WO2012009774A2 - Microrganismos recombinantes, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos, composições vacinais vetorizadas, seus usos, anticorpos, kit de diagnóstico e métodos de tratamento e/ou profilaxia - Google Patents

Microrganismos recombinantes, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos, composições vacinais vetorizadas, seus usos, anticorpos, kit de diagnóstico e métodos de tratamento e/ou profilaxia Download PDF

Info

Publication number
WO2012009774A2
WO2012009774A2 PCT/BR2011/000233 BR2011000233W WO2012009774A2 WO 2012009774 A2 WO2012009774 A2 WO 2012009774A2 BR 2011000233 W BR2011000233 W BR 2011000233W WO 2012009774 A2 WO2012009774 A2 WO 2012009774A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
seq
equi
vapg
antigen
compositions
Prior art date
Application number
PCT/BR2011/000233
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2012009774A3 (pt
Inventor
Hanna Ebert Seixas
Original Assignee
Hanna Ebert Seixas
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hanna Ebert Seixas filed Critical Hanna Ebert Seixas
Priority to EP11809093.5A priority Critical patent/EP2597151A4/en
Priority to AU2011282491A priority patent/AU2011282491A1/en
Publication of WO2012009774A2 publication Critical patent/WO2012009774A2/pt
Publication of WO2012009774A3 publication Critical patent/WO2012009774A3/pt
Priority to US13/740,941 priority patent/US20130236948A1/en

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02—Bacterial antigens
    • A61K39/05—Actinobacteria, e.g. Actinomyces, Streptomyces, Nocardia, Bifidobacterium, Gardnerella, Corynebacterium; Propionibacterium
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/74—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/52—Bacterial cells; Fungal cells; Protozoal cells
    • A61K2039/523—Bacterial cells; Fungal cells; Protozoal cells expressing foreign proteins

