부터 상부스트림이 도입된 발현 카세트가 동일한 방식으로 작용할 수 있다. 또한, 본 발명의 피루브산 전달 효소를 코딩하는 핵산분자 유도성 프로모터가 발현을 증가시킬 수 있으며, mRNA의 수명을 연장시키는 방법으로 발현을 증가시킬 수도 있다. 이에 더하여, 배지의 조성 및/또는 배양 기술을 변화시킴으로써 상기 핵산 분자를 과발현 시킬 수 있다.
상기 과발현을 위한 프로모터는 본 발명의 기술분야에서 공지된 것을 사용할 수 있고, 일 예로 미세조류 형질전환체 개발을 위해 사용된 프로모터인 fcp(fucoxathin chlorophyll a/c binding protein) 유전자의 프로모터, 미세조류 대상의 외래 유전자의 비-광주기성 발현용 프로모터(Ef2 promoter, KR10-1646991의 내용이 참조로서 포함된다)일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
따라서, 구체적인 구현예에 따라, 본 발명의 벡터는 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자를 과발현을 위한 프로모터를 더 포함하는 것 일 수 있다. 구체적으로 외래유전자의 비-광주기성 발현용 프로모터가 작동되도록 개발된 형질전환용 벡터(pPhaT-EF2)를 이용한 피루브산 전달 효소의 과발현을 유도할 수 있는 형질전환 시스템을 구축하고, 이를 이용한 형질전환체를 제조하여 실험적으로 과발현 효과를 확인하였다.
이러한 측면에서, 본 발명은 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자를 포함하는 벡터를 포함하는 형질전환체를 제공한다.
본 발명에서 "형질전환"이란 원래의 세포가 가지고 있던 것과 다른 종류의 외래 유전자가 있는 DNA 사슬 조작 또는 플라스미드가 세포들 사이에 침투되어 원래 존재하던 DNA와 결합함으로써 유전형질을 변화시키는 분자생물학적 기술을 의미하는 것으로서, 본 발명에서 형질전환이란 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산분자가 벡터와 함께 미생물, 바람직하게는 미세조류 내로 삽입되는 것을 의미한다. 따라서, 상기 형질전환체는 미세조류 일 수 있다.
상기 벡터를 대상 세포로의 운반은 CaCl2 방법(Cohen, S.N.et al., Proc. Natl. Acac. Sci. USA, 9:2110-2114(1973)), 하나한 방법(Cohen, S.N. et al., Proc. Natl.Acac. Sci. USA, 9:2110-2114(1973); 및 Hanahan, D., J. Mol. Biol., 166:557-580(1983)), 전기 천공 방법(Dower, W.J. et al., Nucleic. Acids Res., 16:6127-6145(1988)), 파티클 전달 방법(Seo et al. 2015) 등을 포함하는 본 발명의 기술분야에 공지된 방법을 이용할 수 있다.
미생물 내로 주입된 벡터는 미생물 내에서 발현될 수 있고, 과발현이 유도될 수 있다. 이 경우, 미생물 내에서 피루브산이 전달이 활발하게 일어나 대사 산물의 생성이 활발하게 일어날 수 있다.
본 발명에서 형질전환의 대상이 되는 미생물은 세포일 수 있고, 바람직하게는 원핵세포 또는 진핵세포 일 수 있다. 따라서, 상기 형질전환체는 재조합 세포 또는 재조합 미생물으로도 지칭될 수 있다. 상기 미생물은 더욱 바람직하게는 효모, 대장균, 또는 미세조류 일 수 있다. 미세조류에서 피루브산 전달효소의 과발현이 유도된 경우 색소체로의 피루브산 전달이 활발해져 미세조류 내의 지질함량이 높아지고, 바이오 매스 생산량이 증가하는 효과가 있다. 또한, 효모, 대장균 또는 미세조류과 같은 미생물 내 본 발명의 피루브산 전달효소가 도입된 경우, 상기 미생물의 대사를 활발하게 하여, 대사를 통한 목적 물질의 생산량을 증가시킬 수 있다. 상기 목적 물질은 본 발명의 피루브산 전달효소가 도입된 미생물의 배양을 통해서 생산하기 위한 물질을 의미한다. 일 예로 외래 유전자를 도입해서 생산하는 단백질, 펩타이드 등 일 수 있고, 미생물의 대사과정을 통해서 얻어지는 지방산 등 일 수 있다. 따라서, 상기 형질전환체는 형질전환된 효모, 대장균 또는 미세조류 일 수 있다.
