WO2017159943A1 - 화학반응을 통하여 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체 및 이의 제조 방법 - Google Patents

화학반응을 통하여 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체 및 이의 제조 방법 Download PDF

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fibroblast growth
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heparin complex
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홍진기
한의영
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중앙대학교 산학협력단
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    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/115—Basic fibroblast growth factor (bFGF, FGF-2)

Definitions

  • the present invention relates to a fibroblast growth factor-heparin complex in which fibroblast growth factor (FGF) and heparin are bonded through a chemical reaction, and a method for preparing the same.
  • FGF fibroblast growth factor
  • the growth factor of the polypeptide structure consisting of amino acids enables not only cell division but also signaling between cells which promotes cell proliferation, migration, differentiation and maturation. It is a substance that makes it.
  • Fibroblast proliferation factor one of the types of proliferation factors, acts on various cells such as endothelium cells and neurons as well as fibroblasts, and promotes blood cell regeneration by promoting cell proliferation, cell movement and differentiation. It has excellent wound healing effect and is clinically applied to various body transplant surgery and functional cosmetics. However, a problem has been reported that the effect of the growth factor is lowered because the structure of the growth factor is easily modified in the body environment to decrease the activity.
  • fibroblast growth factor has a specific binding force with heparin (heparin), it is also referred to as heparin binding growth factor.
  • heparin aids in dimerization of proliferation factor and receptor (FGFR) in a 1: 1: 1 (FGF: FGFR: heparin) or 2: 2: 1 ratio, increasing proliferation factor-receptor binding. Therefore, studies have been reported that the signal transduction efficiency given by the proliferation factor to the cell is increased to have higher activity and cell proliferation effect.
  • fibroblast growth factor-heparin In general, fibroblast growth factor-heparin is known to form a complex by non-covalent bonds.
  • the binding site of basic fibroblast growth factor (bFGF) that binds heparin is defined in the vicinity of Lys-27, Arg-42, Arg-118, Lys-119, Lys-128, and Lys-134.
  • bFGF basic fibroblast growth factor
  • the present invention relates to a fibroblast growth factor-heparin complex and a method for preparing the fibroblast growth factor and heparin bound through a chemical reaction, to provide a fibroblast growth factor with improved structural stability and cell proliferation effect.
  • Fibroblast growth factor contains various functional groups such as amine group, carboxyl group, thiol group, and heparin is composed of L-iduronic acid, D-glucuronic acid, and D-glucosamine polysaccharide chain. Functional groups, such as these are included. The reaction between these functional groups enhances the binding of proliferative factor-heparin, thereby reducing the restriction when synthesizing the drug carrier for proliferation factor delivery, and also enables selective covalent bond generation according to the functional group.
  • One aspect of the present invention is a fiber in which an amine group (-NH 2 ) of lysine (-NH 2 ) and a carboxyl group (-COOH) of heparin are chemically bonded to one or more amino acids constituting fibroblast growth factor (FGF). Provides blast growth factor-heparin complex.
  • FGF fibroblast growth factor
  • the fibroblast growth factor may be a human fibroblast growth factor consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the chemical bond is 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride, EDC) and sulfo This can occur by using sulfo-N-hydroxysulfosuccinimide (sulfo-NHS).
  • EDC sulfo-NHS
  • the amine group of the fibroblast growth factor and the carboxyl group of heparin form a peptide bond through an EDC and sulfo-NHS reaction.
  • the amino acid sequence positions 27, 30, 35, 55, 61, 75, 86, 95, 119, 128, 134, 138, 144 of the fibroblast growth factor, in particular basic fibroblast growth factor And 154 lysine is located such that the chemical bond may occur at the amine group of one or more lysines selected from the group consisting of the above positions.
  • One aspect of the present invention is a fibroblast growth factor-heparin in which a thiol group (-SH) of cysteine (-SH) of one or more amino acids constituting the fibroblast growth factor and a vinyl group (-CHCH 2 ) added to heparin are chemically bonded.
  • a thiol group (-SH) of cysteine (-SH) of one or more amino acids constituting the fibroblast growth factor and a vinyl group (-CHCH 2 ) added to heparin are chemically bonded.
  • the fibroblast growth factor may be a human fibroblast growth factor consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the cysteine is located at amino acid sequence positions 34, 78, 96 and 100 of the fibroblast growth factor, in particular basic fibroblast growth factor, the chemical bond is selected from the group consisting of May occur in the thiol group of one or more cysteines.
  • the material that can be used for addition of the vinyl group to the heparin may be a material that can be added to the heparin by Michael addition reaction to form a Michael acceptor residue.
  • the term “microreceptor residue” refers to a functional group capable of participating in a “microorganism” reaction in which a new covalent bond is formed between the microreceptor residue and the donor residue.
  • Michael receptor residues are electrophilic and "donor residues" are nucleophilic.
  • Vinylsulfonylmethyl groups are non-limiting examples of Michael® receptor residues.
  • the material that can be used for addition of the vinyl group to heparin may be a material having two vinyl groups and capable of acting as an electron withdrawing group after the addition.
  • an excess of divinyl sulfone (DVS) having two vinyl groups can be added to add the hydroxy group of heparin to one vinyl group of the divinylsulphone.
  • heparin-divinylsulfone (HEP-DVS) containing a vinyl group which can be activated by the presence of an electron withdrawing group in the molecule can be obtained.
  • the added vinyl group is a vinylsulfonylmethyl group, allylsulfonylmethyl group, preferably vinylsulfonylmethyl group.
  • the chemical bond may be caused by the Michael addition reaction.
  • One aspect of the present invention provides a method for preparing a pharmaceutical composition
  • a method for preparing a pharmaceutical composition comprising (a) dissolving EDC, sulfo-NHS and heparin in a solvent; (b) mixing the fibroblast growth factor with the result of step (a); And (c) purifying the resultant of step (b) to obtain a fibroblast growth factor-heparin complex.
  • the compounds mixed in steps (a) and (b) are contacted to perform an EDC / sulfo-NHS reaction to obtain a complex in which fibroblast growth factor and heparin are linked by peptide bonds.
  • solvent used in step (a) means a liquid compound capable of dissolving the compound in a solid state, and may be an organic or inorganic solvent such as water, alcohol, benzene, hexane or a buffer, but is not limited thereto. No, 2- (morpholinoethanesulfonic acid, MES) buffer is preferred.
  • MES morpholinoethanesulfonic acid
  • the mass ratio of the EDC and sulfo-NHS may be 2: 1 to 1: 2, the EDC / sulfo-NHS reaction is the mass ratio of EDC and sulfo-NHS 1: 2 to 2 If: 1, it proceeds successfully.
  • the mass ratio of the EDC and sulfo-NHS and heparin may be at least 2: 1: 2 to 1: 2: 2, or heparin may be added in excess of the above range.
  • the growth factor plays a role of the limiting reactant, it is not a problem to add an excessive amount of heparin.
