WO2010073647A1 - 抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体 - Google Patents

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WO2010073647A1
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human
virus
antibody
seq
human influenza
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生田和良
纐纈律子
奥野良信
柚木幹弘
井手野祥次
大下昌利
久原基樹
百田匡寿
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Medical and Biological Laboratories Co Ltd
Research Foundation for Microbial Diseases of Osaka University BIKEN
University of Osaka NUC
Tanabe Pharma Corp
Original Assignee
Medical and Biological Laboratories Co Ltd
Research Foundation for Microbial Diseases of Osaka University BIKEN
Osaka University NUC
Benesis Corp
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    • C07K16/108—Orthomyxoviridae (F), e.g. influenza virus
    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A61P31/12—Antivirals
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    • C07K2317/70—Immunoglobulins specific features characterized by effect upon binding to a cell or to an antigen
    • C07K2317/76—Antagonist effect on antigen, e.g. neutralization or inhibition of binding

Definitions

  • the present invention has neutralizing activity against the H3N2 subtype of human influenza A virus, binds to the hemagglutinin HA1 region of the H3N2 subtype of human influenza A virus, or is moderate to human influenza B virus
  • the present invention relates to an anti-human influenza virus / human antibody having a total activity.
  • Influenza viruses belong to the Orthomyxoviridae family and are classified into three genera, type A, type B, and type C, and are referred to as influenza A virus, influenza B virus, and influenza C virus, respectively. In general, influenza viruses often refer to types A and B in particular.
  • the difference between A-type, B-type and C-type is based on the antigenicity difference between M1 protein and NP protein among the proteins constituting the virus particle.
  • influenza A virus is classified into subtypes such as H1N1, H2N2, and H3N2. Since human influenza A virus periodically mutates HA and NA, even if it is vaccinated corresponding to a conventional subtype, the effect cannot be expected in many cases.
  • HA hemagglutinin
  • NA neuraminidase
  • HA of influenza A virus is composed of regions with different structures, the head region and the stem region, which contain a receptor binding site for the virus to bind to the target cell.
  • the stem region Involved in the hemagglutination activity of HA, the stem region contains a fusion peptide necessary for membrane fusion between the viral envelope and the endosomal membrane of the cell, and is involved in the fusion activity (Non-patent Document 1).
  • Most anti-HA antibodies that recognize H1N1 and H2N2 subtypes of influenza A virus recognize the globular region of HA. However, this region is the most prone to antigenic mutations, and these antibodies do not react in common with human influenza A virus subtypes and lose their recognition as the viral HA antigen changes. There are many cases to do.
  • Patent Document 1 and Non-Patent Document 2 disclose that a polypeptide was synthesized from the amino acid sequence of one HA trunk region of influenza A virus H3N2 subtype, and an antibody against this polypeptide was obtained. These antibodies have weak virus neutralizing activity (Patent Document 1), and the polypeptide itself used as an antigen does not react with rabbit antiviral sera obtained by immunization with the H3N2 subtype, and is antigenic. There was also a problem in terms of point (Non-patent Document 2).
  • influenza virus subtypes If it is common to influenza virus subtypes and recognizes antigenic sites that are unlikely to cause antigenic mutations in HA and NA molecules, and can obtain an antibody that has neutralizing activity against influenza virus, it can be caused by viral infection. It can be used for diagnosis, prevention and treatment, and the antigen site itself is also useful as a vaccine.
  • antigen site itself is also useful as a vaccine.
  • Patent Document 4 an antibody that recognizes a specific polypeptide sequence in the stem region of the H3N2 subtype of influenza A virus but does not recognize the H1N1 subtype and the H2N2 subtype.
  • Patent Document 5 a human Fab antibody that neutralizes the H3N2 subtype of influenza A virus.
  • Influenza is a worldwide epidemic, and it is type A human influenza that causes many deaths (Patent Documents 2 to 4).
  • the H3N2 subtype of influenza A virus is a subtype that caused a global epidemic in the past, and in recent years it has been reported that resistant strains have also increased against drugs with anti-influenza virus action such as amantadine (New York Times, January 15, 2006).
  • drugs with anti-influenza virus action such as amantadine
  • JP 59-501714 Japanese Patent Laid-Open No. 6-100594 JP 7-265077 A JP 7-304799 A JP 2006-254777 A
  • An object of the present invention is to provide a human antibody having neutralizing activity against human influenza virus. More specifically, an object of the present invention is to provide a human antibody having a neutralizing activity by recognizing a highly conserved region against the H3N2 subtype of human influenza A virus or human influenza B virus.
  • the present inventors have conducted intensive studies, and as a result, cells capable of high-efficiency cell fusion with peripheral blood mononuclear cells and human-derived lymphocytes collected from healthy people who have been vaccinated with influenza. Hybridomas were prepared from the cells, and antibody-producing cells having binding activity to influenza virus-derived proteins were selected to produce anti-human influenza virus / human antibodies. Among the obtained antibodies, particularly for human influenza A virus H3N2 subtype or human influenza B virus, a highly conserved region is recognized and a human antibody having neutralizing activity is selected. The antibody of the invention was obtained.
  • the present invention comprises the following. 1. Has a neutralizing activity against the human influenza A virus H3N2 subtype, binds to the hemagglutinin HA1 region of the human influenza A virus H3N2 subtype, or has a neutralizing activity against the human influenza B virus, Anti-human influenza virus / human antibody. 2. 2. The anti-human influenza virus / human antibody according to item 1 above, wherein the anti-human influenza virus / human antibody does not have neutralizing activity against human influenza A virus H1 subtype and H2 subtype. 3. An anti-influenza / human antibody that has neutralizing activity against human influenza A virus H3N2 subtype has at least neutralizing activity against A / Hiroshima / 52/05 strain, and human influenza 2.
  • the anti-human influenza virus / human antibody according to item 1 above, wherein the antibody having neutralizing activity against type B virus has neutralizing activity against at least the B / Malaysia / 2506/04 strain. 4).
  • the epitope recognized by the antibody is a region containing amino acid sequences 173-181 and / or amino acids 227-239 from the N-terminal among the amino acid sequences constituting hemagglutinin HA1 of human influenza A virus H3N2 subtype 4.
  • the anti-human influenza virus / human antibody according to any one of 1 to 3 above, which is a region containing a sequence. 5).
  • the epitope comprises an amino acid sequence comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2 below, or an amino acid sequence in which 1 to 2 amino acids are substituted, deleted, added or introduced among these amino acid sequences
  • the epitope comprises an amino acid sequence comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 or 4 below, or an amino acid sequence in which one to two amino acids are substituted, deleted, added or introduced among these amino acid sequences
  • the anti-human influenza virus / human antibody according to item 4 above: 1) SSRISIYWTIVKP (SEQ ID NO: 3); 2) PSRISIYWTIVKP (SEQ ID NO: 4). 7).
  • the base sequence of DNA encoding the variable region of the antibody is selected from any one of the base sequences shown in SEQ ID NOs: 5 to 12 below, or one to a plurality of nucleotides in these base sequences are substituted or missing.
  • Anti-human influenza virus / human-type antibody containing any lost, added or introduced nucleotide sequence 1) GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA (SEQ ID NO: 5); 2) GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAG
  • the antibody having the variable region shown in SEQ ID NOs: 5 to 8 is an antibody having neutralizing activity against the H3N2 subtype of human influenza A virus, and SEQ ID NOs: 9 to 8.
  • the anti-human influenza virus / human antibody according to item 7 above, wherein the antibody having the variable region shown in 12 is an antibody having neutralizing activity against human influenza B virus. 10.
  • the DNAs shown in SEQ ID NOs: 5, 7, 9 and 11 are DNAs encoding the heavy chain variable regions
  • the DNAs shown in SEQ ID NOs: 6, 8, 10 and 12 are: 9.
  • the anti-human influenza virus / human antibody according to 8 above which is a DNA encoding a light chain variable region.
  • 11. 12 The anti-human influenza virus / human antibody according to any one of 1 to 11 above, wherein the antibody is an intact antibody.
  • the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention has a neutralizing activity for highly conserved regions of human influenza A virus H3N2 subtype or human influenza B virus, respectively.
  • the antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype has neutralizing activity against at least the A / Hiroshima / 52/05 strain (2005 isolated) virus strain.
  • the antibody against human influenza B virus has neutralizing activity against at least the B / Malaysia / 2506/04 strain (isolated in 2004) virus strain.
  • influenza virus vaccine strains of various ages for example, A / Aichi / 2/68 strain (1968 isolate), A / Guizhou / 54/89 strain (1989 isolate), A / Wyoming / 3/03 strain (2003 isolate) ), A / New York / 55/04 strain (2004 isolate) and A / Hiroshima / 52/05 strain (2005 isolate) and other human influenza A virus H3N2 subtype viruses Or B / Victoria / 2/87 strain (1987 isolate), B / Malaysia / 2506/04 strain (2004 isolate), B / Mie / 1/93 strain (1993 isolate), B / Shanghai It also has neutralizing activity against human influenza B viruses such as the / 261/02 strain (isolated in 2002).
  • the antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype of the present invention is at least influenza virus A / Guizhou / 54 / 89xA / PR / 8/34 (H3N2) when administered prophylactically or therapeutically in vivo. It has an effect on survival rate and weight loss against strain infection.
  • the antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype of the present invention has an activity against a region conserved for nearly 20 years, and an activity against a region conserved for more than 40 years. What has is also included. Moreover, the antibody with respect to human influenza B virus has activity with respect to the area
  • HI hemagglutination inhibition
  • Example 1-5 It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-5 It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-5) It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-5) It is a figure which shows the arrangement
  • E-2 monoclonal antibody It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-5 It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-5) It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-5) It is a figure which shows the result of having confirmed the dyeing
  • Example 1-6 It is a figure which shows the result of having confirmed the dyeing
  • Example 1--7 It is a figure which shows the arrangement
  • Example 1-8 It is a figure which shows the three-dimensional structure arrangement
  • Example 1-8) It is a figure which shows the contrast of the peptide chain which each monoclonal antibody of B-1 and D-1 recognizes, and the epitope on a database.
  • Example 1-8) It is a figure which shows the survival rate when each monoclonal antibody of B-1 and D-1 is administered preventively to five mice each.
  • Example 2-1 It is a figure which shows a body-weight change when each monoclonal antibody of B-1 or D-1 is administered preventively to five mice each. The plot shows the change in body weight of each individual.
  • Example 2-1 It is a figure which shows the survival rate when each monoclonal antibody of B-1 or D-1 is therapeutically administered to each five mice.
  • Example 2-2 It is a figure which shows a body-weight change when each monoclonal antibody of B-1 or -1 is therapeutically administered to each five mice. The plot shows the change in body weight of each individual.
  • Example 2-2 It is a figure which shows a body-weight change when each monoclonal antibody of B-1 or -1 is therapeutically administered to each five mice. The plot shows the change in body weight of each individual.
  • the present invention relates to an anti-human influenza virus / human antibody having the following characteristics (a) to (c).
  • (b) HI (hemagglutination inhibition) is below the detection limit.
  • each antibody of the present invention has no neutralizing activity against human influenza A virus H1N1 subtype and H2N2 subtype.
  • the antibody of the present invention against human influenza A virus H3N2 subtype has neutralizing activity against at least A / Hiroshima / 52/05 strain (isolated in 2005), and each influenza virus vaccine strain of each age, A / Aichi / 2/68 (1968), A / Guizhou / 54/89 (1989), A / Wyoming / 3/03 (2003) and A / New York / 55/04 ( It has neutralizing activity against each virus of human influenza A virus H3N2 subtype, such as (isolated in 2004).
  • the antibody of the present invention against human influenza B virus has neutralizing activity against at least B / Malaysia / 2506/04 strain (isolated in 2004), and further, influenza virus vaccine strains of each age, B / Victoria For each virus of human influenza B virus such as / 2/87 strain (isolated in 1987), B / Mie / 1/93 strain (isolated in 1993), B / Shanghai / 261/02 strain (isolated in 2002) Have neutralizing activity.
  • an antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype is the amino acid sequence of amino acids 173-181 counted from the N-terminus of the amino acid sequence constituting hemagglutinin HA1 of the human influenza A virus. And / or a region containing amino acids 227-239.
  • the amino acid sequence constituting the human influenza A virus H3N2 subtype is GenBank Accession No. EU501660 for A / Hiroshima / 52/05 strain, GenBank Accession No. D49963 for A / Guizhou / 54/89 strain, The A / Wyoming / 3/03 strain is disclosed in GenBank Accession No. AY531033, and the A / New York / 55/04 strain is disclosed in GenBank Accession No. EU501486.
  • the 227th amino acid counted from the N-terminus is S (serine) or P (proline), but this difference affects the neutralizing activity.
  • S serine
  • P proline
  • the 173rd mutation is N (asparagine) or K (lysine), except for A / Aichi in 1968, K, and in the literature it is K or E (glutamic acid).
  • N asparagine
  • K lysine
  • the peptide chain (epitope) relating to the region containing the 173-181th amino acid sequence is specifically an amino acid sequence comprising the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or 2, and among these sequences, It consists of an amino acid sequence in which 1 to 2 amino acids may be substituted, deleted, added or introduced.
  • the peptide chain (epitope) relating to the region containing the 227-239th amino acid sequence is specifically an amino acid sequence containing the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 or 4, or 1 to 2 of these sequences The amino acid sequence may be substituted, deleted, added or introduced.
  • NFDKLYIWG SEQ ID NO: 1
  • KFDKLYIWG SEQ ID NO: 2
  • SSRISIYWTIVKP SEQ ID NO: 3
  • PSRISIYWTIVKP SEQ ID NO: 4
  • A-1 Human antibody against human influenza A virus H3N2 subtype (B-1) Heavy chain variable region sequence: GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA (SEQ ID NO: 5).
  • A-2 Human antibody against human influenza A virus H3N2 subtype (D-1) Heavy chain variable region sequence: CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTATTACTTTGACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA (SEQ ID NO: 7).
  • E-2 Human antibody against human influenza B virus (E-2) Heavy chain variable region sequence: CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA (SEQ ID NO: 9).
  • B-2 Human antibody against human influenza B virus (B-3) Heavy chain variable region sequence: CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA (SEQ ID NO: 11).
  • the antibody of the present invention is not particularly limited as long as it has the above characteristics.
