WO2012119558A1 - 糖蛋白中去除/灭活朊病毒的方法 - Google Patents

糖蛋白中去除/灭活朊病毒的方法 Download PDF

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WO2012119558A1
WO2012119558A1 PCT/CN2012/072089 CN2012072089W WO2012119558A1 WO 2012119558 A1 WO2012119558 A1 WO 2012119558A1 CN 2012072089 W CN2012072089 W CN 2012072089W WO 2012119558 A1 WO2012119558 A1 WO 2012119558A1
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human
glycoprotein
variant
membrane
hormone
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PCT/CN2012/072089
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高霄梁
季斌
洪云海
郭照晔
季晓铭
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上海天伟生物制药有限公司
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/36Extraction; Separation; Purification by a combination of two or more processes of different types
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P15/00Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
    • A61P15/08Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives for gonadal disorders or for enhancing fertility, e.g. inducers of ovulation or of spermatogenesis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
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    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
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    • C07K1/18Ion-exchange chromatography
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    • C07K1/14Extraction; Separation; Purification
    • C07K1/34Extraction; Separation; Purification by filtration, ultrafiltration or reverse osmosis

Definitions

  • the present invention relates to the field of biomedicine, and more particularly to a method for removing/inactivation of prion in a glycosylated protein for treating infertility. Background technique
  • the proteinaceous infectious particle is a protein in the genus, containing no nucleic acid, and has a molecular weight of 33KD-35KD.
  • the anti-protease PrP se is its only (or major) component; it is the protein encoded by the host PrP gene.
  • Post-translational modification conformational changes form a dominant role in the pathogenesis of prions, and their replication and the different properties of the isolate (or strain) are determined by their own interaction with the host PrP ⁇ g, independent of any nucleic acid.
  • satellite factors and viroids have been included in subviral agents in recent years to distinguish them from real viruses.
  • the normally growing cell membrane glycoprotein PrP e (Cellular prion protein) is misfolded into a non-normal protein PrP se (Scrapie form of prion protein) only by conformational change, thereby causing accumulation of PrP se , which ultimately leads to ⁇ -amyloid of neurons.
  • Denaturation is a series of neurodegenerative diseases such as: human Kuru disease, lethal family insomnia, human and animal Creutzfel-Jacob diseases (CJD), human and animal infections Transmissible Spongiform encephalopathies (TSE), bovine spongiform encephalopathies (BSE, commonly known as mad cow disease), and pruritus in sheep, cats, or other animals.
  • Prions have different properties than all known traditional pathogens. It has very strong resistance to physical and chemical factors. Conventional cooking or even high-pressure steam sterilization can not completely deactivate it at 134-138 °C for 18 minutes; 40-200 times higher resistance to UV254nm than conventional viruses; And ultrasound resistance is also very strong; treated with 20% formalin at 37 ° C for 18 hours, 0.35% formalin treatment for 3 months can not completely lose its activity, 10% -20% at room temperature It can survive for 18 months in the Marlin solution.
  • the prion is not inactivated by a variety of nucleases and no virus particles are visible under an electron microscope. ⁇ Virus does not form inclusion bodies, does not contain non-host proteins; does not induce interferon, and is not sensitive to interferon. Immunosuppressants and immunopotentiators do not alter the development and progression of prion diseases. Therefore, it is difficult to remove it using existing means.
  • the routes of transmission of prions include: edible animal meat and bone meal feed, bovine bone powder soup; iatrogenic infection, Such as the use of pituitary growth hormone, gonadotropin and dural transplantation, corneal transplantation, blood transfusion and so on.
  • iatrogenic infection Such as the use of pituitary growth hormone, gonadotropin and dural transplantation, corneal transplantation, blood transfusion and so on.
  • There are mutations and cross-ethnic infections in prions and there are a large number of potential infection sources, mainly ruminants such as cattle and sheep.
  • the unknown potential hosts may be wide, and the potential risks of transmission are unknown, which is difficult to predict and infer.
  • the prion can infect multiple organs, mainly known as the brain, but in the incubation period, except for the central nervous system, various tissues and organs are infected, and the infection is multi-channel. In addition to the digestive tract, the nervous system and blood can be infected. It is difficult to prevent. Once humans and
  • Glycoproteins for the treatment of infertility are a class of structurally similar substances, including chorionic gonadotropin
  • HCG menopausal gonadotropin
  • HMG menopausal gonadotropin
  • FSH follic sputum hormone
  • LH luteinizing hormone
  • HCG, HMG, FSH, and LH are mainly used to treat infertility and assisted reproduction in vitro. They can be extracted from the urine of a particular woman (pregnancy or menopause) or can be prepared by DNA recombination techniques.
  • glycoprotein drugs for treating infertility can be extracted from the urine of a particular woman (pregnancy or menopause), there are likely to be a large number of various types of viruses including prions, if these viruses cannot be effectively removed. There is no guarantee of the safety of the drug.
  • ICH Q5A biological product virus safety assessment procedure it is required that there should be a combination of 2 steps or more steps in the process, and at least one step of virus removal/inactivation rate is greater than 10 4 to be considered safe and effective. Virus removal/inactivation method.
  • the present invention is directed to a method of removing and/or inactivating prions in a glycoprotein.
  • a method of removing and/or inactivating prions in a glycoprotein consisting of the steps of: (a) subjecting the glycoprotein-containing solution to microporous membrane filtration;
  • the sequence of steps is (a) to (b) to (c) or (c) to (a) to (b).
  • the glycoprotein is selected from the group consisting of human chorionic gonadotropin, follic sputum hormone, luteinizing hormone, menopausal gonadotropin, or a mixture thereof;
  • the human chorionic gonadotropin is human chorionic gonadotropin Or a variant thereof, selected from human urine-derived and/or recombinant human chorionic gonadotropin or a variant thereof;
  • said menopausal gonadotropin is human menopausal gonadotropin or a variant thereof, selected from human urine Source and/or recombinant human menopausal gonadotropin or a variant thereof;
  • the follicular sputum hormone is a human follicular stimulating hormone or a variant thereof, selected from human urine-derived and/or recombinant human follicular stimulating hormone or Variant;
  • the luteinizing hormone is human luteinizing hormone or a variant thereof, selected from human urine-derived and/or recombin
  • the microporous membrane in the step (a) is selected from the group consisting of a filtration membrane having a pore diameter of 0.1 ⁇ ⁇ ⁇ ; more preferably a filtration membrane having a thickness of 0.1 to 0.45 ⁇ m.
  • the nanofiltration membrane in the step (b) is selected from a nanofiltration membrane having a pore diameter of 1 lOOnm; more preferably, a nanofiltration membrane having a thickness of 10 to 50 nm.
  • the ultrafiltration membrane in the step (b) is selected from the group consisting of ultrafiltration membranes having a pore diameter of 1000 Dalton or more; more preferably, ultrafiltration membranes of 100,000 Dalton or more.
  • the anion exchange chromatography in the step (c) is carried out under the conditions of pH 5 - 10; more preferably, the anion exchange chromatography in the step (c) is carried out under the conditions of pH 6-8.
  • the skeleton medium of the anion exchange chromatography resin in the step (c) comprises agarose, dextran, cellulose, a crosslinked product of styrene and divinylbenzene, acrylic acid and/or its derivative.
  • a cross-linking substance; the reactive group of the resin of the anion exchange chromatography described in the step (C) is selected from diethyl quaternary amine or diethylaminoethyl; more preferably, the step (C)
  • the tree of anion exchange chromatography is selected from DEAE Sephadex A50, Q Sepharose FF or DEAE Sepharose FF.
  • the present invention provides a process for removing/inactivating prions suitable for the treatment of infertility glycosylated proteins, thereby enabling a safe and effective drug to be obtained.
  • the inventors have extensively and intensively studied and surprisingly found that the removal/inactivation of sugar can be achieved by a suitable combination of three steps of microporous membrane filtration, nanofiltration membrane or ultrafiltration membrane technology and anion exchange chromatography.
  • the purpose of the prion in the protein is to thereby remove/inactivate the prion under mild conditions and retain the activity of the target-glycosylated protein.
  • the inventors completed the present invention.