  • the term "purification” refers to a process for removing impurities other than the target substance, and specifically, there are methods of dialysis, salting out, chromatography, electrophoresis, but not limited thereto. Is performed. According to one embodiment of the invention, the dialysis may be performed on deionized water.
  • One aspect of the present specification comprises the steps of (a) dissolving heparin in water, followed by adding a basic aqueous solution; (b) contacting a compound containing a vinyl group with the resultant of step (a); (c) adding an acidic solution to the product of step (b); (d) mixing the resultant of step (c) with the fibroblast growth factor; And (e) purifying the resultant of step (d) to obtain a fibroblast growth factor-heparin complex.
  • the heparin and the fibroblast growth factor modified by step (d) are contacted with the Michael addition reaction to proceed with fibroblast proliferation.
  • a complex in which factor and heparin are combined can be obtained.
  • water includes deionized water, purified water and distilled water.
  • Aqueous base as used herein, OH - as an aqueous solution containing ions, but may be NaOH, KOH or NH 4 OH aqueous solution, not limited to this, and is preferably aqueous NaOH solution.
  • an "acidic aqueous solution” is an aqueous solution containing H + ions, but may be HCl, H 2 SO 4 or CH 3 COOH aqueous solution, but is not limited thereto, and preferably an aqueous HCl solution.
  • the basic aqueous solution serves to provide ions for initiating and proceeding the Michael addition reaction
  • the HCl solution serves to terminate the reaction.
  • step (d) may be performed at pH 7.4 to 9. Under base conditions of pH 9 or higher, the activity of the fibroblast growth factor is low, and under acidic conditions of pH 7.4 or lower, the Michael addition reaction efficiency between the fibroblast growth factor and heparin in step (d) is low.
  • One aspect of the present invention provides various nanostructures including the fibroblast growth factor-heparin complex. Since the fibroblast growth factor-heparin complex exhibits a negative charge of -50 to -40 mV as a whole due to chemical bonds, the fibroblast growth factor-heparin complex is capable of electrostatic bonding with other polymer materials.
  • the nanostructures may be multilayer nano thin films or nanoparticles.
  • the multilayer nano thin film may be formed by a layer-by-layer lamination method (layer-by-layer).
  • the multi-layered nano thin film may be formed on the surface of various kinds of substrates and various types of substrates and nanoparticles of various two-dimensional shapes due to less substrate constraints.
  • a thin film may be formed on an iron oxide magnetic nanoparticle, a Si wafer, a PET film, and a cell culture vessel (made of polycarbonate), but is not limited thereto.
  • the multi-layered nano thin film may be used as it is after plate formation, and may also be used through processing after forming into a tube, roll, or three-dimensional shape.
  • the nanoparticles are poly (allylamine hydrochloride), polyethylenimine, collagen, or crosslink, which is an electrolyte polymer capable of binding to heparin. It can be prepared using the material EDC, sulfo-NHS and the like.
  • the nanostructures can be applied to functional medical polymer materials or biomaterials.
  • the complex prepared by combining heparin and fibroblast growth factor in a chemical reaction according to the present invention is easy to modify the structure under body conditions or cell culture conditions, to compensate for the shortcomings of the fibroblast growth factor having a short active half-life, It exhibits better structural stability and cell proliferation effect than physically linked growth factor-heparin.
  • the prepared fibroblast growth factor-heparin complex can be continuously released in the living environment and culture cell environment through various drug carriers such as micelles, nano thin films, hydrogels. Therefore, the present invention is not only applicable to the medical field such as blood vessel regeneration and wound treatment, but also applicable to a functional biomaterial that promotes stem cell culture platform, cell proliferation, differentiation, and exercise.
  • FIG. 1 shows a schematic of covalent binding of heparin and fibroblast growth factor (bFGF) via Michael addition and EDC / sulfo-NHS reaction pathway.
  • Fig. 2 shows the H-NMR results of heparin (HEP-DVS) (bottom) functionalized with unreacted heparin (top) and divinylsulfone (DVS) in heparin.
  • Figure 3 shows the simulation results of the structural stability of the fibroblast growth factor (bFGF) in glycerol solvent.
  • Figure 4 shows the results of the dynamic light scattering (DLS) of the fibroblast growth factor-heparin complex of the present invention.
  • Figure 5 shows the Western blot results (A: reducing SDS-PAGE, B: Native PAGE) of the fibroblast growth factor-heparin complex of the present invention.
  • Figure 6 shows the activity change with time using the enzyme immunoassay of the fibroblast growth factor-heparin complex of the present invention.
  • Figure 7 shows an image (A) and a graph (B) showing the effect of promoting the proliferation of the fibroblast growth factor-heparin complex of the present invention in adult mesenchymal stem cell culture.
  • Figure 8 shows an image (A) and graph (B) showing the effect of promoting the proliferation of the fibroblast growth factor-heparin complex of the present invention in normal fibroblast cell culture.
  • nanoparticle (a) containing the fibroblast growth factor-heparin complex of the present invention, nanoparticles coated in a thin film form (b), nano thin films formed on various surfaces (c: Si wafer, d: PET film , e: polycarbonate cell culture vessel), and a scanning electron microscope image of the surface (f) and cross section (g) of the coated nano thin film.
  • heparin was dissolved in 10 mL of DI water, and then 6.66 mL of 0.25M NaOH aqueous solution was added while stirring the heparin solution. After 1 minute, 0.36 mL of divinylsulfone solution (97%) and 2.64 mL of deionized water were added, and after 2 minutes 0.27 mL of 6M HCl was added to terminate the reaction. After completion of the reaction, the sample was dialyzed on deionized water for 3 days using MWCO 14,000 tubes to obtain purified functionalized heparin, and the solvent was removed by freeze drying.
  • Divinylsulfone functionalized heparin (HEP-DVS) synthesized in Example 1 was identified by H-NMR (see FIG. 2). It was confirmed that a part of the H peak of the hydroxyl group of the unreacted heparin disappeared from the divinyl sulfone functionalized heparin. In addition, it was confirmed that the color of the synthesized functionalized heparin was light brown compared to the transparent heparin.
  • EDC, sulfo-NHS and heparin were mixed in a mass ratio of 2: 1: 2, dissolved in 0.5 M 2- (morpholino) ethanesulfonic acid buffer (MES buffer), and then reacted at room temperature for 45 minutes. 100 ⁇ L of the solution and 1.5 ⁇ g of fibroblast growth factor (bFGF) were mixed at room temperature for 15 minutes. The reaction samples were dialyzed three times for 30 minutes in deionized water using MWCO 14,000 tubes to remove EDC and sulfo-NHS.
  • MES buffer 2- (morpholino) ethanesulfonic acid buffer
  • bFGF fibroblast growth factor
  • D-PBS of pH 7.4 was titrated to pH 9 using NaOH aqueous solution. 0.1 M, pH 7.4 to pH 9, respectively, mixed with 1 mM EDTA, D-PBS, and then mixed with 90 ⁇ L of a solution of D-PBS (pH 7.4 to pH 9) + EDTA 1 ⁇ L of growth factor (bFGF), respectively I was. This was reacted for 16 hours in an incubator at 4 ° C., and the finished sample was dialyzed three times for 30 minutes in deionized water using a MWCO 14,000 tube to remove EDTA and NaOH.
