WO2015064348A1 - 糖鎖不全ヒトＩｇＡ１ヒンジ部を認識するモノクローナル抗体及びその用途 - Google Patents

糖鎖不全ヒトＩｇＡ１ヒンジ部を認識するモノクローナル抗体及びその用途 Download PDF

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WO2015064348A1
WO2015064348A1 PCT/JP2014/077234 JP2014077234W WO2015064348A1 WO 2015064348 A1 WO2015064348 A1 WO 2015064348A1 JP 2014077234 W JP2014077234 W JP 2014077234W WO 2015064348 A1 WO2015064348 A1 WO 2015064348A1
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WO
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antibody
human
sugar chain
iga nephropathy
monoclonal antibody
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Application number
PCT/JP2014/077234
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English (en)
French (fr)
Inventor
能之 比企
哲雄 富山
Original Assignee
学校法人藤田学園
株式会社 富山研究所
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/42—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against immunoglobulins
    • C07K16/4283—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against immunoglobulins against an allotypic or isotypic determinant on Ig

Definitions

  • the present invention relates to an antibody useful for testing for IgA nephropathy. Specifically, the present invention relates to a monoclonal antibody that recognizes a sugar chain-deficient human IgA1 hinge part and a test method for IgA nephropathy and the like using the antibody.
  • This application claims the priority based on the Japan patent application 2013-228704 for which it applied on November 1, 2013, The whole content of the said patent application is used by reference.
  • IgA nephropathy accounts for about 40% of chronic nephritis in Japan, and about 40% of those suffering from end-stage renal failure without treatment.
  • the number of chronic maintenance dialysis patients in Japan continued to increase, reaching about 270,000 in 2008.
  • the estimated number of dialysis patients with this disease as the primary disease is estimated to be tens of thousands, and the development of treatment and prevention methods for this disease is considered to be one of the important issues from the medical economic viewpoint of reducing dialysis medical expenses. .
  • Non-patent Document 1 Moldoveanu et al.
  • Non-patent Document 2 Moldoveanu et al.
  • Non-patent Document 2 Moldoveanu et al.
  • GalNAc N-acetylgalactosamine
  • Patent Document 1 The research group of the inventors of the present application has advanced research under the above background and reported an antibody useful for testing IgA nephropathy and a test method using the antibody.
  • Patent Documents 2 to 5 prior patent documents relating to a test method (diagnostic method) for IgA nephropathy are disclosed below (Patent Documents 2 to 5).
  • Patent Document 2 a method for diagnosing IgA nephropathy using the difference in binding ability between IgA1 molecules
  • Patent Document 3 a method for diagnosing IgA nephropathy using an antibody against the IgA1 hinge region
  • Patent Document 4 IgA1 Methods for diagnosing IgA nephropathy using the number of sugar chains bound to the hinge as an index have been proposed.
  • Patent Document 5 discloses a monoclonal antibody that recognizes an IgA1 hinge portion containing an O-linked sugar chain to which galactose is not bound.
  • JP 2010-285419 A Japanese Patent Laid-Open No. 9-311132 Japanese Patent Laid-Open No. 10-111290 Japanese Patent Laid-Open No. 10-111291 International Publication No. 2011/081189 Pamphlet
  • the present invention provides a monoclonal antibody that has high specificity for sugar chain-deficient IgA1, which is characteristic of IgA nephropathy, and is useful for testing diseases associated with sugar chain-deficient IgA1 (particularly IgA nephropathy).
  • the issue is to provide.
  • It is also an object to provide a test method or test kit using the antibody.
  • Patent Document 5 shows an antibody that recognizes a sugar chain-deficient IgA1 hinge, its reactivity with clinical specimens has not been studied, and whether it is an antibody that can be clinically applied. It is unknown.
  • the rat-derived antibody class is IgG2a or IgG2b, and the antibody class is different from the monoclonal antibody disclosed in the present application.
  • the test method according to [7], wherein the disease is IgA nephropathy.
  • the inspection method according to [9] including the following steps (1) to (3): (1) contacting the monoclonal antibody according to any one of [1] to [6] with a human specimen; (2) detecting the immune complex produced by step (1); (3) A step of determining, based on the detection result, the presence or absence or possibility of IgA nephropathy, or the possibility of developing or developing IgA nephropathy.
  • the test method according to [10] or [11] wherein the human sample is a human sample after sialidase treatment.
  • test method according to any one of [10] to [12], wherein the human sample is a serum sample.
  • the test reagent according to [14], wherein the disease is an autoimmune disease.
  • the test reagent according to [14], wherein the disease is IgA nephropathy.
  • a test kit comprising the test reagent according to any one of [14] to [16].
  • the test kit according to [17] further comprising a labeled antibody against the test reagent.
  • a dose-dependent curve using sialidase-treated serum as a specimen is serum dilution factor, Y-axis is absorbance (490 nm).
  • Sialidase-treated serum was used as a specimen.
  • the Y axis is absorbance (490 nm).
  • Receiver operating characteristic curves (receiver ⁇ operating characteristic curves (ROC curve)) drawn between the IgA nephropathy patient group and other renal disease groups (upper left) and between the IgA nephropathy patient group and healthy subjects group (lower right) .
  • the first aspect of the present invention relates to a monoclonal antibody that specifically recognizes a sugar chain-deficient human IgA1 hinge region.
  • the antibodies herein are in an isolated state.
  • An “isolated antibody” includes an antibody that is natural and has not been subjected to any external manipulation (artificial manipulation), that is, an antibody that has been produced in a human body and remains there. Not included.
  • the isolated antibody may contain components other than the antibody (for example, purified water, buffer solution, preservation solution, protective agent).
  • the antibody of the present invention specifically recognizes a sugar chain-deficient human IgA1 hinge part as a feature.
  • the monoclonal antibody of the present invention does not recognize a human IgA1 hinge region to which no sugar chain is bound.
  • the IgA1 subtype is predominant in glomerular IgA in IgA nephropathy.
  • IgA1 has a characteristic structure in which a sugar chain is added to the hinge part. There are Ser (serine) and Thr (threonine) capable of binding O-linked sugar chains at the IgA1 hinge.
  • O-linked sugar chains are generally composed of N-acetylgalactosamine (GalNAc) and galactose (Gal) from the inside, and sialic acid (NeuAc) can be bound to the outside.
  • GalNAc N-acetylgalactosamine
  • Gal galactose
  • NeAc sialic acid
  • Decreased galactose content is observed in the O-linked sugar chain bound to the sugar chain-deficient human IgA1 hinge.
  • “decreased galactose content” means that the Gal content of the sugar chain bound to the hinge part is lower than that of a healthy person.
  • the hinge part of such a feature is expressed as a “sugar chain-deficient human IgA1 hinge part” for convenience in this specification.
  • the Gal content of the “glycan-deficient human IgA1 hinge part” is compared with the number of Gals in the sugar residues constituting the sugar chain of the entire hinge part.
  • Sugar chain is estimated to be about 80-90%.
  • the number of sugar chains that bind to the sugar chain-deficient human IgA1 hinge region recognized by the antibody of the present invention is not particularly limited, but is 4 to 5, for example.
  • the antibody of the present invention specifically recognizes a human IgA1 hinge portion to which a sugar chain not containing sialic acid and galactose is bound.
  • the “sugar chain not containing sialic acid and galactose” refers to a sugar chain composed of GalNAc residues.
  • the antibody of the present invention is a monoclonal antibody and exhibits high specificity for sugar chain-deficient human IgA1.
  • a “monoclonal antibody” is an antibody obtained from a clone derived from a single antibody-producing cell, and exhibits a much higher specificity than a polyclonal antibody that is a mixture of a plurality of types.
  • the method for preparing the monoclonal antibody of the present invention is not particularly limited, but typically, the monoclonal antibody of the present invention can be prepared by an immunological technique. For example, it can be prepared by the following procedure. First, an antigen is prepared and used to immunize animals such as rabbits, goats, sheep, mice, rats, and guinea pigs. Preferably, a mouse is used. As an antigen, a glycopeptide having the following sequence may be used. V represents valine, P represents proline, S represents serine, T represents threonine, and GalNac in parentheses represents O-linked N-acetylgalactosamine bound to the immediately preceding amino acid residue. VPST (GalNAc) PPT (GalNAc) PS (GalNAc) PS (GalNAc) TPPT (GalNAc) PSPS (SEQ ID NO: 1)
  • an example of the above-mentioned antigen is a glycopeptide corresponding to the hinge part of IgA1 antibody, and GalNAc is added at five positions.
