WO2010134508A1 - 抗マラリア薬の抗体、ならびにモノクローナル抗体、およびその製作方法 - Google Patents

Abstract

　本発明は、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対して、選択的な結合能を有するモノクローナル抗体、あるいはポリクローナル抗体と、該モノクローナル抗体、あるいはポリクローナル抗体を製造する方法を提供する。免疫原性を示さない過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体として、前記過酸化物誘導体型の抗マラリア薬における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対する抗体の群から、該過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対して交叉反応性を有する抗体を選別して、該交叉反応性を有する抗体を利用する。

Description

抗マラリア薬の抗体、ならびにモノクローナル抗体、およびその製作方法

　本発明は、抗マラリア薬の有効成分として使用される、過酸化物誘導体に対する結合能を有する抗体、特には、該モノクローナル抗体、ならびに該モノクローナル抗体の製造方法に関する。

　マラリア（Malaria）は、マラリア原虫（Plasmodium　spp.）が病原体である、原虫感染症である。マラリア（Malaria）に感染すると、高熱や頭痛、吐き気などの症状を呈する。悪性の場合、意識障害や腎不全などを起こし、死亡に至ることもある。病原体である、マラリア原虫（Plasmodium　spp.）の感染は、ハマダラカ（Anopheles　spp.）によって媒介されるため、その感染地域は、ハマダラカが生息する、熱帯から亜熱帯に広く分布している。

　ヒトの病原体となるものは、熱帯熱マラリア原虫（P.　falciparum）、三日熱マラリア原虫（P.　vivax）、四日熱マラリア原虫（P.　malariae）、卵形マラリア原虫（P.　ovale）の四種である。特に、熱帯熱マラリア原虫によるマラリアは症状が重い。地球温暖化に起因する亜熱帯域の拡大に伴って、ハマダラカの生息域が拡大する結果、熱帯熱マラリア原虫によるマラリアの感染地域も拡大している。

　近年では、漢方薬を由来としたチンハオス系薬剤が副作用、薬剤耐性が少ないとされ、マラリア治療の第一選択薬として広く使用されている。前記チンハオス系薬剤は、アーテミシニン(artemisinin)と、その誘導体、類縁体で代表され、分子内にジオキシ結合（－Ｏ－Ｏ－）を具えている、過酸化物の誘導体である。なお、アーテミシニン（artemisinin）は、下記の構造を有している。

　前記アーテミシニン系抗マラリア剤には、薬効の持続時間が短いという欠点がある。そのため、熱帯熱マラリアの治療においては、アーテミシニン系抗マラリア剤と、ルメファントリンと併用して用いられる。ルメファントリンは３日から６日の半減期を持つ。このアーテミシニン系抗マラリア剤と、他の抗マラリア剤を併用するマラリアの治療法は、ACT(artemisinin-based　combination　therapy)と呼ばれている。

Chemistry　Letters,　Vol.35,　No.10,　p.1126-1127　(2006) Organic　&　Biomolecular　Chemistry　Vol.4,　p.4431-4436　(2006)

　一方、現在、薬効の持続時間の延長を目的として、新たな過酸化物誘導体型の抗マラリア剤の開発が進められている。従って、新たな過酸化物誘導体型の抗マラリア剤の開発を進める上では、該過酸化物誘導体型の抗マラリア剤の血中濃度を測定することが重要であり、特に、簡便に測定する技術の開発が求められている。

　過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の血中濃度を測定する技術としては、従来、エレクトロスプレーイオン化法が用いられてきた。エレクトロスプレーイオン化法による質量分析法では、分子量のみの測定であるため、構造の決定までを行うことはできない。例えば、過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の分子内に存在する、ジオキシ結合（－Ｏ－Ｏ－）が還元され、二つのヒドロキシル基（－ＯＨ）に変化する構造変化を追跡する際には、僅かに分子量の異なるピークを正確に分離する必要がある。

　投与された、過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の半減期を高い確度で評価する上では、該過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の血中濃度に関して、相当に低い濃度の範囲でも、高い精度で測定を行う必要がある。通常、低い濃度の対象化合物について、高い精度で定量を行う際には、一次試料中に含有される対象化合物のみを選択的に濃縮し、得られる濃縮された二次試料を利用して、その含有濃度の定量を行う手法が利用される。例えば、クロマトグラフィー法を利用して、対象化合物を一次試料溶液中から分取し、定量分析に使用する二次試料を調製する。この対象化合物の分取、濃縮を目的とする、クロマトグラフィー法としては、対象化合物を選択的に固定できるアフィニテフィ・クロマトグラフィー法が適している。具体的には、対象化合物に対して、選択的な結合能を有する抗体分子や、受容体分子を利用するアフィニテフィ・クロマトグラフィー法の利用が適している。特には、対象化合物に対して、選択的な結合能を有する抗体分子を利用して、抗原抗体反応により、対象化合物を選択的に複合体として、固定する形態のアフィニテフィ・クロマトグラフィー法が適している。

　しかしながら、例えば、アーテミシニン系抗マラリア剤自体は、長期、反復投与が可能な薬剤であり、それ自体は免疫原性を示さない。また、抗マラリア剤自体、感染者の体内に存在する病原体のマラリア原虫が完全に除去されるまでの期間、長期、反復投与が可能な薬剤であることが必須要件であり、それ自体は、免疫原性を示さないことが必須である。

　そのため、それ自体は免疫原性を示さない、過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対する特異的抗体の作製は、これまでなされなく、従って、抗原抗体反応を応用するアフィニテフィ・クロマトグラフィー法に利用可能な、過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対する結合能を有する抗体は、これまで報告されていない。

　本発明は、前記の課題を解決するものである。すなわち、本発明の目的は、対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対する結合能を有する抗体を新たに創製し、創製された抗体のうち、特に、血液中に含有されている、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対して、選択的な結合能を有するモノクローナル抗体と、該モノクローナル抗体を製造する方法を提供することにある。

　本発明の目的は、例えば、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤として、下記の式（Ｉ）に示される過酸化物に対する結合能を有す抗体を新たに創製し、創製された抗体のうち、特に、血液中に含有されている、式（Ｉ）の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対して、選択的な結合能を有するモノクローナル抗体と、該モノクローナル抗体を製造する方法を提供することにある。

　3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）:

　本発明者らは、上記の課題を解決すべく、先ず、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対する結合能を有する抗体を新たに創製する手法を検討した。

　対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤自体は免疫原性を示さないことは、既に判明している。一方、免疫原性を持たない低分子量化合物であっても、キャリア・タンパク質上に該低分子量化合物を結合させ、該低分子量化合物により修飾された修飾タンパク質とすると、免疫原として機能する場合がある（非特許文献１：Chemistry　Letters,　Vol.35,　No.10,　p.1126-1127　(2006)）。この手法を利用して、免疫原性を持たない低分子量化合物に対して特異的な反応性を示す抗体を作製した事例は少なくないが、全ての低分子量化合物に対して有効というものではない。すなわち、修飾タンパク質において、該低分子量化合物が結合されている部位が、実際に、免疫原性を示すか否かは、その部位の立体構造に依存するため、全ての低分子量化合物に対して有効というものではない。

　実際に、本発明者らも、例えば、式（Ｉ）のエステル化合物を構成する、カルボン酸部分を、キャリア・タンパク質上に結合させ、得られる修飾タンパク質を利用して、マウスの免疫を試みたが、該カルボン酸部分に対する反応性を有する抗体の創製には成功しなかった。

　さらに、本発明者らは、抗原抗体反応においては、抗体は、本来の抗原と類似する構造を有する物質に対しても反応性を示す現象、所謂、交叉反応性を示す場合があることに着目した。すなわち、対象の低分子量化合物に代えて、該低分子量化合物と類似する構造を有する抗原に対する特異的な抗体を多数種創製すると、この多数種の抗体群のうちに、対象の低分子量化合物に対して、交叉反応性を示す抗体が存在する可能性があることに想到した。

　本発明者らは、実際に、式（Ｉ）のエステル化合物において、特徴的な構造は、そのカルボン酸部分であり、該カルボン酸部分と構造的な類似性を有する低分子量化合物多数種のうち、キャリア・タンパク質上に結合された際、得られる修飾タンパク質が免疫原性を示すものを探索した。次いで、探索された、修飾タンパク質を免疫原として、マウスを免疫することで創製される抗体多数種のうち、式（Ｉ）のエステル化合物に対して、交叉反応性を示す抗体が存在するか、否かについて、探索を行った。上記の二段回の探索過程を実施したところ、幸運にも、下記の式（II）に示す化合物が、キャリア・タンパク質上に結合された際、得られる修飾タンパク質が免疫原性を示し、該修飾タンパク質を免疫原として、マウスを免疫することで創製される抗体多数種のうちに、交叉反応性を示す抗体が存在することが見出された。

　3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）

　具体的には、式（II）に示す化合物をキャリア・タンパク質上に結合させて得られる修飾タンパク質を免疫原として、マウスを免疫することで創製された、式（II）に示す化合物に対する抗体を産生する、一群のハイブリドーマ細胞株を作製し、この一群のハイブリドーマ細胞株から、式（Ｉ）のエステル化合物に対して、交叉反応性を示す抗体を産生する、ハイブリドーマ細胞株数種を選別することができた。

　この選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体は、少なくとも、免疫動物として利用したマウスの内因性物質とは、交叉反応性を示さないが、式（II）に示す化合物と、式（Ｉ）のエステル化合物に対する反応性を具えていることが確認された。加えて、本発明者らは、選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体は、少なくとも、ヒトの血液中に存在する、ヒトの内因性物質に対しても、交叉反応性を示さないことも確認した。従って、該選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体は、ヒトの血液中に存在する、式（Ｉ）のエステル化合物を抗原抗体反応によって、検出する際、式（Ｉ）のエステル化合物を選択的に検出することが可能であることを確認した。

　以上の一連の知見に加えて、本発明者らは、該選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体を固定化した上で、式（Ｉ）のエステル化合物と抗原抗体反応を行わせた際、該モノクローナル抗体に結合される式（Ｉ）のエステル化合物の量は、試料溶液中の式（Ｉ）のエステル化合物の濃度と、比例しており、定量的な固定化、分取、濃縮に利用できることも確認した。

　特に、該選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体に結合された、式（Ｉ）のエステル化合物は、親水性の有機溶媒を結合解離剤として、溶出処理を施すと、凡そ、１分間のうちに、実質的に結合されていた式（Ｉ）のエステル化合物の全量の解離が完了することも確認した。すわなち、抗原抗体反応を応用する、アフィニテフィ・クロマトグラフィー法に利用した際、目的の式（Ｉ）のエステル化合物をほぼ全量を分取、回収することが可能であることも確認した。

　あるいは、抗原抗体反応を利用する免疫センサに応用した際、該選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体に一旦結合された式（Ｉ）のエステル化合物を、洗浄処理によって、解離する際、その処理時間として、１分間を選択することができることが確認された。換言すると、抗原抗体反応を利用する免疫センサに応用した際、前記の処理時間の洗浄処理を行うことで、該免疫センサの再利用が可能であることの確認がなされた。

　実際に、抗原抗体反応を利用する免疫センサの定量性を検証する上では、該免疫センサの抗体に結合されている抗原物質の量を別途に測定する必要がある。その際、前記の処理時間の洗浄処理を行うことで、該免疫センサのモノクローナル抗体に結合されていた式（Ｉ）のエステル化合物について、実質的に全量を解離させ、回収することができる。回収された式（Ｉ）のエステル化合物の量を別途定量することで、該抗原抗体反応を利用する免疫センサの定量性を検証することが可能となる。

　以上の一連の検証を行うことで、該選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体は、血液中に含有される式（Ｉ）のエステル化合物の選択的な分取、濃縮を目的とする、抗原抗体反応を応用する、アフィニテフィ・クロマトグラフィー法に好適に利用することが可能であることを確認した。また、該選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体は、式（Ｉ）のエステル化合物の定量的な検出に利用可能な、抗原抗体反応を利用する免疫センサに好適に使用することが可能であることも確認した。

　さらに、本発明者らは、上記の式（Ｉ）のエステル化合物と、該式（Ｉ）のエステル化合物における特徴的構造と類似性を具えた構造を持つ式（II）に示すジカルボン酸化合物に対するモノクローナル抗体の組み合わせのみならず、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤自体は免疫原性を示さない場合、該過酸化物誘導体型の抗マラリア剤における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対するモノクノーナル抗体を同様の手法で創製することが可能であることも見出した。その際、該過酸化物誘導体型の抗マラリア剤における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対するモノクノーナル抗体多数種のうち、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア剤に対して交叉反応性を示す抗体を選別することが可能であり、選別される交叉反応性を示す抗体は、上記の抗原抗体反応を利用する、アフィニテフィ・クロマトグラフィー法、ならびに、免疫センサに必要な特質を具えていることも見出した。