  • bFGF growth factor
  • FIG. 1 A schematic diagram showing the process of Examples 1, 3 and 4 is shown in FIG.
  • the samples were each electrophoretically separated on a 10% SDS polyacrylamide gel and transferred via electrophoresis onto a nitrocellulose membrane.
  • the membrane was blocked with 5% skim milk for 1 hour and then reacted for 4 hours using purified Tb7 antibody. Thereafter, the reaction was performed at room temperature for 1 hour using an anti-rabbit IgG antibody as a secondary antibody.
  • Proteins with completed immune responses were visualized using a chemiluminescence detection system (PIERCE) according to the manufacturer's protocol (see FIG. 5).
  • PIERCE chemiluminescence detection system
  • the untreated bFGF decreased the activity after 20 hours to about 20%, whereas the growth factor-heparin complex maintained the activity of about 60 to 70%. Therefore, it was confirmed that the structural stability of the growth factor-heparin complex at 37 ° C. PBS was higher than that of pure bFGF.
  • the culture medium was filtered by putting five samples, the culture medium was replaced, the five samples were as follows: (1) untreated culture, (2) bFGF (20ng / mL) , (3) bFGF (20 ng / mL) + heparin (1.2 ⁇ g / mL) mixture, (4) growth factor-heparin complex 1 (bFGF_1, bFGF 20 ng / mL, heparin 1.2 ⁇ g / mL) and (5) growth factor- Heparin complex 2 (bFGF_2, bFGF 20 ng / mL, heparin 1.2 ⁇ g / mL).
  • the growth factor-heparin complex 1 is the result of Example 3
  • growth factor-heparin complex 2 was prepared as the result of Example 4.
  • Cell culture was then performed for 3 days, and cell images of each well were observed on days 1, 2 and 3.
  • the cells were separated by trypsin treatment and centrifugation, and then stained with trypan blue to check the number of cells that survived by hemocytometer.
  • HDFCs Human dermal fibroblast cells
  • the four samples were as follows: (1) bFGF (20ng / mL) and (2) bFGF (20ng / mL) + heparin (1.2 ⁇ g / mL) mixture, (3) crude growth factor-heparin complex (bFGF 20ng / mL, heparin 1.2 ⁇ g / mL) and (4) purified growth factor-heparin complex (bFGF 20ng / mL, heparin 1.2 ⁇ g / mL). At this time, the growth factor-heparin complex was prepared as a result of Example 3.
  • Example 10 Application of growth factor-heparin complexes: preparation of nanoparticles and nano thin films
  • Nanoparticles micelles
  • PS-b-PAA polystyrene-block-poly (acrylic acid, PS-b-PAA) block copolymer
  • Nanoparticles Iron Oxide Magnetic Nanoparticles
  • FeCl 4 0.19 g was dissolved in 10 mL of deionized water, and 0.93 mL of dodecylamine was dissolved in 90 mL of deionized water by heating. FeCl 4 solution was added to the dodecylamine solution to obtain a solution of iron oxide magnetic nanoparticles in which FeCl 4 was oxidized and turned black. Thereafter, the mixture was stirred at 85 ° C. for 4 hours, and centrifuged at 8000 rpm to obtain iron oxide nanoparticles. The iron oxide magnetic nanoparticles thus prepared had a size of 20 to 30 nm.
  • the nano thin film is Coated nanoparticles were produced.
  • PBAE and collagen were mixed at a mass ratio of 4: 6, dissolved in 1 mg / mL in 100 mM sodium acetate buffer (pH 5.5), and a growth factor-heparin complex solution was also prepared in the same manner.
  • the magnetic nanoparticles having positive charges at pH 5.5 were dispersed in a 1 mg / mL growth factor-heparin complex solution, and then centrifuged at 8000 rpm to obtain magnetic nanoparticles to which the growth factor-heparin layer was adsorbed. Subsequently, the magnetic nanoparticles were dispersed and centrifuged in a mixed solution of 1 mg / mL PBAE and collagen in the same manner to obtain nanoparticles to which PBAE and collagen were adsorbed.
  • a thin film having a structure of repeating proliferative factor-heparin / PBAE + collagen
  • PBAE Poly ( ⁇ -amino ester)
  • collagen was mixed at a mass ratio of 4: 6, dissolved in 1 mg / mL in 100 mM sodium acetate buffer, and a growth factor-heparin complex solution was also prepared in the same manner.
  • the substrate was repeatedly supported in a solution in the order of (PBAE + collagen) solution, washing solution, growth factor-heparin complex solution, washing solution, and the like to form a nano thin film on the surface of the substrate (c to e of FIG. 9).
  • the surface and cross section of the coated nano thin film were observed by electron scanning microscope (g and f in Fig. 9).

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Abstract

본 발명은 섬유아세포 증식인자(fibroblast growth factor, FGF)와 헤파린이 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체에 관한 것이다. 구체적으로는 상기 결합은 (i) 섬유아세포 증식인자를 구성하는 아미노산 중 하나 이상의 라이신(lysine)의 아민기와 헤파린의 카복실기를, 또는 (ii) 섬유아세포 증식인자를 구성하는 아미노산 중 하나 이상의 시스테인(cysteine)의 티올기와 헤파린에 첨가된 바이닐기를 화학결합시켜 형성되는 것이다. 또한, 본 발명은 상기 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법을 제공한다.

Description

화학반응을 통하여 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체 및 이의 제조 방법
본 발명은 섬유아세포 증식인자(fibroblast growth factor, FGF)와 헤파린(heparin)이 화학반응을 통하여 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체, 및 이의 제조 방법에 관한 것이다.
아미노산으로 이루어진 폴리펩타이드 구조의 증식인자(growth factor)는 세포의 분열뿐만 아니라, 세포의 증식(proliferation), 이동(migration), 분화(differentiation), 성숙(maturation)을 촉진하는 세포 간의 신호전달을 가능하게 해주는 물질이다. 증식인자의 종류 중 하나인 섬유아세포 증식인자는 섬유아세포뿐만 아니라, 혈관내피세포(endothelium cell), 신경계세포(neuron) 등 다양한 세포에 작용하고, 세포의 증식, 세포운동, 분화를 촉진하여 혈관재생과 창상치료(wound healing) 효과가 뛰어나, 각종 체내 이식 수술 및 기능성 화장품 등에 임상 응용되고 있다. 하지만, 체내 환경에서 증식인자의 구조가 쉽게 변형되어 활성이 감소함으로써 증식인자의 효과가 낮아진다는 문제점이 보고되어 왔다.
