WO2017065288A1 - 多能性幹細胞からｃｄ４陽性ｔ細胞を製造する方法 - Google Patents

多能性幹細胞からｃｄ４陽性ｔ細胞を製造する方法 Download PDF

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新 金子
格弘 上田
靖史 植村
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Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a CD4 positive T cell comprising a step of introducing a CD4 gene or a gene product thereof into a T cell derived from a pluripotent stem cell.
  • Immunosurveillance functions for tumors include cytotoxic T cells (CTL) consisting mainly of CD8-positive cells that directly injure tumors, and helper T cells (Th cells that enhance CTL functions consisting mainly of CD4-positive cells). ).
  • CTL cytotoxic T cells
  • Th cells helper T cells
  • DCs dendritic cells
  • Th cells are thought to be able to activate CTL via DC activation and exert antitumor effects.
  • a tumor antigen-specific Th cell can be induced from a pluripotent stem cell such as an induced pluripotent stem (iPS) cell, it can be administered in vivo to induce a strong antitumor immune response. It is thought that it leads to development of immunotherapy, and the method of making iPS cells from antigen-specific CD8-positive CTL and inducing differentiation again to CD8-positive CTL has been reported so far (Non-patent Document 1 and Patent Document 1). . In this method, the CD8 positive CTL T cell receptor (TCR) is consistently inherited, and therefore shows the same antigen specificity as the cell from which the CD8 positive CTL derived from iPS cells are also derived.
  • TCR CD8 positive CTL T cell receptor
  • the T cell co-receptor (CD8 molecule in CD8 positive CTL and CD4 in CD4 positive Th cell) effectively enhances the signal input into the cell when TCR recognizes the antigen, resulting in T cell An antigen-specific immune response is effectively induced.
  • CD8 molecules in CD8 positive CTL and CD4 in CD4 positive Th cell
  • CD4 molecules it is difficult to produce cells expressing CD4 molecules. Therefore, cells derived from CD4 positive Th cell-derived iPS cells lack a CD4 molecule and therefore cannot elicit sufficient helper functions.
  • An object of the present invention is to produce CD4-positive T cells from pluripotent stem cells.
  • a further object of the present invention is to activate dendritic cells using CD4-positive T cells obtained by the method.
  • the present inventors have introduced CD4 gene into T cells derived from pluripotent stem cells according to the conventional method. It was found that the dendritic cells are activated in the same manner as the released CD4 positive T cells, and the present invention has been completed.
  • a method for inducing CD4-positive T cells which comprises the step of introducing a CD4 gene or the gene product into T cells derived from pluripotent stem cells.
  • the method according to [1], wherein the method for inducing T cells from pluripotent stem cells includes the following steps (1) and (2): (1) a step of inducing CD34 positive hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells, (2) A step of culturing the CD34-positive hematopoietic progenitor cell obtained in the step (1) in the presence of FLT3L (Flt3 Ligand) and IL (Interleukin) -7.
  • FLT3L Flt3 Ligand
  • IL Interleukin
  • [3] The method according to [2], further comprising the following step (3); (3) A step of co-culturing the cells obtained in the step (2) with peripheral blood mononuclear cells (PBMC) in the presence of IL-7 and IL-15.
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • [4] The method according to [2] or [3], further comprising a step of contacting the cell obtained in the step (2) with a mitogen and / or a step of contacting the cell obtained in the step (3) with a mitogen. The method described.
  • the introduction of the CD4 gene or gene product is performed by introducing a CD4 gene using a retrovirus.
  • the pluripotent stem cell has a rearranged desired TCR sequence.
  • the pluripotent stem cells are human iPS cells derived from lymphocytes that recognize a desired antigen.
  • the lymphocyte recognizing a desired antigen is a lymphocyte recognizing BCR / ABL.
  • a step comprising contacting a CD4 positive T cell produced by the method according to any one of [1] to [11] and an isolated DC in vitro in the presence of an antigen.
  • an antigen is a fragment of BCR / ABL.
  • a cancer therapeutic agent comprising CD4-positive T cells produced by the method according to any one of [1] to [11].
  • the cancer therapeutic agent according to [14] further comprising an antigen.
  • the cancer therapeutic agent according to [15], wherein the antigen is a fragment of BCR / ABL.
  • functional CD4-positive T cells can be produced by introducing a CD4 gene or gene product into T cells derived from pluripotent stem cells. Furthermore, according to the present invention, it is possible to activate dendritic cells using the CD4-positive T cells. Therefore, according to the present invention, it is possible to produce CD4 positive T cells from pluripotent stem cells, and a cancer therapeutic agent that activates immune function including CD4 positive T cells derived from pluripotent stem cells. Can be provided.
  • FIG. 1 shows a scheme for inducing T cells from pluripotent stem cells.
  • FIG. 2A shows the results of flow cytometry of collected Th cells (left diagram) and induced T cells (CD4 gene not introduced) (right diagram) using CD4 and TCR-V ⁇ 22 as indices.
  • FIG. 2B shows the results of flow cytometry of induced T cells (CD4 gene not introduced) (left diagram) and induced T cells (CD4 gene introduced) (right diagram) using CD4 and TCR-V ⁇ 22 as indices.
  • FIG. 3 shows flow cytometry using CD8-positive CTL WT1 tetramer activated with DC obtained by treating collected Th cells (left) and induced T cells (CD4 gene transfer) in the presence of antigen (b3a2). Results are shown.
  • FIG. 4 shows the results of [ 3 H] -thymidine incorporation assay for examining the proliferation ability of b3a2-iPS-T cells (Mock) and CD4-b3a2-iPS-T cells (CD4).
  • FIG. 5 shows the results of evaluating the IFN- ⁇ production ability of b3a2-iPS-T cells (Mock) and CD4-b3a2-iPS-T cells (CD4) by stimulation with dendritic cells preliminarily presented with 10 ⁇ M b3a2 peptide. Show.
  • the present invention provides a method for inducing CD4-positive T cells, which comprises the step of introducing a CD4 gene or the gene product thereof into T cells derived from pluripotent stem cells.
  • a pluripotent stem cell is a stem cell having pluripotency that can be differentiated into many cells existing in a living body and also having proliferative ability, and at least used in the present invention. Any cell derived from a hematopoietic progenitor cell is included.
  • pluripotent stem cells include, but are not limited to, embryonic stem (ES) cells, cloned embryo-derived embryonic stem (ntES) cells obtained by nuclear transfer, sperm stem cells (“GS cells”), embryonic Examples include germ cells (“EG cells”), induced pluripotent stem (iPS) cells, cultured fibroblasts and bone marrow stem cell-derived pluripotent cells (Muse cells).
  • IPS cell production methods are known in the art and can be produced by introducing reprogramming factors into any somatic cells.
  • the reprogramming factor is, for example, Oct3 / 4, Sox2, Sox1, Sox3, Sox15, Sox17, Klf4, Klf2, c-Myc, N-Myc, L-Myc, Nanog, Lin28, Fbx15, ERas, ECAT15 -2, Tcl1, beta-catenin, Lin28b, Sall1, Sall4, Esrrb, Nr5a2, Tbx3 or Glis1, etc. genes or gene products are exemplified, and these reprogramming factors may be used alone or in combination. Also good.
  • Somatic cells include, but are not limited to, fetal (pup) somatic cells, neonatal (pup) somatic cells, and mature healthy or diseased somatic cells. , Passage cells, and established cell lines.
  • somatic cells are, for example, (1) tissue stem cells (somatic stem cells) such as neural stem cells, hematopoietic stem cells, mesenchymal stem cells, dental pulp stem cells, (2) tissue progenitor cells, (3) blood cells (peripheral) Blood cells, umbilical cord blood cells, etc.), lymphocytes, epithelial cells, endothelial cells, muscle cells, fibroblasts (skin cells, etc.), hair cells, hepatocytes, gastric mucosal cells, intestinal cells, spleen cells, pancreatic cells (pancreatic exocrine cells) Etc.), differentiated cells such as brain cells, lung cells, kidney cells and fat cells.
  • tissue stem cells such as neural stem cells, hematopoietic stem cells, mesenchymal stem
  • lymphocytes preferably T cells that have undergone gene rearrangement of a T cell receptor (TCR) are used as somatic cells for the purpose of producing CD4-positive T cells. It is preferable to produce iPS cells.
  • the lymphocytes when using lymphocytes, prior to the initialization step, the lymphocytes are stimulated with anti-CD3 antibody and anti-CD28 antibody in the presence of interleukin-2 (IL-2), or a desired antigen peptide It is preferable to activate by stimulation.
  • IL-2 interleukin-2
  • Such stimulation can be performed, for example, by adding IL-2, anti-CD3 antibody and anti-CD28 antibody to the medium and culturing the lymphocytes for a certain period.
  • the anti-CD3 antibody and the anti-CD28 antibody may be ones to which magnetic beads or the like are bound, and instead of adding these antibodies to the medium, the anti-CD3 antibody and the anti-CD28 antibody are bound to the surface.
  • Stimulation may be given by culturing the T cells for a certain period on a cultured dish. Further, stimulation may be given by adding an antigen peptide recognized by human T cells to the medium.
  • An antigen peptide is a peptide consisting of an amino acid sequence of at least 9 or more constituting a desired antigen protein.
  • peptides include peptides consisting of 9 or more amino acid sequences constituting the b3a2 subtype of p210 of the BCR / ABL chimeric gene (also simply referred to as b3a2).
  • lymphocytes that recognize the antigen peptide can be selectively proliferated.
  • the CD4-positive T cells produced in the present invention preferably have a desired antigen specificity. Therefore, it is desirable that the lymphocytes that are the source of iPS cells have the desired antigen specificity, and the lymphocytes are specifically isolated by purification using an affinity column or the like on which the desired antigen is immobilized. Also good. In this purification, MHC (major histocompatibility complex) to which a desired antigen is bound is tetramerized (so-called “MHC tetramer”) and has a desired antigen specificity from human tissues. A method of purifying lymphocytes can also be employed.
  • the mammal individual from which somatic cells are collected is not particularly limited, but is preferably a human.
  • CD4 positive T cells prepared by the method of the present invention are used for blood transfusion, from the viewpoint of easily adapting the type of human leukocyte antigen (HLA) to the patient being transfused,
  • HLA human leukocyte antigen
  • CD4 positive T cells are isolated from the subject being transfused.
