WO2014016952A1 - プローブ顕微鏡用ホルダ、プローブ顕微鏡および試料計測方法 - Google Patents

プローブ顕微鏡用ホルダ、プローブ顕微鏡および試料計測方法 Download PDF

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    • G01Q60/24—AFM [Atomic Force Microscopy] or apparatus therefor, e.g. AFM probes

Definitions

  • the present invention relates to a holder for arranging a sample, a probe microscope using the holder, and a sample measurement method using the microscope in a microscope for measuring a living tissue or the like with high spatial resolution.
  • Hydration phenomena such as biomolecules, biological tissues, and biological substrate materials are important when measuring, evaluating, and controlling biological reactions such as cell adhesion to the biological substrate material in the culture medium and subsequent extension / differentiation.
  • the hydration structure is formed from the interaction between the sample surface and water molecules and the interaction including hydrogen bonds between the water molecules at the sample-culture solution interface in the culture solution containing water as a main component. 3D structure is shown (Non-Patent Document 1). So-called biocompatibility represented by adhesion between the inner wall of an artificial blood vessel and erythrocytes is considered to be closely related to this hydration structure.
  • unevenness of the sample surface in the culture medium, potential distribution, composition distribution and arrangement structure of molecules and proteins, etc. are particularly important for biological reactions such as biomolecules, biological tissues, and biological substrate materials in the culture medium. It is a characteristic.
  • optical microscope, Raman spectroscopy, second harmonic method, sum frequency spectroscopy are methods for observing and measuring the sample-culture solution interface such as biomolecules, biological tissues, and biological substrate materials in the culture solution.
  • Nonlinear optical microscopes such as are used.
  • sum frequency spectroscopy can measure the arrangement of water molecules related to the hydration structure at the sample-culture liquid interface.
  • a non-linear optical microscope for example, in Patent Document 1, the interaction between a probe and a target is expressed by surface selectivity by water molecules, solvent molecules near the interface, or second harmonic light or sum frequency light by a labeling substance.
  • Non-linear optical methods are disclosed.
  • the scanning probe microscope is based on an atomic force microscope (AFM: Atomic Force Microscope).
  • the scanning Kelvin probe microscope which is an example of a scanning probe microscope, scans the probe surface on the sample surface while detecting the electrostatic field force acting between the cantilever with the conductive probe and the sample as the deflection of the cantilever. This is a technique for mapping the electrostatic field force distribution.
  • the probe also includes interatomic forces and the like, and the electrostatic field forces need to be separated from other interactions. For this purpose, first, the cantilever is vibrated, and the distance between the probe and the sample is adjusted so as to keep the vibration amplitude reduced by the atomic force acting when the probe and the sample are in contact with each other.
  • Sum-Frequency Microscope which is a typical nonlinear optical microscope, uses a laser-based sum-frequency microscope (Sum-Frequency-Microscope). Used to explore. However, the spatial resolution is about 1 ⁇ m, and a fine structure cannot be observed.
  • the scanning probe microscope can be operated in a culture solution, and a high resolution of about 10 nm can be obtained by a relatively simple operation.
  • the probe in order to detect the position of the sample surface, the probe must be brought into contact with the sample surface. If the tip of the probe is destroyed or the sample surface adheres during measurement, the detected signal is not good. There was a problem of becoming stable.
  • a container that accommodates a measurement object such as a cell, a first lid that covers at least a part of the measurement object and has an opening for inserting a measurement probe, It was made into the shape used as the measurement holder which has the 2nd cover part which connects with 1 cover part, covers the said container, and has the opening part for measurement probe insertion.
  • the present invention it is possible to maintain a good state of the sample without evaporating the culture solution or the like, so that the biomolecule / biological tissue / biological substrate material is maintained in the culture solution while maintaining the cell survival conditions. It is possible to measure the degree of orientation of water molecules at the interface of water and the like with high spatial resolution, and it is possible to identify the aggregation position and function of a specific element in a cell or cell mass.
  • Holder structure disclosed in the present invention (1) Example of probe microscope configuration diagram Holder structure disclosed in the present invention (2) Holder structure disclosed in the present invention (3) Holder structure disclosed in the present invention (4) Changes in heart rate of cultured cardiomyocytes over time Holder structure disclosed in the present invention (5) Holder structure disclosed in the present invention (6) Holder structure disclosed in the present invention (7) Holder structure disclosed in the present invention (8) Holder structure disclosed in the present invention (9) Holder structure disclosed in the present invention (10)
  • the present invention discloses a structure of a sample holder for measuring a biological sample / water sample typified by cells and water in a probe microscope.
  • a scanning probe microscope scanning Kelvin probe microscope
  • a probe-enhanced scanning sum-frequency microscope as one form of a scanning probe microscope is disclosed.
  • the probe 1 is installed on the vibrator 2, and the relative position to the sample 3 is controlled by the vibrator 2.
  • the probe 1 is selected from a material that amplifies and concentrates near-field light intensity near the tip when placed in incident light.