  • the inventors noticed that the use of suitable microporous membrane filtration technology, as well as nanofiltration membrane or ultrafiltration membrane technology, can not only intercept the prion particles, but also allow the target to be filtered from the membrane. The purpose of separating the target from the virus.
  • the inventors unexpectedly found during the test that, as long as the appropriate conditions are controlled, the prion can be separated from the target by anion chromatography to achieve the purpose of removing the virus in the target.
  • the prion can be effectively removed/inactivated, thereby obtaining a safe and reliable product.
  • glycoprotein and “glycosylated protein” are used interchangeably and are selected from one or more of the following combinations: chorionic gonadotropin (CG), follicle ⁇ Ij hormone (follicule-stimulating hormone, FSH), luteotropic hormone (LH), human menopausal gonadotropin (HMG).
  • CG chorionic gonadotropin
  • FSH follicle ⁇ Ij hormone
  • LH luteotropic hormone
  • HMG human menopausal gonadotropin
  • follicle stimulating hormone and “FSH” are used interchangeably and refer to a class of hormones or variants thereof that promote sperm or follicle production and promote ovarian development. Secreted by the anterior pituitary in nature, it can also be extracted from the urine of menopausal women or can be obtained by recombinant techniques.
  • the FSH in the present invention can be obtained by any means conventionally used in the art, such as naturally occurring, obtained or synthesized by recombinant techniques, wherein the impurities include LH or CG.
  • the follicle stimulating hormone is a human follicular sputum hormone or a variant thereof, preferably a human urine-derived follic sputum hormone or a recombinant human follicle stimulating hormone.
  • the raw material containing FSH and containing LH and/or CG as an impurity which can be used in the present invention may be: a raw material which is not subjected to any pre-purification step, a raw material which has been partially purified by a pre-purification step, or a pre-purification step.
  • the raw material FSH is subjected to preliminary purification by a conventional method in the art to separate impurities other than LH or CG.
  • luteal hormone and “LH” are used interchangeably to refer to a hormone that has the same or similar structure and function as native LH during the preparation or acquisition of a material containing FSH.
  • menopausal gonadotropin As used herein, “menopausal gonadotropin”, “urinary gonadotropin” and “HMG” are used interchangeably and refer to a class of glycoprotein hormones or variants thereof produced by the pituitary, containing both FSH and LH. Active ingredient.
  • the HMG may be a recombinant menopausal gonadotropin or a variant thereof, or a human urinary urinary gonadotropin or a variant thereof.
  • the biological potency ratio of FSH and LH is in the range of 1:0. 1 - 3 , and more preferably in the range of 1:0.3.
  • chorionic gonadotropin and "CG” are used interchangeably to refer to a hormone that has the same or similar structure and function as native CG incorporated during the preparation or acquisition of a material containing FSH.
  • the method for removing and/or inactivating prions in proteins provided by the present invention can be used in addition to glycoproteins for glycoprotein compositions, including glycoproteins and pharmaceutically/food acceptable a.
  • the term "pharmaceutically acceptable” or “food acceptable” ingredients are suitable for use in humans and/or animals without excessive adverse side effects (such as toxicity, irritability, and allergies; , that is, a substance with a reasonable benefit/risk ratio.
  • the term "pharmaceutically acceptable carrier” refers to a carrier for the administration of a therapeutic agent, including various excipients and diluents.
  • the term refers to pharmaceutical carriers which are not themselves essential active ingredients and which are not excessively toxic after administration. Suitable carriers are well known to those of ordinary skill in the art. A full discussion of pharmaceutically acceptable excipients can be found in Remington's Pharmaceutical Sciences, Mack Pub. Co., N.J. 1991.
  • the "pharmaceutically acceptable carrier” may contain liquids such as water, saline, glycerol and ethanol.
  • auxiliary substances such as fillers, disintegrants, lubricants, glidants, effervescent agents, wetting or emulsifying agents, flavoring agents, pH buffering substances and the like may also be present in these carriers.
  • these materials can be formulated in a non-toxic, inert, andpharmaceutically acceptable aqueous carrier medium wherein the pH is usually from about 5 to about 8, preferably, the pH is from about 6 to about 8.
  • the method for removing and/or inactivating prion in a glycoprotein provided by the invention consists of a microporous membrane treatment, a nanofiltration membrane or an ultrafiltration membrane treatment and an anion exchange chromatography treatment step, the order of which is microporous membrane treatment, Membrane or ultrafiltration membrane treatment and anion exchange chromatography; or anion exchange chromatography, microporous membrane treatment, and nanofiltration membrane or ultrafiltration membrane treatment.
  • microporous membrane treatment is microporous membrane treatment, nanofiltration membrane or ultrafiltration membrane treatment and anion exchange chromatography.
  • the microporous membrane treatment is to remove a solution having a glycoprotein concentration of 10 to 100 mg/ml (preferably 15 to 40 mg/ml, more preferably 20 to 30 mg/ml) through a microporous membrane. And / or inactivate prions.
  • the microporous membrane is selected from the group consisting of a bacterial filter membrane having a pore size of 0.1 to ⁇ ⁇ ⁇ ; preferably, the microporous membrane is selected from the group consisting of a bacterial filtration membrane having a pore diameter of 0.1 to 0.41 ⁇ m.
  • the solution is ⁇ ⁇ 5 - 10, preferably ⁇ ⁇ 6-8, and the buffer used may be phosphate, acetate or Tri s buffer or the like.
  • the nanofiltration membrane or ultrafiltration membrane treatment is to pass a solution having a glycoprotein concentration of 10 to 100 mg/ml (preferably 15 to 40 mg/ml, more preferably 20 to 30 mg/ml).
  • Filter or ultrafiltration membrane to remove and/or inactivate prions.
  • the nanofiltration membrane is selected from a nanofiltration membrane having a pore diameter of from 1 to 100 nm; preferably, the nanofiltration membrane is selected from a nanofiltration membrane having a pore diameter of 10 to 50 nm.
  • the ultrafiltration membrane is selected from ultrafiltration membranes having a pore diameter above 1000 Daltons; preferably the ultrafiltration membrane is selected from ultrafiltration membranes having a pore size above 100,000 Daltons.
  • the solution has a pH of 5-10, preferably pH 6-8, and the buffer used may be a phosphate, acetate or Tris buffer or the like.
  • the anion exchange chromatography treatment is carried out by passing an aqueous solution of a solution having a glycoprotein concentration of 15 to 60 mg/ml (preferably 20 to 40 mg/ml, more preferably 25 to 35 mg/ml).
  • the prion is adsorbed on the resin, and the glycoprotein flows out with the eluate, thereby removing and/or inactivating the prion.
  • the solution has a pH of 5-10, preferably pH 6-8, and the buffer used may be phosphate, acetate or Tris buffer or the like.
  • Anion exchange resins conventional in the art can be used, such as, but not limited to, DEAE Sephadex A50, Q Sepharose FF or DEAE Sepharose FF.
  • the method provided by the present invention is safe and efficient.
  • the method provided by the invention has mild conditions and is suitable for industrial production.
  • the invention will now be further elucidated in connection with specific embodiments. It is to be understood that the examples are not intended to limit the scope of the invention.
  • the experimental methods in the following examples which do not specify the specific conditions are usually carried out according to the conditions described in the conventional conditions, for example, Sambrook et al., Molecular Cloning: Laboratory Hand M (New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989), or according to the conditions. The conditions recommended by the manufacturer. All percentages and parts are by weight unless otherwise stated.
  • the brain tissue of the prion-infected animal was mixed with a high-speed homogenizer for 1 minute, and then ultrasonically mixed six times in a phosphate buffer containing 0.5% sodium lauryl creatinine for 15 seconds each time. Uniform brain tissue homogenate.
  • the brain tissue homogenate was incubated at 0 ° C for 30 minutes, and then ultrasonically mixed again (three times for 15 seconds each).
  • Example 1 The homogenate was centrifuged at 4500 °g for 30 minutes at 4 ° C, the particles were discarded, and the supernatant was taken and diluted with a phosphate buffer containing 0.5% sodium lauryl creatin to a final concentration of 10% (w/v). ), which is the original prion solution, stored at -80 ° C ⁇ 15 ° C for use.
  • a phosphate buffer containing 0.5% sodium lauryl creatin to a final concentration of 10% (w/v).