본 발명의 일 구현예에 따라, 본 발명자는 피루브산 전달효소를 코딩하는 유전자 및 이의 과발현을 유도하는 프로모터가 삽입된 재조합 벡터 구조체를 구축하고, 이를 패오닥틸럼 트리코누튬에 주입하여, 2 단계 선발을 통해 PTP 유전자 과발현 형질전환체 2종 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum Tricornutum CCMP632 PtPTP-OE11)와 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum Tricornutum CCMP632 PtPTP-OE16)을 확정하였고, 이를 생물자원센터에 2017년 3월 21일에 기탁하여 각각에 대하여 KCTC 18558P와 KCTC 18559P의 기탁번호를 부여받았고, 2017년 4월 24일에 다시 국제기탁하여 각각에 대하여 KCTC13253BP와 KCTC13254BP의 기탁번호를 부여받았다.
또한, 본 발명은 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자를 포함하는 벡터를 포함하는 형질전환체를 배양하는 것을 포함하는 바이오 매스 생산방법을 제공한다. 상기 형질전환체는 형질전환 미생물 일 수 있고, 바람직하게는 형질전환 대장균, 효모 도는 미세조류를 배양하는 것일 수 있다.
상기 형질전환체는 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자가 과발현 되도록 구축된 과발현 벡터를 포함하는 형질전환체 일 수 있고, 또는 상기 배양은 도입 유전자의 과발현을 유도하도록 이루어질 수 있다. 과발현의 유도에 대해는 상기에 기재를 참고할 수 있다.
본 발명의 형질전환체를 이용하는 경우, 미생물의 대사물질 전구체인 피루브산의 색소체로의 전달을 활발하게 하여 미생물의 대사 과정에서 생합성이 활발하게 일어나게 하여, 미생물 내의 대사물질의 함량을 증가시킬 수 있다. 일 예로, 본 발명의 효소가 과발현 되도록 재조합된 미세조류의 경우 바이오매스 생산량 및 지질함량이 증가됨을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 효소를 통해서 재조합된 미생물은 목적 물질 또는 바이오 디젤 등의 생산성 향상을 위해 활용될 수 있다.
상기 배양은 형질전환체의 배양 특성 등을 고려하여, 본 발명의 기술분야에서 공지된 배양배지를 이용하여, 최적의 배양조건에 따라 수행할 수 있고, 실험실 단위에서의 배양 및 산업적으로 활용되는 대량배양 시스템을 모두 포함하는 의미이다.
또한, 본 발명은 서열번호 1의 피루브산 전달효소 단백질을 코딩하는 핵산 분자; 및 상기 핵산 분자를 과발현시키기 위한 프로모터;를 미생물로 도입하는 것을 포함하는 미생물의 형질전환 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 피루브산 전달효소 및 상기 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상을 포함하는 바이오매스 생산용 조성물; 바이오매스 생산량 개선용 조성물; 또는 미생물 내 대사물질 함량 개선용 조성물을 제공한다.
상기 형질전환 방법은 미생물에서 바이오매스를 증가시키거나, 미생물 내 대사물질의 생산량을 증가시키기 위해서 미생물 내에 도입시키는 것을 포함한다. 이러한 측면에서, 본 발명은 피루브산 전달효소 단백질을 코딩하는 핵산 분자; 및 상기 핵산 분자를 과발현시키기 위한 프로모터;를 미생물에 도입하는 것을 포함하는 미생물의 바이오매스 생산량 또는 대사물질 함량을 증가시키는 방법을 제공한다.
상기 대사물질 함량 개선 또는 증가는 일 예로, 미생물 내 지질 함량 개선 또는 증가 일 수 있다.
상기 핵산 분자 및 프로모터는 발현벡터에 삽입된 것 일 수 있다.
또한, 이러한 미세조류의 바이오 매스 생산량 또는 지질함량은 바이오 디젤의 생산에 활용될 수 있는 것으로, 본 발명의 피루브산 전달 효소의 과발현을 통해 바이오 매스 생산능과 지질 함량이 개선된 미세조류는 스케일 업을 통해 의하여 바이오 디젤의 생산에 이용되는 경우, 바이오 디젤의 생산효율을 비약적으로 높일 수 있으므로, 이러한 측면에서, 본 발명은 본 발명의 형질전환체를 배양하는 것을 포함하는 바이오 디젤 생산방법을 제공한다.
