WO2012157677A1 - ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子 - Google Patents

ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子 Download PDF

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WO2012157677A1
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steroid
protein
seq
transformant
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直行 梅基
大山　清
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キリンホールディングス株式会社
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    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
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    • C12N9/001—Oxidoreductases (1.) acting on the CH-CH group of donors (1.3)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P33/00—Preparation of steroids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y103/00—Oxidoreductases acting on the CH-CH group of donors (1.3)
    • C12Y103/01—Oxidoreductases acting on the CH-CH group of donors (1.3) with NAD+ or NADP+ as acceptor (1.3.1)
    • C12Y103/01072—DELTA24-sterol reductase (1.3.1.72)

Definitions

  • the present invention relates to a gene encoding an enzyme that reduces position 24 of the steroid skeleton.
  • the present invention relates to steroids and vitamin D3.
  • the invention also relates to cells and transgenic yeast for the production of the above compounds.
  • Cholesterol is the most important animal steroid. Cholesterol is a basic component of the cell membrane and an essential component for cells to live. Cholesterol as a substance is important in the pharmaceutical industry, and bile acid-related substances derived and synthesized from cholesterol such as ursodeoxycholic acid are in great demand as pharmaceuticals. Vitamin D3 derived and synthesized from cholesterol is added to foods and feeds as a food fortification as well as pharmaceuticals. Currently, the majority of cholesterol on the market is derived from animal tissues (bovine spinal cord and wool). However, using raw materials extracted directly from animal tissues as a raw material can lead to the introduction of causative substances of BSE (bovine spongiform encephalopathy), and contamination of unknown pathogenic substances.
  • BSE bovine spongiform encephalopathy
  • an enzyme that introduces a methyl group at position 24 (sterol 24-C-methyltransferase) gene ERG6 in yeast and reduces the double bond at position 7 (7-dehydrocholesterol reductase) )
  • the enzyme (3 ⁇ -hydroxycholesterol ⁇ 24-reductase) gene DHCR24 that reduces the double bond at position 24 ( ⁇ 24, double bond between C24 and C25) of the human steroid skeleton is introduced into the yeast in which the gene DWF5 has been introduced.
  • Patent Document 1 Patent Document 2
  • mammalian genes such as humans often have poor compatibility when introduced into fungi such as yeast.
  • gene information is limited when creating a higher expression fungal organism, and improvement of expression becomes a problem.
  • Non-patent Documents 1 and 2 are known as a biosynthetic gene for this pathway, and the enzymatic reaction reduces the steroid ⁇ 24 (28) (double bond between C24 and C28). It catalyzes a reaction that reduces methylene, etc. at position 24. It is known that there is weak homology between DWF1 gene and DHCR24 gene.
  • Non-patent Document 3 production of cholesterol is recognized separately from plant sterols.
  • Non-patent Document 3 its biosynthetic pathway is unknown, and the means for increasing cholesterol content was completely unknown.
  • plants that can produce vitamin D3 in plants are known (Non-Patent Documents 4 and 5). These are presumed to have 7-dehydrocholesterol as an intermediate product, but there has also been no genetic study to increase vitamin D3 as well.
  • An object of the present invention is to provide a gene encoding an enzyme that reduces position 24 of the steroid skeleton.
  • the inventors of the present invention have intensively studied to achieve the above object.
  • the present inventors have paid attention to solanaceous plants, particularly plants of the genus Solanum that can produce cholesterol as an intermediate product because they produce steroid saponins and steroid alkaloids, although the content of cholesterol in plant sterols is low (Eckart Eich, 'Solanaceae and ConVolvulaceae: Secondary Metabolite, 2008, Springer, Heidelberg, Germany, p. 368-370). From these plants, we searched in silico for two genes with homology to the DWF1 gene.
  • each of these candidate genes is a gene (StDWF1) that has the same function as DWF1 involved in the synthesis of plant sterols that have been identified in the past.
  • the other gene could be identified as a gene (StDWF1H) encoding an enzyme that reduces position 24 of a different steroid skeleton.
  • yeast expressing this gene produced a significant amount of cholesterol.
  • the present gene was found to be more active than a previously reported gene encoding an enzyme that reduces position 24 in humans, and the present invention has been completed.
  • the homology between StDWF1 and StDWF1H is extremely high, and the homology between each gene and the gene that encodes the known enzyme that reduces position 24 of human is greatly different. Is an unpredictable result and must be called an unexpected result.
  • [1] A protein derived from a plant that produces cholesterol and having an activity of reducing position 24 of the steroid skeleton.
  • [2] The protein according to [1], which is derived from a plant belonging to the solanaceous family, the genus Ligaceae, the genus Yamaceae, or the family Lamiaceae.
  • a protein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3
  • b an amino acid in which one or several amino acids are deleted, substituted, inserted or added in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3
  • C a protein comprising an amino acid sequence having 90% or more sequence identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 [5]
  • the protein according to any one of [1] to [4], wherein the steroid skeleton is a steroid skeleton of a cholestan derivative.
  • [6] The protein according to any one of [1] to [5], which belongs to a reductase having a transmembrane region and a FAD-binding type sequence.
  • DNA encoding a protein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 includes an amino acid sequence in which one or several amino acids are deleted, substituted, inserted or added in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3, and has an activity of reducing position 24 of the steroid skeleton DNA encoding the protein (c) a DNA encoding a protein comprising an amino acid sequence having at least 90% sequence identity with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 and having an activity of reducing position 24 of the steroid skeleton (d) DNA containing the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 (e) a protein that hybridizes under stringent conditions with a DNA having a nucleotide sequence complementary to the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 and has an activity to reduce position 24 of the steroid skeleton DNA to do (
  • the transformant of any of [9] to [12] is cultured in the presence of a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof, and a double bond is formed at position 24 in the transformant.
  • Steroids or derivatives thereof were incorporated, and in the transformant, the double bond at position 24 of the steroid or derivative thereof having a double bond at position 24 was reduced, and position 24 was reduced in the transformant.
  • a method for producing a steroid or a derivative thereof reduced in position 24, wherein a steroid or a derivative thereof is produced, and the steroid or derivative thereof reduced in position 24 is recovered from the culture.
  • Bacterial cells or culture supernatant obtained by centrifuging the culture, the concentrated bacterial cells and / or culture supernatant, dried product, freeze-dried product, surfactant-treated product , An ultrasonic preparation, a mechanically-pulverized product, a solvent-treated product, an enzyme-treated product, a protein fraction, an immobilized product, or an enzyme preparation obtained by extraction from bacterial cells and / or culture supernatant The production method of any one of [14] to [16],
  • the steroid having a double bond at position 24 is desmosterol or 7-dehydrodesmosterol, and the steroid reduced at position 24 is cholesterol or 7-dehydrocholesterol, [14] to [ 16].
  • a mutation and / or polymorphism of a gene encoding an enzyme that reduces position 24 of the steroid skeleton is detected by the method of [21] or [22], and a plant having the mutation and / or polymorphism is detected. How to select.
  • a large amount and low cost of cholesterols and vitamin D3, especially ursodeoxycholic acid and vitamin D3, and substituted derivatives thereof showing useful physiological activity by the protein having an enzyme activity for reducing the 24-position of the steroid skeleton of the present invention Can be produced.
  • it is possible to adjust the activity expression of the enzyme protein that reduces position 24 of the steroid skeleton and the DNA encoding the same, and a method for producing plants and microorganisms with enhanced activity of the gene, cholesterol, Plants in which the ability to produce cholesterols reduced at position 24 of the steroid skeleton, such as, are altered are provided.
  • FIG. 1 It is a figure which shows GC chart (TIC) and mass spectrum (MS) of DWF1H expression yeast (T33, T34). It is a figure which shows the produced transformed yeast and the combination of a plasmid. It is a figure which shows GC chart (TIC) and mass spectrum (MS) of yeast which introduce
  • FIG. 2 is an electrophoretogram showing the expression of the 24-position reductase gene before and after exposure to the tuber of the potato variety “Sassy”. It is a figure which shows the structure of the vector for the overexpression of StDWF1H gene, and shows the structure inside the right border (RB) and the left border (LB) of the T-DNA of the gene part to be introduced, and the restriction enzyme site.
  • the enzyme protein of the present invention is a protein having an enzyme activity that reduces the double bond at the 24-position of the steroid skeleton ( ⁇ 24, a double bond between C24 and C25), and desmosterol (cholesta-5,24-dienol). ), 7-dehydrodesmosterol (cholesta-5,7,24-trienol), lanosterol (lanosta-8,24-dienol), cycloarta-24-enol), etc., double in position 24 It is a protein having the ability to reduce position 24 of a compound having a bond.
  • a compound having a steroid skeleton whose 24th position is reduced by the enzyme protein of the present invention is a cholestane derivative.
  • conversion ability is referred to as “24-position reductase activity”
  • an enzyme protein having such conversion ability is referred to as “24-position reductase”.
  • the enzyme protein of the present invention belongs to a reductase having a transmembrane region and a FAD-binding sequence.
  • Plants that contain the enzymes include cholesterol-producing plants such as Solanum tuberosum, Tomato (Solanum glaucophyllum), Drosophila digitalis purpurea, and Yam Plant species such as Dioscorea sp.) And Ajuga ⁇ reptans are included.
  • Compounds obtained by reducing the 24-position obtained by the enzyme of the present invention include cholesterol synthesized by plants or substituted derivatives thereof such as cholesterol (cholesta-5-enol), 7-dehydrocholesterol (cholesta-5, 7-dienol), salts thereof, substituted derivatives thereof and the like.
  • the salt examples include alkali metal salts such as sodium salt and potassium salt, ammonium, ammonium salts with organic amines such as aliphatic amines, aromatic amines, saturated amines and unsaturated amines, carboxylates and the like. These salts may be formed during the production of the target triterpene compound by the method of the present invention, or may be formed by neutralization after the production of the compound.
  • Substituted derivatives are, for example, 1st, 2nd, 4th, 6th, 7th, 11th, 12th, 14th, 16th, 17th, 18th, 19th, 21st, 22nd of steroid compounds , 23-position, 26-position, 27-position, etc.
  • the hydrogen atom at the position considered to have little effect on the 24-position reductase activity is another substituent, such as a lower alkyl group (methyl, ethyl, propyl, butyl, etc.) Halogen (fluorine, chlorine, bromine, iodine), hydroxyl group, ester group (acetoxy, propanoyloxy, etc.), acyl group (formyl, acetyl, propionyl, etc.), alkoxy group (methoxy, ethoxy, propoxy, etc.), amino group, mono -Or di-lower alkylamino groups (such as methylamino, dimethylamino, ethy
  • Preferred steroid compounds that serve as substrates for the 24-position reductase of the present invention include steroid compounds such as desmosterol, 7-dehydrodesmosterol, and substituted derivatives thereof.
  • the substitution position and substituent of the substituted derivative are the same as those exemplified above.
  • a steroid compound in which the double bond at the 24-position is reduced from the compound serving as a substrate by the action of the 24-position reductase is obtained.
  • the reaction for reducing the double bond at position 24 of desmosterol is shown in FIG.
  • vitamin D3 is produced by applying light such as ultraviolet rays to 7-dehydrocholesterol.
  • vitamin D3 and vitamin D3 derivatives are referred to as vitamin D3s.
  • the derivative of vitamin D3 refers to a derivative having the same substituent as the derivative of the steroid compound.
  • Substrate with double bond of 24-position reductase is synthesized from 2,3-oxide squalene, lanosterol and cycloartol are synthesized by the action of lanosterol synthase and cycloartol synthase, and the basic skeleton of steroid is synthesized (PMDewick, Medicinal Natural Product, 3rd ed., John Wiley & Sons, 2009).
  • the sequence information and cloning relating to these synthases have been cloned and sequenced from various animal, plant and fungal cDNA libraries and are already known.
  • DNA encoding the above lanosterol synthase or cycloartol synthase is obtained from these organisms using the cloning technique described in the above literature, and using well-known DNA recombination techniques, PCR methods, etc. It is also possible to introduce the DNA into microbial cells, fungal cells or plant cells so as to express the synthetic enzyme. Transformable fungal cells that can express lanosterol synthase and cycloartol synthase, or transgenic fungi and plants regenerated from plant cells, can express DNA encoding the 24-position reductase. Incorporation into steroid compounds makes it possible to use these cells, fungi, and plants to produce steroid compounds with the 24-position reduced, such as cholesterol and 7-dehydrocholesterol.
  • the 24-position reductase that can be used in the present invention is not limited to the following, but is derived from, for example, potato or tomato, and includes, for example, enzymes containing the amino acid sequences shown in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3, respectively. To do. Furthermore, the enzyme that can be used in the present invention includes a protein having an amino acid sequence partially having a mutation in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 and having a 24-position reductase activity.
  • the 24-position reductase derived from potato is referred to as StDWF1H
  • the 24-position reductase derived from tomato is referred to as SlDWF1H.
  • the “partially mutated amino acid sequence” is one or more, preferably one or several, for example, 1 to 10, preferably 1 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3.
  • Amino acid sequence in which ⁇ 7, more preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, more preferably 1 or 2 amino acids are deleted, substituted, inserted and / or added, or the amino acids At least 60%, at least 70%, at least 80% when calculated using sequences and known algorithms for homology searches such as BLAST, FASTA (eg, using default or default parameters)
  • the amino acid sequence which has is mentioned.
  • the sequence identity between enzyme proteins comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 is about 70 to about 80%.
  • sequence identity refers to, for example, when two amino acid sequences or base (nucleotide) sequences are aligned (however, a gap may or may not be introduced, but preferably Introducing gaps) refers to the percentage of the number of identical amino acids or bases relative to the total number of amino acids or bases containing the gaps.
  • the 24-position reductase of the present invention includes a natural 24-position reductase isolated from a plant and a recombinant 24-position reductase produced by genetic engineering techniques.
  • DNA is intended to encompass genomic DNA, genes, cDNA and chemically modified DNA.
  • the DNA encoding the 24-position reductase used in the present invention is a DNA encoding an enzyme having an activity of reducing the 24-position of the steroid skeleton.
  • the DNA encoding the 24-position reductase includes, for example, base sequences encoding the amino acid sequences shown in SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 3, respectively. Specifically, SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 4 The nucleotide sequence shown is included.
  • the DNA encoding the 24-position reductase that can be used in the present invention also hybridizes under stringent conditions with a DNA having a base sequence complementary to each base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4.
  • BLAST Altschul et al.
  • FASTA et al.
  • DNAs having or the amino acid sequences of proteins encoded by these DNAs For example, 1 to 10, preferably 1 to 7, more preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, more preferably 1 or 2 amino acids are deleted, substituted, inserted and / or Or it is DNA which codes the protein containing the added amino acid sequence.
  • the DNA includes DNA encoding a protein having 24-position reductase activity.
  • DNAs are DNA homologues (analogues), analogs (analogues) or mutants containing the nucleotide sequences shown in SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 4.
  • DNA is a cholesterol-producing plant, for example, plants such as Solanum tuberosum, tomato (Solanum glaucophyllum), scorpion family Digitalis purpurea and Ajuga reptans It can be obtained from leaves, roots, seeds, etc. by hybridization, PCR amplification and the like.
  • stringent conditions are conditions under which DNA with high sequence identity hybridizes, and such conditions can be appropriately determined by those skilled in the art. For example, “1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 37 °C ”, and the more stringent (medium stringent) conditions are“ 0.5 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 42 °C ”, even more severe (high stringency)
  • the condition is “0.1 to 0.2 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 65 ° C.”. After hybridization, for example, an operation of washing at 0.1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, 55 to 68 ° C. may be included, and this operation can increase stringency.
  • the 1 ⁇ SSC buffer is 150 ⁇ mM sodium chloride, 15 ⁇ mM sodium citrate, pH 7.0.
  • Hybridization conditions and PCR reaction procedures are described, for example, in F.M. Ausbel et al., Short Protocols in Molecular Biology, 3rd ed., John Wiley & Sons, 1995.
  • the DNA encoding the 24-position reductase that can be used in the present invention also includes DNAs that include sequences (degenerate sequences) based on the degeneracy of the genetic code in the nucleotide sequences shown in SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 4.
  • the DNA of the present invention is a protein having a 24-position reductase activity, that is, the following (a) to (c): (a) a protein comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3; (b) a protein having an amino acid sequence in which one or several amino acids are deleted, substituted, inserted or added in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3 and having 24-position reductase activity; (c) a protein comprising an amino acid sequence having a sequence identity of 90% or more with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 3, and having a 24-position reductase activity; A protein selected from the group consisting of
  • the DNA comprises the following (d) to (g): (d) DNA containing the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4; (e) A protein that hybridizes under stringent conditions with a DNA comprising a nucleotide sequence complementary to the DNA comprising the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 and encodes a protein having 24-position reductase activity DNA; (f) a DNA encoding a protein comprising a base sequence having a sequence identity of 90% or more with the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4 and having a 24-position reductase activity; (g) DNA containing a degenerate sequence in the base sequence shown in SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 4; Is selected from the group consisting of
  • Recombinant Vector The DNA of the present invention is inserted into a suitable vector containing control sequences to allow it to be expressed.
  • the recombinant DNA thus obtained is a recombinant vector.
  • any vector that can be used in prokaryotic or eukaryotic cells is intended, for example, bacteria (Escherichia, Pseudomonas, Bacillus, Rhodococcus, etc.), filamentous fungi (Aspergillus, Neurospora, Fusarium) , Trichoderma genus, Penicillium genus), basidiomycetes (white rot fungi etc.), yeasts (Saccharomyces genus, Pichia genus, Candida genus etc.) and other microorganism vectors, plant cell vectors, insect cell vectors and the like.
  • bacteria Erscherichia, Pseudomonas, Bacillus, Rhodococcus, etc.
  • filamentous fungi Aspergillus, Neurospora, Fusarium
  • Trichoderma genus Trichoderma genus
  • Penicillium genus Penicillium genus
  • basidiomycetes white rot fungi etc.
  • bacterial vectors include pBR, pUC, pET, pBluescript series vectors
  • yeast vectors include, but are not limited to, pDR196, pYES-DEST 52, YIp5, YRp17, YEp24, etc.
  • the plant cell vectors include, but are not limited to, pGWB vector, pBiEl2-GUS, pIG121-Hm, pBI121, pBiHyg-HSE, pB119, pBI101, pGV3850, pABH-Hm1, etc.
  • Non-limiting examples include pBM030, pBM034, pBK283 and the like.
  • the vector used in the present invention incorporates components related to the expression, regulation, and secretion of genes such as a promoter, terminator, enhancer, Shine-Dalgarno sequence, ribosome binding sequence, signal sequence, etc. (For example, drug resistance gene, reporter gene).
  • Promoters include, but are not limited to, lac promoter, trp promoter, recA promoter, tac promoter, ⁇ PL promoter, T7 promoter, CaMV35S promoter, ADH1 promoter, GAL promoter, PHO5 promoter, PGK promoter, GAPDH promoter, and the like.
  • Drug resistance genes include kanamycin resistance gene, ampicillin resistance gene, hygromycin resistance gene and the like.
  • Reporter genes include lacZ gene, GFP gene, GUS gene, luciferase gene and the like.
  • Other selectable markers include, for example, NPTII gene, dihydrofolate reductase gene and the like.
  • the components related to gene expression, regulation, and secretion are incorporated into the recombinant vector in such a manner that they can function according to their properties. Such an operation can be appropriately performed by those skilled in the art.
  • the transformant of the present invention is a transformant that temporarily or permanently holds the recombinant vector of the present invention.
  • a transformant can be obtained by introducing a recombinant vector into which a DNA encoding the 24-position reductase is inserted into a host cell so that the target DNA can be expressed.
  • a recombinant DNA is prepared by inserting the DNA fragment downstream of the promoter of an appropriate expression vector.
  • a transformant producing the protein of the present invention can be obtained by introducing the recombinant DNA into a host cell suitable for the expression vector.
  • Any host cell can be used as long as it can express the gene of interest, such as bacteria, yeasts and other fungi, animal cells, insect cells, and plant cells.
  • fungi such as yeast, insect cells or plant cells.
  • Cells having a biosynthetic system for steroids such as lanosterol and cycloartol include cells that originally have the biosynthetic system such as plant cells, yeast cells, fungal cells, and animal cells. Moreover, the cell which does not have said biosynthesis system includes the cell etc. which exogenously contain the genome area
  • the exogenous genomic region can be transferred into a host cell by inserting it into a vector such as a plasmid, phagemid, BAC, PAC, YAC, virus, etc. In any case, due to transformation of the above-exemplified cells, the cells overexpress the 24-position reductase in some cases.
