WO2014155020A1 - Antibiogramme rapide - Google Patents

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WO2014155020A1
WO2014155020A1 PCT/FR2014/050748 FR2014050748W WO2014155020A1 WO 2014155020 A1 WO2014155020 A1 WO 2014155020A1 FR 2014050748 W FR2014050748 W FR 2014050748W WO 2014155020 A1 WO2014155020 A1 WO 2014155020A1
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WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
microorganism
antibiotic
culture medium
particle
medium
Prior art date
Application number
PCT/FR2014/050748
Other languages
English (en)
Inventor
Thierry Bernardi
Jérôme GROELLY
Original Assignee
Biofilm Control
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Biofilm Control filed Critical Biofilm Control
Publication of WO2014155020A1 publication Critical patent/WO2014155020A1/fr

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Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/18—Testing for antimicrobial activity of a material

Definitions

  • the present invention relates to a method for rapidly determining the sensitivity of a microorganism to one or more active ingredient (s) or antibiotic (s).
  • the present invention relates to the use of the method for rapidly determining the sensitivity of a microorganism to determine the minimum inhibitory concentration of a microorganism to an antibiotic.
  • the present invention finds application particularly in the analytical fields, biological research, enzymology, in the pharmaceutical field, in the field of diagnosis and / or in the medical field.
  • references in brackets ([]) refer to the list of references at the end of the text.
  • Antibiotic tests are tests to determine the sensitivity of a microorganism to an antibiotic. This determination is generally carried out for pathogenic microorganisms.
  • the purpose of the antibiogram is to determine the Minimum Inhibitory Concentrations (MIC) of a bacterial strain for the various antibiotics.
  • WHO Minimum Inhibitory Concentrations
  • the MIC is the lowest concentration of antibiotic capable of causing a complete inhibition of the growth of a given bacterium, appreciable to the naked eye, after a given incubation period. The determination of this value is not very precise but it is consecrated by the use and it profits from a large mass of information collected about it [1 and 2].
  • CA-SFM Antibiogram Committee
  • the CA-SFM protocols for the determination of the MIC in a liquid medium describe the conditions and media for their implementation.
  • the recommended medium is the medium of Mueller-Hinton, with or without supplementation.
  • this document describes the preparation of the inoculum: "Inoculum: starting from a culture of 18-24 hours on nonselective agar medium, prepare a suspension in Mueller-Hinton broth or in saline solution (0.9% NaCl) equivalent to the standard McFarland 0.5 ( ⁇ 108 CFU / ml).
  • This suspension can also be prepared from a Mueller-Hinton broth culture obtained after incubation at 37 ° C. in a shaking water bath for 3 to 5 hours, and whose density is adjusted to the McFarland 0.5 standard. This document also describes the preparation of the "Mueller Agar Medium” medium.
  • Hinton “, Seeding Method” Inoculation dilution method: dilute the suspension inoculum to 1/10 and deposit 1 to 2 ⁇ , or ⁇ 104 CFU per spot; Method of diffusion: inoculum suspension by inoculum swab diluted to 1/10 ( ⁇ 107 CFU / mL) or inoculum inoculum diluted to 1/100 ( ⁇ 106 CFU / mL) in accordance with the measures necessary security.
  • the Mueller-Hinton Medium Formula as recommended by the CA-SFM is as follows per liter of purified water is as follows:
  • the medium After dissolving in 1 liter of water, the medium is autoclaved for 15 minutes at 121 ° C. to ensure sterility.
  • this culture medium recommended to carry out cultures of bacteria isolated from samples taken from humans (urine, blood, saliva, biopsies ).
  • contains starch for those skilled in the art, starch acts in Mueller-Hinton as a protective colloid against toxic substances that may be present in the medium. Hydrolysis of starch during autoclave sterilization produces a small amount of dextrose, which is a source of energy [5].
  • the results are obtained in 18h, 24h up to 72h depending on the growth rate of the bacterial strains.
  • This delay is the consequence of the definition of the MIC: the lowest concentration of antibiotic capable of causing a complete inhibition of the growth of a given bacterium, appreciable to the naked eye, after a given incubation period.
  • This important delay is a handicap for the therapist. For a patient presenting on D0 (for example on a Monday), and a sample taken that same day, between 12 and 24 hours (usually one night) are necessary to isolate the pathogenic bacterium present in said sample (isolation on agar plate, Petri, according to the protocol described by the CA-SFM).
  • the antibiogram is made from one or more isolated colonies taken from the surface of said agar. As indicated previously, between 18 and 72 hours are necessary to know the result of Mueller-Hinton bacterial growth in liquid medium. These delays are important, much more important than most deadlines for results in the Laboratory of Medical Analysis.
  • FIG. 1 represents in particular a diagram illustrating the obtaining of said results and obtaining, if necessary, of the result by the therapist at D + 2 (Wednesday) in the morning.
  • the therapist will prescribe a presumptive treatment on D0 and consult the antibiogram result only if there is a known discrepancy: for example, if the pathogenic bacterium isolated from the specimen is resistant to the prescribed antibiotic (s). In this case, if a prescription correction is necessary, it may be vital to know a result at D + 1 rather than D + 2.
  • the present invention solves these problems and disadvantages of the state of the art.
  • the present invention is specifically intended to meet the aforementioned needs and disadvantages by providing a method for determining rapid determination of the sensitivity of a microorganism to one or more active principle (s) or antibiotic (s) .
  • the subject of the present invention is a method for determining rapid determination of the sensitivity of a microorganism to one or more active principle (s) or antibiotic (s), characterized in that it comprises the following steps :
  • At least one magnetic or magnetizable particle said particle floating on the surface of the culture medium or being suspended or lying on a surface immersed in the culture medium, ii. said microorganism for seeding the culture medium,
  • the inventors are the first to have surprisingly demonstrated that the measurement of the immobilization of the microparticles, whatever the exact physical, chemical or biological reason, makes it possible to determine and / or to predict very early, for example in less than 6 hours, the result linked to a measurement "of the growth of a given bacterium, appreciable to the naked eye" (as explained previously, according to the definition of the CA-SFM) contrary to the processes of the art which usually occurs much later, usually after 18 or 24 hours.
  • step c) of the process of the invention makes it possible to reveal the presence of said at least one microorganism in said medium to the extent that said microorganism in the medium hinders the movement of said particle and so can allow allows to reveal the insensitivity of said at least one microorganism to said active principle (s) or antibiotic (s).
  • the inventors are the first to demonstrate that it is possible to obtain early, quality and reproducible results of the measurement of microparticle immobilization used in the process of the present invention, in particular by virtue of the following elements:
  • culture medium containing less than 0.5 g / liter starch or starch means, for example, any culture medium containing less than 0.5 g / liter starch or starch. known to those skilled in the art. It may be for example a Heart-Brain Broth; Brain Heart Infusion (BHI); a Luria Brooth (LB). It may be, for example, brain brain infusion or Brain Heart Infusion (BHI) culture medium, for example marketed by the company Becton Dickinson, which is known to those skilled in the art as a polyvalent medium, adapted to the culture of a large number of microorganisms, including bacteria, yeasts and filamentous fungi.
  • the culture medium may be a commercial medium, for example a supplier, for example Becton Dickinson, sold under the reference 237500, for example prepared with purified water by mixing, for example 37 g of powder in suspension in
  • starch is a disruptive element in the reproducibility of the immobilization measurements of the magnetizable microparticles.
  • water containing no pyrolysis product is understood to mean, for example, highly purified water, or water for injectable preparation (PPI water, Laboratoires Aguettant or Lavoisier, France) for the preparation of the culture medium (BHI). , LB 7) used, for example for one of those mentioned above and below.
  • the inventors have in fact surprisingly demonstrated that this makes it possible to optimize the reproducibility of the measurements of the immobilization of the magnetizable microparticles during the implementation of the method of the present invention.
  • the prior sterilizing filtration step of the culture medium can be carried out by any method known to those skilled in the art. It may be, for example, a filtration on a sterilizing filtration membrane or by a sterilizing filtration protocol, for example by means of a 0.2 micrometer cutoff membrane, of the Steritop or Stericup type (Millipore , Bedford, MA, USA) preferably after dissolution of the components of the culture medium.
  • the prior sterilizing filtration step of the culture medium advantageously makes it possible to sterilize said media while avoiding the generation of pyrolysis product.
  • the inventors have indeed surprisingly demonstrated in their experiments that the standard method of preparation of the culture media with autoclaving generated secondary products, in particular pyrolysis, disrupting the cell growth and interacting physically. chemically with magnetizable microparticles.
  • the sterilizing filtration makes it possible to avoid the use of the starch "as a protective colloid against the toxic substances possibly present in the medium", if one considers that said toxic substances are generated by the autoclaving.
  • the method according to the invention makes it possible to determine the sensitivity of a microorganism to an antibiotic or to one or more active principle (s) well before the methods known to those skilled in the art.
  • the method according to the invention advantageously makes it possible to determine the sensitivity of a microorganism before the person skilled in the art can appreciate with the naked eye a growth of the microorganism in the culture medium.
  • the method of the invention makes it possible to determine the sensitivity of a microorganism to an antibiotic or to an active ingredient in a time approximately three times lower than those of the state of the art, thus going from 18 to 6 hours for the time of determination.
  • the method of the invention allows the determination of the MIC with the naked eye.
  • the determination of the MIC with the naked eye can correspond to the first concentration by progressing in a series of reasons 2, in which the movement of said magnetic or magnetizable particle is observed with the naked eye by application of a magnetic or electric or electromagnetic field.
  • microorganism means bacteria, fungi, algae and protozoa.
  • the bacteria that may be tested in the present invention are, for example, those included in the group, without being limited to it, consisting of Acetobacter aurantius, Actinobacillus actinomycetemcomitans, Agrobacterium tumefaciens, Azorhizobium caulinodans, Azotobacter vinelandii, Bacillus anthracis, Bacillus brevis.
  • Bacillus cereus Bacillus fusiformis, Bacillus licheniformis, Bacillus megaterium, Bacillus stearothermophilus, Bacillus subtilis, Bacillus Bacteroides gingivalis, Bacteroides melaninogenicus, Bartonella henselae, Bartonella quintana, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis, Borrelia burgdorferi, Branhamella catarrhalis, Brucella abortus, Brucella melitensis, Brucella suis, Burkholderia mallei, Burkholderia pseudomallei Calymmatobacterium granulomatis, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Campylobacter pylori, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia psittaci, Chlamydia trachomatis, Chlamydophila pneumoniae, Chla
  • Rickettsia psittaci Rickettsia quintana, Rickettsia rickettsii, Rickettsia trachomae, Rochalimaea henselae, Rochalimaea quintana, Rothia dentocariosa, Salmonella enteritidis, Salmonella typhi, Salmonella typhimurium, Serratia marcescens, Shigella dysenteriae, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus agalactiae, Streptococcus avium, Streptococcus bovis ,
  • Streptococcus cricetus Streptococcus faceium, Streptococcus faecalis, Streptococcus ferus, Streptococcus gallinarum, Streptococcus lactis, Streptococcus mitior, Streptococcus mitis, Streptococcus mutans, Streptococcus oralis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, Streptococcus rattus, Streptococcus salivarius, Streptococcus sanguis, Streptococcus sobrinus, Treponema pallidum, Vibrio cholerae, Vibrio comma, Vibrio parahemolyticus , Vibrio vulnificus, Xanthomonas maltophilia, Yersinia enterocolitica, Yersinia pestis and Yersinia pseudotuberculosis,
  • the conditions for carrying out the process of the invention are standardized culture conditions, for example pH, temperature, oxygenation, etc.
  • the method of the invention also advantageously makes it possible to test different culture times; different temperatures; different conditions for example aerobic, anaerobic, with or without agitation, with no renewal of the medium etc. to improve the growing conditions.
  • the anaerobic culture conditions of the microorganism may be obtained by closing the open end of the culture reactor for example with parafilm, a plug etc. or by placing said reactor under conditions allowing the development of anaerobic bacteria.
  • It may be, for example, anaerobiosis jars, pouches generating an oxygen depleted atmosphere and enriched with carbon dioxide, anaerobic enclosures with a controlled atmosphere and / or any means known to those skilled in the art.
  • the at least one particle may be selected from the group consisting of an electrically charged particle, a magnetic particle, a particle coated with at least one magnetic layer, a magnetizable particle, a particle coated with a magnetizable layer, or a mixture of two or more of these particles [8]. In fact, it may be any particle for implementing the present invention.
  • the particle rests on a surface immersed in the culture medium or floats on the surface of the culture medium.
  • Said particle is in stable position, that is to say at rest, in the absence of the magnetic field, or electrical, or electromagnetic in the reactor.
  • said particle may be a particle of any form suitable for the implementation of the present invention, for example in the form of a ball, a puck, an asymmetric geometric shape, for example with a flat face, etc.
  • any suitable size of magnetic or magnetizable particle may be used.
  • the size may be chosen for example depending on the size of the microorganism, and / or the size of the compartment containing the culture medium for carrying out the method of the invention and / or the microorganism.
  • the size may for example be of a size substantially identical to the size of the microorganism generating a biofilm [6 and 7] so that at least one particle may be incorporated into a biofilm, for example formed by said microorganism, objective being to use the magnetic or magnetizable particle as an inert equivalent of the microorganism.
  • this particle is mobile, microorganisms of the same size can also move.
  • this particle is immobilized, microorganisms of the same size can not move either.
  • particles of various sizes may allow a finer analysis of the structure of the biofilm: dimensions of spaces within the structure, three-dimensional organization, stability of adhesion to the surface, for example at the bottom of the tube or of the cup of the microdilution plate, in which the test is performed.
  • biofilms tend to break off in flakes (dander) from their support as they age.
