WO2010087335A1 - Ｔ細胞抗原受容体遺伝子、受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクター並びに細胞障害性Ｔ細胞 - Google Patents

Ｔ細胞抗原受容体遺伝子、受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクター並びに細胞障害性Ｔ細胞 Download PDF

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acid sequence
protein
chain
seq
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公正 安元
武志 花桐
光広 竹之山
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    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention relates to a gene useful for immunotherapy, and particularly to a gene useful for adoptive immunotherapy for treating cancer. More specifically, the present invention relates to a T cell antigen receptor (TCR) gene that specifically recognizes a surface antigen of lung cancer cells, and a T cell that induces a powerful killing activity against lung cancer cells by introducing and expressing the gene. .
  • TCR T cell antigen receptor
  • Cancer is the most difficult disease to cure today.
  • the search for cancer antigens for the purpose of treating cancer has been ongoing since the beginning of the 20th century.
  • a therapeutic method using a specific antibody against the antigen has been studied.
  • a missile therapy aimed at specifically killing only cancer by binding a toxin to the antibody has been studied.
  • Boon et al. Discovered the relationship between human melanoma cancer antigens and cytotoxic T cells specifically recognizing them, and cancer treatment using cytotoxic T cells has been studied. (Non-Patent Document 1).
  • Non-patent Document 2 For subsequent gene therapy research, for example, a comparison between an oncovirus vector and a retrovirus vector has been introduced based on an actual treatment example for a gene transfer vector (Non-patent Document 2).
  • Non-Patent Document 3 the ⁇ chain and ⁇ chain of TCR from CTL against gp100 can be expressed in primary lymphocytes by genetic manipulation to achieve recognition and cell killing characteristics of melanoma cells, and comparison of vector structure at that time It has been introduced.
  • the present invention relates to a T cell antigen receptor gene that recognizes a specific cancer antigen that can be used for immunotherapy effective for cancer treatment, a receptor ⁇ chain, ⁇ chain expression vector using the T cell antigen receptor gene,
  • An object of the present invention is to provide cytotoxic T cells that are transformed with a vector and express cancer-specific cytotoxicity.
  • Another object of the present invention is to provide a method for treating cancer using such cytotoxic T cells.
  • the present inventors succeeded in cloning a TCR gene that recognizes a surface antigen of a lung cancer cell, and further, the T cell into which the gene has been introduced and expressed is a powerful killer against the lung cancer cell and the like.
  • the present invention was completed after confirming the activity.
  • the present invention is as follows. [1] comprising the CDR3 region consisting of the amino acid sequence of any one of SEQ ID NOs: 1 to 8 or an amino acid sequence substantially identical to the amino acid sequence, and comprising the group consisting of KK-LC-1, RPL19, GITR and AL137255 A nucleic acid encoding an ⁇ chain or ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor that recognizes a cancer antigen peptide derived from a selected cancer antigen.
  • a protein that recognizes a cancer antigen peptide derived from GITR cancer antigen (A4) an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3; (A5) an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence in which 1 to 3 amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3, A protein comprising a CDR3 region comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 and recognizing a cancer antigen peptide derived from the AL137255 cancer antigen when complexed with a ⁇ -chain protein of a T cell antigen receptor; (A6) an ⁇ -chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence in which 1 to 3 amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3, When a complex is formed with the
  • the ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor is (a1), (a2), (a4), (a5), (a7), (a8), (a10) or (a11), and the T cell antigen
  • the ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor is (a1), (a4), (a7) or (a10)
  • the ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor is (b1), (b4), ( The nucleic acid according to [2], which is b7) or (b10).
  • a T cell antigen comprising the CDR3 region consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: x (x is 1, 3, 5 or 7) or an amino acid sequence substantially the same as the amino acid sequence in [1] It encodes the T chain antigen receptor ⁇ chain comprising a nucleic acid encoding the receptor ⁇ chain and the CDR3 region consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: (x + 1) or an amino acid sequence substantially identical to the amino acid sequence.
  • a gene set selected from the group consisting of combinations with nucleic acids.
  • nucleic acid encoding a protein (ay) (y is 1, 4, 7 or 10) and a nucleic acid encoding a protein (by), (by + 1) or (by + 2)
  • the selection according to [6] which is selected from the group consisting of a combination of a nucleic acid encoding a protein of (ay) (y is 1, 4, 7 or 10) and a nucleic acid encoding a protein of (by) Gene set.
  • [10] An expression vector comprising the nucleic acid according to any one of [1] to [4].
  • the expression vector according to [10] or [11] wherein the vector is derived from a virus.
  • a cytotoxic T cell transformed with the expression vector according to any one of [10] to [12].
  • cytotoxic T cell according to [13], wherein the cytotoxic T cell is a ⁇ cytotoxic T cell.
  • the cytotoxic T cell according to [15], wherein the co-receptor is CD4 and / or CD8.
  • a step of administering an ⁇ chain-expressing ⁇ cytotoxic T cell obtained by introducing the gene set according to any of [5] to [9] into a human-derived ⁇ cytotoxic T cell. , How to treat cancer.
  • a TCR gene collected from a tumor-specific cytotoxic T cell (CTL) is transferred to an anti-tumor effector cell derived from peripheral blood, and the cell is returned to a cancer patient, thereby anti-tumor The effect is enhanced. That is, in adoptive immunotherapy for cancer, it is not easy to secure a sufficient amount of tumor-specific CTL from the patient itself because it requires cost, long-term labor, and technology, and thus the present invention is used. Thus, it is possible to easily and efficiently produce anti-tumor effector cells and apply them to therapy.
  • CTL tumor-specific cytotoxic T cell
  • FIG. 1 shows a flow cytometry diagram in which lymphocytes grown with zoledronate were stained with a fluorescent antibody against the ⁇ receptor, and a growth curve of lymphocytes grown with zoledronate.
  • the vertical axis represents the number of cells, and the horizontal axis represents the number of culture days.
  • FIG. 2 is a flow cytometry diagram in which lymphocytes grown for 10 days in zoledronate were stained with a fluorescent antibody (1) for the ⁇ receptor and a fluorescent antibody (2) for the ⁇ receptor.
  • FIG. 3 shows the cytotoxic activity of F1121CTL H1 / 10 used for cloning the TCR gene.
  • Lung adenocarcinoma strain F1121L, EBV infected B cells added with KK-LC-1 antigen peptide, EBV infected B cells themselves (no antigen peptide added) and leukemia cell line K562 were examined for their ability to be lysed.
  • the x-axis represents the ratio of target to effector cells and the y-axis represents the percentage of cell lysis after 4 hours.
  • F1121L, EBV-infected B cells added with KK-LC-1 antigen peptide dissolved ⁇ T cells / target cells at 30/1 and 10/1 and showed cytotoxic activity against tumor cells .
  • FIG. 5 is a diagram showing the tumor suppressive effect of adoptive immunotherapy by ⁇ T cells (TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells) introduced with ⁇ T cell antigen receptor gene and CD8 gene showing specific recognition for KK-LC-1.
  • FIG. 6 shows the infiltration of the transferred TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells into the tumor tissue by immunohistochemical staining and RT-PCR.
  • ⁇ actin is a housekeeping gene.
  • the present invention provides a nucleic acid encoding any one of the amino acid sequences described in SEQ ID NOS: 1 to 8, or an amino acid sequence substantially identical to these.
  • the present invention is a cancer antigen expressed in lung cancer cells and presented as a cancer antigen peptide on MHC class I molecules on the surface of cancer cells, KK-LC-1 (GenBank Accession No. NP_001017978), RPL19 (GenBank Accession No. NP_000972), GITR (GenBank Accession No. NP_004186, NP_683699 or NP_683700) and AL137255 (GenBank Accession No. NP_073587) are specifically recognized, and the nucleotide sequence of the nucleic acid encoding the amino acid sequence of the CDR3 region of the TCR It was completed based on the decision.
  • the present invention is useful in the treatment and prevention of cancers expressing KK-LC-1, RPL19, GITR and AL137255137 and presenting antigens on the cell surface, particularly solid cancers including lung cancer.
  • cancer and “tumor” are used as synonyms without any particular distinction.
  • similarity refers to an optimal alignment when two amino acid sequences are aligned using a mathematical algorithm known in the art (preferably, the algorithm uses a sequence of sequences for optimal alignment).
  • Similar amino acids means amino acids that are similar in physicochemical properties, such as aromatic amino acids (Phe, Trp, Tyr), aliphatic amino acids (Ala, Leu, Ile, Val), polar amino acids (Gln, Asn) ), Basic amino acids (Lys, Arg, His), acidic amino acids (Glu, Asp), amino acids with hydroxyl groups (Ser, Thr), amino acids with small side chains (Gly, Ala, Ser, Thr, Met), etc. Examples include amino acids classified into groups.
  • amino acid sequence substantially identical to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: n is about 60% or more, preferably about 70% or more, more preferably about amino acid sequence represented by SEQ ID NO: n.
  • the present invention also provides a nucleic acid encoding a T cell antigen receptor ⁇ chain or ⁇ chain protein comprising any one of the amino acid sequences set forth in SEQ ID NOs: 1 to 8 or a CDR3 region consisting of an amino acid sequence substantially the same as these. I will provide a.
  • the nucleic acid of the present invention comprises an ⁇ chain or ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a nucleic acid encoding a CDR3 region, comprising the nucleotide sequence set forth in any of SEQ ID NOs: 9 to 16. And a nucleic acid encoding.
  • the T chain antigen receptor ⁇ chain or the nucleotide chain comprising a nucleic acid encoding a CDR3 region in which the amino acid sequence of the encoded CDR3 region is changed without changing the amino acid sequence thereof.
  • the ⁇ chain or ⁇ chain of the cytotoxic T cell receptor is composed of a variable region (V region: variable region), a complementarity determining region 3 (CDR3) and a constant region (C region: constant region).
  • V region variable region
  • CDR3 complementarity determining region 3
  • C region constant region
  • the nucleic acid of the present invention relates to the most important CDR3 gene for recognizing the antigenic peptides presented by MHC class I.
  • CDR3 can also be divided into a diversity area and a joining area. In general, the ⁇ chain often has no diversity region.
  • a tumor-specific T cell antigen receptor (TCR) gene can be constructed by combining the gene of CDR3 region presented by the present invention with known V region and C region genes. .
  • the CDR3 region gene of the present invention is particularly preferably a combination with the V region gene and C region gene described in Table 4.
  • the gene sequences of the V region and the C region constituting the TCR of the present invention are registered in GenBank with the following accession numbers.
  • TCR gene when a term such as “TCR gene” is used, the sequence excluding the CDR3 region is not limited to that of a human TCR gene (DNA) represented by a specific base sequence unless otherwise specified. As long as the above can be maintained, the gene (DNA) encoding its homologues, mutants, derivatives and the like is also used. Specifically, human TCR gene C region, mouse homologue, rat homologue, and the like are included.
  • nucleic acid includes DNA and RNA.
  • amino acid sequences described in SEQ ID NOs: 1 to 8 do not substantially affect the three-dimensional structure of the receptor protein, recognize the antigenic peptide presented by MHC class I, and express cytotoxic activity.
