WO2017022665A1 - ｍＲＮＡを効率よく生体内に送達できるポリイオンコンプレックス並びにこれを用いた関節症の治療薬および治療法 - Google Patents

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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology

Definitions

  • the present invention relates to a polyion complex capable of efficiently delivering mRNA into a living body, and a therapeutic agent and a therapeutic method for arthropathy using the same.
  • PIC polyion complex
  • Patent Documents 1 and 2 As a technology applying PIC, systems that can deliver nucleic acids into the body with few side effects have been developed (Patent Documents 1 and 2).
  • Patent Documents 1 and 2 the inventors have developed a polyion complex of DNA and a new cationic polymer.
  • the inventors have also announced a polyion complex of RNA and a cationic polymer (Non-patent Document 1).
  • Osteoarthritis is a chronic degradable joint disease, and is caused by an imbalance between the synthesis and degradation of cartilage tissue (Non-patent Document 2). Osteoarthritis is a major health problem in the elderly (Non-Patent Document 3). However, an osteoarthritis condition modifying drug (DMOD) has not been developed for clinical use (Non-patent Documents 4 and 5).
  • DMOD osteoarthritis condition modifying drug
  • Runx1 is known to control cartilage formation in embryos and adults (Non-Patent Documents 6 and 7). Two different DMOAD candidate compounds have been shown to have a therapeutic effect via Runxl (Non-Patent Documents 8 and 9).
  • the present invention provides a polyion complex capable of efficiently delivering mRNA into a living body, and a therapeutic agent and a therapeutic method for arthropathy using the polyion complex.
  • the present inventors are a polymer containing a non-natural amino acid as a monomer unit as a cationic polymer, and the non-natural amino acid is represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 as a side chain. It has been clarified that a polyion complex containing a cationic polymer having a group ⁇ where p is 2, 3 or 4 ⁇ and mRNA highly express mRNA for a long time. The present inventors have revealed that osteoarthritis can be treated by administering a polyion complex containing the above cationic polymer and Runxl mRNA. The present invention is based on these findings.
  • a polyion complex comprising a cationic polymer and mRNA
  • the cationic polymer is a polymer containing a cationic unnatural amino acid as a monomer unit, and the cationic unnatural amino acid is represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 as a side chain.
  • the cationic polymer has the following general formula (I): ⁇ Where, R 1 is polyethylene glycol, and the amino acid adjacent to polyethylene glycol may be bonded via a linker; R 2 is methylene or ethylene; R 3 is a group represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 , p is 2, 3 or 4; R 4 is hydrogen, a protecting group, a hydrophobic group, or a polymerizable group, X is a cationic natural amino acid, n is an integer of 2 to 5000, n 1 is an integer from 0 to 5000, n 3 is an integer from 0 to 5000, nn 1 -n 3 is an integer of 0 or more, and each repeating unit in the formula is shown in a specific order for convenience of description, but each repeating unit can exist in any order, The repeating unit may be present randomly, and each repeating unit may be the same or different ⁇ .
  • a pharmaceutical composition for treating arthropathy comprising the polyion complex according to any one of (1) to (3) above, A pharmaceutical composition, wherein the mRNA is Runx1 mRNA.
  • the pharmaceutical composition according to any one of (4) to (6) above which is administered once every two days or once every three days.
  • the pharmaceutical composition according to any one of (4) to (8), wherein the arthropathy is osteoarthritis or rheumatoid arthritis.
  • FIG. 1 shows the expression of luciferase mRNA administered intra-articularly.
  • FIG. 2 shows the time course of the expression level of luciferase mRNA administered intra-articularly.
  • FIG. 3 shows the effect of administration of Runxl mRNA on osteoarthritis.
  • a polymer having p of 2 is used as the cationic polymer.
  • FIG. 4 shows the effect of administration of Runxl mRNA on osteoarthritis.
  • a polymer having p of 3 is used as the cationic polymer.
  • FIG. 5 shows the expression of various marker genes in the Runx1 mRNA administration group and the effect on cell death by the TUNEL method.
  • the polyion complex of the present invention comprises (i) a block copolymer comprising a cationic polymer, and (ii) mRNA comprising at least a polyion complex.
  • the cationic polymer is a polymer containing an unnatural amino acid as a monomer unit, and the unnatural amino acid is represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 as a side chain. Characterized in that it has the group ⁇ where p is 2, 3 or 4 ⁇ . p is preferably 3 or 4, and most preferably 3.
  • the cationic polymer may be one in which a block copolymer is formed with a polyethylene glycol block.
  • the copolymer (i) and the mRNA (ii) form a polyion complex in the solution.
  • the polyion complex of the present invention can be provided in solution, preferably in aqueous solution.
  • the polyion complex of the present invention contains a cationic polymer and mRNA, and is considered to be in a nano micelle form. Therefore, the polyion complex of the present invention may be referred to herein as a polyion complex type micelle.
  • mRNA means messenger RNA.
  • cytidine and uridine in mRNA may be modified.
  • Modified cytidines include, for example, 5-methyl-cytidine, and modified uridines include pseudouridine and 2-thio-cytidine.
  • the modified cytidine and uridine may be contained at 10 mol% or more, 20 mol% or more, or 30 mol% or more of the total cytidine and uridine.
  • subject refers to mammals including humans.
  • the subject may be a healthy subject or a subject suffering from some disease.
  • the cationic polymer may contain, for example, a cationic natural amino acid and / or a cationic unnatural amino acid as a monomer unit.
  • the cationic natural amino acid is preferably histidine, tryptophan, ornithine, arginine and lysine, more preferably arginine, ornithine and lysine, still more preferably ornithine and lysine, and still more preferably. Includes lysine.
  • a polymer portion having a non-natural amino acid as a monomer unit is, for example, a polymer containing aspartic acid or glutamic acid as a monomer unit,-(NH- (CH 2 ) 2 ) p -NH It can be obtained by introducing a group represented by 2 (where p is 2, 3 or 4).
  • a person skilled in the art can obtain a polymer portion having this unnatural amino acid as a monomer unit by reacting a polymer containing aspartic acid or glutamic acid as a monomer unit with diethyltriamine, triethyltetraamine or tetraethylpentamine. it can.