  • a phase of degeneration of the biofilm with release from there, at least one, particle may allow a finer analysis of the structure of the biofilm: dimensions of spaces within the structure, three-dimensional organization, stability of adhesion to the surface, for example at the bottom of the tube or of the cup of the microdilution plate, in which the test is performed.
  • biofilms tend to break off in flakes (dander) from their support as they age.
  • the magnetic or magnetizable particle may have a size of, for example from 10 nm to ⁇ ⁇ ⁇ m, for example from 0.1 to 10 ⁇ m (size of the most common microorganisms). According to a particular embodiment of the invention, several particles may be used to implement the method of the invention.
  • the particles are incorporated into a biofilm [6 and 7], especially in the complex matrix generated by the growth of microorganisms, composed of cell bodies, adhesion systems of said microorganisms, for example filaments, pili, fimbriae, etc., more or less viscous substances, for example polysaccharides, alginates, etc. secreted by said microorganisms, the application of the magnetic field, or electrical, or electromagnetic does not cause movement of said particles incorporated in said biofilm.
  • the particles can not be grouped together to be detected.
  • the particles are not incorporated in said biofilm, for example when the mobility of the particles is not hindered by the presence of bodies of microorganisms whose size is close to those of the particles, for example of the order of one to several micrometers for example when the mobility of the particles is not impeded by the presence of the adhesion systems of said microorganisms [6 and 7], for example the filaments, pili, fimbriae, etc. generating an entanglement blocking the progression of the particle, for example when the mobility of the particles is not impeded by the presence of more or less viscous substances secreted by said microorganisms [6 and 7], for example polysaccharides, alginates, etc.
  • the application of the magnetic, or electrical, or electromagnetic field causes the movement of said particles and the grouping of the latter.
  • This grouping can advantageously be detected visually.
  • the particles may be of identical or different sizes.
  • the particles are of identical sizes, the particles are essentially incorporated at the same time in the biofilm during its formation.
  • the size of the small particles can be chosen for example, so that they are incorporated into the biofilm from the beginning of its formation, the large particles being incorporated later. In this case, the smaller particles are incorporated before the larger particles.
  • large particles may be blocked by an entanglement of filaments, pili, fimbriae etc. used by microorganisms to generate a biofilm, while small particles may still be mobile and pass through. said entanglement.
  • the small particles may have a size, for example, from 10 nm to 1 ⁇ m, for example from 100 to 500 nm
  • the large particles may have a size, for example, from 1 ⁇ m to 1 ⁇ m.
  • ⁇ for example from 1 ⁇ to 10 ⁇ , for example from 1 ⁇ to 5 ⁇ .
  • the respective size of the large and small particles is chosen so as to determine different stages of development.
  • the invention it is also possible to use a plurality of particles of identical sizes with different magnetization. If the particles are partially embedded in the biofilm, the application of the magnetic, or electrical, or electromagnetic field causes a movement of the particles that have been more strongly magnetized, the magnetic force is greater, while the particles that have been more weakly magnetized can not be set in motion.
  • said at least one particle is preferably a particle generating a detectable signal.
  • the detection of this signal will depend on the properties of the particle.
  • said at least one particle may be fluorescent, phosphorescent, radioactive, chemiluminescent, reflective or colored.
  • the fluorescence emitted by the particle can be detected, for example visually, and / or by any optical means known to those skilled in the art.
  • Said at least one particle may for example be illuminated to follow its movement by means of a light source, for example by a laser beam.
  • this particle can be visualized, for example visually, by any optical means known to those skilled in the art.
  • this particle can be detected even through optically opaque liquids or culture media, as well as through optically opaque microdilution plates by any detection device. radioactivity emitted known to those skilled in the art, especially the conventional method of revelation on autoradiographic film. It is then sufficient to press the sensitive film under the microdilution plate and then reveal the bottom image of said microdilution plate.
  • the detection of the particle can be formed by adding to the medium the chemical reagent allowing the emission of light energy by the particles.
  • the detection of this signal may be for example visual and / or by any means known to those skilled in the art, in particular by the use of CCD camera ("Charges Coupled Device") sensitive to wavelengths emitted, which scan (scan ) the wells, the wells of the microdilution plate.
  • CCD camera Charge Coupled Device
  • the detection of the particle may for example be visual or by any optical means known to those skilled in the art.
  • said at least one particle may for example be illuminated, to follow its movement by means of a light source, for example by a laser beam.
  • the detection of the particle may for example be visual and / or by any means known to those skilled in the art for the detection of colored particles.
  • the particles may advantageously be chosen from different colors depending on their size and / or according to their magnetic power.
  • the application of the magnetic field in this case allows the appearance of a colored dot on the surface by grouping the particles.
  • This feature advantageously facilitates visual detection of the grouping. Indeed, for example in the case where the particles are of two different sizes, the large particles being of one color and the small ones of another, during the application of the magnetic field, or electric or electromagnetic, depending on the nature of the biofilm, if it consists of an entanglement of filaments constituting a mesh more or less tight, more or less elastic, if it consists of a polymeric matrix (polysaccharide, alginate, etc.
  • small particles can remain immobilized in the biofilm while the large particles still mobile in the biofilm can regroup. This grouping is visible by the appearance of a colored dot which in this case is identical to the color of the larger particles. If no biofilm is present in the medium, small and large particles can be grouped and the collection of particles is visualized by appearance of a colored dot corresponding to the superposition of the two colors. Finally, if the biofilm is formed, the particles are trapped in the biofilm, they can not be grouped together and no color point is visible.
  • At least one particle may also be made depending on the medium. Indeed the detection of the movement of said at least one particle is all the easier as the contrast between said at least one particle and the culture medium is large.
  • the field for moving said at least one magnetizable particle on said surface immersed in said culture medium or said surface of said culture medium may be a magnetic field, or electric, or electromagnetic.
  • Said magnetic field, or electric or electromagnetic field may be generated, for example by a magnet or a solenoid.
  • the magnet may be for example in the form of a bar, tip, piece, etc. or any form suitable for carrying out the present invention.
  • the field may, for example, be applied by any means known to those skilled in the art, for example by pulse, by gradual increase of the electric or electromagnetic field, by electric or electromagnetic field variations or by a combination of these applications.
  • a gradual increase in the magnetic field, or electric or electromagnetic can be obtained, for example, by bringing a magnet or a solenoid together in a rectilinear or sinusoidal trajectory, or in an oscillating movement with or without a variable oscillation amplitude and / or frequency.
  • More complex field variations can be obtained, for example by rotation or by combinations of motions of a magnetized material in proximity to said at least one particle.
  • said magnetic, or electrical, or electromagnetic field may be generated by field generating means which may or may not be in motion.
  • the magnetic, or electrical, or electromagnetic field must be able to group said particles on said immersed surface in the culture medium or on said surface of said culture medium.
  • any type of antibiotic can be tested.
  • the antibiotic tested can be chosen, for example from the group comprising fusidic acid, aminoglycosides, beta-lactams, penicillins, beta-lactamase inhibitors, cephalosporins, carbapenems, monobactams, cycloserine, daptomycin, fosfomycin, lincosamides, macrolides and ketolides, mupirocin, nitroimidazoles, nitrofurans, oligosaccharides, oxazolidinones, bacitracin polypeptides, glycopeptides, polymyxins and colistin, quinolones, rifamycins, sulfonamides and diaminopyridines, synergistins, tetracyclines, antifungals, etc.
  • the antibiotic may be in solution in the culture medium and / or fixed on the surface immersed in said medium.
  • the usable binding means of the antibiotic are those known to those skilled in the art for the attachment of an antibiotic to a surface.
  • NUNC Microdilution plate suppliers
  • NUNC Denmark
  • Corning United States
  • Greiner Bio-One Austria
  • one or more antibiotics can be introduced into the culture medium.
  • the implementation of the method of the invention with a mixture of antibiotics (combination, combination) makes it possible to detect possible additive, synergistic and / or antagonistic effects.
  • additive effect is meant the addition of the actions of at least two antibiotics making it possible, for example, to find a combination of antibiotics having the same antibiotic effect as an antibiotic alone, but with lower concentrations.
  • beneficial effect is meant an improvement in the effectiveness of an antibiotic by adding at least a second antibiotic, this mixture of antibiotics having an effect greater than the addition of the effect of each antibiotic alone.
  • antagonistic effect means the inhibition of the action of an antibiotic on the microorganism by the addition of at least a second antibiotic. This embodiment can make it possible to select combinations, associations of antibiotics ("co-drug”) relevant to, for example, inhibit the development of the microorganism.
  • the antibiotics may also be introduced successively into the medium in order to identify additive, synergistic or antagonistic effects as described above.
  • the present invention also advantageously makes it possible to determine the Minimum Inhibitory Concentration (MIC) for example of planktonic growth, that is to say in the liquid phase, in the culture medium, and / or sessile growth or biofilm, that is to say the installation on the surface of a submerged surface, for example cups, wells of the microplate, said microorganism.
  • MIC Minimum Inhibitory Concentration
  • the determination of the minimum concentration of the antibiotic inhibiting the formation of the biofilm by said microorganism can be achieved by implementation successively or simultaneously the process of the invention under identical conditions using a liquid culture medium suitable for the development of a microorganism, at least one magnetic or magnetizable particle, at least one microorganism and at least one antibiotic in a concentration different from one embodiment to another.
  • Said antibiotic concentration can be established for example according to a geometric sequence of reason 1 ⁇ 2 from an initial concentration X, for example X, X / 2, X / 4, X / 8, etc., or any other sequence geometrically appropriate.
  • the concentration of antibiotic corresponds to the minimum concentration. inhibitor for biofilm formation (MICb).
  • MICb inhibitor for biofilm formation
  • the minimum antibiotic concentration from which the microorganism is susceptible to the antibiotic is determined in biofilm formation, i.e., the minimum concentration for which the at least one particle can be in motion by applying the magnetic field in one of said compartments.
  • the method of the invention can also be carried out with a zero antibiotic concentration, said embodiment constituting a growth control of the microorganism in the culture medium.
  • Another control may consist in validating the sterility of the medium in the presence of particles during the test period.
  • Another witness may be to validate that the antibiotic does not cause artifacts in the medium in the presence of particles.
  • the method of the invention may further comprise a complementary step d) of sampling the culture medium and measuring the optical density, in particular the transmission of a light beam, or the turbidity, especially the diffraction of a light beam, of said culture medium, at least one wavelength to detect the development and / or the presence of the microorganism suspended in the culture medium.
  • the sampling of said culture medium can be carried out using all the techniques known to those skilled in the art, for example by means of a pipette, a syringe, a capillary, for example also by automatic withdrawals, for example via an automatic pipette system.
  • Optical density measurement allows to determine if the growth of bacteria in suspension in the culture medium has been modified by the presence of the antibiotic.
  • the method of the invention is carried out successively with different antibiotic concentrations and after incubation the medium is taken and a measurement of the optical density and / or turbidity is carried out.
  • the minimum antibiotic concentration for which the bacterial growth in suspension has been inhibited by the antibiotic is the Minimum Inhibitory Concentration (MIC).
  • the present invention makes it possible in particular with steps a, b, c and on the one hand to reveal the sensitivity of the microorganism vis-à-vis the formation of a biofilm by measuring the MICI, and on the other hand to identify the effect of the antibiotic on bacterial growth suspended in the culture medium by measuring the MIC.
  • the present invention also makes it possible to determine in the culture medium the Minimal Inhibitory Concentration of the formation of a biofilm by a microorganism (MICb) and the Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of said at least one microorganism.
  • MICb Minimal Inhibitory Concentration of the formation of a biofilm by a microorganism
  • MIC Minimum Inhibitory Concentration
  • the determination of the MICb is faster than the determination of the MIC.
  • the antibiotics used in the present invention may be in solution or fixed on a surface immersed in the culture medium.
  • the method of the invention makes it possible to determine the minimum amount of antibiotic per unit area to inhibit the formation of said biofilm. For this, for example as indicated above for the determination of the MIC and the MICI, the process of the invention is carried out several times with amounts of antibiotics fixed in a geometric sequence of 1/2 reason.
  • the Minimum Inhibitant Amount of Antibiotic Fixed Per Unit Unit (QMIs) for which biofilm formation is inhibited is the lowest amount of antibiotic per unit area for which biofilm development is inhibited. This value is of particular interest for combating all the biofilms that form on surfaces such as for example on catheters, urinary catheters, prostheses or other materials for medical use in order to prevent nosocomial infections.
  • the method of the invention may advantageously be carried out simultaneously in a plurality of compartments.
  • a plurality of magnetic fields for example magnets
  • the magnets may for example be fixed on a support in such a way as to allow a juxtaposition of each compartment in which the method of the invention is carried out with a magnet of the support.
  • the application of the magnetic field on said compartments is independent of one compartment to another.
  • the magnetic field applied to said compartment may be identical or different from one compartment to another, preferably identical.
  • compartment in the present invention is meant for example a culture reactor, wells, tubes or wells for example microdilution plates.
  • microdilution plaque is meant the type of plaque defined for example by the American National Standards Institute and the Society for Biomolecular Screening ("microplates") bearing 96 wells, 384 and even 1536.
  • the material constituting said compartment may be any material suitable for carrying out the present invention, for example plastic, for example polycarbonate, polystyrene, etc., glass, metal, etc.
  • plastic for example polycarbonate, polystyrene, etc., glass, metal, etc.
  • polystyrene microdilution plates having bottomless cups. The bottom of these cups is obtained by fixing a flat surface under the microdilution plate.
  • This flat surface may be made of transparent materials, for example plastic, glass, etc. or in opaque materials, for example metal, ceramic, etc.
