WO2014168255A1 - 巨核球の成熟化促進物質 - Google Patents

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WO2014168255A1
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megakaryocyte
megakaryocytes
cells
inhibitor
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浩之 江藤
真治 平田
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Kyoto University NUC
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    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/998—Proteins not provided for elsewhere

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing mature megakaryocytes from immature megakaryocytes, a megakaryocyte maturation agent, and the like.
  • platelets which are essential for blood clotting and hemostasis, are one of the most important blood cells. Platelets are in great demand for leukemia, bone marrow transplantation, anticancer treatment, etc., and the need for a stable supply is high. So far, platelets have been secured not only by a method of collecting blood by donating blood from a donor, but also by a method of administering a TPO-like structural mimetic preparation, a method of differentiating megakaryocytes from umbilical cord blood or bone marrow cells. Recently, a technique for preparing blood cells such as platelets by inducing differentiation of pluripotent stem cells such as ES cells or iPS cells in vitro has also been developed.
  • transcription factors all-trans retinoic acid (ATRA), valproic acid, known as an inhibitor of histone deacetylase, ROCK inhibitor, or blebbistatin may promote maturation of megakaryocytes. It has been reported (Non-patent document 2 and Patent document 4). Furthermore, it has also been reported that knocking down p53, which is a tumor suppressor gene product, promotes multinucleation of megakaryocytes (Non-patent Document 3).
  • Non-Patent Document 4 culturing immature megakaryocytes at 39 ° C, higher than the normal culture temperature, promotes the induction of multinucleated mature megakaryocytes and the formation of proplatelets.
  • the present inventors In order to produce a platelet preparation, the present inventors stably and more produce functional platelets (platelets that retain in vivo activity such as hemostasis and are characterized as CD42b +). We found that it was necessary to establish a megakaryocyte strain, and thought that it was necessary to further mature the megakaryocyte strain obtained by the conventional method in order to overcome this problem. Then, this invention makes it a subject to provide the substance and its use for maturing such a megakaryocyte strain.
  • the present inventors searched for a compound suitable for maturation of megakaryocytes established from hematopoietic progenitor cells prepared from pluripotent stem cells (ES cells, iPS cells, etc.). ABC transporters
  • probenecid which is an inhibitor, has the function, and has completed the present invention.
  • the present invention includes the following.
  • a method for producing mature megakaryocytes comprising a step of culturing immature megakaryocytes in a culture solution containing an ABC transporter inhibitor.
  • the immature megakaryocyte causes a pluripotent stem cell-derived hematopoietic progenitor cell to forcibly express a gene selected from the group consisting of an oncogene, a gene that suppresses the expression of p16 gene or p19 gene, and an apoptosis-suppressing gene.
  • the immature megakaryocyte is a megakaryocyte produced by forcibly expressing a gene selected from the group consisting of c-Myc, Bmi1 and Bcl-xL into hematopoietic progenitor cells derived from pluripotent stem cells.
  • FIG. 1 shows each marker gene (GATA1, NF-E2, c-MPL, ⁇ 1-tubulin, after culturing an immortalized megakaryocyte strain with addition of probenecid (provenecid) or vehicle alone. The result of having measured the expression level of MYH9 and MYH10) by quantitative PCR is shown.
  • the present invention provides a method for producing mature megakaryocytes, comprising a step of culturing immature megakaryocytes in a culture solution containing an ABC (ATP binding cassette) transporter inhibitor. Similarly, the present invention provides a method for maturation of immature megakaryocytes using an ABC transporter inhibitor.
  • ABC ATP binding cassette
  • the ABC transporter is a membrane protein having an activity of transporting a substrate from the inside of the cell to the outside of the cell using the energy of ATP.
  • 49 subtypes are roughly divided into A to G families. included.
  • Preferred ABC transporter inhibitors in the present invention are drugs that inhibit at least the C family of ABC transporters (ABCC family), probenecid, cyclosporine, glibenclamide, furosemide, indomethacin, bromosulfophthalein, benzbromarone, telmisartan , MK571 and imatinib, siRNA or shRNA against ABCC family, siRNA or shRNA expression vector against p53, antisense nucleic acid against ABCC family, ribozyme against ABCC family, etc.
  • ABC transporter inhibitors in the present invention are drugs that inhibit at least the C family of ABC transporters (ABCC family), probenecid, cyclosporine, glibenclamide, furosemide, indomethacin, bromosul
  • siRNAs, shRNAs, antisense nucleic acids, ribozymes and neutralizing antibodies can be prepared from ABCC family gene sequences or amino acid sequences by methods well known to those skilled in the art.
  • the agent that inhibits the ABCC family is preferably probenecid.
  • probenecid is a compound having the chemical name 4- (Dipropylaminosulfonyl) benzoic acid.
  • the concentration of probenecid in the medium is not particularly limited as long as it is a concentration that inhibits the ABC transporter.
  • it is 250 ⁇ M to 25 mM, more preferably 1 mM to 5 mM, and most preferably 2.5 ⁇ M. mM.
  • the culture solution used in the step of producing mature megakaryocytes is not particularly limited, but can be prepared by adding an ABC transporter inhibitor using a medium used for animal cell culture as a basal medium.
  • basal media include IMDM medium, MediumMedi199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer Life's medium, Neurosal's medium And a mixed medium thereof.
  • the medium may contain serum or may be serum-free.
  • the medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecules
  • One or more substances such as compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like may also be included.
  • Cytokines are proteins that promote blood cell differentiation, and examples include VEGF, TPO, SCF, and the like.
  • a preferable medium in the present invention is an IMDM medium containing TPO, SCF, serum, insulin, transferrin, serine, thiolglycerol and ascorbic acid.
  • the period of culturing immature megakaryocytes in a culture solution containing an ABC transporter inhibitor does not prevent megakaryocyte maturation over a long period of time.
  • Examples include days, 4 days, 5 days, 6 days, 7 days or more.
  • it is 4 days or longer. More preferably, it is 4 days to 28 days, 4 days to 21 days, 4 days to 14 days, or 4 days to 7 days.
  • the culture temperature in the step of producing mature megakaryocytes is not limited to the following, but is about 30 to 40 ° C., preferably about 37 ° C. to 39 ° C.
  • the culture is performed in an atmosphere of CO 2 -containing air, and CO 2
  • the concentration is preferably about 2-5%.
  • “Immature megakaryocytes” in the present invention are megakaryocytes (about 2N to 8N) that have not progressed multinucleation.
  • megakaryocyte maturation-related genes GATA1, NF-E2, c-MPL, ⁇ 1-tubulin and MYH9
  • GATA1, NF-E2, c-MPL, ⁇ 1-tubulin and MYH9 are low expression levels and MYH10 expression levels are megakaryocytes. Therefore, immature megakaryocytes can be paraphrased as megakaryocyte progenitor cells. Examples of such immature megakaryocytes include immature megakaryocytes artificially produced from hematopoietic progenitor cells.
  • the immature megakaryocyte may or may not be cloned, and is not particularly limited, but the cloned one may be referred to as an immature megakaryocyte strain.
  • a “mature megakaryocyte” is a megakaryocyte with a high expression level of a megakaryocyte maturation-related gene group and a low expression level of MYH10, and a megakaryocyte (8N or more) that is becoming multinucleated.
  • “maturation” means that the maturation of megakaryocytes progresses, that is, the multinucleation progresses, the expression level of megakaryocyte maturation-related genes increases, the expression level of megakaryocyte immaturity-related genes decreases. As long as these tendencies are observed as compared with those before the maturation step, it includes cases where the result does not necessarily lead to mature megakaryocytes as defined above.
  • “maturation” refers to the case where the cell groups before and after the culture are compared and the maturation is progressing as a whole group, that is, the total number of nuclei of the entire cell group is increasing.