이러한 증식인자의 효율적인 전달을 위하여서는 효과적인 약물 전달체에 활성도를 유지한 증식인자를 싣는 기술이 필요하다. 따라서, 다양한 방법을 통하여 증식인자를 고정화 또는 안정화시켜 체내 표적 세포로 전달을 하기 위한 기술들이 개발되고 있다. 대표적으로, 증식인자를 운반 지지체들과 결합하거나, 증식인자를 포함하는 마이크로스페어(microsphere), 나노 입자, 나노 박막을 제작하여 서서히 방출되도록 함으로써 증식인자의 안정성을 증대시킨 기술들이 공지되어 있다.
한편, 섬유아세포 증식인자는 헤파린(heparin)과 특이적 결합력이 존재하여, 헤파린 결합성 증식인자로도 불린다. 또한, 헤파린이 1:1:1(FGF:FGFR:헤파린) 혹은 2:2:1 비율로 증식인자와 수용체(FGFR)의 이합체화(dimerization)에 도움을 주어 증식인자-수용체 결합을 증가시킨다. 따라서, 증식인자가 세포에게 주는 신호 전달 효율이 증대되어, 더 높은 활성도와, 세포 증식 효과를 가진다는 연구가 보고되어 있다.
일반적으로 섬유아세포 증식인자-헤파린은 비공유 결합으로 복합체를 형성하는 것으로 알려져 있다. 헤파린과 결합하는 염기성 섬유아세포(basic fibroblast growth factor, bFGF)의 결합 부위는 Lys-27, Arg-42, Arg-118, Lys-119, Lys-128, Lys-134 부근에 한정된다. 하지만, 화학반응으로 섬유아세포 증식인자와 헤파린을 결합시키려는 시도는 보고되지 않았고, 이렇게 제조된 증식인자의 안정성 및 효율 또한 알려져 있지 않다.
본 발명은 섬유아세포 증식인자와 헤파린이 화학반응을 통하여 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체 및 이의 제조 방법에 관한 것으로, 구조적 안정성 및 세포 증식 효과가 개선된 섬유아세포 증식인자를 제공하고자 한다.
본 발명의 일 양상은 섬유아세포 증식인자와 헤파린이 화학반응을 통하여 결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 제공한다. 상기 화학반응을 통하여 형성된 결합은 공유결합일 수 있으며, 정전기적 인력, 수소결합 등과 같은 비공유적 결합보다 강한 인력으로 연결될 수 있다. 섬유아세포 증식인자는 아민기, 카르복시기, 티올기 등 다양한 작용기들을 포함하고 있으며, 헤파린은 L-이듀론산, D-글루쿠론산, D-글루코사민 다당 사슬로 구성되어 있어, 카복실기, 히드록시기, 황산기 등의 작용기 포함하고 있다. 이러한 작용기들 간의 반응은 증식인자-헤파린의 결합을 강화시켜 증식인자 전달을 위한 약물 전달체를 합성할 때 제약이 줄어들게 되며, 또한 작용기에 따른 선택적인 공유결합 생성이 가능하다.
본 발명의 일 양상은 섬유아세포 증식인자(fibroblast growth factor, FGF)를 구성하는 아미노산 중 하나 이상의 라이신(lysine)의 아민기(-NH2)와 헤파린의 카복실기(-COOH)가 화학결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 제공한다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 섬유아세포 증식인자는 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진 인간 섬유아세포 증식인자일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 화학결합은 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필) 카보디이미드 하이드로클로라이드(1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride, EDC) 및 설포-N-하이드록시설포숙시니마이드(sulfo-N-hydroxysulfosuccinimide, 설포-NHS)를 사용함으로써 일어날 수 있다. 상기 섬유아세포 증식인자의 아민기와 헤파린의 카복실기는 EDC 및 설포-NHS 반응을 거쳐 펩티드 결합을 형성한다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 섬유아세포 증식인자, 특히 염기성 섬유아세포 증식인자의 아미노산 서열 위치 27, 30, 35, 55, 61, 75, 86, 95, 119, 128, 134, 138, 144 및 154에는 라이신이 위치하고 있어, 상기 화학결합은 상기 위치들로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 라이신의 아민기에서 일어날 수 있다.
본 발명의 일 양상은 섬유아세포 증식인자를 구성하는 아미노산 중 하나 이상의 시스테인(cysteine)의 티올기(-SH)와 헤파린에 첨가된 바이닐기(-CHCH2)가 화학결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 제공한다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 섬유아세포 증식인자는 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진 인간 섬유아세포 증식인자일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 섬유아세포 증식인자, 특히 염기성 섬유아세포 증식인자의 아미노산 서열위치 34, 78, 96 및 100에는 시스테인이 위치하고 있어, 상기 화학결합은 상기 위치들로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 시스테인의 티올기에서 일어날 수 있다.
그러나, 헤파린에는 활성화될 수 있는 바이닐기가 존재하지 않으므로, 헤파린에 바이닐기의 첨가가 우선적으로 요구된다. 상기 헤파린에 바이닐기의 첨가를 위하여 사용될 수 있는 물질은 헤파린에 마이클 첨가 반응에 의하여 첨가되어 마이클 수용체 잔기를 형성할 수 있는 물질일 수 있다. 본 명세서에서 사용되는 용어 "마이클　수용체 잔기"는　마이클　반응에 참여할 수 있는 관능기를 의미하고, 이때　마이클　수용체 잔기 및 도너 잔기 사이에 새로운 공유결합이 형성된다.　마이클　수용체 잔기는 친전자성이며, "도너 잔기"는 친핵성이다. 바이닐설포닐메틸기는 마이클　수용체 잔기의 비제한적인 예이다. 상기 헤파린에 바이닐기의 첨가를 위하여 사용될 수 있는 물질은 두 개의 바이닐 기를 가지며 첨가 후 전자끄는 기로 작용할 수 있는 물질일 수 있다. 예컨대, 두 개의 바이닐기를 갖는 디바이닐설폰(divinyl sulfone, DVS)을 과량으로 첨가하여, 헤파린의 히드록시기를 디바이닐설폰의 하나의 바이닐기에 첨가할 수 있다. 이와 같은 경우, 분자 내 전자 끄는 기가 존재하여 활성화 될 수 있는 바이닐기를 포함한 헤파린-디바이닐설폰(HEP-DVS)을 수득할 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 첨가된 바이닐기는 바이닐설포닐메틸기, 알릴설포닐메틸기, 바람직하게는 바이닐설포닐메틸기이다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 화학결합은 마이클 첨가 반응에 의하여 일어나는 것일 수 있다.
본 발명의 일 양상은 (a) EDC, 설포-NHS 및 헤파린을 용매에 용해시키는 단계; (b) 상기 단계 (a)의 결과물에 섬유아세포 증식인자를 혼합하는 단계; 및 (c) 상기 단계 (b)의 결과물을 정제하여 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 수득하는 단계를 포함하는 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법을 제공한다. 상기 방법에서는 단계 (a) 및 (b)에서 혼합된 화합물들이 접촉함으로써 EDC/설포-NHS 반응을 진행하여 섬유아세포 증식인자와 헤파린이 펩티드 결합으로 연결된 복합체를 수득할 수 있다.