　なお、前記修飾タンパク質を免疫原として、マウスを免疫すると、該マウスの血液中には、式（II）に示す化合物に対する特異的な抗体が複数種存在している。この免疫を施したマウスから採取した血液から調製される血漿は、式（II）に示す化合物に対する特異的なポリクローナル抗体を含有している。前記の式（II）に示す化合物に対する特異的なポリクローナル抗体も、式（Ｉ）のエステル化合物に対する交叉反応性を示すことも確認された。

　以上の一連の知見に加えて、本発明者らは、前記の式（II）に示す化合物に対する特異的なポリクローナル抗体中には、式（Ｉ）のエステル化合物の合成過程で使用される原料化合物や、副生産物に対する結合能を示す抗体は含まれていないことも確認した。結論として、選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体に加えて、前記の式（II）に示す化合物に対する特異的なポリクローナル抗体も、式（Ｉ）のエステル化合物を選択的に結合させ、濃縮、単離する用途に利用可能であることが確認された。

　すなわち、選別されたハイブリドーマ細胞株数種が産生するモノクローナル抗体、あるいは、免疫を施したマウスから採取される式（II）に示す化合物に対する特異的なポリクローナル抗体を担体上に固定化し、親和性クロマトグラフ・カラム剤を作製し、該抗体を利用する親和性クロマトグラフ・カラム剤を応用して、式（Ｉ）のエステル化合物を選択的に濃縮、単離することができることを検証した。

　本発明者らは、上述する一連の知見、ならびに、検証結果に基づき、本発明を完成させた。

　すなわち、本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の抗体は、
　下記の式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）に対する結合能を有する抗体である。

　特には、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体は、
　該式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対する抗体であり、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対して交叉反応性を有する
ことを特徴とする抗体である。

　その際、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物は、
　下記の式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物：3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）であることが好ましい。

　上記の構成において、
　本発明の好ましい形態にかかる抗体においては、
　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体は、
　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質を免疫原として、ヒト以外の哺乳動物を免疫することで創製される、該低分子化合物に対するモノクローナル抗体であり、該式（Ｉ）に示すエステル化合物に対して交叉反応性を有する抗体である
ことを特徴とする抗体である。

　本発明の好ましい形態にかかる抗体においては、
　前記ヒト以外の哺乳動物は、マウスであることが好ましい。

　前記低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質において、該キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択することが望ましい。

　また、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物として、その分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を選択し、
　該分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質は、該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を介して、前記分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物の結合がなされていることが好ましい。その際、該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）の形成は、カルボジイミド法を利用してなされていることが望ましい。

　なお、本発明の好ましい形態においては、
　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体は、
ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体であることがより好ましい。

　なお、ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体は、マウスＩｇＧ抗体であり、
　該ＩｇＧ抗体のＨ鎖の可変領域Ｖ_Ｈは、下記のアミノ酸配列（配列番号：５）からなり、
E　　V　　Q　　L　　Q　　Q　　S　　G　　P　　E　　10
L　　V　　K　　P　　G　　A　　S　　V　　K　　M　　20
S　　C　　K　　A　　S　　G　　Y　　T　　F　　T　　30
D　　T　　N　　I　　H　　W　　V　　K　　Q　　S　　40
H　　G　　K　　S　　L　　E　　W　　I　　G　　Y　　50
I　　N　　P　　N　　N　　G　　G　　T　　S　　Y　　60
N　　Q　　K　　F　　K　　G　　K　　A　　T　　L　　70
T　　V　　N　　K　　S　　S　　S　　T　　A　　Y　　80
M　　E　　L　　R　　S　　L　　T　　S　　E　　D　　90
S　　A　　V　　Y　　Y　　C　　A　　R　　L　　A　　100
V　　W　　G　　Q　　G　　T　　T　　L　　T　　V　　110
S　　S　　　　　　　　　　　　　　　　　　112
 
　該ＩｇＧ抗体のＬ鎖の可変領域Ｖ_Ｌは、下記のアミノ酸配列（配列番号：６）からなっている。
N　　I　　V　　M　　T　　Q　　S　　P　　K　　S　　10
M　　S　　M　　S　　V　　G　　E　　R　　V　　T　　20
L　　T　　C　　K　　A　　S　　E　　N　　V　　V　　30
T　　Y　　V　　S　　W　　Y　　Q　　Q　　K　　P　　40
E　　Q　　S　　P　　K　　L　　L　　I　　Y　　G　　50
A　　S　　N　　R　　Y　　T　　G　　V　　P　　D　　60
R　　F　　T　　G　　S　　G　　S　　A　　T　　D　　70
F　　T　　L　　T　　I　　S　　S　　V　　Q　　A　　80
E　　D　　L　　A　　D　　Y　　H　　C　　G　　Q　　90
G　　Y　　S　　Y　　P　　Y　　T　　F　　G　　G　　100
G　　T　　K　　L　　E　　I　　K　　　　　　　　107
 
　さらに、本発明の好ましい形態にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の抗体の製造方法は、
　下記の式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）に対する結合能を有する抗体を製造する方法であって、

　該抗体は、
　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対するモノクローナル抗体であり、該式（Ｉ）に示すエステル化合物に対して交叉反応性を有する、ヒト以外の哺乳動物由来のモノクローナル抗体であり、
　該ヒト以外の哺乳動物由来のモノクローナル抗体の作製プロセスは、少なくとも、
　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質を免疫原として、前記ヒト以外の哺乳動物を免疫する工程；
　前記修飾タンパク質を免疫原とする免疫の確立がなされた後、免疫された前記ヒト以外の哺乳動物から脾臓細胞を採取し、採取した脾臓細胞からモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ細胞を作製する工程；
　作製された抗体産生ハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体の群から、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する交叉反応性を有するモノクローナル抗体を、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物を抗原とする、抗原抗体反応によって、選別する工程
を含んでいる
ことを特徴とする抗体の製造方法である。

　本発明の好ましい形態にかかる抗体の製造方法においては、
　前記ヒト以外の哺乳動物は、マウスであることが好ましい。

　前記低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質において、該キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択することが望ましい。

　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物として、その分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を選択し、
　該分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質は、該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を介して、前記分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物の結合がなされていることが望ましい。その際、該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）の形成は、カルボジイミド法を利用してなされていることが好ましい。

　なお、本発明の好ましい形態にかかる抗体の製造方法おいては、
　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体として、
ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体を選択することがより好ましい。

　本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体は、該過酸化物誘導体型の抗マラリア薬における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対する抗体のうちから、該過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する交叉反応性を示す抗体として選別されたものであり、抗原抗体反応を介して、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬を検出する用途に利用できる。例えば、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬が、3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）である際には、該エステル化合物と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物：3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）に対する抗体のうちから、該エステル化合物に対する交叉反応性を示す抗体として選別されたものであり、抗原抗体反応を介して、該エステル化合物を検出する用途に利用できる。特には、本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有するモノクローナル抗体を利用することで、抗原抗体反応を介して、血液試料中に含有される、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の検出を簡便に行うことが可能となる。

　特に、対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬自体は、免疫原性を示さないので、本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体の製造方法を利用することで、対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体を高い再現性で取得することが可能である。

図１は、本発明の第一の実施形態にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の抗体として選択される、3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）に対するポリクローナル抗体の、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）に対する交叉反応性をＥＬＩＳＡ法により評価した結果を示すグラフである。 図２は、本発明の第二の実施形態にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の抗体として選択される、3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）に対するモノクローナル抗体：ｍＡｂｍ００１～ｍＡｂｍ００４の、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）に対する交叉反応性をＥＬＩＳＡ法により評価した結果を示すグラフである。

　以下に、本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体と、その製造方法に関して、より詳しく説明する。

　低分子量の有機化合物に対する抗体を創製する手段として、対象の低分子量の有機化合物自体は免疫原性を示さない場合、キャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する手法がある（非特許文献１：Chemistry　Letters,　Vol.35,　No.10,　p.1126-1127(2006)）。

　具体的には、低分子量の有機化合物が反応性の官能基、例えば、アミノ基（－ＮＨ_２）、ヒドロキシル基（－ＯＨ）、スルファニル基（－ＳＨ）、カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を具えている場合、該反応性の官能基を利用して、他の反応性官能基を有する有機化合物を共有結合的に連結することが可能である。キャリア・タンパク質は、複数のアミノ酸残基が連結されてなるペプチド鎖で構成される、三次元構造を有しているが、その表面には、側鎖上に反応性官能基を有するアミノ酸残基が複数個存在している。従って、三次元構造を有している、キャリア・タンパク質の表面に存在する、アミノ酸残基の側鎖上の反応性官能基を利用して、反応性の官能基を具えている、低分子量の有機化合物を結合させることが可能である。この表面に低分子量の有機化合物に因る修飾が施された、修飾キャリア・タンパク質は、非天然型タンパク質分子であり、哺乳動物自体の内因性タンパク質分子と相違する、異質な物質として、認識される頻度が高い。特に、低分子量の有機化合物に因る修飾が施された部位は、免疫原性を発揮する頻度が高い。修飾キャリア・タンパク質表面の、低分子量の有機化合物に因る修飾が施された部位が、免疫原性を発揮する場合、該修飾キャリア・タンパク質を用いて、哺乳動物を免疫すると、該修飾キャリア・タンパク質に対する、特異的な抗体が創製される。

　該修飾キャリア・タンパク質の表面において、免疫原性を発揮する部位（抗原決定基）が複数存在する可能性がある。その場合、前記複数の免疫原性を発揮する部位（抗原決定基）のそれぞれに特異的な抗体複数種が創製される。創製された、修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種のうちには、その修飾に利用した低分子量の有機化合物自体を、免疫原性を発揮する部位（抗原決定基）とする抗体が存在する頻度が高い。修飾に利用した低分子量の有機化合物自体に対する結合能に基づき、スクリーニングを行うことで、修飾に利用した低分子量の有機化合物自体を、免疫原性を発揮する部位（抗原決定基）とする抗体を選別することが可能である。

　但し、修飾キャリア・タンパク質の表面に存在する抗原決定基に対して、高い交叉反応性を示す抗体を、免疫対象の哺乳動物が既に保持している場合には、この交叉反応性を示す抗原決定基に対する、新たな抗体の創製は起こらない。すなわち、免疫対象の哺乳動物が既に保持している抗体が示す高い交叉反応性を利用して、該修飾キャリア・タンパク質に対する免疫反応が可能である場合、この交叉反応性を示す抗原決定基に対する、新たな抗体の創製は起こらない。

　さらには、修飾が施された部位が、免疫原性を発揮する部位（抗原決定基）として機能する場合であっても、該抗原決定基に特異的な抗体は、修飾に利用した低分子量の有機化合物自体に対する結合能は高くない場合も、少なくない。

　すなわち、前記のキャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する手法を利用して、修飾に利用した低分子量の有機化合物自体に特異的な抗体を創製できる、否かは、下記の要因に依存している。具体的には、対象の低分子量の有機化合物自体の立体構造、利用するキャリア・タンパク質との組み合わせ、ならびに、該キャリア・タンパク質上への結合形態、その修飾部位の選択、以上４つの要因に依存している。

　実際には、対象の低分子量の有機化合物自体の立体構造は既に決定されているため、残る３つの要因に関して、適切な組み合わせを選択できるか、否かは、多分に偶然性に依存したものである。すなわち、キャリア・タンパク質上への結合形態、その修飾部位は、利用するキャリア・タンパク質の種類に依存しており、また、対象の低分子量の有機化合物が有する反応性官能基の種類によって、制限される。対象の低分子量の有機化合物自体の立体構造によっては、残る３つの要因に関して、適切な組み合わせが選択できない場合もある。

　一方、過酸化物誘導体型の抗マラリア薬自体が、その分子内に反応性官能基を保持していない場合には、上記の前記のキャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する手法を適用できない。勿論、過酸化物誘導体型の抗マラリア薬は、低分子量の有機化合物であり、それ自体は免疫原性を示さない。

　そのため、本発明では、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対する抗体多数を創製し、その類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対する抗体多数のうち、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対して交叉反応性を有する抗体を選別する方法を採用している。

　以下に、対象の過酸化物誘導体型の抗マラリア薬として、下記の式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステルを例に採り、本発明をより具体的に説明する。