  • the method of fixing the flat surface beneath the microdilution plate may be any appropriate mode known to those skilled in the art for such a fastening, for example by adhesive bonding, by a friction method, by adhesive bonding, melting of the plastic material, for example by laser, etc.
  • the different compartments can be grouped together on the same support, for example on a plate comprising from 1 to 396 wells, for example 6, 16, 64, 96, etc.
  • the compartment may correspond for example to an enclosure with a closed end, of the tube type, well, etc. or an enclosure having two openings.
  • the compartment may have a closed end so as to form a flat bottom.
  • the compartment may have a closed end so as to form a hemispherical bottom.
  • the compartment may have two open ends.
  • said compartment can be configured to allow flow of the culture medium in a constant flow or in a discontinuous flow.
  • the method can be carried out for example in a plurality of compartments each comprising:
  • the method may be carried out for example in a plurality of compartments comprising a different concentration of said antibiotic from one compartment to another.
  • the concentration antibiotic may be zero, said compartment representing a culture control of said microorganism without antibiotic.
  • Another of said compartments may be devoid of microorganism, this compartment constituting a sterility control medium.
  • the method of the invention thus also advantageously makes it possible to determine the minimum inhibitory concentration of an antibiotic for bacterial growth for said microorganism by carrying out the method of the invention in the different compartments in a single step on a single support. .
  • the method of the invention allows for example to follow the recommendations of the Committee of the Antibiogram of the French Society of Microbiology, relating to the general technical conditions for the dilution methods.
  • the minimum inhibitory concentration of said antibiotic with respect to the growth of said suspended microorganism in each compartment from said samples and measurements of optical density and / or turbidity, at a rate of wavelength for detecting the development of the microorganism, said samplings.
  • the method of the invention may for example be used for the implementation of an antibiogram of aids to prescription: like streptococcal tonsillitis tests (to find out whether or not it is appropriate to administering an antibiotic), a microorganism taken from a patient can be tested in vitro by application of the method of the invention. This microorganism can then be tested with different antibiotics, for example on a single analysis support, to optimize the treatment of this patient. Application of the method to said microorganism makes it possible to verify that the microorganism is indeed sensitive to antibiotics at a concentration, for example equal to the MIC. In the case where the microorganism has a resistance to antibiotics tested, the method of the invention allows to know if it is concomitant with the presence of a biofilm.
  • the method of the invention therefore makes it possible to propose combinations of antibiotics ("co-drug") in order to more effectively inhibit the development of said microorganism.
  • the method of the invention may also make it possible to follow in-vitro the evolution of the MIC of a microorganism of a patient with respect to an antibiotic. This aspect is important for long-term treatments, or for immunocompromised patients prone to chronic infections with the same microorganism.
  • the method of the invention makes it possible to monitor the appearance of a resistance to a treatment, for example following the development by said microorganism of a biofilm. The method then makes it possible to find other antibiotics more able to inhibit the growth of said microorganism.
  • FIG. 1 represents a diagram illustrating the delays in obtaining the results of antibiograms by the methods of the state of the art compared with the delays for obtaining the results of Fast Antibiograms according to the invention.
  • Figure 2 shows a photograph illustrating the results of measurement of the IJC to " ⁇ g / rriL piperacillin Staphylococcus aureus CIP 76.25, mid Mueller-Hinton culture, as recommended by the Antimicrobial the Committee of the French Society Microbiology.
  • Figure 3 shows a photograph illustrating the results of measurement of the IJC to " ⁇ g / rriL piperacillin Staphylococcus aureus CIP 76.25, in culture medium BHI, as recommended by the Antimicrobial the Committee of the French Society of Microbiology.
  • FIG. 4 is a juxtaposition of photographs with an image above the bottom of 8 wells of a microplate after 6 hours of incubation, after magnetization, and below an image of the bottom 8 wells of a microplate after 24 hours of incubation and after magnetization.
  • the MIC read according to the invention is 1 g / ml which corresponds to the reference MIC for Staphylococcus aureus CIP 76.25 and piperacillin according to the Antibiogram Committee of the French Society. of Microbiology (CA-SFM).
  • T-ATB AnTiBiotic control and corresponds to the wells where only the maximum antibiotic concentration and the BHI medium have been introduced
  • T-Sa Staphylococcus aureus control and corresponds to the wells in which only the microorganism and the BHI medium were introduced
  • Cx4 means MIC multiplied by 4 and corresponds to the wells where the antibiotic is present in the BHI medium at the concentration 4 times higher than that of the reference MIC for the microorganism and the antibiotic according to the Committee of the Antibiogram of the French Society of Microbiology (CA-SFM)
  • Cx2 means MIC multiplied by 2 and corresponds to wells where the antibiotic is present at the concentration 2 times higher than
  • FIG. 5 represents a photograph of the results illustrating the measurement of the MIC at 0.25 ⁇ g / ml of ciprofloxacin on E. coli CIP 76.24, in medium of Mueller-Hinton culture, according to the recommendations of the Antibiogram Committee of the French Society of Microbiology.
  • FIG. 6 is a bar graph showing the results of the measurement of the BFI according to the invention, as a function of the incubation time (Oh, 2h, 4h, 6h, 8h and 24h). The ordinate represents the measurement in BFI and the abscissa the time.
  • BHI control corresponds to wells in which only the medium was introduced
  • BHI + ATB 128 ⁇ g / mL indicator corresponds to wells in which only the medium and the maximum antibiotic concentration were introduced
  • sticks represent the BFI measurement, from left to right, for each time: BHI control, BHI + ATB128 ⁇ g / mL control, BHI 128- 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0.5 - 0.25 - 0.125 ⁇ g / mL
  • the MICs of the different antibiotics were established according to the standard protocol of the Committee of the Antibiogram of the French Society of Microbiology (CA-SFM), in liquid Mueller-Hinton medium by dilution of reason 2. This protocol is well known to the a person skilled in the art who will make reference to the general technical conditions for dilution methods (Bulletin of the French Microbiology Society, 1993, 8, 156-66 [1], Clinical Microbiological Infection 1996, 2, Suppl.1 [2] ). The same values were obtained in liquid BHI medium.
  • Inoculation of antibiotic ranges Add 1 ml of the inoculum to each tube of the antibiotic range (including the control tube).
  • the minimum inhibitory concentration (MIC) is the antibiotic concentration of the first tube as it progresses to increasing antibiotic concentrations, in which no culture is visible to the naked eye after 18 hours of incubation.
  • Figure 2 shows the results of the measurement of the MIC of piperacillin on Staphylococcus aureus CIP 76.25, in Mueller-Hinton culture medium, according to the method of the state of the art.
  • the value obtained after 18 hours of incubation is 1 g / ml (indicated in the illustration by an arrow with the mention CMI).
  • Figure 3 shows the results of the measurement of the MIC of piperacillin on Staphylococcus aureus CIP 76.25, in BHI culture medium, according to the method of the state of the art.
  • the value obtained after 18 hours of incubation is also 1 g / ml (shown in the illustration with the mention CMI). Examples of the process of the invention
  • the method of the invention is carried out in wells of 96 well microdilution plates BioFilm Control (Clermont-Limagne Biopole, 63360 Saint-Beauzire, France).
  • the culture medium consists of BHI powder (Brain Heart Infusion medium) from Difco (Difco, Detroit, Ml, USA) dissolved in Water For Injectable Preparation (Aguettant Laboratory, France or Lavoisier, France). After dissolution, the BHI culture medium was sterilized, not by autoclaving according to the state of the art, but by filtration via a Steritop or Stericup 0.2 ⁇ filtration unit (Millipore, Bedford, MA, USA) and was maintained at 37 ° C. in a water bath, was used to carry out all the necessary steps, in particular the successive dilutions, then the incubations.
  • BHI powder Brain Heart Infusion medium
  • Difco Difco, Detroit, Ml, USA
  • Water For Injectable Preparation Aguettant Laboratory, France or Lavoisier, France.
  • the magnetic particles used in the process are the toner
  • TON005 from the company BioFilm Control (Clermont-Limagne Biopole, 63360 Saint-Beauzire, France) with a size of 1 ⁇ of diameter. In general, about 10 5 to 10 6 particles are used in each well of the microdilution plate.
  • the magnetic field was made using a block carrying 96 mini-magnets BioFilm Control (Biopole Clermont-Limagne, 63360 Saint-Beauzire, France). France).
  • the microdilution plate was keyed to the block so that the 96 mini magnets were centered under the bottom of each of the 96 wells of the microdilution plate.
  • the antibiotics used were tested at the following concentrations (g / ml) 128 - 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0,5 - 0,25 - 0,125 ⁇ g / ml, in total for Escherichia coli Cl P 76.24, or partially for Staphylococcus aureus CIP 76.25 because the reference MIC was well framed.
  • the microorganisms tested were Staphylococcus aureus CIP 76.25 and Escherichia coli CIP 76.24 (Pasteur Institute, Paris, France).
  • the protocol for the preparation of antibiotic dilutions is based on the reference protocol of the Antibiogram Committee of the French Microbiology Society, using dilutions of reason 2.
  • the preparation of the culture medium, the use of microplates and the reading mode is described in Chavant et al. A new device for rapid evaluation of biofilm formation potential by bacteria, Journal of Microbiological Methods. 2007 Mar; 68 (3) 605-12 [8], and therefore known to those skilled in the art.
  • T-BHI BHI culture medium with particles without antibiotic and without microorganisms. This well made it possible to validate the behavior of the particles alone in the culture medium;
  • TS.a. BHI culture medium with particles, with a microorganism, without antibiotic, this well is the witness of viability, validating the normal behavior of the microorganism in the medium (T2);
  • T-ATB Antibiotic control
  • the dilutions made with the BHI culture medium were distributed in the wells of a microplate.
  • the microorganism of the order of 10 6 cfu per well, was incubated to observe a difference (visual or by image analysis) between the wells in which the microorganism is growing and the wells where the development of the microorganism is inhibited between the control wells and the sample wells, the sample wells comprising a microorganism that can develop and that can hinder the movement of the magnetizable particles under the effect of the magnetic field.
  • the Minimal Inhibitory Concentration (MIC) read with the Fast Antibiogram method is the antibiotic concentration of the first well progressing towards increasing antibiotic concentrations, in which a spot is visible, i.e. no microorganism is present. is present to immobilize the microbeads during the magnetization step.
  • MIC Minimal Inhibitory Concentration
  • FIG. 4 illustrates the result of the Rapid Antibiogram test, according to the invention, in which it can be read with the naked eye that at 6 o'clock already, the MIC read was 1 g / ml.
  • Table 1 summarizes the results obtained by the method of the art, after 18 hours, and the method according to the invention Fast Antibiogram after 6 hours.
  • Table 1 MIC results for piperacillin according to the method of the state of the art and according to the Fast Antibiogram method
  • FIG. 6 is a bar graph showing the results of the BFI measurement according to the invention, when E. coli strain CIP 76.24 was incubated with ciprofloxacin at the following concentrations (g / ml). 128 - 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0.5 - 0.25 - 0.125 ⁇ g / mL. As early as 6 hours, the growth of E. coli CIP 76-24 was inhibited from the 0.25 ⁇ g / mL concentration of ciprofloxacin, while a low BFI value at the concentration of 0.125 ⁇ g / mL was observed. indicating that there is bacterial growth capable of immobilizing the Fast Antibiogram process microbeads.
  • Table 2 summarizes the results obtained by the method of the art, after 18 hours, and the method according to the invention after 6 hours.
  • Table 2 MIC results of ciprofloxacin according to the method of the state of the art and according to the Fast Antibiogram method

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Abstract

La présente invention se rapporte à un procédé de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme à un ou plusieurs principe(s) actif(s) et/ou antibiotique(s). La présente invention se rapporte à l'utilisation du procédé de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme pour déterminer la concentration minimale inhibitrice d'un microorganisme à un antibiotique. La présente invention trouve une application notamment dans les domaines analytiques, de la recherche biologique, enzymologique, dans le domaine pharmaceutique, dans le domaine du diagnostic et/ou dans le domaine médical.

Description

ANTIBIOGRAMME RAPIDE
DESCRIPTION Domaine technique
La présente invention se rapporte à un procédé de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme à un ou plusieurs principe(s) actif(s) ou antibiotique(s).
La présente invention se rapporte à l'utilisation du procédé de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme pour déterminer la concentration minimale inhibitrice d'un microorganisme à un antibiotique.
La présente invention trouve une application notamment dans les domaines analytiques, de la recherche biologique, enzymologique, dans le domaine pharmaceutique, dans le domaine du diagnostic et/ou dans le domaine médical.
Dans la description ci-dessous, les références entre crochets ([]) renvoient à la liste des références présentée à la fin du texte.
Etat de la technique
Les antibiogrammes sont des tests permettant de déterminer la sensibilité d'un microorganisme à un antibiotique. Cette détermination est en général réalisée pour des microorganismes pathogènes.
L'antibiogramme a pour but de déterminer les Concentrations Minimales Inhibitrices (CMI) d'une souche bactérienne vis-à-vis des divers antibiotiques. Par définition (O.M.S.), la CMI est la plus faible concentration d'antibiotique capable de provoquer une inhibition complète de la croissance d'une bactérie donnée, appréciable à l'œil nu, après une période d'incubation donnée. La détermination de cette valeur est peu précise mais elle est consacrée par l'usage et elle bénéficie d'une masse importante d'informations recueillies à son sujet [1 et 2]. A la suite des recommandations du Comité d'Experts de la Standardisation biologique de l'OMS [3], la Société Française de Microbiologie a créé un Comité de l'Antibiogramme (CA-SFM) chargé de déterminer les valeurs critiques qui délimitent les catégories cliniques (antérieurement catégories thérapeutiques) et de proposer un guide pour la détermination de la sensibilité des bactéries aux antibiotiques. Les valeurs critiques définies pour les concentrations et les diamètres des zones d'inhibition, ainsi que les recommandations spécifiques à certaines espèces ou à certains groupes d'antibiotiques sont publiées dans un communiqué annuel.