  • the methods for inducing T cells from pluripotent stem cells can be performed using known methods. For example, a method including the following steps (1) to (3) is mentioned; (Step 1) Inducing CD34 positive hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells, (Step 2) a step of culturing the CD34 positive hematopoietic progenitor cell obtained in the step (1) in the presence of FLT3L and IL-7, and (step 3) the cell obtained in the step (2) is treated with IL- Co-culturing with peripheral blood mononuclear cells in the presence of 7 and IL-15.
  • the T cell means a cell having TCR on the cell surface.
  • CD4 and CD8 may further be provided on the cell surface. Therefore, in the present invention, from the viewpoint of inducing T cells, the above (Step 1) and (Step 2) may be included. In order to increase the T cell content efficiency, it is desirable to further include the above (Step 3).
  • inducing T cells may be produced as a cell population containing other cell types in addition to T cells. For example, 60% or more, 70% or more, 80% or more, 90% or more Alternatively, it means producing a cell population containing 95% or more T cells.
  • hematopoietic progenitor cells are blood cells such as lymphocytes, eosinophils, neutrophils, basophils, erythrocytes and megakaryocytes.
  • hematopoietic progenitor cells and hematopoietic stem cells are not distinguished from each other, and indicate the same cells unless otherwise specified. Therefore, in the present invention, hematopoietic progenitor cells also include hematopoietic stem cells.
  • Hematopoietic progenitor cells can be recognized, for example, by being positive for the surface antigen CD34 or CD34 and CD43.
  • net-like obtained by coculturing pluripotent stem cells with C3H10T1 / 2 and then coculturing with C3H10T1 / 2 in the presence of VEGF, FLT3L and SCF Hematopoietic progenitor cells can be prepared from the construct (also referred to as ES-sac or iPS-sac). At this time, vitamin Cs may be further added and cultured.
  • the “net-like structure” is a three-dimensional sac-like structure (with space inside) derived from pluripotent stem cells, which is formed by an endothelial cell population and the like, and contains hematopoietic progenitor cells inside. It is a structure. In addition, it can be obtained by culturing pluripotent stem cells on C3H10T1 / 2 in the presence of VEGF according to the method described in Takayama N., et al. J Exp Med. 2817-2830 (2010) Hematopoietic progenitor cells can be prepared from the net-like structure.
  • Step 2 Step of culturing hematopoietic progenitor cells in the presence of FLT3L and IL-7
  • the culture medium used in Step 2 is not particularly limited, but the medium used for culturing animal cells is changed to a basal medium.
  • FLT3L and IL- 7 can be prepared.
  • Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) medium Medium 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium , Neurobasal Medium (Life Technologies) and mixed media thereof.
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • EMEM Eagle's Minimum Essential Medium
  • DMEM Dulbecco's modified Eagle's Medium
  • Ham's F12 medium Ham's F12 medium
  • RPMI 1640 medium Fischer's medium
  • Serum may be contained in the medium, or serum-free may be used.
  • the basal medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acid, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipid, amino acid, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, low It may also contain one or more substances such as molecular compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like.
  • a preferred basal medium is an ⁇ MEM medium supplemented with serum, L-glutamine, transferrin, and selenium.
  • the concentration of IL-7 in the culture medium used in this step 2 is usually 0.1 ng / ml to 50 ng / ml, for example, 0.1 ng / ml, 0.2 ng / ml, 0.3 ng / ml, 0.4 ng / ml 0.5 ng / ml, 0.6 ng / ml, 0.7 ng / ml, 0.8 ng / ml, 0.9 ng / ml, 1 ng / ml, 2 ng / ml, 3 ng / ml, 4 ng / ml, 5 ng / ml 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng / ml or 50 ng / ml.
  • it is 1 ng / ml.
  • the concentration of FLT3L in the culture medium used in this step 2 is usually 1 ng / ml to 100 ng / ml, such as 1 ng / ml, 2 ng / ml, 3 ng / ml, 4 ng / ml, 5 ng / ml, 6 ng / ml, 7 ng / ml, 8 ng / ml, 9 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 50 ng / ml or 100 ng / ml.
  • it is 10 ng / ml.
  • vitamin C means L-ascorbic acid and derivatives thereof
  • L-ascorbic acid derivative means a substance that becomes vitamin C by an enzymatic reaction in vivo.
  • L-ascorbic acid derivatives include vitamin C phosphate, ascorbyl glucoside, ascorbyl ethyl, vitamin C ester, ascovir tetrahexyldecanoate, ascovir stearate and ascorbyl 2-phosphate-6 palmitic acid.
  • vitamin C is preferably added separately every 4 days, every 3 days, every 2 days, or every day during the culture period, more preferably every day.
  • the vitamin C is usually added in an amount corresponding to 5 ng / ml to 500 ng / ml in the culture solution.
  • the amount corresponds to 5 ng / ml, 10 ng / ml, 25 ng / ml, 50 ng / ml, 100 ng / ml, 200 ng / ml, 300 ng / ml, 400 ng / ml, or 500 ng / ml.
  • the concentration of SCF used for the production of hematopoietic progenitor cells in the present invention in the culture solution is 10 ng / ml to 100 ng / ml, such as 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng. / ml, 50 ng / ml, 60 ng / ml, 70 ng / ml, 80 ng / ml, 90 ng / ml, 100 ng / ml, 150 ng / ml, 200 ng / ml, or 500 ng / ml .
  • the concentration of TPO used for the production of hematopoietic progenitor cells in the present invention in the culture solution is 10 ng / ml to 100 ng / ml, such as 10 ng / ml, 20 ng / ml, 30 ng / ml, 40 ng. / ml, 50 ng / ml, 60 ng / ml, 70 ng / ml, 80 ng / ml, 90 ng / ml, 100 ng / ml, 150 ng / ml, 200 ng / ml, or 500 ng / ml .
  • hematopoietic progenitor cells may be subjected to adhesion culture or suspension culture.
  • the culture vessel may be coated and used, or may be co-cultured with feeder cells and the like.
  • feeder cells to be co-cultured stromal cells are preferable, and specific examples include bone marrow stromal cell line OP9 cells (available from RIKEN BioResource Center).
  • the OP9 cells may preferably be OP9-DL1 cells that constitutively express Delta-like-1 (Dll1) (Holmes R1 and Zuniga-Pflucker JC. Cold Spring Harb Protoc. 2009 (2)).
  • Dll1 when OP9 cells are used as feeder cells, Dll1 prepared separately or a fusion protein such as Dll1 and Fc can be added to the culture medium as appropriate.
  • Dll1 contains a protein encoded by the gene having the nucleotide sequence described in NCBI accession number NM_005618 in the case of humans, NM_007865 in the case of mice, and high sequence identity (for example, 90% or more) and naturally occurring variants with equivalent functions are included.
  • the feeder cells are preferably exchanged as appropriate during culture. The exchange of the feeder cells can be performed by transferring the target cells in culture onto the feeder cells previously seeded. The exchange can occur every 5 days, every 4 days, every 3 days, or every 2 days.
  • Step 2 when the suspension culture is performed, it is desirable to culture the cells by forming aggregates (also referred to as spheres) in a non-adhering state to the culture vessel, and such culture is not particularly limited.
  • a culture vessel that has not been artificially treated for example, coating treatment with an extracellular matrix or the like) for the purpose of improving adhesion to cells, or a treatment for artificially suppressing adhesion (for example, polyhydroxyethyl methacrylic acid) (Poly-HEMA), nonionic surfactant polyol (Pluronic® F-127, etc.) or phospholipid-like structure (for example, water-soluble polymer (Lipidure) composed of 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine)
  • Step 2 Huijkens MJ et al, J Leukoc Biol. 96: 1165-1175, 2014.
  • the extracellular matrix is a supramolecular structure existing outside the cell, and may be naturally derived or an artificial product (recombinant). Examples include substances such as polylysine, polyornithine, collagen, proteoglycan, fibronectin, hyaluronic acid, tenascin, entactin, elastin, fibrillin, laminin and fragments thereof.
  • These extracellular substrates may be used in combination, for example, preparations from cells such as BD Matrigel TM.
  • the culture temperature conditions for culturing hematopoietic progenitor cells in this step 2 are not particularly limited, but for example, about 37 ° C to about 42 ° C, preferably about 37 ° C to about 39 ° C are preferable.
  • the culture period can be appropriately determined by those skilled in the art while monitoring the number of cells.
  • the number of days is not particularly limited, and is, for example, at least 10 days, 12 days, 14 days, 16 days, 18 days, 20 days, 21 days, and preferably 14 days.
  • the cells obtained in this step 2 may be stimulated with mitogen.
  • mitogen means a substance that promotes cell division of T cells. Examples of such substances include pokeweed mitogen, anti-CD3 antibody, anti-CD28 antibody, phytohemagglutinin (PHA), concanavalin A (ConA). ), Superantigens, and fallball esters (eg, phorbol-12-myristate-13-acetate (PMA)).
  • Step 3 Step of co-culturing with peripheral blood mononuclear cells in the presence of IL-7 and IL-15
  • the cells obtained in the above step 2 are isolated and co-cultured with peripheral blood mononuclear cells. It is a step of culturing.
  • the peripheral blood mononuclear cells used in this step 3 are desirably allogenic (allogeneic) with respect to the pluripotent stem cells used in step 1. Therefore, when human pluripotent stem cells are used, the peripheral blood mononuclear cells It is desirable that the nucleus cell is also a human peripheral blood mononuclear cell. In addition, it is desirable to take measures to prevent the peripheral blood mononuclear cells from proliferating. Examples of such measures include irradiation and mitomycin treatment.
  • the culture solution used in this step 3 is not particularly limited, but can be prepared by adding IL-7 and IL-15 to a basal medium as a medium used for culturing animal cells.
  • Basal media include, for example, Iscove's'Modified Dulbecco's Medium (IMDM), Medium 199, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM), ⁇ MEM, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM), Ham's F12 ', , Neurobasal Medium (Life Technologies) and mixed media thereof. Serum may be contained in the medium, or serum-free may be used.
  • the basal medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, low It may also contain one or more substances such as molecular compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like.
  • a preferred basal medium is RPMI 1640 medium supplemented with serum and L-glutamine.
  • the concentration of IL-7 in the culture medium used in this step 3 is 1 ng / ml to 100 ng / ml, such as 1 ng / ml, 2 ng / ml, 3 ng / ml, 4 ng / ml, They are 5 ng / ml, 6 ng / ml, 7 ng / ml, 8 ng / ml, 9 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 50 ng / ml, 100 ng / ml. Preferably, it is 10 ng / ml.