  • hematopoietic progenitor cells are cells that can differentiate into blood cells such as lymphocytes, eosinophils, neutrophils, basophils, erythrocytes, megakaryocytes, etc. Hematopoietic stem cells are not distinguished and indicate the same cells unless otherwise specified. Hematopoietic stem / progenitor cells can be recognized by, for example, positive surface antigens CD34 and / or CD43. In the present invention, hematopoietic stem cells can also be applied to pluripotent stem cells, hematopoietic progenitor cells derived from cord blood, bone marrow blood, peripheral blood-derived hematopoietic stem cells and progenitor cells.
  • pluripotent stem cells are cultured on C3H10T1 / 2 in the presence of VEGF according to the method described in Takayama N., et al. J Exp Med. 2817-2830 (2010) Can be prepared from a net-like structure (also referred to as ES-sac or iPS-sac).
  • the “net-like structure” is a three-dimensional sac-like structure (with space inside) derived from pluripotent stem cells, which is formed by an endothelial cell population and the like, and contains hematopoietic progenitor cells inside. It is a structure.
  • hematopoietic progenitor cells from pluripotent stem cells
  • embryoid bodies are formed and cytokines are added (Chadwick et al. Blood 2003, 102: ⁇ 906-15, Vijayaravavan et al. Cell Stem Cell 2009, 4: 248-62, Saeki et al. Stem Cells 2009, 27: 59-67) or co-culture with heterologous stromal cells (Niwa A et al. J Cell Physiol. 2009 Nov; 221 (2 ): 367-77.) And the like.
  • a pluripotent stem cell is a stem cell that has pluripotency that can be differentiated into all cells present in a living body and also has a proliferative ability, and includes, for example, an embryonic stem (ES) cells, embryonic stem (ntES) cells derived from cloned embryos obtained by nuclear transfer, sperm stem cells (“GS cells”), embryonic germ cells (“EG cells”), induced pluripotent stem (iPS) cells And pluripotent cells derived from cultured fibroblasts and bone marrow stem cells (Muse cells).
  • ES embryonic stem
  • ntES embryonic stem
  • GS cells sperm stem cells
  • EG cells embryonic germ cells
  • iPS induced pluripotent stem
  • pluripotent cells derived from cultured fibroblasts and bone marrow stem cells
  • the method for artificially producing immature megakaryocytes from hematopoietic progenitor cells is selected from the group consisting of genes that suppress the expression of oncogenes, p16 genes or p19 genes to hematopoietic progenitor cells, and apoptosis-suppressing genes.
  • a method of culturing by forced expression of a gene is exemplified.
  • a method for producing immature megakaryocytes by forcibly expressing at least an oncogene in hematopoietic progenitor cells is preferred.
  • More preferred is a method in which an oncogene and a gene that suppresses expression of the p16 gene or p19 gene are forcibly expressed in hematopoietic progenitor cells, and then an apoptosis-suppressing gene is forcibly expressed.
  • an apoptosis-inhibiting gene when the apoptosis-inhibiting gene is further forcibly expressed, it is preferable to forcibly express the oncogene and the gene that suppresses the expression of the p16 gene or the p19 gene for at least 14 days.
  • the term “oncogene” refers to a gene that causes canceration of normal cells due to its expression, structure or function being different from that of normal cells.
  • MYC family genes MYC family genes, Src family genes , Ras family genes, Raf family genes, protein kinase family genes such as c-Kit, PDGFR, and Abl.
  • MYC family genes include c-MYC, N-MYC, and L-MYC. More preferably, it is a c-MYC gene.
  • the c-MYC gene is, for example, a gene consisting of a nucleic acid sequence represented by NCBI accession number NM_002467.
  • the c-MYC gene may also include homologues thereof.
  • the c-MYC gene homologue is a sequence whose cDNA sequence is substantially the same as the nucleic acid sequence represented by NCBI accession number NM_002467, for example. It is a gene consisting of The cDNA consisting of a sequence substantially identical to the nucleic acid sequence is about 60% or more, preferably about 70% or more, more preferably about 80%, with the DNA consisting of the sequence represented by NCBI accession number NM_002467, 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97% 98%, most preferably about 99% identity DNA, or DNA that can be hybridized under stringent conditions with DNA complementary to the nucleic acid sequence, Proteins encoded by DNA are those that contribute to the amplification of differentiated cells, such as hematopoietic progenitor cells.
  • stringent conditions are hybridization conditions that are easily determined by those skilled in the art, and are generally empirical experimental conditions that depend on the probe length, washing temperature, and salt concentration. In general, the longer the probe, the higher the temperature for proper annealing, and the shorter the probe, the lower the temperature. Hybridization generally relies on the ability to reanneal in an environment where the complementary strand is slightly below its melting point.
  • low stringency conditions include washing in a 0.1 ⁇ SSC, 0.1% SDS solution at a temperature of 37 ° C. to 42 ° C. in the filter washing step after hybridization.
  • highly stringent conditions include washing in 65 ° C., 5 ⁇ SSC and 0.1% SDS in the washing step.
  • a gene that suppresses the expression of p16 gene or p19 gene is a gene that suppresses the expression of p16 gene or p19 gene by oncogene-induced cell aging caused by the introduction of an oncogene, for example, BMI1, Mel18, Ring1a / b, Phc1 / 2/3, Cbx2 / 4/6/7/8, Ezh2, Eed, Suz12, HADC and Dnmt1 / 3a / 3b are exemplified.
  • BMI1 is preferable.
  • BMI1 is, for example, a gene consisting of a nucleic acid sequence represented by NCBI accession number NM_005180.
  • the BMI1 gene may also include homologues thereof.
  • the BMI1 gene homologue is a gene whose cDNA sequence is substantially the same as the nucleic acid sequence described in NCBI accession number NM_005180. It is.
  • the cDNA consisting of a sequence substantially identical to the nucleic acid sequence represented by NCBI accession number NM_005180 is about 60% or more, preferably about 70% or more, more preferably about 80% or 81%, with the nucleic acid sequence.
  • the encoded protein is one that contributes to the differentiation of cells in the differentiation stage such as hematopoietic progenitor cells.
  • the “apoptosis-suppressing gene” is not particularly limited as long as it is a gene that suppresses apoptosis, and examples thereof include BCL2 gene, BCL-XL gene, Survivin, and MCL1.
  • BCL2 gene BCL-XL gene
  • BCL-XL gene is a gene consisting of a nucleic acid sequence represented by NCBI accession number NM_001191 or NM_138578, for example.
  • the BCL-XL gene may also include a homologue thereof.
  • the homologue of the BCL-XL gene is substantially the same as the nucleic acid sequence represented by the NCBI accession number NM_001191 or NM_138578, for example.
  • the cDNA consisting of a sequence substantially identical to the nucleic acid sequence represented by NCBI accession number NM_001191 or NM_138578 is about 60% or more, preferably about 70% or more, more preferably about 80%, with the nucleic acid sequence. 81%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97% 98%, most preferably about 99% identity DNA, or DNA that can be hybridized under stringent conditions with DNA complementary to the nucleic acid sequence, and the DNA Is a protein having an effect of suppressing apoptosis.
  • the gene forcibly expressed in hematopoietic progenitor cells may be fused with an estrogen receptor (ER) in order to control the activity by adding 17 ⁇ estradiol or 4OH-Tamoxifen.
  • ER estrogen receptor
  • the above gene can be forcibly expressed in hematopoietic progenitor cells according to the ordinary method of those skilled in the art.
  • vectors expressing these genes, or proteins or RNAs encoding these genes In the form of hematopoietic progenitor cells.
  • it can be performed by bringing a low molecular weight compound or the like that induces expression of these genes into contact with hematopoietic progenitor cells.
  • an expression vector, protein, RNA or a low molecular weight compound that induces expression should be introduced multiple times in accordance with the necessary period. Can be done.
