WO2016200220A1 - 분리된 비멘틴 유래 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편 - Google Patents

분리된 비멘틴 유래 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편 Download PDF

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light chain
hzvsf
antibody
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PCT/KR2016/006215
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김윤원
김영진
홍효정
박상진
김민우
박성만
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주식회사 이뮨메드
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    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
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    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • A61K39/395Antibodies; Immunoglobulins; Immune serum, e.g. antilymphocytic serum
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans

Definitions

  • the present invention relates to an antibody that specifically binds to the peptide of SEQ ID NO: 1, specifically, to an antibody or a binding fragment of the peptide, the antibody or the peptide to specifically bind to the isolated peptide of SEQ ID NO:
  • a composition for antiviral comprising a binding fragment of said antibody or said peptide
  • a composition for preventing or treating an inflammatory disease comprising a binding fragment of said antibody or said peptide, and a viral infectious disease using said composition
  • Method of treatment, or method of treatment of inflammatory diseases One will.
  • Viral diseases unlike bacterial diseases, are difficult to treat due to poor listening to antibiotics, and viral diseases have always emerged as one of the main causes of disease and death in humans.
  • Viral infectious diseases also cause inflammation, leading to various inflammatory diseases.
  • Formulations developed for the treatment of such viral infectious diseases can be divided into chemicals and biologically-derived materials. Most chemicals have been developed to work only on specific viral diseases. There are many shortcomings such as the appearance.
  • cytokines such as interferon (IFN) are well known as biologically-derived materials.
  • interferon was first discovered among cytokines produced in virus-infected cells, and is known to have the best antiviral cytokines. It has been reported that interferon can be used to treat various diseases such as chronic hepatitis B, hepatitis C or hematologic cancer, and multiple sclerosis. Recently, the efficacy of HIV (Human immunodeficiency virus) patients have been demonstrated. In order to develop antiviral agents and immunostimulants for many years, genetic engineering or biotechnological studies have been conducted to mass-produce interferons, and recently, compounds that induce interferon activity from natural or synthetic compounds have been searched.
  • HIV Human immunodeficiency virus
  • interferon Although interferon is known as a powerful antiviral agent, it induces an inflammatory response such as invasion of immune cells, and almost all cells express receptors for interferon at all times and show various side effects such as anti-cell action, and require large amounts in clinical use. There is a disadvantage that can not be used for more than six months.
  • the inventors of the present invention sought to develop a therapeutic agent having antiviral activity and anti-inflammatory action that specifically acts only on virus-infected cells and can inhibit inflammation by inhibiting infiltration of immune cells, resulting in a novel humanized antibody, hzVSF.
  • the present invention was completed by confirming that it is a safe preparation that acts specifically on various viruses, suppresses immune cell infiltration and inhibits viruses, and has no side effects when administered to humans with a humanized antibody having low immunogenicity.
  • One object of the present invention is to provide a novel antibody or binding fragment of the peptide that specifically binds to the peptide of SEQ ID NO: 1.
  • Another object of the present invention is to produce a polynucleotide encoding the binding fragment of the antibody or the peptide, a vector comprising the polynucleotide, a cell into which the vector is introduced, an antibody or a binding fragment of the peptide using the cell. It is to provide a binding fragment of the method, the antibody produced by the production method or the peptide.
  • Still another object of the present invention is to provide an antiviral composition comprising a binding fragment of the antibody or peptide.
  • Still another object of the present invention is to provide a method for preventing or treating a viral infection disease using the antiviral composition.
  • Still another object of the present invention is to provide a composition for preventing or treating an inflammatory disease including the binding fragment of the antibody or the peptide.
  • Antibodies or binding fragments of the peptides that specifically bind to the peptide of SEQ ID NO: 1 of the present invention selectively act on virus-infected cells and require a small amount for treatment, have no side effects, and inhibit infiltration of immune cells. It can be provided as a humanized antibody new drug exhibiting excellent antiviral and anti-inflammatory action, which inhibits inflammation.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of a vector for the preparation of chimeric VSF.
  • FIG. 2 is a schematic diagram of chimeric VSF.
  • 3 is a diagram confirming the expression of chimeric VSF.
  • Figure 4 shows the DNA sequence of the scFv of VSF.
  • FIG. 5 is a schematic diagram of cloning a scFv of VSF into a vector.
  • FIG. 6 is a diagram confirming the purification of the scFV of VSF.
  • FIG. 7 is a diagram confirming the antiviral efficacy of VSF, scFv and anti-EMCD virus antibodies as the viability of cells in viral infection.
  • FIG. 9 is a schematic diagram of a vector for the preparation of hzVSF, a humanized antibody.
  • FIG. 10 is a schematic diagram of hzVSF, a humanized antibody of the present invention.
  • FIG. 11 is a diagram confirming the expression of hzVSF, a humanized antibody.
  • FIG. 12 is a diagram confirming the antiviral efficacy of the humanized antibody hzVSF.
  • Figure 13 is a view showing the reduced and non-reduced SDS-PAGE results confirming the physical properties of the humanized antibody hzVSF_var13.
  • FIG. 14 shows LC / MS results confirming the physical properties of hzVSF_var13, a humanized antibody.
  • 15 is a diagram showing the results of SEC-HPLC confirming the physical properties of the humanized antibody hzVSF_var13.
  • FIG. 16 is a diagram showing IF (Isoelectric focusing) confirming physical properties of hzVSF_var13, a humanized antibody.
  • FIG. 16 is a diagram showing IF (Isoelectric focusing) confirming physical properties of hzVSF_var13, a humanized antibody.
  • FIG. 17 shows the number of donors in which T cells proliferated in response to KLH, hzVSF_var12, and hzVSF_var13 among 51 blood donors.
  • FIG. 18 is a diagram showing the extent of 51 T cell proliferative responses to hzVSF_var12 and hzVSF_var13, which are representative variants of the humanized antibody hzVSF.
  • FIG. 21 is a diagram showing HPLC results confirming physical properties of hzVSF_var12 and hzVSF_var13, which are variants of hzVSF, which are representative humanized antibodies.
  • hzVSF_var13 shows the pharmacokinetics of hzVSF_var13, a variant of hzVSF, a representative humanized antibody.
  • Figure 23 is a diagram confirming the virus inhibitory ability of hzVSF_var12 and hzVSF_var13 representative variants of humanized antibody hzVSF and humanized antibody hzVSF.
  • 24 is a diagram confirming the anti-cellular action of humanized antibodies hzVSF_var13 and hIFN- ⁇ in human cells.
  • 25 is a diagram confirming the inhibition of inflammatory cell infiltration of the humanized antibody hzVSF in viral diabetes.
  • 26 is a diagram confirming the anti-HBV effect of mVSF.
  • Figure 27 is a diagram confirming the expression pattern of VSF receptor in HBV-infected liver tissue.
  • FIG 30 shows the expression of VSF receptors in EMC-D virus infected cells.
  • Fig. 31 shows the antiviral effect of hzVSF_var13 on the hepatitis B virus in cccDNA by real-time quantitative PCR.
  • FIG. 32 shows the antiviral effect of hzVSF_var13 on hepatitis B virus in the amount of extracellular HBV DNA by real-time quantitative PCR.
  • Figure 34 is a diagram confirming the antiviral effect of hzVSF against hepatitis C virus by FACS.
  • 35 shows the antiviral effect of hzVSF against hepatitis C virus by real-time quantitative PCR.
  • Figure 37 is a diagram confirming the long-term antiviral effect on hepatitis C virus gene type 1a of hzVSF_v13 by real-time quantitative PCR.
  • Figure 40 is a diagram confirming the long-term antiviral effect on hepatitis C virus gene type 2a of hzVSF_v13 by real-time quantitative PCR.
  • Fig. 41 shows the virus growth inhibitory effect against influenza virus (H1N1) of the humanized antibody hzVSF_v13.
  • hzVSF_var13 a representative variant of hzVSF
  • FIG. 43 is a diagram showing the protective effect of mouse mucosal epithelial cells and cilia by hzVSF_var13, a representative variant of hzVSF, in mice infected with influenza virus.
  • 44 is a diagram showing the effect of inhibiting pneumonia by time and concentration of hzVSF_var13, a representative variant of hzVSF, in mice infected with influenza virus.
  • hzVSF_var13 a representative variant of hzVSF
  • 46 is a diagram showing the effect of inhibiting CD4 immune cell infiltration after administration of hzVSF_var13, a representative variant of hzVSF, to mice infected with influenza virus (10,000,000 pfu).
  • 47 is a diagram showing the effect of inhibiting macrophage invasion after administration of hzVSF_var13, a representative variant of hzVSF, to mice infected with influenza virus (100,000 pfu).
  • hzVSF_var13 a representative variant of hzVSF, to mice infected with influenza virus (10,000,000 pfu).
  • 49 shows the inhibitory effect of hzVSF on inflammatory cytokine secretion after virus infection in mice.
  • 50 is a diagram confirming the antiviral activity of hzVSF_v13 by MVIT assay after overexpressing wild-type VR and mutant-type VR in MCF-7 cells not expressing VSF receptor.
  • 51 is a diagram confirming the antiviral activity of hzVSF_v13 by WST assay after overexpressing wild-type VR and mutant-type VR in MCF-7 cells not expressing VSF receptor.
  • FIG. 52 shows the antiviral activity of hzVSF_v13 by MVIT assay after overexpressing wild-type VR and mutant-type VR in MCF-7 cells not expressing VSF receptor.
  • FIG. 53 is a diagram showing the overexpression of wild-type VR and mutant-type VR in MCF-7 cells not expressing VSF receptor, followed by virus infection to confirm the association of VSF receptor and hzVSF_v13 by immunofluorescence staining.
  • Figure 54 is a diagram confirming the binding of wild-type and mutant type VSF receptor (non-mentin) and hzVSF_v13 overexpressed in E. coli by a pull-down assay.
  • FIG. 55 shows immunoprecipitation of the binding of VSF receptors (non-mentin) and hzVSF_v13 of wild-type and mutant typre overexpressed in HEK293T cells.
  • 56 is a diagram simulating the binding site of vimentin and VSF.
  • 57 is a diagram simulating the coupling of vimentin and VSF.
  • 58 is a diagram simulating the binding site of vimentin and hzVSF_v13.
  • the present invention provides an antibody or a binding fragment of the peptide, which specifically binds to the isolated peptide of SEQ ID NO: 1 as one embodiment.
  • the antibody is not limited thereto, and may be, for example, a mouse antibody, chimeric antibody or humanized antibody.
  • the humanized antibody or binding fragment of the peptide of the present invention implants the complementarity determining site of the variable region of a monoclonal or monoclonal antibody of a mouse that directly binds the antigen to the human antibody backbone, thereby providing the affinity and specificity of the original mouse antibody. It has superiority in inhibiting HAMA (human anti-mouse antibody) reaction in human body. Moreover, as a humanized antibody which lowered immunogenicity by using the de-immunization method, it can be used as a safe preparation by significantly lowering immunogenicity when administered to humans.
  • mouse antibody that specifically binds to the isolated peptide of SEQ ID NO: 1 may be referred to as "mVSF (mouse Virus Suppressing Factor)", and the chimeric antibody may be referred to as “chVSF (chimeric Vrus Suppressing Factor)”.
  • Humanized antibodies may be referred to collectively as "runningzed Virus Suppressing Factor”.
  • humanized antibody hzVSF or a variant thereof may be mixed with each other, and hzVSF may be mixed with a hzVSF wild type (hzVSF_wt) and a variant of hzVSF (for example, hzVSF_var1, hzVSF_v1 or hzVSF_1, etc.).
  • the isolated peptide of SEQ ID NO: 1 corresponds to the position of amino acids 142 to 294 of the vimentin, as long as the antibody or fragment thereof of the present invention can bind, the sequence as well as the sequence And at least 80%, preferably at least 90%, more preferably at least 95%, particularly preferably at least 97% homology.
  • the isolated peptide of SEQ ID NO: 1 is an antigenic region comprising an epitope, 142 to 211 or 211 to 294 days of the non-mentin amino acid as long as it can be combined with an antibody or fragment thereof to exhibit a similar function as the present invention. Can be.
  • Bimentin is a protein encoded by the VIM gene, which functions to support and fix organelles in cells, and is known to be mainly involved in the cellular skeleton, protein transport, and cell signaling. Although it is known to be used as a marker, it is not known that an antibody capable of binding to it may have an antiviral action.
  • the antibody or binding fragment of the peptide which specifically binds to the isolated peptide of SEQ ID NO: 1 of the present invention, specifically reacts with a cell infected with a virus, and a receptor of a virus suppressing factor (VSF) in a virus-infected cell. Appear externally, to bind to it
  • VSF virus suppressing factor
  • Such a binding fragment of the antibody or the peptide of the present invention exhibits antiviral activity and anti-inflammatory activity by specific viral infection cell-specific binding as described above, preventing or treating antiviral compositions, viral infectious diseases, inflammatory diseases It can also be usefully used in the field.
  • the binding fragment of the antibody or the peptide may specifically bind to the 9th, 45th, 54th, 76th, 94th or 129th amino acid residue of the peptide of SEQ ID NO: 1, more specifically although it may specifically bind to the 9th, 45th, 54th, 76th, 94th and 129th amino acid residues of the peptide of SEQ ID NO: 1, as long as it specifically binds to the isolated peptide of SEQ ID NO: This is not restrictive.
  • antibody refers to a protein molecule that acts as a ligand that specifically recognizes an antigen, including an immunoglobulin molecule that is immunologically reactive with a specific antigen.
  • Polyclonal antibodies monoclonal antibodies, It includes both whole antibodies and antibody fragments.
  • the term also includes chimeric antibodies (eg, humanized murine antibodies) and bivalent or bispecific molecules (eg, bispecific antibodies), diabodies, triabodies, and tetrabodies.
  • the term further encompasses single chain antibodies, caps, derivatives of antibody constant regions and artificial antibodies based on protein scaffolds that have a binding function to FcRn.
  • the total antibody is a structure having two full length light chains and two full length heavy chains, each of which is linked by heavy and disulfide bonds.
  • the total antibody includes IgA, IgD, IgE, IgM and IgG, and IgG is a subtype, including IgG1, IgG2, IgG3 and IgG4.
  • fragment binding fragment of a peptide
  • antibody fragment are used interchangeably to refer to any fragment of an antibody of the invention that retains the antigen-binding activity of the antibody.
  • Exemplary antibody fragments include, but are not limited to, single chain antibodies, Fd, Fab, Fab ', F (ab') 2 , dsFv or scFv.
  • Fd means the heavy chain portion included in the Fab fragment.
  • the Fab has one antigen binding site in a structure having a variable region of the light and heavy chains, a constant region of the light chain and a first constant region of the heavy chain (CH1 domain).
  • Fab 'd iffers from Fab in that it has a hinge region comprising at least one cysteine residue at the C terminus of the heavy chain CH1 domain.
  • F (ab ') 2 antibodies are produced when the cysteine residues of the hinge region of Fab' form disulfide bonds.
  • Fv (variable fragment) means a minimum antibody fragment having only the heavy chain variable region and light chain variable region.
  • Double disulfide Fv is a heavy chain variable region and a light chain variable region are linked by disulfide bond
  • single chain Fv (scFv) is generally covalently linked to the variable region of the heavy chain and the light chain through a peptide linker.
  • Such antibody fragments can be obtained using proteolytic enzymes (e.g., the entire antibody can be restricted to papain and Fab can be obtained and pepsin can be used to obtain F (ab ') 2 fragment). Can be produced through genetic recombination techniques.
  • the term “monoclonal antibody” refers to an antibody molecule of a single molecular composition obtained from substantially the same antibody population, which monoclonal antibody exhibits single binding specificity and affinity for a particular epitope.
  • immunoglobulins have heavy and light chains and each heavy and light chain comprises a constant region and a variable region (the site is also known as a domain).
  • the variable regions of the light and heavy chains comprise three variable regions and four structural regions (hereinafter referred to as "FR") called complementarity-determining regions ("CDRs").
  • FR structural regions
  • CDRs complementarity-determining regions
  • the CDRs mainly serve to bind epitopes of antigens.
  • the CDRs of each chain are typically called CDR1, CDR2, CDR3, starting sequentially from the N-terminus and also identified by the chain in which the particular CDR is located.
  • the antibody of the present invention as described above comprises a constant region
  • it may include a constant region derived from IgG, IgA, IgD, IgE, IgM, or a combination thereof or a hybrid thereof.
  • dimers or multimers can be formed from two or more constant regions selected from the group consisting of constant regions of IgG, IgA, IgD, IgE and IgM.
  • hybrid means that there is a sequence corresponding to two or more immunoglobulin heavy chain constant regions of different origin within a single chain immunoglobulin heavy chain constant region, for example IgG, IgA, IgD, IgE. And one to four domains selected from the group consisting of CH1, CH2, CH3 and CH4 of IgM.
  • the humanized antibody of the present invention is not limited thereto, but may be humanized based on human immunoglobulin ⁇ 4, and may have an advantage of not causing CDC due to lack of complement binding.
  • the binding fragment of the humanized antibody or peptide is a heavy chain CDR1 as set forth in SEQ ID NO: 2; A heavy chain CDR2 set forth in SEQ ID NO: 3 or SEQ ID NO: 14 (threonine, the ninth amino acid of SEQ ID NO: 3, replaced with aspartic acid); And a heavy chain variable region comprising a heavy chain CDR3 as set out in SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 15 (threonine as the fourth amino acid of SEQ ID NO: 4 replaced with arparagine), and a light chain CDR1 as set forth in SEQ ID NO: 5; SEQ ID NO: 6, SEQ ID NO: 16 (Threonine, the third amino acid of SEQ ID NO: 6, is replaced with aspartic acid); SEQ ID NO: 17 (Threonine, the third amino acid of SEQ ID NO: 6, is the aspartic acid; Alanine substituted with glycine or a light chain as set forth in SEQ ID NO: 18 (Threonine, the third amino acid
  • the binding fragment of the humanized antibody or the peptide includes a human FR (framework region), but is not limited thereto, and may be human immunoglobulin gamma described by SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO: 30, SEQ ID NO: 31, Or heavy chain FR1 (Framework region 1) set forth in SEQ ID NO: 20; Heavy chain FR2 set forth in SEQ ID NO: 21; A heavy chain FR3 as set forth in SEQ ID NO: 22 or SEQ ID NO: 28 (lysine, the eighth amino acid of SEQ ID NO: 22, is substituted for threonine, and isoleucine, the tenth amino acid, for alanine); And a heavy chain variable region comprising the heavy chain FR4 set forth in SEQ ID NO: 23, and a light chain FR1 set forth in SEQ ID NO: 24; Light chain FR2 set forth in SEQ ID NO: 25; Light chain FR3 as set forth in SEQ ID NO: 26; And a light chain variable region comprising
  • the binding fragment of the humanized antibody or peptide is specifically (a) heavy chain CDR1, heavy chain CDR2, and heavy chain CDR3, and SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 6, as set forth in SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, and SEQ ID NO: 4, respectively; And light chain CDR1, light chain CDR2, light chain CDR3, each set forth in SEQ ID NO: 7; (b) heavy chain CDR1, heavy chain CDR2, and heavy chain CDR3, and the light chain CDR1, light chain CDR2, respectively set forth in SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, and SEQ ID NO: 4, and SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 16, and SEQ ID NO: 7, Light chain CDR3; (c) the heavy chain CDR1, heavy chain CDR2, and heavy chain CDR3, and the light chain CDR1, light chain CDR2, respectively set forth in SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3, and SEQ ID NO: 4, respectively; Light chain CDR3; (d) heavy chain CDR1, heavy chain CDR2,
  • the antibody may include hzVSF_var10, (l) The antibody hzVSF_var11, (m) The antibody hzVSF_var12, (n) The antibody may include hzVSF_var13.
  • the binding fragment of the humanized antibody and the peptide is not limited thereto, and SEQ ID NO: 10 and SEQ ID NO: 12, respectively; SEQ ID NO: 32 and SEQ ID NO: 34; SEQ ID NO: 36 and SEQ ID NO: 38; SEQ ID NO: 40 and SEQ ID NO: 42; SEQ ID NO: 44 and SEQ ID NO: 46; SEQ ID NO: 48 and SEQ ID NO: 50; SEQ ID NO: 52 and SEQ ID NO: 54; SEQ ID NO: 56 and SEQ ID NO: 58; SEQ ID NO: 60 and SEQ ID NO: 62; SEQ ID NO: 64 and SEQ ID NO: 66; SEQ ID NO: 68 and SEQ ID NO: 70; SEQ ID NO: 72 and SEQ ID NO: 74; SEQ ID NO: 76 and SEQ ID NO: 78; Or a binding fragment of the antibody or peptide comprising the heavy and light chain variable regions set forth in SEQ ID NO: 80 and SEQ ID NO: 82.
  • the mouse antibody specifically, heavy chain CDR1 as set forth in SEQ ID NO: 137; A heavy chain CDR2 set forth in SEQ ID NO: 138; And a heavy chain variable region comprising the heavy chain CDR3 set forth in SEQ ID NO: 139, and a light chain CDR1 set forth in SEQ ID NO: 134;
  • the chimeric antibody may specifically include a heavy chain variable region as set out in SEQ ID NO: 141 or SEQ ID NO: 142 and a light chain variable region as set out in SEQ ID NO: 140, and more specifically, the heavy chain and sequence as set forth in SEQ ID NO: 146 or SEQ ID NO: 148. It may include, but is not limited to, the light chain described in number 144.
  • the scFv is not limited thereto, but scFv prepared for safety of mVSF may also be included.
  • it may be an scFv prepared by the sequence described in FIG. 4.
  • the heavy chain variable region set forth in SEQ ID NO: 131 and the light chain variable region set forth in SEQ ID NO: 133 may be linked to each other by a linker.
  • the heavy chain variable region encoded by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 130 and the light chain variable region encoded by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 132 may be in the form of linkage.
  • Such scFv can be cloned into the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 150 in an E. coli expression vector.
  • the inventors confirmed the antiviral efficacy after preparing hzVSF_wt, three alternatives and 13 variants thereof, humanized antibodies (Example 6).
  • the immunogenicity similar to that of Humira which is the lowest immunogenic human antibody (Table 7) was caused when used as an antiviral or anti-inflammatory agent. It has been confirmed that it can be used as a safe antiviral or drug without any possible side effects.
  • hzVSF_wt variant did not significantly affect the proliferation of T cells through T cell analysis (Table 8), and it was confirmed that it is unlikely to cause side effects by acting as an immunogen when used in clinical practice.
  • the pharmacokinetic analysis confirmed that the half-life in vivo was high enough for clinical use (Example 8).
  • the hzVSF (wild type and variant) of the present invention significantly inhibits the antiviral efficacy of EMC-D virus infection and the inhibition of immune cell invasion and thereby the destruction of Langerhans island in mice, and is excellent for treating diabetes due to viral infection. It was confirmed that it can (Example 12). Hepatitis virus was also confirmed that it can significantly inhibit (Examples 13 to 16). Influenza virus infection was also confirmed without the immune cell infiltration, antiviral effect and anti-inflammatory effect (Example 17), and confirmed that the antiviral effect against various viruses (Table 15), can be used as a general antiviral agent It was confirmed that there is. In addition, it was confirmed that the mouse model inhibits the secretion of inflammatory cytokines during virus infection (Example 19), and it can be used as a therapeutic agent for various inflammatory diseases.
  • the present invention provides a polynucleotide encoding a binding fragment of the antibody or the peptide, a vector comprising the polynucleotide, a cell into which the vector is introduced, an antibody using the cell or a binding fragment of the peptide. It provides a production method and a binding fragment of the antibody or the peptide produced by the production method.
  • Binding fragments of the antibody and the peptide are as described above.
  • the vector comprising the polynucleotide encoding the antibody provided in the present invention is not particularly limited thereto, but may include mammalian cells (eg, human, monkey, rabbit, rat, hamster, mouse cells, etc.), plant cells, yeast cells. May be a vector capable of replicating and / or expressing the polynucleotide in eukaryotic or prokaryotic cells, including insect cells or bacterial cells (eg, E. coli, etc.), and preferably the nucleotide is expressed in a host cell. It may be a vector operably linked to an appropriate promoter, and comprising at least one selection marker.
  • the polynucleotide may be introduced into a phage, plasmid, cosmid, mini-chromosome, virus or retroviral vector.
  • the vector including the polynucleotide encoding the antibody may be an expression vector including polynucleotides encoding the heavy or light chains of the antibody, or an expression vector including both the polynucleotides encoding the heavy or light chains.