  • the recombinant DNA having the DNA of the present invention or the DNA used in the production method of the present invention is capable of autonomous replication in a prokaryotic organism, and at the same time a promoter, ribosome It is preferably a recombinant DNA composed of a binding sequence, DNA of the present invention or DNA used in the production method of the present invention, and transcription termination sequence. A gene that controls the promoter may also be included.
  • Expression vectors include pBTrp2, pBTac1, pBTac2 (boehlinger Mannheim), pHelix1 (Roche Diagnostics), pKK233-2 (Amersham Pharmacia Biotech), pSE280 (Invitrogen), pGEMEX-1 ( Promega), pQE-8 (Qiagen), pET-3 (Novagen), pKYP10 (JP 58-110600), pKYP200 [Agric. Biol. Chem., 48, 669 (1984)], pLSA1 [Agric. Biol Chem., 53, 277 (1989)], pGEL1 [Proc. Natl. Acad.
  • Any promoter can be used as long as it functions in a host cell such as Escherichia coli.
  • promoters derived from Escherichia coli or phage such as trp promoter (Ptrp), lac promoter (Plac), PL promoter, PR promoter, PSE promoter, etc., SPO1 promoter, SPO2 promoter, penP promoter and the like can be mentioned.
  • artificially designed and modified promoters such as a promoter in which two Ptrps are connected in series, a tac promoter, a lacT7 promoter, and a letI promoter can be used.
  • a plasmid in which the distance between the Shine-Dalgarno sequence, which is a ribosome binding sequence, and the start codon is adjusted to an appropriate distance (eg, 6 to 18 bases).
  • a transcription termination sequence is not necessarily required, but a transcription termination sequence should be placed immediately below the structural gene. Is preferred.
  • Prokaryotes include microorganisms belonging to the genus Escherichia, Serratia, Bacillus, Brevibacterium, Corynebacterium, Microbacterium, Pseudomonas, etc. Can give.
  • any method can be used as long as it is a method for introducing DNA into the host cell.
  • a method using calcium ions [Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 69, 2110 (1972)]
  • protoplast method Japanese Patent Laid-Open No. 63-248394
  • electroporation method [Nucleic Acids Res., 16, 6127 (1988)] and the like.
  • yeast strains When yeast strains are used as host cells, YEp13 (ATCC37115), YEp24 (ATCC37051), YCp50 (ATCC37419), pHS19, pHS15 and the like can be used as expression vectors.
  • Any promoter may be used as long as it functions in yeast strains.
  • PHO5 promoter PHO5 promoter, PGK promoter, GAP promoter, ADH promoter, gal 1 promoter, gal 10 promoter, heat shock polypeptide promoter And promoters such as MF ⁇ 1 promoter and CUP 1 promoter.
  • Host cells include the genus Saccharomyces, the genus Schizosaccharomyces, the genus Kluyveromyces, the genus Trichosporon, the genus Schwanniomyces, the genus Pichia, Examples include yeast strains belonging to the genus Candida, specifically, Saccharomyces cerevisiae, Schizosaccharomyces pombe, Kluyveromyces lactis, Examples include Trichosporon pullulans, Schwanniomycesluvalluvius, Pichia pastoris, and Candida utilis.
  • any method for introducing DNA into yeast can be used.
  • electroporation method Metals Enzymol., 194, 182 (1990)
  • spheroplast method Proc . Natl. Acad. Sci., USA, 81, 4889 (1984)
  • lithium acetate method J. Bacteriol., 153, 163 (1983)] and the like.
  • examples of expression vectors include pcDNAI, pcDM8 (commercially available from Funakoshi), pAGE107 (Japanese Patent Laid-Open No. 3-22979), pAS3-3 (Japanese Patent Laid-Open No. 2-227075), pCDM8 [Nature, 329, 840 (1987)], pcDNAI / Amp (Invitrogen), pREP4 (Invitrogen), pAGE103 [J. Biochem, 101, 1307 (1987)], pAGE210, pAMo, pAMoA and the like can be used.
  • CMV cytomegalovirus
  • SV40 early promoter or metallothionein promoter SV40 early promoter or metallothionein promoter
  • retrovirus Promoters heat shock promoters
  • SR ⁇ promoters SR ⁇ promoters
  • an IE gene enhancer of human CMV may be used together with a promoter.
  • Host cells include mouse myeloma cells, rat myeloma cells, mouse hybridoma cells, human cells such as Namalwa cells or Namalva KJM-1 cells, human fetal kidney cells, human leukemia cells, African green monkey kidney cells CHO cells which are Chinese hamster cells, HBT5637 (Japanese Patent Laid-Open No. 63-299), and the like.
  • Mouse myeloma cells such as SP2 / 0, NSO, rat myeloma cells such as YB2 / 0, human fetal kidney cells as HEK293 (ATCC CRL-1573), human leukemia cells as BALL-1, etc., Africa Examples of green monkey kidney cells include COS-1, COS-7, and the like.
  • any method can be used as long as it introduces DNA into animal cells.
  • electroporation [Cytotechnology, 3,133 (1990)], calcium phosphate method (Japanese Patent Laid-Open No. Hei 2-). No. 227075), the lipofection method [Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 84, 7413 (1987)], Virology, 52, 456 (1973), and the like.
  • Baculovirus® Expression® Vectors A® Laboratory® Manual, WHFreeman® and® Company, New® York (1992), Current Protocols in Molecular Biology, Molecular® Biology, A® Laboratory® Manual, Bio Protein can be produced by the method described in / Technology, 6, 47 (1988), etc.
  • the recombinant gene transfer vector and baculovirus are co-introduced into insect cells to obtain the recombinant virus in the insect cell culture supernatant, and then the recombinant virus is further infected into insect cells to produce proteins. it can.
  • Examples of the gene transfer vector used in the method include pVL1392, pVL1393, pBlueBacIII (all from Invitrogen) and the like.
  • baculovirus for example, Autographa californica nuclear polyhedrosis virus, which is a virus that infects the night stealing insects, can be used.
  • podocytes of Spodoptera frugiperda As insect cells, podocytes of Spodoptera frugiperda, ovary cells of Trichoplusia ni, cultured cells derived from silkworm ovary, and the like can be used.
  • Spodoptera frugiperda ovary cells such as Sf9, Sf21 (Baculovirus Expression Vectors Laboratory Manual), Trichopulcia ni ovary cells High5, BTI-TN-5B1-4 (Invitrogen), etc.
  • Examples of cultured cells derived from the silkworm ovary include Bombyxmori N4.
  • Examples of a method for co-introducing the recombinant gene introduction vector and the baculovirus into insect cells for preparing a recombinant virus include, for example, the calcium phosphate method (Japanese Patent Laid-Open No. 2-227075), the lipofection method [Proc. .Sci., USA, 84, 7413 (1987)].
  • the Agrobacterium method using a viral vector, Agrobacterium Ti plasmid, Ri plasmid or the like as a vector can be preferably used.
  • the thing using plant viruses, such as a tobacco mosaic virus vector can be mentioned. Any promoter may be used as long as it functions in plant cells, and examples thereof include cauliflower mosaic virus (CaMV) 35S promoter, rice actin 1 promoter and the like.
  • the host cell include plant cells such as tobacco, potato, tomato, carrot, soybean, rape, alfalfa, rice, wheat and barley.
  • any method can be used as long as it is a method for introducing DNA into a plant cell.
  • a method using Agrobacterium JP 59-140885 A, JP Sho-60-70080, WO94 / 00977
  • electroporation method JP 60-251887
  • particle gun gene gun
  • a protein with a sugar or sugar chain added When expressed in yeast, animal cells, insect cells, or plant cells, a protein with a sugar or sugar chain added can be obtained. Furthermore, a method for producing a transformed plant body (also referred to as “transgenic plant”) is obtained by regenerating a plant body from a plant cell transformed with a vector containing DNA encoding the 24-position reductase. be able to. Regeneration of the plant body from the plant cell can be performed by a known method such as callus culture.
  • the protein of the present invention comprises a temporary or permanent expression of DNA encoding the protein of the present invention in a host cell.
  • the transformant mentioned in the transformant can be obtained and produced.
  • the production rate of the protein can be improved by substituting the base in the base sequence encoding the protein of the present invention so as to be an optimal codon for host expression.
  • the obtained transformant is cultured in a medium, or in the case of a transformant plant, cultivated, the protein of the present invention is produced and accumulated in the culture, and the protein is produced by collecting from the culture Can do.
  • any bacteria, fungi such as yeast, animal cells, insect cells, plant cells, etc. that can express the target gene can be used. it can. Preferred are fungi such as yeast, insect cells or plant cells.
  • the method of culturing the above transformant in a medium can be performed according to a usual method used for host culture.
  • the medium As a medium for culturing a transformant obtained by using a prokaryote such as Escherichia coli or a eukaryote such as yeast as a host, the medium contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, etc. that can be assimilated by the organism, Either a natural medium or a synthetic medium may be used as long as the medium can efficiently culture the transformant.
  • a prokaryote such as Escherichia coli or a eukaryote such as yeast
  • the medium contains a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, etc. that can be assimilated by the organism
  • Either a natural medium or a synthetic medium may be used as long as the medium can efficiently culture the transformant.
  • the carbon source may be anything that can be assimilated by the organism, such as glucose, fructose, sucrose, molasses containing these, carbohydrates such as starch or starch hydrolysate, organic acids such as acetic acid and propionic acid, ethanol, Alcohols such as propanol can be used.
  • Nitrogen sources include ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, ammonium salts of organic acids such as ammonium phosphate, other nitrogen-containing compounds, peptone, meat extract, yeast extract, corn steep liquor, casein A hydrolyzate, soybean meal, soybean meal hydrolyzate, various fermented cells, digests thereof, and the like can be used.
  • monopotassium phosphate dipotassium phosphate
  • magnesium phosphate magnesium sulfate
  • sodium chloride ferrous sulfate
  • manganese sulfate copper sulfate
  • calcium carbonate calcium carbonate
  • Cultivation is usually performed under aerobic conditions such as shaking culture or deep aeration stirring culture.
  • the culture temperature is preferably 15 to 40 ° C., and the culture time is usually 5 hours to 7 days.
  • the pH is maintained at 3.0 to 9.0.
  • the pH is adjusted using an inorganic or organic acid, an alkaline solution, urea, calcium carbonate, ammonia or the like.
  • antibiotics such as ampicillin and tetracycline may be added to the medium as needed during the culture.
  • an inducer may be added to the medium as necessary.
  • an inducer For example, isopropyl- ⁇ -D-thiogalactopyranoside is used when cultivating a microorganism transformed with an expression vector using the lac promoter, and indole acrylic is used when culturing a microorganism transformed with an expression vector using the trp promoter.
  • An acid or the like may be added to the medium.
  • RPMI1640 medium J. Am. Med. Assoc., 199, 519 (1967)], Eagle's MEM medium [Science , 122, 501 (1952)], DMEM medium [Virology, 8,396 (1959)], 199 medium [Proc. Soc. Biol. Med., 73, 1 (1950)] or a medium obtained by adding fetal bovine serum or the like to these mediums, etc.
  • RPMI1640 medium J. Am. Med. Assoc., 199, 519 (1967)
  • Eagle's MEM medium Science , 122, 501 (1952)]
  • DMEM medium Virology, 8,396 (1959)]
  • 199 medium Proc. Soc. Biol. Med., 73, 1 (1950)
  • a medium obtained by adding fetal bovine serum or the like can be used.
  • Culturing is usually carried out for 1 to 7 days under conditions such as pH 6 to 8, 25 to 40 ° C., and the presence of 5% CO 2 .
  • antibiotics such as kanamycin, penicillin, streptomycin and the like may be added to the medium as needed during culture.
  • the culture medium for transformants obtained using insect cells as the host includes commonly used TNM-FH medium (Pharmingen), Sf-900 II SFM medium (Life Technologies), ExCell400, and ExCell405. [Each is JRH Biosciences], Grace's Insect Medium (Nature, 195, 788 (1962)) and the like can be used.
  • Cultivation is usually performed for 1 to 5 days under conditions of pH 6 to 7, 25 to 30 ° C.
  • an antibiotic such as gentamicin may be added to the medium as needed during the culture.
  • a transformant obtained by using a plant cell as a host can be cultured as a cell or differentiated into a plant cell or organ.
  • a medium for cultivating the transformant a commonly used Murashige and Skoog (MS) medium, White medium, or a medium in which a plant hormone such as auxin or cytokinin is added to the medium is used. be able to.
  • Cultivation is usually carried out under conditions of pH 5-9 and 20-40 ° C. for 3-60 days.
  • antibiotics such as kanamycin and hygromycin may be added to the medium as needed during culture.
  • a transformant derived from a microorganism, insect cell, animal cell, or plant cell having a recombinant DNA in which a DNA encoding the protein of the present invention is linked to an expression vector is cultured according to a normal culture method.
  • the protein of the present invention can be produced and accumulated, and the protein can be produced by collecting the protein from the culture or a processed product of the culture.
  • the treated product of the culture is a concentrate of the culture, a dried product of the culture, a cell obtained by centrifuging the culture, a dried product of the cell, a freeze-dried product of the cell, A treated product of the microbial cell, an ultrasonically treated product of the microbial cell, a mechanically ground product of the microbial cell, a solvent-treated product of the microbial cell, an enzyme-treated product of the microbial cell, It includes a protein fraction, an immobilized product of the microbial cell, or an enzyme preparation obtained by extraction from the microbial cell.
  • the production method of the protein of the present invention includes a method of producing in the host cell, a method of secreting it out of the host cell, or a method of producing it on the outer membrane of the host cell.
  • the structure can be changed.
  • the protein of the present invention is produced in the host cell or on the host cell outer membrane, the method of Paulson et al. [J. Biol. Chem., 264, 17619 (1989)], the method of Rowe et al. [Proc. .Sci., USA, 86, 8227 (1989), Genes Development, 4, 1288 (1990)], or by applying the method described in JP-A 05-336963, WO 94/23021, etc.
  • the protein can be actively secreted outside the host cell.
  • the protein can be actively secreted outside the host cell. it can.
  • the production amount can be increased using a gene amplification system using a dihydrofolate reductase gene or the like.
  • Inventive proteins can also be produced.
  • the transformant producing the protein of the present invention is an animal individual or a plant individual, it is raised or cultivated according to a usual method, the protein is produced and accumulated, and the protein is collected from the animal individual or plant individual. Thus, the protein can be produced.
  • a transgenic non-human animal introduced with the DNA of the present invention or the DNA used in the production method of the present invention is bred, and the protein of the present invention is produced and accumulated in the animal.
  • the protein can be produced by collecting the protein from the inside. Examples of the place where the protein in the animal is produced and accumulated include milk of the animal (Japanese Patent Laid-Open No. 63-309192), eggs and the like. Any promoter can be used as long as it functions in animals.
  • a casein promoter, ⁇ casein promoter, ⁇ lactoglobulin promoter, whey acidity, which is a mammary cell specific promoter can be used.
  • a protein promoter or the like is preferably used.
  • a transgenic plant introduced with a DNA encoding the protein of the present invention can be obtained by a known method [tissue culture, 20 (1994), tissue culture, 21 (1995). ), Trends Biotechnol., 15, 45 (1997)], producing and accumulating the protein in the plant, and collecting the protein from the plant to produce the protein. can give.
  • the cells are collected by centrifugation after culturing, suspended in an aqueous buffer, and then subjected to an ultrasonic crusher, a French press, a manton. Cells are disrupted with a Gaurin homogenizer, dynomill, etc. to obtain a cell-free extract.
  • an ordinary enzyme isolation and purification method that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, a precipitation method using an organic solvent, diethylamino Anion exchange chromatography using a resin such as ethyl (DEAE) -Sepharose, DIAION HPA-75 (manufactured by Mitsubishi Kasei), Cation exchange chromatography using a resin such as S-Sepharose FF (Pharmacia), Hydrophobic chromatography methods using resins such as butyl sepharose and phenyl sepharose, gel filtration methods using molecular sieves, affinity chromatography methods, chromatofocusing methods, electrophoresis methods such as isoelectric focusing etc. Used in combination, a purified preparation can be obtained.
  • a resin such as ethyl (DEAE) -Sepharose, DIAION HPA-75 (manufactured by Mitsubishi Kasei)
  • the protein when the protein is produced by forming an insoluble substance in the cell, the protein is similarly collected from the precipitate fraction obtained by crushing and centrifuging the cell, and the protein is obtained by a usual method. After recovery, the protein insoluble matter is solubilized with a protein denaturant.
  • the solubilized solution is diluted or dialyzed into a solution that does not contain a protein denaturant or the protein denaturant has such a concentration that the protein is not denatured.
  • a purified sample can be obtained by the same isolation and purification method.
  • the protein of the present invention or a derivative such as a sugar modification product thereof is secreted outside the cell, the protein or its derivative such as a sugar adduct can be recovered in the culture supernatant.
  • a soluble fraction is obtained by treating the culture by a technique such as centrifugation as described above, and a purified preparation is obtained from the soluble fraction by using the same isolation and purification method as described above. be able to.
  • the protein of the present invention can be produced as a fusion protein with another protein, and purified using affinity chromatography using a substance having an affinity for the fused protein.
  • affinity chromatography using a substance having an affinity for the fused protein.
  • the method of Roh et al. Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 86, 8227 (1989), Genes Development, 4, 1288 (1990)] JP-A-5-336963, WO94 / 23021
  • the protein of the present invention can be produced as a fusion protein with protein A and purified by affinity chromatography using immunoglobulin G.
  • the protein of the present invention can be produced as a fusion protein with a Flag peptide and purified by affinity chromatography using an anti-Flag antibody [Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 86, 8227 (1989), Genes Develop., 4, 1288 (1990)]. Furthermore, it can also be purified by affinity chromatography using an antibody against the protein itself.
  • the protein of the present invention is produced by chemical synthesis methods such as Fmoc method (fluorenylmethyloxycarbonyl method) and tBoc method (t-butyloxycarbonyl method). be able to. Chemical synthesis can also be performed using peptide synthesizers such as Advanced ChemTech, Perkin Elmer, Pharmacia, Protein Technology Instrument, Synthecell-Vega, PerSeptive, Shimadzu Corporation.
  • the present invention encodes a protein having exogenous 24-position reductase activity or a 24-position reductase in a cell-free system or using cells or plants.
  • the present invention provides a method for reducing the 24-position of a compound having a double bond at the 24-position of a steroid skeleton such as desmosterol, 7-dehydrodesmosterol, lanosterol, and cycloartenol under the expression of DNA.
  • the method of reducing the 24-position of the steroid skeleton of desmosterol as a cholesterol material and 7-dehydrodesmosterol as a vitamin D3 material is important. It is.
  • exogenous means that the enzyme is not artificially present in the cell or plant or the gene itself, but in the cell or plant, or in the reaction system of the above steroid compound raw material. Or it means introducing DNA encoding it.
  • the present invention also provides a steroid compound in which the 24-position of a compound having a double bond at the 24-position of the steroid skeleton is produced by the above conversion method, and the 24-position is reduced.
  • a method for producing a steroid compound is provided.
  • the 24-position reductase is covalently bonded or non-covalently attached to a support such as a crude, semi-purified or purified, or a polysaccharide, a porous polymer, a porous inorganic material (for example, glass, mineral, ceramics, etc.). It may be used in the reaction system as an enzyme immobilized by binding, or the cell or the plant itself producing the enzyme may be used in the reaction system.
  • the 24-position reductase that can be used in the present invention is a kind of reductase that is membrane-bound and has NADPH as a coenzyme, and can be obtained by the above-described production method.
  • the production of a steroid compound reduced at the 24-position can be carried out using a transformant introduced with a DNA encoding a 24-position reductase, and the following methods (a) to (c) can be mentioned.
  • a method for producing a reductant by culturing a transformant that produces a steroid having a double bond at the 24th position in a cell and expressing a 24th position reducing activity in the cell In this method, a transformant that produces a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof in a cell is cultured, and the double bond is positioned at position 24 in the transformant. Steroids or derivatives thereof at the 24th position of the steroids or derivatives thereof having a reduced form to produce steroids or derivatives thereof reduced at the 24th position in the transformant, and steroids or derivatives thereof reduced at the 24th position from the culture Can be recovered.
  • the double bond at position 24 of a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof is reduced to produce a steroid or derivative thereof at position 24 in the transformant, What is necessary is just to collect
  • a method of producing a reductant by using a culture as an enzyme source and contacting a steroid having a double bond at position 24 with the enzyme source is used as an enzyme source, and the enzyme source and a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof are present in an aqueous medium, A steroid or a derivative thereof reduced at the 24-position in the medium may be generated and accumulated, and the steroid or a derivative thereof reduced at the 24-position may be collected from the medium.