  • a few amino acid deletions, additions and substitutions are allowed to retain their ability. Therefore, the nucleic acid encoding it should be considered corresponding to the deletion, addition and substitution of these amino acids.
  • the present invention also provides a nucleic acid encoding any one of the following proteins (a1) to (a12) and (b1) to (b12).
  • A1 an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1;
  • A2) an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence in which 1 to 3 amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1,
  • A3) an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence in which 1 to 3 amino acids are deleted, substituted or added in
  • a protein that recognizes a cancer antigen peptide derived from GITR cancer antigen (A4) an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3; (A5) an ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence in which 1 to 3 amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3, A protein comprising a CDR3 region comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 and recognizing a cancer antigen peptide derived from the AL137255 cancer antigen when complexed with a ⁇ -chain protein of a T cell antigen receptor; (A6) an ⁇ -chain protein of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence in which 1 to 3 amino acids are deleted, substituted or added in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3, When a complex is formed with the
  • the ⁇ chain protein of the encoded T cell antigen receptor is preferably (a1), (a2), (a4), (a5), (a7), (a8), (a10) or ( and the ⁇ -chain protein of the T cell antigen receptor encoded is (b1), (b2), (b4), (b5), (b7), (b8), (b10) or (b11) More preferably, the ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor encoded is (a1), (a4), (a7) or (a10), and the ⁇ chain protein of the encoded T cell antigen receptor is ( The nucleic acid is b1), (b4), (b7) or (b10).
  • the number of amino acid deletions, substitutions or additions is preferably 1 or 2, more preferably 1.
  • ⁇ chain and ⁇ chain proteins of these T cell antigen receptors recognize cancer antigen peptides derived from cancer antigens when they form a complex depends on whether the T cell antigen receptor ⁇ chain or ⁇ chain is recognized.
  • a cancer antigen-presenting cell presenting a cancer antigen peptide derived from a cancer antigen selected from the group consisting of CTL clones to be expressed and KK-LC-1, RPL19, GITR and AL137255 (eg, lung cancer cell lines described in Table 1) can be confirmed by measuring the degree of damage of cancer antigen-presenting cells.
  • the degree of damage of cancer antigen-presenting cells can be expressed by the cell lysis rate (%) of the cells.
  • the cell lysis rate (%) of cancer cells may be obtained by directly counting the number of cancer antigen-presenting cells that have been damaged by measurement under a microscope or the like.
  • the cell lysis rate (%) of cancer antigen-presenting cells is, for example, pre-labeled with a radioisotope such as 51 Cr or other labeling substance, and released to the outside after contacting with the CTL clone. By measuring the amount of the labeled substance thus obtained, the number of cancer antigen-presenting cells that have been damaged can be indirectly calculated.
  • the nuclear DNA of cancer antigen-presenting cells is pre-labeled with a radioisotope such as [ 3 H] thymidine or [ 125 I] uridine, and then released extracellularly.
  • the number of damaged cancer antigen-presenting cells can also be indirectly calculated by measuring the amount by radioactivity or measuring the degree of DNA fragmentation by DNA electrophoresis.
  • dyes such as trypan blue and nigrosine are easily taken up by damaged cells and remain without being excluded, these dyes are added to the cells, and the cells that have taken up the dyes are damaged. Can also be easily identified as an isolated cell (dye exclusion test).
  • the present invention includes SEQ ID NO: x A nucleic acid encoding the ⁇ chain of a T cell antigen receptor comprising the CDR3 region consisting of the amino acid sequence according to (x is 1, 3, 5 or 7) or an amino acid sequence substantially identical to the amino acid sequence; A gene selected from the group consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: (x + 1) or a combination with a nucleic acid encoding the ⁇ chain of a T cell antigen receptor comprising a CDR3 region consisting of an amino acid sequence substantially identical to the amino acid sequence Provide set.
  • the gene set of the present invention preferably encodes the nucleic acid encoding the protein (ay) (y is 1, 4, 7 or 10) and the protein (by), (by + 1) or (by + 2) in the above.
  • a nucleic acid encoding a protein of (az) (z is 2, 5, 8 or 11) and a nucleic acid encoding a protein of (bz-1), (bz) or (bz + 1) A combination of a nucleic acid encoding a protein of (aw) (w is 3, 6, 9 or 12) and a nucleic acid encoding a protein of (bw-2), (bw-1) or (bw)
  • the CTL expressing the T cell antigen receptor of the present invention constructed based on these gene sets is restricted by the HLA presenting each antigen used for induction, the CTL of the present invention is a type of the HLA. It is preferable to administer to a patient in accordance with
  • the HLA restriction of those based on the combinations of the following SEQ ID NOs is as follows. (SEQ ID NO: 1 and 2) Cw12 (SEQ ID NOs: 3 and 4) Cw7 (SEQ ID NOS: 5 and 6) B15 (SEQ ID NOs: 7 and 8) A31
  • the nucleic acid of the present invention can be prepared, for example, as follows. T cell clones are established by limiting dilution of cytotoxic T cells (CTLs) collected from various cancer patient tissues or peripheral blood. Using the cancer cells presenting the above-mentioned cancer antigen peptide on the cell surface, the cytotoxic activity of the T cell clone was confirmed, and the T cell clone showing the cytotoxic activity was selected. 1 ⁇ 10 5 T cells MRNA is extracted from the clone, and the mRNA is converted into cDNA.
  • CTLs cytotoxic T cells
  • PCR is performed for each subtype of the V region using a specific primer and a common primer for the C region, and by analyzing the base sequence of this PCR amplified region for each clone, The subtypes of the V region can be identified at the same time the base sequences of the chain and ⁇ chain genes are known. Then, the start position of the open reading frame (ORF) of the V region of the TCR is identified, a sense primer is designed, and the TCR ⁇ chain and ⁇ chain genes are cloned again by PCR and incorporated into a plasmid to clone the gene. To complete. Analyze the DNA sequences of the cloned TCR ⁇ -chain and ⁇ -chain genes to confirm that the full-length gene has been collected correctly.
  • ORF open reading frame
  • the total ⁇ chain or ⁇ chain gene thus obtained is compared with known V chain, D chain, J chain, and C chain genes, each subtype is identified, and the characteristic sequence of the present invention is identified.
  • the TCR gene thus constructed can be incorporated into a suitable vector as DNA and introduced into a cytotoxic T cell, or can be directly introduced into a cytotoxic T cell as RNA.
  • the present invention relates to a vector capable of infecting cytotoxic T cells, wherein a nucleic acid encoding the ⁇ chain and ⁇ chain of the gene set operably linked to an expression regulatory gene is inserted separately or separately.
  • the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain expression vector is provided.
  • T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain expression vectors As the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain expression vector of the present invention, 1) Separate vectors in which nucleic acids encoding the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain of the present invention are inserted separately; 2) a single vector in which the nucleic acids encoding the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain of the present invention are incorporated separately or linked by a linker; and 3) a single vector in which the nucleic acids encoding the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain of the present invention are linked and incorporated using a self cleaving peptide 2A, Is used.
  • the vector of the present invention may be a vector that expresses only the ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor or a vector that expresses only the ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor.
  • the expression vector preferably contains a transcription termination signal, that is, a terminator region, downstream of the oligo (poly) nucleotide encoding the ⁇ chain or ⁇ chain.
  • a selection marker gene for selecting transformed cells a gene that confers resistance to drugs such as tetracycline, ampicillin, kanamycin, hygromycin, phosphinothricin, a gene that complements auxotrophic mutations, etc. is further included. You may go out.
  • Examples of basic backbone vectors used as expression vectors include plasmids or virus vectors (eg, adenovirus, retrovirus, adeno-associated virus, herpes virus, vaccinia virus, pox virus, poliovirus, Sindbis virus, Sendai virus).
  • virus vectors eg, adenovirus, retrovirus, adeno-associated virus, herpes virus, vaccinia virus, pox virus, poliovirus, Sindbis virus, Sendai virus.
  • a virus-derived vector such as lentivirus
  • the promoter used as an expression regulatory gene is not particularly limited as long as it can function in the introduced cell.
  • SV40-derived early promoter, cytomegalovirus LTR, Rous sarcoma virus LTR, MoMuLV-derived LTR, adenovirus-derived Examples include viral promoters such as early promoters, and mammalian constituent protein gene promoters such as ⁇ -actin gene promoter, PGK gene promoter, and transferrin gene promoter.
  • viral promoters such as early promoters
  • mammalian constituent protein gene promoters such as ⁇ -actin gene promoter, PGK gene promoter, and transferrin gene promoter.
  • Particularly preferred is the promoter of LTR derived from cytomegalovirus LTR MoMuLV.
  • vector pMX-IP or the like.
  • These vectors already contain two types of genes, the puromycin resistance gene and the ampicillin resistance gene, and it is possible to increase the purity of the expressed gene by antibiotic selection after gene introduction. .
  • a retroviral solution can be produced in the culture supernatant.
  • TCR ⁇ gene-introduced cells can be obtained.
  • the vector of the present invention may also be a single vector that expresses a T cell antigen receptor ⁇ chain or ⁇ chain protein, such as the following T cell antigen receptor ⁇ chain or ⁇ chain protein: It may be a co-expression vector.
  • the co-expression vector of the present invention may comprise a first nucleic acid encoding a T cell antigen receptor ⁇ chain protein and a second nucleic acid encoding a T cell antigen receptor ⁇ chain protein.
  • the co-expression vector of the present invention may also contain a promoter operably linked to the first and second nucleic acids.
  • a functionable linkage of a promoter means that the promoter is bound to the nucleic acid so as to allow expression of a factor encoded by the nucleic acid under its control.
  • the co-expression vector of the present invention may be a polycistronic mRNA expression vector.
  • the polycistronic mRNA expression vector comprises a ligated product of a first nucleic acid and a second nucleic acid, which enables expression of a polycistronic mRNA of an ⁇ chain and ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor, and the ligated product.
  • a operably linked promoter may be included.
  • vectors examples include pIRES vector (Clontech).
  • pIRES vector Click linking the first and second nucleic acids using a sequence containing the IRES of encephalomyocarditis virus (ECMV) (the ribosome binding site inside the mRNA)
  • IRES encephalomyocarditis virus
  • ORF open reading frames
  • the co-expression vector of the present invention can also be a non-polycistronic mRNA expression vector.
  • the non-polycistronic mRNA expression vector can comprise a first nucleic acid and a first promoter operably linked to the nucleic acid, and a second nucleic acid and a second promoter operably linked to the nucleic acid. .
  • ⁇ chain and ⁇ chain genes are expressed using an expression vector containing 2A self-cleaving peptide of hand-foot-and-mouth disease virus, and after translation in a form linked in cells, cause self-cleavage, Complexes can also be formed in the form of separate ⁇ and ⁇ chain proteins.
  • the ⁇ -chain or ⁇ -chain gene can be incorporated into the expression vector alone, or both can be incorporated at the same time, but it is preferable to incorporate both at the same time.
  • Various studies on the order of ⁇ -chain and ⁇ -chain genes and their linking methods have been separately conducted (The Journal of Immunology, 2003, 171: 3287-3295), and these can also be used in the present invention.