　式（Ｉ）に示すエステル化合物の構造的特徴は、そのスピロ環構造そのものである。このスピロ環構造の特徴を具え、分子内に反応性官能基を有する、低分子量の過酸化物型化合物のうち、哺乳動物自体に対する毒性は高くなく、また、キャリア・タンパク質上に結合させる際、そのスピロ環構造を保持可能なものを探索した。

　その探索の結果、毒性が低い抗マラリア薬剤としての利用が検討されている、低分子量の過酸化物型化合物の一群のうち、下記の式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物：3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）が前記の要件を満足する候補として、選択された。

　本発明では、式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物の分子内に存在する反応性官能基である、カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を利用して、キャリア・タンパク質表面に存在する反応性官能基、特に、アミノ基（－ＮＨ_２）との間で、アミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を形成させることで、キャリア・タンパク質の表面に結合させる形態を選択することが好ましい。

　その際、キャリア・タンパク質は、上記のキャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する手法（非特許文献１：Chemistry　Letters,　Vol.35,　No.10,　p.1126-1127(2006)）において、既に利用されている、各種のキャリア・タンパク質を利用することができる。キャリア・タンパク質として、ウシ血清アルブミン、ウシサイログロブリン、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）などが好適に利用できる。

　キャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する場合、免疫操作を施した哺乳動物中では、該修飾キャリア・タンパク質に対する特異的な抗体が創製される。その際、利用するキャリア・タンパク質自体も、一般に、免疫原性を具えているため、該修飾キャリア・タンパク質中の修飾部位に特異的な抗体以外に、キャリア・タンパク質自体の抗原決定基に特異的な抗体の創製もなされる。

　その点を考慮すると、免疫操作に利用される、修飾キャリア・タンパク質に対して、未修飾のキャリア・タンパク質の混入比率が低いことが好ましい。勿論、未修飾のキャリア・タンパク質の混入が無い、修飾キャリア・タンパク質を使用することがより好ましい。

　一方、利用されるキャリア・タンパク質上には、対象の低分子量の有機化合物を結合させ、修飾を行うことが可能な部位（修飾可能部位）が、一般に、複数箇所存在している。この修飾可能部位は、それぞれ、反応性官能基が存在しているが、その反応性には、一般に、差違が存在している。従って、反応性の高い修飾可能部位から優先的に、対象の低分子量の有機化合物の結合が進行し、対象の低分子量の有機化合物が消費されるため、反応性の低い修飾可能部位に対して、対象の低分子量の有機化合物の結合が達成される効率は一層低下する傾向がある。キャリア・タンパク質上に存在する、複数の修飾可能部位の全てに、対象の低分子量の有機化合物の結合を達成させるためには、反応に使用する対象の低分子量の有機化合物の量は、複数の修飾可能部位の合計に対して、相当に過剰な量に選択することが望ましい。例えば、キャリア・タンパク質上に存在する、修飾可能部位がＮ箇所である場合、反応に使用する対象の低分子量の有機化合物の量は、キャリア・タンパク質１分子当たり、最低限、Ｎ分子が必要であるが、少なくとも、少なくとも、５０分子以上、好ましくは、６０分子以上に選択することが望ましい。

　免疫操作は、該対象の低分子量の有機化合物を結合させた、修飾キャリア・タンパク質の免疫有効量を含む溶液を、例えば、免疫対象の哺乳動物に対して、注射により投与することにより行うことが望ましい。その注射による投与の形態では、皮下注射、皮内注射、静脈注射、または腹腔内投与の形態が利用可能である。通常、皮下注射によって、前記溶液を投与する。その際、前記修飾キャリア・タンパク質の免疫有効量を含む溶液に、各種のアジュバンドを添加することが好ましい。通常、該アジュバンドとしては、従来から免疫操作に利用されているアジュバンドが利用できる。利用可能なアジュバントとしては、フロイント完全アジュバントや水中油中水型乳剤、水中油乳剤、リポソーム、水酸化アルミニウムゲル、シリカアジュバンドがある。フロイント完全アジュバンドは、汎用されており、本発明でも、好適に利用できる。例えば、初回の免疫操作（感作）時には、該アジュバンドとして、フロイント完全アジュバントを利用することが好ましい。

　また、免疫操作では、初回の免疫操作（感作）後、所定の期間が経過した時点で、追加免疫を行う。この追加免疫においても、修飾キャリア・タンパク質の免疫有効量を含む溶液に、各種のアジュバンドを添加することが好ましい。例えば、追加免疫時にも、該アジュバンドとして、フロイント完全アジュバントを利用することが好ましいが、フロイント不完全アジュバントを利用することでも、相当の効果が得られる。

　初回の免疫操作（感作）後、実施される追加免疫は、複数回行うことが望ましい。その間隔は、前回の免疫操作（感作）に対する免疫反応に伴う、血液中の抗体濃度が極大を示し、抗体濃度の減少期となった時点で、追加免疫を行うことが望ましい。前回の免疫操作（感作）後、血液中の抗体濃度が極大に達するまでの日数は、通常、用いる免疫原の体内での代謝速度に依存する。従って、追加免疫の間隔は、用いる免疫原の種類、対象の免疫動物の種類、その健康状態に依存する。マウスなどの小動物を免疫動物に利用する際には、初回の免疫操作（感作）後、例えば、２週間、４週間、６週間、８週間後に、追加免疫を実施する形態を選択できる。

　科学的には、免疫対象の哺乳動物の種類は問わないが、倫理的な観点から、ヒト以外の哺乳動物から選択する。モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞を創製する場合、免疫対象の哺乳動物に利用可能な、ヒト以外の哺乳動物としては、マウス、ラット、ヤギなどを選択することができる。

　免疫対象の哺乳動物としては、該修飾キャリア・タンパク質に対して、交叉反応性を示す抗体を既に保持している哺乳動物は好ましくない。すなわち、当該免疫対象の哺乳動物は、後天的に獲得した免疫が無い個体であることが、一般に好ましい。前記の要件を考慮すると、各種の免疫原性物質に曝される機会が本質的にない環境下において、出産後、生育された哺乳動物を利用することが好ましい。あるいは、出産後、免疫操作を施すことが可能な程度に生育するまでの期間が短い哺乳動物を利用することが好ましい。これらの条件を考慮すると、医学的な研究に利用される、血統的に確立されている小型の哺乳動物を利用することがより好ましい。具体的には、各種の新規な抗体の創製に利用されている、マウス、ラット、ラビットなどが好ましく、特には、マウスまたはラット、更には、マウスを利用することがより好ましい。

　免疫操作に先立ち、免疫動物として利用される、ヒト以外の哺乳動物において、該修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、キャリア・タンパク質自体の免疫原性と、該キャリア・タンパク質に対する特異的な抗体が創製される免疫条件を予め調査することが望ましい。上記のキャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する手法（非特許文献１：Chemistry　Letters,　Vol.35,　No.10,　p.1126-1127(2006)）において、既に利用されている、各種のキャリア・タンパク質に関しては、各種の新規な抗体の創製に利用されている、マウス、ラット、ラビットなどについて、前記の事項は、既に調査されており、その報告が利用できる。

　また、上記のキャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を免疫原に利用する手法（非特許文献１：Chemistry　Letters,　Vol.35,　No.10,　p.1126-1127(2006)）において、既に報告されている成功例を参照して、各種の新規な抗体の創製に利用されている、マウス、ラット、ラビットなどについて、修飾キャリア・タンパク質の免疫有効量を相当の確度で推定することも可能である。

　各種の新規な抗体の創製に利用されている、マウス、ラット、ラビットなどに対する、免疫操作の手順は、既に報告されている成功例で利用された手順に沿って、選択することが望ましい。

　免疫対象の哺乳動物として、マウスまたはラットを選択する場合、初回の免疫操作（感作）を実施する齢は、その後の追加免疫の回数、その間隔を考慮して、選択される。具体的には、複数回の追加免疫を終了した後、当該免疫動物の血液中に、免疫原に特異的な抗体が存在することを検証する必要がある。従って、複数回の追加免疫を終了する時点で、当該免疫動物が抗体を生産する能力が低下する齢に達しないように、初回の免疫操作（感作）を実施する齢を選択することが好ましい。初回の免疫操作（感作）後、複数回の追加免疫を終了するまでの期間を、８週間程度に選択する場合、マウスまたはラットでは、初回の免疫操作（感作）を実施する齢は、１０～１５週齢の範囲に選択することが好ましく、通常、１２週齢程度に選択することがより好ましい。マウスまたはラットでは、１２週齢程度に達すると、十分な抗体を生産する能力を有しており、新規な抗体を創製する能力が最も高くなることが知られている。

　式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物は、公知の化合物であり、その合成方法は、文献に既に報告されている（非特許文献２：Organic　&　Biomolecular　Chemistry　Vol.4,　p.4431-4436　(2006)）。該式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物は、室温において、固体であるため、キャリア・タンパク質上に該化合物を結合させる反応は、該化合物を溶解可能な反応溶媒を利用して実施する必要がある。一方、利用されるキャリア・タンパク質は、溶媒の種類によっては、変性を受ける場合がある。従って、利用されるキャリア・タンパク質の変性を引き起こさず、同時に、該化合物を溶解可能な反応溶媒を選択する必要がある。

　従来、キャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、修飾キャリア・タンパク質を調製する際に利用された、各種の反応溶媒中から、前記の式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物を溶解可能な反応溶媒を選択することが好ましい。実際に、前記の反応溶媒の選択を進めたところ、特に、好ましい反応溶媒として、ジメチルスルホン（ＤＭＳＯ：（ＣＨ_３）_２ＳＯ）とホウ酸緩衝液が選択された。

　ジメチルスルホン（ＤＭＳＯ：（ＣＨ_３）_２ＳＯ）は、非水溶媒であるが、キャリア・タンパク質を変性させずに溶解可能であり、また、式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物を相当に高濃度で溶解可能な溶媒である。

　また、ホウ酸緩衝液は、その緩衝作用が発揮できるｐＨ領域は、６．８～９．２の範囲であるが、上記の式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物を溶解可能な溶媒系としては、通常、ｐＨを８．２～８．７の範囲に選択する組成、特には、ｐＨを、８．５前後に調整可能な組成を選択することが好ましい。

　式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物の分子内に存在する反応性官能基である、カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を利用して、キャリア・タンパク質表面に存在する反応性官能基、特に、アミノ基（－ＮＨ_２）との間で、アミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を形成させる場合、カルボジイミドを利用するアミド結合形成法を利用することが好ましい。カルボジイミドを利用するアミド結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、Ｎ，Ｎ’－ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）、Ｎ，Ｎ’－ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）、Ｎ－［３-（ジメチルアミノ）プロピル］－Ｎ’－エチルカルボジイミド（ＥＤＣ）、Ｎ－［３-（ジメチルアミノ）プロピル］－Ｎ’－エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＡＣ）などを利用することができる。該結合剤カルボジイミドの量は、式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物１分子当たり、５分子～２０分子の範囲に選択することが好ましい。

　一方、式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物の使用量は、キャリア・タンパク質の表面に露呈する、アミノ基（－ＮＨ_２）の総数に基づき、決定する。その際、キャリア・タンパク質１分子の表面に露呈する、アミノ基（－ＮＨ_２）の総数がＮ個である場合、式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物の使用量を、該キャリア・タンパク質１分子当たり、Ｎ×３分子～Ｎ×１０分子の範囲に選択することが好ましい。その結果として、該キャリア・タンパク質１分子当たり、式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物が、1/2×Ｎ分子～Ｎ分子の範囲で、結合している、修飾キャリア・タンパク質を調製することが望ましい。

　本発明では、上記の免疫操作に利用する、免疫原として、キャリア・タンパク質上に対象の低分子量の有機化合物を結合させ、得られる修飾キャリア・タンパク質を利用している。免疫操作によって、新たに創製される、該修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種のうちに、利用したキャリア・タンパク質上に結合していない、該低分子量の有機化合物自体に対しても高い反応性を示す抗体が実際に存在することを、先ず検証する。

　上記の最終回の追加免疫を終了した後、免疫原として利用する、該修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体の血液中濃度の有意な上昇が見出される時点で、当該免疫動物から採血し、採取した血液から、抗血清を調製する。この抗血清中に含まれる、該修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種のうちに、利用したキャリア・タンパク質上に結合していない、該低分子量の有機化合物自体に対しても高い反応性を示す抗体が実際に存在することを、検証する。

　すなわち、該低分子量の有機化合物自体を抗原決定基とする、ポリクローナル抗体の有無を検証する。複数種の抗体を含有している抗血清中に、特定の抗原決定基に特異的に結合する抗体が存在することを検証する手段としては、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）が好適に利用される。酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）は、特定の抗原決定基に対する抗体の特異的な反応性を利用するため、選択性が高く、特に、抗血清中に含有されている、特定の抗原決定基に対する抗体の濃度が不明な場合に、その抗体価を簡便に評価することが可能である。