  • Raman scattering such as Raman spectroscopy or sum frequency spectroscopy
  • metals such as gold, silver, copper, and aluminum, and compounds thereof, which can effectively use surface-enhanced Raman scattering, are used.
  • a probe obtained by depositing a gold thin film with a thickness of 1 to 20 nm on a silicon probe is used as an effective probe candidate.
  • the vibrator 2 vibrates mainly in the vertical direction of the sample 3, the distance between the probe 1 and the sample 3 is controlled to 300 nm or less, and the natural frequency of the vibrator 2 is 200 kHz to 2 MHz is used.
  • a quartz crystal vibrator that expands and contracts in the longitudinal direction is used as the vibrator 2.
  • a tuning fork type crystal vibrator that is generally used in a scanning probe microscope such as an atomic force microscope, or vibration caused by a piezo element.
  • a vibrator in which a piezo element is arranged on a child or a cantilever can be used.
  • the probe 1 is vibrated in a direction perpendicular to the surface of the sample 3 by the vibrator 2 at a frequency near the natural frequency of the vibrator 2 (within about ⁇ 1% of the natural frequency). Due to the interaction (force) between the probe 1 and the sample 3, there is a phase difference between the voltage applied to the vibrator 2 and the actual vibration amplitude of the vibrator 2.
  • the phase difference in this embodiment From the phase difference between the AC voltage applied to the vibrator 2 and the current flowing into the vibrator 2, the interaction (force) between the probe and the sample is known, and the distance between the probe and the sample is known.
  • the scanning mechanism 4 scans the relative position between the sample 3 and the probe 1 in the direction perpendicular to the sample and in the plane direction of the sample.
  • a force microscope A force microscope
  • the distance between the probe 1 and the sample 3 is generally close to a distance of 0 nm (contact) to 100 nm at the closest position, but the probe 1 can be embedded into the sample 3.
  • the probe 2 scans the relative position between the sample 3 and the probe 1 in the vertical direction and the plane direction of the sample by the scanning mechanism while reducing the vibration amplitude of the vibrator 2 by a certain amount.
  • the distance between 1 and the sample 3 can be set to 0 nm at the closest position (tapping mode AFM).
  • the sample holder 5 can hold and exchange the culture solution 6.
  • water or a solvent can be used in place of the culture solution 6.
  • a pulsed laser beam or a plurality of pulsed laser beams that are input in synchronism are input in the vicinity of the region of the sample 3 where the probe 1 is close, and the intensity of the output beam 8 is measured by the detector with filter 7.
  • a first pulse laser beam 9 that is a green pulse laser beam having a wavelength of 532 nm
  • a second pulse laser beam 10 that is a variable infrared pulse laser beam having a wavelength of 2.3 to 10 microns are included.
  • Input synchronously.
  • the output light 8 is input to the detector with filter 7 and the intensity of the sum of the frequency of the first pulse laser light 9 and the frequency of the second pulse laser light 10 (sum frequency) is measured.
  • sum frequency spectroscopy can be performed.
  • the peak of the wave number 3200 Kaiser and the peak of the wave number 3400 Kaiser are compared, and the ratio of the orientation of the water molecules asymmetrically bonded to the tetrahedrally coordinated water molecules at the interface between the polycarbonate and the culture solution 14 is calculated. Can be identified.
  • FIG. 1 The structure of the sample holder necessary for this realization is shown in FIG.
  • a cylindrical hole is provided inside the holder.
  • a cover 11 has a cylindrical hole 12 at the center thereof.
  • Reference numeral 13 denotes an inlet for a culture solution, which is used to maintain the temperature of the holder during measurement (about 37 ° C. is preferable, but not limited to this temperature). It is provided to replenish water. Moreover, when a liquid (culture solution) deteriorates, it can utilize also for discharging
  • FIG. 14 is a holder body (container), which is fixed by a cylindrical hole 12 and a spacer 15.
  • FIG. 3 is a side view of FIG.
  • a holder cover 11, a cylindrical hole 12, and a culture solution inlet 13 are provided concentrically, and a spacer 15 is provided at the lower part of the cylindrical hole.
  • the 1st cover part which covers a part of sample 18 the 2nd cover part (holder cover) 11 which covers the holder main body 14, and the connection which connects a 1st cover part and a 2nd cover part It is the shape which provided the part.
  • the first lid portion is provided with a hole 26 through which the probe 1 is passed, and the second lid portion (holder cover) 11 is also provided with a hole 12 through which the probe 1 is passed.
  • the connecting part is hollow.
  • first lid portion, connecting portion, and second lid portion are connected to the holder body 14.
  • the spacer 15 is provided as a clog corresponding to the height of the sample 18, but when the sample is flat or the like, the spacer 26 is not necessarily required because of the hole 26. 1 and 3, the shape like the spacer 15 is illustrated. However, since it is a clog, it may be any shape.
  • the hole 12 may have any other shape as long as the probe passes therethrough.
  • the shape of the culture medium inlet 13 does not have to be circular, and may be any shape.
  • the holder main body 14 has a cylindrical shape
  • the holder cover also has a cylindrical shape.