  • the method using the self-cleaving peptide 2A of 3) above is preferred.
  • the expression vector of the present invention is useful, for example, as a medicine, for activation of immune cells, and preparation of the cells of the present invention.
  • T cells derived from human peripheral blood are diluted by limiting dilution, that is, the T cells are diluted stepwise, and 0.3 or 1 T is added to each well.
  • the cell dilution so that the cell clones are inserted.
  • Cytokines IL-2 and IL-7
  • tumor stimulation is performed once a week to grow the target T cell clones.
  • a tumor damage test is performed on the proliferated T cells, and a cytotoxic T cell clone for the target tumor is selected.
  • cytotoxic T cells Transformation of cytotoxic T cells
  • means known in the art can be employed. Examples of such means include, but are not limited to, lipofection method, calcium phosphate precipitation method, electroporation method and the like.
  • T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain expression vector of the present invention 1) A method of introducing each of separate vectors into which nucleic acids encoding the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain of the gene set of the present invention are separately inserted; 2) Nucleic acids encoding the T cell antigen receptor ⁇ chain and ⁇ chain of the gene set of the present invention are incorporated separately or combined with a linker and incorporated into a TCR ⁇ chain and ⁇ chain using a single vector.
  • the mRNA encoding the T cell antigen receptor can be gene-transferred using electroporation or lipofection using or without using the above vector.
  • the mRNA can be prepared using an in vitro transcription construct.
  • the construct include a template construct derived from an ⁇ chain or ⁇ chain protein expression vector of a T cell antigen receptor, a template construct derived from a coexpression vector of an ⁇ chain and ⁇ chain protein of a T cell antigen receptor, or a T cell antigen.
  • examples include a template construct derived from a cloning vector of a receptor ⁇ chain or ⁇ chain protein.
  • the mRNA encoding the ⁇ - or ⁇ -chain protein of the T cell antigen receptor is prepared by a known method using the above-described construct, a commercially available kit for in vitro transcription, and the like.
  • the template construct contained in the transcription reaction solution may be cyclic or linear. In the case of circular DNA, it may be cleaved by a restriction enzyme that recognizes a restriction enzyme site at an appropriate position to be linearized. Further, from the viewpoint of stability, it is desirable to prepare so as to have a 5 'cap structure.
  • T cells into which these nucleic acids (polynucleotides) are introduced are not particularly limited, and include ⁇ type T cells and ⁇ type T cells, and ⁇ type T cells are particularly preferable.
  • ⁇ cytotoxic T cells preparation of ⁇ cytotoxic T cells
  • the peripheral blood lymphocytes are stimulated with a bisphosphonate preparation (eg, zoledronic acid), cultured in the presence of IL-2, and ⁇ positive.
  • a bisphosphonate preparation eg, zoledronic acid
  • IL-2 IL-2
  • ⁇ positive Selectively expand T cells.
  • the expression status of ⁇ and ⁇ receptors on lymphocytes in which ⁇ -positive T cells were proliferated using bisphosphonate preparations (eg, zoledronate) for peripheral blood lymphocytes was determined by flow cytometry. Can be analyzed.
  • bisphosphonates include alendronate, ipandronate, icandronate, etidronate, olpadronate, clodronate, zoledronate, tiludronade, neridronate, pamidronate, risedronate, etc., but zoledronate and pamidronate are preferred.
  • the present invention further provides ⁇ chain expressing ⁇ cytotoxic T cells transformed with a co-receptor gene.
  • the ⁇ chain and / or ⁇ chain gene of the present invention can be used in various cells as long as they are cytotoxic cells, but it is preferably used for T cells, particularly ⁇ cytotoxic T cells.
  • T cells particularly ⁇ cytotoxic T cells.
  • the introduced ⁇ chain and ⁇ chain genes are introduced into ⁇ cytotoxic T cells, the introduced ⁇ chain and ⁇ chain are expressed as a set as they are and are not entangled with the ⁇ chain. It will be purified.
  • CD4 and / or CD8 are preferably expressed by gene introduction as a co-receptor.
  • an antigen recognition characteristic can be improved.
  • Such a method of introducing a co-receptor and its effect are also known and can be appropriately carried out by those skilled in the art.
  • the induced cytotoxic T cells have the ability to specifically recognize a desired antigen. For example, cells having the antigen are specifically destroyed by their cytotoxic activity.
  • target cells labeled with cytokine eg, but not limited to, interferon, tumor necrosis factor
  • 51 Cr release test e.g., fluorescent substance, etc. It can be evaluated through measurement of an antigen-specific increase in proliferation of cytotoxic T cells, which can be measured by radioactivity uptake and radioactivity uptake.
  • cytotoxic T cell is contacted with a first fluorescent marker coupled with a cytotoxic T cell specific antibody and then contacted with an antigen peptide-MHC complex coupled with a second fluorescent marker.
  • FACS fluorescence-activated cell sorting
  • the present invention administers an ⁇ chain-expressing ⁇ cytotoxic T cell obtained by introducing the ⁇ chain or ⁇ chain protein of the T cell antigen receptor of the present invention into a human-derived ⁇ cytotoxic T cell.
  • a method for treating cancer comprising the steps of:
  • the ⁇ chain-expressing ⁇ cytotoxic T cell of the present invention When used in a method for treating cancer, it can be formulated according to conventional means.
  • the ⁇ chain-expressing ⁇ cytotoxic T cell of the present invention has low toxicity and is administered as it is to a human or as a pharmaceutical composition in an appropriate dosage form (eg, intravascular administration, subcutaneous administration, etc.). be able to.
  • the animal to which the ⁇ chain-expressing ⁇ cytotoxic T cell of the present invention is administered is an animal (mammal or the like) that can develop a target tumor, and is usually a human.
  • Example 1 Selection of Tumor-Specific CTL Lung cancer cell lines were continuously established from lung cancer resected specimens and the like, and 29 lung cancer cell lines were established. Each of these lung cancer cell lines was used to induce tumor-specific CTL by co-culture with lymphocytes obtained from lymph nodes of the same patient.
  • the antigen recognized by each CTL clone was analyzed by cDNA expression cloning method, and it was confirmed that the tumor antigen recognized by these CTLs was KK-LC-1, RPL19, GITR or AL137255.
  • Example 2 TCR Gene Collection Method Messenger RNA was collected from a CTL clone that recognizes a tumor antigen to prepare cDNA.
  • TCR full length (V region-J region- (D region) -C region) gene it is necessary to set a sense primer for the V region which is a variable site.
  • PCR was performed using primers specific to each of the V regions of all subtypes shown in Tables 2 and 3 and a common primer of the C region, and the base sequence of the PCR amplified region generated by this amplification reaction was analyzed.
  • the subtypes of the V region of the ⁇ chain and ⁇ chain genes of the CTL clone of the present invention were identified.
  • complementarity determining region 3 (complementary region 3: CDR3) is shown in the sequence listing.
  • TCR ⁇ chain and ⁇ chain genes were introduced as follows: 1) a method in which each was incorporated into another vector, and each was introduced separately, and 2) a self-cleaving peptide. (Self cleaving peptide) A method of introducing and introducing the TCR ⁇ gene into one vector using 2A was used.
  • the ⁇ chain gene was incorporated into the vector pcDNA3.1 / V5-His-TOPO by the chemical ligation method using the TOPO TA cloning kit. Similarly, the ⁇ chain gene was incorporated into pcDNA3.1 / V5-His-TOPO by chemical ligation using the TOPO TA cloning kit. This method was applied to ⁇ chain and ⁇ chain genes of GITR and KK-LC-1 CTL.
  • the ⁇ chain gene and the ⁇ chain gene were combined with a gene encoding peptide 2A with the ⁇ chain gene upstream, and incorporated into a pMx-IP vector. That is, the multicloning site of the vector incorporating the TCR ⁇ chain (pcDNA3.1 / V5-His-TOPO) was cleaved with Xbal and ApaI restriction enzymes and dephosphorylated. Thereafter, an insert was prepared by cleaving the 2A gene incorporating the adapter primers Xbal and ApaI with restriction enzymes Xbal and ApaI, and ligated with a vector incorporating the TCR ⁇ chain.
  • the two ApaI sites of the multicloning site of the vector (pcDNA3.1 / V5-His-TOPO) incorporating the ⁇ chain gene and the 2A gene were cleaved with ApaI.
  • a vector incorporating the TCR ⁇ chain gene (pcDNA3.1 / V5-His-TOPO) was cleaved with ApaI to create a TCR ⁇ chain gene with both ends capable of binding at the ApaI site. Ligation was performed with a vector incorporating the 2A gene. Further, a set of TCR ⁇ chain gene-2A gene-TCR ⁇ chain gene was excised with BamHI and XhoI restriction enzymes and ligated into pMx-IP vector using BamHI and XhoI.
  • This method was applied to the ⁇ chain and ⁇ chain genes of KK-LC-1 CTL.
  • Example 4 Effector Analysis of TCR Gene-Introduced Cells Using ⁇ T Cells a) Preparation of ⁇ T Cells A bisphosphonate preparation (1 ⁇ M zoledronate; zoledronate; Novartis Pharma Co., Ltd.), add 100 U / mL IL-2 on the 2nd (day 2), 6 (day 6) and 10 (day 10) days, culture in the presence of ⁇ T cells Selectively propagated (FIG. 1). On day 0 (day 0), the cell population stained with CD3 and TCR ⁇ double positive was 2.3%, but when zoledronate was added, it gradually increased and increased to 95% on day 12 (day 12). As shown in the growth curve, it grew rapidly until day 8 (Day 8), reached its peak on day 15 (Day 15), and then gradually decreased (FIG. 1).
  • FIG. 2 confirms that ⁇ T cells are not substantially present.
  • the colored curve is performed using a non-specific antibody, and the non-colored curve is performed using a specific antibody.
  • the x axis indicates the fluorescence intensity, and the y axis indicates the number of cells.
  • TCR ⁇ chain and ⁇ chain genes were introduced into the ⁇ T cells prepared above using the TCR gene introduction vector prepared in Example 3 above.
  • the experimental conditions for the introduction were the introduction of the TCR ⁇ gene into PLAT-A, a packaging cell, using lipofectamine 2000, and the culture supernatant in which the virus solution was produced after 24 to 48 hours was collected and 8000 for 24 hours.
  • the virus solution was concentrated by rotation. The concentrated virus solution is placed in a retronectin plate and allowed to stand at 37 ° C. for 4 to 6 hours. After washing with phosphate buffered saline (PBS), 1 ⁇ 10 6 ⁇ T cells are introduced. 1 plate was placed into a retronectin plate, and the virus was infected to incorporate the TCR ⁇ gene.
  • PBS phosphate buffered saline
  • FIG. 3 shows the cytotoxic activity of F1121CTL H1 / 10 used for cloning the TCR gene.
  • Lung adenocarcinoma strain F1121L, EBV-infected B cells added with KK-LC-1 antigen peptide, EBV-infected B cells themselves (no antigen peptide added) and leukemia cell line K562 were examined.
  • the x-axis represents the ratio of target to effector cells and the y-axis represents the percentage of cell lysis after 4 hours.