  • Cells (transformers) into which the expression vector provided in the present invention is introduced are not particularly limited, but include bacterial cells such as E. coli, Streptomyces, Salmonella typhimurium, into which the expression vector is introduced and transformed; Yeast cells; Fungal cells such as Pchia pastoris; Insect cells such as Drozophila and Spodoptera Sf9 cells; Chinese hamster ovary cells (CHO), SP2 / 0 (mouse myeloma), human lymphoblastoid, COS, NSO (mouse myeloma), 293T, Bow melanoma cells, HT-1080, BHK ( Animal cells such as baby hamster kidney cells, baby hamster kidney cells, HEK (human embryonic kidney cells), and PERC.6 (human retinal cells); Or plant cells.
  • bacterial cells such as E. coli, Streptomyces, Salmonella typhimurium, into which the expression vector is introduced and transformed
  • Yeast cells Fun
  • introduction refers to a method of delivering a vector comprising a polynucleotide encoding the antibody to a host cell.
  • introductions include calcium phosphate-DNA coprecipitation, DEAE-dextran-mediated transfection, polybrene-mediated transfection, electroshock, microinjection, liposome fusion, lipofectamine and protoplast fusion. It can be carried out by various methods known in the art.
  • transduction refers to the delivery of a target product into cells using viral particles by means of infection.
  • the vector can be introduced into the host cell by gene bombardment or the like. Introduction in the present invention can be used interchangeably with transformation.
  • the present invention provides a composition for antiviral, comprising a binding fragment of the antibody or the peptide.
  • Binding fragments of the antibody and the peptide are as described above.
  • antiviral means an effect of reducing, inhibiting or preventing a viral infection by inhibiting the proliferation or replication of a pathogenic virus.
  • the "pathogenic virus” in which the proliferation or replication of the virus is inhibited by the antiviral activity is not limited thereto, but a part of the non-mentin of the host cell is exposed to the outside of the host cell membrane by the viral infection. Examples are viruses that cause disease in animals or humans.
  • pathogenic viruses examples include Orthomyxoviridae virus, Picorna viridae virus, Retroviridae virus, and herpes (Herpes) Virus, Filoviridae Virus, Coronaviridae Virus, Hepadnaviridae Virus, Flaviviridae Virus, Bunyaviridae Genus viruses and the like.
  • Pathogenic viruses include, for example, influenza viruses, hepatitis B and C viruses, brain myocarditis virus, mengovirus, Ebolavirus, Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus (SARS), Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus (Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus (MERS), Leo virus (Reovirus), human immunodeficiency virus (HIV), human cytomegalovirus (HCMV), or hantan virus and the like, but is not limited thereto.
  • the hzVSF according to the present invention is not only Mengo virus belonging to Picoraviridae, but also to Orthomyxoviridae, whose genome structure and lifespan are completely different from the EMC virus belonging to Picoraviridae. Influenza virus belonged to the antiviral effect, and also effectively inhibits the proliferation of HIV belonging to retroviridae (Retroviridae), such as the effect on the universal virus (Table 15).
  • the composition may be in the form of a pharmaceutical composition, quasi-drug composition, a composition for health food.
  • the pharmaceutical composition may further comprise a pharmaceutically acceptable carrier.
  • the term "pharmaceutically acceptable carrier” refers to a carrier or diluent that does not irritate an organism and does not inhibit the biological activity and properties of the administered compound.
  • Acceptable pharmaceutical carriers in compositions formulated as liquid solutions are sterile and physiologically compatible, including saline, sterile water, Ringer's solution, buffered saline, albumin injectable solutions, dextrose solution, maltodextrin solution, glycerol, ethanol and One or more of these components may be mixed and used, and other conventional additives such as antioxidants, buffers and bacteriostatic agents may be added as necessary.
  • diluents may be additionally added to formulate injectable formulations, pills, capsules, granules or tablets such as aqueous solutions, suspensions, emulsions and the like.
  • the pharmaceutical composition may be in various oral or parenteral formulations.
  • diluents or excipients such as fillers, extenders, binders, wetting agents, disintegrating agents, and surfactants are usually used.
  • Solid form preparations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules, and the like, which form at least one excipient such as starch, calcium carbonate, sucrose or lactose (at least one compound). lactose) and gelatin.
  • lubricants such as magnesium stearate, talc and the like are also used.
  • Liquid preparations for oral administration include suspensions, liquid solutions, emulsions, and syrups, and various excipients such as wetting agents, sweeteners, fragrances, and preservatives, in addition to commonly used simple diluents such as water and liquid paraffin, may be included.
  • Formulations for parenteral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous solvents, suspensions, emulsions, lyophilized preparations, suppositories.
  • non-aqueous solvent and the suspension solvent propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate, and the like can be used.
  • As the base of the suppository witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin butter, glycerogelatin and the like can be used.
  • the pharmaceutical composition is any one selected from the group consisting of tablets, pills, powders, granules, capsules, suspensions, liquid solutions, emulsions, syrups, sterile aqueous solutions, non-aqueous solutions, suspensions, emulsions, lyophilized preparations and suppositories. It can have one formulation.
  • composition of the present invention is administered in a pharmaceutically effective amount.
  • the term “pharmaceutically effective amount” means an amount sufficient to treat a disease at a reasonable benefit / risk ratio applicable to medical treatment, and an effective dose level is determined by the type and severity, age, sex, disease of the individual. It may be determined according to the type, activity of the drug, sensitivity to the drug, time of administration, route of administration and rate of release, duration of treatment, factors including concurrently used drugs, and other factors well known in the medical field.
  • the compositions of the present invention may be administered as individual therapeutic agents or in combination with other therapeutic agents and may be administered sequentially or simultaneously with conventional therapeutic agents. And single or multiple administrations. Taking all of the above factors into consideration, it is important to administer an amount that can obtain the maximum effect in a minimum amount without side effects, and can be easily determined by those skilled in the art.
  • the other therapeutic agent may be interferon, but is not limited thereto.
  • the composition may be a composition for performing the prevention or treatment of viral infectious diseases by antiviral action.
  • the viral infectious disease is not limited thereto, and may include a disease in which a part of the non-mentin of the host cell is exposed to the outside of the host cell membrane by the viral infection, for example, hepatitis, AIDS, pneumonia, diabetes, , Orthomyxoviridae genus virus, Picorna viridae genus virus, Retroviridae genus virus, Filoviridae genus virus, Coronaviridae genus virus, Hepadnaviridae virus, Flaviviridae virus, Bunyaviridae virus Herpes (Herpes) can include all diseases that can be caused by infection.
  • hepatitis AIDS, pneumonia, diabetes, , Orthomyxoviridae genus virus, Picorna viridae genus virus, Retroviridae genus virus, Filoviridae genus virus, Coronaviridae genus virus, Hepadnaviridae virus, Flaviviridae virus, Bunyaviridae
  • prevention may refer to any action that inhibits or delays the onset of a disease by administration of the composition, and the “treatment” is improved or advantageously changed by the administration of the composition. It can mean any action that takes place.
  • the composition may be a composition that functions specifically for virus infected cells.
  • the composition may be to suppress immune cell infiltration, and may be to inhibit an inflammatory response (FIGS. 45 to 48).
  • the composition of the present invention was confirmed to significantly inhibit the inflammation-induced cytokines IL-6, TNF- ⁇ , IFN- ⁇ , CCL2 (MCP-1) (Fig. 49).
  • the present invention may be a method for treating a viral infection disease, comprising administering the antiviral composition to a subject in need thereof.
  • the antiviral composition and viral infection disease are as described above.
  • the method of treating a viral infection disease comprises administering a pharmaceutical composition comprising an antibody and a pharmaceutically acceptable carrier to a subject having or suspected of having a viral infection disease.
  • the method for treating a viral infection disease may preferably be a method for treating a viral infection disease comprising administering a composition comprising an antibody to a subject having a viral infection disease.
  • the subject includes mammals, birds, and the like, including cattle, pigs, sheep, chickens, dogs, humans, and the like, and includes, without limitation, individuals whose viral infection diseases are treated by administration of the composition of the present invention.
  • the composition may be administered in a single or multiple doses in a pharmaceutically effective amount.
  • the composition may be administered in the form of a liquid, powder, aerosol, capsule, enteric skin tablets or capsules or suppositories.
  • Routes of administration include, but are not limited to, intraperitoneal, intravenous, intramuscular, subcutaneous, endothelial, oral, topical, nasal, pulmonary, rectal, and the like.
  • the oral composition upon oral administration, since the peptide is digested, the oral composition must be formulated to coat the active agent or to protect it from degradation in the stomach.
  • the pharmaceutical composition may be administered by any device in which the active agent may migrate to the target cell.
  • the present invention provides a composition for preventing or treating an inflammatory disease comprising the binding fragment of the antibody or the peptide.
  • composition for preventing or treating the inflammatory disease may be in the form of a pharmaceutical composition, quasi-drug composition, health functional food composition.
  • the inflammatory disease may be due to viral infection.
  • the present invention provides a method for treating an inflammatory disease, comprising administering the composition for preventing or treating the inflammatory disease to a subject in need thereof.
  • the present invention provides an antiviral use of the binding fragment of the antibody or the peptide.
  • Example 1-1 chVSF (chimeric VSF Manufacturing
  • mouse VSF mouse VSF
  • human immunoglobulins and chimerized human immunoglobulins were made to generate mouse / human hybridization antibodies (chAbs).
  • chVSF produced an expression vector using the pCAGGS vector as a template (FIG. 1).
  • the variable heavy chain (mVH) of mVSF (SEQ ID NO: 9) was amplified by PCR including the SacI and KpnI restriction enzyme sites.
  • the variable light chain (mVL) (SEQ ID NO: 8) was amplified by PCR including the ClaI and XhoI restriction enzyme sites. Primers used in PCR were used in the primers described in Table 1, PCR conditions were performed for 35 cycles of 45 seconds at 94 °C, 45 seconds at 60 °C, 45 seconds at 72 °C, and proceeded for 10 minutes at 72 °C.
  • the human heavy chain (SEQ ID NO: 11) used Kpn I and Sph I restriction enzyme sites, and the light chain (SEQ ID NO: 13) was cloned using Xho I and Bgl I restriction enzymes.
  • an internal ribosome entry site (IRES) was cloned between the light and heavy chains using Sph I and Cla I restriction enzyme sites. Screening markers were inserted at Sal I restriction enzyme sites. In this manner, chVSFs as described in the schematic diagram of FIG. 2 were prepared.
  • Example 1-2 using two vector expression systems chVSF Expression
  • pCAGGS-GFP 15 ⁇ g of pCAGGS-GFP was transfected into HEK 293T cells using 1 mg / ml PEI (Polyethyleneimine) to confirm the degree of transfection and expression level.
  • PEI Polyethyleneimine
  • the medium was replaced with a medium containing 2% FBS after 6 hours.
  • Cell cultures were collected every three days and impurities were removed using a 0.45 ⁇ m filter. ChVSF was purified using protein A sepharose beads.
  • chVSF was eluted with 0.2 M glycine / hydrochloric acid buffer (Glycine / HCl) (pH 2.5) and 1 M Tris-Cl (Tris-Cl) buffer (pH 9.0) was used as neutralization buffer.
  • the resin was homogenized using 1M Tris-Cl buffer (pH 8.0) at 10 times the resin volume, and then VSF culture was passed through the column.
  • 0.1 M Tris-Cl buffer (pH 8.0) was washed with at least 5 times the column volume.
  • chVSF was confirmed that the structure consisting of a heavy chain of 50 kDa and 25 kDa having the characteristics of immunoglobulin.
  • ScFv was prepared using the variable region of VSF.
  • scFv has a DNA sequence of SEQ ID NO: 150, and the scFv was prepared by cloning the DNA into pET-22b (+), an E. coli expression vector (FIGS. 4 and 5).
  • scFv was prepared by connecting VH and VL of mVSF with a linker, inserted into a bacterial expression vector pET22b (+), and then induced by expression of IPTG, followed by purification using a Ni-NTA column ( 6).
  • the antiviral activity was confirmed using the purified scFv. Specifically, L929 cells infected with EMC-D virus were incubated with scFv, VSF or anti-EMCD virus antibody at 37 ° C. for 30 hours. The supernatant was then removed and CellTiter96 AQueous One Solution was added, followed by OD 450 . As a result, it was confirmed that there was an antiviral effect in all groups treated with VSF (5 to 500 ng), scFv (5 to 10 ⁇ g) and anti-EMCD virus antigen (1:20 dilution) (FIG. 7).
  • MVIT analysis was performed to confirm the antiviral activity of chVSF prepared in Example 1.
  • chVSF of the present invention showed antiviral efficacy against EMC-D virus.
  • PdCMV-dhfr-vector (FIG. 9) corresponding to two gene expression vectors, which is one of expression systems used to express two kinds of recombinant proteins using eukaryotic cells, was used.
  • the vector expresses two kinds of genes into different transcription units in one vector and expresses them using its own promoter and polyA signal, and is a vector system using CMV (cytomegalovirus) promoter, a powerful mammalian expression promoter. .
  • CMV cytomegalovirus
  • amino acid sequence of the heavy chain variable region of hzVSF is shown in SEQ ID NO: 10, the heavy chain region of SEQ ID NO: 11, the amino acid sequence of the light chain variable region of SEQ ID NO: 12, and the light chain region of SEQ ID NO: 13.
  • pCAGGS-GFP 15 ⁇ g of pCAGGS-GFP was transfected into HEK 293T cells using 1 mg / ml PEI (Polyethyleneimine) to confirm the degree of transfection and expression level.
  • PEI Polyethyleneimine
  • the medium was replaced with a medium containing 2% FBS.
  • Cell cultures were collected every three days and impurities were removed using a 0.45 ⁇ m filter. ChVSF and hzVSF were purified using protein A sepharose beads.
  • chVSF and hzVSF were eluted with 0.2 M glycine / hydrochloric acid buffer (Glycine / HCl) (pH 2.5) and 1 M Tris-Cl (Tris-Cl) buffer (pH 9.0) was used as neutralization buffer.
  • the resin was homogenized using 1 M Tris-Cl buffer (pH 8.0) at 10 times the resin volume, and then VSF culture was passed through the column.
  • 0.1 M Tris-Cl buffer (pH 8.0) was washed with at least 5 times the column volume.
  • VSF used in the experiment is shown in Table 2 below.
  • rmVSF recombinant of mouse VSF
  • chVSF ⁇ 2 and chVSF ⁇ 4, hzVSF ⁇ 2 and hzVSF ⁇ 4 is composed of a 50 kDa heavy chain and 25 kDa light chain having the characteristics of immunoglobulin.
  • Example 5-1 Basic molecular weight pattern and purity confirmation
  • hzVSF_v13 was stained by Coomassie Staining according to the molecular weight by SDS-PAGE to confirm the molecular weight and purity of hzVSF_v13.
  • lane 1 was a non-reducing gel, and a major band was observed at the expected position in the IgG antibody (150 kDa), and lane 2 was the reduced gel and the heavy chain (about 50 kDa) of the IgG antibody.
  • a band was observed at the corresponding position in the light chain (about 25 kDa), and it was confirmed that hzVSF_v13 showed a general IgG antibody pattern.
  • Example 5-2 Check molecular weight, sugar pattern and size variation
  • Liquid Chromatography / Mass Spectrometry was performed to confirm molecular weight, sugar pattern, and size variation of hzVSF_v13. A small amount of hzVSF_v13 was injected into the HPLC to observe the peaks.
  • hzVSF_v13 exhibits the characteristics of immunoglobulin G (IgG) (FIG. 14).
  • IgG immunoglobulin G
  • the total molecular weight about 140 kDa was observed, and the pattern of the corresponding peak was observed in the general glycosylated IgG such as G0 / G0, G0F / G1, G1 / G1.
  • heavy chains about 49 kDa
  • light chains about 23 kDa
  • the glycan patterns of general IgG were confirmed (G0F, G1F, and G2F).
  • HPLC system Dionex Ultimate 3000
  • Example 5-4 pI And charge heterogeneity confirmation
  • the pI of hzVS_v13F was analyzed to be 7.7, and acid and basic isoforms (acidic / basic isoforms) were also observed in addition to the main band. This corresponds to isomers commonly observed in IgG antibodies (eg, deamination of C-terminal regions).
  • Example 6 virus suppression efficacy is maintained or Increasing Immunogenic Reduced Humanized antibodies hzVSF Variant Produce
  • Example 6-1 hzVSF manufacture of alternative
  • Example 4 Based on the hzVSF prepared in Example 4, three alternatives were prepared. The activity of each alternative was comparable to or less than that of the wild-type (0.5 ⁇ 1 U ⁇ 1 mg / ml) (Tables 3 and 4). The amino acid sequences of each of the alternative CDRs 1 to 3 are shown in Table 3, and the amino acid sequences of the FR1 to FR4 of each variant are listed in Table 4.
  • Antibodies CDR1 CDR2 CDR3 hzVSF_WT Heavy chain GYNMN (SEQ ID NO: 2) NIDPYYGSTTY A QKF Q G (SEQ ID NO: 3) ETGTRAMDY (SEQ ID NO: 4) Light chain RASENIYSNLA (SEQ ID NO: 5) VATNLAD (SEQ ID NO: 6) QHFYGSPRT (SEQ ID NO: 7) hzVSF_a1 Heavy chain GYNMN (SEQ ID NO: 2) NIDPYYGSTTY A QKF Q G (SEQ ID NO: 3) ETGTRAMDY (SEQ ID NO: 4) Light chain RASENIYSNLA (SEQ ID NO: 5) VATNLAD (SEQ ID NO: 6) QHFYGSPRT (SEQ ID NO: 7) hzVSF_a2 Heavy chain GYNMN (SEQ ID NO: 2) NIDPYYGSTTY A QKF Q G (SEQ ID NO: 3) ETGTRAMDY (SEQ
  • the hzVSF variant was prepared through affinity maturation and immunogenicity reduction for practical use in vivo. As a result, 13 variants were prepared (Table 5 and Table 6). The amino acid sequences of CDRs 1 to 3 of each variant are listed in Table 5 and the amino acid sequences of FR1 to FR4 of each variant are shown in Table 6.
  • Antibodies CDR1 CDR2 CDR3 hzVSF_WT Heavy chain GYNMN (SEQ ID NO: 2) NIDPYYGSTTY A QKF Q G (SEQ ID NO: 3) ETGTRAMDY (SEQ ID NO: 4) Light chain RASENIYSNLA (SEQ ID NO: 5) VATNLAD (SEQ ID NO: 6) QHFYGSPRT (SEQ ID NO: 7) hzVSF_var1 Heavy chain GYNMN (SEQ ID NO: 2) NIDPYYGSTTYAQKFQG (SEQ ID NO: 3) ETGTRAMDY (SEQ ID NO: 4) Light chain RASENIYSNLA (SEQ ID NO: 5) VA D NLAD (SEQ ID NO: 16) QHFYGSPRT (SEQ ID NO: 7) hzVSF_var2 Heavy chain GYNMN (SEQ ID NO: 2) NIDPYYGSTTYAQKFQG (SEQ ID NO: 3) ETGTRAMDY (SEQ
  • hzVSF_var12 which has the lowest immunogenicity, showed antiviral activity at 500 ng in 1 unit, similar to the hzVSF wild type, and in the case of hzVSF_var13 having high antiviral activity and relatively low immunogenicity, 250 ng / unit Virus activity was shown.
  • Example 6-3 hzVSF Wild type and its Variant epitope count check
  • each variant showed a wild-type-like activity (0.5 mg / U) from var1 to var12, var13 showed higher activity than the wild-type.
  • Example 6-4 hzVSF Variant T cell analysis confirmed
  • PBMCs Peripheral Blood Mononuclear Cells
  • KLH Keyhole limpet hemocyanin
  • the stimulation index (SI) of T cell proliferation induced by KLH, hzVSF_v12 or hzVSF_v13 was calculated using PBMC cultured for 7 days as a control. If the SI value is greater than 2, the immunogenicity is expected to be large when applied to humans. If the SI value is less than 0.5, it is expected to inhibit the proliferation of T cells. As a result, hzVSF_v12 and hzVSF_v13 are SI values of low values of 1.12 and 1.03, and it was confirmed that most individuals exhibit SI values of 0.6 or more and 2 or less. On the other hand KLH used as a positive control showed a high SI value of 3.91 (Fig. 18, 19, and Table 8).
  • hzVSF_v12 and hzVSF_v13 are expected to have less immunogenicity when administered to patients with viral diseases, and side effects are expected to be low.
  • Example 8 hzVSF Of variants Physical and pharmacokinetic confirmation
  • Example 8-1 hzVSF Variant Check molecular weight pattern and purity
  • SDS-PAGE was used to confirm the molecular weight patterns and purity of hzVSF_var12 and hzVSF_var13.
  • the reduced sample was prepared by mixing NuPage 4X LDS sample buffer (Invitrogen, NP0007) and NuPage 10X sample reducing agent (Invitrogen, NP0009) with hzVSF_var12 and hzVSF_var13 and heating at 70 ° C for 10 minutes.
  • Non-reducing samples were prepared by omitting the reducing agent and heating.
  • hzVSF_var12 and hzVSF_var13 were electrophoresed at 4-12% SDS-PAGE, the gel was stained with InstantBlue (TripleRed, ISB01L) to confirm the purity of hzVSF_var12 and hzVSF_var13. .
  • hzVSF_var12 and hzVSF_var13 were used on a Zorbax GF-250 ⁇ m 9.2 mm ID X 25 cm column (Agilent) to perform high-performance liquid chromatography (HPLC) of the Agilent 1200 series. It was analyzed by Size Exclusion (SE-HPLC). Samples at a concentration of 1 mg / ml were filtered through a 0.2 ⁇ m filter to remove impurities before injection into HPLC. HPLC was run at 1 mL / min for 15 min by injecting 100 ⁇ L of sample each. Analysis was performed using Chemstation software.
  • the main peak was confirmed at the position corresponding to the monomer of the typical IgG antibody (retention time about 8.65 minutes), and the purity of hzVSF_var12 and hzVSF_var13 was confirmed to be 95% or more (FIG. 21).
  • the peaks of about 3.72% and 4.43% were observed at the dimer position (establishment time of about 7.89-7.93 minutes), indicating that they showed the same shape as the IgG antibody as in the SDS-PAGE results.
  • Example 8-2 hzVSF Variant Pharmacokinetics pharmacokineics ) analysis
  • the ELISA was immobilized on a plate with human gamma specific immunoglobulin (anti-human IgG ( ⁇ specific)) for 2 hours at 37 ° C or overnight at 4 ° C and then coated with 3% BSA (Bovine Serum Albumin). Incubation was performed at 37 ° C. for 2 hours to block out the unpopulated portion. Serum collected from the mice was reacted at 37 ° C. for 1 hour and then reacted with human kappa specific immunoglobulin (anti-human IgG ( ⁇ specific)) attached to HRP (Hoseradish peroxidase) for 30 minutes at 37 ° C.
  • HRP Hoseradish peroxidase
  • PK parameters are shown in Table 9 and the graphs of FIG. 22 when a single dose is administered for each concentration of hzVSF_var13 administered to the mice.
  • L929 cells which are mouse cells, were infected with EMC-D virus and treated with hzVSF_var12 and hzVSF_var13, which are representative variants of the hzVSF wild type and hzVSF variants, to confirm virus inhibition by the MVIT method of Example 2.
  • the hzVSF wild type showed a 100% antiviral effect at a concentration of 0.5 ⁇ g / ml
  • hzVSF_var12 is a 100% antiviral effect at a concentration of 0.2 ⁇ g / ml
  • hzVSF_var13 0.1 ⁇ g / ml It confirmed that it represents.
  • the minimum amount contained in ml of VSF showing 100% antiviral effect when the L929 cells were infected with EMC-D virus and treated with VSF at the same time was defined as 1 unit of biological activity.
  • VSF Type Biological activity (1 unit) MW (kDa) mVSF 0.09 ⁇ g 163 hzVSF_wt 0.5 ⁇ g 147 hzVSF_var12 0.2 ⁇ g 147 hzVSF_var13 0.1 ⁇ g 147
  • hzVSF variants prepared by human monoclonal antibody, immunogenicity reduction, and affinity maturation also have lower titers than mVSF, but have antiviral and anti-inflammatory effects with little side effects with better effects than hzVSF_wt. It suggests that there is.
  • Affinity of the receptor for hzVSF was measured by the following method.
  • VSF Type Affinity constant Ka
  • Dissociation constant Kd
  • hzVSF wt 8.2 x 10 9 L / mol 1.2 x 10 -10 M
  • Example 11 In human cells hIFN - ⁇ and hzVSF _wt Anti-cell Check action
  • EMC-D After infecting human fibroblasts with WI-38 cells, EMC-D was treated with different concentrations of human interferon and hzVSF_wt, and their antiviral activity and cell viability were measured by MTS method.