  • vectors expressing these genes include retrovirus, lentivirus, adenovirus, adeno-associated virus, herpes virus, Sendai virus and other viral vectors, animal cell expression plasmids (eg, pA1-11, pXT1, pRc / CMV, pRc / RSV, pcDNAI / Neo), episomal vector (plasmid vector containing replication origin oriP and EBNA-1 gene or replication origin ori and SV40 large T antigen gene), piggyBac vector (Kaji, K.
  • artificial chromosome vectors for example, human artificial chromosome (HAC), yeast artificial chromosome (YAC), bacterial artificial chromosome (BAC, PAC)
  • HAC human artificial chromosome
  • YAC yeast artificial chromosome
  • BAC bacterial artificial chromosome
  • PAC bacterial artificial chromosome
  • a retroviral vector or a lentiviral vector is preferable in that it can be carried out by single introduction.
  • promoters used in expression vectors include EF- ⁇ promoter, CAG promoter, SR ⁇ promoter, SV40 promoter, LTR promoter, CMV (cytomegalovirus) promoter, RSV (rous sarcoma virus) promoter, MoMuLV (Moloney murine leukemia) Virus) LTR, HSV-TK (herpes simplex virus thymidine kinase) promoter, etc. are used.
  • the expression vector may optionally contain an enhancer, a poly A addition signal, a selection marker gene, an SV40 replication origin, and the like.
  • Useful selection marker genes include, for example, dihydrofolate reductase gene, neomycin resistance gene, puromycin resistance gene and the like.
  • the promoter region in order to control the expression of the gene by tetracycline or doxycycline, the promoter region has a tetracycline-responsive element, and a drug-responsive vector that allows gene expression in the presence of the corresponding drug
  • a vector that simultaneously expresses a fusion protein composed of a mutant Tet repressor protein (rTetR) and a VP16 activation domain (AD), or a drug reverse responsive vector that stops gene expression in the presence of the corresponding drug (Tet It may be a vector that simultaneously expresses a fusion protein composed of a presser protein (TetR) and a VP16 activation domain (AD).
  • an expression vector in which a loxP sequence is placed so as to sandwich the gene and / or promoter region with the loxP sequence may be used.
  • the genes may be vertically linked to obtain a polycistronic vector.
  • it is ligated between 2A self-cleaving peptides of foot-and-mouth disease virus (see Science, 322, 949-953, 2008, etc.) and genes that forcefully express IRES sequences, etc. obtain.
  • a plasmid containing the nucleic acid is used as an appropriate packaging cell (eg, Plat-E cell) or a complementary cell line (eg, 293 cell). And the virus produced in the culture supernatant is collected and contacted with hematopoietic progenitor cells for infection.
  • an appropriate packaging cell eg, Plat-E cell
  • a complementary cell line eg, 293 cell
  • a plasmid vector in the case of a non-viral vector, can be introduced into a cell using a lipofection method, a liposome method, an electroporation method, a calcium phosphate coprecipitation method, a DEAE dextran method, a microinjection method, a gene gun method, or the like.
  • the feeder cell is not particularly limited as long as it can induce megakaryocytes.
  • C3H10T1 / 2 (Katagiri T, et al., Biochem Biophys Res Commun. 172, 295-299 (1990)) Can be mentioned.
  • the medium used for producing the immature megakaryocytes of the present invention is not particularly limited, but a medium used for culturing animal cells can be prepared as a basal medium.
  • basal media include IMDM medium, MediumMedi199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer Life's medium, Neurosal's medium And a mixed medium thereof.
  • the medium may contain serum or may be serum-free.
  • the medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecules
  • One or more substances such as compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like may also be included.
  • Cytokines are proteins that promote blood cell differentiation, and examples include VEGF, TPO, SCF, and the like.
  • a preferable medium in the present invention is an IMDM medium containing serum, insulin, transferrin, serine, thiolglycerol, ascorbic acid, and TPO.
  • the undifferentiated megakaryocyte may be a megakaryocyte that maintains the expression of the gene.
  • the conditions for culturing are not particularly limited, but can be about 30 ° C. to about 42 ° C. It has been confirmed that culturing at a temperature of 37 ° C. or higher promotes the differentiation of megakaryocytes.
  • the temperature of 37 ° C. or higher is appropriate as a temperature that does not damage cells, and is preferably about 37 ° C. to about 42 ° C., preferably about 37 to about 39 ° C., for example.
  • the culture period at a temperature of 37 ° C. or higher can be appropriately determined while monitoring the number of megakaryocytes, etc., for example, 6 days to 48 days, preferably about 12 days to 36 days. is there.
  • the culture may be carried out in an atmosphere of CO 2 -containing air, in which case the CO 2 concentration is preferably about 2-5%.
  • the long culture period is not a problem in the production of megakaryocytes.
  • a substance that inhibits the expression or function of the p53 gene product (b) an actomyosin complex function inhibitor, (c) a ROCK inhibitor ( d) A culture medium further containing an HDAC inhibitor may be used.
  • PFT Pifithrin
  • WO2000 / 44364 Pifithrin
  • PFT- ⁇ Storm et al, Nat. Chem. Biol.
  • P53 dominant negative mutants such as p53P275S (de Vries, A., Proc.ciNatl. Acad. Sci. USA, 99, 2948-2953B (2002)), p53DD (Bowman, T., Genes Develop., 10 , 826-835 (1996)), siRNA or shRNA against p53, a vector expressing siRNA or shRNA against p53, an antisense nucleic acid against p53, a ribozyme against p53, and the like.
  • ROCK inhibitors include Y27632.
  • actomyosin complex function inhibitor examples include blebbistatin, which is a myosin heavy chain II ATPase inhibitor.
  • a ROCK inhibitor may be added alone, a ROCK inhibitor and an actomyosin complex function inhibitor may be added alone, or a combination thereof may be added.
  • the process of stopping forced expression when immature megakaryocytes produced by forcibly expressing a gene in hematopoietic progenitor cells are used, in addition to the step of culturing in a culture solution containing ABC transporter for the megakaryocyte maturation, You may include the process of stopping forced expression.
  • a method of stopping forced expression for example, when forced expression is performed using a drug-responsive vector, it may be achieved by not contacting the corresponding drug with the cell.
  • forced expression is performed using a drug reverse responsive vector, this may be achieved by bringing the corresponding drug into contact with the cell and / or stopping the contact.
  • the above-mentioned vector containing LoxP when used, it may be achieved by introducing Cre recombinase into the cell. Further, when a transient expression vector and RNA or protein introduction are used, the contact with the vector or the like may be stopped.
  • maturation of megakaryocytes means that megakaryocytes are sufficiently polynucleated and can produce functional platelets. Megakaryocyte maturation can also be confirmed by, for example, increased expression of megakaryocyte maturation-related genes such as GATA1, p45pNF-E2, beta1-tubulin, c-MPL, and MYH9.
  • (Mature megakaryocyte composition) When immature megakaryocytes are treated by the method of the present invention, they can mature into mature megakaryocytes. Therefore, a cell composition having a high content of mature megakaryocytes can be obtained. Whether or not the content of mature megakaryocytes is high in a cell composition can be determined by those skilled in the art based on experience and literature.
  • the content of mature megakaryocytes is at least 50% or more, 60% or more, 70% or more, 80% or more, 90% or more, more preferably 100%. It is. Therefore, according to the method of the present invention, it is possible to prepare a megakaryocyte population having a high abundance ratio of mature megakaryocytes.
  • the megakaryocytes obtained by the method of the present invention are also effective for transplanting in vivo and producing functional platelets in vivo by an appropriate method. Therefore, the therapeutic agent containing the megakaryocyte obtained by the method of this invention is provided.
