WO2010086935A1 - 蛍光分析装置、及び蛍光分析方法 - Google Patents

蛍光分析装置、及び蛍光分析方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2010086935A1
WO2010086935A1 PCT/JP2009/006456 JP2009006456W WO2010086935A1 WO 2010086935 A1 WO2010086935 A1 WO 2010086935A1 JP 2009006456 W JP2009006456 W JP 2009006456W WO 2010086935 A1 WO2010086935 A1 WO 2010086935A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
fluorescence
substrate
lattice point
analyzer according
lattice
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2009/006456
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
高橋智
曽根原剛志
坂井友幸
芳賀孝信
加藤宏一
隈崎修孝
松井拓也
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hitachi High Tech Corp
Original Assignee
Hitachi High Technologies Corp
Hitachi High Tech Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hitachi High Technologies Corp, Hitachi High Tech Corp filed Critical Hitachi High Technologies Corp
Priority to US13/147,147 priority Critical patent/US8389959B2/en
Publication of WO2010086935A1 publication Critical patent/WO2010086935A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/645—Specially adapted constructive features of fluorimeters
    • G01N21/648—Specially adapted constructive features of fluorimeters using evanescent coupling or surface plasmon coupling for the excitation of fluorescence
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01J—MEASUREMENT OF INTENSITY, VELOCITY, SPECTRAL CONTENT, POLARISATION, PHASE OR PULSE CHARACTERISTICS OF INFRARED, VISIBLE OR ULTRAVIOLET LIGHT; COLORIMETRY; RADIATION PYROMETRY
    • G01J3/00—Spectrometry; Spectrophotometry; Monochromators; Measuring colours
    • G01J3/02—Details
    • G01J3/10—Arrangements of light sources specially adapted for spectrometry or colorimetry
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01J—MEASUREMENT OF INTENSITY, VELOCITY, SPECTRAL CONTENT, POLARISATION, PHASE OR PULSE CHARACTERISTICS OF INFRARED, VISIBLE OR ULTRAVIOLET LIGHT; COLORIMETRY; RADIATION PYROMETRY
    • G01J3/00—Spectrometry; Spectrophotometry; Monochromators; Measuring colours
    • G01J3/12—Generating the spectrum; Monochromators
    • G01J3/14—Generating the spectrum; Monochromators using refracting elements, e.g. prisms
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01J—MEASUREMENT OF INTENSITY, VELOCITY, SPECTRAL CONTENT, POLARISATION, PHASE OR PULSE CHARACTERISTICS OF INFRARED, VISIBLE OR ULTRAVIOLET LIGHT; COLORIMETRY; RADIATION PYROMETRY
    • G01J3/00—Spectrometry; Spectrophotometry; Monochromators; Measuring colours
    • G01J3/28—Investigating the spectrum
    • G01J3/30—Measuring the intensity of spectral lines directly on the spectrum itself
    • G01J3/36—Investigating two or more bands of a spectrum by separate detectors
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01J—MEASUREMENT OF INTENSITY, VELOCITY, SPECTRAL CONTENT, POLARISATION, PHASE OR PULSE CHARACTERISTICS OF INFRARED, VISIBLE OR ULTRAVIOLET LIGHT; COLORIMETRY; RADIATION PYROMETRY
    • G01J3/00—Spectrometry; Spectrophotometry; Monochromators; Measuring colours
    • G01J3/28—Investigating the spectrum
    • G01J3/44—Raman spectrometry; Scattering spectrometry ; Fluorescence spectrometry
    • G01J3/4406—Fluorescence spectrometry
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/645—Specially adapted constructive features of fluorimeters
    • G01N21/6452—Individual samples arranged in a regular 2D-array, e.g. multiwell plates