  • the cells were placed in a 96-well plate and incubated at the bottom for 24 hours. After infection with 100 pfu of EMC-D virus, treatment with interferon or hzVSF. After 48 hours of incubation, MTS [3- (4,5-dimethylthiazol-2-yl) -5- (3-carboxymethoxyphenyl) -2- (4-sulfophenyl) -2H-tetrazolium] was treated. After incubation for another 2 to 3 hours, the absorbance at 490 nm was measured to confirm the viability of the cells.
  • the cells treated with human interferon showed a 90% survival rate in a small amount compared to the hzVSF_wt treated cells, but it was confirmed that the cytotoxicity when treated with a high concentration of 4 nM or more.
  • hzVSF_wt showed a 100% survival rate at about 4 nM and did not show cytotoxicity even at concentrations above 4 nM.
  • Example 12 In Viral Diabetes hzVSF Inhibition of Inflammatory Cell Infiltration by _wt and Anti-inflammatory Confirm
  • mice 100 pfu of EMC-D virus was intraperitoneally injected into 5 weeks old male DBA / 2N mice. Thereafter, 2, 4, and 16 units of hzVSF_wt were injected into the tail vein, and then the levels of blood glucose and urine glucose were examined from day 3. In addition, the mice were sacrificed at 3 and 7 days after infection, and the pancreas was extracted and histologically examined.
  • diabetes mellitus did not develop in the group administered more than 4 units of hzVSF_wt, and the blood glucose level was less than 200 mg / dL, which corresponds to the range of normal mice.
  • the blood glucose level was less than 200 mg / dL, which corresponds to the range of normal mice.
  • no urine glucose was detected in the group administered more than 8 units (Table 12 to Table 14).
  • the incidence of diabetes mellitus by hzVSF_wt drug concentration in viral diabetes is shown in Table 12, the blood glucose levels by hzVSF_wt drug concentration in Table 13, and the unrine glucose levels by hzVSF_wt drug concentration in Table 14.
  • Group post-infection Diabetes prevalence 3 day 4 day 5 day 6 day 7 day virus control - 4/4 4/4 4/4 4/4 100% 2 unit / mouse - - - - 4/4 4/4 100% 4 unit / mouse - - - - 0 % 8 unit / mouse - - - - - 0 % 16 unit / mouse - - - - - 0 %
  • diabetes is considered
  • HepG2.2.15 cells which are human liver cancer cells expressing HBV, were used.
  • HBsAg surface antigen
  • liver tissues of patients with hepatitis B hepatitis B progression but no cancer
  • liver tissues of patients with hepatitis C The part which progressed to liver cancer by hepatitis C but no cancer
  • mVSF antibody hepatic tissue (part without cancer) not infected with the virus was used.
  • VSF receptors were expressed in liver tissues obtained from patients infected with HBV and HCV, but not in control tissues, which means that VSF receptors are expressed specifically for viral infection. The same results were observed even when repeated experiments were performed on liver tissues derived from other patients (FIGS. 27 and 28).
  • H1N1 influenza virus was infected with MDCK cell line, and then virus replication and VSF receptor expression were observed using fluorescence staining. As a result, the replication of the virus occurs over time after the influenza virus infection, it was confirmed that the expression of the VSF receptor increases accordingly (Fig. 29). These results indicate that the VSF receptor is induced by viral infection.
  • FIG. 30 shows the expression of VSF receptor and antiviral efficacy of VSF.
  • the left side of Figure 30 confirms the expression of VSF receptors following EMC-D infection
  • the right side shows the anti-EMC-D effect and expression of VSF receptors according to hzVSF_wt treatment.
  • virus-infected cells express VSF receptors with time difference, but the treatment of VSF did not affect the expression of the receptors, but showed antiviral effects.
  • hzVSF_var13 a representative variant.
  • Example 15-1 cccDNA (covalently closed circular DNA) analysis
  • HepG2.2.15 cell line infected with HBV was treated with hzVSF_var13 and HBV drug (lamivudine; Lami) according to each dose, and the number of cells was counted every week to obtain the same amount of cells.
  • HepG2.2.15 cells were recovered and then in lysis buffer (25 mM EDTA, 10 mM Tris-HCl; pH 7.5, 100 mM NaCl, 1% SDS, 0.1 mg / ml proteinase K). The cells were resuspended and reacted at 55 ° C. for 1 hour. After purifying total HBV DNA with MEGA quick-spin total fragment DNA purification kit (intron), the reaction was performed at 37 ° C. for 1 hour with plasmid-safe ATP-dependent DNase, and the enzyme was inactivated at 70 ° C. for 30 minutes.
  • lysis buffer 25 mM EDTA, 10 mM Tris-HCl; pH 7.5, 100 mM NaCl, 1% SDS, 0.1 mg / ml proteinase K.
  • the cells were resuspended and reacted at 55 ° C. for 1 hour.
  • MEGA quick-spin total fragment DNA purification kit intron
  • HBV rcDNA (relaxed circular DNA) was removed and only HBV cccDNA was obtained. Then, quantitative analysis of HBV cccDNA was performed by qPCR using Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (Bioneer).
  • hzVSF significantly reduced the amount of cccDNA in the cell, it can be seen that there is an excellent effect as an HBV therapeutic agent.
  • hzVSF_var13 and HBV drug (lamivudine; Lami) were treated with HBV-infected HepG2.2.15 cell line according to each dose, and the cells were counted every week to obtain the same amount of cells.
  • Intracellular HBV DNA was obtained as follows. The HepG2.2.15 cells obtained above were resuspended in lysis buffer (25 mM EDTA, 10 mM Tris-HCl; pH 7.5, 100 mM NaCl, 1% SDS, 0.1 mg / ml proteinase K). After reacting at 55 ° C for 1 hour. Then, intracellular HBV DNA was obtained using MEGA quick-spin total fragment DNA purification kit (intron). In the case of extracellular HBV DNA, a certain amount of cultured cultured cells were obtained and extracted by treating the culture with lysis buffer. Subsequently, quantitative analysis of HBV DNA was carried out using qPCR using Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer).
  • PCR primers were used as forward 5'-CCTCTTCATCCTGCTGCT-3 '(SEQ ID NO: 155) and reverse 5'-AACTGAAAGCCAAACAGTG-3' (SEQ ID NO: 156).
  • the extracellular HBV DNA significantly reduced the amount of HBV DNA even when treated with very low concentration (0.1 ⁇ g / ml) of hzVSF_var13 compared to the control group Lami (Fig. 32).
  • Intracellular HBV DNA was confirmed to inhibit the HBV DNA in a concentration-dependent manner of hzVSF_var13, it was confirmed to show a significantly superior effect compared to the control group Lami (Fig. 33).
  • hzVSF significantly reduced the amount of intracellular and extracellular HBV DNA, it was found that it has an excellent effect as a therapeutic agent of HBV.
  • Example 16-1 Hepatitis C Virus hzVSF Antiviral effect of _wt
  • Hepatitis C virus JFH-1 strain was infected with human hepatocyte Huh7.5 cells with 0.1 MOI (multiplicity of infection), followed by 3 ng / ml of interferon ⁇ and 500, 1000, 2000 units. After treatment with hzVSF_wt, cell culture medium and cells were collected on day 4. Cells were measured for HCV NS5A using FACS using anti-HCV NS5A antibody staining, and cell culture medium was measured for HCV RNA titer using real-time quantitative PCR.
  • hzVSF in vivo , interferon has side effects, whereas hzVSF not only has no side effects but also treats the symptoms caused by inflammation. Therefore, in the early stages of viral infection, the inhibition of virus growth in cells should be combined with chemicals and interferon, and after the mid-term or symptoms of viral infection, hzVSF and chemicals should be used in combination to suppress not only immunopathy but also virus growth. have.
  • the above results suggest the possibility of the combination treatment of hzVSF_wt and various variants thereof of the present invention excellent in inhibiting the virus proliferation inhibitory chemicals (or interferon) and excellent immunopathologic effects.
  • hzVSF_wt and its various variants alone suggests the application to the antiviral agent without side effects.
  • Example 16-2 Hepatitis C virus ( HCV For 1a) hzVSF Variant Confirm antiviral effect
  • hzVSF_var13 was treated in each dose of Huh7 cells infected with HCV TNcc (TN cell-culture derived; genotype 1a) and the cells were treated on days 3, 6, 9 and 12. Obtained. Then, the HCV infected cells were recovered and trizol was used to extract total RNA. After cDNA was obtained through reverse transcription, quantitative analysis of HCPD RNA and housekeeping gene (GAPDH) for calibration was performed by qPCR using Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer).
  • HCV TNcc TN cell-culture derived; genotype 1a
  • HCV target PCR primers forward 5'-GGGCTATAAGGTGCTAGTGC-3 '(SEQ ID NO: 157) and reverse 5'-GGCTGCCAGTGGTAATTGTT-3' (SEQ ID NO: 158) were used.
  • GAPDH PCR primers forward 5'-TCCCTGAGCTGAACGGGAAG-3 ' (SEQ ID NO: 159), reverse 5'-GGAGGAGTGGGTGTCGCTGT-3 '(SEQ ID NO: 160) was used.
  • Huh7 cells infected with HCV TNcc (genotype 1a) were treated with hzVSF_var13 and HCV drugs (sofosbuvir, simeprevir) according to each dose, and recovered HCV infected cells every week, and total RNA was extracted using trizol. Thereafter, cDNA was obtained by reverse transcription. Subsequently, quantitative analysis of the HCV total RNA (using primers of SEQ ID NOs: 157 and 158) and GAPDH (housekeeping gene) for calibration was performed by qPCR using Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer).
  • HCV TNcc gene 1a
  • Example 16-3 Hepatitis C virus ( HCV For 1b) hzVSF Variant Confirm antiviral effect
  • hzVSF_var13 and HCV drugs were treated to Huh7 cells expressing subgenomic replicon of HCV genotype 1b according to each dose, and HCV infected cells every week. After recovery, total RNA was extracted using trizol. Thereafter, cDNA was obtained by reverse transcription. Quantitative analysis of total HCV RNA and housekeeping gene (GAPDH) for calibration using qPCR was performed using Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer).
  • HCV target PCR primers forward 5'-ATGCAGCCCAAGGGTATAAG-3 '(SEQ ID NO: 161) and reverse 5'-GGTTCTGATGTTAGGGTCGATAC-3' (SEQ ID NO: 162) were used.
  • GAPDH PCR primers primers SEQ ID NOs: 159 and 160 were used. Used.
  • hzVSF_var13 to HCV replicon (genotype 1b) expressing cells reduced the amount of HCV gene (RNA) and HCV NS5A protein, thus having an antiviral effect on HCV.
  • Example 16-4 Hepatitis C virus ( HCV For 2a) hzVSF Variant Confirm antiviral effect
  • hzVSF_var13 and HCV drugs were treated in each dose of JFH-1 cells infected with HCV genotype 2a according to each dose, and HCV infected cells were recovered every week. Trizol was then used to extract total RNA. Thereafter, cDNA was obtained by reverse transcription. Subsequently, quantitative analysis of total HCV RNA and housekeeping gene (GAPDH) for calibration was performed using qPCR using Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer). The primers of SEQ ID NOs: 157 and 158 were used for HCV target PCR primers, and the primers of SEQ ID NOs: 159 and 160 were used for GAPDH PCR primers.
  • HCV gene RNA
  • HCV core protein A in FIG. 39
  • Example 17 for influenza virus infection hzVSF Confirm treatment effect
  • hzVSF_var13 a representative variant of hzVSF of the present invention, against influenza virus, the following experiment was performed in mice.
  • mice Four-week-old female Balb / c mice were nasally infected with 1 ⁇ 10 5 pfu of H1N1 Influenza A / Puerto Rico / 8/34 virus, followed by 25, 100 or 400 units of hzVSF_var13 at 2, 4 or 6 days of infection. Intravenously. At 7 and 9 days after virus infection, mice were sacrificed for H & E staining, lung and body weight, mucosal epithelial cells and cilia, and immunohistochemical staining to infiltrate immune cells.
  • influenza titers were reduced by 100 times or more in the group administered with 500 U hzVSF_var13 compared to the control group (FIG. 41).
  • the group infected with H1N1 influenza virus developed immune cells and infiltrates in the alveoli
  • the group treated with 100 U and 400 U were treated with influenza virus like normal lungs as the lung tissue of the non-infected control group regardless of the timing of administration. Symptoms were cured. Even when 25 U was administered, there was a difference depending on the timing of administration, but it was confirmed that there is a therapeutic effect because it suppresses infiltration of immune cells (FIG. 42).
  • the virus-infected group increased the proportion of lungs by weight due to pneumonia-filled pneumonia, whereas the group receiving hzVSF_var13 was proportional to the concentration.
  • the group receiving hzVSF_var13 was proportional to the concentration.
  • hzVSF and various variants thereof of the present invention not only have excellent antiviral effect against influenza virus, but also inhibit inflammation with an anti-inflammatory effect that inhibits infiltration of immune cells. It suggests that it can be used.
  • hzVSF_wt and variants thereof of the present invention exhibit antiviral effects against various viruses
  • the effects of hzVSF_wt and representative variants hzVSF_var13 were confirmed in vitro and in vivo .
  • In vitro experiments were for antiviral activity and in vivo experiments were for antiviral and anti-inflammatory.
  • Encephalomyocarditis virus (EMCV) +++ +++ Mengovirus +++ NT Reovirus + NT Influenza virus + +++ HIV ++ NT HCMV + NT Mouse hepatitis virus (MHV) ++ +++ Hantaan Virus ++ NT HBV ++ NT HCV ++ NT
  • hzVSF showed excellent antiviral activity and anti-inflammatory in both in vitro and in vivo for brain myocarditis (EMCV) virus.
  • Mengovirus showed excellent antiviral activity in vitro .
  • Reovirus has also been shown to be effective in vitro and in vivo .
  • HIV has also shown antiviral efficacy in vitro . It also showed antiviral and anti-inflammatory effects against HCMV. It was shown to be effective in vitro against the Hantan virus and antiviral activity against hepatitis B and C viruses in vitro .
  • MHV which causes hepatitis in mice with a mechanism similar to human hepatitis, has been shown to exhibit antiviral and anti-inflammatory properties, particularly in vivo .
  • Influenza virus showed antiviral and anti-inflammatory effects in vitro and in vivo , and its efficacy was more excellent in vivo .
  • Example 19 In the mouse model mVSF Inhibition of inflammatory cytokine secretion by administration
  • mice were infected with EMC-D virus and 3 days after mVSF administration, the amount of inflammatory cytokines was measured by ELISA in serum. As shown in Table 16 below, inflammatory cytokines IL-6, TNF- ⁇ , IFN- ⁇ and MCP-1 were increased after viral infection, but administration of mVSF inhibited the expression of these inflammatory cytokines.
  • mVSF also has an anti-inflammatory effect of inhibiting inflammation induced by viral infection.
  • Cytokine (pg / ml) sample IL-12 TNF- ⁇ INF- ⁇ CCL2 (MCP-1) IL-10 IL-6 1 day after infection Normal ND 5.4 1.2 ND ND 1.2 Virus infection 14.2 40.0 166.2 1165.5 ND 205.6 virus + VSF ND 8.4 1.9 16.9 ND 5.0 virus + IFN- ⁇ 1 + VSF ND 9.1 1.6 13.0 ND 1.5 2 days after infection Normal ND 2.1 ND ND ND virus infection 8.7 38.0 724.3 344.5 ND 13.7 virus + VSF ND 32.4 74.5 129.9 ND 9.2 virus + IFN- ⁇ 1 + VSF ND 4.0 20.3 13.9 ND 1.4
  • VSF also has anti-inflammatory effect of inhibiting inflammation induced by viral infection.
  • Example 20 In the mouse model hzVSF Inhibition of inflammatory cytokine secretion by administration
  • mice infected with 1 ⁇ 10 5 pfu of H1N1 (Influenza A / PR8) influenza virus and the lungs of mice administered 500 units of hzVSF_var13 were extracted one day after infection.
  • GLB Greenberger Lysis Buffer
  • PE detection reagent 1: 1: 1 1, and then blocked at room temperature Reaction was carried out for 2 hours. After the reaction, the bead was resuspended in the wash buffer, and data was measured by FACS cantoII.
  • Example 21 Vimentin Effect of hzVSF after EMC-D Infection on Stable Cell Line
  • Non-mentin (wt) or non-mentin (mt) overexpressing cell lines were prepared by transforming non-mentin-expressing MCF-7 cells with non-mentin (wt) or non-mentin (mt) mutated binding sites with hzVSF. Then, MVIT assay was performed using selected cells with similar expression levels.
  • hzVSF_var13 was added by diluting 4 times serially from 256 U and incubated for 2 days. Then, the cells were fixed with methanol, stained with 0.5% crystal violet, and air dried.
  • a WST assay was further performed to confirm cytotoxicity.
  • the cells were treated with tetrazolium salt (WST-1) for an additional 4 hours and incubated at 450 nm wavelength. Absorbance was measured. After the measurement, the supernatant was removed, and the cells were fixed with methanol, followed by fixation staining using 0.5% crystal violet for 20 minutes, and air dried. Stained cells were dissolved in methanol and absorbance was measured at 540 nm.
  • WST-1 tetrazolium salt
  • VSF receptor (VR) VSF receptor
  • each stable MCF-7 cells namely, non-mentin (wt) and non-mentin (mt) were infected with 5 MOI of EMC-D for 9 hours, and then cells were immunostained with hzVSF_var13. After fixing the cells, permeabilization and diluting 1: 250 hzVSF_var13 were reacted with the cells. The secondary antibody was reacted with FITC-goat human IgG and fluorescence microscopy confirmed receptor (VR) expression for hzVSF in cells (500 magnification).
  • hzVSF_var13 was not bound to the non-mentin-expressing cells in which the binding sites of mock and hzVSF were mutated as shown in FIG. 55, but it was confirmed that VR was expressed by viral infection in the cells expressing the non-mentin of wt (Fig. 53).
  • Example 22 E. in coli With refined VR WT and MT VSF Join check
  • Example 23 HEK293T VR (mt) and overexpressed in cells With VSF Join check
  • P60 WT or p60 MT was transformed into HEK293T cells and confirmed binding to hzVSF_v13.
  • HEK293T cells were inoculated into a 100 mm culture dish, and then transformed with p60 wild-type and MT (mutant-type) DNA (vector: pcDNA3.1mycHisC) and incubated for 48 hours. . Then, after collecting the cells, 1 ml of 1% CHAPS lysis buffer was added, and the cells were lysed by standing on ice for 20 minutes. The lysed cells were centrifuged at 13,000 rpm for 15 minutes at 4 ° C to transfer the supernatant to a new tube. 50% slurry of protein A beads was added to 700 mg of protein, and then precleared at 4 ° C. for 1 hour.
  • hzVSF_var13 was treated at 1: 100 and then incubated overnight at 4 ° C to combine VSF and VR. Then, 50% slurry of protein A was added, followed by reaction at 4 ° C. for 1 hour. Ptotein A-VSF-VR complex was obtained and centrifuged at 3,000 ⁇ g for 3 min at 4 ° C. to wash the beads and the supernatant was removed. The beads were then washed three times by adding 1% CHAPS lysis buffer to the precipitated complex. SX-PAGE and immunoblot were performed by adding 2X SDS-sample buffer and boiling.
  • the antibody or binding fragment of the peptide specifically binding to the peptide of SEQ ID NO: 1 of the present invention exhibits antiviral and anti-inflammatory effects against a wide range of viral diseases, and is an existing antiviral agent interferon.
  • chemotherapeutic agents it is possible to selectively apply only to virus-infected cells without side effects, and can be used in a small amount during treatment, to inhibit immune cell infiltration, to have anti-inflammatory action, and to be used as various virus therapeutic agents.

Abstract

본 발명은 서열번호 1의 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체에 관한 것으로, 구체적으로는 서열번호 1의 분리된 펩타이드에 특이적으로 결합하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터, 상기 벡터가 도입된 세포, 상기 세포를 이용한 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편의 생산방법, 상기 생산방법에 의해 생산된 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 항바이러스용 조성물, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물, 및 상기 조성물을 이용한 바이러스 감염성 질환의 치료 방법, 또는 염증성 질환의 치료 방법에 관한 것이다.

Description

분리된 비멘틴 유래 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편
본 발명은 서열번호 1의 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체에 관한 것으로, 구체적으로는 서열번호 1의 분리된 펩타이드에 특이적으로 결합하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터, 상기 벡터가 도입된 세포, 상기 세포를 이용한 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편의 생산방법, 상기 생산방법에 의해 생산된 재조합 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 항바이러스용 조성물, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물, 및 상기 조성물을 이용한 바이러스 감염성 질환의 치료 방법, 또는 염증성 질환의 치료 방법에 관한 것이다.
바이러스성 질환은 세균성 질환과 달리, 항생제가 잘 듣지 않아 치료가 어려우며, 항상 인간에서의 질환 및 사망의 주요 원인 중 하나로서 바이러스 질환이 대두되고 있다.
또한, 바이러스 감염성 질환은 염증을 유발하여, 다양한 염증성 질환을 유발하기도 한다.
이와 같은 바이러스 감염성 질환 등의 치료를 위해 개발된 제제로는 화학 물질과 생체 유래 물질로 구분될 수 있는데, 화학 물질의 경우 대부분 특정 바이러스 질환에만 작용하도록 개발되었으며, 여러가지 부작용이 나타나며, 내성 바이러스가 쉽게 출현하는 등 많은 단점이 있다.
한편, 생체 유래 물질로는 인터페론 (interferon, IFN)과 같은 사이토카인이 잘 알려져 있다. 이 중 인터페론은 바이러스에 감염된 세포에서 생산되는 사이토카인 중에 최초로 발견된 것으로서, 가장 뛰어난 항바이러스성을 갖는 사이토카인으로 알려져 있다. 인터페론은 다음과 같은 다양한 질환, 만성 B형, C형 간염이나 혈액암, 다발성 경화증 등의 다양한 질병 치료에 이용될 수 있음이 보고되었다. 최근에는 HIV (Human immunodeficiency virus) 환자에 대한 효능이 입증되고 있다. 이에, 수년 전부터 항바이러스 제제 및 면역증강제를 개발하기 위한 일환으로서 인터페론을 대량 생산하기 위하여 유전공학적 방법이나 생물공학적인 방법의 연구가 이루어져 왔으며 최근에는 천연물이나 합성 화합물로부터 인터페론 활성을 유도하는 화합물을 탐색하기 위한 연구가 활발히 이루어져 왔다. (Alcaro S et al., Bioorg Med Chem. 2005, 13(10), 3371-3378). 이에, 3M Pharmaceuticals사에 의해 Imiquimod이라는 강력한 인터페론 유도제가 개발되었으나 임상시험에서 여러 부작용이 나타남으로써 개발이 중단된 바 있다.
인터페론은 강력한 항바이러스제로 알려져 있으나, 면역세포의 침윤 등 염증 반응을 유도하며, 거의 모든 세포가 인터페론에 대한 수용체를 항시 발현하고 있어서 항세포 작용 등 다양한 부작용을 보이고 있으며, 임상에 사용시 많은 양이 필요하여 6개월 이상 사용할 수 없는 단점이 있다.
이에, 정상 세포가 아닌, 바이러스 감염 세포에 대하여 선택적으로 작용하여 치료 시 소량으로 적용가능하고, 특정 바이러스가 아닌 다양한 바이러스에 적용 가능하며, 면역 세포 침윤을 억제하여 염증을 억제하는 항바이러스 활성 및 항염증 작용을 동시에 갖는 치료제의 개발이 요구되고 있다.
본 발명자들은 바이러스 감염 세포에만 특이적으로 작용하며, 면역세포의 침윤을 억제하여 염증을 억제할 수 있는 항바이러스 활성 및 항염증 작용을 갖는 치료제를 개발하고자 예의 노력한 결과, 신규한 인간화 항체인 hzVSF가 다양한 바이러스에 특이적으로 작용하며, 면역세포 침윤 억제 및 바이러스 억제능이 있을 뿐 아니라, 면역원성을 낮춘 인간화 항체로 인간에게 투여 시 부작용도 없는 안전한 제제임을 확인하여 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 하나의 목적은 서열번호 1의 펩타이드에 특이적으로 결합하는 신규한 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 하나의 목적은 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터, 상기 벡터가 도입된 세포, 상기 세포를 이용한 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편의 생산방법, 상기 생산방법에 의해 생산된 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 하나의 목적은 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는 항바이러스용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 하나의 목적은 상기 항바이러스용 조성물을 이용한 바이러스 감염 질환의 예방 또는 치료 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 하나의 목적은 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 하나의 목적은 상기 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 이용한 염증성 질환의 치료 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 서열번호 1의 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체 또는 상기 펩타이드의 결합단편은 바이러스 감염 세포에 선택적으로 작용하여 치료 시 소량이 필요하고, 부작용이 없을 뿐 아니라, 면역세포의 침윤을 억제하여 염증을 억제하는, 우수한 항바이러스 및 항염증 작용을 나타내는 인간화 항체 신약으로 제공될 수 있다.