  • the transplantation of megakaryocytes and the like obtained by the method of the present invention can solve the problem of insufficient donor number and donor burden in bone marrow transplantation and the problem of platelet production ability in vivo in cord blood transplantation. Compared to the transplantation method, it can be said to be a very excellent method.
  • Platelets can be produced in vitro from mature megakaryocytes obtained by the method of the present invention.
  • the method for producing platelets according to the present invention includes a step of culturing mature megakaryocytes obtained by the above-described method and collecting platelets from the culture. Culture conditions can be carried out by continuing the process of producing mature megakaryocytes.
  • the conditioned medium is not particularly limited and can be prepared according to methods known to those skilled in the art. For example, the conditioned medium can be obtained by appropriately culturing feeder cells and removing the feeder cells from the culture with a filter.
  • the platelets obtained in the present invention can be administered to patients as a preparation.
  • platelets obtained by the method of the present invention are, for example, human plasma, infusion solution, citrate-containing physiological saline, a solution containing glucose-added acetate Ringer solution, PAS (platelet additive solution) (Gulliksson, H. et al., Transfusion, 32: 435-440, (1992)), etc.
  • the storage period is about 3 to 7 days, preferably 4 days. As storage conditions, it is desirable to store with shaking and stirring at room temperature (20-24 degrees).
  • An embodiment of the present invention includes a kit for producing a megakaryocyte maturation agent or mature megakaryocyte.
  • the megakaryocyte maturation agent or kit includes the ABC transporter inhibitor described above.
  • reagents that can be used for maturation of megakaryocytes such as culture broth, (a) substances that inhibit the expression or function of p53 gene product, (b) actomyosin complex function inhibitor, (c) ROCK inhibitor (d) HDAC inhibitors are mentioned.
  • the kit may further contain reagents for recognizing mature megakaryocytes (eg, PCR primers for GATA1, p45 NF-E2, beta1-tubulin, c-MPL, and MYH9).
  • the megakaryocyte maturation agent or the reagent contained in the kit must be contained in any type of container in which the components remain active for a long period of time, are not adsorbed by the container material, and do not undergo alteration. Supplied.
  • the origin of the “cell” described in the present specification is a human or non-human animal (eg, mouse, rat, cow, horse, pig, sheep, monkey, dog, cat, bird, etc.) and is not particularly limited. But. Particularly preferred are human-derived cells.
  • a human iPS cell-derived immortalized megakaryocyte strain was prepared by improving the method described in WO 2012/157586. Briefly, hematopoietic progenitor cells are prepared from iPS cells prepared from human peripheral blood, and c-Myc, Bmi1 and Bcl-xL are introduced by retrovirus method to produce an immortalized megakaryocyte strain and introduced. The cultured cells were maintained for at least 24 days with the expressed genes expressed. In addition, the introduced gene can suppress the expression of c-Myc, Bmi1 and Bcl-xL by the addition of Doxicyclin.
  • ⁇ Maturation of immortalized megakaryocyte strain > C3H10T1 / 2 cells previously inactivated with mitomycin C were seeded at 1 ⁇ 10 4 cells / well (96 well plate) and cultured overnight or more to prepare feeder cells. On this feeder cell, the above immortalized megakaryocyte strain is seeded at 3 ⁇ 10 4 cells / well (96 well plate) and 50 ng / mL SCF, 50 ng / mL in the presence or absence of 2.5 mM Probenecid (addition of base alone) Basal medium (15% Fetal Bovine Serum, 1% Penicillin-Streptomycin-Glutamine, 1% Insulin, Transferrin, Selenium Solution, 0.45 mM 1-Thioglycerol and 50 ⁇ g / mL L-Ascorbic Acid containing mL TPO and 0.5 ⁇ g / mL Doxicyclin The cells were cultured in IMDM (Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • immortalized megakaryocyte strains cultured in the presence of 2.5 mM Probenecid were compared with immortalized megakaryocyte strains cultured with only the base added (GATA1, NF-E2).