  • FIG. 4 shows the evaluation of the cytotoxic activity of ⁇ T cells into which ⁇ receptor gene showing specific recognition for tumor antigen KK-LC-1 was introduced in the same manner as described above.
  • the target tumor cells are well lysed, and EBV-infected B cells supplemented with peptides are also lysed. It is clear that the antigen-specific cytotoxic activity is almost the same as the original CTL shown in FIG.
  • Example 5 In vivo therapeutic effect of TCR gene-introduced cells using ⁇ T cells ⁇ T cells (TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells) introduced with TCR ⁇ gene and CD8 gene showing specific recognition in KK-LC-1 Whether an antitumor effect can be demonstrated in vivo, a treatment experiment was conducted in a SCID mouse model. That is, a B901L (B901L-HLA-B15) lung cancer cell line into which the HLA-B15 gene necessary for TCR recognition for KK-LC-1 was introduced and a B901L-parental lung cancer cell line that does not carry the HLA-B15 gene Used as target cells.
  • B901L lung cancer cell line into which the HLA-B15 gene necessary for TCR recognition for KK-LC-1 was introduced
  • a B901L-parental lung cancer cell line that does not carry the HLA-B15 gene Used as target cells.
  • B901L-HLA-B15 lung cancer cell line and B901L-parental lung cancer cell line were injected separately 2 x 10 5 separately into the left and right flank of one SCID mouse, and simultaneously TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells were injected from the tail vein.
  • TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells were intravenously injected every two weeks via the tail vein, a marked suppression of tumor growth was observed (FIG. 5).
  • a total of 6 mice (12 lesions) were used.
  • B901L-parental transplanted tumor tissue in which tumor growth was not suppressed and B901L-HLA-B15 transplanted tumor tissue in which tumor growth was not suppressed were removed.
  • the excised tumor tissue was immunostained using an anti-CD3 antibody.
  • TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells were observed only around solid tumors (FIG. 6).
  • the growth-suppressed B901L-HLA-B15 transplanted tumor tissue was necrotic inside, and many TCR ⁇ -CD8- ⁇ T cells were infiltrated in the tumor.
  • the present invention is useful for the treatment of cancer, particularly lung cancer. According to the present invention, it is possible to provide means for performing highly effective immunotherapy with few side effects in the treatment of lung cancer, where application of curative treatment (such as surgical therapy) is extremely limited. In addition, according to the present invention, patient-derived cytotoxic T cells used for immunotherapy of the lung cancer can be mass-produced and continuously provided, whereby the therapeutic effect can be dramatically improved.

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Abstract

　本発明は、免疫療法において有用なＴ細胞抗原受容体（ＴＣＲ）遺伝子、具体的には配列番号１～８のいずれかに記載のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含み、KK-LC-1、RPL19、GITR及びAL137255からなる群より選ばれる癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するＴ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードする核酸、及び配列番号ｘ（ｘは１、３、５若しくは７である）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のα鎖をコードする核酸と、配列番号（ｘ＋１）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のβ鎖をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子、のセット及び当該遺伝子を導入し発現させることによって、肺癌細胞等に対する強力な殺傷活性を誘導したＴ細胞等を提供する。

Description

Ｔ細胞抗原受容体遺伝子、受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクター並びに細胞障害性Ｔ細胞
　本発明は免疫治療に有用な遺伝子に関し、特に癌を治療する養子免疫治療に有用な遺伝子に関する。より詳しくは、肺癌細胞の表面抗原を特異的に認識するＴ細胞抗原受容体（ＴＣＲ）遺伝子及び当該遺伝子を導入し発現させることによって、肺癌細胞等に対する強力な殺傷活性を誘導したＴ細胞等に関する。
　癌は現代の最も治癒困難な疾患である。癌を治療することを目的として癌抗原の探索は２０世紀の初めより継続して行われてきた。そのような抗原が見つかるとそれに対する特異的抗体を利用した治療法が研究され、例えば、抗体に毒素を結合して癌だけを特異的に殺すことを目指したミサイル療法なども検討された。また１９９１年にBoonらによりヒトメラノーマの癌抗原とそれを特異的に認識する細胞障害性Ｔ細胞との関係が見出されてから、細胞障害性Ｔ細胞を利用した癌の治療が研究されてきた（非特許文献１）。
　その後の遺伝子治療の研究については例えば遺伝子移入するベクターについて、オンコウイルスベクターとレトロウイルスベクターとの比較が実際の治療例を基に紹介されている（非特許文献２）。
　更に、ｇｐ１００に対するＣＴＬからのＴＣＲのα鎖及びβ鎖を始原リンパ球（primary lymphocytes）に遺伝子操作により発現させて、メラノーマ細胞の認識及び殺細胞特性が達成できること、その際のベクター構成の比較も紹介されている（非特許文献３）。
　また、Ｔ細胞抗原受容体遺伝子を他のリンパ球に導入することで、抗腫瘍活性を誘導する際に、αβＴ細胞にαβ受容体を導入すると新旧のαβの交絡が発生し予期しない効果が発生する虞があるところ、γδＴ細胞にαβＴ細胞抗原受容体遺伝子を導入することで、γδ受容体とαβ受容体が干渉することなく、より効率的に抗原特異的細胞障害活性を誘導可能とする研究も紹介されている（非特許文献４）。
Science, Vol 254, Issue 5038, 1643-1647,1991 ウイルス　第５３巻　第２号、pp.177-183, 2003 The Journal of Immunology, 2003, 171: 3287-3295 Cancer Res 2006 ; 66 : (6) March 15, 2006 pp3331-3337
　本発明は、癌の治療に有効な免疫療法に用いることが出来る、特定の癌抗原を認識するＴ細胞抗原受容体遺伝子、それを用いた受容体α鎖、β鎖発現用ベクター、更には前記ベクターで形質転換して癌特異的障害性を発現する細胞障害性Ｔ細胞を提供することを目的とする。また、本発明はかかる細胞障害性Ｔ細胞を用いる癌の治療方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、鋭意研究を進めた結果、肺癌細胞の表面抗原を認識するＴＣＲ遺伝子のクローニングに成功し、さらに当該遺伝子を導入し発現させたＴ細胞が、当該肺癌細胞等に対する強力な殺傷活性を示すことを確認して、本発明を完成させた。
　即ち、本発明は以下のとおりである。
［１］配列番号１～８のいずれかに記載のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含み、KK-LC-1、RPL19、GITR及びAL137255からなる群より選ばれる癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するＴ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードする核酸。
［２］以下（ａ１）～（ａ１２）、（ｂ１）～（ｂ１２）のいずれかのタンパク質をコードする核酸：
（ａ１）配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ２）配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ３）配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ４）配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ５）配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ６）配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ７）配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ８）配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ９）配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ１０）配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ１１）配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号８で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ１２）配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチド
を認識するタンパク質；
（ｂ１）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ２）配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ３）配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ４）配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ５）配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ６）配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ７）配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ８）配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ９）配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ１０）配列番号８で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ１１）配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；及び
（ｂ１２）配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質。
［３］Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質が（ａ１）、（ａ２）、（ａ４）、（ａ５）、（ａ７）、（ａ８）、（ａ１０）又は（ａ１１）であり、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質が（ｂ１）、（ｂ２）、（ｂ４）、（ｂ５）、（ｂ７）、（ｂ８）、（ｂ１０）又は（ｂ１１）である［２］記載の核酸。
［４］Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質が（ａ１）、（ａ４）、（ａ７）又は（ａ１０）であり、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質が（ｂ１）、（ｂ４）、（ｂ７）又は（ｂ１０）である［２］記載の核酸。