도 1은 chimeric VSF의 제조를 위한 벡터의 모식도이다.
도 2는 chimeric VSF의 모식도이다.
도 3은 chimeric VSF의 발현을 확인한 도이다.
도 4는 VSF의 scFv의 DNA 서열을 나타낸 도이다.
도 5는 VSF의 scFv를 벡터에 클로닝한 모식도이다.
도 6은 VSF의 scFV를 정제하여 확인한 도이다.
도 7은 VSF, scFv 및 항-EMCD 바이러스 항체의 항바이러스 효능을 바이러스 감염에서 세포의 생존량으로 확인한 도이다.
도 8는 chimeric VSF의 항바이러스 효능을 확인한 도이다.
도 9는 인간화 항체인 hzVSF의 제조를 위한 벡터의 모식도이다.
도 10은 본 발명의 인간화 항체인 hzVSF의 모식도이다.
도 11은 인간화 항체인 hzVSF의 발현을 확인한 도이다.
도 12는 인간화 항체인 hzVSF의 항바이러스 효능을 확인한 도이다.
도 13은 인간화 항체인 hzVSF_var13의 물성을 확인한 환원 및 비환원 SDS-PAGE 결과를 나타낸 도이다.
도 14는 인간화 항체인 hzVSF_var13의 물성을 확인한 LC/MS 결과를 나타낸 도이다.
도 15는 인간화 항체인 hzVSF_var13의 물성을 확인한 SEC-HPLC 결과를 나타낸 도이다.
도 16은 인간화 항체인 hzVSF_var13의 물성을 확인한 IF (Isoelectric focusing)를 나타낸 도이다.
도 17은 51명의 혈액 기증자 중 KLH, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13에 반응하여 T 세포의 증식이 일어난 기증자의 수를 나타내는 도이다.
도 18은 인간화 항체인 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13 에 대한 51명의 T 세포 증식 반응의 정도를 나타낸 도이다.
도 19는 KLH, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13에 의해 유도된 T 세포 증식을 평균 SI 값으로 나타낸 도이다.
도 20은 대표적인 인간화 항체인 hzVSF의 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 SDS-PAGE 결과를 나타낸 도이다.
도 21은 대표적인 인간화 항체인 hzVSF의 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 물성을 확인한 HPLC 결과를 나타낸 도이다.
도 22는 대표적인 인간화 항체인 hzVSF의 변이체인 hzVSF_var13의 약동학을 나타낸 도이다.
도 23은 인간화 항체인 hzVSF 및 인간화 항체인 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 바이러스 억제능을 확인한 도이다.
도 24는 사람세포에서 인간화 항체인 hzVSF_var13 및 hIFN-α의 항세포 작용을 확인한 도이다.
도 25는 바이러스성 당뇨병에서 인간화 항체인 hzVSF의 염증세포 침윤 억제를 확인한 도이다.
도 26은 mVSF의 항-HBV 효과를 확인한 도이다.
도 27은 HBV로 감염된 간조직에서 VSF 수용체의 발현양상을 확인한 도이다.
도 28은 HCV로 감염된 간조직에서 VSF 수용체의 발현양상을 확인한 도이다.
도 29는 인플루엔자 바이러스 감염세포에서 VSF 수용체의 발현을 확인한 도이다.
도 30은 EMC-D 바이러스 감염세포에서 VSF 수용체의 발현을 확인한 도이다.
도 31은 hzVSF_var13의 B형 간염 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 cccDNA의 양을 Real-time quantitative PCR로 확인한 도이다.
도 32는 hzVSF_var13의 B형 간염 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 세포외 HBV DNA의 양을 Real-time quantitative PCR로 확인한 도이다.
도 33은 hzVSF_var13의 B형 간염 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 세포내 HBV DNA의 양을 Real-time quantitative PCR로 확인한 도이다.
도 34는 hzVSF의 C형 간염 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 FACS로 확인한 도이다.
도 35은 hzVSF의 C형 간염 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 Real-time quantitative PCR로 확인한 도이다.
도 36은 hzVSF_v13의 C형 간염 바이러스 유전자 1a형에 대한 항바이러스 효과를 Real-time quantitative PCR과 western blot으로 확인한 도이다.
도 37은 hzVSF_v13의 C형 간염 바이러스 유전자 1a형에 대한 장기간의 항바이러스 효과를 Real-time quantitative PCR로 확인한 도이다.
도 38은 hzVSF_v13의 C형 간염 바이러스 유전자 1b형에 대한 항바이러스 효과를 Real-time quantitative PCR과 western blot으로 확인한 도이다.
도 39는 hzVSF_v13의 C형 간염 바이러스 유전자 2a형에 대한 항바이러스 효과를 Real-time quantitative PCR과 western blot으로 확인한 도이다.
도 40은 hzVSF_v13의 C형 간염 바이러스 유전자 2a형에 대한 장기간의 항바이러스 효과를 Real-time quantitative PCR로 확인한 도이다.
도 41은 인간화 항체인 hzVSF_v13의 인플루엔자 바이러스 (H1N1)에 대한 바이러스 증식 억제효과를 마우스에서 확인한 도이다.
도 42는 인플루엔자 바이러스에 감염된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13 투여 후 폐 조직의 치료 효과를 확인한 도이다.
도 43은 인플루엔자 바이러스에 감염된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13에 의한 마우스 점막상피 세포 및 섬모의 보호 효과를 확인한 도이다.
도 44는 인플루엔자 바이러스에 감염된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13 투여된 시기와 농도별로 폐렴 억제 효과를 확인한 도이다.
도 45는 인플루엔자 바이러스에 감염(100,000 pfu)된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13 투여 후 CD4 면역세포 침윤 억제 효과를 나타낸 도이다.
도 46은 인플루엔자 바이러스에 감염(10,000,000 pfu)된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13 투여 후 CD4 면역세포 침윤 억제 효과를 나타낸 도이다.
도 47은 인플루엔자 바이러스에 감염(100,000 pfu)된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13 투여 후 대식세포 침윤 억제 효과를 나타낸 도이다.
도 48은 인플루엔자 바이러스에 감염(10,000,000 pfu)된 마우스에 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13 투여 후 대식세포 침윤 억제 효과를 나타낸 도이다.
도 49는 마우스에 바이러스 감염 후 hzVSF의 염증성 사이토카인 분비 억제 효과를 나타낸 도이다.
도 50은 VSF 수용체가 발현하지 않는 MCF-7 세포에 wild-type의 VR과 mutant-type의 VR을 과발현시킨 후, 바이러스를 감염시켜 hzVSF_v13의 항바이러스능을 MVIT assay로 확인한 도이다.
도 51은 VSF 수용체가 발현하지 않는 MCF-7 세포에 wild-type의 VR과 mutant-type의 VR을 과발현시킨 후, 바이러스를 감염시켜 hzVSF_v13의 항바이러스능을 WST assay로 확인한 도이다.
도 52는 VSF 수용체가 발현하지 않는 MCF-7 세포에 wild-type의 VR과 mutant-type의 VR을 과발현시킨 후, 바이러스를 감염시켜 hzVSF_v13의 항바이러스능을 MVIT assay로 확인한 도이다.
도 53은 VSF 수용체가 발현하지 않는 MCF-7 세포에 wild-type의 VR과 mutant-type의 VR을 과발현시킨 후, 바이러스를 감염시켜 VSF 수용체와 hzVSF_v13의 결합을 면역형광염색법으로 확인한 도이다.
도 54는 E. coli에서 과발현시켜 정제한 wild-type 및 mutant type의 VSF 수용체(비멘틴)과 hzVSF_v13의 결합을 pull-down assay로 확인한 도이다.
도 55는 HEK293T 세포에서 과발현시킨 wild-type 및 mutant typre의 VSF 수용체(비멘틴)과 hzVSF_v13의 결합을 immunoprecipitation으로 확인한 도이다.
도 56은 vimentin과 VSF의 결합 부위를 시뮬레이션한 도이다.
도 57은 vimentin과 VSF의 결합을 시뮬레이션한 도이다.
도 58은 vimentin과 hzVSF_v13의 결합 부위를 시뮬레이션한 도이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 하나의 양태로서 서열번호 1의 분리된 펩타이드에 특이적으로 결합하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 제공한다.
상기 항체는 이에 제한되지 않으나, 그 예로 마우스 항체, 키메라 항체 또는 인간화 항체일 수 있다.
본 발명의 상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 항원과 직접적으로 결합하는 마우스의 단클론 또는 단일클론 항체의 가변 영역의 상보성 결정 부위를 인간 항체 골격에 이식하여, 본래의 마우스 항체의 친화도 및 특이성을 유지하면서 인체 내에서 HAMA (human anti-mouse antibody)반응을 억제하는 우수성을 갖고 있다. 더욱이, de-immunization 방법을 이용해 면역원성을 낮춘 인간화 항체로서, 인간에게 투여 시 면역원성을 현저하게 낮추어 안전한 제제로 사용될 수 있다. 즉, 이는 서열번호 1의 펩타이드 부위가 외부로 노출된 세포에 반응하여 영향을 주면서도 인간 면역 체계와 보다 양호하게 상호작용하여, 예를 들어 바이러스 감염 세포와 반응하면서도 보체-의존성 세포독성(complement-dependent cytotoxicity, CDC) 또는 항체-의존성 세포성 세포독성(antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity, ADCC)을 일어나지 않게 하여 목적 세포를 보다 효율적으로 치료할 수 있다. 아울러, 면역원성 감소에 의해 인간 면역 체계가 상기 항체를 외래의 것으로 인식하지 않는 이점이 있다. 또한, 더 적은 양, 보다 적은 빈도의 약물을 투여하였을 때에도 인간 순환계 내 반감기가 천연 발생 항체와 유사하다는 이점이 있다.
본 발명에서 상기 서열번호 1의 분리된 펩타이드에 특이적으로 결합하는 마우스 항체는 "mVSF(mouse Virus Suppressing Factor)"로 통칭될 수 있고, 키메라 항체는 "chVSF(chimeric Vrus Suppressing Factor)"로 통칭될 수 있으며, 인간화 항체는 "hzVSF (humainzed Virus Suppressing Factor)"로 통칭될 수 있다. 본 발명에서 용어, 인간화 항체 hzVSF 또는 이의 변이체는 서로 혼용될 수 있으며, hzVSF는 hzVSF 야생형 (hzVSF_wt) 및 hzVSF의 변이체 (예를 들어, hzVSF_var1, hzVSF_v1 또는 hzVSF_1 등으로 표기)와 혼용될 수 있다.
본 발명에서 서열번호 1의 분리된 펩타이드는 비멘틴 (vimentin)의 아미노산 142번 내지 294번의 위치에 해당하는 것으로, 본 발명의 항체 또는 이의 단편이 결합할 수 있는 한, 상기 서열뿐만 아니라, 상기 서열과 80% 이상, 바람직하게는 90% 이상, 보다 바람직하게는 95% 이상, 특히 바람직하게는 97% 이상의 상동성을 갖는 아미노산 서열을 포함할 수 있다. 상기 서열번호 1의 분리된 펩타이드는 에피토프를 포함하는 항원 영역으로, 항체 또는 이의 단편과 결합되어 본 발명과 유사한 기능을 나타낼 수 있는 한, 비멘틴 아미노산의 142번 내지 211번 또는 211번 내지 294번일 수 있다. 또한, 이러한 상동성을 갖는 아미노산 서열이라면, 일부 서열이 결실, 변형, 치환 또는 부가된 아미노산 서열도 본 발명의 범위 내에 포함됨은 자명하다. 비멘틴은 VIM 유전자에 의해 코딩되는 단백질로, 세포 내 소기관 (organelle)을 지지하고 위치에 고정시키는 기능을 하는 것으로, 주로 세포의 골격, 단백질의 이동 및 세포신호전달에 관여함이 알려져 있으며, 암 마커로 사용됨이 알려져 있으나, 이에 결합할 수 있는 항체가 항바이러스 작용을 할 수 있음에 대해서는 알려진 바 없었다.
본 발명의 서열번호 1의 분리된 펩타이드에 특이적으로 결합하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 바이러스에 감염된 세포에 특이적으로 반응하는 것으로, 바이러스 감염 세포에서 VSF (Virus suppressing factor)의 수용체가 외부로 나타나, 이에 결합하는 것이다. 이와 같은 본 발명의 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 상기와 같이 바이러스 감염 세포 특이적인 결합에 의해 항바이러스 활성 및 항염증 활성을 나타내므로, 항바이러스용 조성물, 바이러스 감염성 질환, 염증성 질환의 예방 또는 치료 분야에 있어서도 유용하게 사용할 수 있다.
상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은, 구체적으로 서열번호 1의 펩타이드의 9 번째, 45 번째, 54 번째, 76 번째, 94 번째 또는 129 번째 아미노산 잔기에 특이적으로 결합하는 것일 수 있고, 더욱 구체적으로 서열번호 1의 펩타이드의 9 번째, 45 번째, 54 번째, 76 번째, 94 번째 및 129 번째 아미노산 잔기에 특이적으로 결합하는 것일 수 있으나, 서열번호 1의 분리된 펩타이드에 특이적으로 결합하는 한, 이에 제한되지 않는다.
본 발명에서 용어, "항체"는 면역학적으로 특정 항원과 반응성을 갖는 면역글로불린 분자를 포함하는, 항원을 특이적으로 인식하는 리간드 역할을 하는 단백질 분자를 의미하며, 다클론항체, 단일클론항체, 전체(whole) 항체 및 항체 단편을 모두 포함한다. 또한, 상기 용어는 키메라성 항체(예를 들면, 인간화 뮤린 항체) 및 이가(bivalent) 또는 이중특이성 분자(예를 들어, 이중특이성 항체), 디아바디, 트리아바디 및 테트라바디를 포함한다. 상기 용어는 추가로 FcRn에 대한 결합 기능을 보유한 단쇄 항체, 스캡, 항체 불변영역의 유도체 및 단백질 스캐폴드에 기초한 인공 항체를 포함한다. 전체 항체는 2개의 전체 길이의 경쇄 및 2개의 전체 길이의 중쇄를 가지는 구조이며, 각각의 경쇄는 중쇄와 다이설파이드 결합으로 연결되어 있다. 상기 전체 항체는 IgA, IgD, IgE, IgM 및 IgG를 포함하며, IgG는 아형(subtype)으로, IgG1, IgG2, IgG3 및 IgG4를 포함한다. 여기에서 사용되는 용어 "단편," "펩타이드의 결합 단편" 및 "항체 단편"은 항체의 항원-결합 활성을 보유하는 본 발명의 항체의 임의의 단편을 지칭하는 것으로 호환적으로 사용된다. 예시적인 항체 단편은 단일 쇄 항체, Fd, Fab, Fab', F(ab')2, dsFv 또는 scFv를 포함하나 이에 한정되지 않는다. 상기 Fd는 Fab 단편에 포함되어 있는 중쇄 부분을 의미한다. 상기 Fab는 경쇄 및 중쇄의 가변 영역과 경쇄의 불변 영역 및 중쇄의 첫 번째 불변 영역(CH1 도메인)을 가지는 구조로 1개의 항원 결합 부위를 가진다. Fab'는 중쇄 CH1 도메인의 C 말단에 하나 이상의 시스테인 잔기를 포함하는 힌지 영역(hinge region)을 가진다는 점에서 Fab와 차이가 있다. F(ab')2 항체는 Fab'의 힌지 영역의 시스테인 잔기가 디설파이드 결합을 이루면서 생성된다. Fv(variable fragment)는 중쇄 가변부위 및 경쇄 가변부위만을 가지고 있는 최소의 항체조각을 의미한다. 이중디설파이드 Fv(dsFv)는 디설파이드 결합으로 중쇄 가변부위와 경쇄 가변부위가 연결되어 있고, 단쇄 Fv(scFv)는 일반적으로 펩타이드 링커를 통하여 중쇄의 가변 영역과 경쇄의 가변 영역이 공유 결합으로 연결되어 있다. 이러한 항체 단편은 단백질 가수분해 효소를 이용해서 얻을 수 있고(예를 들어, 전체 항체를 파파인으로 제한 절단하며 Fab를 얻을 수 있고 펩신으로 절단하면 F(ab')2 단편을 얻을 수 있다), 바람직하게는 유전자 재조합 기술을 통하여 제작할 수 있다.
본 발명에서 용어, "단일클론항체"는 실질적으로 동일한 항체 집단에서 수득한 단일 분자 조성의 항체 분자를 지칭하고, 이러한 단일클론항체는 특정 에피토프에 대해 단일 결합 특이성 및 친화도를 나타낸다.
전형적으로, 면역글로불린은 중쇄 및 경쇄를 가지며 각각의 중쇄 및 경쇄는 불변 영역 및 가변 영역(상기 부위는 도메인으로 또한 알려져 있음)을 포함한다. 경쇄 및 중쇄의 가변 영역은, 상보성 결정 영역(complementarity-determining region, 이하 "CDR"이라 함)이라 불리는 3개의 다변 가능한 영역 및 4개의 구조 영역(framework region, 이하 "FR"이라 함)을 포함한다. 상기 CDR은 주로 항원의 에피토프(epitope)에 결합하는 역할을 한다. 각각의 사슬의 CDR은 전형적으로 N-말단으로부터 시작하여 순차적으로 CDR1, CDR2, CDR3로 불리고, 또한 특정 CDR이 위치하고 있는 사슬에 의해서 식별된다.
또한, 상기와 같은 본 발명의 항체가 불변 영역을 포함하는 경우, IgG, IgA, IgD, IgE, IgM 유래 또는 이들의 조합(combination) 또는 이들의 혼성(hybrid)에 의한 불변 영역을 포함할 수 있다.
본 발명에서 용어, "조합(combination)"이란 이량체 또는 다량체를 형성할 때, 동일 기원 단쇄 면역글로불린 불변 영역을 암호화하는 폴리펩타이드가 상이한 기원의 단쇄 폴리펩타이드와 결합을 형성하는 것을 의미한다. 그 예로, IgG, IgA, IgD, IgE 및 IgM의 불변 영역으로 이루어진 그룹으로부터 선택된 2개 이상의 불변 영역으로부터 이량체 또는 다량체를 형성할 수 있다.
본 발명에서 용어, "하이브리드(hybrid)"란 단쇄 면역 글로불린 중쇄 불변 영역 내에 2개 이상의 상이한 기원의 면역글로불린 중쇄 불변 영역에 해당하는 서열이 존재함을 의미하며, 그 예로 IgG, IgA, IgD, IgE 및 IgM의 CH1, CH2, CH3 및 CH4로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 1개 내지 4개 도메인으로 이루어진 도메인의 하이브리드가 가능하다.
본 발명의 인간화 항체는 이에 제한되지는 않으나, 인간 면역글로불린 γ4를 기반으로 인간화될 수 있으며, 보체 결합성이 없어 CDC를 일으키지 않는 장점이 있을 수 있다.
상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 서열번호 2로 기재된 중쇄 CDR1; 서열번호 3 또는 서열번호 14 (서열번호 3의 9번째 아미노산인 쓰레오닌이 아스파르트산으로 치환)로 기재된 중쇄 CDR2; 및 서열번호 4 또는 서열번호 15 (서열번호 4의 4번째 아미노산인 쓰레오닌이 아르파라긴으로 치환)로 기재된 중쇄 CDR3를 포함하는 중쇄 가변 영역, 및 서열번호 5로 기재된 경쇄 CDR1; 서열번호 6, 서열번호 16 (서열번호 6의 3번째 아미노산인 쓰레오닌이 아스파르트산으로 치환), 서열번호 17 (서열번호 6의 3번째 아미노산인 쓰레인오닌이 아스파르트산으로, 6번째 아미노산인 알라닌이 글리신으로 치환), 또는 서열번호 18 (서열번호 6의 3번째 아미노산인 쓰레인오닌이 아스파르트산으로, 5번째 아미노산인 류신이 아르기닌으로, 6번째 아미노산인 알라닌이 글리신으로 치환)로 기재된 경쇄 CDR2; 및 서열번호 7 또는 서열번호 19 (서열번호 7의 6번째 아미노산인 세린이 쓰레오닌으로 치환)로 기재된 경쇄 CDR3를 포함하는 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편일 수 있다.
또한, 상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 인간의 FR (framework region)을 포함하며, 이에 제한되지는 않으나, 서열번호 29, 서열번호 30, 서열번호 31로 기재된 인간 면역글로불린 감마일 수 있으며, 또는 서열번호 20으로 기재된 중쇄 FR1 (Framework region 1); 서열번호 21로 기재된 중쇄 FR2; 서열번호 22 또는 서열번호 28 (서열번호 22의 8번째 아미노산인 라이신이 쓰레오닌으로, 10번째 아미노산인 이소류신이 알라닌으로 치환)로 기재된 중쇄 FR3; 및 서열번호 23으로 기재된 중쇄 FR4를 포함하는 중쇄 가변 영역, 및 서열번호 24로 기재된 경쇄 FR1; 서열번호 25로 기재된 경쇄 FR2; 서열번호 26으로 기재된 경쇄 FR3; 및 서열번호 27로 기재된 경쇄 FR4를 포함하는, 경쇄 가변 영역일 수 있다.
상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 구체적으로, (a) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3; (b) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 16, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3; (c) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 17, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3; (d) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3; (e) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 19로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3; (f) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3; (g) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; (h) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; (i) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 15로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; (j) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; (k) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 15로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; (l) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 19로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; (m) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 15로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 19로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; 또는 (n) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 16, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3를 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편일 수 있다.
상기 (a) 항체는 hzVSF_WT, (b) 항체는 hzVSF_var1, (c) 항체는 hzVSF_var2. (d) 항체는 hzVSF_var3, (e) 항체는 hzVSF_var4, (f) 항체는 hzVSF_var5, (g) 항체는 hzVSF_var6, (h) 항체는 hzVSF_var7, (i) 항체는 hzVSF_var8, (j) 항체는 hzVSF_var9, (k) 항체는 hzVSF_var10, (l) 항체는 hzVSF_var11, (m) 항체는 hzVSF_var12, (n) 항체는 hzVSF_var13을 각각 포함할 수 있다.
상기 인간화 항체 및 상기 펩타이드의 결합 단편은 이에 제한되지 않으나, 각각 서열번호 10 및 서열번호 12; 서열번호 32 및 서열번호 34; 서열번호 36 및 서열번호 38; 서열번호 40 및 서열번호 42; 서열번호 44 및 서열번호 46; 서열번호 48 및 서열번호 50; 서열번호 52 및 서열번호 54; 서열번호 56 및 서열번호 58; 서열번호 60 및 서열번호 62; 서열번호 64 및 서열번호 66; 서열번호 68 및 서열번호 70; 서열번호 72 및 서열번호 74; 서열번호 76 및 서열번호 78; 또는 서열번호 80 및 서열번호 82로 기재된 중쇄 및 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편일 수 있다.
상기 마우스 항체는 구체적으로, 서열번호 137로 기재된 중쇄 CDR1; 서열번호 138로 기재된 중쇄 CDR2; 및 서열번호 139로 기재된 중쇄 CDR3를 포함하는 중쇄 가변 영역, 및 서열번호 134로 기재된 경쇄 CDR1; 서열번호 135로 기재된 경쇄 CDR2; 서열번호 136으로 기재된 경쇄 CDR3를 포함하는 경쇄 가변 영역을 포함할 수 있으며, 더욱 구체적으로, 서열번호 9로 기재된 중쇄 가변 영역 및 서열번호 8로 기재된 경쇄 가변 영역을 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 키메라 항체는 구체적으로 서열번호 141 또는 서열번호 142로 기재된 중쇄 가변 영역 및 서열번호 140으로 기재된 경쇄 가변 영역을 포함하는 것일 수 있고, 더욱 구체적으로, 서열번호 146 또는 서열번호 148로 기재된 중쇄 및 서열번호 144로 기재된 경쇄를 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 scFv는 이에 제한되는 것은 아니나, mVSF를 안전성을 위해 제조한 scFv 역시 포함될 수 있다. 그 예로, 도 4에 기재된 서열에 의해 제조된 scFv일 수 있다. 또한, 서열번호 131로 기재된 중쇄 가변 영역 및 서열번호 133으로 기재된 경쇄 가변 영역이 링커로 연결된 형태일 수 있다. 또한, 서열번호 130의 염기 서열로 코딩되는 중쇄 가변 영역 및 서열번호 132의 염기 서열로 코딩되는 경쇄 가변 영역이 링커로 연결된 형태일 수 있다. 이와 같은 scFv는 E. coli 발현 벡터내에 서열번호 150의 염기서열로 클로닝될 수 있다.