Definitions

  • the present invention relates to an optical analyzer, for example, an apparatus for optical analysis by irradiating a biological material such as DNA, RNA, or protein with light.
  • Patent Document 1 discloses that an evanescent wave is generated on a substrate surface by irradiating a transparent substrate with excitation light output from an excitation light source and totally reflecting the excitation light inside the substrate.
  • An apparatus for detecting evanescent wave scattered light is described.
  • the apparatus described in Patent Document 1 does not split scattered light.
  • Patent Document 2 describes an apparatus that separates fluorescence and scattered light from a sample component excited by an evanescent wave.
  • the sample component is not fixed to the flow path boundary surface.
  • unmodified single-stranded DNA is first immobilized on a substrate, a reaction solution containing a fluorescent modified base modified with a different fluorophore for each base type is introduced, and a base complementary to the single-stranded DNA is introduced. If the fluorescence from the molecular fixation position is dispersed while binding, the sequence of the fixed DNA can be decoded.
  • Non-Patent Document 2 it has been proposed to fix DNA or the like on a substrate and determine its base sequence.
  • a sample DNA fragment to be analyzed at random is captured on the substrate surface one molecule at a time, extended by approximately one base, and the result is detected by fluorescence measurement to determine the base sequence.
  • four dNTP derivatives (MdNTPs) having a label that can be incorporated into a template DNA as a substrate for DNA polymerase to stop the DNA chain elongation reaction due to the presence of a protecting group and that can be detected.
  • the step of using the DNA polymerase reaction, the step of detecting the incorporated MdNTP by fluorescence or the like, and the step of returning the MdNTP to a state in which it can be extended are defined as one cycle.
  • the base sequence of the sample DNA is determined. decide.
  • DNA fragments can be sequenced one molecule at a time, a large number of fragments can be analyzed simultaneously, and the analysis throughput can be increased.
  • there is a possibility that the base sequence can be determined for each single DNA molecule so there is a possibility that the purification or amplification of sample DNA by cloning, PCR, etc., which was a problem of the prior art, may be unnecessary.
  • Non-Patent Document 3 and Patent Document 3 the sensitivity of fluorescence detection is further improved by the nano-aperture evanescent irradiation detection method that can further reduce the excitation light irradiation volume than the total reflection evanescent irradiation detection method.
  • Two glass substrates, a glass substrate A and a glass substrate B are arranged in parallel, and a planar aluminum with a film thickness of about 100 nm having a nano-opening with a diameter of 50 nm on the surface of the glass substrate A facing the glass substrate B.
  • Laminate thin films The aluminum thin film needs to have a light shielding performance.
  • a reaction vessel is formed between two glass substrates, and a solution layer is formed between the two glass substrates by filling the reaction vessel with a solution.
  • the reaction tank has an inlet and an outlet for the solution. By injecting the solution from the inlet and discharging the solution from the outlet, the solution can flow in a direction parallel to the glass substrate and the aluminum thin film. Thereby, it is possible to exchange the solution of a solution layer into arbitrary compositions.
  • excitation light with a wavelength of 488 nm oscillated from an Ar ion laser is squeezed with an objective lens perpendicularly to the glass substrate A from the opposite direction to the glass substrate B, it is excited to the solution layer near the bottom plane inside the nano aperture.
  • a light evanescent field is formed, and excitation light does not propagate further into the solution layer.
  • the fluorescence emission is detected by forming an image on a two-dimensional CCD using the objective lens.
  • the excitation light intensity is exponentially attenuated as the distance from the nano-aperture bottom plane increases, and the excitation light intensity becomes 1/10 at a distance of about 30 nm from the nano-aperture bottom plane.
  • the excitation light irradiation width in the direction parallel to the glass substrate is limited to the opening diameter, that is, 50 nm, so that the excitation light irradiation volume is further reduced. For this reason, it becomes possible to drastically reduce background light including fluorescence emission of free phosphor and Raman scattering of water. As a result, it becomes possible to selectively detect only the fluorescent substance labeled with the target biomolecule in the presence of a higher concentration of free fluorescent substance, and it is possible to realize extremely sensitive fluorescence detection.
  • the above fluorescence detection method can be applied to the measurement of dNTP uptake by DNA molecule elongation reaction.
  • the plane where the evanescent field is started is defined as the evanescent field boundary plane. Can also be called.
  • an apparatus for analyzing biomolecules by imaging fluorescence of biomolecules immobilized on the surface of the substrate different types of biomolecules are generally immobilized for each fixed region (spot) on the substrate, Fluorescence from each spot is detected separately by imaging.
  • spot In order to analyze a large number of biomolecules in as short a time as possible and reduce the amount of reagent consumed, it is preferable to arrange the spots on the substrate as densely as possible within the optically decomposable range. . In order to reduce the reagent consumption per spot, the smaller the number of biomolecules immobilized in one spot, the more convenient, and one molecule is ideal.
  • the fluorescence detection method has a sensitivity of detecting even one molecule, but in order to obtain a good S / N by spectroscopic detection of fluorescence from a small number of molecules, Spectral imaging methods with low loss are preferred. Accordingly, a dispersion spectral imaging method using a dispersion element such as a prism or a diffraction grating, or a method of obtaining images with a plurality of image sensors by performing spectroscopy with a dichroic mirror (dichroic / multisensor spectral imaging method) is preferable.
  • the plurality of spots are preferably arranged on the substrate as densely as possible within an optically resolvable range.
  • the number of types of fluorescent labels to be used is the number of image sensors. This increases the cost of the detection device.
  • the fluorescent image is divided by a dichroic mirror or the like, the S / N is not necessarily increased in many cases.
  • Dispersive spectroscopic imaging has the advantage that detection can be performed with a minimum (for example, one) image sensor.
  • a fluorescent image in which the fluorescence emitted from the spots is wavelength-dispersed is close. Will overlap with the fluorescent image of another spot. In order to improve the fluorescence detection accuracy, it is necessary to increase the interval between spots where biomolecules are immobilized on a substrate, and it is difficult to achieve high density.
  • An object of the present invention relates to a method for efficiently detecting an image with a small number of pixels.
  • the present invention relates to efficient detection with a small number of pixels when a fluorescent image from a molecule of a DNA fragment captured on a substrate is detected with a two-dimensional sensor.
  • the present invention relates to providing an inexpensive and / or easy-to-operate detection method when a fluorescent image from a DNA fragment molecule immobilized on a substrate and captured is detected with a two-dimensional sensor.
  • the present invention uses a substrate in which a plurality of regions to which bio-related molecules can be fixed is provided at lattice point positions of a lattice structure, and a fluorescence image emitted from a certain lattice point is in a direction other than the direction toward the adjacent shortest lattice point.
  • the present invention relates to fluorescence analysis in which the wavelength dispersion is performed.
  • the number of pixels of a two-dimensional sensor necessary for fluorescence analysis of a region where a biological molecule can be fixed is less than 1/50 times from the conventional number of 1/100 times without impairing measurement accuracy. And can be reduced. Thereby, the throughput improvement, price reduction, and / or operability improvement of the analyzer can be achieved.
  • FIG. 1 is a configuration diagram of a DNA testing apparatus using the fluorescence analysis method in Example 1.
  • FIG. 2 is a structural diagram of a substrate in Example 1.
  • FIG. 3 is a configuration diagram of a DNA testing apparatus in Example 2.
  • 12 is a conceptual diagram of a lattice structure of a substrate and a dispersion direction in Example 3.
  • FIG. 10 is a structural diagram of a joint portion with a prism in Embodiment 5.
  • FIG. 10 is a structural diagram of a joint portion with a prism in Embodiment 6.
  • FIG. 10 is a configuration diagram of a prism holder in Embodiment 6.
  • FIG. 10 is a structural diagram of a substrate in Example 7.
  • a plurality of measurement objects are precisely arranged, and each measurement object is imaged on a specific pixel of a detector having a plurality of detection pixels.
  • the substrate on which the oligonucleotide or the like is fixed is irradiated with excitation light for fluorescence measurement, the resulting fluorescence is collected, the collected light is dispersed, the light is imaged on the sensor, and the two-dimensional sensor is formed.
  • the substrate is provided with a plurality of regions to which oligonucleotides and the like are fixed, and these are arranged on the substrate like lattice points of a lattice structure, and a fluorescence image emitted from a specific lattice point is generated. Then, wavelength dispersion is performed in a direction other than the direction toward the shortest adjacent lattice point and the spectrum is dispersed, and the intensity for each of the dispersed wavelengths is measured.
  • the fluorescence image emitted from a specific lattice point is an angle from a specific lattice point to an adjacent shortest lattice point +10 degrees to +170 degrees, or an angle from an adjacent shortest lattice point is ⁇ 10 degrees to
  • the direction of -170 degrees is taken as the chromatic dispersion direction, and the intensity for each spectral wavelength is measured.
  • the fluorescence image emitted from a specific lattice point is measured by measuring the intensity for each spectral wavelength, with the wavelength dispersion direction being the angle from the specific lattice point adjacent to the second or subsequent arbitrary lattice point. To do.
  • the lattice structure includes shapes such as a two-dimensional rectangular lattice and a triangular lattice.
  • the structure is a metal structure having a size smaller than the wavelength of excitation light, such as a fine particle of metal such as gold, chromium, silver, or aluminum, or a structure having a fine protrusion in part, or a minute aperture.
  • a metal structure the biomolecule is immobilized on the surface of the metal structure.
  • the spatial position of the structure can be detected by detecting the photoluminescence and light scattering of the structure, and can be used as a position reference marker.
  • the biomolecule In the case of a metal thin film having a minute opening, the biomolecule is fixed in the opening. In this case, the spatial position of the structure can be detected by detecting the Raman scattered light of the sample liquid around the biomolecule and the photoluminescence and light scattering of the metal structure in the vicinity of the biomolecule. Can be used as
  • biomolecules such as oligonucleotides are fixed at all lattice point positions, but may be fixed at at least two or more lattice point positions.
  • the interval between the shortest adjacent lattice points with respect to a specific lattice point is 100 nm to 10000 nm, and more preferably 500 nm to 2000 nm.
  • the size of the region (spot, lattice point region) where the oligonucleotide is fixed is 100 nm or less. At least 1/3 or less of the interval between the shortest adjacent lattice points is preferable.
  • the surface of the substrate is more effective to apply a film-like substance having an optical light shielding function to a reaction region on the substrate excluding a region where a plurality of oligonucleotides are immobilized.
  • a metal film or the like is formed by vapor deposition.
  • the substrate has at least two positioning markers.
  • the spectroscopic unit is configured by at least one dispersive element.
  • a dispersive element a prism such as a wedge prism or a diffraction grating is used.
  • the processing unit calculates a difference between the first image detected when the biomolecule is not emitting light and the second image detected when the biomolecule emits light. Then, by comparing this difference with the first image, the type of the biomolecule emitted is discriminated.
  • the senor detects light in a state where light emitted from the biomolecule is superimposed on light emitted from the structure. Then, the processing unit may generate position information by using the light in the superimposed state as background light. In addition, the processing unit determines the type of biomolecule based on the relative position of the brighter part of the light in the superimposed state.
  • the fluorescence analyzer is provided with a substrate on which biological molecules are fixed, irradiates the substrate with light for fluorescence measurement, disperses the generated fluorescence, and measures with a two-dimensional sensor.
  • a plurality of regions to which biological molecules can be fixed are provided at the lattice point positions of the lattice structure, and the wavelength dispersion of the fluorescent image emitted from a certain lattice point in a direction other than the direction toward the shortest adjacent lattice point Is disclosed.
  • a fluorescence analysis method for irradiating a fluorescence measurement light onto a substrate on which a biological molecule is fixed, spectrally analyzing the generated fluorescence, and measuring the fluorescence with a two-dimensional sensor.
  • a method in which a plurality of regions to which can be fixed is provided at a lattice point position of a lattice structure, and a fluorescent image emitted from a certain lattice point is wavelength-dispersed in a direction other than the direction toward the shortest adjacent lattice point.