상기 바이오 디젤의 생산방법은 피루브산 전달효소를 포함하도록 형질전환 된 형질전환체의 종류, 배양 특성 등에 따라 조건을 다르게 할 수 있고, 통상적으로 해당 형질전환체의 배양방법에 따라 디젤을 생산할 수 있다.
본 발명의 형질전환체는 바이오 디젤로 전환할 수 있는 바이오매스 및 지질의 생산량이 야생형 미생물 보다 중가 또는 개선 된 특징을 가지는 것으로, 상기 형질전환체로부터 얻은 배양 산물을 바이오 디젤로 전환하는 방법은 통상적으로 본 기술분야에서 사용되는 방법에 따라 수행될 수 있다.
이하, 본 발명을 제조예 및 실험예를 통해 상세히 설명한다. 하기 실시예 및 실험예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐 본 발명의 범위가 이들에 한정되는 것은 아니다.
[ 실시예 ]
[실시예 1] 미세조류 ( Phaeodactylum tricornutum ) 배양
본 발명의 실험에 이용된 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum tricornutum Bohlin, CCMP632)는 National Center for Marine Algae and Microbiota(NCMA, USA)로부터 구입하였다. 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum tricornutum)을 20℃ 조건으로 f/2 배지상에서 무균 배양하였다. 배지는 인공해수(artificial sea water)로 만들었고, 10mM의 중탄산염을 첨가하였다. 세포를 주행성의 12시간 광/12시간 암(light/dark) 주기로, 광량은 형광램프를 이용하여 50 μmol·m-2·s- 1으로 제공하였고, 20℃ 항온 배양실에서 진탕인큐베이터(shaking incubator) 상에서 130rpm으로 배양하였다.
[ 실시예 2] 피루브산 전달( Pyruvate transporter 관련 유전자 조사 및 전장 ORF(full length open reading frame) 유전자 확보
2-1. 피루브산 전달 관련 유전자 조사
피루브산은 지방산(fatty acid), 테르페노이드(terpenoid), 분지아미노산(branched-chain amino acid)과 같은 색소체(plastid)에 위치하는 생합성에 관여하는 매우 중요한 대사물질의 전구체(metabolic precursor)로 알려져 있다. 대사물질의 생산에 중요한 피루브산 전달(transporter) 기능 연구를 위해, 식물유래의 피루브산 전달효소(BASS2)를 이용하여, 규조류 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum tricornutum)에 존재하는 오솔로그(orthologue)를 찾고자 유전자 분석을 수행하였다. 먼저 애기장대(Arabidopsis) BASS2 유전자인 At2g26900의 아미노산(amino acid) 서열을 가지고 NCBI에서 상동성(homology) 분석을 수행하였다.
분석결과, 도 1에 나타낸 바와 같이, 패오닥틸럼 트리코누튬 염색체(chromosome) 6에 위치하는 1개의 유전자에서 At2g26900 와 49%의 유사도가 가장 높은 수준으로 나타냄을 확인하고, 상기 유전자를 피루브산 전달 색소체-형(Pyruvate Transporter Plastid-type, PtPTP)로 규정하였다.
하지만, 상기 도 1에서 확인된 유전자의 서열(NCBI Reference Sequence: XM_002179385)은 온전한 전장 유전자가 아니었으므로, 전장(full-length) 유전자 서열을 분석 및 확보하고자 추가 분석을 실시하였다.
구체적으로, 패오닥틸럼 트리코누튬의 JGI 사이트(http://genome.jgi.doe.gov/Phatr2/Phatr2.home.html)에서 피루브산 전달을 분석해본 결과, Protein ID 3046이 NCBI의 XM_002179385와 일치함을 확인하였다. 하지만, 도 2에 나타낸 바와 같이, 해당 유전자 또한 개시코돈 등이 있지 않는 등, 상기 유전자도 온전한 유전자의 구조가 아닌 부분서열(partial sequence)로 확인되어, 전장의 유전자를 확인하기 위해 추가적인 분석을 더 실시하였다.