구체적인 실시예에 따르면, 본 발명자들은 hzVSF_wt, 3개의 얼터너티브(alternative) 및 이의 13개의 변이체인 인간화 항체를 제조한 후, 항바이러스 효능을 확인하였다 (실시예 6). 이울러, FDA 승인을 받아 시판 중인 의약품과 면역원성을 비교한 결과, 면역원성이 가장 낮은 인간 항체인 Humira와 유사한 수준의 면역원성을 나타내는 것을 확인하여 (표 7), 항바이러스제 또는 항염증제로 사용시 야기될 수 있는 부작용 없이 안전한 항바이러스 또는 의약품으로 사용될 수 있음을 확인하였다. 또한, hzVSF_wt 변이체를 이용하여 T 세포 분석을 통해 T 세포의 증식에 크게 영향을 주지 않는 것을 확인하여(표 8), 임상에 사용할 때 면역원으로 작용하여 부작용을 일으킬 가능성이 낮다는 것을 확인하였다. 아울러, 약동학 분석을 통해 생체 내 반감기가 임상적 이용에 사용할 수 있을 정도로 높음을 확인하였다 (실시예 8). 아울러, 인터페론과 비교 시 4 nM 이상의 농도에서 세포 독성을 나타내지 않는 것을 확인하여, 인터페론과 달리 부작용이 적음을 확인하였다 (실시예 11). 또한 본 발명의 hzVSF (야생형 및 변이체)가 마우스에서 EMC-D 바이러스 감염에 대한 항바이러스 효능 및 면역세포의 침윤억제와 이로 인한 랑게르한스섬의 파괴를 현저하게 저해하며, 바이러스 감염에 의한 당뇨병을 탁월하게 치료할 수 있음을 확인하였다 (실시예 12). 간염 바이러스 역시 현저하게 저해할 수 있음을 확인하였다 (실시예 13 내지 16). 인플루엔자 바이러스 감염에 대해서도 면역세포 침윤 없이, 항바이러스 효과 및 항염증 효과를 확인하였으며 (실시예 17), 다양한 바이러스에 대하여 항바이러스 효과가 있음을 확인하여 (표 15), 범용적인 항바이러스제로 사용할 수 있음을 확인하였다. 아울러, 마우스 모델에서 바이러스 감염시 염증성 사이토카인의 분비를 억제함을 확인하여 (실시예 19), 다양한 염증성 질환의 치료제로 사용할 수 있음을 확인하였다.
본 발명은 또 하나의 양태로서, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터, 상기 벡터가 도입된 세포, 상기 세포를 이용한 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편의 생산방법 및 상기 생산방법에 의해 생산된 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 제공한다.
상기 항체 및 상기 펩타이드의 결합 단편은 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명에서 제공하는 상기 항체를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터는 특별히 이에 제한되지 않으나, 포유류 세포(예를 들어, 사람, 원숭이, 토끼, 래트, 햄스터, 마우스 세포 등), 식물 세포, 효모 세포, 곤충 세포 또는 박테리아 세포(예를 들어, 대장균 등)를 포함하는 진핵 또는 원핵세포에서 상기 폴리뉴클레오티드를 복제 및/또는 발현할 수 있는 벡터가 될 수 있고, 바람직하게는 숙주세포에서 상기 뉴클레오티드가 발현될 수 있도록 적절한 프로모터에 작동 가능하도록 연결되며, 적어도 하나의 선별마커를 포함하는 벡터가 될 수 있다. 그 예로 파아지, 플라스미드, 코스미드, 미니-염색체, 바이러스 또는 레트로바이러스벡터 등에 상기 폴리뉴클레오티드가 도입된 형태가 될 수 있다.
상기 항체를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터는 상기 항체의 중쇄 또는 경쇄를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 포함하는 발현벡터 또는 중쇄 또는 경쇄를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 모두 포함하는 발현벡터일 수 있다.
본 발명에서 제공하는 상기 발현 벡터가 도입된 세포 (형질전환체)는 특별히 이에 제한되지 않으나, 상기 발현벡터가 도입되어 형질 전환된 대장균, 스트렙토미세스, 살모넬라 티피뮤리움 등의 박테리아 세포; 효모 세포; 피치아 파스토리스 등의 균류세포; 드로조필라, 스포도프테라 Sf9 세포 등의 곤충 세포; CHO(중국 햄스터 난소 세포, chinese hamster ovary cells), SP2/0(마우스 골수종), 인간 림프아구(human lymphoblastoid), COS, NSO(마우스 골수종), 293T, 보우 멜라노마 세포, HT-1080, BHK(베이비 햄스터 신장세포, baby hamster kidney cells), HEK(인간 배아신장 세포, human embryonic kidney cells), PERC.6(인간망막세포) 등의 동물 세포; 또는 식물 세포가 될 수 있다.
본 발명에서 용어, "도입"은 상기 항체를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터를 숙주세포에 전달하는 방법을 의미한다. 이와 같은 도입은 칼슘 포스페이트-DNA 공침전법, DEAE-덱스트란-매개 트랜스펙션법, 폴리브렌-매개 형질감염법, 전기충격법, 미세주사법, 리포좀 융합법, 리포펙타민 및 원형질체 융합법 등의 당 분야에 공지된 여러 방법에 의해 수행될 수 있다. 또한, 형질도입은 감염(infection)을 수단으로 하여 바이러스 입자를 사용하여 목적물을 세포 내로 전달시키는 것을 의미한다. 아울러, 유전자 밤바드먼트 등에 의해 벡터를 숙주세포 내로 도입할 수 있다. 본 발명에서 도입은 형질전환과 혼용되어 사용될 수 있다.
본 발명은 또 하나의 양태로서, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 항바이러스용 조성물을 제공한다.
상기 항체 및 상기 펩타이드의 결합 단편은 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명에서 "항바이러스"는 병원성 바이러스의 증식 또는 복제를 억제하여 바이러스 감염을 감소, 억제 또는 예방하는 효과를 의미하나, 이에 제한되지 않는다. 상기 항바이러스 활성에 의해 바이러스의 증식 또는 복제가 억제되는 "병원성 바이러스"는 이에 제한되지 않으나, 바이러스 감염에 의해 숙주 세포의 비멘틴의 일부가 숙주 세포막 외부로 노출되는 것을 특징으로 한다. 이의 예로는 동물 또는 사람에서 질병을 일으키는 바이러스로, 병원성 바이러스의 예로는 오소믹소비리데(Orthomyxoviridae) 속 바이러스, 피코르나비리데(Picorna viridae) 속 바이러스, 레트로비리데(Retroviridae) 속 바이러스, 헤르페스(Herpes) 속 바이러스, 필로비리데(Filoviridae) 속 바이러스, 코로나비리데(Coronaviridae) 속 바이러스, 헤파드나비리데(Hepadnaviridae) 속 바이러스, 플라비비리데(Flaviviridae) 속 바이러스, 부냐비리데(Bunyaviridae) 속 바이러스 등을 포함할 수 있다. 병원성 바이러스는 예를 들어 인플루엔자 바이러스, B형 및 C형 간염 바이러스, 뇌심근염 바이러스, 멩고 바이러스 (Mengovirus), 에볼라바이러스(Ebolavirus), 중증급성호흡기증후군 코로나바이러스(Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus; SARS), 중동호흡기증후군 코로나바이러스(Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus; MERS), 레오바이러스 (Reovirus), HIV (human immunodeficiency virus), HCMV (human cytomegalovirus), 또는 한탄 바이러스 등일 수 있으나 이에 제한되지 않는다. 특히, 본 발명에 따른 hzVSF는 피코르나비리데(Picornaviridae)에 속하는 Mengo 바이러스뿐 만 아니라, 피코르나비리데에 속하는 EMC 바이러스와는 유전체 구조와 생활사가 전혀 다른 오소믹소비리데(Orthomyxoviridae)에 속하는 인플루엔자 바이러스에서도 항바이러스 효과를 나타내었으며, 또한 레트로비리데(Retroviridae)에 속하는 HIV의 증식도 효과적으로 저해하는 등 범용적인 바이러스에 효과를 나타낸다 (표 15).
상기 조성물은 약학적 조성물, 의약외품 조성물, 건강식품용 조성물의 형태일 수 있다.
상기 약학적 조성물은 약학적으로 허용 가능한 담체를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명에서 용어, "약학적으로 허용 가능한 담체"란 생물체를 자극하지 않고 투여 화합물의 생물학적 활성 및 특성을 저해하지 않는 담체 또는 희석제를 말한다. 액상 용액으로 제제화되는 조성물에 있어서 허용되는 약학적 담체로는, 멸균 및 생체에 적합한 것으로서, 식염수, 멸균수, 링거액, 완충 식염수, 알부민 주사용액, 덱스트로즈 용액, 말토 덱스트린 용액, 글리세롤, 에탄올 및 이들 성분 중 1 성분 이상을 혼합하여 사용할 수 있으며, 필요에 따라 항산화제, 완충액, 정균제 등 다른 통상의 첨가제를 첨가할 수 있다. 또한, 희석제, 분산제, 계면활성제, 결합제 및 윤활제를 부가적으로 첨가하여 수용액, 현탁액, 유탁액 등과 같은 주사용 제형, 환약, 캡슐, 과립 또는 정제로 제제화할 수 있다.
상기 약학적 조성물은 경구 또는 비경구의 여러 가지 제형일 수 있다. 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 하나 이상의 화합물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 탄산칼슘, 수크로오스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한 단순한 부형제 이외에 스테아린산 마그네슘, 탈크 등과 같은 윤활제들도 사용된다. 경구투여를 위한 액상제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁용제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테로 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로젤라틴 등이 사용될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제, 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제, 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제 및 좌제로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나의 제형을 가질 수 있다.
상기 본 발명의 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여한다.
본 발명에서 용어, "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 질병의 종류, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 그리고 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다. 상기 다른 치료제는 인터페론일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 조성물은 항바이러스 작용에 의한 바이러스 감염성 질환의 예방 또는 치료를 수행하는 조성물일 수 있다.
본 발명에서 바이러스 감염성 질환은 이에 제한되지 않으나, 상기 바이러스 감염에 의해 숙주 세포의 비멘틴의 일부가 숙주 세포막 외부로 노출되는 질환을 포함할 수 있으며, 그 예로, 간염, 에이즈, 폐렴, 당뇨병뿐 아니라, 오소믹소비리데(Orthomyxoviridae) 속 바이러스, 피코르나비리데(Picorna viridae) 속 바이러스, 레트로비리데(Retroviridae) 속 바이러스, 필로비리데(Filoviridae) 속 바이러스, 코로나비리데(Coronaviridae) 속 바이러스, 헤파드나비리데(Hepadnaviridae) 속 바이러스, 플라비비리데(Flaviviridae) 속 바이러스, 부냐비리데(Bunyaviridae) 속 바이러스 헤르페스(Herpes) 속 바이러스에 의해 감염되어 발생할 수 있는 모든 질환을 포함할 수 있다.
본 발명에서 용어, "예방"이란 상기 조성물의 투여에 의해 질환의 발병을 억제하거나 지연시키는 모든 행위를 의미할 수 있으며, 상기 "치료"란 상기 조성물의 투여에 의해 질환의 증세가 호전되거나 이롭게 변경되는 모든 행위를 의미할 수 있다.
상기 조성물은 바이러스 감염 세포 특이적으로 작용하는 조성물일 수 있다.
상기 조성물은 면역세포 침윤을 억제하는 것일 수 있으며, 염증반응을 억제하는 것일 수 있다(도 45 내지 도 48). 본 발명의 조성물은 염증 유발 사이토카인인 IL-6, TNF-α, IFN-γ, CCL2 (MCP-1)을 현저하게 억제하는 것을 확인할 수 있었다 (도 49).
본 발명은 또 하나의 양태로서, 상기 항바이러스용 조성물을 이를 필요로 하는 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 바이러스 감염 질환 치료 방법일 수 있다.
상기 항바이러스용 조성물 및 바이러스 감염 질환은 상기에서 설명한 바와 같다.
상기 바이러스 감염 질환을 치료하는 방법은 항체 및 약학적으로 허용 가능한 담체를 추가로 포함하는 약학적 조성물을 바이러스 감염 질환이 발병되거나 발병 의심이 있는 개체에 투여하는 단계를 포함하는 바이러스 감염 질환을 치료하는 방법일 수 있으며, 상기 약학적으로 허용 가능한 담체는 상기에서 설명한 바와 동일하다. 상기 바이러스 감염 질환을 치료하는 방법은 바람직하게는 항체를 포함하는 조성물을 바이러스 감염 질환에 걸린 개체에 투여하는 단계를 포함하는 바이러스 감염 질환을 치료하는 방법일 수 있다.
상기 개체는 소, 돼지, 양, 닭, 개, 인간 등을 포함하는 포유동물, 조류 등을 포함하며, 본 발명의 상기 조성물의 투여에 의해 바이러스 감염 질환이 치료되는 개체는 제한 없이 포함한다.
이때, 상기 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 이때, 조성물은 액제, 산제, 에어로졸, 캡슐제, 장용피 정제 또는 캡슐제 또는 좌제의 형태로 투여할 수 있다. 투여 경로는 복강 내 투여, 정맥 내 투여, 근육 내 투여, 피하 내 투여, 내피 투여, 경구 투여, 국소 투여, 비 내 투여, 폐 내 투여, 직장 내 투여 등을 포함하지만, 이에 제한되지는 않는다. 그러나 경구 투여시, 펩타이드는 소화가 되기 때문에 경구용 조성물은 활성 약제를 코팅하거나 위에서의 분해로부터 보호되도록 제형화 되어야 한다. 또한, 제약 조성물은 활성 물질이 표적 세포로 이동할 수 있는 임의의 장치에 의해 투여될 수 있다.
본 발명은 또 하나의 양태로서, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 제공한다.
상기 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물은 약학적 조성물, 의약외품 조성물, 건강기능 식품 조성물의 형태일 수 있다.
상기 염증성 질환은 바이러스 감염에 의한 것일 수 있다.
본 발명은 또 하나의 양태로서, 상기 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 이를 필요로 하는 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 염증성 질환의 치료 방법을 제공한다.
본 발명은 또 하나의 양태로서, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편의 항바이러스 용도를 제공한다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세하게 설명하기로 한다. 이들 실시예는 단지 본 발명을 예시하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는다.
실시예 1: 신규한 인간화 항체인 VSF의 제조
실시예 1-1: chVSF (chimeric VSF )의 제조
마우스 VSF(mVSF)의 주요 기능적 부분이 단세포군 항체인 것으로 가정하고, 이와 인간면역글로불린을 유전자조작법으로 교잡 (chimerization)하여 마우스/인간 교잡 항체 (chAb)를 만들었다.
구체적으로, 교잡 항체를 만들기 위하여, 마우스 VSF의 경쇄 및 중쇄의 불변 영역 (constant region)을 인간면역항체 (κ, γ2 또는 γ4)의 불변 영역으로 대체하였다. chVSF는 pCAGGS 벡터를 주형으로 하여 발현벡터를 만들었다 (도 1). mVSF의 가변 중쇄 (mVH)(서열번호 9)는 SacI과 KpnI 제한효소 부위를 포함하여 PCR로 증폭하였다. 가변 경쇄 (mVL)(서열번호 8)는 ClaI과 XhoI 제한효소 부위를 포함하여 PCR법으로 증폭하였다. PCR에 사용된 프라이머는 표 1에 기재된 프라이머를 이용하였으며, PCR 조건은 94 ℃에서 45초, 60 ℃에서 45초, 72 ℃에서 45초로 35 사이클을 수행하고, 72 ℃에서 10분간 진행하였다.
프라이머 서열 서열번호
mVH F cgagctcatgggatggagctggatc 124
mVH R cggtacctgaggagacggtgactg 125
KpnI_delR gggcccttggtggaagctgaggagacggtgactgagg 126
mVL F catcgatatgagtgtgcccactcag 127
mVL R cctcgagtttgatttccagcttgg 128
Xho_modR agatggtgcagccaccgtgcgtttgatttccagcttggtgcc 129
사람의 중쇄(서열번호 11)는 KpnI과 SphI 제한효소 부위를 이용하였으며, 경쇄(서열번호 13)는 XhoI과 BglI제한효소를 이용하여 클로닝을 하였다. 경쇄와 중쇄를 동시에 발현시키기 위하여 IRES (internal ribosome entry site)를 SphI과 ClaI 제한효소 부위를 이용하여 경쇄와 중쇄 사이에 클로닝하였다. 선별마커는 SalI 제한효소 부위에 삽입하였다. 이와 같은 방식으로 도 2의 모식도에 개시된 바와 같은 chVSF 들을 제조하였다.
실시예 1-2: two vector 발현 시스템을 이용한 chVSF 발현
1 ㎎/㎖의 PEI (Polyethyleneimine)를 이용하여 15 ㎍의 pCAGGS-GFP를 HEK 293T 세포에 트랜스펙션하여, 트랜스펙션 정도 및 발현 수준을 확인하였다. 동일한 방법으로 상기 실시예 1-1의 chVSF를 HEK 293T 세포에 트랜스팩션한 후 6시간 후에 배지를 2% FBS를 포함하는 배지로 교체하였다. 3일 마다 세포 배양액을 모아서 0.45 ㎛의 필터를 이용하여 불순물을 제거하였다. 단백질 A 세파로우즈 비드 (nProtein A sepharose bead)를 이용하여 chVSF를 정제하였다. chVSF는 0.2 M 글라이신/염산 버퍼 (Glycine/HCl) (pH 2.5)로 용출하며, 중화 버퍼로는 1 M 트리스-Cl (Tris-Cl)버퍼 (pH 9.0)를 사용하였다. 구체적으로, 1M Tris-Cl 버퍼 (pH 8.0)를 레진 볼륨의 10배로 사용하여 레진이 균질화되게 한 후, VSF 배양액을 컬럼에 통과시켰다. 0.1 M Tris-Cl 버퍼 (pH 8.0)를 컬럼 볼륨의 5배 이상을 흘러주며 세척하였다. 용출은 0.2 M Glycine/HCl 버퍼 (pH 2.5)를 레진 볼륨의 5배로 흘러주며, 중화버퍼를 미리 넣어둔 튜브에 정제된 VSF를 수득하였다. 이 후에 정제된 VSF를 SDS-PAGE로 확인하였다.
그 결과, 도 3에 나타난 바와 같이, chVSF는 면역글로불린의 특성을 지닌 50 kDa의 중쇄와 25 kDa의 경쇄로 이루어져 있는 구조임을 확인할 수 있었다.
실시예 2: scFv (single-chain variable fragment)의 제조 및 항바이러스 효과 확인
VSF의 가변 영역을 이용하여 scFv를 제조하였다. scFv는 서열번호 150의 DNA 서열을 가지며, 상기 DNA를 E. coli 발현벡터인 pET-22b(+)에 클로닝하여 scFv를 제조하였다(도 4 및 도 5).
구체적으로 mVSF의 VH와 VL을 링커로 연결하여 scFv를 제작하고, 박테리아 발현 벡터인 pET22b(+)에 삽입한 후, IPTG를 첨가하여 발현을 유도한 뒤, Ni-NTA 컬럼을 이용하여 정제하였다(도 6).
그 다음 상기 정제된 scFv를 이용하여 항바이러스능을 확인하였다. 구체적으로 EMC-D 바이러스를 감염시킨 L929세포를 scFv, VSF 또는 항-EMCD 바이러스 항체와 함께 37 ℃에서 30시간 동안 배양하였다. 그 다음 상층액을 제거하고 CellTiter96 AQueous One Solution을 첨가한 뒤, OD450으로 측정하였다. 그 결과 VSF(5 내지 500ng), scFv(5 내지 10 ㎍) 및 항-EMCD 바이러스 항원(1:20 희석)을 처리한 군 모두에서 항바이러스 효과가 있는 것을 확인하였다(도 7).
실시예 3: chVSF의 항바이러스능 확인
상기 실시예 1에서 제조한 chVSF의 항바이러스능을 확인하기 위하여 MVIT 분석을 실시하였다.
구체적으로, 2%의 FBS (Fetal Bovine Serum)가 들어있는 DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium) 배지를 이용하여 2 X 104의 수로 96 웰 플레이트에 깔려있는 생쥐의 성상세포인 L929에 100 pfu의 EMC-D 바이러스를 1시간 동안 감염시킨 후, 4 ㎍/㎖의 VSF를 2 배수씩 희석하여 처리하였다. 48시간 후, 10%의 포르말린으로 10분간 세포를 고정시킨 후, 1%의 크리스탈 바이올릿으로 10분간 염색시켰다. 염색된 세포를 PBS로 세척한 후, 세포의 생존능을 염색정도로 평가하였다. 바이러스의 증식이 억제되었다면, 모든 세포가 살아서 균등한 층을 이루고 크리스탈 바이올렛 염색도 균일한 층으로 염색된다. 반대로 세포가 바이러스 감염에 의해 용해되면 세포들이 떨어져서 염색층이 거의 존재하지 않는다.
그 결과, 도 8에서 나타낸 바와 같이 본 발명의 chVSF는 EMC-D 바이러스에 대한 항바이러스 효능을 나타내었다. 이와 같은 결과는 기존의 마우스 VSF 뿐 아니라, 마우스 VSF를 단세포군항체로 가정하여 이를 인간 면역항체의 불변 영역과 교잡한 본원발명의 chVSF 역시 항바이러스 용도로 사용될 수 있음을 뒷받침하는 것이다.
실시예 4: 인간화 항체인 VSF의 제조
상기 실시예 1 및 3을 바탕으로 chVSF를 이용하여 인간화 항체인 hzVSF (Humanized VSF)를 제조하였다.
진핵 세포를 사용하여 두 가지 종류의 재조합 단백질을 발현시키고자 할 때 사용하는 발현 시스템 중 하나인 two gene expression vector에 해당하는 pdCMV-dhfr-vector (도 9)를 이용하였다. 상기 벡터는 두 가지 종류의 유전자를 하나의 벡터 내에서 서로 다른 transcription unit으로 구성하여 각각 자체의 프로모터와 polyA signal을 사용하여 발현하는 것으로, 강력한 포유류 발현 프로모터인 CMV (cytomegalovirus) 프로모터를 이용하는 벡터 시스템이다. 이를 이용하여, 도 10의 모식도와 같은 hzVSF를 제조하였다.
이에, 상기 hzVSF의 중쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 서열번호 10으로, 중쇄 영역을 서열번호 11로, 경쇄 가변 영역의 아미노산 서열을 서열번호 12로, 경쇄 영역을 서열번호 13으로 표시하였다.
1 ㎎/㎖의 PEI (Polyethyleneimine)를 이용하여 15 ㎍의 pCAGGS-GFP를 HEK 293T 세포에 트랜스펙션하여, 트랜스펙션 정도 및 발현 수준을 확인하였다. 동일한 방법으로 상기 chVSF 및 hzVSF를 HEK 293T 세포에 트랜스팩션한 후 6시간 후에 배지를 2% FBS를 포함하는 배지로 교체하였다. 3일 마다 세포 배양액을 모아서 0.45 ㎛의 필터를 이용하여 불순물을 제거하였다. 단백질 A 세파로우즈 비드 (nProtein A sepharose bead)를 이용하여 chVSF 및 hzVSF를 정제하였다. chVSF 및 hzVSF는 0.2 M 글라이신/염산 버퍼 (Glycine/HCl) (pH 2.5)로 용출하며, 중화 버퍼로는 1 M 트리스-Cl (Tris-Cl)버퍼 (pH 9.0)를 사용하였다. 구체적으로, 1 M Tris-Cl 버퍼 (pH 8.0)를 레진 볼륨의 10배로 사용하여 레진이 균질화되게 한 후, VSF 배양액을 컬럼에 통과시켰다. 0.1 M Tris-Cl 버퍼 (pH 8.0)을 컬럼 볼륨의 5배 이상을 흘러주며 세척하였다. 용출은 0.2 M Glycine/HCl 버퍼 (pH 2.5)를 레진 볼륨의 5배로 흘러주며, 중화버퍼를 미리 넣어둔 튜브에 정제된 VSF를 수득하였다. 이 후에 정제된 VSF를 SDS-PAGE로 확인하였으며, 활성은 MVIT assay를 통해 확인하였다.
실험에 사용된 VSF를 표시하면 다음 표 2와 같다.
VSF 종류 발현 세포 mg/ℓ (harvested sup.)
mVSF 마우스 하이브리도마 4.14
*rmVSF HEK293T 5.71
chVSFγ2 HEK293T 5.15
chVSFγ4 HEK293T 7.32
hzVSFγ2 HEK293T 5.01
hzVSFγ4 HEK293T 9.38
*rmVSF: recombinant of mouse VSF
그 결과, 도 11에서 확인할 수 있듯이, chVSFγ2 및 chVSFγ4, hzVSFγ2 및 hzVSFγ4는 면역글로불린의 특성을 지닌 50 kDa의 중쇄와 25 kDa의 경쇄로 이루어져 있는 것을 확인하였다.