［５］［１］において、配列番号ｘ（ｘは１、３、５若しくは７である）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のα鎖をコードする核酸と、配列番号（ｘ＋１）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のβ鎖をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セット。
［６］［２］において、（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）、（ｂｙ＋１）若しくは（ｂｙ＋２）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）、（ｂｚ）若しくは（ｂｚ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｗ）（ｗは３、６、９若しくは１２である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｗ－２）、（ｂｗ－１）若しくは（ｂｗ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セット。
［７］（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）若しくは（ｂｙ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）若しくは（ｂｚ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる、［６］記載の遺伝子セット。
［８］（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）若しくは（ｂｙ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる、［６］記載の遺伝子セット。
［９］（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる、［６］記載の遺伝子セット。
［１０］［１］～［４］のいずれかに記載の核酸を含む発現ベクター。
［１１］細胞障害性Ｔ細胞に感染能力のあるベクターに、発現調節遺伝子と機能可能に連結した［５］～［９］のいずれかに記載の遺伝子セットのα鎖及びβ鎖をコードする核酸を挿入してなる、それぞれ別個又は単一の、Ｔ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクター。
［１２］上記ベクターがウイルス由来である、［１０］又は［１１］記載の発現ベクター。
［１３］［１０］～［１２］のいずれかに記載の発現ベクターで形質転換された細胞障害性Ｔ細胞。
［１４］細胞障害性Ｔ細胞がγδ細胞障害性Ｔ細胞である、［１３］記載の細胞障害性Ｔ細胞。
［１５］さらに共受容体遺伝子で形質転換された、［１４］記載の細胞障害性Ｔ細胞。
［１６］共受容体がＣＤ４及び／又はＣＤ８である、［１５］記載の細胞障害性Ｔ細胞。
［１７］ヒト由来のγδ細胞障害性Ｔ細胞に［５］～［９］のいずれかに記載の遺伝子セットを導入して得られたαβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞を投与する工程を含む、癌の治療方法。
［１８］γδ細胞障害性Ｔ細胞が投与されるべき患者由来のものである、［１７］記載の癌の治療方法。
　本発明によれば、腫瘍特異的細胞障害性Ｔ細胞(ＣＴＬ)から採取したＴＣＲ遺伝子を、末梢血より誘導した抗腫瘍エフェクター細胞へ遺伝子移入し、この細胞を癌患者に戻すことで、抗腫瘍効果が高められる。すなわち、癌に対する養子免疫療法において、患者自身から腫瘍特異的なＣＴＬを十分な量で確保するのは費用、長期間の労力、技術が必要であり容易なことではないため、本発明を利用することにより、簡便で且つ効率的に抗腫瘍エフェクター細胞を作製し、治療に応用することが可能となる。
図１はゾレドロネートにて増殖させたリンパ球を、γδ受容体に対する蛍光抗体にて染色したフローサイトメトリーの図、及びゾレドロネートにて増殖させたリンパ球の増殖曲線を示す。縦軸は細胞数、横軸は培養日数である。 図２はゾレドロネートにて10日間増殖させたリンパ球を、γδ受容体に対する蛍光抗体（１）及びαβ受容体に対する蛍光抗体（２）にて染色したフローサイトメトリーの図である。 図３はＴＣＲ遺伝子をクローニングすることに用いたF1121CTL H1/10の細胞障害活性を示す。肺腺癌株F1121L、EBV感染B細胞にKK-LC-1抗原ペプチドを添加したもの、EBV感染B細胞そのもの（抗原ペプチド無添加）及び白血病細胞株K562を溶解させる能力を調べた。ｘ軸は標的と効果細胞の比を表し、ｙ軸は４時間後の細胞溶解のパーセントを表す。F1121L、EBV感染Ｂ細胞にKK-LC-1抗原ペプチドを添加したものについてはγδＴ細胞／標的細胞が30／1、10／1で溶解しており、腫瘍細胞に対して細胞障害活性を示した。 図４は腫瘍抗原KK-LC-1に特異的認識を示すαβＴ細胞抗原受容体遺伝子を導入したγδＴ細胞の細胞障害活性を評価した。KK-LC-1抗原を発現している肺腺癌株F1121L、自己EBウイルストランスフォームB細胞にKK-LC-1抗原ペプチドを添加したもの、添加しないもの、白血病細胞株K562を標的細胞として使用した図である。 図５はKK-LC-1に特異的認識を示すαβＴ細胞抗原受容体遺伝子及びCD8遺伝子を導入したγδＴ細胞(TCRαβ-CD8-γδＴ細胞)による養子免疫療法の腫瘍抑制効果を示す図である。 図６は移入したTCRαβ-CD8-γδＴ細胞の腫瘍組織への浸潤を、免疫組織化学染色及びRT-PCRにより確認した図である。図中、βactinは、ハウスキーピング遺伝子である。
　本明細書において、アミノ酸、（ポリ）ペプチド、核酸、（ポリ）ヌクレオチド等の略号による表示は、IUPAC－IUBの規定〔IUPAC-IUB Communication on Biological Nomenclature, Eur. J. Biochem., 138: 9 (1984)〕、「塩基配列又はアミノ酸配列を含む明細書等の作成のためのガイドライン」（日本国特許庁編）、及び当該分野における慣用記号に従う。
　本発明は、配列番号１～８記載のいずれかのアミノ酸配列又はこれらと実質的に同一のアミノ酸配列をコードする核酸を提供する。
　本発明は、肺癌細胞において発現し、癌細胞表面のMHCクラスＩ分子上に癌抗原ペプチドとして提示されている癌抗原、KK-LC-1（GenBank Accession No. NP_001017978）、RPL19（GenBank Accession No. NP_000972）、GITR（GenBank Accession No. NP_004186、NP_683699又はNP_683700）及びAL137255（GenBank Accession No. NP_073587）を特異的に認識することを特徴とする、ＴＣＲのＣＤＲ３領域のアミノ酸配列をコードする核酸の塩基配列を決定したことに基づき完成されたものである。本発明は、KK-LC-1、RPL19、GITR及びAL137255 を発現し、細胞表面上に抗原提示されている癌、特に、肺癌を初めとした固形癌の治療及び予防において有用である。本明細書において、「癌」及び「腫瘍」という用語は、特に区別することなく、同義語として用いられる。
　本明細書中、「配列番号ｎ（ｎ＝１～８）で表されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列」としては、配列番号ｎで表されるアミノ酸配列と約60％以上、好ましくは約70％以上、より好ましくは約80％以上、いっそう好ましくは約90％以上、特に好ましくは約95％以上、最も好ましくは約97％以上の類似性を有するアミノ酸配列が挙げられる。ここで「類似性」とは、当該技術分野において公知の数学的アルゴリズムを用いて２つのアミノ酸配列をアラインさせた場合の、最適なアラインメント（好ましくは、該アルゴリズムは最適なアラインメントのために配列の一方又は両方へのギャップの導入を考慮し得るものである）における、オーバーラップする全アミノ酸残基に対する同一アミノ酸及び類似アミノ酸残基の割合（％）を意味する。「類似アミノ酸」とは物理化学的性質において類似したアミノ酸を意味し、例えば、芳香族アミノ酸（Phe、Trp、Tyr）、脂肪族アミノ酸（Ala、Leu、Ile、Val）、極性アミノ酸（Gln、Asn）、塩基性アミノ酸（Lys、Arg、His）、酸性アミノ酸（Glu、Asp）、水酸基を有するアミノ酸（Ser、Thr）、側鎖の小さいアミノ酸（Gly、Ala、Ser、Thr、Met）などの同じグループに分類されるアミノ酸が挙げられる。このような類似アミノ酸による置換は蛋白質の表現型に変化をもたらさない（即ち、保存的アミノ酸置換である）ことが予測される。保存的アミノ酸置換の具体例は当該技術分野で周知であり、種々の文献に記載されている（例えば、Bowieら，Science, 247：1306-1310 (1990)を参照）。
　本明細書におけるアミノ酸配列の類似性は、相同性計算アルゴリズムNCBI BLAST（National Center for Biotechnology Information Basic Local Alignment Search Tool）を用い、以下の条件（期待値=10；ギャップを許す；マトリクス=BLOSUM62；フィルタリング=OFF）にて計算することができる。アミノ酸配列の類似性を決定するための他のアルゴリズムとしては、例えば、Karlinら, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90： 5873-5877 (1993)に記載のアルゴリズム［該アルゴリズムはNBLAST及びXBLASTプログラム（version 2.0）に組み込まれている（Altschulら, Nucleic Acids Res., 25： 3389-3402 (1997)）］、Needlemanら, J. Mol. Biol., 48： 444-453 (1970)に記載のアルゴリズム［該アルゴリズムはGCGソフトウェアパッケージ中のGAPプログラムに組み込まれている］、Myers及びMiller, CABIOS, 4: 11-17 (1988)に記載のアルゴリズム［該アルゴリズムはCGC配列アラインメントソフトウェアパッケージの一部であるALIGNプログラム（version 2.0）に組み込まれている］、Pearsonら, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85: 2444-2448 (1988)に記載のアルゴリズム［該アルゴリズムはGCGソフトウェアパッケージ中のFASTAプログラムに組み込まれている］等が挙げられ、それらも同様に好ましく用いられ得る。
　より好ましくは、配列番号ｎで表されるアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列とは、配列番号ｎで表されるアミノ酸配列と約60％以上、好ましくは約70％以上、より好ましくは約80％以上、いっそう好ましくは約90％以上、特に好ましくは約95％以上、最も好ましくは約97％以上の同一性を有するアミノ酸配列である。
　本発明はまた、配列番号１～８記載のいずれかのアミノ酸配列又はこれらと実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードする核酸を提供する。
　好適な一具体例として、本発明の核酸は、配列番号９～１６のいずれかに記載の塩基配列からなる、ＣＤＲ３領域をコードする核酸を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードする核酸が挙げられる。また、配列番号９～１６記載の塩基配列において、コードするＣＤＲ３領域のアミノ酸配列を変更することがなく塩基が置換された、ＣＤＲ３領域をコードする核酸を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードする核酸もまた、同様に好適である。
　細胞障害性Ｔ細胞受容体のα鎖又はβ鎖は、可変領域（Ｖ領域：variable region）、相補性決定領域３（ＣＤＲ３：complementarity determining region 3）及び定常領域（Ｃ領域：constant region）から構成されている。本発明の核酸はＭＨＣクラスＩが提示する抗原ペプチドを認識するのに最も重要なＣＤＲ３の遺伝子に関係するものである。ＣＤＲ３はまた、ダイバーシティ（Diversity）領域とジョイニング（Joining）領域に分けることが出来る。一般的にはα鎖にはダイバーシティ（Diversity）領域が存在しない場合が多い。
　本発明によって提示されたＣＤＲ３領域の遺伝子を用いて公知のＶ領域及びＣ領域遺伝子と組合せることにより、腫瘍特異的なＴ細胞抗原受容体（T Cell Receptor：ＴＣＲ）遺伝子を構成することが出来る。本発明のＣＤＲ３領域遺伝子は特に表４記載のＶ領域遺伝子及びＣ領域遺伝子との組合せにすることが好ましい。
　本発明のＴＣＲを構成するＶ領域及びＣ領域の遺伝子配列は、以下のアクセッション番号でGenBankに登録されている。
GITR　α鎖Vα22-1：28661、Cα：28755、β鎖Vβ20-01：28567、Cβ2：28638
AL137255　α鎖Vα24.1：28659、Cα：28755、β鎖Vβ28-01：28559、Cβ１：28639
KK-LC-1　α鎖Vα13-1.02：28671、Cα：28755、β鎖Vβ12-3.01：28577、Cβ１：28639
RPL19　α鎖Vα27.3：28655、Cα：28755、β鎖Vβ7-9.01：28589、Cβ2：28638
　本明細書において「ＴＣＲ遺伝子」といった用語を用いる場合、そのＣＤＲ３領域を除く配列は特に指定しない限り、特定塩基配列で示される、ヒトＴＣＲ遺伝子（DNA）のものに限定されず、本発明の効果が維持できる限り、その同族体、変異体及び誘導体等をコードする遺伝子（DNA）のものも包含する趣旨で用いられる。具体的には、ヒトＴＣＲ遺伝子C領域や、そのマウスホモログ、ラットホモログ等が包含される。また「核酸」といった用語を用いる場合はDNA及びRNAを包含する。
　本発明においては、配列番号１～８記載のアミノ酸配列に関しては、受容体タンパクの立体構造に実質的に影響せず、MHCクラスＩが提示する抗原ペプチドを認識し、且つ細胞障害活性を発現させる能力が保持されるような少数のアミノ酸の欠失、付加、置換は許容される。従ってそれをコードする核酸もそれらアミノ酸の欠失、付加、置換に対応して考えられるべきである。
　従って本発明はまた、以下（ａ１）～（ａ１２）、（ｂ１）～（ｂ１２）のいずれかのタンパク質をコードする核酸を提供する。