Definitions

  • the present invention provides recombinant living microorganisms such as prokaryotic organisms, in particular enterobacteria, preferably enteric Salmonella, containing the SEQ. ID No. 1 and SEQ. ID No. 2, capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4), optionally associated with other actives, vaccine preparation methods, antigens (SEQ. ID No. 3 and SEQ ID No. 4) and vaccine compositions, preferably vectorized vaccines.
  • prokaryotic organisms in particular enterobacteria, preferably enteric Salmonella, containing the SEQ. ID No. 1 and SEQ. ID No. 2, capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4), optionally associated with other actives, vaccine preparation methods, antigens (SEQ. ID No. 3 and SEQ ID No.
  • the present patent application is for the use of vaccine vectors in the preparation of pharmaceutical compositions, in particular, vaccines indicated for the prevention and / or treatment of Rhodococcus equi infections, their antibodies and / or antisera, kits of diagnosis and methods of prophylaxis and / or treatment of infections from R. equi infections.
  • Rhodococcus is composed of bacteria with varying (pleomorphic), gram-positive, non-mobile morphologies found in diverse environments such as soil, groundwater, oceans, insect gut microbiota and plant surfaces. All species of this genus are aerobic, non-sporulating and comprise a group of bacteria with diverse genetic and physiological characteristics (MART ⁇ NKOV ⁇ , L., UHN ⁇ KOV ⁇ , B., P ⁇ TEK, M., NESVERA, J., KREN, V. Biodegradation potential of the genus Rhodococcus. Environment International 2009 Jan; 35 (1): 162-77. Epub 2008 Sep 11).
  • Rhodococcus species have been described with potential use in industrial and biotechnological processes due to the production of a number of commercially important enzymes (BELL, KS, PHILP, J. C, AW, DW, CHRISTOFI, N. The genus Rhodococcus. Journal of Applied Microbiology 1998 Aug; 85 (2): 195-210).
  • An interesting fact is that Rhodococcus strains can be used in the degradation of organic compounds as a proposal for environmental and industrial bioremediation (GAKHAR, L., MALIK, ZA, ALLEN, C. C, LIPSCOMB, DA, LARKIN, MJ , RAMAS WAMY, S. Structure and increased thermostability of Rhodococcus sp.
  • R. bronchialis Some species, such as R. bronchialis are occasionally related to human pathogens, but the most important species as a potential pathogen is R. equi (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews 2009 Sep; 33 (5): 870-91 Epub 2009 Apr 23).
  • R. equi are usually found in dry soils with dispersion through dust. This microorganism is commonly associated with diseases in horses, and is one of the main etiologic agents of foal pneumonia.
  • Rhodococcus equi Archive Congress Medutica, M., ALDERSON, G. The actinomycete-genus Rhodococcus: a home for the "rhodochrous" complex. Journal of General Microbiology. 1977 May; 100 (l): 99-122).
  • R. equi The main virulence characteristics of R. equi are associated with extra-chromosomal antigen production. These antigens are made from plasmids, double-stranded circular molecules of DNA that are capable of replication. independent of the microorganism's somatic chromium DNA.
  • plasmids double-stranded circular molecules of DNA that are capable of replication. independent of the microorganism's somatic chromium DNA.
  • vap virulence-associated protein
  • Vap genes have been classified into several subtypes, and are distributed on this pathogenicity island in a triple cluster, VapA, VapC and VapD; VapE and VapF, or distinct individual distribution, as observed for the remaining VapG and VapH.
  • plasmids may be present in multiple copies in the same bacterial cell, and are often lost when cultured repeatedly in culture broths at 38 ° C (TAKAI, S., KOIKE, K., OHBUSHI, S., IZUMI, C, TSUBAKI, S. Identification of 15- to 17-kilodalton antigens associated with virulent Rhodococcus equi Journal of Clinical Microbiology 1991 Mar; 29 (3): 439-43). Although there are other elements associated with virulence, such as polysaccharide capsule and lipolytic enzyme production, R.
  • equi plasmids are considered essential for the pathogenesis (GIGU ⁇ RE, S., HONDALUS, MK, YAGER, JA, DARRAH, P., MOSSER. , DM, PRESCOTT, JF Role of the 85-kilobase plasmid and plasmid-encoded virulence-associated protein A in intracellular survival and virulence of Rhodococcus equi Infection and Immunity 1999 Jul; 67 (7): 3548-57).
  • strains that are characterized by producing the subtype A (VapA), produced from the VapA gene have been described as potential pathogens for foals (TAN, C, PRESCOTT, JF, PATTERSON, M.C., NICHOLSON, VM Molecular characterization of a lipid-modified virulence-associated protein of Rhodococcus equi and its potential in protective immunity. Canadian Journal of Veterinary Research. 1995 Jan; 59 (1): 51-9; VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews. 2009 Sep; 33 (5): 870-91. Epub 2009 Apr 23).
  • VapA The functions of VapA, and other Vap subtypes, are still unknown.
  • VapA is known to be a lipoprotein that remains tightly bound to the surface of the bacterial cell.
  • subtypes C, D, E, G and H also have similar functionality characteristics, presenting signal peptide sequences for cell surface secretion or localization, and are also related to virulent R. equi (KOHLER, A. K. STONE, DM, HINES, MT, BYRNE, BA, ALPERIN, D.C, NORTON, LK, HINES, SA Rhodococcus equi secreted antigens are immunogenic and stimulate a type 1 recall response in the lungs of horses immune to R equi infection Infection and Immunity 2003 Nov; 71 (11): 6329-37).
  • these subtypes are very likely to exhibit characteristics of interaction with host molecules, allowing their survival within cells of the immune system.
  • These proteins have some degree of identity between them in amino acid composition, ranging from 39 to 76%, and the degree of homology is as greater as they are closer to the carboxy terminal end of their molecules (BYRNE, BA, PRESCOTT, J. F, PALMER, GH, TAKAI, S., NICHOLSON, VM, ALPERIN, D. C. HINES, SA Virulence plasmid of Rhodococcus equi contains inducible gene family encoding secreted proteins. Infection and Immunity. 2001 Feb; 69 (2): 650-6).
  • R. equi infections are foals up to four months old who have severe pneumonia, culminating in pulmonary abscesses. Without antibiotic therapy mortality reaches 80%, however, by about 12% reduced with the establishment of antibacterial chemotherapy using the combination of rifampicin and erythromycin (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi FEMS Microbiology Reviews 2009 Sep; 33 (5): 870-91 Epub 2009 Apr 23).
  • R. equi is phagocytized by pulmonary epithelial defense cells (alveolar macrophages), and reside within these cells with death escape mechanisms within cytoplasmic vesicles (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular). and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi FEMS Microbiology Reviews 2009 Sep; 33 (5): 870-91 Epub 2009 Apr 23).
  • Pulmonary lesions arise through the recruitment of defense cells to the environment of infection.
  • neutrophils and macrophages fill the alveolar space, creating an inflammatory environment that progresses to necrotic lung parenchymal lesions.
  • Granulomatous lesions are common and can rupture by spreading R. equi to other host organs (PRESCOTT, J.F. Rhodococcus equi: an animal and human pathogen. Clinical Microbiology Reviews. 1991 Jan; 4 (1): 20-34).
  • R. equi can be isolated even from its respiration, but direct host-host transmission has not yet been reported (MUSCATELLO, G., GILKERSON, JR, BROWNING, GF Detection of virulent Rhodococcus equi in exhaled air samples from naturally infected foals Journal of Clinical Microbiology 2009 Mar; 47 (3): 734-7 Epub 2009 Jan 14).
  • Foals up to six months old are more susceptible to infection, with a higher incidence in animals two months since birth, and the disease occurs mainly in environments where horses are reared.
  • the infectious condition has a variable duration, usually around one to three weeks, presenting a high mortality rate.
  • the first signs of progressive chronic disease are fever above 41 ° C, increased respiratory rate, broncho-vesicular wheezing with airway wheezing, cough, runny nose and depression (PRESCOTT, JF Rhodococcus equi: an animal and human pathogen. Clinical Microbiology Reviews. 1991 Jan; 4 (1): 20-34).
  • Severe diarrhea is frequent and indicates colonization of the intestinal mucosa by R. equi. Symptoms may progress to respiratory failure and the untreated animal succumbs to asphyxiation and dies. Occasionally, the disease can progress acutely, killing the animal in less than 48 hours.
  • R. equi infections Treatment of R. equi infections is prolonged and consists of the combination of two or more antibiotics. Proper treatment, adopted from the early stages of infection by susceptible strains, should result in cure. However, prolonged antibiotic treatment has a high cost as a major disadvantage, and favors the emergence of resistant strains (Muscello, G., Leonard, DP, KLAYT, M., Ocampo-Sosa, A., Lewis, DA, FOGARTY, U., BUCKLEY, T., GIL ERSON, JR, MEIJER, WG, VAZQUEZ-BOLAND, JA Rhodococcus equi infection in foals: the science of 'rattles' Equine Vet J. 2007 Sep; 39 (5): 470 -8).
  • VapA in R. equi virulence, it is reasonable for vaccine development to be based on this subtype.
  • efforts to construct vaccines to produce this constituent through recombinant DNA technology have not yielded satisfactory results (VANNIASINKAM, T., BARTON, MD, HEUZENROEDER, MW. upon the VapA protein of the horse pathogen, Rhodococcus equi, in a murine model.
  • VANNIASINKAM T., BARTON, MD, HEUZENROEDER, MW.
  • VapA-based vaccine constructs which classically modulate the immune response to a Th1 pattern, have not been able to protect animal models against R. equi infection (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection). biology of the horse pathogen Rhodococcus equi FEMS Microbiology Reviews 2009 Sep; 33 (5): 870-91 Epub 2009 Apr 23).
  • European patent EP 827,410 shows a method of introducing endogenous or exogenous genes into animal cells using live bacteria as vectors.
  • European patent EP 500,699 describes methods for individual immunization for protection against Gram-negative bacterial infections, vaccine compositions containing live avirulent Salmonella.
  • European patent EP 1,537,214 discloses a host vector system exhibiting bacterial lysis regulation to enable the release of desirable genetic vaccine vectors or gene products to a eukaryotic cell.
  • VapG antigen by R. equi is high in both lung tissue and in vitro culture, and is higher than all other Vap antigens (JACKS, S., GIGU ⁇ RE, S., PRESCOTT, JF In vivo expression of and cell-mediated immune responses to the plasmid-encoded virulence-associated proteins of Rhodococcus equi in foals Clinical Vaccine Immunology 2007 Apr; 14 (4): 369-74 Epub 2007 Feb 14).
  • this constituent has not been used in vaccine strategies to date, indicating that the use of this factor as a potential immunogen may have been underestimated.
  • the Depositor has developed vector-containing vaccine compositions that produce an immune response against R. equi. DESCRIPTION OF THE FIGURES
  • Figure 1 depicts the agarose gel electrophoretic profile of the polymerase chain reaction (PCR) amplified polynucleotide using the recombinant Salmonella chi-3987 vaccine strains DNA as a template.
  • PCR polymerase chain reaction
  • Figure 2 shows a diagram of a recombinant asd + plasmid showing the location of the vapG gene.
  • Figure 3 shows the results of persistence of recombinant strains, control (PYA control) and expressing only VapG (vapG), mouse spleen (3a) and liver (3b). Persistence is measured by counting bacterial colony forming units (CFUs) in animal organs.
  • Figure 4 presents the results of R. equi cell recovery in the spleen and liver of mice, immunized with Salmonella vaccine strains and shredded with an intravenous dose of one hundred million R. equi cells.
  • Figure 5 demonstrates the first 70 amino acids of the VapG polypeptide sequence, and highlights in gray the residues involved in the lipoprotein cleavage site. The bars indicate probable signal peptide cleavage sites, and the larger bar indicates a greater likelihood of cleavage between the alaninyl ("A”) and glutamyl (“E”) residues.
  • A alaninyl
  • E glutamyl
  • Figure 6 shows the electrophoretic profile (SDS-PAGE) of proteins extracted from attenuated Salmonella cells, fully expressing the R. equi recombinant VapG antigen, pointed by a black circle.
  • Figure 7 shows the interferon gamma pattern produced as a characteristic of the Th1 immune response against R. equi by immunization with the Salmonella (vapG) vaccine strain. * p ⁇ 0.05. DESCRIPTION OF THE INVENTION
  • the present invention provides recombinant living microorganisms such as prokaryotic organisms, in particular enterobacteria, preferably enteric Salmonella, containing the SEQ. ID No. 1 and SEQ. ID No. 2, capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4), optionally associated with other actives, vaccine preparation methods, antigens (SEQ. ID No. 3 and SEQ ID No. 4) and vaccine compositions, preferably vectorized vaccines.
  • prokaryotic organisms in particular enterobacteria, preferably enteric Salmonella, containing the SEQ. ID No. 1 and SEQ. ID No. 2, capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4), optionally associated with other actives, vaccine preparation methods, antigens (SEQ. ID No. 3 and SEQ ID No.
  • the present patent application is for the use of vaccine vectors in the preparation of pharmaceutical compositions, in particular, vaccines indicated for the prevention and / or treatment of Rhodococcus equi infections, their antibodies and / or antisera, kits of diagnosis and methods of prophylaxis and / or treatment of infections from R. equi infections.
  • the microorganisms of the present application consist of living, non-pathogenic and recombinant microbiological vectors, capable of expressing at least one R. equi polypeptide, and presenting to the immune system in a recipient environment in order to function. as an antigen presenter of heterologous origin and generate an immune response against R. equi.
  • the present invention is intended for recombinant living microorganisms such as prokaryotic organisms, in particular enterobacteria, preferably enteric Salmonella, containing the SEQ. ID No. 1 and SEQ. ID No. 2, capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4) and / or their derivatives, as vaccine vectors.
  • heterologous nucleic acid codes for R. equi VapG antigen (SEQ. ID. No. 3) and heterologous nucleic acid (SEQ. ID. No.
  • the R. equi polypeptide may also contain other derivatives of VapG antigen, such as VapA, VapC, VapD, VapE, VapF, VapH and / or homologous polypeptides, where portions of the N-terminal region are deleted, suppressing the signal peptide and lipidification sites of the molecule.
  • N-terminal and C-terminal portions represent the start and end portions of a protein or polypeptide translation, respectively.
  • translations begin at the methioninyl residue, numbered as "1" ("M").
  • the polypeptides of the present invention may comprise from 55% to 100% identity, preferably 70% identity to the R. equi VapG protein, including any resulting variations and fragments, which are capable of stimulating an immune response against R. equi
  • the immunogenic polypeptide encompasses the contiguous sequence from at least 15 amino acids of any characteristic portions of the R. equi VapG protein, preferably with 10 identical amino acids in the portions of the R. equi VapG protein, having the same identity. 55% to 100%, more particularly 70% identity to the template portion of the R. equi VapG protein (SEQ. ID. No. 3), most preferably further comprising an amino acid sequence of 1 ⁇ 61 or 1 ⁇ 1. 1772 of VapG (SEQ. ID. No.
  • the VapG protein (SEQ ID NO: 3) has extracted N-terminal moieties without the first 5 to 50 amino acids of the N-terminal moiety or without the last 5 to 50 amino acids of the C-terminal moiety.
  • the R. equi polypeptides may be expressed as fusion proteins or as multiple polypeptides separately.
  • the R. equi polypeptide may be expressed as a fusion protein comprising VapG and / or VapA antigen polypeptide sequences.
  • polynucleotide sequences may be associated with other actives, such as other Vap proteins and / or adjuvants for modulating the immune response.
  • polynucleotides described in this application are preferably contained in an extrachromosomal vector (plasmid), however, they may be integrated into the bacterial chromosome.
  • this invention further describes the method of preparing Salmonella vaccine strains comprising: i) mutations for attenuation of virulence; ii) one or more expression gene fragments, with each fragment comprising a nucleic acid sequence of heterologous origin (SEQ. ID No. 1 and SEQ. ID No. 2) under transcriptional control of a constitutive or inducible promoter. wherein the nucleic acid sequence is oriented so as to partially and / or fully encode an R. equi virulence antigen (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4) and optionally iii) a mutation in a gene essential for its multiplication, making it auxotrophic for components that are added to the culture medium, without the need to use antibiotics for selection.
  • the attenuated Salmonella strains used in the present invention include strains containing mutations in genes responsible for the synthesis of aromatic compounds (delta aro), in genes that interfere with physiological mechanisms of the gene. (delta-cya and delta-crp), or genes encoding the expression of nucleic acid-binding bacterial proteins (lays, delta-d, delta-q, delta-hupA, delta-hupB or delta-ha).
  • delta-aro genes responsible for the synthesis of aromatic compounds
  • delta-cya and delta-crp genes encoding the expression of nucleic acid-binding bacterial proteins
  • attenuated Salmonella strains containing a mutation in the rim delta-aro
  • an attenuated Salmonella strain containing mutations in the cya and crp genes delta-ci / ⁇ and delta-crp.
  • Another mutation strategy for selection of recombinant Salmonella strains and assurance of stability of a plasmid constructed for recombinant protein expression refers to mutation in a gene associated with biosynthesis of cell wall components, such as gene mutation.
  • asd which codes for aspartate semialdehyde dehydrogenase, an enzyme that participates in the synthesis of bacterial cell wall structures, and makes the bacterial cell dependent on diamino-pimelic acid for its growth.
  • the asd gene can be complemented by introducing a gene fragment into the plasmid, with all the characteristics for asd gene expression.
  • the result of the introduction of these plasmids into delta-asd bacterial strains, where delta means absence or inactivation of the gene, is the selection of recombinant clones in culture medium without supplementation, which express the R. equi recombinant protein.
  • the attenuating mutation is the result of the absence or inactivation of at least one gene associated with its pathogenicity, where the attenuated Salmonella is derived from the serovar Typhimurium UK-1 enteric parent strain.