  • a substrate of the above-mentioned 24-position reductase such as desmosterol, 7-dehydrodesmosterol, lanosterol, cyclo
  • the culture solution of the transformant for example, yeast cell, fungal cell, insect cell, plant cell
  • the transformant for example, yeast cell, fungal cell, insect cell, plant cell
  • artenol, or substituted derivatives thereof it is possible to produce steroid compounds reduced in the 24-position.
  • a steroid such as desmosterol as a substrate to a culture solution of a transformed microorganism
  • yeast cells, fungal cells, plant cells, etc. the endogenous substrate for the 24-position reductase can be used.
  • cells in which the content of the endogenous substrate is increased in advance can also be used.
  • vitamin D3 (cholecalciphenol) is produced by irradiating light such as ultraviolet rays to 7-dehydrocholesterol produced by reducing the 24-position of 7-dehydrodesmosterol.
  • Pre-vitamin D3 ((6z) -Tacalciol) is produced when 7-dehydrocholesterol, a provitamin D3, is exposed to light such as ultraviolet rays, and then naturally isomerizes to vitamin D3.
  • 7-dehydrocholesterol may be produced and accumulated in the transformant containing the 24-position reductase of the present invention, and the transformant may be irradiated with ultraviolet light.
  • the present invention also includes a method for producing cholesterol and a method for producing vitamin D3 using the 24-position reductase of the present invention.
  • a cell-free extract containing the 24-position reductase is prepared from the culture medium of the transformant, and a part thereof is added to a buffer containing a steroid compound such as desmosterol or a substituted derivative thereof. By performing the conversion reaction, a steroid compound reduced at the 24-position can be produced.
  • the harvested cell suspension or the transformed plant in an appropriate amount of buffer is crushed by a homogenizer, an ultrasonic crusher or a French press, and then centrifuged to obtain a cell-free extract.
  • an antioxidant, an enzyme stabilizer, a polyphenol adsorbent, a metal ligand and the like can be added to the buffer.
  • it is effective to purify the polypeptide such as centrifugation using an ultracentrifuge, salting out using ammonium sulfate, gel filtration, ion exchange chromatography, affinity chromatography, electrophoresis. Methods such as the method can be used alone or in combination.
  • NADPH can be used as a coenzyme, and a NADPH reconstitution system using glucose-6-phosphate and glucose-6-phosphate dehydrogenase can be used in combination.
  • the protein of the present invention is added in an amount of 0.01 to 100 mg, preferably 0.1 to 10 mg per mg of desmosterol used as a substrate.
  • desmosterol used as a substrate is added to the reaction aqueous medium initially or during the reaction so as to have a concentration of 0.1 to 500 g / L, preferably 0.2 to 200 g / L.
  • the aqueous medium used in the above production method may be an aqueous medium of any component and composition as long as it does not inhibit the formation reaction of the steroid compound reduced at the 24-position, for example, water, phosphate, carbonate And buffer solutions such as acetate, borate, citrate, and tris. Further, it may contain alcohols such as methanol and ethanol, esters such as ethyl acetate, ketones such as acetone, and amides such as acetamide.
  • the formation reaction of the steroid compound reduced at the 24-position is carried out in an aqueous medium at pH 5 to 11, preferably pH 6 to 10, 20 to 50 ° C., preferably 25 to 45 ° C. for 2 to 150 hours, preferably 6 to 120. Do time.
  • a transformant having the ability to produce the protein of the present invention is incorporated with a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof as a raw material, and an enzyme reaction is performed in the transformant.
  • Examples thereof include a method for producing and accumulating a steroid compound reduced in position 24 in the transformant and extracting the steroid compound reduced in position 24 from the transformant.
  • Incorporation of a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof into a transformant as a raw material is performed by adding a steroid having a double bond at position 24 or a derivative thereof to the culture medium. It can be performed by culturing the transformant in the presence of a steroid having a heavy bond or a derivative thereof. Furthermore, a culture of a transformant having the ability to produce the protein of the present invention or a processed product of the transformant is used as an enzyme source, and the enzyme source and steroid are present in an aqueous medium, and position 24 in the medium. A production method for producing and accumulating a reduced steroid compound and collecting the steroid compound reduced at position 24 from the medium can be mentioned.
  • a transformant producing the protein of the present invention which can be produced by the above method, can be mentioned. Furthermore, NADPH other than NADPH produced by the host can be added from the outside.
  • a processed product of the culture As a processed product of the culture, a concentrate of the culture, a dried product of the culture, a cell obtained by centrifuging the culture, a dried product of the cell, a freeze-dried product of the cell, the cell Treated product of surfactant, sonicated product of cell, mechanically ground product of cell, solvent-treated product of cell, enzyme-treated product of cell, protein fraction of cell Products, immobilized products of the cells, enzyme preparations obtained by extraction from the cells, and the like.
  • the kind of steroids used as a substrate, the concentration and timing of addition, and the produced steroid compound reduced at position 24 are the same as those in the enzymatic production method of (1) above.
  • the aqueous medium used in the production method using the culture of microorganisms or the treated product of the culture as an enzyme source was used as an enzyme source.
  • a transformant or a culture solution of microorganisms can also be used as an aqueous medium.
  • a surfactant or an organic solvent may be added to the aqueous medium.
  • Surfactants include nonionic surfactants such as polyoxyethylene / octadecylamine (eg, Nimine S-215, NOF Corporation), cetyltrimethylammonium / bromide and alkyldimethyl / benzylammonium chloride (eg, cationic F2-40E, Accelerate the formation of dipeptides such as cationic surfactants such as Nippon Oil & Fats Co., Ltd., anionic surfactants such as lauroyl and sarcosinate, and tertiary amines such as alkyldimethylamine (eg, tertiary amine FB, Nippon Oil & Fats Co., Ltd.).
  • nonionic surfactants such as polyoxyethylene / octadecylamine (eg, Nimine S-215, NOF Corporation), cetyltrimethylammonium / bromid
  • the surfactant is usually used at a concentration of 0.1 to 50 g / l.
  • the organic solvent include xylene, toluene, aliphatic alcohol, acetone, ethyl acetate and the like, and are usually used at a concentration of 0.1 to 50 ml / l.
  • the amount of the enzyme source varies depending on the specific activity of the enzyme source, etc., but for example, 5 to 5 as wet cell weight per 1 mg of steroid compound used as a substrate. 1000 mg, preferably 10 to 400 mg is added.
  • the formation reaction of the steroid compound reduced at the 24-position is carried out in an aqueous medium at pH 5 to 11, preferably pH 6 to 10, 20 to 50 ° C., preferably 25 to 45 ° C. for 2 to 150 hours, preferably 6 to 120. Do time.
  • the steroid compound reduced in position 24 produced and accumulated in an aqueous medium can be collected by a normal method using activated carbon, ion exchange resin or the like, or extraction with an organic solvent , Crystallization, thin layer chromatography, high performance liquid chromatography and the like.
  • mutation of position 24 reductase gene In the method for producing a steroid compound reduced to position 24 according to the present invention, mutation of position 24 reductase gene, single nucleotide polymorphism in plant Detection of the presence of polymorphisms such as (SNP) or gene expression mutations, and production of steroidal compounds with high reductase activity at position 24 and reduced at position 24 from the genes having such mutations or polymorphisms Mutant genes that enhance sex can be selected. Such mutations include artificial mutation treatment such as chemical treatment such as radiation, UV irradiation, mutagen, etc. in plants having the reductase gene at position 24 and the ability to produce steroid compounds reduced at position 24. Alternatively, it can be induced by spontaneous mutation.
  • the above-mentioned method for selecting a mutant type 24 position reductase gene involves isolating genomic DNA and mRNA from mutant individuals, plants of various varieties and breeding individuals, and in the case of mRNA, synthesizing cDNA by reverse transcription. Amplifying a gene fragment containing the 24-position reductase gene from genomic DNA or cDNA by using a DNA amplification technique, and determining the presence of a mutation in the DNA.
  • kits such as DNeasy and RNeasy (Qiagen)
  • a method for synthesizing cDNA a commercially available kit (for example, Superscript First Strand System (Invitrogen)) can be used.
  • a technique such as a so-called PCR method or LAMP method can be used.
  • PCR method a technique based on the use of polymerases to achieve specific DNA sequence amplification (ie, increasing copy number) by a continuous polymerase reaction. This reaction can be used instead of cloning, but all that is needed is information about the nucleic acid sequence.
  • a primer complementary to the DNA sequence to be amplified is designed. The primer is then made by automated DNA synthesis.
  • DNA amplification methods are well known in the art and can be readily performed by one of ordinary skill in the art based on the teachings and instructions provided herein.
  • the TILLING method (Tilling method) is used to determine the nucleotide sequence (Applied Biosystems) and to detect mutants using an enzyme that cleaves one side of the mismatched pair. et al., 2003, Genome Res 13: 524-530) and the like, and a method of detecting using the homology between the mutant gene and the normal gene may be used. These can be performed by comparing the sequence data obtained from this technique with the base sequence of the gene encoding the 24-position reductase related to the gene portion, for example, the base sequences as shown in SEQ ID NOs: 10 to 16.
  • the difference in the amount of mRNA In the step of determining the difference in the amount of mRNA, real-time PCR (Roche Diagnostics, Inc.) using primers prepared based on the base sequence of the gene encoding the 24-position reductase whose sequence is known for the above cDNA. Quantitative PCR such as a light cycler) may be employed. Thereafter, for example, the difference in the amount of mRNA can be determined by comparing with the amount of cDNA obtained from the potato variety “Sassy”.
  • the method for determining the presence of the 24-position reductase gene mutation as described above is applied to a material obtained from potato.
  • the mutation or polymorphism of the gene encoding position 24 reductase can be identified at the base level, and the gene encoding position 24 reductase is suddenly changed.
  • a plant having a mutation and / or polymorphism can be selected to obtain a gene encoding a mutant type 24-position reductase.
  • the expression capacity of the gene encoding the 24-position reductase or the change in the activity of the position 24-reductase means that the expression capacity of the gene or the activity of the 24-position reductase is altered by mutation such as artificial mutation. It means that the gene expression ability or the activity of the 24-position reductase is different depending on the type.
  • Modification of a plant by mutation of the 24-position reductase activity refers to modification of an existing variety contained in the plant species, and the existing variety includes a wild type.
  • Existing varieties refer to all varieties for obtaining plants in which the gene encoding the 24-position reductase has been modified, and include varieties created by artificial manipulation such as mating and genetic manipulation.
  • the activity modification does not have to be changed for all existing varieties. If the activity is modified for a specific existing variety, “plants with modified activity of 24-position reductase” "include.
  • Plant in which the activity of the 24-position reductase has been modified includes plants whose activity has been altered by mutation in the natural state without being subjected to human manipulation, and plants whose activity has been altered in the natural state by the selection method described above. Can be selected and can be established as a new variety.
  • the comparison target may be an existing variety that has undergone a mutagenesis treatment, or other existing variety But you can. It is also possible to obtain a new variety in which the mutation of the gene encoding the 24-position reductase is fixed by crossing a plant with a changed activity selected in a natural state or a plant with an activity changed by mutagenesis treatment. .
  • the existing varieties include “Baron ⁇ ”, “Makein”, “Sayaka”, “Cynthia” and the like.
  • the expression ability of the gene encoding the 24-position reductase or the plant in which the activity of the 24-position reductase is modified with respect to the existing variety refers to the expression ability of the gene encoding the 24-position reductase for the existing variety Includes plants with enhanced or decreased, and plants with increased or decreased activity of the 24-position reductase relative to existing varieties.
  • the present invention also includes a plant in which the expression ability of a gene encoding such a 24-position reductase or the activity of the 24-position reductase is modified with respect to an existing variety.
  • the plant having a mutation or polymorphism in the gene encoding the 24-position reductase thus obtained can be used for the production of a steroid compound reduced in the 24-position by the method of the present invention. .
  • Example 1 Extraction of the 24th reductase gene from potato sprout cDNA sequence
  • Potato sprout is known to accumulate extremely large amounts of glycoalkaloids. Although the biosynthetic pathway of glycoalkaloids is unclear, it is thought that cholesterol is the initial substance. This suggests that potato germination is an organ that can synthesize cholesterol in plants and is excellent as a gene source for cholesterol biosynthesis.
  • Potatoes that had been stored for more than 3 months after harvesting and opened to dormancy were placed in the dark at 20 ° C and allowed to germinate for about 2 weeks.
  • the sprouting was crushed with liquid nitrogen and total RNA was extracted with RNeasy (Qiagen).
  • CDNA was synthesized by reverse transcription reaction from 2 ⁇ g of RNA using a primer added with a T7 promoter sequence. The whole was amplified as RNA using DNA-polymerase and T7-RNA-polymerase, and cDNA was again synthesized by reverse transcription reaction.
  • a double strand cDNA was synthesized using an adapter for GS2FLX analysis.
  • StDWF1H is a primer U931 for obtaining a full-length sequence based on the SGN-U268686 sequence data of Solanum Genome Network (http://solgenomics.net/index.pl) (caccATGTCGGATGCTAAGGCCC (SEQ ID NO: 7): cacc was an additional sequence for cloning into a vector) and U932 (TCAATTCGCAGGTTCATCAG) (SEQ ID NO: 8) were synthesized.
  • primer U957 (caccATGACAGATGTTCAGGCTCC (SEQ ID NO: 9) for obtaining a full-length sequence based on sequence data TC214162 of DFCI Potato Gene Index (http://compbio.dfci.harvard.edu/tgi/plant.html): cacc was an additional sequence for cloning into a vector) and U958 (TCAATCTTCAGGCTCATCAACT) (SEQ ID NO: 10) was synthesized. Synthesis of total cDNA from total RNA of Example 1 was performed using the Superscript First Strand System (Invitrogen).
  • the gene was amplified by PCR (30 cycles, using Takara Bio PrimeSTAR HS DNA Polymerase) at an annealing temperature of 55 ° C. This was cloned into pENTR TM / D-TOPO entry vector (Invitrogen). Polynucleotide sequences were determined for the 8 independent clones obtained. The sequences thus obtained are SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 6, and the polypeptide sequences deduced therefrom are SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 5. These vectors were designated as pTOPO-PSStDWF1H and pTOPO-PSStDWF1. FIG.
  • FIG. 1 is a diagram showing an alignment of the results of analyzing the homology analysis of StDWF1H and StDWF1, and the amino acid sequence identity was extremely high at 80.0% over 562 amino acids.
  • the homology with the human gene known as the 24-position reductase shows that StDWF1H has amino acid sequence identity of 40.3% over 533 amino acids, StDWF1 Was 39.0% over 533 amino acids.
  • DHCR24 and DWF1 were 39.8% over 522 amino acids. All of them had weak homology of about 40%, and it was extremely difficult to estimate the function only by the result of gene homology at this point.
  • StDWF1H and SlDWF1H are classified into a cluster different from the enzyme that reduces 24 methylene of cholesterol (DWF1), and the human 24-position reductase gene DHCR24 is also distantly related in terms of evolution. It was.
  • Example 3 Isolation of Potato StDWF5 Gene and Construction of Yeast Expression Vector pTochigi101-StDWF5 From the sequence data of Solanum Genome Network (http://solgenomics.net/index.pl), Arabidopsis DWF5 gene (Choe et al. Plant J. (2000) 21: The sequence SGN-U269317 with high homology with 431-43) was found.
  • Primer U929 (caccAATGGCGGAGTCTCAGTTG (SEQ ID NO: 11): cacc is an additional sequence for cloning into a vector) and U930 (CTAATAAATTCCTGGTATGACCC) corresponding to the N-terminal and C-terminal of the predicted polypeptide (479 amino acids) of SGN-U269317 sequence ) (SEQ ID NO: 12) was synthesized.
  • the gene was amplified by PCR (30 cycles, using Takara Bio PrimeSTAR HS DNA Polymerase) at an annealing temperature of 55 ° C. This was cloned into pENTR TM / D-TOPO entry vector (Invitrogen).
  • Example 4 Construction of yeast expression vector of potato StDWF1H gene
  • An expression vector pYES-DEST52-StDWF1H of the StDWF1H gene was obtained by a base sequence-specific recombination reaction (attL x attR reaction).
  • the cultured yeast was collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, suspended in 10 ml of SC-Ura / His-glucose medium supplemented with galactose (20 mg / ml), and cultured at 30 ° C., 135 rpm for 2 days.
  • the cultured yeast was collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, 5 ml of ethyl acetate was added, sonicated for 20 minutes, and then centrifuged for 3 minutes to recover the ethyl acetate extract. This operation was repeated three times.
  • the ethyl acetate extract was added with N-methyl-N-trimethylsilyltrifluoroacetamide and heated at 80 ° C. for 30 minutes to be derivatized into a trimethylsilyl ether and used as a sample for GC-MS analysis.
  • the identity of the transformant was determined by comparing the retention time of GC with the MS spectrum.
  • BY4742 erg6 yeast (N1 and N2) mainly accumulated 7-dehydrodesmosterol.
  • two new peaks were detected from the extracts of yeasts T33 and T34 (GC charts shown in FIGS. 4, T33 and T34) carrying the two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-StDWF1H. It was identified as a desmosterol (dotted arrow) and cholesterol peak (solid arrow in FIG. 4) by mobility and mass spectrum with the sample.
  • StDWF1H is a gene encoding a 24-position reductase.
  • 7 ⁇ g of cholesterol was produced per 10 ⁇ m of culture.
  • these numerical values are not particularly optimized for expression forms and culture conditions in yeast, and should be regarded as reference numerical values only.
  • Example 6 Construction of yeast expression vectors for potato StDWF1 gene, human DHCR24 gene, and pea LKB To confirm whether the potato StDWF1 gene has 24-position reductase activity, a yeast expression vector was constructed.
  • the pTOPO-PSStDWF1 plasmid (entry clone) prepared in Example 2 and pYES-DEST52 are mixed, and base sequence-specific recombination reaction (attL x attR reaction) using Gateway LR Clonase II Enzyme Mix (Invitrogen)
  • the expression vector pYES-DEST52-StDWF1 of StDWF1 gene was obtained.
  • U959 caccATGTCTGATCTTGAGGCTCCG (SEQ ID NO: 13): cacc is an additional sequence for cloning into a vector
  • U960 TCAGTCTGGTGGTTGATCAACTTC
  • LKB gene expression vector pYES-DEST52-LKB is obtained by base sequence-specific recombination reaction (attL x attR reaction) using GatewayGateLR Clonase II Enzyme Mix (Invitrogen). It was.
  • DHCR24 gene was obtained and a yeast expression vector was constructed.
  • Total cDNA was synthesized using the total RNA of human Hela cells attached to the Superscript-first-strand system using the Superscript-first-strand system.
  • U945 caccATGGAGCCCGCCGTGT (SEQ ID NO: 15): cacc is an additional sequence for cloning into a vector
  • U946 TCAGTGCCTGGCGGCCTTGC
  • the gene was amplified by PCR (30 cycles, using Takara Bio PrimeSTAR-HS-DNA Polymerase) at an annealing temperature of 55 ° C. This was cloned into pENTR TM / D-TOPO entry vector (Invitrogen). The pTOPO-PSDHCR24 plasmid (entry clone), which was confirmed to be the same as the previously reported sequence by base sequence analysis, was obtained.
  • DHCR24 gene expression vector pYES-DEST52-DHCR24 is obtained by base sequence-specific recombination reaction (attL x attR reaction) using GatewayGateLR Clonase II Enzyme Mix (Invitrogen). It was.
  • Example 7 Confirmation of products in yeast expressing StDWF5 and DWF1 homologous genes in erg6 yeast T31, T32, T33, T34, T35, T36, T37, T38, T39, T40 each yeast in 5 ml SC-His medium or SC-Ura / His medium was cultured at 30 ° C., 135 rpm for 1 day.
  • the cultured yeast was collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, suspended in 10 ml of SC-Ura / His-glucose medium supplemented with galactose (20 mg / ml), and cultured at 30 ° C., 135 rpm for 2 days.
  • the cultured yeast was collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, 5 ml of ethyl acetate was added, sonicated for 20 minutes, and then centrifuged for 3 minutes to recover the ethyl acetate extract. This operation was repeated three times. After the solvent was removed by drying, the ethyl acetate extract was added with N-methyl-N-trimethylsilyltrifluoroacetamide and heated at 80 ° C. for 30 minutes to be derivatized into a trimethylsilyl ether and used as a sample for GC-MS analysis. The identity of the transformant was determined by comparing the retention time of GC with the MS spectrum.