  • the cationic polymer has the following general formula (I): ⁇ Where, R 1 is polyethylene glycol, and the amino acid adjacent to polyethylene glycol may be bonded via a linker; R 2 is methylene or ethylene; R 3 is a group represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 , p is 2, 3 or 4; R 4 is hydrogen, a protecting group, a hydrophobic group, or a polymerizable group, X is a cationic amino acid, n is an integer of 2 to 5000, n 1 is an integer from 0 to 5000, n 3 is an integer from 0 to 5000, nn 1 -n 3 is an integer of 0 or more, and each repeating unit in the formula is shown in a specific order for convenience of description, but each repeating unit can exist in any order, The repeating unit may be present randomly, and each repeating unit may be the same or different ⁇ .
  • R 1 is polyethylene glycol, and the amino acid adjacent to
  • p is preferably 3 or 4, and most preferably 3.
  • examples of the protecting group include a C 1-6 alkylcarbonyl group, preferably an acetyl group
  • examples of the hydrophobic group include benzene, naphthalene, anthracene, pyrene and derivatives thereof, or C 1 A -6 alkyl group can be mentioned
  • examples of the polymerizable group include a methacryloyl group and an acryloyl group.
  • polyethylene glycol has an average degree of polymerization of 5 to 20000, preferably 10 to 5000, more preferably 40 to 500, as long as the formation of a polyion complex between the block copolymer and mRNA is not inhibited.
  • the PEG terminal of the cationic polymer may be protected with a hydroxyl group, a methoxy group or a protecting group.
  • the linker is, for example, — (CH 2 ) r—NH— ⁇ where r is an integer of 1 to 5. ⁇ Or — (CH 2 ) s—CO— ⁇ where s is an integer of 1 to 5. ⁇ , And preferably can be linked to adjacent amino acids of formula (I) by peptide bonds.
  • the linker may preferably be bonded to the methylene side of PEG via the O atom of PEG and PEG.
  • n is any integer from 0 to 5000, for example, any integer from 0 to 500
  • m is any integer from 0 to 5000, for example, Any integer from 0 to 500
  • m + n is any integer from 2 to 5000, for example, any integer from 2 to 500.
  • the cationic polymer is a block copolymer of PEG-linker-polycation block, and the cationic polymer (wherein PEG, linker and polycation block are as defined above). ⁇ .
  • the cationic polymer used for forming the polyion complex is a group represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 as a side chain ⁇ where p is 2, 3 or 4), the mRNA can be present in the body for a long period of time, particularly when p is 3 or 4, the mRNA is significantly sustained in the body for a long period of time. Found high expression.
  • the cationic polymer is a monomer having a group represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 (where p is 2, 3 or 4) in the side chain. It can be a cationic polymer that contains units, and p is more preferably 3 or 4, and even more preferably 3.
  • the present inventors have found that, in the polyion complex of the present invention, when mRNA is runx1 mRNA as an mRNA for an arthritis model animal, the progress of arthropathy symptoms is slowed or improved by Runx1. .
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for treating arthropathy comprising the polyion complex of the present invention.
  • the mRNA is a factor mRNA that promotes joint formation.
  • factors that promote joint formation include joint formation such as Runt-related transcription factor 1 (Runx1), core binding factor beta (Cbfbeta), sex determination box 9 (Sox9), and proteoglycan 4 Examples include transcription factors.
  • the arthropathy is osteoarthritis or rheumatoid arthritis.
  • R1 is a protected polyethylene glycol
  • p is 3 or 4
  • R4 is hydrogen or a cationic polymer which is a protecting group
  • a polyion complex of Runx1 mRNA A pharmaceutical composition for the treatment of arthropathy (e.g. osteoarthritis or rheumatoid arthritis) comprising type micelles.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may further contain an excipient.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be formulated for joint administration.
  • a method of treating arthropathy in a subject in need thereof comprising administering to the subject an effective amount of a pharmaceutical composition of the invention. .
  • the pharmaceutical composition of the present invention when the pharmaceutical composition of the present invention is administered to a subject, protein expression from mRNA can be maintained in the subject for at least 2 days, preferably 3 days. Therefore, the pharmaceutical composition of the present invention can be administered every 2 days or every 3 days.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be used in the group represented by — (NH— (CH 2 ) 2 ) p —NH 2 when p is 3 or 4, for example, once every 3 days, Preferably, it can be administered once every 4 days, more preferably once every 5 days, even more preferably once every 6 days, even more preferably once a week. Thereby, the frequency
  • Example 1 Production of Polyion Complex First, a polyion complex containing mRNA was produced.
  • BLA-NCA ⁇ -Benzyl-L-aspartate-N-carboxylic acid anhydride
  • DMF N, N-dimethylformamide
  • MeO-PEG-PBLA polyethylene glycol-poly ( ⁇ -benzyl-L-aspartate) block copolymer
  • MeO-PEG-PBLA was dissolved in benzene and lyophilized. Lyophilized MeO-PEG-PBLA was dissolved in N, N-dimethylformamide (DMF).
  • DMF N, N-dimethylformamide
  • MeO-PEG-pAsp (DET)
  • TET MeO-PEG-pAsp
  • TEP MeO-PEG-pAsp
  • RUNX1-FL An open reading frame (hereinafter referred to as RUNX1-FL) of 3 ⁇ FLAG-tagged human RUNX1 (GenBank accession number: NM — 001754.4; SEQ ID NO: 1) sandwiched between XhoI and BalI / SmaI restriction enzyme cleavage sites in the pUC57 vector. Cloned. The obtained RUNX1-FL was introduced into the pSP17 vector.
  • a lipoplex of mRNA was prepared according to the manufacturer's manual using Lipofectamine (trademark) 2000 (Life Technologies, Carlsbad, CA).
  • Example 2 Intra-articular administration test of polyion complex micelles containing mRNA 20 ⁇ L of polyion complex micelles prepared to contain 3 ⁇ g of Luc2 under anesthesia in normal knee joints of ICR mice (8 weeks old) did. 100 ⁇ L of a solution containing 1.5 mg of D-luciferin was administered intravenously to the mice and using the IVIS TM Imaging System (Xenogen, Alameda, CA, US) at various time points (24 hours after micelle administration, 48 hours or 96 hours), the expression of luciferase in the joint was confirmed.
  • IVIS TM Imaging System Xenogen, Alameda, CA, US
  • FIGS. 2A and B PEG-PAsp (DET) sustained mRNA expression for at least 2 days.
  • PEG-PAsp (TET) was highly expressed by luciferase from the first day after administration. Surprisingly, the expression level was increased on the second and fourth days, and the expression was continued until at least the eighth day. Sustained (FIGS. 2A and B).