　本発明では、利用したキャリア・タンパク質上に結合していない、該低分子量の有機化合物自体に対しても高い反応性を示す抗体の検出を行うため、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）で利用する抗原として、該低分子量の有機化合物を、別種のキャリア・タンパク質の表面に結合させた、別種の修飾キャリア・タンパク質を利用する。勿論、その別種のキャリア・タンパク質自体は、該修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種と反応しないことが必要である。

　免疫原の作製に利用されるキャリア・タンパク質と、前記の酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）で利用する抗原の作製に利用される別種のキャリア・タンパク質を、免疫原の作製に好適に利用されるキャリア・タンパク質の群から、互いに相違する二種のキャリア・タンパク質の組み合わせを選択することが好ましい。

　前記のキャリア・タンパク質の組み合わせでは、該キャリア・タンパク質自体の抗原決定基は、通常、相違しており、該修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種が、前記別種のキャリア・タンパク質自体に反応性を示す可能性を排除できる。また、前記の互いに相違する二種のキャリア・タンパク質の組み合わせでは、該低分子量の有機化合物を結合可能な部位の局所的な構造（部分アミノ酸配列）が実質的に一致する可能性も極めて低い。従って、前記の組み合わせでは、免疫原の修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種のうち、該低分子量の有機化合物を、別種のキャリア・タンパク質の表面に結合させた、別種の修飾キャリア・タンパク質に対して結合能を示す抗体は、該低分子量の有機化合物自体に結合する抗体と見做すことができる。

　特に、前記の酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）で利用する抗原の作製に利用される別種のキャリア・タンパク質として、ブロッキング用タンパク質として、汎用されるウシ血清アルブミンを選択し、一方、免疫原の作製に利用されるキャリア・タンパク質として、ウシ血清アルブミン以外の汎用のキャリア・タンパク質、例えば、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択することがより好ましい。前記の酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）で利用する、修飾キャリア・タンパク質型の抗原の作製に利用される別種のキャリア・タンパク質として、ウシ血清アルブミンを選択すると、その修飾キャリア・タンパク質型の抗原の、ウシ血清アルブミン部分に非選択的に抗体分子が結合する現象も排除される。さらに、ウシ血清アルブミンをキャリア・タンパク質とする、該修飾キャリア・タンパク質型の抗原は、ＥＬＩＳＡプレート上に、高密度で固定することが可能である。

　取得された抗血清中に、免疫原の作製に利用している、該低分子量の有機化合物自体に対する反応性を有する抗体が存在することを検証した後、該低分子量の有機化合物自体に対する反応性を有するポリクローナル抗体が、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物（ＴＡＴＰ２）自体に対して、交叉反応性を示すか否かを検証する。

　本発明において、前記抗体の交叉反応性の検証は、二種の抗原の抗体に対する競合反応を利用することが好ましい。

　目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物（ＴＡＴＰ２）自体は、低分子量の有機化合物であり、抗体との抗原抗体反応を行う際、その結合は、抗体分子の相補性決定部位の一つにより達成されると考えられる。また、上記の免疫操作に利用される、修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物も、抗体との抗原抗体反応を行う際、その結合は、抗体分子の相補性決定部位の一つにより達成されると考えられる。

　従って、抗体が交叉反応性を有する場合、免疫原の修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物との結合に関与する、該抗体分子の相補性決定部位と、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）自体の結合に関与する、該抗体分子の相補性決定部位とは一致する可能性が極めて高い。その場合、該抗体分子の相補性決定部位に、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）が結合すると、免疫原の修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物の結合を阻害する。この競争阻害の現象を利用することで、当該抗体分子の特定の相補性決定部位に対して、交叉反応性を示すか否かを検証することができる。

　具体的には、上記の免疫原の修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物自体に対する反応性に検証に利用した、該類似の構造を有する低分子量の有機化合物を、別種のキャリア・タンパク質の表面に結合させた、別種の修飾キャリア・タンパク質を、ＥＬＩＳＡプレート上に固定化する。一方、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）は、該ＥＬＩＳＡ法において、抗原抗体反応を行わせる反応液中に、ポリクローナル抗体の含む抗血清とともに溶解させる。

　上記の競合反応が進行すると、前記反応液中に存在する、交叉反応性を示す抗体は、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と抗原抗体反応する結果、プレート上に固定化されている、修飾キャリア・タンパク質型の抗原との抗原抗体反応を介して、固定化される抗体分子の量が減少する。この競合反応に起因する、プレート上に固定化されている、修飾キャリア・タンパク質型の抗原との抗原抗体反応を介して、固定化される抗体分子量の減少を、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）を応用して検出する。

　この手法を利用することで、抗血清中に含有される、上記の免疫原の修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物自体に対するポリクローナル抗体中、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と交叉反応性を示す抗体が含まれることを検証することができる。

　換言すると、前記の検証がなされた抗血清は、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有するポリクローナル抗体を含むものである。

　前記の目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と交叉反応性を示す抗体を産生していることの検証がなされた免疫動物の抗体産生細胞群を採取し、この抗体産生細胞群と、骨髄腫由来の細胞株の細胞とを細胞融合させ、一群のハイブリドーマ細胞を作製する。

　通常、前記の検証がなされた免疫動物から、その脾臓を摘出して、脾臓細胞群を調製する。この脾臓細胞群と、骨髄腫由来の細胞株の細胞とを細胞融合させ、一群のハイブリドーマ細胞を作製する。

　前記の細胞融合に利用される、骨髄腫由来の細胞株は、融合対象である、免疫動物由来の脾臓細胞と適合性を有することが必要である。また、細胞融合で創製されるハイブリドーマ細胞の増殖能は、細胞融合に利用される、骨髄腫由来の細胞株に依っており、増殖能力の優れた骨髄腫由来の細胞株を利用することが好ましい。

　例えば、免疫動物として、マウスを選択する場合、細胞融合に利用される、骨髄腫由来の細胞株として、マウスの骨髄腫由来の細胞株である、Ｐ３Ｘ６３　Ａｇ８．６５３、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ、Ｓｐ２／Ｏ　Ａｇ１４、ＦＯ・１、Ｓ１９４／５．ＸＸ０　ＢＵ．１等が好適に使用される。特に、細胞株Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕの利用は、創製されるハイブリドーマ細胞の増殖能が高く、また、該ハイブリドーマ細胞の産生する抗体分子は、適正な組み立てがなされた全抗体であり、組み立ての完了していない抗体分子の断片を含まないので、より好ましい。

　例えば、免疫動物として、ラットを選択する場合、細胞融合に利用される、骨髄腫由来の細胞株として、ラットの骨髄腫由来の細胞株、２１０、ＲＣＹ３．Ａｇ１．２．３、ＹＢ２／０などが挙げられる。

　上記のハイブリドーマ細胞を創製するための細胞融合の手法として、例えば、ポリエチレングリコール法、センダイウイルスを用いた方法、電流を利用する方法などが挙げられる。ポリエチレングリコール法は、細胞毒性が少なく、融合操作も容易であり、特に、再現性が高いので、本発明により適している。すなわち、本発明では、免疫原の修飾キャリア・タンパク質に対する特異的なモノクローナル抗体を産生する、一群のハイブリドーマ細胞のうち、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞を選別する必要がある。創製される、一群のハイブリドーマ細胞のうち、前記の交叉反応性を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞が含まれる頻度は、決して高く無いので、スクリーニング対象の一群のハイブリドーマ細胞の細胞株数（母数）を大きくする必要がある。従って、より再現性の高い細胞融合手法を選択することが好ましく、ポリエチレングリコール法は、前記の要請に適合している。

　創製された、一群のハイブリドーマ細胞は、分散した上で、マイクロプレートに分注して、利用した骨髄腫由来の細胞株に応じて、適宜選択される公知の培養条件で増殖させる。上記の培養により確立される、一群のハイブリドーマ細胞の細胞株について、各ハイブリドーマ細胞の細胞株が産生するモノクローナル抗体について、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と交叉反応性を示す抗体か否かを検証する。

　培養により確立される、一群のハイブリドーマ細胞の細胞株について、各ハイブリドーマ細胞の細胞株の培養上清を採取する。各ハイブリドーマ細胞の細胞株の培養上清は、該細胞株の産生するモノクローナル抗体を含んでいる。

　各ハイブリドーマ細胞の細胞株の培養上清に含まれるモノクローナル抗体が、免疫操作に利用される、修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物自体に対する反応性を有するか、否かを先ず検証する。

　その検証には、該類似の構造を有する低分子量の有機化合物を、別種のキャリア・タンパク質の表面に結合させた、別種の修飾キャリア・タンパク質を抗原とする、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）による検証手法が利用できる。その具体的な測定法は、上記の抗血清中に含まれるポリクローナル抗体の反応性に関する検証と、原理的には同じである。

　この検証によって、一群のハイブリドーマ細胞の細胞株中から、免疫操作に利用される、修飾キャリア・タンパク質の作製に利用される、類似の構造を有する低分子量の有機化合物自体に対する反応性を有するモノクローナル抗体を産生する、ハイブリドーマ細胞の細胞株が選別される。この一次スクリーニングで選別される、ハイブリドーマ細胞の細胞株の群について、該ハイブリドーマ細胞の細胞株の産生するモノクローナル抗体は、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体か否かを検証する。

　この交叉反応性に関する検証は、上記の抗血清中に含まれるポリクローナル抗体の交叉反応性に関する検証と、原理的には同じ手法を適用することで行うが可能である。

　前記目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性の検証（二次スクリーニング）によって、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体を産生する、ハイブリドーマ細胞の細胞株が選別される。なお、選択されるモノクローナル抗体のタイプは、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）に利用される、抗Ｉｇ抗体の示す抗体タイプ特異性に依存する。

　この二次スクリーニングによって、選別されるハイブリドーマ細胞の細胞株を使用して、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有するモノクローナル抗体を生産することができる。

　選別されたハイブリドーマ細胞の細胞株のｉｎ　ｖｉｔｒｏ細胞培養を行い、その培養上清を回収し、含有されるモノクローナル抗体を精製することができる。また、選別されたハイブリドーマ細胞の細胞株を、免疫に利用したヒト以外の哺乳動物の腹腔内に接種すると、該腹腔内で増殖し、腹水内に産生されたモノクローナル抗体が蓄積される。その後、該腹水を採取して、含有されるモノクローナル抗体を精製することができる。

　腹水または培養上清中に含まれる、モノクローナル抗体の精製は、例えば、ＤＥＡＥ陰イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィー、硫安分画法、ＰＥＧ分画法，エタノール分画法などを、適宜組み合わせ、目的の純度まで精製を施す。望ましい純度は、９５％以上、より好ましくは９８％以上である。例えば、目的とする過酸化物誘導体型の抗マラリア薬、例えば、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有するモノクローナル抗体を、当該過酸化物誘導体型の爆薬の検出装置、あるいは、濃度の測定装置に利用する際には、夾雑物に対する反応性を具える抗体が混入すると、その確度を低減させる要因となる。その点を考慮すると、前記の純度まで精製を行うことが望ましい。

　加えて、本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体、例えば、上記式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有する抗体、特に、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）に対する抗体中から選別される、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を有する抗体においては、下記式（III）の過酸化物に対する交叉反応性を実質的に示さないものが好ましい。

　すなわち、前記式（III）の過酸化物に対しても交叉反応性を示す抗体は、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）に特徴的なスピロ環構造に対する特異的な反応性を有していない可能性がある。上記式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有する抗体を、該式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を選択的に検出する目的に利用する場合、スピロ環構造に対する特異的な反応性を有していることが必要である。その観点では、前記式（III）の過酸化物に対しても交叉反応性を示す抗体は、必ずしも、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）に共通している、スピロ環構造に対する特異的な反応性を有していると判断できない。

　上記式（III）の過酸化物に対する交叉反応性を実質的に示さないとは、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を基準として、式（III）の過酸化物に対する交叉反応性が、1/20以下であることを意味する。式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を基準として、式（III）の過酸化物に対する交叉反応性が、1/100以下であることがより望ましい。

　（受託番号）
　なお、
　本発明にかかる、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞として、
ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1Eが、ブタペスト条約に基づき、独立行政法人産業技術総合研究所　特許生物寄託センター（日本国　茨城県つくば市東１丁目１番地中央第６、郵便番号３０５－８５６６）に、国際寄託（平成２１年　５月１２日付け）がなされている。