Les méthodes et procédés connus pour réaliser un antibiogramme sont indiqués notamment dans les recommandations du Comité de l'Antibiogramme de Société Française de Microbiologie [4].
En particulier les protocoles du CA-SFM pour la détermination de la CMI en milieu liquide décrit les conditions et milieux pour leurs mises en œuvre. Selon les « conditions techniques générales pour les méthodes de dilution... » (Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie, Recommandations 2010, page 4, [4]) le milieu recommandé est le milieu de Mueller-Hinton, avec ou sans supplémentation. En particulier, ce document décrit la préparation de l'inoculum:« Inoculum : à partir d'une culture de 18-24 h sur milieu gélosé non sélectif, préparer une suspension en bouillon Mueller-Hinton ou en solution saline (0,9 % NaCI) équivalente au standard McFarland 0,5 (~ 108 UFC/ml). Cette suspension peut également être préparée à partir d'une culture en bouillon Mueller-Hinton obtenue après incubation à 37° C au bain-marie agité pendant 3 à 5 h, et dont la densité est ajustée au standard McFarland 0,5. » Ce document décrit également la préparation du milieu « Milieu Gélose Mueller-
Hinton », du procédé d'ensemencement « Ensemencement : méthode de dilution : diluer la suspension inoculum au 1 /10 et déposer 1 à 2 μΙ, soit ~ 104 UFC par spot ; méthode de diffusion : ensemencer par écouvillonnage avec la suspension inoculum diluée au 1 /10 (~ 107 UFC/mL) ou ensemencer par inondation avec la suspension inoculum diluée au 1 /100 (~ 106 UFC/mL) en respectant les mesures de sécurité nécessaires. » et de lecture « - Lecture : Après 18-24 h d'incubation à 35-37° C. »
La formule du milieu Mueller-Hinton telle que recommandée par le CA- SFM est la suivante par litre d'eau purifiée est la suivante :
- Hydrolysat acide de caséine 17,5g
- Extrait de viande 3,0g
- Amidon 1 ,5g
- pH final: 7,3 +/- 0,2 à 25°C
Après dissolution dans 1 litre d'eau, le milieu subit un autoclavage de 15 minutes à 121 ° C pour en garantir la stérilité.
Il peut être surprenant d'observer que ce milieu de culture recommandé pour réaliser des cultures de bactéries isolées de prélèvements réalisés sur l'homme (urine, sang, salive, biopsies...), contienne de l'amidon. Pour l'homme de l'art, l'amidon agit dans le Mueller-Hinton comme colloïde protecteur contre les substances toxiques éventuellement présentes dans le milieu. L'hydrolyse de l'amidon lors de la stérilisation à l'autoclave produit une petite quantité de dextrose, qui est une source d'énergie [5].
Selon les mêmes recommandations du CA-SFM, les résultats sont obtenus en 18h, 24h jusqu'à 72h en fonction de la vitesse de croissance des souches bactériennes. Ce délai est la conséquence de la définition de la CMI : la plus faible concentration d'antibiotique capable de provoquer une inhibition complète de la croissance d'une bactérie donnée, appréciable à l'œil nu, après une période d'incubation donnée. Ce délai important est un handicap pour le thérapeute. Pour un patient se présentant à J0 (par exemple un lundi), et un prélèvement réalisé ce même jour, entre 12 et 24 heures (en général le temps d'une nuit) sont nécessaires pour isoler la bactérie pathogène présente dans ledit prélèvement (isolement sur boite gélosée, de Pétri, selon le protocole décrit par le CA-SFM). Ensuite l'antibiogramme est réalisé à partir d'une ou plusieurs colonies isolées prélevées à la surface de ladite gélose. Comme indiqué précédemment, entre 18 et 72 heures sont nécessaires pour connaître le résultat d'une croissance bactérienne en milieu liquide Mueller-Hinton. Ces délais sont importants, beaucoup plus importants que la plupart des délais de rendus de résultats en Laboratoire d'Analyses Médicales.
Il existe donc un réel besoin de disposer d'un antibiogramme simple à mettre en œuvre, rapide, permettant une détection précoce, économique, et permettant de déterminer la sensibilité d'un microorganisme à un antibiotique palliant les problèmes précités de l'art antérieur.
En particulier, il existe un réel besoin pour l'homme du métier de disposer d'un procédé permettant d'obtenir des résultats rapides, par exemple disponibles en moins de 6 heures, et qui soient cohérents avec ceux résultats obtenus de façon conventionnelle en suivant les recommandations du CA-SFM. En particulier un délai de 6 heures est un ordre de grandeur qui permettrait au thérapeute de connaître le résultat d'un antibiogramme à J+1 (c'est-à-dire dans la journée de mardi si J0 est le lundi). L'activité d'un laboratoire commençant conventionnellement à 9h, le tri des boites de Pétri utilisées pour les isolements et leur exploitation nécessitant environ 2 heures, le lancement d'une culture en milieu liquide pour un antibiogramme sera réalisé vers 1 1 h. La journée utile se terminant 17h, il est nécessaire d'obtenir un résultat en moins de 6 heures pour que le compte-rendu quitte le laboratoire avant lesdits 17h. La figure 1 représente notamment un schéma illustrant l'obtention desdits résultats et l'obtention, le cas échéant du résultat par le thérapeute qu'à J+2 (le mercredi) au matin.
Entre temps, le thérapeute aura prescrit un traitement présomptif à J0 et ne consultera le résultat antibiogramme qu'en cas de discordance avérée : par exemple si la bactérie pathogène isolée à partir du prélèvement est résistante à le(s) antibiotique(s) prescrit. En ce cas, si une correction de prescription est nécessaire, il peut être vital de connaître un résultat à J+1 plutôt qu'à J+2.
L'homme de l'art connaît plusieurs procédés pour accélérer la croissance bactérienne : utiliser un autre milieu de culture que le Mueller-Hinton plus adapté à l'espèce bactérienne, augmenter le taux de glucose, adapter le taux d'oxygène, ou le taux de dioxyde de carbone etc. Toutefois, les procédés de l'état de la technique ne permettent pas l'obtention d'un résultat antibiogramme rapide. Dans l'état de la technique, pour déterminer la sensibilité d'un microorganisme à un antibiotique ou principe actif, l'homme du métier est incité à suivre les recommandations du Comité de l'antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), en testant plusieurs dilutions de raison 2 autour de la valeur de concentration critique et en prévoyant aussi une à plusieurs mesure(s) témoin(s) sans antibiotique ou principe actif. La détermination de la CMI selon ces recommandations en appréciant la turbidité du milieu de culture à l'œil nu peut être réalisée après au moins 18 heures.
Il existe donc un réel besoin de trouver un procédé palliant ces défauts, inconvénients et obstacles de l'art antérieur, en particulier d'un procédé permettant de maîtriser le temps d'obtention du résultat d'un antibiogramme, réduire les coûts et de réduire le temps d'obtention des résultats d'antibiogramme. Description de l'invention
La présente invention permet de résoudre ces problèmes et inconvénients de l'état de la technique.
En particulier, la présente invention a précisément pour but de répondre aux besoins et inconvénients précités en fournissant un procédé de détermination de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme à un ou plusieurs principe(s) actif(s) ou antibiotique(s).
En particulier, la présente invention a pour objet un procédé de détermination de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme à un ou plusieurs principe(s) actif(s) ou antibiotique(s) caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes:
a) Introduire dans quelque ordre que ce soit dans un milieu de culture liquide approprié au développement dudit microorganisme, ledit milieu comprenant moins de 0,5 grammes d'amidon par litre préparé à partir d'eau pour préparation injectable (EPPI) et/ou ne contenant pas de produit de pyrolyse et ayant été stérilisé par une filtration stérilisante,
i. au moins une particule magnétique ou magnétisable, ladite particule flottant à la surface du milieu de culture ou étant en suspension ou reposant sur une surface immergée dans le milieu de culture, ii. ledit microorganisme pour ensemencer le milieu de culture,
iii. ledit principe(s) actif(s) ou antibiotique(s) à une concentration déterminée dans le milieu de culture ensemencé,
b) maintenir ledit milieu de culture ensemencé et comprenant le principe(s) actif(s) ou l'antibiotique dans des conditions permettant un développement appréciable du microorganisme,
c) déterminer la sensibilité du microorganisme audit antibiotique par application d'un champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique capable de mettre en mouvement ladite, au moins une, particule flottant à la surface du milieu de culture, ou en suspension dans le milieu de culture, ou reposant sur une surface immergée dans le milieu de culture, l'absence de mouvement de ladite particule révélant la présence dudit, au moins un, microorganisme dans ledit milieu et l'insensibilité dudit, au moins un, microorganisme audit principe(s) actif(s) ou antibiotique(s).
Les inventeurs sont les premiers à avoir démontré de manière surprenante que la mesure de l'immobilisation des microparticules qu'elle qu'en soit la raison physique, chimique ou biologique exacte, permet de déterminer et/ou de prévoir très tôt, par exemple en moins de 6 heures, le résultat lié à une mesure « de la croissance d'une bactérie donnée, appréciable à l'œil nu » (comme expliqué précédemment, selon la définition du CA-SFM) au contraire des procédés de l'art qui s'effectue généralement beaucoup plus tard, généralement après 18 ou 24h.
En outre, les inventeurs ont démontré de manière surprenante que l'absence de mouvement de ladite particule à l'étape c) du procédé de l'invention permet de révéler la présence dudit, au moins un, microorganisme dans ledit milieu dans la mesure où ledit microorganisme dans le milieu fait obstacle au mouvement de ladite particule et ainsi peut permettre permet ainsi de révéler l'insensibilité dudit, au moins un, microorganisme audit principe(s) actif(s) ou antibiotique(s).
Les inventeurs sont les premiers à mettre en évidence qu'il est possible d'obtenir des résultats précoces, de qualité, et reproductibles de la mesure d'immobilisation des microparticules utilisée dans le procédé de la présente invention grâce à notamment les éléments suivants :
- l'utilisation d'un milieu de culture contenant moins de 0,5 g.L"1 d'amidon ou sans amidon et/ou
- l'utilisation d'eau ne contenant pas de produit(s) de pyrolyse et/ou - une étape préalable de filtration stérilisante du milieu de culture au lieu de l'autoclavage ou de tout procédé de chauffage générant des produits de pyrolyse
Dans la présente par « milieu de culture contenant moins de 0,5 g.L"1 d'amidon ou sans amidon » on entend, par exemple, de tout milieu de culture contenant moins de 0,5 g.L"1 d'amidon ou sans amidon connu de l'homme du métier. Il peut s'agir par exemple d'un Bouillon Cœur-Cervelle ; une infusion cœur-cervelle (« Brain Heart Infusion ») (BHI) ; un Luria Brooth (LB). Il peut s'agir par exemple du milieu de culture Infusion de Cœur Cervelle ou Brain Heart Infusion (BHI), par exemple commercialisé par la société Becton Dickinson qui est connue par l'homme du métier comme un milieu polyvalent, adapté à la culture d'un grand nombre de microorganismes, notamment des bactéries, des levures et des champignons filamenteux. Par exemple, le milieu de culture peut être un milieu commercial, par exemple d'un fournisseur, par exemple Becton Dickinson, commercialisé sous la référence 237500, par exemple préparé avec de l'eau purifiée en mélangeant, par exemple 37g de poudre en suspension dans
1 Litre d'Eau Pour Préparation Injectable (fournisseurs : Laboratoires Aguettant, ou Lavoisier, France). Ladite poudre comprenant les éléments suivant :
Cervelles de veau, infusion de 200g 7,7g
Cœur de bœuf, infusion de 250g 9,8g
Peptone de protéose 10,0g
Dextrose 2g Chlorure de sodium 5,0g
Phosphate disodique 2,5g
pH final 7,4+/- 0,2
et pouvant être ajustée et/ou complémentée en fonction des critères de performances imposés.
Les inventeurs ont en effet constaté de manière surprenante au cours de leurs recherches que l'amidon est un élément perturbateur de la reproductibilité des mesures d'immobilisation des microparticules magnétisables.
Dans la présente par eau ne contenant pas de produit de pyrolyse on entend par exemple de l'eau hautement purifiée, ou d'Eau Pour Préparation Injectable (Eau PPI, Laboratoires Aguettant ou Lavoisier, France) pour la préparation du milieu de culture (BHI, LB...) utilisé, par exemple pour l'un de ceux cités ci-dessus et ci-dessous.
Les inventeurs ont en effet démontré de manière surprenante que ceci permet d'optimiser la reproductibilité des mesures de l'immobilisation des microparticules magnétisables lors de la mise en œuvre du procédé de la présente invention.
Selon l'invention, l'étape préalable de filtration stérilisante du milieu de culture peut être réalisée par tout procédé connu de l'homme du métier. Il peut s'agir par exemple d'une filtration sur une membrane de filtration stérilisante ou par un protocole par filtration stérilisante, par exemple au moyen d'une membrane de seuil de coupure de 0,2 micromètres, de type Steritop ou Stericup (Millipore, Bedford, MA, USA) de préférence après dissolution des composants du milieu de culture.
L'étape préalable de filtration stérilisante du milieu de culture permet avantageusement de stériliser lesdits milieux tout en évitant la génération de produit de pyrolyse.