  • the antigen there are a total of nine sites to which O-linked sugar chains can bind, as in the human IgA11 hinge region. It is also possible to employ an antigen to which GalNAc has been added at one to nine (for example, one, two, three, four) of these nine places.
  • the number of GalNAc addition sites is 5 or less, it is preferable to select an addition site from among the 5 sites to which GalNAc has been added in the above example of antigen.
  • the five sites correspond to sites where sugar chain addition is frequently observed in human IgA1.
  • the antigen can be prepared by using a known peptide synthesis method (for example, solid phase synthesis method, liquid phase synthesis method).
  • an antigen to which a carrier protein is bound is bound.
  • the carrier protein KLH (KeyholeHLimpet) Hemocyanin), BSA (Bovine Serum Albumin), OVA (Ovalbumin) and the like are used.
  • the carbodiimide method, the glutaraldehyde method, the diazo condensation method, the MBS (maleimidobenzoyloxysuccinimide) method, etc. can be used for the coupling
  • an antigen expressed as a fusion protein with GST, ⁇ -galactosidase, maltose-binding protein, histidine (His) tag or the like can also be used.
  • Such a fusion protein can be easily purified by a general method.
  • Immunization is repeated as necessary, and antibody-producing cells are removed from the immunized animal when the antibody titer sufficiently increases.
  • the obtained antibody-producing cells and myeloma cells are fused to obtain a hybridoma.
  • a clone producing an antibody having high specificity for the antigen is selected.
  • the target antibody can be obtained by purifying the culture medium of the selected clone.
  • the desired antibody can be obtained by growing the hybridoma to a desired number or more, then transplanting it into the abdominal cavity of an animal (for example, a mouse), growing it in the abdominal cavity and purifying it from ascites.
  • affinity chromatography For purification of the culture medium or ascites, affinity chromatography using protein G, protein A or the like is preferably used. Alternatively, affinity chromatography in which an antigen is immobilized may be used. Furthermore, methods such as ion exchange chromatography, gel filtration chromatography, ammonium sulfate fractionation, and centrifugation can also be used. These methods can be used alone or in any combination.
  • the present inventors succeeded in obtaining a plurality of monoclonal antibodies that specifically recognize a sugar chain-deficient human IgA1 hinge region by a method using a mouse as an immunized animal.
  • these antibodies were assigned clone numbers of No. 35A12, No. 35H10, No. 38A7, No. 43C5, No. 44H8 and No. 54B9.
  • the subclasses of these antibodies were determined as No.35A12 was IgG3 ( ⁇ chain), No.35H10 was IgG1 ( ⁇ chain), No.43C5 was IgG2b ( ⁇ chain), and No.44H8 was IgG1 ( ⁇ chain). .
  • 35A12 (35A12 strain) is deposited with a predetermined depository as follows.
  • Depositary Institution National Institute of Technology and Evaluation, Patent Microorganism Depositary Center (Room 2-5-8, Kazusa Kamashi, Kisarazu City, Chiba Prefecture 292-0818, Japan) Date of deposit (date of receipt): November 1, 2013 Number: NITE BP-01744
  • the monoclonal antibody of the present invention is derived from a mouse.
  • the antibody class is IgG3, IgG1, or IgG2b.
  • the monoclonal antibody of the present invention can be identified by the hybridoma 35A12 strain produced.
  • a monoclonal antibody that competitively reacts with an antibody produced by the hybridoma is provided. In general, antibody competition occurs when the epitopes are identical, the epitopes partially match, or the epitope positions are close. What is a competitive reaction?
  • the second aspect of the present invention relates to a test method which is one of the uses of the monoclonal antibody of the present invention.
  • sugar chain deficiency IgA1 is involved in the progression of IgA nephropathy.
  • glycan deficiency IgA1 may be involved in the pathogenesis of diseases other than IgA nephropathy, specifically autoimmune diseases such as systemic lupus erythematosus and Henoch-Schonlein purpura. It has been reported (Seminars inNephrology28 (1), 78 (2008)).
  • sugar chain-deficient human IgA1 is detected using the monoclonal antibody of the present invention in order to test for diseases involving sugar chain-deficient IgA1.
  • the “disease associated with sugar chain insufficiency IgA1” is not particularly limited, and includes IgA nephropathy, systemic lupus erythematosus, Henoch-Schenlein purpura chronic glomerulonephritis and the like.
  • the monoclonal antibody of the present invention specifically recognizes the sugar chain-deficient IgA1 hinge part. Therefore, according to the test method using the monoclonal antibody of the present invention, sugar chain-deficient IgA1 in a sample can be specifically detected.
  • the detection results indicate whether or not a disease associated with sugar chain deficiency IgA1 (especially IgA nephropathy) is present or present, or a disease associated with sugar chain deficiency IgA1 (particularly IgA nephropathy). It is useful information to know the possibility. For example, when targeting a patient with IgA nephropathy, it is possible to obtain information useful for evaluation or grasping of the patient's disease state, evaluation of therapeutic effect, and the like.
  • the test method of the present invention can be used for monitoring the therapeutic effect.
  • the subject is a person other than the patient, for example, a person who has not been certified with IgA nephropathy, useful information for early diagnosis is obtained, and prevention or early treatment intervention is possible.
  • the cause of this disease may be multiple, and IgA nephropathy that develops due to this sugar chain-deficient IgA1 may be identified as a subtype by this technique.
  • detection methods include ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay), radioimmunoassay, FACS (fluorescence activated cell sorting), immunoprecipitation, immunoblotting, immunoturbidimetry, electrochemiluminescence, chemiluminescence, fluorescence
  • ELISA Enzyme-Linked Immunosorbent Assay
  • FACS fluorescence activated cell sorting
  • immunoprecipitation immunoblotting
  • immunoturbidimetry electrochemiluminescence
  • chemiluminescence chemiluminescence
  • fluorescence fluorescence
  • a qualitative or quantitative method such as a luminescence method may be mentioned.
  • An immunohistochemical staining method can also be employed. Among them, it is preferable to detect sugar chain-deficient IgA1 using ELISA methods (sandwich ELISA, competitive ELISA, etc.).
  • the ELISA method has many advantages such as high detection sensitivity, high specificity, excellent quantitativeness, simple operation, and suitability for
  • the following steps (1) to (3) are performed.
  • a human specimen is prepared and contacted with the antibody of the present invention (a monoclonal antibody that specifically recognizes a sugar chain-deficient human IgA1 hinge part).
  • the human specimen may be prepared from a biological fluid such as serum, plasma, urine, spinal fluid, ascites, pleural effusion of the subject (IgA nephropathy patient or healthy subject). Serum is preferably used. If serum is used, simple measurement is possible. Further, preferably, a specimen after sialidase treatment is used. That is, a sample obtained by removing sialic acid from the sugar chain of the hinge part in advance is used. The specificity of the antibody becomes clear by sialidase treatment. A commercially available sialidase (for example, Boehringer Mannheim, Roche Diagnostics) may be used.
  • step (1) When the sample contains sugar chain-deficient human IgA1, as a result of step (1), specific binding by the antibody of the present invention occurs, resulting in an immune complex (complex of antibody of the present invention and sugar chain-deficient IgA1). Body) is formed.
  • step (2) the immune complex is detected.
  • step (3) based on the detection result in step (2), the presence or absence or possibility of IgA nephropathy, or the possibility of developing or developing IgA nephropathy is determined. Determining “possibility to develop or develop IgA nephropathy” is “prediction of the occurrence or development of IgA nephropathy”. Thus, the present invention can also be used for predicting the morbidity or development of IgA nephropathy. Furthermore, the cause of this disease may be multiple, and IgA nephropathy that develops due to this sugar chain-deficient IgA1 may be identified as a subtype by this technique.
  • the determination here may be either qualitative or quantitative. Examples of qualitative judgment and quantitative judgment are shown below. It should be noted that the determination here can be automatically / mechanically performed without depending on the determination of a person having specialized knowledge such as a doctor or a laboratory technician, as is apparent from the determination criteria.
  • IgA nephropathy When detected (ie, positive) “I am suffering from IgA nephropathy”, “I am likely to be suffering from IgA nephropathy”, or “I am likely to suffer from IgA nephropathy in the future When it is judged as “high” and is not detected (ie, when it is negative), it is “not likely to have IgA nephropathy”, “highly likely not to have IgA nephropathy”, or “in the future, IgA nephropathy” Is less likely to be affected ”.