  • the holder main body only needs to hold the sample 18, and thus the holder main body 14 is not limited to the cylindrical shape, and may have any shape. Accordingly, the holder cover 11 is also connected to the holder 14 in an arbitrary shape.
  • a heater for heating is not essential.
  • a heater 16 is connected to the holder body 14 to maintain the temperature of the sample holder.
  • a temperature sensor 17 composed of a Peltier element or the like is connected.
  • a sample 18 typified by cells and water can be disposed on the holder body.
  • the heater structure 16 can be repeatedly used even if the holder main body is discarded as a consumable item, which is advantageous in terms of cost. There is.
  • FIG. 4 is an actual holder mounting diagram.
  • the holder cover 11 and the holder main body 14 are in close contact with each other, and the spacer 15 is held in a state where it is in light contact with the sample 18.
  • the probe 1 passing through the cylindrical hole 12 can approach the sample through the holder or spacer.
  • FIG. 5 shows the actual usage of the holder shown up to FIG.
  • Reference numeral 19 denotes a control device for the probe microscope, which processes the position of the probe 1 and the amount of light that has reached the detector with filter 7.
  • 20 is a heater control device
  • 21 is a temperature sensor detection device.
  • the heater control device shown in 20 and the temperature sensor detection device shown in 21 are connected to each other, and can be set to a predetermined desired temperature by controlling the temperature by a feedback system.
  • the information of the set temperature and the detected temperature, and the control device 19 of the probe microscope are also connected to each other, and the computer 22 is a hub for transmitting these information.
  • the heart rate of the cultured myocardium of the rat was image-measured.
  • the heater 16 was heated as advance preparation.
  • the sample kit 18 was placed in the holder 14 and immersed in the culture solution, and then the holder cover 11 was set via the spacer 15. Then, the surface shape and the state of the cells were observed for less than 1 hour using the vibrator 2, the probe 1, and the pulse irradiation light while the temperature of the holder was kept substantially constant by the heater 16 and the sensor 17. Occasionally, the medium was replenished through the hole 13. The result is shown in FIG.
  • the set temperature was 39 ° C., but the temperature on the holder surface was 37 ° C.
  • FIG. 1 a modification of the holder will be shown.
  • water or a culture solution is put from above the holder cover.
  • the culture solution may be deteriorated, and it is necessary to provide a structure that avoids interference with the probe of the probe microscope.
  • FIGS. 1 a method for more easily realizing the injection and recovery of water / culture solution is disclosed in FIGS.
  • FIG. 7 discloses a holder characterized by including a culture solution discharge port 23 in addition to the culture solution intake port 13.
  • the discharge port 23 is provided on the side surface of the holder. This is because, as described above, it is possible to easily discharge the deteriorated liquid inside the holder without hindering the approach of the probe approaching from above.
  • FIG. 8 discloses a structure characterized in that a culture medium inlet 13 is also provided on the side of the holder.
  • a culture medium inlet 13 is also provided on the side of the holder.
  • supplementing and collecting the culture solution has the effect of allowing the measurement to be performed while maintaining the survival state even when the measurement requires a longer time.
  • a modified example related to the temperature measurement execution method will be shown for the holder.
  • the heater is installed in the lower part of the sample holder, and the heater and the temperature sensor are integrated.
  • an invention relating to the arrangement position of the sensor is disclosed.
  • FIG. 9 includes a structure for inserting the temperature sensor 17 into the holder body. This makes it possible to measure the temperature of the sample 3 in a form that correctly reflects the heat conduction characteristics of the holder made of a plastic material or the like.
  • FIG. 10 discloses a sample holder that is characterized by measuring the temperature of the surface of the sample 3 using the optical fiber sensor 24. With this method, it is not necessary to attach the temperature sensor 17 to the sample holder 5, and a simpler sample holder can be realized.
  • FIG. 11 discloses a structure of the sample holder 5 in which the sample holder 5 is heated by irradiation of an electromagnetic wave typified by laser or light using an optical fiber 25 as an alternative to the heater 16.
  • the wavelength of the laser used for actual irradiation is preferably an infrared wavelength band or an absorption wavelength body possessed by the material of the sample holder.
  • the holder mounting / removal structure is shown in FIG.
  • the holder cover 11 detachable from the holder main body 14 and the spacer 15
  • the top and bottom of FIG. 12 can be washed and used repeatedly.
  • cells can respire, and measurement can be performed for a long time while maintaining a high survival condition.