  • the flow rate can be measured at the outlet of the column and the pump speed can be adjusted to control the flow rate. Collect and measure the pH of the effluent, Until it is determined to be the same pH as the inlet buffer. Close the peristaltic pump and column outlet until the upper column sample is ready.
  • the prion original solution was ultrasonically mixed 3 times for 15 seconds, then centrifuged at 4500 °g for 30 minutes at 4 ° C, the particles were discarded, and the supernatant was taken, followed by a pore size of 0.45 ⁇ ⁇ , 0.2 ⁇ ⁇ The filter with 0. ⁇ ⁇ ⁇ was pre-filtered as a prion solution.
  • Virus removal rate lo gl .
  • the amount of virus added is X loading volume - lo gl .
  • Example 2 The procedure was the same as in Example 1 except that the sample was 750 mg of HMG crude product (supplied by Shanghai Tianwei Biopharmaceutical Co., Ltd.).
  • Example 2 The samples and procedures were the same as in Example 1 except that the balance solution was a sodium acetate buffer of pH 4.0 ⁇ 0.1.
  • balance solution is a phosphate buffer solution with a pH of 11.0 ⁇ 0.1.
  • the prion original solution was ultrasonically mixed 3 times for 15 seconds, then centrifuged at 4500 °g for 30 minutes at 4 ° C, the particles were discarded, and the supernatant was taken, using a pore size of 0.45 ⁇ m, 0.2 ⁇ m. Prefiltered with a 0.1 ⁇ m filter as a prion solution.
  • a 20 ml sample of the virus was added, filtered through a 0.2 ⁇ filter, and the filtrate was collected in another container.
  • the filter was washed with 5 ml of ammonium acetate buffer pH 7.0 ⁇ 0.1 at a maximum pressure of 30 psi.
  • the volume of the filtrate was measured and samples were taken to determine the amount of virus remaining and the HCG immunopotency.
  • Virus removal rate lo gl .
  • the amount of virus added is X loading volume - lo gl .
  • titer yield % (immunity titer of sample volume X loading solution) ⁇ (immunity titer of collection volume X collection solution) X100% Virus removal result
  • the prion original solution was ultrasonically mixed 3 times for 15 seconds, then centrifuged at 4500 °g for 30 minutes at 4 ° C, the particles were discarded, and the supernatant was taken, followed by a pore size of 0.45 ⁇ ⁇ , 0.2 ⁇ ⁇ Prefiltered with a 0.1 ⁇ m filter as a prion solution.
  • a 20 ml sample of the virus was added and filtered through a humidified Pall VF DV 20 filter at a maximum pressure of 30 psi (2070 mPa). Collect the filtrate in another container. At the highest pressure The filter was washed with 5 ml of a pH 7.0 ⁇ 0.1 ammonium acetate buffer at a force of 30 psi. The volume of the filtrate was measured and samples were taken to determine the amount of virus remaining and the HCG immunopotency.
  • Virus removal rate lo gl .
  • the amount of virus added is X loading volume - lo gl .
  • the prion original solution was ultrasonically mixed 3 times for 15 seconds, then centrifuged at 4500 °g for 30 minutes at 4 ° C, the particles were discarded, and the supernatant was taken, followed by a pore size of 0.45 ⁇ ⁇ , 0.2 ⁇ ⁇ Prefiltered with a 0.1 ⁇ m filter as a prion solution.
  • the above HCG intermediate 1 was dissolved in 20 ml of an ammonium acetate solution of pH 7.0 ⁇ 0.1 while stirring at 12 ° C ⁇ 2 ° C. This solution was filtered through a 0.2 ⁇ filter membrane, and the filtrate was collected.
  • the filtrate is then wetted at a maximum pressure of 30 psi (2070 mPa).
  • Pall VF DV 20 filter filtration Collect the filtrate in another container.
  • the filter was washed with 5 ml of a pH 7.0 ⁇ 0.1 ammonium acetate buffer at a maximum pressure of 30 psi.
  • the volume of the filtrate was measured and samples were taken to determine the amount of virus remaining and the HCG immunopotency.
  • Virus removal rate lo gl .
  • the prion original solution was ultrasonically mixed 3 times for 15 seconds, then centrifuged at 4500 Xg for 4 minutes at 4 ° C, the particles were discarded, and the supernatant was taken, followed by a pore size of 0.45 ⁇ ⁇ 0.2 ⁇ ⁇ and 0.
  • the ⁇ ⁇ ⁇ filter is pre-filtered as a prion solution.
  • the filtrate is then wetted at a maximum pressure of 30 psi (2070 mPa).
  • Pall VF DV 20 filter filtration Collect the filtrate in another container.
  • the filter was washed with 5 ml of a pH 7.0 ⁇ 0.1 ammonium acetate buffer at a maximum pressure of 30 psi.
  • Combine the filtrate and washing solution add 4 volumes of absolute ethanol to precipitate, collect the precipitate by centrifugation, dehydrate with absolute ethanol, and dry in vacuum to obtain HMG intermediate product 1
  • 50 ml of a pH 7.8 ⁇ 0.1 phosphate buffer was cooled to 12 ° C ⁇ 2 ° C and then added to 0.6 g of DEAE Sephadex A-50.
  • the solution was kept at 12 ° C ⁇ 2 ° C for at least 15 hours to allow the resin to fully swell.
  • the swollen resin suspension was placed in an XK16 column to give a final bed volume of 15 ml.
  • the pH of the effluent was collected and measured until it was determined to be at the same pH as the inlet buffer. Close the peristaltic pump and column outlet until the upper column sample is ready.
  • Virus removal rate lo gl .
  • the amount of virus added is X loading volume - lo gl .
  • Typical examples of the production of 10,000 bottles of HCG lyophilized injection and containing 1000 IU of HCG per bottle are as follows:
  • the above solution was dispensed into a vial, 0.70 mL per vial, and lyophilized.
  • each bottle contained 1000 IU of HCG and 30 mg of mannitol.
  • the calculated amount (in biopotency) is then dissolved in 100 mL for injection.
  • the pH In the absence of pyrogen water, if necessary, adjust the pH to 6.5 ⁇ 0.2 with HC1 or NaOH, and then sterile filter with a 0.22 ⁇ filter.
  • lactose 100 g was dissolved in 2 L of pyrogen-free water for injection, if necessary, adjusted to pH 6.5 ⁇ 0.2 with HC1 or NaOH, and sterile filtered using a 0.22 ⁇ m filter. Then, it was added to the above HMG solution, and the volume was adjusted to 7. 5 L with pyrogen-free water for injection, and the mixture was mixed.
  • the above solution was placed in a vial, 0.575 mL per bottle, and lyophilized.
  • each bottle contained 75 IU FSH, 75 IU LH and 10 mg lactose.
  • Example 12 In the vials obtained, each bottle contained 75 IU FSH, 75 IU LH and 10 mg lactose.
  • NaOH was adjusted to pH 6. 5 ⁇ 0.2, and sterile filtration was carried out using a 0.22 ⁇ m filter. Then, it was added to the above FSH solution, and the volume was adjusted to 7. 5 L with pyrogen-free water for injection, and the mixture was mixed.
  • the above solution was dispensed into an ampoule, 0.575 mL per bottle, and lyophilized.
  • the resulting ampoules contained 75 IU FSH and 10 mg lactose per bottle.
  • NaOH was adjusted to pH 6. 5 ⁇ 0.2, and sterile filtration was carried out using a 0.22 ⁇ m filter. Then add to the above
  • the above solution was dispensed into an ampoule, 0.575 mL per bottle, and lyophilized.
  • the resulting ampoules contained 75 IU of LH and 10 mg of lactose per vial.
  • the above is only the preferred embodiment of the present invention, and is not intended to limit the scope of the technical scope of the present invention.
  • the technical content of the present invention is broadly defined in the scope of the claims of the application, any technical entity completed by others. The method or method, if it is identical to the scope of the claims, or equivalents, is considered to be within the scope of the claims.