　上記のハイブリドーマ細胞株は、後述する第二の実施態様に開示する手順によって、創製され、選別されたハイブリドーマ細胞株である。なお、ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1Eは、後述のモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４を産生するハイブリドーマ細胞株である。

　本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体と、その作製方法について、第一の実施態様を例に挙げ、具体的に説明する。

　以下に例示する第一の実施態様の具体例は、本発明の最良の実施形態の一例であるが、本発明の技術的範囲は、該具体例に例示する形態に限定されるものではない。

　（第一の実施態様）
　以下に説明する、本発明の第一の実施態様では、対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬として、上記式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を選択している。

　一方、キャリア・タンパク質上に結合し、修飾タンパク質型の免疫原の作製に利用する、該式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物として、下記式（II）に示す3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（ＴＡＴＰ３）を選択している。

　該式（II）に示すジカルボン酸化合物は、そのヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデカン環の９位と１２位の炭素原子は、ともに、不斉中心（キラル中心）となっている。該９位の炭素原子と、１２位の炭素原子の立体配置に関して、（９Ｒ、１２Ｓ）と表記可能なメソ体型のジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）は、二回回転対称性を有する立体構造を具えている。該９位の炭素原子と、１２位の炭素原子の立体配置に関して、（９Ｒ、１２Ｒ）と表記可能なシス体型のジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）は、対称面を有する立体構造を具えている。

　本第一の実施態様では、前記二種の立体異性体が混合したものを利用している。

　（i）　式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物の合成
　対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬である、上記式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物（ＴＡＴＰ２）は、公知の化合物であり、その合成方法は、文献に既に報告されている（非特許文献２：Organic　&　Biomolecular　Chemistry　Vol.4,　p.4431-4436　(2006)）。

　前記文献に記載する合成法に従って、式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物（ＴＡＴＰ２）の合成を行った。そして、精製を行い、式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を回収した。

　（ii）　式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物の合成
　式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）は、公知の化合物であり、その合成方法は、文献に既に報告されている（非特許文献２：Organic　&　Biomolecular　Chemistry　Vol.4,　p.4431-4436　(2006)）。

　前記文献に記載する合成法に従って、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）の合成を行った。そして、精製を行い、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）を回収した。

　（iii）　式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）により修飾された、免疫原用修飾キャリア・タンパク質の調製
　キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択している。

　該キャリア・タンパク質上に、カルボジイミド法により、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）を結合させ、修飾キャリア・タンパク質の調製を行った。本第一の実施態様では、下記の二種の修飾キャリア・タンパク質を調製し、免疫操作に利用する免疫原とした。

　(iii-a)　修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）の調製
　反応溶媒として、ＤＭＳＯ（（ＣＨ_３）_２ＳＯ：和光純薬工業社製）を用いて、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）上に式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。

　ＤＭＳＯに溶解したＴＡＴＰ３、１０ｍｇ／０．３ｍｌと、ＤＭＳＯに溶解したキーホールリンペツトヘモシアニン(シグマアルドリッチジャパン社製)、１０ｍｇ／１．７ｍｌとを混合する。混合した後、ＤＭＳＯに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．５ｍｌを添加する。

　該ＤＭＳＯを反応溶媒とする反応液を、室温に２時間放置し、引き続き、４℃で１２時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．１ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ３－ＤＭＳＯ（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）溶液とした。

　上記の結合剤カルボジイミドを利用する反応条件では、キャリア・タンパク質の表面に露呈するアミノ基（－ＮＨ_２）に対して、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）のカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を利用して、アミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を形成することで、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）が結合される。

　なお、上記の反応条件で調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）上には、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）が、平均して、１５０～２００箇所結合している。

　(iii-b)　修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）の調製
　反応溶媒として、ｐＨ８．５のホウ酸バッファーを用いて、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）上に式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。ｐＨ８．５のホウ酸バッファーは、０．９９２ｇのホウ酸(和光純薬工業社製)、１．９０６ｇのホウ砂(和光純薬工業社製)、および２．６２８ｇのＮａＣｌ(和光純薬工業社製)を１８０ｍｌの純水に溶解させ、ＮａＯＨを加えて、ｐＨを８．５に調整した緩衝溶液である。

　ホウ酸バッファーとＤＭＳＯの混合液に溶解したＴＡＴＰ３、１０ｍｇ／（０．３ｍｌＤＭＯＳ＋０．２ｍｌホウ酸バッファー）と、ホウ酸バッファーに溶解したキーホールリンペツトヘモシアニン、１０ｍｇ／１．５ｍｌとを混合する。混合した後、ホウ酸バッファーに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．５ｍｌを添加する。

　該ホウ酸バッファーを反応溶媒とする反応液を、室温に２時間放置し、引き続き、４℃で１２時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．１ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ３－ホウ酸バッファー（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）溶液とした。

　上記の結合剤カルボジイミドを利用する反応条件では、キャリア・タンパク質の表面に露呈するアミノ基（－ＮＨ_２）に対して、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）のカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を利用して、アミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を形成することで、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）が結合される。

　なお、上記の反応条件で調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）上には、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）が、平均して、１５０～２００箇所結合している。すなわち、キャリア・タンパク質ＫＬＨ表面のリジン残基側鎖のアミノ基に対して、ＴＡＴＰ３が結合されている状態に相当する。

　（iv）　式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）により修飾された、抗原用修飾キャリア・タンパク質の調製
　キャリア・タンパク質として、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を選択している。

　該キャリア・タンパク質上に、カルボジイミド法により、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）を結合させ、修飾キャリア・タンパク質の調製を行った。本第一の実施態様では、下記の修飾キャリア・タンパク質を調製し、抗体の反応性の確認に利用する抗原とした。

　抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）の調製
　反応溶媒として、ｐＨ８．５のホウ酸バッファーを用いて、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）上に式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。ｐＨ８．５のホウ酸バッファーは、０．９９２ｇのホウ酸(和光純薬工業社製)、１．９０６ｇのホウ砂(和光純薬工業社製)、および２．６２８ｇのＮａＣｌ(和光純薬工業社製)を１８０ｍｌの純水に溶解させ、ＮａＯＨを加えて、ｐＨを８．５に調整した緩衝溶液である。

　ＤＭＳＯに溶解したＴＡＴＰ３、１０ｍｇ／０．１ｍｌと、純水に溶解した牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、３０ｍｇ／１．５ｍｌと、ホウ酸バッファー０．９ｍｌを混合する。混合した後、ホウ酸バッファーに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．２５ｍｌを添加する。

　該ホウ酸バッファーを反応溶媒とする反応液を、室温に５時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．３ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液とした。

　（ｖ）　免疫原用修飾キャリア・タンパク質を用いる免疫操作
　対象のヒト以外の哺乳動物に対して、上記の二種の免疫原用修飾キャリア・タンパク質を用いて、感作を行う。本第一の実施態様では、免疫操作を施す、ヒト以外の哺乳動物として、マウス（ＳＬＣ：Ｃ５７ＢＬ／６）を選択している。

　また、免疫には、上記の二種の免疫原用修飾キャリア・タンパク質を混合し、フロイント完全アジュバント（フナコシ社製）を添加した溶液を用いる。該溶液の組成は、０．０１ｍｌのＴＡＴＰ３－ＤＭＳＯ（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）溶液、０．０１ｍｌのＴＡＴＰ３－ホウ酸バッファー（ＴＡＴＰ３－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）溶液、０．０７ｍｌのＰＢＳ、およびは０．０１ｍｌのフロイント完全アジュバント(フナコシ社製)を均一に混合したものである。

　感作（免疫操作）は、前記溶液１．０ｍｌを、１２週齢のマウス（ＳＬＣ：Ｃ５７ＢＬ／６）に皮下注射を行うことで行った。初回感作（初日）後、２２日目、３５日目、および４９日目に、それぞれ、前記溶液１．０ｍｌを皮下注射し、追加免疫を実施した。

　初回感作（初日）後、６６日目に、該免疫したマウスから採血を行った。採血された血液から、抗血清を調製した。

　（vi）　取得された抗血清中に含まれるポリクローナル抗体の交叉反応性の検証
　取得された抗血清中に含まれるポリクローナル抗体が、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すことを、競合ＥＬＩＳＡ法を利用して検証する。

　取得された抗血清中に含まれるポリクローナル抗体は、免疫操作に利用した、上記二種の免疫原用修飾キャリア・タンパク質に特異的な抗体複数種が混在していると推定される。該ポリクローナル抗体中に、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示す抗体が存在することを先ず検証する。

　具体的には、キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）に代えて、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を用いて作製した、前記抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対する反応性を有する抗体が存在することを、ＥＬＩＳＡ法を利用して検証する。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、ＰＢＳを５０μｌ加える。次いで、取得された抗血清を、ＰＢＳで１００倍に希釈した液、５０μｌを加える。室温で２時間放置し、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、３回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、２０００倍に希釈した抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体（フナコシ社製）液、５０μｌを加える。室温で１時間放置し、プレート上の抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と反応した抗体に、抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。図１中に、「バッファー」と表記する測定結果は、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対して、反応した抗体の量に相当している。

　上記のＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対する反応性を有する抗体は、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）上に結合されている、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応している抗体である。従って、取得された抗血清中に含まれるポリクローナル抗体中に、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示す抗体が存在することが検証された。

　次に、取得された抗血清のポリクローナル抗体中に含まれる、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応性を示す抗体複数種のうちに、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体が存在することを、競合ＥＬＩＳＡ法を利用して検証する。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、終濃度が１００ｐｐｍとなるように、ＴＡＴＰ２のＰＢＳ溶液を５０μｌ加える。次いで、取得された抗血清を、ＰＢＳで１００倍に希釈した液、５０μｌを加える。室温で２時間放置し、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に抗体を反応させる。なお、反応液中に含まれるＴＡＴＰ２の終濃度１００ｐｐｍは、０．４１ｍＭに相当している。

　前記の反応時、プレート上の液中に、添加されている、ＴＡＴＰ２と抗体との間で抗原抗体反応が進行すると、プレート上に固定化されている、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）との抗原抗体反応と、競合が生じる。結果的に、プレート上に固定化されている、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）との抗原抗体反応を介して、プレート上に固定化される抗体の量が減少する。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。図１中に、「ＴＡＴＰ２」と表記する測定結果は、上記のＴＡＴＰ２が共存している状況において、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対して、反応した抗体の量に相当している。

　図１に示す結果は、前記の反応時、プレート上の液中に、添加されている、ＴＡＴＰ２と抗体との間で抗原抗体反応が進行するため、プレート上に固定化されている、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）との抗原抗体反応と、競合が生じていることを明確に示している。すなわち、該ポリクローナル抗体中に含まる、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示す抗体複数種のうちに、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体が存在していることが検証された。

　従って、取得された抗血清のポリクローナル抗体中には、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体が存在していることが検証された。

　また、前記抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体は、マウスＩｇＧ１型抗体に特異性を有しており、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体のタイプは、ＩｇＧ１型であることが確認された。

　図１には、４種類の抗血清、すなわち、同じスケジュールで免疫操作を施した４匹の異なるマウスから採取した血液から調製した抗血清に対する検証結果、プレート１～プレート４を併せて示している。

　（第二の実施態様）
　以下に説明する、本発明の第二の実施態様でも、対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬として、上記式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を選択している。

　本第二の実施態様では、上記の第一の実施態様において、取得された抗血清のポリクローナル抗体中には、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体が存在していることが検証された、マウスの抗体生産細胞群を利用して、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体を生産するハイブリドーマ細胞の作製を行っている。

　上記第一の実施態様に記載する手順に従って、初回感作（初日）後、６６日目に、該免疫したマウスから採血を行い、採血された血液から、抗血清を調製し、該抗血清のポリクローナル抗体中には、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体が存在していることを検証する。この検証がなされた、初回感作（初日）後、６６日目のマウスから、脾臓を摘出し、脾臓細胞を調製する。

　調製されたマウスの脾臓細胞と、Ｐ３－Ｘ６３－Ａｇ８－Ｕマウスミエローマ細胞とを、細胞数５：１の比率で、ＲＰＭＩ１６４０培地（インビトロジェン社製）中、重合度１５００の５０％ポリエチレングリコール（和光純薬工業社製）存在下で、３７℃、２分間混合し、細胞融合させる。前記細胞融合処理後、得られるハイブリドーマ細胞は、ＨＡＴ培地（２０％牛胎児血清）に懸濁した後、マイクロプレートに分注する。該マイクロプレートに分注した、ハイブリドーマ細胞を、炭酸ガスインキュベータ中、３７℃、５％ＣＯ_２の条件で培養する。前記培養中、４日に１回の割合で、培地の半量を、新しいＨＴ培地（１０％牛胎児血清）に交換する。