（ａ１）配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ２）配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ３）配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ４）配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ５）配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ６）配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ７）配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ８）配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ９）配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ１０）配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
（ａ１１）配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号８で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ａ１２）配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ１）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ２）配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ３）配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ４）配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ５）配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ６）配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ７）配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ８）配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ９）配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
（ｂ１０）配列番号８で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
（ｂ１１）配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；及び
（ｂ１２）配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質。
　本発明の核酸は、好ましくは、コードするＴ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質が（ａ１）、（ａ２）、（ａ４）、（ａ５）、（ａ７）、（ａ８）、（ａ１０）又は（ａ１１）であり、コードするＴ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質が（ｂ１）、（ｂ２）、（ｂ４）、（ｂ５）、（ｂ７）、（ｂ８）、（ｂ１０）又は（ｂ１１）である核酸であり、より好ましくはコードするＴ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質が（ａ１）、（ａ４）、（ａ７）又は（ａ１０）であり、コードするＴ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質が（ｂ１）、（ｂ４）、（ｂ７）又は（ｂ１０）である核酸である。
　前記アミノ酸の欠失、置換又は付加の数は、好ましくは１又は２個であり、より好ましくは１個である。
　これらのＴ細胞抗原受容体のα鎖及びβ鎖タンパク質が、複合体を形成したときに癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するかどうかは、当該Ｔ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖を発現するCTLクローンと、KK-LC-1、RPL19、GITR及びAL137255 からなる群より選ばれる癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを提示する癌抗原提示細胞（例、表１に記載の肺癌細胞株）とを共培養し、癌抗原提示細胞の障害度を測定することによって、確認することができる。癌抗原提示細胞の障害度は、当該細胞の細胞溶解率（％）により表すことができる。癌細胞の細胞溶解率（％）は、顕微鏡下の測定などにより障害を受けた癌抗原提示細胞の数を直接計数して求めればよい。好ましくは、癌抗原提示細胞の細胞溶解率（％）は、例えば標的細胞を51Ｃｒなどの放射性同位体やその他の標識物質で予め標識しておき、CTLクローンと接触させた後に細胞外に放出された標識物質の量を測定することによって、障害を受けた癌抗原提示細胞の数を間接的に算出して求めることができる。障害を受けた細胞ではＤＮＡの断片化が認められるため、癌抗原提示細胞の核ＤＮＡを[3H]チミジンや[125I]ウリジン等の放射性同位体で予め標識しておき、その細胞外放出量を放射活性で測定したり、ＤＮＡ電気泳動によりＤＮＡの断片化の程度を測定したりすることによっても、障害を受けた癌抗原提示細胞の数を間接的に算出することができる。あるいは、トリパンブルー、ニグロシン等の色素が障害を受けた細胞に容易に取り込まれて排除されずに残ることを利用して、これらの色素を細胞に添加し、色素を取り込んだ細胞を、障害された細胞として簡単に見分けることもできる（色素排除試験）。本発明においては、癌の免疫療法に供するためには、51Ｃｒ遊離試験により２０％以上、好ましくは３０％以上の細胞溶解率を示す遺伝子セットを選択することが好ましい。
　以上に記載の方法等により特定した、癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識する好適なＴ細胞抗原受容体のα鎖及びβ鎖タンパク質をコードする核酸の組合せとして、本発明は、配列番号ｘ（ｘは１、３、５若しくは７である）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のα鎖をコードする核酸と、配列番号（ｘ＋１）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のβ鎖をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セットを提供する。
　本発明の遺伝子セットは、好ましくは、上記において（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）、（ｂｙ＋１）若しくは（ｂｙ＋２）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）、（ｂｚ）若しくは（ｂｚ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｗ）（ｗは３、６、９若しくは１２である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｗ－２）、（ｂｗ－１）若しくは（ｂｗ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セットであり、より好ましくは、（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）若しくは（ｂｙ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）若しくは（ｂｚ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セットであり、さらにより好ましくは、（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）若しくは（ｂｙ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セットであり、最も好ましくは、（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セットである。
　これら遺伝子セットに基づいて構成された本発明のＴ細胞抗原受容体を発現するCTLは、誘導に用いたそれぞれの抗原を提示するHLAに拘束されるため、本発明のCTLは、当該HLAの型に一致する患者に投与することが好ましい。
　例えば、本発明の遺伝子セットに基づいて構成された本発明のＴ細胞抗原受容体のうち、以下の配列番号の組合せに基づくもののHLA拘束性は、次の通りである。
（配列番号１及び２）　　　　　　Cw12
（配列番号３及び４）　　　　　　Cw7
（配列番号５及び６）　　　　　　B15
（配列番号７及び８）　　　　　　A31
（上記癌抗原を特異的に認識するＴ細胞抗原受容体の遺伝子の取得方法）
　本発明の核酸は、例えば、以下のようにして調製することができる。種々の癌患者組織又は末梢血から採取した細胞障害性Ｔ細胞（CTL）を限界希釈することにより、Ｔ細胞クローンを樹立する。上記癌抗原ペプチドを細胞表面に提示している癌細胞を用いて、Ｔ細胞クローンの細胞障害活性を確認して細胞障害活性を示したＴ細胞クローンを選別し、1×105個のＴ細胞クローンよりmRNAを抽出し、そのmRNAをcDNAに変換する。次いで全てのサブタイプのV領域について各々に特異的なプライマーとＣ領域の共通プライマーとを用いてPCRを行い、各クローンについてこのPCR増幅領域の塩基配列を解析することにより、本CTLクローンのα鎖及びβ鎖遺伝子の塩基配列が分かると同時にV領域のサブタイプを同定できる。その後、そのＴＣＲのV領域のオープン・リーディング・フレーム（ORF）の開始位置を同定し、センスプライマーを設計し、再度PCRでＴＣＲα鎖及びβ鎖遺伝子をクローニングし、プラスミドへ組み込むことで遺伝子のクローニングを完了する。クローン化したＴＣＲα鎖及びβ鎖遺伝子のDNA 配列を解析し、全長遺伝子が正しく採取できていることを確認する。
　かくして得られた全α鎖又はβ鎖遺伝子を公知のV鎖、D鎖、J鎖、C鎖遺伝子と比較し、それぞれのサブタイプを特定し、且つ本発明の特徴的配列を特定する。
　このように構成されたＴＣＲ遺伝子は、ＤＮＡとして適切なベクターに組み込まれて細胞障害性Ｔ細胞に導入されることも出来るし、またＲＮＡとしてそのまま細胞障害性Ｔ細胞に導入されることも出来る。
　更に本発明は、細胞障害性Ｔ細胞に感染能力のあるベクターに、発現調節遺伝子と機能可能に連結して前記遺伝子セットのα鎖及びβ鎖をコードする核酸を挿入した、それぞれ別個又は単一の、Ｔ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクターを提供する。
（α鎖及びβ鎖発現用ベクター）
　本発明のＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクターとしては、
1)本発明のＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖をコードする核酸を別々に挿入した、それぞれ別個のベクター；
2)本発明のＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖をコードする核酸を分離したまま組み込むか、若しくはリンカーで結合して組み込んだ単一のベクター；及び
3)本発明のＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖をコードする核酸を自己開裂ペプチド（self cleaving peptide） 2Aを用いて連結させて組み入れた単一のベクター、
が用いられる。
　本発明のベクターは、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質のみを発現するベクター、及びＴ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質のみを発現するベクターであってもよい。
　発現ベクターは、好ましくはα鎖又はβ鎖をコードするオリゴ（ポリ）ヌクレオチドの下流に転写終結シグナル、すなわちターミネーター領域を含む。さらに、形質転換細胞選択のための選択マーカー遺伝子（テトラサイクリン、アンピシリン、カナマイシン、ハイグロマイシン、ホスフィノスリシン等の薬剤に対する抵抗性を付与する遺伝子、栄養要求性変異を相補する遺伝子等）をさらに含んでいてもよい。
　発現ベクターとして使用される基本骨格のベクターとしては、例えば、プラスミド又はウイルスベクター（例、アデノウイルス、レトロウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス、シンドビスウイルス、センダイウイルス、レンチウイルス等のウイルス由来ベクター）が挙げられるが、これらに限定されない。
　発現調節遺伝子として用いられるプロモーターは、導入される細胞で機能し得るものであれば特に制限されず、例えば、SV40由来初期プロモーター、サイトメガロウイルスLTR、ラウス肉腫ウイルスLTR、MoMuLV由来LTR、アデノウイルス由来初期プロモーター等のウイルスプロモーター、並びにβ-アクチン遺伝子プロモーター、PGK遺伝子プロモーター、トランスフェリン遺伝子プロモーター等の哺乳動物の構成蛋白質遺伝子プロモーターなどが挙げられる。とくに好ましくは、サイトメガロウイルスLTR MoMuLV由来LTRのプロモーターである。
　具体的には、ベクターpMX-IP等を用いることが好ましい。これらのベクターには既にピューロマイシン（Puromycin）耐性遺伝子とアンピシリン（Ampicilin）耐性遺伝子の2種類の遺伝子が組み込まれており、遺伝子導入後に抗生剤選別にて発現遺伝子の純度を上げることが可能である。
　パッケージング細胞であるPLAT-Aにこのレトロウイルスベクターをリポフェクタミン（lipofectamine）2000等にて遺伝子導入することで、培養上清中にレトロウイルス液を産生することが出来、このウイルスを導入したい細胞に感染させることで、ＴＣＲαβ遺伝子導入細胞を得ることが出来る。
　本発明のベクターはまた、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質を発現する単一のベクターであってもよく、以下のような、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質の共発現ベクターであってもよい。
　本発明の共発現ベクターは、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質をコードする第１の核酸及びＴ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質をコードする第２の核酸を含み得る。本発明の共発現ベクターはまた、上記第１及び第２の核酸に機能可能に連結されたプロモーターを含み得る。プロモーターの機能可能な連結とは、プロモーターが、その制御下にある核酸によりコードされる因子の発現を可能とするように、該核酸に結合していることを意味する。