  • the direction of the fluorescence image emitted from a certain lattice point is in the range of + 10 ° to + 170 ° or ⁇ 10 ° to ⁇ 170 ° with respect to the angle from the lattice point toward the nearest adjacent lattice point. Discloses wavelength dispersion.
  • a fluorescent image emitted from a certain lattice point is wavelength-dispersed in a direction toward an arbitrary lattice point whose distance from the lattice point is the second or later.
  • the embodiment discloses that the lattice structure is a two-dimensional rectangular lattice structure.
  • the embodiment discloses that the lattice structure is a triangular lattice structure.
  • a minute metal structure is provided at a lattice point position of the lattice structure.
  • the fine structure of the metal is a fine particle of gold, chromium, silver, or aluminum.
  • a metal fine structure is a structure having a fine protrusion in part.
  • the fine metal structure is a metal structure having a size equal to or smaller than the wavelength of the excitation light.
  • a substrate having a minute opening at a lattice point position of the lattice structure and made of a thin film made of an optically opaque material is used.
  • biological molecules are immobilized on the surface of the metal structure or the bottom of the opening.
  • the prism is optically bonded to the substrate, or a part of the substrate has a prism shape, and the fluorescence measurement light is irradiated through the prism so as to be totally reflected on the surface of the substrate. , Forming an evanescent field.
  • the substrate and the prism are optically bonded by sandwiching an optically transparent and elastic material between the substrate and the prism so that the fluorescence measurement light is totally reflected on the surface of the substrate. , Forming an evanescent field.
  • the interval between lattice points is 100 nm to 10000 nm.
  • the size of the region where the bio-related molecule can be immobilized is 100 nm or less.
  • the fluorescence is dispersed in the range of 500 nm to 700 nm.
  • the fluorescence is divided into at least two wavelength bands, and each is individually wavelength-dispersed.
  • fluorescence is divided into two wavelength bands, each of which is individually wavelength-dispersed within a range of a maximum of 100 nm, and each is detected by two two-dimensional sensors.
  • sample DNA fragments to be analyzed on the substrate surface are captured one molecule at a time interval, extended approximately one base at a time, and the incorporated fluorescent label is detected for each molecule to determine the base sequence.
  • the apparatus and method will be described. Specifically, DNA is obtained using four types of dNTP derivatives that are incorporated into a template DNA as a substrate for DNA polymerase and can stop the DNA chain elongation reaction due to the presence of a protecting group and have a label that can be detected.
  • the step of performing the polymerase reaction, then the step of detecting the incorporated dNTP derivative by fluorescence, and the step of returning the dNTP derivative to an extendable state are defined as one cycle, and the base sequence of the sample DNA is determined by repeating this cycle. To do. Since this operation is based on the single molecule fluorescence detection method, the measurement is performed in a clean room-like environment through a HEPA filter.
  • FIG. 1 is a configuration diagram of a DNA testing apparatus using the fluorescence analysis method in this embodiment.
  • the apparatus has an apparatus configuration similar to a microscope, and the elongation state of DNA molecules captured on the substrate 8 is measured by fluorescence detection.
  • the substrate 8 has a structure as shown in FIG.
  • the substrate 8 is at least partially made of a transparent material such as synthetic quartz.
  • the substrate 8 has a reaction region 8a, which is made of a transparent material, and a reagent or the like contacts this portion.
  • a plurality of regions 8ij to which DNA is immobilized are formed in the reaction region 8a.
  • Each size of the region 8ij is 100 nm or less in diameter.
  • This region is subjected to a surface treatment for capturing DNA.
  • the surface treatment for example, streptavidin is bound and DNA is captured by reacting with a biotinylated DNA fragment.
  • poly T oligonucleotide can be immobilized, one end of the DNA fragment can be poly-A-treated, and DNA can be captured by a hybrid reaction.
  • DNA fragment concentration it is possible to allow only a single molecule of DNA to enter each region 8ij. Note that by making the region 8ij smaller, the number of molecules that can be captured in the region can be one. Thereafter, the substrate in such a state is measured. In such a substrate, DNA of a single molecule may be immobilized on all the regions 8ij, or DNA may be immobilized only on a part of the region 8ij.
  • the remaining region 8ij is not immobilized with DNA and is in an empty state.
  • the interval dx between the regions 8ij was 1 micron, and the interval dy was 3 microns.
  • the region 8ij thus forms a lattice structure (two-dimensional rectangular lattice structure), and the region 8ij is arranged at the position of the lattice point.
  • Such a method of creating a substrate having a uniform interval is, for example, created by a method described in JP-A-2002-214142. It should be noted that dx and dy are larger than the individual sizes of the region 8ij and are preferably about 4000 nm or less.
  • the reaction area 8a of the substrate was 1 mm ⁇ 1 mm in size.
  • the size of the reaction region 8a may be larger than that, or a plurality of ones having a size of 0.5 mm ⁇ 0.5 mm arranged one-dimensionally or two-dimensionally at regular intervals may be used.
  • a metal structure may be disposed in the region 8ij.
  • the metal structure can also be created by a semiconductor process. Electron beam drawing, dry etching, wet etching, etc. can be used.
  • the metal structure is made of gold, copper, aluminum, chrome, or the like, and has a shape having a size equal to or smaller than the wavelength of the excitation light, and a structure having a rectangular parallelepiped, a cone, a cylinder, or a part of the shape is used.
  • Bodipy-FL-510 is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 510 nm.
  • R6G is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 555 nm.
  • ROX is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 605 nm.
  • Bodipy-FL-650 is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 650 nm.
  • dNTPs (3′-O-allyl-dGTP-PC-Bodipy-FL-510, 3′-O-allyl) labeled with four different phosphors and modified at the 3 ′ end with an allyl group.
  • the laser light from the laser light source 101a for fluorescence excitation (Ar laser, 488 nm: for Bodipy-FL-510, for R6G excitation) is circularly polarized through the ⁇ / 4 wavelength plate 102a.
  • Laser light from a laser light source 101b for excitation of fluorescence (He—Ne laser, 594.1 nm: for excitation of ROX, Bodipy-650) is circularly polarized through a ⁇ / 4 wavelength plate 102b.
  • Both laser beams are overlapped by the mirror 104b and the dichroic mirror 104a (reflects 520 nm or less), and are incident on the quartz prism 7 for total reflection illumination through the mirror 5 perpendicularly to the incident surface as shown in the figure, and DNA molecules Irradiate from the back side of the captured substrate 8.
  • the quartz prism 7 and the substrate 8 are brought into contact with each other via matching oil (non-fluorescent glycerin or the like), and the laser light is introduced into the substrate 8 without being reflected at the interface.
  • the surface of the substrate 8 is covered with a reaction solution (water), and the laser beam is totally reflected at the interface to provide evanescent illumination. Thereby, fluorescence measurement is possible with high S / N.
  • the temperature controller is arrange
  • a structure in which halogen illumination is possible from the lower part of the prism is omitted, but this is omitted in the figure.
  • a laser light source 100 (YAG laser, 355 nm) is arranged so that the dichroic mirror 103 (reflects 400 nm or less) overlaps with the laser light of the laser light sources 101a and 101b and can be irradiated in a coaxial manner. I made it.
  • This laser is used for the step of returning the dNTP derivative to a state where it can be extended after fluorescence detection of the incorporated dNTP derivative.
  • a flow chamber 9 for allowing a reagent or the like to flow and react is formed on the substrate 8.
  • the chamber has an inlet 12, and a target reagent solution is injected by a dispensing unit 25 having a dispensing nozzle 26, a reagent storage unit 27, and a chip box 28.
  • a sample liquid container 27a, dNTP derivative solution containers 27b, 27c, 27d, 27e (27c, 27d, 27e are reserved), a cleaning liquid container 27f, and the like are arranged.
  • a dispensing tip in the tip box 28 is attached to the dispensing nozzle 26, an appropriate reagent solution is sucked, introduced into the reaction region of the substrate from the chamber inlet, and reacted.
  • the waste liquid is discharged to the waste liquid container 11 through the waste liquid tube 10. These are automatically performed by the control PC 21.
  • the flow chamber is made of a transparent material in the direction of the optical axis, and fluorescence is detected.
  • the fluorescent light 13 is collected by a condenser lens (objective lens) 14 controlled by an automatic focusing device 29, and a fluorescent light having a necessary wavelength is taken out by a filter unit 15 and light having an unnecessary wavelength is removed. Then, the light is dispersed by the wavelength dispersion prism 17a, and the image is formed on the two-dimensional sensor camera 19a (high-sensitivity cooled CCD camera) by the imaging lens 18a and detected.
  • the control PC 21 controls the setting of the exposure time of the camera, the capture timing of the fluorescent image, and the like via the two-dimensional sensor camera controller 20a.
  • the filter unit 15 uses two types of notch filters for removing laser light (488 nm, 594 nm) and a band-pass interference filter (transmission band 510-700 nm) that transmits a wavelength body to be detected.
  • the apparatus is provided with a transmitted light observation barrel 16, a TV camera 23, and a monitor 24 for adjustment and the like, and the state of the substrate 8 can be observed in real time by halogen illumination or the like.
  • the optical axis is tilted by the wavelength dispersion prism 17a, a plurality of prisms having different dispersions can be combined so that the optical axis does not tilt.
  • positioning markers 30 and 31 are engraved on the substrate 8.
  • the markers 30 and 31 are arranged in parallel with the arrangement of the regions 8ij, and the intervals are defined. Therefore, the position of the region 8ij can be calculated by detecting the marker by observation with transmitted illumination.
  • a CCD area sensor was used as the two-dimensional sensor camera used in this example.
  • a cooled CCD camera with a pixel size of 7.4 ⁇ 7.4 microns and a pixel count of 2048 ⁇ 2048 pixels is used.
  • an imaging camera such as a C-MOS area sensor can be used in addition to a CCD area sensor.
  • An electron multiplying CCD camera having a signal multiplying function inside the element is also effective in achieving high sensitivity.
  • the sensor is preferably a cooling type, and by setting the temperature to about ⁇ 20 ° C. or less, dark noise of the sensor can be reduced and measurement accuracy can be improved.
  • Fluorescence image from the reaction region 8a may be detected at once or divided.
  • an XY movement mechanism unit for moving the position of the substrate is disposed below the stage, and the control PC controls the movement to the irradiation position, light irradiation, and fluorescence image detection.
  • the XY moving mechanism is not shown.
  • reaction process The step of stepwise extension reaction is shown below.
  • the reaction steps are “Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 100, pp3960, 2003 (non-patent document 2)” and “Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.102, pp5932, 2005 (non-patent document 2).
  • Patent Document 4 A buffer added with streptavidin is introduced into the chamber through the inlet 12, and streptavidin is bound to biotin immobilized on the metal structure to form a biotin-avidin complex.
  • a primer is hybridized to a single-stranded template DNA that is a biotin-modified target, a buffer to which the template DNA-primer complex and a large excess of biotin are added is introduced into the chamber, and a single molecule is bound via a biotin-avidin bond.
  • the template DNA-primer complex is fixed to a metal structure arranged at a lattice point. After the fixation reaction, excess template DNA-primer complex and biotin are washed away from the chamber with a washing buffer.
  • 4 dNTPs (3′-O-allyl-dGTP-PC-Bodipy-FL-510, 3′-O, each of which is labeled with 4 different phosphors and whose 3 ′ end is modified with an allyl group) -Allyl-dTTP-PC-R6G, 3'-O-allyl-dATP-PC-ROX, 3'-O-allyl-dCTP-PC-Bodipy-650), and Thermo Sequenase Reaction Buffer with Thermo Sequenase Polymerase added It introduce
  • dNTP incorporated into the template DNA-primer complex has its 3 ′ end modified with an allyl group, it does not incorporate more than one base into the template DNA-primer complex.
  • various unreacted dNTPs and polymerase are washed away with a washing buffer, and laser light emitted from each of the Ar laser light source 101a and the He—Ne laser light source 101b is simultaneously irradiated onto the chip.
  • laser light emitted from each of the Ar laser light source 101a and the He—Ne laser light source 101b is simultaneously irradiated onto the chip.
  • a fluorescent substance for labeling dNTP incorporated in the template DNA-primer complex is excited, and fluorescence emitted therefrom is detected.
  • the base species of the dNTP can be specified by specifying the fluorescent wavelength of the fluorescent substance that labels the dNTP incorporated in the template DNA-primer complex.
  • it since it is evanescent irradiation and only the reaction region surface vicinity becomes an excitation light irradiation area
  • the chip is irradiated with laser light oscillated from the YAG laser light source 100, and the phosphor that labels the dNTP incorporated in the complex is removed by light cutting.
  • a solution containing palladium is introduced into the flow path, and the allyl group at the 3 ′ end of dNTP incorporated into the complex is changed to a hydroxyl group by a palladium catalytic reaction.
  • the extension reaction of the template DNA-primer complex can be resumed.