　ＨＡＴ培地は、ＲＰＭＩ１６４０培地に、ＨＡＴサプリメント（インビトロジェン社製）を適量添加したものである。本第二の実施態様では、ＲＰＭＩ１６４０培地１ｍｌ当たり、ＨＡＴサプリメント２０μｌを添加している。

　ＨＴ培地は、ＲＰＭＩ１６４０培地に、ＨＴサプリメント（インビトロジェン社製）を適量添加したものである。本第二の実施態様では、ＲＰＭＩ１６４０培地１ｍｌ当たり、ＨＴサプリメント２０μｌを添加している。

　上記の培養条件で、マイクロプレートに分注した、ハイブリドーマ細胞を、２週間培養して、それぞれハイブリドーマ細胞株を確立した。

　次に、各ハイブリドーマ細胞株の培養上清中に産生されているモノクローナル抗体が、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示すモノクローナル抗体であるか、否かの確認を行った。さらに、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示すモノクローナル抗体であることの検証がなされたもののうち、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示す抗体の選別を行った。

　(a)　式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示すモノクローナル抗体であるか、否かの検証
　具体的には、各ハイブリドーマ細胞株の培養上清中に含まれるモノクローナル抗体が、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を用いて作製した、前記抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対する反応性を有するモノクローナル抗体であるか、否かを、ＥＬＩＳＡ法を利用して検証する。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、ＰＢＳを５０μｌ加える。次いで、各ハイブリドーマ細胞株の培養上清を、ＰＢＳで１００倍に希釈した液、５０μｌを加える。室温で２時間放置し、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に、モノクローナル抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、３回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、２０００倍に希釈した抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体（フナコシ社製）液、５０μｌを加える。室温で１時間放置し、プレート上の抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と反応した抗体に、抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。

　上記のＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対する反応性を有するモノクローナル抗体は、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）上に結合されている、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応しているモノクローナル抗体である。

　このスクリーニング手順に従って、各ハイブリドーマ細胞株の培養上清中に式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に特異的な反応性を示すモノクローナル抗体が存在するか、否かの検証を行った。その結果、ハイブリドーマ細胞株合計１３クローン中、１３クローンが式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応しているモノクローナル抗体を産生していることが確認された。

　(b)　式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体の選別
　前記（ａ）の一次スクリーニングで選別された、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応性を示すモノクローナル抗体複数種から、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体を、競合ＥＬＩＳＡ法を利用して選別する。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、終濃度が１００ｐｐｍとなるように、ＴＡＴＰ２のＰＢＳ溶液を５０μｌ加える。次いで、選別された各ハイブリドーマ細胞株の培養上清を、ＰＢＳで１００倍に希釈した液、５０μｌを加える。室温で２時間放置し、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に抗体を反応させる。なお、反応液中に含まれるＴＡＴＰ２の終濃度１００ｐｐｍは、０．４１ｍＭに相当している。

　前記の反応時、プレート上の液中に、添加されている、ＴＡＴＰ２と抗体との間で抗原抗体反応が進行すると、プレート上に固定化されている、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）との抗原抗体反応と、競合が生じる。結果的に、プレート上に固定化されている、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）との抗原抗体反応を介して、プレート上に固定化される抗体の量が減少する。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。

　抗原抗体反応時に、プレート上の液中に、ＴＡＴＰ２を添加していない場合と比較し、ＴＡＴＰ２を添加した際に、前記酵素反応による反応産物の濃度が減少を示す結果が得られると、ＴＡＴＰ２を添加した際に、競合が生じていると判断される。すなわち、かかる競合が生じている場合、そのハイブリドーマ細胞株の培養上清中に含まれるモノクローナル抗体は、ＴＡＴＰ２に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体と判断できる。

　このスクリーニング手順に従って、（ａ）の一次スクリーニングで選別された、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応性を示すモノクローナル抗体複数種から、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体の選別を行った。

　その結果、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体が複数種選別された。図２に、この二次スクリーニングにより、選別されたモノクローナル抗体複数種のうち、４種のモノクローナル抗体：ｍＡｂ－ｍ００１～ｍＡｂ－ｍ００４について、測定結果を一例として、示す。

　図２中に、「バッファー」と表記する測定結果は、上記（ａ）の一次スクリーニングにおけるＥＬＩＳＡ法による測定結果、すなわち、ＴＡＴＰ２が存在していない状況において、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対して、反応したモノクローナル抗体の量に相当している。図２中に、「１００ｐｐｍ　ＴＡＴＰ２」と表記する測定結果は、上記のＴＡＴＰ２が共存している状況において、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）に対して、反応したモノクローナル抗体の量に相当している。

　図２に示す結果は、前記の反応時、プレート上の液中に、添加されている、ＴＡＴＰ２とモノクローナル抗体との間で抗原抗体反応が進行するため、プレート上に固定化されている、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）との抗原抗体反応と、競合が生じていることを明確に示している。すなわち、該４種のモノクローナル抗体は、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）自体に反応性を示すモノクローナル抗体であり、さらに、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体でもあることを検証する結果である。

　従って、前記の（ａ）の一次スクリーニングと、（ｂ）の二次スクリーニングによって、選別されるモノクローナル抗体は、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体であることが確認された。

　なお、図２に示す結果は、抗原抗体反応を行う反応液中に、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を終濃度０．４１ｍＭとなるように添加すると、
ｍＡｂ－ｍ００１～ｍＡｂｍ００４では、少なくとも、その９０％程度は、ＴＡＴＰ２と結合している
ことを示唆する結果である。

　（参考例１）
　以下に説明する、参考例１でも、対象となる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬として、上記式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を選択している。

　本参考例１では、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を構成するカルボン酸化合物：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸をキャリア・タンパク質上に結合してなる修飾キャリア・タンパク質を利用して、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有する抗体の創製を試みた。

　（ｄ-1）　カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸の調製
　該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）も公知の化合物であり、その合成方法は、文献に既に報告されている（非特許文献２：Organic　&　Biomolecular　Chemistry　Vol.4,　p.4431-4436　(2006)）。

　具体的には、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）から、ＫＯＨを利用して、該エステル結合（－ＣＯ－ＯＥｔ）をカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）に変換することで調製される。そして、精製を行い、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）を回収した。

　（ｄ-2）　カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）により修飾された、免疫原用修飾キャリア・タンパク質の調製
　キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択している。

　該キャリア・タンパク質上に、カルボジイミド法により、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）を結合させ、修飾キャリア・タンパク質の調製を行った。本参考例でも、下記の二種の修飾キャリア・タンパク質を調製し、免疫操作に利用する免疫原とした。

　(d-2-a)　修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）の調製
　反応溶媒として、ＤＭＳＯ（（ＣＨ_３）_２ＳＯ：和光純薬工業社製）を用いて、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）上に、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。

　ＤＭＳＯに溶解した該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）、１０ｍｇ／０．３ｍｌと、ＤＭＳＯに溶解したキーホールリンペツトヘモシアニン(シグマアルドリッチジャパン社製)、１０ｍｇ／１．７ｍｌとを混合する。混合した後、ＤＭＳＯに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．５ｍｌを添加する。

　該ＤＭＳＯを反応溶媒とする反応液を、室温に２時間放置し、引き続き、４℃で１２時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．１ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ２’－ＤＭＳＯ（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）溶液とした。

　上記の結合剤カルボジイミドを利用する反応条件では、キャリア・タンパク質の表面に露呈するアミノ基（－ＮＨ_２）に対して、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）のカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を利用して、アミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を形成することで、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）が結合される。

　なお、上記の反応条件で調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）上には、目的とする該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）が、平均して、１５０～２００箇所結合している。

　(d-2-b)　修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）の調製
　反応溶媒として、ｐＨ８．５のホウ酸バッファーを用いて、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）上に該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。ｐＨ８．５のホウ酸バッファーは、０．９９２ｇのホウ酸(和光純薬工業社製)、１．９０６ｇのホウ砂(和光純薬工業社製)、および２．６２８ｇのＮａＣｌ(和光純薬工業社製)を１８０ｍｌの純水に溶解させ、ＮａＯＨを加えて、ｐＨを８．５に調整した緩衝溶液である。

　ホウ酸バッファーとＤＭＳＯの混合液に溶解した該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）、１０ｍｇ／（０．３ｍｌＤＭＯＳ＋０．２ｍｌホウ酸バッファー）と、ホウ酸バッファーに溶解したキーホールリンペツトヘモシアニン、１０ｍｇ／１．５ｍｌとを混合する。混合した後、ホウ酸バッファーに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．５ｍｌを添加する。

　該ホウ酸バッファーを反応溶媒とする反応液を、室温に２時間放置し、引き続き、４℃で１２時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．１ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ２’－ホウ酸バッファー（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）溶液とした。

　上記の結合剤カルボジイミドを利用する反応条件では、キャリア・タンパク質の表面に露呈するアミノ基（－ＮＨ_２）に対して、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）のカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を利用して、アミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を形成することで、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）が結合される。

　なお、上記の反応条件で調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）上には、目的の該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）が、平均して、１５０～２００箇所結合している。

　また、上記の二種の反応条件で作製された、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）は、上記第二の実施態様で創製された、モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００１～ｍＡｂｍ００４と抗原抗体反応を行うことを確認した。

　（d-3）　該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）により修飾された、抗原用修飾キャリア・タンパク質の調製
　キャリア・タンパク質として、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を選択している。

　該キャリア・タンパク質上に、カルボジイミド法により、該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）を結合させ、修飾キャリア・タンパク質の調製を行った。本参考例では、下記の修飾キャリア・タンパク質を調製し、抗体の反応性の確認に利用する抗原とした。

　抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）の調製
　反応溶媒として、ｐＨ８．５のホウ酸バッファーを用いて、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）上に式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。ｐＨ８．５のホウ酸バッファーは、０．９９２ｇのホウ酸(和光純薬工業社製)、１．９０６ｇのホウ砂(和光純薬工業社製)、および２．６２８ｇのＮａＣｌ(和光純薬工業社製)を１８０ｍｌの純水に溶解させ、ＮａＯＨを加えて、ｐＨを８．５に調整した緩衝溶液である。

　ＤＭＳＯに溶解した該カルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）、１０ｍｇ／０．１ｍｌと、純水に溶解した牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、３０ｍｇ／１．５ｍｌと、ホウ酸バッファー０．９ｍｌを混合する。混合した後、ホウ酸バッファーに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．２５ｍｌを添加する。

　該ホウ酸バッファーを反応溶媒とする反応液を、室温に５時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．３ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）溶液とした。

　また、上記反応条件で作製された、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）は、上記第二の実施態様で創製された、モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００１～ｍＡｂｍ００４と抗原抗体反応を行うことを確認した。

　（d-4）　免疫原用修飾キャリア・タンパク質を用いる免疫操作
　対象のヒト以外の哺乳動物に対して、上記の修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）を用いて、感作を行う。本参考例でも、免疫操作を施す、ヒト以外の哺乳動物として、マウス（ＳＬＣ：Ｃ５７ＢＬ／６）を選択している。

　また、免疫には、上記の修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）を混合し、フロイント完全アジュバント（フナコシ社製）を添加した溶液を用いる。該溶液の組成は、０．０１ｍｌのＴＡＴＰ２’－ＤＭＳＯ（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）溶液、０．０１ｍｌのＴＡＴＰ２’－ホウ酸バッファー（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）溶液、０．０７ｍｌのＰＢＳ、およびは０．０１ｍｌのフロイント完全アジュバント(フナコシ社製)を均一に混合したものである。

　感作（免疫操作）は、前記溶液１．０ｍｌを、１２週齢のマウス（ＳＬＣ：Ｃ５７ＢＬ／６）に皮下注射を行うことで行った。初回感作（初日）後、２２日目、３５日目、および４９日目に、それぞれ、前記溶液１．０ｍｌを皮下注射し、追加免疫を実施した。

　初回感作（初日）後、６６日目に、該免疫したマウスから採血を行った。採血された血液から、血清を調製した。

　（d-5）　取得された血清中に含まれる抗体の反応性の検証
　取得された血清中に含まれる抗体が、目的とするカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）に対する反応性を示すことを、ＥＬＩＳＡ法を利用して検証する。

　取得された血清中に抗体は、免疫操作に利用した、上記の修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）に特異的な抗体複数種が混在していると推定される。該ポリクローナル抗体中に、目的とするカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）自体に特異的な反応性を示す抗体が存在することを検証する。