  • PEG-PAsp (TEP) highly expressed luciferase 1 to 2 days after administration, and thereafter, although the expression level was decreased, expression was sustained until 8 days after administration (FIG. 2A).
  • PEG-PAsp DET
  • PEG-PAsp TET
  • PEG-PAsp TET
  • PEG-PAsp TCP
  • EGFP mRNA in the knee joint was confirmed by immunohistology using an anti-GFP antibody. Then, EGFP protein was expressed in the surface layer and central part of articular cartilage. Moreover, when the degree of cell death in articular cartilage was observed by a conventional method using the TUNEL method, no difference was found between the group administered with the polyion complex micelle and the group administered with PBS. Thus, the polyion complex micelle used in this example can express mRNA in vivo (for example, in the knee joint) and shows toxicity even when administered at a dose that expresses mRNA. It became clear that there was no. Although mRNA is known to have high immunogenicity, no problems caused by the antigenicity of mRNA were observed.
  • Example 3 Treatment of Osteoarthritis in Osteoarthritis Model Animal
  • it is difficult to deliver mRNA in vivo and its sustained expression so there is a high barrier to treatment of diseases in the living body.
  • mRNA could be highly expressed for a long period of time in vivo.
  • osteoarthritis model mouse As an osteoarthritis model animal, an osteoarthritis model mouse was used. This model mouse was prepared by surgically removing the medial collateral ligament and medial meniscus of the knee (see S. Kamekura et al., Osteoarthritis Cartilage 13, 632-641 (2005)). Osteoarthritis was induced 1 month after surgery. The severity of osteoarthritis was assessed by histological OARSI scoring system (S.SS. Glasson et al., 2010 Osteoarthritis Research Society International. Published by Elsevier Ltd, England, vol. 18 Suppl 3, pp. (See S17-23 (2010)).
  • Runx1 was selected as a factor for promoting joint formation, and as described in Example 1, the mRNA and PEG-PAsp (DET) were mixed to form polyion complex micelles.
  • the obtained micelle solution 20 ⁇ L (that is, 3 ⁇ g as Runx1 mRNA) was administered to the knees of osteoarthritis mice one month after the surgery at a frequency of once every three days for one month.
  • polyion complex micelles using EGFP as mRNA were administered to the knees of osteoarthritis mice one month after surgery at a frequency of once every three days for one month.
  • Sections were treated with anti-Flag antibody (1: 100; F1804, M2, -Sigma-Aldrich), anti-GFP antibody (1: 500; ab290, Abcam, Cambridge, MA), anti-Runx1 antibody (1: 100; ab23980, Abcam), anti Stained in combination with Sox9 antibody (1: 200; sc20095, Santa Cruz Biotechnology), anti-PCNA antibody (1: 1000; 2586s, Cell Signaling Technology) and CSAII Biotin-free Tyramide Signal Amplication System (Dako, Glostrup, Denmark) did.
  • sections were prepared with anti-type X collagen antibody (1: 500; LB-0092, LSL-Cosmo Bio co., Ltd., Tokyo, Japan), anti-type II collagen antibody (1: 500; LB-1297, LSL- Cosmo Bio Bio, Co., Ltd.), anti-IL-1 ⁇ antibody (1: 100; sc7884, Santa Santa Cruz Biotechnology), and anti-MMP-13 antibody (1: 500; mab 13426, Millipore). All sections were counterstained with methyl green.
  • Runx1 protein was strongly expressed in articular cartilage, and the expression was particularly remarkable in osteophyte-like regions (FIG. 3B).
  • the severity of arthropathy was evaluated, the severity was reduced in the Runx1 mRNA administration group compared to the negative control group (FIG. 3C).
  • Sox9 is a master transcription factor for cartilage differentiation and maintenance in embryos and adults, but was more strongly expressed in articular chondrocytes in the Runx1 mRNA administration group than in the negative control group (FIG. 5A upper left panel).
  • Type II collagen is a major cartilage tissue matrix protein, but was expressed more strongly in the Runx1 mRNA administration group than in the negative control group (FIG. 5A upper middle panel).
  • proliferating cell nuclear antigen (PCNA) was also expressed more strongly in the Runx1 mRNA administration group than in the negative control group (upper right panel in FIG. 5). This suggests that Runx1 has a function of promoting early differentiation of chondrocytes.
  • type X collagen and MMP13 showed no significant difference between the Runx1 mRNA administration group and the negative control group (lower left panel and lower middle panel in FIG. 5).
  • the expression level of IL-1 ⁇ was lower in the Runx1 mRNA-administered group than in the negative control group (the lower right panel in FIG. 5).
  • rheumatoid arthritis The relationship between rheumatoid arthritis and Runx1 is known, and in rheumatoid arthritis, the pathological condition is also known to be mediated by IL-1 ⁇ .
  • Runx1 since Runx1 was able to greatly suppress IL-1 ⁇ expression in the joint, it is clear that rheumatoid arthritis can also be treated by the technique of this example.