  • the base sequence of the variable region of the human antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype is not limited to the base sequence shown in any of SEQ ID NOs: 5 to 8, but the human influenza A virus H3N2 subtype Any one having a substitution, deletion, addition or introduction of one or more nucleotides in the above sequence may be used as long as it has a neutralizing ability for the type.
  • substitution of one to a plurality of nucleotides for example, it has neutralizing ability due to codon degeneracy and the like, but may have different base sequences.
  • the antibody having neutralizing ability against the type A virus H3N2 subtype may be an antibody that recognizes any of the above peptide chains (epitope).
  • the base sequence of the variable region of the human antibody against human influenza B virus is not limited to the base sequence shown in any of SEQ ID NOs: 9 to 12 above.
  • one to a plurality of nucleotides among the above sequences may be substituted, deleted, added or introduced.
  • substitution of one to a plurality of nucleotides for example, it has neutralizing ability due to codon degeneracy and the like, but may have different base sequences.
  • Monoclonal antibodies obtained by the cell fusion method are usually derived from immunized animal species such as mice, but when mouse antibodies are administered to humans, they can be metabolized as foreign substances. It is short and cannot fully achieve the expected effect. Furthermore, human anti-mouse antibodies (HAMA) raised against administered mouse antibodies elicit immune responses that are inconvenient and dangerous for the patient, such as serum sickness or other allergic reactions. This limits the therapeutic value of monoclonal antibodies of other animal species in humans. Therefore, when a monoclonal antibody is administered to a human as a pharmaceutical or the like, a human antibody is strongly desired.
  • HAMA human anti-mouse antibodies
  • a method for producing a human-type antibody As a method for producing a human-type antibody, a method known per se or any method developed in the future can be adopted, but there is no uniform method universally applicable to any antibody in a human-type antibody.
  • various devices are required. For example, Sato, K. et al, Cancer Res., 53, 851-856, 1993 and JP-A-2008-161198 can be referred to.
  • the type of human antibody is not particularly limited, and may be Fab type or intact type. In order to exert the antibody activity effectively, an intact type antibody is desirable.
  • the intact type antibody is not particularly limited.
  • the complementarity determination region (CDR) of the antibody is derived from the original animal species, and the constant region (C region) is an antibody derived from an appropriate human. can do.
  • Chimeric antibodies are generally those in which the variable region containing the CDR of an immunized animal species antibody is linked to the constant region of a human antibody, and can be easily constructed by gene recombination techniques.
  • it may be a humanized antibody by CDR grafting in which the CDR of an immunized animal species antibody is transplanted into the variable region of a human antibody. Since CDR regions frequently undergo amino acid substitution, from the viewpoint of antigenicity, a human antibody having a human-derived CDR and a CDR derived from an immunized animal species may be included.
  • the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention having the above characteristics (a) to (c) can be specifically prepared by the following method. Collecting peripheral blood mononuclear cells for 10 mL of blood from healthy individuals 2-4 weeks after influenza vaccination, human-derived partner cells that can be fused with human-derived lymphocytes with high efficiency, such as SPYMEG cells (The hybridoma is easily and efficiently produced by cell fusion using a method such as MBL (manufactured by MBL) and the polyethylene glycol method, and an ELISA method in which a purified protein derived from influenza virus such as HA is immobilized or influenza virus infection
  • Anti-human influenza virus / human antibodies can be produced by selecting antibody-producing cells having binding activity to influenza virus-derived proteins by staining using cells as antigens.
  • a so-called human combinatorial antibody library in which human antibody fragments are displayed on the surface of Escherichia coli phage can be constructed, and antibodies can be screened by biopanning to obtain a desired human antibody.
  • the desired antibody can be screened without going through the immunization work on the animal.
  • the present invention further extends to a composition comprising the antibody of the present invention.
  • a composition comprising the antibody of the present invention.
  • an effective amount of one or more of the anti-human influenza virus / human antibodies of the present invention, and a pharmaceutically acceptable carrier is further included. It may be included.
  • the pharmaceutically acceptable salt includes the following.
  • Examples of basic addition salts include alkali metal salts such as sodium salts and potassium salts; alkaline earth metal salts such as calcium salts and magnesium salts; ammonium salts; trimethylamine salts and triethylamine salts; dicyclohexylamine salts and ethanolamines.
  • Aliphatic amine salts such as salts, diethanolamine salts, triethanolamine salts and brocaine salts; aralkylamine salts such as N, N-dibenzylethylenediamine; and heterocyclic aromatics such as pyridine salts, picoline salts, quinoline salts and isoquinoline salts
  • tetramethylammonium salt tetraethylammonium salt, benzyltrimethylammonium salt, benzyltriethylammonium salt, benzyltributylammonium salt, methyltrioctylammonium salt , Quaternary ammonium salts such as tetrabutylammonium salts; arginine; basic amino acid salts such as lysine salt and the like.
  • acid addition salts include inorganic acid salts such as hydrochlorides, sulfates, nitrates, phosphates, carbonates, hydrogencarbonates and perchlorates; for example acetates, propionates, lactates and maleates.
  • Organic acids such as fumarate, tartrate, malate, citrate, ascorbate; sulfonic acids such as methanesulfonate, isethionate, benzenesulfonate, p-toluenesulfonate Salts; for example, acidic amino acids such as aspartate and glutamate.
  • the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention is a normal preparation, for example, solid preparations such as tablets, powders, granules, capsules, liquid preparations, oil suspensions, or syrups or elixirs. It can also be used as any dosage form of a liquid agent such as an agent.
  • the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention can be used as an aqueous or oily suspension injection or nasal solution.
  • conventional excipients, binders, lubricants, aqueous solvents, oily solvents, emulsifiers, suspending agents, preservatives, stabilizers and the like can be arbitrarily used.
  • Example 1 Production of anti-human influenza virus / human antibody
  • Example 2 Production of anti-human influenza virus / human antibody
  • a monoclonal antibody produced using a hybridoma will be described.
  • influenza virus HA antigen Purification of influenza virus HA antigen was performed by methods well known to those skilled in the art. Each of the above influenza virus vaccine strains was inoculated into an embryonated chicken egg, cultured at 33-35 ° C. for 2 days, and allowed to stand at 4 ° C. overnight to collect the infected allantoic fluid. Subsequently, it concentrated by the ultrafiltration method etc., and the virus particle was refine
  • hybridoma 2006/2007 season influenza vaccine specifically A / Hiroshima / 52/05 strain as human influenza A virus H3N2 subtype or B / Malaysia / 2506/04 strain as human influenza B virus
  • a / Hiroshima / 52/05 strain as human influenza A virus H3N2 subtype or B / Malaysia / 2506/04 strain as human influenza B virus From healthy individuals vaccinated with the influenza vaccine prepared from 2 to 4 weeks after vaccination, collect 10 mL of peripheral blood and collect the mononuclear cell fraction using Ficoll Paque Plus (GE Healthcare), etc. The cell fraction was used for hybridoma production. The mononuclear cell fraction was washed with serum-free DMEM before cell fusion to obtain mononuclear cells as hybridoma-producing cells.
  • SPYMEG cells which are hybrid myeloma cells of mouse myeloma cells and human megakaryoblasts, were used. SPYMEG cells cultured in DMEM medium supplemented with 10% fetal bovine serum for 2 days were washed with serum-free DMEM before cell fusion.
  • the mononuclear cells and SPYMEG cells obtained above were mixed at a cell number ratio of 1: 5 to 1:10, and centrifuged to remove the supernatant. After sufficiently loosening the precipitated cell mass, 0.6 ⁇ mL of 50% polyethylene glycol 1500-PBS solution was slowly added over 1 minute while stirring, and then 10 ⁇ mL of serum-free DMEM was added slowly over 2 minutes. Furthermore, 10 ⁇ mL of serum-free DMEM was added, and then 1 ⁇ mL of fetal bovine serum was added to complete cell fusion. Next, the supernatant was removed after centrifugation and washed with 20 mL of DMEM-free DMEM.
  • HAT medium ⁇ DMEM supplemented with 15% fetal calf serum and medium additives for human hybridoma such as HAT (hypoxanthine, aminopterin, thymidine) and BM condimed (Roche) ⁇ was added, and the cells were gently suspended using a measuring pipette.
  • the purified HA antigen (1 ⁇ g / well) prepared in 2) above was immobilized on a 96-well microplate for ELISA, and further blocked with 5% skim milk in PBS-0.1% Tween 20 (TBS-T). Thereafter, 50 ⁇ L of the culture supernatant after the above cell suspension culture is added to each well of the ELISA microplate, reacted at 37 ° C. for 30 minutes, and purified HA antigen and anti-HA antigen antibody ( A primary immune complex with anti-human influenza virus / human antibody was formed. After the reaction between the primary immune complex and a peroxidase-labeled goat anti-antibody, anti-human influenza virus / human antibody in the culture supernatant was detected by a colored peroxidase reaction.
  • the cloned hybridoma strains were designated as R1D8, K4E7 and G4G11.
  • MDCK cells were dispensed at 2 ⁇ 10 4 cells / well in a 96-well microplate (for neutralizing activity measurement), and cultured at 37 ° C. overnight. Equal volume of each antibody culture supernatant removed by nonspecific inhibitor removal by RDE treatment and virus solution obtained from the following influenza virus vaccine strains prepared to 100 focus forming units / well each Mix and incubate at 37 ° C. for 1 hour. Next, 30 ⁇ L of this mixed solution was dispensed into each well of the microplate to which the cultured MDCK cells were added, and incubated at 37 ° C. for 30 minutes. Next, the solution in each well was removed, each well was washed with PBS, and fetal bovine serum-free MEM was added.
  • Human influenza virus vaccine strain A. Influenza A: A / New Caledonia / 20/99 strain (H1), A / Hiroshima / 52/05 strain (H3N2) B. Influenza B: B / Malaysia / 2506/04 strain
  • HI Hemagglutination inhibitory activity of antibody 25 ⁇ L of the RDE-treated hybridoma culture supernatant serial dilution (2-64 times) was added to each well of a 96-well microplate (for measuring hemagglutination inhibition activity (HI)), and then the virus used in each of the above 1) (8HA unit / 50 ⁇ L) was mixed with 25 ⁇ L and reacted at room temperature for 30 minutes. Thereafter, 50 ⁇ L of 0.75% guinea pig erythrocytes were added and mixed well, and the effect of the antibody in the hybridoma culture supernatant on the hemagglutination activity of each virus was examined. The results are shown in Table 1.
  • each monoclonal antibody-producing hybridoma culture supernatant of B-1 and D-1 was human influenza A virus. It was confirmed that the H3N2 subtype has high neutralizing activity, and the B-3 and E-2 monoclonal antibody-producing hybridoma culture supernatants have slightly higher neutralizing activity against human influenza B virus. It was confirmed to have. However, for each culture supernatant, the HI activity was below the detection limit.
  • Example 1-2 Confirmation of Hybridoma Culture Supernatant by Western Blotting for Each Virus HA A-1, A-2, B-1, B-2, B-3, C-1, D-1, D
  • the hybridoma culture supernatants produced with -2, E-1, or E-2 monoclonal antibodies were subjected to Western blot assay against HA of each virus.
  • plasma obtained from a patient by informed consent was used as a subject.
  • the purified HA antigen obtained in 2) of Example 1 was fractionated by SDS-PAGE, transferred to a poly (vinylidene fluoride) (PVDF) membrane, blocked with a 5% non-fat dry milk TBS-T solution, and not diluted.
  • PVDF poly (vinylidene fluoride)
  • Antigen-antibody reaction was performed by incubating the hybridoma culture supernatant or plasma diluted 2,000 times with PBS-T for 1 hour at room temperature. The blotted membrane was washed several times with PBS-T and subsequently incubated at room temperature for 1 hour in a solution containing peroxidase-conjugated anti-human IgG antibody. Development was performed with an ECL detection kit (Amersham Biosciences).
  • the culture supernatant of D-1 and B-1 monoclonal antibody-producing hybridomas showed binding activity against human influenza A virus H3N2 subtype HA, and produced A-1 and C-1 monoclonal antibodies.
  • the hybridoma culture supernatant showed binding activity to HA of human influenza B virus (FIG. 1).
  • Example 1-3 Staining activity of hybridoma culture supernatant against cells infected with various influenza virus vaccine strains A-2, B-1, B-2, D-1 and A-1, B-3, C-1, The monoclonal antibody-producing hybridoma supernatants D-2 and E-2 were examined for staining activity against influenza virus vaccine strain-infected cells of various ages shown below. The staining test was performed according to the method described in J. Clin. Microbiol., 28, 1308-1313 (1990).
  • MDCK cells infected with human influenza A virus H3N2 subtype strain or B strain shown below in PBS were tested using the same method as in Example 1 1) neutralization activity measurement. After washing with (pH 7.4), it was fixed with absolute ethanol at room temperature for 10 minutes.
  • hybridoma culture supernatants containing monoclonal antibodies each prepared a 4-fold serial dilution, and these were prepared as a 500-fold dilution of rabbit anti-human IgG serum (Jackson), goat anti-rabbit IgG serum (Cappel).
  • the mixture was reacted with a 500-fold diluted solution and a 10,000-fold diluted solution of a peroxidase-rabbit anti-peroxidase complex (manufactured by Cappel) for 40 minutes, and washed with PBS. Finally, the peroxidase reaction was performed using Graham, Karnovsky's method, J. Histochem. Cytochem., 14, 291 using 0.01% H 2 O 2 and 0.3 mg / mL 3,3′-diaminobenzidine tetrahydrochloride in PBS. -302 (1966). The stained cells were observed with a normal light microscope.
  • Influenza A virus H3N2 subtype strain Ai / 68 A / Aichi / 2/68 strain (isolated in 1968)
  • Gz / 89 A / Guizhou / 54/89 shares (separated in 1989)
  • Wy / 03 A / Wyoming / 3/03 shares (separated in 2003)
  • NY / 04 A / New York / 55/04 shares (separated in 2004)
  • Hi / 05 A / Hiroshima / 52/05 shares (separated in 2005)
  • the culture supernatant of the B-1 monoclonal antibody-producing hybridoma was obtained from the A / Aichi / 2/68 strains (isolated in 1968) after each of the virus strains derived from the human influenza A type H3N2 subtype.
  • the culture supernatant of D-1 monoclonal antibody-producing hybridoma showed neutralizing activity against each virus strain after A / Guizhou / 54/89 strain (isolated in 1989) .