  • the constitutive promoter guides expression of the recombinant protein independent of bacterial cell growth phase, cellular metabolism or the presence of inducers.
  • the inducible promoter directs expression of the recombinant protein under conditions of nutritional and / or oxidative stress or by the addition of an inducing chemical component.
  • an in vivo inducible promoter may be used which is dependent on structures of the recipient organism and directing expression of the recombinant protein through the host cell transcription machinery.
  • the attenuated Salmonella strain used in this application comprises a mutation in the aroA gene encoding the enzyme 5-enol-pyruvl-shikimato-3-phosphate synthase (EPSPS), which is a common precursor in the biosynthesis of numerous bacterial aromatic compounds. and other organisms.
  • EPSPS 5-enol-pyruvl-shikimato-3-phosphate synthase
  • the delta lineage used is S. enteral serovarity H683 Typhimurium.
  • the present patent application further discloses the use of promoters for bacterial expression, such as the bacteriophage, T3, T7 and / or SP6 enterobacterial tac, pac, rac, trc, lpp, dps or recA promoters.
  • promoters for bacterial expression such as the bacteriophage, T3, T7 and / or SP6 enterobacterial tac, pac, rac, trc, lpp, dps or recA promoters.
  • yeast MET2 MET25 promoters
  • the virus RSV, CMV, HTLV and SV40 promoters and mammalian beta-Actin, mPGK, eF4alpha, CAG and ENS-I can be used.
  • the R. equi polypeptides may contain codon adjustments for expression in various vectors, preferably Escherichia coli, for example, the delta-chd 1776 lineage.
  • the present invention deals with R. equi VapG antigen (SEQ. ID NO: 3) expressed so as not to contain lipidification sites, where it may optionally include the VapG antigen associated with other R. equi Vap antigens, selected from a group of polypeptides showing absence of up to 50 amino acids of the N-terminal moiety (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4).
  • Recombinant antigen (SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4) may be produced and purified by electrophoresis, filtration, chromatography, centrifugation and / or combinations of these methods. Further, the substantially purified antigen may contain from 60 to 99% of the substance alone, as long as it does not contain toxic byproducts of the purification.
  • the present invention relates to vaccine compositions containing the recombinant vaccine vector (SEQ. ID. No. 1 and SEQ. ID. No. 2) capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID No. 3 and SEQ ID No. 4) in pharmaceutically acceptable vehicles, preferably vectorized vaccines.
  • the recombinant vaccine vector SEQ. ID. No. 1 and SEQ. ID. No. 2
  • the recombinant vaccine vector capable of expressing VapG and / or VapA / VapG lipoproteins (SEQ. ID No. 3 and SEQ ID No. 4) in pharmaceutically acceptable vehicles, preferably vectorized vaccines.
  • the vaccine composition may comprise homogeneous bacterial cell population.
  • the compositions may also have a plurality of bacterial cells from different isolates, such as a homogeneous attenuated Salmonella population comprising a population of cells capable of expressing the R. equi VapG antigen and the plurality. which comprises more than one attenuated Salmonella population, with a population of cells expressing R. equi VapG and a second population expressing VapA, VapC and / or VapH.
  • the vaccine composition of the present invention may exhibit the association of a purified recombinant antigen, such as an attenuated Salmonella population capable of expressing purified recombinant VapA, VapC and / or VapH antigen-associated VapG, in a pharmaceutically acceptable carrier and / or diluent.
  • a purified recombinant antigen such as an attenuated Salmonella population capable of expressing purified recombinant VapA, VapC and / or VapH antigen-associated VapG
  • the vaccine composition contains attenuated Salmonella capable of expressing recombinant antigen fusions, comprising two or more single-frame immunogenic sequences of R. equi fused antigens.
  • Recombinant antigens may be fused to other polypeptide sequences and / or immunostimulatory molecules such as cytokines and chemokines.
  • the present invention also encompasses the co-expression of one or more genes encoding immunostimulatory proteins such as cytokines and chemokines such as IFN-alpha, IFN-beta, IFN-gamma, IL-2, IL-3, IL -4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-11, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15 or IL-16 .
  • immunostimulatory proteins such as cytokines and chemokines such as IFN-alpha, IFN-beta, IFN-gamma, IL-2, IL-3, IL -4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-11, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15 or IL-16 .
  • co-expression is defined as the construction of vectors comprising the heterologous polynucleotide fragment for expression of one or more cytokine and / or chemokine genes, associated with another heterologous polynucleotide fragment for expression of polypeptide (s) related to VapG from R. equi.
  • compositions of the present application may also contain adjuvants, such as, for example, a CpG oligodeoxynucleotide adjuvant, aluminum compounds (aluminum hydroxide, aluminum oxide or aluminum phosphate), oily adjuvants (mineral oil, Freund's complete or incomplete adjuvants).
  • adjuvants such as, for example, a CpG oligodeoxynucleotide adjuvant, aluminum compounds (aluminum hydroxide, aluminum oxide or aluminum phosphate), oily adjuvants (mineral oil, Freund's complete or incomplete adjuvants).
  • adjuvants originating from mycolic acid (trehalose dimicolate), bacterial lipopolysaccharides (LPS), peptidoglycans (murein, mucopeptide), glycoproteins (N-Opaque, muramyl dipeptide analogs), proteoglycans, streptococcal preparations (OK432), saponin (neutral oils) migliol), vegetable oils, liposomes, polyols, vitamin E, Carbopol, interleukins and / or combinations thereof.
  • mycolic acid trehalose dimicolate
  • LPS bacterial lipopolysaccharides
  • peptidoglycans murein, mucopeptide
  • glycoproteins N-Opaque, muramyl dipeptide analogs
  • proteoglycans streptococcal preparations
  • vegetable oils liposomes, polyols, vitamin E, Carbo
  • compositions of the invention may contain pharmaceutically acceptable excipients and / or carriers such as liquid solutions such as saline, hypochlorite and / or other non-toxic salts at near physiological osmolarities, a solid solvent or a encapsulation material, where the vaccine may be resuspended or dissolved.
  • the pharmaceutically acceptable carrier further must be nontoxic to the recipient organism and compatible with the attenuated living microorganism.
  • Pharmaceutical excipients and carriers may be chosen from starch, glucose, lactose, sucrose, gelatin, malt, rice, flour, chalk, silica gel, sodium stearate, magnesium stearate, glycerol monostearate, ascorbic acid, talc, sodium chloride. , milk powder, maltodextrin, glycerol, propylene, glycol, water, ethanol, preservatives, sweeteners and / or combinations thereof.
  • one embodiment of the invention indicates a vaccine composition
  • a vaccine composition comprising a lyophilized microorganism, in particular an attenuated S. enteric serovar Typhimurium strain, with deletions in the cya, crp and asd genes (delta-cya, delta-crp and delta-sd). ) in suspension containing at least one excipient chosen from lactose, sorbitol, dibasic sodium phosphate, monobasic potassium phosphate, sucrose, sterile saline and / or water.
  • compositions of the present invention may be administered by invasive methods such as, for example, parenteral, subcutaneous, intravenous, intramuscular, intraperitoneal, transdermal, intramucosal, intranasal, intragastric and / or non-invasive methods, such as oral, rectal, inhalation. , nasal and / or ocular, preferably oral and nasal.
  • invasive methods such as, for example, parenteral, subcutaneous, intravenous, intramuscular, intraperitoneal, transdermal, intramucosal, intranasal, intragastric and / or non-invasive methods, such as oral, rectal, inhalation.
  • nasal and / or ocular preferably oral and nasal.
  • the dosage forms of the present patent application may range from gelatin capsules, pills, tablets, dragees, elixirs, suspensions, syrups, spray suspensions, preferably vaccines.
  • gelatin capsules may serve as carriers for lyophilized vaccines.
  • the present invention is for the use of vectors in the preparation of pharmaceutical compositions, in in particular, vectorized vaccines indicated for prevention and / or treatment of Rhodococcus equi infections.
  • infections refer to conditions associated with R. equi infection, such as pyogranulomatous pneumonia and / or colitis.
  • the immune response is characterized by a cell-mediated pattern of immunity associated with a mucosal immune response, producing immunoglobulin isotype A (IgA) specific for recombinant R. equi protein.
  • IgA immunoglobulin isotype A
  • the present invention includes isolated or substantially purified antisera, antibodies produced against recombinant antigens (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4).
  • Antisera and antibodies can be purified by affinity chromatography with recombinant antigens.
  • the invention in a seventh embodiment, relates to a diagnostic kit containing one or more recombinant R. equi Vaps (SEQ. ID. No. 3 and SEQ. ID. No. 4) antigens (SEQ. ID. No. 1 and SEQ ID No. 2) together with their specific antibodies. Additionally, the kit is intended for the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for diagnosing R. equi infections.
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • the present invention provides methods of prophylaxis and / or treatment from two immunizations, one initial and one booster suitable for administration of vaccines.
  • at least one vaccine composition of the present invention is used, wherein the administration of one or more vaccine compositions may be to a recipient organism, the recombinant polypeptide being provided in the context of the immune system vaccine vector.
  • receiver a vertebrate, and a second composition being used as a booster dose.
  • the method for vaccinating a recipient organism against R. equi occurs by oral administration to an equine at high risk for an R. equi infection or an equine already presenting with the R. equi infection, including other animals. vertebrate hosts.
  • Attenuated refers to a genetically modified microorganism for the purpose of not causing disease in humans or animal models.
  • Vaccine vector refers to an avirulent circular bacterium, virus, or nucleic acid molecule used for the expression of heterologous antigens in a host environment, constructed to stimulate a protective immune response, assembled from the recombinant antigen. as part of the naturally producing microorganism.
  • immune response refers to the assembly of a response by the host that confers protective immunity and may considered to be sufficient response to prevent the recipient organism from developing symptoms related to the infection.
  • gene expression fragment refers to a nucleic acid construct comprising a nucleic acid of heterologous origin that is under transcriptional control of a promoter.
  • immunogenic polypeptide refers to a portion of a protein associated with the virulence of R. equi or the entire protein, as naturally expressed by R. equi.
  • the immunogenic polypeptide must be capable of stimulating an immune response when expressed by the bacterial vaccine vector in the recipient organism's environment.
  • pharmaceutically acceptable means a composition approved by regulatory agencies or included in National and / or Internationally Recognized Pharmacopoeias.
  • promoter refers to a nucleotide sequence of nucleic acids responsible for the binding of protein complexes comprising an RNA polymerase enzyme, resulting in the start of transcription of a juxtaposed gene.
  • nucleic acid refers to deoxyribonucleotides (DNA) or ribonucleotides and their polymers, either in single or double stranded form. These terms relate to nucleic acids that contain natural nucleotide analogs, which have binding properties identical to the reference nucleic acids, and are metabolised in a similar manner to naturally occurring nucleotides. Also, the term nucleic acid is used to describe genes, complementary DNA (cDNA), and the transcribed messenger RNA (mRNA) of a gene.
  • cDNA complementary DNA
  • mRNA messenger RNA
  • nucleic acid includes DNA molecules of any origins (cDNA or genomic), RNA molecules, DNA or RNA analog molecules, generated from reactions with analog nucleotides.
  • identity referring to nucleic acid and protein sequences, refers to the comparison between two or more polynucleotide sequences or between two or more polypeptide sequences, respectively.
  • transformation is used to refer to the transfer of nucleic acid into a cell
  • gene transformation refers to the transfer and incorporation of recombinant DNA within a cell
  • variant is used to refer to polynucleotides or polypeptides that differ when compared to reference nucleic acid or polypeptides, yet retain their essential properties.
  • strains and plasmids were obtained from commercial sources and were used according to their manufacturers. The identity and purity of all compounds were verified by LC-MS and 1H NMR analysis.
  • the bacterial strains used in the present invention are described in Table 1.
  • the Saimonella strain used was delta-ci, -crp and -asd, called chi-3987.
  • vapG gene The structural sequence of the vapG gene was obtained by DNA amplification reaction (PCR) using the primers (SEQ. ID No. 5 and SEQ. ID No. 6), containing enzyme cleavage sites. endonucleases BamHl and SaR.
  • PCR amplification was performed in a final volume of 50 microliters, using a set of commonly used reagents, and the product of this reaction (SEQ. ID. NO. 1) is shown in Figure 1.
  • the amplification reaction was performed by methods described in the state of the art. With the amplification, the obtained fragments were constituted by the BamHI and SaR endonuclease cleavage sites, flanking the vapG structural gene, thus enabling the cloning of the amplified fragment, digested by these endonucleases, into the asd + plasmid digested with the same endonucleases.
  • VapG antigen expression cassette was inserted into plasmid asd + through the HamHI and SaR endonuclease restriction sites. This construction was performed without codon optimization, however, VapG encoding polynucleotides may contain modifications that do not alter the expression polypeptide sequence.
  • this recombinant plasmid is ready for introduction by electroporation into cloning strains, such as Escherichia coli delta-asd chi.6212, and Salmonella vaccine strains.
  • the recombinant asd + plasmid (vapG) was plotted in Figure 2.
  • the electroporation procedure was performed by adding 5.0 microliters of the recombinant plasmid suspension to 40 microliters of electrocompetent bacterial cells. Electroporation was performed in a BioRad Electroporator under conditions of 12.5 kilo volts / cm, 200 ohms and 25 microFaraday. Electroporation procedures were first performed on cloning cells (E. coli chi.6212) for later plasmid extraction and introduction into Salmonella vaccine cells (chi.3987). All clones were selected based on growth in artificial solid culture media without the addition of supplements.
  • Bacterial delta-asd clones carrying plasmid asd + were grown in these culture media without the addition of diamino-pimelic acid supplement, indicating the activity of these plasmids by the selected clones. Some smaller clones may grow after a day's incubation, and surround larger clones, which are satellite colonies that take advantage of the metabolism of nearby positive clones to grow without carrying the recombinant asd + plasmids.
  • Control strains were transformed with the empty asd + plasmid, ie without cloning cassettes. Selected colonies were grown in 3.0 milliliters of artificial broth. Bacterial suspensions in liquid media were processed for plasmid DNA extraction, analysis and sequencing, and part of was separated for primary storage of samples. For the samples that were characterized by containing the vapG gene, subsequent cultivation was performed in enriched broth (Luria-Bertani, LB) to construct cell banks for negative temperature stock at 80 ° C. All of these procedures were the same for vaccine clones and control clones, containing only empty asd + plasmid.
  • enriched broth Lia-Bertani, LB
  • mice Female isogenic mice, 6 to 8 weeks old, from the BALB / c strain were used. Two experimental groups were formed containing 12 BALB / c mice. In group I, the animals were immunized with the vaccine strain containing the recombinant asd + plasmid for the vapG expression cassette, and in group II, the animals received the vaccine strain containing the empty asd + plasmid. The mice were orally inoculated with 200 microliters of the bacterial suspensions in a single dose of approximately 100 million bacterial cells. Subgroups of 4 animals from each group were sacrificed on the third, tenth and twentieth days after inoculation, and the spleen and liver of these animals were removed for the study of bacterial tissue persistence.
  • mice For oral immunization two experimental groups of BALB / c mice were formed. In group I, the animals were immunized with the vaccine strain containing the recombinant asd + plasmid for the vapG expression cassette, and in group II, the animals received the vaccine strain containing the empty asd + plasmid. The mice were orally inoculated with 200 microliters of the bacterial suspensions containing about 100 million bacterial cells; Two 14-day immunizations were performed.
  • Fecal material was collected alone (150-300 g / animal) and immediately transferred to microcentrifuge tubes containing 1.0 ml PBS, 1.0 mM PMSF protease inhibitor and 1% bovine serum albumin (BSA). The tubes were incubated in a refrigerator for approximately 16 hours and then the The samples were vortexed and centrifuged at high rotation for 5 minutes. The supernatants were transferred to new tubes to determine the titer of the cited immunoglobulins.
  • BSA bovine serum albumin
  • An enzyme-linked immunosorbent assay was used to qualify in the feces and serum of immunized mice the presence of IgA, total IgG, IgG1 and IgG2a (serum) antibodies that react with Rhodococcus equi crude cell extract antigens.
  • IgA total IgG
  • IgG1 and IgG2a serum antibodies that react with Rhodococcus equi crude cell extract antigens.
  • 96-well polystyrene plates were sensitized with R. equi crude extract antigens, using as primary antibodies those contained in the serum or feces of the immunized animals. Reactions were detected with immunoenzymatic probes (peroxidase enzyme-linked anti-immunoglobulins), observing their respective immunoglobulin classes and subclasses, and developed with commercially available peroxidase substrate.
  • mice were subjected to the same immunization protocol described above. Fifteen days after the first immunization, the animals received a second dose of immunogen. Thirty days after the first immunization, the animals were euthanized for liver removal for interferon gamma measurement by ELISA, shown in Figure 7.

