WO2016085280A1 - 세포 투과성 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 그 용도 - Google Patents

세포 투과성 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 그 용도 Download PDF

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amino acids
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유재훈
현순실
이연
이선주
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서울대학교산학협력단
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Definitions

  • the present invention relates to a staple peptide, a method for preparing the same, and a use thereof, and more particularly, to a double-sided alpha helix staple peptide including a hydrophobic amino acid and a hydrophilic amino acid, a method for preparing the same, and a use of the same for intracellular active substance delivery.
  • CPPs cell penetrating peptides
  • TAT peptides include TAT peptides, penetratin peptides, or artificially manufactured 7-9 linked alginine peptides.
  • Their feature is that they are rich in arginine and are known to enter the cell as a mechanism of endocytosis, while being well aware of negatively charged substances on the cell surface.
  • Such cell-penetrating peptides have been used for intracellular delivery of substances that are difficult to intracellularly, even for small molecules or for delivery of molecules of high molecular weight, such as proteins and nucleic acids that are not cell permeable.
  • existing peptides require micromolar concentrations to show sufficient cell permeability.
  • the efficiency is not sufficient in that it is a material required for conjugation using covalent bonds to increase the cell permeability of the material to be delivered to the cell. This is because most of the bioactive substances such as proteins or small molecules to be delivered to the cell play their role at lower concentration than micromolar. Thus, efforts are underway to permeate cell penetrating peptides into cells with good efficiency at lower concentrations.
  • Staple peptides for the regulation of physiological activity is composed mostly of hydrophobic amino acids. This is because amino acids that play an important role in protein-protein interactions consist mainly of hydrophobic groups.
  • a peptide multimer comprising a covalent linkage at two or more specific amino acid positions of a double-sided alpha helix peptide including hydrophilic and hydrophobic amino acids (PCT / KR2014 / 009778). . It was confirmed that this can be used as a cell penetrating peptide.
  • PCT / KR2014 / 009778 the inventors of the present application introduced two molecules of cystine instead of leucine to some hydrophobic residues of the double-sided peptide to prepare a dimeric peptide in which two disulfide bonds were bound. These dimeric peptides were found to have a significantly increased alpha helix and chemically stable, cell permeability was increased 500 times compared to the conventional CPP.
  • the dimer would be a peptide consisting of 32 amino acids, so making a stapled peptide and comparing it with the cell penetrating ability of the dimeric peptide yielded a better cell penetrating peptide. It is necessary to develop.
  • An object of the present invention is to provide a double-sided alpha helix staple peptide capable of efficiently permeating a cell while having fewer amino acids than a conventional cell penetrating peptide, a method for preparing the same, and a use thereof.
  • the present invention provides a staple peptide comprising at least two or more amino acids constituting the peptide, which are bilateral alpha-helix staple peptides comprising hydrophobic and hydrophilic amino acids.
  • the amino acid may include at least one hydrophilic amino acid selected from the group consisting of arginine, lysine and histidine, or may include at least one hydrophobic amino acid selected from the group consisting of leucine, valine, tryptophan, phenylalanine, tyrosine and isoleucine. have.
  • the present invention also provides a method for preparing a staple peptide, comprising the steps of: preparing a plurality of functionalized amino acids with a compound comprising a double bond; And arranging the amino acids at specific positions to link at least two or more amino acids with each other by a reaction between compounds including a double bond.
  • the present invention also provides a composition for intracellular activator delivery comprising the staple peptide and a biologically active substance.
  • 1 is a chemical structure of stCK as an example of an alpha helix double-sided staple peptide.
  • Figure 2 is a schematic diagram showing the results (left) and the structure (left) of the cell permeability of the dimeric alpha-helix double-sided peptide, staple peptide, peptide linked by the BMB linker according to an embodiment of the present invention using a flow cytometer (right) )to be.
  • FIG. 3 is a schematic diagram and a helical wheel representation of each staple peptide according to an embodiment of the present invention and its sequence.
  • Figure 4 shows the results of using the flow cytometer at the same concentration (16 nM) of all the cell permeability of the alpha helix double-sided peptide, staple peptide of the dimer according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 5 is a schematic diagram showing the manufacturing process of the staple peptide according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 6 is a schematic diagram showing the manufacturing process of the peptide linked to the BMB linker according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 7 is a graph showing the results of HPLC verification of staple peptide (stCK) according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 8 is a graph showing the results of confirming the mass of the staple peptide (stCK) according to an embodiment of the present invention by MALDI-TOF.
  • FIG. 9 is a graph showing the results of HPLC confirmation of 5-TAMRA labeled staple peptide according to an embodiment of the present invention.
  • Figure 9a is a 5-TAMRA labeled stAK
  • Figure 9b is a 5-TAMRA labeled stBK
  • Figure 9c is a 5-TAMRA labeled stCK
  • Figure 9d is a 5-TAMRA labeled stDK
  • Figure 9e is a HPLC showing the results of the 5-TAMRA labeled stEK It is a graph.
  • FIG. 10 is a graph showing the result of confirming the mass of 5-TAMRA labeled staple peptide according to an embodiment of the present invention by MALDI-TOF.
  • Figure 10a is a 5-TAMRA labeled stAK
  • Figure 10b is a 5-TAMRA labeled stBK
  • Figure 10c is a 5-TAMRA labeled stCK
  • Figure 10d is a 5-TAMRA labeled stDK
  • Figure 10e is a mass of 5-TAMRA labeled stEK MALDI-TOF This is a graph showing the results confirmed.
  • FIG. 11 is a graph showing the results of HPLC confirmation of the BMB linker linking peptide (BMB CK) according to an embodiment of the present invention.
  • BMB linker linking peptide BMB CK
  • Figure 13 is a graph showing the HPLC confirmation results of His containing staple peptide (LKH stEK) according to an embodiment of the present invention.
  • Cys stEK Cys containing staple peptide
  • LH stEK His containing staple peptide
  • 16 is a graph showing the results of confirming the mass of Cys-containing staple peptide (LKH stEK) according to an embodiment of the present invention by MALDI-TOF.
  • Figure 17 is an example of applying the delivery of siRNA using a staple peptide (stEK) according to an embodiment of the present invention, it is the result of confirming the delivery of siRNA using a light microscope.
  • stEK staple peptide
  • FIG. 18 shows the results of confirming the expression of target RNA by RT-PCR experiment as an example of application of siRNA delivery using His-containing staple peptide according to an embodiment of the present invention.
  • the present invention relates to a double-stranded alpha-helix staple peptide comprising a hydrophobic amino acid and a hydrophilic amino acid, wherein at least two or more amino acids constituting the peptide are linked to each other.
  • the staple peptide used in the present invention means that the region constituting the peptide is connected internally or between regions.
  • the i- and i + 4 positions (or i + 7, i + 11 positions) of the alpha helix may be stapled using several covalent methods to enhance the chemical stability of the alpha helix.