  • C-MPL, ⁇ 1-tubulin, and MYH9 were increased about 2-3 times, and MYH10, a megakaryocyte immaturity-related gene, was reduced to about 1/2. From the above, it was confirmed that the maturation of human iPS cell-derived immortalized megakaryocyte strain was promoted by adding Probenecid and culturing.

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Abstract

　本発明は、成熟した巨核球株を製造する方法の提供することを課題とし、ABCトランスポーター阻害剤を含む培養液中で未熟巨核球を培養する工程を含む、成熟巨核球を製造する方法を提供する。

Description

巨核球の成熟化促進物質
　本発明は、未熟巨核球から成熟巨核球を製造する方法、ならびに巨核球成熟化剤等に関する。
　血液関連疾患の治療や、外科的な治療には、多くの血液細胞が必要とされる。血液細胞の中でも、血液凝固及び止血のために必須の細胞である血小板は特に重要な血液細胞の1つである。血小板は、白血病、骨髄移植、抗癌治療などにおいて需要が多く、安定供給の必要性は高い。これまでに、血小板は、ドナーからの献血により採取する方法の他、TPO様類似構造 (ミメティクス)製剤を投与する方法、臍帯血又は骨髄細胞から巨核球を分化させる方法などにより確保されてきた。最近では、ES細胞又はiPS細胞などの多能性幹細胞をインビトロにおいて分化誘導し、血小板などの血液細胞を調製する技術も開発されている。
　これまでに、ヒトES細胞またはiPS細胞から巨核球及び血小板を分化誘導できることが示されており（特許文献１、非特許文献１及び特許文献２）、この血小板を製造するために不死化した巨核球前駆細胞株の樹立も報告されている（特許文献３）。この時、アポトーシス抑制遺伝子であるBcl-xlを巨核球の製造工程において強制発現させることで成熟化することも報告されている（特許文献４）。
　さらに、転写因子であるオールトランスレチノイン酸（ATRA；all trans retinoic acid）、ヒストン脱アセチル化酵素の阻害剤として知られるバルプロ酸、ROCK阻害剤またはブレビスタチンが巨核球の成熟化を促進することが報告されている（非特許文献２及び特許文献４）。さらに、癌抑制遺伝子産物であるp53をノックダウンすると巨核球の多核化を促進すること（非特許文献３）も報告されている。
　その他、巨核球の分化過程に対する影響として、未成熟な巨核球を、通常の培養温度より高温の39℃で培養すると多核化した成熟巨核球の誘導及びproplateletsの形成を促進することなども示されている（非特許文献４）。
　このように、巨核球の成熟化に係る化合物等の報告がされているが、これらの報告にある巨核球は、一見成熟していても血小板を十分な量産生できず、機能的な血小板をより大量に製造する方法が求められていた。
WO2008/041370 WO2009/122747 WO2011/034073 WO2012/157586
Takayamaら,Blood,111：5298-5306 2008 Schweinfurthら,Platelets,21：648-657 2010 Fuhrkenら,J.Biol.Chem.,283：15589-15600 2008 Proulxら,Biotechnol.Bioeng.,88：675-680 2004
　本発明者らは、血小板製剤を製造するためには、機能的な血小板（止血作用など生体内における活性を保持している血小板で、CD42b+として特徴付けられる）を安定的に、より多く産生する巨核球株の樹立が必要であることを見出し、この問題点を克服するためには、従来の方法で得られた巨核球株をさらに成熟させる必要があると考えた。
　そこで、本発明は、このような巨核球株を成熟させるための物質およびその用途を提供することを課題とする。
　上記課題に鑑み、本発明者らは、多能性幹細胞（ES細胞、iPS細胞など）から調製した造血前駆細胞から樹立した巨核球を成熟させるために適した化合物を探索したところ、ABCトランスポーター阻害剤であるプロベネシドがその機能を有することを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は、以下を包含する。
[１]　ABCトランスポーター阻害剤を含む培養液中で未熟巨核球を培養する工程を含む、成熟巨核球の製造方法。
[２]　前記ABCトランスポーター阻害剤が、ABCトランスポーターのCファミリーの阻害剤である、[１]に記載の製造方法。
[３]　前記ABCトランスポーター阻害剤が、プロベネシドである、[１]または[２]に記載の製造方法。
[４]　前記未熟巨核球が、多能性幹細胞由来の造血前駆細胞から製造された未熟巨核球である、[１]から[３]のいずれかに記載の製造方法。
[５]　前記未熟巨核球が、多能性幹細胞由来の造血前駆細胞へ癌遺伝子、p16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子から成る群より選択される遺伝子を強制発現させて製造された巨核球である、[４]に記載の製造方法。
[６]　前記未熟巨核球が、多能性幹細胞由来の造血前駆細胞へ、c-Myc、Bmi1およびBcl-xLから成る群より選択される遺伝子を強制発現させて製造された巨核球である、[５]に記載の製造方法。
[７]　前記培養工程を、4日以上行う、[１]から[６]のいずれかに記載の製造方法。
[８]　ABCトランスポーター阻害剤を用いた未熟巨核球を成熟化する方法。
[９]　前記ABCトランスポーター阻害剤が、ABCトランスポーターのCファミリーの阻害剤である、[８]に記載の方法。
[１０]　前記ABCトランスポーター阻害剤が、プロベネシドである、[８]または[９]に記載の方法。
[１１]　ABCトランスポーター阻害剤を含む巨核球成熟化剤。
[１２]　前記ABCトランスポーター阻害剤が、ABCトランスポーターのCファミリーの阻害剤である、[１１]に記載の剤。
[１３]　前記ABCトランスポーター阻害剤が、プロベネシドである、[１１]または[１２]に記載の剤。
　本発明によれば、高度に成熟した巨核球を製造することが可能となる。従って、本発明により得られた成熟した巨核球からより確実に機能的な血小板を大量に製造することを可能にすることから、臨床応用にも大きく貢献する。
図１は、probenecid（プロベネシド）を添加または基剤のみ添加（vehicle）して、不死化巨核球株を培養した後の、各マーカー遺伝子（GATA1、NF-E2、c-MPL、β1-tubulin、MYH9およびMYH10）の発現量を定量PCRにて測定した結果を示す。
（巨核球の製造方法）
　本発明は、ABC（ATP binding cassette）トランスポーター阻害剤を含む培養液中で未熟巨核球を培養する工程を含む、成熟巨核球の製造方法を提供する。同様に、本発明は、ABCトランスポーター阻害剤を用いた未熟巨核球を成熟化する方法を提供する。
　本発明において、ABCトランスポーターとは、ATPのエネルギーを利用し細胞内から細胞外へ基質を輸送する活性を有する膜たんぱく質であり、AからGまでのファミリーに大きく区分され49種類のサブタイプが含まれる。本発明において好ましいABCトランスポーター阻害剤とは、少なくともABCトランスポーターのCファミリー（ABCCファミリー）を阻害する薬剤であり、プロベネシド、シクロスポリン、グリベンクラミド、フロセミド、インドメタシン、ブロムスルホフタレイン、ベンズブロマロン、テルミサルタン、MK571およびイマチニブ、ABCCファミリーに対するsiRNAもしくはshRNA、p53に対するsiRNAもしくはshRNAを発現するベクター、ABCCファミリーに対するアンチセンス核酸、ABCCファミリーに対するリボザイム等、ABCCファミリーに対する中和抗体が例示される。siRNA、shRNA、アンチセンス核酸、リボザイム及び中和抗体は、ABCCファミリーの遺伝子配列またはアミノ酸配列より、当業者に周知の方法で作製することができる。本発明においてABCCファミリーを阻害する薬剤は、好ましくは、プロベネシドである。ここで、プロベネシドとは、化学名4-(Dipropylaminosulfonyl) benzoic acidの化合物である。
　本発明において、プロベネシドの培地における濃度は、ABCトランスポーターを阻害する濃度であれば、特に限定されないが、例えば、250μM～25mMであり、より好ましくは、1mM～5mMであり、最も好ましくは、2.5mMである。
　本発明において、成熟巨核球を製造する工程において使用する培養液は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として、ABCトランスポーター阻害剤を添加して調製することができる。基礎培地としては、例えばIMDM培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium（ライフテクノロジーズ）およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。必要に応じて、培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。サイトカインとは、血球系分化を促進するタンパク質であり、例えば、VEGF、TPO、SCFなどが例示される。本発明において好ましい培地は、TPO、SCF、血清、インスリン、トランスフェリン、セリン、チオールグリセロールおよびアスコルビン酸を含むIMDM培地である。