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Description

糖蛋白中去除 /灭活朊病毒的方法
技术领域
本发明涉及生物医药领域, 尤其涉及治疗不孕症的糖基化蛋白质中的朊 病毒去除 /灭活的方法。 背景技术
阮病毒 ( proteinaceous infectious particle;缩写为 prion) 是 ^■禾中 蛋白质, 不含核酸, 分子量 33KD— 35KD, 抗蛋白酶的 PrPse是其唯一 (或主 要) 成分; 它是宿主 PrP基因编码的蛋白 PrP 翻译后修饰构象改变形成, 在朊病毒病理发生中起主导作用, 其复制和分离物 (或毒株) 的不同特性都 由其自身和宿主 PrP^g互作用决定, 而不依赖于任何核酸。 在病毒分类上, 近年来已将与卫星因子和类病毒一同纳入亚病毒因子 (subviral agents) , 以与真病毒相区分。 即正常生长的细胞膜糖蛋白 PrPe (Cellular prion protein) 仅通过构象改变错误折叠成非正常蛋白 PrPse (Scrapie form of prion protein) ,从而引起 PrPse的积聚, 最终导致神经元的 β -淀粉样变性, 是一系列神经退化性疾病如: 人类的库鲁病 (Kuru disease) , 致死性家族 失眠症, 人和动物的克-雅氏症 (Creutzfel-Jacob diseases, CJD) ,人和动 物的传染性海绵状脑病 (Transmissible Spongiform encephalopathies , TSE) , 牛海绵状脑病 (Bovine Spongiform encephalopathies , BSE, 俗 称疯牛病) , 以及羊、 猫或其他动物的瘙痒症等的主因。
朊病毒具有和一切已知传统病原体不同的特性。 它对物理化学因素有非 常强的抵抗力, 常规的烹饪甚至高压蒸汽消毒 134— 138°C 18分钟也不能使 之完全失活; 对 UV254nm抵抗力比常规病毒高 40— 200倍; 对离子辐射和超 声抵抗力也很强; 在 37°C的 20%的福尔马林处理 18小时, 0.35%福尔马林处 理 3个月也不能使之完全失去活性, 室温下 10%-20%福尔马林溶液中可存活 18个月。 朊病毒不被多种核酸酶灭活, 在电子显微镜下看不到病毒颗粒。 朊 病毒不形成包涵体, 不含非宿主蛋白; 不诱生干扰素, 对干扰素亦不敏感。 免疫抑制剂和免疫增强剂不能改变朊病毒病的发生和发展过程。 因此, 使用 现有的手段很难将其除去。
朊病毒的传播途径包括:食用动物肉骨粉饲料、牛骨粉汤; 医源性感染, 如使用脑垂体生长激素、 促性腺激素和硬脑膜移植、 角膜移植、 输血等。 朊 病毒存在变异和跨种族感染, 具有大量的潜在感染来源, 主要为牛、 羊等反 刍动物, 未知的潜在宿主可能很广, 传播的潜在危险性不明, 很难预测和推 断。 朊病毒可感染多个器官, 已知的主要为脑髓, 但在潜伏期内除中枢神经 系统外, 各种组织器官均有感染, 且感染多途径, 除消化道外, 神经系统、 血液均可感染, 预防难度大, 人畜一旦发病, 6个月至 1年全部死亡, 100% 的死亡率。
治疗不孕症的糖蛋白是一类结构接近的物质, 包括绒毛膜促性腺激素
( HCG ) 、 绝经期促性腺素 (HMG ) 、 卵泡剌激素 (FSH ) 、 黄体生成素 (LH ) , 其中绝经期促性腺素是含有卵泡剌激素和黄体生成素且两者成一定比例 (1 :
0. 1 - 1 ) 的混合物。 临床上 HCG、 HMG、 FSH、 LH主要用于治疗不育症以 及体外辅助生殖。 它们可以从特定妇女(孕期或绝经期) 的尿液中提取出来, 也可通过 DNA重组技术而制备。
由于这类治疗不孕症的糖蛋白药物可以从特定妇女 (孕期或绝经期) 的 尿液中提取出来, 很可能存在包括朊病毒在内的大量各种类型的病毒, 如果 不能有效去除这些病毒就无法保证药品的安全性。
目前血制品药物的工艺过程中所使用的针对性的病毒去除 /灭活的多个 步骤的组合, 比如热处理、 低 pH 处理、 表面活性剂处理等, 对上述糖基化 蛋白质药物不完全适合, 因为此类糖基化蛋白质药物对热和低 pH 的耐受性 很差, 容易失去活性。
按照 ICH Q5A生物制品病毒安全性评估的规程, 要求工艺过程中应有 2 步或 2步以上的步骤的组合, 并且至少有一步的病毒去除 /灭活率大于 104, 才能被认为是安全有效的病毒去除 /灭活方法。
因此, 本领域迫切需要开发出适合治疗不孕症的糖基化蛋白质的去除 / 灭活朊病毒的工艺, 以获得安全有效的药物。 发明内容
本发明旨在提供一种去除和 /或灭活糖蛋白中的朊病毒的方法。 在本发明的第一方面, 提供了一种去除和 /或灭活糖蛋白中的朊病毒的方 法, 所述的方法由下述步骤构成: (a) 将含糖蛋白的溶液进行微孔膜过滤;
(b) 将含糖蛋白的溶液进行纳滤膜过滤或超滤膜过滤; 和
(c) 将含糖蛋白的溶液进行阴离子交换层析;
所述步骤顺序为 (a) 至 (b) 至 (c) 或 (c) 至 (a) 至 (b) 。
在上述方法中, 所述的糖蛋白选自绒毛膜促性腺激素、 卵泡剌激素、 黄体 生成素、 绝经期促性腺素、 或其混合; 所述绒毛膜促性腺激素是人绒毛膜促性 腺激素或其变体, 选自人尿来源的和 /或重组的人绒毛膜促性腺激素或其变 体; 所述绝经期促性腺素是人绝经期促性腺素或其变体, 选自人尿来源的和 / 或重组的人绝经期促性腺素或其变体; 所述卵泡剌激素是人卵泡剌激素或其 变体, 选自人尿来源的和 /或重组的人卵泡剌激素或其变体; 所述黄体生成 素是人黄体生成素或其变体, 选自人尿来源的和 /或重组的人黄体生成素或 其变体。
在上述方法中, 步骤 (a) 中所述微孔膜选自孔径为 0.1 Ι μ ηι的过滤膜; 更佳地为 0.1— 0.45μ ηι的过滤膜。
在上述方法汇总,步骤(b)中所述纳滤膜选自孔径为 1 lOOnm的纳滤膜; 更佳地为 10— 50nm的纳滤膜。
在上述方法中, 步骤(b) 中所述超滤膜选自孔径为 1000道尔顿以上的超 滤膜; 更佳地为 100000道尔顿以上的超滤膜。
在上述方法中, 步骤(c) 中所述阴离子交换层析在 pH5— 10的条件下进 行; 更佳地, 步骤 (c) 中所述阴离子交换层析在 pH6— 8的条件下进行。
在上述方法中, 步骤 (c) 中所述阴离子交换层析的树脂的骨架介质包括 琼脂糖, 葡聚糖, 纤维素, 苯乙烯和二乙烯基苯的交联物, 丙烯酸和 /或其 衍生物的交联物; 步骤(C ) 中所述阴离子交换层析的树脂的活性基团选自二 乙基季胺、 或二乙基氨基乙基; 更佳地, 步骤 (C ) 中所述阴离子交换层析的 树月旨选自 DEAE Sephadex A50、 Q Sepharose FF或 DEAE Sepharose FF。 在本发明的第二方面, 提供了一种药物组合物, 所述的药物组合物包括 由上述的方法获得的糖蛋白以及药学上可接受的载体。
据此, 本发明提供了一种适合治疗不孕症的糖基化蛋白质的去除 /灭活 朊病毒的工艺, 从而能够获得安全有效的药物。 具体实施方式
虽然现有技术中已存在一些去除和 /或灭活蛋白质中病毒的方法, 但是 同样的方法对于不同的病毒,会产生无法预料的结果,有时甚至会适得其反。 鉴于此, 发明人经过广泛而深入的研究, 惊奇地发现可通过微孔膜过滤、 纳 滤膜或超滤膜技术以及阴离子交换层析这 3个步骤的适当组合, 来达到去除 /灭 活糖基化蛋白质中的朊病毒的目的, 从而在温和条件下去除 /灭活朊病毒, 并且保留了目标物一糖基化蛋白质的活性。 在此基础上, 发明人完成了本发 明。
在探索过程中, 发明人注意到, 采用合适的微孔膜过滤技术, 以及纳滤膜 或超滤膜技术, 不但可以截留朊病毒颗粒, 而且可以让目标物从膜上滤过, 可 以达到将目标物和病毒分离的目的。 另外, 发明人在试验过程中意外发现, 只 要控制好适当的条件, 可以通过阴离子层析将朊病毒和目标物分离, 从而达到 将目标物中的病毒去除的目的。