En effet, les inventeurs ont en effet démontré de manière surprenante lors de leurs expérimentations que le mode standard de préparation des milieux de culture avec autoclavage générait des produits secondaires, notamment de pyrolyses, perturbant la croissance cellulaire et interagissant physico- chimiquement avec les microparticules magnétisables. En outre, ils ont constaté que la filtration stérilisante permet d'éviter l'utilisation de l'amidon « comme colloïde protecteur contre les substances toxiques éventuellement présentes dans le milieu », si l'on considère que lesdites substances toxiques sont générées par l'autoclavage.
Ainsi, avantageusement, le procédé selon l'invention permet de déterminer la sensibilité d'un microorganisme à un antibiotique ou à un ou plusieurs principe(s) actif(s) bien avant les procédés connus de l'homme du métier. En outre, le procédé selon l'invention permet avantageusement de déterminer la sensibilité d'un microorganisme avant que l'homme du métier ne puisse apprécier à l'œil nu une croissance du microorganisme dans le milieu de culture.
Avantageusement, le procédé de l'invention permet de déterminer la sensibilité d'un microorganisme à un antibiotique ou à un principe actif dans un temps environ trois fois inférieur à ceux de l'état de la technique, passant ainsi de 18 à 6 heures pour le temps de détermination.
En outre, avantageusement, le procédé de l'invention permet la détermination de la CMI à l'œil nu. La détermination de la CMI à l'œil nu peut correspondre à la première concentration en progressant dans une série de raison 2, dans laquelle il est observé à l'œil nu une mise en mouvement de ladite particule magnétique ou magnétisable par application d'un champ magnétique ou électrique ou électromagnétique.
Dans la présente invention, on entend par « microorganisme » les bactéries, les champignons, les algues et les protozoaires.
Les bactéries susceptibles d'être testées dans la présente invention sont par exemples celles comprises dans le groupe, sans être limité à celui-ci, constitué de Acetobacter aurantius, Actinobacillus actinomycetemcomitans, Agrobacterium tumefaciens, Azorhizobium caulinodans, Azotobacter vinelandii, Bacillus anthracis, Bacillus brevis, Bacillus cereus, Bacillus fusiformis, Bacillus licheniformis, Bacillus megaterium, Bacillus stearothermophilus, Bacillus subtilis, Bacteroides gingivalis, Bacteroides melaninogenicus, Bartonella henselae, Bartonella quintana, Bordetella bronchiseptica, Bordetella pertussis, Borrelia burgdorferi, Branhamella catarrhalis, Brucella abortus, Brucella melitensis, Brucella suis, Burkholderia mallei, Burkholderia pseudomallei Calymmatobacterium granulomatis, Campylobacter coli, Campylobacter jejuni, Campylobacter pylori, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia psittaci, Chlamydia trachomatis, Chlamydophila pneumoniae, Chlamydophila psittaci, Clostridium botulinum, Clostridium difficile, Clostridium perfringens, Clostridium tetani, Clostridium welchii, Corynebacterium diphtheriae, Corynebacterium fusiforme, Coxiella burnetii, Ehrlichia chaffeensis, Enterococcus avium, Enterococcus durans, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Enterococcus galllinarum, Enterococcus maloratus, Escherichia coli, Francisella tularensis, Fusobacterium nucleatum, Gardnerella vaginalis, Haemophilus ducreyi, Haemophilus influenzae, Haemophilus parainfluenzae, Haemophilus pertussis, Haemophilus vaginalis, Helicobacter pylori, Klebsiella pneumoniae, Klebseilla rhinoscleromatis, klebsiella oxytoca, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Legionella pneumophila, Methanobacterium extroquens, Microbacterium multiforme, Micrococcus luteus, Mycobacterium avium, Mycobacterium bovis, Mycobacterium diphtheriae, Mycobacterium intracellulare, Mycobacterium leprae, Mycobacterium lepraemurium, Mycobacterium phlei, Mycobacterium smegmatis, Mycobacterium tuberculosis, Mycoplasma fermentans, Mycoplasma genitalium, Mycoplasma hominis, Mycoplasma pneumoniae, Neisseria gonorrhoeae, Neisseria meningitidis, Nocardia astéroïdes, Pasteurella multocida, Pasteurella tularensis, Porphyromonas gingivalis, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas maltophilia, Rhizobium radiobacter, Rickettsia prowazekii, Rickettsia mooseri,
Rickettsia psittaci, Rickettsia quintana, Rickettsia rickettsii, Rickettsia trachomae, Rochalimaea henselae, Rochalimaea quintana, Rothia dentocariosa, Salmonella enteritidis, Salmonella typhi, Salmonella typhimurium, Serratia marcescens, Shigella dysenteriae, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Streptococcus agalactiae, Streptococcus avium, Streptococcus bovis,
Streptococcus cricetus, Streptococcus faceium, Streptococcus faecalis, Streptococcus ferus, Streptococcus gallinarum, Streptococcus lactis, Streptococcus mitior, Streptococcus mitis, Streptococcus mutans, Streptococcus oralis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pyogenes, Streptococcus rattus, Streptococcus salivarius, Streptococcus sanguis, Streptococcus sobrinus, Treponema pallidum, Vibrio cholerae, Vibrio comma, Vibrio parahemolyticus, Vibrio vulnificus, Xanthomonas maltophilia, Yersinia enterocolitica,Yersinia pestis et Yersinia pseudotuberculosis, etc.
Selon l'invention, les conditions de réalisation du procédé de l'invention, en particulier de culture du microorganisme, sont des conditions de cultures standardisées, par exemple le pH, la température, l'oxygénation, etc.
Le procédé de l'invention permet également, avantageusement, de tester différents temps de culture ; différentes températures ; différentes conditions par exemple aérobie, anaérobie, avec ou sans agitation, avec sans renouvellement du milieu etc. afin d'améliorer les conditions de culture.
Selon l'invention dans le cas d'utilisation de bactéries anaérobies, les conditions de culture anaérobie du microorganisme pourront être obtenues par obturation de l'extrémité ouverte du réacteur de culture par exemple à l'aide de parafilm, d'un bouchon etc. ou en mettant ledit réacteur dans des conditions permettant le développement des bactéries anaérobies. Il peut s'agir par exemple de jarres d'anaérobiose, sachets générant une atmosphère appauvrie en oxygène et enrichie en dioxyde de carbone, enceintes anaérobies avec atmosphère contrôlée et/ou tout moyen connu de l'homme du métier adapté.
Selon l'invention, la, au moins une, particule, peut être choisie dans le groupe comprenant une particule chargée électriquement, une particule magnétique, une particule revêtue d'au moins une couche magnétique, une particule magnétisable, une particule revêtue d'une couche magnétisable, ou un mélange de deux ou plusieurs de ces particules [8]. En fait, il peut s'agir de toute particule permettant de mettre en œuvre la présente invention.
Selon l'invention, la particule repose sur une surface immergée dans le milieu de culture ou flotte à la surface du milieu de culture. Ladite particule est en position stable, c'est-à-dire au repos, en l'absence du champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique dans le réacteur. Avantageusement, ladite particule peut être une particule de toute forme adaptée à la mise en œuvre de la présente invention, par exemple sous forme de bille, de palet, de forme géométrique asymétrique, par exemple avec une face plane, etc.
Toute taille appropriée de particule magnétique ou magnétisable peut être utilisée. La taille peut être choisie par exemple en fonction de la taille du microorganisme, et/ou de la taille du compartiment contenant le milieu de culture pour la mise en œuvre du procédé de l'invention et/ou du microorganisme. La taille peut être par exemple de taille sensiblement identique à la taille du microorganisme générant un biofilm [6 et 7] de manière à ce que là, au moins une, particule puisse être incorporée dans un biofilm, par exemple formé par ledit microorganisme, l'objectif étant d'utiliser la particule magnétique ou magnétisable comme un équivalent inerte du microorganisme. Quand cette particule est mobile, les microorganismes de même taille peuvent aussi se mouvoir. Quand cette particule est immobilisée, les microorganismes de même taille ne peuvent pas non plus se déplacer. D'autre part, des particules de tailles variées peuvent permettre une analyse plus fine de la structure du biofilm : dimension des espaces au sein de la structure, organisation tridimensionnelle, stabilité de l'adhérence à la surface, par exemple au fond du tube ou de la cupule de la plaque de microdilution, dans laquelle le test est réalisé. En effet, les biofilms tendent à se détacher par lambeaux (squames) de leur support en vieillissant. Dans ce cas, on observe alors une première phase d'immobilisation de là, au moins une, particule lors du développement du biofilm. Puis une phase de dégénérescence du biofilm avec libération de là, au moins une, particule.
Par exemple la particule magnétique ou magnétisable peut présenter une taille de, par exemple de 10nm à Ι ΟΟμιτι, par exemple de 0,1 à 10μιτι (taille des microorganismes les plus courants). Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, plusieurs particules peuvent être utilisées pour mettre en œuvre le procédé de l'invention.
Lorsque les particules sont incorporées dans un biofilm [6 et 7], notamment dans la matrice complexe générée par la croissance des microorganismes, composée de corps cellulaires, des systèmes d'adhésion desdits microorganismes, par exemple des filaments, pili, fimbriae, etc., de substances plus ou moins visqueuses, par exemple des polysaccharides, alginates, etc. sécrétées par lesdits microorganismes, l'application du champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique ne permet pas de provoquer de mouvement desdites particules incorporées dans ledit biofilm. Ainsi, les particules ne peuvent pas être regroupées pour être détectées.
Lorsque les particules ne sont pas incorporées dans ledit biofilm, par exemple lorsque la mobilité des particules n'est pas entravée par la présence de corps de microorganismes dont la taille est voisine de celles des particules, par exemple de l'ordre un à plusieurs micromètres, par exemple lorsque la mobilité des particules n'est pas entravée par la présence des systèmes d'adhésion desdits microorganismes [6 et 7], par exemple les filaments, pili, fimbriae, etc. générant un enchevêtrement bloquant la progression de la particule, par exemple lorsque la mobilité des particules n'est pas entravée par la présence de substances plus ou moins visqueuses sécrétées par lesdits microorganismes [6 et 7], par exemple des polysaccharides, alginates, etc., par exemple lorsque la mobilité des particules n'est pas entravée par des molécules liées au développement du biofilm de microorganismes, l'application du champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique provoque le mouvement desdites particules et le regroupement de ces dernières. Ce regroupement peut avantageusement être détecté visuellement.
Selon ce mode particulier de réalisation, les particules peuvent être de tailles identiques ou différentes.
Lorsque les particules sont de tailles identiques, les particules sont essentiellement incorporées en même temps dans le biofilm lors de sa formation. Lorsque les particules utilisées sont de tailles différentes, la taille des petites particules peut être choisie par exemple, de manière à ce qu'elles soient incorporées dans le biofilm dès le début de sa formation, les grosses particules étant incorporées plus tardivement. Dans ce cas, les particules de plus petites tailles sont incorporées avant les particules de plus grande taille. Dans d'autres circonstances, les particules de grandes tailles peuvent être bloquées par un enchevêtrement de filaments, pili, fimbriae etc .. utilisés par des microorganismes pour générer un biofilm, alors que les particules de petites tailles pourront toujours être mobiles et passer à travers ledit enchevêtrement.
Lorsque les particules sont de tailles différentes, les petites particules peuvent présenter une taille, par exemple, de 10 nm à 1 μιτι, par exemple de 100 à 500nm, et les grosses particules peuvent présenter une taille, par exemple, de 1 μιτι à Ι ΟΟμιτι, par exemple de 1 μηι à 10μιτι, par exemple de 1 μηι à 5μιτι. Bien sûr, la taille respective des grandes et des petites particules est choisie de manière à pouvoir déterminer différents stades de développement.
Selon l'invention, on peut également utiliser une pluralité de particules de tailles identiques avec une magnétisation différente. Si les particules sont partiellement incorporées dans le biofilm, l'application du champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique provoque un mouvement des particules ayant été plus fortement magnétisées, la force magnétique est plus grande, tandis que les particules qui ont été plus faiblement magnétisées ne peuvent être mises en mouvement.
Selon l'invention, ladite, au moins une, particule est de préférence une particule génératrice d'un signal détectable. La détection de ce signal sera fonction des propriétés de la particule. À titre d'exemple, ladite, au moins une, particule peut être fluorescente, phosphorescente, radioactive, chimioluminescente, réfléchissante ou colorée.
Par exemple dans le cas où la, au moins une, particule est fluorescente, la fluorescence émise par la particule peut être détectée par exemple visuellement, et/ou par tout moyen optique connu de l'homme du métier.
Ladite, au moins une, particule peut être par exemple éclairée, pour suivre son mouvement au moyen d'une source lumineuse, par exemple par un faisceau laser.
Par exemple dans le cas où la, au moins une, particule est phosphorescente, cette particule peut être visualisée par exemple visuellement, par tout moyen optique connu de l'homme du métier. Par exemple dans le cas où la, au moins une, particule est radioactive, cette particule peut être détectée même au travers de liquides ou milieux de cultures optiquement opaques, ainsi qu'au travers de plaques de microdilution optiquement opaques par tout dispositif de détection de la radioactivité émise connue de l'homme du métier, notamment la méthode classique de révélation sur film autoradiographique. Il suffit alors de plaquer le film sensible sous la plaque de microdilution et de révéler ensuite l'image du fond de ladite plaque de microdilution.
Par exemple dans le cas où la, au moins une, particule est chimioluminescente la détection de la particule peut se former par ajout dans le milieu du réactif chimique permettant l'émission d'énergie lumineuse par les particules. La détection de ce signal peut être par exemple visuelle et/ou par tout moyen connu de l'homme du métier notamment par l'utilisation de caméra CCD (« Charges Coupled Device ») sensible aux longueurs d'ondes émises, qui balaient (scannent) les cupules, les puits de la plaque de microdilution.