  • the concentration of IL-15 in the culture medium used in this step 3 is 1 ng / ml to 100 ng / ml, such as 1 ng / ml, 2 ng / ml, 3 ng / ml, 4 ng / ml, They are 5 ng / ml, 6 ng / ml, 7 ng / ml, 8 ng / ml, 9 ng / ml, 10 ng / ml, 20 ng / ml, 50 ng / ml, 100 ng / ml. Preferably, it is 10 ng / ml.
  • mitogen may be further added to the culture solution.
  • the mitogen can be the same as described above.
  • the culture temperature condition in this step 3 is not particularly limited, but for example, about 37 ° C to about 42 ° C, preferably about 37 to about 39 ° C is preferable.
  • the culture period can be appropriately determined by those skilled in the art while monitoring the number of cells.
  • the number of days is not particularly limited, and is, for example, at least 10 days, 12 days, 14 days, 16 days, 18 days, 20 days, 21 days, and preferably 14 days.
  • the method for introducing the CD4 gene or gene product into T cells is not particularly limited.
  • the gene product is exemplified by RNA or protein.
  • the CD4 gene is preferably a human gene, and has, for example, the amino acid sequence of GenBank Accession No. AAH25782 (SEQ ID NO: 3) or 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more identical thereto. Examples include genes that encode proteins that can activate dendritic cells when introduced into T cells.
  • vectors such as viruses, plasmids, and artificial chromosomes can be introduced into pluripotent stem cells by techniques such as lipofection, liposome, and microinjection.
  • virus vectors include retrovirus vectors, lentivirus vectors, adenovirus vectors, adeno-associated virus vectors, Sendai virus vectors, and the like.
  • artificial chromosome vectors include human artificial chromosomes (HAC), yeast artificial chromosomes (YAC), and bacterial artificial chromosomes (BAC, PAC).
  • HAC human artificial chromosomes
  • YAC yeast artificial chromosomes
  • BAC bacterial artificial chromosomes
  • plasmid a plasmid for mammalian cells can be used.
  • the vector can contain regulatory sequences such as a promoter, enhancer, ribosome binding sequence, terminator, polyadenylation site, etc. so that the CD4 gene can be expressed, and, if necessary, a drug resistance gene (for example, kanamycin). Resistance marker, ampicillin resistance gene, puromycin resistance gene, etc.), thymidine kinase gene, diphtheria toxin gene and other selectable marker sequences, fluorescent protein, ⁇ -glucuronidase (GUS), FLAG and other reporter gene sequences.
  • regulatory sequences such as a promoter, enhancer, ribosome binding sequence, terminator, polyadenylation site, etc. so that the CD4 gene can be expressed, and, if necessary, a drug resistance gene (for example, kanamycin). Resistance marker, ampicillin resistance gene, puromycin resistance gene, etc.), thymidine kinase gene, diphtheria toxin gene and other selectable marker sequences, fluorescent protein, ⁇ -glucuronidas
  • SV40 promoter As promoters, SV40 promoter, LTR promoter, CMV (cytomegalovirus) promoter, RSV (Rous sarcoma virus) promoter, MoMuLV (Moloney mouse leukemia virus) LTR, HSV-TK (herpes simplex virus thymidine kinase) promoter, EF- ⁇ promoter, CAG Examples include promoters and TRE promoters (CMV minimal promoter having a Tet response sequence in which tetO sequence is continuous seven times).
  • a vector having a TRE promoter and capable of expressing a fusion protein of reverse tetR (rtetR) and VP16AD is referred to as a drug-responsive induction vector.
  • the above-mentioned vector has a transposon sequence before and after this expression cassette in order to incorporate an expression cassette consisting of a promoter and a CD4 gene that binds to it into the chromosome of a pluripotent cell and further excise it if necessary. But you can. Although it does not specifically limit as a transposon arrangement
  • the CD4 gene When using a drug-responsive induction vector, the CD4 gene may be introduced into pluripotent stem cells. In this case, the CD4 gene can be expressed by adding the corresponding drug into the medium. Therefore, when the drug responsive induction vector is used, it can be rephrased as introduction of the CD4 gene by adding the corresponding drug into the medium. Examples of the corresponding drug include doxycycline and the like.
  • a method of stopping expression by introducing Cre into a cell after a desired period of time is exemplified.
  • RNA When introduced in the form of RNA, it may be introduced into pluripotent stem cells by techniques such as electroporation, lipofection, and microinjection.
  • pluripotent stem cells When introduced in the form of protein, it may be introduced into pluripotent stem cells by techniques such as lipofection, fusion with cell membrane permeable peptides (eg, HIV-derived TAT and polyarginine), and microinjection.
  • lipofection fusion with cell membrane permeable peptides (eg, HIV-derived TAT and polyarginine), and microinjection.
  • cell membrane permeable peptides eg, HIV-derived TAT and polyarginine
  • the half-life of the gene product is short, so the introduction may be performed multiple times.
  • the number of introductions refer to the half-life from the period when CD4 gene expression is required And can be calculated as appropriate. Examples of the number of introductions are 3, 4, 5, 6 or more times.
  • the present invention relates to a method for activating dendritic cells comprising the step of contacting CD4 positive T cells produced by the above-described method with dendritic cells in the presence of an antigen in vitro. provide.
  • a dendritic cell is a cell having a function capable of taking up an antigen, binding to an MHC molecule, and presenting the antigen. Since it can be activated by contacting with a CD4 positive T cell produced by the method of the present invention, it may be an immature dendritic cell.
  • Activating dendritic cells means acquiring a function capable of activating T cells specific for the antigen, and more preferably acquiring a function capable of activating CD8 positive T cells specific for the antigen. That is. The activation can also be performed by confirming the expression of CD83 or CMRF-44. Furthermore, activating a dendritic cell can be paraphrased as maturation of an immature dendritic cell into a mature dendritic cell.
  • the dendritic cells used in the present invention are dendritic cells isolated from a donor by a blood component separator and density gradient centrifugation, and possess the same MHC molecules as CD4-positive T cells. preferable.
  • the antigen used in the activation of dendritic cells of the present invention is a peptide having at least a continuous 9 amino acid sequence of a protein specifically recognized by CD4 positive T cells produced by the method of the present invention.
  • an antigen for example, when a CD4-positive T cell possesses a TCR that specifically recognizes a b3a2 peptide, the b3a2 peptide is used as the antigen.
  • the b3a2 peptide is a part of a protein encoded by the b3a2 type BCR / ABL chimeric gene, and is a peptide having at least a continuous 9 amino acid sequence.
  • the b3a2 type BCR / ABL chimeric gene means a fusion gene of BCR and ABL containing B3 exon from the M-BCR site of BCR and A2 exon from ABL.
  • a medium used for activating dendritic cells a medium used for culturing animal cells can be used.
  • IMDM Iscove's ⁇ ⁇ ⁇ Modified Dulbecco's Medium
  • EMEM Eagle's ⁇ ⁇ Minimum Essential Medium
  • MEM Dulbecco's'modified Eagle's Medium
  • Ham's F12 medium Ham's F12 medium
  • Media Neurobasal Medium (Life Technologies) and mixed media thereof are included.
  • Serum may be contained in the medium, or serum-free may be used.
  • the basal medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, low It may also contain one or more substances such as molecular compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like.
  • a preferred basal medium is RPMI 1640 medium containing serum and L-glutamine.
  • the time required for the activity of dendritic cells is not particularly limited, but may be several hours, and examples thereof include 2 hours, 3 hours, 4 hours, 5 hours, and 6 hours. Preferably, it is 5 hours.
  • the present invention provides a therapeutic agent for cancer comprising CD4-positive T cells produced by the method described above and / or dendritic cells activated by the method described above.
  • the cancer to be treated is preferably a cancer cell that expresses an antigen that is specifically recognized by CD4-positive T cells in the cancer cells.
  • the treatment target is a cancer cell that expresses b3a2, and is caused by a chromosome having a BCR / ABL chimeric gene (Philadelphia chromosome) Leukemia.
  • Dendritic cells activated by CD4-positive T cells activate lymphocytes that recognize the antigen (for example, CD8-positive T cells) by presenting other than antigens recognized by the CD4-positive T cells. It is possible to Therefore, the cancer which is the target of the cancer therapeutic agent containing dendritic cells is not particularly limited.
  • the activated dendritic cell may be used as the therapeutic agent as it is, but for cancer treatment, in order to present the tumor antigen to the dendritic cell, the cell of the cancer cell Dendritic cells that have been mixed with lysate sputum (cell lysate) sputum, contacted with peptides, or presented with an antigen such as by introducing a tumor antigen gene may be used as a cancer therapeutic agent.
  • the produced CD4-positive T cells and / or dendritic cells activated by the above-mentioned method are suspended in physiological saline or the like, Examples thereof include a method of transplanting directly into muscle tissue or a method of suspending dendritic cells in physiological saline and injecting them intravenously.
  • iPS cells (b3a2-iPSC strain) were established from the isolated human b3a2-Th cells by the method described in Nishimura T, et al., Cell Stem Cell. 12 (1): 114-126, 2013. Specifically, isolated human b3a2-Th cells were cultured for 2 days in RPMI 1640 + 10% FBS + PSG (penicillin, streptomycin, and L-glutamine) containing 20 ng / ml of hIL-2, and OCT4 in Sendai virus vector. , SOX2, KLF4, and c-MYC were transfected.
  • FBS + PSG penicillin, streptomycin, and L-glutamine
  • irradiated MEF mouse fetal fibroblast
  • iPS medium knockout serum substitute, L-glutamine, non-essential amino acid, 2- Replacement with Dulbecco's modified Eagle medium / F12 medium (available from Reprocell, for example) containing mercaptoethanol, b-FGF, etc., and TPS medium was completely replaced with iPS medium 4 days after seeding .
  • human b3a2-Th cells are obtained from b3a2 peptide (SEQ ID NO: 1: ATGFKQSSKALQRPVAS) obtained from peripheral blood mononuclear cells (PBMC) separated from human peripheral blood collected with consent by density gradient centrifugation using Ficoll.
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • B3a2-Th cells were proliferated by performing a total of 3 antigen stimulations per week, and this was obtained as a b3a2-Th cell clone by the limiting dilution method.