  • Culture supernatant of each monoclonal antibody-producing hybridoma of E-2 and B-3 is neutralized against each virus strain after B / Victoria / 2/87 strain (separated in 1987) against human influenza B type Showed activity. This confirms that these monoclonal antibodies have neutralizing activity against the influenza A H3N2 subtype or influenza B, even against strains that have been preserved for about 40 years or more than 20 years ago. (FIG. 2).
  • RNA extraction and human antibody (IgG) sequence-specific RT-PCR The hybridoma obtained by the above cloning was homogenized in a nucleic acid extraction reagent (RNAiso TM , Takara Bio), and total RNA was purified according to the protocol of the kit. CDNA synthesis was performed using a part of the purified total RNA sample and the following RT primer or dT primer specifically designed for the following human antibody (IgG) gene H chain and L chain constant region sequences.
  • Human_IgGH_RT_Primer TGGAGGGCACGGTCACCACGC (SEQ ID NO: 13)
  • Human_IgGL_RT_Primer TTGTGACGGGCGAGCTCAGGC (SEQ ID NO: 14)
  • RACE PCR reaction was performed using the following PCR primers located in the upstream region of the above primers.
  • Human_IgGH_PCR_Primer AAGGTGTGCACGCCGCTGGTC (SEQ ID NO: 15) Human_IgGL ( ⁇ ) _PCR_Primer: GTGCTGCTGAGGCTGTAGGTG (SEQ ID NO: 16) Human IgL ( ⁇ ) PCR Primer 1: CCAYTGTCTTCTCCACRGTRCTCYC (SEQ ID NO: 17) Human IgL ( ⁇ ) PCR Primer 2: TCAGAGGAGGRYGGGAACAGAGTG (SEQ ID NO: 18)
  • A-1 Human antibody against human influenza A virus H3N2 subtype (B-1) Heavy chain variable region sequence: GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA (SEQ ID NO: 5).
  • A-2 Human antibody against human influenza A virus H3N2 subtype (D-1) Heavy chain variable region sequence: CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTATTACTTTGACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA (SEQ ID NO: 7).
  • E-2 Human antibody against human influenza B virus (E-2) Heavy chain variable region sequence: CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA (SEQ ID NO: 9).
  • B-2 Human antibody against human influenza B virus (B-3) Heavy chain variable region sequence: CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA (SEQ ID NO: 11).
  • Example 1-6 Staining activity of hybridoma culture supernatant against cells infected with various influenza virus vaccine strains A-2, B-1, B-2, D-1 monoclonal antibody producing hybridoma supernatant and C43 antibody,
  • the F49 antibody was examined for staining activity against A / Hiroshima / 52/05 (H3N2) strain-infected cells.
  • the staining test was performed by the usual indirect fluorescent antibody method.
  • the C43 antibody used as a control is an antibody against human influenza A virus, particularly a mouse monoclonal antibody against nucleoprotein (NP).
  • the F49 antibody is an antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype, particularly a mouse monoclonal antibody against HA.
  • MDCK cells infected with human influenza A virus H3N2 subtype A / Hiroshima / 52/05 were treated with PBS (pH 7) on the 8-well chamber slide by the same method as in Example 1) 1) neutralization activity measurement. After washing in .4), it was fixed with absolute ethanol for 10 minutes at room temperature.
  • the culture supernatant stock solution is reacted continuously with a 1000-fold diluted solution of fluorescein isothiocyanate (FITC) labeled rabbit anti-human IgG antibody (Jackson) for 60 minutes. Stained cells washed with PBS were observed with a fluorescence microscope.
  • FITC fluorescein isothiocyanate
  • Example 1--7 Staining activity of hybridoma culture supernatant against cells infected with various influenza virus vaccine strains About B-3 and E-2 monoclonal antibody-producing hybridoma supernatants, 9F3 antibody, and 9E10 antibody, B / Malaysia / The staining activity against 2506/04 strain infected cells was examined.
  • the staining test was performed by the usual indirect fluorescent antibody method.
  • the 9F3 antibody used as a control is an antibody against human influenza B virus, particularly a mouse monoclonal antibody against NP.
  • the 9E10 antibody is an antibody against human influenza B virus, and is a mouse monoclonal antibody particularly against HA.
  • MDCK cells infected with human influenza B virus B / Malaysia / 2506/04 strain were treated with PBS (pH 7.4) in the same manner as in Example 1 1) neutralization activity measurement. ) And then fixed with absolute ethanol at room temperature for 10 minutes.
  • the hybridoma culture supernatant containing the monoclonal antibody was stained with a culture supernatant stock solution that was continuously reacted with a 1000-fold diluted solution of FITC-labeled rabbit anti-human IgG antibody (manufactured by Jackson) for 60 minutes and washed with PBS. The cells were observed with a fluorescence microscope.
  • Each monoclonal antibody prepared was reacted. After incubation, the plate was washed 3 times with TBS containing 0.1% Tween 20, and reacted with Cy5-labeled anti-human IgG (H + L) diluted to 1 ⁇ g / mL. After incubation, wash 3 times with Tris-buffered saline (TBS) and 3 mM citrate buffer (SSC), dry, and measure fluorescence with a fluorescence scanner to detect peptides that react with monoclonal antibodies. went. As a control, a monoclonal antibody was not added, and the same experiment was performed at the same time for other operations.
  • TBS Tris-buffered saline
  • SSC 3 mM citrate buffer
  • Antigen-antibody reaction was carried out with each monoclonal antibody of B-1 or D-1, and epitope analysis was performed by the overlapping peptide scanning method. Specifically, it was carried out according to the protocol of RepliTope TM Microarrays (JPT Peptide Technologies Gmbh Germany).
  • the 173rd mutation is N (asparagine) or K (lysine), which is K other than A / Aichi in 1968, and is K or E (glutamic acid) in the literature.
  • N asparagine
  • K lysine
  • E glutamic acid
  • 229th and 230th amino acid differences of R (arginine) or G (glycine), I (isoleucine) or V (valine), respectively.
  • R arginine
  • G glycine
  • I isoleucine
  • V valine
  • the epitopes recognized by B-1 and D-1 monoclonal antibodies are antibodies that neutralize widely known influenza virus strains (F10 antibody, J.SuiSet al. Nature structural & molecular biology (2009)). Are considered to have different epitopes and different virus types that can be neutralized.
  • FIG. 15 the parts recognized by the B-1 and D-1 monoclonal antibodies are shown in italics.
  • the horizontal line indicates the number and epitope part described in Table 6 or B cell epitope in the above database, and the asterisk indicates the epitope part of No. 34 in Table ⁇ ⁇ 9 in which three-dimensional structure recognition antibodies against influenza are described in the same database.
  • ⁇ indicates a site where amino acid substitution is observed in literature other than the above five strains or strains registered in Pub Med.
  • Example 2 Production of Anti-Human Influenza Virus / Human Type Antibody
  • B-1 monoclonal antibody hereinafter referred to as B-1 antibody
  • D-1 monoclonal antibody hereinafter referred to as D-1 antibody
  • the culture supernatant was recovered, Protein G Sepharose TM; adsorb the antibody molecule with (Protein G Sepharose TM 4 Fast Flow GE Healthcare) column, after washing twice with PBS, 0.17 M, glycine pH 2.3 (Glycine) Elute with solution.
  • the eluted antibody molecules were collected by dialysis with PBS using a dialysis membrane (Spectra / por (R) (fractional molecular weight: 6K-8K); Nippon Genetics). The final yield was 0.249 mg / L for R1D8 and 24.38 mg / L for K4E7.
  • Example 2-1 Effect of anti-human influenza virus / human antibody (preventive effect)
  • the effect of the B-1 antibody or D-1 antibody obtained by purification in Example 2 on the survival rate and body weight change when prophylactically administered to mice was confirmed.
  • the B-1 antibody or D-1 antibody obtained by purification in Example 2 was intraperitoneally administered to 4-week-old female Balb / c mice (5 mice per group) at 100 ⁇ g / mouse, and influenza virus A 24 hours later.
  • the strain / Guizhou / 54 / 89xA / PR / 8/34 (H3N2) was inoculated nasally at 1x10 5 FFU / animal.
  • a control group was administered with 0.5 mL / mouse of PBS instead of each monoclonal antibody.
  • H3N2 With A / Guizhou / 54 / 89xA / PR / 8/34 (H3N2) strain, HA / NA of A / PR / 8/34 (H1N1) strain was replaced with A / Guizhou / 54/89 (H3N2) strain It is a reassortant virus.
  • the survival rate in the control group was 0%, whereas the survival rate was 40% in the D-1 antibody administration group and 100% in the B-1 antibody administration group.
  • a good effect was observed with the B-1 antibody (FIG. 16).
  • the body weight decreased slightly in the B-1 antibody administration group.
  • the body weight loss in the D-1 antibody administration group was comparable to that in the control group (FIG. 17). In FIG. 17, the weight change of each individual is shown in each plot.
  • Example 2-2 Effect of anti-human influenza virus / human antibody (therapeutic effect)
  • the effects of the B-1 antibody or D-1 antibody obtained by purification in Example 2 on the survival rate and body weight change when therapeutically administered to mice were confirmed.
  • Influenza virus A / Guizhou / 54 / 89xA / PR / 8/34 (H3N2) strain was inoculated 1x10 5 FFU / mouse into 4 week-old female Balb / c mice (5 per group) 24 hours later
  • the B-1 antibody and D-1 antibody obtained by purification in Example 2 were intraperitoneally administered at 100 ⁇ g / mouse.
  • a control group was administered with 0.5 mL / mouse of PBS instead of each monoclonal antibody.
  • the survival rate in the control group was 0%, whereas the survival rate was 40% in the D-1 antibody administration group and 60% in the B-1 antibody administration group (FIG. 18).
  • the change in body weight after virus infection was slightly lower in the B-1 antibody than in the control group.
  • the body weight loss of the D-1 antibody was comparable to that in the control group (FIG. 19).
  • the weight change of each individual is shown in each plot.
  • antibodies against the human influenza A virus H3N2 subtype of the antibodies of the present invention have neutralizing activity against at least the A / Hiroshima / 52/05 strain (2005 isolate) virus strain.
  • the antibody against human influenza B virus has neutralizing activity against at least the B / Malaysia / 2506/04 strain (2004 isolate).
  • the antibodies of the present invention can be used for influenza virus vaccine strains of various ages, such as A / Aichi / 2/68 strain (1968 isolate), A / Guizhou / 54/89 strain (1989 isolate), A / Wyoming / 3 / 03 strain (2003 isolate) and A / New York / 55/04 strain (2004 isolate) and other human influenza A virus H3N2 subtype viruses have neutralizing activity, or B / Victoria For each virus of human influenza B virus such as / 2/87 strain (isolated in 1987), B / Mie / 1/93 strain (isolated in 1993), B / Shanghai / 261/02 strain (isolated in 2002) Have neutralizing activity.
  • the antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype of the present invention has an activity against a region conserved for nearly 20 years, and an activity against a region conserved for more than 40 years. What has is also included. Moreover, the antibody with respect to human influenza B virus has activity with respect to the area
  • HI hemagglutination inhibition
  • the antibody against the human influenza A virus H3N2 subtype of the present invention is at least influenza virus A / Guizhou / 54 / 89xA / PR / 8/34 (H3N2) when administered prophylactically or therapeutically in vivo. It has an effect on survival rate and weight loss against strain infection.
  • the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention is an antibody particularly effective against a conserved region among influenza viruses that tend to mutate due to the above characteristics.
  • H3N2 subtype of influenza A virus is a subtype that has caused worldwide epidemic in the past, and in recent years, resistant strains have increased against drugs with anti-influenza virus action such as amantadine. Even if a new type of influenza virus is generated or prevalent, the composition containing the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention is expected to have a therapeutic effect against influenza. Since the anti-human influenza virus / human antibody of the present invention has neutralizing activity against human influenza A virus H3N2 subtype or human influenza B virus, at least one or more such antibodies are used.
  • the seed-containing composition is expected to be used as an influenza therapeutic agent or preventive agent.