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Description

プローブ顕微鏡用ホルダ、プローブ顕微鏡および試料計測方法
　本発明は、生体組織等を高空間分解能で計測する顕微鏡において、その試料を配するホルダ、当該ホルダを用いたプローブ顕微鏡および当該顕微鏡を用いた試料計測方法に関する。
　培養液中における生体基板材料への細胞の接着やその後の伸展・分化などの生体反応を計測・評価・制御する場合に、生体分子・生体組織・生体基板材料などの水和現象が重要である。このとき、水和構造は、水を主成分とする培養液中における試料－培養液界面において、試料表面と水分子の相互作用、および、水分子間での水素結合を含む相互作用から形成される三次元構造を示している(非特許文献１)。人工血管の内壁と赤血球との癒着などに代表されるいわゆる生体適合性は、この水和構造と密接に関連していると考えられている。さらに、培養液中の試料表面の凹凸、電位分布、分子やたんぱく質などの組成分布や配列構造などは、培養液中における生体分子・生体組織・生体基板材料などの生体反応に関して、特に、重要な特性である。
　培養液中における生体分子・生体組織・生体基板材料などの試料－培養液界面を観察・計測する手法として、従来は、光学顕微鏡、および、ラマン分光法、第二高調波法、和周波分光法などの非線形光学顕微鏡が用いられている。特に、和周波分光法では、試料－培養液界面における水和構造に関する水分子の配列構造を計測できる。非線形光学顕微鏡としては、例えば、特許文献１では、プローブとターゲットとの間の相互作用を、界面付近の水分子、溶媒分子、または、標識物質による第二高調波光や和周波光による表面選択性の非線形光学法が開示されている。
　一方、走査プローブ顕微鏡は、原子間力顕微鏡（ＡＦＭ：Ａｔｏｍｉｃ 　Ｆｏｒｃｅ　 Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ）を基礎としている。走査プローブ顕微鏡の一例である、走査ケルビンプローブ顕微鏡では、導電性探針を持ったカンチレバーと試料との間に働く静電場力をカンチレバーのたわみとして検出しながら、探針を試料表面上で走査することにより静電場力分布をマッピングする手法である。探針には静電場力以外に原子間力等も加わっており、静電場力を他の相互作用から分離する必要がある。そのために、まず、カンチレバーを振動させ、探針と試料の接触時に働く原子間力により減少する振動振幅を一定に保つように探針－試料間距離を調整する。これにより試料表面の高さ方向の位置が決定され、そこから一定の距離だけ探針を試料表面から離した状態で、カンチレバーの振動の位相変化から長距離力である静電場力を検出する（例えば、特許文献２）。
ＵＳ７１３９８４３ 特開２０１１－２７５８２号公報
Second Harmonic and Sum Frequency Generation Imaging of Fibrous Astroglial Filaments in Ex Vivo Spinal Tissues　Yan Fu and Haifeng Wang and Riyi Shi and Ji-Xin Cheng　Biophysical Journal　Apr 30, 2007
　代表的な非線形光学顕微鏡である、レーザを用いた和周波顕微鏡（Sum Frequency Microscope）は，光触媒界面、表面吸着系，半導体界面，超電導体表面の、電子状態，ボンド配向，分子配向の分布および秩序を探ることに使用されている。しかし、空間分解能は１μｍ程度であり、微細な構造の観察はできない。
　一方、走査プローブ顕微鏡は培養液中動作が可能であり、比較的簡便な操作により10nm程度の高分解能が得られる。しかし、試料表面の位置を検出するために探針を試料表面と接触させなければならず、測定中に探針先端が破壊されたり、試料表面が付着するなどした場合、検出される信号が不安定となってしまうという問題があった。
　また、計測対象物である細胞の生存条件を維持したまま計測しようとする場合、細胞の生存条件の一つである温度約３７度を維持すると、細胞を取り囲んでいる水（液体、たとえば、培養液）が蒸発してしまい、その結果、細胞そのものが乾燥により生存状況を維持できない可能性がある。その結果、細胞の生存条件を維持したまま、細胞もしくは細胞表面からの物理情報を取得することが不可能となる。
　しかしながら、上記の従来例ではこの点について考慮されておらず、計測対象物を保持するホルダについては、記載されていない。
　そこで本発明では、細胞等の計測対象物を内部に収容する容器と、前記計測対象物の少なくとも一部を覆い、かつ計測用プローブ挿入用の開口部を有する第１の蓋部と、前記第１の蓋部と連結し、前記容器を覆い、かつ、計測用プローブ挿入用の開口部を有する第２の蓋部とを有する計測用ホルダとする形状とした。
　また、このホルダを用いて、細胞等をプローブ顕微鏡にて測定するものとした。
　本発明によれば、培養液等が蒸発することなく、試料の良好な状態を維持することができるので、細胞の生存条件を維持したまま、培養液中で生体分子・生体組織・生体基板材料などと水の界面において水分子の配向度を高空間分解能で計測することが可能ととなり、細胞内または細胞塊内の特定元素の凝集位置，機能を特定できる。
本発明で開示するホルダの構造（１） プローブ顕微鏡の構成図の例 本発明で開示するホルダの構造（２） 本発明で開示するホルダの構造（３） 本発明で開示するホルダの構造（４） 培養心筋細胞の心拍数の経時変化図 本発明で開示するホルダの構造（５） 本発明で開示するホルダの構造（６） 本発明で開示するホルダの構造（７） 本発明で開示するホルダの構造（８） 本発明で開示するホルダの構造（９） 本発明で開示するホルダの構造（１０）