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Abstract

本発明は、ｍＲＮＡを効率よく生体内に送達できるポリイオンコンプレックス並びにこれを用いた関節症の治療薬および治療法を提供する。例えば、カチオン性ポリマーとｍＲＮＡとを含んでなる、ポリイオンコンプレックスであって、カチオン性ポリマーが、カチオン性非天然アミノ酸をモノマー単位として含む重合体であり、カチオン性非天然アミノ酸が、側鎖として、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を有するアミノ酸である、ポリイオンコンプレックスが提供される。

Description

ｍＲＮＡを効率よく生体内に送達できるポリイオンコンプレックス並びにこれを用いた関節症の治療薬および治療法 関連出願の参照
　本願は、特願２０１５－１５１５６４号（出願日：２０１５年７月３１日）の優先権の利益を享受する出願であり、その内容の全体が引用されることにより本願に組込まれる。
　本発明は、ｍＲＮＡを効率よく生体内に送達できるポリイオンコンプレックス並びにこれを用いた関節症の治療薬および治療法に関する。
　体内の好適な箇所に薬剤を送り届けるドラッグデリバリーシステムは、副作用の少ない新しい医薬を提供するものとして研究開発が行われている。その中で、ポリイオンコンプレックス（以下、「ＰＩＣ」ともいう）を用いたドラックデリバリーシステムは、ナノミセルに薬物を包接させて疾患部位特異的に薬物を送達することが可能な技術として注目を集めている。
　ＰＩＣを応用した技術として、特に核酸を副作用少なく体内に送達できるシステムが開発されてきた（特許文献１および２）。特許文献１および２では、ＤＮＡと新しいカチオン性ポリマーとのポリイオンコンプレックスが発明者らにより開発されている。また、ＲＮＡとカチオン性ポリマーとのポリイオンコンプレックスも発明者らにより発表されている（非特許文献１）。
　変形性関節症（ＯＡ）は、慢性の分解性関節疾患であり、軟骨組織の合成と分解のバランスが崩れることによって引き起こされる（非特許文献２）。変形性関節症は、高齢者における主要な健康問題である（非特許文献３）。しかしながら、変形性関節症の病態修正薬（ＤＭＯＡＤ）は未だ臨床用途では開発されていない（非特許文献４および５）。
　Ｒｕｎｘ１は、胚および成体において軟骨形成を制御することで知られている（非特許文献６および７）。２つの異なるＤＭＯＡＤ候補化合物が、Ｒｕｎｘ１を介した治療効果を有することが明らかとなってきている（非特許文献８および９）。
特許第４５３５２２９号公報 特許第５０６１３４９号公報
H. Uchida et al., Journal of the American Chemical Society 136, 12396-12405 (2014) G. Nuki, Z Rheumatol, 58, 142-147 (1999) D. T. Felson et al., Annals of Internal Medicine 133, 635-646 (2000) Z. Jotanovic et al., Current drug targets 15, 635-661 (2014) D. J. Hunter, Nat Rev Rheumatol 7, 13-22 (2011) A. Kimura et al., Development. (England, 2010), vol. 137, pp. 1159-1167 K. T. LeBlanc et al., J. Cell. Physiol., 230 (2), pp. 440-448 (2015) F. Yano et al., Ann Rheum Dis 72, 748-753 (2013) K. Johnson et al., Science 336, 717-721 (2012)
　本発明は、ｍＲＮＡを効率よく生体内に送達できるポリイオンコンプレックス並びにこれを用いた関節症の治療薬および治療法を提供する。
　本発明者らは、カチオン性ポリマーとして、非天然アミノ酸をモノマー単位として含む重合体であり、非天然アミノ酸は、側鎖として、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を有するカチオン性ポリマーと、ｍＲＮＡとを含むポリイオンコンプレックスが、ｍＲＮＡを長時間持続的に高発現させることを明らかにした。本発明者らは、変形性関節症を、上記カチオン性ポリマーとＲｕｎｘ１のｍＲＮＡとを含むポリイオンコンプレックスを投与することにより処置できることを明らかにした。本発明は、これらの知見に基づくものである。
　本発明によれば、以下の発明が提供される。
（１）カチオン性ポリマーとｍＲＮＡとを含んでなる、ポリイオンコンプレックスであって、
　カチオン性ポリマーが、カチオン性非天然アミノ酸をモノマー単位として含む重合体であり、カチオン性非天然アミノ酸が、側鎖として、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を有するアミノ酸である、ポリイオンコンプレックス。
（２）カチオン性ポリマーが、ポリエチレングリコールとのブロック共重合体である、上記（１）に記載のポリイオンコンプレックス。
（３）カチオン性ポリマーが、下記一般式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
 ｛式中、
　Ｒ１は、ポリエチレングリコールであり、ポリエチレングリコールと隣り合うアミノ酸とはリンカーを介して結合してもよく、
　Ｒ２は、メチレンまたはエチレンであり、
　Ｒ３は、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基であり、ｐは、２、３または４であり、
　Ｒ４は、水素、保護基、疎水基、または重合性基であり、
　Ｘは、カチオン性天然アミノ酸であり、
　ｎは、２～５０００のいずれかの整数であり、
　ｎ１は、０～５０００のいずれかの整数であり、
　ｎ３は、０～５０００のいずれかの整数であり、
　ｎ－ｎ１－ｎ３は、０以上の整数であり、式中の各繰り返し単位は記載の都合上特定の順で示されているが、各繰り返し単位は順不同に存在することができ、各繰り返し単位はランダムに存在してもよく、また、各繰り返し単位は同一であっても異なっていてもよい｝で表される、上記（１）または（２）に記載のポリイオンコンプレックス。
（４）上記（１）～（３）のいずれかに記載のポリイオンコンプレックスを含んでなる、関節症を処置するための医薬組成物であって、
　ｍＲＮＡが、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡである、医薬組成物。
（５）ｐが、３または４である、上記（４）に記載の医薬組成物。
（６）ｐが、４である、上記（５）に記載の医薬組成物。
（７）２日に１回または３日に１回投与することを特徴とする、上記（４）～（６）のいずれかに記載の医薬組成物。
（８）７日に１回投与することを特徴とする、上記（５）または（６）に記載の医薬組成物。
（９）関節症が、変形性関節症またはリウマチ性関節炎である、上記（４）～（８）のいずれかに記載の医薬組成物。
（１０）上記（３）に記載のポリイオンコンプレックスであって、ｐが３または４であるポリイオンコンプレックスを含む、ｍＲＮＡの細胞内への送達剤。
（１１）ｐが４である、上記（１０）に記載の送達剤。
図１は、関節内投与したルシフェラーゼｍＲＮＡの発現を示す。
図２は、関節内投与したルシフェラーゼｍＲＮＡの発現量の経時的推移を示す。
図３は、変形性関節症に対するＲｕｎｘ１のｍＲＮＡの投与の影響を示す。図３では、カチオン性ポリマーとしてｐが２であるポリマーを用いている。