  • Yeasts T31 and T32 which hold only pTochigi101-StDWF5, produced desmosterol (FIG. 6). Extracts of yeasts T33 and T34 carrying two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-StDWF1H showed the same results as in FIG. Although desmosterol was present in the extracts of yeasts T35 and T36 carrying the two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-StDWF1, cholesterol could not be confirmed.
  • Desmosterol was present in the extracts of yeasts T37 and T38, which carry the two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-LKB, but cholesterol could not be confirmed. This revealed that the StDWF1 and LKB gene products have no 24-position reductase activity. Cholesterol was confirmed in the extracts of yeasts T39 and T40 carrying the two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-DHCR24. It was found that the effect of introducing the StDWF1H gene was superior to the previously reported DHCR24, less than the retained yeasts T33 and T34.
  • Each yeast was cultured in 5 ml of SC-His medium or SC-Ura / His medium at 30 ° C., 135 rpm for 1 day.
  • the cultured yeast was collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, suspended in 10 ml of SC-Ura / His-glucose medium supplemented with galactose (20 mg / ml), and cultured at 30 ° C., 135 rpm for 2 days.
  • the cultured yeast was collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, 5 ml of ethyl acetate was added, sonicated for 20 minutes, and then centrifuged for 3 minutes to recover the ethyl acetate extract. This operation was repeated three times. After the solvent was removed by drying, the ethyl acetate extract was added with N-methyl-N-trimethylsilyltrifluoroacetamide and heated at 80 ° C. for 30 minutes to be derivatized into a trimethylsilyl ether and used as a sample for GC-MS analysis. The identity of the transformant was determined by comparing the retention time of GC with the MS spectrum.
  • Yeast in which only pTochigi101-StDWF5 was introduced into BY4742 erg4 erg5 accumulated 24 methylene cholesterol (FIG. 7). Extracts of yeasts T23 and T24 carrying two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-StDWF1H, and yeasts T29 and T30 carrying two vectors pTochigi101-StDWF5 and pYES-DEST52-DHCR24 are the controls T21 and T22. It was revealed that it has no reductase activity of 24 methylene.
  • Example 8 Gene Expression Analysis in Potato Tissue It is known that glycoalkaloids are increased by significantly increasing cholesterol by exposing potato tubers to light. Tubers of the variety “Sassy” were exposed to sunlight for 2 days. RNA was extracted with RNeasy from tuber pericarp before and after exposure, and total cDNA was synthesized using the Superscript first strand system. Based on the StDWF1H gene SEQ ID NO: 3, primers U931 (CACCATGTCGGATGCTAAGGCCC) (SEQ ID NO: 7) and U953 (GGATCCATATGCGTTTCTCATTCCAACAACA) (SEQ ID NO: 17) were prepared and RT-PCR (conditions: 95 ° C. 5 minutes, (95 ° C.
  • Example 9 Production of vitamin D3 in yeast As is evident in Examples 5 and 7, yeast with the erg6 mutation accumulates 7-dehydrodesmosterol.
  • yeast with the erg6 mutation accumulates 7-dehydrodesmosterol.
  • pYES-DEST52-StDWF1H into BY4742 erg6 of Yeast Knock Out Strain Collection using electroporation, two independent clones (T19, T20) were obtained. This yeast was able to express the StDWF1H gene in a medium containing galactose and to accumulate 7-dehydrocholesterol.
  • Vitamin D3 can be produced by irradiating the yeast with ultraviolet light.
  • Yeast originally accumulates ergosterol, but it is known that vitamin D2 can be produced by applying ultraviolet light thereto.
  • Extraction and analysis of vitamin D3 from yeast can be carried out as follows in the same manner as cholesterol.
  • Each yeast is cultured in 5 ml of SC-Ura / His medium at 30 ° C., 135 rpm for 1 day.
  • the cultured yeast is collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, suspended in 10 ml of SC-Ura / His-glucose medium supplemented with galactose (20 mg / ml), and cultured at 30 ° C., 135 rpm for 2 days.
  • the cultured yeast is collected by centrifugation at 3000 g for 10 minutes, 5 ml of ethyl acetate is added, sonicated for 20 minutes, and then centrifuged for 3 minutes to recover the ethyl acetate extract. Repeat this operation three times.
  • N-methyl-N-trimethylsilyltrifluoroacetamide is added and heated at 80 ° C. for 30 minutes to be derivatized into a trimethylsilyl ether and used as a sample for GC-MS analysis. Samples can be analyzed and quantified by comparing GC retention times and MS spectra.
  • the yeast BY4742 used this time is a laboratory yeast derived from baker's yeast.
  • Candida yeast which is excellent for substance production, can also be used.
  • For obtaining more specific transformants refer to Candida utilis (Japanese Unexamined Patent Application Publication No. 2010-75171) and Candida Boydini (Japanese Unexamined Patent Application Publication No. 2009-268407), and vitamin D3 as in laboratory yeast. It is possible to create a yeast that produces
  • these substances can be incorporated into yeast cells by adding 7-dehydrodesmosterol or a precursor thereof to the medium.
  • 7-dehydrocholesterol can be accumulated by expressing the StDWF1H gene.
  • Vitamin D3 can be produced by irradiating light (preferably ultraviolet rays) to yeast cells that have accumulated 7-dehydrocholesterol.
  • the substance to be added is desmosterol or a precursor thereof, cholesterol can be produced in the yeast cell.
  • Example 10 Production of Cholesterol and Vitamin D3 in Plants
  • Some plants such as potatoes and tomatoes produce cholesterol, but normal plants do not produce cholesterol. Therefore, an experiment was carried out to obtain an overexpressed transformant of the plant StDWF1H gene for the purpose of enhancing the cholesterol production of Arabidopsis which does not produce cholesterol and potato which is partially produced.
  • the binary vector pKT11 Japanese Patent Laid-Open No. 2001-161373
  • the 35S RNA promoter of the calflower mosaic virus, the StDWF1H gene were linked in the forward direction, and the 35S RNA terminator was ligated in this order to create a plant transformation vector pKT254.
  • the prepared vector was introduced into Agrobacterium tumefaciens strain GV3110 by electroporation (Gelvin and Schilperoor, edited by Plant Molecular Biology Manual, C2, 1-32 (1994), Kluwer Academic Publishers).
  • Transformation of Arabidopsis thaliana can be carried out according to (supervised by Shimamoto / Okada “Experimental protocol for model plants” (1996) Shujunsha).
  • Potato transformation can be performed according to (Monma (1990) plant tissue culture 7: 57-63). The potato transformation method is described in detail below.
  • a microtuber obtained from the potato variety “Sassy” (Japan Agribio Inc.) is sliced to 2 to 3 mm and used as a material for Agrobacterium infection. This is immersed in the above Agrobacterium solution and placed on a sterilized filter paper to remove excess Agrobacterium.
  • Elongate shoots are placed in MS medium containing 250 ppm carbenicin and 100 ppm kanamycin and no plant growth regulators.
  • An individual containing the kanamycin resistance gene is obtained as a foreign gene from the plant body in which the rooted shoot has grown resistant to kanamycin. It can detect by performing PCR using the primer of a kanamycin resistance gene, and can confirm that a plant body is a transformed plant body. These transformants can be expected to accumulate a lot of cholesterol.
  • the method for producing a pharmacologically active steroid compound using the 24-position reductase and the gene encoding the same of the present invention is useful because it enables mass production as compared with the extraction method from nature.

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Abstract

　ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子、およびステロイド類やビタミンＤ３類の製造方法を提供する。　無細胞系で、あるいは細胞または植物を用いて、外因性のステロイド骨格の24位の二重結合を還元する酵素活性を有するタンパク質の存在下またはそれをコードするDNAの発現下で、ステロイド骨格の24位の二重結合を還元する酵素的変換方法、ならびにこの方法を利用したステロイド骨格の24位の二重結合を還元した化合物の製造方法。

Description

ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子
　本発明は、ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子に関する。本発明は、ステロイド類やビタミンＤ３類に関する。本発明はまた、上記化合物の生産用の細胞およびトランスジェニック酵母に関する。
　コレステロールは最も重要な動物性ステロイドである。コレステロールは細胞膜の基本成分であり、細胞が生きていくための必須の成分である。物質としてのコレステロールは薬品産業でも重要であり、ウルソデオキシコール酸などコレステロールから誘導・合成される胆汁酸関連物質は医薬品としておおきな需要がある。コレステロールから誘導・合成されるビタミンＤ３類は、医薬品としてはもちろん、食物の栄養強化として食品や飼料に添加されている。現在、市場で市販されているコレステロールの大部分は、動物組織（ウシの脊髄や羊毛）からの抽出によっている。しかし、動物組織から直接抽出した物質を原料とすることは、ＢＳＥ（牛海綿状脳症）の原因物質の持込の可能性、さらには未知の病原性物質の混入など、医薬品等の生産にはリスクがあると考えられている。このことから、動物組織の利用は、さまざまな物質生産から排除される方向にある。コレステロールは、一部においては化学合成がされているが、すべてを化学合成で行うことは価格が非常に高くなり産業として成り立たない。そこで、植物や酵母などの微生物を用いたより大量の安価な生産方法が求められてきた。
　しかしながら、植物には24位にメチル基が導入される経路以降に生産される植物ステロール類が主として生産されることから、コレステロールの供給源とはなりえなかった。また酵母を代表とする真菌類でも同じくエルゴステロール類のみを蓄積しているため、生産に直接利用することは極めて困難であった。先行例としては酵母にて24位にメチル基を導入する酵素（ステロール２４-C-メチル基転移酵素）遺伝子ERG6を欠損し、7位の２重結合を還元する酵素（7-デヒドロコレステロール還元酵素）遺伝子DWF5を導入した酵母に、ヒトのステロイド骨格の24位の２重結合（Δ24、C24とC25の間の２重結合）を還元する酵素（3β-ヒドロキシコレステロールΔ24-還元酵素）遺伝子DHCR24を導入し酵母でコレステロールを生産したものが報告されている（特許文献１、特許文献２）。一般にヒトなど哺乳類の遺伝子は酵母など真菌類に導入した際の相性が悪いことが多く発現が弱いことが知られている。ヒトと相同性の高い哺乳類の遺伝子を利用した改良では、より高発現の真菌生物を作成する際に遺伝子情報が限られており、発現の改善が問題になる。また、ヒトの遺伝子を産業利用することについて倫理的な問題などがあった。
　植物においては、主に24位にメチル基が導入される経路以降に生産される植物ステロールが生産される。この経路の生合成遺伝子としてシロイヌナズナのDWF1遺伝子（非特許文献1と２）が知られており、酵素反応はステロイドのΔ24(28)（C24とC28の間の２重結合）を還元する、つまり24位のメチレン等を還元する反応を触媒する。DWF1遺伝子とDHCR24遺伝子の間には弱い相同性があることが知られている。一方、一部の植物では植物ステロールとは別にコレステロールの生産が認められる（非特許文献３）。しかし、その生合成経路は不明であり、コレステロール含量を増加させる手段は全く、不明であった。さらに、植物においてビタミンＤ３を生産しうる植物が知られている（非特許文献４及び５）。これらは７－デヒドロコレステロールが中間産物になっていると推定されるが、同様にビタミンＤ３を増加させる遺伝子レベルでの研究は行われてこなかった。
特表2007－535960号公報 米国特許第7608421号明細書
Choeら, Plant Physiol., 1999, 119:897-907 Klahreら, Plant Cell, 1998, 10:1677-1690 Eckart Eich, ‘Solanaceae and ConVolvulaceae: Secondary Metabolite,’ 2008, Springer, Heidelberg, Germany, p.368-370 Eckart Eich, ‘Solanaceae and ConVolvulaceae: Secondary Metabolite,’ 2008, Springer, Heidelberg, Germany, p.461-464 Bolandら, Plant Science 2003, 164: 357-369
　本発明の目的は、ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子を提供することである。
　本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意研究を重ねた。本発明者らは植物ステロールの中でコレステロールの含量は低いが、ステロイドサポニンやステロイドアルカロイドを生成することから、コレステロールを中間産物として生成しうるナス科植物、特にSolanum属の植物に着目した（Eckart Eich, ‘Solanaceae and ConVolvulaceae: Secondary Metabolite,’ 2008, Springer, Heidelberg, Germany, p.368-370）。これら植物からはDWF1遺伝子と相同性を持つ２つの遺伝子をin silicoで探しだした。この候補遺伝子を、適正な基質を生産する酵母に、それぞれを導入することで、一方は従来から同定されている植物ステロールの合成に関わるDWF1と同じ機能を持つ遺伝子（StDWF1）であることを明らかにし、さらにもう一方は、それとは異なるステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子(StDWF1H)であることを同定することができた。また、本遺伝子を発現させた酵母はコレステロールを著量生産することを示した。さらに本遺伝子は、すでに報告のあるヒトの24位を還元する酵素をコードする遺伝子よりも活性が高いことを見出し、本発明を完成させるに至った。StDWF1とStDWF1Hの相同性はきわめて高く、かつ、それぞれと、既知のヒトの24位を還元する酵素をコードする遺伝子との相同性は大きく離れており、今までの単純な遺伝子配列の相同性からは予想できない結果であり、想定外の結果といわざるを得ない。
　したがって、本発明は、以下のとおりである。
[１]　コレステロールを生産する植物に由来する、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質。
[２]　ナス科、ゴマノハグサ科、ヤマノイモ科、またはシソ科に属する植物に由来する、[１]のタンパク質。
[３]　ジャガイモ、トマトに由来する、[１]のタンパク質。
[４]　以下の(a)～(c)からなる群から選択される[１]のタンパク質。
　(a) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列を含むタンパク質
　(b) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質
　(c) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列と90％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質
[５]　ステロイド骨格がコレスタン誘導体のステロイド骨格である、[１]～[４]のいずれかのタンパク質。
[６]　膜貫通領域を持ちFAD結合型配列を持つ還元酵素に属する、[１]～[５]のいずれかのタンパク質。
[７]　以下の(a)～(g)からなる群から選択されるDNAを含有する組換え体DNA。
　(a) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするDNA
　(b) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
　(c) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列と90％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
　(d) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列を含むDNA
　(e) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列と相補的な塩基配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
　(f) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列と90％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
　(g) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列において縮重配列を含むDNA
[８]　[７]の組換え体DNAを含むベクター。
[９]　[７]の組換え体DNAを含む形質転換体。