또한, 도 12에서 확인할 수 있듯이, hzVSF 역시 항바이러스 효과가 있음을 확인할 수 있었다. 이와 같은 결과는 인간화 항체인 hzVSF 역시 VSF와 유사하게 항바이러스 효과가 있음을 시사하는 것이다.
실시예 5: 인간화 항체인 VSF의 물성 확인
상기 실시예 4에서 제조한 hzVSF의 물성을 다음과 같이 확인하였다.
실시예 5-1: 기본적인 분자량 패턴 및 순도 확인
환원 및 비환원 SDS-PAGE를 이용하여 분자량 패턴 및 순도를 확인하고자 하였다. 구체적으로, hzVSF_v13을 SDS-PAGE로 분자량에 따라 코마시 염색법 (Coomassie Staining)으로 염색하여 hzVSF_v13의 분자량 및 순도를 확인하였다.
그 결과, 도 13에 나타낸 바와 같이, 1 레인은 비환원 젤로서, IgG 항체 (150 kDa)에서 예상되는 위치에 주요 밴드가 관찰되었고, 2 레인은 환원 젤로 IgG 항체의 중쇄 (약 50 kDa)와 경쇄 (약 25 kDa)에서 해당되는 위치에 밴드가 관찰하여, hzVSF_v13가 일반적인 IgG 항체 패턴을 보이는 것을 확인할 수 있었다.
실시예 5-2: 분자량, 당 패턴 및 크기 변이 등 확인
hzVSF_v13의 분자량, 당 패턴, 크기 변이 등을 확인하기 위하여 액체크로마토그라피/질량분석 (Liquid Chromtography/Mass Spectrometry)을 수행하였다. 소량의 hzVSF_v13을 HPLC에 주입하여, 피크를 관찰하였다.
그 결과, hzVSF_v13는 면역글로불린 G (IgG)의 특성을 나타내는 것을 확인하였다(도 14). Intact Mass에서는 전체 분자량 (약 140 kDa)이 관찰되었고, G0/G0, G0F/G1, G1/G1 등 일반적인 당화된 IgG에서 해당하는 피크의 패턴이 관찰되었다. 또한, 당 제거 후의 중쇄 (약 49 kDa) 및 경쇄 (약 23 kDa)이 관찰되었다. PNGase F 처리로 당쇄가 제거된 중쇄와 PNGase F를 처리하지 않은 중쇄의 분자량을 종합할 때 일반적인 IgG의 glycan 패턴을 확인할 수 있었다 (G0F, G1F, G2F).
실시예 5-3: 순도 및 응집도 확인
hzVSF_v13의 순도와 응집도를 확인하기 위하여 SEC-HPLC를 이용하였다.
SEC-HPLC 조건은 다음과 같다.
- HPLC system: Dionex Ultimate 3000
- Column: Tosoh TSKgel G3000 SWxl
- Mobile phase: phosphate buffer, 0.5 ml/min
- Injection Volume: 10 ㎕
그 결과, 전형적인 IgG 항체의 단량체에 해당하는 위치 (정체시간 약 16분에서) 92.44%의 주요 피크가 관찰되었고, 이량체 위치 (정체시간 약 13분)에서 약 6.84%의 피크가 관찰되었다(도 15).
실시예 5-4: pI 및 charge heterogeneity 확인
hzVSF_v13의 등전하점을 알아보기 위하여, pH 3에서 pH 10까지 구배를 나타내는 젤에서 러닝을 하였다.
그 결과, 도 16에서 나타낸 바와 같이, hzVS_v13F의 pI는 7.7로 분석되었고, 주요 밴드 외에 산성 및 염기성 isoform (acidic/basic isoform)도 관찰되었다. 이는 IgG 항체에서 일반적으로 관찰되는 이성체 [isomer (예를 들어, C-말단 영역의 deamination)]에 해당된다.
상기와 같은 결과들은, 본 발명의 인간화 항체인 hzVSF_v13 들이 IgG 항체와 유사한 물성을 나타내는 것을 뒷받침하는 것이다.
실시예 6: 바이러스 억제 효능은 유지 또는 증가되면서 면역원성이 감소된 인간화 항체인 hzVSF의 변이체 제조
실시예 6-1: hzVSF alternative의 제조
상기 실시예 4에서 제조한 hzVSF를 기반으로, 세 개의 alternative를 제조하였다. 각 alternative의 활성은 wild-type의 활성과 비슷하거나 떨어졌다 (0.5 ≤≤ 1 U < 1 mg/ml)(표 3 및 표 4). 각각의 alternative의 CDR 1 내지 3의 아미노산 서열을 표 3에 각각의 변이체의 FR1 내지 FR4의 아미노산 서열을 표 4에 기재하였다.
항체 CDR1 CDR2 CDR3
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항체 FR1 FR2 FR3 FR4
hzVSF_WT 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_a1 중쇄 서열번호 151 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_a2 중쇄 서열번호 20 서열번호 152 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_a3 중쇄 서열번호 151 서열번호 152 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
실시예 6-2: hzVSF 변이체의 제조
상기 실시예 4에서 제조한 hzVSF를 기반으로, 실제 생체 내에서 활용하기 위한 면역원성 감소 및 affinity maturation을 통한 hzVSF 변이체를 제조하였다. 그 결과, 13개의 변이체를 제조하였다 (표 5 및 표 6). 각각의 변이체의 CDR 1 내지 3의 아미노산 서열을 표 5에 각각의 변이체의 FR1 내지 FR4의 아미노산 서열을 표 6에 기재하였다.
항체 CDR1 CDR2 CDR3
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hzVSF_var11 중쇄 GYNMN(서열번호 2) NIDPYYGS D TYAQKFQG(서열번호 14) ETGTRAMDY(서열번호 4)
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hzVSF_var13 중쇄 GYNMN(서열번호 2) NIDPYYGS D TYAQKFQG(서열번호 14) ETGTRAMDY(서열번호 4)
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항체 FR1 FR2 FR3 FR4
hzVSF_WT 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
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hzVSF_var1 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
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hzVSF_var2 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_var3 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_var4 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_var5 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
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hzVSF_var6 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
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hzVSF_var7 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
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hzVSF_var8 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
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hzVSF_var9 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
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hzVSF_var10 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
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hzVSF_var11 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
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hzVSF_var12 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 28(K74T, I76A) 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
hzVSF_var13 중쇄 서열번호 20 서열번호 21 서열번호 22 서열번호 23
경쇄 서열번호 24 서열번호 25 서열번호 26 서열번호 27
상기에서 제조한 13개의 변이체는 모두 항바이러스능 및 항염증능이 유지 또는 증가되면서, 야생형에 비해 면역원성이 감소된 것을 확인할 수 있었다.
상기 변이체 중 면역원성이 가장 낮은 hzVSF_var12는 hzVSF 야생형과 동일하게 1 unit이 500 ng에서 항바이러스 활성을 나타냈으며, 항바이러스능이 높으면서도 면역원성이 상대적으로 낮은 hzVSF_var13의 경우에는, 250 ng/unit의 항바이러스 활성을 나타냈다.
실시예 6-3: hzVSF 야생형 및 이의 변이체의 epitope count 확인
hzVSF 야생형과 이의 면역원성을 감소시킨 상기 변이체 중 대표적인 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 epitope count와 현재 항체의약품으로 제약시장에서 블록버스터 의약품인 4종의 epitope count를 비교한 결과, 표 7에 나타낸 바와 같이, 각 HLA class Ⅱ에서 상대적인 면역원성 가능성을 확인할 수 있었다.
단백질 종류 DRB1 DRB 3/4/5 DQ DP Total
hzVSF w 31 17 1 3 52
hzVSF_var1 30 18 1 3 52
hzVSF_var2 30 17 0 3 50
hzVSF_var3 30 16 0 3 49
hzVSF_var4 28 16 0 3 47
hzVSF_var5 30 16 1 3 50
hzVSF_var6 29 16 1 3 49
hzVSF_var7 28 15 1 3 47
hzVSF_var8 27 14 1 3 45
hzVSF_var9 27 14 0 3 44
hzVSF_var10 26 13 0 3 42
hzVSF_var11 25 14 0 3 42
hzVSF_var12 24 13 0 3 40
hzVSF_var13 29 17 0 3 49
Humira (human) 25 12 4 1 42
Remicade (chimeric) 74 37 3 1 115
Rituxan (chimeric) 65 33 9 3 110
Herceptin (humanized) 40 20 3 1 64
상기 표 7에서 total 값이 높을수록 세계전체인구에서 HLA class Ⅱ에 의한 부작용의 가능성이 높음을 의미한다. 상기 결과를 통해 면역원성이 감소된 본 발명의 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 epitope count가 전 세계적으로 시판되고 있는 4종의 의약품 중 면역원성이 가장 낮은 Humira와 비슷한 것을 확인할 수 있으며, 이와 같은 결과는 본 발명의 인간화 항체들이 항바이러스제로 사용 시 야기될 수 있는 중대한 부작용이 매우 낮을 것임을 시사하는 것으로, 안전한 항바이러스 또는 염증용 의약품으로서의 안정성을 뒷받침하는 것이다.
또한, 각 변이체의 활성은 var1부터 var12까지는 wild-type과 유사한 활성(0.5 mg/U)을 보였으며, var13은 wild-type보다 높은 활성을 보였다.
실시예 6-4: hzVSF 변이체의 T 세포 분석 확인
hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 면역원성을 평가하기 위하여 51명의 건강한 기증자의 혈액을 이용하여, Lonza의 in vitro T 세포 분석으로 본 물질이 T 세포의 증식에 영향을 미치는지를 확인하였다. 각 기증자의 전체 말초혈액 단핵구(Peripheral Blood Mononuclear Cell; PBMC)에 hzVSF_var12, hzVSF_var13 또는 KLH(Keyhole limpet hemocyanin)를 처리한 후, 7일간 배양하였다. KLH는 산소를 운반하는 기능을 하는 메탈로단백질(metalloprotein)로서 항체 생산시 캐리어 단백질로 이용되며, 효과적으로 면역반응을 일으키기 때문에 양성 대조군으로 사용하였다. 이 후 CD3+CD4+Edu+로 염색되는 T 세포의 비율(%)을 측정하였다. 그 결과, KLH는 45 명의 혈액 기증자에서 T 세포의 증식이 일어나 88 %가 반응하였으나, hzVSF_var12 또는 hzVSF_var13에 반응하여 T 세포의 증식을 유도한 개체는 각각 3개체로, 5.8%만이 본 물질에 반응하였다(도 17).
한편, 대조군으로 7일간 배양한 PBMC를 이용하여 KLH, hzVSF_v12 또는 hzVSF_v13에 의해 유도된 T 세포 증식의 자극지수(stimulation index; SI)를 계산하였다. SI값이 2보다 크면 사람에게 적용하였을 때 면역원성이 클 것으로 예상되고, SI 값이 0.5보다 작으면 오히려 T 세포의 증식을 억제하는 것으로 예상된다. 그 결과 hzVSF_v12 및 hzVSF_v13은 1.12 및 1.03의 낮은 값의 SI 값으로, 대부분의 개체에서 0.6 이상 2 이하의 SI 값을 나타내는 것을 확인하였다. 반면에 양성 대조군으로 사용된 KLH는 3.91의 높은 SI 값을 보였다(도 18, 도 19, 및 표 8).
Product(Antigen) Mean SI p-value
hzVSF_var12 1.12 0.008
hzVSF_var13 1.05 0.3229
KLH 3.91 <0.0001
이러한 결과로 hzVSF_v12 및 hzVSF_v13은 실제로 바이러스 질환에 걸린 환자에게 투여 시 면역원성이 적을 것으로 보이며, 이에 따른 부작용이 낮을 것으로 예상된다.
실시예 7: hzVSF 및 이의 변이체의 결합 에피토프 확인
상기 실시예에서 제조한 hzVSF 및 이의 변이체들이 결합하는 펩타이드를 동정하고자 하였다.
그 결과, 비멘틴 (vimentin)의 아미노산 142번 내지 294번의 분리된 서열번호 1의 펩타이드에 결합하는 것을 확인하였다 (도 54 내지 도 58).
실시예 8: hzVSF 변이체들의 물성 및 약동학 확인
상기 실시예 6에서 제조한 hzVSF 변이체들의 물성 및 약동학을 확인하기 위하여, 대표적인 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13을 대상으로 실험을 수행하였다.
실시예 8-1: hzVSF 변이체의 분자량 패턴 및 순도 확인
hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 분자량 패턴 및 순도를 확인하기 위하여 SDS-PAGE를 이용하였다. 환원된 샘플은 NuPage 4X LDS 샘플 버퍼 (Invitrogen, NP0007)와 NuPage 10X 샘플 환원제 (Invitrogen, NP0009)를 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13와 혼합한 후, 70 ℃에서 10분간 가열하여 준비하였다. 비환원 샘플은 환원제 첨가 및 가열과정을 생략하여 준비하였다. 각각 10 ㎕의 1 ㎎/㎖의 대조군 항체, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13을 4-12%의 SDS-PAGE에서 전기영동한 후, 젤을 InstantBlue (TripleRed, ISB01L)으로 염색하여, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 순도를 확인하였다.
그 결과, 도 20에 나타낸 바와 같이, 비환원 샘플인 레인 2 및 4에서는 IgG 항체 (약 150 kDa)에서 예상이 되는 위치에 주요 밴드가 관찰되었고, 환원 샘플인 레인 3 및 5는 IgG 항체의 중쇄 (약 50 kDa)와 경쇄 (약 25 kDa)에서 해당되는 위치에 밴드가 관찰됨으로, hzVSF의 변이체들 역시 hzVSF와 같이 일반적인 IgG 항체 패턴을 보임을 확인하였다. 또한 대조군으로 IgG4를 사용하였을 때 비환원 샘플인 레인 6 및 환원 샘플인 레인 7에서 확인되는 패턴과 동일하였다. 또한 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13 모두 좋은 순도를 보이는 것을 확인할 수 있었다.
또한, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 순도와 응집도를 확인하기 위하여, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13를 Zorbax GF-250 ㎛ 9.2 mm ID X 25 cm 컬럼 (Agilent)을 이용하여, Agilent 1200 시리즈의 HPLC(High-performance liquid chromatography)를 이용하여 SE (Size Exclusion)-HPLC로 분석하였다. HPLC에 주입하기 전에 1 ㎎/㎖ 농도의 샘플을 0.2 ㎛ 필터로 여과하여 불순물을 제거하였다. 각각 100 ㎕의 샘플을 주입하여 15분간 1 ㎖/min으로 HPLC를 작동하였다. Chemstation 소프트웨어를 이용하여 분석하였다.
그 결과, 전형적인 IgG 항체의 단량체에 해당하는 위치 (정체시간 약 8.65분)에서 주요 피크를 확인하였으며, hzVSF_var12 및 hzVSF_var13의 순도가 95% 이상임을 확인하였다(도 21). 이량체 위치 (정체 시간 약 7.89-7.93분)에서 약 3.72%와 4.43%의 피크가 관찰되어, SDS-PAGE 결과와 동일하게 IgG 항체와 동일한 형태를 나타냄을 확인할 수 있었다.
실시예 8-2: hzVSF 변이체의 약동학 ( pharmacokineics ) 분석
마우스에 hzVSF_var13 투약 후에 약물의 생체 내 이행, 즉 혈중 농도, 소실 반감기, 대사 속도 등을 정량적으로 예측함으로써 hzVSF_var13의 체내 적정 투여량, 투여간격 및 투여 제형을 결정함으로써 임상시험 시 참고 할 객관적 지표를 얻고자 다음의 실험을 수행하였다.
대조군으로는 6.25 ㎍ (0.31 ㎎/kg)의 사람 면역글로불린 G (Human IgG, polyclonal)을, 실험군으로는 6.25 ㎍ (25 U; 0.31 ㎎/kg), 62.5 ㎍ (250 U; 3.10 ㎎/kg), 및 625 ㎍ (2500 U; 31.0 ㎎/kg)의 hzVSF_var13을 마우스 꼬리 정맥에 주입하였다. 주입 후, 1, 2, 4, 8, 14, 21, 28, 35일에 마우스로부터 채혈 후 혈청 (serum)을 분리한 후 ELISA법을 이용하여 hzVSF_var13의 혈중농도를 측정하였다.
ELISA는 플레이트 상에 사람의 감마 특이 면역글로불린 (anti-human IgG (γ specific))으로 37 ℃에서 2시간이나 4 ℃에서 하룻밤 배양으로 고정시킨 후, 3% BSA(Bovine Serum Albumin)으로 코팅이 되지 않은 부분을 차단하기 위해서 37 ℃에서 2시간 인큐베이션시켰다. 마우스로부터 채혈한 혈청을 37 ℃에서 1시간 반응시킨 후 HRP (Hoseradish peroxidase)가 붙어있는 사람의 카파 특이 면역글로불린 (anti-human IgG (κ specific))으로 37 ℃에서 30분 반응시켰다. 기질로 TMB 용액을 이용하여 암실에서 실내온도 9분 30초간 배양한 후, 450 nm의 파장에서 OD 값을 측정하여 hzVSF_var13의 혈중량을 측정하였다. 마우스에 투여한 hzVSF_var13의 각 농도별로 단회 투여했을 때 PK 파라미터를 표 9 및 도 22의 그래프에 표시하였다.
Sham control(IgG 0.31 mg/kg) hzVSF_var13(0.31 mg/kg) hzVSF_var13(3.10 mg/kg) hzVSF_var13(31.0 mg/kg)
Female
N 6 6 6 6
Cmax (㎍/㎖) 5.5 ± 0.1 5.5 ±0.2 57.2 ± 1.0 607.2 ± 22.2
AUC(㎍·day/㎖) 178.1 ±53.9 113.0 ± 17.8 948.3 ± 296.7 8686.9 ± 2958.8
t1/2(days) 20.1 ± 2.9 13.4 ± 2.4 10.8 ± 3.8 10.2 ± 3.0
CL(㎖/day/kg) 1.8 ± 0.4 2.8 ± 0.4 3.5 ± 1.1 4.0 ± 1.5
Male
N 5 5 5 5
Cmax (㎍/㎖) 5.5 ± 0.2 5.2 ± 0.3 54.6 ± 1.4 563.0 ± 8.2
AUC(㎍·day/㎖) 121.8 ± 15.3 78.8 ± 20.8 798.1 ± 274.5 6939.9 ± 2311.8
t1/2(days) 16.6 ± 2.4 10.1 ± 3.1 9.0 ± 4.0 8.9 ± 3.7
CL(㎖/day/kg) 2.6± 0.3 4.1 ± 0.8 4.2 ± 1.0 4.9 ± 1.2
그 결과, hzVSF_var13의 25 U 용량으로 단일 투여한 경우, 동일용량을 투여한 Sham control (IgG)과 비교해서 혈중 농도 추이가 동일하게 감소하는 것으로 나타났다. 최고 농도 (Cmax) 및 혈중 시간 농도 곡선하 면적 (area under the concentration curve; AUC)는 투여량이 증가함에 따라 상승하여 용량비례성을 확인할 수 있었다. hzVSF_var13의 25 U의 생체내 반감기 (t1/ 2)는 수컷 10일, 암컷 13일로 sham control (수컷 16일, 암컷 20일)에 비해 다소 낮게 나타났으며 투여용량이 증가함에 따라 생체 반감기는 다소 감소하는 경향이 있음을 확인할 수 있었다. 수컷에 비교해서 암컷에서 Cmax, AUC, 생체내 반감기 (t1/2), 생체내 전신 클리어런스값 (CLt)이 각 투여 농도에서 모두 높게 나타났다. 투여 35일 후 모든 마우스는 부검을 실시하여 장기중량측정, 조직병리검사, 면역독성실험, 중화능 실험을 수행하여, hzVSF_var13이 체내 미치는 독성 여부를 조사하였으며, 어떤 부작용도 발견되지 않았다.
상기와 같은 결과는 본 발명의 hzVSF 및 이의 변이체 등이 생체 내 반감기가 다른 인간화 항체와 유사하며 임상적 이용에 문제가 없다는 것을 뒷받침하는 것이다.
실시예 9: hzVSF 변이체의 바이러스 억제능 확인
마우스세포인 L929세포에 EMC-D 바이러스를 감염시키고, hzVSF 야생형 및 hzVSF 변이체의 대표적인 변이체인 hzVSF_var12 및 hzVSF_var13을 처리하여, 실시예 2의 MVIT 법으로 바이러스억제능 확인하였다.
그 결과, 도 23에서 나타낸 바와 같이, hzVSF 야생형은 0.5 ㎍/㎖의 농도에서 100% 항바이러스 효과를 나타냈으며, hzVSF_var12는 0.2 ㎍/㎖, hzVSF_var13은 0.1 ㎍/㎖의 농도에서 100% 항바이러스 효과를 나타내는 것을 확인하였다.
이에 따라 L929 세포에 EMC-D 바이러스를 감염시키고 동시에 VSF를 처리하였을 때 100% 항바이러스 효과를 나타내는 VSF의 ml내에 들어 있는 최소양을 생물학적 활성(biological activity) 1 unit으로 하였다.
이에 각 VSF들의 생물학적 활성을 표 10에 나타냈다.
VSF 종류 Biological activity (1 unit) MW (kDa)
mVSF 0.09 ㎍ 163
hzVSF_wt 0.5 ㎍ 147
hzVSF_var12 0.2 ㎍ 147
hzVSF_var13 0.1 ㎍ 147
상기와 같은 결과들은 인간단세포군항체화, 면역원성 감소 및 affinity maturation을 수행하여 새롭게 제조한 hzVSF 변이체들 역시 mVSF보다는 역가가 떨어지나 hzVSF_wt 보다 우수한 효과로 부작용이 거의 없게 항바이러스 효과 및 항염증 효과를 나타낼 수 있음을 시사하는 것이다.
실시예 10: hzVSF 의 친화력 확인
hzVSF의 수용체에 대한 친화력(Affinity)은 다음과 같은 방법으로 측정하였다.
L929 세포를 6 X 105으로 플레이팅한 후, 2 MOI의 EMC-D 바이러스를 0, 2, 6, 10시간 동안 감염시켰다. 4 unit의 리간드 (mVSF, hzVSF_wt 및 hzVSF v13)를 첨가한 후, 1 시간 동안 배양하고 나서 배양액을 모아서 Ka 값을 구했다. 첨가한 리간드의 양과 반응 후 회수된 리간드 양 사이의 차이가 수용체와 결합한 양이고, 이를 통하여 친화도 Ka (affinity Ka) 및 해리상수 Kd (dissociation constant)를 구하였다 (표 11).
VSF 종류 Affinity constant (Ka) Dissociation constant (Kd)
mVSF 2.1 x 1010 L/mol 4.7 x 10-11 M
hzVSF wt 8.2 x 109 L/mol 1.2 x 10-10 M
hzVSF v13 1.7 x 1010 L/mol 5.9 x 10-11 M
그 결과, 바이오 제제의 후보물질에 상응하는 Ka 값 (1 X 109) 이상을 나타내는 것을 확인하여, 바이오 제제로서 hzVSF 및 이의 변이체들 역시 수용체에 대한 결합력이 높음을 확인하였다.
실시예 11: 인간세포에서 hIFN -α 및 hzVSF _wt의 항세포 작용 확인
사람의 섬유모세포인 WI-38 세포에 EMC-D를 감염시킨 후, 서로 다른 농도의 사람의 인터페론과 hzVSF_wt를 처리하여, 각각의 항바이러스능과 세포 생존력을 MTS 방법으로 측정하였다.
자세히는 세포를 96웰 평판에 넣은 후 24시간 동안 바닥에 붙도록 배양하였다. 100 pfu의 EMC-D 바이러스를 감염시킨 후, 인터페론 또는 hzVSF를 처리하였다. 48시간을 배양한 후에 MTS[3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-5- (3-carboxymethoxyphenyl)-2-(4-sulfophenyl)-2H-tetrazolium]를 처리하였다. 다시 2 내지 3시간을 배양한 후에 490 nm에서 흡광도를 측정하여 세포의 생존력을 확인하였다. 도 24에서 보이는 것과 같이, 사람의 인터페론을 처리한 세포에서는 hzVSF_wt 처리세포에 비하여 적은 양으로도 90% 정도의 생존율을 보이지만, 오히려 4 nM 이상의 고농도를 처리하면 세포독성을 나타냄을 확인하였다. 반면에 hzVSF_wt은 약 4 nM에서 100%의 생존율을 나타냈으며, 4 nM 이상의 농도에서도 세포 독성을 보이지 않았다.
상기 결과로부터, hzVSF는 인터페론과는 달리 부작용이 적을 것으로 예측할 수 있다.