상기 단계 (a)에서 사용되는 "용매"는 고체 상태의 화합물을 용해시킬 수 있는 액상의 화합물을 의미하며, 물, 알코올, 벤젠, 헥산 또는 완충액 등 유기 또는 무기 용매일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 2-(모폴리노) 에탄설폰산(2-morpholinoethanesulfonic acid, MES) 완충액이 바람직하다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 EDC 및 설포-NHS의 질량비는 2:1 내지 1:2인 것일 수 있는데, EDC/설포-NHS 반응은 EDC와 설포-NHS의 질량비가 1:2 내지 2:1인 경우 성공적으로 진행된다. 상기 EDC와 설포-NHS, 및 헤파린의 질량비는 최소 2:1:2 내지 1:2:2일 수 있으며, 또는 상기 범위보다 헤파린이 과량 첨가된 것일 수 있다. 상기 제조 방법에서 성장인자는 한계반응물의 역할을 하므로, 헤파린을 과량 넣어주는 것은 문제되지 않는다.
본 명세서에서 사용되는 "정제"는 목적 물질을 제외한 불순물을 제거하는 과정을 지칭, 구체적으로는 투석, 염석, 크로마토그래피, 전기영동의 방법이 존재하며, 이에 한정되는 것은 아니나, 바람직하게는 투석에 의하여 수행된다. 본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 투석은 탈이온수 상에서 수행될 수 있다.
본 명세서의 일 양상은 (a) 헤파린을 물에 용해시킨 후, 염기성 수용액을 첨가하는 단계; (b) 상기 단계 (a)의 결과물에 바이닐기를 포함하는 화합물을 접촉시키는 단계; (c) 상기 단계 (b)의 결과물에 산성 용액을 첨가하는 단계; (d) 상기 단계 (c)의 결과물과 섬유아세포 증식인자를 혼합하는 단계; 및 (e) 상기 단계 (d)의 결과물을 정제하여 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 수득하는 단계를 포함하는 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법을 제공한다. 상기 방법에서는 단계 (a) 내지 (c)에서 마이클 첨가 반응 의하여 헤파린에 바이닐기를 첨가한 후, 단계 (d)에 의하여 개질된 헤파린과 섬유아세포 증식인자가 접촉함으로써 마이클 첨가 반응을 진행하여 섬유아세포 증식인자와 헤파린이 결합된 복합체를 수득할 수 있다.
본 명세서에서 사용되는 "물"은 탈이온수, 정제수, 증류수를 포함한다.
본 명세서에서 사용되는 "염기성 수용액"은 OH- 이온을 포함하는 수용액으로서, NaOH, KOH 또는 NH4OH 수용액일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 바람직하게는 NaOH 수용액이다. 본 명세서에서 사용되는 "산성 수용액"은 H+ 이온을 포함하는 수용액으로서, HCl, H2SO4 또는 CH3COOH 수용액일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 바람직하게는 HCl 수용액이다. 본 발명에서 염기성 수용액은 마이클 첨가 반응을 개시 및 진행하기 위한 이온을 제공하는 역할을 하며, HCl 용액은 반응을 종결시키는 역할을 한다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 (d) 단계는 pH 7.4 내지 9에서 이루어질 수 있다. pH 9 이상의 염기 조건에서는 섬유아세포 증식인자의 활성도가 낮아지고, pH 7.4 이하의 산성 조건에서는 상기 (d) 단계에서 섬유아세포 증식인자와 헤파린 사이의 마이클 첨가 반응 효율이 낮다.
본 발명의 일 양상은 상기 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 포함하는 각종 나노 구조체를 제공한다. 상기 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체는 화학결합으로 결합된 것으로부터 기인하여 전체적으로 -50 내지 -40mV의 음전하를 나타내기 때문에, 다른 고분자 물질과 정전기적 결합이 가능하다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 나노 구조체는 다층 나노 박막 또는 나노 입자일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 다층 나노 박막은 층과층 적층 방식(layer-by-layer)에 의하여 형성된 것일 수 있다. 상기 다층 나노 박막은 기판의 제약이 적어 다양한 2차원 형태의 플레이트 및 나노 입자 다양한 종류의 기판 표면에 박막을 형성할 수 있다. 예컨대, 산화철 자성 나노 입자, Si 웨이퍼(wafer), PET 필름, 세포 배양 용기(폴리카보네이트(Poly carbonate)로 이루어짐) 상에 박막을 형성할 수 있으나, 이제 한정되는 것은 아니다. 상기 다층 나노 박막은 형성 후 판 형상 그대로 사용하는 것도 가능하며, 관, 롤, 입체형상 등으로 형성 후 가공을 통하여 사용하는 것 또한 가능하다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 나노 입자는 헤파린과 결합할 수 있는 전해질 고분자인 폴리(알릴아민 하이드로클로라이드)(poly(allylamine hydrochloride), 폴리에틸렌이민(polyethylenimine), 콜라겐(collagen), 또는 가교결합 물질인 EDC, 설포-NHS 등을 이용하여 제조될 수 있다.
상기 나노 구조체들은 기능성 의료용 고분자 물질 혹은 바이오 물질로의 응용이 가능하다.
본 발명에 따라 헤파린과 섬유아세포 증식인자를 화학반응으로 결합시켜 제조한 복합체는, 체내 조건 혹은 세포 배양조건에서 구조변형이 쉬워, 짧은 활성 반감기를 가지는 섬유아세포 증식인자의 단점을 보완하여, 기존의 물리적 결합으로 연결된 증식인자-헤파린보다 더 우수한 구조적 안정성 및 세포 증식 효과를 나타낸다. 또한 제조된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체는 마이셀, 나노 박막, 하이드로젤 등 다양한 약물 전달체를 통하여 생체 내부 환경 및 배양 세포 환경에서 지속적으로 방출될 수 있다. 따라서, 본 발명은 혈관 재생, 상처 치료 등의 의료 분야에 활용이 가능할 뿐만 아니라, 줄기세포 배양 플랫폼, 세포 증식, 분화, 운동 등을 촉진하는 기능성 바이오 물질로의 응용도 가능하다.
도 1은 마이클 첨가 및 EDC/설포-NHS 반응 경로를 통한 헤파린과 섬유아세포 증식인자(bFGF)의 공유 결합에 대한 모식도를 나타낸다.
도 2는 반응하지 않은 헤파린(상)와 헤파린에 디바이닐설폰(DVS)을 관능화시킨 헤파린(HEP-DVS)(하)의 H-NMR 결과를 나타낸다.
도 3은 글리세롤(glycerol) 용매 내에서 섬유아세포 증식인자(bFGF)의 구조적 안정성에 대한 시뮬레이션 결과를 나타낸다.
도 4는 본 발명의 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 DLS(Dynamic light scattering) 결과를 나타낸다.
도 5는 본 발명의 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 웨스턴 블로팅(Western blot) 결과(A: reducing SDS-PAGE, 및 B: Native PAGE)를 나타낸다.