  • the amino acid at one or more positions selected from the group consisting of i, i + 3, i + 4, i + 7, i + 8, i + 10 and i + 11 (i is an integer) may be stapled.
  • Covalent bonds can be used to staple amino acids, thereby enhancing cell permeability.
  • two or more amino acid positions selected from the group consisting of i, i + 3, i + 4, i + 7, i + 8, i + 10 and i + 11 (i is an integer) can be stapled.
  • two amino acids may be linked via disulfide bonds, carbon-carbon double bonds, or amide bonds.
  • introduction of disulfide between two amino acid positions introduction of carbon-carbon double bonds through metathesis reactions, introduction of amide bonds, and introduction of short linkers by Michael reactions.
  • Such stapling is increasing the possibility that not only the desired chemical stability but also the cell-penetrating peptides with improved cell permeability can be prepared.
  • the compound of the cycling structure may connect at least two or more amino acids.
  • the size of the cycling may vary depending on the number of amino acids of the alpha helix peptide.
  • one or more staples may be included.
  • one or more amino acids of the peptide may be functionalized with a compound containing a double bond.
  • amino acids may be linked by a ring structure generated through ring-closing metathesis between the double bond containing compounds.
  • the functionalized amino acid may be an amino acid substituted with an alkenyl side chain.
  • the alkenyl may be at least one selected from the group consisting of pentenyl group, nucleenyl group, heptenyl group, octenyl group, nonenyl group, decenyl group, undekenyl group, and dodekenyl group.
  • the amino acid constituting the peptide is not limited to the kind as long as it can maintain the alpha-helical structure while showing both sides, for example, the hydrophilic amino acid may be one or more selected from the group consisting of arginine, lysine and histidine
  • the hydrophobic amino acid may be at least one selected from the group consisting of leucine, valine, tryptophan, phenylalanine, tyrosine and isoleucine.
  • a double-sided alpha helical peptide consisting of lysine and leucine is prepared as a staple peptide to compare cell permeability with previously known non-staple peptides and known cell permeable peptides, and thus excellent staple peptides according to the present invention. It was confirmed that it can exhibit cell permeability.
  • the peptide may include histidine to increase the efficiency of intracellular delivery. Histidine may act in the endosomal escape after intracellular delivery.
  • the histidine may be included, for example, three at the lysine position in the peptide. When included in one or more than one lysine position, the intracellular delivery efficiency of the peptide may be improved.
  • the peptide may further comprise cysteine at the N-terminus or C-terminus.
  • the delivery efficiency for the material to be delivered may vary. For example, this may vary depending on the nature of the material to be delivered.
  • the cysteine may be located at the N-terminus to increase the alpha helix of the peptide, thereby increasing the delivery efficiency of the material.
  • the delivery material is an electrically positive material, the cysteine may be located at the C-terminus, thereby increasing the alpha helix of the peptide, thereby increasing the delivery efficiency.
  • a separate linker may be introduced between the peptide and cysteine added at the N- or C-terminus.
  • the linker may be in the form of a plurality of for example one to three glycine or alanine.
  • the physical properties or delivery efficiency of the peptides may vary depending on the length or type of the linker, and the physical properties or delivery efficiency of the peptides depending on the length of the linker may vary depending on the material to be delivered.
  • the number of amino acids included in the peptide is not limited as long as it can form an alpha helix structure, which is a stable secondary structure, but may include, for example, 5-20 amino acids.
  • the inventors of the present application have a relatively small number of amino acids (e.g., consisting of 16 amino acids) compared to the cell penetrating peptides, but the cell permeability is inferior to that of the previously developed CPP having 24-32 amino acids. It was confirmed that there was no. Through this, it is possible to manufacture a cell-penetrating peptide with high utilization economically.
  • hydrophilic amino acids In order to collect the amine groups of the hydrophilic amino acid into one side of the alpha-helical peptide, one to three hydrophilic amino acids may be alternately arranged, and the remaining sequence may be one to three hydrophobic amino acids.
  • each of the hydrophilic and hydrophobic amino acids may be alternately arranged, and may include at least one amino acid having the same polarity as the i position in at least one of i + 3 or i + 4.
  • the staple peptide may include any one of the following sequences, and these are staple peptides prepared by introducing a carbon-carbon double bond through a metathesis reaction.
  • R8 means (R) -2- (7'-octenyl) alanine
  • S5 means (S) -2- (4'-pentenyl) alanine.
  • Staple peptides according to the present invention is excellent in cell permeability and can ensure the desired cell permeability even when used in a minimum concentration. Through this, not only excellent cell delivery capacity but also a desired effect can be obtained by using a low concentration of biologically active substance.
  • Peptide multimers having efficient cell permeability even at low concentrations (low nM) have already been prepared by the inventors.
  • these peptide multimers contain about 24-32 amino acids. Since the cell penetrating ability does not increase in proportion to the number (or length) of the amino acids constituting the peptide, it has a relatively small number of amino acids (consists of 16 amino acids) compared to the cell penetrating peptides obtained by the present inventors. Compared with CPP having 24-32 amino acids in cell permeability, it is possible to manufacture high-efficiency cell-penetrating peptides economically. As a result, the present invention provides a cell-penetrating peptide containing a small number of amino acids for intracellular activator delivery.
  • the present invention is to prepare the double-sided alpha-helix peptide of the double-sided peptide of the inventors in the form of a staple peptide, to enhance cell permeability.
  • the present invention relates to a composition for intracellular activator delivery comprising the staple peptide and a biologically active substance.
  • the biologically active substance is a kind of cargo, and may be a substance that modulates biological activity or function that binds to the cell membrane permeation domain and is delivered into a cell, thereby regulating all physiological phenomena in the living body.
  • DNA, RNA, siRNA , Aptamers, proteins, antibodies or cytotoxic compounds but is not limited thereto.
  • a substance or other carrier that modulates biological activity or function may be combined, wherein the peptide and a substance or other carrier that modulates biological activity or function may form a complex structure.
  • the substance or carrier may be linked, for example, via a non-covalent or covalent bond with the staple peptide.
  • the non-covalent bond may be, for example, one or more selected from the group consisting of hydrogen bonds, electrostatic interactions, hydrophobic interactions, van der Waals interactions, pi-pi interactions and cation-pi interactions.
  • the covalent bonds may be degradable or non-degradable bonds
  • the degradable bonds may be disulfide bonds, acid decomposable bonds, ester bonds, anhydride bonds, biodegradable bonds or enzymatic bonds
  • non-degradable bonds are amide bonds.
  • a phosphate bond but is not limited thereto.
  • the peptide may be linked by forming a non-covalent bond such as an electrostatic bond or a host-guest bond, for example, doxorubicin, Methotrexate, Paclitaxel, Cisplatin, Bleomycin, taxol, berberine or curcumin, but It is not limited.
  • the protein or antibody may include any type of drug that specifically binds to a specific target in a cell, and may be introduced in a form fused to an N-terminus or a C-terminus.
  • the biologically active substance is not limited in content if it is delivered to a specific target in the cell, it may be included in a range that shows the maximum effect.