　具体的には、キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）に代えて、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を用いて作製した、前記抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）に対する反応性を有する抗体が存在することを、ＥＬＩＳＡ法を利用して検証する。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、ＰＢＳを５０μｌ加える。次いで、取得された抗血清を、ＰＢＳで１００倍に希釈した液、５０μｌを加える。室温で２時間放置し、該ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）に抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、３回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、２０００倍に希釈した抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体（フナコシ社製）液、５０μｌを加える。室温で１時間放置し、プレート上の抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）と反応した抗体に、抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。

　上記のＥＬＩＳＡ法による反応性の検証を行ったところ、前記酵素反応による反応産物の存在が確認されなかった。すなわち、抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＢＳＡ抗原）に対する反応性を示すＩｇＧ抗体の存在を示す結果は得られなかった。

　従って、上記の修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）を利用する免疫操作によっては、目的とするカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ２’）自体に特異的な反応性を示すＩｇＧ抗体の創製がなされなかったと判断した。

　すなわち、上記の修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ＤＭＳＯ免疫原）と修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ２’－ＫＬＨ－ホウ酸バッファー免疫原）を利用する免疫操作によっては、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を示すＩｇＧ抗体の創製がなされなかったと判断した。

　（参考例２）
　本参考例２では、先に選択された、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を示すモノクローナル抗体を利用することで、血清試料中に含まれるＴＡＴＰ２の濃度を、競合ＥＬＩＳＡ法を適用して測定することが可能であることの検証を行っている。

　（e-1）　式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）により修飾された、抗原用修飾キャリア・タンパク質の調製
　キャリア・タンパク質として、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を選択している。

　該キャリア・タンパク質上に、カルボジイミド法により、式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）を結合させ、修飾キャリア・タンパク質の調製を行った。本第一の実施態様では、下記の修飾キャリア・タンパク質を調製し、抗体の反応性の確認に利用する抗原とした。

　抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）の調製
　反応溶媒として、ｐＨ８．５のホウ酸バッファーを用いて、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）上に式（II）に示すジカルボン酸化合物（ＴＡＴＰ３）をカルボジイミド法によって結合させ、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を調製する。該カルボジイミド法による結合形成では、結合剤カルボジイミドとして、1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC・HCl）（和光純薬工業社製）を利用している。ｐＨ８．５のホウ酸バッファーは、０．９９２ｇのホウ酸(和光純薬工業社製)、１．９０６ｇのホウ砂(和光純薬工業社製)、および２．６２８ｇのＮａＣｌ(和光純薬工業社製)を１８０ｍｌの純水に溶解させ、ＮａＯＨを加えて、ｐＨを８．５に調整した緩衝溶液である。

　ＤＭＳＯに溶解したＴＡＴＰ３、１０ｍｇ／０．１ｍｌと、純水に溶解した牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、３０ｍｇ／０．１ｍｌと、ホウ酸バッファー０．９ｍｌを混合する。混合した後、ホウ酸バッファーに溶解した、前記結合剤カルボジイミド、５０ｍｇ／０．２５ｍｌを添加する。

　該ホウ酸バッファーを反応溶媒とする反応液を、室温に５時間放置し、反応を行った。ｐＨを８に調整した、１Ｍのグリシン緩衝液(和光純薬工業社製)０．３ｍｌを添加し、反応を停止させた。そして、該液中に含まれる、修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と、未反応のキャリア・タンパク質は、ＰＢＳ（和光純薬工業社製）透析を行って、精製した。調製された修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と、未反応のキャリア・タンパク質を含む、タンパク質溶液を、ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液とした。

　（e-2）　測定対象の血清試料の調製
　測定対象は、抗マラリア薬として、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を継続的に投与している、マラリアに感染しているマウスである。該マウスから、採血した血液試料から、血清を調製する。前記採血は、ＴＡＴＰ２の投与後、３時間経過した時点で実施している。従って、調製される血清中に含有されるＴＡＴＰ２濃度を測定することにより、該マラリアに感染しているマウスの体内における、代謝による経時的な濃度の減少を評価できる。

　(e-3)　血清試料中の式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）の濃度の測定
　血清試料中に含まれる式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）の濃度を、競合ＥＬＩＳＡ法を利用して測定する。本参考例２においては、上記のモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４を利用している。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、前記血清試料を５０μｌ加える。次いで、ｍＡｂ－ｍ００４溶液(抗体濃度：３．８ｍｇ／ｍｌ)５０μｌを加える。３６℃で３０分間放置し、血清試料中に含まれていたＴＡＴＰ２と、プレート上に固定化されているＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）にモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、３回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、２０００倍に希釈した抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体（フナコシ社製）液、５０μｌを加える。室温で１時間放置し、プレート上の抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と反応した抗体ｍＡｂ－ｍ００４に、抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。

　コントロールとして、血清試料に代えて、ホウ酸バッファーを用いて、上記と同じ条件で、ＥＬＩＳＡ測定を実施する。

　コントロールのホウ酸バッファーを用いた際には、前記酵素反応による反応産物に起因する４５０ｎｍの吸光度は、３．０３１であった。一方、血清試料を用いた際には、前記酵素反応による反応産物に起因する４５０ｎｍの吸光度は、２．５１０であった。従って、血清試料中に含有されているＴＡＴＰ２と、抗体ｍＡｂ－ｍ００４との抗原抗体反応に因る、４５０ｎｍの吸光度の減少量は、０．５２１であった。

　なお、予め、血清中にＴＡＴＰ２を既知の濃度で添加した標準血清試料を用いて作成される「検量線」を参照し、測定された４５０ｎｍの吸光度の減少量の比率に基づき、血清試料中に含有されているＴＡＴＰ２の濃度の見積もりを行うことができる。

　該血清試料中に含有されているＴＡＴＰ２の濃度は、前記４５０ｎｍの吸光度の減少量の比率：０．５２１／３．０３１に基づき、１０ｐｐｍ（０．０４ｍＭ）程度と、見積もられる。

　この結果から、モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４を利用することにより、血清試料中に含有されているＴＡＴＰ２の濃度を、競合ＥＬＩＳＡ法を適用して測定することが可能であることが検証された。

　（参考例３）
　本参考例３では、前記参考例２で利用しているモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４に関して、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性を基準として、式（III）の過酸化物（ＴＡＴＰ）に対する交叉反応性が、1/20以下であることを検証している。

　まず、式（III）の過酸化物（ＴＡＴＰ）を、溶媒のアセトニトリルに溶解し、濃度１００ｐｐｍのＴＡＴＰ溶液を調製する。該濃度１００ｐｐｍは、約０．４５ｍＭに相当している。

　本参考例３でも、前記参考例２に記載する反応条件を使用している。

　１０００倍に希釈したＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）溶液を用い、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに自然吸着法で、該ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）を固定化する。未吸着のタンパク質を洗浄、除去した後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレートに、前記ＴＡＴＰ溶液を５０μｌ加える。次いで、ｍＡｂ－ｍ００４溶液(抗体濃度：３．８ｍｇ／ｍｌ)５０μｌを加える。３６℃で３０分間放置し、ＴＡＴＰの存在下、プレート上に固定化されているＴＡＴＰ３－ＢＳＡ（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）にモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、３回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、２０００倍に希釈した抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体（フナコシ社製）液、５０μｌを加える。室温で１時間放置し、プレート上の抗原用修飾キャリア・タンパク質（ＴＡＴＰ３－ＢＳＡ抗原）と反応した抗体ｍＡｂ－ｍ００４に、抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体を反応させる。

　反応終了後、ＥＬＩＳＡ測定用のプレート上の液を除去し、各ＰＢＳ１００μｌを用いて、４回洗浄する。前記洗浄後、プレート上に、ＥＬＩＳＡ用ペルオキシダーゼ基質（ＴＭＢＺ，フナコシ社製）液、５０μｌを加える。抗マウスＩｇＧ－ＰＯＤ標識抗体の標識酵素ペルオキシダーゼによる、酵素反応を６０分間行った後、１Ｎの硫酸（和光純薬工業社製）５０μｌを添加し、反応を停止させる。前記酵素反応による反応産物の濃度を、４５０ｎｍの吸光度を測定することで決定する。

　前記ＴＡＴＰのアセトニトリル溶液を用いた際には、前記酵素反応による反応産物に起因する４５０ｎｍの吸光度は、２．９９６であった。

　参考例２に記載するように、コントロールのホウ酸バッファーを用いた際には、前記酵素反応による反応産物に起因する４５０ｎｍの吸光度は、３．０３１であった。

　従って、反応液に添加されたＴＡＴＰと、抗体ｍＡｂ－ｍ００４との抗原抗体反応に因る、４５０ｎｍの吸光度の減少量は、僅かに０．０３５と見積もられる。

　前記参考例２に記載する結果を参照すると、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）を凡そ０．０４ｍＭ含有すると見積もられた、前記血清試料を用いた際には、前記酵素反応による反応産物に起因する４５０ｎｍの吸光度は、２．５１０であった。従って、血清試料中に含有されているＴＡＴＰ２と、抗体ｍＡｂ－ｍ００４との抗原抗体反応に因る、４５０ｎｍの吸光度の減少量は、０．５２１であった。

　該ＴＡＴＰのアセトニトリル溶液中のＴＡＴＰ濃度：約４５ｍＭと、前記血清試料中に含有されているＴＡＴＰ２濃度：約０．０４ｍＭを考慮すると、
　モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４の示す交叉反応性は、
　ＴＡＴＰ２に対する交叉反応性を基準として、ＴＡＴＰに対する交叉反応性は、少なくとも、1/20以下であると判断される。

　従って、モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４は、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する交叉反応性は有するが、上記式（III）の過酸化物に対する交叉反応性を実質的に示さないことが検証された。

　（第三の実施態様）
　以下に説明する、本発明の第三の実施態様では、上記モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４を産生するハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）の培養細胞から、該ハイブリドーマ細胞株中で発現されている抗体のＨ鎖とＬ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡを調製し、そのクローニングを行っている。

　はじめに、ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1Eの培養細胞を回収する。回収された培養細胞全量をＲＮＡｉｓｏ中でホモジェナイズし、ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ抽出キット（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を用いて、該培養細胞由来のｔｏｔａｌ　ＲＮＡの抽出と精製を行う。

　上記抗ＩｇＧ抗体との反応性を示すことより、該ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1Eが産生するモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４は、マウス・ＩｇＧ抗体であることは既に確認されている。従って、精製済みのｔｏｔａｌ　ＲＮＡから、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖とＬ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡを選択的に調製する。マウスＩｇＧ抗体をコードするｍＲＮＡ塩基配列特異的ＲＴ　Ｐｒｉｍｅｒを用いて、精製済みのｔｏｔａｌ　ＲＮＡ中に含有される、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖とＬ鎖をコードするｍＲＮＡを鋳型として、マウス・ＩｇＧ抗体塩基配列特異的ＲＴ反応を実施し、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖とＬ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡを調製する。

　モノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４は、マウス・ＩｇＧ抗体、特に、サブクラスは、ＩｇＧ１と推定されるため、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖として、γ１鎖を、Ｌ鎖として、κ鎖を含むと推定される。従って、マウスＩｇＧ抗体のγ１鎖ならびにκ鎖をコードするｍＲＮＡ塩基配列特異的ＲＴ　Ｐｒｉｍｅｒを用いて、マウス・ＩｇＧ抗体塩基配列特異的ＲＴ反応を実施し、マウス・ＩｇＧ抗体のγ１鎖ならびにκ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡを調製する。

　次に、ＳＭＡＲＴ^ＴＭ　ＲＡＣＥ　ｃＤＮＡ　Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ　Ｋｉｔを用いて、マウス抗体（ＩｇＧ）配列特異的ＲＡＣＥ　ＰＣＲ反応を実施する。具体的には、調製されたマウス・ＩｇＧ抗体のγ１鎖ならびにκ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡを鋳型として、前記マウス・ＩｇＧ抗体塩基配列特異的ＲＴ反応で使用したＰｒｉｍｅｒと同じＰｒｉｍｅｒをＲｅｖｅｒｓｅ　Ｐｒｉｍｅｒとし、該Ｋｉｔ中に含まれるＵｎｉｖｅｒｓａｌ　ｐｒｉｍｅｒ　ｍｉｘをＦｏｒｗａｒｄ　Ｐｒｉｍｅｒとして、ＲＡＣＥ　ＰＣＲ反応を行う。続いて、前記ＲＡＣＥ　ＰＣＲ反応で得られたＰＣＲ産物を３％　Ａｇａｒｏｓｅ　Ｇｅｌで電気泳動を行い、マウス・ＩｇＧ抗体のγ１鎖ならびにκ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡに由来するＰＣＲ産物を分離する。それぞれ目的とするサイズのＰＣＲ産物のバンドを含むゲル切片を採取し、前記ゲル切片から、マウス・ＩｇＧ抗体のγ１鎖ならびにκ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡに由来するＰＣＲ産物を抽出し、精製を行う。