  • Detection value ab 10% or less possibility of having IgA nephropathy Detection value b to c: 10% to 30% possibility of having IgA nephropathy Detection value cd: 30% to 50% likely to have IgA nephropathy Detected values d to e: 50% to 70% likely to have IgA nephropathy Detection values ef: 70% to 90% likely to have IgA nephropathy
  • Detected values a to b 10% or less likely to have IgA nephropathy in the future Detected values b to c: 10 to 30% likely to have IgA nephropathy in the future Detection value cd: 30% -50% chance of suffering from IgA nephropathy in the future Detected value d to e: 50% to 70% likely to have IgA nephropathy in the future Detected values ef: 70% to 90% likely to have IgA nephropathy in the future
  • the following steps (i) to (iv) are performed.
  • the step of contacting the immobilized antibody of the present invention with a human specimen ii) the step of contacting the anti-human IgA antibody after removing the non-specific binding component
  • the non-specific binding component iii) the non-specific binding component Step of detecting the specifically bound anti-human IgA antibody after removal
  • the antibody of the present invention (monoclonal antibody that specifically recognizes the sugar chain-deficient human IgA1 hinge region), that is, the antibody of the present invention immobilized on an insoluble support (hereinafter, “solid phase”) is used.
  • an insoluble support for example, a resin such as polystyrene resin, polycarbonate resin, silicon resin, nylon resin, or a water-insoluble substance such as glass can be used.
  • the anti-human IgA antibody for example, a commercially available one (for example, Jackson Immuno Reseach Labs) may be used.
  • the form of the insoluble support is not particularly limited. Examples of forms of insoluble supports are wells, plates.
  • the human specimen is brought into contact with the immobilized antibody.
  • sugar chain-deficient IgA1 is present in the human sample, it is trapped in the immobilized antibody.
  • biological fluids such as serum, plasma, urine, spinal fluid, ascites, pleural effusion of the subject (IgA nephropathy patient or healthy person) are used.
  • Serum is preferably used. If serum is used, simple measurement is possible.
  • a human sample that has been treated with sialidase in advance is used.
  • the non-specific binding component is washed away and then contacted with an anti-human IgA antibody.
  • an anti-human IgA antibody binds to the sugar chain-deficient IgA1 and an immune complex is formed.
  • the sugar chain-deficient IgA1 is not trapped in the immobilized antibody, specific binding by the anti-human IgA antibody does not occur.
  • the amount of immune complex formed varies depending on the state of capture of the sugar chain-deficient IgA1 in the solid-phased antibody (reflecting the sugar chain state of the IgA1 hinge part in the human specimen). In the present invention, this difference is used to determine IgA nephropathy.
  • An anti-IgA1 antibody is preferably used as the anti-human IgA antibody.
  • the anti-IgA1 antibody may be polyclonal or monoclonal.
  • step (iii) the non-specific binding component is washed away, and then the specifically bound antibody (in other words, immune complex) is detected.
  • the specifically bound antibody in other words, immune complex
  • the labeled amount may be detected directly after washing away non-specific binding components.
  • contacting the labeled antibody to the antibody used in step (ii) step (iii-1)
  • removing the non-specific binding component A step (step (iii-2)) of detecting the labeled antibody bound thereto is carried out.
  • fluorescent dyes such as fluorescein, rhodamine, Texas red, oregon green, horseradish peroxidase, microperoxidase, alkaline phosphatase, ⁇ -D-galactosidase, etc.
  • Enzymes, chemical or bioluminescent compounds such as luminol and acridine dyes, radioisotopes such as 32 P, 131 I, and 125 I, biotin, and the like can be used.
  • Many labeled antibodies for example, labeled anti-rabbit IgG antibodies
  • labeled anti-rabbit IgG antibodies that can be used as secondary antibodies are commercially available, and the labeled antibodies can also be used.
  • step (iv) based on the detection results, the presence or absence or possibility of IgA nephropathy or the possibility of developing or developing IgA nephropathy is determined. Since this step is the same as step (3) in the above embodiment, its description is omitted.
  • the third aspect of the present invention relates to a test reagent for diseases involving sugar chain deficiency IgA1.
  • the reagent of the present invention can be suitably used in the test method of the present invention, it can also be used as an experimental tool for studying the onset mechanism and symptom progression mechanism of diseases (particularly IgA nephropathy) involving sugar chain deficiency IgA1. Can be used.
  • the cause of this disease may be multiple, and IgA nephropathy that develops due to this sugar chain-deficient IgA1 may be identified as a subtype such as “sugar chain-deficient IgA nephropathy” by this method.
  • the test reagent of the present invention contains the antibody of the present invention.
  • the test reagent of the present invention may be provided in a state of being immobilized on an insoluble support (solid phase reagent). Alternatively, it may be provided in a labeled state (fluorescent label, enzyme label, etc.).
  • the fourth aspect of the present invention provides a kit (test kit) that can be used in the test method of the present invention.
  • the kit of the present invention comprises the test reagent of the present invention. Reagents, diluents, reaction containers and the like necessary for carrying out the inspection method of the present invention can be included in the kit.
  • the kit of the present invention usually includes instructions for use. By using the kit, the test method of the present invention can be carried out more easily and in a shorter time.
  • a secondary antibody (labeled antibody against the test reagent of the present invention) is included in addition to the test reagent of the present invention.
  • a series of operations such as formation of an immune complex by contact between the test reagent of the present invention and a sample, binding of a labeled antibody to the immune complex, and measurement of the amount of bound label are performed. Can be implemented.
  • a standard sample may be included in the kit of the present invention.
  • the standard sample here serves as a reference for evaluating the detection result using the kit of the present invention.
  • a sugar chain-deficient IgA1 or sugar chain-deficient IgA1 hinge peptide or a part thereof is used as a standard sample.
  • Standard samples can be prepared by synthesis or by separation and purification from the serum of patients with IgA nephropathy.
  • sHGP has the following structure in which GalNAc is added to five sites that are said to have a high frequency of O-glycan side chains in the 19-mer amino acid sequence of the human IgA1 hinge.
  • VPST GalNAc
  • PPT GalNAc
  • PS GalNAc
  • TPPT GalNAc
  • PSPS-NH 2 SEQ ID NO: 1
  • mice Two types of synthetic peptides (human IgA1 hinge glycopeptide (sHGP) and human IgA1 hinge peptide), which are haptens, were subjected to KLH (manufactured by 77600 Thermo) and glutaraldehyde method. OVA (77120 Thermo) was bound to obtain antigens for immunization (KLM binding) and antibody screening (OVA binding).
  • KLM binding human IgA1 hinge glycopeptide
  • OVA 77120 Thermo
  • Equal amounts of the prepared antigen (KLM-binding sHGP) and adjuvant (TiterMaxGold: G3 Funakoshi) were mixed, and 100 ⁇ g of antigen was subcutaneously administered to BALB / cA mouse 6 old female (manufactured by CLEA Japan) at intervals of 2 weeks. The administration was divided into two doses, and after 1 to 2 weeks, only 40 ⁇ g of the antigen solution was subcutaneously administered. Three days later, whole blood was collected under anesthesia, and the spleen and various lymph nodes were collected.
  • the same assay is performed and the target antibody candidate is selected. Sorted out.
  • the selected cells were transferred to a culture plate and expanded. Clinical evaluation was performed using the culture supernatant as a sample. Specifically, using IgA nephropathy patient serum and healthy subject serum, the reactivity of each antibody was evaluated by ELISA, and clones that responded not only to synthetic peptides but also to IgA in vivo were selected. Selected clones were established as single clones by limiting dilution.
  • the 35A12 strain that produces an antibody capable of clearly distinguishing IgA nephropathy patients from healthy individuals was selected as a superior strain.
  • the 35A12 strain was deposited as follows. Depositary Institution: National Institute of Technology and Evaluation, Patent Microorganisms Deposit Center (Room No. 2-5-8, Kazusa Kamashi, Kisarazu City, Chiba Prefecture 292-0818, Japan) Date of deposit (reception date): November 1, 2013 Number: NITE BP-01744
  • the subclass was determined by a commercially available immunochromatography method (monoclonal antibody isotyping kit 1493027 Roche) using the culture supernatant of each sufficiently cloned hybridoma strain. The operation followed the attached manual.