  • the biologically active substance and the staple peptide are in a molar ratio of 1: 1 to 1: 100, for example 1: 2 to 1: 100, especially in a molar ratio of 1: 2 to 1:50. May be included.
  • the target gene of interest was significantly inhibited even under a condition where the concentration of siRNA was lowered at a specific molar ratio, for example, 1:50.
  • the present invention relates to a method for preparing a staple peptide, comprising the steps of: preparing a plurality of functionalized amino acids with a compound comprising a double bond; And arranging the amino acids at specific positions to link at least two or more amino acids with each other by a reaction between compounds including a double bond.
  • the functionalization is not particularly limited as long as it is a structure that forms the above-mentioned cycling to connect two or more groups, for example, by arranging amino acids having an alkenyl side chain at a specific position to form a staple peptide linked through cycling. It can manufacture.
  • Each configuration according to the present invention described above can be equally applied to the manufacturing method.
  • Alpha-helix peptide consisting of leucine and lysine is selected from two amino acids consisting of i, i + 7 positions among the amino acids of the hydrophobic cotton, and is (R) -2- (7'-octenyl) alanine at the i position, Hydrocarbon staple peptides were prepared by ring closure metathesis method by substituting (S) -2- (4'-pentenyl) alanine (FIG. 3). Table 1 below shows the sequence of each amino acid and its name.
  • each staple peptide follows the ring closure metathesis (RCM) method as shown in FIG.
  • RCM ring closure metathesis
  • Unstapled peptides that were not staples were synthesized according to standard Fmoc peptide synthesis, and RCM was performed according to the above-mentioned references. Briefly, the resin with peptide (30 ⁇ mol) was washed three times for 1 minute each with carbon dichloride and acetylene dichloride in the presence of a Fmoc protecting group at the N-terminus. Thereafter, 1 mL of Grubb's first generation catalyst dissolved in 6 mM acetylene dichloride was treated with the above resin and reacted with bubbling with nitrogen gas at room temperature for 2 hours.
  • 5-TAMRA stDK MS [M + H] + : 2298.5 (calcd) 2298.1 (obsd).
  • 5-TAMRA stEK MS [M + H] + : 2340.6 (calcd) 2340.3 (obsd).
  • LKH stEK [M + H] + : 1996.32 (calcd), 1997.29 (obsd).
  • Peptides linked with BMB linker were prepared as a control of staple peptides (FIG. 6).
  • the amino acid sequence of this peptide is similar to stCK, replacing R8 and S5 with cysteine.
  • 5-TAMRA-BMB CK labeled 5-TAMRA at the N-terminus was reacted in PBS buffer (pH 7.4) by adding the same amount of the above cysteine-containing peptide and 1,4-bis (maleimido) butane (BMB). Obtained.
  • HPLC traces of the respective peptides are shown in FIG. 11. The separated peptide was confirmed by MALDI-TOF mass spectrometry, and the result is shown in FIG. 12.
  • the alpha helical dimeric dimeric peptide (dimer CK) confirmed that most of the cells had a peptide at about 10 nM, and the staple peptide (stCK) in the present invention was about 30 The same efficiency is shown at nM.
  • peptides that have increased alpha helix by connecting to the same amino acid position with a 1,4-bis (maleimido) butane (BMB) linker show the same efficiency when they reach 500 nM.
  • BMB 1,4-bis (maleimido) butane
  • the linker portion was found to play an important role in cell permeability.
  • the linker of the staple peptide consisting of hydrocarbons rather than hydrophilic linkers such as BMB can contribute to cell permeability.
  • HeLa cells (1.0 ⁇ 10 4 cells / well) were grown on 8 well Lab-tek chamber slides (Thermo Scientific) and then transfected the following conditions.
  • DY-547-labeled siRNA (siGLO, GE life sciences) was placed in the staple peptide stEK and PBS buffer conditions at room temperature for 30 minutes, mixed with OptiMEM media medium, incubated with cells for 24 hours, and washed twice with PBS buffer.
  • the fluorescence microscope Confocal LSM 710 system, Zeiss
  • Dharmafect I reagent used as a positive control, it can be seen that the delivery of siRNA is efficiently carried out to the peptide even when stEK is 2: 1 or 10: 1 in molar ratio with siRNA.
  • HeLa cells (5 ⁇ 10 4 cells / well) were grown on a 24 well plate and the expression levels of the target genes were determined using siGenome (GE Life Sciences), an siRNA, using LKH stEK, a staple peptide containing His, the next day. .
  • the siRNA concentration was maintained at 50 nM and mixed at a ratio as shown in FIG. 18A, and the expression amount of the target mRNA was confirmed after incubation with the cells for 24 hours at this concentration.
  • LKH stEK which is CPP
  • FIG. 18B when the same ratio is 1:50, it was confirmed that a significant amount of inhibition of the target gene was observed even under the condition of lower siRNA concentration.
  • the staple peptide has excellent cell permeability compared to other peptide derivatives.
  • Alpha-helix double-sided staple peptide according to the present invention has a high cell permeability, and can effectively deliver various physiologically active substances into cells.

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Abstract

본 발명은 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 그 용도에 관한 것으로, 구체적으로는 소수성 아미노산 및 친수성 아미노산을 포함하는 양면성의 알파나선형 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 이의 세포 내 활성물질 전달 용도에 관한 것이다.

Description

세포 투과성 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 그 용도
본 발명은 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 그 용도에 관한 것으로, 구체적으로는 소수성 아미노산 및 친수성 아미노산을 포함하는 양면성의 알파나선형 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 이의 세포 내 활성물질 전달 용도에 관한 것이다.
세포 투과 펩타이드 (cell penetrating peptide; CPP) 중 대표적인 예는 TAT 펩타이드, penetratin 펩타이드, 또는 인공적으로 제조한 알지닌이 7-9개 연결된 펩타이드 등이 대표적으로 알려져 있다. 이들의 특징은 알지닌이 풍부하여 세포 표면의 음하전 된 물질을 잘 인식하면서 endocytosis의 기작으로 세포 내로 들어가는 것으로 알려져 있다.
이러한 세포 투과 펩타이드는 세포 투과가 불가능한 단백질, 핵산과 같은 분자량이 큰 물질의 전달이나 소분자라 하더라도 세포 내 전달이 어려운 물질들을 세포내 전달하는 데 이용되어 왔다. 그러나, 이와 같은 기존 펩타이드는 충분한 세포 투과능을 보이기 위해서는 마이크로몰 농도를 필요로 한다. 이는 세포 투과성 펩타이드의 제조에서 세포에 전달하고자 하는 물질의 세포 투과능을 높이기 위해 공유결합을 이용한 컨주게이션에 필요한 물질이라는 면에서, 그 효율이 충분치 못하다. 세포내에 전달할 단백질이나 소분자 등의 생리활성 물질들은 마이크로몰 보다 더 낮은 농도에서 그 역할을 하는 경우가 대부분이기 때문이다. 따라서, 세포 투과 펩타이드가 좀 더 낮은 농도에서 좋은 효율성을 가지고 세포 내로 투과하는 기술에 대한 노력들이 계속 진행 중이다.