  • TCR gene rearrangement is described in Nishimura T, et al., Cell Stem Cell. 12 (1): 114-126, 2013. Confirmed by the method.
  • C3H10T1 / 2 cells and OP9 cells (OP9-DL1 cells) expressing Delta-like-1 were obtained from RIKEN / RIKEN BioResource Center.
  • a small cluster of iPS cells was seeded on confluent C3H10T1 / 2 cells (Day 0), EB medium (15% fetal bovine serum (FBS), 10 ⁇ g / mL human insulin, 5.5 ⁇ g / mL human transferrin, 5 ng / Cultured in hypoxic conditions (5% O 2 ) for 7 days in IMDM supplemented with mL sodium selenite, 2 mM L-glutamine, 0.45 mM ⁇ -monothioglycerol, and 50 ⁇ g / mL ascorbic acid (Day7).
  • FBS fetal bovine serum
  • Hematopoietic cells (CD34 + hematopoietic stem / progenitor cells) contained in the obtained net-like structure (also referred to as iPS-SAC) were collected and seeded on OP9-DL1 cells.
  • OP9 medium supplemented with 10 ng / mL FLT-3L and 1 ng / mL IL-7 (15% FBS, 2 mM L-glutamine, 100 U / ml penicillin, 100 ng / ml streptomycin, 5.5 ⁇ g / mL human transferrin and 5 ng / mL A
  • the cells were cultured for 14 days under normal pressure oxygen condition in ⁇ MEM to which sodium selenate was added, and 2 ⁇ g / ml of phytohemagglutinin (PHA) was added (Day 28). Cells were seeded on new OP9-DL1 cells every 3-4 days.
  • the obtained cells were mixed with allogeneic (homogeneous) PBMC irradiated with 40 Gy X-rays, and RH10 medium (10%) supplemented with 2 ⁇ g / ml PHA, 10 ng / ml I L-7 and 10 ng / ml IL-15 was added.
  • RH10 medium 10%) supplemented with 2 ⁇ g / ml PHA, 10 ng / ml I L-7 and 10 ng / ml IL-15 was added.
  • the retroviral vector was prepared by incorporating the CD4 gene into pDON-AI2 (Takara Bio).
  • the induced T cells (CD4-b3a2-iPS-T cells) into which the CD4 gene obtained by the above method was introduced were measured using a flow cytometer using anti-TCR-V ⁇ 22 antibody and anti-CD4 antibody, and collected. Similar to human b3a2-Th cells, TCR-V ⁇ 22 positive CD4 positive cells were confirmed (FIGS. 2A and B). On the other hand, b3a2-iPS-T cells into which CD4 was not introduced were confirmed to be CD4 negative.
  • DC dendritic cells
  • CD4-b3a2-iPS-T cells were co-cultured for 5 hours in RH10 medium supplemented with 10 ⁇ M b3a2 peptide (SEQ ID NO: 1: ATGFKQSSKALQRPVAS) did.
  • the obtained cell culture was irradiated with 30 Gy of X-rays to suppress cell growth of DC and CD4-b3a2-iPS-T cells.
  • WT1 peptide SEQ ID NO: 2: CYTWNQMNL
  • 5 ⁇ 10 4 CD8-positive T cells were added and cultured for 1 week.
  • the obtained cells were treated with anti-CD8 antibody and WT1 tetramer and analyzed using a flow cytometer.
  • the CD4-b3a2-iPS-T cells were confirmed to have the ability to induce antigen-specific CTL via b3a2 peptide-specific DC (FIG. 3).
  • [ 3 H] -thymidine incorporation assay was performed to examine the proliferation ability of b3a2-iPS-T cells and CD4-b3a2-iPS-T cells.
  • [ 3 H] -thymidine incorporation assay was performed based on the method of Bennett SR et al, J Exp Med. 1997; 186 (1): 65-70. The result is shown in FIG. CD4-b3a2-iPS-T cells were shown to show good proliferation ability in response to antigen stimulation.
  • b3a2-iPS-T cells and CD4-b3a2-iPS-T stimulated with dendritic cells previously presented with 10 ⁇ M ⁇ b3a2 peptide Cells are released into the culture supernatant of b3a2-Th cells or CD4-b3a2-iPS-T cells using ELISA (ELISA; hIFN ⁇ : eBioscience) and bead-based multiplex immunoassay (BD Cytometric Beads Array; BD Biosciences)
  • ELISA ELISA
  • hIFN ⁇ eBioscience
  • bead-based multiplex immunoassay BD Cytometric Beads Array
  • the amount of IFN- ⁇ to be measured was measured.
  • the result is shown in FIG.
  • the resulting CD4-b3a2-iPS-T cells were shown to have a much higher ability to produce IFN- ⁇ in response to antigen stimulation compared to b3a2-iPS-T cells.
  • CD4-introduced iPS-derived T cells can be induced from desired tumor antigen-specific CD4-positive Th cells by forcibly expressing the CD4 gene in T cells derived from pluripotent stem cells.
  • the induced CD4-positive Th cells can be expected to induce an effective antigen-specific anti-tumor helper function, and are considered to be an effective tool for developing a new immune cell therapy.

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Abstract

本発明は、多能性幹細胞からCD4陽性T細胞を誘導することを目的とし、多能性幹細胞から誘導したT細胞へCD4遺伝子または該遺伝子産物を導入する工程によってCD4陽性T細胞を製造することにより上記課題を解決する。

Description

多能性幹細胞からＣＤ４陽性Ｔ細胞を製造する方法
　本発明は、CD4遺伝子または該遺伝子産物を多能性幹細胞から誘導したT細胞へ導入する工程を含むCD4陽性T細胞を製造する方法に関する。
　腫瘍に対する免疫監視機能は、主に直接的に腫瘍を傷害するCD8陽性細胞からなる細胞傷害性T細胞(CTL)と、主にCD4陽性細胞からなるCTLの機能を増強するヘルパーT細胞(Th細胞)によって成り立っている。一方で、樹状細胞(DC)は他の免疫細胞の動態を調整する司令塔的な役割を持つ。Th細胞はDCの活性化を介してCTLを活性化して抗腫瘍効果を発揮することができると考えられている。
　人工多能性幹（iPS）細胞などの多能性幹細胞から腫瘍抗原特異的Th細胞の誘導が可能となれば、これを生体内に投与して強い抗腫瘍免疫応答を惹起するような新規細胞免疫療法の開発につながると考えられ、これまでに抗原特異的なCD8陽性CTLからiPS細胞を作り、再びCD8陽性CTLに分化誘導する方法が報告されている（非特許文献１および特許文献１）。この方法ではCD8陽性CTLのT細胞受容体（TCR）が一貫して受け継がれるため、iPS細胞から誘導されたCD8陽性CTLも由来となった細胞と同じ抗原特異性を示す。
　T細胞共受容体(CD8陽性CTLにおいてはCD8分子、CD4陽性Th細胞においてはCD4)は、TCRが抗原を認識した際に細胞内に入力するシグナルを効果的に増強し、その結果、T細胞の抗原特異的な免疫反応が効果的に誘導される。しかし、非特許文献１に記載の方法ではCD8分子を発現した細胞の誘導は可能であるが、CD4分子を発現した細胞の作製は難しい。従って、CD4陽性Th細胞由来のiPS細胞から誘導した細胞ではCD4分子を欠くため十分なヘルパー機能を惹起できない。
WO 2011/096482
Nishimura T, et al., Cell Stem Cell. 12(1):114-126, 2013.