Par exemple dans le cas où la, au moins une, particule est réfléchissante la détection de la particule peut être par exemple visuelle ou par tout moyen optique connu de l'homme du métier. Avantageusement, ladite, au moins une, particule peut être par exemple éclairée, pour suivre son mouvement au moyen d'une source lumineuse, par exemple par un faisceau laser.
Par exemple dans le cas où la, au moins une, particule est colorée, la détection de la particule peut être par exemple visuelle et/ou par tout moyen connu de l'homme du métier pour la détection de particules colorées.
Selon l'invention, les particules peuvent avantageusement être choisies de couleurs différentes en fonction de leur taille et/ou en fonction de leur pouvoir magnétique. L'application du champ magnétique permet dans ce cas l'apparition d'un point coloré sur la surface par regroupement des particules. Cette caractéristique permet avantageusement une détection visuelle facilitée du regroupement. En effet, par exemple dans le cas où les particules sont de deux tailles différentes, les grosses particules étant d'une couleur et les petites d'une autre, lors de l'application du champ magnétique, ou électrique ou électromagnétique, en fonction de la nature du biofilm, s'il est constitué d'un enchevêtrement de filaments constituant un maillage plus ou moins serré, plus ou moins élastique, s'il est constitué d'une matrice polymérique (polysaccharide, alginate, etc ..) plus ou moins visqueuse, les petites particules peuvent rester immobilisées dans le biofilm tandis que les grosses particules toujours mobiles dans le biofilm pourront se regrouper. Ce regroupement est visible par l'apparition d'un point coloré qui dans ce cas est identique à la couleur des particules de plus grande taille. Si aucun biofilm n'est présent dans le milieu, les petites et les grandes particules peuvent être regroupés et le rassemblement des particules est visualisé par apparition d'un point coloré correspondant à la superposition des deux couleurs. Enfin si le biofilm est formé, les particules sont piégées dans le biofilm, elles ne peuvent donc pas être regroupés et aucun point de couleur n'est visible.
L'homme du métier comprendra aisément que pour la réalisation de la présente invention, le choix des propriétés visuelles de là, au moins une, particule peut également se faire en fonction du milieu. En effet la détection du mouvement de ladite, au moins une, particules est d'autant plus facile que le contraste entre ladite, au moins une, particule et le milieu de culture est grand.
Dans la présente invention, le champ permettant de mettre en mouvement ladite, au moins une particule magnétisable sur ladite surface immergée dans ledit milieu de culture ou à ladite surface dudit milieu de culture, peut être un champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique. Ledit champ magnétique, ou électrique ou électromagnétique peut être généré, par exemple par un aimant ou par un solénoïde. L'aimant peut être par exemple sous forme de barreau, de pointe, de pièce, etc. ou toute forme appropriée pour la mise en œuvre de la présente invention. Le champ peut, par exemple être appliqué par tout moyen connu de l'homme du métier, par exemple par impulsion, par augmentation progressive du champ électrique ou électromagnétique, par variations de champ électrique ou électromagnétique ou par une combinaison ces applications.
Une augmentation progressive du champ magnétique, ou électrique ou électromagnétique peut être obtenue, par exemple, par rapprochement d'un aimant ou d'un solénoide selon une trajectoire rectiligne ou sinusoïdale, ou selon un mouvement oscillant présentant ou non une amplitude d'oscillation et/ou une fréquence variables. Des variations de champ plus complexes peuvent être obtenues, par exemple par rotation ou par des combinaisons de mouvements d'un matériau aimanté à proximité de ladite, au moins une, particule.
Ainsi, selon l'invention, ledit champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique peut être généré par des moyens générateurs de champ qui peuvent être ou non en mouvement.
Lorsque plusieurs particules doivent être mises en mouvement, le champ magnétique, ou électrique, ou électromagnétique doit pouvoir regrouper lesdites particules sur ladite surface immergée dans le milieu de culture ou à ladite surface dudit milieu de culture.
Selon l'invention, tout type d'antibiotique peut être testé. L'antibiotique testé peut être choisi, par exemple dans le groupe comprenant l'acide fusidique, les aminosides, les bêta-Lactamines, les pénicillines, les inhibiteurs de bêta- lactamases, les céphalosporines, les carbapénèmes, les monobactames, la cyclosérine, la daptomycine, la fosfomycine, les lincosamides, les macrolides et kétolides, la mupirocine, les nitro-imidazolés, les nitrofuranes, les oligosaccharides, les oxazolidinones, les polypeptides bacitracine, glycopeptides, polymyxines et colistine, les quinolones, les rifamycines, les sulfamides et les diaminopyridines, les synergistines, les tétracyclines, les antifongiques, etc.
Selon l'invention, l'antibiotique peut-être en solution dans le milieu de culture et/ou fixé sur la surface immergée dans ledit milieu.
Les moyens de fixation utilisables de l'antibiotique sont ceux connus de l'homme du métier pour la fixation d'un antibiotique sur une surface. Il existe plusieurs techniques de couplages, par exemple celles proposées par les fournisseurs de plaques de microdilution NUNC (Danemark), Corning (Etats- Unis), et Greiner Bio-One (Autriche). Selon l'invention, on peut introduire dans le milieu de culture un ou plusieurs antibiotiques. Ainsi, il est possible de tester différents antibiotiques seuls et/ou de rechercher un effet de combinaison ou d'association d'antibiotiques. La mise en œuvre du procédé de l'invention avec un mélange d'antibiotiques (combinaison, association) permet de détecter d'éventuels effets additifs, synergiques et/ou antagonistes. Par « effet additif », on entend l'addition des actions d'au moins deux antibiotiques permettant, par exemple, de trouver une combinaison d'antibiotiques ayant un même effet antibiotique qu'un antibiotique seul, mais avec des concentrations inférieures. Par « effet synergique », on entend une amélioration de l'efficacité d'un antibiotique par ajout d'au moins un deuxième antibiotique, ce mélange d'antibiotiques ayant un effet supérieur à l'addition de l'effet de chaque antibiotique seul. Enfin par « effet antagoniste » on entend l'inhibition de l'action d'un antibiotique sur le microorganisme par l'ajout d'au moins un deuxième antibiotique. Ce mode de réalisation peut permettre de sélectionner des combinaisons, des associations d'antibiotiques (« co-drug ») pertinentes pour, par exemple, inhiber le développement du microorganisme.
Selon l'invention, les antibiotiques peuvent également être introduits successivement dans le milieu afin d'identifier des effets additifs, synergiques ou antagonistes tels que décrit précédemment.
La présente invention permet également avantageusement de déterminer la Concentration Minimale Inhibitrice (CMI) par exemple de la croissance planctonique, c'est-à-dire dans la phase liquide, dans le milieu de culture, et/ou de la croissance sessile ou biofilm, c'est-à-dire l'installation sur la surface d'une surface immergée, par exemple des cupules, des puits de la microplaque, dudit microorganisme.
Selon l'invention, la détermination de la concentration minimale de l'antibiotique inhibant la formation du biofilm par ledit microorganisme, c'est à dire la Concentration Minimale Inhibitrice de la formation d'un biofilm (CMIb) peut être réalisée par mise en œuvre successivement ou simultanément du procédé de l'invention dans des conditions identiques utilisant un milieu de culture liquide approprié au développement d'un microorganisme, au moins une particule magnétique ou magnétisable, au moins un microorganisme et au moins un antibiotique dans une concentration différente d'une réalisation à une autre. Ladite concentration d'antibiotique peut être établie par exemple selon une suite géométrique de raison ½ à partir d'une concentration initiale X, par exemple X, X/2, X/4, X/8, etc., ou de tout autre suite géométrique appropriée. On met en œuvre le procédé de l'invention, et parmi les réalisations, la première où le biofilm ne se développe pas, c'est-à-dire dans laquelle les particules sont mobiles, la concentration d'antibiotique correspond à la concentration minimale inhibitrice pour la formation du biofilm (CMIb). Ainsi, on détermine la concentration minimale d'antibiotique à partir de laquelle le microorganisme est sensible à l'antibiotique dans la formation de biofilm, c'est-à-dire la concentration minimale pour laquelle la, au moins une, particule peut être mise en mouvement par application du champ magnétique dans un desdits compartiments.
On peut également réaliser le procédé de l'invention avec une concentration d'antibiotique nulle, ladite réalisation constituant un témoin de croissance du microorganisme dans le milieu de culture. Un autre témoin peut consister à valider la stérilité du milieu en présence de particules pendant la durée du test. Un autre témoin peut consister à valider que l'antibiotique ne provoque pas d'artéfacts dans le milieu en présence de particules.
Selon un mode particulier de mise en œuvre, le procédé de l'invention peut comporter en outre une étape complémentaire d) de prélèvement du milieu de culture et de mesure de la densité optique, notamment la transmission d'un faisceau lumineux, ou de la turbidité, notamment la diffraction d'un faisceau lumineux, dudit milieu de culture, à au moins une longueur d'onde permettant de détecter le développement et/ou la présence du microorganisme en suspension dans le milieu de culture. Selon ce mode de mise en œuvre de l'invention, le prélèvement dudit milieu de culture peut être réalisé par toutes les techniques connues de l'homme du métier, par exemple au moyen d'une pipette, d'une seringue, d'un capillaire, par exemple aussi par prélèvements automatiques, par exemple via un système de pipette automatique. La mesure de densité optique permet de déterminer si la croissance des bactéries en suspension dans le milieu de culture a été modifiée par la présence de l'antibiotique.
Ceci permet également de définir la concentration minimale d'antibiotique nécessaire pour inhiber la croissance bactérienne. Par exemple comme indiqué précédemment pour la détermination de la CMIb, le procédé de l'invention est réalisé successivement avec différentes concentrations d'antibiotique et après incubation le milieu est prélevé et une mesure de la densité optique et/ou de la turbidité est réalisée. La concentration minimale d'antibiotique pour laquelle la croissance bactérienne en suspension a été inhibée par l'antibiotique correspond à la Concentration Minimale Inhibitrice (CMI).
Ainsi la présente invention permet notamment avec les étapes a, b, c et d'une part de révéler la sensibilité du microorganisme vis-à-vis de la formation d'un biofilm en mesurant la CMIb, et d'autre part d'identifier l'effet de l'antibiotique sur la croissance bactérienne en suspension dans le milieu de culture en mesurant la CMI.
Ainsi, la présente invention permet également de déterminer dans le milieu de culture la Concentration Minimale Inhibitrice de la formation d'un biofilm par un microorganisme (CMIb) et la Concentration minimale Inhibitrice (CMI) dudit, au moins un, microorganisme.
De façon avantageuse, selon la présente invention appelée « antibiogramme rapide », dans les conditions où la valeur de la CMIb correspond à celle de la CMI pour un microorganisme donné, la détermination de la CMIb est plus rapide que la détermination de la CMI.
Comme indiqué précédemment les antibiotiques utilisés dans la présente invention peuvent être en solution ou fixés sur une surface immergée dans le milieu de culture. Dans le cas où l'antibiotique est préalablement fixé sur une surface, le procédé de l'invention permet de déterminer la quantité d'antibiotique minimum par unité de surface pour inhiber la formation dudit biofilm. Pour cela, par exemple comme indiqué précédemment pour la détermination de la CMI et de la CMIb, le procédé de l'invention est réalisé plusieurs fois avec des quantités d'antibiotiques fixées selon une suite géométrique de raison 1 /2. La Quantité Minimale Inhibitrice d'antibiotique fixée par unité de surface (QMIs) pour laquelle la formation du biofilm est inhibée est la quantité d'antibiotique par unité de surface la plus faible pour laquelle le développement du biofilm est inhibé. Cette valeur présente un intérêt particulier pour lutter contre tous les biofilms qui se forment sur des surfaces telles que par exemple sur des cathéters, des sondes urinaires, des prothèses ou autres matériaux à usages médicaux afin de prévenir des infections nosocomiales.
Quel que soit le mode de mise en œuvre de l'invention, le procédé de l'invention peut avantageusement être réalisé simultanément dans une pluralité de compartiments.
Dans ce cas, pour la mise en mouvement des particules dans lesdits compartiments, une pluralité de champs magnétiques, par exemple d'aimants, peuvent avantageusement être utilisés. Les aimants peuvent par exemple être fixés sur un support de telle manière à permettre une juxtaposition de chaque compartiment dans lequel on réalise le procédé de l'invention avec un aimant du support. L'application du champ magnétique sur lesdits compartiments est indépendante d'un compartiment à un autre. Le champ magnétique appliqué auxdits compartiment peut être identique ou différent d'un compartiment à l'autre, de préférence identique.
Par compartiment dans la présente invention, on entend par exemple un réacteur de culture, des cupules, des tubes ou des puits par exemple de plaques de microdilution. On entend par plaque de microdilution le type de plaque défini par exemple par l'American National Standards Institute et la Society for Biomolecular Screening (« microplates ») portant 96 puits, 384 et même 1536.
Le matériau constituant ledit compartiment peut être tout matériau adapté à la réalisation de la présente invention, par exemple du plastique, par exemple du polycarbonate, du polystyrène, etc., du verre, du métal, etc. Avantageusement, on peut utiliser des plaques de microdilution en polystyrène présentant des cupules sans fonds. Le fond de ces cupules est obtenu en fixant une surface plane sous la plaque de microdilution. Cette surface plane peut être en matériaux transparents, par exemple en plastique, en verre, etc. ou en matériaux opaques, par exemple en métal, en céramique, etc. Le mode de fixation de la surface plane sous la plaque de microdilution peut être tout mode approprié connu de l'homme du métier pour une telle fixation, par exemple par collage au moyen d'une colle, par une méthode par friction, par collage par fusion de la matière plastique, par exemple au laser, etc.