　本発明は、プローブ顕微鏡において、細胞や水に代表される生体試料・水試料を計測する上でのサンプルホルダの構造について開示する。この開示に先立ち、探針－試料間に働く静電気力分布を計測する走査プローブ顕微鏡（走査ケルビンプローブ顕微鏡）の構造を図２において開示する。
　本実施例（図２）では、走査プローブ顕微鏡の一形態としての、探針増強走査和周波顕微鏡を開示する。探針１は振動子２に設置され、試料３との相対位置は振動子２により制御される。探針１は、入射する光中に置かれたときに、先端近傍に近接場光強度が増幅・集中する材料が選択される。また、ラマン分光法や和周波分光法などのようにラマン散乱を用いる場合は、表面増強ラマン散乱を有効に用いることができる、金、銀、銅、アルミなどの金属やそれらの化合物が用いられる。シリコン探針に厚さ1～20nmの金薄膜を蒸着した探針は、有効な探針の候補として用いられる。また、本実施例においては、振動子２は主に試料３の垂直方向に振動し、探針１と試料３の距離は３００ｎｍ以下で制御され、また、振動子２の固有振動数は２００ｋＨｚ～２ＭＨｚが用いられる。本実施例では、振動子２として、長手方向に伸縮する水晶振動子が用いられるが、原子間力顕微鏡などの走査プローブ顕微鏡で一般的に用いられるチューニングフォーク型の水晶振動子、ピエゾ素子による振動子、カンチレバーにピエゾ素子を配置した振動子などを用いることができる。
　振動子２により探針１は、振動子２の固有振動数近傍の周波数（固有振動数の±１％程度以内）で、試料３の表面に対して垂直方向に振動させられる。探針１と試料３との間の相互作用（力）により、振動子２に印加する電圧と振動子２の実際の振動振幅には位相差が生じるが、その位相差は、本実施例では、振動子２に印加する交流電圧と振動子２に流入する電流との位相差により、探針－試料間の相互作用（力）がわかり、探針－試料間距離がわかる。また、この位相差を一定にしながら、走査機構４により試料３と探針１との相対位置を試料に垂直方向と試料の平面方向に走査することにより、走査プローブ顕微鏡の一方式である原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）を構成でき、試料表面の凹凸が計測できる。探針１と試料３の距離は、一般的には、最近接位置で０ｎｍ（接触）から１００ｎｍの距離まで接近するが、探針１を試料３の内部までめり込ませることも可能である。また、振動子２の振動振幅が一定の量だけ減少するようにしながら、走査機構により試料３と探針１との相対位置を試料に垂直方向と試料の平面方向に走査することにより、探針１と試料３の距離を最近接位置で０ｎｍとすることもできる（タッピングモードＡＦＭ）。
　試料ホルダ５は、培養液６の保持・交換が可能である。また，培養液６のかわりに，水、溶媒の使用も可能である。
　探針１が近接する試料３の領域近傍にパルスレーザ光、または、同期して入力する複数のパルスレーザ光を入力し、フィルター付検出器７で出力光８の強度を計測する。本実施例では、波長５３２ｎｍの緑色パルスレーザ光である第一のパルスレーザ光９と、波長が２．３～１０ミクロンで可変の赤外パルスレーザ光である、第二のパルスレーザ光１０を同期して入力する。出力光８をフィルター付検出器７に入力して、第一のパルスレーザ光９の周波数と第二のパルスレーザ光１０の周波数との和の周波数（和周波）の強度を計測する。第二のパルスレーザ光１０の周波数に依存する和周波の出力光８の強度を記録することにより和周波分光ができる。本実施例では、波数が３２００カイザーのピークと波数が３４００カイザーのピークを比較して、ポリカーボネートと培養液１４との界面における４面体配位した水分子と非対称結合した水分子の配向の割合を特定できる。
　なお、上記は、パルスレーザ光を用いる例について説明したが、試料表面のみの計測の場合には、パルスレーザと検出器は必須ではない。
　計測を行う際には、試料を加熱する必要があり、その際に、水・培養液などの蒸発を抑え、かつ細胞が生存したままでの計測を実現する必要がある。この実現に必要な試料ホルダの構造を図１に示す。探針１をホルダへ挿入しやすい構造を実現するために、ホルダ内部に円筒状の穴を設けていることを特徴とする。１１はカバーであり、その中心に円筒状の穴１２を具備している。また、１３は培養液の取り入れ口であり、計測中にホルダの温度維持（３７℃程度が望ましいとされているが、本温度に限定されるものではない）のために、蒸発した培養液や水を補給するために設けられている。また、液体（培養液）が劣化した際には、これを排出するためにも利用できる。
　１４はホルダ本体（容器）であり、円筒状の穴１２とスペーサー１５により固定されている。この図１に示した構造を補足するために、図３を用いて説明を行う。この図３は、図１の側面図である。ホルダカバー１１、円筒状の穴１２、培養液の取り入れ口１３、が同心円状に具備されており、円筒状の穴の下部に１５に示したスペーサーが具備されている。このように、試料１８の一部を覆う第1の蓋部と、ホルダ本体１４を覆う第２の蓋部（ホルダカバー）１１と、第１の蓋部と第２の蓋部を連結する連結部を設けた形状となっている。第1の蓋部には、探針１を通す穴２６が設けられ、第２の蓋部（ホルダカバー）１１にも、探針１を通す穴１２が設けられている。連結部は、空洞となっている。
　これら第１の蓋部、連結部、第2の蓋部は、ホルダ本体１４へ接続されている。
　ここで、スペーサー１５は、試料１８の高さの分だけ下駄として設けたが、試料が平坦等の場合には、穴２６があるため、スペーサーは必ずしも必須ではない。また、図１、３では、スペーサー１５のような形状を図示したが、下駄あげであるため、任意の形状で構わない。