2-2. 피스브산 전달 색소체-형의 전장 ORF(open reading frame) 확보
피루브산 전달 색소체-형의 전장 ORF(open reading frame)를 확보하기 위하여 mRNA를 기반으로 PCR을 수행하였다.
RNA 분리를 위해 야생형 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum tricornutum) CCMP632 세포를 지수성장 단계(exponential growth phase)에서 원심분리 방법(2,000g, 10분)으로 포집하고, RNA 정제 키트(purification kit) Hybrid-R(GeneAll Inc., 한국)을 사용하여, RNA를 분리하였다.
분리된 RNA에 대하여 고용량 cDNA 역전사 키트(High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit, Applied Biosystems Inc.)를 이용하여 상기 분리된 RNA를 cDNA로 전환시켰다.
피루브산 전달 유전자의 개시코돈(start codon)과 종결코돈(stop codon)의 위치를 확인하기 위해, JGI 유전제 서열(genome sequence)을 기반으로, 전장 서열을 모두 포함할 수 있도록 위치를 선별하였고, 선별된 위치에 상응하는 것으로 예상되는 프라이머를 다음과 같이 제작하였다.
Forward primer 5'-ATGCCAATGATTGCTCCCACGATTTCTAC-3'
Reverse primer 5'-ATATCCCCGTCATCGAGAAACTAC-3'
이렇게 선정된 ORF가 실제로 RNA가 생성되는 지를 확인하기 위해서 위와 같이 제작한 프라이머(primer)를 이용하여, 유전체(genomic) DNA와 RNA 유래 cDNA를 주형(template)으로 하여 PCR을 수행하였다. 이 때 퓨전 고-충실 DNA 중합효소(Phusion High-Fidelity DNA Polymerase, NEB 사)를 사용하였고, PCR 반응 조건은 초기변성(98℃, 30sec)와 변성(98℃, 10sec), 어닐링(58℃, 20sec), 신장(72℃, 1min)으로 35 사이클(cycle)을 수행하였고, 마지막으로 최종 신장(72℃, 10min)을 수행하였다.
PCR 수행 결과는 도 3에 나타낸 바와 같이, 유전체(genomic) DNA를 주형으로 수행한 PCR의 경우에는 cDNA를 주형으로 한 결과와 비교해 비교적 밴드 크기가 큰 것을 확인하였다. 유전체 DNA(genomic DNA)와 cDNA를 주형으로 한 PCR 산물(product)의 크기가 서로 상이한 이유는 ORF내에 인트론(intron) 영역이 존재하기 때문이다.
이렇게 생성된 cDNA PCR 산물을 클로닝(cloning)하기 위해 겔 용리(gel elution)를 수행하였고, 이렇게 분리된 PCR 산물을 클로닝벡터(Dr. Blunt TOPO cloning kit, ㈜엠지메드)에 삽입하여 클로닝을 하였다. 이렇게 확보된 유전자의 시퀀싱 분석을 통해 다음 결과와 같은 염기서열을 확인하였다. 상기 확인한 염기서열의 분석 결과 피루브산 전달 색소체-형(Pyruvate transporter Plastid-type, PtPTP) 유전자의 전장 ORF임을 확정할 수 있었다.