図４は、変形性関節症に対するＲｕｎｘ１のｍＲＮＡの投与の影響を示す。図４では、カチオン性ポリマーとしてｐが３であるポリマーを用いている。
図５は、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群における様々なマーカー遺伝子の発現とＴＵＮＥＬ法による細胞死への影響を示す。
発明の具体的な説明
　本発明のポリイオンコンプレックスは、（ｉ）カチオン性ポリマーを含んでなるブロック共重合体と、（ｉｉ）ｍＲＮＡとがポリイオンコンプレックスとを少なくとも含んでなるものである。本発明のポリイオンコンプレックスにおいて、カチオン性ポリマーは、非天然アミノ酸をモノマー単位として含む重合体であり、非天然アミノ酸は、側鎖として、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を有する点に特徴がある。ｐは、好ましくは３または４であり、最も好ましくは３である。カチオン性ポリマーは、ポリエチレングリコールブロックとブロック共重合体を形成したものであってもよい。（ｉ）の共重合体と（ｉｉ）のｍＲＮＡは溶液中でポリイオンコンプレックスを形成している。本発明のポリイオンコンプレックスは、溶液中、好ましくは水溶液中に提供され得る。
　本発明のポリイオンコンプレックスは、カチオン性ポリマーとｍＲＮＡとを含み、ナノミセル形態を取ると考えられる。従って、本発明のポリイオンコンプレックスは、本明細書では、ポリイオンコンプレックス型ミセルと言うことがある。
　本明細書では、ｍＲＮＡとは、メッセンジャーＲＮＡを意味する。
　本発明のポリイオンコンプレックスでは、ｍＲＮＡ中のシチジンおよびウリジンは修飾されていてもよい。修飾されたシチジンとしては、例えば、５－メチル－シチジンが挙げられ、修飾したウリジンとしては、シュードウリジンおよび２－チオ－シチジンが挙げられる。修飾シチジンおよびウリジンは、全シチジンおよびウリジンの１０モル％以上、２０モル％以上、または３０モル％以上含まれていればよい。
　本明細書では、「対象」とは、ヒトを含む哺乳動物である。対象は、健常の対象であってもよいし、何らかの疾患に罹患した対象であってもよい。
　本発明では、カチオン性ポリマーは、例えば、カチオン性天然アミノ酸および／またはカチオン性非天然アミノ酸をモノマー単位として含んでいてもよい。ここで、カチオン性天然アミノ酸としては、好ましくはヒスチジン、トリプトファン、オルニチン、アルギニンおよびリジンが挙げられ、より好ましくはアルギニン、オルニチンおよびリジンが挙げられ、さらに好ましくはオルニチンおよびリジンが挙げられ、さらにより好ましくはリジンが挙げられる。
　本発明では、カチオン性ポリマーにおいて、非天然アミノ酸をモノマー単位とする重合体部分は、例えば、アスパラギン酸またはグルタミン酸をモノマー単位として含む重合体に、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を導入することにより得ることができる。当業者であれば、アスパラギン酸またはグルタミン酸をモノマー単位として含む重合体とジエチルトリアミン、トリエチルテトラアミンまたはテトラエチルペンタアミンを反応させることにより、この非天然アミノ酸をモノマー単位とする重合体部分を得ることができる。
　本発明の好ましい態様では、カチオン性ポリマーは、下記一般式（Ｉ）：
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 ｛式中、
　Ｒ１は、ポリエチレングリコールであり、ポリエチレングリコールと隣り合うアミノ酸とはリンカーを介して結合してもよく、
　Ｒ２は、メチレンまたはエチレンであり、
　Ｒ３は、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基であり、ｐは、２、３または４であり、
　Ｒ４は、水素、保護基、疎水基、または重合性基であり、
　Ｘは、カチオン性アミノ酸であり、
　ｎは、２～５０００のいずれかの整数であり、
　ｎ１は、０～５０００のいずれかの整数であり、
　ｎ３は、０～５０００のいずれかの整数であり、
　ｎ－ｎ１－ｎ３は、０以上の整数であり、式中の各繰り返し単位は記載の都合上特定の順で示されているが、各繰り返し単位は順不同に存在することができ、各繰り返し単位はランダムに存在してもよく、また、各繰り返し単位は同一であっても異なっていてもよい｝で表されるものとすることができる。
　上記式（Ｉ）において、ｐは、好ましくは３または４であり、最も好ましくは３である。
　上記式（Ｉ）において、保護基としては、Ｃ１－６アルキルカルボニル基が挙げられ、好ましくはアセチル基であり、疎水性基としては、ベンゼン、ナフタレン、アントラセン、ピレンおよびこれらの誘導体またはＣ１－６アルキル基が挙げられ、重合性基としては、メタクリロイル基およびアクリロイル基が挙げられる。これらの保護基、疎水性基および重合性基をブロックコポリマーに導入する方法は当業者に周知である。
　上記式（Ｉ）において、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）は、平均重合度５～２００００、好ましくは１０～５０００、より好ましくは４０～５００であるが、ブロックコポリマーとｍＲＮＡとのポリイオンコンプレックス形成が阻害されない限り特に限定されない。カチオン性ポリマーのＰＥＧの末端は、水酸基、メトキシ基または保護基で保護されていてもよい。
　上記式（Ｉ）において、リンカーは、例えば、－（ＣＨ２）ｒ－ＮＨ－｛ここでｒは、１～５のいずれかの整数である。｝または－（ＣＨ２）ｓ－ＣＯ－｛ここでｓは、１～５のいずれかの整数である。｝とすることができ、好ましくはペプチド結合により式（Ｉ）の隣り合うアミノ酸と結合することができる。また、リンカーは、好ましくは、ＰＥＧのメチレン側でＰＥＧとＰＥＧのＯ原子を介して結合していてもよい。
　上記式（Ｉ）において、ｎは、０～５０００のいずれかの整数であり、例えば、０～５００のいずれかの整数であり、ｍは、０～５０００のいずれかの整数であり、例えば、０～５００のいずれかの整数であり、ｍ＋ｎは、２～５０００のいずれかの整数であり、例えば、２～５００のいずれかの整数である。
　本発明のある態様では、カチオン性ポリマーは、ＰＥＧ－リンカー－ポリカチオンブロックのブロック共重合体をカチオン性ポリマー｛ここで、ＰＥＧ、リンカーおよびポリカチオンブロックは、上記で定義される通りである。｝とすることができる。
　本発明者らは、ポリイオンコンプレックスの形成に用いるカチオン性ポリマーが、側鎖として、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を有するモノマー単位を含む重合体である場合に、ｍＲＮＡが長期に体内で存在しうること、特にｐが３または４である場合に、体内でｍＲＮＡが顕著に長期間持続的に高発現することを見いだした。従って、本発明において、カチオン性ポリマーは、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を側鎖に有するモノマー単位を含むものであり、ｐは、より好ましくは３または４であり、さらに好ましくは３である、カチオン性ポリマーとすることができる。
　本発明者らは、本発明のポリイオンコンプレックスにおいて、ｍＲＮＡをＲｕｎｘ１のｍＲＮＡとしてこれを関節症モデル動物に投与したところ、Ｒｕｎｘ１により関節症の症状の進展が遅くなること、または改善することを見いだした。
　従って、本発明では、本発明のポリイオンコンプレックスを含む、関節症を治療するための医薬組成物が提供される。本発明のある態様では、ｍＲＮＡが、関節形成を促進する因子のｍＲＮＡである。関節形成を促進する因子の非限定的な例としては、Ｒｕｎｔ関連転写因子１（Ｒｕｎｘ１）、コア結合因子ベータ（Ｃｂｆｂｅｔａ）、性決定ボックス９（Ｓｏｘ９）、およびプロテオグリカン４などの関節形成を促進する転写因子が挙げられる。