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Abstract

本発明は、ヒトインフルエンザウイルスに対して中和活性を有するヒト型抗体に関する。より詳しくは、ヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプ又はヒトインフルエンザB型ウイルスに対して、高度に保存された領域を認識し、中和活性を有するヒト型抗体に関する。ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1領域に結合する、又は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する、抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体であり、抗体の可変領域をコードするDNAの塩基配列が、配列番号５～１２に示すいずれかの配列を含む抗体による。

Description

抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体
　本発明はヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプに対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1領域に結合する、又は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体に関する。
　本出願は、参照によりここに援用されるところの日本出願特願２００８－３３０４２５号及び特願２００９－１４６８３２号優先権を請求する。
　インフルエンザウイルスは、オルトミクソウイルス科に属し、A型、B型及びC型の3属に分類され、各々インフルエンザA型ウイルス、インフルエンザB型ウイルス、インフルエンザC型ウイルスという。一般にインフルエンザウイルスは、特にA型及びB型をいう場合が多い。A型、B型及びC型の違いは、ウイルス粒子を構成するタンパク質のうち、M1タンパクとNPタンパクの抗原性の違いに基づく。また、同じA型やB型であっても、エンベロープの表面上の分子である赤血球凝集素（ヘマグルチニン、以下、単に「HA」ともいう。）やノイラミニダーゼ(NA)の抗原性の違いから、それぞれ複数の亜型と株に分類され、例えばインフルエンザA型ウイルスでは、H1N1、H2N2、H3N2などの各サブタイプに分類される。ヒトインフルエンザA型ウイルスは、周期的にHAやNAを変異させるために、従前のサブタイプに対応するワクチン接種を受けても、その効果が期待できないことが多い。
　インフルエンザA型ウイルスのHAは、球状部領域(head region) と幹領域(stem region) という構造の異なる領域で構成され、球状部領域はウイルスが標的細胞に結合するための受容体結合部位を含み、HAの血球凝集活性に関与し、幹領域はウイルスのエンベロープと細胞のエンドソーム膜間の膜融合に必要な融合ペプチドを含み、融合活性に関与している（非特許文献１）。インフルエンザA型ウイルスのH1N1、H2N2各サブタイプを認識する抗HA抗体は、HAの球状部領域を認識するものが殆どである。しかし、この領域は最も抗原変異が起こり易い部位であり、これらの抗体はヒトインフルエンザA型ウイルスのサブタイプに共通して反応するものではなく、ウイルスのHAの抗原変化に伴い、認識性を消失する場合が多い。
　特許文献１及び非特許文献２において、インフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプの1種のHAの幹領域のアミノ酸配列よりポリペプチドを合成し、このポリペプチドに対する抗体を取得したことが開示されているが、これらの抗体はウイルスの中和活性が弱く（特許文献１）、また抗原として使用したポリペプチド自体も、H3N2サブタイプで免疫して得たウサギ抗ウイルス血清に反応を示さず、抗原性の点でも問題があった（非特許文献２）。
　インフルエンザウイルスのサブタイプに共通で、HA分子やNA分子などにおいて抗原変異の生じ難い抗原部位を認識し、インフルエンザウイルスに対して中和活性を有する抗体を得ることができれば、ウイルスの感染による発症の診断、予防並びに治療に利用でき、かつ、該抗原部位自体もワクチンとして有用となる。インフルエンザA型ウイルスのH1N1サブタイプ及びH2N2サブタイプに対してウイルス中和活性を有し、H3N2サブタイプに対して中和活性を示さない抗体について開示がある（特許文献２、３）。また、インフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプの幹領域の特定のポリペプチド配列を認識するが、H1N1サブタイプ及びH2N2サブタイプを認識しない抗体について開示がある（特許文献４）。さらに、インフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプを中和するヒトFab抗体についての開示がある（特許文献５、非特許文献３）。 
　インフルエンザは、世界的な流行を起こし、多くの死者が出るのはA型のヒトインフルエンザである（特許文献２～４）。インフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプは、過去に世界的な流行を起こした亜型であり、近年ではアマンタジン等の抗インフルエンザウイルス作用を有する薬剤に対しても耐性株が増加していることが報告されている（ニューヨークタイムス, January 15, 2006）。しかしながら、インフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプやインフルエンザB型ウイルスについて、20年近く前より高度に保存された領域に対して、効果的に中和活性を示す抗体については、報告がない。
特表昭59-501714号公報 特開平6-100594号公報 特開平7-265077号公報 特開平7-304799号公報 特開2006-254777号公報
Rev.Biochem., 56, 365-394 (1987) Cell, 28, 477-487 (1982) Microbiol.Immunol., 52, 162-170 (2008)
　本発明は、ヒトインフルエンザウイルスに対して中和活性を有するヒト型抗体を提供することを課題とする。より詳しくは、ヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプ又はヒトインフルエンザB型ウイルスに対して、高度に保存された領域を認識し、中和活性を有するヒト型抗体を提供することを課題とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために、鋭意研究を重ねた結果、インフルエンザワクチン接種した健常人より採取した末梢血単核球及びヒト由来リンパ球と高い効率で細胞融合が可能な細胞からハイブリドーマを作製し、インフルエンザウイルス由来タンパクに結合活性を有する抗体産生細胞を選別し、抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体を産生することができた。得られた抗体のうち、特にヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプ又はヒトインフルエンザB型ウイルスに対して、高度に保存された領域を認識し、中和活性を有するヒト型抗体を選別し、本発明の抗体を得た。
　本発明は、即ち以下よりなる。
１．ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1領域に結合する、又は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する、抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
２．抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体が、ヒトインフルエンザA型ウイルスH1サブタイプ及び同H2サブタイプに対して中和活性を有さない、前項１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
３．抗インフルエンザ・ヒト型抗体であって、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和活性を有する抗体が、少なくともA/Hiroshima/52/05株に対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する抗体が、少なくともB/Malaysia/2506/04株に対して中和活性を有する、前項１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
４．抗体が認識するエピトープが、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1を構成するアミノ酸配列のうち、Ｎ末端から数えて173-181番目のアミノ酸配列を含む領域及び／又は227-239番目のアミノ酸配列を含む領域である、前項１～３のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
５．エピトープが、以下の配列番号１又は２に示すアミノ酸配列含むアミノ酸配列、あるいはこれらのアミノ酸配列のうち、１～２個のアミノ酸が置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかのアミノ酸配列からなる、前項４に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体：
１）NFDKLYIWG（配列番号１）；
２）KFDKLYIWG（配列番号２）。
６．エピトープが、以下の配列番号３又は４に示すアミノ酸配列含むアミノ酸配列、あるいはこれらのアミノ酸配列のうち、１～２個のアミノ酸が置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかのアミノ酸配列からなる、前項４に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体：
１）SSRISIYWTIVKP（配列番号３）；
２）PSRISIYWTIVKP（配列番号４）。
７．抗体の可変領域をコードするDNAの塩基配列が、以下の配列番号５～１２に示すいずれかの塩基配列より選択される、あるいはこれらの塩基配列のうち、１～複数個のヌクレオチドが置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかの塩基配列を含む、抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体：
１）GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA（配列番号５）；
２）GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAGTCAGAGCGTGAGCAATTATGTGAATTGGTATCAACAGAAGCCAGGGAGAGCCCCTAGGCTCCTCATCTCTAGTGCGTCCAATTTGTGGGCTGGGGTCCCGCCAAGTTCAGTGGCCGTGGAGAAGAGACAGACTTCACTCTCACCATCACCAGTCTGCAACCTGAAGATTCTGCAGTTTACTACTGTCAACAGAGTTACAGTGACCTTCTCAGTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAA（配列番号６）；
３）CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号７）；
４）CAGACTGTGGTGACCCAGGAGCCATCGTTCTCAGTGTCCCCTGGAGGGACAGTCACACTCACTTGTGGCTTGAGCTCTGGCTCAGTCTCTCCTAGTTACTACGCCAGCTGGTACCAGCAGACCCCAGGCCAGGCTCCACGCACGCTCATCTACAACACAAACACTCGCTCCTCTGGGGTCCCTGATCGCTTCTCTGGCTCCTTCCTTGGGAGCGACGCTGCCCTCACCATCACGGGGGCCCAGGCAGATGATGAGTCTGATTATTTCTGTGTGCTGTATATGCCTAGTGGCGATTGGGTTTTCGGCGGAGGGACCAAGCTGACCGTCCTAGGT（配列番号８）；
５）CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号９）；
６）GAAATTGTGTTGGCACAGTCTCCAGCCACCCTGTCTTTGTCTCCAGGGGAAAGAGCCACCCTCTCCTGCAGGGCCAGTGAGACCGTTGACACCTACTTAGCCTGGTACCAACAGAAACCTGGCCAGGCTCCCAGGCTCCTCATAAATGATGCATCCAAGAGGGCCACTGGCATCCCAGCCAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGGACAGACTTCACTCTCACCATCAGCGGCCTAGAGCCTGAAGATTTTGCAGTTTATTGGTGTCAGCAGCATAGCAACTGGCCCCCCACCTTCGGCCAAGGGTCACGGCTGGAGATTAAA（配列番号１０）；
７）CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA（配列番号１１）；
８）CAGTCTGTGCTGGCTCAGCCACCCTCAGCGTCTGGGACCCCCGGGCAGAGGGTCATCATCTCTTGTTCTGGAACCTCCTCCAACATCGGCGGTAATTCTGTCAACTGGTACCAGCACCCCCCAGGGGCGGCCCCGAGACTCCTCATCTATACTACCGATCAGCGACCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCACCTCTGCCTCCCTGGCCATCAGTGGGCTCCAATCTGAGGATGAGGCTGATTATTACTGTGAAGTTTGGGATGACAGCCTGACTCGTCCGGTGTTCGGCGGAGGGACCAAGTTGACCGTCCTACGT（配列番号１２）。
８．抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の抗原が、ヒトインフルエンザウイルスのA/Hiroshima/52/05株又はB/Malaysia/2506/04株である、前項７に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
９．抗体の可変領域をコードするDNAのうち、配列番号５～８に示す可変領域を有する抗体が、ヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプに対して中和活性を有する抗体であり、配列番号９～１２に示す可変領域を有する抗体が、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する抗体である、前項７に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
１０．抗体の可変領域をコードするDNAのうち、配列番号５、７、９及び１１に示すDNAが、重鎖可変領域をコードするDNAであり、配列番号６、８、１０及び１２に示すDNAが、軽鎖可変領域をコードするDNAである、前項８に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
１１．抗体が、インタクト抗体である、前項１～１１のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
１２．前項１～１１のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の可変領域をコードするDNAであり、以下の配列番号５～１２に示すいずれかの塩基配列より選択される、あるいはこれらの塩基配列のうち、１～複数個のヌクレオチドが置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかの塩基配列からなるポリヌクレオチドを含むDNA：
１）GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA（配列番号５）；
２）GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAGTCAGAGCGTGAGCAATTATGTGAATTGGTATCAACAGAAGCCAGGGAGAGCCCCTAGGCTCCTCATCTCTAGTGCGTCCAATTTGTGGGCTGGGGTCCCGCCAAGTTCAGTGGCCGTGGAGAAGAGACAGACTTCACTCTCACCATCACCAGTCTGCAACCTGAAGATTCTGCAGTTTACTACTGTCAACAGAGTTACAGTGACCTTCTCAGTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAA（配列番号６）；
３）CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号７）；
４）CAGACTGTGGTGACCCAGGAGCCATCGTTCTCAGTGTCCCCTGGAGGGACAGTCACACTCACTTGTGGCTTGAGCTCTGGCTCAGTCTCTCCTAGTTACTACGCCAGCTGGTACCAGCAGACCCCAGGCCAGGCTCCACGCACGCTCATCTACAACACAAACACTCGCTCCTCTGGGGTCCCTGATCGCTTCTCTGGCTCCTTCCTTGGGAGCGACGCTGCCCTCACCATCACGGGGGCCCAGGCAGATGATGAGTCTGATTATTTCTGTGTGCTGTATATGCCTAGTGGCGATTGGGTTTTCGGCGGAGGGACCAAGCTGACCGTCCTAGGT（配列番号８）；
５）CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号９）；
６）GAAATTGTGTTGGCACAGTCTCCAGCCACCCTGTCTTTGTCTCCAGGGGAAAGAGCCACCCTCTCCTGCAGGGCCAGTGAGACCGTTGACACCTACTTAGCCTGGTACCAACAGAAACCTGGCCAGGCTCCCAGGCTCCTCATAAATGATGCATCCAAGAGGGCCACTGGCATCCCAGCCAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGGACAGACTTCACTCTCACCATCAGCGGCCTAGAGCCTGAAGATTTTGCAGTTTATTGGTGTCAGCAGCATAGCAACTGGCCCCCCACCTTCGGCCAAGGGTCACGGCTGGAGATTAAA（配列番号１０）；
７）CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA（配列番号１１）；