　本発明の目的は、多能性幹細胞からCD4陽性T細胞を製造することにある。さらなる本発明の目的は、当該方法で得られたCD4陽性T細胞を用いて樹状細胞を活性化することにある。
　本発明者らは、上記目的を達成すべく、多能性幹細胞から従来法に従って誘導したＴ細胞には、CD4が発現しないことから、当該T細胞へCD4遺伝子を導入したところ、生体内から単離したCD4陽性T細胞と同等に、樹状細胞を活性化することを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は、以下の発明を提供するものである。
［１］多能性幹細胞から誘導したT細胞へCD4遺伝子または該遺伝子産物を導入する工程を含む、CD4陽性T細胞を誘導する方法。
［２］前記多能性幹細胞からT細胞の誘導方法が、次の（１）および（２）の工程を含む、［１］に記載の方法；
（１）多能性幹細胞からCD34陽性造血前駆細胞を誘導する工程、
（２）前記工程（１）で得られたCD34陽性造血前駆細胞をＦＬＴ３Ｌ（Flt3 Ligand）およびＩＬ（Interleukin）－７の存在下で培養する工程。
［３］次の（３）の工程をさらに含む、［２］に記載の方法；
（３）前記工程（２）で得られた細胞をＩＬ－７およびＩＬ－１５の存在下で末梢血単核球（ＰＢＭＣ）と共培養する工程。
［４］前記工程（２）で得られた細胞をマイトジェンと接触させる工程および/または前記工程（３）で得られた細胞をマイトジェンと接触させる工程をさらに含む、［２］または［３］に記載の方法。
［５］前記工程（１）が多能性幹細胞をC3H10T1/2と共培養した後、ＶＥＧＦ（Vascular Endothelial Growth Factor Receptor）、ＦＬＴ３ＬおよびＳＣＦ（Stem Cell Factor）の存在下でC3H10T1/2と共培養する工程である、［２］から［４］のいずれか１項に記載の方法。
［６］前記工程（２）が、前記CD34陽性造血前駆細胞をストローマ細胞と共培養する工程である、［２］から［５］のいずれか１項に記載の方法。
［７］前記ストローマ細胞が、Delta-1を発現させたＯＰ９細胞である、［６］に記載の方法。
［８］前記CD4遺伝子または遺伝子産物の導入が、レトロウィルスを用いてCD4遺伝子を導入することによる、［１］から［７］のいずれか１項に記載の方法。
［９］前記多能性幹細胞が、再構成された所望のＴＣＲ配列を有する、［１］から［８］のいずれか１項に記載の方法。
［１０］前記多能性幹細胞が所望の抗原認識するリンパ球から誘導されたヒトiPS細胞である、［９］に記載の方法。
［１１］前記所望の抗原認識するリンパ球が、BCR/ABLを認識するリンパ球である、［１０］に記載の方法。
［１２］in vitroで［１］から［１１］のいずれか１項に記載の方法で製造されたCD4陽性T細胞と単離されたDCとを抗原の存在下で接触させる工程を含む、樹状細胞を活性化する方法。
［１３］前記抗原が、BCR/ABLの断片である、［１２］に記載の方法。
［１４］［１］から［１１］のいずれか１項に記載の方法で製造されたCD4陽性T細胞を含む、がん治療剤。
［１５］抗原をさらに含む、［１４］に記載のがん治療剤。
［１６］前記抗原が、BCR/ABLの断片である、［１５］に記載のがん治療剤。
［１７］［１２］または［１３］に記載の方法で活性化された樹状細胞を含む、がん治療剤。
　本発明によれば、多能性幹細胞から誘導したT細胞へCD4遺伝子または遺伝子産物を導入することで、機能的なCD4陽性T細胞を製造することが可能である。さらに、本発明によれば、当該CD4陽性T細胞を用いて樹状細胞を活性化することが可能である。従って、本発明によれば、多能性幹細胞からCD4陽性T細胞を生産することが可能であり、また、多能性幹細胞由来のCD4陽性T細胞を含む免疫機能を賦活するがん治療薬を提供することができる。
図１は、多能性幹細胞からＴ細胞を誘導するスキームを示す。 図２Ａは、採取したＴｈ細胞（左図）および誘導Ｔ細胞（CD4遺伝子未導入）（右図）のCD4およびＴＣＲ-Ｖβ２２を指標としたフローサイトメトリーの結果を示す。図２Ｂは、誘導Ｔ細胞（CD4遺伝子未導入）（左図）および誘導Ｔ細胞（CD4遺伝子導入）（右図）のCD4およびＴＣＲ-Ｖβ２２を指標としたフローサイトメトリーの結果を示す。 図３は、採取したＴｈ細胞（左図）および誘導Ｔ細胞（CD4遺伝子導入）を抗原（b3a2）の存在下で処理したＤＣで活性化したＣＤ８陽性ＣＴＬのＷＴ１テトラマーを用いたフローサイトメトリーの結果を示す。 図４は、b3a2-iPS-T細胞（Mock）およびCD4-b3a2-iPS-T細胞（CD4）の増殖能を調べるため、[3H]-thymidine incorporation assayを行った結果を示す。 図５は、あらかじめ10μM b3a2ペプチドを呈示させた樹状細胞刺激による、b3a2-iPS-T細胞（Mock）およびCD4-b3a2-iPS-T細胞（CD4）のIFN-γ産生能について評価した結果を示す。
　本発明は、多能性幹細胞から誘導したT細胞へCD4遺伝子または該遺伝子産物を導入する工程を含む、CD4陽性T細胞を誘導する方法を提供する。
多能性幹細胞
　本発明において多能性幹細胞とは、生体に存在する多くの細胞に分化可能である多能性を有し、かつ、増殖能をも併せもつ幹細胞であり、少なくとも本発明で使用される造血前駆細胞に誘導される任意の細胞が包含される。多能性幹細胞には、特に限定されないが、例えば、胚性幹（ES）細胞、核移植により得られるクローン胚由来の胚性幹（ntES）細胞、精子幹細胞（「GS細胞」）、胚性生殖細胞（「EG細胞」）、人工多能性幹（iPS）細胞、培養線維芽細胞や骨髄幹細胞由来の多能性細胞（Muse細胞）などが含まれる。
　iPS細胞の製造方法は当該分野で公知であり、任意の体細胞へ初期化因子を導入することによって製造され得る。ここで、初期化因子とは、例えば、Oct3/4、Sox2、Sox1、Sox3、Sox15、Sox17、Klf4、Klf2、c-Myc、N-Myc、L-Myc、Nanog、Lin28、Fbx15、ERas、ECAT15-2、Tcl1、beta-catenin、Lin28b、Sall1、Sall4、Esrrb、Nr5a2、Tbx3またはGlis1等の遺伝子または遺伝子産物が例示され、これらの初期化因子は、単独で用いても良く、組み合わせて用いてもよい。初期化因子の組み合わせとしては、WO2007/069666、WO2008/118820、WO2009/007852、WO2009/032194、WO2009/058413、WO2009/057831、WO2009/075119、WO2009/079007、WO2009/091659、WO2009/101084、WO2009/101407、WO2009/102983、WO2009/114949、WO2009/117439、WO2009/126250、WO2009/126251、WO2009/126655、WO2009/157593、WO2010/009015、WO2010/033906、WO2010/033920、WO2010/042800、WO2010/050626、WO 2010/056831、WO2010/068955、WO2010/098419、WO2010/102267、WO 2010/111409、WO2010/111422、WO2010/115050、WO2010/124290、WO2010/147395、WO2010/147612、Huangfu D, et al. (2008), Nat. Biotechnol., 26: 795-797、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 2: 525-528、Eminli S, et al. (2008), Stem Cells. 26:2467-2474、Huangfu D, et al. (2008), Nat. Biotechnol. 26:1269-1275、Shi Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3, 568-574、Zhao Y, et al. (2008), Cell Stem Cell, 3:475-479、Marson A, (2008), Cell Stem Cell, 3, 132-135、Feng B, et al. (2009), Nat. Cell Biol. 11:197-203、R.L. Judson et al., (2009), Nat. Biotechnol., 27:459-461、Lyssiotis CA, et al. (2009), Proc Natl Acad Sci U S A. 106:8912-8917、Kim JB, et al. (2009), Nature. 461:649-643、Ichida JK, et al. (2009), Cell Stem Cell. 5:491-503、Heng JC, et al. (2010), Cell Stem Cell. 6:167-74、Han J, et al. (2010), Nature. 463:1096-100、Mali P, et al. (2010), Stem Cells. 28:713-720、Maekawa M, et al. (2011), Nature. 474:225-9.に記載の組み合わせが例示される。
　体細胞には、非限定的に、胎児(仔)の体細胞、新生児(仔)の体細胞、および成熟した健全なもしくは疾患性の体細胞のいずれも包含されるし、また、初代培養細胞、継代細胞、および株化細胞のいずれも包含される。具体的には、体細胞は、例えば（1）神経幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、歯髄幹細胞等の組織幹細胞（体性幹細胞）、（2）組織前駆細胞、（3）血液細胞（末梢血細胞、臍帯血細胞等）、リンパ球、上皮細胞、内皮細胞、筋肉細胞、線維芽細胞（皮膚細胞等）、毛細胞、肝細胞、胃粘膜細胞、腸細胞、脾細胞、膵細胞(膵外分泌細胞等)、脳細胞、肺細胞、腎細胞および脂肪細胞等の分化した細胞などが例示される。
　本発明では、CD4陽性T細胞を製造する目的に使用するため、Ｔ細胞受容体（Ｔ　ｃｅｌｌ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ、ＴＣＲ）の遺伝子再編成が行われたリンパ球（好ましくは、T細胞）を体細胞として用いてiPS細胞を製造することが好ましい。本発明において、リンパ球を用いる場合、初期化の工程に先立ち当該リンパ球をインターロイキン－２（ＩＬ－２）の存在下にて抗ＣＤ３抗体及び抗ＣＤ２８抗体によって刺激、または、所望の抗原ペプチドで刺激して活性化することが好ましい。かかる刺激は、例えば、培地中に、ＩＬ－２、抗ＣＤ３抗体及び抗ＣＤ２８抗体を添加して前記リンパ球を一定期間培養することによって行うことができる。また、抗ＣＤ３抗体及び抗ＣＤ２８抗体は磁性ビーズ等が結合されているものであってもよく、さらにこれらの抗体を培地中に添加する代わりに、抗ＣＤ３抗体及び抗ＣＤ２８抗体を表面に結合させた培養ディッシュ上で前記Ｔ細胞を一定期間培養することによって刺激を与えてもよい。また、ヒトＴ細胞が認識する抗原ペプチドを培地中に添加することによって刺激を与えてもよい。抗原ペプチドとは、所望の抗原タンパク質を構成する少なくとも９個以上のアミノ酸配列から成るペプチドである。このようなペプチドとして、例えば、BCR/ABLキメラ遺伝子のp210のb3a2サブタイプ（単にb3a2ともいう）を構成する９個以上のアミノ酸配列から成るペプチドが例示される。このように、抗原ペプチドを添加した培地中でリンパ細胞を培養することで、当該抗原ペプチドを認識するリンパ細胞が選択的に増殖させることが可能である。