　本発明のある態様では、関節症は、変形性関節炎またはリウマチ性関節炎である。
　本発明のある態様では、式（Ｉ）において、Ｒ１が保護されたポリエチレングリコールであり、ｐが３または４であり、Ｒ４は水素または保護基であるカチオン性ポリマーとＲｕｎｘ１のｍＲＮＡとのポリイオンコンプレックス型ミセルを含む、関節症（例えば、変形性関節炎またはリウマチ性関節炎）の処置のための医薬組成物である。
　ある態様では、本発明の医薬組成物は、賦形剤をさらに含んでいてもよい。
　ある態様では、本発明の医薬組成物は、関節投与用に製剤化されたものとしてもよい。
　本発明の別の側面では、関節症を、その必要のある対象において処置する方法であって、本発明の医薬組成物の有効量を対象に投与することを含んでなる、方法が提供される。
　本発明では、本発明の医薬組成物を対象に投与すると、ｍＲＮＡからのタンパク質の発現が対象内で少なくとも２日間、好ましくは３日間持続させることができる。従って、本発明の医薬組成物は、２日おき、または３日おきに投与することができる。
　また、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基において、ｐが３または４である場合には、対象内で少なくとも４日間、好ましくは８日間ｍＲＮＡを発現させることができる。従って、本発明の医薬組成物は、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基において、ｐが３または４である場合には、例えば、３日に１回、好ましくは４日に１回、より好ましくは５日に１回、さらに好ましくは６日に１回、さらにより好ましくは１週間に１回投与することができる。これにより、投与回数が削減され、患者における治療負担が大幅に軽減される。
実施例１：ポリイオンコンプレックスの作製
　まず、ｍＲＮＡを含有するポリイオンコンプレックスを作製した。
１－１．ｐＡｓｐ（ＤＥＴ）、ｐＡｓｐ（ＴＥＴ）またはｐＡｓｐ（ＴＥＰ）をモノマー単位として含む重合体の合成
　本実施例では、ポリアスパラギン酸の側鎖に－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を導入することにより、表題の重合体を得た。具体的には、一方の末端がメトキシ基であり、他方の末端がアミノプロピル基である、数平均分子量２３，０００のポリエチレングリコール（ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＮＨ2）（日本油脂から購入した）を塩化メチレンに溶解した。β－ベンジル－Ｌ－アスパルテート－Ｎ－カルボン酸無水物（ＢＬＡ－ＮＣＡ）（中央化製品社から購入した）をＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）と上記塩化メチレン溶液の混合液に添加して溶解させ、反応溶液を得た。次いで、反応溶液を４０℃で２日間反応させて、ポリエチレングリコール－ポリ（β－ベンジル－Ｌ－アスパルテート）ブロック共重合体（ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡ）を得た。１Ｈ－ＮＭＲによる解析から、ＰＢＬＡ部分の数平均分子量は約１４，０００であり、重合度は約６６であった。
　次に、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡにジエチレントリアミン、トリエチルテトラアミンおよびテトラエチルペンタアミンをそれぞれ反応させて、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐＡｓｐ（ＤＥＴ）ブロック共重合体、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐＡｓｐ（ＴＥＴ）ブロック共重合体、およびＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐＡｓｐ（ＴＥＰ）ブロック共重合体を得た。具体的には、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡをベンゼンに溶解し凍結乾燥させた。凍結乾燥したＭｅＯ－ＰＥＧ－ＰＢＬＡをＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）に溶解させた。その後、得られた溶液にジエチレントリアミン、トリエチルテトラアミンおよびテトラエチルペンタアミン（それぞれ和光純薬から購入した）をそれぞれ滴下し、４０℃のマイルドな無水条件で反応させて、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐＡｓｐ（ＤＥＴ）ブロック共重合体、ＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐＡｓｐ（ＴＥＴ）ブロック共重合体、およびＭｅＯ－ＰＥＧ－ｐＡｓｐ（ＴＥＰ）ブロック共重合体を得た。得られたブロック共重合体は、ゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）により、鋭い単一の分子量分布（Ｍｗ／Ｍｎ＝１．０４）を示した。
１－２．ｍＲＮＡの調製
　まず、ヒトＲＵＮＸ１発現ベクターを調製した。ｐＵＣ５７ベクター内に、ＸｈｏＩおよびＢａｌＩ／ＳｍａＩ制限酵素切断部位で挟んだ３×ＦＬＡＧタグ付きヒトＲＵＮＸ１（GenBank登録番号：NM_001754.4；配列番号１）のオープンリーディングフレーム（以下、ＲＵＮＸ１－ＦＬという）をクローン化した。得られたＲＵＮＸ１－ＦＬをｐＳＰ１７ベクターに導入した。mMESSAGE mMACHINE T7 Ultra Kit (Ambion, Carlsbad, CA, USA)を用いて直鎖状化したｐＳＰ１７ベクターからＴ７プロモーター駆動性にヒトＲＵＮＸ１－ＦＬの転写を行い、その後、poly(A) tail kit (Ambion)を用いて転写物にポリＡを付加した。転写されたｍＲＮＡをRNeasy Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany)を用いて精製した。同様の方法で、ＥＧＦＰのｍＲＮＡを調製した。Ｌｕｃ２は、pGL4.13 (Promega, Madison, WI, USA)のタンパク質転写領域を用い、同様の方法でｍＲＮＡを調製した。
１－３．ポリイオンコンプレックス型ミセルの調製
　１－１で得られたそれぞれの共重合体溶液と各種ｍＲＮＡ溶液とを別々に１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．３）中で混合して、ポリイオンコンプレックスを得た。ｍＲＮＡの濃度は、２２５μｇ／ｍＬとし、共重合体中のアミノ酸残基のアミノ基（Ｎ）と核酸中のリン酸基（Ｐ）との混合比（Ｎ／Ｐ）は、８となるようにした。共重合体溶液とｍＲＮＡ溶液とは１：２の量比で混合されたので、ｍＲＮＡの濃度は１５０μｇ／ｍＬとなった。
　対照として、ｍＲＮＡのリポプレックスをLipofectamine（商標）2000 (Life technologies, Carlsbad, CA)を用い、製造者マニュアルに従って調製した。
実施例２：ｍＲＮＡを含むポリイオンコンプレックス型ミセルの関節内投与試験
　ＩＣＲマウス（８週齢）の正常なひざ関節に麻酔下で３μｇのＬｕｃ２を含むように調製された２０μＬのポリイオンコンプレックス型ミセルを投与した。１．５ｍｇのＤ－ルシフェリンを含む１００μＬの溶液を前記マウスに静脈内投与し、IVIS（商標）Imaging System (Xenogen, Alameda, CA, US)を用いて、様々な時点（ミセル投与後２４時間、４８時間、または９６時間）でルシフェラーゼの関節内での発現を確認した。