  • the subclass of the antibody produced by the 35A12 strain is IgG3 ( ⁇ chain)
  • the subclass of the antibody produced by the 35H10 strain is IgG1 ( ⁇ chain)
  • the subclass of the antibody produced by the 43C5 strain is IgG2b ( ⁇ chain)
  • the subclass of the antibody produced by the 44H8 strain was determined to be IgG1 ( ⁇ chain).
  • ELISA method (2-1) Preparation of ELISA plate 50 ⁇ l of 0.05 M bicarbonate buffer (pH 9.6) containing monoclonal antibody ((IgG fraction) adjusted to 10 ⁇ g / ml was added to polystyrene microtiter plate (Corning, NY , USA) was added to each well, left overnight (O / N) at 4 ° C., and the monoclonal antibody was coated on the plate.0.01M PBS-0.05% Tween-20 (pH 7.4, hereinafter referred to as PBST) After washing three times with abbreviated), PBST solution containing 1% bovine serum albumin (BSA; Sigma Chemical Company, St Louis, MO, USA) was added at 100 ⁇ l / well, and blocking was performed by allowing to stand at room temperature for 1 hour.
  • BSA bovine serum albumin
  • the sensitivity / specificity of this antibody was considered to be clinically applicable.
  • the antibody of the present invention is used in a test method for diseases (particularly IgA nephropathy) associated with sugar chain deficiency IgA1.
  • diseases particularly IgA nephropathy
  • sugar chain deficiency IgA1 sugar chain deficiency 1
  • IgA nephropathy can be examined with high sensitivity and specificity.

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Abstract

　IgA腎症に特徴的な糖鎖不全IgA1に対する特異性が高く、IgA腎症などの検査に有用であるモノクローナル抗体を提供することを課題とする。糖鎖不全ヒトIgA1に対する抗体であって、シアル酸及びガラクトースを含まない糖鎖が結合したヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識するモノクローナル抗体が提供される。

Description

糖鎖不全ヒトＩｇＡ１ヒンジ部を認識するモノクローナル抗体及びその用途
　本発明はIgA腎症の検査に有用な抗体に関する。詳しくは、糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部を認識するモノクローナル抗体及び当該抗体を利用したIgA腎症等の検査法に関する。本出願は、２０１３年１１月１日に出願された日本国特許出願第２０１３－２２８７０４号に基づく優先権を主張するものであり、当該特許出願の全内容は参照により援用される。
　IgA腎症は我が国では慢性腎炎の約40%を占め、未治療ではその約40%が末期腎不全に陥る。我が国の慢性維持透析患者は増加の一途をたどり2008年には約27万人あまりとなった。そのうち本症を原疾患とした透析患者は推定数万人とされ、本症への治療法・予防法の開発は透析医療費の抑制という医療経済的見地からも、重要課題の一つと考えられる。
　現在のところ、IgA腎症の検査は生検のみであり、簡易で精度の高い検査法の確立が望まれている。実際、いくつかの研究グループによって、IgA腎症の検査法を確立する目的の下、精力的な研究が行われている。その一つとして、Moldoveanuら（非特許文献１）及び本発明者らの研究グループ（非特許文献２）は、IgA1とN-アセチルガラクトサミン（以下、「GalNAc」ともいう）を認識するレクチン（helix aspersa:HAA）との結合度を検討し、IgA腎症患者で有意な増加が観察されることを報告した。しかしながら、ROC曲線による解析の結果は、「HAAとの結合度」が本症診断のマーカーとして臨床応用される可能性を否定するものであった。また、臨床病理学的重症度や、扁摘パルス治療と「HAAとの結合度」の間に関連は認めず、疾患の進行度、治療効果の判定指標として有効でないことが示唆された。
　本願発明者らの研究グループは、以上の背景の下で研究を進め、IgA腎症の検査に有用な抗体とそれを利用した検査法を報告した（特許文献１）。
　尚、IgA腎症の検査法（診断法）に関する先行特許文献を以下に開示する（特許文献２～５）。特許文献２ではIgA1分子間の結合能の差を利用してIgA腎症を診断する方法、特許文献３ではIgA1ヒンジ部に対する抗体を利用してIgA腎症を診断する方法、特許文献４ではIgA1ヒンジ部に結合する糖鎖数を指標としてIgA腎症を診断する方法がそれぞれ提案されている。また、特許文献５には、ガラクトースが結合していないO結合型糖鎖を含むIgA1ヒンジ部を認識するモノクローナル抗体が開示されている。
特開２０１０－２８５４１９号公報 特開平９－３１１１３２号公報 特開平１０－１１１２９０号公報 特開平１０－１１１２９１号公報 国際公開第２０１１／０８１１８９号パンフレット
Moldoveanu A, Wyatt RJ, Lee JY, et al: Patients with IgA nephropathy have increased serum galactose-deficient IgA1 levels. Kidney Int 11: 1148-1154, 2007 Shimozato S, Hiki Y, Odani H, et al: Serum under-galactosylated IgA1 is increased in Japanese patients with IgA nephropathy. Nephrol Dial Transplant 6: 1931-1939, 2008
　以上の背景の下、本発明は、IgA腎症に特徴的な糖鎖不全IgA1に対する特異性が高く、糖鎖不全IgA1が関与する疾患（特にIgA腎症）の検査に有用であるモノクローナル抗体を提供することを課題とする。また、当該抗体を利用した検査法や検査キット等を提供することも課題とする。尚、上掲の特許文献５には、糖鎖不全IgA1ヒンジ部を認識する抗体が示されているが、臨床検体との反応性は検討されておらず、臨床応用可能な抗体であるかは不明である。また、ラット由来、抗体クラスがIgG2a又はIgG2bであり、本願が開示するモノクローナル抗体とは由来、抗体クラスが異なる。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく、糖鎖不全IgA1に特異性の高いモノクローナル抗体の取得を目指して鋭意検討した。その結果、糖鎖不全IgA1に対して特異的結合性を示すモノクローナル抗体の作製に成功するとともに、作製したモノクローナル抗体がIgA腎症の検査（診断）に極めて有効であることが確認された。以下に示す本発明は主として以上の成果・知見に基づく。
　［１］糖鎖不全ヒトIgA1に対する抗体であって、シアル酸及びガラクトースを含まない糖鎖が結合したヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識する、モノクローナル抗体。
　［２］以下の配列：VPST(GalNAc)PPT(GalNAc)PS(GalNAc)PS(GalNAc)TPPT(GalNAc)PSPS（配列番号１）（但し、Vはバリンを、Pはプロリンを、Sはセリンを、Tはスレオニンを、括弧内のGalNacは直前のアミノ酸残基に結合したO結合型N-アセチルガラクトサミンをそれぞれ表す）、からなる合成ヒンジ部糖ペプチドに対する抗体として調製された抗体である、［１］に記載の抗体。
　［３］糖鎖が結合していないヒトIgA1ヒンジ部を認識しない、［１］又は［２］に記載のモノクローナル抗体。