서열번호 1: PtPTP cDNA의 ORF에 의하여 코딩된 아미노산
MPMIAPTISTTTTSTALSATSLQAANGEAAGKSFGQKLFEGYEKTANVATTLFPLWTVLFTGLALKSPSSFAWFTTEYFTAGLAALMLSMGITLTPNDFKKVAARPNATLMQFALCYGMMPMLALGLGKAFALEPALIAGMVLVGSINGGQASNLCTYIARGNVALSVLMTTATTLGAIVMTPLLCKSLLGAVVPVDAAGIAKSTIQVVLAPIVIGMTTNKFFPRFVEKILPFAPVVGVVSTCLLVASAVAQVAEPILNAGLRLQIPIMLIHLLGGLVGYILPRLTGFGETSSRTMAIETSMKSSAFGFLLAKLHFGDYAARVPSAVSVVWMALIGSLLAVVWRYIPVETTGKFDRSLVDKYPPFSPKRAFGKFLQSVGLQKKDDDATPTPSVTEA
서열번호 2: PtPTP cDNA 전장서열
TCGTATGGCGGTACATCCCGGTGGAAACCACCGGCAAGTTCGACCGTTCCTTGGTGGACAAGTACCCGCCCTTTAGTCCCAAGCGAGCGTTTGGAAAATTCCTACAGTCGGTTGGTCTGCAAAAGAAGGATGACGACGCGACACCGACACCCTCGGTGACGGAAGCGTAGTTTCTCGATGACGGGGATAT
서열번호 3: 유전체 DNA로부터 얻은 PtPTP 서열(ATG: 개시코돈 ; TAG : 종결코돈; 밑줄: 인트론 영역; 그 외 엑손영역)
ATGCCAATGATTGCTCCCACGATTTCTACGACGACGACGTCCACTGCTCTTTCCGCAACGGTACGTACCAATCGACAACGATACCGCACACATCGATACAATACCAACCGAGCGCGAGAGAGGATTCCGGTTTCACCACAAAGCAGCGATCCTCACGGTCTTTCTTCCTATATCCTCTTCTTGGTACAGTCTCTCCAAGCCGCTAACGGTGAGGCAGCCGGAAAATCCTTCGGTCAGAAACTCTTTGAAGGCTACGAAAAGACGGCCAACGTCGCCACGACGCTCTTTCCCCTCTGGACCGTCCTTTTCACCGGTCTCGCCCTCAAAAGCCCGTCCTCTTTCGCCTGGTTTACCACCGAATACTTTACGGCGGGTCTGGCCGCACTCATGCTCTCCATGGGCATCACGCTCACCCCCAACGATTTCAAAAAGGTAGCCGCCCGTCCCAACGCCACGCTCATGCAGTTTGCTCTCTGTTACGGAATGATGCCAATGCTGGCTCTGGGACTCGGTAAGGCTTTCGCCTTGGAACCCGCCTTGATTGCCGGTATGGTGTTGGTCGGGTCCATCAACGGTGGACAAGCTTCCAACTTGTGTACCTACATTGCCCGGGGTAACGTCGCCTTGTCGGTCCTCATGACCACCGCTACCACCTTGGGCGCCATCGTCATGACCCCGCTCTTGTGCAAGAGCCTCCTGGGGGCCGTCGTACCCGTCGACGCCGCTGGGATCGCCAAATCCACCATTCAGGTACGTTCATCGCTGTCCGCCTAGTAACGCGTAGTTGCAGTACACCACCCACTCGTTGCACCGTTCGTCGATGGAGGTTCCTGGAGAGCAGAGCTCACACATTAGTGTTGTTGTCGCTACGTTTGCAGGTCGTGCTAGCTCCGATTGTGATTGGTATGACCACCAACAAATTCTTCCCCCGGTTTGTCGAGAAAATCCTTCCGTTCGCCCCCGTTGTTGGGGTCGTCTCGACCTGTTTACTGGTTGCCAGTGCGGTCGCTCAAGTTGCCGAACCCATCCTGAACGCCGGATTGCGTTTACAGATCCCCATAATGTTGATTCATCTTTTGGGAGGACTCGTCGGCTACATTTTGCCCCGTTTGACCGGATTTGGCGAGACGTCCGCCCGCACCATGGCGATTGAAACCTCCATGAAGAGCTCCGCCTTTGGTTTCCTCTTGGCCAAGCTGCACTTTGGTGACTACGCGGCCCGTGTGCCTTCGGCCGTCTCCGTCGTGTGGATGGCCTTGATCGGTTCCTTGTTGGCCGTCGTATGGCGGTACATCCCGGTGGAAACCACCGGCAAGTTCGACCGTTCCTTGGTGGACAAGTACCCGCCCTTTAGTCCCAAGCGAGCGTTTGGAAAATTCCTACAGTCGGTTGGTCTGCAAAAGAAGGATGACGACGCGACACCGACACCCTCGGTGACGGAAGCGTAGTTTCTCGATGACGGGGATAT
[실시예 3] 형질전환용 발현벡터 제작
상기 실시예 2에서 클로닝된 PtPTP 유전자의 전장 ORF를 형질전환용 벡터에 삽입하고자, 앞서 발명, 제작된 형질전환 시스템인 pPhaT-EF2 벡터 구조체(도 4a)를 이용하였다. 용이하게 삽입하기 위해 Xba I 위치에 대한 링커를 포함하는 프라이머(Foward primer 5'-TCTAGATGCCAATGATTGCTCCCACGA-3'; Reverse primer 5'-TCTAGACCCCGTCATCGAGAAACTAC-3')를 제작하였다. PtPTP ORF 유전자의 전장 cDNA를 실시예 2와 같은 PCR 방법으로 수행하고 확보된 DNA 절편을 Xba I 제한효소로 자른 후, Xba I과 Spe I 제한효소로 자른 pPhaT-EF2 발현벡터(expression vector)에 삽입하여 재조합 벡터 pPhaT-EF2-PTP를 제작하였다(도 4a). pPhaT-EF2-PTP는 제오신(Zeocin) 저항성 유전자를 갖고 있어 제오신-저항성여부로 형질전환체를 선별할 수 있다.