도 6은 본 발명의 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 효소면역측정법을 이용한 시간에 따른 활성도 변화를 나타낸다.
도 7은 성체중간엽줄기 세포배양에서 본 발명의 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 증식 촉진 효과를 보여주는 이미지(A) 및 그래프(B)를 나타낸다.
도 8은 정상섬유아세포 세포배양에서 본 발명의 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 증식 촉진 효과를 보여주는 이미지(A) 및 그래프(B)를 나타낸다.
도 9는 본 발명의 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체가 포함된 나노 입자(a), 박막 형태로 코팅된 나노 입자 (b), 다양한 표면 상에 형성된 나노 박막(c: Si 웨이퍼, d: PET 필름, e: 폴리카보네이트 세포 배양 용기)을 나타내며, 코팅된 나노 박막의 표면(f) 및 단면(g)의 주사전자현미경 이미지를 나타낸다.
이하 하나 이상의 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 하나 이상의 실시예를 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 디바이닐설폰 관능화 헤파린의 합성
먼저, 헤파린 0.1g을 탈이온수(DI water) 10mL에 용해시킨 후, 상기 헤파린 용액을 교반하면서 0.25M의 NaOH 수용액 6.66mL를 첨가하였다. 1분 후, 디바이닐설폰 용액(97%) 0.36mL 및 탈이온수 2.64mL를 첨가하고, 2분 후 6M HCl 0.27mL를 첨가하여 반응을 종결시켰다. 반응이 종료된 시료를 MWCO 14,000 튜브를 이용하여 탈이온수 상에서 3일간 투석시켜 정제된 관능화 헤파린을 수득하고, 동결 건조를 통하여 용매를 제거하였다.
실시예 2. 합성된 디바이닐설폰 관능화 헤파린의 분석
상기 실시예 1에서 합성된 디바이닐설폰 관능화 헤파린(HEP-DVS)을 H-NMR을 통하여 규명하였다(도 2 참조). 반응하지 않은 헤파린의 히드록시기의 H 피크(peak) 일부가 디바이닐설폰 관능화 헤파린에서는 사라진 것을 확인할 수 있었다. 또한, 합성된 관능화 헤파린의 색깔이 투명한 헤파린에 비하여 옅은 갈색을 띄는 것을 확인하였다.
실시예 3. EDC/설포-NHS 반응을 통한 헤파린과 증식인자의 공유결합 형성
EDC, 설포-NHS 및 헤파린을 2:1:2의 질량비로 혼합하고, 이를 0.5M의 2-(모폴리노) 에탄설폰산 완충액(MES 완충액)에 녹인 후, 상온에서 45분 동안 반응시켰다. 상기 용액 100μL와 섬유아세포 증식인자(bFGF) 1.5μg을 상온에서 15분 동안 혼합시켰다. 반응이 끝난 시료를 MWCO 14,000 튜브를 이용하여 탈이온수 상에서 30분씩 3회 투석시켜 EDC 및 설포-NHS를 제거하였다.
증식인자와 헤파린의 결합 정도를 달리하기 위하여, EDC/설포-NHS 대신 EDC만을 사용하여 상기 과정을 반복하였다.
실시예 4. 마이클 첨가를 통한 헤파린과 증식인자의 결합
증식인자와 헤파린의 결합 효율을 달리하기 위해서는 D-PBS의 pH를 바꾸어 반응시켜야 하므로, pH 7.4의 D-PBS를 NaOH 수용액을 이용하여 pH 9까지 적정하였다. 0.1M, pH 7.4 내지 pH 9의 범위의 D-PBS를 각각 1mM의 EDTA와 혼합한 후, 상기 D-PBS(pH 7.4 내지 pH 9)+EDTA의 용액 90μL에 각각 증식인자(bFGF) 1μL을 혼합시켰다. 이를 4℃의 항온기 내에서 16시간 동안 반응시키고, 반응이 종료된 시료를 MWCO 14,000 튜브를 이용하여 탈이온수 상에서 30분씩 3회 투석시켜 EDTA 및 NaOH를 제거하였다.
상기 실시예 1, 3 및 4의 과정을 보여주는 모식도를 도 1에 나타내었다.
실시예 5. 글리세롤 용매 내에서 증식인자의 구조적 안정성 유지 효과를 확인하기 위한 시뮬레이션
모든 시뮬레이션 및 분석은 GROMACS4.6.7 simulation package, OPLS all-atom force field (FF) 및 TIP4P water model을 이용하여 수행하였다. bFGF에 대한 정보는 단백질 정보 은행(Protein Data Bank)의 정보를 사용하였으며, 글리세롤의 경우에는 Coleman 등의 potential parameters를 이용하였다. 시뮬레이션은 (i) 물에 분산시킨 bFGF(대조군) 및 (2) 물과 글리세롤을 7:3으로 혼합한 용매에 분산시킨 bFGF를 이용하여, 온도 310K, 압력 1bar의 조건에서 1.3μs 동안 수행하였다. 그 결과는 도 3에 나타내었으며, 하기와 같은 결과를 도출하였다:
1. bFGF의 구조는 β-시트(sheet)와 회전(turn) 구조가 우세하였고, 시간이 경과함에 따라, 글리세롤이 존재하는 경우 β-시트는 보다 많이, 불규칙 코일(random coil)은 더 적게 나타났다.
2. RDF 분석 결과, 글리세롤이 주로 음이온성 잔기(Glu, Asp)와 강하게 상호작용(interaction)을 하며, 소수성 잔기와는 상호작용이 거의 존재하지 않음을 확인할 수 있었다. 또한, 글리세롤이 존재하는 경우와 존재하지 않는 경우, 음이온 잔기 간의 상호작용의 강도가 상당히 많이 바뀌는 것을 확인하였다.
3. 결론적으로, 글리세롤이 음이온성 잔기와 상호작용하면서, bFGF의 음이온성 잔기 간의 척력을 약화시키고, 그러한 요인으로 인해 bFGF의 구조를 안정하게 만들며 펼쳐지지(unfolding) 않게 만든다는 것을 확인하였다.
실시예 6. 웨스턴 블롯을 통한 증식인자-헤파린 복합체의 형성 규명
상기 실시예 3 및 4에서 합성한 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 규명하기 위하여 웨스턴 블롯(western blot)을 수행하였으며, 음성대조군으로서 bFGF, 양성대조군으로서 헤파린+bFGF 혼합물을 사용하였다.
상기 시료들을 각각 10% SDS 폴리아크릴아미드 겔 상에서 전기영동으로 분리하고, 니트로셀룰로오즈 막(membrane) 상으로 전기영동을 통하여 이동시켰다. 상기 막을 1시간 동안 5% 탈지유(skim milk)로 블로킹한 후, 정제된 Tb7 항체(antibody)를 사용하여 4시간 동안 반응시켰다. 그 후, 2차 항체로서 항-토끼 IgG 항체를 사용하여 상온에서 1시간 동안 반응시켰다. 면역반응이 완료된 단백질을 화학 발광 검출 시스템(chemiluminescence detection system, PIERCE사)을 제조사의 프로토콜에 따라 사용하여 시각화하였다(도 5 참조).