Selon l'invention, les différents compartiments peuvent être regroupés sur un même support, par exemple sur une plaque comportant de 1 à 396 puits, par exemple 6, 16, 64, 96, etc.
Le compartiment peut correspondre par exemple à une enceinte avec une extrémité fermée, du type tube, puits, etc. ou une enceinte présentant deux ouvertures.
Selon une première configuration, le compartiment peut présenter une extrémité fermée de sorte à former un fond plat.
Selon une seconde configuration, le compartiment peut présenter une extrémité fermée de sorte à former un fond hémisphérique.
Selon une troisième configuration, le compartiment peut présenter deux extrémités ouvertes. Dans cette configuration ledit compartiment peut être configuré afin de permettre un écoulement du milieu de culture en flux constant ou en flux discontinu.
Selon l'invention, le procédé peut être réalisé par exemple dans une pluralité de compartiments comprenant chacun :
ledit milieu de culture,
- ladite, au moins une particule, et
ledit microorganisme,
ledit antibiotique,
Selon l'invention, le procédé peut être réalisé par exemple dans une pluralité de compartiments comprenant une concentration différente dudit antibiotique d'un compartiment à l'autre.
Selon l'invention dans l'un desdits compartiments la concentration d'antibiotique peut être nulle, ledit compartiment représentant un témoin de culture dudit microorganisme sans antibiotique. Un autre desdits compartiments peut être dépourvu de microorganisme, ce compartiment constituant un témoin de stérilité du milieu.
Le procédé de l'invention permet donc également, avantageusement, de déterminer la concentration minimale inhibitrice d'un antibiotique pour la croissance bactérienne pour ledit microorganisme par la réalisation du procédé de l'invention dans les différents compartiments en une seule étape sur un seul support.
Avantageusement, le procédé de l'invention permet par exemple de suivre les recommandations du Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie, relatives aux conditions techniques générales pour les méthodes de dilution.
Selon l'invention, on peut également déterminer, avantageusement, la concentration minimale inhibitrice dudit antibiotique vis-à-vis de la croissance dudit microorganisme en suspension dans chaque compartiment à partir desdits prélèvements et mesures de densité optique et/ou de turbidité, à une longueur d'onde permettant de détecter le développement du microorganisme, desdits prélèvements.
Le procédé de l'invention peut par exemple être utilisé pour la mise en œuvre d'un antibiogramme d'aide à la prescription : à l'image des tests de dépistage d'angines à streptocoque (pour savoir s'il convient ou non d'administrer un antibiotique), on peut tester in-vitro un microorganisme prélevé chez un patient, par application du procédé de l'invention. Ce microorganisme peut alors être testé avec différents antibiotiques, par exemple sur un seul support d'analyse, pour optimiser le traitement de ce patient. L'application du procédé sur ledit microorganisme permet de vérifier que le micro-organisme est bien sensible à des antibiotiques à une concentration par exemple égale à la CMI. Dans le cas où le microorganisme présente une résistance aux antibiotiques testés, le procédé de l'invention permet de savoir si celle-ci est concomitante avec la présence d'un biofilm. De ce fait une sélection d'antibiotiques ayant un effet sur les microorganismes en solution mais aussi sur le développement de biofilm dudit microorganisme testé est possible. Le procédé de l'invention permet donc de proposer des associations d'antibiotiques (« co-drug ») afin d'inhiber plus efficacement le développement dudit microorganisme.
Le procédé de l'invention peut permettre également de suivre in-vitro l'évolution de la CMI d'un microorganisme d'un patient vis-à-vis d'un antibiotique. Cet aspect est important pour des traitements au long cours, ou pour des malades immunodéprimés sujets à des infections chroniques avec le même micro-organisme. Le procédé de l'invention permet de suivre l'apparition d'une résistance à un traitement, par exemple suite au développement par ledit microorganisme d'un biofilm. Le procédé permet alors de trouver d'autres antibiotiques plus aptes à inhiber la croissance dudit microorganisme.
D'autres avantages pourront encore apparaître à l'homme du métier à la lecture des exemples ci-dessous, illustrés par les figures annexées, donnés à titre illustratif.
Brève description des figures
La figure 1 représente un schéma illustrant les délais d'obtention des résultats d'antibiogrammes par les procédés de l'état de la technique comparés aux délais d'obtention des résultats d'Antibiogrammes Rapides selon l'invention.
La figure 2 représente une photographie des résultats illustrant la mesure de la CMI à "^g/rriL de pipéracilline sur Staphylococcus aureus CIP 76.25, en milieu de culture Mueller-Hinton, selon les recommandations du Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie.
La figure 3 représente une photographie des résultats illustrant la mesure de la CMI à "^g/rriL de pipéracilline sur Staphylococcus aureus CIP 76.25, en milieu de culture BHI, selon les recommandations du Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie.
La figure 4 est une juxtaposition de photographies avec au-dessus une de image du fond de 8 puits d'une microplaque après 6 heures d'incubation, après magnétisation, et au-dessous une images du fond 8 puits d'une microplaque après 24 heures d'incubation et après magnétisation. Cette figure illustre qu'à 6h déjà, la CMI lue selon l'invention est d'^g/mL ce qui correspond à la CMI de référence pour Staphylococcus aureus CIP 76.25 et la pipéracilline selon le Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM). Un spot de microbilles est visible dans le puits C = "^g/rnL, alors que dans le puits adjacent C/2 (soit O^g/mL) aucun spot n'est visible, attestant d'une croissance bactérienne à l'origine de l'immobilisation des microbilles. Sur cette figure T-ATB signifie Témoin AnTiBiotique et correspond aux puits où seul la concentration maximale d'antibiotique et le milieu BHI ont été introduits, T-Sa signifie Témoin Staphylococcus aureus et correspond aux puits dans lesquels seul le microorganisme et le milieu BHI ont été introduits, Cx4 signifie CMI multipliée par 4 et correspond aux puits où l'antibiotique est présent dans le milieu BHI à la concentration 4 fois supérieure à celle de la CMI de référence pour le microorganisme et l'antibiotique selon le Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), Cx2 signifie CMI multipliée par 2 et correspond aux puits où l'antibiotique est présent à la concentration 2 fois supérieure à celle de la CMI de référence selon le Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), C signifie CMI et correspond aux puits où l'antibiotique est présent à la concentration de la CMI de référence pour le microorganisme et l'antibiotique selon le Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), C/2 signifie CMI divisée par 2 et correspond aux puits où l'antibiotique est présent à la concentration 2 fois inférieure à celle de la CMI de référence pour le microorganisme et l'antibiotique selon le Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), C/4 signifie CMI divisée par 4 et correspond aux puits où l'antibiotique est présent à la concentration 4 fois inférieure à celle de la CMI de référence pour le microorganisme et l'antibiotique selon le Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), T BHI signifie Témoin BHI et correspond aux puits dans lesquels seul le milieu a été introduits.
La figure 5 représente une photographie des résultats illustrant la mesure de la CMI à 0,25μg/mL de ciprofloxacine sur E. coli CIP 76.24, en milieu de culture Mueller-Hinton, selon les recommandations du Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie.
La figure 6 est un diagramme en bâton représentant les résultats de la mesure de la BFI selon l'invention, en fonction du temps d'incubation (Oh, 2h, 4h, 6h, 8h et 24h). L'ordonnée représente la mesure en BFI et l'abscisse le temps. Sur cette figure, la légende Témoin BHI correspond aux puits dans lesquels seul le milieu a été introduit, Témoin BHI + ATB 128μg/mL correspond aux puits dans lesquels seul le milieu et la concentration maximale en antibiotique ont été introduits, et ensuite, les bâtons représentent la mesure de BFI, avec de gauche à droite, pour chaque temps: Témoin BHI, Témoin BHI+ATB128μg/mL, BHI 128— 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0,5 - 0,25 - 0,125 μg/mL
EXEMPLES Exemples d'antibiogrammes selon le procédé de l'invention et comparaison par rapport aux procédés de l'état de la technique.
Les CMI des différents antibiotiques ont été établies selon le protocole standard du Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM), en milieu Mueller-Hinton liquide par dilution de raison 2. Ce protocole est bien connu de l'homme de l'art qui fera référence aux Conditions techniques générales pour les méthodes de dilution (Bulletin de la Société Française de Microbiologie, 1993, 8, 156-66 [1 ] ; Clinical Microbiological Infection 1996, 2, Suppl. 1 [2]). Les mêmes valeurs ont été obtenues en milieu BHI liquide.
Les mesures selon l'invention ont été réalisées en microplaques 96 puits en BHI liquide et ont permis de mesurer les mêmes valeurs de CMI :
- Antibiogramme rapide Staphylococcus aureus CIP 76.25 : CMI
Piperacilline 1 μgLmL dès 6h ;
- Antibiogramme rapide Escherichia coli CIP 76.24: CMI > 0,25μg/mL dès 6h. Ainsi, la détermination de la CMI pour différent antibiotique et différentes souches ont été déterminé soit avec le procédé de l'état de la technique ou le procédé de l'invention.
Procédé de l'état de la technique en Mueller Hinton :
Préparation de la gamme de dilution de l'antibiotique (fournisseur
Sigma, France): une gamme de concentrations en antibiotique de 0,25 à 128 μg/mL a été préparée en bouillon Mueller-Hinton (Mueller-Hinton Brooth, Becton Dickinson, USA), volume final de 1 ml_ dans chaque tube à essai (tubes à hémolyse en verre de 5 ml_, Dutscher, France). Parallèlement, un tube de bouillon MH sans antibiotique (témoin) a été préparé.
Préparation de l'inoculum : pour chaque souche, une suspension bactérienne à 0,5 McF a été réalisée (mesure avec le DensiCheck, bioMérieux, France), correspondant à une concentration d'environ 108 UFC/mL, en eau distillée à partir de colonies isolées sur milieu gélosé en boite de Pétri. Diluer la suspension obtenue au 1 /150e dans du milieu MH afin d'obtenir un inoculum de 1 x106 UFC/mL.
Ensemencement des gammes d'antibiotique : ajouter 1 ml_ de l'inoculum dans chaque tube de la gamme d'antibiotique (y compris le tube témoin).
L'ensemble a été incubé 18h à 37 ° C.
La concentration minimale inhibitrice (CMI) est la concentration en antibiotique du premier tube en progressant vers les concentrations en antibiotique croissantes, dans lequel aucune culture n'est visible à l'œil nu après 18h d'incubation.
La Figure 2 montre les résultats de la mesure de la CMI de pipéracilline sur Staphylococcus aureus CIP 76.25, en milieu de culture Mueller- Hinton, selon le procédé de l'état de la technique. La valeur obtenue après 18 heures d'incubation est de ^g/mL (pointée sur l'illustration par une flèche avec la mention CMI). Procédé de l'état de la technique en milieu BHI (Brain Heart Infusion ou Bouillon Cœur Cervelle) : procéder de la même façon que précédemment en utilisant le milieu BHI à la place du milieu Mueller-Hinton.
La Figure 3 montre les résultats de la mesure de la CMI de pipéracilline sur Staphylococcus aureus CIP 76.25, en milieu de culture BHI, selon le procédé de l'état de la technique. La valeur obtenue après 18 heures d'incubation est aussi de ^g/mL (encadrée sur l'illustration avec la mention CMI). Exemples de procédé de l'invention
Pour la mesure de la CMI avec le procédé de l'invention, le protocole suivant a été mis en œuvre :
Matériel utilisé :
Dans cet exemple, on réalise le procédé de l'invention dans les puits de plaques de microdilution 96 puits BioFilm Control (Biopole Clermont-Limagne, 63360 Saint-Beauzire, France).
Le milieu de culture est constitué de poudre BHI (Brain Heart Infusion médium) provenant de la société Difco (Difco, Détroit, Ml, USA) dissoute dans de l'Eau Pour Préparation Injectable (Laboratoire Aguettant, France ou Lavoisier, France). Après dissolution, le milieu de culture BHI a été stérilisé, non pas par autoclavage selon l'état de la technique, mais par filtration via une unité de filtration Steritop ou Stericup 0,2μιη (Millipore, Bedford, MA, USA) et a été maintenu à 37°C dans un bain-marie, a été utilisé pur réaliser toutes les étapes nécessaires, notamment les dilutions successives, puis les incubations.
Les particules magnétiques utilisées dans le procédé sont le Toner
TON005 provenant de la société BioFilm Control (Biopole Clermont-Limagne, 63360 Saint-Beauzire, France) avec une taille de 1 μιτι de diamètre. En général, on utilise de l'ordre de 105 à 106 particules dans chaque puits de la plaque de microdilution.
Le champ magnétique a été réalisé à l'aide d'un bloc portant 96 miniaimants BioFilm Control (Biopôle Clermont-Limagne, 63360 Saint-Beauzire, France). La plaque de microdilution a été calée sur le bloc de façon à ce que les 96 mini-aimants soient centrés sous le fond de chacun des 96 puits de la plaque de microdilution.
Les antibiotiques utilisés ont été testés aux concentrations suivantes ^g/mL) 128 - 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0,5 - 0,25 - 0,125 μg/mL, soit en totalité pour Escherichia coli Cl P 76.24, soit partiellement pour Staphylococcus aureus CIP 76.25 parce que la CMI de référence était bien encadrée.
Les microorganismes testés étaient les souches Staphylococcus aureus CIP 76.25 et Escherichia coli CIP 76.24 (fournisseur Institut Pasteur, Paris, France).
Description du protocole du test :
Le protocole de préparation des dilutions d'antibiotiques s'inspire du protocole de référence du Comité de l'Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie, en utilisant des dilutions de raison 2. La préparation du milieu de culture, l'utilisation des microplaques et le mode de lecture est décrit dans Chavant et al. A new device for rapid évaluation of biofilm formation potential by bacteria, Journal of Microbiological Methods. 2007 Mar; 68 (3) 605-12 [8], et donc connu de l'homme de l'art.