通过上述 3个步骤的组合, 可以有效地去除 /灭活朊病毒, 从而获得安全可 靠的产品。 定义
如本文所用, "糖蛋白" 和 "糖基化蛋白质" 可以互换使用, 都是选自 下述的一种或多种混合: 绒毛膜促性腺激素 (chorionic gonadotropin, CG) 、 卵 泡朿 Ij激素 ( follicule-stimulating hormone, FSH )、黄体生成素 (luteotropic hormone, LH ) 、 绝经期促性腺素 (human menopausal gonadotropin, HMG) 。
术语 "卵泡剌激素" 和 " FSH " 可互换使用, 都是指一类用于促进精子 或卵泡产生、促进卵巢发育的激素或其变体。在天然情况下由垂体前叶分泌, 也可从绝经期妇女的尿液中提取或可通过重组技术获得的。 本发明中的 FSH 可采用本领域常用的任何方式获得, 例如天然产生、 通过重组技术获得或合 成, 其中的杂质包括 LH或 CG。 在本发明的一个实施方式中, 所述卵泡剌激 素是人卵泡剌激素或其变体, 优选人尿来源的卵泡剌激素或是重组的人卵泡 剌激素。
可用于本发明中的含有 FSH且包含作为杂质的 LH和 /或 CG的原料可为: 未经任何预纯化步骤的原料、 经预纯化步骤去除了部分杂质的原料、 或经预 纯化步骤而基本上只含 FSH和杂质 LH和 /或 CG的原料。 优选在采用本发明的方法纯化 FSH前,采用本领域常规方法对原料 FSH 进行初步纯化, 以分离除 LH或 CG以外的其它杂质。
如本文所用, 术语 "黄体生成激素" 和 " LH " 可互换使用, 指在含有 FSH的原料制备或获取过程中掺杂于其中的与天然 LH具有相同或相似结构 和功能的激素。
如本文所用, "绝经期促性腺素" 、 "尿促性素"和 " HMG "可以互换使 用, 都是指一类由垂体产生的糖蛋白激素或其变体, 含有 FSH和 LH两种活 性成分。 HMG 可以是重组的绝经期促性腺素或其变体、 或是人尿来源的绝经 期促性腺素或其变体。 其中 FSH和 LH的生物效价比例在 1 : 0. 1 - 3范围, 更佳的在 1 : 0. 3- 1范围。
类似地, 术语"绒毛膜促性腺激素"和 " CG "可互换使用, 指在含有 FSH 的原料制备或获取过程中掺杂于其中的与天然 CG具有相同或相似结构和功 能的激素。 本发明提供的去除和 /或灭活蛋白质中的朊病毒的方法除了用于糖蛋白, 也可用于糖蛋白组合物,所述的糖蛋白组合物包括糖蛋白和药学上 /食品学上 可接受的载体。
如本文所用, 术语 "药学上可接受的" 或 "食品学上可接受的" 的成分 是适用于人和 /或动物而无过度不良副反应 (;如毒性、 剌激和变态反应;)的, 即 有合理的效益 /风险比的物质。
如本文所用, 术语 "药学上可接受的载体" 指用于治疗剂给药的载体, 包括各种赋形剂和稀释剂。 该术语指这样一些药剂载体: 它们本身并不是必 要的活性成分, 且施用后没有过分的毒性。 合适的载体是本领域普通技术人 员所熟知的。 在 《雷明顿药物科学》 (Remington ' s Pharmaceutical Sciences , Mack Pub. Co. , N.J. 1991)中可找到关于药学上可接受的赋形剂的充分讨论。
所述的 "药学上可接受的载体"可含有液体, 如水、 盐水、 甘油和乙醇。 另外, 这些载体中还可能存在辅助性的物质, 如填充剂、 崩解剂、 润滑剂、 助流剂、 泡腾剂、 润湿剂或乳化剂、 矫味剂、 pH缓冲物质等。 通常, 可将这 些物质配制于无毒的、 惰性的和药学上可接受的水性载体介质中, 其中 pH 通常约为 5-8, 较佳地, pH约为 6-8。 方法
本发明提供的去除和 /或灭活糖蛋白中的朊病毒的方法由微孔膜处理、 纳滤膜或超滤膜处理和阴离子交换层析处理步骤组成, 其顺序是微孔膜处 理、纳滤膜或超滤膜处理和阴离子交换层析处理; 或是阴离子交换层析处理、 微孔膜处理、 和纳滤膜或超滤膜处理。
所述的步骤是微孔膜处理、 纳滤膜或超滤膜处理和阴离子交换层析处 理。
所述的微孔膜处理是将糖蛋白浓度为 10— 100毫克 /毫升 (较佳地为 15 一 40毫克 /毫升, 更佳地为 20— 30毫克 /毫升) 的溶液通过微孔膜, 去除和 / 或灭活朊病毒。 所述微孔膜选自孔径为 0. 1— Ι μ ηι的细菌过滤膜; 较佳地所 述微孔膜选自孔径为 0. 1— 0. 45 μ ηι的细菌过滤膜。 所述溶液 ρΗ5- 10, 较佳 地为 ρΗ6-8,所用缓冲液可以是磷酸盐、 醋酸盐或 Tri s缓冲液等。
所述的纳滤膜或超滤膜处理是将糖蛋白浓度为 10— 100 毫克 /毫升 (较 佳地为 15— 40毫克 /毫升, 更佳地为 20— 30毫克 /毫升) 的溶液通过纳滤膜 或超滤膜, 去除和 /或灭活朊病毒。 所述纳滤膜选自孔径为 1 一 l OOnm的纳滤 膜; 较佳地所述纳滤膜选自孔径为 10— 50nm 的纳滤膜。 所述超滤膜选自孔 径在 1000道尔顿以上的超滤膜; 较佳地所述超滤膜选自孔径在 100000道尔 顿以上的超滤膜。 所述溶液 pH5-10, 较佳地为 pH6-8,所用缓冲液可以是磷 酸盐、 醋酸盐或 Tri s缓冲液等。
所述的阴离子交换层析处理是将糖蛋白浓度为 15— 60毫克 /毫升 (较佳 地为 20— 40毫克 /毫升, 更佳地为 25— 35毫克 /毫升) 的溶液通过阴离子交 换树脂, 使得朊病毒被吸附在树脂上, 而糖蛋白随着洗脱液流出, 从而去除 和 /或灭活朊病毒。 所述溶液 pH5-10, 较佳地为 pH6-8, 所用缓冲液可以是 磷酸盐、 醋酸盐或 Tri s缓冲液等。 可以使用本领域常规的阴离子交换树脂, 例如但不限于, DEAE Sephadex A50, Q Sepharose FF或 DEAE Sepharose FF。 本发明提到的上述特征, 或实施例提到的特征可以任意组合。 本案说明书 所揭示的所有特征可与任何组合物形式并用, 说明书中所揭示的各个特征, 可 以任何可提供相同、 均等或相似目的的替代性特征取代。 因此除有特别说明, 所揭示的特征仅为均等或相似特征的一般性例子。 本发明的主要优点在于:
1、 本发明提供的方法安全、 高效。
2、 本发明提供的方法条件温和, 适合于工业化生产。 下面将结合具体实施例, 进一步阐述本发明。 应理解, 这些实施例仅用 于说明本发明而不用于限制本发明的范围。 下列实施例中未注明具体条件的 实验方法, 通常按照常规条件, 例如 Sambrook等人, 分子克隆: 实验室手 M (New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)中所述的条 件, 或按照制造厂商所建议的条件。 除非另外说明, 否则所有的百分比和份 数按重量计。
除非另行定义, 文中所使用的所有专业与科学用语与本领域熟练人员所 熟悉的意义相同。 此外, 任何与所记载内容相似或均等的方法及材料皆可应 用于本发明方法中。 文中所述的较佳实施方法与材料仅作示范之用。 朊病毒原溶液的制备
将受到朊病毒感染的动物的脑组织用高速匀浆器混匀 1分钟, 然后在含 0.5%十二烷基肌酸钠的磷酸缓冲液中进行六次超声波混匀, 每次 15 秒, 得 到均匀的脑组织匀浆。 将脑组织匀浆在 0°C培养 30分钟, 然后再次进行超声 波混匀 (共三次, 每次 15秒) 。
将匀浆在 4°C, 4500Xg条件下离心 30分钟, 弃去颗粒物, 取上清液, 用含 0.5%十二烷基肌酸钠的磷酸缓冲液稀释到最终浓度为 10% (w/v) , 即 为朊病毒原溶液, 保存在 -80°C±15°C待用。 实施例 1