실시예 7. 효소면역측정법을 통한 증식인자-헤파린 복합체의 활성도 분석
상기 실시예 3 및 4에서 합성한 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 구조적 안정성을 확인하기 위하여, 효소면역측정법(ELISA)을 37℃ PBS 조건 하에서 수행하여 활성도의 감소 정도를 검증하였고, 그 결과를 도 6에 나타내었다. 대조군으로서 처리하지 않은 bFGF를 사용하여, 상기 실시예 3 및 4에서 합성한 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체와 비교하였다.
그 결과, 처리하지 않은 bFGF는 48시간 후의 활성도가 20% 정도로 감소한 반면, 증식인자-헤파린 복합체는 60 내지 70% 정도의 활성도를 유지하였다. 따라서, 37℃ PBS 조건에서 증식인자-헤파린 복합체의 구조적 안정성이 순수한 bFGF에 비하여 보다 높다는 것을 확인할 수 있었다.
실시예 8. 성체중간엽 줄기세포 배양에서의 증식인자-헤파린 복합체의 효능 분석
상기 실시예 3 및 4에서 합성한 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 세포 증식 효과를 확인하기 위하여 다음과 같이 실험을 진행하였다.
세포 배양 계대수(Cell passage number)가 5인 성체중간엽 줄기세포(Mesenchymal stem cell, MSC)를 12-웰 플레이트에 5×103세포/웰의 농도로 분주한 후, 세포 부착을 위하여 24시간 동안 배양액 1mL(90% DMEM, 10% FBS 및 1% PS, Gibco사), 37℃, 5% CO2 조건 하에서 배양하였다(n=3). 세포 부착을 확인한 후, 상기 배양액에 5가지 시료를 넣어 필터링한 후, 배양액을 교체하였으며, 상기 5가지의 시료는 하기와 같았다: (1) 처리하지 않은 배양액, (2) bFGF(20ng/mL), (3) bFGF(20ng/mL)+헤파린(1.2μg/mL) 혼합액, (4) 증식인자-헤파린 복합체 1(bFGF_1, bFGF 20ng/mL, 헤파린 1.2μg/mL) 및 (5) 증식인자-헤파린 복합체 2(bFGF_2, bFGF 20ng/mL, 헤파린 1.2μg/mL). 이때, 증식인자-헤파린 복합체 1은 실시예 3의 결과물이고, 증식인자-헤파린 복합체 2는 실시예 4의 결과물로 준비하였다.
이후 3일 동안 세포배양을 수행하고, 1, 2 및 3일차에 각 웰의 세포 이미지를 관찰하였다. 또한, 트립신 처리 및 원심분리를 통하여 세포를 분리한 후, 트리판 블루(trypan blue)로 염색하여 혈구계(hemocytometer)로 생존한 세포 수를 확인하였다.
그 결과, 세포 이미지 및 성장 그래프를 얻을 수 있었으며(도 7 참조), 이를 통하여 대조군 < bFGF < 증식인자-헤파린 복합체 2 < bFGF+헤파린 혼합액 < 증식인자-헤파린 복합체 1 순서로 세포 증식이 증가한 것을 확인하였다. 이로써, 실시예 3 및 4에서 합성한 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체는 기존의 bFGF에 비해 높은 성체중간엽 세포의 증식 효과를 갖는다는 것을 검증하였다.
실시예 9. 정상섬유아세포 배양에서의 증식인자-헤파린 복합체의 효능 분석
추가적으로 상기 실시예 3 및 4에서 합성한 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 세포 증식 효과를 확인하기 위하여 다음과 같이 실험을 진행하였다.
세포 배양 계대수가 6인 정상섬유아세포(Human dermal fibroblast cell, HDFC)를 12-웰 플레이트에 5×102세포/웰의 농도로 분주한 후, 세포 부착을 위하여 24시간 동안 배양액 1mL(90% DMEM, 10% FBS 및 1% PS, Hydroclone사), 37℃, 5% CO2 조건 하에서 배양하였다(n=3). 세포 부착을 확인한 후, 상기 배양액에 4가지 시료를 넣어 필터링한 후, 배양액을 교체하였으며, 상기 4가지의 시료는 하기와 같았다: (1) bFGF(20ng/mL), (2) bFGF(20ng/mL)+헤파린(1.2μg/mL) 혼합액, (3) 정제하지 않은 증식인자-헤파린 복합체(bFGF 20ng/mL, 헤파린 1.2μg/mL) 및 (4) 정제한 증식인자-헤파린 복합체(bFGF 20ng/mL, 헤파린 1.2μg/mL). 이때, 증식인자-헤파린 복합체는 실시예 3의 결과물로 준비하였다.
이후 6일 동안 세포배양을 수행하고, 3일차에 배양액을 교체하면서 각 시료를 처리하였으며, 2, 4 및 6일차에 각 웰의 세포 이미지를 관찰하였다. 또한, 트립신 처리 및 원심분리를 통하여 세포를 분리한 후, 트리판 블루로 염색하여 혈구계로 생존한 세포 수를 확인하였다.
그 결과, 세포 이미지 및 성장 그래프를 얻을 수 있었으며(도 8 참조), 이를 통하여 bFGF < bFGF+헤파린 혼합액 < 정제하지 않은 증식인자-헤파린 복합체 < 정제한 증식인자-헤파린 복합체 순서로 세포 증식이 증가한 것을 확인하였다. 또한, 일원분산분석법(ANOVA)과 사후검정(tukey method) 통계분석 과정을 통하여 각 결과의 유의성을 확인하였다. 이로써, EDC/설포-NHS 반응을 통하여 합성된 증식인자-헤파린 복합체는 기존의 bFGF 및 헤파린+증식인자 혼합물에 비하여 높은 정상섬유아세포의 증식 효과를 갖는다는 것을 검증하였다.
실시예 10. 증식인자-헤파린 복합체의 응용 : 나노 입자 및 나노 박막의 제조
10.1. 나노 입자 : 마이셀
마이셀을 합성하기 위하여, 폴리스티렌-블록-폴리(아크릴산)(Polystyrene-block-poly(acrylic acid), PS-b-PAA) 블록 공중합체 1mg을 THF 2mL에 용해시킨 후, pH 10 조건에서 탈이온수 48mL를 강하게 교반시키면서 상기 PS-b-PAA 용액을 한 방울씩 첨가하였다. 6시간 동안 더 교반시킨 후, 3일 동안 투석 과정을 거쳐 THF 및 미반응 물질들을 제거함으로써, 50㎚ 크기의 구형 나노 입자를 수득하였다.
상기 합성된 마이셀 용액에 계면활성제인 4-디메틸아미노피리딘(4-Dimethylaminopyridine, DMAP) 1 내지 2mg을 첨가한 후, 투석 과정을 통하여 한 더 정제하였다. 해당 마이셀에 증식인자-헤파린 복합체를 첨가하여 정전기적인력으로 마이셀과 증식인자-헤파린을 결합시켰다. 이러한 증식인자-헤파린 복합체가 포함된 마이셀 나노 입자를 TEM 이미지로 관찰하였다(도 9의 a).