８）CAGTCTGTGCTGGCTCAGCCACCCTCAGCGTCTGGGACCCCCGGGCAGAGGGTCATCATCTCTTGTTCTGGAACCTCCTCCAACATCGGCGGTAATTCTGTCAACTGGTACCAGCACCCCCCAGGGGCGGCCCCGAGACTCCTCATCTATACTACCGATCAGCGACCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCACCTCTGCCTCCCTGGCCATCAGTGGGCTCCAATCTGAGGATGAGGCTGATTATTACTGTGAAGTTTGGGATGACAGCCTGACTCGTCCGGTGTTCGGCGGAGGGACCAAGTTGACCGTCCTACGT（配列番号１２）。
１３．前項１～１１のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体を含む組成物。
　本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプ又はヒトインフルエンザB型ウイルスについて、各々高度に保存された領域に対して中和活性を有する。
　具体的には、本発明の抗体のうち、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、少なくともA/Hiroshima/52/05株(2005年分離)のウイルス株に対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対する抗体は、少なくともB/Malaysia/2506/04株(2004年分離)ウイルス株に対して中和活性を有する。さらに各年代のインフルエンザウイルスワクチン株、例えばA/Aichi/2/68株（1968年分離）、A/Guizhou/54/89株(1989年分離)、A/Wyoming/3/03株(2003年分離)、A/New York/55/04株(2004年分離)及びA/Hiroshima/52/05株(2005年分離)などのヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプの各ウイルスに対しても中和活性を有し、あるいはB/Victoria/2/87株(1987年分離)、B/Malaysia/2506/04株(2004年分離)、B/Mie/1/93株(1993年分離)、B/Shanghai/261/02株(2002年分離)などのヒトインフルエンザB型ウイルスの各ウイルスに対しても中和活性を有する。
　また、本発明のヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、in vivoにおいて予防的又は治療的に投与した場合に、少なくともインフルエンザウイルスA/Guizhou/54/89xA/PR/8/34 (H3N2)株感染に対して生存率及び体重減少に対して効果を示す。
　つまり、本発明のヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、20年近く前より保存されている領域に対して活性を有し、40年以上前より保存されている領域に対して活性を有するものも含まれる。また、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対する抗体は、20年以上前より保存されている領域に対して活性を有する。一方、本発明の抗体は、HI（hemagglutination inhibition、赤血球凝集抑制）活性は検出限界以下である。
A-1、A-2、B-1、B-2、B-3、C-1、D-1、D-2、E-1、又はE-2単クローン抗体産生の各ハイブリドーマの培養上清の各インフルエンザウイルスのHAに対する反応性をウエスタンブロットアッセイで確認した結果を示す図である。（実験例１－２） ハイブリドーマの培養上清の、様々な年代のインフルエンザウイルスワクチン株に対する中和活性を確認した結果を示す図である。（実験例１－４） B-1単クローン抗体の重鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） B-1単クローン抗体の軽鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） D-1単クローン抗体の重鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） D-1単クローン抗体の軽鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） E-2単クローン抗体の重鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） E-2単クローン抗体の軽鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） B-3単クローン抗体の重鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） B-3単クローン抗体の軽鎖可変領域の配列を示す図である。（実験例１－５） A-2、B-1、B-2、D-1の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ上清について、インフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する染色像を確認した結果を示す図である。（実験例１－６） B-3及びE-2単クローン抗体の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ上清について、インフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する染色像を確認した結果を示す図である。（実験例１－７） ヒトインフルエンザA型ウイルスH3H2サブタイプの各インフルエンザウイルスワクチン株のヘマグルチニンHA1領域に対して、B-1及びD-1の各単クローン抗体が認識するペプチド鎖（エピトープ）の配列を示す図である。（実験例１－８） B-1及びD-1の各単クローン抗体が認識するペプチド鎖のヒトインフルエンザA型ウイルスH3H2サブタイプのヘマグルチニンHA1領域の立体構造上の配置を示す図である。（実験例１－８） B-1及びD-1の各単クローン抗体が認識するペプチド鎖とデータベース上のエピトープの対比を示す図である。（実施例１－８） B-1及びD-1の各単クローン抗体を、マウス各５匹に予防的に投与したときの生存率を示す図である。（実験例２－１） B-1又はD-1の各単クローン抗体を、マウス各５匹に予防的に投与したときの体重変化を示す図である。プロットは、各個体の体重変化を示す。（実験例２－１） B-1又はD-1の各単クローン抗体を、マウス各々５匹に治療的に投与したときの生存率を示す図である。（実験例２－２） B-1又は-1の各単クローン抗体を、マウス各５匹に治療的に投与したときの体重変化を示す図である。プロットは、各個体の体重変化を示す。（実験例２－２）
　本発明は、下記特性(a)～(c)を有する抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体に関する。
(a)ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのA/Hiroshima/52/05株(2005年分離)のウイルス株に対して中和活性を有し、あるいはヒトインフルエンザB型ウイルスのB/Malaysia/2506/04株(2004年分離)ウイルス株に対して中和活性を有する。
(b)HI(hemagglutination inhibition、赤血球凝集抑制)は、検出限界以下である。
(c)さらに、本発明の各抗体は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH1N1サブタイプ及び同H2N2サブタイプに対して中和活性を有さない。
　ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する本発明の抗体は、少なくともA/Hiroshima/52/05株(2005年分離)に対して中和活性を有し、さらに各年代のインフルエンザウイルスワクチン株、A/Aichi/2/68株（1968年分離）、A/Guizhou/54/89株(1989年分離)、A/Wyoming/3/03株(2003年分離)及びA/New York/55/04株(2004年分離)などのヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプの各ウイルスに対して中和活性を有する。また、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対する本発明の抗体は、少なくともB/Malaysia/2506/04株(2004年分離)に対して中和活性を有し、さらに各年代のインフルエンザウイルスワクチン株、B/Victoria/2/87株(1987年分離)、B/Mie/1/93株(1993年分離)、B/Shanghai/261/02株(2002年分離)などのヒトインフルエンザB型ウイルスの各ウイルスに対して中和活性を有する。
　上記特性を有する本発明の抗体のうち、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、上記ヒトインフルエンザA型ウイルスのヘマグルチニンHA1を構成するアミノ酸配列のＮ末端から数えて173-181番目のアミノ酸配列を含む領域及び／又は227-239番目のアミノ酸配列を含む領域を認識する。ここで、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプを構成するアミノ酸配列は、A/Hiroshima/52/05株についてはGenBank Accession No. EU501660、A/Guizhou/54/89株についてはGenBank Accession No. D49963、A/Wyoming/3/03株についてはGenBank Accession No. AY531033、A/New York/55/04株についてはGenBank Accession No. EU501486に開示される。
　上記ヒトインフルエンザA型ウイルスのヘマグルチニンHA1を構成するアミノ酸配列のうち、Ｎ末端から数えて227番目のアミノ酸はS（セリン）又はP（プロリン）であるが、係る相違は中和活性には影響していない。文献上（Karoline et al Virology J. 2008, 5, 40）でも、同部位はS又はPである。同173番目の変異はN（アスパラギン）又はK（リシン）であり、1968年のA/Aichi以外はKであり、文献上はK又はE（グルタミン酸）である。また、229番目及び230番目については、文献上(Underwood, Mol. Immunol., 1987, 21, 7）、各々R（アルギニン）若しくはG（グリシン）、I（イソロイシン）若しくはV（バリン）の相違があり、238番目及び239番目においてもGenBankの登録配列では各々K若しくはN、P若しくはRのアミノ酸の相違が認められる。
　上記に鑑みて、173-181番目のアミノ酸配列を含む領域に係るペプチド鎖（エピトープ）は、具体的には配列番号１又は２に示すアミノ酸配列を含むアミノ酸配列であり、さらにこれらの配列のうち、１～２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、導入されていてもよいアミノ酸配列からなる。227-239番目のアミノ酸配列を含む領域に係るペプチド鎖（エピトープ）は、具体的には配列番号３又は４に示すアミノ酸配列を含むアミノ酸配列であり、又はこれらの配列のうち、１～２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、導入されていてもよいアミノ酸配列からなる。
１）NFDKLYIWG（配列番号１）
２）KFDKLYIWG（配列番号２）
３）SSRISIYWTIVKP（配列番号３）
４）PSRISIYWTIVKP（配列番号４）
　上記特性を有する本発明の抗体の可変領域をコードするDNAの塩基配列は、具体的には以下に示される。
Ａ－１．ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対するヒト型抗体（B-1）
重鎖可変領域配列：GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA（配列番号５）。
軽鎖可変領域配列：GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAGTCAGAGCGTGAGCAATTATGTGAATTGGTATCAACAGAAGCCAGGGAGAGCCCCTAGGCTCCTCATCTCTAGTGCGTCCAATTTGTGGGCTGGGGTCCCGCCAAGTTCAGTGGCCGTGGAGAAGAGACAGACTTCACTCTCACCATCACCAGTCTGCAACCTGAAGATTCTGCAGTTTACTACTGTCAACAGAGTTACAGTGACCTTCTCAGTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAA（配列番号６）。
Ａ－２．ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対するヒト型抗体（D-1）
重鎖可変領域配列：CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号７）。
軽鎖可変領域配列：CAGACTGTGGTGACCCAGGAGCCATCGTTCTCAGTGTCCCCTGGAGGGACAGTCACACTCACTTGTGGCTTGAGCTCTGGCTCAGTCTCTCCTAGTTACTACGCCAGCTGGTACCAGCAGACCCCAGGCCAGGCTCCACGCACGCTCATCTACAACACAAACACTCGCTCCTCTGGGGTCCCTGATCGCTTCTCTGGCTCCTTCCTTGGGAGCGACGCTGCCCTCACCATCACGGGGGCCCAGGCAGATGATGAGTCTGATTATTTCTGTGTGCTGTATATGCCTAGTGGCGATTGGGTTTTCGGCGGAGGGACCAAGCTGACCGTCCTAGGT（配列番号８）。
Ｂ－１．ヒトインフルエンザB型ウイルスに対するヒト型抗体（E-2）
重鎖可変領域配列：CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号９）。
軽鎖可変領域配列：GAAATTGTGTTGGCACAGTCTCCAGCCACCCTGTCTTTGTCTCCAGGGGAAAGAGCCACCCTCTCCTGCAGGGCCAGTGAGACCGTTGACACCTACTTAGCCTGGTACCAACAGAAACCTGGCCAGGCTCCCAGGCTCCTCATAAATGATGCATCCAAGAGGGCCACTGGCATCCCAGCCAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGGACAGACTTCACTCTCACCATCAGCGGCCTAGAGCCTGAAGATTTTGCAGTTTATTGGTGTCAGCAGCATAGCAACTGGCCCCCCACCTTCGGCCAAGGGTCACGGCTGGAGATTAAA（配列番号１０）。
Ｂ－２．ヒトインフルエンザB型ウイルスに対するヒト型抗体（B-3）
重鎖可変領域配列：CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA（配列番号１１）。
軽鎖可変領域配列：CAGTCTGTGCTGGCTCAGCCACCCTCAGCGTCTGGGACCCCCGGGCAGAGGGTCATCATCTCTTGTTCTGGAACCTCCTCCAACATCGGCGGTAATTCTGTCAACTGGTACCAGCACCCCCCAGGGGCGGCCCCGAGACTCCTCATCTATACTACCGATCAGCGACCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCACCTCTGCCTCCCTGGCCATCAGTGGGCTCCAATCTGAGGATGAGGCTGATTATTACTGTGAAGTTTGGGATGACAGCCTGACTCGTCCGGTGTTCGGCGGAGGGACCAAGTTGACCGTCCTACGT（配列番号１２）。
　本発明の抗体は、上記の特性を有する抗体であればよく、特に限定されない。例えば、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対するヒト型抗体の可変領域の塩基配列は、上記配列番号５～８のいずれかに示す塩基配列に限定されるものではなく、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和能を有するものであれば、上記配列のうち１～複数個のヌクレオチドが、置換、欠失、付加又は導入されたものであってもよい。１～複数個のヌクレオチドの置換の例として、例えばコドンの縮重等により、中和能を有するが、塩基配列の異なるものであってもよい。好ましくは、A型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和能を有する抗体が、さらには上述の各ペプチド鎖（エピトープ）のいずれかを認識する抗体であればよい。また、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対するヒト型抗体の可変領域の塩基配列も同様に、上記配列番号９～１２のいずれかに示す塩基配列に限定されるものではない。ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和能を有するものであれば、上記配列のうち１～複数個のヌクレオチドが、置換、欠失、付加又は導入されたものであってもよい。１～複数個のヌクレオチドの置換の例として、例えばコドンの縮重等により、中和能を有するが、塩基配列の異なるものであってもよい。
　細胞融合法で得られる単クローン抗体は、通常は免疫動物種、例えばマウス由来であるが、マウス型抗体をヒトに投与すると異物として代謝されうるので、ヒトにおけるマウス型抗体の半減期は比較的短く、期待された効果を充分に発揮できない。さらに、投与したマウス型抗体に対して発生するヒト抗マウス抗体(HAMA)は、血清病又は他のアレルギー反応など、患者にとって不都合で危険な免疫応答を惹起させる。このため、ヒトにおける他動物種型の単クローン抗体の医学療法的価値は制限されている。従って、単クローン抗体を医薬品等として、ヒトに投与する場合には、ヒト型抗体が強く望まれている。
　ヒト型抗体の製造方法は、自体公知の方法、又は今後開発されるあらゆる方法を採用することができるが、ヒト型抗体において任意の抗体に普遍的に適用し得る画一的な方法は存在せず、特定の抗原に対して十分な結合活性、中和活性を示すヒト型抗体を作製するためには種々の工夫が必要である。例えば、Sato, K. et al, Cancer Res., 53, 851-856, 1993や特開2008-161198号公報を参照することができる。ヒト型抗体のタイプとしては、特に限定されないが、Fab型であってもインタクトタイプであってもよい。抗体活性を効果的に発揮させるためには、インタクトタイプの抗体が望ましい。インタクトタイプの抗体は、特に限定されないが、例えば抗体の相補鎖決定領域(complementarity determinig region：CDR)はもとの動物種に由来し、定常領域(C領域)は適当なヒトに由来する抗体とすることができる。キメラ抗体は免疫動物種抗体のCDRを含む可変領域をヒト抗体の定常領域に連結したものが一般的で、遺伝子組換技術によって容易に構築することができる。また、免疫動物種抗体のCDRをヒト抗体の可変領域に移植するCDRグラフティングによるヒト型化抗体であってもよい。CDR領域はアミノ酸置換が頻繁に起こるので、抗原性の観点からはヒト由来CDRをもつヒト抗体と免疫動物種由来CDRを有していてもよい。