　本発明において、ABCトランスポーター阻害剤を含む培養液中で未熟巨核球を培養する期間は、長期にわたることで巨核球の成熟化を妨げることがないため、特に上限は設けないが、例えば、3日以上、4日以上、5日以上、6日以上、7日以上またはそれ以上が例示される。好ましくは、4日以上である。より好ましくは4日以上28日、4日以上21日以下、4日以上14日以下または4日以上7日以下が例示される。
　成熟巨核球を製造する工程の培養温度は、以下に限定されないが、約30～40℃、好ましくは約37℃～39℃であり、CO2含有空気の雰囲気下で培養が行われ、CO2濃度は、好ましくは約2～5％である。
　本発明における「未熟巨核球」とは、多核化が進んでいない巨核球（2Nから8N程度）であり、例えば、CD41が発現している巨核球のうち、巨核球成熟関連遺伝子群（GATA1、NF-E2、c-MPL、β1-tubulinおよびMYH9）の発現量が低く、MYH10の発現量が高い巨核球である。従って、未熟巨核球とは、巨核球前駆細胞と言い換えることができる。このような未熟巨核球として、造血前駆細胞から人工的に製造された未熟巨核球が例示される。本発明において、未熟巨核球は、クローン化されていてもされていなくても良く、特に限定されないが、クローン化されたものを未熟巨核球株と呼ぶこともある。一方、「成熟巨核球」とは、巨核球成熟関連遺伝子群の発現量が高く、MYH10の発現量が低い巨核球であり、多核化が進んでいる巨核球（8N以上）である。　本発明において、「成熟化」とは、巨核球細胞の成熟が進むこと、即ち多核化が進むこと、巨核球成熟関連遺伝子の発現量が増加すること、巨核球未熟関連遺伝子の発現量が低下することなどを意味し、成熟化させる工程を行う前と比較してこれらの傾向が見られる限り、必ずしも上記定義にいう成熟巨核球に至らない場合も含む。また、「成熟化」は、培養前後の細胞群を比較して、群全体として成熟化が進んでいる場合、即ち細胞群全体の核の合計が増加している場合をいう。
　本発明において、造血前駆細胞とは、リンパ球、好酸球、好中球、好塩基球、赤血球、巨核球等の血球系細胞に分化可能な細胞である、本発明において、造血前駆細胞と造血幹細胞は、区別されるものではなく、特に断りがなければ同一の細胞を示す。造血幹細胞／前駆細胞は、例えば、表面抗原であるCD34および/またはCD43が陽性であることによって認識できる。本発明において、造血幹細胞は、多能性幹細胞、臍帯血・骨髄血・末梢血由来の造血幹細胞及び前駆細胞などから分化誘導された造血前駆細胞に対しても適用することができる。例えば、多能性幹細胞からは、Takayama N., et al. J Exp Med. 2817-2830 (2010)に記載の方法にしたがって、多能性幹細胞をVEGFの存在下でC3H10T1/2上で培養することで得られるネット様構造物（ES－sac又はiPS－sacとも称する）から調製することができる。ここで、「ネット様構造物」とは、多能性幹細胞由来の立体的な嚢状（内部に空間を伴うもの）構造体で、内皮細胞集団などで形成され、内部に造血前駆細胞を含む構造体である。この他にも、多能性幹細胞からの造血前駆細胞の製造方法として、胚様体の形成とサイトカインの添加による方法（Chadwick et al. Blood 2003, 102: 906-15、Vijayaragavan et al. Cell Stem Cell 2009, 4: 248-62、Saeki et al. Stem Cells 2009, 27: 59-67）または異種由来のストローマ細胞との共培養法（Niwa A et al. J Cell Physiol. 2009 Nov;221(2):367-77.）等が例示される。
　本発明において、多能性幹細胞とは、生体に存在する全ての細胞に分化可能である多能性を有し、かつ、増殖能をも併せもつ幹細胞であり、それには、例えば胚性幹(ES)細胞、核移植により得られるクローン胚由来の胚性幹(ntES)細胞、精子幹細胞（「GS細胞」）、胚性生殖細胞（「EG細胞」）、人工多能性幹(iPS)細胞、培養線維芽細胞や骨髄幹細胞由来の多能性細胞（Muse細胞）などが含まれる。
　本発明において、造血前駆細胞から人工的に未熟巨核球を製造する方法として、造血前駆細胞へ癌遺伝子、p16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子から成る群より選択される遺伝子を強制発現させて培養する方法が例示される。好ましくは、少なくとも癌遺伝子を造血前駆細胞へ強制発現させて、未熟巨核球を製造する方法である。より好ましくは、造血前駆細胞へ癌遺伝子、およびp16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子を強制発現させた後に、さらに、アポトーシス抑制遺伝子を強制発現させる方法である。本発明において、さらにアポトーシス抑制遺伝子を強制発現させる場合、癌遺伝子、およびp16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子を少なくとも14日間以上強制発現した後に行うことが望ましい。
　本発明において、「癌遺伝子」とは、その発現、構造または機能等が正常細胞と異なることに起因して、正常細胞のがん化を引き起こす遺伝子であり、例えば、MYCファミリー遺伝子、Srcファミリー遺伝子、Rasファミリー遺伝子、Rafファミリー遺伝子、c-KitやPDGFR、Ablなどのプロテインキナーゼファミリー遺伝子などを挙げることができる。MYCファミリー遺伝子として、c-MYC、N-MYCおよびL-MYCが例示される。より好ましくは、c-MYC遺伝子である。c-MYC遺伝子とは、例えば、NCBIのアクセッション番号NM_002467で示される核酸配列からなる遺伝子である。また、c-MYC遺伝子には、そのホモログも含まれてよく、c-MYC遺伝子ホモログとは、そのcDNA配列が、例えば、NCBIのアクセッション番号NM_002467で示される核酸配列と実質的に同一の配列からなる遺伝子のことである。当該核酸配列と実質的に同一の配列からなるcDNAとは、NCBIのアクセッション番号NM_002467で示される配列からなるDNAと、約60％以上、好ましくは約70％以上、より好ましくは約80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、最も好ましくは約99％の同一性を有する配列からなるDNA、もしくは、当該核酸配列に相補的な配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズできるDNAであって、これらのDNAによってコードされるタンパク質が、造血前駆細胞など、分化段階の細胞の増幅に寄与するもののことである。
　ここで、ストリンジェントな条件とは、当業者によって容易に決定されるハイブリダイゼーションの条件のことで、一般的にプローブ長、洗浄温度、及び塩濃度に依存する経験的な実験条件である。一般に、プローブが長くなると適切なアニーリングのための温度が高くなり、プローブが短くなると温度は低くなる。ハイブリッド形成は、一般的に、相補的鎖がその融点よりやや低い環境における再アニール能力に依存する。
　例えば、低ストリンジェントな条件として、ハイブリダイゼーション後のフィルターの洗浄段階において、37℃～42℃の温度条件下、0.1×SSC、0.1％SDS溶液中で洗浄することなどが上げられる。また、高ストリンジェントな条件として、例えば、洗浄段階において、65℃、5×SSCおよび0.1％SDS中で洗浄することなどが挙げられる。ストリンジェントな条件をより高くすることにより、相同性の高いポリヌクレオチドを得ることができる。
　本発明において、「p16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子」とは、癌遺伝子の導入より引き起こされる癌遺伝子誘導性細胞老化によりp16遺伝子またはp19遺伝子の発現を抑制させる遺伝子であり、例えば、BMI1、Mel18、Ring1a/b、Phc1/2/3、Cbx2/4/6/7/8、Ezh2、Eed、Suz12、HADCおよびDnmt1/3a/3bが例示される。好ましくは、BMI1である。BMI1とは、例えば、NCBIのアクセッション番号NM_005180で示される核酸配列からなる遺伝子である。また、BMI1遺伝子には、そのホモログも含まれてよく、BMI1遺伝子ホモログとは、そのcDNA配列が、NCBIのアクセッション番号NM_005180に記載された核酸配列と実質的に同一の配列からなる遺伝子のことである。NCBIのアクセッション番号NM_005180で示される核酸配列と実質的に同一の配列からなるcDNAとは、当該核酸配列と、約60％以上、好ましくは約70％以上、より好ましくは約80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、最も好ましくは約99％の同一性を有する配列からなるDNA、もしくは、当該核酸配列に相補的な配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズできるDNAであって、これらのDNAによってコードされるタンパク質が、造血前駆細胞など、分化段階の細胞の増幅に寄与するもののことである。