10.2. 나노 입자 : 산화철 자성 나노 입자
FeCl4 0.19g을 탈이온수 10mL에 용해시키고, 도데실아민(dodecylamine) 0.93mL를 탈이온수 90mL에 가열하며 용해시켰다. 상기 도데실아민 용액에 FeCl4 용액을 첨가하여 FeCl4가 산화되며 검은색으로 변화된 산화철 자성 나노 입자 용액을 수득하였다. 그 후 85℃ 조건에서 4시간 동안 교반하고, 8000rpm 조건에서 원심분리하여 산화철 나노 입자를 수득하였다. 이렇게 제조된 산화철 자성 나노 입자는 20 내지 30㎚ 크기를 가졌다.
상기 산화철 자성 나노 입자 표면에 폴리(β-아미노 에스터)(poly(?-amino ester), PBAE), 콜라겐, 증식인자-헤파린 복합체를 층과층 적층법을 통하여 나노 박막을 형성함으로써, 나노 박막이 코팅된 나노 입자를 제작하였다. 먼저, PBAE와 콜라겐을 4:6의 질량비로 혼합하고, 100mM 아세트산 나트륨 버퍼(sodium acetate buffer, pH 5.5)에 1mg/mL로 용해시킨 후, 증식인자-헤파린 복합체 용액 또한 같은 방법으로 제조하였다. pH 5.5 조건에서 양 전하를 갖는 자성 나노 입자를 1mg/mL의 증식인자-헤파린 복합체 용액에 분산시킨 후, 8000rpm으로 원심분리하여 증식인자-헤파린 층이 흡착된 자성 나노 입자를 수득하였다. 이어서, 같은 방법으로 자성 나노 입자를 1mg/mL의 PBAE와 콜라겐 혼합 용액에 분산 및 원심분리하여, PBAE와 콜라겐이 흡착된 나노 입자를 수득하였다. 상기 과정을 반복하여, 상기 나노 입자 표면에 (증식인자-헤파린/PBAE+콜라겐)이 반복되는 구조의 박막을 형성하였다. 제조된 산화철 자성 나노 입자 표면에 코팅된 나노 박막을 TEM 이미지를 통하여 시각화하였다(도 9의 b).
10.3. 나노 박막 : 기판의 다양화
폴리(β-아미노 에스터)(PBAE)와 콜라겐을 4:6의 질량비로 혼합하고 100mM 아세트산 나트륨 버퍼에 1mg/mL로 용해시킨 후, 증식인자-헤파린 복합체 용액 또한 같은 방법으로 제조하였다.
Si 웨이퍼, OHP 필름 및 세포 배양 용기 멤브레인(폴리카보네이트)의 세 종류의 기판에 4분 동안 산소 플라즈마 처리를 하여 음전하의 표면을 생성하였다.
상기 기판을 (PBAE+콜라겐) 용액, 세척 용액, 증식인자-헤파린 복합체 용액, 세척 용액 등의 순서로 용액에 반복적으로 담지하여, 기판 표면에 나노 박막을 형성하였다(도 9의 c 내지 e). 코팅된 나노 박막의 표면 및 단면은 전자주사현미경으로 관측하였다(도 9의 g 및 f).
이제까지 본 발명에 대하여 그 바람직한 실시예들을 중심으로 살펴보았다. 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자는 본 발명이 본 발명의 본질적인 특성에서 벗어나지 않는 범위에서 변형된 형태로 구현될 수 있음을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로, 개시된 실시예들은 한정적인 관점이 아니라 설명적인 관점에서 고려되어야 한다. 본 발명의 범위는 전술한 상세한 설명보다는 후술하는 특허청구범위에 의하여 나타내어지며, 특허청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 균등 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.

Claims (13)

  1. 섬유아세포 증식인자(fibroblast growth factor, FGF)를 구성하는 아미노산 중 하나 이상의 라이신(lysine)의 아민기(-NH2)와 헤파린의 카복실기(-COOH)가 화학결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체.
  2. 섬유아세포 증식인자를 구성하는 아미노산 중 하나 이상의 시스테인(cysteine)의 티올기(-SH)와 헤파린에 첨가된 바이닐기(-CHCH2)가 화학결합된 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체.
  3. 제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,
    상기 섬유아세포 증식인자는 서열번호 1의 아미노산 서열로 이루어진 인간 섬유아세포 증식인자인 것인 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체.
  4. 제 1 항에 있어서,
    상기 화학결합은 서열번호 1의 아미노산 서열에서 위치 27, 30, 35, 55, 61, 75, 86, 95, 119, 128, 134, 138, 144 및 154로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 라이신의 아민기에서 일어나는 것인 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체.
  5. 제 2 항에 있어서,
    상기 헤파린에 첨가된 바이닐기가 바이닐설포닐메틸기인 것인 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체.
  6. 제 2 항에 있어서,
    상기 화학결합은 서열번호 1의 아미노산 서열에서 위치 34, 78, 96 및 100로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 시스테인의 티올기에서 일어나는 것인 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체.
  7. (a) 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필) 카보이미드 하이드로클로라이드(EDC), 설포- N-하이드록시설포숙시니마이드(NHS) 및 헤파린을 용매에 용해시키는 단계;
    (b) 상기 단계 (a)의 결과물에 섬유아세포 증식인자를 혼합하는 단계; 및
    (c) 상기 단계 (b)의 결과물을 정제하여 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 수득하는 단계를 포함하는 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법.
  8. 제 7 항에 있어서,
    상기 EDC 및 설포-NHS의 질량비는 2:1 내지 1:2인 것인 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법.
  9. (a) 헤파린을 물에 용해시킨 후, 염기성 수용액을 첨가하는 단계;
    (b) 상기 단계 (a)의 결과물에 바이닐기를 포함하는 화합물을 접촉시키는 단계;
    (c) 상기 단계 (b)의 결과물에 산성 용액을 첨가하는 단계;
    (d) 상기 단계 (c)의 결과물과 섬유아세포 증식인자를 혼합하는 단계; 및
    (e) 상기 단계 (d)의 결과물을 정제하여 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 수득하는 단계를 포함하는 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법.
  10. 제 9 항에 있어서,
    상기 (d) 단계는 pH 7.4 내지 9에서 이루어지는 것인 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체의 제조 방법.
  11. 제 1 항 또는 제 2 항에 따른 섬유아세포 증식인자-헤파린 복합체를 포함하는 나노 구조체.
  12. 제 11 항에 있어서,
    상기 나노 구조체는 다층 나노 박막 또는 나노 입자인 것인 나노 구조체.
  13. 제 12 항에 있어서
    상기 다층 나노 박막은 층과층 적층 방식(layer-by-layer)에 의하여 형성되는 것인 나노 구조체.
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