　上記特性(a)～(c)を有する本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体は、具体的には以下の方法により作製することができる。インフルエンザワクチン接種後、2～4週間後の健常人より血液10 mL分の末梢血単核球を採取し、ヒト由来リンパ球と高い効率で細胞融合が可能なヒト由来パートナー細胞、例えばSPYMEG細胞（MBL社製）とポリエチレングリコール法などの方法を用いて細胞融合することで簡便かつ効率的にハイブリドーマを作製し、HAなどのインフルエンザウイルス由来精製タンパクを固相化したELISA法、又は、インフルエンザウイルス感染細胞を抗原とした染色法により、インフルエンザウイルス由来タンパクに結合活性を有する抗体産生細胞を選別することで抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体を産生することが可能となる。
　他の製造方法として、例えば大腸菌ファージの表面に、ヒト型抗体断片を提示した、いわゆるヒト・コンビナトリアル抗体ライブラリーを構築し、バイオパニングにより抗体をスクリーニングして所望のヒト型抗体を得ることができる。この場合は、動物への免疫作業を介さずに、所望の抗体をスクリーニングすることができる。
　本発明は、さらに本発明の抗体を含む組成物にも及ぶ。また、本発明の組成物を、医薬用途に用いる場合には、本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体のうち、１種又は複数種を有効量含み、さらに薬学的に許容し得る担体を含んでいても良い。本発明において、薬学上許容される塩とは、以下が挙げられる。
　塩基性付加塩としては、例えばナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩；例えばカルシウム塩、マグネシウム塩等のアルカリ土類金属塩；例えばアンモニウム塩；例えばトリメチルアミン塩、トリエチルアミン塩；ジシクロヘキシルアミン塩、エタノールアミン塩、ジエタノールアミン塩、トリエタノールアミン塩、ブロカイン塩等の脂肪族アミン塩；たとえばＮ，Ｎ－ジベンジルエチレンジアミン等のアラルキルアミン塩；例えばピリジン塩、ピコリン塩、キノリン塩、イソキノリン塩等の複素環芳香族アミン塩；例えばテトラメチルアンモニウム塩、テトラエチルアンモニウム塩、ベンジルトリメチルアンモニウム塩、ベンジルトリエチルアンモニウム塩、ベンジルトリブチルアンモニウム塩、メチルトリオクチルアンモニウム塩、テトラブチルアンモニウム塩等の第４級アンモニウム塩；アルギニン塩；リジン塩等の塩基性アミノ酸塩等が挙げられる。
　酸付加塩としては、例えば塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩、りん酸塩、炭酸塩、炭酸水素塩、過塩素酸塩等の無機酸塩；例えば酢酸塩、プロピオン酸塩、乳酸塩、マレイン酸塩、フマール酸塩、酒石酸塩、りんご酸塩、くえん酸塩、アスコルビン酸塩等の有機酸塩；例えばメタンスルホン酸塩、イセチオン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、ｐ－トルエンスルホン酸塩等のスルホン酸塩；例えばアスパラギン酸塩、グルタミン酸塩等の酸性アミノ酸等を挙げることができる。
　かかる組成物は、医薬組成物として経口的又は非経口的に投与することができる。経口投与による場合、本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体は通常の製剤、例えば、錠剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤等の固形剤；水剤；油性懸濁剤；又はシロップ剤もしくはエリキシル剤等の液剤のいずれかの剤型としても用いることができる。非経口投与による場合、本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体は、水性又は油性懸濁注射剤、点鼻液として用いることができる。その調製に際しては、慣用の賦形剤、結合剤、滑沢剤、水性溶剤、油性溶剤、乳化剤、懸濁化剤、保存剤、安定剤等を任意に用いることができる。
　本発明の理解を助けるために、以下に実施例及び実験例を示して具体的に本発明を説明するが、本発明はこれらに限定されるものでないことはいうまでもない。
（実施例１）抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の作製
　本実施例では、ハイブリドーマを用いて、単クローン抗体を作製したものについて、説明する。
１）ウイルスの調製
　国立感染症研究所から分与されたヒトインフルエンザワクチン株、即ちA型ウイルスH1N1サブタイプとしてA/New Caledonia/20/99株、H3N2サブタイプとしてA/Hiroshima/52/05株を、ヒトインフルエンザB型ウイルスとしてB/Malaysia/2506/04株を用い、各々MDCK細胞（イヌ腎上皮細胞株）に感染させ、トリプシン存在下37℃で2～3日間培養後、ウイルスを採取した。
２）インフルエンザウイルスHA抗原の精製
　インフルエンザウイルスHA抗原の精製は、当業者には周知の方法で行った。上記各インフルエンザウイルスワクチン株を孵化鶏卵に接種し、33～35 ℃で2日間培養後、4 ℃で1晩放置し、感染尿膜腔液を採取した。次いで、限外ろ過法などで濃縮し、ショ糖密度勾配遠心法でウイルス粒子を精製した。すなわち、0～60 %のショ糖密度勾配中で回転数35,000 rpmで超遠心し、ショ糖密度40 %前後の画分を採取した。この濃縮ウイルス画分をエーテル処理した後、ホルマリンを添加し、ショ糖密度勾配遠心法でさらに精製してインフルエンザHA抗原を得た。
３）ハイブリドーマの作製
　2006/2007年シーズンインフルエンザワクチン、具体的には、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプとしてA/Hiroshima/52/05株又はヒトインフルエンザB型ウイルスとしてB/Malaysia/2506/04株から調製したインフルエンザワクチンを接種した健常人より、ワクチン接種2～4週間後に、末梢血10 mLを採取し、Ficoll Paque Plus （GE Healthcare社製）などを用いて単核球画分を採取し、ハイブリドーマ作製用細胞画分とした。単核球画分を、細胞融合前に血清無添加DMEMで洗浄し、ハイブリドーマ作製用細胞としての単核球を得た。ハイブリドーマ作製のパートナー細胞として、マウスミエローマ細胞とヒト巨核芽球のハイブリッドミエローマ細胞であるSPYMEG細胞（MBL社製）を用いた。SPYMEG細胞を10 %牛胎児血清添加DMEM培地で継代後2日間培養したものを、細胞融合前に血清無添加DMEMで洗浄した。
　次に、上記にて得た単核球とSPYMEG細胞を細胞数1:5～1:10の割合で混合し、遠心分離して上清を除去した。沈殿した細胞塊を充分ほぐした後、撹拌しながら、50 %ポリエチレングリコール1500-PBS溶液0.6 mLを1分間かけてゆっくりと添加した後、血清無添加DMEM 10 mLを2分間かけてゆっくり加えた。さらに血清無添加DMEM 10 mLを添加した後、牛胎児血清を1 mL添加し、細胞融合を完了させた。次に、遠心分離後上清を除き、血清無添加DMEM 20 mLで洗浄した。最後に、ゆるやかに細胞をほぐし、HAT培地｛15%牛胎児血清添加DMEMにHAT(ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン)及びBM condimed（Roche社製）などのヒトハイブリドーマ用培地添加剤を加えたもの｝を120 mL加え、メスピペットを用いてゆるやかに細胞を懸濁した。
４）ハイブリドーマのクローニング
　上記３）の細胞懸濁液を培養用96ウェルマイクロプレート6枚に分注し、5 % CO2を含む培養器中で、37 ℃で10～14日間培養した。この間、3～4日の間隔でHAT培地の半量交換を行った。続いて培養上清の一部を採り、ハイブリドーマのスクリーニングを行った。
　ELISA用96ウェルマイクロプレートに、上記２）で調製した精製HA抗原（1μg/ウェル）を固相化し、さらに5 % 脱脂粉乳のPBS-0.1 % Tween 20 (TBS-T)溶液でブロッキングした。その後、上記の細胞懸濁液培養後の培養上清50μLを該ELISA用マイクロプレートの各ウェルに加え、37℃で30分反応させてウェルの固相上で精製HA抗原と抗HA抗原抗体（抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体）による一次免疫複合体を形成させた。該一次免疫複合体とペルオキシダーゼ標識ヤギ抗抗体との反応後、着色ペルオキシダーゼ反応により培養上清中の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体を検出した。
　次に該抗体産生が確認された細胞が増殖している培養用マイクロプレートの各ウェル中に含まれる細胞を取り出し、限界希釈法を３回行い、上記同手法により目的の細胞をクローニングした。クローニングされたハイブリドーマ株をR1D8、K4E7及びG4G11とした。
５）抗体の精製
　各ハイブリドーマ株は、培養液中の牛胎児血清含有量を10%から2%に減少させ、最終的に無血清の培養液中で培養した。無血清培養液で3～7日間培養した各ハイブリドーマの培養上清100 mLを2,000rpm、10分遠心処理し、得られた上清を0.45μmフィルターで濾過して固形成分を除去し、Protein Gを固定化した6 %アガロースゲル（HiTrap Protein G HPTM、GE Healthcare社製）1 mLにより精製した。ハイブリドーマ株 R1D8、K4E7及びG4G11が産生する単クローン抗体を、各々B-1、D-1及びE-2と命名した。同様に、単クローン抗体としてその他のハイブリドーマ上清からA-1、A-2、B-2、B-3、C-1、D-2及びE-1などの単クローン抗体を精製した。
（実験例１－１）各ハイブリドーマの培養上清の性状
１）中和活性
　各ハイブリドーマ培養上清の各インフルエンザウイルスに対する中和活性測定は、Arch. Virol., 86, 129-135 (1985)、Microbiol. Immunol., 29, 327-335 (1985)に準じて行った。
　96ウェルマイクロプレート（中和活性測定用）に、MDCK細胞を2×104 個/ウェル分注し、37℃で一晩培養した。RDE処理により非特異インヒビター除去した各抗体の培養上清の8倍希釈液と、以下のインフルエンザウイルスワクチン株から得たウイルス溶液を各々100フォーカス形成単位/ウェルとなるように調製したものを等量混合し、37℃で1 時間保温した。次にこの混合液の30μLを、前記培養したMDCK細胞を加えたマイクロプレートの各ウェルに分注し、30分間、37℃で保温した。次に各ウェルの溶液を除去し、PBSで各ウェルを洗浄し、牛胎児血清無添加MEMを添加した。37℃で6～10時間保温後、添加液を除去し、細胞を室温下、無水エタノールで10分間処理し、細胞を固定した。各ウェルを乾燥させ、染色試験と同様の酵素抗体染色法により細胞の染色を行った。染色後、細胞を水道水で洗浄し、乾燥後、染色されたフォーカス数を光学顕微鏡下で計測した。中和活性は、フォーカス減数率で表示した。その結果を表１に示した。
ヒトインフルエンザウイルスワクチン株：
Ａ．インフルエンザA型：A/New Caledonia/20/99株(H1)、A/Hiroshima/52/05株(H3N2)
Ｂ．インフルエンザB型：B/Malaysia/2506/04株
２）抗体の血球凝集阻害活性(HI)
　RDE処理したハイブリドーマ培養上清の段階希液（2～64倍）を96ウェルマイクロプレート（血球凝集阻害活性(HI)測定用）の各ウェルに25μL加え、次に各上記１）で用いたウイルス（8HA単位/50μL）25μLと混合し、室温で30分間反応させた。その後、0.75 %モルモット赤血球50μLを加えよく混和し、各ウイルスの血球凝集活性に及ぼすハイブリドーマ培養上清中の抗体の影響を調べた。その結果を表１に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　各単クローン抗体産生ハイブリドーマ培養上清の、各インフルエンザウイルスに対する中和活性及びHI活性を調べた結果、B-1及びD-1の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ培養上清は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して高い中和活性を有することが確認され、B-3及びE-2の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ培養上清は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対してやや高い中和活性を有することが確認された。しかし、各培養上清について、HI活性はいずれも検出限界以下であった。
（実験例１－２）ハイブリドーマ培養上清の各ウイルスのHAに対するウエスタンブロッティングによる確認
　A-1、A-2、B-1、B-2、B-3、C-1、D-1、D-2、E-1、又はE-2単クローン抗体産生のハイブリドーマ培養上清について、各ウイルスのHAに対してウエスタンブロットアッセイを行った。対象として、インフォームドコンセントにより患者より得た血漿を用いた。実施例１の２）で得た精製HA抗原をSDS-PAGEで分画し、ポリフッ化ビリニデン(PVDF)膜に転写した後、5% 脱脂粉乳のTBS-T溶液でブロッキングし、希釈していないハイブリドーマ培養上清あるいは、PBS-Tで2,000倍希釈した血漿で、室温、１時間インキュベートし、抗原抗体反応を行った。ブロッティングされた膜を、PBS-Tで数回洗浄し、続いてペルオキシダーゼ結合抗ヒトIgG抗体を含む溶液内で、室温、１時間インキュベートした。現像はECL検出キット(Amersham Biosciences社製)によって行った。
　その結果、D-1及びB-1単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのHAに対して結合活性を認め、A-1及びC-1単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザB型ウイルスのHAに対して結合活性を認めた（図１）。
（実験例１－３）ハイブリドーマ培養上清の各種インフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する染色活性
　A-2、B-1、B-2、D-1ならびにA-1、B-3、C-1、D-2、E-2の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ上清について、以下に示すさまざまな年代のインフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する染色活性を調べた。染色試験は、J. Clin. Microbiol., 28, 1308-1313 (1990)に記載の方法に準じて行った。
　96ウェルマイクロプレート上で、実験例１の１）中和活性測定の場合と同手法により、以下に示すヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプ株又はB型ウイルス株に感染させたMDCK細胞を、PBS(pH7.4)で洗浄後、無水エタノールで室温下、10分間固定した。単クローン抗体を含むハイブリドーマ培養上清について、各々4倍段階希釈液を調製し、これらをウサギ抗ヒトIgG血清(Jackson社製)の500倍希釈液、ヤギ抗ウサギIgG血清(Cappel社製)の500倍希釈液、ペルオキシダーゼ-ウサギ抗ペルオキシダーゼ複合体(Cappel社製)の10000倍希釈液で連続的に、40分間ずつ反応させ、PBSで洗浄した。最後にペルオキシダーゼ反応を、0.01 %のH2O2と0.3 mg/mLの3,3′-ジアミノベンジジン四塩酸のPBS溶液を用い、Graham、Karnovskyの方法、J. Histochem. Cytochem., 14, 291-302 (1966)で行った。染色された細胞は通常の光学顕微鏡で観察した。
Ａ．インフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプ株
　Ai/68：A/Aichi/2/68株(1968年分離)
　Gz/89：A/Guizhou/54/89株(1989年分離)
　Wy/03：A/Wyoming/3/03株(2003年分離)
　NY/04：A/New York/55/04株(2004年分離)
　Hi/05：A/Hiroshima/52/05株(2005年分離)
Ｂ．ヒトインフルエンザB型ウイルス株
　Vi/87：B/Victoria/2/87株(1987年分離)
　Ma/04：B/Malaysia/2506/04株(2004年分離)
　Mi/93：B/Mie/1/93株(1993年分離)
　Sh/02：B/Shanghai/261/02株(2002年分離)
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表２の結果、A-2及びB-1の各単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプ由来の各株に対して高い染色活性を示すことが確認され、A-1、C-1、E-2の各単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して高い染色活性を示すことが確認された。これにより、これらの単クローン抗体は、インフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプ又はインフルエンザB型ウイルスに対して、約40年あるいは20年以上前より保存されている株に対して、染色活性を有することが確認された。
（実験例１－４）ハイブリドーマ培養上清の各種インフルエンザウイルスワクチン株に対する中和活性
　B-1、D-1ならびにE-2、B-3の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ上清について、実験例３に示すさまざまな年代のインフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する中和活性を調べた。中和活性の測定方法は、実験例１の手法に従った。
　その結果、B-1単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザA型H3N2サブタイプ由来の各ウイルス株のうち、A/Aichi/2/68株(1968年分離)以降の各ウイルス株に対して中和活性を示し、D-1単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、A/Guizhou/54/89株(1989年分離)以降の各ウイルス株に対して中和活性を示した。E-2及びB-3の各単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザB型に対してB/Victoria/2/87株(1987年分離)以降の各ウイルス株に対して中和活性を示した。これにより、これらの単クローン抗体は、インフルエンザA型H3N2サブタイプ又はインフルエンザB型に対して、約40年あるいは20年以上前より保存されている株に対しても中和活性を示す抗体も確認された（図２）。