　なお、ここではホルダカバー１１、円筒状の穴１２、培養液の取り入れ口１３を同心円状に記載したが、１２の穴は探針が通れば良いので、その他の形状でも構わない。勿論、培養液の取り入れ口１３の形状は、円形である必要はなく、どのような形状でも構わない。また、ホルダ本体１４が円柱状であるため、ホルダカバーも円柱状の形状を示したが、ホルダ本体は、試料１８を保持すれば良いので、円柱状に限らず、任意の形状で構わない。それに伴い、ホルダカバー１１も、任意の形状でホルダ１４と接続されることとなる。
　また、試料１８の生存条件を長期間維持するために、試料１８を加温すると好ましい。なお、短時間で計測が終了する場合には、加温するためのヒータは必須でない。加温する場合には、図３に示した通り、ホルダ本体１４へは、ヒータ１６が接続されており、サンプルホルダの温度維持を行う。また、サンプルホルダの温度の計測を目的として、ペルチェ素子などから構成される温度センサー１７が接続されている。このホルダ本体上には、細胞や水に代表される試料１８を配することができる。ここでは、ホルダ本体１４とヒータ構造物１６を接続するようにして構成したことにより、ホルダ本体を消耗品として廃棄しても、ヒータ構造物１６は繰り返し使用できるため、コスト面で有利となる効果がある。
　図４は、実際のホルダの装着図である。ホルダカバー１１とホルダ本体１４は密着されており、スペーサー１５が試料１８上に軽く接触した状態で保持される。これらホルダやスペーサーを貫通する形で、円筒状の穴１２を経由した探針１が試料上へアプローチすることができる。
　この図４までに示したホルダの実際の使用方法を図５に示す。１９はプローブ顕微鏡の制御装置であり、探針１の位置並びにフィルター付き検出器７へ到達した光量の処理を行うものである。２０はヒータの制御装置であり、２１は温度センサーの検出装置である。これら２０に示したヒータの制御装置と２１に示した温度センサーの検出装置は相互に接続されており、温度をフィードバック系により制御することで一定の所望の温度へ設定することが可能である。これら設定温度と検出温度の情報、並びにプローブ顕微鏡の制御装置１９も相互に接続されており、これらの情報の伝送のハブになるのは電子計算機２２である。
　本実施例にて開示したホルダを用いて、ラットの培養心筋（Primary Cell Co_,Ltd_　株式会社プライマリーセル　心筋細胞培養キット）について、心拍数を画像計測した。まず、事前準備として、ヒータ１６を加温した。一方、試料キット１８をホルダ１４に配置し、培養液を浸し、その後、スペーサ１５を介してホルダカバー１１をセットした。そして、ヒータ１６とセンサー１７により、ホルダの温度をほぼ一定に保ちつつ、振動子２、探針１、パルス照射光を用いて表面形状及び細胞の状態を、１時間弱観測した。時折、穴１３より、培養液を補充した。この結果を図６に示す。設定した温度は３９℃であるが、ホルダ表面での温度は３７℃であった。心拍数は、培養容器の環境により完全に一定を保つことは困難ではあるが、おおむね１分あたり１００心拍数を維持することができた。
　本実施例では、ホルダに関して、その変形例を示す。図１に示したホルダでは、水や培養液をホルダカバー上から入れるものであった。しかし、実際には、培養液が劣化する可能性もあり、また、プローブ顕微鏡の探針との干渉を回避する構造を具備する必要がある。これらの課題を解決するために、水・培養液の注入と回収をより容易に実現する方法を図７、図８にて開示する。
　図７では、培養液の取り入れ口１３に加え、培養液の排出口２３を具備することを特徴とするホルダを開示する。この排出口２３については、ホルダの側面に具備することを特徴とする。これは、前述の通り、上部から接近するプローブのアプローチを阻害せずに、ホルダ内部での劣化した液体を排出することが容易に実現できるからである。
　更に、図８では、培養液の取り入れ口１３もホルダの側面に具備することを特徴とする構造を開示している。これにより、培養液の注入、排出とも、探針への干渉の影響を回避する形で実現することが可能となった。尚、これらの注入・排出とも、実際には、マイクロシリンジなどを用いることで、注入量・排出量を制御することが可能である。人工的に注入・排出を行うだけではなく、これらの制御については、図５に示した電子計算機を用いて制御することも可能である。
　本実施例のように、培養液を補充、回収することにより、計測に、より長時間を要する場合でも、生存状態を維持したまま、計測することができる効果がある。
　本実施例では、ホルダに関して、温度計測の実施方法に関する変形例を示す。実施例１、実施例２に示したホルダの構造では、ヒータは試料ホルダの下部に設置され、ヒータと温度センサーは一体化した構造となっていた。しかし、本開示方法では、ホルダの熱伝導特性により、実際の試料での温度と異なる可能性がある。そこで、本実施例では、センサーの配置位置に関する発明を開示する。
　図９では、温度センサー１７をホルダ本体内部へ挿入する構造を具備する。これにより、プラスチック材料などにより構成されるホルダの熱伝導特性を正しく反映した形で、試料３の温度を計測することが可能となる。
　また、図１０では、光ファイバセンサ２４を用いて試料３表面の温度を計測することが特徴である試料ホルダを開示している。本方法であれば、試料ホルダ５への温度センサー１７の取り付けが不要となり、より簡易な試料ホルダが実現できる。
　更に、図１１では、ヒータ１６の代替えとして、光ファイバ２５を用いたレーザもしくは光に代表される電磁波の照射により、試料ホルダ５の加熱を行うことを特徴とする試料ホルダ５の構造を開示する。実際の照射に使用するレーザの波長は、試料が生体物質であることから考えて、赤外線の帯域、もしくは、試料ホルダの材質が有する吸収波長体であることが望ましい。このように、外部から電磁波（光）照射することにより、直接ホルダをヒータで加熱するよりも、計測時に、電磁ノイズの影響を低減することができる。