　本発明において、「アポトーシス抑制遺伝子」とは、アポトーシスを抑制する遺伝子であれば特に限定されず、例えば、BCL2遺伝子、BCL－XL遺伝子、Survivin、MCL1などが挙げられる。好ましくは、BCL-XL遺伝子である。BCL－XL遺伝子とは、例えば、NCBIのアクセッション番号NM_001191またはNM_138578で示される核酸配列からなる遺伝子である。また、BCL－XL遺伝子には、そのホモログも含まれてよく、BCL－XL遺伝子のホモログとは、そのcDNA配列が、例えば、NCBIのアクセッション番号NM_001191またはNM_138578で示される核酸配列と実質的に同一の配列からなる遺伝子のことである。NCBIのアクセッション番号NM_001191またはNM_138578で示される核酸配列と実質的に同一の配列からなるcDNAとは、当該核酸配列と、約60％以上、好ましくは約70％以上、より好ましくは約80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、最も好ましくは約99％の同一性を有する配列からなるDNA、もしくは、当該核酸配列に相補的な配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズできるDNAであって、そのDNAによってコードされるタンパク質が、アポトーシスを抑制する効果を有するもののことである。
　造血前駆細胞において強制発現させる遺伝子は、１７βエストラジオールまたは４OH-Tamoxifenの添加により活性を制御するため、エストロゲン受容体(ER)と融合させても良い。
　本発明において、上記の遺伝子を造血前駆細胞において強制発現させる方法として、当業者の常法にしたがって行うことができ、例えば、これらの遺伝子を発現するベクター、またはこれらの遺伝子をコードするタンパク質またはRNAの形態で造血前駆細胞へ導入することによって成し得る。さらには、これらの遺伝子の発現を誘導する低分子化合物等を造血前駆細胞と接触させることによって行うことができる。ここで、本発明では、一定期間、上記遺伝子を発現し続ける必要があることから、発現ベクター、タンパク質、RNAまたは発現を誘導する低分子化合物等は、必要な期間に合わせて複数回導入することによって行い得る。
　これらの遺伝子を発現するベクターとは、例えば、レトロウイルス、レンチウィルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウィルス、ヘルペスウイルス及びセンダイウィルスなどのウィルスベクター、動物細胞発現プラスミド（例、pA1-11，pXT1，pRc/CMV，pRc/RSV，pcDNAI/Neo）、エピソーマルベクター（複製開始点oriPとEBNA-1遺伝子または複製開始点oriとSV40 large T antigen遺伝子を含有するプラスミドベクター）、piggyBacベクター（Kaji, K. et al., Nature, 458: 771-775 (2009)）、人工染色体ベクター（例えばヒト人工染色体(HAC)、酵母人工染色体(YAC)、細菌人工染色体(BAC、PAC)）などが用いられ得る。単回導入により実施し得るという点において、好ましくは、レトロウィルスベクターまたはレンチウィルスベクターである。
　発現ベクターにおいて使用されるプロモーターの例としては、EF-αプロモーター、CAGプロモーター、SRαプロモーター、SV40プロモーター、LTRプロモーター、CMV（サイトメガロウイルス）プロモーター、RSV（ラウス肉腫ウィルス）プロモーター、MoMuLV（モロニーマウス白血病ウィルス）LTR、HSV-TK（単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ）プロモーターなどが用いられる。発現ベクターは、プロモーターの他に、所望によりエンハンサー、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー遺伝子、SV40複製起点などを含有していてもよい。有用な選択マーカー遺伝子としては、例えば、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子、ピューロマイシン耐性遺伝子等が挙げられる。
　本発明の発現ベクターにおいて、テトラサイクリンまたはドキシサイクリンによりその遺伝子の発現を制御するため、プロモーター領域にはテトラサイクリン反応性エレメントを有しており、対応する薬剤の存在下で遺伝子発現をさせる薬剤応答性ベクター（変異型Tetリプレッサータンパク質（rTetR）とVP16活性化ドメイン（AD）より構成される融合タンパク質を同時に発現するベクター）または対応する薬剤の存在下で遺伝子発現を停止させる薬剤逆応答性ベクター（Tetリプレッサータンパク質（TetR）とVP16活性化ドメイン（AD）より構成される融合タンパク質を同時に発現するベクター）であってもよい。この他にも、Cre-loxPシステムを使用して、遺伝子をベクターから切り出すため、loxP配列にて遺伝子またはプロモーター領域もしくはその両方をはさむようにloxP配列を設置された発現ベクターを用いてもよい。
　本発明では、同時に複数の遺伝子を導入するため、遺伝子が縦に連結されてポリシストロニックなベクターを得てもよい。ポリシストロニックな発現を可能にするために、口蹄疫ウィルスの2A自己開裂ペプチド（Science, 322, 949-953, 2008などを参照)およびIRES配列などを強制発現させる遺伝子の間にライゲーションされて用いられ得る。
　本発明において、発現ベクターを造血前駆細胞への導入する方法として、ウィルスベクターの場合、該核酸を含むプラスミドを適当なパッケージング細胞（例、Plat-E細胞）や補完細胞株（例、293細胞）に導入して、培養上清中に産生されたウィルスを回収し造血前駆細胞と接触させ感染させることによって成し得る。非ウィルスベクターの場合、リポフェクション法、リポソーム法、エレクトロポレーション法、リン酸カルシウム共沈殿法、DEAEデキストラン法、マイクロインジェクション法、遺伝子銃法などを用いてプラスミドベクターを細胞に導入することができる。
　本発明の未熟巨核球の作製においては、任意の培地を用いて、フィーダー細胞上で培養する方法が例示される。フィーダー細胞としては、巨核球を誘導することができる細胞であれば特に限定されないが、例えば、C3H10T1/2（Katagiri T, et al., Biochem Biophys Res Commun. 172, 295-299 (1990)）が挙げられる。
　本発明の未熟巨核球の作製において用いる培地は、特に限定されないが、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として調製することができる。基礎培地としては、例えばIMDM培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地、Neurobasal Medium（ライフテクノロジーズ）およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。必要に応じて、培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。サイトカインとは、血球系分化を促進するタンパク質であり、例えば、VEGF、TPO、SCFなどが例示される。本発明において好ましい培地は、血清、インスリン、トランスフェリン、セリン、チオールグリセロール、アスコルビン酸、TPOを含むIMDM培地である。より好ましくは、さらにSCFを含む。また、癌遺伝子、p16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子から成る群より選択される遺伝子を強制発現し続けていることが望ましく、発現維持のための条件を適宜選択することが好ましい。従って、未分化巨核球とは、当該遺伝子の発現を維持している巨核球であっても良い。
　本発明の未熟巨核球の作製において、培養する際の条件は、特に限定されないが、約30℃～約42℃とすることができる。37℃以上の温度で培養することにより、巨核球の分化を促進することが確認されている。ここで、37℃以上の温度とは、細胞にダメージを与えない程度の温度が適当であることから、例えば、約37℃～約42℃程度、約37～約39℃程度が好ましい。また、37℃以上の温度における培養期間については、巨核球の数などをモニターしながら、適宜決定することが可能であるが、例えば、6日間～48日間、好ましくは12日間～36日間程度である。CO2含有空気の雰囲気下で培養してもよく、その場合、CO2濃度は、好ましくは約2～5％である。本発明において、未熟巨核球株を樹立した場合、培養期間が長いことについては、巨核球の製造においては問題とされない。また、培養期間中は、適宜、継代を行うことが望ましい。
　本発明において提供される成熟巨核球の製造工程においては、さらに、(a)p53遺伝子産物の発現又は機能を阻害する物質、(b)アクトミオシン複合体機能阻害剤、(c)ROCK阻害剤 (d)HDAC阻害剤をさらに含む培養液を用いてもよい。これらの方法は、例えば、WO2012/157586に記載された方法にしたがって実施し得る。p53遺伝子産物の発現又は機能を阻害する物質として、Pifithrin (PFT)-α及び-β（WO2000/44364）、並びにPFT-μ（Storm et al, Nat. Chem. Biol. 2, 474 (2006)）、p53のドミナントネガティブ変異体、例えば、p53P275S（de Vries, A., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99, 2948-2953 (2002)）、p53DD（Bowman, T., Genes Develop., 10, 826-835 (1996)）、p53に対するsiRNAもしくはshRNA、p53に対するsiRNAもしくはshRNAを発現するベクター、p53に対するアンチセンス核酸及びp53に対するリボザイム等が挙げられる。ROCK阻害剤としては、例えばY27632が挙げられる。アクトミオシン複合体機能阻害剤としては、ミオシン重鎖II ATPase阻害剤である、ブレビスタチンが挙げられる。ROCK阻害剤を単独で加えてもよく、ROCK阻害剤とアクトミオシン複合体機能阻害剤を単独で加えてもよいし、これらを組み合わせて加えてもよい。