　本発明において製造されるCD4陽性T細胞は、所望の抗原特異性を有することが好ましい。従って、iPS細胞の元となるリンパ球は、所望の抗原特異性を有することが望ましく、当該リンパ球は、所望の抗原を固定化したアフィニティカラム等を用いて精製により特異的に単離されてもよい。この精製では、所望の抗原を結合させたＭＨＣ（主要組織適合遺伝子複合体）を４量体化させたもの（いわゆる「ＭＨＣテトラマー」）を用いて、ヒトの組織より所望の抗原特異性を有するリンパ球を精製する方法も採用することができる。
　本発明において、体細胞を採取する由来となる哺乳動物個体は特に制限されないが、好ましくはヒトである。本発明の方法によって調製されたCD4陽性T細胞を輸血に使用する場合、輸血される患者とヒト白血球型抗原（ＨＬＡ）の型を適合させ易いという観点から、iPS細胞の元となる体細胞は、CD4陽性T細胞を輸血される対象から単離されることが好ましい。
多能性幹細胞からT細胞の誘導方法
　前記多能性幹細胞からT細胞の誘導方法は、公知の方法を用いて行うことができる。例えば、次の（１）から（３）の工程を含む方法が挙げられる；
（工程１）多能性幹細胞からＣＤ３４陽性造血前駆細胞を誘導する工程、
（工程２）前記工程（１）で得られたＣＤ３４陽性造血前駆細胞をＦＬＴ３ＬおよびＩＬ－７の存在下で培養する工程、および
（工程３）前記工程（２）で得られた細胞をＩＬ－７およびＩＬ－１５の存在下で末梢血単核球と共培養する工程。
　本発明において、T細胞とは、TCRを細胞表面に有している細胞を意味する。例えば、さらにＣＤ４およびＣＤ８を細胞表面に有していてもよい。従って、本発明において、Ｔ細胞を誘導するという観点から、上記（工程１）および（工程２）を含めばよい。Ｔ細胞の含有効率を上昇させる目的にて、さらに、上記（工程３）を含むことが望ましい。
　本発明において、Ｔ細胞を誘導するとは、Ｔ細胞に加えて、他の細胞種が含まれる細胞集団として製造してもよく、例えば、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上または９５％以上のＴ細胞が含まれる細胞集団を製造することを意味する。
（工程１）多能性幹細胞から造血前駆細胞を誘導する工程
　本発明において、造血前駆細胞とは、リンパ球、好酸球、好中球、好塩基球、赤血球、巨核球等の血球系細胞に分化可能な細胞である、本発明において、造血前駆細胞と造血幹細胞は、区別されるものではなく、特に断りがなければ同一の細胞を示す。したがって、本発明において、造血前駆細胞は造血幹細胞も含む。造血前駆細胞は、例えば、表面抗原であるCD34陽性、またはCD34およびCD43が陽性であることによって認識できる。
　多能性幹細胞から造血前駆細胞を誘導する方法として、多能性幹細胞をC3H10T1/2と共培養した後、ＶＥＧＦ、ＦＬＴ３ＬおよびＳＣＦの存在下でC3H10T1/2と共培養することで得られるネット様構造物（ES－sac又はiPS－sacとも称する）から造血前駆細胞を調製することができる。このとき、さらにビタミンＣ類を添加して培養してもよい。ここで、「ネット様構造物」とは、多能性幹細胞由来の立体的な嚢状（内部に空間を伴うもの）構造体で、内皮細胞集団などで形成され、内部に造血前駆細胞を含む構造体である。この他にも、Takayama N., et al. J Exp Med. 2817-2830 (2010)に記載の方法にしたがって、多能性幹細胞をVEGFの存在下でC3H10T1/2上で培養することで得られるネット様構造物から造血前駆細胞を調製することができる。 また、多能性幹細胞からの造血前駆細胞の製造方法として、胚様体の形成とサイトカインの添加による方法（Chadwick et al. Blood 2003, 102: 906-15、Vijayaragavan et al. Cell Stem Cell 2009, 4: 248-62、Saeki et al. Stem Cells 2009, 27: 59-67）または異種由来のストローマ細胞との共培養法（Niwa A et al. J Cell Physiol. 2009 Nov;221(2):367-77.）、サイトカインの添加とコーティング剤（マトリゲルまたはラミニン断片）の組み合わせによる方法（WO2011/115308）等が例示される。
（工程２）造血前駆細胞をＦＬＴ３ＬおよびＩＬ－７の存在下で培養する工程
　本工程２において用いる培養液は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地へＦＬＴ３ＬおよびＩＬ－７を添加して調製することができる。基礎培地には、例えばIscove's Modified Dulbecco's Medium（IMDM）培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium（ライフテクノロジーズ）およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清を使用してもよい。必要に応じて、基礎培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。本工程２において、好ましい基礎培地は、血清、L-グルタミン、トランスフェリン、セレンを添加したαMEM培地である。
　本工程２において用いる培養液中におけるIL-7の濃度は、通常0.1 ng/mlから50 ng/mlであり、例えば、0.1 ng/ml、0.2 ng/ml、0.3 ng/ml、0.4 ng/ml、0.5 ng/ml、0.6 ng/ml、0.7 ng/ml、0.8 ng/ml、0.9 ng/ml、1 ng/ml、2 ng/ml、3 ng/ml、4 ng/ml、5 ng/ml、10ng/ml、20 ng/ml、30 ng/ml、40 ng/mlまたは50 ng/mlである。好ましくは、1 ng/mlである。
　本工程２において用いる培養液中におけるFLT3Lの濃度は、通常1 ng/mlから100 ng/mlであり、例えば、1 ng/ml、2 ng/ml、3 ng/ml、4 ng/ml、5 ng/ml、6 ng/ml、7 ng/ml、8ng/ml、9 ng/ml、10 ng/ml、20 ng/ml、50 ng/mlまたは100 ng/mlである。好ましくは、10 ng/mlである。
　本工程２に用いる培養液へ、ビタミンＣ類、ＳＣＦ、ＴＰＯ（トロンボポエチン）からなる添加物をさらに添加して調製してもよい。
　本発明において、ビタミンC類とは、L-アスコルビン酸およびその誘導体を意味し、L-アスコルビン酸誘導体とは、生体内で酵素反応によりビタミンCとなるものを意味する。L-アスコルビン酸の誘導体として、リン酸ビタミンC、アスコルビン酸グルコシド、アスコルビルエチル、ビタミンCエステル、テトラヘキシルデカン酸アスコビル、ステアリン酸アスコビルおよびアスコルビン酸-2リン酸-6パルミチン酸が例示される。好ましくは、リン酸ビタミンCであり、例えば、リン酸-L-アスコルビン酸Naまたはリン酸-L-アスコルビン酸Mgが挙げられる。
　本発明において、ビタミンC類は、培養期間中、４日毎、３日毎、2日毎、または毎日、別途添加することが好ましく、より好ましくは毎日である。当該ビタミンC類は、培養液において、通常5ng/mlから500ng/mlに相当する量を添加する。好ましくは、5ng/ml、10ng/ml、25ng/ml、50ng/ml、100ng/ml、200ng/ml、300ng/ml、400ng/ml、または500ng/mlに相当する量である。
　本発明において造血前駆細胞の製造に用いるSCFの培養液中における濃度は、10 ng/mlから100 ng/mlであり、例えば、10 ng/ml、20 ng/ml、30 ng/ml、40 ng/ml、50 ng/ml、60 ng/ml、70 ng/ml、80 ng/ml、90 ng/ml、100 ng/ml、150 ng/ml、200 ng/ml、または500 ng/mlである。
　本発明において造血前駆細胞の製造に用いるＴＰＯの培養液中における濃度は、10 ng/mlから100 ng/mlであり、例えば、10 ng/ml、20 ng/ml、30 ng/ml、40 ng/ml、50 ng/ml、60 ng/ml、70 ng/ml、80 ng/ml、90 ng/ml、100 ng/ml、150 ng/ml、200 ng/ml、または500 ng/mlである。
　本工程２において、造血前駆細胞を接着培養または浮遊培養してもよく、接着培養の場合、培養容器をコーティングして用いてもよく、またフィーダー細胞等と共培養してもよい。共培養するフィーダー細胞として、ストローマ細胞が好ましく、具体的には骨髄間質細胞株OP9細胞（理研BioResource Centerより入手可能）が例示される。当該OP9細胞は、好ましくは、Delta-like 1（Dll1）を恒常的に発現するOP9-DL1細胞であってもよい（Holmes R1 and Zuniga-Pflucker JC. Cold Spring Harb Protoc. 2009(2)）。本発明において、フィーダー細胞としてOP9細胞を用いる場合、別途用意したDll1またはDll1とFc等の融合タンパク質を適宜培養液に添加することによっても行い得る。本発明において、Dll1には、NCBIのアクセッション番号として、ヒトの場合、NM_005618、マウスの場合、NM_007865に記載されたヌクレオチド配列を有する遺伝子にコードされるタンパク質、ならびにこれらと高い配列同一性（例えば９０％以上）を有し、同等の機能を有する天然に存在する変異体が包含される。当該フィーダー細胞は培養中適宜交換することが好ましい。フィーダー細胞の交換は、予め播種したフィーダー細胞上へ培養中の対象細胞を移すことによって行い得る。当該交換は、５日毎、４日毎、３日毎、または２日毎にて行い得る。
　本工程２において、浮遊培養によって行われる場合、細胞を培養容器へ非接着の状態で凝集体（スフェアとも言う）を形成させて培養することが望ましく、このような培養は、特に限定はされないが、細胞との接着性を向上させる目的で人工的に処理（例えば、細胞外マトリックス等によるコーティング処理）されていない培養容器、若しくは、人工的に接着を抑制する処理（例えば、ポリヒドロキシエチルメタクリル酸（poly-HEMA）、非イオン性の界面活性ポリオール（Pluronic F-127等）またはリン脂質類似構造物（例えば、2-メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンを構成単位とする水溶性ポリマー（Lipidure））によるコーティング処理した培養容器を使用することによって行うことができる。本工程２を浮遊培養で行う場合、Huijskens MJ et al, J Leukoc Biol. 96: 1165-1175, 2014を参照して行うことができる。
　本工程２において、接着培養によって行われる場合、細胞外基質をコーティング処理された培養容器を用いて培養することによって行うことができる。コーティング処理は、細胞外基質を含有する溶液を培養容器に入れた後、当該溶液を適宜除くことによって行い得る。ここで、細胞外基質とは、細胞の外に存在する超分子構造体であり、天然由来であっても、人工物（組換え体）であってもよい。例えば、ポリリジン、ポリオルニチン、コラーゲン、プロテオグリカン、フィブロネクチン、ヒアルロン酸、テネイシン、エンタクチン、エラスチン、フィブリリン、ラミニンといった物質およびこれらの断片が挙げられる。これらの細胞外基質は、組み合わせて用いられてもよく、例えば、BD Matrigel(商標)などの細胞からの調製物であってもよい。