[１０]　形質転換体が微生物または植物を宿主として得られる形質転換体である、[９]の形質転換体。
[１１]　微生物が酵母である、[１０]の形質転換体。
[１２]　24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成する能力を有する、[９]～[１１]のいずれかの形質転換体。
[１３]　[９]～[１２]のいずれかの形質転換体を培地に培養し、培養物中に［４］記載のタンパク質を生成、蓄積させ、該培養物より該蛋白質を採取する[４]のタンパク質の製造法。
[１４]　[９]～[１２]のいずれかの形質転換体であって、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を細胞内に生成する形質転換体を培養し、前記形質転換体中において、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の24位の２重結合を還元させ、形質転換体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成させ、該培養物から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を回収する、24位が還元されたステロイドまたはその誘導体の製造法。
[１５]　[９]～[１２]のいずれかの形質転換体を24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の存在下で培養し、該形質転換体中に24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を取り込ませ、前記形質転換体中において、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の24位の２重結合を還元させ、形質転換体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成させ、該培養物から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を回収する、24位が還元されたステロイドまたはその誘導体の製造法。
[１６]　[９]～[１２]のいずれかの形質転換体の培養物または該培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、および24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を採取する、24位が還元されたステロイドまたはその誘導体の製造法。
[１７]　前記培養物が、培養物を遠心分離して得られる菌体もしくは培養液上清、菌体および／または培養液上清の濃縮物、乾燥物、凍結乾燥物、界面活性剤処理物、超音波処理物、機械的摩砕処理物、溶媒処理物、酵素処理物、蛋白質分画物、固定化物あるいは菌体および／または培養液上清から抽出して得られる酵素標品であることを特徴とする、[１４]～[１６]のいずれかの製造法。
[１８]　24位に２重結合を持つステロイドが、デスモステロール、または７－デヒドロデスモステロールであり、24位が還元されたステロイドが、コレステロール、または７－デヒドロコレステロールである、[１４]～[１６]のいずれかの製造法。
[１９]　[１８]の製造法において、24位に２重結合を持つステロイドとして７－デヒドロデスモステロールを用い、７－デヒドロコレステロールを製造し、さらに、得られた７－デヒドロコレステロールに光を当てることを含む、ビタミンD3の製造法。
[２０]　前記形質転換体に蓄積された７－デヒドロコレステロールに対して光を当てるものである、[１９]の製造法。
[２１]　(i) ゲノムDNAまたはRNAである核酸を植物から単離する工程、
(ii) (i)の核酸がRNAである場合に逆転写しcDNAを合成する工程、
(iii) (i)または(ii)の工程で得られたDNAから配列番号２、配列番号４または配列番号５に示す塩基配列を含有する遺伝子断片を増幅する工程、ならびに
(iv) DNA中に突然変異および／または多型の存在を決定する工程、
とを含む、植物におけるステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子の突然変異および／または多型の存在を検出する方法。
[２２]　植物がナス科植物である[２１]の方法。
[２３]　[２１]または[２２]の方法によってステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子の突然変異および／または多型を検出し、突然変異および／または多型を有する植物体を選抜する方法。
[２４]　[２３]の方法により選抜された、ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子に突然変異および／または多型を有する植物体。
[２５]　ナス科植物である[２４]の植物体。
[２６]　ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子の発現能またはコードするステロイド骨格の24位を還元する酵素の活性が、既存品種に対して変化している植物を選抜する、[２３]の植物体を選抜する方法。
[２７]　[２６]の方法によって選抜された、ステロイド骨格の24位を還元する酵素をコードする遺伝子の発現能が既存品種に対して変化しているか、またはステロイド骨格の24位を還元する酵素の活性が既存品種に対して変化している植物体。
[２８]　ナス科植物である[２７]の植物体。
　本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2011-111888号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
　本発明のステロイド骨格の24位を還元する酵素活性を有するタンパク質により、有用な生理活性を示す、コレステロール類やビタミンＤ３類、とりわけウルソデオキシコール酸やビタミンＤ３、およびそれらの置換誘導体を大量かつ安価に生産できる。本発明によれば、ステロイド骨格の24位を還元する酵素タンパク質とそれをコードするDNAの活性発現の調整を行うことができ、該遺伝子の活性が増強された植物および微生物を作製する方法、コレステロールなどのステロイド骨格の24位を還元されたコレステロール類の生産能が変更された植物が提供される。本発明により上記コレステロール類、ビタミンＤ３類、およびそれらの置換誘導体の過剰発現に特徴がある植物の作出が可能である。
StDWF1HとStDWF1のアミノ酸配列について相同性をGENETYX（ゼネティックス社）で解析を行った結果を示す図である。562アミノ酸に渡って80.0%の同一性がある。 DWF1に相同なアミノ酸配列を持つ遺伝子の分子進化系統樹解析の結果を示す図である。数値はブーストラップ検定1000に対する数値である。 酵母発現用ベクターpTochigi101の構造を示す図であり、機能領域（2μ複製領域：2u ori、pUC複製領域：pUC ori、HIS3遺伝子:HIS3、アンピシリン耐性遺伝子：Amp、TDH3プロモーター、PGKターミナーター）と制限酵素部位を示す。 DWF1H発現酵母（T33, T34）のGCチャート(TIC)とマススペクトル(MS)を示す図である。 作成した形質転換酵母とプラスミドの組み合わせを示す図である。 erg6酵母とerg4 erg5酵母にDWF1H、DWF1、LKB又はDHCR24遺伝子を導入した酵母のGCチャート(TIC)とマススペクトル(MS)を示す図である。 erg4 erg5酵母でのDWF1H、DWF1、LKB又はDHCR24遺伝子を発現する酵母のGCチャート(TIC)とマススペクトル(MS)を示す図である。 ジャガイモ品種「サッシー」の塊茎の曝光前後での24位還元酵素遺伝子の発現を示す電気泳動図である。 StDWF1H遺伝子の過剰発現用ベクターの構造を示す図であり、導入する遺伝子部分のT-DNAのライトボーダー(RB)、レフトボーダー(LB)の内部の構造、制限酵素部位を示す。
　以下、本発明を詳細に説明する。
１．ステロイド骨格の24位を還元する酵素タンパク質（24位還元酵素）
　本発明の酵素タンパク質は、ステロイド骨格の24位の２重結合（Δ24、C24とC25の間の２重結合）を還元する酵素活性を有するタンパク質であり、デスモステロール（コレスタ-5,24-ジエノール）、７－デヒドロデスモステロール（コレスタ-5,7,24-トリエノール）、ラノステロール（ラノスタ-8,24-ジエノール）、シクロアルテノール（シクロアルタ‐24‐エノール）などのステロイド骨格の24位に２重結合をもった化合物の24位を還元する能力を有するタンパク質である。本発明の酵素タンパク質により24位が還元されるステロイド骨格を有する化合物はコレスタン誘導体である。本明細書では、そのような変換能を、「24位還元酵素活性」、そのような変換能を有する酵素タンパク質を「24位還元酵素」と言う。また、本発明の酵素タンパク質は、膜貫通領域を持ちFAD結合型配列を持つ還元酵素に属する。
　上記酵素を含む植物には、コレステロールを生成する植物、例えばナス科のジャガイモ（Solanum tuberosum)、トマト（Solanum lycopersicum)、ルリヤナギ(Solanum glaucophyllum）、ゴマノハグサ科のジギタリス(Digitalis purpurea)、ヤマノイモ科のヤムイモ（Dioscorea sp.）やシソ科Ajuga reptans等の植物種が含まれる。
　本発明の酵素により得られる24位が還元された化合物には、植物によって合成されるコレステロールまたはその置換誘導体が含まれ、例えばコレステロール（コレスタ-5-エノール）、７－デヒドロコレステロール(コレスタ-5,7-ジエノール)、それらの塩、それらの置換誘導体などが挙げられる。
　塩としては、ナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩、アンモニアや、脂肪族アミン、芳香族アミン、飽和アミン、不飽和アミンなどの有機アミンとのアンモニウム塩、カルボン酸塩などが含まれる。これらの塩は、本発明方法による目的トリテルペン化合物の生成の間に形成されてもよいし、あるいは、該化合物の生成後に中和処理により塩形成を行ってもよい。
　置換誘導体は、ステロイド化合物の、例えば1位、2位、4位、6位、7位、11位、12位、14位、16位、17位、18位、19位、21位、22位、23位、26位、27位などの、24位還元酵素活性に影響の少ないと思われる位置の水素原子が、別の置換基、例えば低級アルキル基（メチル、エチル、プロピル、ブチルなど）、ハロゲン(フッ素、塩素、臭素、ヨウ素)、水酸基、エステル基（アセトキシ、プロパノイルオキシなど）、アシル基（ホルミル、アセチル、プロピオニルなど）、アルコキシ基（メトキシ、エトキシ、プロポキシなど)、アミノ基、モノ-もしくはジ-低級アルキルアミノ基（メチルアミノ、ジメチルアミノ、エチルアミノなど）、アミド基、低級アルキルアミド基（アセタミドなど）、オキソ基、シアノ基、ニトロ基、低級アルキルチオ基（メチルチオ、エチルチオなど）、スルフォニル基（メシル、エチルスルホニルなど）などの官能基で置換された化合物を含む。本発明において、コレステロールおよびコレステロールの誘導体を含めて、コレステロール類と呼ぶ。
　本発明の24位還元酵素の基質となる好ましいステロイド化合物としては、デスモステロール、７－デヒドロデスモステロール、これらの置換誘導体などのステロイド化合物が挙げられる。置換誘導体の置換位置および置換基は、上記例示と同様である。本発明の方法により、24位還元酵素の作用によって基質となる化合物から24位の二重結合が還元されたステロイド化合物が得られる。一例として、図５上にデスモステロールの24位の二重結合を還元する反応を示す。コレステロールは、デスモステロールのステロイド骨格の24位の二重結合を還元することにより生成し、７－デヒドロコレステロールは、７－デヒドロデスモステロールのステロイド骨格の24位の二重結合を還元することにより生成する。さらに、７－デヒドロコレステロールに紫外線等の光を当てることによりビタミンD3が生成する。本発明において、ビタミンD3およびビタミンD3誘導体を含めてビタミンD3類と呼ぶ。ビタミンD3の誘導体は、上記のステロイド化合物の誘導体と同様の置換基を有する誘導体をいう。
　24位還元酵素の二重結合を持つ基質は2,3-オキシドスクアレンから、ラノステロール合成酵素やシクロアルテノール合成酵素の作用によってラノステロールやシクロアルテノールが合成され、ステロイドの基本骨格が合成されることにより合成される(P.M.Dewick, Medicinal Natural Product, 3rd ed., John Wiley & Sons, 2009)。これらの合成酵素に関する配列情報およびクローニングについては、種々の動物、植物、菌類のcDNAライブラリーからクローニングされて配列決定されており、すでに公知である。ラノステロール合成酵素についてはBakerら (1995) Biochem. Biophys. Res. Commun. 213: 154-160、Sungら (1995) Bio. Pharm. Bull. 18: 1459-1461、Coreyら (1994) Proc. Natl Acad. Sci. USA 91: 2211-2215、Shiら(1994) Proc. Natl Acad. Sci. USA 91: 7370-7374.などに記載されている。シクロアルテノール合成酵素については、Coreyら(1993) Proc. Natl Acad. Sci. USA 90: 11628-11632などに記載されている。これらの合成酵素は、例えばヒト、マウス、ラット、酵母、麹菌、シロイヌナズナ、イネ、ポプラ、ブドウ、オオムギ、トマト、ダイズ、などの動物、植物、菌類に存在することが知られているので、必要に応じて、これらの生物から上記文献記載のクローニング手法を用いて上記のラノステロール合成酵素やシクロアルテノール合成酵素をコードするDNAを取得し、周知のDNA組換え技術、PCR法などを使用して該DNAを微生物細胞、菌類細胞または植物細胞に導入して該合成酵素を発現するようにすることも可能である。このようにして得られたラノステロール合成酵素やシクロアルテノール合成酵素を発現し得る形質転換菌類細胞または植物細胞から再生されたトランスジェニック菌類や植物に、さらに24位還元酵素をコードするDNAを発現可能に組み込むことによって、これらの細胞、菌類、植物を用いてコレステロールや７－デヒドロコレステロールなどの、24位が還元されたステ
ロイド化合物を生成することが可能になる。
　本発明で使用可能な24位還元酵素は、以下のものに限定されないが、例えばジャガイモやトマト由来のものであり、それぞれ、例えば配列番号１や配列番号３に示されるアミノ酸配列を含む酵素を包含する。さらに、本発明で使用可能な該酵素は、配列番号１や配列番号３に示されるアミノ酸配列に部分的に変異を有するアミノ酸配列を含み、かつ、24位還元酵素活性を有するタンパク質を包含する。ジャガイモ由来の上記24位還元酵素をStDWF1H、トマト由来の上記24位還元酵素をSlDWF1Hと呼ぶ。
　ここで、「部分的に変異を有するアミノ酸配列」としては、配列番号１や配列番号３に示されるアミノ酸配列において１もしくは複数、好ましくは1もしくは数個、例えば、１～10個、好ましくは1～7個、さらに好ましくは１～5個、さらに好ましくは１～3個、さらに好ましくは1個もしくは2個、のアミノ酸が欠失、置換、挿入および／または付加されたアミノ酸配列、または該アミノ酸配列と、BLAST、FASTAなどの相同性検索のための公知のアルゴリズム（例えば、デフォルトすなわち初期設定のパラメータを使用する。）を用いて計算したときに、少なくとも60％、少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも85％、好ましくは少なくとも90％、さらに好ましくは少なくとも95％、特に好ましくは少なくとも97％、98％もしくは99％の配列同一性を有しているアミノ酸配列が挙げられる。因みに、上記配列番号１または配列番号３に示されるアミノ酸配列を含む酵素タンパク質間の配列同一性は約70～約80％である。
　本明細書で使用する「配列同一性」は、例えば2つのアミノ酸配列または塩基(ヌクレオチド)配列をアラインメントしたとき（ただしギャップを導入してもよいしギャップを導入しなくてもよいが、好ましくはギャップを導入する。）、ギャップを含むアミノ酸または塩基の総数に対する同一アミノ酸または塩基の数の割合（％）を指す。
　本発明の24位還元酵素は、植物体から単離された天然の24位還元酵素および遺伝子工学的手法により製造された組換え24位還元酵素を含む。
２．24位還元酵素をコードするDNA
　本明細書中で使用する「DNA」という用語は、ゲノムDNA、遺伝子、cDNAおよび化学修飾DNAを包含するものとする。
　本発明で使用する24位還元酵素をコードするDNAは、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有する酵素をコードするDNAである。
　上記の24位還元酵素をコードするDNAは、例えば上記配列番号１や配列番号３に示されるアミノ酸配列をそれぞれコードする塩基配列を含むものであり、具体的には配列番号２や配列番号４に示される塩基配列を含むものである。
　本発明で使用可能な24位還元酵素をコードするDNAは、また、配列番号２や配列番号４に示される各塩基配列に相補的な塩基配列を有するDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNA、あるいは、配列番号２や配列番号４に示される塩基配列と、BLAST、FASTAなどの相同性検索のための公知のアルゴリズム（例えば、デフォルトすなわち初期設定のパラメータを使用する。）を用いて計算したときに、少なくとも60％、少なくとも70％、少なくとも80％、少なくとも85％、好ましくは少なくとも90％、さらに好ましくは少なくとも95％、特に好ましくは少なくとも97％、98％もしくは99％の配列同一性を有するDNA、あるいは、これらのDNAによりコードされるタンパク質のアミノ酸配列に対して１もしくは複数、好ましくは1もしくは数個、例えば、１～10個、好ましくは１～7個、さらに好ましくは１～5個、さらに好ましくは１～3個、さらに好ましくは1個もしくは2個、のアミノ酸が欠失、置換、挿入および／または付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするDNAである。ただし該DNAは24位還元酵素活性を有するタンパク質をコードするDNAを包含する。
　これらのDNAは、配列番号２や配列番号４に示される塩基配列を含むDNAのホモログ（相同体）、アナログ（類似体）または変異体である。このようなDNAは、コレステロールを生成する植物、例えばナス科のジャガイモ（Solanum tuberosum)、トマト（Solanum lycopersicum)、ルリヤナギ(Solanum glaucophyllum）、ゴマノハグサ科のジギタリス(Digitalis purpurea)やシソ科Ajuga reptans等の植物の葉、根、種子などからハイブリダイゼーション、PCR増幅などによって得ることが可能である。
　本明細書中で使用する「ストリンジェントな条件」は、配列同一性の高いDNAがハイブリダイズする条件であり、そのような条件は当業者ならば適宜決定することができるが、例えば、「１×SSC、0.1％ SDS、37℃」程度の条件であり、より厳しい（中ストリンジェントな）条件としては「0.5×SSC、0.1％ SDS、42℃」程度の条件であり、さらに厳しい（高ストリンジェントな）条件としては「0.1～0.2×SSC、0.1％ SDS、65℃」程度の条件である。ハイブリダイゼーションの後でさらに、例えば0.1×SSC、0.1% SDS、55～68℃で洗浄を行う操作を含んでもよく、この操作によってストリンジェンシーを高めることができる。ここで、1×SSCバッファーは、150 mM塩化ナトリウム、15 mMクエン酸ナトリウム、pH7.0である。
　ハイブリダイゼーション条件やPCR反応の手順については、例えばF.M. Ausbel et al., Short Protocols in Molecular Biology, 3rd ed., John Wiley & Sons, 1995などに記載されている。
　さらに、本発明で使用可能な24位還元酵素をコードするDNAは、配列番号２や配列番号４に示す塩基配列において遺伝暗号の縮重に基づく配列（縮重配列）を含むDNAも包含する。
　本発明のDNAは、上記のとおり、24位還元酵素活性を有するタンパク質、すなわち以下の(a)～(c)：
　(a) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
　(b) 配列番号１または配列番号３に示すに示すアミノ酸配列において1または数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、24位還元酵素活性を有するタンパク質；
　(c) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列と90％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、24位還元酵素活性を有するタンパク質；
のいずれかからなる群から選択されるタンパク質をコードする。
　さらに具体的には、上記DNAは、以下の(d)～(g)： 
　(d) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列を含むDNA；
　(e) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列を含むDNAに相補的な塩基配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、24位還元酵素活性を有するタンパク質をコードするDNA；
　(f) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列と90％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、24位還元酵素活性を有するタンパク質をコードするDNA；
　(g) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列において縮重配列を含むDNA；
のいずれかからなる群から選択される。
３.組換えベクター
　本発明のDNAは、それを発現可能にするために、制御配列を含む適切なベクターに挿入される。このようにして得られた組換え体DNAが組換えベクターである。
　ベクターとしては、原核または真核生物の細胞で使用可能なあらゆるベクターを意図し、例えば細菌（エシェリシア属、シュードモナス属、バチルス属、ロドコッカス属など）、糸状菌（アスペルギルス属、ニューロスポラ属、フザリウム属、トリコデルマ属、ペニシリウム属など）、担子菌（白色腐朽菌など）、酵母（サッカロマイセス属、ピチア属、カンジダ属など）等の微生物用ベクター、植物細胞用ベクター、昆虫細胞用ベクターなどを使用できる。
　例えば、細菌用ベクターとしては、pBR、pUC、pET、pBluescriptシリーズのベクター類などが挙げられ、酵母用ベクターとしては、非限定的にpDR196、pYES-DEST 52、YIp5、YRp17、YEp24などが挙げられ、植物細胞用ベクターとしては、非限定的にpGWB vector、pBiEl2-GUS、pIG121-Hm、pBI121、pBiHyg-HSE、pB119、pBI101、pGV3850、pABH-Hm1などが挙げられ、昆虫細胞用ベクターとしては、非限定的にpBM030、pBM034、pBK283などが挙げられる。
　本発明において使用されるベクターには、プロモーター、ターミネーター、エンハンサー、シャインダルガルノ配列、リボソーム結合配列、シグナル配列等の遺伝子の発現、調節、分泌に関する構成要素が組込まれ、必要に応じて、選択マーカー（例えば、薬剤耐性遺伝子、レポーター遺伝子）を含有する。
　プロモーターには、lacプロモーター、trpプロモーター、recAプロモーター、tacプロモーター、λPLプロモーター、T7プロモーター、CaMV35Sプロモーター、ADH1プロモーター、GALプロモーター、PHO5プロモーター、PGKプロモーター、GAPDHプロモーターなどが非限定的に含まれる。
　薬剤耐性遺伝子には、カナマイシン耐性遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ハイグロマイシン耐性遺伝子などが含まれる。レポーター遺伝子には、lacZ遺伝子、GFP遺伝子、GUS遺伝子、ルシフェラーゼ遺伝子などが含まれる。その他の選択マーカーには、例えばNPTII遺伝子、ジヒドロ葉酸レダクターゼ遺伝子などが含まれる。
　遺伝子の発現、調節、分泌に関する構成要素は、その性質に応じて、それぞれが機能し得る形で組換えベクターに組み込まれることが好ましい。そのような操作は、当業者であれば適切に行うことができる。
４．形質転換体
　本発明の形質転換体は、本発明の組換えベクターを一時的もしくは恒常的に保持する形質転換体である。形質転換体は、24位還元酵素をコードするDNAを挿入した組換えベクターを、目的DNAが発現し得るように宿主細胞中に導入することにより得ることができる。該ＤＮＡ断片を適当な発現ベクターのプロモーターの下流に挿入することにより、組換え体ＤＮＡを作製する。該組換え体ＤＮＡを、該発現ベクターに適合した宿主細胞に導入することにより、本発明のタンパク質を生産する形質転換体を得ることができる。
　宿主細胞としては、細菌、酵母など菌類、動物細胞、昆虫細胞、植物細胞等、目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。好ましくは、酵母など菌類、昆虫細胞または植物細胞である。
　上記の宿主細胞が、ステロイド化合物の生合成系を有している細胞、あるいは、該生合成系を有していない細胞であっても外因的に（または外来的に）ラノステロール合成酵素、シクロアルテノール合成酵素などをコードするDNAが発現可能に組み込まれた細胞のいずれかである場合には、上記の形質転換によってさらにラノステロール合成酵素、シクロアルテノール合成酵素をコードするDNAが発現可能に含まれるため、これらの細胞を適当な基質を含む培地で培養することによってラノステロールやシクロアルテノールなどステロイド類を生産することができる。
　ラノステロールやシクロアルテノールなどステロイド類の生合成系を有している細胞には、植物細胞、酵母細胞、菌類細胞、動物細胞のように本来該生合成系を備えている細胞が含まれる。また、上記の生合成系を有していない細胞には、該生合成系に関わる酵素類のゲノム領域を外因的に含む細胞などが包含される。外因的ゲノム領域は、例えばプラスミド、ファージミド、BAC、PAC、YAC、ウイルスなどのベクターに挿入されて宿主細胞内に移入されうる。いずれにしても、上記例示の細胞の形質転換によって、該細胞は、場合により誘導的に、24位還元酵素を過剰発現する。
　細菌等の原核生物を宿主細胞として用いる場合は、本発明のDNAまたは本発明の製造法に用いられるDNAを有する組換え体DNAは、原核生物中で自立複製可能であると同時に、プロモーター、リボソーム結合配列、本発明のDNAまたは本発明の製造法に用いられるDNA、転写終結配列より構成された組換え体DNAであることが好ましい。プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。