  • the chamber is washed with a washing buffer. By repeating this, the sequence of the fixed single-stranded template DNA is determined.
  • FIG. 3 is an explanatory diagram of a method for detecting the fluorescence of the substrate by wavelength dispersion.
  • FIG. 3A is a schematic view of a part of the surface of the substrate 8, and a plurality of regions 8ij (lattice points) to which DNA is to be fixed are formed.
  • the closest distance between the lattice points is 1 ⁇ m, and when dispersed in that direction, the dispersion is 40 nm per pixel, and it is difficult to distinguish the fluorescence from the four types of phosphors in the range of 500 nm to 700 nm.
  • the lattice point interval is 3.6 ⁇ m.
  • the dispersion is 11 nm per pixel. This makes it possible to distinguish the fluorescence from the four types of phosphors in the range of 500 nm to 700 nm.
  • FIG. 3C shows a fluorescence / issue spectrum when a gold nanostructure is created in a plurality of regions 8ij (lattice points) to which DNA is to be fixed, and is detected by spectroscopy in the direction of FIG. 3B.
  • regions 8ij lattice points
  • FIG. 3B Indicates.
  • spectra from lattice points 8-11 and 8-32 are detected. It is known that luminescence is generated from the gold nanostructure, and the spectrum in the figure shows this. There is a portion where the strength sharply decreases in the middle, because this is cut by the 594 nm notch filter in the filter unit 15. By analyzing and marking the position of this valley, the wavelength axis of fluorescence from each lattice point can be configured.
  • FIG. 3D is a fluorescence spectrum after the extension reaction of dNTP, and a peak based on the fluorescence of the phosphor is observed.
  • the phosphor species can be determined by calculating the fluorescence peak based on the reference point of 594 nm.
  • R6G and ROX, and the base types are determined as T and A, respectively.
  • a fluorescent image emitted from a specific lattice point is directed to an arbitrary lattice point whose distance from the specific lattice point is the second or later.
  • the phosphor can be identified with high accuracy by a method in which the angle is set as the chromatic dispersion direction and the intensity for each dispersed wavelength is measured.
  • the wavelength reference can be obtained for each reaction point of the substrate, and the type determination of the emitted phosphor, which was difficult with the dispersion spectroscopy imaging method, can be performed with high accuracy. As a result, it becomes possible to determine the base sequence with high accuracy.
  • the metal structure on the substrate surface can be made of chrome, silver, aluminum, etc. in addition to gold.
  • the wavelength reference can be obtained not only from the center wavelength of the filter but also from the spectrum of laser scattering.
  • the same one phosphor can also be labeled with four types of dNTPs.
  • the excitation laser light source is one type. The reaction is carried out in the order of A ⁇ C ⁇ G ⁇ T ⁇ A ⁇ C.
  • the laser beam is vertically incident on the quartz prism 7.
  • substrate and a prism can be integrated and moved.
  • the number of pixels of the two-dimensional sensor required for the region where the oligonucleotide to be measured is to be fixed is reduced from the conventional number of 1/100 times to 1 / It can be reduced to 50 times or less, and can be detected efficiently. Therefore, when the same two-dimensional sensor is used, fluorescent images from more regions can be obtained at one time, and high throughput can be achieved. In addition, when a camera with a small number of pixels is used, measurement can be performed more inexpensively.
  • the detection can be efficiently performed with a small number of pixels, and the price of the two-dimensional sensor can be reduced.
  • the optical resolution can be about the interval between the regions where the oligonucleotides are fixed, it is not necessary to use a condensing lens with a large numerical aperture, and an inexpensive lens can be used. Since there is no need to use it, operability can be improved.
  • FIG. 4 shows the configuration of this embodiment.
  • DNA sequencing is performed by a stepwise extension reaction using four types of phosphors.
  • the configuration of the chamber portion, the configuration of the chip, and the like are the same as in the first embodiment. Hereinafter, the difference from the first embodiment will be mainly described.
  • Alexa Fluor-488 (trademark), Cy3 (trademark), Cy5 (trademark), and Cy5.5 (trademark) are used as fluorescent labels for dNTP.
  • Alexa Fluor 488 is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 520 nm.
  • Cy3 is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 570 nm.
  • Cy5 is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of 670 nm.
  • Cy5.5 is a fluorescent dye having a maximum fluorescence wavelength of about 694 nm.
  • Various other phosphors can be used as the phosphor. It is also possible to use four types of dNTPs labeled with one phosphor.
  • Laser light from a laser light source 101c for fluorescence excitation (solid laser, 505 nm: Alexa Fluor 488, for Cy3 excitation) is converted into circularly polarized light through the ⁇ / 4 wavelength plate 3.
  • Laser light from a laser light source 101d for excitation of fluorescence (semiconductor laser, 635 nm: for excitation of Cy5 and Cy5.5) is converted into circularly polarized light through a ⁇ / 4 wavelength plate 102d.
  • Both laser beams are overlapped by a mirror 104d and a dichroic mirror 104c (reflecting 520 nm or less), and are incident on a quartz prism 7 for total reflection illumination perpendicularly to the incident surface as shown in the figure through the mirror 5 to form DNA molecules.
  • a quartz prism 7 for total reflection illumination perpendicularly to the incident surface as shown in the figure through the mirror 5 to form DNA molecules.
  • the quartz prism 7 and the substrate 8 are brought into contact with each other via matching oil (non-fluorescent glycerin or the like), and the laser light is introduced into the substrate 8 without being reflected at the interface.
  • the surface of the substrate 8 is covered with a reaction solution (water), and the laser beam is totally reflected at the interface to provide evanescent illumination. Thereby, fluorescence measurement is possible with high S / N.
  • the excitation wavelengths are separated from 505 nm and 635 nm, and when the spectrum is split by the same wavelength dispersion element, the spectrum is split to a region where it is not necessary to split (for example, 570 to 620 nm). Even if fluorescence in this wavelength band is detected, the result is not affected, and pixels that are not used are generated, so that the CCD cannot be used effectively. For this reason, it is collected by the condensing lens (objective lens) 14, the fluorescence of the necessary wavelength is taken out by the filter unit 15, the light of unnecessary wavelength is removed, and the dichroic mirror 32 is used for the fluorescence component for Alexa Fluor 488, Cy3 And the fluorescent component for Cy5 and Cy5.5.
  • the condensing lens objective lens
  • the filter unit 15 includes two types of notch filters (505 nm, 635-642 nm) for removing laser light, and a band-pass interference filter (transmission band 510-700 nm) that transmits a wavelength body to be detected.
  • the chromatic dispersion width can be 630-700 nm. It is only necessary to perform spectroscopy in a relatively narrow range, and CCD pixels can be used effectively.
  • the 200-nm range of 500-700 nm was dispersed, but in this example, the range of 80 nm is sufficient, and when using a substrate having the same lattice structure, the phosphor can be separated with higher accuracy. .
  • For the wavelength marker adjust the filter to detect the laser scattering wavelength or select the reference coordinates from the luminescence spectrum.
  • M13-DNA fragment is used as a model sample.
  • the end of the M13-DNA fragment is biotinylated according to a standard method.
  • the biotinylated DNA solution was placed in the sample solution container 27a of FIG. 4 with caged dATP labeled with Alexa Fluor 488, caged dCTP labeled with Cy3, caged dGTP labeled with Cy5, and caged dTTP labeled with Cy5.5. (Including polymerase) is mixed and held in the dNTP derivative solution container 27b.
  • the labeled caged dNTP is a caged compound in which a 2-nitrobenzyl group is bonded to a nucleotide, and is taken in as a complementary strand by a polymerase, but the activity continuously taken in by a complementary strand synthesis reaction is suppressed. ing. For this reason, the reaction stops after extending by one base. However, when irradiated with ultraviolet rays of 360 nm or less, the caged substance (2-nitrobenzyl group) is liberated, the original activity of the nucleotide occurs, and the next dNTP synthesis can occur.
  • the biotinylated DNA used as a template is introduced into the flow chamber by the dispensing unit 25 and reacted with the substrate. After washing, an oligo primer is introduced to hybridize the primer to biotinylated DNA. Thus, a complementary strand extension reaction is performed.
  • a labeled caged dNTP solution is introduced.
  • the base to be incorporated is determined by the base of the template next to the primer binding position. Laser light is emitted from laser light sources 101c (505 nm) and 101d (635 nm), and fluorescence is measured with a two-dimensional sensor camera. As in Example 1, the incorporated base can be determined based on the presence or absence of fluorescence and the difference in fluorescence wavelength.
  • laser light is irradiated from the laser light source 100 (355 nm) to restore dATP activity. By performing this procedure for a plurality of cycles, the base sequence can be determined.
  • dNTP derivatives which are incorporated into template DNA as a substrate of DNA polymerase and can stop the DNA chain elongation reaction due to the presence of a protecting group and have a detectable label, and the dNTP derivative can be detected by any means.
  • fluorescence-labeled caged dNTP was used as a reagent that can return the DNA to an extendable state.
  • the present invention can be similarly applied to a dNTP derivative in which a phosphor and a nucleotide are bonded by a disulfide bond.
  • the extension is stopped by the presence of the phosphor, and the disulfide bond can be chemically dissociated with a Tris [2-carboxyethyl] phosphine reagent or the like to return to the extendable state.
  • FIG. 5 shows a conceptual diagram of the lattice structure and dispersion direction of another substrate.
  • This is a case where 1 um is imaged on the substrate surface with 5 pixels of CCD, and different values are obtained when the imaging magnification is different or when the dimensions of dx and dy are different.
  • the wavelength range per pixel can be increased without overlapping the fluorescence image from other lattice points, It is possible to detect the fluorescence intensity and the fluorescence wavelength with high accuracy.
  • FIG. 6 shows a conceptual diagram of the lattice structure and dispersion direction of another substrate.
  • the difference from the first to third embodiments will be mainly described.
  • FIG. 6 shows the spectral direction with respect to the lattice point and the wavelength dispersion width per CCD pixel in that case in the case of the arrangement of the triangular lattice structure.
  • the conditions are the same as in Example 3.
  • the wavelength range per pixel can be increased without overlapping the fluorescence image from other lattice points, It is possible to detect the fluorescence intensity and the fluorescence wavelength with high accuracy.
  • FIG. 7 shows another structure of the junction between the substrate and the prism for evanescent illumination.
  • the difference from the first to fourth embodiments will be mainly described.
  • the substrate 8 is coupled to the quartz prism 7 as in the first embodiment.
  • the measurement substrate 200 is embedded and fixed in a dedicated holder 203.
  • the flow chamber 204 is fixed to this lower part (reaction surface side, lattice structure formation side).
  • the flow chamber 204 is formed of PDMS and is bonded to the holder 203 so that a reagent, a cleaning solution, or the like can flow into the reaction region of the measurement substrate 200.
  • This is brought into contact with a substrate holder 205 fixed to an XY stage 209 (shown in FIG. 9).
  • the flow path 208 and the through-hole 206 of the flow chamber 204 are aligned.
  • the through hole 206 is connected to an external flow system.
  • the substrate holder 205 has a large opening 207 in the center thereof, so that the condenser lens 14 and the measurement substrate 200 can be brought close to each other, and the fluorescence can be condensed with high efficiency.
  • the matching oil is held in the recess 202 in the holder 203 on the back surface (upper side in the figure) of the measurement substrate 200, and the prism 7 is arranged.
  • the depression 202 may be filled with PDMS resin instead of the matching oil for matching.
  • the prism 7 is fixed to the prism holder 210 and has a function of attaching to and detaching from the substrate, and adheres to the substrate when evanescent illumination is performed.
  • reaction substrate Another example of the reaction substrate is shown. Hereinafter, the difference from the first to seventh embodiments will be mainly described.
  • FIG. 10 shows the structure of the reaction substrate in this example.
  • the substrate 60 has a reaction region 60a, and a plurality of regions 60ij to which DNA is immobilized are formed, and the plurality of 60ij is covered with an optically opaque mask 60b.
  • the mask material metals such as aluminum and chromium, silicon carbide, etc. can be applied, and the film is thinned by vapor deposition.
  • Each size of the reaction region 60ij is 100 nm or less in diameter.
  • vapor deposition by a projection method deposition is performed by arranging an appropriate mask between the vapor deposition source and the substrate
  • electron beam lithography direct drawing by photolithography, and the like. Conceivable. Dry etching or wet etching may be used.
  • biomolecules are fixed in the opening.
  • the spatial position of the structure can be detected by detecting the Raman scattered light of the sample liquid around the biomolecule and the photoluminescence and light scattering of the metal structure in the vicinity of the biomolecule. Can be used as
  • a metal structure may be created in the opening.
  • Embodiment 1 the same effect as in Embodiment 1 can be obtained. Further, since the region other than the reaction region 60ij is masked, unnecessary stray light and fluorescence can be reduced, and measurement can be performed with higher sensitivity.