　本実施例では、ホルダの着脱構造を図１２に示す。このように、ホルダ本体１４と、スペーサ１５からホルダカバー１１を着脱可能とすることで、ホルダ本体（容器）１４内の細胞を入れ替えて再計測することが可能となる。図１２の上と下はそれぞれ洗浄し、繰り返し利用可能である。また、計測中でも、時折大気に開放することで、細胞が呼吸可能となり、より、生存条件を高く維持したまま、長時間計測が可能となる。
１　探針
２　振動子
３　試料
４　走査機構
５　試料ホルダ
６　培養液
７　フィルター付検出器
８　出力光
９　第一のパルスレーザ光
１０　第二のパルスレーザ光
１１　ホルダカバー
１２　円筒状の穴
１３　培養液の取り入れ口
１４　ホルダ本体
１５　スペーサー
１６　ヒータ
１７　温度センサー
１８　試料
１９　プローブ顕微鏡の制御装置
２０　ヒータの制御装置
２１　温度センサーの検出装置
２２　電子計算機
２３　培養液の排出口
２４　光ファイバセンサ
２５　電磁波照射用光ファイバ
２６　穴

Claims (13)

  1. 　計測対象物を内部に収容する容器と、
    　前記計測対象物の少なくとも一部を覆い、かつ計測用プローブ挿入用の開口部を有する第１の蓋部と、
    　前記第１の蓋部と連結し、前記容器を覆い、かつ、計測用プローブ挿入用の開口部を有する第２の蓋部とを有することを特徴とする計測用ホルダ。
  2. 　前記第１の蓋部には、前記容器側に、前記容器から所定の高さを保つためのスペーサーが形成されていることを特徴とする請求項１記載の計測用ホルダ。
  3. 　前記第２の蓋部には、液体注入及び／または液体排出用の穴が形成されていることを特徴とする請求項１記載の計測用ホルダ。
  4. 　前記穴の配置位置は、前記第２の蓋部の上部であることを特徴とする請求項３記載の計測用ホルダ。
  5. 　前記穴の配置位置は、前記容器の側部であることを特徴とする請求項３記載の計測用ホルダ。
  6. 　さらに、前記容器を加熱するための加熱用素子が設けられていることを特徴とする請求項１記載の計測用ホルダ。
  7. 　さらに、前記容器の温度を計測するための温度計測用センサーを具備することを特徴とする請求項６記載の計測用ホルダ。
  8. 　前記加熱用素子及び／または前記温度計測用センサーは、前記容器からの着脱式であることを特徴とする請求項７記載の計測用ホルダ。
  9. 　前記加熱用素子は、前記容器に設けられていることを特徴とする請求項６記載の計測用ホルダ。
  10. 前記加熱用素子は光ファイバであることを特徴とする請求項６記載の計測用ホルダ。
  11. 前記温度計測用センサーは光ファイバであることを特徴とする請求項７記載の計測用ホルダ。
  12. 　振動子と、
    　前記振動子先端に設けられた探針と、
    　前記探針が、計測対象物の表面を走査することによって、前記計測対象物表面を計測する手段と、
    　前記計測対象物を内部に収容する容器と、前記計測対象物の少なくとも一部を覆い、かつ前記探針の挿入用の開口部を有する第１の蓋部と、前記第１の蓋部と連結し、前記容器を覆い、かつ、前記探針の挿入用の開口部を有する第２の蓋部とを有する計測用ホルダとを有することを特徴とするプローブ顕微鏡。
  13. 　計測対象物を内部に収容する容器と、前記計測対象物の少なくとも一部を覆い、かつ計測用プローブ挿入用の開口部を有する第１の蓋部と、前記第１の蓋部と連結し、前記容器を覆い、かつ、計測用プローブ挿入用の開口部を有する第２の蓋部と、を有する計測用ホルダを用い、
    　前記計測用ホルダの前記容器内に、前記計測対象物を液体とともに収容するステップと、
    　前記計測対象物の温度を計測する温度計測用センサーにて検知された温度に従って、前記計測対象物を加熱するための加熱用素子の加熱温度を調整しながら、前記計測用プローブが、前記計測用ホルダを介して、前記計測対象物の表面を走査することによって、前記計測対象物の表面を計測するステップと、を有することを特徴とする試料計測方法。
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Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015133284A1 (ja) * 2014-03-07 2015-09-11 一般財団法人生産技術研究奨励会 試料台及び走査型プローブ顕微鏡
JP2017044664A (ja) * 2015-08-28 2017-03-02 国立大学法人金沢大学 液中原子間力顕微鏡
JP2018091666A (ja) * 2016-11-30 2018-06-14 国立大学法人金沢大学 昇温ホルダおよびプローブ顕微鏡
US10073116B2 (en) 2014-12-24 2018-09-11 Hitachi, Ltd. Scanning probe microscope and its sample holder
JP2018194371A (ja) * 2017-05-15 2018-12-06 株式会社島津製作所 試料保持具、固定部材及び試料固定方法
WO2025013582A1 (ja) * 2023-07-12 2025-01-16 株式会社島津製作所 走査型プローブ顕微鏡

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3325982B1 (en) * 2015-07-22 2020-09-02 Universität Basel Top-cover for a controlled environmental system, top-cover-set and controlled environ-mental system compatible with probe based techniques and procedure to control the en-vironment for a sample