将 50ml pH7.8±0.1 的磷酸缓冲液冷却到 12°C±2°C, 然后加入到 0.6g DEAE Sephadex A-50中。 将溶液在 12°C±2°C保持至少 15小时以使树脂充分 溶胀。 将溶胀好的树脂悬浊液装在 XK16柱中, 使最终床层体积为 15ml。 将 蠕动泵的管中充满 pH7.0±0.1 的醋酸钠缓冲液, 然后接在柱上。用上述缓冲 液平衡至少 5个柱体积 (75ml) , 控制流速在 0.17-0.18ml/min。 如果需要 可在柱的流出口测定流速, 调整泵速以控制流速。 收集并测量流出液的 pH, 直到确定其与进口缓冲液 pH 值相同。 关闭蠕动泵和柱出口, 直到上柱样品 准备完毕。
在 12°C±2°C 25ml平衡缓冲液 (醋酸钠缓冲液, pH7.0±0.1) 中, 边搅 拌边加入 750mg HCG粗制品(上海天伟生物制药有限公司提供,免疫效价 4855 IU/mg) 。 样品在 12°C±2°C持续搅拌适当时间, 以确保 HCG充分溶解。 然后 测量溶解液的 pH, 如果与平衡缓冲液不符, 可用醋酸或氢氧化钠溶液调节, 作为样品溶液, 保持在 12°C±2°C。
将朊病毒原溶液用超声波混匀 3次, 每次 15秒, 然后在 4°C, 4500Xg 条件下离心 30分钟,弃去颗粒物,取上清液,依次用孔径为 0.45μ ηι, 0.2μ ηι 和 0. Ι μ ηι的滤膜进行预过滤, 作为朊病毒溶液。
将 25ml样品溶液边搅拌边加入朊病毒溶液 2.5ml, 混匀后, 取样 lml, 测定初始病毒加入量以及 HCG免疫效价。
将 20mL加入病毒的样品溶液以 0.17-0.18ml/min 的流速通过层析柱, 同时开始收集流出液。 当上样结束后, 用平衡缓冲液洗柱, 流速控制在 0.10-0. llml/min。 收集到 50ml流出液时停止收集, 作为收集液。 混匀后取 样 lml, 测定病毒残留量以及 HCG免疫效价。
上述实验平行做 2份, 分别为实验 A、 实验 B。
病毒去除率的计算: 病毒去除率 = logl。病毒加入量 X上样体积 - logl。 病毒残留量 X收集体积
效价收率的计算:效价收率% = (上样体积 X上样溶液的免疫效价) ÷ (收 集体积 X收集溶液的免疫效价) X100%
病毒去除结果
Figure imgf000009_0001
结果表明, 对朊病毒而言, 病毒去除率大于 102, 可以认为这一步骤对 提高 HCG药物安全性、 去除朊病毒有一定的作用, 但是尚未到达 ICH要求的 大于 104的安全有效的标准;另外从 HCG的效价收率可以看出整个过程对 HCG 的活性没有任何影响, 说明此步骤不会使 HCG失活。 实施例 2
除样品为 750mg HMG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) 夕卜, 其 它步骤与实施例 1一致。
病毒去除结果
Figure imgf000010_0001
结果表明, 对朊病毒而言, 病毒去除率大于 102, 可以认为这一步骤对 提高 HMG药物安全性、 去除朊病毒有一定的作用, 但是尚未到达 ICH要求的 大于 104的安全有效的标准;另外从 HMG的效价收率可以看出整个过程对 HMG 的活性没有任何影响, 说明此步骤不会使 HMG失活。 对照例 1
除平衡液为 PH4. 0 ± 0. 1 的醋酸钠缓冲液之外, 样品及步骤都与实施例 1 致。
病毒去除结果
Figure imgf000010_0002
结果表明, 对朊病毒而言, 病毒降低量低于 1 logl O , 因此可以认为在 pH为 4. 0 ± 0. 1 的平衡液条件下, 这一步骤对提高 HCG生产安全、 去除朊病 毒几乎没有贡献。 对照例 2
除平衡液为 pH11.0±0.1 的磷酸盐缓冲液之外, 样品及步骤都与实施例
2一致。
实验结果
Figure imgf000011_0001
结果表明, 这一步骤在 pH11.0±0.1条件下对 HMG的活性有影响, 会导 致效价损失, 不适合产业化。 实施例 3
将朊病毒原溶液用超声波混匀 3次, 每次 15秒, 然后在 4°C, 4500Xg 条件下离心 30分钟,弃去颗粒物,取上清液,依次用孔径为 0.45 μ m, 0.2 μ m 和 0.1 μ m的滤膜进行预过滤, 作为朊病毒溶液。
在 40ml pH7.0±0.1 的醋酸铵溶液中, 边搅拌边溶解 1200mg HCG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) , 保持在 12°C±2°C。 将上述溶液边搅 拌边加入朊病毒溶液 0.4ml, 混匀后, 取样 lml, 测定初始病毒加入量以及 HCG免疫效价。
取 20ml加入病毒后的样品, 使用 0.2μ ηι的滤膜进行过滤, 将滤过液收 集在另一个容器中。 在最高压力不超过 30psi 条件下, 用 5ml pH7.0±0.1 的醋酸铵缓冲液洗涤滤器。测量过滤液体积,并取样测定病毒残留量以及 HCG 免疫效价。
上述实验平行做 2份, 分别为实验 A、 实验 B。
病毒去除率的计算: 病毒去除率 = logl。病毒加入量 X上样体积 - logl。 病毒残留量 X收集体积
效价收率的计算:效价收率% = (上样体积 X上样溶液的免疫效价) ÷ (收 集体积 X收集溶液的免疫效价) X100% 病毒去除结果
Figure imgf000012_0001
结果表明, 朊病毒去除率在 1 loglO左右或低于 1 loglO, 可以认为这 一步骤对提高 HCG药物安全性、 去除朊病毒几乎没有贡献。 实施例 4
除样品为 800mg HMG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) 夕卜, 其 它步骤与实施例 3—致。
病毒去除结果
Figure imgf000012_0002
结果表明,朊病毒去除率在 1 loglO左右, 可以认为这一步骤对提高 HMG 药物安全性、 去除朊病毒几乎没有贡献。 实施例 5
准备 Pall Ultipor VF DV20 (20nm纳滤膜) 滤器。 用 20ml无菌超纯水 在最大压力 30psi条件下充分湿润滤器。
将朊病毒原溶液用超声波混匀 3次, 每次 15秒, 然后在 4°C, 4500Xg 条件下离心 30分钟,弃去颗粒物,取上清液,依次用孔径为 0.45μ ηι, 0.2μ ηι 和 0.1 μ m的滤膜进行预过滤, 作为朊病毒溶液。
在 40ml pH7.0±0.1 的醋酸铵溶液中, 边搅拌边溶解 1200mg HCG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) , 保持在 12°C±2°C。 将上述溶液边搅 拌边加入朊病毒溶液 0.4ml, 混匀后, 取样 lml, 测定初始病毒加入量以及 HCG免疫效价。
取 20ml加入病毒后的样品, 在最高压力 30psi(2070mba)条件下经过已 湿润的 Pall VF DV 20 滤器过滤。 将滤过液收集在另一个容器中。 在最高压 力 30psi条件下, 用 5ml pH7.0±0.1 的醋酸铵缓冲液洗涤滤器。 测量过滤液 体积, 并取样测定病毒残留量以及 HCG免疫效价。
上述实验平行做 2份, 分别为实验 A、 实验 B。
病毒去除率的计算: 病毒去除率 = logl。病毒加入量 X上样体积 - logl。 病毒残留量 X收集体积
效价收率的计算:效价收率% = (上样体积 X上样溶液的免疫效价) ÷ (收 集体积 X收集溶液的免疫效价) Χ100%
病毒去除结果
Figure imgf000013_0001
结果表明, 朊病毒去除率在 1 loglO左右或低于 1 loglO, 可以认为这 一步骤对提高 HCG药物安全性、 去除朊病毒几乎没有贡献。 实施例 6
除样品为 800mg HMG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) 夕卜, 它步骤与实施例 3—致。
病毒去除结果
Figure imgf000013_0002