상기에서 제조한 플라스미드 구조체가 잘 제작되었는지 확인하였고, 그 결과는 도 4b에 나타내었다.
[실시예 4] 피루브산 전달효소 과발현 형질전환체의 제작
제작된 형질전환용 플라스미드(plasmid)를 코팅된 텅스텐 입자를 가지고 바이오리스틱 유전자총(biolistic bombardment, particle delivery) 방법을 통해 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum tricornutum)에 도입하였다. 플라스미드 DNA가 코팅된 텅스텐 입자는 구체적으로 텅스텐 입자 M17(Bio-rad, 직경 1.1㎛)에 플라스미드, CaCl2, 스페르미딘(spermidine)을 넣고 혼합 한 후, 70% 에탄올과 100% 에탄올을 이용하여 두 번 세척하여 얻었다. 이를 매크로캐리어(macrocarrier)에 올려 건조 시킨 후, 제조자에 의해 추천된 방법에 따라 1550 psi의 압력 파열판을 갖는 바이오리스틱 입자 전달 시스템 PDS-1000/He(biolistic particle delivery system PDS-1000/He, Bio-Rad Laboratories)를 이용하여, 고체 배지 위에 깔아둔 패오닥틸럼 트리코누튬(Phaeodactylum tricornutum)을 대상으로 유전자총(particle bombardment) 방법을 수행하였다. 형질도입 후, 24시간 동안 빛 조건에서 배양하고, 제오신(100 ug/ml)을 함유하는 f/2 고체 배지 상에 도말하고, 3주 후에 제오신(zeocin) 저항성 콜로니 형질전환체를 선발하였다(Seo et al. 2015).
제오신(Zeocin) 선별 배지에서 성장한 저항성 콜로니를 대상으로 유전체(genomic) DNA상에 삽입된 외래유전자가 안정적으로 존재하는지를 확인하고자 유전체 DNA PCR을 수행하였다. 콜로니들을 새 고체 배지로 옮겨 독립적으로 1주일간 배양 후 성장한 미세조류에서 일부 미세조류를 취하여 증류수(DW)에 풀어준 후, 이를 가지고 EF2 프로모터 부위의 포워드 프라이머(5'-CTGTGAAGCCGTGGTGAATCTT-3')와 PtPTP ORF 부위의 리버스 프라이머(5'-CCGGGCAATGTAGGTACACAAG-3')를 사용하여 유전체 DNA를 주형으로 PCR을 수행하였다. PCR은 rTaq 5ХPCR Master Mix (ELPIS-Biotech, Daejeon, Korea)를 이용하였으며 변성 온도: 95℃, 어닐링 온도: 58℃, 신장 온도: 72℃(각 10초씩)에서 이루어졌다.
도 5에 나타낸 바와 같이, 형질전환체 PtPTP-OE-11과 PtPTP-OE-16에서 외래 삽입 유전자가 잘 존재하는 것을 확인하였다.
[실시예 5] 피루브산 전달효소 과발현 형질전환체의 정량적 qRT-PCR
확보된 형질전환체에서 PtPTP 유전자의 전사체(mRNA) 발현 정도를 확인하기 위해, 두 형질전환체에서 RNA를 분리한 후, qRT-PCR 방법을 수행하였다.