최근, 생리활성 단백질의 일부분인 펩타이드를 스테이플 펩타이드로 만들어 그 생리활성을 조절하고자 하는 노력이 이루어지고 있는 상황이다. 이와 같은 생리활성 조절을 위한 스테이플 펩타이드는 대부분 소수성 아미노산으로 이루어져 있다. 이는 단백질-단백질간 상호 작용에서 중요하게 역할을 하고있는 아미노산이 주로 소수성 작용기로 이루어져 있기 때문이다.
또한, 최근, 본 출원의 발명자들은 친수성 및 소수성 아미노산을 포함하는 양면성 알파나선 펩타이드의 두 개 이상의 특정 아미노산 위치에 공유결합 연결부위를 포함하는 펩타이드 다합체를 제조한 바 있다 (PCT/KR2014/009778). 이를 세포 투과 펩타이드로 이용될 수 있음을 확인하였다. 특히, PCT/KR2014/009778에서 본 출원의 발명자들은 양면성 펩타이드의 일부 소수성 잔기에 루신 대신 시스틴을 두 분자 도입하여 이를 두 개의 다이설파이드 결합으로 묶은 이합체 펩타이드를 제조하였다. 이와 같은 이합체 펩타이드들은 알파나선이 대폭적으로 증가되었고 화학적으로 안정하면서 세포 투과능력이 기존의 CPP에 비해 500 배 정도 증가된 세포 투과 능력을 가지고 있음을 확인하였다.
그러나, 하나의 펩타이드가 16개의 아미노산 잔기를 가지고 있다면, 이합체는 32개의 아미노산으로 구성된 펩타이드가 되므로, 스테이플링된 펩타이드를 제조하여 이합체 펩타이드의 세포 투과 능력과 비교하여 보는 것은 좀 더 우수한 세포 투과 펩타이드를 개발하기 위해 필요한 일이다.
이러한 기술적 배경하에서, 본 출원의 발명자들은 스테이플링된 펩타이드를 통해, 화학적 안정성이 유지되면서도, 펩타이드 모노머로서 세포 투과능력이 향상된 세포 투과 펩타이드를 제조할 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
발명의 요약
본 발명의 목적은 아미노산의 개수가 기존의 세포 투과 펩타이드에 비해 적으면서도, 효율적으로 세포 투과가 가능한 양면성의 알파나선형 스테이플 펩타이드, 이의 제조방법 및 그 용도를 제공하는 데 있다.
본 발명은 소수성 아미노산 및 친수성 아미노산을 포함하는 양면성의 알파나선형 스테이플 펩타이드로, 펩타이드를 구성하는 적어도 2개 이상의 아미노산이 서로 연결되어 있는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드를 제공한다. 이 때, 상기 아미노산은 알지닌, 라이신 및 히스티딘으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 친수성 아미노산을 포함하거나, 루신, 발린, 트립토판, 페닐알라닌, 타이로신 및 이소루신으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 소수성 아미노산을 포함할 수 있다.
본 발명은 또한, 다음 단계를 포함하는 스테이플 펩타이드의 제조방법을 제공한다: 이중결합을 포함하는 화합물로 기능기화된 아미노산을 복수개 제조하는 단계; 및 상기 아미노산을 특정 위치에 배열시켜 이중결합을 포함하는 화합물 사이의 반응에 의해 적어도 2개 이상의 아미노산을 서로 연결시키는 단계.
본 발명은 또한, 상기 스테이플 펩타이드 및 생물학적 활성물질을 포함하는 세포 내 활성물질 전달을 위한 조성물을 제공한다.
도 1은 알파나선형의 양면성 스테이플 펩타이드의 예로 stCK의 화학구조이다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따른 이량체의 알파나선형 양면성 펩타이드, 스테이플 펩타이드, BMB linker로 연결된 펩타이드의 세포 투과능을 유세포 분석기를 이용하여 보인 결과 (좌) 및 그 구조를 나타낸 모식도(우)이다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 따른 각 스테이플 펩타이드의 helical wheel representation 모식도 및 그 시퀀스이다.
도 4는 본 발명의 일 실시예에 따른 이량체의 알파나선형 양면성 펩타이드, 스테이플 펩타이드의 세포 투과능을 모두 같은 농도 (16 nM)에서 유세포 분석기를 이용하여 보인 결과이다.
도 5는 본 발명의 일 실시예에 따른 스테이플 펩타이드의 제조 과정을 나타내는 모식도이다.
도 6은 본 발명의 일 실시예에 따른 BMB linker를 연결한 펩타이드의 제조 과정을 나타내는 모식도이다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 따른 스테이플 펩타이드 (stCK)의 HPLC 확인 결과를 나타낸 그래프이다.
도 8은 본 발명의 일 실시예에 따른 스테이플 펩타이드 (stCK)의 질량을 MALDI-TOF로 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 9은 본 발명의 일 실시예에 따른 5-TAMRA 라벨링된 스테이플 펩타이드의 HPLC 확인 결과를 나타낸 그래프이다. 도 9a는 5-TAMRA labeled stAK, 도 9b는 5-TAMRA labeled stBK, 도 9c는 5-TAMRA labeled stCK, 도 9d는 5-TAMRA labeled stDK, 도 9e는 5-TAMRA labeled stEK의 HPLC 확인 결과를 나타낸 그래프이다.
도 10은 본 발명의 일 실시예에 따른 5-TAMRA 라벨링된 스테이플 펩타이드의 질량을 MALDI-TOF로 확인한 결과를 나타낸 그래프이다. 도 10a는 5-TAMRA labeled stAK, 도 10b는 5-TAMRA labeled stBK, 도 10c는 5-TAMRA labeled stCK, 도 10d는 5-TAMRA labeled stDK, 도 10e는 5-TAMRA labeled stEK의 질량을 MALDI-TOF로 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 11은 본 발명의 일 실시예에 따른 BMB linker 연결 펩타이드 (BMB CK)의 HPLC 확인 결과를 나타낸 그래프이다.
도 12은 본 발명의 일 실시예에 따른 BMB linker 연결 펩타이드 (BMB CK)의 질량을 MALDI-TOF로 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 13은 본 발명의 일 실시예에 따른 His 포함 스테이플 펩타이드 (LKH stEK)의 HPLC확인 결과를 나타낸 그래프이다.
도 14은 본 발명의 일 실시예에 따른 Cys 포함 스테이플 펩타이드(Cys stEK)의 HPLC확인 결과를 나타낸 그래프이다.
도 15은 본 발명의 일 실시예에 따른 His 포함 스테이플 펩타이드 (LKH stEK)의 질량을 MALDI-TOF로 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 16은 본 발명의 일 실시예에 따른 Cys 포함 스테이플 펩타이드 (LKH stEK)의 질량을 MALDI-TOF로 확인한 결과를 나타낸 그래프이다.