　［４］マウス由来の抗体である、［１］～［３］のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
　［５］抗体クラスがIgG3、IgG1又はIgG2bの抗体である、［４］に記載のモノクローナル抗体。
　［６］ハイブリドーマ35A12株が産生する抗体、又は該抗体と競合反応する抗体である、［１］～［５］のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
　［７］［１］～［６］のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体によって、糖鎖不全ヒトIgA1を検出することを特徴とする、糖鎖不全IgA1が関与する疾患の検査法。
　［８］前記疾患が自己免疫疾患である、［７］に記載の検査法。
　［９］前記疾患がIgA腎症である、［７］に記載の検査法。
　［１０］以下のステップ(1)～(3)を含む、［９］に記載の検査法：
　(1)［１］～［６］のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体と、ヒト検体とを接触させるステップ；
　(2)ステップ(1)によって生じた免疫複合体を検出するステップ；
　(3)検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定するステップ。
　［１１］以下のステップ(i)～(iv)を含む、［９］に記載の検査法：
　(i)固相化した、［１］～［６］のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体と、ヒト検体とを接触させるステップ；
　(ii)非特異的結合成分を除去した後、抗ヒトIgA抗体を接触させるステップ；
　(iii)非特異的結合成分を除去した後、特異的に結合した前記抗ヒトIgA抗体を検出するステップ；
　(iv)検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定するステップ。
　［１２］ヒト検体がシアリダーゼ処理後のヒト検体である、［１０］又は［１１］に記載の検査法。
　［１３］ヒト検体が血清検体である、［１０］～［１２］のいずれか一項に記載の検査法。
　［１４］［１］～［６］のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体を含む、糖鎖不全IgA1が関与する疾患の検査用試薬。
　［１５］前記疾患が自己免疫疾患である、［１４］に記載の検査用試薬。
　［１６］前記疾患がIgA腎症である、［１４］に記載の検査用試薬。
　［１７］［１４］～［１６］のいずれか一項に記載の検査用試薬を含む、検査キット。
　［１８］検査用試薬に対する標識化抗体を更に含む、［１７］に記載の検査キット。
シアリダーゼ処理した血清を検体とした用量依存曲線。X軸は血清希釈倍率、Y軸は吸光度（490nm）。 ELISA法の結果。血清検体とモノクローナル抗ヒンジ部糖ペプチド（HGP）抗体の結合性を、IgA腎症患者群、健常者群、その他の腎疾患群の間で比較した。検体にはシアリダーゼ処理した血清を用いた。Y軸は吸光度（490nm）。 IgA腎症患者群とその他の腎疾患群の間（左上）及びIgA腎症患者群と健常者群の間（右下）で描いた受信者動作特性曲線（receiver operating characteristic curves（ROC曲線））。
　本発明の第１の局面は、糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識するモノクローナル抗体に関する。特に言及しない限り、本明細書における抗体は単離された状態である。「単離された状態の抗体」には、天然であって且つ何ら外的操作（人為的操作）が施されていない抗体、即ちあるヒト体内で産生され、そこに留まっている状態の抗体は含まれない。尚、単離された状態の抗体は、抗体以外の成分（例えば精製水、緩衝液、保存液、保護剤）を含んでいてもよい。
　本発明の抗体は、その特徴として、糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識する。好ましくは、本発明のモノクローナル抗体は、糖鎖が結合していないヒトIgA1ヒンジ部を認識しない。ヒトIgAにはIgA1とIgA2の二つのサブタイプが存在する。IgA腎症での糸球体沈着IgAはIgA1サブタイプが優位である。IgA1はヒンジ部に糖鎖が付加された特徴的な構造を有する。IgA1ヒンジ部にはO結合型糖鎖が結合できるSer（セリン）とThr（スレオニン）が存在する。O結合型糖鎖は一般に内側からN-アセチルガラクトサミン（GalNAc）とガラクトース（Gal）により構成され、更にその外側にシアル酸（NeuAc）が結合し得る。糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部に結合したO結合型糖鎖では、ガラクトース含量の低下が認められる。本明細書において「ガラクトース含量の低下した」とは、ヒンジ部に結合した糖鎖のGal含量が健常者の場合よりも低いことを意味する。健常者のIgA1のヒンジ部と区別するため、このような特徴のヒンジ部を本明細書では便宜上「糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部」と表現する。質量分析による検討の結果からは、「糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部」のGal含量は、ヒンジ部全体の糖鎖を構成する糖残基に占めるGalの数で比較して、健常者の場合（糖鎖）の約80～90％と推定される。本発明の抗体が認識する糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部に結合する糖鎖の数は特に限定されないが、例えば４～５である。
　本発明の抗体は、シアル酸及びガラクトースを含まない糖鎖が結合したヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識する。「シアル酸及びガラクトースを含まない糖鎖」とは、GalNAc残基からなる糖鎖のことをいう。
　本発明の抗体はモノクローナル抗体であり、糖鎖不全ヒトIgA1に対して高い特異性を発揮する。「モノクローナル抗体」は、単一の抗体産生細胞に由来するクローンから得られる抗体であり、複数種の混合物であるポリクローナル抗体に比較して格段に高い特異性を示す。
　本発明のモノクローナル抗体の調製法は特に限定されないが、典型的には免疫学的手法によって本発明のモノクローナル抗体を調製することができる。例えば次の手順で調製することができる。まず、抗原を調製し、これを用いてウサギ、ヤギ、ヒツジ、マウス、ラット、モルモット等の動物に免疫を施す。好ましくはマウスを用いる。抗原としては、以下の配列からなる糖ペプチドを用いるとよい。尚、Vはバリンを、Pはプロリンを、Sはセリンを、Tはスレオニンを、括弧内のGalNacは直前のアミノ酸残基に結合したO結合型N-アセチルガラクトサミンをそれぞれ表す。
　VPST(GalNAc)PPT(GalNAc)PS(GalNAc)PS(GalNAc)TPPT(GalNAc)PSPS（配列番号１）
　上掲の抗原の例はIgA1抗体のヒンジ部に相当する糖ペプチドであり、５箇所にGalNAcが付加されている。当該抗原では、ヒトIgA1１ヒンジ部と同様、O結合型糖鎖が結合できる部位が合計９箇所存在する。この９箇所の内、１箇所ないし９箇所（例えば１箇所、２箇所、３箇所、４箇所）にGalNAcを付加した抗原を採用することも可能である。GalNAcの付加部位が５個以下の場合には、上掲の抗原の例でGalNAcを付加した５箇所の部位の中から付加部位を選択することが好ましい。当該５箇所の部位は、ヒトIgA1において糖鎖の付加が高頻度に観察される部位に相当する。尚、抗原は公知のペプチド合成法（例えば固相合成法、液相合成法）を利用して調製することができる。
　免疫惹起作用を増強するために、キャリアタンパク質を結合させた抗原を用いることが好ましい。キャリアタンパク質としてはKLH（Keyhole Limpet Hemocyanin）、BSA（Bovine Serum Albumin）、OVA（Ovalbumin）などが使用される。キャリアタンパク質の結合にはカルボジイミド法、グルタルアルデヒド法、ジアゾ縮合法、MBS（マレイミドベンゾイルオキシコハク酸イミド）法などを使用できる。一方、GST、βガラクトシダーゼ、マルトース結合タンパク、又はヒスチジン（His）タグ等との融合タンパク質として発現させた抗原を用いることもできる。このような融合タンパク質は、汎用的な方法により簡便に精製することができる。
　必要に応じて免疫を繰り返し、十分に抗体価が上昇した時点で免疫動物から抗体産生細胞を摘出する。次に、得られた抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合してハイブリドーマを得る。続いて、このハイブリドーマをモノクローナル化した後、抗原に対して高い特異性を有する抗体を産生するクローンを選択する。選択されたクローンの培養液を精製することによって目的の抗体が得られる。一方、ハイブリドーマを所望数以上に増殖させた後、これを動物（例えばマウス）の腹腔内に移植し、腹腔内で増殖させて腹水から精製することにより目的の抗体を取得することもできる。上記培養液の精製又は腹水の精製には、プロテインG、プロテインA等を用いたアフィニティークロマトグラフィーが好適に用いられる。また、抗原を固相化したアフィニティークロマトグラフィーを用いることもできる。更には、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、硫安分画、及び遠心分離等の方法を用いることもできる。これらの方法は単独ないし任意に組み合わされて用いられる。