　関節におけるルシフェラーゼの発現は、関節投与から１日後には観察できた（図１および２）。
　ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）をカチオン性ポリマーとして用いた場合には、発現量は低下したものの、２日後にもルシフェラーゼの発現が確認できた（図１Ａ）。
　ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＴ）をカチオン性ポリマーとして用いた場合には、発現が少なくとも４日間持続し、発現量も維持された（図１Ｂ）。発現量は低下したものの、投与から８日後にもルシフェラーゼの発現が確認できた（図１Ｂ）。ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＰ）については写真は掲載しないが、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＴ）と同様に少なくとも４日間は発現が持続し、投与から８日後でもルシフェラーゼの発現が確認できた（データ非掲載）。
　得られた結果から、ルシフェラーゼの発現量を定量するために、一秒あたりのフォトンカウントを算出した（図２）。図２ＡおよびＢによれば、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）は、少なくとも２日間はｍＲＮＡの発現を持続させた。また、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＴ）は、投与後１日目からルシフェラーゼが高発現させたが、驚くべきことに、２日目、４日目で発現量を増加させ、少なくとも８日目まで発現が持続させた（図２ＡおよびＢ）。さらに、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＰ）は、投与から１～２日後にルシフェラーゼを高発現させ、その後は、発現量は低下させたものの、発現を投与から８日後まで持続させた（図２Ａ）。
　このように、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＴ）およびＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＰ）はいずれも、生体内でｍＲＮＡを少なくとも２日間は高発現させることができた。また、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＴ）およびＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＰ）は、生体内でｍＲＮＡを少なくとも８日間は高発現させることができた。
　次に、本実施例で用いたカチオン性ポリマーによるｍＲＮＡの軟骨への送達と、それによる毒性の有無を確認した。
　ＥＧＦＰのｍＲＮＡ（３μｇ）とＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）を含む２０μＬのポリイオンコンプレックス型ミセルをマウスの正常なひざに関節内投与した。対照として、２０μＬのリン酸緩衝液（ＰＢＳ）を同様にマウスの正常なひざに関節内投与した。投与から２４時間後、ひざを組織学的解析に供した。
　ひざの組織学的切片を作製し、抗ＧＦＰ抗体を用いた免疫組織学によりＥＧＦＰ　ｍＲＮＡのひざ関節内での発現を確認した。すると、ＥＧＦＰタンパク質は、関節軟骨の表層と中央部で発現した。また、ＴＵＮＥＬ法を用いて常法により、関節軟骨での細胞死の程度を観察したところ、ポリイオンコンプレックス型ミセルを投与した群と、ＰＢＳを投与した群とで差は見られなかった。このことから、本実施例で用いたポリイオンコンプレックス型ミセルは、生体内（例えば、ひざ関節内）でｍＲＮＡを発現させることが可能であること、ｍＲＮＡを発現させる用量で投与しても毒性を示さないことが明らかとなった。ｍＲＮＡは、高い免疫原性を有することで知られているが、ｍＲＮＡが有する抗原性に起因する問題は観察した限り見られなかった。
実施例３：変形性関節症モデル動物における変形性関節症の治療
　現在までのところ、ｍＲＮＡの生体内への送達とその持続的発現が困難であることから、生体における疾患の治療には高い障壁が存在した。実施例２により、本発明のポリイオンコンプレックスを用いると、生体内でｍＲＮＡを長期間持続的に高発現させることができた。そこで、本実施例では、本発明のポリイオンコンプレックスを用いて疾患の治療を試みた。
　変形性関節症モデル動物としては、変形性関節症モデルマウスを用いた。このモデルマウスは、ひざの内側側副靭帯と内側半月を手術で除去することにより作製した（S. Kamekura et al., Osteoarthritis Cartilage 13, 632-641 (2005)を参照）。変形性関節症は、術後１ヶ月で誘導された。組織学的ＯＡＲＳＩスコアリングシステムにより変形性関節症の重篤度を評価した（S. S. Glasson et al., 2010 Osteoarthritis Research Society International. Published by Elsevier Ltd, England, vol. 18 Suppl 3, pp. S17-23 (2010)を参照）。
　関節形成を促進する因子として、Ｒｕｎｘ１を選択し、実施例１に記載された通りに、そのｍＲＮＡとＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）と混合してポリイオンコンプレックス型ミセルを形成させた。得られたミセル溶液２０μＬ（すなわち、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡとして３μｇ）を術後１ヶ月の変形性関節症マウスのひざに３日に１回の頻度で１ヶ月間投与した。陰性対照としては、ｍＲＮＡとしてＥＧＦＰを用いたポリイオンコンプレックス型ミセルを術後１ヶ月の変形性関節症マウスのひざに３日に１回の頻度で１ヶ月間投与した。
　投与１ヶ月後で、陰性対照では、サフラニン－Ｏを用いて染色した組織切片において典型的な変形性関節症の症状が見られた。観察された症状としては、骨棘（こつきょく）および軟骨分解が挙げられ、これらは関節軟骨の厚みの減少および染色強度とその構造の破壊により証明された（図３Ａ）。これに対して、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡを導入した群では、変形性関節症の表現型が抑制される傾向を示し、特に骨棘形成において顕著であった（図３Ａ）。
　免疫組織学により、手術から２ヶ月後（すなわち投与完了から１ヶ月後）のひざにおけるＲｕｎｘ１タンパク質の発現を確認した。マウスを安楽死させ、４％パラホルムアルデヒドを含むＰＢＳで環流して固定した。ひざ関節を回収し、４％パラホルムアルデヒドを含むＰＢＳでさらに一晩固定し、０．５Ｍエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を含むＰＢＳを用いて脱カルシウム処理した。次いでひざ関節をパラフィン包埋し、７μｍ厚の正面切片を作製した。