실시예 12: 바이러스성 당뇨병에서 hzVSF _wt의 염증세포 침윤 억제 및 항 염증 확인
마우스에서 hzVSF 약물 농도 별 당뇨병에 대한 효능을 조사하기 위하여, 5 주령의 수컷 DBA/2N 마우스에 100 pfu의 EMC-D 바이러스를 복강주사로 감염시켰다. 이 후에, 2, 4, 16 unit의 hzVSF_wt를 꼬리 정맥으로 주사한 후, 3일째부터 혈당과 뇨중 당의 정도를 조사하였다. 또한, 감염 후 3일째와 7일째 마우스를 희생시켜 췌장을 적출하여 조직학적인 조사를 실시하였다.
그 결과, 도 25에 나타낸 바와 같이, 마우스에 EMC-D 바이러스를 감염시킨 후 췌장을 적출하여 Hematotoxylin & Eosin 염색한 경우, 바이러스만 감염시킨 군 (virus control)에서는 염증세포가 침윤되었거나 islet이 파괴되어 크기가 작아진 반면에, hzVSF_wt를 4 unit 이상 투여한 군 (virus + hzVSF)에서는 염증세포의 침윤이 보이지 않고, islet도 정상이었다. 따라서 hzVSF_wt가 EMC-D의 증식을 억제하고 염증세포의 침윤을 막아 islet이 파괴되지 않은 것으로 사료 된다.
또한 혈당을 검출한 결과, hzVSF_wt를 4 unit 이상 투여한 군에서는 당뇨병이 발병하지 않았고, 혈당수준은 200 mg/dL 미만으로 정상 마우스의 범위에 해당되었다. 뇨에서도 8 unit 이상 투여한 군에서는 urine glucose가 전혀 검출되지 않았다 (표 12 내지 표 14).
바이러스성 당뇨병에서 hzVSF_wt 약물 농도별 당뇨병 발병률을 표 12에, hzVSF_wt 약물 농도별 혈액 내 글루코스 수준을 표 13에 hzVSF_wt 약물 농도별 unrine 글루코스 수준을 표 14에 나타냈다.
Group post-infection 당뇨병 발병률
3 day 4 day 5 day 6 day 7 day
virus control - 4/4 4/4 4/4 4/4 100 %
2 unit/mouse - - - 4/4 4/4 100 %
4 unit/mouse - - - - - 0 %
8 unit/mouse - - - - - 0 %
16 unit/mouse - - - - - 0 %
※ 혈당 300 mg/dL 이상, urine glucose가 + 이상이면 당뇨병으로 간주함
Group post-infection
3 day 4 day 5 day 6 day 7 day
virus control 157 ± 25 541 ± 84 540 ± 84 526 ± 91 529 ± 100
2 unit/mouse 162 ± 24 157 ± 23 186 ± 53 484 ± 21 505 ± 26
4 unit/mouse 149 ± 42 148 ± 6 135 ± 11 145 ± 8 122 ± 16
8 unit/mouse 171 ± 42 148 ± 6 135 ± 11 145 ± 8 122 ± 16
16 unit/mouse 163 ± 21 160 ± 4 144 ± 9 139 ± 8 157 ± 22
※ 혈당 300 mg/dL 이상일 때 당뇨병 발병 마우스로 간주함
Group post-infection
3 day 4 day 5 day 6 day 7 day
virus control - ++++ ++++ ++++ ++++
2 unit/mouse - - - +++ +++
4 unit/mouse - - - - -
8 unit/mouse - - - - -
16 unit/mouse - - - - -
상기 결과들은 본 발명의 hzVSF 및 이의 다양한 변이체들은 마우스에서 EMC-D 바이러스감염에 대한 항바이러스 효능 및 면역세포의 침윤 억제와 이로 인한 랑게르한스섬 (islet)의 파괴를 현저하게 저해하였으며, 바이러스의 감염에 의해 유발되는 당뇨병을 현저하게 치료할 수 있는 것을 알 수 있었다. 즉, 면역세포의 침윤을 유도하지 않고 항바이러스 효과를 나타낼 뿐 아니라, 바이러스성 당뇨병에 대한 치료 가능성으로 인해 다양한 염증성 질환의 치료제로 사용될 수 있음을 시사하는 것이다.
실시예 13: mVSF의 항- HBV 효과 확인
mVSF의 사람 B형 간염바이러스 (Hepatitis B virus; HBV)에 대한 항바이러스 효과를 확인하기 위하여, HBV를 발현하는 사람의 간암 세포인 HepG2.2.15 세포를 이용하였다.
HepG 2.2.15 세포를 플레이트에 붙인 후에 mVSF를 처리하고, 3일 마다 세포에서 배양액으로 증식되어져 나오는 HBV의 표면항원 (HBsAg) 양을 ELISA로 정량하였다. 이를 세포당 바이러스 양으로 환산하였다. 이와 동시에 세포의 수를 세어, 상대적인 세포당 바이러스의 양을 측정하였다.
그 결과, mVSF의 처리는 HBsAg의 양을 확연하게 감소시키며, 이러한 결과로 mVSF가 항-HBV 효과가 있다는 것을 알 수 있었다 (도 26). 이와 같은 결과는 본 발명의 hzVSF 및 이의 변이체들이 HBV 바이러스와 같은 간염 바이러스 역시 효과적으로 억제하는 것으로 다양한 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 나타내는 것을 뒷받침 하는 것이며, 또한 9일 동안 mVSF를 처리한 경우 바이러스가 세포당 80% 이상 감소하여 실제 사람에서는 추가적으로 염증을 억제할 것이므로 임상증상의 치료에 특별히 효과가 있을 것을 시사한다.
실시예 14: 바이러스 감염 세포에서 VSF 수용체의 발현 양상 확인
먼저, 바이러스 감염 세포에서 VSF 수용체가 발현되는지를 확인하기 위하여, B형 간염에 걸린 환자의 간조직(B형 간염에 의해 간암으로 진행되었으나 암이 없는 부분)과 C형 간염에 걸린 환자의 간조직(C형 간염에 의해 간암으로 진행되었으나 암이 없는 부분)을 mVSF 항체로 염색하였다. 대조군으로는 바이러스에 감염되지 않은 간조직(암이 없는 부분)을 사용하였다. 그 결과 HBV와 HCV가 감염된 환자로부터 얻은 간조직에서는 VSF 수용체가 발현되었지만, 대조 조직에서는 발현이 되지 않았으며, 이는 바이러스 감염 특이적으로 VSF의 수용체가 발현되는 것을 의미한다. 이와 같은 결과는 다른 환자로부터 유래된 간 조직에서 반복 실험을 한 경우에도 동일한 양상을 보였다(도 27 및 도 28).
다음으로 바이러스 감염에 따른 VSF 수용체의 발현 시기를 확인하기 위하여, H1N1 인플루엔자 바이러스를 MDCK 세포주에 감염시킨 후, 바이러스 복제와 VSF 수용체의 발현을 형광 염색을 이용하여 관찰하였다. 그 결과, 인플루엔자 바이러스 감염 후 시간에 따라 바이러스의 복제가 일어나며, 이에 따라 VSF 수용체의 발현도 증가하는 것을 확인할 수 있었다(도 29). 이러한 결과로 VSF 수용체는 바이러스 감염에 의하여 유도되어 짐을 알 수 있었다.
또한, 사람의 WI-38 섬유아세포에 EMC-D 바이러스를 감염시킨 후 VSF 수용체의 발현과 VSF의 항바이러스 효능을 확인하였다(도 30). 도 30의 좌측은 EMC-D 감염에 따른 VSF 수용체의 발현을 확인한 것이며, 우측은 hzVSF_wt 처리에 따른 항-EMC-D 효과 및 VSF 수용체의 발현을 나타낸 것이다. 상기 결과를 통하여 VSF가 EMC-D 바이러스 감염에 대해서도 항바이러스 효과 및 감염 특이적으로 수용체를 발현시키는 것을 확인할 수 있었다.
결론적으로 바이러스가 감염된 세포는 세포에 따라 시간의 차이는 있으나 VSF 수용체를 발현하며, VSF의 처리는 수용체의 발현에는 영향을 미치지 않지만 항바이러스 효과를 보이는 것을 알 수 있었다.
실시예 15: B형 간염 바이러스에 대한 hzVSF의 항바이러스 효과 확인
사람 B형 간염 바이러스 (Hepatitis C virus; HBV)에 대한 hzVSF의 효능을 조사하기 위해, 대표적인 변이체인 hzVSF_var13으로 다음과 같은 실험을 수행하였다.
실시예 15-1: cccDNA (covalently closed circular DNA) 분석
HBV가 감염된 HepG2.2.15 세포주에 hzVSF_var13 및 HBV 약물 (lamivudine; Lami)을 각 용량에 따라 처리하고, 일주일마다 세포 수를 세어 같은 양의 세포를 수득하였다.
상기 세포에서 HBV의 cccDNA를 얻기 위해, HepG2.2.15 세포를 회수한 후 용해 완충액 (25 mM EDTA, 10 mM Tris-HCl; pH 7.5, 100 mM NaCl, 1 % SDS, 0.1 mg/ml proteinase K)으로 세포를 재현탁한 뒤, 55 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. MEGA quick-spin total fragment DNA purification kit (intron)로 전체 HBV DNA를 정제한 후, plasmid-safe ATP-dependent DNase로 37 ℃에서 1 시간 반응시키고, 70 ℃에서 30 분 동안 효소를 비활성시켰다. 그 다음 HBV rcDNA (relaxed circular DNA)를 제거하고 HBV cccDNA만 수득하였다. 이후 Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (Bioneer)를 사용하여 qPCR로 HBV cccDNA의 정량분석을 진행하였다.
PCR 프라이머는 forward 5’-TGAATCCYGCGGACGACC-3’ (서열번호 153), reverse 5’-CAGCTTGGAGGCTTGAACAG-3’ (서열번호 154)(nucleotides 1862-1881)(Y=C/T)를 사용하였다.
그 결과, hzVSF_var13을 처리한 경우 HBV 감염 세포의 cccDNA 함량은 농도 의존적으로 감소하는 것을 확인할 수 있었으며, 특히 10 ㎍/ml을 처리한 경우 cccDNA 함량이 거의 없는 것을 확인하였다 (도 31).
이에, hzVSF의 투여는 세포내의 cccDNA의 양을 현저하게 감소시키므로, HBV 치료제로서 우수한 효과가 있음을 알 수 있었다.
실시예 15-2: HBV DNA 억제 확인
다음으로, HBV가 감염된 HepG2.2.15 세포주에 hzVSF_var13과 HBV 약물 (lamivudine; Lami)을 각 용량에 따라 처리하고, 일주일마다 세포 수를 세어 같은 양의 세포를 수득하였다.
Intracellular HBV DNA의 경우 다음과 같이 수득하였다. 상기 수득한 HepG2.2.15 세포를 용해 완충액 (25 mM EDTA, 10 mM Tris-HCl; pH 7.5, 100 mM NaCl, 1 % SDS, 0.1 mg/ml proteinase K)으로 재현탁시켰다. 이후 55 ℃에서 1 시간 동안 반응시켰다. 그 다음 MEGA quick-spin total fragment DNA purification kit (intron)로 Intracellular HBV DNA를 얻었다. Extracellular HBV DNA의 경우 세포를 배양한 배양액을 일정량 얻어 배양액에 용해 완충액을 처리하여 추출하였다. 이후 Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer)를 사용하여 qPCR로 HBV 전체 DNA의 정량분석을 진행하였다.
PCR 프라이머는 forward 5’-CCTCTTCATCCTGCTGCT-3’ (서열번호 155), reverse 5’-AACTGAAAGCCAAACAGTG-3’ (서열번호 156)을 사용하였다.
그 결과, Extracellular HBV DNA의 경우 매우 낮은 농도 (0.1 ㎍/ml)의 hzVSF_var13을 처리한 경우에도 대조군인 Lami 처리군에 비해 HBV DNA 양을 현저히 감소시켰다 (도 32). Intracellular HBV DNA의 경우 hzVSF_var13의 농도 의존적으로 HBV DNA를 억제하는 것을 확인하였고, 대조군인 Lami 처리군에 비해 현저히 우수한 효과를 보이는 것을 확인하였다 (도 33).
결론적으로, hzVSF의 투여는 세포 내 및 세포 외의 HBV DNA의 양을 현저하게 감소시키므로, HBV의 치료제로서 우수한 효과를 가짐을 알 수 있었다.
실시예 16: C형 간염 바이러스에 대한 hzVSF의 항바이러스 효과 확인
실시예 16-1: C형 간염 바이러스에 대한 hzVSF _wt의 항바이러스 효과 확인
사람 C형 간염 바이러스 (Hepatitis C virus; HCV)에 대한 hzVSF_wt의 효능을 조사하기 위하여 다음과 같은 실험을 수행하였다.
C형 간염 바이러스 JFH-1 바이러스주 (strain)를 0.1 MOI (multiplicity of infection)으로 사람 간세포인 Huh7.5 세포에 감염시킨 후, 3일째 3 ng/㎖의 인터페론β와 500, 1000, 2000 unit의 hzVSF_wt를 처리한 후, 4일째 세포배양액과 세포를 수집하였다. 세포는 FACS를 이용하여 HCV NS5A를 항-HCV NS5A 항체염색을 이용하여 측정하였으며, 세포배양액은 실시간 정량 PCR (real-time quantitative PCR)을 이용하여 HCV RNA 역가 (titer)를 측정하였다.
그 결과, 1000 U/㎖의 처리는 FACS에서 인터페론-β와 유사하게 항-HCV 효과를 나타냈다 (도 34). 또한 실시간 정량 PCR로 바이러스 역가를 측정한 결과, 1000 U/㎖에서 hzVSF_wt는 약 50%의 항-HCV 효과가 있으나 인터페론-β 보다는 약한 것을 확인할 수 있었다 (도 35).
하지만 실제 in vivo에서 인터페론은 부작용이 있는데 비해, hzVSF는 부작용이 없을 뿐만 아니라 염증에 의한 증상을 치료할 것으로 보이므로 실제 적용 시 현저한 우수성이 있을 것이다. 그러므로 바이러스감염 초기에 세포에서의 바이러스 증식 억제는 화학약제와 인터페론병용으로 하고, 바이러스감염의 중기 또는 증상이 나타난 이후부터는 hzVSF와 화학약품을 병용하여 면역병리 현상 억제뿐만 아니라 바이러스 증식을 억제할 필요가 있다. 즉, 상기와 같은 결과들은 바이러스 증식 억제능이 뛰어난 화학약품(또는 인터페론)과 면역 병리현상 억제능이 뛰어난 본원발명의 hzVSF_wt 및 이의 다양한 변이체의 병용치료 가능성을 시사하는 것이다. 그러나, 이외에도 hzVSF_wt 및 이의 다양한 변이체 단독으로도 부작용없는 항바이러스제로의 적용을 시사하는 것이다.
실시예 16-2: C형 간염 바이러스 ( HCV 1a)에 대한 hzVSF 변이체의 항바이러스 효과 확인
다음으로, C형 간염 바이러스에 대해 hzVSF 변이체의 항바이러스 효과를 확인하고자, 대표적으로 hzVSF_var13에 대하여 실험을 수행하였다.
먼저, hzVSF 변이체의 HCV 1a 복제 억제 효과를 확인하기 위해, HCV TNcc (TN cell-culture derived; 유전자형 1a)가 감염된 Huh7 세포에 hzVSF_var13을 각 용량에 따라 처리하고 3, 6, 9, 12 일에 세포를 수득하였다. 그 다음, HCV 감염 세포를 회수한 후 트라이졸 (trizol)을 사용하여 전체 RNA를 추출하였다. 이후 역전사를 통해 cDNA를 수득한 다음, Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer)를 사용하여 qPCR로 HCV RNA 및 보정을 위한 GAPDH (housekeeping gene)의 정량분석을 진행하였다.
HCV 표적 PCR 프라이머로는 forward 5’-GGGCTATAAGGTGCTAGTGC-3’ (서열번호 157), reverse 5’-GGCTGCCAGTGGTAATTGTT-3’ (서열번호 158)을 사용하였고, GAPDH PCR 프라이머로는 forward 5’-TCCCTGAGCTGAACGGGAAG-3’ (서열번호 159), reverse 5’-GGAGGAGTGGGTGTCGCTGT-3’ (서열번호 160)을 사용하였다.
그 결과, HCV 1a RNA의 함량은 hzVSF_var13을 0.1 U/ml 이상의 농도로 처리한 경우 시간이 지남에 따라 감소하는 것을 확인하였으며, 이러한 HCV 1a 복제 억제 효과는 hzVSF_var13의 농도 의존적인 것을 확인하였다 (도 36의 A).
나아가, hzVSF_var13을 처리한 경우 HCV core 단백질의 함량을 확인하기 위해 웨스턴블랏 분석을 수행한 결과, 처리된 농도 의존적으로 단백질 함량이 감소하는 것을 확인하였다 (도 36의 B).
다음으로, hzVSF_var13의 HCV 약물 대비 효과를 확인하고자 하였다. HCV TNcc (유전자형 1a)가 감염된 Huh7 세포에 hzVSF_var13과 HCV 약물 (sofosbuvir, simeprevir)을 각 용량에 따라 처리하고 일주일마다 HCV 감염세포를 회수한 후 트라이졸을 사용하여 전체 RNA를 추출하였다. 이후 역전사를 통해 cDNA를 얻었다. 그 다음, Accupower 2x greenstar qPCR Master mix(bioneer)를 사용하여 qPCR로 HCV 전체 RNA(서열번호 157 및 158의 프라이머를 사용) 및 보정을 위한 GAPDH (housekeeping gene)의 정량분석을 진행하였다.
그 결과, hzVSF_var13을 1 ㎍/ml 농도로 처리한 경우에는 대조군 약물에 비해서도 현저하게 HCV 1a의 복제를 억제하는 것을 확인하였다 (도 37).
따라서, HCV TNcc (유전형 1a) 감염세포에 hzVSF 변이체 투여는 HCV 유전자 (RNA) 및 HCV core 단백을 감소시키므로, hzVSF 변이체가 HCV에 대한 항바이러스 효과를 가진다는 것을 알 수 있었다.
실시예 16-3: C형 간염 바이러스 ( HCV 1b)에 대한 hzVSF 변이체의 항바이러스 효과 확인
다음으로, hzVSF 변이체의 HCV 1b 복제 억제 효과를 확인하기 위해, HCV 유전자형 1b의 subgenomic replicon을 발현하는 Huh7 세포에 hzVSF_var13과 HCV 약물 (sofosbuvir, simeprevir)을 각 용량에 따라 처리하고, 일주일마다 HCV 감염 세포를 회수한 후, 트라이졸을 사용하여 전체 RNA를 추출하였다. 이후 역전사를 통해 cDNA를 얻었다. Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer)를 사용하여 qPCR로 HCV 전체 RNA 및 보정을 위한 GAPDH (housekeeping gene)의 정량분석을 진행하였다.
HCV 표적 PCR 프라이머로는 forward 5’-ATGCAGCCCAAGGGTATAAG-3’ (서열번호 161), reverse 5’-GGTTCTGATGTTAGGGTCGATAC-3’ (서열번호 162)를 사용하였고, GAPDH PCR 프라이머로는 서열번호 159 및 160의 프라이머를 사용하였다.
그 결과, hzVSF_var13을 처리한 경우 농도 의존적으로 HCV 1b의 복제를 억제하는 것을 확인할 수 있었으며, 특히 hzVSF_var13을 1 ㎍/ml 농도로 처리한 경우 대조군 약물인 Sofosbuvir 및 Simeprevir와 유사한 수준으로 효과를 보이는 것을 확인하였다 (도 38의 B). 또한, hzVSF_var13의 처리 농도별로 HCV NS5A의 수준을 웨스턴블랏으로 확인한 결과, 농도 의존적으로 HCV NS5A의 양이 감소하는 것을 확인하였다 (도 38의 A).
따라서, HCV replicon (유전형 1b) 발현 세포에 hzVSF_var13 투여는 HCV 유전자 (RNA) 및 HCV NS5A 단백질의 양을 감소시키므로, HCV에 대한 항바이러스 효과를 가지는 것을 알 수 있었다.
실시예 16-4: C형 간염 바이러스 ( HCV 2a)에 대한 hzVSF 변이체의 항바이러스 효과 확인
다음으로, hzVSF 변이체의 HCV 2a 복제 억제 효과를 확인하기 위해, HCV 유전형 2a가 감염된 JFH-1 세포에 hzVSF_var13과 HCV 약물 (sofosbuvir, simeprevir)을 각 용량에 따라 처리하고, 일주일마다 HCV 감염세포를 회수한 후 트라이졸을 사용하여 전체 RNA를 추출하였다. 이후 역전사를 통해 cDNA를 얻었다. 그 다음, Accupower 2x greenstar qPCR Master mix (bioneer)를 사용하여 qPCR로 HCV 전체 RNA 및 보정을 위한 GAPDH (housekeeping gene)의 정량분석을 진행하였다. HCV 표적 PCR 프라이머는 서열번호 157 및 158의 프라이머를 사용하였고, GAPDH PCR 프라이머는 서열번호 159 및 160의 프라이머를 사용하였다.
그 결과, hzVSF_var13을 처리한 경우 7 주 경과 시점에서는 처리 농도에 큰 차이 없이 대조군 약물과 유사한 수준으로 HCV 2a의 복제를 억제하는 것을 확인하였다 (도 39의 B). 나아가, 상기 결과를 장기적으로, 즉 21 주까지 확인하였을 때, 1 ㎍/ml의 고농도로 처리한 경우에는 Sofosbuvir 및 simeprevir를 처리한 경우와 유사하게 HCV 2a의 복제 억제 효과가 유지되는 것을 확인하였다 (도 40).
상기 결과를 종합하면, HCV 유전형 2a 감염세포에 hzVSF_var13을 투여하는 경우, HCV 유전자 (RNA) 및 HCV core 단백질 (도 39의 A)을 감소시키므로 HCV에 대한 항바이러스 효과를 나타낸다는 것을 알 수 있었다.
실시예 17: 인플루엔자 바이러스 감염에 대한 hzVSF의 치료 효과 확인
본원발명의 hzVSF의 대표적인 변이체인 hzVSF_var13의 인플루엔자 바이러스에 대한 항바이러스 및 항염증 효과를 확인하기 위하여, 마우스에서 다음과 같은 실험을 수행하였다.
4주령의 암컷 Balb/c 마우스에 1 X 105 pfu의 H1N1 Influenza A/Puerto Rico/8/34 바이러스를 비강으로 감염시킨 후, 감염 2, 4 또는 6일째 25, 100, 400 unit의 hzVSF_var13을 꼬리 정맥으로 투여하였다. 바이러스 감염 후 7일과 9일째 마우스를 희생하여 H&E 염색, 폐와 몸무게의 무게, 점막 상피 세포 및 섬모, 및 면역조직화학염색법으로 면역세포의 침윤을 조사하였다.
그 결과, 500 U의 hzVSF_var13을 투여한 군에서는 대조군에 비하여 인플루엔자 역가가 100배 이상 감소하였다 (도 41).
또한, H1N1 인플루엔자 바이러스를 감염시킨 군은 폐포에 면역세포와 침윤이 일어난 반면에, 100 U과 400 U을 투여한 군은 투여시기에 관계 없이 비감염 대조군의 폐조직처럼 정상의 폐처럼 인플루엔자 바이러스에 의한 증상이 치료되었다. 25 U을 투여한 경우에도 투여 시기에 의한 차이는 있으나 면역세포의 침윤을 억제하므로 치료 효과가 있음을 확인하였다(도 42).
아울러, 마우스 폐의 기도 상피세포 (epithelial cell)의 섬모 (cilia)를 관찰한 결과, 비감염 대조군과 400 U hzVSF_var13 투여군은 폐 기도에 섬모를 가지고 있는 상피세포를 관찰할 수 있는 반면에, 바이러스에 감염된 폐에서는 상피세포 층이 바이러스 감염에 의하여 소실되었다 (도 43).
또한, 폐 무게와 마우스의 몸무게 비율을 측정한 결과, 바이러스에 감염된 군은 폐에 액체가 차는 폐렴증상으로 인하여 몸무게당 폐의 비율이 증가하는 반면에, hzVSF_var13을 투여한 군은 농도에 어느 정도 비례하여 정상 마우스의 몸무게당 폐의 비율 방향으로 감소하는 것을 확인하였다 (도 44).
마지막으로, hzVSF_var13의 면역세포 침윤 억제효과를 관찰하기 위하여 면역조직화학염색법으로 CD4 T 세포 (도 45 및 46)와 대식세포 (macrophage)의 마커 (도 47 및 48)를 이용하여 확인하였다 (도 46과 48에서는 107 pfu 감염). H1N1 인플루엔자 바이러스 107 pfu 감염 후 7일째의 마우스 폐 염색에서 CD4 T 세포와 대식세포의 침윤이 일어난 반면, hzVSF_var13을 투여한 군에서는 CD4 T 세포와 대식세포의 침윤이 현저하게 감소함을 확인할 수 있었다 (도 45 내지 48).