　より詳細には、本発明の共発現ベクターは、ポリシストロニックmRNA発現ベクターであり得る。ポリシストロニックmRNA発現ベクターは、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖及びβ鎖タンパク質のポリシストロニックmRNAの発現を可能とする、第１の核酸及び第２の核酸の連結物、並びに当該連結物に機能可能に連結されたプロモーターを含み得る。
　そのようなベクターとしては、pIRESベクター（Clontech）などが挙げられる。脳心筋炎ウイルス（ECMV）のIRES（mRNA内部のリボソーム結合サイト）を含む配列を用いて第１の核酸及び第２の核酸を連結することにより、1種類（一続き）のmRNAから2箇所のオープンリーディングフレーム（ORF）を翻訳することが可能となる。
　本発明の共発現ベクターはまた、非ポリシストロニックmRNA発現ベクターであり得る。非ポリシストロニックmRNA発現ベクターは、第１の核酸及び当該核酸に機能可能に連結された第１のプロモーター、並びに第２の核酸及び当該核酸に機能可能に連結された第２のプロモーターを含み得る。
　さらに、α鎖及びβ鎖遺伝子は、手足口病ウイルスの2A self-cleaving peptideを含む発現ベクターを用いて発現させることによって、細胞内で連結した形態で翻訳させた後、自己開裂を起こさせ、別個のα鎖及びβ鎖タンパク質の形態で複合体を形成させることもできる。
　上記の如くα鎖又はβ鎖遺伝子は各々単独で発現用ベクターに組み込むことも出来、両者を同時に組み込むこともできるが、両者を同時に組み込むことが好ましい。α鎖とβ鎖遺伝子の順序及びその連結方法については別途、種々検討されており（The Journal of Immunology, 2003, 171:3287-3295）、本発明においてもこれらを利用することも出来る。特に上記３）の自己開裂ペプチド（self cleaving peptide） 2Aを用いる方法が好ましい。
　本発明の発現ベクターは、例えば、医薬として、及び免疫細胞の活性化、並びに本発明の細胞の作製に有用である。
（形質転換されるべき細胞障害性Ｔ細胞の調製）
　例えばヒト末梢血由来、好ましくは治療対象患者の末梢血由来のＴ細胞を限界希釈法により、すなわちＴ細胞を段階的に希釈していき、1穴（well）に0.3個又は、１個のＴ細胞クローンが挿入されるように細胞希釈液を分配する。Ｔ細胞クローンにサイトカイン（IL-２及びIL-7）を加え、且つ１週間に１回腫瘍刺激を行い、目的とするＴ細胞クローンを増殖させる。増殖してきたＴ細胞について腫瘍障害試験を行い、目的とする腫瘍に対する細胞障害性Ｔ細胞クローンを選別する。
（細胞障害性Ｔ細胞の形質転換）
　細胞障害性Ｔ細胞に上記したα鎖及びβ鎖発現用ベクターを導入するには、当該技術分野で公知の手段を採用することが出来る。そのような手段としては、リポフェクション法、リン酸カルシウム沈殿法、電気穿孔法等が挙げられるが、限定されない。
　本発明のＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクターを導入する方法としては、
1)本発明の遺伝子セットのＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖をコードする核酸を別々に挿入した、別々のベクターそれぞれを、導入する方法；
2)本発明の遺伝子セットのＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖をコードする核酸を分離したまま組み込むか、若しくはリンカーで結合して組み込んだ単一のベクターを用いてＴＣＲα鎖とβ鎖を発現させる方法；及び
3)本発明の遺伝子セットのＴ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖をコードする核酸を自己開裂ペプチド（self cleaving peptide） 2Aを用いて連結させて組み入れた単一のベクターを導入する方法、
が用いられる。
　或いは、上記ベクターを利用して、又は利用することなく、Ｔ細胞抗原受容体をコードするmRNAを、電気穿孔法、リポフェクション法を用いて、遺伝子移入することも可能である。
　前記mRNAは、インビトロ転写用コンストラクトを用いて調製できる。該コンストラクトとしては、例えば、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖若しくはβ鎖タンパク質発現ベクター由来の鋳型コンストラクト、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖及びβ鎖タンパク質の共発現ベクター由来の鋳型コンストラクト又はＴ細胞抗原受容体のα鎖若しくはβ鎖タンパク質のクローニングベクター由来の鋳型コンストラクトが挙げられる。
　Ｔ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードするmRNAは、上記のコンストラクト及び市販のインビトロ転写用キット等を用いて、公知の方法により調製される。転写反応液に含有される鋳型コンストラクトは、環状であっても、直鎖状であってもよい。環状DNAの場合は、適切な位置の制限酵素部位を認識する制限酵素によって切断され、直鎖状にされてもよい。また、安定性の点から、5’のキャップ構造を有するように調製されることが望ましい。
　これら核酸（ポリヌクレオチド）を導入されるＴ細胞は特に限定されないが、αβ型Ｔ細胞やγδ型Ｔ細胞が挙げられ、特にγδ型Ｔ細胞が好ましい。
（γδ細胞障害性Ｔ細胞の調製）
　特にγδ細胞障害性Ｔ細胞を調製する場合は、上記末梢血リンパ球に対してビスフォスフォネート製剤（例、ゾレドロネート）を使用して刺激し、IL-2存在下に培養を行い、γδ陽性Ｔ細胞を選択的に増殖させる。γδ陽性Ｔ細胞の純度を高めるために、抗γδレセプター抗体を用いたフローサイトメトリーやマグネットビーズにより、ソーティングすることが好ましい。末梢血リンパ球に対して、ビスフォスフォネート製剤（例、ゾレドロネート）を使用して、γδ陽性Ｔ細胞を増殖させたリンパ球のγδ受容体及びαβ受容体の発現状況は、フローサイトメトリーにて解析することが出来る。
　ビスフォスフォネートとしては、アレンドロネート、イパンドロネート、イカンドロネート、エチドロネート、オルパドロネート、クロドロネート、ゾレドロネート、チルドロネード、ネリドロネート、パミドロネート、リセドロネート等が挙げられるが、ゾレドロネート及びパミドロネートが好ましい。
　本発明は、さらに共受容体遺伝子で形質転換された、αβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞を提供する。
（共受容体（coreceptor））
　本発明のα鎖及び／又はβ鎖遺伝子は細胞障害性細胞であれば種々の細胞に於いて利用できるが、Ｔ細胞、特にγδ細胞障害性Ｔ細胞に利用するのが好ましい。γδ細胞障害性Ｔ細胞にα鎖及びβ鎖遺伝子を導入すると、導入されたα鎖及びβ鎖がそのままセットになって細胞表面に発現され、γδ鎖との交絡も起こらないので抗原特異性において純化されたものとなる。
　ところが、γδ細胞障害性Ｔ細胞はCD4やCD8を発現していない場合が多い。そのような場合は細胞表面にα鎖／β鎖がセットで発現していても抗原認識特性が落ちるので、更にCD4及び／又はCD8を共受容体として遺伝子導入により発現させるのが好ましい。これにより抗原認識特性を高めることが出来る。このような共受容体の導入方法及びその効果も公知であり、当業者であれば適宜実施できる。
（形質転換細胞障害性Ｔ細胞の効果確認）
　誘導された細胞障害性Ｔ細胞は所望の抗原を特異的に認識する能力を有しており、例えば該抗原を有する細胞を、その細胞障害活性により特異的に破壊する。形質転換細胞障害性Ｔ細胞の抗原認識及び細胞障害性については、サイトカイン(例えば、インターフェロン、腫瘍壊死因子が挙げられるが、限定されない)産生能、51Cr遊離試験や蛍光物質等で標識した標的細胞に対する障害性、放射能の取り込みよって測定できる細胞障害性Ｔ細胞増殖の抗原特異的な増加等の測定を通して評価することが出来る。
　また、蛍光色素等によって標識された抗原ペプチドや複合体を用いることによって直接確認することもできる。この場合、例えば細胞障害性Ｔ細胞を、細胞障害性Ｔ細胞特異性抗体とカップリングさせた第１蛍光マーカーと接触させてから第２蛍光マーカーとカップリングさせた抗原ペプチド-MHC複合体を接触させ、そして二重標識細胞の存在をFACS（fluorescence-activated cell sorting）分析することにより評価することができる。
　さらに本発明は、上記本発明のＴ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質を、ヒト由来のγδ細胞障害性Ｔ細胞に導入して得られたαβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞を投与する工程を含む、癌の治療方法を提供する。
　本発明のαβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞を癌の治療方法に使用する場合は、常套手段に従って製剤化することができる。本発明のαβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞は低毒性であり、そのまま液剤として、又は適当な剤形の医薬組成物として、ヒトに対して投与（例、血管内投与、皮下投与等）することができる。本発明のαβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞の投与対象である動物は、標的とする腫瘍を発症し得る動物（哺乳動物等）であり、通常、ヒトである。
　以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら限定されるものではない。
実施例１　腫瘍特異的CTLの選択
　肺癌切除標本などから肺癌細胞株の樹立を継続して行い、肺癌細胞株29株を樹立した。これらの肺癌細胞株各々を用いて、同一患者のリンパ節から得られたリンパ球と共培養することにより腫瘍特異的CTLを誘導した。
　また、それぞれのCTLクローンが認識する抗原をcDNA発現クローニング法にて解析し、それらCTLが認識している腫瘍抗原が、KK-LC-1、RPL19、GITR又は、AL137255であることを確認した。
　一方、HLAのA型、B型、C型に特異的な抗体による阻害試験又はこれらの遺伝子を導入してCTLの反応性が発現するかどうか調べることにより、HLA拘束性を確認した。結果を表１に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
実施例２　ＴＣＲ遺伝子の採取法
　腫瘍抗原を認識するCTL クローンからメッセンジャーRNAを採取し、cDNAを作製した。ＴＣＲ全長(V領域-J領域-(D領域)-C領域)遺伝子を採取するためには、可変部位であるV領域のセンスプライマーを設定する必要がある。表２及び表３に示す全部のサブタイプのV領域にそれぞれに特異的なプライマーとC領域の共通プライマーとを用いてPCRを行い、この増幅反応によって生成したPCR増幅領域の塩基配列を解析し、本発明のCTLクローンのα鎖及びβ鎖遺伝子のV領域のサブタイプを同定した。その後、ＴＣＲV領域のORFの開始位置を同定し、センスプライマーを設計した。PCRでＴＣＲα鎖及びβ鎖遺伝子をクローニングし、プラスミドへ組み込むことで遺伝子のクローニングを完了した。クローン化したＴＣＲα及びβ鎖遺伝子のDNA配列を解析し、全長遺伝子が正しく採取できていることを確認した。可変領域、定常領域の部分をGenBank のデータから読み出し対応するサブタイプを決定した。結果を表４に示した。さらに、GITR、KK-LC-1に対するTCRのクローニングのためのプライマーを表５に示した。
　表４のDiversityとJoining欄の記載は本発明のDiversity領域とJoining領域の遺伝子配列が類似している公知サブタイプを参考のために記載したものであり、本発明の配列がそれらと同一であることを示すものではない。
　相補性決定領域3（complementary determining region 3：ＣＤＲ３)の配列は配列表に記載した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
実施例３　ＴＣＲ遺伝子の導入ベクターの構成
　本発明ではＴＣＲα鎖及びβ鎖遺伝子を導入する方法としては、１）それぞれを別のベクターに組み込み、それぞれを別々に導入する方法、及び２）自己開裂ペプチド（self cleaving peptide） 2Aを用いてＴＣＲαβ遺伝子を一つのベクターに組み入れ、導入する方法を用いた。
　１）α鎖遺伝子はベクターpcDNA3.1/V5-His-TOPOに、TOPO TAクローニングキットを用いてケミカルライゲーション（chemical ligation）法で組み込んだ。β鎖遺伝子はベクターも同様にpcDNA3.1/V5-His-TOPOに、TOPO TAクローニングキットを用いてケミカルライゲーション法で組み込んだ。
　本方法はGITR及びKK-LC-1 CTLのα鎖及びβ鎖遺伝子に適用した。
　２）α鎖遺伝子とβ鎖遺伝子をα鎖遺伝子を上流側にしてペプチド２Ａをコードする遺伝子で結合し、pMx-IPベクターに組み込んだ。すなわち、ＴＣＲα鎖を組み込んだベクター（pcDNA3.1/V5-His-TOPO）のマルチクローニングサイトをXbalとApaIの制限酵素で切断し、脱リン酸化した。その後にアダプタープライマーのXbal、ApaIを組み込んだ2A遺伝子を、XbalとApaIの制限酵素で切断したインサートを作成し、ＴＣＲα鎖を組み込んだベクターとライゲーション（ligation）した。ついで、そのα鎖遺伝子と２A遺伝子を組み込んだベクター（pcDNA3.1/V5-His-TOPO）のマルチクローニングサイトの2ヶ所のApaIサイトをApaIで切断した。ＴＣＲβ鎖遺伝子を組み込んだベクター（pcDNA3.1/V5-His-TOPO）をApaIで切断し、両端がApaIサイトで結合できるようにしたＴＣＲβ鎖遺伝子を作成し、それをインサートとして、α鎖遺伝子と２A遺伝子を組み込んだベクターとライゲーションした。さらにBamHIとXhoIの制限酵素でＴＣＲα鎖遺伝子-2A遺伝子-ＴＣＲβ鎖遺伝子のセットを切り出し、pMx-IPベクターにBamHIとXhoIを利用してライゲーションした。
　本方法はKK-LC-1 CTLのα鎖及びβ鎖遺伝子に適用した。
実施例４　γδＴ細胞を用いたＴＣＲ遺伝子導入細胞のエフェクター解析
　ａ）γδＴ細胞の調製
　末梢血リンパ球に対して、培養開始後１日目（day1）にビスフォスフォネート製剤（1μMゾレドロネート；zoledronate、ノバルティスファーマ株式会社）を使用して刺激し、2（day2）、6（day6）、10（day10）日目に100U/mL IL-2を添加し、その存在下に培養を行い、γδＴ細胞を選択的に増殖させた（図１）。0日目（day0）ではCD3及びＴＣＲγδdouble positiveで染まる細胞集団は2.3%であるのに対して、ゾレドロネートを添加すると、徐々に増加し12日目（day12）には95%に増加した。増殖曲線において示すように、8日目（Day8）までは急速に増殖し15日目（Day15）にはピークに達し、その後は徐々に減少した（図１）。
　γδＴ細胞の純度を高めるために、抗γδレセプター抗体（日本ベクトンディッキンソン株式会社）を用いたフローサイトメトリーにより、ソーティングした。末梢血リンパ球に対してビスフォスフォネート製剤（ゾレドロネート）を使用して、γδＴ細胞を増殖させたリンパ球のγδ受容体及びαβ受容体の発現状況をフローサイトメトリーにて解析した（図２）。