　本工程２における、造血前駆細胞を培養する際の培養温度条件は、特に限定されないが、例えば、約37℃～約42℃程度、約37～約39℃程度が好ましい。また、培養期間については、当業者であれば細胞数などをモニターしながら、適宜決定することが可能である。日数は特に限定されないが、例えば、少なくとも10日間以上、12日以上、14日以上、16日以上、18日以上、20日以上、21日以上であり、好ましくは14日である。
　本工程２にて得られた細胞を、マイトジェンで刺激してもよい。本発明において、マイトジェンとは、Ｔ細胞の細胞分裂を促進する物質を意味し、このような物質として、例えば、pokeweed mitogen、抗CD3抗体、抗CD28抗体、フィトヘマグルチニン（PHA）、コンカナバリンA （ConA）、スーパー抗原、フォールボールエステル（例えば、ホルボール-12-ミリスタート-13-アセタート（ＰＭＡ））が挙げられる。
（工程３）ＩＬ－７およびＩＬ－１５の存在下で末梢血単核球と共培養する工程
　本工程３は、上述の工程２で得られた細胞を単離し、末梢血単核球と共培養する工程である。
　本工程３で用いる末梢血単核球は、工程１で用いた多能性幹細胞とてアロジェニック（同種）であることが望ましく、従って、ヒト多能性幹細胞を用いた場合、当該末梢血単核球もヒト末梢血単核球であることが望ましい。また、当該末梢血単核球は、自己増殖を防止する措置を取ることが望ましく、このような措置として、放射線照射やマイトマイシン処理が例示される。
　本工程３において用いる培養液は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地へＩＬ－７およびＩＬ－１５を添加して調製することができる。基礎培地には、例えばIscove's Modified Dulbecco's Medium（IMDM）培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium（ライフテクノロジーズ）およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清を使用してもよい。必要に応じて、基礎培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。本工程２において、好ましい基礎培地は、血清、L-グルタミン、を添加したRPMI 1640培地である。
　本工程３において用いる培養液中におけるＩＬ－７の濃度は、1 ng/mlから100 ng/mlであり、例えば、1 ng/ml、2 ng/ml、3 ng/ml、4 ng/ml、5 ng/ml、6 ng/ml、7 ng/ml、8 ng/ml、9 ng/ml、10 ng/ml、20 ng/ml、50 ng/ml、100 ng/mlである。好ましくは、10 ng/mlである。
　本工程３において用いる培養液中におけるＩＬ－１５の濃度は、1 ng/mlから100 ng/mlであり、例えば、1 ng/ml、2 ng/ml、3 ng/ml、4 ng/ml、5 ng/ml、6 ng/ml、7 ng/ml、8 ng/ml、9 ng/ml、10 ng/ml、20 ng/ml、50 ng/ml、100 ng/mlである。好ましくは、10 ng/mlである。
　Ｔ細胞の細胞分裂を促進する目的で、培養液へマイトジェンをさらに添加して調製してもよい。マイトジェンは、上述したものと同様のものを用いることができる。
　本工程３における、培養温度条件は、特に限定されないが、例えば、約37℃～約42℃程度、約37～約39℃程度が好ましい。また、培養期間については、当業者であれば細胞数などをモニターしながら、適宜決定することが可能である。日数は特に限定されないが、例えば、少なくとも10日間以上、12日以上、14日以上、16日以上、18日以上、20日以上、21日以上であり、好ましくは14日である。
CD4遺伝子または遺伝子産物を導入する方法
　CD4遺伝子または遺伝子産物をT細胞に導入する方法は特に限定されないが、例えば、以下の方法を用いることができる。本発明において、遺伝子産物とは、ＲＮＡまたはタンパク質が例示される。CD4遺伝子はヒトの遺伝子が好ましく、例えば、GenBank Accession No. AAH25782のアミノ酸配列（配列番号３）またはそれと８０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上同一なアミノ酸配列を有し、Ｔ細胞に導入されたときに樹状細胞を活性化可能なタンパク質をコードする遺伝子が例示される。
　遺伝子（DNA）の形態で導入する場合、例えば、ウイルス、プラスミド、人工染色体などのベクターをリポフェクション、リポソーム、マイクロインジェクションなどの手法によって多能性幹細胞内に導入することができる。ウイルスベクターとしては、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、センダイウイルスベクターなどが例示される。また、人工染色体ベクターとしては、例えばヒト人工染色体(HAC)、酵母人工染色体(YAC)、細菌人工染色体(BAC、PAC)などが含まれる。プラスミドとしては、哺乳動物細胞用プラスミドを使用しうる。ベクターには、CD4遺伝子が発現可能なように、プロモーター、エンハンサー、リボゾーム結合配列、ターミネーター、ポリアデニル化サイトなどの制御配列を含むことができるし、さらに、必要に応じて、薬剤耐性遺伝子(例えばカナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子など）、チミジンキナーゼ遺伝子、ジフテリアトキシン遺伝子などの選択マーカー配列、蛍光タンパク質、βグルクロニダーゼ(GUS)、FLAGなどのレポーター遺伝子配列などを含むことができる。プロモーターとして、SV40プロモーター、 LTRプロモーター、CMV (cytomegalovirus)プロモーター、RSV (Rous sarcoma virus)プロモーター、MoMuLV (Moloney mouse leukemia virus) LTR、HSV-TK (herpes simplex virus thymidine kinase)プロモーター、EF-αプロモーター、CAGプロモーターおよびTREプロモーター（tetO 配列が7回連続したTet応答配列をもつCMV 最小プロモーター）が例示される。TREプロモーターを用いた場合、同一の細胞において、tetRおよびVP16ADとの融合タンパク質またはreverse tetR (rtetR)およびVP16ADとの融合タンパク質を同時に発現させることが望ましい。ここで、TREプロモーターを有しreverse tetR (rtetR)およびVP16ADとの融合タンパク質を発現させることが可能なベクターを薬剤応答性誘導ベクターと称する。また、上記ベクターには、多能性細胞の染色体へプロモーターとそれに結合するCD4遺伝子からなる発現カセットを取り込み、さらに必要に応じて切除するために、この発現カセットの前後にトランスポゾン配列を有していでもよい。トランスポゾン配列として特に限定されないが、piggyBacが例示される。他の態様として、発現カセットを除去する目的のため、発現カセットの前後にLoxP配列を有してもよい。
　薬剤応答性誘導ベクターを用いる場合、CD4遺伝子の導入は、多能性幹細胞において導入してもよく、この場合、対応する薬剤を培地中へ添加することでCD4遺伝子を発現することができる。従って、当該薬剤応答性誘導ベクターを用いる場合、対応する薬剤を培地中へ添加することをもって、CD4遺伝子の導入と言い換えることができる。対応する薬剤としては、ドキシサイクリンなどが例示される。LoxP配列を有するベクターを用いる場合、所望の期間経過後、Creを細胞内に導入することで発現を停止する方法などが例示される。
　RNAの形態で導入する場合、例えばエレクトロポレーション、リポフェクション、マイクロインジェクションなどの手法によって多能性幹細胞内に導入してもよい。
　タンパク質の形態で導入する場合、例えばリポフェクション、細胞膜透過性ペプチド（例えば、HIV由来のTATおよびポリアルギニン）との融合、マイクロインジェクションなどの手法によって多能性幹細胞内に導入してもよい。
　このような遺伝子産物の形態で導入する場合、遺伝子産物の半減期が短いことから、当該導入を複数回にわたって行ってもよい、導入回数は、CD4遺伝子の発現が必要な期間から半減期を参照し、適宜算出することができる。導入回数として、３回、４回、５回、６回またはそれ以上が例示される。
樹状細胞を活性化する方法
　本発明は、上述した方法で製造されたCD4陽性T細胞をin vitroで抗原の存在下で樹状細胞と接触させる工程を含む樹状細胞を活性化する方法を提供する。
　本発明において樹状細胞とは、抗原を取り込み、MHC分子と結合して当該抗原を提示することができる機能を有する細胞である。本発明の方法で製造されたCD4陽性T細胞と接触させることで活性化できることから、未熟樹状細胞であってもよい。
　樹状細胞を活性化するとは、抗原に特異的なT細胞を活性化できる機能を獲得することを意味し、より好ましくは、抗原に特異的なCD8陽性T細胞を活性化できる機能を獲得することである。当該活性化は、CD83、またはCMRF-44の発現を確認することによっても行い得る。さらに、樹状細胞を活性化するとは、未熟樹状細胞を成熟樹状細胞へと成熟させると言い換えることもできる。
　本発明で使用する樹状細胞は、ドナーから血液成分分離装置および密度勾配遠心分離法にて単離された樹状細胞であり、CD4陽性T細胞と同一のMHC分子を所有していることが好ましい。
　本発明の樹状細胞の活性化において用いる抗原は、本発明の方法で製造されたCD4陽性T細胞によって特異的に認識されるタンパク質の少なくとも連続する９アミノ酸配列を有するペプチドである。このような抗原として、例えば、CD4陽性T細胞がb3a2ペプチドを特異的に認識するTCRを保有する場合、当該b3a2ペプチドを抗原として用いる。
　b3a2ペプチドとは、b3a2型のBCR/ABLキメラ遺伝子によってコードされるタンパク質の一部であり、少なくとも連続する９アミノ酸配列を有するペプチドである。b3a2型のBCR/ABLキメラ遺伝子とは、BCRのM-BCR部位よりのB3エクソンと、ABLよりのA2エクソンを含むBCRとABLの融合遺伝子を意味する。
　樹状細胞を活性化するために用いる培地は、動物細胞の培養に用いられる培地を用いることができる。当該基礎培地には、例えばIscove's Modified Dulbecco's Medium（IMDM）培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium（ライフテクノロジーズ）およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清を使用してもよい。必要に応じて、基礎培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。
　本発明において好ましい基礎培地は、血清、L-グルタミンを含むRPMI 1640培地である。
　樹状細胞の活性に要する時間は特に限定されないが、数時間でよく、例えば、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間などが例示される。好ましくは、５時間である。
がん治療剤
　本発明は、上述の方法によって製造されたCD4陽性T細胞、および／または上述の方法によって活性化された樹状細胞を含むがん治療剤を提供する。