结果表明, 朊病毒去除率在 1 loglO左右或低于 1 loglO, 可以认为这 一步骤对提高 HMG药物安全性、 去除朊病毒几乎没有贡献。 实施例 7
将 50ml pH7.8±0.1 的磷酸缓冲液冷却到 12°C±2°C, 然后加入到 0.6g
DEAE Sephadex A-50中。 将溶液在 12°C±2°C保持至少 15小时以使树脂充分 溶胀。 将溶胀好的树脂悬浊液装在 XK16柱中, 使最终床层体积为 15ml。 将 蠕动泵的管中充满 pH7.0±0.1 的醋酸钠缓冲液, 然后接在柱上。用上述缓冲 液平衡至少 5个柱体积 (75ml) , 控制流速在 0.17-0.18ml/min。 如果需要 可在柱的流出口测定流速, 调整泵速以控制流速。 收集并测量流出液的 pH, 直到确定其与进口缓冲液 pH 值相同。 关闭蠕动泵和柱出口, 直到上柱样品 准备完毕。
在 12°C±2°C 25ml平衡缓冲液 (醋酸钠缓冲液, pH7.0±0.1) 中, 边搅 拌边加入 750mgHCG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) 。 样品在 12 °C±2°C持续搅拌适当时间, 以确保 HCG充分溶解。然后测量这一溶解样品的 ra和电导, 如果与平衡缓冲液不符, 可用醋酸或氢氧化钠溶液调节, 作为样 品溶液, 保持在 12°C±2°C。
将朊病毒原溶液用超声波混匀 3次, 每次 15秒, 然后在 4°C, 4500Xg 条件下离心 30分钟,弃去颗粒物,取上清液,依次用孔径为 0.45μ ηι, 0.2μ ηι 和 0.1 μ m的滤膜进行预过滤, 作为朊病毒溶液。
将 25ml样品溶液边搅拌边加入朊病毒溶液 2.5ml, 混匀后, 取样 lml, 测定初始病毒加入量以及 HCG免疫效价。
将 20mL加入病毒的样品溶液以 0.17-0.18ml/min 的流速通过层析柱, 同时开始收集流出液。 当上样结束后, 用平衡缓冲液洗柱, 流速控制在 0.10-0. llml/min。 收集到 50ml流出液时停止收集, 作为收集液。 加入 5倍 体积的无水乙醇沉淀, 离心收集沉淀, 用无水乙醇脱水, 真空干燥得 HCG中 间品 1。 准备 Pall Ultipor VF DV20滤器。 用 20ml无菌超纯水在最大压力 30psi 条件下充分湿润滤器。
在 20ml pH7.0±0.1 的醋酸铵溶液中, 边搅拌边溶解上述 HCG中间品 1, 保持在 12°C±2°C。 将此溶液用 0.2μηι的过滤膜进行过滤, 收集滤过液。
然后在最高压力 30psi(2070mba)条件下将上述滤过液经过已湿润的
Pall VF DV 20滤器过滤。 将滤过液收集在另一个容器中。 在最高压力 30psi 条件下, 用 5ml pH7.0±0.1 的醋酸铵缓冲液洗涤滤器。 测量过滤液体积, 并 取样测定病毒残留量以及 HCG免疫效价。
上述实验平行做 2份, 分别为实验 A、 实验 B。
病毒去除率的计算: 病毒去除率 = logl。病毒加入量 X上样体积 - log1Q 病毒残留量 X收集体积 效价收率的计算:效价收率% = (上样体积 X上样溶液的免疫效价) ÷ (收 集体积 X收集溶液的免疫效价) Χ100%
病毒去除结果
Figure imgf000015_0001
结果表明, 使用三步组合步骤对朊病毒去除率结果非常好, 大于 108 完全超过了 ICH要求的大于 104的安全有效的标准, 效果明显好于单个步骤 的结果以及对照例的结果。 因此可以认为使用三步组合步骤对提高 HCG药物 安全性、 去除朊病毒有着显著的效果, 而且 HCG的效价收率也很高, 完全适 合于工业化规模的生产。 实施例 8
准备 Pall Ultipor VF DV20滤器。 用 20ml无菌超纯水在最大压力 30psi 条件下充分湿润滤器。
将朊病毒原溶液用超声波混匀 3次, 每次 15秒, 然后在 4°C 4500Xg 条件下离心 30分钟,弃去颗粒物,取上清液,依次用孔径为 0.45μ ηι 0.2μ ηι 和 0. Ι μ ηι的滤膜进行预过滤, 作为朊病毒溶液。
在 40ml pH7.0±0.1 的醋酸铵溶液中, 边搅拌边溶解 800mg HMG粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) , 保持在 12°C±2°C。 将上述溶液边搅 拌边加入朊病毒溶液 0.4ml, 混匀后, 取样 lml, 测定初始病毒加入量以及 HMG免疫效价。
取 20ml加入病毒后的样品, 保持在 12°C±2°C。 将此溶液用 0.2 μ m的 过滤膜进行过滤, 收集滤过液。
然后在最高压力 30psi(2070mba)条件下将上述滤过液经过已湿润的
Pall VF DV 20滤器过滤。 将滤过液收集在另一个容器中。 在最高压力 30psi 条件下,用 5ml pH7.0±0.1 的醋酸铵缓冲液洗涤滤器。合并滤过液和洗涤液, 加入 4倍体积的无水乙醇沉淀, 离心收集沉淀, 用无水乙醇脱水, 真空干燥 得 HMG中间品 1 将 50ml pH7.8±0.1 的磷酸缓冲液冷却到 12°C±2°C, 然后加入到 0.6g DEAE Sephadex A-50中。 将溶液在 12°C±2°C保持至少 15小时以使树脂充分 溶胀。 将溶胀好的树脂悬浊液装在 XK16柱中, 使最终床层体积为 15ml。 将 蠕动泵的管中充满 pH7.0±0.1 的醋酸钠缓冲液, 然后接在柱上。用上述缓冲 液平衡至少 5个柱体积 (75ml) , 控制流速在 0.17-0.18ml/min。 如果需要 可在柱的流出口测定流速, 调整泵速以控制流速。 收集并测量流出液的 pH, 直到确定其与进口缓冲液 pH 值相同。 关闭蠕动泵和柱出口, 直到上柱样品 准备完毕。
在 12°C±2°C 20ml平衡缓冲液 (醋酸钠缓冲液, pH7.0±0.1) 中, 边搅 拌边加入上述 HMG 中间品 1, 样品在 12°C±2°C持续搅拌适当时间, 以确保 HMG充分溶解。然后测量这一溶解样品的 ra和电导,如果与平衡缓冲液不符, 可用醋酸或氢氧化钠溶液调节, 然后以 0.17-0.18ml/min 的流速通过 DEAE Sephadex A-50 层析柱, 同时开始收集流出液。 当上样结束后, 用平衡缓冲 液洗柱, 流速控制在 0.10-0. llml/min。 收集到 50ml流出液时停止收集, 作 为收集液。 取样测定病毒残留量以及 HMG免疫效价。
上述实验平行做 2份, 分别为实验 A、 实验 B。
病毒去除率的计算: 病毒去除率 = logl。病毒加入量 X上样体积 - logl。 病毒残留量 X收集体积
效价收率的计算:效价收率% = (上样体积 X上样溶液的免疫效价) ÷ (收 集体积 X收集溶液的免疫效价) X100%
病毒去除结果
Figure imgf000016_0001
结果表明, 使用三步组合步骤对朊病毒去除率结果非常好, 大于 108, 完全超过了 ICH要求的大于 104的安全有效的标准。 因此可以认为使用三步 组合步骤对提高 HMG药物安全性、 去除朊病毒有着显著的效果, 而且 HMG的 效价收率也很高, 完全适合于工业化规模的生产。 实施例 9
除起始样品为 2000mg LH粗制品 (上海天伟生物制药有限公司提供) 以 及用 100000道尔顿的超滤膜替代 Pall Ultipor VF DV20 (20nm纳滤膜) 夕卜, 其它步骤与实施例 7—致。
Figure imgf000017_0001
结果表明, 使用三步组合步骤对朊病毒去除率结果非常好, 大于 108, 完全超过了 ICH要求的大于 104的安全有效的标准。 因此可以认为使用三步 组合步骤对提高 LH药物安全性、 去除朊病毒有着显著的效果, 而且 LH的效 价收率也很高, 完全适合于工业化规模的生产。 实施例 10
HCG冻干针剂的制备