JP2019200179A (ja) * 2018-05-18 2019-11-21 株式会社島津製作所 試料容器用装着部材及び試料容器の密閉方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0954098A (ja) * 1995-08-14 1997-02-25 Nikon Corp 走査型プローブ顕微鏡
JPH10239325A (ja) * 1997-02-26 1998-09-11 Seiko Instr Inc 液中試料観察用試料容器
JPH11237392A (ja) * 1998-02-20 1999-08-31 Olympus Optical Co Ltd 液体の振動抑止板
JP2006030583A (ja) * 2004-07-15 2006-02-02 Olympus Corp ペトリディッシュ、チャンバー装置、光学顕微鏡観察方法及び試料分析方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2685127B1 (fr) * 1991-12-13 1994-02-04 Christian Licoppe Photonanographe a gaz pour la fabrication et l'analyse optique de motifs a l'echelle nanometrique.
US5226107A (en) * 1992-06-22 1993-07-06 General Dynamics Corporation, Space Systems Division Apparatus and method of using fiber-optic light guide for heating enclosed test articles
US6437328B1 (en) * 1998-08-03 2002-08-20 The Regents Of The University Of California Hyperbaric hydrothermal atomic force microscope
US8037945B2 (en) * 2007-04-13 2011-10-18 Savannah River Nuclear Solutions, Llc Atomic force microscope with combined FTIR-Raman spectroscopy having a micro thermal analyzer

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0954098A (ja) * 1995-08-14 1997-02-25 Nikon Corp 走査型プローブ顕微鏡
JPH10239325A (ja) * 1997-02-26 1998-09-11 Seiko Instr Inc 液中試料観察用試料容器
JPH11237392A (ja) * 1998-02-20 1999-08-31 Olympus Optical Co Ltd 液体の振動抑止板
JP2006030583A (ja) * 2004-07-15 2006-02-02 Olympus Corp ペトリディッシュ、チャンバー装置、光学顕微鏡観察方法及び試料分析方法

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2015133284A1 (ja) * 2014-03-07 2015-09-11 一般財団法人生産技術研究奨励会 試料台及び走査型プローブ顕微鏡
JP2015169549A (ja) * 2014-03-07 2015-09-28 国立大学法人 東京大学 試料台及び走査型プローブ顕微鏡
US9746494B2 (en) 2014-03-07 2017-08-29 The Foundation For The Promotion Of Industrial Science Specimen support and scanning probe microscope
EP3115790A4 (en) * 2014-03-07 2017-10-11 The Foundation for the Promotion of Industrial Science Specimen support and scanning probe microscope
US10073116B2 (en) 2014-12-24 2018-09-11 Hitachi, Ltd. Scanning probe microscope and its sample holder
JP2017044664A (ja) * 2015-08-28 2017-03-02 国立大学法人金沢大学 液中原子間力顕微鏡
JP2018091666A (ja) * 2016-11-30 2018-06-14 国立大学法人金沢大学 昇温ホルダおよびプローブ顕微鏡
JP2018194371A (ja) * 2017-05-15 2018-12-06 株式会社島津製作所 試料保持具、固定部材及び試料固定方法
WO2025013582A1 (ja) * 2023-07-12 2025-01-16 株式会社島津製作所 走査型プローブ顕微鏡

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