도 17은 본 발명의 일 실시예에 따른 스테이플 펩타이드 (stEK)를 이용하여 siRNA의 전달을 적용한 예로, 현광현미경을 이용해 siRNA의 전달을 확인한 결과이다.
도 18은 본 발명의 일 실시예에 따른 His 포함 스테이플 펩타이드를 이용하여 siRNA의 전달의 적용한 예로 타겟 RNA의 발현양을 RT-PCR 실험으로 확인한 결과이다.
발명의 상세한 설명 및 바람직한 구현예
일 관점에서, 본 발명은 소수성 아미노산 및 친수성 아미노산을 포함하는 양면성의 알파나선형 스테이플 펩타이드로, 펩타이드를 구성하는 적어도 2개 이상의 아미노산이 서로 연결되어 있는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드에 관한 것이다.
본 발명에서 사용되는 스테이플 펩타이드는 펩타이드를 구성하는 영역이 내부에서 또는 영역간 연결되는 것을 의미한다. 하나의 실시예에서, 알파나선의 화학적 안정성을 높이기 위해 알파나선의 i 위치와 i+4 위치 (또는 i+7, i+11 위치)를 여러 공유결합적 방법을 이용하여 스테이플링할 수 있다. 구체적으로, i, i+3, i+4, i+7, i+8, i+10 및 i+11 (i는 정수)로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상 위치의 아미노산을 스테이플링할 수 있다. 공유결합을 통해 아미노산을 스테이플링할 수 있으며, 이를 통해 세포 투과 능력도 향상될 수 있다. 경우에 따라서, i, i+3, i+4, i+7, i+8, i+10 및 i+11 (i는 정수)로 이루어진 군에서 선택된 둘 이상의 아미노산 위치를 스테이플링할 수 있다.
대표적으로는 두 아미노산은 이황화 결합, 탄소-탄소 이중결합, 또는 아미드 결합을 통해 연결될 수 있다. 예를 들어, 두 아미노산 위치 사이에 disulfide의 도입, metathesis 반응을 통한 탄소-탄소 이중결합의 도입, 아미드 결합의 도입, 마이클반응에 의한 짧은 링커의 도입 등의 방법이 있다. 이와 같은 스테이플링을 통해 원하는 화학적 안정성뿐 만이 아니라 세포 투과능력이 향상된 세포 투과 펩타이드를 제조할 수 있다는 가능성이 높아지고 있다.
펩타이드가 알파나선형인 경우, 사이클링 구조의 화합물이 적어도 2개 이상의 아미노산을 연결할 수 있다. 사이클링의 크기는 알파나선형 펩타이드의 아미노산 개수에 따라 달라질 수 있다. 또한, 상기 스테이플은 하나 이상 또는 복수개로 포함될 수도 있다.
특히, 본 발명의 일 실시예에서 상기 펩타이드 중 하나 이상의 아미노산이 이중결합 포함 화합물로 기능기화될 수 있다. 예를 들어, 이중결합 포함 화합물 사이의 폐환 복분해(ring-closing metathesis)를 통해 생성된 링 구조에 의해 아미노산이 연결될 수 있다. 이 때, 상기 기능기화된 아미노산은 알케닐 측쇄로 치환된 아미노산일 수 있다. 상기 알케닐은 펜테닐기， 핵세닐기， 헵테닐기， 옥테닐기， 노네닐기， 데세닐기， 운데케닐기， 및 도데케닐기로 구성된 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다.
상기 펩타이드를 구성하는 아미노산은 양면성을 나타내면서도 알파나선형 구조를 유지할 수 있도록 하는 것이면 그 종류가 제한되는 것은 아니나, 예를 들어 상기 친수성 아미노산은 알지닌, 라이신 및 히스티딘으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있고, 상기 소수성 아미노산은 루신, 발린, 트립토판, 페닐알라닌, 타이로신 및 이소루신으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상일 수 있다.
구체적으로, 본 발명에서는 라이신 및 류신으로 이루어진 양면성 알파나선형 펩타이드를 스테이플 펩타이드로 제조하여 기존에 알려진 스테이플 되지 않은 펩타이드 및 이미 알려진 세포 투과성 펩타이드와 세포 투과 능력을 비교하여, 본 발명에 따른 스테이플 펩타이드가 우수한 세포 투과 능력을 나타낼 수 있음을 확인하였다.
경우에 따라서, 상기 펩타이드는 세포 내 전달의 효율성을 높이기 위해서 히스티딘을 포함할 수 있다. 세포내 전달 후 세포 질로의 전달 과정 (endosomal escape)에 히스티딘이 작용할 수 있다. 상기 히스티딘은 펩타이드 중 라이신 위치에 예를 들어 3개 포함될 수 있다. 라이신 위치에 포함되거나, 1개 이상 포함되는 경우 펩타이드의 세포 내 전달 효율성이 향상될 수 있다.
또 다른 경우에 따라서, 상기 펩타이드는 N-말단 또는 C-말단에 시스테인을 추가로 포함할 수 있다. 상기 시스테인의 위치에 따라 전달하고자 하는 물질에 대한 전달 효율이 달라질 수 있다. 예를 들어, 이는 전달하고자 하는 물질의 특성에 따라 달라질 수 있다. 전달 물질이 전기적 음성을 가지는 물질인 경우 시스테인이 N-말단에 위치함으로써 펩타이드의 알파 나선도가 증가되고, 이에 따라 물질의 전달 효율이 증가할 수 있다. 전달 물질이 전기적 양성을 가지는 물질인 경우 시스테인이 C-말단에 위치함으로써 펩타이드의 알파 나선도 증가로 전달 효율이 증가할 수 있다.
추가적으로, N-말단 또는 C-말단에 추가된 시스테인과 펩타이드 사이에 별도의 링커를 도입할 수도 있다. 상기 링커의 형태는 복수개 예를 들어 하나 내지 세 개의 글리신 또는 알라닌을 포함하는 것일 수 있다. 링커의 길이 또는 종류에 따라 펩타이드의 물성 또는 전달 효율이 달라질 수 있으며, 링커의 길이에 따른 펩타이드의 물성 또는 전달 효율은 전달하고자 하는 물질에 따라 달라질 수 있다.
상기 펩타이드에 포함되는 아미노산의 수는 안정한 2차 구조인 알파나선 구조를 형성할 수 있다면 제한되지 않으나, 예를 들어 5-20개의 아미노산을 포함할 수 있다. 본 출원의 발명자들은 세포 투과 펩타이드에 비해 상대적으로 적은 개수의 아미노산을 가지면서도 (예를 들어, 16개의 아미노산으로 이루어짐) 이전에 개발된 24-32개의 아미노산을 가지는 CPP와 비교하여 세포 투과능력이 손색이 없음을 확인하였다. 이를 통해, 경제적으로도 활용도가 높은 세포 투과 펩타이드를 제조할 수 있게 된다.