（実験例１－５）各抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の可変領域の塩基配列
　上記の実験結果より、B-1、D-1及びE-2、B-3の各単クローン抗体（抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体）は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプあるいはヒトインフルエンザB型ウイルスに対して、40年あるいは20年近く前より保存されている領域を認識しうるものと考えられた。そこで、本実験例では、これらの単クローン抗体の可変領域をコードする塩基配列を調べた。
１）total RNAの抽出及びヒト抗体(IgG)配列特異的RT-PCR
　上記クローニングして得たハイブリドーマを、核酸抽出試薬(RNAisoTM、タカラバイオ）中でホモジェナイズし、キットのプロトコールに順じてtotalRNAを精製した。
　精製後のtotalRNAサンプルの一部と、以下のヒト抗体(IgG)遺伝子のH鎖、L鎖定常域配列特異的に設計された以下のRT プライマー又はdTプライマーを用いて、cDNA合成を行った。
Human_IgGH_RT_Primer：TGGAGGGCACGGTCACCACGC（配列番号１３）
Human_IgGL_RT_Primer：TTGTGACGGGCGAGCTCAGGC（配列番号１４）
　さらに、上記のプライマーの上流域に位置する以下のPCR プライマーを用いてRACE PCR反応を行った。
Human_IgGH_PCR_Primer：AAGGTGTGCACGCCGCTGGTC（配列番号１５）
Human_IgGL（κ）_PCR_Primer：GTGCTGCTGAGGCTGTAGGTG（配列番号１６）
Human IgL(λ)　PCR Primer 1：CCAYTGTCTTCTCCACRGTRCTCYC（配列番号１７）
Human IgL(λ)　PCR Primer 2：TCAGAGGAGGRYGGGAACAGAGTG（配列番号１８）
２）精製PCR産物
　得られたPCR産物を3 %アガロースゲルで電気泳動を行い、得られたバンドよりPCR産物を精製した。精製PCR産物よりDNAの塩基配列を解析した。解析は、BigDye(R) Terminators v3.1 Cycle Sequencing Kit(ABI社)を用い、ABI3730 Sequencer(ABI社)により行った。その結果、各単クローン抗体の重鎖可変領域配列及び軽鎖可変領域配列について、以下の配列番号５～１２に示す配列が確認された。さらに、各単クローン抗体の重鎖可変領域配列及び軽鎖可変領域配列ならびに翻訳アミノ酸配列については、図３～１０（配列番号１９～２６）に示すとおりであった。
Ａ－１．ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対するヒト型抗体（B-1）
重鎖可変領域配列：GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA（配列番号５）。
軽鎖可変領域配列：GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAGTCAGAGCGTGAGCAATTATGTGAATTGGTATCAACAGAAGCCAGGGAGAGCCCCTAGGCTCCTCATCTCTAGTGCGTCCAATTTGTGGGCTGGGGTCCCGCCAAGTTCAGTGGCCGTGGAGAAGAGACAGACTTCACTCTCACCATCACCAGTCTGCAACCTGAAGATTCTGCAGTTTACTACTGTCAACAGAGTTACAGTGACCTTCTCAGTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAA（配列番号６）。
Ａ－２．ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対するヒト型抗体（D-1）
重鎖可変領域配列：CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号７）。
軽鎖可変領域配列：CAGACTGTGGTGACCCAGGAGCCATCGTTCTCAGTGTCCCCTGGAGGGACAGTCACACTCACTTGTGGCTTGAGCTCTGGCTCAGTCTCTCCTAGTTACTACGCCAGCTGGTACCAGCAGACCCCAGGCCAGGCTCCACGCACGCTCATCTACAACACAAACACTCGCTCCTCTGGGGTCCCTGATCGCTTCTCTGGCTCCTTCCTTGGGAGCGACGCTGCCCTCACCATCACGGGGGCCCAGGCAGATGATGAGTCTGATTATTTCTGTGTGCTGTATATGCCTAGTGGCGATTGGGTTTTCGGCGGAGGGACCAAGCTGACCGTCCTAGGT（配列番号８）。
Ｂ－１．ヒトインフルエンザB型ウイルスに対するヒト型抗体（E-2）
重鎖可変領域配列：CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号９）。
軽鎖可変領域配列：GAAATTGTGTTGGCACAGTCTCCAGCCACCCTGTCTTTGTCTCCAGGGGAAAGAGCCACCCTCTCCTGCAGGGCCAGTGAGACCGTTGACACCTACTTAGCCTGGTACCAACAGAAACCTGGCCAGGCTCCCAGGCTCCTCATAAATGATGCATCCAAGAGGGCCACTGGCATCCCAGCCAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGGACAGACTTCACTCTCACCATCAGCGGCCTAGAGCCTGAAGATTTTGCAGTTTATTGGTGTCAGCAGCATAGCAACTGGCCCCCCACCTTCGGCCAAGGGTCACGGCTGGAGATTAAA（配列番号１０）。
Ｂ－２．ヒトインフルエンザB型ウイルスに対するヒト型抗体（B-3）
重鎖可変領域配列：CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA（配列番号１１）。
軽鎖可変領域配列：CAGTCTGTGCTGGCTCAGCCACCCTCAGCGTCTGGGACCCCCGGGCAGAGGGTCATCATCTCTTGTTCTGGAACCTCCTCCAACATCGGCGGTAATTCTGTCAACTGGTACCAGCACCCCCCAGGGGCGGCCCCGAGACTCCTCATCTATACTACCGATCAGCGACCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCACCTCTGCCTCCCTGGCCATCAGTGGGCTCCAATCTGAGGATGAGGCTGATTATTACTGTGAAGTTTGGGATGACAGCCTGACTCGTCCGGTGTTCGGCGGAGGGACCAAGTTGACCGTCCTACGT（配列番号１２）。
（実験例１－６）ハイブリドーマ培養上清の各種インフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する染色活性
　A-2、B-1、B-2、D-1の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ上清並びにC43抗体、F49抗体について、A/Hiroshima/52/05(H3N2)株感染細胞に対する染色活性を調べた。染色試験は、通常の間接蛍光抗体法で行った。ここで、コントロールとして用いられたC43抗体は、ヒトインフルエンザA型ウイルスに対する抗体であって、特に核タンパク(nucleoprotein: NP)に対するマウス単クローン抗体である。また、F49抗体はヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体であって、特にHAに対するマウス単クローン抗体である。
　8ウェルチャンバースライド上で、実験例１の１)中和活性測定の場合と同手法により、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプA/Hiroshima/52/05株を感染させたMDCK細胞をPBS(pH7.4)で洗浄した後、無水エタノールで室温下、10分間固定した。単クローン抗体を含むハイブリドーマ培養上清について、培養上清原液をフルオレセインイソチオシアネート（fluorescein isothiocyanate; FITC）標識ウサギ抗ヒトIgG抗体(Jackson社製)の1000倍希釈液で連続的に60分間ずつ反応させ、PBSで洗浄した染色された細胞は蛍光顕微鏡で観察した。
　その結果、A-1、B-1、B-2及びD-1単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザA型H3N2サブタイプのHAに対するマウス単クローン抗体F49と同様の染色パターンを示した（図１１）。このことから、精製HA抗原を用いて得られたこれらの単クローン抗体は、インフルエンザA型H3N2サブタイプのHAに対する抗体であることが推察された。
（実験例１－７）ハイブリドーマ培養上清の各種インフルエンザウイルスワクチン株感染細胞に対する染色活性
　B-3、E-2の各単クローン抗体産生ハイブリドーマ上清並びに9F3抗体、9E10抗体について、B/Malaysia/2506/04株感染細胞に対する染色活性を調べた。染色試験は、通常の間接蛍光抗体法で行った。ここで、コントロールとして用いられた9F3抗体は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対する抗体であって、特にNPに対するマウス単クローン抗体である。また、9E10抗体はヒトインフルエンザB型ウイルスに対する抗体であって、特にHAに対するマウス単クローン抗体である。
　8ウェルチャンバースライド上で、実験例１の１）中和活性測定の場合と同手法により、ヒトインフルエンザB型ウイルスB/Malaysia/2506/04株を感染させたMDCK細胞を、PBS(pH7.4)で洗浄後、無水エタノールで室温下、10分間固定した。単クローン抗体を含むハイブリドーマ培養上清について、培養上清原液をFITC標識ウサギ抗ヒトIgG抗体(Jackson社製)の1000倍希釈液で連続的に60分間ずつ反応させ、PBSで洗浄した染色された細胞は蛍光顕微鏡で観察した。
　その結果、B-3、E-2単クローン抗体産生ハイブリドーマの培養上清は、ヒトインフルエンザB型のHAに対するマウス単クローン抗体9E10と同様の染色パターンを示した（図１２）。このことから、精製HA抗原を用いて得られたこれらの単クローン抗体は、インフルエンザB型のHAに対する抗体であることが推察された。
（実験例１－８）エピトープマッピング
　本実施例では、B-1及びD-1の各単クローン抗体についてエピトープ解析を行なった。
　Hi/05：A/Hiroshima/52/05株(2005年分離)のうち、シグナルペプチド部分を含むヘマグルチニンHA1領域を構成する345残基のアミノ酸から連続的に選択される15残基のペプチドであり、13残基がオーバーラップするように調整した計166セットのペプチドを合成した。上記166セットの各ペプチドをガラス表面に固定したペプチドアレイを調製し、ブロッキング用緩衝液(Piace社Super Block(R) TBS)でガラス表面をブロック後、該ブロッキング用緩衝液で10μg/mLに希釈した各単クローン抗体を反応させた。インキュベート後、0.1% Tween20を含むTBSで3回洗浄し、1μg/mLに希釈したCy5標識抗ヒトIgG(H+L)を反応させた。インキュベート後、上記トリス緩衝生理食塩水(TBS)で3回及び3 mM クエン酸緩衝液(SSC)で十分洗浄後乾燥させ、蛍光スキャナーで蛍光を測定し、単クローン抗体と反応するペプチドの検出を行った。コントロールとして単クローン抗体を添加せず、その他の操作は同様の実験も同時に行った。B-1又はD-1の各単クローン抗体と抗原抗体反応させ、オーバーラップペプチドスキャン法によりエピトープ解析を行なった。具体的にはRepliTopeTM Microarrays(JPT Peptide Technologies Gmbh Germany)のプロトコールに準拠して実施した。
　その結果、図１３に示す部位において、中和活性が認められた。B-1及びD-1単クローン抗体が反応したヘマグルチニンHA1の２箇所のペプチド鎖部分は、N末側の一残基を除いてH3N2ウイルス株5株で保存されており、変異は限定的であることが確認された。ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1を構成するアミノ酸配列のＮ末端から数えて227番目のアミノ酸はS（セリン）又はP（プロリン）であるが、係る相違は中和活性には影響していない。文献上（Karoline et al Virology J., 5, 40 (2008)）もこの部位はSかPである。同173番目の変異はN（アスパラギン）又はK（リシン）であり、1968年のA/Aichi以外Kであり、文献上はK又はE（グルタミン酸）である。また、229番目及び230番目において文献上（Underwood,Mol.Immunol., 21, 7 (1987)）、各々R（アルギニン）若しくはG（グリシン）、I（イソロイシン）若しくはV（バリン）のアミノ酸の相違があり、238番目及び239番目においてもGenBank登録配列では、各々K若しくはN、P若しくはRのアミノ酸の相違が認められる。
　B-1及びD-1単クローン抗体が認識する２箇所のペプチド鎖部分は立体構造上近接していることから保存性の高い2鎖を立体構造的に認識していると推定され、ウイルスの変異に対する抵抗性が高いことが期待される（図１４）。なお、B-1及びD-1単クローン抗体が認識するエピトープ部分は、公知のインフルエンザウイルス株を広く中和する抗体（F10抗体, J.Sui et al. Nature structural & molecular biology (2009)）とはエピトープが異なり、中和できるウイルス型も異なっていると考えられる。
　さらに、NIAID（National Institute of Allergy and Infectious Disease) にリンクするエピトープデータベース（http://www.immuneepitope.org/doc//influenza/index.html）で検索した結果、リニアエピトープに関してはB-1及びD-1単クローン抗体が認識する配列を含むより広い範囲をエピトープとするウサギポリクローナル抗体（No.42,63）が存在するものの、変異の多い部分を含んでいる。立体構造認識エピトープに関しては、229番目及び230番目が一部オーバーラップしているエピトープを認識するマウス単クローン抗体（No.34）が存在するが、B-1及びD-1単クローン抗体が認識する部分に相当するエピトープとは異なる。従ってB-1及びD-1単クローン抗体が認識するエピトープは新規であると考えられる（図１５参照）。
　図１５において、B-1及びD-1単クローン抗体の認識する部分を斜体で示した。横線は、上記データベースのTable 6又はB cell epitopeに記載の番号とエピトープ部分を示し、★印は同データベースでインフルエンザに対する立体構造認識抗体を記載したTable 9のNo.34のエピトープ部分を示す。△は、上記５株以外の文献上又はPub Medに登録されていた株でアミノ酸置換が認められる部位を示す。
（実施例２）抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の産生
　本実施例では、実施例１でクローニングしたハイブリドーマR1D8及びK4E7の培養について説明し、B-1単クローン抗体（以下B-1抗体）及びD-1単クローン抗体（以下D-1抗体）の産生について、説明する。
　各ハイブリドーマは37℃、5％CO2インキュベーター内で無血清培地(Hybridoma-SFMTM; GIBCO)を用いて大量培養を行った。培養上清を回収し、Protein G SepharoseTM (Protein G SepharoseTM 4 Fast Flow; GE Healthcare)カラムで抗体分子を吸着し、PBSで2回洗浄の後、0.17M、pH2.3のグリシン(Glycine)溶液で溶出した。溶出した抗体分子を、透析膜（Spectra/por(R)（分画分子量：6K～8K）; 日本ジェネティクス）を用いてPBSで透析を行い、回収した。最終的な収量は、R1D8が0.249mg/L、K4E7が24.38mg/Lであった。
（実験例２－１）抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の効果（予防的効果）
　本実験例では、実施例２において精製して得たB-1抗体又はD-1抗体を、マウスに予防的に投与したときの生存率及び体重変化に及ぼす効果を確認した。
　実施例２において精製して得たB-1抗体又はD-1抗体を、４週齢雌Balb/cマウス（１群５匹）に100μg/匹ずつ腹腔内投与し、２４時間後にインフルエンザウイルスA/Guizhou/54/89xA/PR/8/34 (H3N2)株を1x105FFU/匹ずつ経鼻接種した。各単クローン抗体の代わりにPBSを0.5mL/匹ずつ投与したものをコントロール群とした。A/Guizhou/54/89xA/PR/8/34 (H3N2)株とは、A/PR/8/34(H1N1)株のHAとNAをA/Guizhou/54/89 (H3N2)株に置換したリアソータントウイルスである。
　コントロール群での生存率が0%であったのに対し、D-1抗体投与群では40%生存率、B-1抗体投与群では100%の生存率であった。特にB-1抗体で良好な効果が認められた（図１６）。また、ウイルス感染後の体重変化については、B-1抗体投与群では軽度の体重減少であった。一方、D-1抗体投与群では、コントロール群と同程度の体重減少であった（図１７）。図１７では、各個体の体重変化を各プロットにおいて示している。
（実験例２－２）抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の効果（治療的効果）
　本実験例では、実施例２において精製して得たB-1抗体又はD-1抗体を、マウスに治療的に投与したときの生存率及び体重変化に及ぼす効果を確認した。
　インフルエンザウイルスA/Guizhou/54/89xA/PR/8/34 (H3N2)株を、４週齢雌Balb/cマウス（１群５匹）に1x105FFU/匹ずつ経鼻接種し、２４時間後に実施例２において精製して得たB-1抗体及びD-1抗体を100μg/匹ずつ腹腔内投与した。各単クローン抗体の代わりにPBSを0.5mL/匹ずつ投与したものをコントロール群とした。
　コントロール群での生存率が0%であったのに対し、D-1抗体投与群では40%の生存率、B-1抗体投与群では60%の生存率であった（図１８）。また、ウイルス感染後の体重変化は、B-1抗体ではコントロール群に比べてやや軽度の体重減少であった。一方、D-1抗体では、コントロール群と同程度の体重減少であった（図１９）。図１９では、各個体の体重変化を各プロットにおいて示している。