Abstract

A presente invenção provê microrganismos vivos recombinantes, tais como, organismos procariotos, em particular, enterobactérias, preferencialmente, Salmonella entérica, contendo as SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2, capazes de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4), opcionalmente, associadas a outros ativos, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e composições vacinais, preferencialmente, vacinas vetorizadas. Adicionalmente, o presente pedido de patente destina-se ao uso dos vetores vacinais no preparo de composições farmacêuticas, em particular, vacinas indicadas para a prevenção e/ou tratamento de infecções por Rhodococcus equi, seus anticorpos e/ou anti-soros, kits de diagnósticos e métodos de profilaxia e/ou tratamento de infecções de infecções por R. equi.

Description

"MICRORGANISMOS RECOMBINANTES, MÉTODOS DE PREPARAÇÃO DE LINHAGENS VACINAIS, ANTÍGENOS, COMPOSIÇÕES VACINAIS VETORIZADAS, SEUS USOS, ANTICORPOS, KIT DE DIAGNÓSTICO E MÉTODOS DE TRATAMENTO E/OU PROFILAXIA"
CAMPO DA INVENÇÃO
A presente invenção provê microrganismos vivos recombinantes, tais como, organismos procariotos, em particular, enterobactérias, preferencialmente, Salmonella entérica, contendo as SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2, capazes de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4), opcionalmente, associadas a outros ativos, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e composições vacinais, preferencialmente, vacinas vetorizadas. Adicionalmente, o presente pedido de patente destina-se ao uso dos vetores vacinais no preparo de composições farmacêuticas, em particular, vacinas indicadas para a prevenção e/ou tratamento de infecções por Rhodococcus equi, seus anticorpos e/ou anti- soros, kits de diagnósticos e métodos de profilaxia e/ou tratamento de infecções de infecções por R. equi.
ANTECEDENTES DA INVENÇÃO
O género Rhodococcus é composto por bactérias com morfologias variadas (pleomórficos), gram-positivos, não móveis, encontradas em ambientes diversos, como no solo, lençol subterrâneo, oceanos, microbiota do intestino de insetos e superfícies de plantas. Todas as espécies desse género são aeróbicas, não esporulam e compreendem um grupo de bactérias com características genéticas e fisiológicas diversificadas (MARTÍNKOVÁ, L., UHNÁKOVÁ, B., PÁTEK, M., NESVERA, J., KREN, V. Biodegradation potential of the genus Rhodococcus. Environment International 2009 Jan;35(l): 162-77. Epub 2008 Sep 11). Espécies de Rhodococcus têm sido descritas com potencial uso em processos industriais e biotecnológicos devido à produção de uma série de enzimas de interesse comercial (BELL, K. S., PHILP, J. C, AW, D. W., CHRISTOFI, N. The genus Rhodococcus. Journal of Applied Microbiology 1998 Aug;85(2): 195-210). Um fato interessante é que linhagens de Rhodococcus podem ser utilizadas na degradação de compostos orgânicos como uma proposta de biorremediação, tanto ambiental como em indústrias (GAKHAR, L., MALIK, Z. A., ALLEN, C. C, LIPSCOMB, D. A., LARKIN, M. J., RAMAS WAMY , S. Structure and increased thermostability of Rhodococcus sp. naphthalene 1,2-dioxygenase. Journal of Bacteriology 2005 Nov; 187(21):7222-31; PETRUSMA, M., DIJKHUIZEN, L., VAN DER GEIZE, R. Rhodococcus rhodochrous DSM 43269 3-ketosteroid 9alpha- hydroxylase, a two-component iron-sulfur-containing monooxygenase with subtle steroid substrate specificity. Applied Environmental Microbiology 2009 Aug;75(16):5300-7. Epub 2009 Jun 26).
Algumas espécies, como R. bronchialis estão ocasionalmente relacionadas com patogenias em humanos, porém, a espécie mais importante como potencial patógeno é a R. equi (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews. 2009 Sep;33(5):870-91. Epub 2009 Apr 23). R. equi são geralmente encontrados em solos secos, com dispersão através da poeira. Esse microorganismo é comumente associado a doenças em equinos, e é um dos principais agentes etiológicos de pneumonias em potros.
Dados recentes comprovaram que estes patógenos podem causar doenças em suínos, bovinos e caprinos (BARTON, M. D., HUGHES, K. L. Ecology of Rhodococcus equi. Vet Microbial 1984 Feb;9(l):65-76; MAKRAI, L., KOBAYASHI, A., MATSUOKA, M., SASAKI, Y., KAKUDA, T., DÉNES, B., HAJTÓS, I., RÉVÉSZ, I., JÁNOSI, K., FODOR, L., VARGA, J., TAKAI, S. Isolation and characterisation of Rhodococcus equi from submaxillary lymph nodes of wild boars (Sus scrofa). Vet Microbiol. 2008 Oct 15;131(3-4):318-23. Epub 2008 May 21), e são descritos por acometer humanos com quadros de imunodeficiências, como uma co-morbidade em pacientes infectados pelo vírus da imunodeficiência humana (HIV) (SANE, D. C, DURACK, D. T. Infection with Rhodococcus equi in AIDS. N Engl J Med. 1986 Jan 2;314(l):56-7). Em humanos, as infecções por R. equi são frequentemente associadas a doenças com sinais muito semelhantes à tuberculose pulmonar, e estão relacionadas, entretanto, com patologias extra-pulmonares diversas (TRIPODI, M. F., VIGO, D., DURANTE- MANGONI, E., LIFSCHITZ, A., COREY, G. R., STRYJEWSKI, M. E., UTILI, R., PRYLUKA, D. Rhodococcus equi endocarditis in immunocompetent hosts: report of the first two cases. International Journal of Antimicrobial Agents. 2009 Nov;34(5):496-7. Epub 2009 Jul 9). Esse patógeno foi pioneiramente isolado em 1923 de pulmões de potros com pneumonia piogranulomatosa, e foi classificado como Corynebacterium equi (MAGNUSSON, H. Spezifische Infektioese Pneumonie beim Fohlen. Ein neuer Eitererreger beim Pferde. Archive Wissen Praktise Tierheilkd 1923; 50:22-38), posteriormente denominado como Rhodococcus equi (GOODFELLOW, M., ALDERSON, G. The actinomycete-genus Rhodococcus: a home for the " rhodochrous" complex. Journal of General Microbiology. 1977 May; 100(l):99- 122).
As principais características de virulência de R. equi estão associadas à produção extra-cromossomal de antígenos. Esses antígenos são produzidos a partir de plasmídeos, moléculas circulares constituídas de fita dupla de DNA, que tem capacidade de replicação independente do DNA cromo ssomal do microrganismo. De particular interesse nos plasmídeos de R. equi, observa-se uma região denominada ilha de patogenicidade, que contem sequências gênicas para a expressão de proteínas associadas à virulência (vap, do inglês "virulence-associated protein") (TAKAI, S., HINES, S. A., SEKIZAKI, T., NICHOLSON, V. M., ALPERIN, D. A, OSAKI, M., TAKAMATSU, D., NAKAMURA, M., SUZUKI, K., OGINO, N., KAKUDA, T., DAN, H., PRESCOTT, J. F. DNA sequence and comparison of virulence plasmids from Rhodococcus equi ATCC 33701 and 103. Infection and Immunity. 2000 Dec;68(12):6840-7). Esses genes Vap foram classificados em vários subtipos, e estão distribuídos nessa ilha de patogenicidade em um agrupamento tríplice, VapA, VapC e VapD; no duo VapE e VapF, ou de distribuição individual distinta, como observada para os restantes VapG e VapH. Estes plasmídeos podem estar presentes em múltiplas cópias em uma mesma célula bacteriana, e são frequentemente perdidos quando são cultivados repetidamente em caldos de cultura a 38°C (TAKAI, S., KOIKE, K., OHBUSHI, S., IZUMI, C, TSUBAKI, S. Identification of 15- to 17-kilodalton antigens associated with virulent Rhodococcus equi. Journal of Clinicai Microbiology. 1991 Mar;29(3):439- 43). Apesar de haver outros elementos associados à virulência, como cápsula polissacarídica e produção de enzimas lipolíticas, os plasmídeos de R. equi são considerados essenciais para a patogenia (GIGUÈRE, S., HONDALUS, M. K., YAGER, J. A., DARRAH, P., MOSSER, D. M., PRESCOTT, J. F. Role of the 85-kilobase plasmid and plasmid-encoded virulence-associated protein A in intracellular survival and virulence of Rhodococcus equi. Infection and Immunity. 1999 Jul;67(7):3548-57). Nesse contexto, as linhagens que são caracterizadas por produzirem o subtipo A (VapA), produzido a partir do gene VapA, foram descritas como potenciais patógenos para potros (TAN, C, PRESCOTT, J. F., PATTERSON, M. C, NICHOLSON, V. M. Molecular characterization of a lipid-modified virulence-associated protein of Rhodococcus equi and its potential in protective immunity. Canadian Journal of Veterinary Research. 1995 Jan;59(l):51-9; VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews. 2009 Sep;33(5):870-91. Epub 2009 Apr 23).
As funções de VapA, e dos outros subtipos de Vap, são ainda desconhecidas.
Sabe -se que VapA é uma lipoproteína que permanece firmemente ligada à superfície da célula bacteriana. Além de VapA, os subtipos C, D, E, G e H também apresentam características de funcionalidade similares, apresentando sequências peptídicas de sinalização para a secreção ou localização na superfície celular, e também estão relacionados com linhagens virulentas de R. equi (KOHLER, A. K„ STONE, D. M., HINES, M. T., BYRNE, B. A., ALPERIN, D. C, NORTON, L. K., HINES, S. A. Rhodococcus equi secreted antigens are immunogenic and stimulate a type 1 recall response in the lungs of horses immune to R. equi infection. Infection and Immunity. 2003 Nov;71(l l):6329-37).
Como produtos de secreção ou moléculas de superfície é muito provável que esses subtipos apresentem características de interação com moléculas do hospedeiro, permitindo sua sobrevivência no interior de células do sistema imunitário. Essas proteínas apresentam certo grau de identidade entre elas na composição de aminoácidos, que variam de 39 a 76%, e o grau de homologia é tão maior quanto mais próxima da extremidade carboxi-terminal de suas moléculas (BYRNE, B. A., PRESCOTT, J. F, PALMER, G. H., TAKAI, S., NICHOLSON, V. M., ALPERIN, D. C, HINES, S. A. Virulence plasmid of Rhodococcus equi contains inducible gene family encoding secreted proteins. Infection and Immunity. 2001 Feb;69(2):650-6).
Os principais alvos das infecções por R. equi são potros com até quatro meses de vida que apresentam uma pneumonia grave, culminando em quadro de abscessos pulmonares. Sem terapia com antibióticos a mortalidade chega a 80%, reduzida, entretanto, em cerca de 12% com o estabelecimento da quimioterapia antibacteriana, utilizando a associação entre rifampicina e eritromicina (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews. 2009 Sep;33(5):870-91. Epub 2009 Apr 23).
Esses microrganismos são extremamente resistentes nas condições ambientais mais variadas, e encontram no solo contendo esterco de animais as características desejáveis para a sua multiplicação. Nesse ambiente, os animais jovens, com seu sistema imunológico, ainda, em desenvolvimento podem inalar as dispersões de poeira contendo células bacterianas viáveis, sendo o provável mecanismo de transmissão da pneumonia por R. equi (MUSCATELLO, G., LEADON, D. P., KLAYT, M., OCAMPO-SOSA, A., LEWIS, D. A., FOGARTY, U., BUCKLEY, T., GILKERSON, J. R., MEIJER, W. G., VAZQUEZ-BOLAND, J. A. Rhodococcus equi infection in foals: the science of 'rattles'. Equine Vet J. 2007 Sep;39(5):470-8). Uma vez inalados, R. equi é fagocitado por células de defesa do epitélio pulmonar (macrófagos alveolares), e residem no interior destas células apresentando mecanismos de escape da morte no interior de vesículas citoplasmáticas (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews. 2009 Sep;33(5):870-91. Epub 2009 Apr 23). As lesões pulmonares surgem através recrutamento de células de defesa para o ambiente de infecção. Assim, neutrófilos e macrófagos preenchem o espaço alveolar, criando um ambiente inflamatório que progride para lesões necróticas do parênquima pulmonar.
Lesões granulomatosas são comuns e podem romper-se disseminando R. equi para outros órgãos do hospedeiro (PRESCOTT, J. F. Rhodococcus equi: an animal and human pathogen. Clinicai Microbiology Reviews. 1991 Jan;4(l):20-34). Em um hospedeiro infectado, pode-se isolar R. equi até de sua respiração, mas a transmissão direta hospedeiro-hospedeiro, ainda, não foi reportada (MUSCATELLO, G., GILKERSON, J. R., BROWNING, G. F. Detection of virulent Rhodococcus equi in exhaled air samples from naturally infected foals. Journal of Clinicai Microbiology. 2009 Mar;47(3):734-7. Epub 2009 Jan 14).
A alta descarga bacteriana presente no animal infectado acarreta na auto-ingestão de grandes quantidades de células bacterianas, que pode resultar em diarréia com quadro de enterite ulcerativa (CIMPRICH, R. E., ROONEY, J. R. Corynebacterium equi enteritis in foals. Vetennary Pathology. 1977 Mar;14(2):95-102). Todo esse contexto ilustra um provável ciclo de R. equi, que é eliminado no ambiente por animais infectados, e alcançam um novo hospedeiro nos arredores.
Potros com até seis meses de idade são mais suscetíveis à infecção, com maior incidência em animais com dois meses desde o nascimento, e a doença ocorre principalmente nos ambientes em que haja criação de cavalos. O quadro infeccioso tem duração variável, geralmente em torno de uma a três semanas, apresentando uma alta taxa de mortalidade. Os primeiros sinais da doença crónica progressiva são febre acima de 41°C, frequência respiratória aumentada, chiado bronco-vesicular com sibilos das vias aéreas, tosse, corrimento nasal e depressão (PRESCOTT, J. F. Rhodococcus equi: an animal and human pathogen. Clinicai Microbiology Reviews. 1991 Jan;4(l):20-34). Quadro de diarreia grave é frequente e indica a colonização da mucosa intestinal por R. equi. Os sintomas podem progredir para um quadro de falência respiratória e o animal não tratado sucumbe à asfixia e morre. Ocasionalmente, a doença pode progredir de forma aguda, matando o animal em menos de 48 horas.
O tratamento de infecções por R. equi é prolongado, e consiste na associação de dois ou mais antibióticos. Um tratamento adequado, adotado desde os estágios iniciais de uma infecção por linhagens sensíveis, deve resultar em cura. No entanto, o tratamento prolongado com antibióticos tem um custo elevado como principal desvantagem, além de favorecer a emergência de linhagens resistentes (MUSCATELLO, G., LEADON, D. P., KLAYT, M., OCAMPO-SOSA, A., LEWIS, D. A., FOGARTY, U., BUCKLEY, T., GIL ERSON, J. R., MEIJER, W. G., VAZQUEZ-BOLAND, J. A. Rhodococcus equi infection in foals: the science of 'rattles'. Equine Vet J. 2007 Sep;39(5):470-8). Tendo a infecção em potros, como referência, o cenário mais otimista é proporcionado pela cura, com o resultado habitual de diminuição da capacidade atlética dos animais acometidos, com um impacto negativo no comércio de equinos. Todos esses fatores assinalam a necessidade de desenvolvimento de estratégias alternativas para prevenir infecções por R. equi.
Considerando o papel de VapA na virulência de R. equi, é razoável que o desenvolvimento de vacinas seja baseado nesse subtipo. Entretanto, esforços na construção de vacinas para a produção desse constituinte, através da tecnologia do DNA recombinante, não apresentaram resultados satisfatórios (VANNIASINKAM, T., BARTON, M. D., HEUZENROEDER, M. W. Immune response to vaccines based upon the VapA protein of the horse pathogen, Rhodococcus equi, in a murine model. International Journal of Medicai Microbiology. 2005 Jan;294(7):437-45), embora encontremos alguns resultados promissores (OLIVEIRA, A. F., FERRAZ, L. C, BROCCHI, M., ROQUE- BARREIRA, M. C. Oral administration of a live attenuated Salmonella vaccine strain expressing the VapA protein induces protection against infection by Rhodococcus equi. Microbes and Infection. 2007 Mar;9(3):382-90. Epub 2007 Jan 12).
Diversas tentativas de atenuação de R. equi para utilização em vacinação não foram bem sucedidas.
Até o presente momento, a única vacina disponível para a prevenção da rodococose equina é constituída por um extrato lipoprotéico, enriquecido com VapA, destinado a aplicação subcutânea em éguas prenhas para a imunização passiva dos potros. Essa vacina, ainda, não apresenta eficácia comprovada fhttp: / / www.labproser.com.ar/prodce 0 len.htm).
Para a eliminação de R. equi, assim como, em outros patógenos intra-celulares é importante que haja a modulação para uma resposta imunitária mediada por células (Thl), uma vez que respostas mediada por anticorpos (Th2) seriam ineficientes em neutralizar esses patógenos.
Resultados em modelos experimentais têm mostrado que o desejável em preparações vacinais deve ser a indução de altos níveis do isotipo 2a da imunoglobulina G (IgG2a), cuja secreção é estimulada por interferon-gama, citocina típica de respostas do tipo Thl (OLIVEIRA, A. F., FERRAZ, L. C, BROCCHI, M., ROQUE-BARREIRA, M. C. Oral administration of a live attenuated Salmonella vaccine strain expressing the VapA protein induces protection against infection by Rhodococcus equi. Microbes and Infection. 2007 Mar;9(3):382-90. Epub 2007 Jan 12; KANALY, S. T., HINES, S. A., PALMER, G. H. Cytokine modulation alters pulmonary clearance of Rhodococcus equi and development of granulomatous pneumonia. Infection and Immunity. 1995 Aug;63(8):3037-41). Nesse contexto, a construção de uma vacina baseada no antígeno VapA, e que induz uma resposta do padrão Thl, seria o modelo exato para o sucesso de uma preparação vacinai. No entanto, as construções de vacinas baseadas em VapA, que classicamente modulam a resposta imunitária para um padrão Thl, não foram capazes de proteger modelos animais contra a infecção por R. equi (VON BARGEN, K., HAAS, A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi. FEMS Microbiology Reviews. 2009 Sep;33(5):870-91. Epub 2009 Apr 23).