Landscapes

  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)

Abstract

　本発明の目的は、少ない画素数で効率よく画像を検出する方法に関する。　本発明は、生体関連分子が固定されうる複数の領域が格子構造の格子点位置に設けられた基板を用い、ある格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させる蛍光分析に関する。本実施例により、例えば、生体関連分子が固定されうる領域の蛍光分析に必要な２次元センサの画素数は、測定精度を損なわずに、従来の数１００倍から、５０倍以下と少なくすることができる。これにより、分析装置のスループット向上，価格低減、又は／及び操作性向上などを達成できる。

Description

蛍光分析装置、及び蛍光分析方法
　本発明は、光分析装置に関し、例えば、ＤＮＡ，ＲＮＡ、又はタンパク質等の生体関連物質に光を照射して光分析する装置に関する。
　従来から、基板の表面に配置された物体に対して励起光を照射して物体の形状を観察する方法が提案されている。例えば、特許文献１には、励起光源から出力された励起光を透明な基板に照射し、その内部で励起光を全反射させることにより、基板表面にエバネセント波を生成し、基板上の試料によるエバネセント波の散乱光を検出する装置が記載されている。ただし、特許文献１に記載の装置では散乱光を分光していない。
　また、例えば、特許文献２には、エバネセント波で励起された試料成分からの蛍光及び散乱光を分光する装置が記載されている。ただし、特許文献２に記載の装置では試料成分が流路境界面に固定されていない。
　一方、基板表面に複数の生体分子を固定し、特許文献１と同様に基板表面の一定範囲にエバネセント波を生成させ、そのエバネセント波によって励起された生体分子の発光を画像化する装置がある。基板上に非蛍光性の生体分子を固定し、蛍光性の分子を含む反応液を基板上に流入させ、生体分子固定位置からの蛍光を観測するものである。これにより、生体分子と反応液中の分子との結合反応を観察することができる。例えば、始めに基板に非修飾一本鎖のＤＮＡを固定し、塩基種ごとに異なる蛍光体で修飾された蛍光修飾塩基を含む反応液を導入し、一本鎖ＤＮＡに対して相補な塩基を結合させながら、分子固定位置からの蛍光を分光すれば、固定されたＤＮＡの配列を解読することが可能である。
　近年、非特許文献２にあるように、基板にＤＮＡなどを固定してその塩基配列を決定することが提案されている。基板表面にランダムに分析すべき試料ＤＮＡ断片を１分子ずつ捕捉し、ほぼ１塩基ずつ伸長させて、その結果を蛍光計測より検出することにより塩基配列を決定するものである。具体的には、ＤＮＡポリメラーゼの基質として鋳型ＤＮＡに取込まれてＤＮＡ鎖伸長反応を保護基の存在により停止することができ、かつ検出され得る標識を持つ４種のｄＮＴＰの誘導体（ＭｄＮＴＰ）を用いてＤＮＡポリメラーゼ反応を行わせる工程、次いで取込まれたＭｄＮＴＰを蛍光等で検出する工程、及びＭｄＮＴＰを伸長可能な状態に戻す工程を１サイクルとし、それを繰り返すことにより試料ＤＮＡの塩基配列を決定する。本技術では、ＤＮＡ断片を１分子ずつ配列決定することができるため、同時に数多くの断片を解析することができ、解析スループットを大きくすることができる。また、本方式では、単一ＤＮＡ分子毎に塩基配列が決定できる可能性があるため、従来技術の問題であったクローニングやＰＣＲ等での試料ＤＮＡの精製や増幅が不要にできる可能性があり、ゲノム解析や遺伝子診断の迅速化が期待できる。尚、本方法では、分析すべき試料ＤＮＡ断片分子が基板面にランダムに固定されるため、捕捉されたＤＮＡ断片分子数に対して数１００倍の画素数を有する高価なカメラが必要となる。つまり、ＤＮＡ断片分子同士の間隔が平均１ミクロンになるように調整した場合、より大きな間隔同士の分子もいれば、より近接した間隔の分子同士も存在し、これらを互いに分離して検出するには、基板面に換算して、より細かな間隔で蛍光像を検出する必要がある。通常、数１０分の１の間隔で計測する必要がある。
　また、一方、非特許文献３、及び特許文献３では、全反射エバネッセント照射検出方式よりも励起光照射体積の一層の低減が可能となるナノ開口エバネッセント照射検出方式によって、蛍光検出の感度を更に向上させている。２枚のガラス基板、ガラス基板Ａとガラス基板Ｂを平行に配置し、ガラス基板Ａのガラス基板Ｂと対面する側の表面に、径５０ｎｍのナノ開口を有する膜厚約１００ｎｍの平面状のアルミニウム薄膜を積層する。アルミニウム薄膜は遮光性能を有している必要がある。２枚のガラス基板の中間に反応槽を構成し、反応槽に溶液を充填することによって、２枚のガラス基板の間に溶液層を形成する。反応槽には溶液の注入口と排出口があり、注入口から溶液を注入し、排出口から溶液を排出させることにより、溶液をガラス基板およびアルミニウム薄膜と平行方向にフローさせることができる。これにより、溶液層の溶液を任意の組成に交換することが可能である。Ａｒイオンレーザから発振した波長４８８ｎｍの励起光を、ガラス基板Ｂと反対方向より、ガラス基板Ａに対して垂直に、対物レンズで絞って照射すると、ナノ開口内部の底平面近傍の溶液層に励起光のエバネッセント場が形成され、それ以上先の溶液層内部に励起光が伝播することはない。一方、蛍光発光は、前記対物レンズを用いて２次元ＣＣＤ上に結像することによって検出される。エバネッセント場では、励起光強度がナノ開口底平面から離れるに従って指数関数的に減衰し、ナノ開口底平面から３０ｎｍ程度の距離で励起光強度が１／１０となる。更に、ナノ開口エバネッセント照射検出方式では、全反射エバネッセント照射検出法と異なり、ガラス基板と平行方向の励起光照射幅が開口径すなわち５０ｎｍに限定されるため、励起光照射体積が一層低減される。このため、遊離の蛍光体の蛍光発光や水のラマン散乱をはじめとする背景光を飛躍的に低減することが可能となる。その結果、より高濃度の遊離の蛍光体存在下で、対象とする生体分子に標識された蛍光体だけを選択的に検出することが可能となり、非常に高感度な蛍光検出を実現できる。
　尚、本発明では、以上の蛍光検出方式をＤＮＡ分子の伸長反応によるｄＮＴＰの取込み計測に応用することができるまた、試料成分固定面のように、エバネッセント場が開始される平面をエバネッセント場境界平面と呼ぶこともできる。
特開平９－２５７８１３号公報 特開２００５－７００３１号公報 米国特許第６９１７７２６号 特開２００２－２１４１４２号公報
Nature Vol. 374、 555-559 (1995). Proc. Natl. Acad. Sci. USA、vol.100、pp3960、2003 SCIENCE 2003、Vol.299、pp. 682-686. Proc. Natl. Acad. Sci. USA、vol.102、pp5932、2005
　本願発明者が、エバネッセント場を利用した蛍光分析について鋭意検討した結果、次のような知見を得るに至った。
　基板表面上に固定された生体分子の蛍光を画像化することにより生体分子を分析する装置においては、一般に基板上の個々の固定された領域（スポット）ごとに異なる種類の生体分子を固定し、各スポットからの蛍光を画像化によって分離して検出する。できる限り短時間で多数種の生体分子を分析し、また、消費される試薬量を低減するには、光学的に分解可能な範囲でできる限り高密度に基板上にスポットを配置することが好ましい。また、１スポットあたりの試薬消費量を低減するためには、１スポット内に固定化する生体分子数は少ないほど好都合であり、１分子が理想的である。非特許文献１に記載されているように、蛍光検出法は１分子をも検出する感度を有しているけれども、少数分子からの蛍光を分光検出して良好なＳ／Ｎを得るには、損失の少ない分光イメージング法が好ましい。従って、プリズムや回折格子などの分散素子による分散分光イメージング法、又は、ダイクロイックミラーで分光して複数のイメージセンサで画像を取得する方法（ダイクロ／マルチセンサ分光イメージング法）が好ましい。
　上記複数のスポットは、光学的に分解可能な範囲でできる限り高密度に基板上に配置することが好ましいが、ダイクロ／マルチセンサ分光イメージング法では、使用する蛍光標識物の種類の数だけイメージセンサが必要になるため、検出装置のコストが高くなる。また、ダイクロイックミラーなどで蛍光像を分割するため、Ｓ／Ｎが必ずしも大きくならない場合も多い。分散分光イメージング法にすれば、最小限の（たとえば１個）のイメージセンサで検出できるというメリットはあるが、スポット同士の間隔が狭くなると、スポットから発する蛍光を波長分散させた蛍光像が、近接する別のスポットの蛍光像と重なってしまうことになる。蛍光検出精度を向上させるには、基板上に生体分子を固定化したスポットの間隔を広くしなければならなくなり、高密度とし難しい。
　また、生体分子が基板上にランダムに固定された場合、基板上のスポット数に対して、数１００倍以上の画素数が必要であり、検出速度が低下すると共に、高価な２次元センサが必要になる。さらに、高解像度で蛍光像を検出しなければならないため、開口数ＮＡの大きな集光レンズを使う必要があり、高価な系になってしまう。
　本発明の目的は、少ない画素数で効率よく画像を検出する方法に関する。例えば、基板上に捕捉するＤＮＡ断片の分子からの蛍光像を２次元センサにて蛍光検出する際に、少ない画素数で、効率よく検出することに関する。また、例えば、基板上に固定化して捕捉するＤＮＡ断片の分子からの蛍光像を２次元センサにて蛍光検出する際に、安価な、及び／又は操作性の良い検出方法を提供することに関する。
　本発明は、生体関連分子が固定されうる複数の領域が格子構造の格子点位置に設けられた基板を用い、ある格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させる蛍光分析に関する。
　本実施例により、例えば、生体関連分子が固定されうる領域の蛍光分析に必要な２次元センサの画素数は、測定精度を損なわずに、従来の数１／１００倍から、１／５０倍以下と少なくすることができる。これにより、分析装置のスループット向上，価格低減、又は／及び操作性向上などを達成できる。
実施例１における蛍光分析方法を使ったＤＮＡ検査装置の構成図。 実施例１における基板の構造図。 実施例２における基板の蛍光を波長分散して検出する方式の説明図。 実施例２におけるＤＮＡ検査装置の構成図。 実施例３における基板の格子構造と分散方向の概念図。 実施例４における基板の格子構造と分散方向の概念図。 実施例５におけるプリズムとの接合部の構造図。 実施例６におけるプリズムとの接合部の構造図。 実施例６におけるプリズムホルダの構成図。 実施例７における基板の構造図。
　実施例では、複数の測定対象物を精密配置し、複数の検出画素を備えた検出器の特定画素に各測定対象物をそれぞれ結像させている。
　好ましくは、オリゴヌクレオチド等が固定される基板に蛍光測定用の励起光を照射し、生じる蛍光を集光し、集光された光を分光し、センサに光を結像させ、２次元センサにて蛍光検出する方法において、該基板には、オリゴヌクレオチド等が固定される領域が複数設けられ、それらが基板上に、格子構造の格子点様に配置され、特定の格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させて分光し、分光された波長ごとの強度を測定する。
　また、好ましくは、特定の格子点から発する蛍光像を、特定の格子点から隣接する最短の格子点に向かう角度＋１０度～＋１７０度、または、隣接する最短の格子点に向かう角度－１０度～－１７０度の方向を波長分散方向とし、分光された波長ごとの強度を測定する。
　また、好ましくは、特定の格子点から発する蛍光像を、特定の格子点から隣接する距離が２番目以降の任意の格子点に向かう角度を波長分散方向とし、分光された波長ごとの強度を測定する。
　なお、上記格子構造とは、２次元の長方格子，三角格子など形状を含む。
　また、該基板上の個々の固定された領域が複数設けられ、それらを基板上に、格子構造の格子点様に配置するために、基板表面上に金属の構造物を設けることを含む。ここで、構造物は、金，クロム，銀，アルミなどの金属の微粒子、一部に微細な突起を有する構造体などの、励起光の波長以下の大きさをなす金属構造体、あるいは微小開口を有する薄膜等である。金属構造体の場合、生体分子は金属構造体表面に固定する。この場合、構造物の光ルミネセンス，光散乱を検出することにより、構造物の空間位置を検出することができ、位置の基準マーカとして活用できる。微小開口を有する金属薄膜の場合、生体分子は開口中に固定する。この場合、生体分子周囲の試料液のラマン散乱光と生体分子近傍の金属構造物の光ルミネセンス・光散乱を検出することにより、構造物の空間位置を検出することができ、位置の基準マーカとして活用できる。
　また、好ましくは、オリゴヌクレオチド等の生体分子は、すべての格子点位置に固定されているのがよいが、少なくとも２箇所以上の格子点位置に固定されていればよい。
　また、好ましくは、特定の格子点に対して、隣接する最短の格子点の間隔が、１００ｎｍから１００００ｎｍであり、より好ましくは、５００ｎｍから２０００ｎｍである。
　また、好ましくは、オリゴヌクレオチドが固定される領域（スポット，格子点の領域）の大きさは１００ｎｍ径以下である。少なくとも、隣接する最短の格子点の間隔の１／３以下がよい。
　また、好ましくは、上記基板の表面は、複数設けられるオリゴヌクレオチドが固定される領域を除く基板上の反応領域には、光学的な遮光機能を有する膜状物質を施すことがより有効であり、金属膜などを蒸着などによって形成する。
　また、好ましくは、該基板には、位置決め用のマーカが少なくとも２箇所有する。
　また、好ましくは、分光部は、少なくとも１個の分散素子で構成する。分散素子としては、ウェッジプリズムなどのプリズム、回折格子を使用する。
　また、好ましくは、処理部は、生体分子が発光していない時に検出された第１の画像と、生体分子が発光した時に検出された第２の画像との差分を計算する。そして、この差分と第１の画像とを比較することにより発光した前記生体分子の種類を判別する。
　また、好ましくは、センサは、構造物からの放出された光に生体分子からの放出された光が重ねあわされた状態の光を検出する。そして、処理部は、重ねあわされた状態の光を背景光として用いて位置情報を生成するようにしてもよい。また、処理部は、重ねあわされた状態の光の中で周囲より明るい部分の相対位置に基づいて、生体分子の種類を判別する。
　尚、実施例では、生体関連分子が固定される基板を備え、当該基板に蛍光測定用の光を照射し、生じる蛍光を分光し、２次元センサに測定する蛍光分析装置であって、当該基板において、生体関連分子が固定されうる複数の領域が、格子構造の格子点位置に設けられ、ある格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させる装置を開示する。
　また、実施例では、生体関連分子が固定される基板に蛍光測定用の光を照射し、生じる蛍光を分光し、２次元センサに測定する蛍光分析方法であって、当該基板において、生体関連分子が固定されうる複数の領域が、格子構造の格子点位置に設けられ、ある格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させる方法を開示する。
　また、実施例では、ある格子点から発する蛍光像を、当該格子点から隣接する最短の格子点に向かう角度に対して＋１０度～＋１７０度、又は、－１０度～－１７０度の範囲の方向に波長分散することを開示する。