用于制造 10000瓶 HCG冻干针剂, 且每瓶含 1000 IU HCG的生产的典型 例子如下:
经过如实施例 7的三个步骤处理的 HCG精品, 但请注意此处的每个步骤 都不加入额外的病毒, 计算出的一定量(以生物效价为单位)然后溶解于 100 mL注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或 NaOH调节 pH7.0±0.2, 然 后用 0.22 μηι过滤器进行无菌过滤。
将 300 g甘露醇和 10.9 g Na¾P04 · 2¾0溶解于 3 L注射用无热原水中, 用 NaOH调节 pH 7.0±0.2, 用 0.22 μ ηι过滤器进行无菌过滤。 然后加入到 上述 HCG溶液中, 用注射用无热原水定容至 7.0 L, 混匀。
将上述溶液分装入西林瓶中, 每瓶 0.70 mL, 进行冷冻干燥。
所得到的西林瓶中, 每瓶含 1000 IU HCG和 30 mg甘露醇。 实施例 11
HMG冻干针剂的制备
用于制造 10000瓶 HMG冻干针剂, 且每瓶含 75 IU FSH和 75IU LH的生 产的典型例子如下:
经过如实施例 8的三个步骤处理的 HMG精品, 但请注意此处的每个步骤 都不加入额外的病毒, 计算出的一定量(以生物效价为单位)然后溶解于 100 mL注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或 NaOH调节 pH 6. 5 ± 0. 2, 然 后用 0. 22 μ ηι过滤器进行无菌过滤。
将 100 g乳糖溶解于 2 L注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或 NaOH调节 pH 6. 5 ± 0. 2, 用 0. 22 μ m过滤器进行无菌过滤。 然后加入到上述 HMG溶液中, 用注射用无热原水定容至 7. 5 L, 混匀。
将上述溶液分装入西林瓶中, 每瓶 0. 75 mL, 进行冷冻干燥。
所得到的西林瓶中, 每瓶含 75 IU FSH、 75 IU LH和 10 mg乳糖。 实施例 12
FSH冻干针剂的制备
用于制造 10000瓶 FSH冻干针剂, 且每瓶含 75 IU FSH的生产的典型例 子如下:
经过如实施例 8的三个步骤处理的 FSH精品, 但请注意此处的每个步骤 都不加入额外的病毒, 计算出的一定量(以生物效价为单位)的 FSH精品溶解 于 50 mL注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或 NaOH调节 pH 6. 5士 0. 2, 然后用 0. 22 μ ηι过滤器进行无菌过滤。
将 100 g乳糖溶解于 2 L注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或
NaOH调节 pH 6. 5 ± 0. 2, 用 0. 22 μ m过滤器进行无菌过滤。 然后加入到上述 FSH溶液中, 用注射用无热原水定容至 7. 5 L, 混匀。
将上述溶液分装入安瓿瓶中, 每瓶 0. 75 mL, 进行冷冻干燥。
所得到的安瓿瓶中, 每瓶含 75 IU FSH和 10 mg乳糖。 实施例 13
LH冻干针剂的制备
用于制造 10000瓶 LH冻干针剂, 且每瓶含 75 IU LH的生产的典型例子 如下:
经过如实施例 9 的三个步骤处理的 LH精品, 但请注意此处的每个步骤 都不加入额外的病毒, 计算出的一定量(以生物效价为单位)的 LH 精品溶解 于 50 mL注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或 NaOH调节 pH 6. 5士
0. 2, 然后用 0. 22 μ ηι过滤器进行无菌过滤。
将 100 g乳糖溶解于 2 L注射用无热原水中, 如果需要的话, 用 HC1或
NaOH调节 pH 6. 5 ± 0. 2, 用 0. 22 μ m过滤器进行无菌过滤。 然后加入到上述
LH溶液中, 用注射用无热原水定容至 7. 5 L, 混匀。
将上述溶液分装入安瓿瓶中, 每瓶 0. 75 mL, 进行冷冻干燥。
所得到的安瓿瓶中, 每瓶含 75 IU LH和 10 mg乳糖。 以上所述仅为本发明的较佳实施例而已, 并非用以限定本发明的实质技 术内容范围, 本发明的实质技术内容是广义地定义于申请的权利要求范围 中, 任何他人完成的技术实体或方法, 若是与申请的权利要求范围所定义的 完全相同, 也或是一种等效的变更, 均将被视为涵盖于该权利要求范围之中。

Claims

权 利 要 求
1. 一种去除和 /或灭活糖蛋白中的朊病毒的方法, 其特征在于, 所述的 方法由下述步骤构成:
(a) 将含糖蛋白的溶液进行微孔膜过滤;
(b) 将含糖蛋白的溶液进行纳滤膜过滤或超滤膜过滤;
(c) 将含糖蛋白的溶液进行阴离子交换层析;
所述步骤顺序为 (a) 、 (b) 、 和 (c) 或 (c) 、 (a) 、 和 (b) 。
2.如权利要求 1 所述的方法, 其特征在于, 所述的糖蛋白选自绒毛膜促性 腺激素、 卵泡剌激素、 黄体生成素、 绝经期促性腺素、 或其混合。
3.如权利要求 2所述的方法, 其特征在于, 所述绒毛膜促性腺激素是人绒 毛膜促性腺激素或其变体, 选自人尿来源的和 /或重组的人绒毛膜促性腺激素 或其变体; 所述绝经期促性腺素是人绝经期促性腺素或其变体, 选自人尿来 源的和 /或重组的人绝经期促性腺素或其变体; 所述卵泡剌激素是人卵泡剌 激素或其变体, 选自人尿来源的和 /或重组的人卵泡剌激素或其变体; 所述 黄体生成素是人黄体生成素或其变体, 选自人尿来源的和 /或重组的人黄体 生成素或其变体。
4.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (a) 中所述微孔膜选自孔 径为 0. l-l um的过滤膜; 更佳地为 0. l-0.45um的过滤膜。
5.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (b) 中所述纳滤膜选自 孔径为 1一 lOOnm的纳滤膜; 更佳地为 10— 50nm的纳滤膜。
6.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (b) 中所述超滤膜选自孔 径为 1000道尔顿以上的超滤膜; 更佳地为 100000道尔顿以上的超滤膜。
7.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (c) 中所述阴离子交换 层析在 pH5— 10的条件下进行。
8.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (c ) 中所述阴离子交换 层析在 PH6— 8的条件下进行。
9.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (c ) 中所述阴离子交换 层析的树脂的骨架介质包括琼脂糖, 葡聚糖, 纤维素, 苯乙烯和二乙烯基苯 的交联物, 丙烯酸和 /或其衍生物的交联物。
10.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (c ) 中所述阴离子交 换层析的树脂的活性基团选自二乙基季胺、 或二乙基氨基乙基。
1 1.如权利要求 1所述的方法, 其特征在于, 步骤 (c ) 中所述阴离子交 换层析的树月旨选自 DEAE Sephadex A50、 Q Sepharose FF或 DEAE Sepharose FF。
12 . 一种药物组合物, 其特征在于, 它包括权利要求 1 一 1 1任一所述的 方法获得的糖蛋白以及药学上可接受的载体。
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