Diversas questões sobre a biologia da infecção por R. equi ainda não foram respondidas.
Existem diversos relatos sobre a associação entre a capacidade virulenta de linhagens e a expressão do antígeno VapA. Entretanto, o genoma de R. equi foi descrito por conter uma série de proteínas de superfície celular, que podem estar associadas na interação com células do hospedeiro durante o processo infeccioso (VAZQUEZ-BOLAND, J. A., PRESCOTT, J. F., MEIJER, W. G., LEADON, D. P., HINES, S. A. Rhodococcus equi comes of age. Equine Veterinay Journal. 2009 Jan;41(l):93-5).
A publicação internacional WO 1988/009669 destina-se a vacinas para imunização compreendendo microrganismos patogênicos ou derivados avirulentos sendo incapazes de produzir adenilato ciclase funcional e proteína receptora de AMP cíclico.
O pedido de patente brasileiro PI 0414353 provê proteínas de piroplasmídeo (Boophilus microplus), ácido nucléico, fragmento de cDNA, molécula de DNA recombinante, veículo recombinante vivo, célula hospedeira, vacina, método para a preparação de uma vacina, usos de uma proteína, de uma sequencia de ácido nucléico e teste de diagnóstico.
A patente européia EP 827.410 mostra um método de introdução de genes endógeno ou exógeno dentro de células animais utilizando bactérias vivas, como vetores.
A patente européia EP 500.699 descreve métodos para imunização individual para proteção contra infecções por bactéria Gram-negativa, composições vacinais contendo Salmonella avirulenta viva.
A patente européia EP 1.537.214 apresenta um sistema vetor-hospedeira exibindo uma regulação de lise de bactérias para habilitar a liberação de vetores vacinais genéticos ou produto de genes desejáveis a uma célula eucariótica.
Destaca-se que a expressão do antígeno VapG por R. equi é elevada, tanto no tecido pulmonar como em cultivo in uitro, e é maior do que todos os outros antígenos Vap (JACKS, S., GIGUÈRE, S., PRESCOTT, J. F. In vivo expression of and cell-mediated immune responses to the plasmid-encoded virulence-associated proteins of Rhodococcus equi in foals. Clinicai Vaccine Immunology. 2007 Apr; 14(4):369-74. Epub 2007 Feb 14). Contudo, esse constituinte ainda não fora utilizado em estratégias vacinais até o presente momento, indicando que a utilização desse fator como potencial imunógeno pode ter sido subestimada.
Assim, de forma inesperada, a Depositante desenvolveu composições vacinais contendo vetores que produzam resposta imunológica contra R. equi. DESCRIÇÃO DAS FIGURAS
A figura 1 descreve apresenta o perfil eletroforético em gel de agarose do polinucleotídeo amplificado da reação em cadeia da polimerase (PCR), utilizando o DNA das linhagens vacinais recombinantes de Salmonella chi-3987, como molde.
A figura 2 mostra um diagrama de um plasmídeo asd+ recombinante, mostrando a localização do gene vapG.
A figura 3 demonstra os resultados de persistência das linhagens recombinantes, controle (PYA controle) e expressando apenas VapG (vapG), no baço (3a) e no fígado (3b) de camundongos. A persistência é medida através da contagem de unidades formadoras de colónias bacterianas (UFC) nos órgãos dos animais.
A figura 4 apresenta os resultados de recuperação de células de R. equi no baço e no fígado de camundongos, imunizados com linhagens vacinais de Salmonella e desfiados com dose endovenosa de cem milhões de células de R. equi.
A figura 5 demonstra os primeiros 70 aminoácidos da sequência polipeptídica de VapG, e realçam em cinza os resíduos envolvidos no sítio de clivagem dessa lipoproteína. As barras indicam prováveis sítios de clivagem do peptídeo sinal, e a barra maior indica maior probabilidade de clivagem entre os resíduos alaninil ("A") e glutamil ("E") .
A figura 6 indica o perfil eletroforético (SDS-PAGE) das proteínas extraídas de células da Salmonella atenuada, expressando integralmente o antígeno VapG recombinante de R. equi, apontado por um círculo preto.
A figura 7 mostra o padrão de interferon gama produzido como característica da resposta imune Thl contra R. equi, através da imunização com a linhagem vacinai de Salmonella (vapG). *p<0,05. DESCRIÇÃO DA INVENÇÃO
A presente invenção provê microrganismos vivos recombinantes, tais como, organismos procariotos, em particular, enterobactérias, preferencialmente, Salmonella entérica, contendo as SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2, capazes de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4), opcionalmente, associadas a outros ativos, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e composições vacinais, preferencialmente, vacinas vetorizadas. Adicionalmente, o presente pedido de patente destina-se ao uso dos vetores vacinais no preparo de composições farmacêuticas, em particular, vacinas indicadas para a prevenção e/ou tratamento de infecções por Rhodococcus equi, seus anticorpos e/ou anti-soros, kits de diagnósticos e métodos de profilaxia e/ou tratamento de infecções de infecções por R. equi.
De forma geral, os microrganismos do presente pedido consistem vetores microbiológicos vivos, não patogênicos e recombinantes, com condições para a expressão de pelo menos um polipeptídeo de R. equi, e apresentando ao sistema imunológico em um ambiente de um receptor, no sentido de funcionar como um apresentador de antígeno de origem heteróloga e gerar uma resposta imunitária contra R. equi.
Em uma primeira realização, a presente invenção destina-se microrganismos vivos recombinantes, tais como, organismos procariotos, em particular, enterobactérias, preferencialmente, Salmonella entérica, contendo as SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2, capazes de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e/ou suas derivações, como vetores vacinais. Particularmente, o ácido nucléico heterólogo (SEQ. ID. N°. 1) codifica para o antígeno VapG de R. equi (SEQ. ID. N°. 3) e o ácido nucléico heterólogo (SEQ. ID. N°. 2) codifica para o antígeno VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 4) O polipeptídeo de R. equi pode, ainda, conter outras derivações do antígeno VapG, como por exemplo, VapA, VapC, VapD, VapE, VapF, VapH e/ou polipeptídeos homólogos, onde porções da região N-terminal são eliminadas, suprimindo o peptídeo sinal e os sítios de lipidificação da molécula.
As porções N-terminal e C-terminal representam as porções de início e término da tradução de uma proteína ou polipeptídeo, respectivamente. Para as cadeias polipeptídicas, do presente pedido (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4), as traduções iniciam-se no resíduo metioninil, numerado como "1" ("M").
Os polipeptídeos, da presente invenção podem compreender de 55% a 100% de identidade, preferencialmente, 70% de identidade com a proteína VapG de R. equi, incluindo quaisquer variações e fragmentos resultantes, que são capazes de estimular uma resposta imunológica contra R. equi. Em particular, o polipeptídeo imunogênico abrange a sequência contígua a partir de pelo menos 15 aminoácidos de quaisquer porções características da proteína VapG de R. equi, de forma preferencial, com 10 aminoácidos idênticos nas porções da proteína VapG de R. equi, apresentando identidade de 55% a 100%, mais particularmente, 70% de identidade com a porção molde da proteína VapG de R. equi (SEQ. ID. N°. 3), mais preferencialmente, ainda, compreendendo uma sequência de aminoácidos de l a l61 ou l l a l72 de VapG (SEQ. ID. N°. 3) ou seus fragmentos relacionados. Ainda, a proteína VapG (SEQ. ID. N°. 3) apresenta porções N-terminais extraídas, sem os primeiros 5 até 50 aminoácidos da porção N-terminal ou sem os últimos 5 até 50 aminoácidos da porção C-terminal. Os polipeptídeos de R. equi podem ser expressos sob a forma de proteínas de fusão ou sob a forma de múltiplos polipeptídeos separadamente. Opcionalmente, o polipeptídeo de R. equi pode ser expresso sob forma de proteína de fusão compreendendo sequências polipeptídicas dos antígenos VapG e/ou VapA. De forma opcional, as sequências polinucleotídicas podem ser associadas a outros ativos, como por exemplo, outras proteínas Vap e/ou adjuvantes para modulação da resposta imunitária.
Os polinucleotídeos, descritos na presente pedido, encontram-se, preferencialmente, contidos em um vetor extracromossomal (plasmídeo), entretanto, podem ser integrados no cromossoma bacteriano.
Em uma segunda realização, esta invenção, ainda, descreve o método de preparação de linhagens vacinais de Salmonella compreendendo: i) mutações para a atenuação da virulência; ii) um ou mais fragmentos gênicos de expressão, com cada fragmento compreendendo uma sequência de ácidos nucléicos de origem heteróloga (SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2) sob controle transcricional de um promotor constitutivo ou induzível, onde a sequência de ácidos nucléicos é orientada de modo a codificar, parcial e/ou integralmente, um antígeno de virulência de R. equi (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e, opcionalmente, iii) uma mutação em um gene essencial para a sua multiplicação, tornando-a auxotrófica para componentes que são adicionados no meio de cultura, sem haver a necessidade de utilização de antibióticos para a seleção.
Particularmente, as linhagens de Salmonella atenuadas utilizadas na presente invenção compreendem as linhagens que contêm mutações em genes responsáveis pela síntese de compostos aromáticos (delta- aro), em genes que interfiram com mecanismos fisiológicos do hospedeiro (delta- cya e delta- crp), ou em genes que codificam para a expressão de proteínas bacterianas ligantes de ácidos nuclêicos (deitas, delta- dps, delta- q, delta- hupA, delta- hupB ou delta- hha). Preferencialmente, as linhagens atenuadas de Salmonella contendo uma mutação no gene aro (delta- aro) ou uma linhagem atenuada de Salmonella contendo mutações nos genes cya e crp (delta-ci/α e delta- crp).
Outra estratégia de mutação para a seleção de linhagens de Salmonella recombinantes e garantia de estabilidade de um plasmídeo construído para a expressão da proteína recombinante refere-se à mutação em um gene associado com a biossíntese de componentes da parede celular, tais como, mutação no gene asd, que codifica para aspartato semialdeído desidrogenase, uma enzima que participa da síntese de estruturas da parede celular bacteriana, e torna a célula bacteriana dependente de ácido diamino-pimélico para o seu crescimento. Nessa configuração, o gene asd pode ser complementado através da introdução de um fragmento gênico no plasmídeo, com todas as características para a expressão do gene asd. Assim, o resultado da introdução desses plasmídeos em linhagens bacterianas delta- asd, onde delta significa ausência ou inativação do gene, é a seleção de clones recombinantes em meio de cultura sem suplementação, e que expressam a proteína recombinante de R. equi. Por fim, a mutação atenuante é o resultado da ausência ou inativação de pelo menos um gene associado com sua patogenicidade, onde, a Salmonella atenuada é derivada da linhagem parental Salmonella entérica serovar Typhimurium UK- 1.
O promotor constitutivo guia a expressão da proteína recombinante independente da fase de crescimento da célula bacteriana, do metabolismo celular ou da presença de indutores. Também, o promotor induzível orienta a expressão da proteína recombinante sob condições de estresses nutricional e/ou oxidativo ou através da adição de um componente químico indutor. Como um exemplo opcional, pode- se utilizar um promotor induzível in vivo sendo dependente de estruturas do organismo receptor e orientando a expressão da proteína recombinante através da maquinaria de transcrição das células do hospedeiro.
A linhagem atenuada de Salmonella utilizada no presente pedido compreende uma mutação no gene aroA, que codifica para a enzima 5-enol-piruvl-shikimato-3-fosfato sintase (EPSPS), que é um precursor comum na biossíntese de numerosos compostos aromáticos em bactérias e outros organismos. Particularmente, a linhagem delta- aro utilizada é H683 de S. entérica sorovariedade Typhimurium.
O presente pedido de patente, ainda, apresenta a utilização de promotores para expressão em bactérias, tais como, os promotores tac, pac, rac, trc, lpp, dps ou recA de enterobactérias, T3, T7 e/ou SP6 de bacteriófagos. Também, no caso de expressão em células eucarióticas podem ser utilizados promotores MET2, MET25 de leveduras, os promotores RSV, CMV, HTLV e SV40 de vírus e beta- Actin, mPGK, eiF4alpha, CAG e ENS-I de mamíferos.
Em uma configuração particular, os polipeptídeos de R. equi podem conter ajustes de códon para expressão em variados vetores, preferencialmente, Escherichia coli, por exemplo, a linhagem delta- asd chi- 1776.
Em uma terceira realização, a presente invenção trata do antígeno VapG de R. equi (SEQ. ID. N°. 3) expresso de maneira a não conter os sítios de lipidificação, onde, opcionalmente, pode incluir o antígeno VapG, associado a outros antígenos Vap de R. equi, selecionado de um grupo de polipeptídeos apresentando ausências de até 50 aminoácidos da porção N-terminal (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4).
O antígeno recombinante (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) pode ser produzido e purificado por eletroforese, filtração, cromatografia, centrifugação e/ou associações desses métodos. Ainda, o antígeno substancialmente purificado pode conter de 60 a 99% da substância isoladamente, desde que não contenha subprodutos da purificação que sejam tóxicos.
Em uma quarta realização, a presente invenção trata de composições vacinais contendo o vetor vacinai recombinante (SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2) capazes de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) em veículos farmaceuticamente aceitáveis, preferencialmente, vacinas vetorizadas.
Ainda, a composição vacinai pode compreender população de células bacterianas homogéneas. No entanto, opcionalmente, as composições podem, também, apresentar uma pluralidade de células bacterianas de diferentes isolados, como por exemplo, uma população homogénea de Salmonella atenuada que compreende uma população de células capazes de expressar o antígeno VapG de R. equi e a pluralidade de células que compreende mais de uma população de Salmonella atenuada, com uma população de células expressando VapG de R. equi e uma segunda população expressando VapA, VapC e/ou VapH.
A composição vacinai da presente invenção pode apresentar a associação de um antígeno recombinante purificado, tal como, uma população de Salmonella atenuada capaz de expressar VapG associada ao antígeno VapA, VapC e/ou VapH recombinantes purificados, em um veículo e/ou diluente farmaceuticamente aceitável. Em outra configuração, a composição vacinai contem a Salmonella atenuada capaz de expressar fusões de antígenos recombinantes, compreendendo duas ou mais sequências imunogênicas de antígenos de R. equi fusionadas em estrutura única. Os antígenos recombinantes podem ser fusionados por outras sequências polipeptídicas e/ou moléculas imuno- estimuladoras, tais como, citocinas e quimiocinas.
A presente invenção abrange também a co-expressão de um ou mais genes que codificam para proteínas imuno-estimulatórias, como citocinas e quimiocinas, tais quais IFN-alfa, IFN-beta, IFN-gama, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-11, IL-12, IL-13, IL- 14, IL-15 ou IL-16. Nesse caso, a co-expressão é definida como a construção de vetores que compreendem o fragmento polinucleotídico de origem heteróloga para a expressão de um ou mais genes de citocinas e/ou quimiocinas, associado a outro fragmento polinucleotídico de origem heteróloga para a expressão de polipeptídeo(s) relacionados com VapG de R. equi.
As composições do presente pedido patente também podem conter adjuvantes, como por exemplo, um adjuvante oligodesoxinucleotídeo CpG, compostos de alumínio (hidróxido de alumínio, óxido de alumínio ou fosfato de alumínio), adjuvantes oleosos (óleo mineral, adjuvantes completo ou incompleto de Freund), adjuvantes originários de ácido micólico (trealose dimicolato), lipopolissacarídeos bacterianos (LPS), peptidoglicanos (mureína, mucopeptídeo), glicoproteínas (N-Opaca, análogos de muramil- dipeptídeo), proteoglicanos, preparações estreptocóccicas (OK432), saponina, óleos neutros (migliol), óleos vegetais, lipossomos, polióis, vitamina E, Carbopol, interleucinas e/ou suas combinações.