친수성 아미노산의 아민기를 알파나선형 펩타이드의 한 면으로 모으기 위해, 친수성 아미노산이 한 개 내지 세 개씩 교대로 배열되어 있을 수 있으며, 나머지 서열은 소수성 아미노산이 한 개 내지 세 개씩 배열될 수 있다. 예를 들어, 상기 친수성 및 소수성 아미노산 각각이 한 개 내지 세 개씩 교대로 배열되어, 양면성 펩타이드 중 i+3 혹은 i+4 위치에 적어도 하나는 i 위치와 같은 극성을 지니는 아미노산을 포함할 수 있다.
구체적으로, 스테이플 펩타이드는 다음 서열 중 어느 하나를 포함할 수 있으며, 이들은 metathesis 반응을 통한 탄소-탄소 이중결합을 도입하여 제조된 스테이플 펩타이드이다. 아래 서열에서 R8는 (R)-2-(7'-옥테닐)알라닌, S5는 (S)-2-(4'-펜테닐)알라닌을 의미한다.
R8KKLLKLS5KKLLKLAG (서열번호 1)
LKKR8LKLLKKS5LKLAG (서열번호 2)
LKKLR8KLLKKLS5KLAG (서열번호 3)
LKKLLKR8LKKLLKS5AG (서열번호 4)
LKKLLKLR8KKLLKLS5G (서열번호 5)
LKKLLKLLR8KLLKLAS5 (서열번호 6)
LKHLLHLR8KHLLKLS5G (서열번호 7)
CLKKLLKLR8KKLLKLS5G (서열번호 8).
본 발명에 따른 스테이플 펩타이드는 세포 투과능이 우수하여 최소 농도로 사용하는 경우에도 목적하는 세포 투과능을 확보할 수 있다. 이를 통해, 우수한 세포 전달능을 나타낼 뿐 아니라, 낮은 농도의 생물학적 활성물질을 사용하여도 목적하는 효과를 획득할 수 있다.
저농도 (low nM)에서도 효율적으로 세포 투과능력을 가지는 펩타이드 다합체가 이미 발명자들에 의해 제조된 바 있다. 그러나, 이들 펩타이드 다합체는 24-32개 정도의 아미노산을 포함한다. 세포 투과 능력이 펩타이드를 구성하는 아미노산의 숫자 (또는 길이)에 비례하여 늘어나는 것은 아니므로, 지금까지 본 발명자가 얻었던 세포 투과 펩타이드에 비해 상대적으로 적은 개수의 아미노산을 가지면서도 (16개의 아미노산으로 이루어짐) 세포 투과능력이 24-32개의 아미노산을 가지는 CPP와 비교하여 손색이 없다면 경제적으로도 활용도가 높은 세포 투과 펩타이드를 제조할 수 있게 된다. 결과적으로, 세포 내 활성물질 전달 용도로 적은 개수의 아미노산을 함유한 세포 투과성 펩타이드를 제공하는 데 있다.
지금까지 본 발명자들의 연구 결과에 의해, 세포 투과 펩타이드가 가질 수 있는 일반적인 성질에 대한 연구 결과, 알파나선도를 높이는 것이 세포 투과 능력과 밀접한 연관 관계가 있다는 결론을 얻었다 (물론 높은 알파나선이 세포 투과 능력의 필요 충분조건은 아니다). 본 발명은 발명자가 시도한 양면성 펩타이드의 상기 양면성 알파나선형 펩타이드를 스테이플 펩타이드 형태로 제조하여, 세포 투과능을 높이고자 한다.
이를 바탕으로, 다른 관점에서 본 발명은 상기 스테이플 펩타이드 및 생물학적 활성물질을 포함하는 세포 내 활성물질 전달을 위한 조성물에 관한 것이다.
상기 생물학적 활성물질은 일종의 짐 (cargo)으로, 세포막 투과 도메인에 결합되어 세포 내로 전달됨으로써 생체 내의 모든 생리 현상을 조절하는 생물학적 활성 또는 기능을 조절하는 물질일 수 있으며, 예를 들어 DNA, RNA, siRNA, 압타머, 단백질, 항체 또는 세포독성 화합물일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
추가적으로 생물학적 활성 또는 기능을 조절하는 물질 또는 기타 전달체를 결합시킬 수 있으며, 이 때 펩타이드와 생물학적 활성 또는 기능을 조절하는 물질 또는 기타 전달체가 복합체 구조를 형성할 수 있다. 상기 물질 또는 전달체는 예를 들어, 스테이플 펩타이드와의 비공유성 결합 또는 공유성 결합을 통해 연결될 수 있다. 상기 비공유성 결합은 예를 들어, 수소결합, 정전기적 상호작용, 소수성상호작용, 반데르 발스 상호작용, 파이-파이 상호작용 및 양이온-파이 상호작용으로 이루어진 군에서 선택된 1종 이상일 수 있다. 상기 공유성 결합은 분해성 또는 비분해성 결합일 수 있으며, 상기 분해성 결합은 이황화 결합, 산분해성 결합, 에스테르 결합, 안하이드라이드 결합, 생분해성 결합 또는 효소 분해성 결합일 수 있고, 비분해성 결합은 아미드 결합 또는 포스페이트 결합일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 세포독성 화합물의 경우 펩타이드와 정전기적 결합 또는 host-guest 결합 등 비공유성 결합을 형성하여 연결될 수 있으며, 예를 들어 doxorubicin, Methotrexate, Paclitaxel, Cisplatin, Bleomycin, taxol, berberine 또는 curcumin일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 단백질 또는 항체의 경우 세포 내 특정 타겟에 특이적으로 결합하는 어떠한 형태의 약물이라도 포함할 수 있으며, N-말단 또는 C-말단에 융합되는 형태로 도입할 수 있다.
하나의 실시예에서, 상기 생물학적 활성물질은 세포 내 특정 타겟으로 전달된다면 함량은 제한되지 않으나, 최대의 효과를 나타내는 범위로 포함될 수 있다. 본 발명의 일 실시예에서, 상기 생물학적 활성물질 및 스테이플 펩타이드는 1:1 내지 1:100의 몰비, 예를 들어 1:2 내지 1:100의 몰비, 특히 1:2 내지 1:50의 몰비로 포함될 수 있다. 특히, 특정 몰비 예를 들어 1:50의 몰비에서 siRNA의 농도가 더 낮아지는 조건에서도 목적하는 타겟 유전자가 상당히 저해됨을 확인하였다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 다음 단계를 포함하는 스테이플 펩타이드의 제조방법에 관한 것이다: 이중결합을 포함하는 화합물로 기능기화 아미노산을 복수개 제조하는 단계; 및 상기 아미노산을 특정 위치에 배열시켜 이중결합을 포함하는 화합물 사이의 반응에 의해 적어도 2개 이상의 아미노산을 서로 연결시키는 단계.