1 ) Il a été préparé une gamme de dilutions de l'antibiotique, de raison 2 correspondant à 4 - 2 - 1 - 0,5 - 0,25 μg/mL pour l'exemple avec Staphylococcus aureus CIP 76.25 illustré par la figure 4 (avec les légendes Cx4 - Cx2 - C - C/2 - C/4), et 128 - 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0,5 - 0,25 - 0,125 μg/mL pour Escherichia coli CIP 76.24 illustré par la figure 6 ;
2) Différents puits témoins ont été prévus, le BHI utilisé contenant des microbilles (TON05, BioFilm Control, Biopole Clermont-Limagne, 63360 Saint-Beauzire, France) à la concentration de '\ 0μί. TON05 / mL de BHI :
- Témoin BHI (T-BHI) : le milieu de culture BHI avec des particules sans antibiotique et sans microorganismes. Ce puits a permis de valider le comportement des particules seules dans le milieu de culture ;
- Témoin viabilité (T-S.a.) : le milieu de culture BHI avec des particules, avec un microorganisme, sans antibiotique, ce puits est le témoin de viabilité, permettant de valider le comportement normal du microorganisme dans le milieu (T2) ;
- Témoin antibiotique (T-ATB) : le milieu de culture BHI avec des particules avec un antibiotique et sans microorganismes, ce puits permettant de démontrer que l'antibiotique ne provoque pas d'artéfacts (images insolites) avec les particules.
3) Les dilutions réalisées avec le milieu de culture BHI ont été réparties dans les puits d'une microplaque. Le micro-organisme, de l'ordre de 106 cfu par puits, ont été incubé afin observer une différence (visuelle ou par analyse d'image) entre les puits dans lesquels le microorganisme se développe et les puits où le développement du microorganisme est inhibé entre les puits témoins et les puits échantillons, les puits échantillons comportant un microorganisme pouvant se développer et qui peut entraver le mouvement des particules magnétisables sous l'effet du champ magnétique.
4) Au temps initial (0 heure) et après incubation de la plaque de microdilution pendant 6 heures et 24 heures pour Staphylococcus aureus CIP 76.25, pendant 2 heures, 4 heures, 6 heures, 8 heures et 24 heures pour Escherichia coli CIP 76.24, il a été procédé à la lecture des résultats selon le protocole BioFilm Control en plaçant la microplaque sur le Lecteur BioFilm Control qui a permis de relever une image visuelle numérique (scan) du fond des puits par- dessous. L'intérieur du puits est visible par transparence à travers le fond polystyrène desdits puits;
5) La microplaque a été placé sur un bloc porte-aimant BioFilm Control. Sous chaque puits était centré un mini-aimant. De cette façon, chaque fond de chacun des puits a été soumis à un champ magnétique. La magnétisation a été maintenue pendant 1 minute;
6) Ensuite, l'ensemble a été placé sur le Lecteur BioFilm Control qui a permis de relever une seconde image visuelle numérique (scan) du fond des puits, après effet du champ magnétique.
7) Une comparaison des images avant et après magnétisation soit visuellement
(figure 4), soit à l'aide du logiciel d'analyse d'image (figure 6) développé par BioFilm Control (BioFilm Control Eléments, BioFilm Control, Biopole Clermont- Limagne, 63360 Saint-Beauzire, France) qui génère un Indice BioFilm (BFI pour BioFilm Indice), a été réalisée.
La Concentration Minimale Inhibitrice (CMI) lue avec le procédé Antibiogramme Rapide est la concentration en antibiotique du premier puits en progressant vers les concentrations en antibiotique croissantes, dans lequel un spot est visible, c'est-à-dire qu'aucun microorganisme n'est présent pour immobiliser les microbilles lors de l'étape de magnétisation. Après analyse par le logiciel BioFilm Control Eléments, l'apparition d'un spot dans un puits entre l'image avant et l'image après magnétisation, c'est-à-dire l'attraction des microbilles par l'aimant et donc l'absence de bactéries capables de bloquer leur déplacement, génère un BFI en général supérieur à une valeur de 8. Une absence d'un spot dans un puits entre l'image avant et l'image après magnétisation, c'est-à-dire l'attraction inefficace des microbilles par l'aimant et donc le présence de bactéries capables de bloquer leur déplacement, génère un BFI en général inférieur à une valeur de 6.
Les résultats des différentes mesures de la CMI sont résumés ci-dessous :
a) mesure de la CMI en pipéracilline sur Staphylococcus aureus CIP 76.25
La figure 4 illustre le résultat du test Antibiogramme Rapide, procédé selon l'invention, où l'on peut lire à l'œil nu qu'à 6h déjà, la CMI lue était d'^g/mL. Un spot de microbilles était visible dans le puits C = ^g/mL, alors que dans le puits adjacent C/2 (soit O^g/rnL) aucun spot n'était visible, attestant d'une croissance bactérienne dans ce puits C/2 à l'origine de l'immobilisation des microbilles.
Le tableau 1 ci-dessous résume les résultats obtenus par le procédé de l'art, après 18 heures, et le procédé selon l'invention Antibiogramme Rapide après 6 heures. Tableau 1 : résultats CMI de pipéracilline selon le procédé de l'état de la technique et selon le procédé Antibiogramme Rapide
Figure imgf000033_0001
Cet exemple démontre clairement que le procédé selon l'invention permet de mesure la CMI dans un temps bien inférieur à celui des procédés de l'état de technique, en particulier, le procédé de l'invention permet de diminuer par trois le temps d'obtention des résultats par rapport au procédé de l'état de la technique. b) mesure de la CMI de la ciprofloxacine sur Escherichia coli CIP 76.24
La figure 6 est un diagramme en bâton représentant les résultats de la mesure de BFI selon l'invention, lorsque la souche E. coli CIP 76.24 a été incubée avec de la Ciprofloxacine aux concentrations suivantes ^g/mL) 128 - 64 - 32 - 16 - 8 - 4 - 2 - 1 - 0,5 - 0,25 - 0,125 μg/mL. Dès 6 heures, il y a inhibition de la croissance de E. coli CIP 76-24 à partir de la concentration 0,25μg/mL de Ciprofloxacine, tandis qu'on observe une faible valeur de BFI à la concentration 0,125μg/mL, ce qui indique qu'il y a présence d'une croissance bactérienne capable d'immobiliser les microbilles du procédé Antibiogramme Rapide.
Le tableau 2 ci-dessous résume les résultats obtenus par le procédé de l'art, après 18 heures, et le procédé selon l'invention après 6 heures. Tableau 2 : résultats CMI de la ciprofloxacine selon le procédé de l'état de la technique et selon le procédé Antibiogramme Rapide
Figure imgf000034_0001
Cet exemple démontre clairement que le procédé selon l'invention permet de mesure la CMI dans un temps bien inférieur à celui des procédés de l'état de technique, en particulier, le procédé de l'invention permet de diminuer par trois le temps d'obtention des résultats par rapport au procédé de l'état de la technique.
En outre cet exemple démontre clairement que le procédé selon l'invention quelle que soit la souche et/ou l'antibiotique testé permet de réduire par trois le temps d'obtention des résultats, en particulier de la CMI d'un antibiotique par rapport au procédé de l'état de la technique.
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Chavant et al. A new device for rapid évaluation of biofilm formation potential by bacteria, Journal of Microbiological Methods. 2007 Mar; 68 (3) : 605-12.

Claims

REVENDICATIONS
1 . Procédé de détermination rapide de la sensibilité d'un microorganisme à un ou plusieurs principe(s) actif(s) ou antibiotique(s) caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes:
a) Introduire dans quelque ordre que ce soit dans un milieu de culture liquide approprié au développement dudit microorganisme, ledit milieu comprenant moins de 0,5 grammes d'amidon par litre préparé à partir d'eau pour préparation injectable (EPPI) et/ou ne contenant pas de produit de pyrolyse et filtré,
i. au moins une particule magnétique ou magnétisable, ladite particule flottant à la surface du milieu de culture ou étant en suspension ou reposant sur une surface immergée dans le milieu de culture, ii. ledit microorganisme pour ensemencer le milieu de culture,
iii. ledit principe(s) actif(s) ou antibiotique(s) à une concentration déterminée dans le milieu de culture ensemencé,
b) maintenir ledit milieu de culture ensemencé et comprenant le principe(s) actif(s) ou l'antibiotique dans des conditions permettant un développement appréciable du microorganisme,
c) déterminer la sensibilité du microorganisme audit antibiotique par application d'un champ magnétique, électrique ou électromagnétique capable de mettre en mouvement ladite au moins une particule flottant à la surface du milieu de culture, ou en suspension dans le milieu de culture, ou reposant sur une surface immergée dans le milieu de culture, l'absence de mouvement de ladite particule révélant la présence dudit, au moins un, microorganisme dans ledit milieu et l'insensibilité dudit, au moins un, microorganisme audit principe(s) actif(s) ou antibiotique(s).
2. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ladite, au moins une, particule est une particule chargée électriquement, magnétique ou magnétisable ou recouverte d'au moins une couche magnétique ou magnétisable.
3. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ladite, au moins une, particule est soumise à un champ électromagnétique, éventuellement appliqué par impulsion.
4. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ladite, au moins une, particule est soumise à une augmentation progressive du champ électromagnétique.
5. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ledit champ magnétique est généré par des moyens générateurs de champ en mouvement.
6. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ladite, au moins une, particule est éclairée au moyen d'une source lumineuse pour détecter son mouvement.
7. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel ladite particule, au moins une, est génératrice d'un signal.
8. Procédé selon la revendication précédente, dans lequel ladite particule, au moins une, est fluorescente ou phosphorescente ou radioactive ou chimioluminescente.
9. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes comprenant en outre une étape de prélèvement du milieu de culture et de mesure de la densité optique dudit milieu de culture à une longueur d'onde permettant de suivre le développement du microorganisme.
10. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel on immerge dans le milieu de culture plusieurs particules, et dans lequel on détermine la sensibilité du microorganisme audit antibiotique par application d'un champs magnétique destiné à mettre en mouvement lesdites particules, le microorganisme est peu ou non sensible à l'antibiotique lorsque le rassemblement des particules par le champs magnétique sur ladite surface est freiné, voir empêché par le développement du microorganisme.
1 1 . Procédé selon la revendication 10, dans lequel lorsque les particules peuvent être rassemblées par le champ magnétique, la détection de ce rassemblement est visuelle.
12. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel l'antibiotique est choisi dans le groupe comprenant l'acide fusidique, les aminosides, les béta-Lactamines, les pénicillines, des inhibiteurs le béta- lactamases, les céphalosporines, les carbapénèmes, les monobactames, la cyclosérine, la daptomycine, la fosfomycine, les lincosamides, les macrolides et kétolides, la mupirocine, les nitro-imidazolés, les nitrofuranes, les Oligosaccharides, les oxazolidinones, les polypeptides bacitracine, glycopeptides, polymyxines et colistine, les quinolones, les rifamycines, les sulfamides et les diaminopyridines, les synergistines, les tétracyclines, les antifongiques.
13. Procédé selon la revendication 1 , dans lequel on utilise une pluralité de compartiments comprenant chacun :
ledit milieu de culture,
ladite, au moins une particule, et
- ledit, au moins un, microorganisme,
ledit, au moins un, antibiotique ou un ou plusieurs principe(s) actif(s),
des compartiments comprenant une concentration différente dudit antibiotique ou principe(s) actif(s) et/ou un antibiotique ou principe(s) actif(s) différent d'un compartiment à l'autre.
14. Procédé selon la revendication 13, dans lequel dans l'un desdits compartiments la concentration d'antibiotique ou du principe(s) actif(s)est nulle, ledit compartiment représentant un témoin de culture dudit microorganisme sans antibiotique.
15 Procédé selon la revendication 13, dans lequel l'un desdits compartiments ne comprend pas ledit microorganisme, ledit compartiment représentant un témoin du milieu.
16. Procédé selon la revendication 13, dans lequel on détermine grâce à la pluralité desdits compartiments la concentration minimale de l'antibiotique ou dudit(s) principe(s) actif(s)pour ledit microorganisme.
17. Procédé selon la revendication 13 ou 14 comprenant en outre une étape de prélèvements de milieu de culture desdits compartiments et de mesures de la densité optique, ou de la turbidité dudit milieu de chacun des prélèvements à, au moins une, longueur d'onde permettant de suivre la présence et/ou le développement du microorganisme en suspension dans ledit milieu de culture.
18. Procédé selon la revendication 17, dans lequel on détermine la concentration minimale inhibitrice dudit antibiotique vis-à-vis de la croissance dudit microorganisme en suspension dans ledit milieu de culture à partir desdits prélèvements et mesures de densité optique desdits prélèvements à une longueur d'onde permettant de suivre le développement dudit microorganisme.
19 Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le milieu de culture est filtré sur une membrane de filtration stérilisante.
20. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le milieu de culture est filtré sur une membrane de filtration stérilisante avec un seuil de filtration de 0,2μιη.
21 . Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel l'eau ne contenant pas de produits de pyrolyse est une eau hautement purifiée ou une eau pour préparation injectable (EPPI).
22. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le ou les principes actifs sont choisis dans le groupe comprenant des enzymes, des molécules chimiques, des Dnases, des lyases, de l'hypoclorite de sodium, des sulfamides, de l'azide de sodium.
23. Utilisation du procédé définie selon l'une quelconque des revendications 1 à 22 pour déterminer la concentration minimale inhibitrice d'un microorganisme d'un antibiotique.
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