　以上詳述したように、本発明の抗体のうちヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、少なくともA/Hiroshima/52/05株(2005年分離)のウイルス株に対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対する抗体は、少なくともB/Malaysia/2506/04株(2004年分離)ウイルス株に対して中和活性を有する。さらに、本発明の抗体は、各年代のインフルエンザウイルスワクチン株、例えばA/Aichi/2/68株（1968年分離）、A/Guizhou/54/89株(1989年分離)、A/Wyoming/3/03株(2003年分離)及びA/New York/55/04株(2004年分離)などのヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプの各ウイルスに対して中和活性を有し、あるいはB/Victoria/2/87株(1987年分離)、B/Mie/1/93株(1993年分離)、B/Shanghai/261/02株(2002年分離)などのヒトインフルエンザB型ウイルスの各ウイルスに対して中和活性を有する。
　つまり、本発明のヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、20年近く前より保存されている領域に対して活性を有し、40年以上前より保存されている領域に対して活性を有するものも含まれる。また、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対する抗体は、20年以上前より保存されている領域に対して活性を有する。一方、本発明の抗体は、HI(hemagglutination inhibition、赤血球凝集抑制)活性は検出限界以下である。
　また、本発明のヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対する抗体は、in vivoにおいて予防的又は治療的に投与した場合に、少なくともインフルエンザウイルスA/Guizhou/54/89xA/PR/8/34 (H3N2)株感染に対して生存率及び体重減少に対して効果を示す。
　本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体は、上記特性により、変異しやすいインフルエンザウイルスのうち、特に保存された領域に対して効果を示す抗体である。インフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプは、過去に世界的な流行を起こした亜型であり、近年ではアマンタジン等の抗インフルエンザウイルス作用を有する薬剤に対しても耐性株が増加しているが、今後新型のインフルエンザウイルスが発生・流行した場合であっても、本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体を含む組成物は、インフルエンザに対する治療効果が期待される。本発明の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体は、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプ、又はヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有することから、このような抗体を少なくとも1種、あるいは複数種含む組成物は、インフルエンザ治療薬や予防薬として、利用することが期待される。

Claims (13)

  1. ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1領域に結合する、又は、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する、抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  2. 抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体が、ヒトインフルエンザA型ウイルスH1サブタイプ及び同H2サブタイプに対して中和活性を有さない、請求項１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  3. 抗インフルエンザ・ヒト型抗体であって、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプに対して中和活性を有する抗体が、少なくともA/Hiroshima/52/05株に対して中和活性を有し、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する抗体が、少なくともB/Malaysia/2506/04株に対して中和活性を有する、請求項１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  4. 抗体が認識するエピトープが、ヒトインフルエンザA型ウイルスH3N2サブタイプのヘマグルチニンHA1を構成するアミノ酸配列のうち、Ｎ末端から数えて173-181番目のアミノ酸配列を含む領域及び／又は227-239番目のアミノ酸配列を含む領域である、請求項１～３のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  5. エピトープが、以下の配列番号１又は２に示すアミノ酸配列含むアミノ酸配列、あるいはこれらのアミノ酸配列のうち、１～２個のアミノ酸が置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかのアミノ酸配列からなる、請求項４に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体：
    １）NFDKLYIWG（配列番号１）；
    ２）KFDKLYIWG（配列番号２）。
  6. エピトープが、以下の配列番号３又は４に示すアミノ酸配列含むアミノ酸配列、あるいはこれらのアミノ酸配列のうち、１～２個のアミノ酸が置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかのアミノ酸配列からなる、請求項４に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体：
    １）SSRISIYWTIVKP（配列番号３）；
    ２）PSRISIYWTIVKP（配列番号４）。
  7. 抗体の可変領域をコードするDNAの塩基配列が、以下の配列番号５～１２に示すいずれかの塩基配列より選択される、あるいはこれらの塩基配列のうち、１～複数個のヌクレオチドが置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかの塩基配列を含む、抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体：
    １）GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA（配列番号５）；
    ２）GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAGTCAGAGCGTGAGCAATTATGTGAATTGGTATCAACAGAAGCCAGGGAGAGCCCCTAGGCTCCTCATCTCTAGTGCGTCCAATTTGTGGGCTGGGGTCCCGCCAAGTTCAGTGGCCGTGGAGAAGAGACAGACTTCACTCTCACCATCACCAGTCTGCAACCTGAAGATTCTGCAGTTTACTACTGTCAACAGAGTTACAGTGACCTTCTCAGTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAA（配列番号６）；
    ３）CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号７）；
    ４）CAGACTGTGGTGACCCAGGAGCCATCGTTCTCAGTGTCCCCTGGAGGGACAGTCACACTCACTTGTGGCTTGAGCTCTGGCTCAGTCTCTCCTAGTTACTACGCCAGCTGGTACCAGCAGACCCCAGGCCAGGCTCCACGCACGCTCATCTACAACACAAACACTCGCTCCTCTGGGGTCCCTGATCGCTTCTCTGGCTCCTTCCTTGGGAGCGACGCTGCCCTCACCATCACGGGGGCCCAGGCAGATGATGAGTCTGATTATTTCTGTGTGCTGTATATGCCTAGTGGCGATTGGGTTTTCGGCGGAGGGACCAAGCTGACCGTCCTAGGT（配列番号８）；
    ５）CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号９）；
    ６）GAAATTGTGTTGGCACAGTCTCCAGCCACCCTGTCTTTGTCTCCAGGGGAAAGAGCCACCCTCTCCTGCAGGGCCAGTGAGACCGTTGACACCTACTTAGCCTGGTACCAACAGAAACCTGGCCAGGCTCCCAGGCTCCTCATAAATGATGCATCCAAGAGGGCCACTGGCATCCCAGCCAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGGACAGACTTCACTCTCACCATCAGCGGCCTAGAGCCTGAAGATTTTGCAGTTTATTGGTGTCAGCAGCATAGCAACTGGCCCCCCACCTTCGGCCAAGGGTCACGGCTGGAGATTAAA（配列番号１０）；
    ７）CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA（配列番号１１）；
    ８）CAGTCTGTGCTGGCTCAGCCACCCTCAGCGTCTGGGACCCCCGGGCAGAGGGTCATCATCTCTTGTTCTGGAACCTCCTCCAACATCGGCGGTAATTCTGTCAACTGGTACCAGCACCCCCCAGGGGCGGCCCCGAGACTCCTCATCTATACTACCGATCAGCGACCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCACCTCTGCCTCCCTGGCCATCAGTGGGCTCCAATCTGAGGATGAGGCTGATTATTACTGTGAAGTTTGGGATGACAGCCTGACTCGTCCGGTGTTCGGCGGAGGGACCAAGTTGACCGTCCTACGT（配列番号１２）。
  8. 抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の抗原が、ヒトインフルエンザウイルスのA/Hiroshima/52/05株又はB/Malaysia/2506/04株である、請求項７に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  9. 抗体の可変領域をコードするDNAのうち、配列番号５～８に示す可変領域を有する抗体が、ヒトインフルエンザA型ウイルスのH3N2サブタイプに対して中和活性を有する抗体であり、配列番号９～１２に示す可変領域を有する抗体が、ヒトインフルエンザB型ウイルスに対して中和活性を有する抗体である、請求項７に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  10. 抗体の可変領域をコードするDNAのうち、配列番号５、７、９及び１１に示すDNAが、重鎖可変領域をコードするDNAであり、配列番号６、８、１０及び１２に示すDNAが、軽鎖可変領域をコードするDNAである、請求項８に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  11. 抗体が、インタクト抗体である、請求項１～１１のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体。
  12. 請求項１～１１のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体の可変領域をコードするDNAであり、以下の配列番号５～１２に示すいずれかの塩基配列より選択される、あるいはこれらの塩基配列のうち、１～複数個のヌクレオチドが置換、欠失、付加若しくは導入されたいずれかの塩基配列からなるポリヌクレオチドを含むDNA：
    １）GAGGAGAACCTGTTGCAGTCTGGGGGAGGCTTGGTCCAGCCGGGGGGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGCAGGCTCTGGATTCACGTTTAGTACTTACGCCATGACCTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGACAGGGGCTGGAGTGGGTCTCCTCTATTAGCGGTAGTGGTGAAATTTCCTATTACGCAGACTCCGTGAAGGGCCTGTTCACCATCTCCAGGGACAATTCCAAGGACACAGTGTTTCTGCAAATGACCAGCCTGAGAGCCGAAGACACGGCCGTATATTACTGTGCGAAATCCGACGTTTGGGAGGGTTATCGACCCTCAAAAGATGCTCTTCATATGTGGGGCCAAGGGACAATGGTCACCGTCTCTTCA（配列番号５）；
    ２）GACGTCCAGATGACTCAGTCTCCATCCTCCCTGTCTGCATCTGTGGGAGACAGAGTCACCATCACTTGTCGGGCAAGTCAGAGCGTGAGCAATTATGTGAATTGGTATCAACAGAAGCCAGGGAGAGCCCCTAGGCTCCTCATCTCTAGTGCGTCCAATTTGTGGGCTGGGGTCCCGCCAAGTTCAGTGGCCGTGGAGAAGAGACAGACTTCACTCTCACCATCACCAGTCTGCAACCTGAAGATTCTGCAGTTTACTACTGTCAACAGAGTTACAGTGACCTTCTCAGTTTCGGCGGAGGGACCAAGGTGGAGATCAAA（配列番号６）；
    ３）CAGGTGCAGCTGGTGCAATCTGGGTCTGAGTTGAAGAAGCCTGGGGCCTCAGTGAAGGTTTCCTGCAAGGCTTCTGGATACACCTTCACCTCTTATTCTATATATTGGGTGCGACAGGCCCCTGGACAAGGGCTTGAGTGGATGGGATGGATCAACACCAACACTGGGAACCCAAGCTATGCCCAGGGCTTCACAGGACGGTTTGTCTTCTCCTTCGACACCTCTGTCAGCACGGCATATCTGGAGATCAGCAGCCTAAAGGCTGAGGACACTGCCGTGTATTACTGTGCGAGAGAGGGAGATTACGATATTTTGACTGGTTATTATTATTACTTTGACTACTGGGGCCAGGGAACCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号７）；
    ４）CAGACTGTGGTGACCCAGGAGCCATCGTTCTCAGTGTCCCCTGGAGGGACAGTCACACTCACTTGTGGCTTGAGCTCTGGCTCAGTCTCTCCTAGTTACTACGCCAGCTGGTACCAGCAGACCCCAGGCCAGGCTCCACGCACGCTCATCTACAACACAAACACTCGCTCCTCTGGGGTCCCTGATCGCTTCTCTGGCTCCTTCCTTGGGAGCGACGCTGCCCTCACCATCACGGGGGCCCAGGCAGATGATGAGTCTGATTATTTCTGTGTGCTGTATATGCCTAGTGGCGATTGGGTTTTCGGCGGAGGGACCAAGCTGACCGTCCTAGGT（配列番号８）；
    ５）CAGGTGCAGTTGCAGGAGTCGGGCCCAGGACTGGTGAAGCCTTTACAGACCCTGTCCCTCACCTGCGTTGTCTCTGGTGACTCCATCAGCAGGGGTGGTTACTACTGGAGTTGGGTCCGCCAGCCCCCAGAGAGGGGCCTGGAGTGGATTGGGGACATCTATCACAGTGGGAGTACCAACTACAACCCGGCCCTCAAGAGTCGAACTACCATCTCAGTAGAGACGTCCAAGAACCAGTTCTCCCTGCAGCTGAACTCTGTGACCGCCGCAGACACGGCCGTGTATTACTGTGCCAGAGAGCCTCCACCTGACTACAGTGACTACAAGGTTGGGAAGGGTTATTTTGACTACTGGGGCCAGGGAGCCCTGGTCACCGTCTCCTCA（配列番号９）；
    ６）GAAATTGTGTTGGCACAGTCTCCAGCCACCCTGTCTTTGTCTCCAGGGGAAAGAGCCACCCTCTCCTGCAGGGCCAGTGAGACCGTTGACACCTACTTAGCCTGGTACCAACAGAAACCTGGCCAGGCTCCCAGGCTCCTCATAAATGATGCATCCAAGAGGGCCACTGGCATCCCAGCCAGGTTCAGTGGCAGTGGGTCTGGGACAGACTTCACTCTCACCATCAGCGGCCTAGAGCCTGAAGATTTTGCAGTTTATTGGTGTCAGCAGCATAGCAACTGGCCCCCCACCTTCGGCCAAGGGTCACGGCTGGAGATTAAA（配列番号１０）；
    ７）CAGGTGAAGTTGGTGCAGTCTGGCGGAGGCGCAGTCCAGCCTGGGAGGTCCCTGAGACTCTCCTGTGAGGCGTCTGGATTCGACTTCACTGTGTATGACATCCACTGGGTCCGCCAGGCTCCAGGCAAGGGGCTTGAGTGGGTGGCATCTATTTGGCATAACGGAGGAAAAGCATATTATGCGGACTCCGTGAAGGGCCGATTCACCGTGTCCAGAGACAATCCCCAGAAGACAGTGTATCTGCAAATGAGTGGCCTGAGACCCGAGGACACGGCTACATATTACTGTGCGAGAGAGTTTCCTTTCATGGGCATCTATGACTACGGCATGGACGCCTGGGGCCAAGGGACCACGGTCACCGTCGCCTCA（配列番号１１）；
    ８）CAGTCTGTGCTGGCTCAGCCACCCTCAGCGTCTGGGACCCCCGGGCAGAGGGTCATCATCTCTTGTTCTGGAACCTCCTCCAACATCGGCGGTAATTCTGTCAACTGGTACCAGCACCCCCCAGGGGCGGCCCCGAGACTCCTCATCTATACTACCGATCAGCGACCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCACCTCTGCCTCCCTGGCCATCAGTGGGCTCCAATCTGAGGATGAGGCTGATTATTACTGTGAAGTTTGGGATGACAGCCTGACTCGTCCGGTGTTCGGCGGAGGGACCAAGTTGACCGTCCTACGT（配列番号１２）。
  13. 請求項１～１１のいずれか１に記載の抗ヒトインフルエンザウイルス・ヒト型抗体を含む組成物。
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