　CD4陽性T細胞を含む治療剤である場合、治療対象となるがんは、がん細胞において、CD4陽性T細胞に特異的に認識される抗原を発現するがん細胞であることが望ましい。例えば、CD4陽性T細胞がb3a2を特異的に認識するTCRを保有する場合、治療対象は、b3a2を発現するがん細胞であり、BCR/ABLキメラ遺伝子を有する染色体（フィラデルフィア染色体）を原因とする白血病である。
　CD4陽性T細胞により活性化された樹状細胞は、当該CD4陽性T細胞によって認識される抗原以外であっても提示することによって当該抗原を認識するリンパ球（例えば、CD8陽性T細胞）を活性化することが可能である。従って、樹状細胞を含むがん治療剤の対象となるがんは特に限定されない。
　樹状細胞を含む治療剤である場合、活性化された樹状細胞をそのまま治療剤としてもよいが、がん治療に関しては、樹状細胞に腫瘍抗原を提示させるために、がん細胞のcell lysate (細胞溶解物) と混合、ペプチドで接触、または腫瘍抗原遺伝子を導入する方法などにより抗原を提示させた樹状細胞をがん治療剤として用いてもよい。
　当該がん治療剤の患者への投与方法としては、例えば、製造されたCD4陽性T細胞、および／または上述の方法によって活性化された樹状細胞を生理食塩水等に懸濁させ、患者の筋組織に直接移植する方法、または、樹状細胞を生理食塩水等に懸濁させ、静脈注射する方法などが挙げられる。
　本発明を以下の実施例でさらに具体的に説明するが、本発明の範囲はそれら実施例に限定されないものとする。
　iPS細胞(b3a2-iPSC株)は、単離されたヒトb3a2-Th細胞より Nishimura T, et al., Cell Stem Cell. 12(1):114-126, 2013に記載の方法で樹立した。詳細には、単離されたヒトb3a2-Th細胞を、ｈＩＬ－２　２０ｎｇ／ｍｌを含有するＲＰＭＩ１６４０＋１０％ＦＢＳ＋ＰＳＧ（ペニシリン、ストレプトマイシン、及びＬ－グルタミン）で２日間培養し、センダイウイルスベクターにて、ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４、及びｃ－ＭＹＣを遺伝子導入した。連続２日間の遺伝子導入操作後、照射ＭＥＦ（マウス胎児線維芽細胞）上に１×１０5個を播種し、連日半量ずつｉＰＳメディウム（ノックアウト血清代替物、Ｌ－グルタミン、非必須アミノ酸、２－メルカプトエタノール、ｂ－ＦＧＦ等を含有する、ダルベッコ変法イーグル培地／Ｆ１２培地、例えば、リプロセル社から入手可能）に置換していき、播種後４日間にＴ細胞メディウムから完全にｉＰＳメディウムに置換した。なお、ヒトb3a2-Th細胞は、同意を得て採取したヒト末梢血からファイコールを使用した密度勾配遠心法により分離した末梢血単核球（ＰＢＭＣ）をb3a2ペプチド（配列番号１：ATGFKQSSKALQRPVAS）による抗原刺激を1週間毎、合計3回の刺激を行うことでb3a2-Th細胞を増殖させ、これを限界希釈法にてb3a2-Th細胞クローンとして得た。
　樹立されたｉＰＳ細胞がb3a2-Ｔh細胞由来であることを確認するために、ＴＣＲ遺伝子の再構成をNishimura T, et al., Cell Stem Cell. 12(1):114-126, 2013に記載の方法で確認した。
　C3H10T1/2細胞およびDelta-like 1が発現するＯＰ９細胞（ＯＰ９－ＤＬ１細胞）は、理化学研究所・理研 BioResource Center より入手して用いた。
　iPS細胞からＴ細胞への分化誘導は、Nishimura T, et al., Cell Stem Cell. 12(1):114-126, 2013に従って行った。詳細には、以下の通り（図１）。
　10cm dishにおいてコンフルエントなC3H10T1/2細胞上にiPS細胞の小塊を播種し（Day0）、EB培地（１５％ウシ胎児血清（FBS）、10μg/mL ヒトインスリン、5.5μg/mL ヒトトランスフェリン、5ng/mL 亜セレン酸ナトリウム、2mM Ｌ－グルタミンと、0.45mM α－モノチオグリセロール、および50μg/mL アスコルビン酸を添加したIMDM）中で、低酸素条件下(5% O2)にて7日間培養した（Day7）。
　続いて、20ng/mL VEGF、30ng/mL SCF及び10ng/mL FLT-3L（Peprotech社製）を添加し、常圧酸素条件下にて7日間培養した（Day14）。
　得られたネット様構造物（iPS-SACともいう）に含まれている造血細胞（CD34+造血幹／前駆細胞）を回収し、OP9-DL1細胞上に播種した。10ng/mL FLT-3L、および1ng/mL IL-7を添加したOP9培地（１５％ FBS、2mM Ｌ－グルタミン、100U/ml ペニシリン、100ng/ml ストレプトマイシン、5.5μg/mL ヒトトランスフェリンおよび5ng/mL 亜セレン酸ナトリウム添加したαMEM）中で、常圧酸素条件下にて14日間培養し、２μｇ/ｍｌのフィトヘマグルチニン（PHA）を添加した（Day28）。なお、細胞は、3-4日毎に新たなOP9-DL1細胞上へ播種した。
　得られた細胞を４０ＧｙのＸ線を照射済みのアロジェニック（同種）のＰＢＭＣと混合し、２μｇ／ｍｌ　ＰＨＡ、１０ｎｇ／ｍｌＩ Ｌ－７および１０ｎｇ／ｍｌ ＩＬ－１５を添加したＲＨ１０培地（１０％　ヒトＡＢ血清、２ｍＭ　Ｌ－グルタミン、１００Ｕ／ｍｌ　ペニシリン及び１００ｎｇ／ｍｌ　ストレプトマイシンを添加したＲＰＭＩ－１６４０）中で１４日間培養し、Ｔ細胞（b3a2-iPS-T細胞）を得た（Day42）。
　得られたＴ細胞へCD4遺伝子を導入するため、得られた細胞へ２μｇ/ｍｌのPHAを添加し、PHA添加後3日目と4日目にレトロウイルスウイルスベクターを用いて、CD4遺伝子を導入した。当該レトロウイルスベクターは、pDON-AI2（タカラバイオ）へCD4遺伝子を組み込んで作成した。
　上記の方法で得られたCD4遺伝子を導入した誘導Ｔ細胞（CD4-b3a2-iPS-T細胞）を抗ＴＣＲ-Ｖβ２２抗体および抗CD4抗体を用いてフローサイトメーターを用いて測定したところ、採取したヒトb3a2-Th細胞と同様に、ＴＣＲ-Ｖβ２２陽性CD4陽性の細胞が確認された（図２ＡおよびＢ）。一方、CD4を導入しなかったb3a2-iPS-T細胞は、CD4陰性であることが確認された。
　１０μＭ b3a2ペプチド（配列番号１：ATGFKQSSKALQRPVAS）を添加したＲＨ１０培地中で、1×104個の樹状細胞（ＤＣ）および5×103個のCD4-b3a2-iPS-T細胞を５時間共培養した。得られた細胞培養物に３０ＧｙのＸ線を照射し、ＤＣおよびCD4-b3a2-iPS-T細胞の細胞増殖を抑制した。続いて、ＷＴ１ペプチド（配列番号２：CYTWNQMNL）と5×104個のＣＤ８陽性Ｔ細胞を添加し、１週間培養した。得られた細胞を抗ＣＤ８抗体およびＷＴ１テトラマーで処理して、フローサイトメーターを用いて解析した。その結果、採取したヒトb3a2-Th細胞と同様に、CD4-b3a2-iPS-T細胞にはb3a2ペプチド特異的なＤＣを介した抗原特異的CTL誘導能が確認された（図３）。
　b3a2-iPS-T細胞およびCD4-b3a2-iPS-T細胞の増殖能を調べるため、[3H]-thymidine incorporation assayを行った。[3H]-thymidine incorporation assayはBennett SR et al, J Exp Med. 1997;186(1):65-70.の方法に基いて実施した。その結果を図４に示す。CD4-b3a2-iPS-T細胞は抗原刺激に応答した良好な増殖能を示すことが示された。
　得られたCD4-b3a2-iPS-T細胞のIFN-γ産生能を評価するため、あらかじめ10μM b3a2ペプチドを呈示させた樹状細胞で刺激したb3a2-iPS-T細胞およびCD4-b3a2-iPS-T細胞に、ELISA法(ELISA; hIFNγ: eBioscience)およびbead-based multiplex immunoassay（BD Cytometric Beads Array; BD Biosciences）を用いて、b3a2-Th細胞またはCD4-b3a2-iPS-T細胞の培地上清に放出されるIFN-γ量を測定した。その結果を図５に示す。得られたCD4-b3a2-iPS-T細胞は、b3a2-iPS-T細胞と比較し、抗原刺激に応答した非常に高いIFN-γ産生能を持つことが示された。
　以上より、多能性幹細胞から誘導したＴ細胞へCD4遺伝子を強制発現させることで、所望の腫瘍抗原特異的CD4陽性Th細胞からCD4導入iPS由来T細胞の誘導が可能となった。誘導したCD4陽性Th細胞は効果的な抗原特異的な抗腫瘍ヘルパー機能を誘導することが期待でき、新たな免疫細胞療法開発の有効なツールとなると考えられる。

Claims (17)

  1. 多能性幹細胞から誘導したT細胞へCD4遺伝子または遺伝子産物を導入する工程を含む、CD4陽性T細胞を誘導する方法。
  2. 前記多能性幹細胞からT細胞の誘導方法が、次の（１）及び（２）の工程を含む、請求項１に記載の方法；
    （１）多能性幹細胞からCD34陽性造血前駆細胞を誘導する工程、
    （２）前記工程（１）で得られたCD34陽性造血前駆細胞をＦＬＴ３ＬおよびＩＬ－７の存在下で培養する工程。
  3. 次の（３）の工程をさらに含む、請求項２に記載の方法；
    （３）前記工程（２）で得られた細胞をＩＬ－７およびＩＬ－１５の存在下で末梢血単核球と共培養する工程。
  4. 前記工程（２）で得られた細胞をマイトジェンと接触させる工程および/または前記工程（３）で得られた細胞をマイトジェンと接触させる工程をさらに含む、請求項２または３に記載の方法。
  5. 前記工程（１）が多能性幹細胞をC3H10T1/2と共培養した後、ＶＥＧＦ、ＦＬＴ３ＬおよびＳＣＦの存在下でC3H10T1/2と共培養する工程である、請求項２から４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 前記工程（２）が、前記CD34陽性造血前駆細胞をストローマ細胞と共培養する工程である、請求項２から５のいずれか１項に記載の方法。
  7. 前記ストローマ細胞が、Delta-1を発現させたＯＰ９細胞である、請求項６に記載の方法。
  8. 前記CD4遺伝子または該遺伝子産物の導入が、レトロウィルスを用いてCD4遺伝子を導入することによる、請求項１から７のいずれか１項に記載の方法。
  9. 前記多能性幹細胞が、再構成された所望のＴＣＲ配列を有する、請求項１から８のいずれか１項に記載の方法。
  10. 前記多能性幹細胞が所望の抗原認識するリンパ球から誘導されたヒトiPS細胞である、請求項９に記載の方法。
  11. 前記所望の抗原認識するリンパ球が、BCR/ABLを認識するリンパ球である、請求項１０に記載の方法。
  12. in vitroで請求項１から１１のいずれか１項に記載の方法で製造されたCD4陽性T細胞と単離された樹状細胞とを抗原の存在下で接触させる工程を含む、樹状細胞を活性化する方法。
  13. 前記抗原が、BCR/ABLの断片である、請求項１２に記載の方法。
  14. 請求項１から１１のいずれか１項に記載の方法で製造されたCD4陽性T細胞を含む、がん治療剤。
  15. 抗原をさらに含む、請求項１４に記載のがん治療剤。
  16. 前記抗原が、BCR/ABLの断片である、請求項１５に記載のがん治療剤。
  17. 請求項１２または１３に記載の方法で活性化された樹状細胞を含む、がん治療剤。
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