Também, as composições da invenção podem conter excipientes e/ou carreadores farmaceuticamente aceitáveis, tais como, soluções líquidas, como salina, hipoclorito e/ou outros sais atóxicos em osmolaridades próximas da fisiológica, um solvente sólido ou um material para encapsulação, onde a vacina pode ser ressuspensa ou dissolvida. O carreador farmaceuticamente aceitável, ainda, deve ser atóxico para o organismo receptor e compatível com o microrganismo vivo atenuado. Os excipientes e veículos farmacêuticos podem ser escolhidos entre amido, glicose, lactose, sacarose, gelatina, malte, arroz, farinha, giz, sílica gel, estearato de sódio, estearato de magnésio, monoestearato de glicerol, ácido ascórbico, talco, cloreto de sódio, leite em pó, maltodextrina, glicerol, propileno, glicol, água, etanol, conservantes, edulcorantes e/ou suas combinações.
Particularmente, uma configuração da invenção indica uma composição vacinai que compreende um microrganismo lioíilizado, em especial, uma linhagem atenuada de S. entérica sorovariedade Typhimurium, com deleções nos genes cya, crp e asd (delta-cya, delta- crp e delta- sd) em suspensão contendo pelo menos um excipiente escolhido dentre lactose, sorbitol, fosfato dibásico de sódio, fosfato monobásico de potássio, sacarose, salina estéril e/ou água.
As composições da atual invenção podem ser administradas por métodos invasivos, como por exemplo, via parenteral, subcutânea, intravenosa, intramuscular, intraperitoneal, transdermal, intramucosa, intranasal, intragástrica e/ou métodos não-invasivos, tais como, oral, retal, inalação, nasal e/ou ocular, preferencialmente, via oral e nasal.
As formas farmacêuticas do presente pedido de patente podem variar entre cápsulas de gelatina, pílulas, comprimidos, drágeas, elixires, suspensões, xaropes, suspensões para vaporizadores, preferencialmente vacinas. Opcionalmente, cápsulas de gelatina podem servir como carreadores para vacinas liofilizadas.
Em uma quinta realização, a presente invenção destina- se ao uso dos vetores no preparo de composições farmacêuticas, em particular, vacinas vetorizadas indicadas para prevenção e/ou tratamento de infecções por Rhodococcus equi.
Em particular, as infecções referem-se a condições associadas à infecção por R. equi, tal como, pneumonia piogranulomatosa e/ou colites.
A resposta imunológica é caracterizada por um padrão de imunidade mediada por células associada a uma resposta imunológica de mucosa, com produção do isotipo A de imunoglubulina (IgA), específico para a proteína de R. equi recombinante.
Em uma sexta realização, a presente invenção inclui anti- soros, anticorpos, isolados ou substancialmente purificados, produzidos contra os antígenos recombinantes (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4).
Os anti-soros e anticorpos podem ser purificados através de cromatografia de afinidade com os antígenos recombinantes.
Em uma sétima realização, a invenção refere -se a um kit de diagnóstico contendo um ou mais antígenos Vaps (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) de R. equi recombinantes (SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2), em conjunto com seus anticorpos específicos. Adicionalmente, o kit destina-se ao ensaio imunoenzimático (ELISA) para diagnóstico de infecções por R. equi.
Em uma oitava realização a presente invenção apresenta métodos de profilaxia e/ou tratamento a partir de duas imunizações, sendo, uma inicial e outra de reforço, adequada para a administração das vacinas. Opcionalmente, no método de duas imunizações utilizam- se pelo menos uma composição vacinai da presente invenção, onde, a administração de uma ou mais composições vacinais pode ser feita em um organismo receptor, apresentando o polipeptídeo recombinante no contexto do vetor vacinai para o sistema imunitário do receptor, obrigatoriamente um vertebrado, e uma segunda composição sendo utilizada como dose de reforço.
Em um protocolo de imunização da presente invenção, a linhagem atenuada de Salmonella recombinante, utilizada para apresentar antígeno(s) de R. equi para o sistema imunitário, em uma determinada composição e administrada no primeiro dia de vida de um animal vertebrado, e uma segunda dose, contida em uma composição idêntica a primeira, sendo utilizada como reforço para uma resposta imunológica contra R. equi, administrada quinze dias após a primeira dose.
De forma particular, o método para vacinar um organismo receptor contra R. equi ocorre através da administração oral para um equino com alto risco de contrair uma infecção por R. equi ou um equino que já apresente a infecção por R. equi, incluindo também outros hospedeiros vertebrados.
Com o intuito de melhor definir a presente invenção segue algumas definições da terminologia utilizada:
O termo "atenuado" refere-se a um microrganismo geneticamente modificado com o propósito de não causar doenças em humanos ou em modelos animais.
"Vetor vacinai" refere-se a uma bactéria, vírus ou molécula de ácido nucléico circular, avirulentos, utilizados para a expressão de antígenos heterólogos no ambiente de um hospedeiro, construído de maneira a estimular uma resposta imunológica protetora, montada a partir do antígeno recombinante como parte do microrganismo que o produz naturalmente.
O termo "resposta imunológica" refere-se a montagem de uma resposta pelo hospedeiro que confere imunidade protetora e pode ser considerada a resposta suficiente para prevenir o organismo receptor de desenvolver sintomas relacionados à infecção.
O termo "fragmento de expressão gênica" refere-se a uma construção de ácidos nucléicos compreendendo um ácido nucléico de origem heteróloga que está sob controle transcricional de um promotor.
O termo "polipeptídeo imunogênico" refere-se a uma porção de uma proteína associada à virulência de R. equi ou a proteína integralmente, assim como é expressa naturalmente por R. equi. O polipeptídeo imunogênico deve ser capaz de estimular uma resposta imunológica quando expresso pelo vetor vacinai bacteriano no ambiente do organismo receptor.
O termo "farmaceuticamente aceitável" significa uma composição aprovada pelas agências reguladoras ou incluída nas Farmacopéias Nacionais e/ou Internacionalmente reconhecidas.
O termo "promotor" refere-se a uma sequência de nucleotídeos de ácidos nucléicos responsável pela ligação de complexos protéicos que compreendam uma enzima RNA polimerase, resultando no início da transcrição de um gene justaposto.
Os termos "ácido nucléico", "nucleotídeo" e "polinucleotídeo" utilizados nas descrições referem-se à desoxiribonucleotídeos (DNA) ou ribonucleotídeos e seus polímeros, sejam na forma de fita única ou em dupla fita. Esses termos estão relacionados com ácidos nucléicos que contêm análogos naturais de nucleotídeos, que tenham propriedades de ligação idênticas aos ácidos nucléicos de referência, e são metabolizados de maneira similar aos nucleotídeos encontrados naturalmente. Ainda, o termo ácido nucléico é utilizado para descrever genes, DNA complementar (cDNA), e o RNA mensageiro (mRNA) transcrito de um gene. Ainda sobre os termos "ácido nucléico", "nucleotídeo" e "polinucleotídeo", eles compreendem moléculas de DNA de quaisquer origens (cDNA ou genômico), moléculas de RNA, moléculas análogas de DNA ou RNA, geradas a partir de reações com nucleotídeos análogos.
O termo "identidade", relativo às sequências de ácidos nucléicos e proteínas, refere-se à comparação entre duas ou mais sequências polinucleotídicas ou entre duas ou mais sequências polipeptí dicas, respectivamente.
O termo "transformação" é utilizado para referir- se a transferência de ácido nucléico para o interior de uma célula, e o termo "transformação genética" refere-se a transferência e incorporação de DNA recombinante no interior de uma célula.
O termo "variante" é utilizado para referir-se a polinucleotídeos ou polipeptídeos que apresentam diferenças quando comparado com o ácido nucléico ou polipeptídeos de referência, no entanto mantém suas propriedades essenciais.
O termo "similar" refere-se ao fato de que a troca de um aminoácido de uma determinada posição em uma cadeia polipeptídica não resulta em alteração funcional e estrutural quando comparada com a molécula de referência.
EXEMPLOS
As linhagens e plasmídeos foram obtidas de fontes comerciais e sua utilização ocorreu segundo seus fabricantes. A identidade e a pureza de todos os compostos foram verificadas por meio de análise de LC-MS e RNM IH.
CONSTRUÇÃO DO PLASMÍDEO PARA A EXPRESSÃO DE VAPG DE R. EQUI EM
LINHAGENS ATENUADAS DE SAIMONELLA
As linhagens bacterianas utilizadas na presente invenção estão descritas na tabela 1. A linhagem de Saimonella utilizada foi a delta-ci/ , -crp e -asd, denominada chi-3987.
TABELA 1
Figure imgf000026_0001
Figure imgf000026_0002
A sequência estrutural do gene vapG foi obtida por reação de amplificação de DNA (PCR), utilizando-se os iniciadores (SEQ. ID. N°. 5 e SEQ. ID. N°. 6), contendo sítios de clivagem para as enzimas endonucleases BamHl e SaR.
A amplificação por PCR foi realizada em volume final de 50 microlitros, através de um conjunto de reagentes comumente utilizados, e o produto dessa reação (SEQ. ID. NO. 1) está mostrado na figura 1. A reação de amplificação foi realizada através de métodos descritos no estado da arte. Com a amplificação, os fragmentos obtidos foram constituídos dos sítios de clivagem pelas endonucleases BamHI e SaR, flanqueando o gene estrutural vapG, para possibilitar assim a clonagem do fragmento amplificado, digerido por estas endonucleases, no plasmídeo asd+, digerido com as mesmas endonucleases.
Os procedimentos de digestão e purificação foram feitos a partir de reagentes disponíveis. A ligação do fragmento de amplificação ao plasmídeo asd+, ambos digeridos e purificados, foi feita através de reação com enzima DNA-Ligase T4.
O cassete de expressão do antígeno VapG foi inserido em plasmídeo asd+, através dos sítios de restrição das endonucleases HamHI e SaR. Essa construção foi realizada sem otimização de códon, porém, os polinucleotídeos que codificam VapG podem conter modificações que não alterem a sequência polipeptídica de expressão. Após a modificação do plasmídeo asd+ com a introdução do cassete de expressão de vapG, esse plasmídeo recombinante está pronto para introdução por eletroporação em linhagens de clonagem, como Escherichia coli delta- asd chi.6212, e nas linhagens vacinais de Salmonella. O plasmídeo asd+ recombinante (vapG) foi esquematizado na figura 2.
O procedimento de eletroporação foi realizado através da adição de 5,0 microlitros da suspensão do plasmídeo recombinante a 40 microlitros de células bacterianas eletrocompetentes. A eletroporação foi realizada em Eletroporador BioRad nas condições de 12,5 quilo volts/cm, 200 ohms e 25 microFaraday. Os procedimentos de eletroporação foram realizados primeiro em células de clonagem (E. coli chi.6212), para posterior extração de plasmídeos e introdução em células vacinais de Salmonella (chi.3987). Todos os clones foram selecionados com base no crescimento em meios de cultivo sólidos artificiais, sem a adição de suplementos. Clones bacterianos delta- asd carreando o plasmídeo asd+ cresceram nesses meios de cultivo sem a adição do suplemento ácido diamino-pimélico, indicando a atividade desses plasmídeos pelos clones selecionados. Alguns clones menores podem crescer após a incubação de um dia, e circundam clones maiores, tratando-se de colónias satélites que aproveitam do metabolismo dos clones positivos próximos para conseguirem crescer sem carrear os plasmídeos asd+ recombinante s.
Linhagens controles foram transformadas com o plasmídeo asd+ vazio, ou seja, sem conter cassetes de clonagem. Colónias selecionadas foram cultivadas em 3,0 mililitros de caldo de cultura artificial. As suspensões bacterianas em meio líquido foram processadas para a extração, análise e sequenciamento de DNA plasmidial, e parte foi separada para estocagem primária das amostras. Para as amostras que foram caracterizadas por conter o gene vapG, realizou- se cultivo posterior em caldo enriquecido (Luria-Bertani, LB) para construção de bancos celulares para estoque em temperatura negativa em 80°C. Todos esses procedimentos foram iguais para os clones vacinais e para os clones controles, contendo apenas plasmídeo asd+ vazio.
MODELO DE IMUNIZAÇÃO EM CAMUNDONGOS
Foram utilizados camundongos fêmeas isogênicos, entre 6 e 8 semanas de idade, da linhagem BALB/c. Foram formados dois grupos experimentais contendo 12 camundongos BALB/c. No grupo I, os animais foram imunizados com a linhagem vacinai contendo o plasmídio asd+ recombinante para o cassete de expressão de vapG, e no grupo II, os animais receberam a linhagem vacinai contendo o plasmídio asd+ vazio. Os camundongos foram inoculados, via oral, com 200 microlitros das suspensões bacterianas em uma única dose de aproximadamente 100 milhões de células bacterianas. Subgrupos de 4 animais de cada grupo foram sacrificados no terceiro, décimo e vigésimo dias após a inoculação, e o baço e o fígado desses animais foram removidos para o estudo de persistência bacteriana nos tecidos. Esses órgãos foram previamente pesados e divulsionados em tampão fosfato (PBS) utilizando-se homogeneizador elétrico. Desse homogeneizado, 100 microlitros foram cultivados por um dia em meio de cultivo sólido seletivo para bactérias Gram-negativas (Agar McConkey). A quantificação de células bacterianas foi feita através da contagem de colónias visualizadas no meio sólido, e foram estimadas em número de bactérias por grama de órgão, mostrada na figura 3. Para a avaliação de proteção induzida, camundongos BALB/c foram imunizados conforme protocolo descrito acima, contendo um quarto grupo de animais que receberam apenas o veículo da suspensão, constituído por tampão fosfato (PBS). Todos os animais foram desafiados com uma dose intravenosa letal de cerca de 100 milhões de células de R. equi da linhagem ATCC33701. Cinco dias após o desafio os animais foram submetidos à eutanásia para a retirada do baço e do fígado para a contagem de células de R. equi por grama de órgão (figura 4), como descrita acima. Colónias isoladas dos tecidos foram avaliadas quanto à expressão de antígenos Vap por eletroforese em gel de poliacrilamida, como mostrado na figura 6.
Para a imunização oral foram formados dois grupos experimentais de camundongos BALB/c. No grupo I, os animais foram imunizados com a linhagem vacinai contendo o plasmídio asd+ recombinante para o cassete de expressão de vapG, e no grupo II, os animais receberam a linhagem vacinai contendo o plasmídio asd+ vazio. Os camundongos foram inoculados por via oral com 200 microlitros das suspensões bacterianas contendo cerca de 100 milhões de células bacterianas; foram feitas duas imunizações com intervalo de 14 dias.
Uma coleta de sangue foi feita antes da primeira imunização para obtenção de soro pré-imune (controle) e após a segunda imunização, em intervalos de 7 dias, num total de 6 semanas de coleta de soro imune (teste). Em cada ponto de amostragem foram coletados soros de quatro camundongos (n=28). A coleta foi realizada por via sub-ocular e o soro foi recolhido através da centrifugação do sangue total para determinação do título de anticorpos (IgG total, IgGl e IgG2a).
O material fecal foi coletado isoladamente (150-300 g/ animal) e imediatamente transferido para tubos de microcentrifugação contendo 1,0 ml de PBS, inibidor de protease PMSF 1,0 mM e albumina sérica bovina (BSA) 1%. Os tubos foram incubados em geladeira por aproximadamente 16 horas e, em seguida, as amostras foram homogeneizadas em vórtex e centrifugadas em alta rotação por 5 minutos. Os sobrenadantes foram transferidos para novos tubos para a determinação do título das imunoglobulinas citadas.
Um ensaio imunoenzimático (ELISA) foi utilizado para qualificar, nas fezes e no soro de camundongos imunizados, a presença de anticorpos IgA, IgG total, IgGl e IgG2a (soro) que reagem com antígenos de extrato bruto celular de Rhodococcus equi. Para tais ensaios, placas de poliestireno de 96 poços foram sensibilizadas com antígenos de extrato bruto de R. equi, utilizando como anticorpos primários aqueles contidos no soro ou fezes dos animais imunizados. As reações foram detectadas com sondas imunoenzimáticas (anti- imunoglobulinas ligadas à enzima peroxidase), observando suas respectivas classes e subclasses de imunoglobulinas, e reveladas com substrato para peroxidase disponível comercialmente.
Para avaliar o padrão de resposta imunitária após a imunização, quatro grupos de camundongos BALB/c foram submetidos ao mesmo protocolo de imunização descrito acima. Quinze dias após a primeira imunização, os animais receberam uma segunda dose de imunógeno. Após 30 dias da primeira imunização, os animais foram submetidos à eutanásia para a retirada do fígado para dosagem de interferon gama por método imunoenzimático (ELISA), mostrada na figura 7.