　発現ベクターとしては、pBTrp2、pBTac1、pBTac2（いずれもベーリンガーマンハイム社）、pHelix1（ロシュ・ダイアグノスティクス社）、pKK233-2（アマシャム・ファルマシア・バイオテク社）、pSE280（インビトロジェン社）、pGEMEX-1（プロメガ社）、pQE-8（キアゲン社）、pET-3（ノバジェン社）、pKYP10（特開昭58-110600）、pKYP200［Agric.Biol.Chem.,48,669(1984)］、pLSA1［Agric.Biol.Chem.,53,277(1989)］、pGEL1［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,82,4306(1985)］、pBluescriptII SK(+)、pBluescript II KS(-)（ストラタジーン社）、pTrS30［エシェリヒア・コリJM109/pTrS30（FERM BP-5407）より調製］、pTrS32［エシェリヒア・コリJM109/pTrS32（FERM BP-5408）より調製］、pPAC31（WO98/12343）、pUC19［Gene,33,103(1985)］、pSTV28（タカラバイオ社）、pUC118（タカラバイオ社）、pPA1（特開昭63-233798）等を例示することができる。
　プロモーターとしては、エシェリヒア・コリ等の宿主細胞中で機能するものであればいかなるものでもよい。例えば、trpプロモーター（Ptrp）、lacプロモーター（Plac）、PLプロモーター、PRプロモーター、PSEプロモーター等の、大腸菌やファージ等に由来するプロモーター、SPO1プロモーター、SPO2プロモーター、penPプロモーター等をあげることができる。またPtrpを２つ直列させたプロモーター、tacプロモーター、lacT7プロモーター、let Iプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーター等も用いることができる。
　リボソーム結合配列であるシャイン－ダルガノ（Shine-Dalgarno）配列と開始コドンとの間を適当な距離（例えば６～１８塩基）に調節したプラスミドを用いることが好ましい。
　本発明のDNAまたは本発明の製造法に用いられるDNAを発現ベクターに結合させた組換え体DNAにおいては、転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子の直下に転写終結配列を配置することが好ましい。
　原核生物としては、エシェリヒア属、セラチア（Serratia）属、バチルス属、ブレビバクテリウム（Brevibacterium）属、コリネバクテリウム（Corynebacterium）属、ミクロバクテリウム（Microbacterium）属、シュードモナス（Pseudomonas）属に属する微生物等をあげることができる。
　組換え体DNAの導入方法としては、上記宿主細胞へDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、カルシウムイオンを用いる方法［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,69,2110(1972)］、プロトプラスト法（特開昭63-248394）、エレクトロポレーション法［Nucleic Acids Res.,16,6127(1988)］等をあげることができる。
　酵母菌株を宿主細胞として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、YEp13（ATCC37115）、YEp24（ATCC37051）、YCp50（ATCC37419）、pHS19、pHS15等を用いることができる。
　プロモーターとしては、酵母菌株中で機能するものであればいずれのものを用いてもよく、例えば、PHO5プロモーター、PGKプロモーター、GAPプロモーター、ADHプロモーター、gal 1プロモーター、gal 10プロモーター、ヒートショックポリペプチドプロモーター、MFα1 プロモーター、CUP 1プロモーター等のプロモーターをあげることができる。
　宿主細胞としては、サッカロマイセス（Saccharomyces）属、シゾサッカロマイセス（Schizosaccharomyces）属、クルイベロマイセス（Kluyveromyces）属、トリコスポロン（Trichosporon）属、シワニオマイミセス（Schwanniomyces）属、ピチア（Pichia）属、またはキャンディダ（Candida）属等に属する酵母菌株をあげることができ、具体的には、サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Schizosaccharomyces pombe）、クルイベロマイセス・ラクティス（Kluyveromyces lactis）、トリコスポロン・プルランス（Trichosporon pullulans）、シワニオマイセス・アルビウス（Schwanniomyces alluvius）、ピチア・パストリス（Pichia pastoris）、キャンディダ・ウティリス（Candida utilis）等をあげることができる。
　組換え体ＤＮＡの導入方法としては、酵母にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法［Methods Enzymol.,194,182(1990)］、スフェロプラスト法［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,81,4889(1984)］、酢酸リチウム法［J.Bacteriol.,153,163(1983)］等をあげることができる。
　動物細胞を宿主として用いる場合には、発現ベクターとして、例えば、pcDNAI、pcDM8（フナコシ社より市販）、pAGE107（特開平3-22979号公報）、pAS3-3（特開平2-227075号公報）、pCDM8［Nature,329,840(1987)］、pcDNAI/Amp（インビトロジェン社）、pREP4（インビトロジェン社）、pAGE103［J.Biochem,101,1307(1987)］、pAGE210、pAMo、pAMoA等を用いることができる。
　プロモーターとしては、動物細胞中で機能するものであればいずれも用いることができ、例えば、サイトメガロウイルス（CMV）のIE（immediate early）遺伝子のプロモーター、SV40の初期プロモーターあるいはメタロチオネインのプロモーター、レトロウイルスのプロモーター、ヒートショックプロモーター、ＳＲαプロモーター等をあげることができる。また、ヒトCMVのIE遺伝子のエンハンサーをプロモーターと共に用いてもよい。
　宿主細胞としては、マウス・ミエローマ細胞、ラット・ミエローマ細胞、マウス・ハイブリドーマ細胞、ヒトの細胞であるナマルバ（Namalwa）細胞またはナマルバKJM-1細胞、ヒト胎児腎臓細胞、ヒト白血病細胞、アフリカミドリザル腎臓細胞、チャイニーズ・ハムスターの細胞であるCHO細胞、HBT5637（特開昭63-299号公報）等をあげることができる。
　マウス・ミエローマ細胞としては、SP2/0、NSO等、ラット・ミエローマ細胞としてはYB2/0等、ヒト胎児腎臓細胞としてはHEK293（ATCC CRL-1573）、ヒト白血病細胞としてはBALL-1等、アフリカミドリザル腎臓細胞としてはCOS-1、COS-7等をあげることができる。
　組換え体DNAの導入方法としては、動物細胞にDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法［Cytotechnology,3,133(1990)］、リン酸カルシウム法（特開平2-227075号公報）、リポフェクション法［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,84,7413(1987)］、Virology,52,456(1973)に記載の方法等をあげることができる。
　昆虫細胞を宿主として用いる場合には、例えばBaculovirus Expression Vectors,A Laboratory Manual,W.H.Freeman and Company,New York(1992)、カレント・プロトコールズ・イン・モレキュラー・バイオロジー、Molecular Biology,A Laboratory Manual、Bio/Technology,6,47(1988)等に記載された方法によって、タンパク質を生産することができる。
　即ち、組換え遺伝子導入ベクターおよびバキュロウイルスを昆虫細胞に共導入して昆虫細胞培養上清中に組換えウイルスを得た後、さらに組換えウイルスを昆虫細胞に感染させ、タンパク質を生産させることができる。
　該方法において用いられる遺伝子導入ベクターとしては、例えば、pVL1392、pVL1393、pBlueBacIII（いずれもインビトロジェン社）等をあげることができる。
　バキュロウイルスとしては、例えば、夜盗蛾科昆虫に感染するウイルスであるアウトグラファ・カリフォルニカ・ヌクレアー・ポリヘドロシス・ウイルス（Autographa californica nuclear polyhedrosis virus）等を用いることができる。
　昆虫細胞としては、スポドプテラ・フルギペルダ（Spodoptera frugiperda）の卵巣細胞、トリコプルシア・ニ（Trichoplusia ni）の卵巣細胞、カイコ卵巣由来の培養細胞等を用いることができる。
　スポドプテラ・フルギペルダの卵巣細胞としてはSf9、Sf21（バキュロウイルス・イクスプレッション・ベクターズ ア・ラボラトリー・マニュアル）等、トリコプルシア・ニの卵巣細胞としてはHigh5、BTI-TN-5B1-4（インビトロジェン社）等、カイコ卵巣由来の培養細胞としてはボンビクス・モリ（Bombyxmori）N4等をあげることができる。
　組換えウイルスを調製するための、昆虫細胞への上記組換え遺伝子導入ベクターと上記バキュロウイルスの共導入方法としては、例えば、リン酸カルシウム法（特開平2-227075）、リポフェクション法［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,84,7413(1987)］等をあげることができる。
　植物細胞を宿主細胞として用いる場合には、ウイルスベクター、アグロバクテリウムのTiプラスミド、Riプラスミド等をベクターとして用いるアグロバクテリウム法が好適に使用できる。タバコモザイクウイルスベクター等、植物ウイルスを利用したものをあげることができる。プロモーターとしては、植物細胞中で機能するものであればいずれのものを用いてもよく、例えば、カリフラワーモザイクウイルス（CaMV）の35Sプロモーター、イネアクチン１プロモーター等をあげることができる。宿主細胞としては、タバコ、ジャガイモ、トマト、ニンジン、ダイズ、アブラナ、アルファルファ、イネ、コムギ、オオムギ等の植物細胞等をあげることができる。
　組換えベクターの導入方法としては、植物細胞にDNAを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、アグロバクテリウム（Agrobacterium）を用いる方法（特開昭59-140885号公報、特開昭60-70080号公報、WO94/00977公報）、エレクトロポレーション法（特開昭60-251887号公報）、パーティクルガン（遺伝子銃）を用いる方法（特許第2606856号公報、特許第2517813号公報）等をあげることができる。
　酵母、動物細胞、昆虫細胞または植物細胞により発現させた場合には、糖あるいは糖鎖が付加されたタンパク質を得ることができる。さらにまた、形質転換植物体（「トランスジェニック植物」とも称する。）を作出する方法は、24位還元酵素をコードするDNAを含むベクターで形質転換された植物細胞から植物体を再生させることにより得ることができる。植物細胞からの植物体の再生は公知の方法、例えばカルス培養等により行うことができる。
５．本発明のタンパク質の製造法
　本発明のタンパク質は、本発明のタンパク質をコードするDNAを宿主細胞中で発現させる一時的もしくは恒常的な４．形質転換体であげられた形質転換体を得て、製造することができる。本発明のタンパク質をコードする部分の塩基配列を、宿主の発現に最適なコドンとなるように、塩基を置換することにより、該タンパク質の生産率を向上させることができる。
　得られる形質転換体を培地に培養し、もしくは形質転換体植物の場合は栽培し、培養物中に本発明のタンパク質を生成蓄積させ、該培養物から採取することにより、該タンパク質を製造することができる。
　本発明のタンパク質を製造するための上記形質転換体の宿主としては、細菌、酵母など菌類、動物細胞、昆虫細胞、植物細胞等、目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。好ましくは、酵母など菌類、昆虫細胞または植物細胞である。
　上記形質転換体を培地に培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。
　エシェリヒア・コリ等の原核生物あるいは酵母等の真核生物を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、該生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。
　炭素源としては、該生物が資化し得るものであればよく、グルコース、フラクトース、スクロース、これらを含有する糖蜜、デンプンあるいはデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール類等を用いることができる。
　窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びに、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕および大豆粕加水分解物、各種発酵菌体、およびその消化物等を用いることができる。
　無機塩としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウム等を用いることができる。
　培養は、通常振盪培養または深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行う。培養温度は１５～４０℃がよく、培養時間は、通常５時間～７日間である。培養中pHは３．０～９．０に保持する。pHの調整は、無機または有機の酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム、アンモニア等を用いて行う。
　また、培養中必要に応じて、アンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトピラノシド等を、trpプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。
　動物細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているRPMI1640培地［J.Am.Med.Assoc.,199,519(1967)］、イーグル（Eagle）のMEM培地［Science,122,501(1952)］、DMEM培地［Virology,8,396(1959)］、199培地［Proc.Soc.Biol.Med.,73,1(1950)］またはこれら培地に牛胎児血清等を添加した培地等を用いることができる。
　培養は、通常pH６～８、２５～４０℃、５％ＣＯ２存在下等の条件下で１～７日間行う。
　また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ペニシリン、ストレプトマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　昆虫細胞を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているTNM-FH培地（ファーミンジェン社）、Sf-900 II SFM培地（ライフ・テクノロジーズ社）、ExCell400、ExCell405［いずれもJRHバイオサイエンシーズ社］、Grace’s Insect Medium［Nature,195,788(1962)］等を用いることができる。
　培養は、通常pH６～７、２５～３０℃等の条件下で１～５日間行う。
　また、培養中必要に応じて、ゲンタマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　植物細胞を宿主として得られた形質転換体は、細胞として、または植物の細胞や器官に分化させて培養することができる。該形質転換体を培養する培地としては、一般に使用されているムラシゲ・アンド・スクーグ（MS）培地、ホワイト（White）培地、またはこれら培地にオーキシン、サイトカイニン等、植物ホルモンを添加した培地等を用いることができる。
　培養は、通常pH５～９、２０～４０℃の条件下で３～６０日間行う。
　また、培養中必要に応じて、カナマイシン、ハイグロマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。
　上記のとおり、本発明のタンパク質をコードするDNAを発現ベクターに連結した組換え体DNAを保有する微生物、昆虫細胞、動物細胞、あるいは植物細胞由来の形質転換体を、通常の培養方法に従って培養し、本発明のタンパク質を生成蓄積させ、該培養物または培養物の処理物より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を製造することができる。ここで、培養物の処理物とは、培養物の濃縮物、培養物の乾燥物、培養物を遠心分離して得られる菌体、該菌体の乾燥物、該菌体の凍結乾燥物、該菌体の界面活性剤処理物、該菌体の超音波処理物、該菌体の機械的摩砕処理物、該菌体の溶媒処理物、該菌体の酵素処理物、該菌体の蛋白質分画物、該菌体の固定化物あるいは該菌体より抽出して得られる酵素標品等を含む。
　本発明のタンパク質の生産方法としては、宿主細胞内に生産させる方法、宿主細胞外に分泌させる方法、あるいは宿主細胞外膜上に生産させる方法があり、選択した方法に応じて、生産させるタンパク質の構造を変えることができる。
　本発明のタンパク質が宿主細胞内あるいは宿主細胞外膜上に生産される場合、ポールソンらの方法［J.Biol.Chem.,264,17619(1989)］、ロウらの方法［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,86,8227(1989)、Genes Develop.,4,1288(1990)］、または特開平05-336963号公報、WO94/23021号公報等に記載の方法を準用することにより、該タンパク質を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。
　すなわち、遺伝子組換えの手法を用いて、本発明のタンパク質の活性部位を含むタンパク質の手前にシグナルペプチドを付加した形で生産させることにより、該タンパク質を宿主細胞外に積極的に分泌させることができる。
　また、特開平2-227075号公報に記載されている方法に準じて、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子等を用いた遺伝子増幅系を利用して生産量を上昇させることもできる。
　さらに、遺伝子導入した動物または植物の細胞を再分化させることにより、遺伝子が導入された動物個体（トランスジェニック非ヒト動物）または植物個体（トランスジェニック植物）を造成し、これらの個体を用いて本発明のタンパク質を製造することもできる。
　本発明のタンパク質を生産する形質転換体が動物個体または植物個体の場合は、通常の方法に従って、飼育または栽培し、該タンパク質を生成蓄積させ、該動物個体または植物個体より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を製造することができる。
　動物個体を用いて本発明のタンパク質を製造する方法としては、例えば公知の方法［Am.J.Clin.Nutr.,63,639S(1996)、Am.J.Clin.Nutr.,63,627S(1996)、Bio/Technology,9,830(1991)］に準じて遺伝子を導入して造成した動物中に本発明のタンパク質を生産する方法があげられる。
　動物個体の場合は、例えば、本発明のDNAまたは本発明の製造法に用いられるDNAを導入したトランスジェニック非ヒト動物を飼育し、本発明のタンパク質を該動物中に生成、蓄積させ、該動物中より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を製造することができる。該動物中の該タンパク質を生成、蓄積させる場所としては、例えば、該動物のミルク（特開昭63-309192号公報）、卵等をあげることができる。この際に用いられるプロモーターとしては、動物で機能するものであればいずれも用いることができるが、例えば、乳腺細胞特異的なプロモーターであるαカゼインプロモーター、βカゼインプロモーター、βラクトグロブリンプロモーター、ホエー酸性プロテインプロモーター等が好適に用いられる。
　植物個体を用いて本発明のタンパク質を製造する方法としては、例えば本発明のタンパク質をコードするDNAを導入したトランスジェニック植物を公知の方法［組織培養，20(1994)、組織培養，21(1995)、Trends Biotechnol.,15,45(1997)］に準じて栽培し、該タンパク質を該植物中に生成、蓄積させ、該植物中より該タンパク質を採取することにより、該タンパク質を生産する方法があげられる。
　本発明のタンパク質を生産する形質転換体を用いて製造された本発明のタンパク質を単離・精製する方法としては、通常の酵素の単離、精製法を用いることができる。
　例えば、本発明のタンパク質が、細胞内に溶解状態で生産された場合には、培養終了後、細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液にけん濁後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー、ダイノミル等により細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。
　該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、通常の酵素の単離精製法、即ち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（DEAE）－セファロース、DIAION HPA-75（三菱化成社製）等レジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、S-Sepharose FF（ファルマシア社）等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の手法を単独あるいは組み合わせて用い、精製標品を得ることができる。
　また、該タンパク質が細胞内に不溶体を形成して生産された場合は、同様に細胞を回収後破砕し、遠心分離を行うことにより得られた沈殿画分より、通常の方法により該タンパク質を回収後、該タンパク質の不溶体をタンパク質変性剤で可溶化する。
　該可溶化液を、タンパク質変性剤を含まないあるいはタンパク質変性剤の濃度がタンパク質が変性しない程度に希薄な溶液に希釈、あるいは透析し、該タンパク質を正常な立体構造に構成させた後、上記と同様の単離精製法により精製標品を得ることができる。
　本発明のタンパク質またはその糖修飾体等の誘導体が細胞外に分泌された場合には、培養上清に該タンパク質またはその糖付加体等の誘導体を回収することができる。
　即ち、該培養物を上記と同様の遠心分離等の手法により処理することにより可溶性画分を取得し、該可溶性画分から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。
　また、本発明のタンパク質を他のタンパク質との融合タンパク質として生産し、融合したタンパク質に親和性をもつ物質を用いたアフィニティークロマトグラフィーを利用して精製することもできる。例えば、ロウらの方法［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,86,8227(1989)、Genes Develop.,4,1288(1990)］、特開平5-336963号公報、WO94/23021号公報に記載の方法に準じて、本発明のタンパク質をプロテインＡとの融合タンパク質として生産し、イムノグロブリンＧを用いるアフィニティークロマトグラフィーにより精製することができる。
　また、本発明のタンパク質をFlagペプチドとの融合タンパク質として生産し、抗Flag抗体を用いるアフィニティークロマトグラフィーにより精製することができる［Proc.Natl.Acad.Sci.,USA,86,8227(1989)、Genes Develop.,4,1288(1990)］。更に、該タンパク質自身に対する抗体を用いたアフィニティークロマトグラフィーで精製することもできる。
　上記で取得されたタンパク質のアミノ酸配列情報を基に、Fmoc法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）、tBoc法（ｔ－ブチルオキシカルボニル法）等の化学合成法により、本発明のタンパク質を製造することができる。また、Advanced ChemTech社、パーキン・エルマー社、Pharmacia社、Protein Technology Instrument社、Synthecell-Vega社、PerSeptive社、島津製作所等のペプチド合成機を利用して化学合成することもできる。
６．24位が還元されたステロイド化合物の製造方法
　本発明は、無細胞系で、あるいは細胞又は植物を用いて、外因性の24位還元酵素活性を有するタンパク質存在下または24位還元酵素をコードするDNAの発現下で、デスモステロール、７－デヒドロデスモステロール、ラノステロール、シクロアルテノールなどのステロイド骨格の24位に２重結合をもった化合物の24位を還元する方法を提供する。本発明の方法により、24位の二重結合を還元する上記化合物の中でもコレステロールの材料となるデスモステロールおよびビタミンD3の材料となる７－デヒドロデスモステロールのステロイド骨格の24位を還元する方法が重要である。
　本明細書で使用される「外因性」とは、細胞または植物が本来もつ酵素またはその遺伝子自体ではなく、該細胞または植物に、あるいは上記のステロイド化合物原料の反応系に、人為的に該酵素またはそれをコードするDNAを導入することを意味する。
　本発明はまた、上記の変換方法によってステロイド骨格の24位に２重結合をもった化合物の24位を還元されたステロイド化合物を生成し、該化合物を回収することを含む、24位を還元されたステロイド化合物の製造方法を提供する。
　本発明では、24位還元酵素は、粗製、半精製もしくは精製された、あるいは多糖類、多孔性ポリマー、多孔性無機物（例えばガラス、鉱物、セラミックス等）などの支持体などに共有結合もしくは非共有結合によって固定化された、酵素として反応系で使用されてもよいし、該酵素を産生する細胞または植物体自体が反応系で使用されてもよい。
　本発明で使用可能な24位還元酵素は膜結合型でNADPHを補酵素とする還元酵素の一種であり、上述の製造法で得ることができる。