상기 기능기화는 앞서 언급한 사이클링을 형성하여 2개 이상의 룹을 연결할 수 있도록 하는 구조라면 특별히 제한되지 않으며, 예를 들어, 알케닐 측쇄를 가지는 아미노산을 특정 위치에 배열시켜 사이클링을 통해 연결된 스테이플 펩타이드를 제조할 수 있다. 앞서 설명된 본 발명에 따른 각 구성은 제조방법에서도 동일하게 적용될 수 있다.
실시예
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시 예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 게 있어서 자명할 것이다.
실시예 1 : 스테이플 펩타이드의 제조
류신과 라이신으로 이루어진 알파나선형 펩타이드를 소수성면의 아미노산 중 i, i+7 위치로 이루어진 두 아미노산을 선택하여 i 위치에는 (R)-2-(7'-octenyl)alanine으로, i+7 위치에는 (S)-2-(4'-pentenyl)alanine을 치환하여 ring closure metathesis 방법을 통해 하이드로카본 스테이플 펩타이드를 제조하였다 (도 3). 아래의 표 1은 각 아미노산의 서열과 그 이름을 나타낸다.
Figure PCTKR2015012807-appb-T000001
aR8 ; (R)-2-(7'-octenyl)alanine, S5 ; (S)-2-(4'-pentenyl)alanine, 1-7 펩타이드는 C-말단에 amide, N-말단에 acetyl기를 포함하고, 8 펩타이드는 C-말단에 amide, N-말단에 amine을 포함함.
각 스테이플 펩타이드의 제조는 도 5와 같이 ring closure metathesis (RCM) 방법을 따른다. 스테이플이 되지 않은 unstapled 펩타이드는 standard Fmoc peptide synthesis 방법에 따라 합성하였고, RCM 단계에서는 앞서 보인 참고문헌에 따라 진행하였다. 간략하게, N-말단에 Fmoc 보호기가 있는 상태에서 펩타이드가 달려있는 레진 (30 μmol)을 이염화탄소와 이염화아세틸렌에 각각 1분간 3번씩 씻어주었다. 그후 이염화아세틸렌에 6 mM 농도로 녹인 Grubb’s first generation catalyst 1 mL를 위의 레진에 처리하여 상온에서 2 시간 질소 가스로 bubbling하면서 반응하였다. 이와 같은 반응을 한 번더 진행하여 반응을 완결하였고, 그 후 acetyl 작용기를 부착하거나, 5-TAMRA 형광을 부착하는 반응을 진행한 후 스테이플 펩타이드를 레진에서 분리하여 HPLC로 분리하였다.His 혹은 Cys를 포함하는 스테이플 펩타이드도 위와 동일한 방법으로 합성하였고, 각각 분리된 펩타이드의 HPLC trace는 도 7, 9, 13, 14와 같다.
분리된 펩타이드는 MALDI-TOF 질량분석기로 확인하였고, 그 결과는 도 8, 10, 15, 16과 같다. Ac stCK : MS [M+H]+: 1927.4 (calcd) 1928.7 (obsd). 5-TAMRA stAK : MS [M+H]+: 2298.5 (calcd) 2299.6 (obsd). 5-TAMRA stBK : MS [M+H]+: 2298.5 (calcd) 2298.2 (obsd). 5-TAMRA stCK : MS [M+H]+: 2298.5 (calcd) 2297.7 (obsd). 5-TAMRA stDK : MS [M+H]+: 2298.5 (calcd) 2298.1 (obsd). 5-TAMRA stEK : MS [M+H]+: 2340.6 (calcd) 2340.3 (obsd). LKH stEK : [M+H]+: 1996.32 (calcd), 1997.29 (obsd). Cys stEK [M+H]+: 2030.43 (calcd), 2030.75 (obsd).
스테이플 펩타이드의 대조군으로 BMB linker로 연결된 펩타이드를 제조하였다 (도 6). 이 펩타이드의 아미노산 시퀀스는 stCK와 유사하며, R8과 S5를 시스테인으로 치환하였다. N-말단에 5-TAMRA를 표지한 5-TAMRA-BMB CK는 위의 시스테인을 포함하는 펩타이드와 1,4-bis(maleimido)butane (BMB)를 동량 가하여 PBS 버퍼 (pH 7.4) 조건에서 반응하여 얻어졌다. 각각 분리된 펩타이드의 HPLC trace는 도 11과 같다. 분리된 펩타이드는 MALDI-TOF 질량분석기로 확인하였고, 그 결과는 도 12와 같다.
실시예 2 : 유세포 분석기를 이용한 세포 투과능 확인
5-TAMRA가 표지된 스테이플 펩타이드 5종, 선행 특허에서 얻어진 양면성 알파나선형의 이량체 펩타이드 (dimer CK), BMB linker로 연결된 펩타이드 (BMB CK)를 HeLa 세포 (human cervical cancer cell line)와 각각의 농도에서 인큐베이션하였다. 유세포 분석기 (FACS, fluorescence activated cell sorting) 실험 결과 (도 2, 4), 형광 양성세포의 백분율은 분석에 사용된 모든 농도에서 세포 투과능은 다음 순서로 증가함을 보여준다 (도 2): BMB CK < stCK < dimer CK.
스테이플 펩타이드(예, stCK)에 형광물질인 5-tetramethylrhodamine (5-TAMRA)를 부착하고 그 세포 투과능을 측정한 결과 약 30 nM에서 90% 이상의 세포에서 펩타이드를 포함하고 있음이 확인되었다 (도 2).
PCT/KR2014/009778에 기재된 바와 같이 알파나선형의 양면성 이량체 펩타이드(dimer CK)는 약 10 nM에서 대부분의 세포가 펩타이드를 보유하고 있음을 확인하였고, 본 발명에서의 스테이플 펩타이드 (stCK)는 약 30 nM에서 동일한 효율을 보이고 있다.
서로 다른 위치의 스테이플 펩타이드를 동일한 농도 (16 nM)에서 그 세포 투과능을 확인한 결과 st-AK < st-BK < st-CK < st-DK < st-EK의 순서로 형광 양성인 세포의 비율이 증가하고 있음을 확인하였다. 이는 스테이플 펩타이드의 hydrocarbon linker의 위치 및 아미노산의 시퀀스에 따라서 세포 투과능에 영향을 미침을 보이고 있다 (도 4).
반면, 1,4-bis(maleimido)butane (BMB) linker로 동일한 아미노산 위치에 연결하여 알파나선도를 높인 펩타이드의 경우는 500 nM에 이르러야 동일한 효율을 보이고 있다. 이는 제한된 conformation에 의해 세포내로 투과될 때의 세포막 혹은 세포막에 존재하는 단백질과의 조우 과정에서 이루어지는 상호작용에서 entropy의 상쇄를 보상받을 수 있을 것이라는 가정 및 높은 알파나선도가 세포 투과능에 기여하는 점 이외에도 linker 부분이 세포 투과능에 중요한 역할을 하고 있는 것으로 확인되었다. 여기서는 BMB와 같은 친수성의 linker보다는 hydrocarbon으로 이루어진 스테이플 펩타이드의 linker가 세포 투과능에 기여하는 면이 많다고 할 수 있다.