　本発明において、造血前駆細胞へ遺伝子を強制発現させて製造された未熟巨核球を用いる場合、巨核球の成熟にあたり、ABCトランスポーターを含む培養液で培養する工程に加えて、さらに、当該遺伝子の強制発現を停止する工程を含んでもよい。強制発現を停止する方法として、例えば、薬剤応答性ベクターを用いて強制発現をしている場合には、対応する薬剤と当該細胞と接触させないことによって達成させてもよい。薬剤逆応答性ベクターを用いて強制発現をしている場合には、対応する薬剤と当該細胞を接触させる/または接触を止めることによって達成させてもよい。この他にも、上記のLoxPを含むベクターを用いた場合は、Creリコンビナーゼを当該細胞に導入することによって達成させてもよい。さらに、一過性発現ベクター、およびRNAまたはタンパク質導入を用いた場合は、当該ベクター等との接触を止めることによって達成させてもよい。
　本明細書において、巨核球の成熟とは、巨核球が十分に多核化し、機能的な血小板を産生できることをいう。巨核球の成熟は、例えば、GATA1、p45 NF-E2、beta1-tubulin、c-MPL 、MYH9などの巨核球成熟関連遺伝子群の発現の上昇によっても確認することができる。
（成熟巨核球組成物）
　本発明の方法によって未熟巨核球を処理すると、成熟した巨核球へと成熟することができる。そのため、成熟巨核球の含有率の高い細胞組成物を取得することができる。細胞組成物において成熟巨核球の含有率が高いか否かは、当業者が経験や文献に基づいて判断することができる。本発明の方法で成熟巨核球を製造した場合、成熟巨核球の含有率は、少なくとも、50％以上、60％以上、70％以上、80％以上、90％以上であり、より好ましくは100％である。従って、本発明の方法により、成熟巨核球の存在比率の高い巨核球集団を調製することが可能となる。
　本発明の方法で得られた巨核球等は、適切な方法によって、生体内に移植し、生体内における機能性血小板を産生させるためにも有効である。従って、本発明の方法で得られた巨核球を含む治療剤を提供する。
　本発明の方法によって得られる巨核球等の移植は、骨髄移植におけるドナー数の不足及びドナーの負担の問題、臍帯血移植における生体内での血小板産生能力の問題を解決することが可能で、従来の移植法と比較して、非常に優れた方法ということができる。
（血小板の製造方法）
　本発明の方法で得られた成熟巨核球から、in vitroで血小板を産生し得る。
　本発明に係る血小板の製造方法は、上述の方法で得られた成熟巨核球を培養し、培養物から血小板を回収する工程を含む。
　培養条件は、成熟巨核球の製造工程を継続することによって、実施し得る。また、得られた血小板を移植に用いる観点から、血清フリー及び／又はフィーダー細胞フリーの条件で行うことが好ましい。なお、フィーダー細胞を用いない場合は、conditioned mediumを使用してもよい。conditioned mediumは、特に限定されず、当業者が公知の方法等に従って作製することができるが、例えば、フィーダー細胞を適宜培養し、培養物からフィーダー細胞をフィルターで除去することによって得ることができる。
　本発明で得られた血小板は、製剤として患者に投与することができる。投与に当たっては、本発明の方法で得られる血小板は、例えば、ヒト血漿、輸液剤、クエン酸含有生理食塩液、ブドウ糖加アセテートリンゲル液を主剤とした液、PAS（platelet additive solution）（Gulliksson, H. et al., Transfusion, 32：435-440, (1992））等にて保存、製剤化してもよい。保存期間は、3日から7日程度で、好ましくは4日間である。保存条件として、室温（20-24度）で振盪撹拌して保存することが望ましい。
（巨核球成熟化剤または成熟巨核球の製造キット）
　本発明の実施形態には、巨核球成熟化剤または成熟巨核球を製造するためのキットが含まれる。当該巨核球成熟化剤またはキットには、上述したABCトランスポーター阻害剤が含まれる。その他、巨核球の成熟に用いることができる試薬、例えば、培養液、(a)p53遺伝子産物の発現又は機能を阻害する物質、(b)アクトミオシン複合体機能阻害剤、(c)ROCK阻害剤 (d)HDAC阻害剤が挙げられる。当該キットには、さらに、成熟巨核球を認識するための試薬（例えば、GATA1、p45 NF-E2、beta1-tubulin、c-MPL 、MYH9に対するPCR用プライマー）が含まれ得る。巨核球成熟化剤または当該キット中に含まれる試薬等は、構成成分が活性を長期間有効に持続し、容器の材質によって吸着されず、変質を受けないような何れかの種類の容器中に供給される。
　本明細書中に記載される「細胞」の由来は、ヒト及び非ヒト動物（例えば、マウス、ラット、ウシ、ウマ、ブタ、ヒツジ、サル、イヌ、ネコ、トリなど）であり特に限定はされないが。特に好ましくは、ヒト由来の細胞である。
　以下に実施例を示してさらに詳細に説明するが、本発明は実施例により何ら限定されるものではない。
＜不死化巨核球株の準備＞
　ヒトiPS細胞由来不死化巨核球株は、WO 2012/157586に記載された方法を改良して作製した。簡潔には、ヒト末梢血から作製したiPS細胞から造血前駆細胞を調製し、レトロウィルス法にてc-Myc、Bmi1およびBcl-xLを遺伝子導入して、不死化巨核球株を作製し、導入した遺伝子を発現したまま少なくとも24日以上維持培養した。また、導入した遺伝子は、Doxicyclinの添加によってc-Myc、Bmi1およびBcl-xLの発現を抑制することができる。
＜不死化巨核球株の成熟化＞
　予めマイトマイシンCで不活化させたC3H10T1/2細胞を1x104cells/well (96well plate)で播種し、一晩以上培養してフィーダー細胞とした。このフィーダー細胞上へ上記の不死化巨核球株を3x104 cells/well (96well plate)で播種し、2.5mM Probenecid存在下または非存在下（基剤のみを添加）で50ng/mL SCF、50ng/mL TPOおよび0.5μg/mL Doxicyclin含有する基礎培地（15% Fetal Bovine Serum、1% Penicillin-Streptomycin-Glutamine、1% Insulin, Transferrin, Selenium Solution、0.45mM 1-Thioglycerolおよび50μg/mL L-Ascorbic Acidを含有するIMDM (Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium)）にて37℃、5％CO2下で4から6日間培養した。培養後の細胞からRNAを抽出し、定量的PCR法にてGATA1, p45 NF-E2, c-MPL, β1-tubulin、MYH9、MYH10の発現を確認した（図１）。
　その結果、2.5mM Probenecidの存在下で培養した不死化巨核球株では、基剤のみを添加して培養した不死化巨核球株と比較して、巨核球成熟関連遺伝子群（GATA1、NF-E2、c-MPL、β1-tubulinおよびMYH9）の発現量が約2～3倍上昇しており、巨核球未熟関連遺伝子であるMYH10は約1/2に低下していた。
　以上より、Probenecidを添加して培養することで、ヒトiPS細胞由来不死化巨核球株の成熟化を促進することが確認された。

Claims (13)

  1. 　ABCトランスポーター阻害剤を含む培養液中で未熟巨核球を培養する工程を含む、成熟巨核球の製造方法。
  2. 　前記ABCトランスポーター阻害剤が、ABCトランスポーターのCファミリーの阻害剤である、請求項１に記載の製造方法。
  3. 　前記ABCトランスポーター阻害剤が、プロベネシドである、請求項１または２に記載の製造方法。
  4. 　前記未熟巨核球が、多能性幹細胞由来の造血前駆細胞から製造された未熟巨核球である、請求項１から３のいずれか一項に記載の製造方法。
  5. 　前記未熟巨核球が、多能性幹細胞由来の造血前駆細胞へ癌遺伝子、p16遺伝子又はp19遺伝子の発現を抑制する遺伝子、及びアポトーシス抑制遺伝子から成る群より選択される遺伝子を強制発現させて製造された巨核球である、請求項４に記載の製造方法。
  6. 　前記未熟巨核球が、多能性幹細胞由来の造血前駆細胞へ、c-Myc、Bmi1およびBcl-xLから成る群より選択される遺伝子を強制発現させて製造された巨核球である、請求項５に記載の製造方法。
  7. 　前記培養工程を、4日以上行う、請求項１から６のいずれか一項に記載の製造方法。
  8. 　ABCトランスポーター阻害剤を用いた未熟巨核球を成熟化する方法。
  9. 　前記ABCトランスポーター阻害剤が、ABCトランスポーターのCファミリーの阻害剤である、請求項８に記載の方法。
  10. 　前記ABCトランスポーター阻害剤が、プロベネシドである、請求項８または９に記載の方法。
  11. 　ABCトランスポーター阻害剤を含む巨核球成熟化剤。
  12. 　前記ABCトランスポーター阻害剤が、ABCトランスポーターのCファミリーの阻害剤である、請求項１１に記載の剤。
  13. 　前記ABCトランスポーター阻害剤が、プロベネシドである、請求項１１または１２に記載の剤。
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