　24位を還元されたステロイド化合物の製造は、24位還元酵素をコードするDNAが導入された形質転換体を用いて行うことができ、以下の(a)～(c)の方法が挙げられる。
(a)　24位に二重結合を持つステロイドを細胞内に生成する形質転換体を培養して、菌体内で24位還元活性を発現させて還元体を製造する方法。該方法においては、形質転換体であって、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を細胞内に生成する形質転換体を培養し、前記形質転換体中において、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の24位の２重結合を還元させ、形質転換体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成させ、該培養物から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を回収すればよい。
(b)　24位に二重結合を持つステロイドを培養の過程で形質転換体に取り込ませて、菌体内で24位還元活性を発現させて還元体を製造する方法。該方法においては、形質転換体を24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の存在下で培養し、該形質転換体中に24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を取り込ませ、前記形質転換体中において、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の24位の２重結合を還元させ、形質転換体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成させ、該培養物から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を回収すればよい。
(c)　培養物を酵素源として、24位に二重結合を持つステロイドを酵素源に接触させて還元体を製造する方法。該方法においては、質転換体の培養物または該培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、および24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を採取すればよい。
　DNA組換え技術によって、高い酵素活性を持ったタンパク質の発現が可能であるため、４．形質転換体であげられた形質転換体(例えば、酵母細胞、菌類細胞、昆虫細胞、植物細胞）の培養液に上記24位還元酵素の基質、例えばデスモステロール、７－デヒドロデスモステロール、ラノステロール、シクロアルテノール、またはそれらの置換誘導体、を添加することにより、24位を還元されたステロイド化合物を生産することができる。例えば、形質転換微生物の培養液にデスモステロール等のステロイド類を基質として投与することにより、24位を還元されたされたコレステロールを効率的に大量に生産することが可能である。酵母細胞、菌類細胞、植物細胞などは24位還元酵素の基質は内在性のものも利用できる。また、内在性の基質の含量をあらかじめ増加させるようにした細胞も利用できる。
　さらに、７－デヒドロデスモステロールの24位を還元して生成した７－デヒドロコレステロールに紫外線等の光を当てることによりビタミンD3（コレカルシフェノール）が生成する。プロビタミンD3である７－デヒドロコレステロールに紫外線等の光を当てるとプレビタミンD3（(6z)-タカルシオール）が生成し、その後自然にビタミンD3へ異性化する。この際、本発明の24位還元酵素を含む形質転換体に７－デヒドロコレステロールを産生蓄積させ、該形質転換体に紫外線を当ててもよい。
　本発明は、本発明の24位還元酵素を用いて、コレステロールを製造する方法及びビタミンD3を製造する方法をも包含する。
（１）酵素的製造法　
　無細胞系では、上記形質転換体の培養液から24位還元酵素を含有する無細胞抽出液を調製し、その一部を、デスモステロールまたはそれらの置換誘導体などのステロイド化合物を含有するバッファーに加えて変換反応を行うことによって、24位を還元されたステロイド化合物を製造することができる。
　収穫した細胞の懸濁液、あるいは適量のバッファー中の形質転換植物を、ホモジナイザー、超音波破砕機あるいはフレンチプレス等により破砕後、遠心分離して無細胞抽出液を得る。バッファーには、ポリペプチドの失活を防ぐため、抗酸化剤、酵素の安定化剤、ポリフェノール吸着剤、金属配位子などを添加することができる。さらに比活性を高めるにはポリペプチドを精製することが有効であり、超遠心機による遠心分離法、硫安等による塩析方、ゲル濾過法、イオン交換クロマトグラフィー法、アフィニティクロマトグラフィー法、電気泳動法などの手法を単独で、あるいは組み合わせて用いることができる。得られたポリペプチドを含むバッファーに、基質となる上記のステロイドおよび補酵素を添加してインキュベートする。補酵素としてはNADPHが利用でき、グルコース-6-リン酸とグルコース-6-リン酸デヒドロゲナーゼを用いたNADPH再構成系も併用できる。
　上記製造法において、本発明のタンパク質は、基質として用いるデスモステロール１ｍｇあたり0.01～100mg、好ましくは0.1mg～10mg添加する。
　上記製造法において、基質として用いるデスモステロールは、0.1～500g/L、好ましくは0.2～200g/Lの濃度になるように反応水性媒体に初発または反応途中に添加する。上記製造法で用いられる水性媒体としては、24位を還元されたステロイド化合物の生成反応を阻害しない限り、いかなる成分、組成の水性媒体であってもよく、例えば、水、りん酸塩、炭酸塩、酢酸塩、ほう酸塩、クエン酸塩、トリスなどの緩衝液などをあげることができる。また、メタノール、エタノールなどのアルコール類、酢酸エチルなどのエステル類、アセトンなどのケトン類、アセトアミドなどのアミド類を含有していてもよい。
　24位を還元されたステロイド化合物の生成反応は水性媒体中、pH5～11、好ましくはpH6～10、20～50℃、好ましくは25～45℃の条件で2～150時間、好ましくは6～120時間行う。
（２）形質転換体または微生物の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源として用いる製造法
　形質転換体または微生物の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源として用いる24位を還元されたステロイド化合物の製造法としては、本発明のタンパク質を生産する能力を有する形質転換体に原料となる24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を取り込ませ、形質転換体内で酵素反応を行わせ、形質転換体中に24位を還元されたステロイド化合物を生成、蓄積させ、該形質転換体から24位を還元されたステロイド化合物を抽出する製造法を挙げることができる。原料となる24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の形質転換体への取り込みは、培養液中に24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を添加することにより、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の存在下で形質転換体を培養することにより行うことができる。さらに、本発明のタンパク質を生産する能力を有する形質転換体の培養物もしくは培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、およびステロイドを水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に24位を還元されたステロイド化合物を生成、蓄積させ、該媒体から24位を還元されたステロイド化合物を採取する製造法をあげることができる。
　上記製造法に用いられる形質転換体としては、上記４．や５．の方法により製造することができる、本発明のタンパク質を生産する形質転換体をあげることができる。さらに宿主が産生するNADPH以外のNADPHを外部から加えることも可能である。
　培養物の処理物としては、培養物の濃縮物、培養物の乾燥物、培養物を遠心分離して得られる菌体、該菌体の乾燥物、該菌体の凍結乾燥物、該菌体の界面活性剤処理物、該菌体の超音波処理物、該菌体の機械的摩砕処理物、該菌体の溶媒処理物、該菌体の酵素処理物、該菌体のタンパク質分画物、該菌体の固定化物あるいは該菌体より抽出して得られる酵素標品などをあげることができる。
　上記製造法において、基質として用いるステロイド類の種類、使用濃度および添加時期、並びに生産される24位を還元されたステロイド化合物は、上記（１）の酵素的製造法のものと同様である。
　また、微生物の培養物または該培養物の処理物を酵素源とした製造法において用いられる水性媒体としては、上記（１）の酵素的製造法に用いられる水性媒体に加え、酵素源として用いた形質転換体または微生物の培養液も水性媒体として用いることができる。
　また必要に応じて、水性媒体中に界面活性剤あるいは有機溶媒を添加してもよい。界面活性剤としては、ポリオキシエチレン・オクタデシルアミン（例えばナイミーンS-215、日本油脂社）などの非イオン界面活性剤、セチルトリメチルアンモニウム・ブロマイドやアルキルジメチル・ベンジルアンモニウムクロライド（例えばカチオンF2-40E、日本油脂社）などのカチオン系界面活性剤、ラウロイル・ザルコシネートなどのアニオン系界面活性剤、アルキルジメチルアミン（例えば三級アミンFB、日本油脂社）などの三級アミン類など、ジペプチドの生成を促進するものであればいずれでもよく、１種または数種を混合して使用することもできる。界面活性剤は、界面活性剤は、通常0.1～50 g/lの濃度で用いられる。有機溶剤としては、キシレン、トルエン、脂肪族アルコール、アセトン、酢酸エチルなどが挙げられ、通常0.1～50 ml/lの濃度で用いられる。
　培養物または該培養物の処理物を酵素源として用いる場合、該酵素源の量は、当該酵素源の比活性等により異なるが、例えば、基質として用いるステロイド化合物1mgあたり湿菌体重量として5～1000mg、好ましくは10～400mg添加する。
　24位を還元されたステロイド化合物の生成反応は水性媒体中、pH5～11、好ましくはpH6～10、20～50℃、好ましくは25～45℃の条件で2～150時間、好ましくは6～120時間行う。
　上記（１）または（２）の製造法において、水性媒体中に生成、蓄積した24位を還元されたステロイド化合物の採取は、活性炭やイオン交換樹脂などを用いる通常の方法あるいは、有機溶媒による抽出、結晶化、薄層クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー等により行うことができる。
７.24位還元酵素遺伝子の変異、多型または遺伝子発現変異の選抜
　本発明による24位を還元されたステロイド化合物の製造方法においては、植物において24位還元酵素遺伝子の突然変異、一塩基多型（SNP)等の多型、または遺伝子発現変異の存在を検出し、そのような変異や多型をもつ該遺伝子のなかから、24位還元酵素活性が高く24位を還元されたステロイド化合物の生産性を高める変異型遺伝子を選抜することができる。そのような変異は、24位還元酵素遺伝子を有する、かつ、24位を還元されたステロイド化合物生産能をもつ植物において、放射線、UV照射、変異原等の化学処理などの人工的突然変異処理、あるいは自然突然変異、によって誘導することができる。
　上記の変異型24位還元酵素遺伝子の選抜のための方法には、ゲノムDNAやmRNAを変異個体、様々な品種や育成個体の植物から単離し、mRNAの場合には逆転写しcDNAを合成したのち、DNA増幅技術の使用によりゲノムDNAまたはcDNAから２４位還元酵素遺伝子を含有する遺伝子断片を増幅する工程と、このDNA中に突然変異の存在を決定する工程が含まれる。DNAやRNAを抽出する方法には市販のキット（例えばDNeasyやRNeasy(キアゲン社)など）が使用できる。cDNAを合成する方法も市販キット（例えばスーパースクリプト ファーストストランド システム（インビトロジェン社）など）を使うことができる。
　DNA増幅技術の使用により遺伝子断片を増幅する方法としては、いわゆるPCR法やLAMP法などの技術を用いることができる。これらは継続的なポリメラーゼ反応により特異的なDNA配列の増幅（つまり、コピー数を増やすこと）を達成するためにポリメラーゼを使用することを基にした、一群の技術である。この反応は、クローニングの代わりに使用することができるが、必要であるのは、核酸配列に関する情報のみである。DNAの増幅を行うために、増幅しようとするDNAの配列に相補的なプライマーを設計する。次にそのプライマーを自動DNA合成により作製する。DNA増幅方法は、当技術分野で周知であり、本明細書中で与えられる教示及び指示に基づき、当業者であれば容易に行うことができる。いくつかのPCR法（ならびに関連技術）は、例えば、米国特許第4,683,195号、同第4,683,202号、同第4,800,159号、同第4,965,188号、およびInnisら編、PCR Protocols:A guide to Method and Applicationsで述べられている。
　上記DNA中に突然変異や多型の存在を決定する工程では、塩基配列の決定（アプライドバイオシステムズ社）や、ミスマッチペアの片側を切断する酵素を用いて突然変異体を検出するTILLING法（Till et al., 2003, Genome Res 13:524-530）など変異遺伝子と正常遺伝子の相同性を利用し検出する方法を用いればよい。これらは該技術から得られた配列データを遺伝子部分に関する24位還元酵素をコードする遺伝子の塩基配列、例えば配列番号10～16に示されるような塩基配列と比較することによって行うことができる。
　mRNA量の違いを決定する工程では、上記cDNAに対し、配列既知の24位還元酵素をコードする遺伝子の塩基配列に基づいて作製したプライマーを利用してリアルタイムPCR法（ロシュ・ダイアグノスティックス社のライトサイクラーなど）等の定量的PCRを採用すればよい。その後、例えば、ジャガイモ品種「サッシー」から得られたcDNAの量と比較することでmRNA量の違いを決定することができる。
　特に好ましい実施形態において、上述したような24位還元酵素遺伝子変異の存在の決定方法を、ジャガイモから得られた材料に適用する。
　上記の突然変異および／または多型を決定する方法により、24位還元酵素をコードする遺伝子の突然変異や多型を塩基レベルで同定することができ、さらに24位還元酵素をコードする遺伝子に突然変異および/または多型を有する植物体を選抜し、変異型24位還元酵素をコードする遺伝子を得ることができる。
　また、突然変異や多型の決定やmRNA量の違いの決定により、24位還元酵素をコードする遺伝子の発現能または24位還元酵素の活性が変化している植物を選抜することが可能になる。ここで、24位還元酵素をコードする遺伝子の発現能または24位還元酵素の活性の変化とは、人為的突然変異等の突然変異による遺伝子の発現能または24位還元酵素の活性の改変および多型による遺伝子の発現能または24位還元酵素の活性が異なっていることを意味する。
　ある植物の24位還元酵素活性の突然変異による改変は、その植物の種に含まれる既存品種に対する改変をいい、既存品種には野生型も含まれる。既存の品種は、24位還元酵素をコードする遺伝子が改変された植物を得るためのすべての品種をいい、交配、遺伝子操作等の人為的操作により作出された品種を含む。また、活性の改変において、すべての既存品種に対して、活性が変化している必要はなく、特定の既存品種に対して改変されていれば、「24位還元酵素の活性が改変された植物」に含まれる。「24位還元酵素の活性が改変された植物」は、人為的操作を受けず自然状態で突然変異により活性が改変された植物も含み、上記の選抜方法により、自然状態で活性が変化した植物を選抜することができ、新たな品種として確立することもできる。また、ある既存品種に変異誘発処理を行い、24位還元酵素の活性が改変された植物を作出した場合、比較対象は変異誘発処理を行った既存品種でもよいし、それ以外の他の既存品種でもよい。また、自然状態で選抜された活性が変化した植物又は変異誘発処理により活性が変化した植物を交配することにより、24位還元酵素をコードする遺伝子の変異が固定された新品種として得ることもできる。
　例えば、植物がジャガイモの場合、既存品種として、「男爵薯」、「メークイン」、「さやか」、「シンシア」等がある。ここで、24位還元酵素をコードする遺伝子の発現能または24位還元酵素の活性が既存品種に対して改変された植物とは、既存品種に対して24位還元酵素をコードする遺伝子の発現能が増強あるいは減少した植物を含み、さらに、24位還元酵素の活性が既存品種に対して上昇あるいは低下した植物を含む。本発明は、このような24位還元酵素をコードする遺伝子の発現能または24位還元酵素の活性が既存品種に対して改変された植物体も包含する。
　このようにして得られた24位還元酵素をコードする遺伝子に突然変異や多型を有する植物は、本発明の方法によって、24位を還元されたステロイド化合物の製造のために使用することができる。
　以下、本発明を、実施例を示してより詳しく説明するが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。
実施例１
ジャガイモの萌芽cDNAシークエンスから24位還元酵素遺伝子の抽出
　ジャガイモの萌芽は極めて大量のグリコアルカロイドを蓄積することが知られている。グリコアルカロイドの生合成経路は不明な点が多いが、コレステロールを初発物質としていると考えられている。このことからジャガイモの萌芽は植物でコレステロールを合成できる器官であり、コレステロール生合成の遺伝子源として優れていると考えた。
　収穫後３ヶ月以上貯蔵し休眠の開けたジャガイモを２０℃暗所におき、約２週間、萌芽をさせた。この萌芽を液体窒素にて破砕し、RNeasy（キアゲン社）で行い全RNAを抽出した。２μgのRNAからT7プロモーター配列を付加したプライマーを用いて逆転写反応でcDNAを合成した。DNA polymeraseとT7 RNA polymeraseを用いて全体をRNAとして増幅後、再度、逆転写反応でcDNAを合成した。これにGS FLX解析用のアダプターを用いてcDNA２本鎖を合成した。物理的に数百bpに切断後、別のGS FLX解析用のアダプターを連結し1本鎖DNAを回収した。これを鋳型としてGenome Sequencer FLX System（タカラバイオ社委託）にて約15万の発現している遺伝子配列を解析した。その結果、シロイヌナズナのコレステロールの24メチレンを還元する酵素DWF1の遺伝子と相同性の高い遺伝子断片(StDWF1、実施例２で取得した全長配列に対しアミノ酸配列の同一性が564 アミノ酸に渡って78.0% )が54個、それよりも相同性の低い遺伝子断片(StDWF1ホモローグ＝StDWF1H、実施例２で取得した全長配列に対しアミノ酸配列の同一性が556 アミノ酸に渡って75.5% )が80個、存在することを見出した。
実施例２
StDWF1H遺伝子の同定
　上記遺伝子断片を使って、StDWF1Hについては、ナス科ゲノムネットワーク(http://solgenomics.net/index.pl)の配列データSGN-U268686を基に全長配列を取得するためのプライマーU931(caccATGTCGGATGCTAAGGCCC（配列番号７）: caccはベクターにクローニングするための付加配列)とU932(TCAATTCGCAGGTTCATCAG)（配列番号８）を合成した。StDWF1についてはDFCI Potato Gene Index (http://compbio.dfci.harvard.edu/tgi/plant.html) の配列データTC214162を基に全長配列を取得するためのプライマーU957(caccATGACAGATGTTCAGGCTCC（配列番号９）: caccはベクターにクローニングするための付加配列)とU958(TCAATCTTCAGGCTCATCAACT)（配列番号１０）を合成した。実施例１の全RNAから全cDNAの合成をスーパースクリプト ファーストストランド システム（インビトロジェン社）を用いて行った。このcDNAを鋳型に用い、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社　PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR（商標）/D-TOPOエントリーベクター（インビトロジェン社）へクローニングした。得られた8個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定した。これにより得られた配列は、配列番号２と配列番号６であり、それから推定されるポリペプチド配列は配列番号１と配列番号５である。これらベクターをpTOPO-PSStDWF1HとpTOPO-PSStDWF1とした。図１はStDWF1HとStDWF1の相同性解析を解析した結果のアラインメントを示す図であり、アミノ酸配列の同一性が562アミノ酸に渡って80.0％と極めて高かった。24位還元酵素として既知であるヒトの遺伝子(DHCR24, Am J Hum Genet. 2001, 69, 685-94)との相同性は、StDWF1Hはアミノ酸配列の同一性が533アミノ酸に渡って40.3％、StDWF1は533アミノ酸に渡って39.0％であった。なおDHCR24とDWF1は522アミノ酸に渡って39.8％であった。いずれも40％程度を示す弱い相同性であり、この時点の遺伝子相同性の結果だけで機能を推定することは極めて困難であった。
　さらに、それぞれに相当するトマトの全長遺伝子配列をナス科ゲノムネットワーク(http://solgenomics.net/index.pl)の配列データからSGN-U578468であることを突き止め取得した。配列番号４であり、それから推定されるポリペプチド配列は配列番号３である。
　これら配列と、特表2007-535960号公報「コレステロール産生酵母株およびその利用」でヒト由来24位還元酵素遺伝子と相同的であると記載されているワタ（Genbank accession AAM47602.1）、イネ（同AAP53615）、エンドウLKB遺伝子（同AAK15493）さらにシロイヌナズナの24メチレンを還元する酵素(DWF1)のアミノ酸配列を比較しCLUSTALX 2.0（Larkinら(2007) Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatics, 23:2947-2948）のブーストラップ法を用いて分子系統樹を作成した（図２）。その結果、StDWF1HとSlDWF1Hは、コレステロールの24メチレンを還元する酵素(DWF1)とは、異なるクラスターに分類され、かつヒトの24位還元酵素遺伝子DHCR24とも進化の面からも類縁関係は遠いことがわかった。
実施例３
ジャガイモStDWF5遺伝子の単離と酵母発現ベクターpTochigi101-StDWF5の構築
　ナス科ゲノムネットワーク(http://solgenomics.net/index.pl)の配列データからシロイヌナズナDWF5遺伝子（ChoeらPlant J. (2000）21:431-43)と相同性の高い配列SGN-U269317を見出した。SGN-U269317配列の予想されるポリペプチド（479アミノ酸）のN末端とC末端に相当する箇所のプライマーU929(caccAATGGCGGAGTCTCAGTTG（配列番号１１）: caccはベクターにクローニングするための付加配列)とU930(CTAATAAATTCCTGGTATGACCC)（配列番号１２）を合成した。実施例２のcDNAを鋳型として、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社　PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR（商標）/D-TOPOエントリーベクター（インビトロジェン社）へクローニングした。得られた8個の独立クローンについてポリヌクレオチド配列を決定しpTOPO-PSStDWF5を得た。pTochigi101（pYO323（ナショナルバイオリソースプロジェクトNBRP_ID = BYP563）：HIS3の酵母選択マーカーを持った多コピー型プラスミド）のマルチクローニング部位にXhoI部位とSacI部位の間にTDH3プロモーター、NotI部位とAscI部位を含む合成リンカー、PGK1ターミネーターを含む、図３）のNotI部位とAscI部位の間を、pTOPO-PSStDWF5の制限酵素NotIとAscIで切り出されるStDWF5遺伝子と入れ替えることで、pTochigi101-StDWF5を作成した。このベクターを導入した酵母は恒常的にStDWF5遺伝子産物を発現し、ステロイドの７位の還元酵素反応をすることが期待できる。
実施例４
ジャガイモStDWF1H遺伝子の酵母発現ベクターの構築
　実施例２で作製した、pTOPO-PSStDWF1Hプラスミド（エントリークローン）とpYES-DEST52（インビトロジェン社）とを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（インビトロジェン社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）によって、StDWF1H遺伝子の発現ベクターpYES-DEST52-StDWF1Hを得た。
実施例５
erg6酵母（pTochigi101-StDWF5、pYES-DEST52-StDWF1H）における生成物の確認
　実験室酵母erg6はdelta(24)-sterol C-methyltransferaseを欠損しているため７－デヒドロデスモステロールが蓄積していることが知られている。(Gaberら　(1989) Mol Cell Biol 9(8):3447-56)。そこでYeast Knock Out Strain Collection（オープンバイオシステムズ社）のBY4742 erg6にpTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-StDWF1Hを電気穿孔法（「酵母分子遺伝学実験法」大嶋泰治編著、学会出版センター発行, 1996）を用いて形質転換を行い、独立のクローンを２つ（Ｔ３３、Ｔ３４）得た。
　BY4742 erg6の2コロニー（Ｎ１とＮ２）と、Ｔ３３酵母、Ｔ３４酵母を5mlのSC（0.67% Yeast Nitrogen base without amino acids、2% グルコース、100 mg/lロイシン、40 mg/lリジン、20 mg/lヒスチジン、20 mg/lウラシル）-Ura/His培地30℃、135rpm、１日間培養した。培養した酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し、ガラクトース（20mg/ml）を添加した10mlのSC-Ura/His-グルコース培地に懸濁し、30℃、135rpm、2日間培養した。培養酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し5mlの酢酸エチルを加え、20分間超音波処理した後、3分間遠心し酢酸エチル抽出物を回収した。この操作を3回繰り返した。酢酸エチル抽出物は溶媒を乾燥除去した後、Ｎ－メチル－Ｎ－トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを加え、80℃で30分間加熱し、トリメチルシリルエーテル体に誘導体化しGC-MS分析の試料とした。変換物の同定は標品をGCの保持時間ならびにMSスペクトルを比較することで決定した。