　また、実施例では、ある格子点から発する蛍光像を、当該格子点からの距離が２番目以降の任意の格子点に向かう方向に波長分散することを開示する。
　また、実施例では、格子構造が、２次元の長方格子構造であることを開示する。
　また、実施例では、格子構造が、三角格子構造であることを開示する。
　また、実施例では、格子構造の格子点位置に金属の微小な構造物が設けられていることを開示する。
　また、実施例では、金属の微小な構造物が、金，クロム，銀、又はアルミの微粒子であることを開示する。
　また、実施例では、金属の微小な構造物が、一部に微細な突起を有する構造体であることを開示する。
　また、実施例では、金属の微小な構造物が、励起光の波長以下の大きさの金属構造体であることを開示する。
　また、実施例では、該格子構造の格子点位置に微小開口を有し、光学的に不透明な材質の薄膜で構成された基板を使用することを開示する。
　また、実施例では、生体関連分子を金属構造体表面、又は開口部底部に固定することを開示する。
　また、実施例では、基板にプリズムが光学接着されているか、又は、基板の一部がプリズム形状であり、当該プリズムを介して蛍光測定用の光を照射し、基板の表面にて全反射させ、エバネッセント場を形成することを開示する。
　また、実施例では、基板とプリズムとの間に光学的に透明で弾性のある材料を挟むことにより基板とプリズムとを光学的に接着し、基板の表面で蛍光測定用の光を全反射させ、エバネッセント場を形成することを開示する。
　また、実施例では、格子点の間隔が、１００ｎｍから１００００ｎｍであることを開示する。
　また、実施例では、生体関連分子が固定されうる領域の大きさが１００ｎｍ径以下であることを開示する。
　また、実施例では、蛍光を５００ｎｍから７００ｎｍの範囲で分光することを開示する。
　また、実施例では、蛍光を少なくとも２つの波長帯に分け、それぞれを個別に波長分散させることを開示する。
　また、実施例では、蛍光を２つの波長帯にわけ、それぞれを個別に最大１００ｎｍの範囲で波長分散させ、それぞれを２個の２次元センサにて検出することを開示する。
　以下、本発明の新規な特徴と効果について図面を参酌して説明する。尚、図面は専ら発明の理解のために用いるものであり、権利範囲を減縮するものではない。また、各実施例は適宜組合せることが可能である。
　本実施例では、基板表面に分析すべき試料ＤＮＡ断片を１分子ずつ均等間隔で捕捉し、ほぼ１塩基ずつ伸長させて、取込まれた蛍光標識を１分子ごと検出して塩基配列を決定する装置，方法について説明する。具体的には、ＤＮＡポリメラーゼの基質として鋳型ＤＮＡに取込まれてＤＮＡ鎖伸長反応を保護基の存在により停止することができ、且つ検出され得る標識を持つ４種のｄＮＴＰの誘導体を用いてＤＮＡポリメラーゼ反応を行わせる工程、次いで取込まれたｄＮＴＰ誘導体を蛍光等で検出する工程、及びｄＮＴＰ誘導体を伸長可能な状態に戻す工程を１サイクルとし、それを繰り返すことにより試料ＤＮＡの塩基配列を決定する。なお、本操作は単分子蛍光検出法に基づくため、測定はＨＥＰＡフィルタを介したクリーンルーム様の環境にて行う。
［装置構成］
　図１は、本実施例における蛍光分析方法を使ったＤＮＡ検査装置の構成図である。装置は顕微鏡に類似する装置の構成であり、基板８に捕捉するＤＮＡ分子の伸長状態を蛍光検出にて測定する。
　基板８は、図２に示すような構造をしている。基板８は、少なくともその一部が透明材質、例えば、合成石英でできている。基板８には反応領域８ａがあり、この部分は透明材質であり、この部分に試薬などが接触する。反応領域８ａ内にＤＮＡが固定される領域８ｉｊが複数形成されている。領域８ｉｊの個々の大きさは、直径１００ｎｍ以下である。この領域には、ＤＮＡを捕捉するための表面処理を施す。その表面処理として、例えば、ストレプトアビジンを結合させておき、ビオチンしたＤＮＡ断片を反応させることにより、ＤＮＡを捕捉する。また、ポリＴのオリゴヌクレオチドを固定化しておき、ＤＮＡ断片の一端をポリＡ化処理して、ハイブリ反応にてＤＮＡを捕捉することもできる。この際、ＤＮＡ断片濃度を適当に調製することにより、個々の領域８ｉｊに単一分子のＤＮＡのみが入るようにすることができる。なお、領域８ｉｊをより小さくしていくことにより、領域内に捕捉できる分子が１個となるようにすることもできる。以後、このような状態の基板を計測する。このような基板では、すべての領域８ｉｊに単一分子のＤＮＡが固定化されている場合や、領域８ｉｊの一部のみＤＮＡが固定化されている場合がある。一部のみＤＮＡが固定化されている場合は、残りの領域８ｉｊにＤＮＡは固定化されておらず、空きの状態となる。なお、領域８ｉｊ同士の間隔ｄｘは１ミクロン、間隔ｄｙは３ミクロンとした。領域８ｉｊは、このように、格子構造（２次元の長方格子構造）を形成し、その格子点の位置に領域８ｉｊが配置される。このような、均等間隔の基板の作成法は、例えば、特開２００２－２１４１４２号公報に記載の手法により作成する。なお、ｄｘ，ｄｙは領域８ｉｊの個々の大きさより大きく、４０００ｎｍ程度以下が好ましい。基板の反応領域８ａは１mm×１mmの大きさとした。反応領域８ａの大きさは、それより大きくても可であるし、０.５mm×０.５mmの大きさのものを一定間隔で、１次元または２次元に複数個並べたようなものでもよい。なお、領域８ｉｊには金属構造体を配置してもよい。金属構造体は半導体プロセスにて作成することもできる。電子線描画，ドライエッチング，ウェットエッチングなどが使用できる。金属構造体は、金，銅，アルミ，クロム等で、励起光の波長以下の大きさを有する形状であり、直方体，円錐，円柱、一部が突起状のものを有する構造などを使用する。
　ｄＮＴＰの蛍光標識として種々の蛍光体を使うことができる。たとえば、Bodipy－ＦＬ－５１０，Ｒ６Ｇ（商標），ＲＯＸ（商標），Bodipy－６５０（商標）を用いる。Bodipy－ＦＬ－５１０は、最大蛍光波長が約５１０ｎｍの蛍光色素である。Ｒ６Ｇは、最大蛍光波長が約５５５ｎｍの蛍光色素である。ＲＯＸは、最大蛍光波長が約６０５ｎｍの蛍光色素である。Bodipy－ＦＬ－６５０は、最大蛍光波長が約６５０ｎｍの蛍光色素である。これらそれぞれ異なる４種の蛍光体で標識された３′末端がアリル基で修飾された４種のｄＮＴＰ（３′－Ｏ－allyl－ｄＧＴＰ－ＰＣ－Bodipy－ＦＬ－５１０，３′－Ｏ－allyl－ｄＴＴＰ－ＰＣ－Ｒ６Ｇ，３′－Ｏ－allyl－ｄＡＴＰ－ＰＣ－ＲＯＸ，３′－Ｏ－allyl－ｄＣＴＰ－ＰＣ－Bodipy－６５０）を使用する。
　蛍光励起用のレーザ光源１０１ａ（Ａｒレーザ，４８８ｎｍ：Bodipy－ＦＬ－５１０，Ｒ６Ｇ励起用）からのレーザ光をλ／４波長板１０２ａを通して円偏光とする。蛍光励起用のレーザ光源１０１ｂ（Ｈｅ－Ｎｅレーザ，５９４.１ｎｍ：ＲＯＸ，Bodipy－６５０励起用）からのレーザ光をλ／４波長板１０２ｂを通して円偏光とする。両レーザ光をミラー１０４ｂとダイクロイックミラー１０４ａ（５２０ｎｍ以下を反射）で重ね合わせ、ミラー５を介して全反射照明用の石英製プリズム７に図のように入射面に垂直に入射し、ＤＮＡ分子を捕捉した基板８の裏側から照射する。石英製プリズム７と基板８はマッチングオイル（無蛍光グリセリン等）を介して接触させており、レーザ光はその界面で反射することなく、基板８に導入される。基板８表面は反応液（水）で覆われており、その界面にてレーザ光は全反射し、エバネッセント照明となる。これにより、高いＳ／Ｎで蛍光測定が可能になる。
　尚、基板の近傍には、温調器が配置されているが、図では省略した。また、通常観察のため、プリズム下部よりハロゲン照明ができる構造としているが、図ではこれを省略している。
　また、レーザ光源１０１ａ，１０１ｂとは別にレーザ光源１００（ＹＡＧレーザ，３５５ｎｍ）を配置し、ダイクロイックミラー１０３（４００ｎｍ以下を反射）でレーザ光源１０１ａ，１０１ｂのレーザ光と重ね合わせ同軸にして照射できるようにした。本レーザは、取込まれたｄＮＴＰ誘導体の蛍光検出後、ｄＮＴＰ誘導体を伸長可能な状態に戻す工程に使用するものである。
　基板８の上部には、試薬などを流し、反応させるためのフローチャンバ９が構成されている。チャンバには導入口１２があり、分注ノズル２６を有する分注ユニット２５，試薬保管ユニット２７，チップボックス２８により、目的の試薬液の注入などを行う。試薬保管ユニット２７には、試料液容器２７ａ，ｄＮＴＰ誘導体溶液容器２７ｂ，２７ｃ，２７ｄ，２７ｅ（２７ｃ，２７ｄ，２７ｅは予備）、及び洗浄液容器２７ｆ等が配置されている。チップボックス２８内の分注チップを分注ノズル２６に取り付け、適当な試薬液を吸引し、チャンバ導入口から基板の反応領域に導入し、反応させる。廃液は廃液チューブ１０を介して廃液容器１１に排出される。これらは制御ＰＣ２１により自動的に行われる。
　フローチャンバは光軸方向に透明材で形成され、蛍光検出される。蛍光１３は、自動ピントあわせ装置２９で制御される集光レンズ（対物レンズ）１４で集められ、フィルタユニット１５で必要な波長の蛍光を取出し、不必要な波長の光を除去する。そして、波長分散プリズム１７ａで分光し、その像を結像レンズ１８ａにより、２次元センサカメラ１９ａ（高感度冷却ＣＣＤカメラ）に結像させ、検出する。カメラの露光時間の設定、蛍光画像の取込みタイミングなどの制御は、２次元センサカメラコントローラ２０ａを介して制御ＰＣ２１が行う。フィルタユニット１５には、レーザ光除去用のノッチフィルタ２種（４８８ｎｍ，５９４ｎｍ）、検出する波長体を透過させるバンドパス干渉フィルタ（透過帯域５１０－７００ｎｍ）を用いる。
　尚、装置は、調整などのため、透過光観察用鏡筒１６とＴＶカメラ２３とモニタ２４を備えており、ハロゲン照明などで基板８の状態をリアルタイムで観察できるようになっている。
　尚、波長分散プリズム１７ａにより光軸が傾くが、分散の異なるプリズムを複数枚組み合わせ、光軸が傾かないようにすることもできる。
　図２にあるように、基板８には位置きめマーカ３０，３１が刻印されている。マーカ３０，３１は領域８ｉｊの並びと平行に配置され、その間隔が規定されている。そこで、透過照明での観測でマーカを検出することにより、領域８ｉｊの位置を計算することができる。
　本実施例で使用する２次元センサカメラとして、ＣＣＤエリアセンサを使用した。画素サイズが７.４×７.４ミクロンで、画素数２０４８×２０４８画素の冷却ＣＣＤカメラを使用する。なお、２次元センサカメラとしては、ＣＣＤエリアセンサの他、Ｃ－ＭＯＳエリアセンサなどの撮像カメラなどを用いることができる。ＣＣＤエリアセンサにも、構造によって、背面照射型，正面照射型があり、どちらも使用できる。また、素子内部に信号の増倍機能を有する電子増倍型ＣＣＤカメラなども高感度化を図る上で有効である。また、センサは冷却型が望ましく、－２０℃程度以下にすることにより、センサの持つダークノイズを低減でき、測定の精度を高めることができる。
　反応領域８ａからの蛍光像を一度に検出してもいいし、分割することもできる。この場合、基板の位置を移動させるためのＸ－Ｙ移動機構部をステージ下部に配置し、制御ＰＣで照射位置への移動，光照射，蛍光像検出を制御する。本実施例では、Ｘ－Ｙ移動機構部は図示していない。
［反応の工程］
　段階的伸長反応の工程を以下に示す。反応工程は“Proc. Natl. Acad. Sci. USA、vol.100、pp3960、2003（非特許文献２）”、及び“Proc. Natl. Acad. Sci. USA、vol.102、pp5932、2005（非特許文献４）”を参考に行った。ストレプトアビジンを加えたバッファを導入口１２よりチャンバに導入し、ストレプトアビジンを金属構造体に固定されているビオチンに結合させ、ビオチン－アビジン複合体を形成させる。ビオチン修飾したターゲットである一本鎖鋳型ＤＮＡにプライマをハイブリさせ、前記鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体と大過剰のビオチンを加えたバッファをチャンバへ導入し、ビオチン－アビジン結合を介して、単分子の前記鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体を格子点に配置された金属構造体に固定する。固定反応後に、余剰な鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体、及びビオチンを洗浄用バッファにてチャンバより洗い流す。次に、それぞれ異なる４種の蛍光体で標識された３′末端がアリル基で修飾された４種のｄＮＴＰ（３′－Ｏ－allyl－ｄＧＴＰ－ＰＣ－Bodipy－ＦＬ－５１０，３′－Ｏ－allyl－ｄＴＴＰ－ＰＣ－Ｒ６Ｇ，３′－Ｏ－allyl－ｄＡＴＰ－ＰＣ－ＲＯＸ，３′－Ｏ－allyl－ｄＣＴＰ－ＰＣ－Bodipy－６５０）、及びThermo Sequenaseポリメラーゼを加えたThermo Sequenase Reactionバッファを導入口１２よりチャンバへ導入し、伸長反応を行う。鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体に取込まれたｄＮＴＰは、３′末端がアリル基で修飾されているため、前記鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体に１塩基以上取込まれることはない。伸長反応後、未反応の各種ｄＮＴＰ、及びポリメラーゼを洗浄用バッファで洗い流し、Ａｒレーザ光源１０１ａ，Ｈｅ－Ｎｅレーザ光源１０１ｂのそれぞれの光源から発振するレーザ光を同時にチップに照射する。レーザ照射により、鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体に取込まれたｄＮＴＰを標識する蛍光体を励起し、そこから発する蛍光を検出する。鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体に取込まれたｄＮＴＰを標識する蛍光体の蛍光波長を特定することにより、前記ｄＮＴＰの塩基種を特定できる。尚、エバネッセント照射であり、反応領域表面近傍のみが励起光照射領域となるため、前記表面以外の領域に存在する蛍光体を励起することは無く、背景光の少ない測定ができる。そのため、上記では、伸長反応後洗浄しているが、蛍光標識ｄＮＴＰ濃度が小さい場合、洗浄不要で測定が可能になる場合もある。
　次に、ＹＡＧレーザ光源１００より発振するレーザ光をチップへ照射し、前記複合体に取込まれたｄＮＴＰを標識する蛍光体を光切断により取除く。次いで、パラジウムを含んだ溶液を流路内に導入し、パラジウム触媒反応により、前記複合体に取込まれたｄＮＴＰの３′末端のアリル基を水酸基に変える。前記３′末端のアリル基を水酸基に変えることにより、前記鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体の伸長反応が再開可能となる。前記触媒反応後に、洗浄用バッファにてチャンバを洗浄する。これを繰返すことにより、固定された一本鎖鋳型ＤＮＡの配列を決定する。
　本システムでは、反応領域８ａの複数の領域８ｉｊからの発光を同時計測できるため、領域８ｉｊにそれぞれ異なる鋳型ＤＮＡを固定した場合、前記複数の異なる鋳型ＤＮＡ－プライマ複合体に取込まれたｄＮＴＰの塩基種を、つまり複数の鋳型ＤＮＡの配列を同時に決定できる。
［蛍光の分散像検出］
　図３は、基板の蛍光を波長分散して検出する方式の説明図である。図３（Ａ）は、基板８の表面の一部の概略図であり、ＤＮＡが固定されるべき複数の領域８ｉｊ（格子点）が形成されている。ＣＣＤカメラへの結像倍率を３７倍とし、ｄｘ＝１ｕｍの距離を５分割してＣＣＤ画素で検出する。格子点の最も近接する間隔は１ｕｍであり、その方向に分光させると、１画素あたり４０ｎｍの分散になり、５００ｎｍ－７００ｎｍの範囲にある４種の蛍光体からの蛍光を識別することは難しい。