　図２よりαβＴ細胞が実質的に存在しないことが確認できる。図２において、着色のカーブは非特異的抗体を用いて実施したものであり、非着色カーブは特異的抗体を用いて実施したものである。x軸は蛍光強度を示し、y軸は細胞数を示す。
　ｂ）ＴＣＲα鎖β鎖遺伝子の導入
　上記で調製したγδＴ細胞に、上記実施例３で作製したＴＣＲ遺伝子導入用ベクターを用いて、ＴＣＲα鎖及びβ鎖遺伝子を導入した。導入の実験条件はパッケージング細胞であるPLAT-Aにリポフェクタミン（lipofectamine）2000を用いてＴＣＲαβ遺伝子を導入し、24時間後から48時間後にウイルス液が産生された培養上清を回収し24時間8000回転にてウイルス液を濃縮した。濃縮したウイルス液をレトロネクチンプレートにいれ4時間から6時間37℃にて静置した後、リン酸塩緩衝食塩水（Phosphate-Buffered Salines：PBS)で洗浄した後に導入するγδＴ細胞を1x106個/1plateにてレトロネクチンプレートにいれ、ウイルスを感染させＴＣＲαβ遺伝子を組み込んだ。
　ｃ）細胞障害特性の検査
　抗原認識及び細胞障害性について、51Cr遊離試験を用いて細胞障害活性を評価した。
　また標的細胞を用いて、腫瘍抗原KK-LC-1に特異的認識を示すαβＴ細胞抗原受容体遺伝子を導入したγδＴ細胞の細胞障害活性を評価した図を示す。KK-LC-1抗原を発現している肺腺癌株F1121L、自己EBウイルストランスフォームB細胞（EBV感染B細胞）にKK-LC-1抗原ペプチドを添加した系と添加しない系、白血病細胞株K562の４種を標的細胞として使用した。結果を図３と図４に示した。
　図３はＴＣＲ遺伝子をクローニングすることに用いたF1121CTL H1/10の細胞障害活性を示す。肺腺癌株F1121L、EBV感染Ｂ細胞にKK-LC-1抗原ペプチドを添加したもの、EBV感染B細胞そのもの（抗原ペプチド無添加）及び白血病細胞株K562を溶解させる能力を調べた。ｘ軸は標的と効果細胞の比を表し、ｙ軸は４時間後の細胞溶解のパーセントを表す。F1121CTL H1/10は、F1121L、KK-LC-1抗原ペプチドを添加したEBV感染B細胞をよく溶解しており、抗原特異的に細胞障害活性を示した。
　図４は腫瘍抗原KK-LC-1に特異的認識を示すαβ受容体遺伝子を導入したγδＴ細胞の細胞障害活性を上記と同様にして評価したものである。対象の腫瘍細胞は良く溶解しているし、ペプチド添加のＥＢＶ感染Ｂ細胞も溶解している。図３に示す元来のCTLとほぼ同等の抗原特異的細胞障害活性を示すことが明らかである。
　これらの結果は本発明のαβＴ細胞抗原受容体遺伝子が抗原認識に優れていることを示している。
実施例５　γδＴ細胞を用いたＴＣＲ遺伝子導入細胞のin vivoでの治療効果
　KK-LC-1に特異的認識を示すTCRαβ遺伝子及びCD8遺伝子を導入したγδT細胞(TCRαβ-CD8-γδT細胞)が、in vivoにおいても抗腫瘍効果を示す事ができるか、SCIDマウスモデルにおいて治療実験を施行した。すなわち、KK-LC-1に対するTCRの認識に必要なHLA-B15遺伝子を導入したB901L(B901L-HLA-B15)の肺癌細胞株と、HLA-B15遺伝子を保持しないB901L-parentalの肺癌細胞株を標的細胞として使用した。B901L-HLA-B15肺癌細胞株とB901L-parental肺癌細胞株を、一尾のSCIDマウスの左右の側腹部皮下に2x105個ずつ別個に注射し、同時に尾静脈から、TCRαβ-CD8-γδT細胞を1x106個静注し、さらにTCRαβ-CD8-γδT細胞を2週おき尾静脈から静注したところ、著明な腫瘍増殖の抑制を認めた（図５）。マウスは合計6匹（12病変）使用した。
　治療終了後（８週後に）SCIDマウスを犠牲死させ、腫瘍の増殖が抑制されなかったB901L-parental移植腫瘍組織と抑制されたB901L-HLA-B15移植腫瘍組織を摘出した。摘出した腫瘍組織を、抗CD3抗体を用いて免疫染色した。TCRαβ-CD8-γδT細胞に感受性のないB901L-parentalでは、充実性腫瘍の周囲のみにTCRαβ-CD8-γδT細胞を認めた（図６）。一方、増殖抑制されたB901L-HLA-B15移植腫瘍組織では内部が壊死しており、腫瘍内にも多数のTCRαβ-CD8-γδT細胞の浸潤を認めた。さらに、それぞれの腫瘍内部からmRNAを抽出し、TCRαβ-CD8-γδT細胞のもつTCRVα13遺伝子の存在をRT-PCRにて確認したところ、B901L-HLA-B15では移植腫瘍組織にTCRVα13を確認できたが、B901L-parental移植腫瘍組織では検出できなかった（図６）。上記結果より、本発明のTCRαβ遺伝子及びCD8遺伝子を導入したγδT細胞は、癌の養子免疫療法において有用であることが示された。
　本発明は、癌、特に肺癌の治療に有用である。本発明によれば、（手術療法等の）根治性のある治療法の適用は極めて限られている肺癌治療において、副作用が少なく、効果の高い免疫療法を実施するための手段を提供できる。また本発明により、当該肺癌の免疫療法に用いる、患者由来の細胞障害性Ｔ細胞を量産、且つ継続的に提供でき、そのことによって治療効果を飛躍的に向上させることができる。
　本出願は、日本で出願された特願２００９－０１５８１７（出願日：２００９年１月２７日）を基礎としており、それらの内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (18)

  1. 　配列番号１～８のいずれかに記載のアミノ酸配列又は該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含み、KK-LC-1、RPL19、GITR及びAL137255からなる群より選ばれる癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するＴ細胞抗原受容体のα鎖又はβ鎖タンパク質をコードする核酸。
  2. 　以下（ａ１）～（ａ１２）、（ｂ１）～（ｂ１２）のいずれかのタンパク質をコードする核酸：
    （ａ１）配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
    （ａ２）配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ３）配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ４）配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
    （ａ５）配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ６）配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ７）配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
    （ａ８）配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ９）配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ１０）配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質；
    （ａ１１）配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号８で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ａ１２）配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質であって、配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ１）配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
    （ｂ２）配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ３）配列番号２で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号１で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにGITR癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ４）配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
    （ｂ５）配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ６）配列番号４で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号３で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにAL137255癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ７）配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
    （ｂ８）配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ９）配列番号６で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号５で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにKK-LC-1癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；
    （ｂ１０）配列番号８で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質；
    （ｂ１１）配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質；及び
    （ｂ１２）配列番号８で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質であって、配列番号７で表されるアミノ酸配列において１～３個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含む、Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質と複合体を形成したときにRPL19癌抗原に由来する癌抗原ペプチドを認識するタンパク質。
  3. 　Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質が（ａ１）、（ａ２）、（ａ４）、（ａ５）、（ａ７）、（ａ８）、（ａ１０）又は（ａ１１）であり、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質が（ｂ１）、（ｂ２）、（ｂ４）、（ｂ５）、（ｂ７）、（ｂ８）、（ｂ１０）又は（ｂ１１）である請求項２記載の核酸。
  4. 　Ｔ細胞抗原受容体のα鎖タンパク質が（ａ１）、（ａ４）、（ａ７）又は（ａ１０）であり、Ｔ細胞抗原受容体のβ鎖タンパク質が（ｂ１）、（ｂ４）、（ｂ７）又は（ｂ１０）である請求項２記載の核酸。
  5. 　請求項１において、配列番号ｘ（ｘは１、３、５若しくは７である）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のα鎖をコードする核酸と、配列番号（ｘ＋１）に記載のアミノ酸配列若しくは該アミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲ３領域を含むＴ細胞抗原受容体のβ鎖をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セット。
  6. 　請求項２において、（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）、（ｂｙ＋１）若しくは（ｂｙ＋２）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）、（ｂｚ）若しくは（ｂｚ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｗ）（ｗは３、６、９若しくは１２である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｗ－２）、（ｂｗ－１）若しくは（ｂｗ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる遺伝子セット。
  7. 　（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）若しくは（ｂｙ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）若しくは（ｂｚ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる、請求項６記載の遺伝子セット。
  8. 　（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）若しくは（ｂｙ＋１）のタンパク質をコードする核酸との組合せ、及び（ａｚ）（ｚは２、５、８若しくは１１である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｚ－１）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる、請求項６記載の遺伝子セット。
  9. 　（ａｙ）（ｙは１、４、７若しくは１０である）のタンパク質をコードする核酸と（ｂｙ）のタンパク質をコードする核酸との組合せからなる群より選ばれる、請求項６記載の遺伝子セット。
  10. 　請求項１～４のいずれか１項に記載の核酸を含む発現ベクター。
  11. 　細胞障害性Ｔ細胞に感染能力のあるベクターに、発現調節遺伝子と機能可能に連結した請求項５～９のいずれか１項に記載の遺伝子セットのα鎖及びβ鎖をコードする核酸を挿入してなる、それぞれ別個又は単一の、Ｔ細胞抗原受容体α鎖及びβ鎖発現用ベクター。
  12. 　上記ベクターがウイルス由来である、請求項１０又は１１記載の発現ベクター。
  13. 　請求項１０～１２のいずれか１項に記載の発現ベクターで形質転換された細胞障害性Ｔ細胞。
  14. 　細胞障害性Ｔ細胞がγδ細胞障害性Ｔ細胞である、請求項１３記載の細胞障害性Ｔ細胞。
  15. 　さらに共受容体遺伝子で形質転換された、請求項１４記載の細胞障害性Ｔ細胞。
  16. 　共受容体がＣＤ４及び／又はＣＤ８である、請求項１５記載の細胞障害性Ｔ細胞。
  17. 　ヒト由来のγδ細胞障害性Ｔ細胞に請求項５～９のいずれか１項に記載の遺伝子セットを導入して得られたαβ鎖発現γδ細胞障害性Ｔ細胞を投与する工程を含む、癌の治療方法。
  18. 　γδ細胞障害性Ｔ細胞が投与されるべき患者由来のものである、請求項１７記載の癌の治療方法。
     
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