　後述の実施例に示す通り、本発明者らは、免疫動物としてマウスを用いた方法によって、糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識する複数のモノクローナル抗体の取得に成功した。これらの抗体には、識別のために、No.35A12、No.35H10、No.38A7、No.43C5、No.44H8及びNo.54B9のクローン番号が付与された。これらの抗体のサブクラスは、No.35A12がIgG3（κ鎖）、No.35H10がIgG1（κ鎖）、No.43C5がIgG2b（κ鎖）、No.44H8がIgG1（κ鎖）と決定された。尚、クローンNo.35A12を産生するハイブリドーマ（35A12株）は下記の通り、所定の寄託機関に寄託されている。
　寄託機関：独立行政法人製品評価技術基盤機構　特許微生物寄託センター（〒292-0818　日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８　１２２号室
　寄託日（受領日）：２０１３年１１月１日
　受領番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１７４４
　以上の事実に基づき、好ましい一態様では、本発明のモノクローナル抗体はマウス由来である。また、抗体クラスについてはIgG3、IgG1又はIgG2bである。一方、本発明のモノクローナル抗体を、産生するハイブリドーマ35A12株で特定することも可能である。一態様では、当該ハイブリドーマが産生する抗体と競合反応するモノクローナル抗体が提供される。一般に、エピトープが同一、エピトープが部分的に一致、又はエピトープ位置が近接することにより、抗体の競合反応が生ずる。
競合反応するとは
　本発明の第２の局面は、本発明のモノクローナル抗体の用途の一つである検査法に関する。IgA腎症の病態進行に糖鎖不全IgA1が関与することが知られている。また、IgA腎症以外の疾患、具体的には、全身性エリテマトーデスやヘノッホ・シェンライン紫斑病（Henoch-Schonlein purpura）等の自己免疫疾患の病態形成においても、糖鎖不全IgA1が関与することが報告されている（Seminars inNephrology28(1), 78 (2008)）。そこで本発明の検査法では、糖鎖不全IgA1が関与する疾患の検査のために、本発明のモノクローナル抗体を用いて糖鎖不全ヒトIgA1を検出する。「糖鎖不全IgA1が関与する疾患」は特に限定されず、IgA腎症、全身性エリテマトーデス、ヘノッホ・シェンライン紫斑病慢性糸球体腎炎等を含む。
　上記の通り、本発明のモノクローナル抗体は糖鎖不全IgA1ヒンジ部を特異的に認識する。従って、本発明のモノクローナル抗体を用いた検査法によれば、検体中の糖鎖不全IgA1を特異的に検出することができる。検出結果は、糖鎖不全IgA1が関与する疾患（特にIgA腎症）の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又は糖鎖不全IgA1が関与する疾患（特にIgA腎症）を将来、罹患ないし発症する可能性を知る上で有益な情報となる。例えば、IgA腎症の患者を対象とした場合には、当該患者の病態の評価ないし把握、治療効果の評価などに有益な情報を得ることができる。このように本発明の検査法を治療効果のモニターに利用することも可能である。一方、患者以外の者、例えばIgA腎症が認定されていない者を対象とした場合には早期診断のための有益な情報が得られ、予防又は早期の治療介入が可能となる。さらに本症の成因は複数の可能性もあり、この糖鎖不全IgA1を成因として発症したIgA腎症が本手法によりサブタイプとして識別できる可能性もある。
　検出法としては、例えば、ELISA（Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay）法、ラジオイムノアッセイ、FACS（fluorescence activated cell sorting）、免疫沈降法、イムノブロッティング、免疫比濁法、電気化学発光法、化学発光法、蛍光発光法等の定性的又は定量的な方法が挙げられる。免疫組織化学的染色法を採用することもできる。中でもELISA法（サンドイッチELISAや競合ELISA等）を利用して糖鎖不全IgA1を検出することが好ましい。ELISA法は検出感度が高いことや特異性が高いこと、定量性に優れること、操作が簡便であること、多検体の同時処理に適することなど、多くの利点を有する。
　本発明の検査法の一態様では、以下のステップ(1)～(3)を実施する。
　(1)本発明の抗体とヒト検体と、を接触させるステップ
　(2)ステップ(1)によって生じた免疫複合体を検出するステップ
　(3)検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定するステップ
　ステップ(i)ではまず、ヒト検体を用意し、本発明の抗体（糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識するモノクローナル抗体）と接触させる。この接触操作は典型的にはウェル内で行われるが、これに限られるものではない。ヒト検体は対象（IgA腎症の患者又は健常者）の血清、血漿、尿、髄液、腹水、胸水等の生体液から調製すればよい。好ましくは血清が用いられる。血清を用いれば簡便な測定が可能である。また、好ましくは、シアリダーゼ処理後の検体を用いる。即ち、ヒンジ部の糖鎖からシアル酸を予め除去したものを検体とする。シアリダーゼ処理によって抗体の特異性が鮮明になる。シアリダーゼは市販のもの（例えばベーリンガーマンハイム社、ロッシュ・ダイアグノスティックス株式会社）を用いればよい。
　検体中に、糖鎖不全ヒトIgA1が含まれる場合には、ステップ(1)の結果、本発明の抗体による特異的結合が生じ、免疫複合体（本発明の抗体と糖鎖不全IgA1との複合体）が形成される。ステップ(2)では、当該免疫複合体を検出する。
　ステップ(3)では、ステップ(2)の検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定する。「IgA腎症を罹患ないし発症する可能性」を判定することは、即ち「IgA腎症の罹患ないし発症の予測」である。このように本発明は、IgA腎症の罹患ないし発症の予測にも利用できる。さらに本症の成因は複数の可能性もあり、この糖鎖不全IgA1を成因として発症したIgA腎症が本手法によりサブタイプとして識別できる可能性もある。
　ここでの判定は定性的、定量的のいずれであってもよい。定性的判定と定量的判定の例を以下に示す。尚、ここでの判定は、その判定基準から明らかな通り、医師や検査技師など専門知識を有する者の判断によらずとも自動的／機械的に行うことができる。
（定性的判定の例１）
　基準値よりも検出値が高いときに「IgA腎症に罹患している」、「IgA腎症に罹患している可能性が高い」、又は「将来、IgA腎症に罹患する可能性が高い」などと判定し、基準値よりも検出値が低いときに「IgA腎症に罹患していない」、「IgA腎症に罹患していない可能性が高い」、又は「将来、IgA腎症に罹患する可能性が低い」などと判定する。
（定性的判定の例２）
　検出されたとき（即ち陽性のとき）に「IgA腎症に罹患している」、「IgA腎症に罹患している可能性が高い」、又は「将来、IgA腎症に罹患する可能性が高い」などと判定し、検出されないとき（即ち陰性のとき）に「IgA腎症に罹患していない」、「IgA腎症に罹患していない可能性が高い」、又は「将来、IgA腎症に罹患する可能性が低い」などと判定する。
（定量的判定の例１）
　以下に示すように検出値の範囲毎に「IgA腎症に罹患している可能性（％）」を予め設定しておき、検出値から「IgA腎症に罹患している可能性（％）」を判定する。
　検出値ａ～ｂ：IgA腎症に罹患している可能性は１０％以下
　検出値ｂ～ｃ：IgA腎症に罹患している可能性は１０％～３０％
　検出値ｃ～ｄ：IgA腎症に罹患している可能性は３０％～５０％
　検出値ｄ～ｅ：IgA腎症に罹患している可能性は５０％～７０％
　検出値ｅ～ｆ：IgA腎症に罹患している可能性は７０％～９０％
（定量的判定の例２）
　以下に示すように検出値の範囲毎に「将来、IgA腎症に罹患する可能性（％）」を予め設定しておき、検出値から「将来、IgA腎症に罹患する可能性（％）」を予測する。
　検出値ａ～ｂ：将来、IgA腎症に罹患する可能性は１０％以下
　検出値ｂ～ｃ：将来、IgA腎症に罹患する可能性は１０％～３０％
　検出値ｃ～ｄ：将来、IgA腎症に罹患する可能性は３０％～５０％
　検出値ｄ～ｅ：将来、IgA腎症に罹患する可能性は５０％～７０％
　検出値ｅ～ｆ：将来、IgA腎症に罹患する可能性は７０％～９０％
　本発明の別の態様では、以下のステップ(i)～(iv)を実施する。
　(i)固相化した本発明の抗体と、ヒト検体とを接触させるステップ
　(ii)非特異的結合成分を除去した後、抗ヒトIgA抗体を接触させるステップ