Claims

REIVINDICAÇÕES
1. MICRORGANISMOS VIVOS RECOMBINANTES, caracterizado pelo fato de compreender organismos procariotos, particularmente, enterobactérias, preferencialmente, Salmonella entérica, contendo as SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2.
2. MICRORGANISMOS, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato dos microrganismos compreenderem a capacidade de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e/ou suas derivações.
3. MICRORGANISMOS, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato do ácido nucléico heterólogo (SEQ. ID. N°. 1) compreender a codificação para o antígeno VapG de R. equi (SEQ. ID. N°. 3).
4. MICRORGANISMOS, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato do ácido nucléico heterólogo (SEQ. ID. N°. 2) compreender a codificação para o antígeno VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4).
5. MICRORGANISMOS, de acordo com as reivindicações 2 a 4, caracterizado pelo fato do polipeptídeo de R. equi compreender, ainda, outras derivações do antígeno VapG, tais como, VapA, VapC, VapD, VapE, VapF, VapH e/ou polipetídeos homólogos.
6. MICRORGANISMOS, de acordo com as reivindicações 2 a 5, caracterizado pelo fato do polipeptídeo compreender a eliminação de porções da região N-terminal com o peptídeo sinal e os sítios de lipidificação da molécula suprimidos.
7. MICRORGANISMOS, de acordo com as reivindicações 1 a 6, caracterizado pelo fato dos polipeptídeos compreenderem de 55% a 100% de identidade, preferencialmente, 70% de identidade com a proteína VapG de R. equi, incluindo quaisquer variações e fragmentos resultantes.
8. MICRORGANISMOS, de acordo com as reivindicações 1 a 7, caracterizado pelo fato dos polipeptídeos imunogênicos compreenderem uma sequência de pelo menos 15 aminoácidos, preferencialmente, com 10 aminoácidos idênticos nas porções da proteína VapG de R. equi
9. MICRORGANISMOS, de acordo com a reivindicação 8, caracterizado pelo fato dos polipeptídeos compreenderem, particularmente, uma sequência de aminoácidos de 1 a 161 ou 11 a 172 de VapG (SEQ. ID. N°. 3) ou seus fragmentos.
10. MICRORGANISMOS, de acordo com as reivindicações 1 a 9, caracterizado pelo fato de compreenderem polipeptídeos de R. equi expressos sob a forma de proteínas de fusão ou sob a forma de múltiplos polipeptídeos separadamente.
11. MICRORGANISMOS, de acordo com as reivindicações 1 a 10, caracterizado pelo fato dos polinucleotídeos compreenderem sua integração /incorporação em um vetor extracromossomal ou no cromossomo bacteriano, preferencialmente, em um plasmídeo.
12. MÉTODO DE PREPARAÇÃO DE LINHAGENS
VACINAIS, de acordo com as reivindicações 1 a 11, caracterizado pelo fato de compreender as etapas de i) mutações para a atenuação da virulência; ii) um ou mais fragmentos gênicos de expressão, com cada fragmento compreendendo uma sequência de ácidos nucléicos de origem heteróloga (SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2) sob controle transcricional de um promotor constitutivo ou induzível, onde a sequência de ácidos nucléicos é orientada para codificar, parcial e/ou integralmente, um antígeno de virulência de R. equi (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) e, opcionalmente, iii) uma mutação em um gene essencial para a sua multiplicação, tornando-a auxotrófica para componentes que são adicionados no meio de cultura, sem haver a necessidade de utilização de antibióticos para a seleção.
13. MÉTODO, de acordo com a reivindicação 12, caracterizado pelo fato das linhagens compreenderem, preferencialmente, linhagens de Salmonella atenuadas.
14. MÉTODO, de acordo com as reivindicações 12 e 13, caracterizado pelo fato das linhagens compreenderem mutações em genes responsáveis pela síntese de compostos aromáticos (delta- ro), em genes que interfiram com mecanismos fisiológicos do hospedeiro (delta- cya e delta- crp) e/ou em genes que codificam para a expressão de proteínas bacterianas ligantes de ácidos nucléicos (delta-fis, delta-dps, delta- /q, delta- hupA, delta- hupB ou delta- hha).
15. MÉTODO, de acordo com a reivindicação 14, caracterizado pelo fato das linhagens compreenderem a ausência ou inativação de pelo menos um gene associado com sua patogenicidade, onde, a Salmonella atenuada é derivada da linhagem parental Salmonella entérica serovar Typhimurium UK- 1.
16. MÉTODO, de acordo com as reivindicações 12 a 15, caracterizado pelo fato das linhagens atenuadas de Salmonella compreenderem uma mutação no gene roA, que codifica para a enzima 5-enol-piruvl-shikimato-3-fosfato sintase (EPSPS), particularmente, a linhagem H683 de S. entérica sorovariedade Typhimurium.
17. MÉTODO, de acordo com as reivindicações 12 a 16, caracterizado pelo de compreender a utilização de promotores para expressão em bactérias, tais como, os promotores tac, pac, rac, trc, lpp, dps ou recA de enterobactérias, T3, T7 e/ou SP6 de bacteriófagos.
18. MÉTODO, de acordo com a reivindicação 17, caracterizado pelo fato do método, ainda, compreender a utilização de promotores MET2, MET25 de leveduras, os promotores RSV, CMV, HTLV e SV40 de vírus e beta-Actin, mPGK, eiF4alpha, CAG e ENS-I de mamíferos, no caso de expressão em células eucarióticas.
19. MÉTODO, de acordo com as reivindicações 12 a 18, caracterizado pelo de compreender ajustes de códon para expressão em variados vetores.
20. ANTÍGENO, de acordo com as reivindicações 1 a 1 1, caracterizado pelo fato de compreender as SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4.
21. ANTÍGENO, de acordo com a reivindicação 20, caracterizado pelo fato de compreender sua expressão sem os sítios de lipidificação.
22. ANTÍGENO, de acordo com as reivindicações 20 e 21, caracterizado pelo fato de compreender, opcionalmente, o antígeno VapG associado a outros antígenos Vap de R. equi, selecionado de um grupo de polipeptídeos apresentando ausências de até 50 aminoácidos da porção N-terminal.
23. ANTÍGENO, de acordo com as reivindicações 20 a 22, caracterizado pelo fato do antígeno recombinante compreender de 60 a 99% da substância isoladamente.
24. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 1 a 23, caracterizadas pelo fato de compreenderem vacinas vetorizadas.
25. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com a reivindicação 24, caracterizadas pelo fato de compreenderem vetor vacinai recombinante (SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2) capazes de expressar lipoproteínas VapG e/ou VapA/VapG (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) em veículos farmaceuticamente aceitáveis.
26. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 e 25, caracterizadas pelo fato de compreenderem a associação de um antígeno recombinante purificado, tal como, uma população de Salmonella atenuada capaz de expressar VapG associada ao antígeno VapA, VapC e/ou VapH recombinantes purificados, em um veículo e/ou diluente farmaceuticamente aceitável.
27. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 e 26, caracterizadas pelo fato de compreenderem, particularmente, Salmonella atenuada capaz de expressar fusões de antígenos recombinantes, contendo duas ou mais sequências imunogênicas de antígenos de R. equi fusionadas em estrutura única.
28. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 e 27, caracterizadas pelo fato de compreenderem, opcionalmente, fusão com outras sequências polipeptídicas e/ou moléculas imuno-estimuladoras, tais como, citocinas e quimiocinas.
29. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com a reivindicação 28, caracterizadas pelo fato das citocinas e quimiocinas compreenderem IFN-alfa, IFN-beta, IFN-gama, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL- 6, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10, IL-11, IL-12, IL-13, IL-14, IL-15 ou IL-16.
30. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 a 29, caracterizadas pelo fato das composições compreenderem, opcionalmente, componentes adjuvantes, tais como, oligodesoxinucleotídeo CpG, compostos de alumínio (hidróxido de alumínio, óxido de alumínio ou fosfato de alumínio), adjuvantes oleosos (óleo mineral, adjuvantes completo ou incompleto de Freund), adjuvantes originários de ácido micólico (trealose dimicolato), lipopolissacarídeos bacterianos (LPS), peptidoglicanos (mureína, mucopeptídeo), glicoproteínas (N-Opaca, análogos de muramil- dipeptídeo), proteoglicanos, preparações estreptocóccicas (OK432), saponina, óleos neutros (migliol), óleos vegetais, lipossomos, polióis, vitamina E, Carbopol, interleucinas e/ou suas combinações.
31. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 a 30, caracterizadas pelo fato das composições de compreenderem, também, excipientes e/ou carreadores farmaceuticamente aceitáveis, tais como, soluções líquidas, como salina, hipoclorito e/ou outros sais atóxicos, um solvente sólido ou um material para encapsulação, onde a vacina pode ser ressuspensa ou dissolvida.
32. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 a 31, caracterizadas pelo fato dos excipientes e veículos farmacêuticos compreenderem, ainda, amido, glicose, lactose, sacarose, gelatina, malte, arroz, farinha, giz, sílica gel, estearato de sódio, estearato de magnésio, monoestearato de glicerol, ácido ascórbico, talco, cloreto de sódio, leite em pó, maltodextrina, glicerol, propileno, glicol, água, etanol, conservantes, edulcorantes e/ou suas combinações.
33. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 a 32, caracterizadas pelo fato das composições compreenderem formas farmacêuticas, tais como, cápsulas de gelatina, pílulas, comprimidos, drágeas, elixires, suspensões, xaropes, suspensões para vaporizadores, preferencialmente vacinas.
34. COMPOSIÇÕES VACINAIS, de acordo com as reivindicações 24 a 33, caracterizadas pelo fato das composições compreenderem, particularmente, cápsulas de gelatina como carreadoras para vacinas liofilizadas.
35. USO DOS VETORES VACINAL, de acordo com as reivindicações 1 a 34, caracterizado pelo fato de compreender o preparo de composições farmacêuticas, em particular, vacinas indicadas para a prevenção e/ou tratamento de infecções por Rhodococcus equi.
36. USO, de acordo com a reivindicação 35, caracterizado pelo fato das infecções por Rhodococcus equi compreenderem, particularmente, pneumonia piogranulomatosa e/ou colites.
37. ANTI-SOROS E/OU ANTICORPOS, de acordo com as reivindicações 1 a 36, caracterizados pelo fato de serem isolados ou substancialmente purificados, produzidos contra os antígenos recombinantes (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4).
38. ANTI-SOROS E/OU ANTICORPOS, de acordo com a reivindicação 37, caracterizado pelo fato da purificação ser compreendida através de cromatografia de afinidade com os antígenos recombinante s .
39. KIT DE DIAGNÓSTICO, de acordo com as reivindicações 1 a 38, caracterizado pelo fato de compreender um ou mais antígenos Vaps (SEQ. ID. N°. 3 e SEQ. ID. N°. 4) de R. equi recombinantes (SEQ. ID. N°. 1 e SEQ. ID. N°. 2), em conjunto com seus anticorpos específicos.
40. KIT, de acordo com a reivindicação 39, caracterizado pelo fato do kit compreender um ensaio imunoenzimático (ELISA) para diagnóstico de infecções por R. equi.
41. MÉTODO DE PROFILAXIA E/OU TRATAMENTO, de acordo com as reivindicações 1 a 40, caracterizado pelo fato de compreender o tratamento e/ou profilaxia de infecções por R. equi.
42. MÉTODO DE PROFILAXIA E/OU TRATAMENTO, de acordo com a reivindicação 41, caracterizado pelo fato do método de profilaxia e/ ou tratamento compreender administração de uma ou mais composições vacinais, sendo, uma dose inicial e uma dose de reforço.
43. MÉTODO DE PROFILAXIA E/OU TRATAMENTO, de acordo com as reivindicações 41 e 42, caracterizado pelo fato de compreender a administração da dose inicial no primeiro dia de vida e uma dose de reforço quinze dias após a primeira dose.
44. MÉTODO DE PROFILAXIA E/OU TRATAMENTO, de acordo com as reivindicações 41 a 43, caracterizado pelo fato da administração compreender métodos invasivos, tais como, via parenteral, subcutânea, intravenosa, intramuscular, intraperitoneal, transdermal, intramucosa, intranasal, intragástrica e/ou métodos não- invasivos, tais como, oral, retal, inalação, nasal e/ou ocular, preferencialmente, via oral e nasal.
PCT/BR2011/000233 2010-07-22 2011-07-15 Microrganismos recombinantes, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos, composições vacinais vetorizadas, seus usos, anticorpos, kit de diagnóstico e métodos de tratamento e/ou profilaxia WO2012009774A2 (pt)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP11809093.5A EP2597151A4 (en) 2010-07-22 2011-07-15 RECOMBINANT MICROORGANISMS, METHODS FOR THE PREPARATION OF VACCINE STRAINS, ANTIGENS, VECTORIZED VACCINE COMPOSITIONS, USES THEREOF, ANTIBODIES, DIAGNOSTIC KIT AND METHODS OF TREATMENT AND / OR PROPHYLAXIS
AU2011282491A AU2011282491A1 (en) 2010-07-22 2011-07-15 Recombinant microorganisms, methods for preparing vaccine strains, antigens, and vector vaccine compositions of same, uses thereof, and related antibodies, diagnostic kit, and treatment and/or prophylactic methods
US13/740,941 US20130236948A1 (en) 2010-07-22 2013-01-14 Recombinant microorganisms and uses thereof

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BRPI1003750-0 2010-07-22
BRPI1003750-0A BRPI1003750A2 (pt) 2010-07-22 2010-07-22 microrganismos recombinantes, métodos de preparação de linhagens vacinais, antìgenos, composições vacinais vetorizadas, seus usos, anticorpos, kit de diagnóstico e métodos de tratamento e/ou profilaxia

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US13/740,941 Continuation US20130236948A1 (en) 2010-07-22 2013-01-14 Recombinant microorganisms and uses thereof

Publications (2)