RNA 분리는 RNA 정제(purification) 키트(kit) Hybrid-R(GeneAll 사, Korea)을 이용하여, 상기 키트의 사용법에 따라 수행하였다. 고용량 cDNA 역전사 키트(High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit, Applied Biosystems Inc.)를 이용하여 RNA를 cDNA로 전환시켰다. 상기 합성된 cDNA를 대상으로 SYBR pre-mix Ex Taq(Takara Bio Inc)를 이용하여 유전자 증폭기(Thermal Cycler Dice Real Time System TP 810, Takala Bio Inc)로 역 전자-정량 PCR(real-time PCR)을 수행하였다. 이 때, 반응 조건은 95℃에서 30초; 95℃에서 5초, 58℃에서 30초의 40 사이클; 및 95℃에서 15초, 60℃에서 30초, 95℃에서 15초로 수행하였다. 상대적인 유전자 발현량의 변화를 Thermal Cycler Dice Real Time System Software Ver. 5(Takara Bio Inc) 상에서 DDCT 방법(Pfaffl, 2001)을 이용하여 분석하였다. TATA box-결합 단백질(TBP, JGI 단백질 ID:10199) 유전자를 내부 대조구(internal control)로 기존 연구(Seo et al. 2015)에서 이용한 바와 같이 이용하였다.
qRT-PCR을 위한 프라이머는 다음과 같다.
PtPTP 전사체의 발현 정도를 확인하기 위해, 포워드 프라이머(5'-TGGATGGCCTTGATCGGTTC-3')와 리버스프라이머(5'-AACGCTCGCTTGGGACTAAA-3')를 이용하였고, 내부 참조 유전자(internal reference gene)로 TATA box protein(TBP) 유전자 확인을 위한 프라이머 세트로 포워드프라이머(5'-TTGCCAGTTACGAGCCAGAG-3'), 리버스프라이머(5'-CGCCAGGTCCATTTCCTTCT-3')를 이용하였다.
선별된 형질전환체들의 PtPTP 전사체(mRNA) 발현 수준은 도 6에 나타내었다.
도 6에 나타낸 바와 같이, 전사체 발현 정도를 분석한 결과, PTP-OE11과 PTP-OE16 형질전환체에서 대조구(WT)와 비교해서 각각 4.9배와 21.4배의 PtPTP 전사체의 발현이 증가하는 것을 확인하였다.
상기 제작된 형질전환체는 한국 생물자원센터(KCTC)에 특허자원기탁을 의뢰하였고, 하기와 같은 기탁번호를 부여 받았다.
KCTC13253BP: Phaeodactylum tricornutum CCMP632 PtPTP-OE11
KCTC13254BP: Phaeodactylum tricornutum CCMP632 PtPTP-OE16
[ 실시예 6] 피루브산 전달효소 과발현 형질전환체의 바이오매스와 지질 증대 효과 확인
피루브산 전달효소 과발현 형질전환체에 의하여 바이오매스의 생산량 증가를 확인하기 위하여, 상기에서 선발된 형질전환체의 성장속도, 바이오매스(biomass) 측정, 총 지질 함량 분석을 다음과 같이 수행하였다.
6.1. 세포 농도(성장률) 측정
미세조류의 세포 농도는 헤모사이토미터(hemocytometer, Neubauer) 위에서 세포 계수(cell counting)를 통해 분석하였다. 시간의 경과에 따른 성장률을 확인한 결과는 도 7에 나타내었다.
도 7에 나타낸 바와 같이, 두 형질전환체의 성장률은 대조군 조류(WT)와 비교해서 차이점을 보이지 않고 정상적인 성장 속도를 보여 주었다. 따라서, 정상적인 성장곡선을 보여주는 형질전환체의 바이오매스와 지질 함량 분석을 수행하였다.
6.2. 총 바이오 매스 및 총 지질량 분석
바이오매스는 1.2 ㎛ 이소포어 멤브레인 필터(Isopore membrane filter, RTTP; Merck Millipore, Cork, IRL)를 이용해 여과하여, 미세조류를 수확하고 챔버에서 24시간 동안 65℃ 조건으로 건조시킨 후, 중량을 측정하였다.
총 지질 함량은 미세조류 신규 접종 후 3, 5, 7일에 각각 바이오매스를 건조 중량(dry weight)기준으로 분석을 수행하였고, 성장이 정지되고 지질 성분으로 축적이 이루어지는 정지상(stationary phase)인 7일째에 총 지질 함량을 조사하였다.