　図３（Ｂ）のように最隣接している格子点ではなく、３番目の距離で隣接する点（図中の８－３２）の方向に分光すると、格子点間隔は３.６ｕｍであり、１画素あたり１１ｎｍの分散になる。これにより、５００ｎｍ－７００ｎｍの範囲にある４種の蛍光体からの蛍光を識別することができるようになる。
　図３（Ｃ）は、ＤＮＡが固定されるべき複数の領域８ｉｊ（格子点）に金のナノ構造物を作成し、図３（Ｂ）の方向に分光して検出したときの蛍光・発行スペクトルを示す。図では、格子点８－１１と８－３２からのスペクトルが検出されている。金のナノ構造体からはルミネセンスが発生することが知られており、図のスペクトルはそれを示している。途中に強度が急激に小さくなっている部分があるが、これは、フィルタユニット１５内の、５９４ｎｍノッチフィルタにより、カットされているためである。この谷の位置を解析し、マーキングすることにより、各格子点からの蛍光の波長軸を構成することができる。
　図３（Ｄ）は、ｄＮＴＰを伸長反応させた後の蛍光スペクトルであり、蛍光体の蛍光に基づくピークが観察される。５９４ｎｍの基準点を元に、蛍光ピークを算定することにより蛍光体種を決定できる。図では、Ｒ６ＧとＲＯＸであり、塩基種がそれぞれ、Ｔ，Ａと決定される。
　以上のように、本実施形によれば、分散分光イメージング法に基づくシステムにおいて、特定の格子点から発する蛍光像を、特定の格子点から隣接する距離が２番目以降の任意の格子点に向かう角度を波長分散方向とし、分光された波長ごとの強度を測定する方式により、蛍光体の識別を精度良く行うことができる。また、金属構造物からの光ルミネセンスを検出することにより、波長基準を基板の反応点ごとに得ることができ、分散分光イメージング方式では困難であった発光した蛍光体の種別判定が高精度に行えるようになり、結果として高精度な塩基配列決定が可能となる。
　基板表面上の金属の構造物は、金のほか、クロム，銀，アルミなどで構築することもできる。また、波長基準は、フィルタの中心波長だけではなく、レーザ散乱のスペクトルなどからも得ることができる。
　なお、本実施例では４種の異なる蛍光体を異なるｄＮＴＰに標識したが、４種のｄＮＴＰに同じ１種の蛍光体を標識することもできる。この場合、励起レーザ光源は１種となる。反応はＡ→Ｃ→Ｇ→Ｔ→Ａ→Ｃ・・・と順番に行う。
　また、石英製プリズム７に対してレーザ光を垂直に入射している。これにより、基板とプリズムを一体化して移動させることができる。
　本実施例により、例えば、測定すべきオリゴヌクレオチドが固定されるべき領域に対して、必要な２次元センサの画素数は、測定精度を損なわずに、従来の数１／１００倍から、１／５０倍以下と少なくすることができ、効率よく検出することができる。そのため、同じ２次元センサを使う場合、一時により多くの領域からの蛍光像を得ることができ、高スループットが達成できる。また、少ない画素数のカメラを使う場合には、より、安価に測定できることになる。
　また、実施例により、例えば、測定すべきオリゴヌクレオチドが固定された領域数が同じ場合、少ない画素数で、効率よく検出でき、２次元センサの価格を安価することができるようになる。また、光学分解能をオリゴヌクレオチドが固定される領域同士の間隔程度にすることができるため、大きな開口数の集光レンズを使う必要が無くなり、安価なレンズを使用することができ、液浸レンズも使う必要が無いので、操作性が向上できる。
　図４は、本実施例の構成を示す。本実施例では、４種の蛍光体を用いた段階的伸長反応によるＤＮＡシーケンシングを行う。チャンバ部の構成、チップの構成等は実施例１と同等である。以下、実施例１との相違点を中心に説明する。
　ｄＮＴＰの蛍光標識としてAlexa Fluor ４８８（商標），Ｃｙ３（商標），Ｃｙ５（商標），Ｃｙ５.５（商標）を用いる。Alexa Fluor ４８８は、最大蛍光波長が約５２０ｎｍの蛍光色素である。Ｃｙ３は、最大蛍光波長の約５７０ｎｍの蛍光色素である。Ｃｙ５は、最大蛍光波長の６７０ｎｍの蛍光色素である。Ｃｙ５.５は、最大蛍光波長の約６９４ｎｍの蛍光色素である。蛍光体は、ほかの種々の蛍光体を使用することも可能である。また、１蛍光体で標識された４種のｄＮＴＰを使うことも可能である。蛍光励起用のレーザ光源１０１ｃ（固体レーザ，５０５ｎｍ：Alexa Fluor ４８８，Ｃｙ３励起用）からのレーザ光をλ／４波長板３を通して円偏光とする。蛍光励起用のレーザ光源１０１ｄ（半導体レーザ，６３５ｎｍ：Ｃｙ５，Ｃｙ５.５励起用）からのレーザ光をλ／４波長板１０２ｄを通して円偏光とする。両レーザ光をミラー１０４ｄとダイクロイックミラー１０４ｃ（５２０ｎｍ以下を反射）で重ね合わせ、ミラー５を介して、全反射照明用の石英製プリズム７に図のように入射面に垂直に入射させ、ＤＮＡ分子を捕捉した基板８の裏側から照射する。石英製プリズム７と基板８はマッチングオイル（無蛍光グリセリン等）を介して接触させており、レーザ光はその界面で反射することなく、基板８に導入される。基板８表面は反応液（水）で覆われており、その界面にてレーザ光は全反射し、エバネッセント照明となる。これにより、高いＳ／Ｎで蛍光測定が可能になる。
　本実施例では、励起波長が５０５ｎｍ，６３５ｎｍと離れており、同じ波長分散素子で分光すると、分光する必要のない領域（たとえば、５７０－６２０ｎｍ）まで分光することになる。この波長帯の蛍光を検出しても結果に影響を与えないだけでなく、使わない画素が生じるため、ＣＣＤを有効に使えなくなる。このため、集光レンズ（対物レンズ）１４で集められ、フィルタユニット１５で必要な波長の蛍光を取出し、不必要な波長の光を除去し、ダイクロイックミラー３２により、Alexa Fluor ４８８，Ｃｙ３用蛍光成分と、Ｃｙ５，Ｃｙ５.５用蛍光成分とに分離する。そして、それぞれを波長分散プリズム１７ａ，１７ｂで分光し、その像を結像レンズ１８ａ，１８ｂにより、２次元センサカメラ１９ａ，１９ｂ（高感度冷却ＣＣＤカメラ）に結像させ、検出する。カメラの露光時間の設定、蛍光画像の取込みタイミングなどの制御は、２次元センサカメラコントローラ２０ａ，２０ｂを介して制御ＰＣ２１が行う。フィルタユニット１５は、レーザ光除去用のノッチフィルタ２種（５０５ｎｍ，６３５－６４２ｎｍ）と、検出する波長体を透過させるバンドパス干渉フィルタ（透過帯域５１０－７００ｎｍ）を備える。これにより、２次元センサカメラ１９ａでは、Alexa Fluor ４８８、Ｃｙ３用蛍光成分を検出するため、波長分散幅を５００－５８０ｎｍに、２次元センサカメラ１９ｂでは、Ｃｙ５，Ｃｙ５.５用蛍光成分を検出するため、波長分散幅を６３０－７００ｎｍにできる。比較的狭い範囲で分光すればよく、ＣＣＤ画素を有効に活用できる。実施例１では５００－７００ｎｍの２００ｎｍの範囲を分光したが、本実施例では、８０ｎｍの範囲で十分であり、同じ格子構造の基板を使う場合、より高精度に蛍光体を分離することができる。
　波長マーカは、レーザ散乱波長を検出するようにフィルタを調整するか、ルミネッセンスのスペクトルから、基準座標を選定する。
　実際の計測手順に従って配列決定法を説明する。モデル試料としてＭ１３－ＤＮＡ断片を使用する。末端を定法に従い、Ｍ１３－ＤＮＡ断片の末端をビオチン化する。ビオチン化ＤＮＡ溶液を図４の試料液容器２７ａに、Alexa Fluor ４８８で標識されたケージドｄＡＴＰ、Ｃｙ３で標識されたケージドｄＣＴＰ、Ｃｙ５で標識されたケージドｄＧＴＰ、Ｃｙ５.５で標識されたケージドｄＴＴＰ溶液（ポリメラーゼ含む）を混合してｄＮＴＰ誘導体溶液容器２７ｂに保持する。なお、標識されたケージドｄＮＴＰは、ヌクレオチドに２－ニトロベンジル基を結合したケージド化合物であり、ポリメラーゼにより、相補鎖として取込まれるが、相補鎖合成反応で連続的に取込まれる活性が抑えられている。このため、１塩基分伸長して反応が止まる。しかし、ついで、３６０ｎｍ以下の紫外線を照射すると、ケージド物質（２－ニトロベンジル基）が遊離し、ヌクレオチド本来の活性が生じ、次のｄＮＴＰの合成を起こすことができる。
　分注ユニット２５により、フローチャンバ内にテンプレートとなるビオチン化ＤＮＡを導入し、基板と反応させる。洗浄後、オリゴプライマを導入してビオチン化ＤＮＡにプライマをハイブリさせる。これにより相補鎖伸長反応を行う。まず洗浄後、標識ケージドｄＮＴＰ溶液を導入する。プライマ結合位置の次のテンプレートの塩基によって、取込まれる塩基が決定される。レーザ光源１０１ｃ（５０５ｎｍ），１０１ｄ（６３５ｎｍ）よりレーザ光を照射し、２次元センサカメラにて、蛍光測定を行う。実施例１と同様に、蛍光の有無や蛍光波長の違いにより、取込まれた塩基が判断できる。ついで、レーザ光源１００（３５５ｎｍ）よりレーザ光を照射し、ｄＡＴＰの活性を戻す。この手順を、複数サイクル行うことにより、塩基配列が決定できる。
　ＤＮＡポリメラーゼの基質として鋳型ＤＮＡに取込まれてＤＮＡ鎖伸長反応を保護基の存在により停止することができ、且つ検出され得る標識を持つ４種のｄＮＴＰの誘導体であり、なんらかの手段により該ｄＮＴＰ誘導体を伸長可能な状態に戻すことのできる試薬として、本実施例では、蛍光標識ケージドｄＮＴＰを使用したが、蛍光体とヌクレオチドをジスルフィド結合により結合したｄＮＴＰの誘導体などでも同様に実施可能である。この場合、蛍光体の存在で、伸長が停止し、Ｔｒｉｓ［２－carboxyethyl］phosphine試薬などによりジスルフィド結合を化学的に解離させて伸長可能な状態に戻すことができる。
　図５は、別の基板の格子構造と分散方向の概念図を示す。以下、実施例１や２との相違点を中心に説明する。
　図５では、ｄｘ＝１ｕｍ，ｄｙ＝１，２，３ｕｍの場合の長方格子構造の配置の場合の、格子点に対する分光方向とその場合のＣＣＤ１画素あたりの波長分散幅を示す。基板面で１ｕｍをＣＣＤ５画素で結像する場合であり、結像倍率が違う場合、ｄｘ，ｄｙの寸法が異なる場合等には、異なる値になる。本実施例では、最も隣接した格子点以外の方向に波長分散方向を設定することにより、ほかの格子点からの蛍光像と重ならずに、１画素あたりの波長範囲を大きくすることができ、蛍光強度，蛍光波長を精度よく検出することができる。
　図６は、別の基板の格子構造と分散方向の概念図を示す。以下、実施例１～３との相違点を中心に説明する。
　図６では、三角格子構造の配置の場合の、格子点に対する分光方向とその場合のＣＣＤ１画素あたりの波長分散幅を示す。条件は、実施例３と同じである。本実施例では、最も隣接した格子点以外の方向に波長分散方向を設定することにより、ほかの格子点からの蛍光像と重ならずに、１画素あたりの波長範囲を大きくすることができ、蛍光強度，蛍光波長を精度よく検出することができる。
　図７は基板とエバネッセント照明のためのプリズムとの接合部の別の構造を示す。以下、実施例１～４との相違点を中心に説明する。
　本実施例では、実施例１と同じく、石英製プリズム７に基板８をカップリングする。カップリング材として透明な弾性体、例えば、ＰＤＭＳ樹脂２０１（屈折率＝１.４２，内部透過率＝０.９６６／厚み２mm材）を介して接合する。ＰＤＭＳ樹脂の屈折率はガラスに近く、また透明であるため、基板とプリズムで挟み押し付けることにより光学的に接着する。測定中、基板内の測定視野の移動は、プリズム込みでＸＹステージにて行うことができる。
　図８と図９は、基板とエバネッセント照明のためのプリズムとの接合部の別の構造を示す。以下、実施例１～５との相違点を中心に説明する。
　本実施例では、測定基板２００は専用のホルダ２０３に埋め込まれて固定される。この下部（反応表面側，格子構造形成側）にフローチャンバ２０４が固定される。フローチャンバ２０４は、ＰＤＭＳで形成され、ホルダ２０３と接着され、測定基板２００の反応領域に試薬，洗浄液などをフローできるようになっている。これをＸＹステージ２０９（図９に図示）に固定された基板保持具２０５に接触させる。フローチャンバ２０４の流路２０８と貫通孔２０６の位置をそろえて配置する。貫通孔２０６は外部のフローシステムと連結される。また、基板保持具２０５は、その中央に大きな開口部２０７を有しており、集光レンズ１４と測定基板２００とが近接でき、蛍光を高効率で集光できる。
　測定基板２００の裏面（図では上側）のホルダ２０３内の窪み２０２にマッチングオイルを保持し、プリズム７を配置する。窪み２０２に、マッチングオイルに替えてＰＤＭＳ樹脂を埋め、マッチングさせてよい。
　プリズム７はプリズムホルダ２１０に固定されており、基板との着脱機能を有しており、エバネッセント照明する場合に基板と接着する。
　尚、プリズムをアクリルなどで作成し、それを基板と一体化して固着した状態のものを使うこともできる。
　反応基板の別の実施例を示す。以下、実施例１～７との相違点を中心に説明する。
　本実施例における反応基板の構造を図１０に示す。基板６０は、反応領域６０ａを有し、その内部にＤＮＡが固定される領域６０ｉｊが複数形成されており、さらに複数の６０ｉｊの周りを光学的に不透明なマスク６０ｂで覆う構造である。マスク材料としては、アルミニウム，クロムなどの金属，炭化シリコンなどが適用でき、蒸着などで薄膜化する。反応領域６０ｉｊの個々の大きさは直径１００ｎｍ以下である。この開口をマスク６０ｂのなかに作成する方法としては、プロジェクション法での蒸着（蒸着源と基板との間に適当なマスクを配置して蒸着する），電子ビームリソグラフィー，フォトリソグラフィーによる直接描画等が考えられる。ドライエッチング，ウェットエッチングを用いても良い。
　微小開口を有する金属薄膜の基板の場合は、生体分子は開口中に固定する。この場合、生体分子周囲の試料液のラマン散乱光と生体分子近傍の金属構造物の光ルミネセンス・光散乱を検出することにより、構造物の空間位置を検出することができ、位置の基準マーカとして活用できる。
　また、開口中に金属構造体を作成してもよい。
　本実施例によっても、実施例１と同様の効果が得られる。また、反応領域６０ｉｊ以外はマスクされているため、不要な迷光，蛍光が低減でき、より高感度に測定することができるようになる。
　伸長反応を利用したＤＮＡシーケンサ、全反射蛍光方式のＤＮＡマイクロアレイリーダーなどに利用できる。
５，１０４ｂ　ミラー
７　プリズム
８，６０　基板
８ａ，６０ａ　反応領域
８ｉｊ　ＤＮＡが固定される領域（ｄｘ，ｄｙは領域８ｉｊの間隔の寸法）
９　フローチャンバ
１０　廃液チューブ
１１　廃液容器
１２　導入口
１３　蛍光
１４　集光レンズ（対物レンズ）
１５　フィルタユニット
１６　透過光観察用鏡筒
１７ａ，１７ｂ　波長分散プリズム
１８ａ，１８ｂ　結像レンズ
１９ａ，１９ｂ　２次元センサカメラ
２０ａ，２０ｂ　２次元センサカメラコントローラ
２１　制御ＰＣ
２２，２４　モニタ
２３　ＴＶカメラ
２５　分注ユニット
２６　分注ノズル
２７　試薬保管ユニット
２７ａ　試料液容器
２７ｂ，２７ｃ，２７ｄ，２７ｅ　ｄＮＴＰ誘導体溶液容器
２７ｆ　洗浄液容器
２８　チップボックス
２９　自動ピントあわせ装置
３０，３１，６１，６２，６３　位置きめマーカ
３２，１０３，１０４ａ　ダイクロイックミラー
６０ｂ　マスク
６０ｉｊ　ＤＮＡが固定される反応領域
１００，１０１ａ，１０１ｂ，１０１ｃ，１０１ｄ　レーザ光源
１０２ａ，１０２ｂ，１０２ｃ，１０２ｄ　λ／４波長板
２００　測定基板
２０１　ＰＤＭＳ樹脂
２０２　窪み
２０３　ホルダ
２０４　フローチャンバ
２０５　基板保持具
２０６　貫通孔
２０７　開口部
２０８　流路
２０９　ＸＹステージ
２１０　プリズムホルダ