　切片を抗Flag抗体 (1:100; F1804, M2, Sigma-Aldrich), 抗GFP抗体 (1:500; ab290, Abcam, Cambridge, MA), 抗Runx1抗体 (1:100; ab23980, Abcam), 抗Sox9抗体 (1:200; sc20095, Santa Cruz Biotechnology), 抗PCNA抗体 (1:1000; 2586s, Cell Signaling Technology)と、CSAII Biotin-free Tyramide Signal Amplication System (Dako, Glostrup, Denmark)とを組み合わせて染色した。また、切片は、抗タイプＸコラーゲン抗体(1:500; LB-0092, LSL-Cosmo Bio co., ltd., Tokyo, Japan)、抗タイプＩＩコラーゲン抗体(1:500; LB-1297, LSL-Cosmo Bio co., ltd.)、抗ＩＬ－１β抗体(1:100; sc7884, Santa Cruz Biotechnology)、および抗ＭＭＰ－１３抗体(1:500; mab13426, Millipore)でも染色した。いずれの切片もメチルグリーンで対比染色した。
　その結果、Ｒｕｎｘ１タンパク質は関節軟骨において強く発現し、骨棘様領域において発現は特に顕著であった（図３Ｂ）。関節症の重篤度を評価したところ、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群では、陰性対照群と比較して重篤度が低下した（図３Ｃ）。
　次に、カチオン性ポリマーとして、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）の代わりに、ＰＥＧ－ＰＡｓｐ（ＴＥＴ）を用いる以外は上記と同様に変形性関節症の治療を試みた。
　サフラニン－Ｏを用いて染色した切片から、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群では、ＥＧＦＰ投与対照群と比較して、変形性関節症が抑制された（図４Ａ）。また、Ｒｕｎｘ１タンパク質の発現は、関節軟骨において強く観察された（データ非掲載）。さらに、免疫組織学的観察結果から、ＥＧＦＰおよびＲｕｎｘ１タンパク質が、関節軟骨で強く発現した（図４Ｂ）。そして、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群では、変形性関節症と骨棘の形成とが、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群において、陰性対照群と対比して統計学的に有意（ｐ＜０．０５）に抑制できた（図４Ｃ）。
　さらに、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群と陰性対照群とで各種因子の発現量を確認した。
　Ｓｏｘ９は、胚および成体において軟骨への分化と維持のマスター転写因子であるが、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群では陰性対照群よりも関節軟骨細胞において強く発現した（図５Ａ上段左パネル）。タイプＩＩコラーゲンは、主要な軟骨組織マトリックスタンパク質であるが、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群では陰性対照群よりも強く発現した（図５Ａ上段中央パネル）。さらに、増殖細胞核抗原（ＰＣＮＡ）も、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群において陰性対照群よりも強く発現した（図５上段右パネル）。このことは、Ｒｕｎｘ１が軟骨細胞の初期分化を促進する働きを有していることを示唆する。
　これに対して、タイプＸコラーゲンやＭＭＰ１３は、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群と陰性対照群とで大きな違いは認められなかった（図５下段左パネルおよび下段中央パネル）。ＩＬ－１βは、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群において陰性対照群よりも発現量が低かった（図５下段右パネル）。
　Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与のアポトーシスへの影響をＴＵＮＥＬ法により分析した。しかしながら、Ｒｕｎｘ１のｍＲＮＡ投与群と陰性対照群とで変形性関節症の関節における細胞死において大きな差は認められなかった（図５ＣおよびＤ）。
　リウマチ性関節炎とＲｕｎｘ１との関係が知られ、リウマチ性関節炎においては病態がＩＬ－１βを介することも知られている。本実施例で、Ｒｕｎｘ１が関節においてＩＬ－１βの発現を大きく抑制できたことから、リウマチ性関節炎も本実施例の手法により処置ができることが明らかである。

Claims (11)

  1. 　カチオン性ポリマーとｍＲＮＡとを含んでなる、ポリイオンコンプレックスであって、
    　カチオン性ポリマーが、カチオン性非天然アミノ酸をモノマー単位として含む重合体であり、カチオン性非天然アミノ酸が、側鎖として、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基｛ここで、ｐは２、３または４である｝を有するアミノ酸である、ポリイオンコンプレックス。
  2. 　カチオン性ポリマーが、ポリエチレングリコールとのブロック共重合体である、請求項１に記載のポリイオンコンプレックス。
  3. 　カチオン性ポリマーが、下記一般式（Ｉ）：
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     ｛式中、
    　Ｒ１は、ポリエチレングリコールであり、ポリエチレングリコールと隣り合うアミノ酸とはリンカーを介して結合してもよく、
    　Ｒ２は、メチレンまたはエチレンであり、
    　Ｒ３は、－（ＮＨ－（ＣＨ２）２）ｐ－ＮＨ２で表される基であり、ｐは、２、３または４であり、
    　Ｒ４は、水素、保護基、疎水基、または重合性基であり、
    　Ｘは、カチオン性天然アミノ酸であり、
    　ｎは、２～５０００のいずれかの整数であり、
    　ｎ１は、０～５０００のいずれかの整数であり、
    　ｎ３は、０～５０００のいずれかの整数であり、
    　ｎ－ｎ１－ｎ３は、０以上の整数であり、式中の各繰り返し単位は記載の都合上特定の順で示されているが、各繰り返し単位は順不同に存在することができ、各繰り返し単位はランダムに存在してもよく、また、各繰り返し単位は同一であっても異なっていてもよい｝で表される、請求項１または２に記載のポリイオンコンプレックス。
  4. 　請求項１～３のいずれか一項に記載のポリイオンコンプレックスを含んでなる、関節症を処置するための医薬組成物であって、
    　ｍＲＮＡが、関節形成を促進する因子のｍＲＮＡである、医薬組成物。
  5. 　ｐが、３または４である、請求項４に記載の医薬組成物。
  6. 　ｐが、４である、請求項５に記載の医薬組成物。
  7. 　２日に１回または３日に１回投与することを特徴とする、請求項４～６のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  8. 　７日に１回投与することを特徴とする、請求項５または６に記載の医薬組成物。
  9. 　関節症が、変形性関節症またはリウマチ性関節炎である、請求項４～８のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  10. 　請求項３に記載のポリイオンコンプレックスであって、ｐが３または４であるポリイオンコンプレックスを含む、ｍＲＮＡの細胞内への送達剤。
  11. 　ｐが４である、請求項１０に記載の送達剤。
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