이와 같은 결과들은 본 발명의 hzVSF 및 이의 다양한 변이체들이 인플루엔자 바이러스에 대한 탁월한 항바이러스 효과뿐만 아니라, 더욱이 면역세포의 침윤을 억제하는 항염증 효과로 염증을 억제하여, 부작용이 없는 항바이러스제뿐 아니라 항염증제로 사용될 수 있음을 시사하는 것이다.
실시예 18: 다양한 바이러스에 대한 hzVSF의 항바이러스 효과 확인
본 발명의 hzVSF_wt 및 이의 변이체들이 다양한 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 나타내는지 확인하기 위하여, hzVSF_wt 및 대표적인 변이체인 hzVSF_var13의 효과를 in vitroin vivo에서 확인하였다. in vitro 실험은 항바이러스능에 대한 것이고, in vivo 실험은 항바이러스 및 항염증에 대한 것이다.
그 결과를 표 15에 나타냈다.
Virus Antiviral effects
in vitro in vivo
Encephalomyocarditis virus(EMCV) +++ +++
Mengovirus +++ NT
Reovirus + NT
Influenza virus + +++
HIV ++ NT
HCMV + NT
Mouse hepatitis virus (MHV) ++ +++
Hantaan Virus ++ NT
HBV ++ NT
HCV ++ NT
※ NT: Not tested
그 결과, 뇌심근염 (EMCV) 바이러스에 대해서는 hzVSF가 in vitroin vivo에서 다 탁월한 항바이러스능과 항염증을 나타냈다. Mengovirus에 대해서는 in vitro에서 탁월한 항바이러스능을 보였다. 레오바이러스 (Reovirus)에 대해서도 역시 in vitroin vivo에서 효과를 나타냈다. HIV에 대해서도 역시 in vitro에서 항바이러스 효능을 나타냈다. HCMV에 대해서도 항바이러스능 및 항염증능을 보였다. 한탄바이러스 (Hantaan virus)에 대해서도 in vitro에서 효능을 나타냈으며, B형 및 C형 간염 바이러스에 대해서도 in vitro에서 항바이러스능을 보였다. 사람 간염과 유사한 기전으로 마우스에서 간염을 야기하는 MHV에 대해서는 특히 in vivo에서 항바이러스 및 항염증능을 나타냈다. 인플루엔자 바이러스에 대하여 in vitroin vivo에서 항바이러스 및 항염증능을 나타내었으며, in vivo에서 효능이 더욱 탁월하였다.
실시예 19: 마우스모델에서 mVSF 투여에 의한 염증성 사이토카인 분비 억제 효과 확인
mVSF가 염증성 사이토카인의 생성에 미치는 영향을 확인하기 위하여, 마우스에 EMC-D 바이러스를 감염시키고 mVSF를 투여한 뒤 3일 후, 염증성 사이토카인의 양을 혈청에서 ELISA로 측정하였다. 하기 표 16에서 보는 바와 같이 바이러스 감염 후 염증성 사이토카인인 IL-6, TNF-α, IFN-γ 및 MCP-1이 증가되었으나, mVSF의 투여는 이러한 염증성 사이토카인의 발현을 저해하였다.
Sample Cytokine(pg/ml) : 바이러스감염 3일 후 측정
IL-12 IL-6 TNF-α IFN-γ CCL2 (MCP-1)
Normal ND 2.9 4.6 1.3 13.8
EMC-B 1.1 190.3 44.3 91.4 1752.7
EMC-D 1.6 21.3 15.8 29.2 609.3
EMC-D+VSF(1000unit) 1.2 6.5 8.8 6.2 124.9
*ND - not detected
상기 결과로부터 mVSF는 바이러스 감염에 의해 유도되는 염증을 억제하는 항염증 효과도 있음을 알 수 있었다.
또한, 마우스 급성간염에서 mVSF가 염증성 사이토카인 생성에 미치는 영향을 확인하기 위해, 마우스에 마우스 간염 바이러스를 감염시키고 VSF를 처리한 뒤 1일 또는 3일 후, 염증성 사이토카인의 양을 혈청에서 ELISA로 측정하였다. 하기 표 17에서 보이는 바와 같이 바이러스 감염 후 염증성 사이토카인인 IL-6, TNF-α, IFN-γ 및 MCP-1이 증가되었으나, VSF의 투여는 이러한 염증성 사이토카인의 발현을 저해하였다. 또한 IFN-α의 1 회 병용투여가 더 큰 상승효과를 나타내는 것을 볼 수 있었다.
Cytokine(pg/ml)
sample IL-12 TNF-α INF-γ CCL2(MCP-1) IL-10 IL-6
감염후 1일 Normal ND 5.4 1.2 ND ND 1.2
Virus infection 14.2 40.0 166.2 1165.5 ND 205.6
virus+VSF ND 8.4 1.9 16.9 ND 5.0
virus+IFN-α 1회+VSF ND 9.1 1.6 13.0 ND 1.5
감염 후 2일 Normal ND 2.1 ND ND ND ND
virus infection 8.7 38.0 724.3 344.5 ND 13.7
virus+VSF ND 32.4 74.5 129.9 ND 9.2
virus+IFN-α 1회+VSF ND 4.0 20.3 13.9 ND 1.4
상기 결과부터 VSF는 바이러스 감염에 의해 유도되는 염증을 억제하는 항염증 효능도 있음을 알 수 있었다.
실시예 20: 마우스 모델에서 hzVSF 투여에 의한 염증성 사이토카인 분비 억제 효과 확인
본 발명의 hzVSF가 염증성 질환의 치료를 위한 염증성 사이토카인의 분비를 억제할 수 있는지 확인하기 위하여 다음과 같은 실험을 수행하였다.
1 X 105 pfu의 H1N1 (Influenza A/PR8) 인플루엔자 바이러스에 감염된 마우스의 폐와 감염 1일 후 500 unit의 hzVSF_var13을 투여한 마우스의 폐를 적출하였다. GLB (Greenberger Lysis Buffer)를 폐와 함께 균질화한 후, 얼음 상에 30분간 정치 후, 3,470 X g, 7 분, 4 ℃에서 원심분리를 수행하였다. 상층액을 수득한 후, 420 X g, 10 분, 4 ℃에서 원심분리 후, 상기 폐 시료와 capture bead, PE detection reagent를 1:1:1로 50 ㎕씩 혼합한 후, 빛을 차단한 상온에서 2시간 동안 반응시켰다. 반응 후 세척 버퍼로 bead를 재현탁한 후, FACS cantoⅡ로 데이터를 측정하였다.
그 결과, 인플루엔자 바이러스 감염 7일에 마우스의 폐에 pro-infalmmatory cytokine에 속하는 IL-6, TNF-α, IFN-γ, CCL2 (MCP-1)의 양이 현격히 증가하는 것을 확인할 수 있었다. 그러나, 본 발명의 hzVSF_var13 투여 결과, 마우스의 폐에서 상기 사이토카인의 생성을 현저하게 억제하는 것을 확인할 수 있었다 (도 49).
즉, 다양한 염증성 사이토카인을 억제하여 바이러스 감염에 의한 다양한 염증성 질환의 치료제로서 사용될 수 있음을 시사하는 것이다.
실시예 21: 비멘틴 과발현 세포주 (stable cell line)에서 EMC-D 감염 후 hzVSF의 효과 확인
비멘틴을 발현하지 않는 MCF-7 세포에 비멘틴 (wt) 또는 hzVSF와의 결합부위를 돌연변이시킨 비멘틴 (mt)을 형질전환시켜 비멘틴 (wt) 또는 비멘틴 (mt) 과발현 세포주를 제조하였다. 그 다음, 비슷한 발현수준을 가진 선별된 세포를 이용하여 MVIT assay를 수행하였다.
구체적으로, 웰 당 2x104 개의 세포를 접종한 후, 2 MOI의 EMC-D 바이러스를 감염시키고, 2 시간 후 hzVSF_var13을 256 U으로부터 4 배씩 연속적으로 희석하여 첨가하고 2 일간 배양하였다. 그 다음, 세포를 메탄올로 고정시킨 후 0.5 % 크리스탈 바이올렛 (crystal violet)으로 염색하여 공기 건조한 후 관찰하였다.
그 결과, MCF-7 모세포, Mock 및 비멘틴 (mt)는 EMC-D 바이러스 감염에 대한 hzVSF의 효능을 관찰하지 못한 반면, 비멘틴 (wt)을 발현하는 MCF-7은 바이러스 감염에 의하여 비멘틴이 VSF 수용체 (VR)로 구조적인 변화가 유도되어, hzVSF의 항바이러스 효능이 있음을 확인할 수 있었다 (도 50 및 도 51).
다음으로, 세포 독성을 확인하기 위해 WST assay를 추가적으로 실시하였다. 상기 MVIT assay와 동일한 조건에서 비멘틴 (wt) 및 비멘틴 (mt) 세포를 3일간 배양한 후, 테트라졸리움 염 (tetrazolium salt, WST-1)을 처리하여 추가적으로 4시간 배양하고, 450 nm 파장에서 흡광도를 측정하였다. 측정 후, 상층액을 제거한 다음 세포를 메탄올로 고정시킨 후, 0.5 % 크리스탈 바이올렛을 이용하여 고정 염색을 20 분간 진행한 후 공기 건조 시켰다. 염색된 세포를 메탄올에 녹여 540 nm 파장에서 흡광도를 측정함.
그 결과, MCF-7 모세포, Mock 및 비멘틴 (mt)은 EMC-D 바이러스 감염에 대한 hzVSF의 효능을 관찰하지 못한 반면, 비멘틴 (wt)을 발현하는 MCF-7은 바이러스 감염에 의하여 비멘틴이 VSF 수용체 (VR)로 구조적인 변화가 유도되어 hzVSF의 항바이러스 효능이 있는 것을 확인하였다 (도 52).
다음으로, 비멘틴 과발현 세포주 (stable cell line)에서 EMC-D 감염에 따른 VSF 수용체 (VR)의 발현 양상을 확인하고자 하였다. 이에, 각각의 stable MCF-7 세포, 즉 비멘틴 (wt) 및 비멘틴 (mt)에 5 MOI의 EMC-D를 9 시간 감염시킨 후, hzVSF_var13으로 세포를 면역염색시켰다. 세포를 고정시킨 후 permeabilization 시키고 1:250으로 희석시킨 hzVSF_var13을 세포와 반응시켰다. 2차 항체로 FITC-goat human IgG로 반응시키고 형광현미경으로 세포에서의 hzVSF에 대한 수용체 (VR) 발현을 확인하였다 (500 배율).
그 결과, 도 55에서와 같이 mock 및 hzVSF의 결합부위가 돌연변이된 비멘틴 발현 세포에는 hzVSF_var13이 결합하지 않았으나, wt의 비멘틴을 발현하는 세포에서는 바이러스 감염에 의하여 VR이 발현되는 것을 확인하였다 (도 53).
실시예 22: E. coli에서 정제한 VR WT 및 MT와 VSF의 결합 확인
Ni-NTA system을 이용하여 정제된 p60 재조합 단백질 5 mg과 hzVSF_var13을 molar ratio 2:1로 계산하여 최종 부피가 700 ml가 되도록 PBS (phosphate buffered saline)로 채운 뒤 4 ℃ 오비탈 쉐이커 (orbital shaker)에서 3 시간 동안 인큐베이션하였다. 그 다음, protein A 비드 (50 % slurry)를 첨가하여 4 ℃에서 1 시간 인큐베이션한 후, protein A-hzVSF-VR 복합체를 3,000 x g로 4 ℃에서 3 분간 원심분리하였다. 그 다음, 상층액을 제거하고, PBS로 비드를 세척한 후 3,000 x g로 4 ℃에서 3 분간 다시 원심분리하였고, 이 과정을 3 회 반복하였다. 그 다음, 2X SDS-표본 완충액을 넣고 5 분간 boiling하여 SDS-PAGE 및 웨스턴 블랏을 진행하였다.
그 결과, 비멘틴의 Y150/R186/Q195/R217/K235/R270 6개 아미노산을 각각 F, K, N, K, R 및 K로 치환 돌연변이를 시킨 단백은 hzVSF와의 결합이 확연하게 떨어지는 것을 확인하였다 (도 54). 이로써 hzVSF는 비멘틴의 Y150/R186/Q195/R217/K235/R270에 결합한다는 것을 알 수 있었다.
실시예 23: HEK293T 세포에서 과발현시킨 VR (mt)와 VSF와의 결합 확인
HEK293T 세포에 p60 WT 또는 p60 MT를 형질전환시킨 후 hzVSF_v13과의 결합을 확인하였다.
구체적으로, 2x106 개의 HEK293T 세포를 100 mm 배양접시에 접종한 후, p60 WT (wild-type) 및 MT (mutant-type) DNA (vector : pcDNA3.1mycHisC)로 형질전환시키고, 48 시간 동안 인큐베이션하였다. 그 다음, 상기 세포를 회수한 후 1 ml의 1 % CHAPS 용해 완충액을 첨가하고, 20 분간 얼음에 정치시켜 세포를 용해시켰다. 용해된 세포를 4 ℃에서 13,000 rpm으로 15 분간 원심분리하여 상층액을 새 튜브로 옮겼다. 700 mg의 단백질에 50 % slurry의 protein A 비드를 첨가하여 4 ℃에서 1시간 동안 preclear 반응을 하였다. 그 다음, 4 ℃에서 3,000 x g로 3 분간 원심분리한 후, 상층액을 새로운 튜브로 옮겼다. hzVSF_var13을 1:100으로 처리한 후, 4 ℃에서 밤새 인큐베이션하여 VSF와 VR을 결합시켰다. 그 다음, 50 % slurry의 protein A를 첨가한 후, 4 ℃에서 1 시간 동안 반응시켰다. Ptotein A-VSF-VR 복합체를 얻고 비드를 세척하기 위하여 4 ℃에서 3,000 x g로 3 분간 원심분리하고 상층액을 제거하였다. 그 다음, 침전된 복합체에 1 % CHAPS 용해 완충액을 첨가하여 비드를 3번 세척하였다. 2X SDS-표본 완충액을 넣고 boiling하여 SDS-PAGE와 immunoblot을 수행하였다.
그 결과, 세포에서 과발현시킨, 비멘틴의 Y150/R186/Q195/R217/K235/R270 6개 아미노산을 각각 F, K, N, K, R 및 K로 치환 돌연변이를 시킨 단백질은 hzVSF와의 결합이 확연하게 떨어지는 것을 확인하였다 (도 55). 이로써 hzVSF는 비멘틴의 Y150/R186/Q195/R217/K235/R270에 결합하는 것을 알 수 있었다. 6 개의 아미노산을 돌연변이로 치환시킨 lane에서 VSF와의 약한 결합은 HEK293T 세포에 내재하는 야생형 비멘틴과 과발현시킨 변이 비멘틴과의 dimerization 및 tetramerization으로 인하여 VSF가 약하게 결합하는 것으로 추정된다.
상기 결과에 이어, 컴퓨터 프로그램을 이용하여 비멘틴-VSF 결합 모델을 확인하였다 (도 56 내지 도 58). 분석에 사용된 구체적인 프로그램은 하기와 같다.
VR dimer modeling: Protein Homology/analogY Recognition Engine V 2.0
(Component software Template detection: HHpred 1.51
Secondary structure prediction: Psi-pred 2.5
Disorder prediction: Disopred 2.4
Transmembrane prediction: Memsat_SVM
Multi-template modelling and ab initio: Poing 1.0
Re-orienting structures for easy viewing: OVOP)
Complex modeling of VR_dimer and VSF : Pymol
Complex modeling of VR_dimer and chemical : autodock vina
VR 다이머 모델링을 통하여 VR이 hzVSF와 결합하였을 때의 구조를 추정하였으며, 결론적으로 hzVSF는 비멘틴의 Y150/R186/Q195/R217/K235/R270 잔기에 결합하는 것을 확인하였다.
상기와 같은 결과는 본 발명의 서열번호 1의 펩타이드에 특이적으로 결합하는 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편이 광범위한 바이러스 질환에 대해 항바이러스 및 항염증 효과를 나타낼 것을 시사하는 것으로, 기존 항바이러스제인 인터페론이나 화학요법제와는 다르게 부작용 없이, 바이러스 감염 세포에만 선택적으로 적용하여, 치료시 소량으로 가능하며, 면역세포 침윤을 억제하여 항염증 작용을 하며 다양한 바이러스 치료제로 사용될 수 있음을 시사하는 것이다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시 예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로서 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 특허 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.

Claims (31)

  1. 서열번호 1의 펩타이드에 특이적으로 결합하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  2. 제1항에 있어서, 상기 항체는 마우스 항체, 키메라 항체 또는 인간화 항체인 것인, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  3. 제1항에 있어서, 상기 펩타이드의 결합 단편은 Fab, Fab', F(ab')2, scFv, dsFv, ds-scFv, 이들의 이량체, 미니바디(minibodies), 디아바디(diabodies) 및 다량체(multimer) 또는 이중 특이성 항체 단편인 것인, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  4. 제2항에 있어서, 상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은
    서열번호 2로 기재된 중쇄 CDR1; 서열번호 3 또는 서열번호 14로 기재된 중쇄 CDR2; 및 서열번호 4 또는 서열번호 15로 기재된 중쇄 CDR3를 포함하는 중쇄 가변 영역, 및 서열번호 5로 기재된 경쇄 CDR1; 서열번호 6, 서열번호 16, 서열번호 17, 또는 서열번호 18로 기재된 경쇄 CDR2; 및 서열번호 7 또는 서열번호 19로 기재된 경쇄 CDR3를 포함하는 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  5. 제4항에 있어서, 상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은
    서열번호 20으로 기재된 중쇄 FR1 (Framework region 1); 서열번호 21로 기재된 중쇄 FR2; 서열번호 22 또는 서열번호 28로 기재된 중쇄 FR3; 및 서열번호 23으로 기재된 중쇄 FR4를 포함하는 중쇄 가변 영역, 및
    서열번호 24로 기재된 경쇄 FR1; 서열번호 25로 기재된 경쇄 FR2; 서열번호 26으로 기재된 경쇄 FR3; 및 서열번호 27로 기재된 경쇄 FR4를 포함하는, 경쇄 가변 영역을 추가로 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  6. 제2항에 있어서, 상기 인간화 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은,
    (a) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3;
    (b) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 16, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3;
    (c) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 17, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3;
    (d) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3;
    (e) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 19로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3;
    (f) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3;
    (g) 서열번호 2, 서열번호 3, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4;
    (h) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4;
    (i) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 15로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 6, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4;
    (j) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4;
    (k) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 15로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4;
    (l) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 19로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4;
    (m) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 15로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 20, 서열번호 21, 서열번호 28, 및 서열번호 23으로 각각 기재된 중쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4, 및 서열번호 5, 서열번호 18, 및 서열번호 19로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3 및 서열번호 24, 서열번호 25, 서열번호 26, 및 서열번호 27로 각각 기재된 경쇄 FR1, FR2, FR3 및 FR4; 또는
    (n) 서열번호 2, 서열번호 14, 및 서열번호 4로 각각 기재된 중쇄 CDR1, 중쇄 CDR2, 및 중쇄 CDR3, 및 서열번호 5, 서열번호 16, 및 서열번호 7로 각각 기재된 경쇄 CDR1, 경쇄 CDR2, 경쇄 CDR3를 포함하는,
    항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  7. 제2항에 있어서, 상기 인간화 항체는
    각각 서열번호 10 및 서열번호 12; 서열번호 32 및 서열번호 34; 서열번호 36 및 서열번호 38; 서열번호 40 및 서열번호 42; 서열번호 44 및 서열번호 46; 서열번호 48 및 서열번호 50; 서열번호 52 및 서열번호 54; 서열번호 56 및 서열번호 58; 서열번호 60 및 서열번호 62; 서열번호 64 및 서열번호 66; 서열번호 68 및 서열번호 70; 서열번호 72 및 서열번호 74; 서열번호 76 및 서열번호 78; 또는 서열번호 80 및 서열번호 82로 기재된 중쇄 및 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  8. 제2항에 있어서, 상기 마우스 항체는
    서열번호 137로 기재된 중쇄 CDR1; 서열번호 138로 기재된 중쇄 CDR2; 및 서열번호 139로 기재된 중쇄 CDR3를 포함하는 중쇄 가변 영역, 및
    서열번호 134로 기재된 경쇄 CDR1; 서열번호 135로 기재된 경쇄 CDR2; 및 서열번호 136으로 기재된 경쇄 CDR3를 포함하는 경쇄 가변 영역을 포함하는,
    항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  9. 제2항에 있어서, 상기 마우스 항체는
    서열번호 9로 기재된 중쇄 가변 영역 및 서열번호 8로 기재된 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  10. 제2항에 있어서, 상기 키메라 항체는 서열번호 141 또는 서열번호 142로 기재된 중쇄 가변 영역 및 서열번호 140으로 기재된 경쇄 가변 영역을 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  11. 제2항에 있어서, 상기 키메라 항체는 서열번호 146 또는 서열번호 148로 기재된 중쇄 및 서열번호 144로 기재된 경쇄를 포함하는, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  12. 제3항에 있어서, 상기 scFv는 서열번호 131로 기재된 중쇄 가변 영역 및 서열번호 133으로 기재된 경쇄 가변 영역이 링커로 연결된 것인, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  13. 제3항에 있어서, 상기 scFv는 서열번호 130의 염기 서열로 코딩되는 중쇄 가변 영역 및 서열번호 132의 염기 서열로 코딩되는 경쇄 가변 영역이 링커로 연결된 것인, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  14. 제1항에 있어서, 상기 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편은 서열번호 1의 펩타이드의 9 번째, 45 번째, 54 번째, 76 번째, 94 번째 또는 129 번째 아미노산 잔기에 특이적으로 결합하는 것인, 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  15. 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항의 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드.
  16. 제15항의 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터.
  17. 제16항의 벡터가 도입된 세포.
  18. 제17항의 세포를 이용한 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편의 생산방법.
  19. 제18항의 생산방법에 의해 생산된 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편.
  20. 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항의 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 항바이러스용 조성물.
  21. 제20항에 있어서, 상기 조성물은 항바이러스 작용에 의한 바이러스 감염성 질환의 예방 또는 치료를 수행하는 것인 조성물.
  22. 제20항에 있어서, 상기 조성물은 바이러스 감염 세포 특이적으로 작용하는 것인 조성물.
  23. 제20항에 있어서, 상기 조성물은 면역세포 침윤을 억제하는 것인, 조성물.
  24. 제20항에 있어서, 상기 조성물은 염증반응을 억제하는 것인, 조성물.
  25. 제20항에 있어서, 상기 바이러스는 바이러스 감염에 의해 숙주 세포의 비멘틴 (vimentin)의 일부가 숙주 세포막 외부로 노출되는 것을 특징으로 하는 바이러스인, 조성물.
  26. 제20항에 있어서, 상기 바이러스는 오소믹소비리데(Orthomyxoviridae) 속 바이러스, 피코르나비리데(Picorna viridae) 속 바이러스, 레트로비리데(Retroviridae) 속 바이러스, 헤르페스(Herpes) 속 바이러스, 필로비리데(Filoviridae) 속 바이러스, 코로나비리데(Coronaviridae) 속 바이러스, 헤파드나비리데(Hepadnaviridae) 속 바이러스, 플라비비리데(Flaviviridae) 속 바이러스, 부냐비리데(Bunyaviridae) 속 바이러스로 구성된 군으로부터 선택된 것인, 조성물.
  27. 제20항에 있어서, 상기 바이러스는 인플루엔자 바이러스, 간염 바이러스, 뇌심근염 바이러스, 멩고 바이러스 (Mengovirus), 레오바이러스 (Reovirus), HIV (human immunodeficiency virus), 에볼라바이러스(Ebolavirus), 중증급성호흡기증후군 코로나바이러스(Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus; SARS), 중동호흡기증후군 코로나바이러스(Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus; MERS), HCMV (human cytomegalovirus), 및 한탄 바이러스로 이루어진 군에서 선택된 바이러스인 조성물.
  28. 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항의 항체 또는 상기 펩타이드의 결합 단편을 포함하는, 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물.
  29. 제28항에 있어서, 상기 염증성 질환은 바이러스 감염에 의한 것인 조성물.
  30. 제20항의 조성물을 바이러스에 감염된 인간을 제외한 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 바이러스 감염 질환의 치료 방법.
  31. 제28항의 조성물을 염증성 질환에 걸린 인간을 제외한 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 염증성 질환의 치료 방법.
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