Publication Number Publication Date
WO2012009774A2 true WO2012009774A2 (pt) 2012-01-26
WO2012009774A3 WO2012009774A3 (pt) 2012-06-07

Family

ID=45497205

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/BR2011/000233 WO2012009774A2 (pt) 2010-07-22 2011-07-15 Microrganismos recombinantes, métodos de preparação de linhagens vacinais, antígenos, composições vacinais vetorizadas, seus usos, anticorpos, kit de diagnóstico e métodos de tratamento e/ou profilaxia

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20130236948A1 (pt)
EP (1) EP2597151A4 (pt)
AU (1) AU2011282491A1 (pt)
BR (1) BRPI1003750A2 (pt)
WO (1) WO2012009774A2 (pt)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012142684A1 (pt) * 2011-04-19 2012-10-26 Universidade Estadual De Campinas- Unicamp Processo de construção de linhagem atenuada mutante de uma bactéria patogênica, vacina, vetor vacinal e uso da referida vacina.
US20150023983A1 (en) * 2013-03-13 2015-01-22 Santa Cruz Biotechnology, Inc. Recombinant vapa and vapc peptides and uses thereof
CN104862331A (zh) * 2015-05-26 2015-08-26 华南农业大学 一种可溶性表达马红球菌致病基因VapA蛋白的方法

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BR102014030638B1 (pt) * 2014-12-08 2022-12-06 Universidade Estadual De Campinas - Unicamp Uso da linhagem salmonella enterica typhimurium para preparar vacina contra salmonelose
US20220047648A1 (en) * 2019-01-09 2022-02-17 Md Healthcare Inc. Nanovesicles derived from bacteria of genus rhodococcus, and use thereof
US10973908B1 (en) 2020-05-14 2021-04-13 David Gordon Bermudes Expression of SARS-CoV-2 spike protein receptor binding domain in attenuated salmonella as a vaccine

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1988009669A1 (en) 1987-06-04 1988-12-15 Molecular Engineering Associates, Inc. Avirulent microbes and uses therefor
EP0500699A1 (en) 1989-11-03 1992-09-02 Washington University Cross-protective salmonella vaccines
EP0827410A1 (en) 1995-05-03 1998-03-11 The University Of Maryland At Baltimore Method for introducing and expressing genes in animal cells
EP1537214A2 (en) 2002-09-01 2005-06-08 Washington University Regulated bacterial lysis for gene vaccine vector delivery and antigen release
BRPI0414353A (pt) 2003-09-14 2006-11-14 Univ Utrecht Holding Bv proteìna de piroplasmìdeo, ácido nucleico, fragmento de cdna, molécula de dna recombinante, veìculo recombinante vivo, célula hospedeira, vacina, método para a preparação de uma vacina, usos de uma proteìna, de uma seqüência de ácido nucleico, e, teste diagnóstico

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU637969B2 (en) * 1987-10-07 1993-06-17 Washington University A method of maintaining a desired recombinant gene in a genetic population of cells
AU2003265279B2 (en) * 2002-07-16 2009-04-23 Presidents And Fellows Of Harvard College Rhodococcus equi mutants and vaccines comprising same

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1988009669A1 (en) 1987-06-04 1988-12-15 Molecular Engineering Associates, Inc. Avirulent microbes and uses therefor
EP0500699A1 (en) 1989-11-03 1992-09-02 Washington University Cross-protective salmonella vaccines
EP0827410A1 (en) 1995-05-03 1998-03-11 The University Of Maryland At Baltimore Method for introducing and expressing genes in animal cells
EP1537214A2 (en) 2002-09-01 2005-06-08 Washington University Regulated bacterial lysis for gene vaccine vector delivery and antigen release
BRPI0414353A (pt) 2003-09-14 2006-11-14 Univ Utrecht Holding Bv proteìna de piroplasmìdeo, ácido nucleico, fragmento de cdna, molécula de dna recombinante, veìculo recombinante vivo, célula hospedeira, vacina, método para a preparação de uma vacina, usos de uma proteìna, de uma seqüência de ácido nucleico, e, teste diagnóstico

Non-Patent Citations (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ARCHIVE WISSEN PRAKTISE TIERHEILK, vol. 50, 1923, pages 22 - 38
BELL, K. S.; PHILP, J. C.; AW, D. W.; CHRISTOFI, N.: "The genus Rhodococcus", JOURNAL OF APPLIED MICROBIOLOGY, vol. 85, no. 2, August 1998 (1998-08-01), pages 195 - 210
BYRNE, B. A.; PRESCOTT, J. F.; PALMER, G. H.; TAKAI, S.; NICHOLSON, V. M; ALPERIN, D. C.; HINES, S. A.: "Virulence plasmid of Rhodococcus equi contains inducible gene family encoding secreted proteins", INFECTION AND IMMUNITY, vol. 69, no. 2, February 2001 (2001-02-01), pages 650 - 6
CIMPRICH, R. E.; ROONEY, J. R.: "Corynebacterium equi enteritis in foals", VETERINARY PATHOLOGY, vol. 14, no. 2, March 1977 (1977-03-01), pages 95 - 102
GAKHAR, L; MALIK, Z. A; ALLEN, C. C; LIPSCOMB, D. A; LARKIN, M. J; RAMASWAMY, S.: "Structure and increased thermostabiHty of Rhodococcus sp. naphthalene 1,2-dioxygenase", JOURNAL OF BACTERIOLOGY, vol. 187, no. 21, November 2005 (2005-11-01), pages 7222 - 31
GIGUÈRE, S.; HONDALUS, M. K.; YAGER, J. A.; DARRAH, P; MOSSER, D. M.; PRESCOTT, J. F.: "Role of the 85-kilobase plasmid and plasmid-encoded virulence-associated protein A in intracellular survival and virulence of Rhodococcus equi", INFECTION AND IMMUNITY, vol. 67, no. 7, July 1999 (1999-07-01), pages 3548 - 57, XP002975725
GOODFELLOW, M.; ALDERSON, G.: "The actinomycete genus Rhodococcus: a home for the ''rhodochrous'' complex", JOURNAL OF GENERAL MICROBIOLOGY, vol. 100, no. 1, May 1977 (1977-05-01), pages 99 - 122
JACKS, S.; GIGUÈRE, S.; PRESCOTT, J. F.: "In vivo expression of and cell-mediated immune responses to the plasmid-encoded virulence-associated proteins of Rhodococcus equi in foals", CLINICAL VACCINE IMMUNOLOGY, vol. 14, no. 4, 14 February 2007 (2007-02-14), pages 369 - 74, XP009174499
KOHLER, A. K.; STONE, D. M.; HINES, M. T.; BYRNE, B. A.; ALPERIN, D. C.; NORTON, L. K; HINES, S. A.: "Rhodococcus equi secreted antigens are immunogenic and stimulate a type 1 recall response in the lungs of horses immune to R. equi infection", INFECTION AND IMMUNITY, vol. 71, no. 11, November 2003 (2003-11-01), pages 6329 - 37
MAGNUSSON, H.: "Spezifsche infektiöse Pneumonie beim Fohlen", EIN NEUER EITERERREGER BEIM PFERDE
MARTÍNKOVÁ, L.; UHNÁKOVÁ, B.; PATEK, M.; NESVERA, J.; KREN, V.: "Biodegradation potential of the genus Rhodococcus", ENVIRONMENT INTERNATIONAL, vol. 35, no. 1, 11 September 2008 (2008-09-11), pages 162 - 77, XP025742162, DOI: doi:10.1016/j.envint.2008.07.018
OLIVEIRA, A. F; FERRAZ, L. C; BROCCHI, M; ROQUE-BARREIRA, M.C.: "Oral administration of a live attenuated Salmonella vaccine strain expressing the VapA protein induces protection against infection by Rhodococcus equi", MICROBES AND INFECTION, vol. 9, no. 3, 12 January 2007 (2007-01-12), pages 382 - 90, XP005917138, DOI: doi:10.1016/j.micinf.2006.12.019
PETRUSMA, M.; DIJKHUIZ.EN, L.; VAN DER GEIZE, R.: "Rhodococcus rhodochrous DSM 43269 3-ketosteroid 9-alpha-hydroxylase, a two-component iron-sulfur-containing monooxygenase with subtle steroid substrate specificity", APPLIED ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, vol. 75, no. 16, 26 June 2009 (2009-06-26), pages 5300 - 7
TAKAI, S.; HINES, S. A.; SEKIZAKI, T.; NICHOLSON, V. M.; ALPERIN, D. A.; OSAKI, M.; TAKAMATSU, D.; NAKAMURA, M.; SUZIJKI, K.; OGIN: "DNA sequence and comparison of virulence plasmids from Rhodococcus equi ATCC 33701 and 103", INFECTION AND IMMUNITY, vol. 68, no. 12, December 2000 (2000-12-01), pages 6840 - 7, XP055103347, DOI: doi:10.1128/IAI.68.12.6840-6847.2000
TAKAI, S.; KOIKE, K.; OHBUSHI, S.; IZUMI, C.; TSUBAKI, S.: "Identification of 15- to 17-kilodalton antigens associated with virulent Rhodococcus equi", JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY, vol. 29, no. 3, March 1991 (1991-03-01), pages 439 - 43
TAN, C.; PRESCOTT, J. F.; PATTERSON, M. C.; NICHOLSON, V. M: "Molecular characterization of a lipid-modified virulence-associated protein of Rhodococcus equi and its potential in protective immunity", CANADIAN JOURNAL OF VETERINARY RESEARCH, vol. 59, no. 1, January 1995 (1995-01-01), pages 51 - 9, XP002913907
VANNIASINKAM, T.; BARTON, M. D.; HEUZENROEDER, M. W.: "Immune response to vaccines based upon the VapA protein of the horse pathogen, Rhodococcus equi, in a murine model", INTERNATIONAL JOURNAL OF MEDICAL MICROBIOLOGY, vol. 294, no. 7, January 2005 (2005-01-01), pages 437 - 45, XP025339005, DOI: doi:10.1016/j.ijmm.2004.09.011
VAZQUEZ-BOLAND, J. A.; PRESCOTT, J. F.; MEIJER, W. G.; LEADON, D. P.; HINES, S. A.: "Rhodococcus equi comes of age", EQUINE VETERINARY JOURNAL, vol. 41, no. 1, January 2009 (2009-01-01), pages 93 - 5
VON BARGEN, K.; HAAS, A.: "Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi", FEMS MICROBIOLOGY REVIEWS, vol. 33, no. 5, 23 April 2009 (2009-04-23), pages 870 - 91
VON BARGEN; K. HAAS: "A. Molecular and infection biology of the horse pathogen Rhodococcus equi", FEMS MICROBIOLOGY REVIEWS, vol. 33, no. 5, 23 April 2009 (2009-04-23), pages 870 - 91

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012142684A1 (pt) * 2011-04-19 2012-10-26 Universidade Estadual De Campinas- Unicamp Processo de construção de linhagem atenuada mutante de uma bactéria patogênica, vacina, vetor vacinal e uso da referida vacina.
US20150023983A1 (en) * 2013-03-13 2015-01-22 Santa Cruz Biotechnology, Inc. Recombinant vapa and vapc peptides and uses thereof
US9926342B2 (en) * 2013-03-13 2018-03-27 Santa Cruz Biotechnology, Inc. Recombinant VapA and VapC peptides and uses thereof
CN104862331A (zh) * 2015-05-26 2015-08-26 华南农业大学 一种可溶性表达马红球菌致病基因VapA蛋白的方法
CN104862331B (zh) * 2015-05-26 2019-01-11 华南农业大学 一种可溶性表达马红球菌致病基因VapA蛋白的方法

Also Published As

Publication number Publication date
AU2011282491A1 (en) 2013-03-14
BRPI1003750A2 (pt) 2012-04-10
US20130236948A1 (en) 2013-09-12
EP2597151A4 (en) 2014-04-02
EP2597151A2 (en) 2013-05-29
WO2012009774A3 (pt) 2012-06-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2640525B2 (ja) 無毒の微生物とその使用
AU767143B2 (en) Lactobacilli harboring aggregation and mucin binding genes as vaccine delivery vehicles
US20040101531A1 (en) Immunogenic compositions and vaccines comprising carrier bacteria that secrete antigens
US8900594B2 (en) Oral recombinant Helicobacter pylori vaccine and preparing method thereof
US20130236948A1 (en) Recombinant microorganisms and uses thereof
US8404253B2 (en) Modified live (JMSO strain) Haemophilus parasuis vaccine
US10603371B2 (en) Attenuated Pasteurella multocida vaccines and methods of making and use thereof
EP2032687B1 (en) Salmonella enterica strains of reduced pathogenicity, method for their preparation and uses thereof
ES2381973T3 (es) Vacuna viva atenuada contra la pleuroneumonia porcina
KR101151004B1 (ko) 소의 병원성 대장균의 부착인자가 형질전환된 약독화 살모넬라균 변이주 및 이를 포함하는 소의 대장균증 및 살모넬라균증의 예방 및 치료용 백신조성물
KR102228308B1 (ko) 마이코플라즈마 폐렴 및 흉막폐렴 예방용 백신 조성물
AU743654B2 (en) LKTA deletion mutant of P. haemolytica
EP2916863B1 (en) Attenuated mannheimia haemolytica vaccines and methods of making and use
US20220023408A1 (en) Protective immunity enhanced salmonella vaccine (piesv) against brucella spp.
US10286054B2 (en) Attenuated EHEC and clostridial toxins TcdA and TcdB based vaccine for Clostridium difficil associated disease (CDAD)
JP2005522195A (ja) 細菌胞子
WO2001094599A1 (en) Gene expression cassette and its use
US20150238590A1 (en) Use of the salmonella spp type iii secretion proteins as a protective vaccination
Curtiss 3rd Antigen delivery system II: Development of live attenuated bacterial vectors
Liu et al. Construction and characterization of recombinant attenuated Salmonella typhimurium expressing the babA2/ureI fusion gene of Helicobacter pylori
US20070087013A1 (en) Orally-administered live bacterial vaccines for plague
JPS58146596A (ja) 組換えｄｎａ、それで形質転換させた微生物およびそれらの用途
CN117625505B (en) Lactococcus lactis vector oral vaccine for producing enterotoxin escherichia coli K88 genotype and application
WO2022007741A1 (en) Genetically engineered live bacteria and methods of constructing the same
CN117586935A (zh) 用于产肠毒素大肠杆菌k99菌毛型的乳酸乳球菌载体口服疫苗及应用

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 11809093

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A2

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2011809093

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2011282491

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20110715

Kind code of ref document: A