　BY4742 erg6の酵母（Ｎ１とＮ２）は主に７－デヒドロデスモステロールを蓄積していた。一方、pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-StDWF1Hの2つのベクターを保持する酵母Ｔ３３とＴ３４の抽出物（図４、Ｔ３３、Ｔ３４と示したGCチャート）からは、新たなピークが２つ検出され、標品との移動度、マススペクトルによって、デスモステロール（点線矢印）とコレステロールのピーク（図４の実線矢印）であることが同定された。これらはこのことからStDWF1Hは24位還元酵素をコードする遺伝子であることが明らかになった。また、定量を行ったところ、10 mlの培養物あたり７μgのコレステロールを生産していることがあきらかになった。しかし、本数値については、酵母での発現形態や培養条件を特に最適化しておらず、あくまで参考の数値として捉えるべきものである。
実施例６
ジャガイモStDWF1遺伝子、ヒトDHCR24遺伝子、エンドウLKBの酵母発現ベクターの構築
　ジャガイモStDWF1遺伝子が24位還元酵素活性を持っているかどうかを確認するため、酵母発現ベクターを構築した。実施例２で作製した、pTOPO-PSStDWF1プラスミド（エントリークローン）とpYES-DEST52とを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（インビトロジェン社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）によって、StDWF1遺伝子の発現ベクターpYES-DEST52-StDWF1を得た。
　図２で示された系統樹解析ならびに、特表2007-535960号公報「コレステロール産生酵母株およびその利用」で24位還元酵素活性にて示されたワタ、イネ、エンドウの３つの植物遺伝子のうち、最もDHCR24と相同性の高かったエンドウのLKBについて24位還元酵素活性を持っているかどうかを確認するため、遺伝子を取得し酵母発現ベクターを構築した。食料品店で購入した生食用のエンドウの苗である豆苗を液体窒素にて破砕した。RNAの抽出はRNeasyで行い、全cDNAの合成はスーパースクリプト ファーストストランド システムを用いて行った。プライマーとしてはU959(caccATGTCTGATCTTGAGGCTCCG（配列番号１３）: caccはベクターにクローニングするための付加配列)とU960(TCAGTCTGGTGGTTGATCAACTTC)（配列番号１４）を用いた。このcDNAを鋳型に用い、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社　PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR（商標）/D-TOPOエントリーベクター（インビトロジェン社）へクローニングした。塩基配列解析し既報の配列と同じであることを確認したpTOPO-LKBプラスミド（エントリークローン）を得た。これとpYES-DEST52とを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（インビトロジェン社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）によって、LKB遺伝子の発現ベクターpYES-DEST52-LKBを得た。
　StDWF1Hと既報のヒトDHCR24の遺伝子産物を比較するためDHCR24遺伝子を取得し酵母発現ベクターを構築した。スーパースクリプト ファーストストランド システムに添付されていたヒトHela細胞の全RNAを用いて全cDNAの合成をスーパースクリプト ファーストストランド システムを用いて行った。プライマーとしてはU945(caccATGGAGCCCGCCGTGT（配列番号１５）: caccはベクターにクローニングするための付加配列)とU946(TCAGTGCCTGGCGGCCTTGC)（配列番号１６）を用いた。このcDNAを鋳型に用い、アニール温度55℃でPCR（30サイクル、タカラバイオ社　PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを使用）によって遺伝子を増幅した。これをpENTR（商標）/D-TOPOエントリーベクター（インビトロジェン社）へクローニングした。塩基配列解析し既報の配列と同じであることを確認したpTOPO-PSDHCR24プラスミド（エントリークローン）を得た。これとpYES-DEST52とを混合し、Gateway LR Clonase II Enzyme Mix（インビトロジェン社）を用いて塩基配列特異的な組み換え反応（attL x attR反応）によって、DHCR24遺伝子の発現ベクターpYES-DEST52-DHCR24を得た。
　BY4742 erg6にpTochigi101-StDWF5のみを導入したもの、pTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-StDWF1、pTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-LKB、 pTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-DHCR24を、電気穿孔法を用いて形質転換を行い独立のクローンを各２つずつ（Ｔ３１、Ｔ３２）（Ｔ３５、Ｔ３６）（Ｔ３７、Ｔ３８）（Ｔ３９、Ｔ４０）得た（図５）。
実施例７
erg6酵母でStDWF5とDWF1相同遺伝子を発現した酵母における生成物の確認
　Ｔ３１、Ｔ３２、Ｔ３３、Ｔ３４、Ｔ３５、Ｔ３６、Ｔ３７、Ｔ３８、Ｔ３９、Ｔ４０各酵母を5mlのSC-His培地、もしくはSC-Ura/His培地30℃、135rpm、１日間培養した。培養した酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し、ガラクトース（20mg/ml）を添加した10mlのSC-Ura/His-グルコース培地に懸濁し、30℃、135rpm、2日間培養した。培養酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し5mlの酢酸エチルを加え、20分間超音波処理した後、3分間遠心し酢酸エチル抽出物を回収した。この操作を3回繰り返した。酢酸エチル抽出物は溶媒を乾燥除去した後、Ｎ－メチル－Ｎ－トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを加え、80℃で30分間加熱し、トリメチルシリルエーテル体に誘導体化しGC-MS分析の試料とした。変換物の同定は標品をGCの保持時間ならびにMSスペクトルを比較することで決定した。
　pTochigi101-StDWF5のみを保持する酵母Ｔ３１とＴ３２は、デスモステロールを生産していた（図６）。pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-StDWF1Hの2つのベクターを保持する酵母Ｔ３３とＴ３４の抽出物は図３と同様の結果を示した。pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-StDWF1の2つのベクターを保持する酵母Ｔ３５とＴ３６の抽出物にはデスモステロールは存在するが、コレステロールは確認できなかった。pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-LKBの2つのベクターを保持する酵母Ｔ３７とＴ３８の抽出物にはデスモステロールは存在するが、コレステロールは確認できなかった。このことはStDWF1とLKB遺伝子産物は24位還元酵素活性を持たないことが明らかになった。pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-DHCR24の2つのベクターを保持する酵母Ｔ３９とＴ４０の抽出物にはコレステロールが確認できたが、その生成量はpTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-StDWF1Hの2つのベクターを保持する酵母Ｔ３３とＴ３４よりも少なく、StDWF1H遺伝子導入の効果は、既報のDHCR24より優れていることが明らかとなった。
比較例１
erg4 erg5酵母でStDWF5とDWF1相同遺伝子を発現した酵母における生成物の確認
　実験室酵母erg4は24メチレンの還元酵素を欠損しているため24メチレンコレステロールが蓄積していることが知られている。(Zweytickら　(2000) FEBS Lett 470(1):83-7)。ERG5遺伝子は酵母のC-22 ステロイドの不飽和化酵素をコードしていることが知られている（Skaggs ら　(1996) Gene 169(1):105-9）。この酵素が存在すると、最終生産物に影響を及ぼす可能性があるが考えられた。そこでYeast Knock Out Strain Collection（オープンバイオシステムズ社）のBY4742 erg4に以下のPhleomycin耐性カセット（を用いた形質転換を行い、BY4742 erg4 erg5二重変異酵母を作成した。
　これをもとに通常のLi法（「酵母分子遺伝学実験法」大嶋泰治編著、学会出版センター発行, 1996）を用いて形質転換を行い、pTochigi101-StDWF5のみを導入したもの、BY4742 erg4 erg5にpTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-StDWF1H、pTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-StDWF1、pTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-LKB、 pTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-DHCR24を、電気穿孔法を用いて形質転換を行い独立のクローンを各２つずつ（Ｔ２１、Ｔ２２）（Ｔ２３、Ｔ２４）（Ｔ２５、Ｔ２６）（Ｔ２７、Ｔ２８）（Ｔ２９、Ｔ３０）を得た（図５）。
　Ｔ２１、Ｔ２２、Ｔ２３、Ｔ２４、Ｔ２５、Ｔ２６、Ｔ２７、Ｔ２８、Ｔ２９、Ｔ３０各酵母を5mlのSC-His培地、もしくはSC-Ura/His培地30℃、135rpm、１日間培養した。培養した酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し、ガラクトース（20mg/ml）を添加した10mlのSC-Ura/His-グルコース培地に懸濁し、30℃、135rpm、2日間培養した。培養酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し5mlの酢酸エチルを加え、20分間超音波処理した後、3分間遠心し酢酸エチル抽出物を回収した。この操作を3回繰り返した。酢酸エチル抽出物は溶媒を乾燥除去した後、Ｎ－メチル－Ｎ－トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを加え、80℃で30分間加熱し、トリメチルシリルエーテル体に誘導体化しGC-MS分析の試料とした。変換物の同定は標品をGCの保持時間ならびにMSスペクトルを比較することで決定した。
　BY4742 erg4 erg5にpTochigi101-StDWF5のみを導入した酵母（Ｔ２１とＴ２２）は24メチレンコレステロールを蓄積していた（図７）。pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-StDWF1Hの2つのベクターを保持する酵母Ｔ２３とＴ２４の抽出物とpTochigi101-StDWF5とpYES-DEST52-DHCR24の2つのベクターを保持する酵母Ｔ２９とＴ３０は対照のＴ２１とＴ２２と同じで24メチレンの還元酵素活性を持たないことが明らかになった。pTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-StDWF1の2つのベクターを保持する酵母Ｔ２５とＴ２６の抽出物とpTochigi101-StDWF5及びpYES-DEST52-LKBの2つのベクターを保持する酵母Ｔ２７とＴ２８の抽出物にはカンペステロールを確認することができた。このことはStDWF1とLKB遺伝子産物は24メチレンの還元酵素活性を持ち、本ベクターならびに酵母での遺伝子発現が正常に行われていることが確認できた。
実施例８
ジャガイモ組織での遺伝子発現解析
　ジャガイモ塊茎を曝光させることで顕著にコレステロールが増加することでグリコアルカロイドが増加することが知られている。品種「サッシー」の塊茎を太陽光で２日間曝光した。曝光する前の塊茎果皮と曝光後の塊茎果皮から、RNAの抽出はRNeasyで行い、全cDNAの合成はスーパースクリプト ファーストストランド システムを用いて行った。StDWF1H遺伝子である配列番号３に基づいてプライマーU931(CACCATGTCGGATGCTAAGGCCC)（配列番号７）とU953(GGATCCATATGCGTTTCTCATTCCAACAACA)（配列番号１７）を作製しRT-PCR（条件：95℃ 5分、(95℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 1分)を25回、72℃ 5分）を行った。図８に示すように曝光する前に対して曝光したあとではStDWF1H遺伝子の発現が高いことがわかった。このようにステロイド含量の高い組織の同定が遺伝子の発現解析で可能であり、ステロイド化合物と組成との相関を解析することで、組織含量の増加のみならず、品種評価、QTLなどの遺伝子解析が可能になり、遺伝子発現マーカーを作製することができることが示された。
実施例９
酵母でのビタミンＤ３の生産
　実施例５および実施例７で明らかなようにerg6変異を持つ酵母は７－デヒドロデスモステロールを蓄積している。Yeast Knock Out Strain CollectionのBY4742 erg6にpYES-DEST52-StDWF1Hを、電気穿孔法を用いて形質転換を行い、独立のクローンを２つ（Ｔ１９、Ｔ２０）得た。この酵母はガラクトースを含む培地でStDWF1H遺伝子を発現させることができ７－デヒドロコレステロールを蓄積することができた。この酵母に紫外線を当てることによってビタミンＤ３を製造することが可能となる。酵母は元来、エルゴステロールを蓄積するが、これに紫外線をあてることでビタミンＤ２ができることが知られている。この際のエルゴステロールを生産している酵母への効果的な紫外線照射方法は特許3009606号公報に記載されており、あらたに作成された７－デヒドロコレステロールを蓄積する酵母への照射方法の改良の手がかりとなりうる。
　酵母からのビタミンＤ３の抽出、分析については、コレステロールと同様に以下の通り行うことができる、各酵母を5mlのSC-Ura/His培地30℃、135rpm、１日間培養する。培養した酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し、ガラクトース（20mg/ml）を添加した10mlのSC-Ura/His-グルコース培地に懸濁し、30℃、135rpm、2日間培養する。培養酵母を3000g、10分間遠心することにより集菌し5mlの酢酸エチルを加え、20分間超音波処理した後、3分間遠心し酢酸エチル抽出物を回収する。この操作を3回繰り返す。酢酸エチル抽出物は溶媒を乾燥除去した後、Ｎ－メチル－Ｎ－トリメチルシリルトリフルオロアセトアミドを加え、80℃で30分間加熱し、トリメチルシリルエーテル体に誘導体化しGC-MS分析の試料とする。標品をGCの保持時間ならびにMSスペクトルを比較することで分析、定量することができる。
　今回、使用した酵母BY4742はパン酵母由来の実験室酵母である。物質生産として優れているキャンディダ酵母も利用できる。より具体的な形質転換体の取得についてはキャンディダ・ユティリス（特開２０１０－７５１７１公報）、キャンディダ・ボイディニ（特開２００９－２６８４０７公報）を参照することによって、実験室酵母と同様にビタミンＤ３を製造する酵母を作成することが可能である。
　また、ジャーファーメンターなどを用いた攪拌培養において、７－デヒドロデスモステロールあるいはその前駆体を培地中に添加することにより、これらの物質を酵母細胞に取り込ませることができる。当該酵母細胞において、StDWF1H遺伝子を発現させることにより、７－デヒドロコレステロールを蓄積することができる。７－デヒドロコレステロールを蓄積した酵母細胞に光（好ましくは紫外線）を照射することによって、ビタミンＤ３を製造することができる。また、添加する物質をデスモステロールあるいはその前駆体とすれば、当該酵母細胞においてコレステロールを製造することができる。
実施例１０
植物でのコレステロールとビタミンＤ３の生産
　ジャガイモやトマトなど一部の植物ではコレステロールを生産しているが、通常の植物ではコレステロールを生産していない。そこで、コレステロールを生産していないシロイヌナズナや、一部生産しているジャガイモのコレステロール生産量を増強する目的で植物のStDWF1H遺伝子の過剰発現形質転換体を得る実験を実施した。バイナリーベクターpKT11（特開2001-161373号公報）を基本として、カルフラワーモザイクウイルスの35S RNAプロモーター、StDWF1H遺伝子を順方向、35S RNAのターミネーターの順に連結を行い、植物形質転換用ベクターpKT254を作成した（図９）。作製したベクターをエレクトロポレーション法(GelvinとSchilperoor編, Plant Molecular Biology Manual, C2, 1-32 (1994), Kluwer Academic Publishers)により、アグロバクテリウム・ツメファシエンスGV3110株に導入した。
　シロイヌナズナの形質転換は（島本・岡田監修「モデル植物の実験プロトコール」(1996)秀潤社）に従い実施できる。ジャガイモの形質転換は（門馬(1990)植物組織培養7:57-63）に従い実施できる。以下、ジャガイモの形質転換方法について詳しく記述する。ジャガイモ品種「サッシー」（ジャパンアグリバイオ社）から得られたマイクロチューバーを２～３mmにスライスし、アグロバクテリウム感染用の材料とする。これを上記のアグロバクテリウムの菌液に浸した後、滅菌済みの濾紙上に置いて過剰のアグロバクテリウムを除く。シャーレ内のMS培地（Zeatin 1ppm, IAA 0.1ppm, アセトシリンゴン100μM、及び寒天0.8％を含む）上に置き、培養は３日間25℃、16時間照明（光量子束密度32μE/m2ｓ）／８時間無照明の条件下で行う。ついで、アセトシリンゴンの代わりにカルベニシリン250ppmを含んだ培地で１週間培養する。その後、さらにカナマイシン50 ppmを含む培地上に移し、２週間ごとに継代する。この間に不定芽が形成し、シュートを生じる。伸張したシュートをカルベニシン250 ppm及びカナマイシン100 ppmを含み、植物生長調節物質を含まないMS培地に置床する。発根したシュートをカナマイシン耐性の生長した植物体の中から外来遺伝子としてカナマイシン耐性遺伝子を含有する個体を得る。カナマイシン耐性遺伝子のプライマーを用いてPCRを行うことで検出し、植物体が形質転換植物体であることを確認することができる。これらの形質転換体ではコレステロールを多く蓄積していることが期待できる。
　StDWF1H遺伝子の過剰発現形質転換体でも、シロイヌナズナはDWF5遺伝子、ジャガイモは実施例３にあるStDWF5遺伝子が機能しているため、７－デヒドロコレステロールが多く蓄積することは期待できない。しかし、これらの機能が欠損している変異体（dwf5）やRNAi法などによる遺伝子発現抑制形質転換体では７－デヒドロコレステロールが蓄積することが期待できる。これに実施例９で行われる紫外線照射の方法を組み合わせることでビタミンＤ３を生産できる植物が得られるものと期待できる。
　本発明の24位還元酵素及びそれをコードする遺伝子を用いる、薬理活性のあるステロイド化合物の生産方法は、天然からの抽出法に比べて大量生産を可能にするため有用である。
配列番号７～１７：　プライマー
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

Claims (20)

  1. 　コレステロールを生産する植物に由来する、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質。
  2. 　ナス科、ゴマノハグサ科、ヤマノイモ科、またはシソ科に属する植物に由来する、請求項1記載のタンパク質。
  3. 　ジャガイモ、トマトに由来する、請求項１記載のタンパク質。
  4. 　以下の(a)～(c)からなる群から選択される請求項１記載のタンパク質。
    　(a) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列を含むタンパク質
    　(b) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含むタンパク質
    　(c) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列と90％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含むタンパク質
  5. 　ステロイド骨格がコレスタン誘導体のステロイド骨格である、請求項１～４のいずれか１項に記載のタンパク質。
  6. 　膜貫通領域を持ちFAD結合型配列を持つ還元酵素に属する、請求項１～５のいずれか１項に記載のタンパク質。
  7. 　以下の(a)～(g)からなる群から選択されるDNAを含有する組換え体DNA。
    　(a) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするDNA
    　(b) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列において1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
    　(c) 配列番号１または配列番号３に示すアミノ酸配列と90％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
    　(d) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列を含むDNA
    　(e) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列と相補的な塩基配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
    　(f) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列と90％以上の配列同一性を有する塩基配列を含み、かつ、ステロイド骨格の24位を還元する活性を有するタンパク質をコードするDNA
    　(g) 配列番号２または配列番号４に示す塩基配列において縮重配列を含むDNA
  8. 　請求項７記載の組換え体DNAを含むベクター。
  9. 　請求項７記載の組換え体DNAを含む形質転換体。
  10. 　形質転換体が微生物または植物を宿主として得られる形質転換体である、請求項９記載の形質転換体。
  11. 　微生物が酵母である、請求項１０記載の形質転換体。
  12. 　24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成する能力を有する、請求項９～１１のいずれか１項に記載の形質転換体。
  13. 　請求項９～１２のいずれか１項に記載の形質転換体を培地に培養し、培養物中に請求項４記載のタンパク質を生成、蓄積させ、該培養物より該蛋白質を採取する請求項４記載のタンパク質の製造法。
  14. 　請求項９～１２のいずれか１項に記載の形質転換体であって、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を細胞内に生成する形質転換体を培養し、前記形質転換体中において、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の24位の２重結合を還元させ、形質転換体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成させ、該培養物から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を回収する、24位が還元されたステロイドまたはその誘導体の製造法。
  15. 　請求項９～１２のいずれか１項に記載の形質転換体を24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の存在下で培養し、該形質転換体中に24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を取り込ませ、前記形質転換体中において、24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体の24位の２重結合を還元させ、形質転換体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成させ、該培養物から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を回収する、24位が還元されたステロイドまたはその誘導体の製造法。
  16. 　請求項９～１２のいずれか１項に記載の形質転換体の培養物または該培養物の処理物を酵素源に用い、該酵素源、および24位に２重結合を持つステロイドまたはその誘導体を水性媒体中に存在せしめ、該媒体中に24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を生成、蓄積させ、該媒体から24位が還元されたステロイドまたはその誘導体を採取する、24位が還元されたステロイドまたはその誘導体の製造法。
  17. 　前記培養物が、培養物を遠心分離して得られる菌体もしくは培養液上清、菌体および／または培養液上清の濃縮物、乾燥物、凍結乾燥物、界面活性剤処理物、超音波処理物、機械的摩砕処理物、溶媒処理物、酵素処理物、蛋白質分画物、固定化物あるいは菌体および／または培養液上清から抽出して得られる酵素標品であることを特徴とする、請求項１４～１６のいずれか１項に記載の製造法。
  18. 　24位に２重結合を持つステロイドが、デスモステロール、または７－デヒドロデスモステロールであり、24位が還元されたステロイドが、コレステロール、または７－デヒドロコレステロールである、請求項１４～１６のいずれか１項に記載の製造法。
  19. 　請求項１８記載の製造法において、24位に２重結合を持つステロイドとして７－デヒドロデスモステロールを用い、７－デヒドロコレステロールを製造し、さらに、得られた７－デヒドロコレステロールに光を当てることを含む、ビタミンD3の製造法。
  20. 　前記形質転換体に蓄積された７－デヒドロコレステロールに対して光を当てるものである、請求項１９記載の製造法。
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