　(iii)非特異的結合成分を除去した後、特異的に結合した前記抗ヒトIgA抗体を検出するステップ
　(iv)検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定するステップ
　ステップ(i)ではまず、固相化した本発明の抗体（糖鎖不全ヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識するモノクローナル抗体）、即ち不溶性支持体に固定した本発明の抗体（以下、「固相化抗体」と呼ぶ）を用意する。不溶性支持体としては例えばポリスチレン樹脂、ポリカーボネート樹脂、シリコン樹脂、ナイロン樹脂等の樹脂や、ガラス等の水に不溶性の物質を用いることができる。抗ヒトIgA抗体は例えば市販のもの（例えばJackson Immuno Reseach Labs）を用いればよい。不溶性支持体の形態は特に限定されない。不溶性支持体の形態の例はウェル、プレートである。
　次に、固相化抗体にヒト検体を接触させる。この操作によって、ヒト検体中に糖鎖不全IgA1が存在すれば、それが固相化抗体にトラップされる。ヒト検体としては、対象（IgA腎症の患者又は健常者）の血清、血漿、尿、髄液、腹水、胸水等の生体液が用いられる。好ましくは血清が用いられる。血清を用いれば簡便な測定が可能である。また、好ましくは、ヒト検体として、予めシアリダーゼ処理したものを用いる。
　続くステップ(ii)では、非特異的結合成分を洗浄除去した後、抗ヒトIgA抗体を接触させる。その結果、固相化抗体に糖鎖不全IgA1がトラップされていた場合には、糖鎖不全IgA1に抗ヒトIgA抗体が結合し、免疫複合体が形成される。他方、固相化抗体に糖鎖不全IgA1がトラップされていない場合には、抗ヒトIgA抗体による特異的結合は生じない。このように、固相化抗体における、糖鎖不全IgA1の捕捉状態（ヒト検体中のIgA1ヒンジ部の糖鎖状態を反映する）に応じて免疫複合体の形成量に差が生まれる。本発明ではこの差をIgA腎症の判定に利用する。抗ヒトIgA抗体として好ましくは抗IgA1抗体を用いる。抗IgA1抗体はポリクローナルでもモノクローナルでもよい。
　ステップ(iii)では、非特異的結合成分を洗浄除去した後、特異的に結合した抗体（換言すれば免疫複合体）を検出する。例えば、ステップ(ii)に使用する抗ヒトIgA抗体を予め標識化しておけば、非特異的結合成分を洗浄除去した後に標識量を直接検出すればよい。一方、いわゆる二次抗体を利用して検出することもできる。この場合、非特異的結合成分を除去した後、ステップ(ii)で使用する抗体に対する標識化抗体を接触させるステップ(ステップ(iii-1))と、非特異的結合成分を除去した後、特異的に結合した標識化抗体を検出するステップ(ステップ(iii-2))を実施する。尚、ステップ(ii)に使用する抗体や二次抗体の標識化には例えばフルオレセイン、ローダミン、テキサスレッド、オレゴングリーン等の蛍光色素、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、β－Ｄ－ガラクトシダーゼ等の酵素、ルミノール、アクリジン色素等の化学又は生物発光化合物、32P、131I、125I等の放射性同位体、及びビオチン等を用いることができる。二次抗体として使用可能な数多くの標識化抗体（例えば標識化抗ウサギIgG抗体）が市販されており、当該標識化抗体を利用することもできる。
　ステップ(iv)では、検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定する。このステップは、上記態様におけるステップ(3)と同様であるのでその説明を省略する。
　本発明の第３の局面は、糖鎖不全IgA1が関与する疾患の検査用試薬に関する。本発明の試薬は本発明の検査法に好適に使用され得るが、糖鎖不全IgA1が関与する疾患（特にIgA腎症）の発症メカニズムや症状の進展メカニズムなどを研究するための実験ツールとしても使用され得る。さらに本症の成因は複数の可能性もあり、この糖鎖不全IgA1を成因として発症したIgA腎症が本手法により「糖鎖不全型IgA腎症」といったサブタイプとして識別できる可能性もある。一方、O結合型糖鎖上のGalNAc残基を認識するという特性に鑑みれば、粘膜やムチン等の研究用ツールとしての使用も想定される。本発明の検査用試薬は本発明の抗体を含む。不溶性支持体に固定化された状態（固相化試薬）で本発明の検査用試薬が提供されてもよい。また、標識化された状態（蛍光標識、酵素標識など）で提供されてもよい。
　本発明の第４の局面は、本発明の検査法に使用可能なキット（検査キット）を提供する。本発明のキットは本発明の検査用試薬を含んで構成される。本発明の検査法の実施に必要な反応用試薬、希釈液、反応容器などをキットに含めることができる。尚、本発明のキットには通常、使用説明書が添付される。キットを用いることによって、本発明の検査法をより簡便に且つより短時間で実施することが可能となる。
　好ましい一態様では、本発明の検査用試薬に加えて二次抗体（本発明の検査用試薬に対する標識化抗体）が含まれる。二次抗体を含むキットによれば、本発明の検査用試薬と検体との接触による免疫複合体の形成、免疫複合体への標識化抗体の結合、結合した標識量の測定といった一連の操作を実施可能となる。
　本発明のキットに標準試料を含めてもよい。ここでの標準試料は、本発明のキットを使用した検出結果を評価するための基準となる。例えば、糖鎖不全IgA1又は糖鎖不全IgA1ヒンジ部ペプチド若しくはその一部を標準試料とする。標準試料は合成によって或いはIgA腎症患者の血清からの分離精製によって調製することができる。
１．ヒトIgA1ヒンジペプチドに対するマウスモノクローナル抗体の作製
（１）ヒトIgA1ヒンジ部糖ペプチド合成
　保護ペプチド樹脂は自動合成機を使用し、tert-butoxycarbonyl法（Boc法）により後述するヒトIgA1ヒンジ部に相当する糖ペプチド(synthetic human IgA1 hinge glycopeptide, 以下sHGPと略す)を合成した。得られた保護糖ペプチド樹脂を無水フッ化水素で処理し、この粗糖ペプチドを逆相HPLCにて精製して目的のsHGPを高純度で得た。sHGPはヒトIgA1ヒンジが持つ19merのアミノ酸配列に、O-グリカン側鎖が高頻度に存在しているといわれる５箇所の部位にGalNAcを付加した以下の構造である。
　VPST(GalNAc)PPT(GalNAc)PS(GalNAc)PS(GalNAc)TPPT(GalNAc)PSPS-NH2（配列番号１）
（２）マウスへの免疫感作
　ハプテンである2種類の合成ペプチド（ヒトIgA1ヒンジ部糖ペプチド（sHGP）、ヒトIgA1ヒンジ部ペプチド）に対し、グルタルアルデヒド法により、KLH(77600　Thermo社製)及びOVA（77120Thermo社製）を結合させ、免疫用（KLM結合）及び抗体スクリーニング用（OVA結合）の抗原を得た。
　調製した抗原（KLM結合sHGP）とアジュバンド（TiterMaxGold :G3フナコシ）を等量混合し、BALB/cAマウス6終齢メス（日本クレア製）の皮下に100μｇ相当の抗原を、2週間の間隔で２回に分けて投与し、その１～２週間後に抗原溶液のみを40μｇ皮下投与した。3日後に麻酔下で全採血を行い、脾臓及び各種リンパ節を採取した。
（３）細胞融合 
　マウスミエローマ細胞（P3U1）は、RPMI1640培地（118-119 GIBCO）にピルビン酸とグルタミン酸、ペニシリン、ストレプトマイシンを添加した培地（RPMI培地）にFBS（S156 BWT社)を10％となるように加え継代培養を行ったものを用いた。細胞融合の操作は次の通り行った。感作された細胞ペレットへ１mlのPEG（783641 ロッシュ）を反応させ、RPMI1640培地を加え、37℃のインキュベーターにて10分間静置後、細胞を集めた。続いて、HAT培地（21060-017 GIBCO）を用い、定法通りハイブリドーマを選択培養した。
（４）抗体スクリーニング
　特異抗体の１次スクリーニングにはELISA用96穴マイクロプレートを用いた。各ウェルにOVA結合糖ペプチドを結合させた後、選択培養簿の細胞を反応させた。続いて、酵素標識抗マウスIgG（1030-04 コスモバイオ）を反応させ、モノクローナル抗体陽性ウェルを選択した。
　次に、２次スクリーニングとして、OVA結合糖ペプチド抗原に反応する一方で、糖の付加していないOVA結合ペプチド抗原に反応しないモノクローナル抗体を選択するために、同様のアッセイを行い、目的の抗体候補を選別した。選別された細胞を培養プレートに移し拡大培養した。培養上清をサンプルとして臨床評価を行った。具体的には、IgA腎症の患者血清と健常人血清を用い、各抗体の反応性をELISAで評価し、合成ペプチドだけでなく生体内のIgAにも反応すると思われるクローンを選択した。選択したクローンを限界希釈法により単一なクローンとして樹立した。樹立したクローンの培養上清を用いて詳細な検討を加えることで最終的に６クローン（35A12、35H10、38A7、43C5、44H8、54B9）に絞られた。尚、IgA腎症患者と健常人の明確な識別が可能な抗体を産生する35A12株を優良株として選択した。35A12株を以下の通り寄託した。
　寄託機関：独立行政法人製品評価技術基盤機構　特許微生物寄託センター（〒292-0818　日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２－５－８　１２２号室