실시예 3 :현광 현미경을 이용한 siRNA 전달 효과 확인
HeLa cell (1.0 × 104 cells/well)을 8 well Lab-tek chamber slide (Thermo Scientific)에 키운 후 다음날 아래와 같은 조건에서 transfection하였다. DY-547이 표지된 siRNA (siGLO, GE life sciences)을 스테이플 펩타이드 stEK와 PBS 버퍼 조건, 상온에서 30분간 둔 후 OptiMEM media 배지와 섞어 24 시간 동안 세포와 같이 배양한 후 PBS 버퍼로 두번 씻어주었다. 그 후 형광 현미경 (Confocal LSM 710 system, Zeiss)으로 원하는 파장의 형광 필터를 사용하여 이미지를 관찰하고, 그 이미지를 저장한 결과이다. Positive control로 사용된 Dharmafect I 시약의 경우에서와 같이 stEK가 siRNA와의 몰비율로 2:1 혹은 10:1일 때에도 siRNA의 전달이 펩타이드에 의행 효율적으로 이루어지고 있음을 알 수 있다.
실시예 4 :real time qPCR을 이용한 펩타이드의 siRNA 전달 효과 확인
HeLa cell (5 × 104 cells/well)을 24 well plate에 키운 후 다음날 His을 포함하는 스테이플 펩타이드인 LKH stEK을 이용하여 siRNA인 siGenome (GE Life Sciences)를 이용하여 타겟 유전자의 발현양을 확인하였다. siRNA의 농도를 50 nM로 유지하고 도 18a에서 보이는 바와 같이 비율로 혼합하였고, 이 농도에서 24 시간 동안 세포와 같이 배양한 후 타겟 mRNA의 발현양을 확인하였다. 도 18의 a에서 보이는 바와 같이 CPP인 LKH stEK가 siRNA와의 몰비율이 1:50일 때 가장 효과적인 타겟유전자 저해 작용을 나타냄을 확인할 수 있었다. 또한 도 18b에서와 같이 동일한 비율인 1:50일 때, siRNA의 농도가 더 낮아지는 조건에서도 타겟 유전자의 저해현상이 상당량 보이는 것으로 확인되었다.
이를 통해, 본 발명에 따른 라이신과 류신으로 이루어진 알파나선형의 양면성 펩타이드의 경우 스테이플 펩타이드에서 다른 펩타이드 유도체에 비해 월등히 좋은 세포 투과능을 가지고 있다.
본 발명에 따른 알파나선형의 양면성의 스테이플 펩타이드는 높은 세포 투과능을 보유하여, 세포 내에 여러 생리활성 물질을 세포내로 효과적으로 전달할 수 있다.
본 발명이 속한 분야에서 통상의 지식을 가진 자라면 상기 내용을 바탕으로 본 발명의 범주내에서 다양한 응용 및 변형을 행하는 것이 가능할 것이다.
전자파일 첨부하였음.

Claims (20)

  1. 소수성 아미노산 및 친수성 아미노산을 포함하는 양면성의 알파나선형 스테이플 펩타이드로, 펩타이드를 구성하는 적어도 2개 이상의 아미노산이 서로 연결되어 있는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  2. 제1항에 있어서,
    i, i+3, i+4, i+7, i+8, i+10 및 i+11 (i는 정수)로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상 위치의 아미노산이 연결되는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 아미노산은 이황화 결합, 탄소-탄소 이중결합, 또는 아미드 결합을 통해 연결되는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드 중 하나 이상의 아미노산이 이중결합 포함 화합물로 기능기화된 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  5. 제4항에 있어서,
    상기 이중결합 포함 화합물 사이의 폐환 복분해(ring-closing metathesis)를 통해 생성된 링에 의해 아미노산이 연결되는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  6. 제4항에 있어서,
    상기 기능기화된 아미노산은 알케닐 측쇄를 포함하는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드는 알지닌, 라이신 및 히스티딘으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 친수성 아미노산을 포함하는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드는 루신, 발린, 트립토판, 페닐알라닌, 타이로신 및 이소루신으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 소수성 아미노산을 포함하는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  9. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드 중 친수성 및 소수성 아미노산 각각이 한 개 내지 세 개씩 교대로 배열되어 있는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  10. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드는 히스티딘을 필수적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  11. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드는 N-말단 또는 C-말단에 시스테인을 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  12. 제1항에 있어서,
    상기 펩타이드는 5-20개의 아미노산을 포함하는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드.
  13. 제1항에 있어서,
    다음 서열 중 어느 하나를 가지는 것을 특징으로 하는 스테이플 펩타이드:
    R8KKLLKLS5KKLLKLAG (서열번호 1),
    LKKR8LKLLKKS5LKLAG (서열번호 2),
    LKKLR8KLLKKLS5KLAG (서열번호 3),
    LKKLLKR8LKKLLKS5AG (서열번호 4),
    LKKLLKLR8KKLLKLS5G (서열번호 5),
    LKKLLKLLR8KLLKLAS5 (서열번호 6),
    LKHLLHLR8KHLLKLS5G (서열번호 7), 또는
    CLKKLLKLR8KKLLKLS5G (서열번호 8),
    상기 서열에서 R8는 (R)-2-(7'-옥테닐)알라닌, S5는 (S)-2-(4'-펜테닐)알라닌을 의미한다.
  14. 다음 단계를 포함하는 스테이플 펩타이드의 제조방법:
    이중결합을 포함하는 화합물로 기능기화된 아미노산을 복수개 제조하는 단계; 및
    상기 아미노산을 특정 위치에 배열시켜 이중결합을 포함하는 화합물 사이의 반응에 의해 적어도 2개 이상의 아미노산을 서로 연결시키는 단계.
  15. 제14항에 있어서,
    i, i+3, i+4, i+7, i+8, i+10 및 i+11 (i는 정수)로 이루어진 군에서 선택된 두 개 이상의 아미노산 위치에서 연결하는 것을 특징으로 하는 제조방법.
  16. 제14항에 있어서,
    상기 아미노산은 이중결합 포함 화합물 사이의 폐환 복분해(ring-closing metathesis)를 통해 생성된 링에 의해 연결되는 것을 특징으로 하는 제조방법.
  17. 제16항에 있어서,
    상기 기능기화된 아미노산은 알케닐 측쇄를 포함하는 것을 특징으로 하는 제조방법.
  18. 제1항 내지 제13항 중 어느 한 항에 따른 스테이플 펩타이드 및 생물학적 활성물질을 포함하는 세포 내 활성물질 전달을 위한 조성물.
  19. 제18항에 있어서, 상기 생물학적 활성물질은 DNA, RNA, siRNA, 압타머, 단백질, 항체 또는 저분자 화합물인 것을 특징으로 하는 조성물.
  20. 제18항에 있어서, 상기 생물학적 활성물질 및 스테이플 펩타이드는 1:2 내지 1:100의 몰비로 포함되는 것을 특징으로 하는 조성물.
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