Claims (19)

  1. 　生体関連分子が固定される基板を備え、当該基板に蛍光測定用の光を照射し、生じる蛍光を分光し、２次元センサに測定する蛍光分析装置であって、
    　前記基板において、前記生体関連分子が固定されうる複数の領域が、格子構造の格子点位置に設けられ、ある格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させる装置。
  2. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　ある格子点から発する蛍光像を、当該格子点から隣接する最短の格子点に向かう角度に対して＋１０度～＋１７０度、又は、－１０度～－１７０度の範囲の方向に波長分散することを特徴とする装置。
  3. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　ある格子点から発する蛍光像を、当該格子点からの距離が２番目以降の任意の格子点に向かう方向に波長分散することを特徴とする装置。
  4. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記格子構造が、２次元の長方格子構造であることを特徴とする装置。
  5. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記格子構造が、三角格子構造であることを特徴とする装置。
  6. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記格子構造の格子点位置に金属の微小な構造物が設けられていることを特徴とする装置。
  7. 　請求項６記載の蛍光分析装置において、
    　前記金属の微小な構造物が、金，クロム，銀、又はアルミの微粒子であることを特徴する装置。
  8. 　請求項６記載の蛍光分析装置において、
    　前記金属の微小な構造物が、一部に微細な突起を有する構造体であることを特徴する装置。
  9. 　請求項６記載の蛍光分析装置において、
    　前記金属の微小な構造物が、励起光の波長以下の大きさの金属構造体であることを特徴とする装置。
  10. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、該格子構造の格子点位置に微小開口を有し、光学的に不透明な材質の薄膜で構成された基板を使用することを特徴とする蛍光分析装置。
  11. 　請求項６記載の蛍光分析装置において、
    　前記生体関連分子を金属構造体表面、又は開口部底部に固定することを特徴とする装置。
  12. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記基板にプリズムが光学接着されているか、又は、前記基板の一部がプリズム形状であり、当該プリズムを介して蛍光測定用の光を照射し、前記基板の表面にて全反射させ、エバネッセント場を形成することを特徴とする装置。
  13. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記基板とプリズムとの間に光学的に透明で弾性のある材料を挟むことにより前記基板と前記プリズムとを光学的に接着し、前記基板の表面で蛍光測定用の光を全反射させ、エバネッセント場を形成することを特徴とする装置。
  14. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記格子点の間隔が、１００ｎｍから１００００ｎｍであることを特徴とする装置。
  15. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　前記生体関連分子が固定されうる領域の大きさが１００ｎｍ径以下であることを特徴とする装置。
  16. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　蛍光を５００ｎｍから７００ｎｍの範囲で分光することを特徴とする装置。
  17. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　蛍光を少なくとも２つの波長帯に分け、それぞれを個別に波長分散させることを特徴とする装置。
  18. 　請求項１記載の蛍光分析装置において、
    　蛍光を２つの波長帯にわけ、それぞれを個別に最大１００ｎｍの範囲で波長分散させ、それぞれを２個の２次元センサにて検出することを特徴とする装置。
  19. 　生体関連分子が固定される基板に蛍光測定用の光を照射し、生じる蛍光を分光し、２次元センサに測定する蛍光分析方法であって、
    　前記基板において、前記生体関連分子が固定されうる複数の領域が、格子構造の格子点位置に設けられ、ある格子点から発する蛍光像を、隣接する最短の格子点に向かう方向以外の方向に波長分散させる方法。
PCT/JP2009/006456 2009-01-30 2009-11-30 蛍光分析装置、及び蛍光分析方法 Ceased WO2010086935A1 (ja)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US13/147,147 US8389959B2 (en) 2009-01-30 2009-11-30 Fluorescence analyzing device and fluorescence analyzing method

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2009-018952 2009-01-30
JP2009018952A JP5066110B2 (ja) 2009-01-30 2009-01-30 蛍光分析装置、及び蛍光分析方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2010086935A1 true WO2010086935A1 (ja) 2010-08-05

Family

ID=42395206

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2009/006456 Ceased WO2010086935A1 (ja) 2009-01-30 2009-11-30 蛍光分析装置、及び蛍光分析方法

Country Status (3)

Country Link
US (1) US8389959B2 (ja)
JP (1) JP5066110B2 (ja)
WO (1) WO2010086935A1 (ja)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP5687514B2 (ja) * 2011-02-17 2015-03-18 株式会社日立ハイテクノロジーズ 核酸配列解析装置
EP3256856A4 (en) * 2014-12-17 2018-06-06 Singulex, Inc. Multiplexed single molecule analyzer
JP6276809B2 (ja) * 2016-07-28 2018-02-07 Ckd株式会社 基板位置検出装置
KR20200034564A (ko) * 2018-09-20 2020-03-31 주식회사 제우스 플로우셀장치
KR102292599B1 (ko) 2019-11-06 2021-08-23 주식회사 뷰웍스 광학 분석 장치 및 광학 분석 방법

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1068694A (ja) * 1997-06-30 1998-03-10 Hitachi Ltd 核酸の塩基配列決定方法
JP2004271337A (ja) * 2003-03-07 2004-09-30 Hiroo Iwata 表面プラズモン共鳴現象を利用した細胞の多検体同時解析装置
JP2006292368A (ja) * 2005-04-05 2006-10-26 Hitachi High-Technologies Corp 電気泳動装置、及び電気泳動方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP3281902B2 (ja) 1996-03-25 2002-05-13 財団法人神奈川科学技術アカデミー プローブ走査型近接場光学顕微鏡
US6917726B2 (en) 2001-09-27 2005-07-12 Cornell Research Foundation, Inc. Zero-mode clad waveguides for performing spectroscopy with confined effective observation volumes
JP3525142B2 (ja) 2001-01-12 2004-05-10 独立行政法人 科学技術振興機構 金属ナノウェルを用いた蛍光分析用素子及びその製造方法
US7136161B2 (en) 2003-08-01 2006-11-14 Shimadzu Corporation Component analyzing apparatus with microchip
JP2005070031A (ja) 2003-08-01 2005-03-17 Shimadzu Corp マイクロチップを用いた成分分析装置

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH1068694A (ja) * 1997-06-30 1998-03-10 Hitachi Ltd 核酸の塩基配列決定方法
JP2004271337A (ja) * 2003-03-07 2004-09-30 Hiroo Iwata 表面プラズモン共鳴現象を利用した細胞の多検体同時解析装置
JP2006292368A (ja) * 2005-04-05 2006-10-26 Hitachi High-Technologies Corp 電気泳動装置、及び電気泳動方法

Also Published As

Publication number Publication date
JP2010175419A (ja) 2010-08-12
US8389959B2 (en) 2013-03-05
JP5066110B2 (ja) 2012-11-07
US20110284768A1 (en) 2011-11-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5337676B2 (ja) 蛍光分析装置および蛍光検出装置
JP5277082B2 (ja) 蛍光分析方法
US20220154274A1 (en) Method and System for Multiplex Genetic Analysis
US8680483B2 (en) Fluorescence detector
CN101393123B (zh) 用于检测靶物质的分析装置、分析方法、或其中使用的器件
US8175809B2 (en) Fluorescence analyzing method, fluorescence analyzing apparatus and image detecting method
JP6581707B2 (ja) 核酸分析装置、および核酸分析方法
JP5066110B2 (ja) 蛍光分析装置、及び蛍光分析方法
JP6416530B2 (ja) 蛍光観察装置、および蛍光観察方法
KR100483706B1 (ko) 레이저 유발 표면형광 검출 장치
JP5372876B2 (ja) 核酸分析デバイス，核酸分析装置、及び核酸分析方法
JP4982523B2 (ja) 蛍光分析方法，蛍光分析装置及び画像検出方法
JP2012023988A (ja) 核酸解析方法、その方法を実施する装置、及び核酸解析用試薬セット
JP5581228B2 (ja) 蛍光検出装置
KR100818351B1 (ko) 다채널 바이오 칩 스캐너
JP2009145320A (ja) 光分析装置
US7042565B2 (en) Fluorescent microarray analyzer
US8004673B2 (en) Photometric instrument
JP5171668B2 (ja) 基板の位置ずれを補正する方法

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 09839127

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 13147147

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 09839127

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1