　ゲル切片から抽出し、精製したＰＣＲ産物二種を、それぞれ、Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ｐｌａｓｍｉｄ　ｐＭＤ２０－　Ｔのクローニング・サイトにＬｉｇａｔｉｏｎし、挿入する。該ＰＣＲ産物二種をそれぞれ挿入したＰｌａｓｍｉｄを用いて、大腸菌の形質転換を行い、それぞれ、形質転換株を選別する。選別された形質転換株のうち、精製したＰＣＲ産物二種がそれぞれ導入されている、２　ｃｌｏｎｅについて、該形質転換株を培養し、Ｐｌａｓｍｉｄの調製を行う。

　調製された二種のＰｌａｓｍｉｄを用いて、該Ｐｌａｓｍｉｄ中に挿入されている、ＰＣＲ産物二種の塩基配列解析を行う。該塩基配列解析では、該Ｃｌｏｎｉｎｇ　Ｐｌａｓｍｉｄ　ｐＭＤ２０－　Ｔ由来の塩基配列に相補的なＰｒｉｍｅｒを用いて、そのクローニング・サイトに挿入されている、ＰＣＲ産物二種の塩基配列のＳｅｑｕｅｎｃｅを行う。該Ｓｅｑｕｅｎｃｅ反応は、ＢｉｇＤｙｅ　Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒｓ　ｖ　３．１　Ｃｙｃｌｅ　Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ　Ｋｉｔ　（ＡＢＩ社製）を使用し、該Ｋｉｔに添付される標準プロトコルに従って実施する。

　クローニングされている、マウス・ＩｇＧ抗体のγ１鎖ならびにκ鎖をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡに由来するＰＣＲ産物の塩基配列解析結果から、コードされているγ１鎖ならびにκ鎖の定常領域のアミノ酸配列に基づき、実際に、該ｃＤＮＡ二種は、それぞれγ１鎖ならびにκ鎖をコードしていることを確認した。

　表２に、クローニングされた、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖（γ１鎖）をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡ中のＯＲＦ領域のうち、該Ｈ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）と、定常領域のＣ_Ｈ１ドメンインの一部を含む１４５アミノ酸残基をコードする塩基配列と、該塩基配列によりコードされているアミノ酸配列を示す。

　表３に、クローニングされた、マウス・ＩｇＧ抗体のＬ鎖（κ鎖）をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡ中のＯＲＦ領域のうち、該Ｌ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）と、定常領域のＣ_Ｌドメンインの一部を含む１４２アミノ酸残基をコードする塩基配列と、該塩基配列によりコードされているアミノ酸配列を示す。

　通常、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）ならびにＬ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）は、いずれも、約１１０アミノ酸残基で構成されている。また、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）に含まれるＦｒａｍｅ部分（ＦＲ－１、ＦＲ－２、ＦＲ－３、ＦＲ－４）の部分アミノ酸配列は、高い相同性を示すことが報告されている。また、マウス・ＩｇＧ抗体のＬ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）に含まれるＦｒａｍｅ部分（ＦＲ－１、ＦＲ－２、ＦＲ－３、ＦＲ－４）の部分アミノ酸配列は、高い相同性を示すことも報告されている。

　表２、表３に示すアミノ酸配列と、公表されている、公知のマウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）に含まれるＦｒａｍｅ部分（ＦＲ－１、ＦＲ－２、ＦＲ－３、ＦＲ－４）の部分アミノ酸配列、Ｌ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）に含まれるＦｒａｍｅ部分（ＦＲ－１、ＦＲ－２、ＦＲ－３、ＦＲ－４）の部分アミノ酸配列との対比を行った。その結果、クローニングされた、マウス・ＩｇＧ抗体のＨ鎖（γ１鎖）をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡ中のＯＲＦ領域のうち、該Ｈ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）と、マウス・ＩｇＧ抗体のＬ鎖（κ鎖）をコードするｍＲＮＡのｃＤＮＡ中のＯＲＦ領域のうち、該Ｌ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）は、下記の表４、表５に示す部分と推定される。下記表４、表５中、Ｈ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）に含まれるＦｒａｍｅ部分（ＦＲ－１、ＦＲ－２、ＦＲ－３、ＦＲ－４）、Ｌ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）に含まれるＦｒａｍｅ部分（ＦＲ－１、ＦＲ－２、ＦＲ－３、ＦＲ－４）には、下線が付されている。

　以上の解析結果から、ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体ｍＡｂ－ｍ００４は、そのＨ鎖（γ１鎖）の可変領域（Ｖ_Ｈ領域）とＬ鎖（κ鎖）の可変領域（Ｖ_Ｌ領域）は、それぞれ表４、表５に示す部分アミノ酸配列からなる、マウスＩｇＧ１抗体であると判断される。
 
　以上、実施形態（及び実施例）を参照して本願発明を説明したが、本願発明は上記実施形態（及び実施例）に限定されものではない。本願発明の構成や詳細には、本願発明のスコープ内で当業者が理解し得る様々な変更をすることができる。

　この出願は、２００９年５月１８日に出願された日本出願特願２００９－１１９８２９を基礎とする優先権を主張し、その開示の全てをここに取り込む。

　本発明にかかる過酸化物誘導体型の抗マラリア薬に対する結合能を有する抗体は、当該過酸化物誘導体型の抗マラリア薬の検出に利用できる。

　本発明にかかる、式（Ｉ）に示すエステル化合物（ＴＡＴＰ２）に対する結合能を有するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞として、
ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1Eが、ブタペスト条約に基づき、独立行政法人産業技術総合研究所　特許生物寄託センター（日本国　茨城県つくば市東１丁目１番地中央第６、郵便番号３０５－８５６６）に、国際寄託（平成２１年　５月１２日付け）がなされている。

Claims (17)

1. 　下記の式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）に対する結合能を有する抗体。
   

   
2. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体は、
   　該式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対する抗体であり、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対して交叉反応性を有する
   ことを特徴とする請求項１に記載の抗体。
3. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物は、
   　下記の式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物：3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）である
   

   

   ことを特徴とする請求項２に記載の抗体。
4. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体は、
   　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質を免疫原として、ヒト以外の哺乳動物を免疫することで創製される、該低分子化合物に対するモノクローナル抗体であり、該式（Ｉ）に示すエステル化合物に対して交叉反応性を有する抗体である
   ことを特徴とする請求項２または３に記載の抗体。
5. 　前記ヒト以外の哺乳動物は、マウスである
   ことを特徴とする請求項４に記載の抗体。
6. 　前記低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質において、該キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択する
   ことを特徴とする請求項４または５に記載の抗体。
7. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物として、その分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を選択し、
   　該分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質は、該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を介して、前記分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物の結合がなされている
   ことを特徴とする請求項４または５に記載の抗体。
8. 　該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）の形成は、カルボジイミド法を利用してなされている
   ことを特徴とする請求項７に記載の抗体。
9. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体は、
   ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体である
   ことを特徴とする請求項４に記載の抗体。
10. 　下記の式（Ｉ）に示す構造を有するエステル化合物：3-(3-メチル-1,2,4,5-テトラオクサ-スピロ[5.5]アンデック-3-イル)-プロピオン酸エチル　エステル（3-(3-methyl-1,2,4,5-tetraoxa-spiro[5.5]undec-3-yl)-propanoic　acid　ethyl　ester）に対する結合能を有する抗体を製造する方法であって、
    

    

    　該抗体は、
    　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物に対するモノクローナル抗体であり、該式（Ｉ）に示すエステル化合物に対して交叉反応性を有する、ヒト以外の哺乳動物由来のモノクローナル抗体であり、
    　該ヒト以外の哺乳動物由来のモノクローナル抗体の作製プロセスは、少なくとも、
    　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質を免疫原として、前記ヒト以外の哺乳動物を免疫する工程；
    　前記修飾タンパク質を免疫原とする免疫の確立がなされた後、免疫された前記ヒト以外の哺乳動物から脾臓細胞を採取し、採取した脾臓細胞からモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ細胞を作製する工程；
    　作製された抗体産生ハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体の群から、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する交叉反応性を有するモノクローナル抗体を、前記式（Ｉ）に示すエステル化合物を抗原とする、抗原抗体反応によって、選別する工程
    を含んでいる
    ことを特徴とする抗体の製造方法。
11. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物は、
    下記の式（II）に示す構造を有するジカルボン酸化合物：3-[12-(2-カルボキシエチル)-9,12-ジメチル-7,8,10,11,13,14-ヘキサオクサ-スピロ-[5.8]テトラデック-9-イル]-プロピオン酸（3-[12-(2-carboxyethyl)-9,12-dimethyl-7,8,10,11,13,14-hexaoxa-spiro-[5.8]tetradec-9-yl]-propanoic　acid）である
    

    

    ことを特徴とする請求項１０に記載の抗体の製造方法。
12. 　前記ヒト以外の哺乳動物は、マウスである
    ことを特徴とする請求項１０または１１に記載の抗体の製造方法。
13. 　前記低分子化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質において、該キャリア・タンパク質として、キーホールリンペツトヘモシアニン（Keyhole　Limpet　Hemocyanin）を選択する
    ことを特徴とする請求項１０～１２のいずれか一項に記載の抗体の製造方法。
14. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物における特徴的な構造と類似性を具えた構造を持つ低分子化合物として、その分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を選択し、
    　該分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物を、キャリア・タンパク質上に結合させてなる修飾タンパク質は、該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）を介して、前記分子内にカルボキシル基（－ＣＯＯＨ）を有する化合物の結合がなされている
    ことを特徴とする請求項１０～１３のいずれか一項に記載の抗体の製造方法。
15. 　該カルボキシル基（－ＣＯＯＨ）と前記キャリア・タンパク質上のアミノ基（－ＮＨ_２）との間でアミド結合（－ＣＯ－ＮＨ－）の形成は、カルボジイミド法を利用してなされている
    ことを特徴とする請求項１４に記載の抗体の製造方法。
16. 　前記式（Ｉ）に示すエステル化合物に対する結合能を有する抗体として、
    ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体を選択する
    ことを特徴とする請求項１０に記載の抗体の製造方法。
17. 　前記ハイブリドーマ細胞株：NECP-C57Z　15B-1E（ＦＥＲＭ　ＢＰ－１１１２６）が産生するモノクローナル抗体は、
    　マウスＩｇＧ抗体であり、
    　該ＩｇＧ抗体のＨ鎖の可変領域Ｖ_Ｈは、下記のアミノ酸配列（配列番号：５）からなり、
    E　　V　　Q　　L　　Q　　Q　　S　　G　　P　　E　　10
    L　　V　　K　　P　　G　　A　　S　　V　　K　　M　　20
    S　　C　　K　　A　　S　　G　　Y　　T　　F　　T　　30
    D　　T　　N　　I　　H　　W　　V　　K　　Q　　S　　40
    H　　G　　K　　S　　L　　E　　W　　I　　G　　Y　　50
    I　　N　　P　　N　　N　　G　　G　　T　　S　　Y　　60
    N　　Q　　K　　F　　K　　G　　K　　A　　T　　L　　70
    T　　V　　N　　K　　S　　S　　S　　T　　A　　Y　　80
    M　　E　　L　　R　　S　　L　　T　　S　　E　　D　　90
    S　　A　　V　　Y　　Y　　C　　A　　R　　L　　A　　100
    V　　W　　G　　Q　　G　　T　　T　　L　　T　　V　　110
    S　　S　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　112
     
    　該ＩｇＧ抗体のＬ鎖の可変領域Ｖ_Ｌは、下記のアミノ酸配列（配列番号：６）からなる
    N　　I　　V　　M　　T　　Q　　S　　P　　K　　S　　10
    M　　S　　M　　S　　V　　G　　E　　R　　V　　T　　20
    L　　T　　C　　K　　A　　S　　E　　N　　V　　V　　30
    T　　Y　　V　　S　　W　　Y　　Q　　Q　　K　　P　　40
    E　　Q　　S　　P　　K　　L　　L　　I　　Y　　G　　50
    A　　S　　N　　R　　Y　　T　　G　　V　　P　　D　　60
    R　　F　　T　　G　　S　　G　　S　　A　　T　　D　　70
    F　　T　　L　　T　　I　　S　　S　　V　　Q　　A　　80
    E　　D　　L　　A　　D　　Y　　H　　C　　G　　Q　　90
    G　　Y　　S　　Y　　P　　Y　　T　　F　　G　　G　　100
    G　　T　　K　　L　　E　　I　　K　　　　　　　　　107
     
    ことを特徴とする請求項９に記載の抗体。

Images