　寄託日（受領日）：２０１３年１１月１日
　受領番号：ＮＩＴＥ　ＢＰ－０１７４４
（５）サブクラスの決定
　十分にクローニングされた各ハイブリドーマ株の培養上清を用い、市販のイムノクロマト法（モノクローナル抗体アイソタイピングキット 1493027 ロッシュ）でサブクラスを決定した。操作は添付のマニュアルに従った。検討の結果、35A12株の産生する抗体のサブクラスはIgG3（κ鎖）、35H10株の産生する抗体のサブクラスはIgG1（κ鎖）、43C5の株の産生する抗体のサブクラスはIgG2b（κ鎖）、44H8株の産生する抗体のサブクラスはIgG1（κ鎖）であると決定された。
２．臨床検体を用いた評価
　35A12株が産生するモノクローナル抗HGP抗体と血清IgA1との結合性を、IgA腎症患者群、その他の腎疾患群、健常者群の間で比較した。
２－１．材料と方法
（１）血清
　腎生検で診断した29名のIgA腎症患者の腎生検時に採取した血清を用いた。また、対照として、その他の腎疾患患者27名（ANCA関連腎炎11例、SLE腎症6例、膜性腎症4例、糖尿病性腎症1例、微小変化群1例、腎硬化症・腎後性腎炎1例、コレステロール塞栓症1例、肥満腎症1例）と健常者（性・年齢をIgA腎症患者群と合わせた）23名から採取した血清を用いた。
（２）ELISA法
（２－１）ELISAプレートの作製
　10μg/mlに調整したモノクローナル抗体（(IgG画分）を含む0.05 M 重炭酸塩バッファー（pH 9.6） 50μlをポリスチレンマイクロタイタープレイト（Corning, NY, USA）の各ウェルに50μlずつ加え、一晩（O/N）4℃で放置し、モノクローナル抗体をプレート上にコートした。0.01M PBS-0.05% Tween-20（pH 7.4。以下、PBSTと略す）で3回洗浄後、1% 牛血清アルブミン（BSA; Sigma Chemical Company, St Louis, MO, USA）を含むPBST溶液を100μl／ウェル加え、1時間室温で放置してブロッキングを行なった。
（２－２）血清のシアリダーゼ処理
　IgA1ヒンジ部O結合型糖側鎖内のGalNAc残基に結合しているノイラミニン酸残基を除去するため、血清に5倍量の1.5 mU/mlノイラミニダーゼ（Vibrio cholerae, Roche Diagnostic Corp., Indianapolis, IN, USA）を含む0.01M 酢酸バッファー（pH 5）を加え、2時間37℃で放置した。
（２－３）用量依存曲線
　後述のELISA法によって、シアリダーゼ処理した血清を連続稀釈（1/25、1/100、1/400、1/1600、1/6400）したサンプルを用いて用量依存曲線を作成した（図１）。至適稀釈濃度（100～400）を決定して本実験を行なった。
（２－４）ELISA法の操作
　シアリダーゼ処理後の血清を、1％BSAを含むPBST（以下稀釈バッファー）で至適倍率に希釈した。このようにして得た各検体を50μl/ウェル加え4℃で一晩インキュベートした。PBSTで３回洗浄後、5000倍稀釈HRP標識ヤギ抗ヒトIgA抗体（IgG Fab画分、MBL Co. LTD, Japan Nagoya）を50μl/ウェル加えた。2時間室温で放置後、５回洗浄し、50μlのO-フェニレンジアミン（0.5 mg/ml）-H2O2 （0.1%, Pierce）を含む0.1 M クエン酸バッファーを加え、発色させた。50μlの1 M 硫酸で発色反応を停止し、各ウェルの吸光度（492 nm）を測定した。
（２－５）三群間の比較と統計学的解析
　三群間の比較には、ボンフェローニ補正マンホイットニーのU検定を利用した。P値が0.05未満を統計的有意とした。本抗体の臨床応用の可能性を検討するため、IgA腎症患者群とその他の腎疾患群及び健常者群の間でそれぞれ受信者動作特性曲線（receiver operating characteristic curves（ROC曲線））を描き、曲線下面積（the area of under the curve（AUC））を算出した。AUCが0.9を超えた場合、臨床応用可能な感度・特異度を持つと判断した。
２－２．結果
　図２に示すように、IgA腎症患者群では、その他の腎疾患群（P = 2.8 X 10-6）及び健常者群（P = 1.2 X 10 -6）に比べ、本抗体に結合する血清IgAが有意に増加していた。IgA腎症患者群とその他の腎疾患群の間（図３左上）、及びIgA腎症患者群と健常者群の間（図３右下）で描いたROC曲線から計算したAUCは、それぞれ、0.920及び0.991であり、本抗体の感度・特異度は臨床応用可能と考えられた。
３．まとめ
　以上の通り、取得に成功したモノクローナル抗HGP抗体がIgA腎症患者特異的な結合性を示し、IgA腎症の検出ないし検査に有用であることが確認された。尚、血清のシアリダーゼ処理を省略した場合についても測定した結果、シアリダーゼ処理を行うことにより抗体の特異性が鮮明になり、有意差が認められた。
　本発明の抗体は糖鎖不全IgA1が関与する疾患（特にIgA腎症）の検査法に利用される。例えば、本発明の抗体を用いれば、IgA腎症を高い感度及び特異度で検査することが可能となる。
　この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。
　本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。

Claims (18)

  1. 　糖鎖不全ヒトIgA1に対する抗体であって、シアル酸及びガラクトースを含まない糖鎖が結合したヒトIgA1ヒンジ部を特異的に認識する、モノクローナル抗体。
  2. 　以下の配列：VPST(GalNAc)PPT(GalNAc)PS(GalNAc)PS(GalNAc)TPPT(GalNAc)PSPS（配列番号１）（但し、Vはバリンを、Pはプロリンを、Sはセリンを、Tはスレオニンを、括弧内のGalNacは直前のアミノ酸残基に結合したO結合型N-アセチルガラクトサミンをそれぞれ表す）、からなる合成ヒンジ部糖ペプチドに対する抗体として調製された抗体である、請求項１に記載の抗体。
  3. 　糖鎖が結合していないヒトIgA1ヒンジ部を認識しない、請求項１又は２に記載のモノクローナル抗体。
  4. 　マウス由来の抗体である、請求項１～３のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
  5. 　抗体クラスがIgG3、IgG1又はIgG2bの抗体である、請求項４に記載のモノクローナル抗体。
  6. 　ハイブリドーマ35A12株が産生する抗体、又は該抗体と競合反応する抗体である、請求項１～５のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
  7. 　請求項１～６のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体によって、糖鎖不全ヒトIgA1を検出することを特徴とする、糖鎖不全IgA1が関与する疾患の検査法。
  8. 　前記疾患が自己免疫疾患である、請求項７に記載の検査法。
  9. 　前記疾患がIgA腎症である、請求項７に記載の検査法。
  10. 　以下のステップ(1)～(3)を含む、請求項９に記載の検査法：
    　(1)請求項１～６のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体と、ヒト検体とを接触させるステップ；
    　(2)ステップ(1)によって生じた免疫複合体を検出するステップ；
    　(3)検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定するステップ。
  11. 　以下のステップ(i)～(iv)を含む、請求項９に記載の検査法：
    　(i)固相化した、請求項１～６のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体と、ヒト検体とを接触させるステップ；
    　(ii)非特異的結合成分を除去した後、抗ヒトIgA抗体を接触させるステップ；
    　(iii)非特異的結合成分を除去した後、特異的に結合した前記抗ヒトIgA抗体を検出するステップ；
    　(iv)検出結果に基づき、IgA腎症の罹患ないし発症の有無若しくは可能性、又はIgA腎症を罹患ないし発症する可能性を判定するステップ。
  12. 　ヒト検体がシアリダーゼ処理後のヒト検体である、請求項１０又は１１に記載の検査法。
  13. 　ヒト検体が血清検体である、請求項１０～１２のいずれか一項に記載の検査法。
  14. 　請求項１～６のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体を含む、糖鎖不全IgA1が関与する疾患の検査用試薬。
  15. 　前記疾患が自己免疫疾患である、請求項１４に記載の検査用試薬。
  16. 　前記疾患がIgA腎症である、請求項１４に記載の検査用試薬。
  17. 　請求項１４～１６のいずれか一項に記載の検査用試薬を含む、検査キット。
  18. 　検査用試薬に対する標識化抗体を更に含む、請求項１７に記載の検査キット。
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