구체적으로, 야생형 미세조류(WT190.0), 형질전환 미세조류 PTP-OE11 및 형질전환 미세조류 PTP-OE16 각각을 배양하고, 배양한 미세조류를 원심분리(2,000 g, 15분)를 통해 상층액을 제거하고, 수확하였다. 상기 수확물에 클로로포름 2ml, 메탄올 2ml, 5% NaCl 1ml을 넣어, 2분동안 볼텍싱(vortexing) 한 후 원심 분리(2,000 g, 10분)를 하여, 층 분리를 유도하였다. 아래 클로로포름 층을 조심스럽게 취해 다른 튜브로 모으는 과정을 3번 반복해서 수행하였다. 무게가 미리 측정된 알루미늄 접시 위에 모아둔 용액을 담고, 접시를 약하게 가열하며 클로로포름을 증발시켰다. 그 다음 65℃ 챔버에서 하룻밤 동안 두어 완전히 건조시킨 후 중량을 통해 지질 함량을 측정하였다. 상기 형질전환체의 성장곡선은 표 1 및 도 8에 나타내었다.
WT190.0 PTP-OE11 PTP-OE16
바이오매스(mg/L) 3일 190.0±12.2(100%) 211.0±30.8(111%) 237.0±38.6(125%)
5일 269.3±7.6(100%) 319.5±23.4*(117%) 337.8±26.8*(125%)
7일 313.7±21.1(100%) 353.7±13.6(113%) 331.0±15.7(106%)
지질(mg/L) 7일 53.7±3.5(100%) 62.6±5.1*(117%) 63.4±3.9*(118%)
도 8에 나타낸 바와 같이, 바이오매스 분석 결과 지수 성장(exponential phase) 시기인 5일에 PTP 과발현 형질전환체는 각각 117%, 125%로 증가함을 확인할 수 있었고, 배양 7일째에 측정된 총 지질함량에서도 117%와 118%로 증가함을 확인할 수 있었다(*는 t-test 결과; p-value < 0.05의 신뢰 수준). 최종적으로 본 발명의 피루브산 전달효소가 과발현 신규 형질전환체는 바이오매스 생산성과 지질 생산성이 향상된 특성을 가짐을 확인하였다.
Figure PCTKR2018004510-appb-I000001
Figure PCTKR2018004510-appb-I000002
Figure PCTKR2018004510-appb-I000003
Figure PCTKR2018004510-appb-I000004

Claims (12)

  1. 서열번호 1의 아미노산 서열을 포함하는 피루브산 전달효소.
  2. 제1항의 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자.
  3. 제2항에 있어서,
    상기 핵산 분자는 서열번호 2의 뉴클레오티드 서열 또는 서열번호 3의 뉴클레오티드 서열로 표시되는 핵산 분자.
  4. 제2항의 핵산 분자를 포함하는 벡터.
  5. 제4항에 있어서,
    상기 벡터는 상기 핵산 분자를 과발현시키기 위한 프로모터를 더 포함하는 것인, 벡터.
  6. 제4항 또는 제5항의 벡터를 포함하는 형질전환체.
  7. 개선된 바이오매스 또는 지질 생산능을 갖는 패오닥틸럼 트리코누튬 CCMP632 PtPTP-OE11(KCTC 13253BP) (Phaeodactylum Tricornutum CCMP632 PtPTP-OE11); 또는 패오닥틸럼 트리코누튬 CCMP632 PtPTP-OE16(KCTC 13254BP) (Phaeodactylum Tricornutum CCMP632 PtPTP-OE16).
  8. 제6항에 따른 형질전환체를 배양하는 것;을 포함하는 바이오매스 생산방법.
  9. 서열번호 1의 아미노산 서열로 표시되는 피루브산 전달효소 및 상기 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상을 포함하는 바이오매스 생산용 조성물.
  10. 서열번호 1을 포함하는 피루브산 전달효소를 코딩하는 핵산 분자; 및 상기 핵산 분자를 과발현시키기 위한 프로모터;를 미생물로 도입하는 것을 포함하는 미생물의 형질전환 방법.
  11. 제10항에 있어서,
    상기 핵산 분자 및 프로모터는 발현벡터에 삽입된 것인, 방법.
  12. 제6항에 따른 형질전환체를 배양하는 것;을 포함하는 바이오디젤 생산방법.
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